JP5916149B2 - 細胞内カルシウムを調節する化合物 - Google Patents
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Description
本出願は、2010年8月27日に出願の、米国仮特許出願第61/377,842号の利益を主張し、その全体が引用によって本明細書に組み込まれる。
本明細書では、化合物、前記化合物を含む医薬組成物及び薬物、並びに、ストア作動性カルシウム(SOC)チャネル活性を調節するために前記化合物を使用する方法が記載される。
R1は、以下の式であり;
Yは、CR10又はNから独立して選択され;
R2は、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールであり;ここで、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールは、少なくとも1つのR3により随意に置換され;
R3は、H、F、D、Cl、Br、I、−CN、−NO2、−OH、−CF3、−OCF3、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、随意に置換されたC3−C8シクロアルキル、随意に置換されたC1−C6ヘテロアルキル、C1−C6ハロアルキル、随意に置換されたC2−C8ヘテロシクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、及び随意に置換されたヘテロアリールから独立して選択され;
R5は、H、C1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、C3−C8シクロアルキル、フェニル、及びベンジルから選択され、
R9及びR10は、各々、H、D、随意に置換されたC1−C6アルキル、ハロゲン、C1−C6アルキルカルボニル、又はCF3から独立して選択され;
R12は、CN、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、及び随意に置換されたC3−C8シクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、及び随意に置換されたヘテロアリールから選択される。
Lは、−NH−C(=O)−、又は−C(=O)NH−であり;
R1は、以下の式であり;
Yは、CR10又はNから独立して選択され;
R2は、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールであり;ここで、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールは、少なくとも1つのR3により随意に置換され;
R3は、H、F、D、Cl、Br、I、−CN、−NO2、−OH、−CF3、−OCF3、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、随意に置換されたC3−C8シクロアルキル、随意に置換されたC1−C6ヘテロアルキル、C1−C6ハロアルキル、随意に置換されたC2−C8ヘテロシクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、及び随意に置換されたヘテロアリールから独立して選択され;
R5は、H、C1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、C3−C8シクロアルキル、フェニル、及びベンジルから選択され、
R12は、CF3、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、又は随意に置換されたヘテロアリールであり;
R9及びR10は、各々、H、D、随意に置換されたC1−C6アルキル、ハロゲン、C1−C6アルキルカルボニル、又はCF3から独立して選択される。
Lは、−NH−C(=O)−、又は−C(=O)NH−であり;
R2は、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールであり;ここで、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールは、少なくとも1つのR8により随意に置換され;
R8は、F、D、Cl、Br、I、−CN、−NO2、−OH、−CF3、−OCF3、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、随意に置換されたC3−C8シクロアルキル、随意に置換されたC1−C6ヘテロアルキル、C1−C6ハロアルキル、随意に置換されたC2−C8ヘテロシクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、随意に置換されたヘテロアリールから独立して選択され;
R3は、F、D、Cl、Br、−CN、−NO2、−OH、−NH2、−CF3、及びOCF3から独立して選択され;
R5は、H、C1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、C3−C8シクロアルキル、フェニル、及びベンジルから選択され;
R7は、CF3、CN、随意に置換されたC1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、及び随意に置換されたC3−C8シクロアルキルから選択され;
及びnは、1又は2から選択される整数である。
R1は、以下の式であり;
Yは、CR10又はNから独立して選択され;
R2は、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールであり;ここで、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールは、少なくとも1つのR3により随意に置換され;
R3は、H、F、D、Cl、Br、I、−CN、−NO2、−OH、−CF3、−OCF3、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、随意に置換されたC3−C8シクロアルキル、随意に置換されたC1−C6ヘテロアルキル、C1−C6ハロアルキル、随意に置換されたC2−C8ヘテロシクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、及び随意に置換されたヘテロアリールから独立して選択され;
R5は、H、C1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、C3−C8シクロアルキル、フェニル、及びベンジルから選択され;
R9及びR10は、各々、H、D、随意に置換されたC1−C6アルキル、ハロゲン、C1−C6アルキルカルボニル、又はCF3から独立して選択され;
R12は、CN、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、及び随意に置換されたC3−C8シクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、及び随意に置換されたヘテロアリールから選択される。
これらの方法は、以下を含む。
(1)(受容体刺激の後、或いは、IP3自体で、又は、非代謝アナログIns(2,4,5)P3のような関連する同類物により、サイトゾルを透析した後に)サイトゾル内のIP3を上昇させる工程;
(2)ER膜を透過処理するために、Ca2+イオノフォア(例えば、イオノマイシン)を適用する工程;
(3)ストアから漏出して、故にストアの再充填を妨げるCa2+をキレート化する、高濃度のCa2+キレート剤(例えば、EGTA又はBAPTA)によって、細胞質を透析する工程;
(4)タプシガルジン、シクロピアゾン酸、及び、di−tert−ブチルヒドロキノンのような、筋小胞体/小胞体のCa2+−ATPase(SERCA)阻害剤へ曝露する工程;
(5)チメロサールのような薬剤を用いて、IP3受容体をInsP3の静止レベルにまで感作する工程;及び、
(6)N,N,N’,N’−テトラキス(2−ピリジルメチル)エチレンジアミン(TPEN)のような膜透過性金属Ca2+キレート剤を、ストアへと直接充填する工程。
カルシウムの放出に由来する小胞体などの細胞内カルシウムストアのカルシウム濃度の減少は、細胞外培地から細胞へのカルシウム流入のシグナルを提供する。細胞質カルシウム濃度の持続的な「プラトー」上昇をもたらすこのカルシウム流入は、一般的に、電位開口型細胞膜チャネルには依存せず、かつ、カルシウムによるカルシウムチャネルの活性化に関与しない。このカルシウム流入のメカニズムは、容量性カルシウム流入(CCE)、カルシウム放出活性化されたストア作動性、又は枯渇作動性のカルシウム流入を指す。ストア作動性カルシウム流入は、特徴的な性質を有するイオン電流として記録され得る。この電流は、ISOC(ストア作動性電流)又はICRAC(カルシウム放出活性化電流)と呼ばれる。
ストア作動性カルシウム流入は、細胞内カルシウムストア内のカルシウムのレベルによって調整される。細胞内カルシウムストアは、ストアからのカルシウムの放出を活性化する、或いは、ストアへのカルシウムの取り込みを阻害する薬剤(生理学的又は薬理学的でもよい)に対する感受性によって特徴付けられ得る。異なる細胞が、細胞内カルシウムストアの特徴において研究され、ストアは、種々の薬剤(IP3、及び、IP3受容体、タプシガルギン、イオノマイシン及び/又は環式ADPリボースに作用する化合物を含むが、これらに限定されない)に対する感受性を有するものとして特徴付けられた(例えば、Berridge、(1993) Nature 361:315−325;ChurchillとLouis(1999) Am.J.Physiol. 276 :C426−C434 ; Dargie et al. (1990) Cell Regul. 1 :279−290;Gerasimenko et al. (1996) Cell 84 :473−480; Gromoda et al.(1995) FEBS Lett. 360 :303−306;Guse et al.(1999) Nature 398 :70−73を参照)。
細胞におけるシグナル伝達プロセスのアゴニスト活性化は、例えば、IP3受容体チャネルの開口を介した小胞体のカルシウム透過性、及び、ストア作動性カルシウム流入を介した細胞膜のカルシウム透過性の著しい増加に関与し得る。カルシウム透過性のこれらの増加は、細胞質カルシウム濃度の上昇に関連付けられ、細胞質カルシウム濃度は、2つの成分、すなわち、IP3受容体の活性化中に小胞体から放出されるカルシウムの「スパイク」と、細胞外培地から細胞質へカルシウムが流入した結果生じる持続的なカルシウムレベルの上昇であるプラトー相とに分離可能である。刺激されると、約100nMの静止している細胞内の遊離型カルシウム濃度は、全体で1μM以上に上昇し、細胞の微小領域で更に高い値にまで上昇し得る。細胞は、これらのカルシウムシグナルを、ミトコンドリア、小胞体、及びゴルジ等のオルガネラによる生理的緩衝作用を含む、内在性カルシウム緩衝液で調節する。ミトコンドリアによる内膜における単輸送体を介したカルシウムの取り込みは、大量の負のミトコンドリア膜電位によってなされ、蓄積したカルシウムは、ナトリウム依存性及び非依存性の交換体を介して、かつ、状況によっては、透過性遷移孔(permeability transition pore)(PTP)を介して、ゆっくりと放出される。したがって、ミトコンドリアは、細胞活性化の期間中にカルシウムを取り込むことによってカルシウム緩衝液として作用すると共に、その後、カルシウムをゆっくりと放出することができる。カルシウムの小胞体への取り込みは、筋小胞体及び小胞体のカルシウムAPTase(SERCA)によって調整される。カルシウムのゴルジへの取り込みは、P型カルシウム輸送ATPase(PMR1/ATP2C1)によって媒介される。加えて、IP3受容体の活性化後に放出される相当量のカルシウムは、細胞膜カルシウムAPTaseの作用を介して細胞から押し出されることが証明されている。例えば、ナトリウム/カルシウム交換体は、ヒトT細胞内のカルシウムクリアランスにも寄与しているが、細胞膜カルシウムAPTaseは、ヒトT細胞とジャーカット細胞内のカルシウムクリアランスに対して支配的なメカニズムを提供する。カルシウム貯蔵オルガネラ内部において、カルシウムイオンは、例えば、カルセケストリン、カルレティキュリン、及び、カルネキシンなどの特殊なカルシウム緩衝化タンパク質に結合可能である。加えて、カルシウムスパイクを調節するとともにカルシウムイオンの再分配を補助する、サイトゾル中のカルシウム緩衝化タンパク質が存在する。したがって、細胞質カルシウムレベルを低下させることが可能な、これら及び他のメカニズムのいずれかに関与するタンパク質及びその他の分子は、細胞質カルシウム緩衝化に関与する、関わる、及び/又は、該細胞質カルシウム緩衝作用を提供するタンパク質である。したがって、細胞質カルシウム緩衝化は、SOCチャネルを介した持続性のカルシウム流入の間、又は、突発性のCa2+放出の間、細胞質Ca2+レベルを調整するのに役立つ。細胞質Ca2+レベルの又はストア再充填の大幅な増加は、SOCEを非活性化する。
