JP5899246B2 - 幹細胞の包装製品並びに同包装製品を作製する方法および輸送する方法 - Google Patents
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Description
簡単に述べれば、臍帯血細胞は、病院の現場で採取することができ、または臍帯血バンク(STEMCYTE Inc.により維持されているものなど)から入手することもできる。当技術分野で認知されているいずれの採取および保存手順を使用してもよいが、好ましい手順を以下の例に記載する。一般に、種々の感染マーカーに関する無菌性検査を行うべきである。さらに、低温保存のために凍結させる前に、総細胞数、CD34+細胞数、およびユニット容量を測定し、記録するべきである。採取した血液には赤血球(RBC)が含まれ、凍結および解凍の際に崩壊する傾向にある。その場合、溶解すると、RBCのDNAが採取された臍帯血細胞の粘度を増し、臨床使用のための臍帯血細胞のさらなる取り扱いを妨げる。これを防ぐため、DNAを分解するために、低温保存前に採取細胞にDNAseを添加することができる。このようにすれば、細胞の粘着性および凝集を軽減することができ、それにより、浸透圧勾配(例えば、フィコール(FICOLL))での細胞の分離もより容易となる。いくつかの市販のDNAseを使用することができる。例としては、GENENTECH社が販売しているPULMOZYME(登録商標)が挙げられる。
移植および分析のために十分な生細胞が存在しなければならない。好ましくは、移植(例えば、脊髄への)に必要とされる細胞数の少なくとも2倍が好ましく、そうであれば、細胞分析用の細胞が十分残る。例えば、以下の実施例2に開示されているように、A群、B群およびC群では、16、32および64μlの細胞懸濁液(100,000細胞/μl)が移植に必要であった。言い換えれば、1.6、3.2および6.4×106細胞が使用された。この量を倍にするには、それぞれ最低3.2、6.4および12.8×106の単核細胞が必要となる。仮に、出荷物がより少ない数の細胞を含んでいた場合、その出荷物は移植には適切というべきではない。
死細胞が多すぎれば、調製は避けるべきである。この目的で、トリパンブルー排除(TBE)を用いた手動計数を生存率の基準として使用することができる。パーセンテージとして表される細胞懸濁液のTBEは、青色に染色されない細胞を染色細胞と非染色細胞の総数で割ったものである。移植指定を受ける細胞では、TBEは少なくとも70%であるべきである。一般に、以下の例に記載される洗浄手順は死細胞を除き、細胞懸濁液は一般に、移植直前に90%を超えるTBEを有する。
汚染の証拠またはリスクは報告されなければならない。これには例えば、輸送バッグ内での液漏れの存在、細胞懸濁液の異常な濁度、顕微鏡下で観察できる細菌もしくは真菌、または過去の汚染の報告が含まれる。本明細書に開示されているように、母体B型肝炎コア抗原、ならびに全米骨髄バンク(NMDP:National Marrow Donor Program)の登録から臍帯血ユニットを通常除外する他の全ての病原体に関して陽性である臍帯血ユニットを除外するように注意を払わなければならない。
最終的な調製物は95%以上の単核細胞を有するべきである。細胞の生存率計数で5%を超える赤血球または好中球などの他細胞が明らかな場合は、それらの細胞は移植に使用しない。臍帯血には未成熟有核赤血球細胞がいくらか存在する場合があることに留意されたい。
用語「臍帯血ユニット」とは、単一のドナーから採取された一定容量の臍帯血を意味する。本発明の方法では一般に単一の臍帯血ユニットが使用されるが、幹細胞数を増やすために複数の臍帯血ユニット、例えば、ダブルユニットの臍帯血を使用することもできる。
1.Hsa/Gentran洗浄液の調製
以下の品目をバイオセーフティーキャビネット(BSC: Biological Safety Cabinet)内に入れた:アルコールワイプ4枚、解凍バッグセット(Transfer Pack Unit)1個、Gentran 40バッグ1個、シリンジフィルター1個、(2)×50mLHAS 1個、針1本、血漿トランスファーセット1個、およびハサミ1個。バイオセーフティーキャビネット内で、解凍バッグセットのバッグ#1の外部注入口に血漿トランスファーセットの一方の末端を接続した。このユニットが100mL以下の低温保存容量であれば、300mLのトランスファーセットを使用したが、ユニットが100mLを超えれば、600mLのトランスファーセットを使用した。次に、キャップを外し、HSAの50mLバイアルのゴムダイアフラムを、70%イソプロピルアルコール(IPA)ワイプで拭いた。HSAダイアフラムに、上述の血漿トランスファーセットのもう1つのスパイクを接続した。シリンジフィルターを取り付けた皮下針を血漿スパイクの横のHSAダイアフラムに挿入し、バイアルを排出した。このHSAバイアルをバッグ#1より上に持ち上げ、バイアル(50mL)の全内容物をトランスファーバッグに流れ込むようにした。容量が>100mLのUCBUでは、2本のバイアル(100mL)を600mLのトランスファーバッグに注がなければならない。HSAバイアルとバッグ#1の間のチューブは、HSAバイアルと余分なチューブを廃棄する前にバッグ#1の注入口付近で熱封止した。バッグ#1の残りの注入口に、トランスファーセットのチューブ上のローラークランプを閉める前に、新たな血漿トランスファーセットを接続した。Gentran 40バッグの注入口に、血漿トランスファーセットの他方の末端を接続した。
II.冷凍UCBUの解凍/洗浄
II.1 手順の前に以下