カルシウムストアでの細胞内変化に加え、ストア作動性カルシウム流入は、ストア作動性の変化の結果生じる、或いは、ストア作動性の変化に加えて、多数の事象に影響を及ぼす。例えば、Ca2+流入は、セリンホスファターゼカルシニューリンを含む、多数のカルモジュリン依存性酵素の活性化をもたらす。細胞内カルシウムの増加によるカルシニューリンの活性化は、マスト細胞脱顆粒などの急性の分泌プロセスをもたらす。活性化されたマスト細胞は、ヒスタミン、へパリン、TNFα、及び、β−ヘキソサミニダーゼなどの酵素を含む、予め形成された顆粒を放出する。B及びT細胞の増殖などの幾つかの細胞的事象は、細胞内カルシウムの持続的な増加を必要とする、持続的なカルシニューリンシグナル伝達を必要とする。多くの転写因子は、NFAT(活性化T細胞の核内因子)、MEF2、及び、NFκBを含む、カルシニューリンによって調整される。NFAT転写因子は、免疫細胞を含む多くの細胞型において重要な役割を果たす。免疫細胞において、NFATは、サイトカイン、ケモカイン、及び、細胞表面受容体を含む、多数の分子の転写を媒介する。NFATの転写要素は、IL−2、IL−3、IL−4、IL−5、IL−8、IL−13、同様に、腫瘍壊死因子α(TNFα)、顆粒球コロニー刺激因子(G−CSF)、及び、γ−インターフェロン(γ−IFN)といったサイトカインのプロモーター内部で見出された。
臨床研究は、CRACチャネルが、抗原に対するT細胞応答の基礎をなす遺伝子の活性化に絶対的に必要とされることを示している。持続的なカルシウム流入は、リンパ球活性化と適応免疫反応に必要とされる。リンパ球へのカルシウム流入は、まずCRACチャネルを介して生じる。カルシウムの増加は、免疫反応に必要とされるNFAT活性化及びサイトカイン発現を引き起こす。ストア作動性カルシウム流入を阻害することは、T細胞活性を防止するのに効果的な方法である。
本明細書で提供される化合物、組成物及び方法を使用して処置又は予防が可能な疾患又は障害は、炎症を含む疾患及び障害、及び/又は、免疫系に関連する疾患及び障害を含む。これらの疾患は、喘息、慢性閉塞性肺疾患、関節リウマチ、炎症性腸疾患、糸球体腎炎、多発性硬化症などの神経炎症疾患、及び、免疫系の障害を含むが、これらに限定されない。
本明細書で提供される式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物、その組成物及び方法は、悪性腫瘍の処置と関連して使用可能であり、前記悪性腫瘍は、リンパ網内系組織由来、膀胱癌、乳癌、結腸癌、子宮内膜癌、頭頚部癌、肺癌、メラノーマ、卵巣癌、前立腺癌、及び直腸癌の悪性腫瘍を含むが、これらに限定されない。ストア作動性カルシウム流入は、癌細胞内の細胞増殖において重要な役割を果たし得る(Weiss et al.(2001)International Journal of Cancer 92(6):877−882)。
本明細書で提供される式(I)、(II)、(III)、又は(IV)の化合物、その組成物及び方法を使用して処置又は予防可能な疾患又は障害は、肝臓の疾患、又は、肝臓の疾患及び障害を含む。これらの疾患及び障害は、例えば、移植、肝炎、及び、肝硬変に起因する肝損傷を含むが、これらに限定されない。
本明細書で提供される方法を使用して処置又は予防可能な疾患又は障害は、腎臓の疾患及び障害を含む。メサンギウム細胞過形成は、しばしば、このような疾患及び障害の主要な特徴である。このような疾患及び障害は、IgAN、膜性増殖性糸球体腎炎、又は、ループス腎炎を含む、損傷の免疫学的メカニズム又は他のメカニズムによって引き起こされ得る。メサンギウム細胞複製の制御における不均衡も、進行性腎不全の病変形成において主要な役割を果たすことが明らかとなっている。
臨床研究は、SOCチャネルの一種であるCRACチャネルが、抗原に対するT細胞応答の基礎をなす遺伝子の活性化に絶対的に必要とされることを実証する(Partiseti et al.J Biol.Chem.,269,32327−32335,1994;Feske et al. Curr.Biol.15,1235−1241,2005)。抗原によるT細胞活性化の基礎をなす遺伝子発現を駆り立てるために必要とされる、持続的Ca2+シグナルをCRACチャネルが生成するTリンパ球のように、SOCEは、細胞質Ca2+レベル([Ca2+]i)の上昇の直接的な要因となり得る。持続的なカルシウム流入は、リンパ球活性化と適応免疫反応に必要とされる。リンパ球へのカルシウム流入は、まずCRACチャネルを介して生じる。増加したカルシウムレベルは、免疫反応に必要とされるNFAT活性及びサイトカインの発現を引き起こす。
ストア作動性チャネルのマーカーとしてタプシガルジン活性化Ca2+流入を用いるショウジョウバエS2細胞におけるRNAiスクリーンにおいて、1つの遺伝子が、Ca2+流入をほぼ減少させ、その遺伝子は、タンパク質の間質相互作用分子(Stim)をコード化した(Roos,J.et al.,J.Cell Biol.169,435445,2005)。哺乳動物の細胞にはStimの二つの相同体であるSTIM1及びSTIM2が存在し、その両方は、普遍的に分布することが明らかとなっている(Williams et al., Biochem J. 2001 Aug 1; 357(Pt 3):673−85)。STIM1は、ストア作動性Ca2+流入のためのERのCa2+センサである。STIM1は、複数の予測されるタンパク質相互作用又はシグナル伝達ドメインを有する77kDaのI型膜タンパク質であり、ER内では支配的に配されているが、限定的ではあるものの細胞膜内にも存在する。
Orai1(CRACM1としても知られる)は、広範囲に発現し、4つの膜貫通ドメインを備える33kDaの細胞膜タンパク質であり、そして、他のイオンチャネルとの著しい配列相同性を欠いている(Vig, M. et al. Science 312, 1220−1223(2006); Zhang, S. L. et al. Proc. Natl Acad. Sci. USA 103, 9357−9362(2006))。
SOCチャネルの特徴付けは、SOCチャネルの一種であるCRACチャネルにより大部分が得られる。CRACチャネル活性は、STIM1とOrai1の作用を介して細胞膜内のCRACチャネルの開口につながれる、ER内腔からCa2+が失われることによって誘発される。Ca2+の枯渇は、STIM1によって感知され、細胞膜に隣接する接合ERにCa2+を蓄積させる。開いたCRACチャネルの位置をマップするためのTIRFベースのCa2+撮像研究において、[Ca2+]iの上昇は、STIM1の点を共局在化させることがわかり、CRACチャネルがこれらの部位に非常に接近した際にのみ開かれるということを直接的に示している(Luik,et al.,J.Cell Biol.174,815−825(2006))。
幾つかの実施形態において、本明細書に記載のスクリーニング/同定の方法の何れかにおける細胞内カルシウムに対する式(I)、(II)、(III)、又は(IV)の化合物の効果の監視又は評価、細胞(細胞基質及び細胞内オルガネラ又はコンパートメントを含む)カルシウムの直接又は間接的な評価又は測定、及び/又は、細胞、オルガネラ、カルシウムストア又はその部分(例えば、膜)への、それらの内部での、或いはそれらの外へのイオンの移動が、実行される。様々な方法が、カルシウムレベルと、イオンの移動又は流入とを評価するために、本明細書に記載される。使用する特定の方法と用いられる条件は、細胞内カルシウムの特定の態様を監視或いは評価するかに依存する。例えば、本明細書に記載の幾つかの実施形態において、試薬と条件は既知のものであり、とりわけ、ストア作動性カルシウム流入、静止した細胞質カルシウムレベル、カルシウム緩衝化及びカルシウムレベル、並びに、細胞内オルガネラ及びカルシウムストアによる取り込み又はそれらからの放出を評価するために使用される。他の実施形態において、細胞内カルシウムに対する式(I)、(II)、(III)、又は(IV)の化合物の効果は、例えば、細胞、細胞内オルガネラ又はカルシウムストアコンパートメント、膜(例えば、分離細胞膜パッチ、又は脂質二重層を含む)、又は無細胞アッセイ系(cell−free assay system)(例えば、アウトサイドアウト(outside−out)膜小胞)を使用して、監視又は評価される。一般に、細胞内カルシウムの幾つかの態様は、試験薬の存在下で監視又は評価され、対照(例えば、試験薬の不在下での細胞内カルシウム)と比較される。
幾つかの実施形態において、細胞内カルシウムの調節は、限定されないが、例えば、細胞質及び/又は小胞体などの細胞内カルシウム貯蔵オルガネラでのカルシウム濃度又はレベルの変化、細胞又は細胞内カルシウムストア又はオルガネラへの、細胞又は細胞内カルシウムストア又はオルガネラからの、細胞又は細胞内カルシウムストア又はオルガネラ内での、カルシウムの移動の変化、細胞内のカルシウムの位置の変化、及び、細胞への、細胞からの、細胞内での、カルシウム流入の動力学又は他の特性の変化を含む、細胞内カルシウムの任意の変更又は調節である。幾つかの実施形態において、細胞内カルシウム調節は、例えば、ストア作動性カルシウム流入、細胞質カルシウム緩衝化、カルシウムレベル、又は細胞内カルシウムストア又はオルガネラへの、細胞内カルシウムストア又はオルガネラからの、又は細胞内カルシウムストア又はオルガネラ内でのカルシウムの移動、及び/又は、基底の或いは静止した細胞質カルシウムレベルの、減少又は阻害といった、変更又は調節を含む。幾つかの実施形態において、細胞内カルシウムの調節は、受容体媒介性のイオン(例えば、カルシウム)移動、セカンドメッセンジャー作動性イオン(例えば、カルシウム)移動、細胞へのカルシウム流入又は細胞からのカルシウム流出、及び/又は、例えば、エンドソームとリゾソームを含む、細胞内コンパートメントへのイオン(例えば、カルシウム)の取り込み、又は、細胞内コンパートメントからのイオンの放出を含む。
本明細書に記載の化合物は、細胞内カルシウムを調節し、細胞内カルシウムの調節が有益な効果を有する疾患又は疾病の処置に使用されてもよい。1つの実施形態において、本明細書に記載の化合物は、ストア作動性カルシウム流入を阻害する。1つの実施形態において、式(I)、(II)、(III)、又は(IV)の化合物は、SOCEユニットの集合を妨害する。別の実施形態において、式(I)、(II)、(III)、又は(IV)の化合物は、ストア作動性カルシウムチャネル複合体を形成するタンパク質の機能的な相互作用を変化させる。1つの実施形態において、式(I)、(II)、(III)、又は(IV)の化合物は、STIM1とOrai1の機能的な相互作用を変化させる。他の実施形態において、式(I)、(II)、(III)、又は(IV)の化合物は、SOCチャネル孔のブロッカーである。他の実施形態において、式(I)、(II)、(III)、又は(IV)の化合物は、CRACチャネル孔のブロッカーである。
R1は、以下の式であり;
Yは、CR10又はNから独立して選択され;
R2は、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールであり;ここで、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールは、少なくとも1つのR3により随意に置換され;
R3は、H、F、D、Cl、Br、I、−CN、−NO2、−OH、−CF3、−OCF3、−OR5、C1−C6アルキル、C3−C8シクロアルキル、C1−C6ヘテロアルキル、C1−C6ハロアルキル、C2−C8ヘテロシクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、及び随意に置換されたヘテロアリールから独立して選択され;
R5は、H、C1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、C3−C8シクロアルキル、フェニル、及びベンジルから選択され;
R9及びR10は、各々、H、D、C1−C6アルキル、ハロゲン、C1−C6アルキルカルボニル、又は、CF3から独立して選択され;
R12は、CN、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、C3−C8シクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、及び随意に置換されたヘテロアリールから選択される。
Lは、−NH−C(=O)−、又は−C(=O)NH−であり;
R1は、以下の式であり;
Yは、CR10又はNから独立して選択され;
R2は、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールであり;ここで、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールは、少なくとも1つのR3により随意に置換され;
R3は、H、F、D、Cl、Br、I、−CN、−NO2、−OH、−CF3、−OCF3、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、随意に置換されたC3−C8シクロアルキル、随意に置換されたC1−C6ヘテロアルキル、C1−C6ハロアルキル、随意に置換されたC2−C8ヘテロシクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、随意に置換されたヘテロアリールから独立して選択され;
R5は、H、C1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、C3−C8シクロアルキル、フェニル、及びベンジルから選択され;
R12は、CF3、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、又は随意に置換されたヘテロアリールであり;
R9及びR10は、各々、H、D、随意に置換されたC1−C6アルキル、ハロゲン、C1−C6アルキルカルボニル、又はCF3から独立して選択される。
Lは、−NH−C(=O)−、又は−C(=O)NH−であり;
R2は、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールであり;ここで、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールは、少なくとも1つのR8により随意に置換され;
R8は、F、D、Cl、Br、I、−CN、−NO2、−OH、−CF3、−OCF3、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、随意に置換されたC3−C8シクロアルキル、随意に置換されたC1−C6ヘテロアルキル、C1−C6ハロアルキル、随意に置換されたC2−C8ヘテロシクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、随意に置換されたヘテロアリールから独立して選択され;
R3は、F、D、Cl、Br、−CN、−NO2、−OH、−NH2、−CF3、及び−OCF3から独立して選択され;
R5は、H、C1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、C3−C8シクロアルキル、フェニル、及びベンジルから選択され;
R7は、CF3、CN、随意に置換されたC1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、及び随意に置換されたC3−C8シクロアルキルから選択され;
及びnは、1又は2から選択される整数である。
R1は、以下の式であり;
Yは、CR10又はNから独立して選択され;
R2は、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールであり;ここで、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールは、少なくとも1つのR3により随意に置換され;
R3は、H、F、D、Cl、Br、I、−CN、−NO2、−OH、−CF3、−OCF3、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、随意に置換されたC3−C8シクロアルキル、随意に置換されたC1−C6ヘテロアルキル、C1−C6ハロアルキル、随意に置換されたC2−C8ヘテロシクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、随意に置換されたヘテロアリールから独立して選択され;
R5は、H、C1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、C3−C8シクロアルキル、フェニル、及びベンジルから選択され;
R9及びR10は、各々、H、D、随意に置換されたC1−C6アルキル、ハロゲン、C1−C6アルキルカルボニル、又はCF3から独立して選択され;
R12は、CN、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、随意に置換されたC3−C8シクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、及び随意に置換されたヘテロアリールから選択される。
本明細書に記載の化合物は、幾つかの場合において、ジアステレオマー、エナンチオマー、又は他の立体異性の形態として存在し得る。本明細書に提示の化合物は、全てのジアステレオマー、エナンチオマー、及びエピマーの形態の他に、それらの適切な混合物も含む。立体異性体の分離は、クロマトグラフィーによって又はジアステレオマーの形成及び再結晶による分離、又はクロマトグラフィー、又はそれらの任意の組み合わせによって実行され得る。(Jean Jacques,Andre Collet,Samuel H.Wilen,”Enantiomars,Racemates and Resolutions”,John Wiley And Sons,Inc.,1981、本開示のための引用によって本明細書に組み込まれる)。立体異性体はまた、立体選択的な合成によって得られ得る。
幾つかの場合において、本明細書に記載の化合物の幾つかは、別の誘導体又は活性化合物のためのプロドラッグであり得る。
幾つかの実施形態において、本明細書に記載される化合物の合成は、化学文献に記載される手段を使用して、本明細書に記載される方法を使用して、又はそれらの組み合わせによって達成される。更に、本明細書に提示される溶媒和物、温度、及びその他の反応条件は、異なり得る。
本明細書に記載される化合物は、様々な求電子試薬及び/又は求核試薬を使用して変更され得ることで、新たな官能基又は置換基を形成する。「共有結合及びその前駆体の例(Examples of Covalent Linkages and Precursors Thereof)」という表題の表1には、共有結合及び共有結合をもたらす前駆体の官能基の、選択された限定されない例が記載される。表1は、共有結合を提供する、利用可能な様々な求電子試薬と求核試薬の組み合わせに対する指針として使用され得る。前駆体の官能基は、求電子試薬基及び求核試薬基として示される。
記載される反応において、例えば、ヒドロキシ、アミノ、イミノ、チオ又はカルボキシ基などの反応性官能基を保護する必要があり得、ここで、これらは、反応における不要な関与を避けるために、最終産物において所望される。保護基は、幾つか又は全ての反応性部分を遮断するため、及び保護基が除去されるまで前記基が化学反応に関与することを妨げるために使用される。各保護基は、異なる手段によって除去可能であることが好ましい。総合的に異なる反応条件下で開裂される保護基は、差次的な(differential)除去の要件を満たす。
他に定義されない限り、本明細書で使用される全ての技術的及び科学的用語は、請求の範囲の主題が属すると一般に理解されるものと同じ意味を有する。本明細書の用語に関して複数の定義がある場合、このセクションの定義が優先される。本明細書に引用される全ての特許、特許出願、公報、及び公開されたヌクレオチド及びアミノ酸配列(例えば、GenBank又は他のデータベースで利用可能な配列)は、引用によって組み込まれる。URL又は他のこのような識別子或いはアドレスに対して言及がなされる場合、このような識別子は変更し得、インターネット上の特定の情報が現れたり消えたりし得るが、同等の情報がインターネットを検索することにより発見され得ることが理解される。これらに対する引用によって、このような情報の利用可能性及び一般的な普及が確証される。
本明細書に記載の、又は、該技術分野において認識される、スクリーニング/同定法の何れかでの細胞内カルシウムに対する式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物の効果の監視又は評価では、細胞(細胞質及び細胞内オルガネラ又はコンパートメントを含む)カルシウム及び/又は、細胞、オルガネラ、カルシウム貯蔵又はその部分(例えば、膜)への、その部分内部、若しくはその部分からのイオンの移動の直接又は間接の評価又は、測定を実行し得る。様々な方法は、カルシウムレベル、イオン移動、又は流入を評価するために、本明細書に記載及び/又は該技術分野で認識されるものである。使用する特定の方法、そして、用いる条件は、細胞内カルシウムの特定の態様を監視するのか、評価するのかに依存し得る。例えば、幾つかの実施形態において、本明細書に記載されているように、試薬と条件とは、ストア作動性カルシウム流入を特異的に評価し、細胞質カルシウム濃度、カルシウム緩衝、及び、カルシウム濃度を静止させ、そして、細胞内オルガネラとカルシウムストアへの取り込み又は放出を行う、ために使用される。細胞内カルシウム上の式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物の効果は、例えば、細胞、細胞内オルガネラ又は、カルシウム貯蔵コンパートメント、膜(例えば、分離細胞膜パッチ、又は脂質二重層を含む)、又は無細胞アッセイ系(cell−free assay system)(例えば、アウトサイドアウト(outside−out)膜小胞)を使用して、監視又は評価することができる。一般に、細胞内カルシウムの幾つかの態様は、試験薬の存在下で監視又は評価され、対照(例えば、試験薬の不在下での細胞内カルシウム)と比較される。
細胞内カルシウムの調節は、細胞内カルシウムの任意の変更又は調節であり得る。前記変更又は調節は、細胞質及び/又は細胞内カルシウム貯蔵オルガネラ(例えば、小胞体)のカルシウム濃度又はレベルの変更、細胞中へのカルシウムの移動、細胞外へのカルシウムの移動、及び細胞又は細胞内カルシウム貯蔵若しくはオルガネラ内でのカルシウムの移動における変更、細胞内のカルシウムの位置の変更、及び、細胞中へのカルシウムの流れ、細胞外へのカルシウムの流れ、及び細胞内でのカルシウムの流れの、動力学的特性又は他の特性の変更を含むが、これらに限定されない。特定の実施形態において、細胞内カルシウム調節は、ストア作動性カルシウム流入、細胞質カルシウム緩衝、細胞内カルシウムストア又はオルガネラ内のカルシウムレベル、又は、それへの、それから外への、その中でのカルシウムの移動、及び/又は、細胞質カルシウムレベルの基底又は静止、の例えば減少又は阻害といった、変更又は調製に関与し得る。幾つかの実施形態において、細胞内カルシウムの調節は、受容体媒介のイオン(例えばカルシウム)移動、セカンドメッセンジャー作動イオン(例えばカルシウム)移動、細胞へのカルシウム流入、又は細胞の外へのカルシウム流出、及び/又は、例えば、エンドソームとリゾソームを含む、細胞内コンパートメントへのイオン(例えば、カルシウム)の取り込み、又は、それからの放出、に関与し得る。
医薬組成物は、活性化合物を医薬的に使用され得る製剤へと処理するのを促進する賦形剤及び佐剤を含む、1以上の生理学的に許容可能な担体を使用する、従来の方法で処方され得る。適切な製剤は、選択される投与の経路に依存する。本明細書に記載の医薬組成物に適切な賦形剤に関する追加の詳細は、例えば、Remington:The Science and Practice of Pharmacy, Nineteenth Ed (Easton, Pa.: Mack Publishing Company, 1995);Hoover, John E., Remington’s Pharmaceutical Sciences, Mack Publishing Co., Easton, Pennsylvania 1975;Liberman, H.A. and Lachman, L., Eds., Pharmaceutical Dosage Forms, Marcel Decker, New York, N.Y., 1980;及びPharmaceutical Dosage Forms and Drug Delivery Systems, Seventh Ed.(Lippincott Williams & Wilkins1999)において見い出され、そのような開示のための引用によって本明細書に組み入込まれる。
本明細書に記載の化合物は、細胞内カルシウムの調節のために、又は、少なくとも部分的に細胞内カルシウムの調節から利益を得る疾患又は疾病の処置のために、薬の製剤の際に使用され得る。加えて、前記処置を必要としている患者における本明細書に記載の疾患又は疾病のいずれかを処置するための方法は、前記被検体に治療上効果的な量での本明細書に記載の少なくとも1つの化合物を含有する医薬組成物、或いは、それらの薬学的に許容可能な塩、薬学的に許容可能なプロドラッグ、又は薬学的に許容可能な溶媒和物の投与に関与する。
式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物及びその組成物は、処置される疾病に対する治療的価値で選択された他の治療薬と組み合わせて用いてもよい。一般的に、本明細書及び併用療法が用いられている実施形態に記載されている組成物及び他の薬剤は、同一の医薬組成物に入れて投与される必要はなく、かつ、物理的及び化学的特徴が異なるために、異なる経路で投与される必要があり得る。可能であれば、同じ医薬組成物の中での投与方法及び投与の妥当性を決定することは、十分臨床医の知識の範囲内である。初期の投与は当該技術分野で周知の確立された手順に従って実行可能であり、その後、観察された効果に基づいて、投与量、投与形態及び投与時間は臨床医によって変更可能である。
1つの態様において、式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物は、他のSOCEの阻害剤と併せて投与又は使用される。1つの態様において、前記SOCEの阻害剤は非選択的な阻害剤である。
a)例えば、Gd3+、La3+などのランタニドカチオンを含むカチオン;
b)エコナゾール、ミコナゾール、クロトリマゾール、ケトコナゾールを含むP−450阻害剤;
c)ニフルム酸、フルフェナム酸、テニダップを含むシクロオキシゲナーゼ阻害剤;
d)ノルジヒドログアヤレチン酸、エイコサテトライン酸を含むリポキシゲナーゼ阻害剤;
e)SK&F96365、SC38249、LU52396、L−651,582,テトランドリン、2−APBを含むチャネルブロッカーである化合物;
f)U73122(ホスホリパーゼC阻害剤)、ウォルトマンニン(ホスファチジルイノシトールキナーゼ阻害剤)を含む、SOCチャネル自体へ作用することなくSOCEを阻害する化合物、を含む。
1つの実施形態において、免疫系の活性を少なくする、抑制するあるいは防ぐための免疫抑制療法において、本明細書に記載の化合物は単一の薬剤として投与される。免疫抑制療法は、移植臓器及び組織(例えば骨髄、心臓、腎臓、肝臓)の拒絶反応を防ぐため;自己免疫性疾患又は自己免疫性由来である可能性が最も高い疾患(例えば関節リウマチ、重症筋無力症、全身性エリテマトーデス、クローン病及び潰瘍性大腸炎)の処置のため;及び幾つかの他の非自己免疫の炎症性疾患(例えば長期アレルギー喘息制御)の処置のために臨床的に使用される。
被験体が自己免疫性の疾患、傷害又は疾病、あるいは炎症性の疾患、障害又は疾病に苦しんでいる又は苦しむ危険性がある場合、本明細書記載の化合物は、1つ以上の以下の免疫抑制剤(例えばタクロリムス、シクロスポリン、ラパマイシン(rapamicin)、メトトレキサート、シクロホスファミド、アザチオプリン、メルカプトプリン、ミコフェノール酸又はFTY720)、グルココルチコイド(例えばプレドニゾン、酢酸コルチゾン、プレドニゾロン、メチルプレドニゾロン、デキサメタゾン、ベタメタゾン、トリアムシノロン、ベクロメタゾン、酢酸フルドロコルチゾン、酢酸デオキシコルチコステロン、アルドステロン)、非ステロイド性抗炎症薬(例えばサリチル酸、アリールアルカン酸、2−アリールプロピオン酸、N−アリールアントラニル酸、オキシカム、コキシブあるいはスルホンアニリド)、Cox−2に特異的な阻害剤(例えばバルデコキシブ、エトリコキシブ、ルミラコキシブ、セレコキシブ又はロフェコキシブ)、レフルノミド、金チオグルコース、金チオマリン酸塩、アウロフィン(aurofin)、スルファサラジン、ヒドロキシクロロキニン、ミノサイクリン、TNF―α結合タンパク質(例えばインフリキシマブ、エタネルセプト又はアダリムマブ)、アバタセプト、アナキンラ、インターフェロン―β、インターフェロン―γ、インターロイキン2、抗ロイコトリエンス、テオフィリン又は抗コリン薬との任意の組み合わせにおいて投与される。
本明細書に記載の治療への応用で使用するために、キット及び製品も本明細書中に記載される。このようなキットは、運搬体、パッケージ、又はバイアル、チューブ等の1つ以上の容器を形成するように区分される容器を備え、容器の各々は本明細書に記載の方法で用いられる別々の要素の内1つを含む。適切な容器としては、例えば、ボトル、バイアル、シリンジ及び試験管を含む。容器はガラスやプラスチックなどの様々な材料から形成可能である。
様々な技術を用いて、ストア作動性カルシウム流入及び細胞中のカルシウムのシグナル伝達を評価してもよい。このような技術は、パッチクランプ電気生理学(原形質膜などの細胞膜を横断してカルシウムイオン又は他のイオンを測定)、静電容量測定(エキソサイトーシスが単一細胞レベルで生じることを可能にする)及び原形質内のカルシウム移動のパターンを追跡可能にする蛍光染料を用いたカルシウム画像化、タンパク質間相互作用を評価可能にする蛍光共鳴エネルギー移動(FRET)、及び関心のあるタンパク質の発現レベルの操作を可能にする分子生物学的方法を含むが、これらに限定されない。
式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物による細胞内カルシウムの調節をインビトロで試験するために、前記アッセイのための様々な細胞が利用可能である。特定の実施形態において、細胞は、ストア作動性カルシウム流入が起こる細胞、又はストア作動性カルシウム流入がその細胞内で起こるように操作可能な細胞である。特定の実施形態において、細胞は、本明細書に提供されるものなど、細胞内カルシウムの調節に関与する1つ以上のタンパク質を含有する(特に、ストア作動性カルシウム流入、細胞内オルガネラ又はカルシウムストアへの、細胞内オルガネラ又はカルシウムストアの外への又は細胞内オルガネラ又はカルシウムストア内でのカルシウム移動、細胞内オルガネラ又はカルシウムストア(例えば、小胞体)内のカルシウムレベルの調節及び/又はカルシウムバッファリングに関与し、関わり及び/又はそれらを提供する)。特定の実施形態において、タンパク質は、STIMタンパク質(STIM1、STIM2、DSTIM及びCSTIMタンパク質)及び/又はOraiタンパク質(Orai1、Orai2、Orai3)を含む。細胞は、内因的に又は組み換え技術によってタンパク質を発現し得る。
1つの態様において、本明細書に記載の化合物は、ストア作動性カルシウム流入に対する式(I)−(III)の効果を評価するためにストア作動性カルシウム流入が生じることを許容する条件下で、細胞に加えられる。このような条件は本明細書に記載されるとともに、当該技術分野では公知である。
カルシウムで調整された経路に関係する多くの分子が知られている。カルシウム流入媒介性の事象に関与する分子の評価は、細胞内カルシウムを監視するために使用することができ、例えば、本明細書で提供される化合物の効果を監視するための本明細書に記載のスクリーニングアッセイにおいて使用することができる。アッセイの実施例は、カルシウム流入を介する事象に関与する分子の存在、レベル、レベル変化、生成、修飾(リン酸化反応及び脱リン酸化反応)、転座(translocation)、分解及び活性を検出又は測定するアッセイを含むが、これらに限定されない(例えばTrevillyan et al. (2001)J. Biol. Chem 276:48118−26を参照)。本明細書に記載のアッセイは、本明細書で提供される化合物で処理され又は当該化合物と接触した細胞、又は試験分子(STIMタンパク質、Oraiタンパク質を含むカルシウムの調整に関与するタンパク質など)の量の変化を発現する細胞、又は対照細胞に使用することができる。アッセイは生理学的な活性剤又は非生理学的な活性剤で刺激された細胞、あるいは刺激されていない細胞内でも行うことが可能である。以下に示すものは、カルシウム流入を介する事象に関与する分子の代表的なアッセイであり、ほんの一例として例示するためのものである。上記分子及びカルシウム流入を媒介する事象に関与する他の分子に関するアッセイは、本明細書に記載のスクリーニング方法及び/又は調節方法のいずれかにおいて利用可能である。
マスト細胞においてCa2+の流入は、ヘパリン、ヒスタミン及びβ−ヘキソサミニダーゼなどの酵素といった、炎症性メディエータの脱顆粒及び放出をもたらす。前記分子の放出を検出及び/又は測定することは、したがって細胞内カルシウムを監視するために使用可能である。例えば、マスト細胞から培地を採取することができる。その後、β−ヘキソサミニダーゼに適切な基質(例えば、p−ニトロフェニル−アセチル−グルコサミド)がその後加えられ、結果として生じた混合物の吸光度は、サンプルにおけるβ−ヘキソサミニダーゼ活性の相対量を測定するために評価される(Funaba et al.(2003)Cell Biol. International 27:879−85)。
ホスファターゼカルシニューリン(CaN)は、様々なタンパク質を脱リン酸化し、その活性及び局在性に影響を与える。例えば、cAMP依存性キナーゼのRIIのサブユニットにおける配列に対応する放射標識ペプチドのような、精製したCaN及びCaN基質を、式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物であるいは該化合物を用いずにインキュベートすることによって、CaN活性を評価できる(Trevillyan et al. (2001)J. Biol. Chem 276:48118−26を参照)。放射性標識ペプチドレベル及び/又は遊離した無機リン酸塩の量は、CaN脱リン酸化活性を評価するために測定可能である。
NFAT(活性化したT細胞の核因子)の転写因子は、細胞内カルシウム濃度に反応する多くの遺伝子を制御する。例えば、NFATタンパク質は免疫反応に関与するサイトカイン遺伝子の転写を制御する。NFAT制御した遺伝子からのプロモーター及び/又は制御領域及びこれらの遺伝子からの要素を用いて、NFAT制御した発現を監視し、それにより細胞内カルシウムを監視することが可能である。レポーター遺伝子との融合物はルシフェラーゼ、β−ガラクトシダーゼ、緑色蛍光タンパク質(GFP)のようなレポーター遺伝子又は当該技術分野で知られている他のレポーター遺伝子と操作可能に結合する、NFAT制御されたプロモーター又はNFAT制御された要素で構築することができる(例えば、公開米国特許出願第2002−0034728号公報を参照)。レポータータンパク質及びレポーター活性の量は、NFAT活性の1つの基準である。
NFATの活性化は主にそのリン酸化を通して制御され、次々と細胞内局在性を制御していく。刺激されていない細胞では、NFATは高リン酸化した細胞質タンパク質である。様々なメカニズムによって誘発された細胞内Ca2+の上昇は、Ca2+カルモジュリン依存性ホスファターゼ、カルシニューリンの活性を増加させる。活性化したカルシニューリンは、NFAT分子の制御領域内の多数のセリン残基を脱リン酸化する。NFATはCa2+のレベル又はCaN阻害の減少に応じて再リン酸化される。
細胞質と核の間のNFATの局在性はNFATのリン酸化状態によって制御される。NFATのリン酸化反応は、核局在配列をマスキングすることによって、核の局在化を防ぐ。NFAT核局在化は、細胞中の蛍光色素をタグ付けしたNFAT(例えばGFP−NFAT)を発現させることによって監視可能である。共焦点顕微鏡法を用いて、タグ付けされたNFATの核局在化を監視できる(Trevillyan et al (2001)J. Biol. Chem 276:48118−26を参照)。
例えば、IL−2分泌のようなサイトカイン分泌は、タンパク質検出アッセイを用いて測定できる。例えば、上清は免疫細胞から採取可能である。ELISAアッセイ又はIL−2抗体を有する他の好適なフォーマットを用いて、分泌されたIL−2の量を対照細胞と比較して検出及び/又は測定できる。例えばTNF−αのような他の好適なサイトカインの分泌も、同様に類似のアッセイにおいて検出できる。
IL−2に限定されないが、IL−2などのサイトカインの発現は、細胞内で直接的又は間接的のいずれかによって評価可能である。例えば、間接的な方法では、IL−2プロモーターは、ルシフェラーゼ又はβガラクトシダーゼなどのレポーター遺伝子と操作可能なように結合させることができ、このレポーターコンストラクトは細胞内に取り込まれる。レポーター遺伝子の発現は測定可能であるとともに、対照細胞中の遺伝子の発現と比較可能である(Trevillyan et al (2001)J. Biol. Chem 276:48118−26を参照)。代替的に、内因性又は組み換えIL−2 mRNAあるいはタンパク質の発現を評価できる。
IL−2のようなサイトカインは、マイトジェン又はアロ抗原の刺激の反応したT細胞の増殖に必要であり、したがってT細胞の増殖はサイトカインの発現又は分泌の変化によって変わる。T細胞は、コンカナバリンA又はアロ反応性リンパ球などを用いて誘導可能であり、T細胞増殖は、例えば3H−チミジンのパルスに細胞をさらし及び3H−チミジンの取り込みを測定することによって測定される(Trevillyan et al (2001)J. Biol. Chem 276:48118−26を参照)。
a.カルシウム指示薬によって測定されたように、[Ca2+]iの増加が直接的に阻害される;
b.パッチクランプによって測定されたように、ISOC又はICRACが直接的に阻害される;
c.カルシニューリン活性、NFATの細胞内局在、NFATのリン酸化、及び/又は例えば、IL−2のようなサイトカインの生成などの下流シグナル機能が阻害される;
d.活性化誘発細胞の増殖、分化及び/又はアポトーシスシグナル伝達経路で修飾が行われる。
本方法の実施形態で使用可能な動物モデルは、細胞内カルシウムに依存又は細胞内カルシウムによって制御される、細胞プロセスの変質又は欠損あるいは該細胞プロセスの異常な機能を、少なくとも幾つかの細胞内に有する、非ヒト動物を含むが、これらに限定されない動物を更に含む。細胞内カルシウムに依存又はこれによって制御される細胞プロセスは、例えば、細胞の活性化、遺伝子の発現、細胞輸送及びアポトーシスを含む。細胞内カルシウムの調節によって少なくとも部分的に補われ得る欠陥を含む疾患/障害は限定されないが、リウマチ性関節炎、炎症性腸疾患、シェーグレン症候群(唾液腺上皮細胞のリンパ球の侵襲に関連するサイトカインが、耳下腺細胞内のカルシウム動員を減少し、また転写因子の活性化、サイトカイン遺伝子の発現及び細胞の増殖を含むT細胞活性化は、ストア作動性カルシウムの流入によって提供される細胞内カルシウムレベルの持続した上昇に依存する)、喘息(ストア作動性カルシウム流入が、気管支狭窄及び気管支の平滑筋細胞の増殖を媒介するという重要な役割を果たす)、糸球体腎炎及び糸球体炎症(糸球体炎症の共培養モデルにおける、ストア作動性カルシウム流入、シグナル単球接着などによる細胞内カルシウムの変化)を含む自己免疫性障害を含む。
これらの実施例は、例示目的のみに提供され、本明細書に提供される請求項の範囲を制限しない。本明細書に記載の化合物の合成に使用された出発物質と試薬は、限定されないが、Sigma−Aldrich、Acros Organics、 Fluka及びFischer Scientificなどの商業的供給源から合成されるか、得ることができる。
LC−MS:C19H11ClFN2O2Sのための計算値:405(M+1)。
有機相を1N NaOHにより抽出した。水相は、pH=2までHClにより酸性化し、その後EAにより抽出した。EA相をブラインにより洗浄し、硫酸ナトリウムで乾燥させ、乾燥するまで濃縮し、黄色固形物として374mgの[1−メチル−3−(5−メチル−1,2,4−オキサジアゾル−3−イル)]ピラゾル−5−イル−ボロン酸(43)を得た。
〈実施例85 細胞内カルシウムレベルを調節する薬剤のインビトロ(In Vitro)でのスクリーニング〉
蛍光ベースのアッセイを使用して、細胞内のカルシウムを調節する、式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物のような、本明細書に記載の化合物をスクリーニングした。
〈細胞〉
アッセイを行なう前の日に、Orai1/STIM1安定細胞を、384ウェルプレート内での90−95%の集密の、50μLの完全培地のプレート上に蒔いた。細胞を、37℃/6%のCO2で一晩成長させた。アッセイの日に、完全培地内の1.5μMのfluo−4−AM(Invitrogen)を細胞に加え、その後、室温で1時間インキュベートした。細胞を、一度Ca2+遊離HBSS(Hank’s 緩衝生理食塩水溶液)の中で洗浄し、35μlのCa2+遊離HBSSを、各々のウェルに加えた。試験化合物を、10μLのCa2+遊離HBSS溶液中のウェルに加え、4.5Xで所望の終末濃度を調製し、室温で30分間インキュベートした。その後、最初のベースライン蛍光シグナルをFLIPR384(Molecular Devices)プレートリーダーで測定する。カルシウム流入を、HBSS中の5μlの10X CaCl2(10mM)を加えることにより始め、細胞の蛍光の変化をFLIPR384プレートリーダーで測定する。各々のウェルでは、細胞の中へのカルシウム流入の結果として蛍光シグナルの光度を、カルシウムの追加の後に測定された最大蛍光シグナルと、最初のベースライン蛍光シグナル(指定されたピーク基礎)との間の差の計算により測定する。IC50値を、ピーク基礎シグナルの50%を阻害した濃度として典型的に計算する。
〈細胞〉
RBL−2H3細胞をATCCから得て、37℃/6%のCO2で、10%のFBSを備えた完全培地内で維持した。
アッセイを行なう前の日に、RBL−2H3細胞を、384ウェルプレート内での50μLの完全培地において蒔いた。細胞を、37℃/6%のCO2で一晩中成長させ、翌日までに50−60%の集密に成長させる。アッセイの日に、完全培地内での1.5μMのFluo−4−AM色素(Invitrogen)を加え、室温で1時間インキュベートした。細胞を、Ca2+遊離HBSS緩衝液の中で2度洗浄し、35μlのCa2+遊離HBSS緩衝液を、各々のウェルに加えた。4.5Xの所望濃度のCa2+遊離HBSS溶液中で調製された10μLの試験化合物を各々のウェルに加え、室温で5分間インキュベートする。5.5Xの所望の濃度(5.5μM)でのCa2+遊離HBSS溶液中で調製された10μLのタプシガルギンを各々のウェルに加え、更に25分間インキュベートする。最初のベースライン蛍光シグナルをFLIPR384(Molecular Devices)プレートリーダーで測定する。HBSS(12mM)中の5μLの12Xカルシウムを加え、細胞の蛍光の変化をFLIPR384プレートリーダーで測定する。各々のウェルでは、細胞の中へのカルシウム流入による時間の作用である蛍光シグナルの変化を、カルシウムの追加の後に7秒測定された蛍光シグナルと、0時間(t=0)での最初のベースライン蛍光シグナルとの間の差の計算により測定する。このパラメーターを上昇で示す。IC50値を、50%の上昇が阻害される濃度として計算する。
〈細胞〉
ジャーカットE6−1細胞をATCCから得て、37℃/6%のCO2で10%のFBSを備えた完全培地内で維持した。
アッセイを行なう前の日、ジャーカットE6−1細胞をT−175フラスコ中の完全培地内での200万の細胞/mLの密度で播種する。細胞を、37℃/6%のCO2で一晩中成長させる。翌日に、完全培地内の1.5μMのFluo−4−AM色素(Invitrogen)を加え、室温で1時間インキュベートする。細胞を集め、Ca2+遊離HBSS緩衝液で2度洗浄し、384ウェルプレート内の35μLのCa2+遊離HBSS緩衝液中に蒔く。4.5Xの所望濃度のCa2+遊離HBSS溶液で調製された試験化合物10μLをウェルに加え、室温で5分間インキュベートする。5.5Xの所望濃度(5.5uM)でのCa2+遊離HBSS溶液中で調製された10μLのタプシガルギンを各々のウェルに加え、室温で更に25分間インキュベートする。最初のベースライン蛍光シグナルをFLIPR384(Molecular Devices)プレートリーダーで測定する。HBSS(12mM)中の5μLの12Xカルシウムを加え、細胞の蛍光の変化をFLIPR384プレートリーダーで測定する。各々のウェルでは、細胞の中へのカルシウム流入による時間の作用である蛍光シグナルの変化を、カルシウムの追加の後に7秒測定された蛍光シグナルと、0時間(t=0)での最初のベースライン蛍光シグナルとの間の差の計算により測定する。このパラメーターを上昇で示す。IC50値を、50%の上昇が阻害される濃度として計算する。
〈目的〉
このアッセイの目的は、クローンのCRACチャネル(HEK293細胞の中で安定して発現したOrai1とSTIM1の遺伝子)に対する、式(I)、(II)、(III)又は(IV)の構造を有する化合物のインビトロ(in vitro)の効果を試験することにあり、この効果は、ICRAC、カルシウム放出活性化カルシウムチャネル電流に寄与する。
製剤:試験物質保存溶液を、ジメチルスルホキシド(DMSO)の中で調製し、冷凍して保存する。試験物質濃度を、適切な外部のレコーディング緩衝液へ保存溶液を薄めることにより、毎日新規に調製する。必要ならば、試験物質製剤を、溶解を促進する環境の室温で、超音波で処理する(Model 2510, Branson Ultrasonics, Danbury, CT)。特定の例では、0.1%のDMSOまでを包含し、及び0.1%のDMSOの存在を包含する試験液は、チャネル電流に影響しない。
典型的に、各試験物質の三つの(3つの)濃度の効果を評価する(0.1、1及び10μM)。試験物質を量り、DMSO内の30mM又は10mMの保存溶液として調製する。DMSOストックを外部のレコーディング緩衝液の中で薄め、10μMの試験溶液(最終のDMSO 0.03%又は0.1%)を調製する。10μMの試験溶液を外部のレコーディング緩衝液の中で薄め、1μM及び0.1μMの試験溶液を調製する。試験溶液は、より下方の濃度での試験溶液の中で薄められる、最も高い濃度の0.1%までのDMSOを包含している。
陽性対照物質の貯蔵液をバッチで調製し、個々の使用のために等分し、冷凍貯蔵し、6か月以内に使用した。陽性対照濃度を、外部のレコーディング緩衝液へ保存溶液を薄めることにより、毎日新規に調製する。試験陽性対照物質での最終のDMSO濃度は、溶液の0.1%以内である。
陰性対照物質は、外部のレコーディング緩衝液中の0.1%のDMSOである。
細胞を、CalciMedica標準プロトコルにつき組織培養インキュベータの中で維持する。ストックを極低温貯蔵装置で維持する。電気生理学に使用される細胞を、プラスチック組織培養皿の中に蒔く。
HEK293細胞を、適切なイオンチャネルcDNA(Orai1/STIM1)で、安定してトランスフェクトする。細胞を、10%のウシ胎児血清(Gibco 10082)、100U/mLのペニシリンGナトリウム、1mMのピルビン酸ナトリウム(Gibco 11360)、100μg/mLの硫酸ストレプトマイシン(Gibco 10378)、0.5mg/mlのジェネテシン(Gibco 10131−035)及び50μg/mlのゼオシン(Invitrogen 45−0430)で補われたDMEM(Gibco 11960)において培養する。細胞を80%以下の集密で維持するべきである。試験の前の日、培養ディッシュ中の細胞を、カルシウム/マグネシウム−遊離D−PBSで一回洗浄し、トリプシン/EDTAで処理し、培地で再懸濁し、計数した。その後、細胞を1%のウシ胎児血清を有する培地の中で希釈し、24−ウェル組織培養ディッシュ中で、ガラス製のカバースリップで覆われたポリ−D−リジン上に低密度(5−10K)で蒔き、湿度95%の空気、6%のCO2雰囲気において37℃で配置された組織培養インキュベータに置く。
〈試験物質のレコーディングチャンバ及びかん流〉
細胞を包含しているガラス製のカバースリップを、外部のレコーディング緩衝液の連続的なかん流で、レコーディングチャンバ(Warner Instruments)へ移す。ICRACの記録中に、すべての処理を、使い捨てのポリエチレン・チューブ栄養を介して、使い捨てのシリンジ貯蔵器から、テフロン(登録商標)・マニフォールドへの重力送りの槽還流によって(gravity−fed bath perfusion)送達する。流量を、1分以内の完全な溶液交換を確実にする、1.2−1.5ml/分の間で設定する。すべての実験を周囲温度で実行する。
試験物質が10分間適用される場合の試験に関して、処理パラダイムを表2に要約する。対照レコーディング緩衝液を、五分間(5分間)かん流する一方、ICRACが進行し、及び安定したベースラインを確立する;それぞれの細胞をその同一対照として使用する。各々の試験物質を、十分間(10分間)、未処理の細胞(n≧2、この場合、n=細胞の数/濃度;1つの濃度/細胞で)に適用する(表2)。効果の可逆性を探すために、試験物質を十分間(10分間)洗い流す。カルシウムを含まない外部のレコーディング食塩水を二分間(2分間)かん流し、ICRACの欠如におけるバックグラウンド電流を測定する。カルシウムを包含している対照生理食塩水を、三分間(3分間)再適用する。
陰性対照として、0.1%のDMSOを、未処理の細胞(n≧2、この場合n=数細胞)に適用する。これをICRACの下降の規模を監視するために使用する。陽性対照として、1μMの4−(4−ブロモフェニル)−2−(3−フルオロベンズアミド)チオフェン−3−カルボン酸を、ルーチン的に未処理の細胞(n≧2、この場合n=数細胞)に適用する。
標準的なホールセルパッチクランプ法を使用する。細胞外及び細胞内の溶液の組成物を表4及び5に示す。細胞を、倒立顕微鏡(Olympus IX71)、及びMulticlamp 700B増幅器及びPClamp software(Axon Instruments)を使用して留められた電圧上で視覚化する。簡潔には、細胞内の溶液(Appendix 1)で充填されたホウケイ酸塩パッチ・ピペットを、細胞膜上に位置づける。GΩシールを形成すると、吸引をパッチが破裂するまで適用し、ホールセルの構造を確立する。構造の性質をClampexにおける「膜試験」で評価し、細胞静電容量(Cm)、入力抵抗(Rm)、アクセス抵抗(Ra)及び50mVにおける保持電流(Ih)を評価する。データを、オフライン分析のためにCalciMedicaコンピュータネットワーク上に保存する(そして毎晩バックアップする)。
Orai1/STIM1チャネル複合体からのICRACを、細胞内溶液中の20mMのBAPTAを使用する細胞内カルシウム貯蔵の受動的な枯渇によって活性化する。電圧固定データを得、Clampexソフトウェアを各六秒(6秒)ずつ適用し、使用して刺激電圧プロトコル(表6に示す)を誘発する。電流を10kHzでディジタル化し、2kHzでフィルター処理した。全体の細胞容量性の補償を用いる。代表的なICRACトレースを図2に示す。
データ分析を、Clampfitソフトウェアを使用して行う。ICRACを−100mVで測定し、5分を後に測定される電流をベースライン対照として使用する。10分の適用研究に関して、試験物質の10分の適用後に測定された電流を、基線電流に標準化し、%対照として表す。40分の適用研究に関して、ICRACの記録時間の終わり10分間に測定された電流を、コンパレータとして使用する。「0のカルシウム」バッファにおいて測定された電流を、バックグラウンドリーク電流を減ずるために使用する。各々の試験物質濃度(n≧2)のデータポイントをシグモイド関数(SigmaPlot)に当てはめ、IC50及びヒルスロープ(Hill slope)を測定する。
〈実施例87 マスト細胞脱顆粒のインビトロ(In vitro)でのアッセイ〉
〈細胞〉
RBL−2H3細胞をATCCから得て、37℃/6%のCO2で10%のFBSを備えた完全培地内で維持した。
〈a) 1μMのタプシガルギン/20nM TPAによる刺激〉
アッセイを行う前の日に、RBL−2H3細胞を、96ウェルプレート内に蒔く。細胞を、37℃/6%のCO2で一晩中成長させる。翌日に、細胞を、1.8mMのCaCl2及び1.75%のウシ胎児血清(FBS)を備えたHBSS緩衝液中で2度洗浄する。1.8mMのCaCl2+1.75%のFBSを備えたHBSS緩衝液中で調製された、70μLの試験化合物を加え、37℃/6%のCO2で10分間インキュベートする。細胞を、7μLの11X タプシガルギン/TPA(11μMのタプシガルギン/220nMのTPA)の追加によって刺激し、120分間、37℃/6%のCO2でインキュベートする。培地を集め、細胞溶解産物を、1.8mMのCaCl2を備えたHBSSにおける70μLの0.05%のトリトンX−100の追加によって調製する。βヘキソサミニダーゼのレベルを、培地及び細胞溶解産物の両方の中で測定する。β−ヘキソサミニダーゼアッセイを、10μLのサンプル(調整培地又は細胞溶解産物)に、0.05Mのクエン酸ナトリウム(pH4.5)中の40μLの1mMのp−ニトロフェニル−アセチル−グルコサミド(glucosamide)基質を加えて、37℃で60分インキュベートし、その後、100μLの0.05Mの炭酸ナトリウム/0.05Mの炭酸水素ナトリウム(pH10.5)を加え、じっくり混ぜ、405nmで吸収率を読み取ることにより行なう。放出されるβ−ヘキソサミニダーゼの割合を、以下のように計算する:A405(培地)/[A405(培地)+A405(溶解産物)]。IC50値を、ビヒクル処置細胞において放出されるβ−ヘキソサミニダーゼの50%が阻害される濃度として計算する。
アッセイを行なう前の日に、RBL−2H3細胞を、96ウェルプレート内で1時間、200μLの完全培地に蒔く。20μLの11X DNP−IgEを加え、細胞を37℃/6% CO2で一晩成長させる。翌日に、細胞を、1.8mMのCaCl2及び1.75%のウシ胎児血清(FBS)を備えたHBSS緩衝液中で2度洗浄する。1.8mMのCaCl2と1.75%を備えたHBSS緩衝液中で調製された、70μLの試験化合物を加え、37℃/6%のCO2で10分間インキュベートする。細胞を、7μLの11X DNP−BSAの追加によって刺激し、30分間、37℃/6%のCO2でインキュベートする。培地を集め、細胞溶解産物を、1.8mMのCaCl2を備えたHBSSにおける70μLの0.05%トリトンX−100の追加によって調製する。β−ヘキソサミニダーゼのレベルを、培地及び細胞溶解産物の両方の中で測定する。β−ヘキソサミニダーゼアッセイを、10μLのサンプル(調整培地又は細胞溶解産物)に、0.05Mのクエン酸ナトリウム(pH4.5)中の、40μLの1mMのp−ニトロフェニル−アセチル−グルコサミド(glucosamide)基質を加えて、37℃で60分インキュベートし、その後、100μLの0.05Mの炭酸ナトリウム/0.05Mの炭酸水素ナトリウム(pH10.5)を加え、じっくり混ぜ、405nmで吸収率を読み取ることにより行なう。放出されるβ−ヘキソサミニダーゼの割合を以下のように計算する:A405(培地)/[A405(培地)+A405(溶解産物)]。IC50値を、ビヒクル処置細胞において放出されるβ−ヘキソサミニダーゼの50%が阻害される濃度として計算する。
〈細胞〉
ジャーカットE6−1細胞をATCCから得て、37℃/6%のCO2で10%のFBSを備えた完全培地内で維持した。
アッセイを行なう前の日、ジャーカットT細胞を3時間、1.5x105細胞/ウェルの密度の96ウェルプレート中の、1.8mMのCaCl2及び1.75%のウシ胎児血清(FBS)を備えた90μLのHBSS緩衝液に蒔く。HBSS中で調製された、10μLの10X試験化合物を加え37℃/6%のCO2で10分間インキュベートする。細胞を、10μLの11X PHA/TPA(27.5μg/mL PHA/880nM TPA)の追加によって刺激し、20時間、37℃/6%のCO2でインキュベートする。翌日に、上清を集め、製造者のプロトコルに従ってELISAによって、IL−2レベルに関して分析する。IC50値を、ビヒクル処置細胞において分泌された、IL−2における50%が阻害される濃度として計算する。
25%のPEG400/20%のエタノール/55%のH2Oビヒクル中で、式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物を経口投与されたラットにおける、バイオアベイラビリティ及び血漿薬物動態学の特性。2つの処置群、1)2mg/kgの静脈投与群;及び2)10mg/kgの経口投与群を、重さ約250−300gmの、オスのスプレーグ・ドーレイラット(1群につき3匹のラット)に投与する。最大で10の時点を、各群に関して採取する。典型的な時点は次のとおりである:投与前、15分、30分、1、2、4、6、8、12及び24時間である。全体の血液のうち最大300μLを、各時点において顎静脈カニューレを介して採取する。全体の血液を微量遠心管を含む抗凝固剤へと集め、血漿を無菌の微量遠心管に送る前に、微量遠心管で5分間、5000rpmで遠心分離にかける。血漿のサンプルを生化学分析にかける。
実施例91 ラットのコラーゲンにより発生される関節炎(CIA)モデルにおける式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物の効果:
手順:体重が200±20gのオスのウィスターラットを、使用前に24時間、絶食させる。遠位大腸炎を、長さ12cmのカテーテルを用いてDNBS(0.5mlの30%エタノール中の20gの2,4−ジニトロベンゼンスルホン酸)の大腸内液下によって誘発させ、その後、カテーテルを通して空気(2ml)をゆっくりと注入し、溶液が大腸内にとどまるようにする。動物を、各々5つの群に分ける。試験物質及びビヒクルを、DNBSの点滴の24時間前及び1時間前に、好適な投与経路によって、毎日又は1日2回のいずれかで投与し、その後、6日間連続して投与する。1つの正常な対照群を、DNBSの負荷なしで、0.9%のNaClのみで処置する。動物は最後の1日2回の投与の12時間後、及び最後の毎日の投与の24時間後に処分し、大腸を除去し、重さを量る。実験の間、体重、便潜血、及び便軟度を毎日監視する。更に、大腸の除去の前に腹腔が開いている場合、大腸及び他の臓器の間の癒着は、各々の大腸を除去して重さを量った後、大腸潰瘍が存在することを意味している(肉眼で見える損傷のスコアを、確立されているスコア基準に従って記録する)。結腸の重さ対体重の比率を式:結腸(g)/BW x 100に従って計算する。ビヒクル−対照群に関連する、ビヒクル−対照+DNBS群の比率における「純」増を、個々に処置された群と比較するための基準として使用し、「Dec.(%)」(パーセント低下)として表す。ビヒクルで処置した対照群と関連して、大腸の重さ対体重の比率において30%又はそれ以上(≧30%)の減少を著しいものとみなす。
実施例93 ラットにおける皮膚移植の拒絶反応に対する、式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物の効果:
この第二相試験の目的は、活動性関節リウマチ患者における式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物の単回及び複数回の静脈内注入の安全性、耐性、PK、PD、及び効果を調査するものである。
〈包含基準〉
・全ての被験体は、可能な避妊法を使用し、本研究の過程の間、及び、男性の場合で投与後少なくとも12週間、女性の場合で投与後32週間、妊娠が決して起こらないようにしなければならない;
・肥満度指数は18.5−35kg/m2の範囲内でなければならず、体重も55−95kgの範囲内でなければならない;
・被験体はインフォームドコンセントを与えることが可能でなければならず、研究の条件及び時間割に従うことができる;
・被験体は、米国リウマチ学会(ACR)の1987年改訂版の基準に従って、RAの診断を受けていなければならない;
・被験体はスクリーニング及び投与前段階で、4.2以上のDAS28疾患活動性スコアを有していなければならない;
・被験体はスクリーニング及び投与前段階で、CRP血清レベル>/0.5mg/dl、又はESRレベル28mm/時を有していなければならない;
・被験体は、リウマチ関節炎の処置のための生物学的製剤を含む、任意の生物学的療法を過去に受けていない;
・被験体は、スクリーニングの段階で、正常の上限(ULN)の1.5倍以内のアラニン・トランスアミナーゼ(ALT)及びアスパラギン酸トランスアミナーゼ(AST)、ならびに、ULNの3倍以内のアルカリホスファターゼ(ATP)を含む、肝機能検査を受けなければならない。患者はスクリーニング時にULNの範囲で総合的ビリルビンも摂取しなければならない;
・被験体はメトトレキサートを少なくとも3ヶ月間摂取しなければならず、スクリーニングの前に少なくとも8週間、メトトレキサートの安定した服用を受けなければならず(25mg/週まで)、更に、本研究の間、その服用量を自発的に維持しなければならない;
・メトトレキサートに加えてスルファサラジンを投与している場合、被験体はスクリーニングの前に少なくとも4週間、安定した服用を受けなければならず、本研究の間、その投与量を自発的に維持しなければならない;
・メトトレキサートに加えて、ヒドロキシクロロキン又はクロロキンを投与している場合、被験体はスクリーニングの前に少なくとも3カ月間、安定した服用を受けなければならず、本研究の間、その投薬量を自発的に維持しなければならない;
・非ステロイド系抗炎症薬(NSAIDs)、COX−2阻害剤、経口のグルココルチコイド、例えば、プレドニゾロン(10mg/日まで)を含み得る、他の経口の抗リウマチ治療を受ける被験体は、スクリーニングの前に少なくとも4週間、安定した投薬レジメンを受けなければならず、本研究の間、そのレジメンを自発的に維持しなければならない。例えば、メチルプレドニゾロン(120mg/月まで)のような筋肉内グルココルチコイドを服用している被験体は、スクリーニングの前に少なくとも3カ月間、安定した投薬レジメンを受けなければならず、本研究の間、このレジメンを自発的に維持しなければならない;
・被験体は、事前に少なくとも4週間、葉酸補充(5mg/週)の安定した服用を受けなければならない。
・医学的評価、臨床検査(例えば、正常範囲外の血液学パラメータ)、又はECG(12 Lead又はHolter)をスクリーニング時に同定された、任意の臨床的に関連のある異常;
・スクリーニングの結果、被験体が陽性のB型肝炎表面抗原、又はC型肝炎抗体を有している;
・被験体が過去6ヶ月間で1回より多く、高肝機能検査の履歴がある(ALT、AST、及びALP>3x正常上限(ULN);総ビリルビン>1.5×ULN);
・結核菌によって引き起こされた以前の曝露又は過去の感染;
・被験体が急性感染症にかかっている;
・被験体が反復性、慢性、又は日和見性の感染症の病歴を有しており、研究者及び/又はGSK医療監視要員の意見により、これらの感染症が本試験の参加者としての被験体を容認できない、危険にさらすとしている;
・外科的に治療した基底細胞癌、又は治療した子宮頚癌を有する女性を除外して、被験体が悪性腫瘍の病歴を有する(2年より前に);
・被験体がヒト免疫不全症ウイルス(HIV)又は他の免疫不全症の病歴を有する;
・計算されたクレアチンクリアランスが50ml/分未満の被験体;
・被験体が心臓、肺、代謝、腎臓、肝臓、又は、胃腸の重大な疾病を有しており、研究者及び/又はGSK医療監視要員の意見により、これらの疾病が本試験の参加者としての被験体を容認できない、危険にさらすとしている;
・被験体がスクリーニングの1カ月以内に、シクロスポリン、レフルノミド(leflonomide)、シクロホスファミド、又はアザチオプリンを摂取したことがある。過去、シクロスポリン、レフルノミド(leflonomide)、シクロホスファミド、又はアザチオプリンを摂取したことがある被験体は、薬物に関連した有害事象の全てから回復していなければならない;
・被験体がスクリーニング前の1か月以内に、金塩又はd−ペニシラミンを摂取したことがある。過去、金塩又はd−ペニシラミンを摂取したことがある被験体は、薬物に関連した有害事象の全てから回復していなければならない;
・被験体がスクリーニングの1か月以内に、関節内にグルココルチコイドを摂取したことがある;
・最近の病歴に、出血障害、貧血、消化性潰瘍性疾患、吐血、消化管出血がある;
・薬物誘発性血小板減少症、急性特発性血小板減少症、又は、フォン・ヴィレブラント病を含む、血液病又は後天性血小板障害の病歴のある被験体;
・過去12か月以内の中枢神経系(CNS)手術を含む頭蓋内出血、動脈血管の異常形成、動脈瘤、過去半年以内の著しい閉鎖性頭部外傷、又は研究者及び/又は医療監視員が関連性があるとみなす他の任意の出来事の、周知の危険性を有する被験体;
・被験体がHb<10g/デシリットル(dL)、及び血小板数<150x109/リットル(L)を有する;
・投与前の56日以内の500mlを超える献血;
・妊娠している女性又は授乳期にある女性との性交を自制する意志のない男性の被験体;又は、女性のパートナーが投薬後少なくとも12週間で妊娠する可能性のある場合、その女性に、例えば、子宮内避妊器具(IUD)、殺精子薬と共に用いるベッサリー、経口避妊薬、注射用プロゲステロン、レボノルゲストレルの皮下移植又は卵管結紮といった、別の避妊形態を使用させることに加えて、殺精子薬と共にコンドームを使用する意志のないの男性の被験体;
・本研究の制約の条文で定義されているように、適当な避妊方法を使用する意志のない、妊娠の可能性のある女性の被験体。必要とあれば、妊娠の可能性のない(すなわち、閉経後、又は、例えば、卵管結紮又は子宮摘出あるいは卵巣摘出のように外科的に不妊した)女性を確認する。閉経後の状態を、血清卵胞刺激ホルモン(FSH)、及び、スクリーニング時のエストラジオール濃度によって確認する。外科的な不妊とは、子宮摘出、卵管結紮、又は、両側卵巣摘出を文書によって証明できる女性と定義する;
・被験体に、スクリーニング前の12か月以内に薬物を乱用した履歴がある;
・週平均で21ユニット(units)より多く又は一日平均で3ユニットより多く(男性)、あるいは、週平均で14ユニットより多く又は一日平均で2ユニットより多く(女性)、アルコールを習慣的に摂取する被験体。24時間でアルコールを12ユニットより多く、習慣的に摂取する被験体も同様に除外する。1ユニットはビール/ラガーのハーフパイント(220ml)、又は、蒸留酒一杯(25ml)、又はワイン一杯(125ml)に等しい;
・妊娠テストで陽性、又は、スクリーニング時の授乳;
・3か月以内又は5半減期以内(いずれか長い方)より前の、任意の治験薬を用いる治験への参加。
1か月で式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物を一度、漸増用量で投与した後、及び、3ヶ月で式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物を3度繰り返して投与した後の安全性と耐性。一月での式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物の臨床効果(DAS28スコア)
・単回及び反復静脈内投与後の加重平均のDAS28
・式(I)、(II)、(III)又は(IV)の、遊離した及び結合した化合物(free, and bound)(血清)の濃度、分配量及び蓄積率を含む、単回及び反復静脈内投与後の式(I)、(II)、(III)又は(IV)の血漿PKパラメーター
・単回及び反復静脈内投与後のDAS28及びEULARの反応基準
・単回及び反復静脈内投与後のACR20/ACR50/ACR70の反応
・28の関節点数を用いて評価した関節腫脹の数
・28の関節点数を用いて評価した圧痛関節/有痛関節の数
・被験体の疼痛評価
・関節炎の状態に関する医師の全体的評価
・関節炎の状態に関する患者の全体的評価
・機能的身体障害指数(健康アセスメント質問事項)
・C−反応性タンパク質(CRP)
・ESR
・全体的な疲労指数
・HAQ障害指数
・単回及び反復静脈内投与後の薬力学的バイオマーカー
・S字結腸Emax及び間接的反応PK/PDのモデルによって評価されるような、血漿曝露モデルによる臨床的エンドポイントの変化に特徴的なAUC50及びEC50
・免疫原性(式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物のヒト抗化合物抗体)
この第二相試験の目的は、重篤で難治性のプラーク型乾癬の患者における、式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物の安全性、効果、及び、耐性を調査することである。
〈包含基準〉
・重篤で難治性のプラーク型乾癬の患者で、少なくとも1度、全身治療に失敗している(本研究の目的のため、紫外光線Aを伴うソラレンを全身治療とみなす);
・患者が少なくとも10%のBSAの乾癬の合併症を有している;
・患者が4以上のPSGAスコアを有する;
・患者(女性)の場合は、外科的に不妊又は閉経後2年間経過している、又は、出産の可能性のある女性が医学的に許容される避妊法を現在使用中である場合は、研究期間中(及び、研究に参加後30日間)、この方法を継続して使用することに同意する。許容可能な避妊法は次のものを含む:禁欲、バリア法と併用するステロイド性避妊薬(経口、経皮、移植、又は注入)、又は、子宮内避妊器具(IUD);
・患者(男性)の場合は、外科的に不妊であり、又は子孫を残すことが可能である患者が、承認された受胎調節を現在使用している場合、研究期間中(及び、精子形成の潜在的効果のために、式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物を最後に摂取した後60日間)もその方法を継続して使用することに同意する;
・患者は研究の手順及び制約に進んで従うことが可能であるとともに、このプロトコルで定められているように追跡評価の検査に進んで復帰しなければならない。
・患者が、研究処置の計画初日から4週間以内に、乾癬の全身処置(特に、レチノイド、メトトレキサート、シクロスポリンA、エタネルセプト、エファリツマブ、他の生物学的薬剤、又は他の免疫調節薬)を、又は2週間以内にUVに基づく治療を、又は6週間以内にアレファセプトを受けたことがある。
・患者が、研究処置の計画初日から1週間(7日)以内に、シクロスポリン、クロトリマゾール、フルコナゾール、イトラコナゾール、ケトコナゾール、ボリコナゾール、エリスロマイシン、クラリスロマイシン、及び、トロレアンドマイシン、ヒト免疫不全症ウイルス(HIV)プロテアーゼ阻害剤、又は、ネファゾドンを含む強力なCYP3A4阻害剤を用いる処置を受けたことがある;
・患者がワルファリンを現在受けている;
・患者が式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物、又は、式(I)、(II)又は(III)の化合物の任意の成分に対する過敏症を有する;
・患者がスクリーニング視察時(視察1)で測定した1以上の下記の血液生化学検査値を有する;
・正常上限(ULN)の2倍より大きいビリルビンレベル;
・ULNの2より大きいALT又はASTレベル;
・2mg/dLより大きい血清クレアチニンレベル;
・患者がプロテアーゼ阻害剤を用いるHIVの最新の処置を必要としている;
・患者が消化管潰瘍の臨床的診断に対する薬物処置を受けている、あるいは、過去3週間以内に下血又は吐血をしたことがある;
・患者が妊娠中又は授乳中の女性である;
・患者が研究処置の計画初日から4週間以内に研究用薬物を用いる処置を受けたことがある。
腎臓移植後の標準的な免疫抑制療法は、タクロリムス、ミコフェノール酸モフェチル、及び、プレドニゾロンの組み合わせである。このレジメンでは、腎臓移植後最初の6カ月以内の急性拒絶反応の発生率を約20%に落とすことが可能である。現在の主要な試験は、慢性的移植腎症(CAN)を予防することによって長期間の結果を依然として改善する。急性拒絶反応はCANの強力な予測因子であるため、急性拒絶反応の発生率の更なる低下によって、長期的な移植臓器の生存率を改善することが可能である。この第二相臨床試験の目的は、腎臓移植後の急性拒絶反応の予防のための、式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物の効果及び安全性を調査することである。
〈包含基準〉
・腎臓移植者;
・署名済みで日付入りの証拠となるIRBで承認されたインフォームドコンセント;
・妊娠;
・HLA同型の生体ドナー;
・原因となる腎臓病のような溶血性尿毒症症候群;
・以前の移植片で再発した局所的な巣状分節性糸球体硬化症;
・以前に2回以上失敗した移植片及び/又はPRA>85%;
・インスリンでの処置を現在はおこなっていない糖尿病;
・全白血球数<3,000/mm3、又は、血小板数<75,000/mm3;
・B型肝炎、C型肝炎、又はHIVを有する活性感染症;
・結核症の病歴。
・移植後最初の6カ月以内に生検で確認された急性拒絶反応の発生率及び重篤度の測定
・6ヶ月での内因性クレアチンクリアランスによって評価された腎機能
・6ヶ月での慢性的な同種移植片腎症の発生率
・6ヶ月での感染症及び悪性腫瘍の累積発現率
・移植後最初の6カ月間の医療費
・患者及び移植臓器の生存率
この第二相試験の目的は、活動性潰瘍性大腸炎を有する患者における、式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物のレジメンの安全性及び耐性を調査することである。
〈包含基準〉
・5−ASA治療を受け、かつ6−MP及び/又はコルチコステロイドで処置されている活動性UC、又は、以前に、AZA、6−MP、又はコルチコステロイドによる処置を受けたことがあり、かつ、これらに耐性がなかった者;
・試験薬物の投与の14日以内に行われた内視鏡検査における、重篤な疾病の調節による、6から10ポイントのMayoスコア(少なくとも2以上のMayoスコア);
・投薬治療が、試験薬物の投与前に以下のスケジュールに従うものである場合、及び、研究期間中にいかなる変更も予測されない場合、以下の投薬治療を受けている被験体を本研究に加えてもよい;
・プレドニゾロン≦毎日20mg(又は同等)(投与は試験薬物投与前の少なくとも2週間は安定しなければならない);
・5−ASA(投与は試験薬物投与前の少なくとも4週間は安定しなければならない);
・AZA又は6−MP(投与は試験薬物投与前の少なくとも3カ月間は安定しなければならない);
・直腸ステロイド又は5−ASA(試験薬物投与前の少なくとも4週間は安定しなければならない);
・直腸薬を使用している被験体は、20cm以上におけるS状結腸鏡検査で、目に見える疾患を有していなければならない;
・臨床検査値をスクリーニングするには、特定の基準を満たさなければならない:
・女性は閉経後(月経を迎えないまま12カ月以上)、又は、外科的に不妊(例えば、子宮摘出及び/又は両側卵巣摘出による)でなければならない、又は試験薬物の投与前の少なくとも4週間は効果的な避妊法(例えば、経口避妊薬、子宮内避妊器具(IUD)、コンドーム及び殺精子剤の二重のバリア法)を用いて、研究に参加している期間も継続して避妊することに同意しなければならない;及び
・性的に活発な男性の被験体は研究期間中、避妊のバリア法を用いなければならない
・試験薬物投与前8週間以内の抗TNF治療;
・試験薬物投与前4週間以内の1以上の任意の実験的治療(any experimental therapy more therapy);
・研究処置前8週間以内の任意の単クローン抗体又は免疫グロブリンに基づいた融合タンパク質を用いた先行処置;
・クッシング症候群の存在;
・結腸切除を必要としそうな中毒性巨大結腸症又は劇症疾患;
・大腸内視鏡検査又はS状結腸鏡検査に対する禁忌;
・一次的又は二次的免疫不全症;
・シェーグレン症候群又は甲状腺機能低下症を除く、UC以外の自己免疫疾患;
・適切に処置及び治癒した皮膚の基底細胞又は扁平細胞を除く悪性腫瘍、又は原位置における子宮頚癌の病歴;
・主要な精神疾患(適切な管理を受けている、不変的な憂鬱を抱える被験体は、本研究への参加を許容される;
・証明された急性又は慢性感染症の証拠;
・病原体及び/又はクロストリジウムジフィシル毒素に対する便培養陽性(stool culture positive);
・肺浸潤又はアデノパシーのような胸部X線のスクリーニングによる発見物;
・結核感染処置、活性TBの臨床的又は放射線学的証拠の、又は、北米の患者に対する事前予防のない陽性PPDの最近の処置;
・試験薬物投与前3カ月以内の帯状疱疹;
・治験前4週間以内の抗生物質の静脈注射、又は、登録時において経口用抗生物質を必要とする活性感染症疾患;
・HIV又はAIDS;
・HBV、又は活性又は慢性感染症を示すHCVの陽性検査;
・薬物治療を必要とする臨床的に有意な心臓疾患、不安定狭心症、6カ月以内の心筋疾患、又は、鬱血性心不全;
・臨床的に重大でない又は軽微な伝導異常を除き、積極活動療法を必要とする不整脈;
・薬物治療/処置を必要とする脳血管疾患の病歴;
・抗凝固療法又は既知の出血性障害;
・積極活動療法を必要とする発作性障害;
・既知の薬物乱用又はアルコール中毒;
・妊娠又は授乳(nursing);
・研究責任者の意見で試験薬物が被験体にとって有害なものとなり、又は処置の効果又は安全性の解釈を曖昧にする、任意の基礎的な医学的状態;又は、
・追跡調査のための通院及び研究のプロトコルに従う能力又は意志の欠如
・スクリーニングと比較した、57日目のMayoスコアの変化
・寛解率
この第二相試験の目的は、再発寛解型多発性硬化症を有する患者における、式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物の安全性、効果、及び、耐性を調査することである。
〈包含基準〉
・再発寛解型多発性硬化症という確定診断を受ける
・以下の少なくとも1つの病歴を有する:a.スクリーニング前の1カ月以内を除いた過去2年以内の、最小で2度のMSの再発。b.スクリーニング前の1カ月を除いた過去6カ月以内のMSの再発。
・CNS疾患(例えば、CNSリンパ腫、全身性エリテマトーデス)にかかっている
・MSの重篤な延髄障害、又は、他の神経学的異常を有する
・褥瘡性潰瘍を有する
・スクリーニングの3カ月以内に免疫調節療法を受けたことがある
・23週にわたって頭蓋MRI上の新しくGd増強T1加重した病変(Gd−enhancing T1−weighted lesions)の蓄積数
・23週にわたるMSの再発の総数;週23での総合障害度評価尺度(EDSS)スコア中のベースラインからの変化
〈非経口組成物〉
注入による投与に適切な非経口医薬組成物を調製するために、100mgの式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物をDMSO中で溶解させ、その後、10mLの0.9% 無菌食塩水と混合させる。混合物を、注入による投与に適した単位投与剤形に組み込む。
経口送達用の医薬組成物を調製するために、100mgの式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物を750mgのでんぷんと混合させる。混合物を硬ゼラチンカプセルのような、経口投与に適した経口単位剤形に組み込む。
硬ロゼンジのような口腔送達用の医薬組成物を調製するために、100mgの式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物を、1.6mLのライト・コーンシロップ、2.4mLの蒸留水、及び、0.42mLのミント抽出物と混ぜ合わせた420mgの粉砂糖と混合させる。混合物を軽く混ぜ、型に流し込むことで、口腔投与に適したロゼンジを形成する。
吸入送達用の医薬組成物を調製するために、20mgの式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物を、50mgの無水クエン酸、及び、100mLの0.9%塩化ナトリウム溶液と混ぜ合わせる。混合物を噴霧器のような、吸入投与に適した吸入送達用ユニットに組み込む。
直腸の送達用の医薬組成物を調製するために、100mgの式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物を、2.5gのメチルセルロース(1500mPa)、100mgのメチルパラペン、5gのグリセリン、及び、100mLの精製水と混合させる。結果として生じたゲル混合物をその後、シリンジのような直腸投与に適した直腸送達用ユニットに組み込む。
総重量2.5gの座薬を、式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物を、Witepsol(商標)H−15(飽和植物脂肪酸のトリグリセリド;Riches−Nelson, Inc., New York)と混合させることによって調製し、それは以下の組成物を有する:
医薬的な局所ゲル組成物を調製するために、100mgの式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物を、1.75gのヒドロキシプロピルセルロース、10mLのプロピレングリコール、10mLのミリスチン酸イソプロピル、及び、100mLの精製アルコールUSPと混合させる。結果として生じるゲル混合物を、その後、チューブのような局所投与に適した容器に組み込む。
医薬的な点眼溶液組成物を調製するために、100mgの式(I)、(II)、(III)又は(IV)の化合物を、100mLの精製水中の0.9gのNaClと混合させ、0.2ミクロンのフィルターを用いてろ過する。結果として生じる等張液を、その後、点眼薬容器のような点眼投与に適した点眼用の送達ユニットに組み込む。
Claims (15)
- 以下の式(I)の構造を有する化合物、或いは、その薬学的に許容可能な塩、又は薬学的に許容可能な溶媒和物であって:
ここで:
R1は、以下の式であり;
Yは、CR10又はNから独立して選択され;
R2は、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールであり;
ここで、アリール、ヘテロアリール、縮合アリール、又は、縮合ヘテロアリールは、少なくとも1つのR3で随意に置換され;
R3は、H、F、D、Cl、Br、I、−CN、−NO2、−OH、−CF3、−OCF3、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、随意に置換されたC3−C8シクロアルキル、随意に置換されたC1−C6ヘテロアルキル、C1−C6ハロアルキル、随意に置換されたC2−C8ヘテロシクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、及び随意に置換されたヘテロアリールから独立して選択され;
R5は、H、C1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、C3−C8シクロアルキル、フェニル、及びベンジルから選択され;
R9及びR10は、各々、H、D、随意に置換されたC1−C6アルキル、ハロゲン、C1−C6アルキルカルボニル、又はCF3から独立して選択され;
R12は、CN、−OR5、随意に置換されたC1−C6アルキル、C1−C6ハロアルキル、及び随意に置換されたC3−C8シクロアルキル、随意に置換されたアリール、随意に置換されたO−アリール、及び随意に置換されたヘテロアリールから選択されることを特徴とする、化合物。 - R2が、F、Cl、Br、及びIから独立して選択される少なくとも1つのR 3 で置換されたフェニルであることを特徴とする、請求項1に記載の化合物。
- R 2 が、少なくとも2つの置換基で置換されたフェニルであることを特徴とする、請求項1に記載の化合物。
- R 2 がヘテロアリールであることを特徴とする、請求項1に記載の化合物。
- R2が、F及びClから独立して選択される少なくとも1つのR 3 で置換されるピリジルであることを特徴とする、請求項4に記載の化合物。
- R 1 が以下の式である請求項1に記載の化合物。
- XがO、YがCHである請求項6に記載の化合物。
- R 9 が随意に置換されたC 1 −C 6 アルキルである請求項7に記載の化合物。
- R 10 が随意に置換されたC 1 −C 6 アルキルである請求項8に記載の化合物。
- R 1 が以下の式である請求項1に記載の化合物。
- R 5 がC 1 −C 6 アルキルであり、R 12 がCF 3 である請求項8に記載の化合物。
- 以下のものから選択される化合物、或いは、その薬学的に許容可能な塩、又は薬学的に許容可能な溶媒和物。
- 薬学的に許容可能な希釈剤、賦形剤、又は、結合剤、及び、請求項1乃至12のいずれか1つに記載の化合物、或いはその薬学的に許容可能な塩、又は薬学的に許容可能な溶媒和物を含む、医薬組成物。
- ストア作動性カルシウムチャネル活性の阻害から利益を得る、哺乳動物の疾患、障害、
又は疾病の処置に使用される、請求項1乃至12の何れか1つに従う、化合物、又はその薬学的に許容可能な塩、薬学的に許容可能な溶媒和物。 - 哺乳動物の前記疾患、障害、又は疾病は、炎症に関係する疾患/障害、糸球体腎炎、ブドウ膜炎、肝臓の疾患又は障害、腎臓の疾患又は障害、慢性閉塞性肺疾患、関節リウマチ、炎症性腸疾患、血管炎、皮膚炎、変形性関節症、炎症性の筋肉疾患、アレルギー性鼻炎、膣炎、間質性膀胱炎、強皮症、骨粗鬆症、湿疹、移植臓器拒絶反応、同種又は異種の移植、移植片拒絶反応、移植片対宿主病、紅斑性狼瘡、I型糖尿病、肺線維症、皮膚筋炎、甲状腺炎、重症筋無力症、自己免疫性溶血性貧血、嚢胞性線維症、慢性再発肝炎、原発性胆汁性肝硬変、アレルギー性結膜炎、肝炎及びアトピー性皮膚炎、喘息、乾癬、多発性硬化症、シェーグレン症候群、及び自己免疫性の疾患又は障害から選択されることを特徴とする、請求項14に記載の化合物。
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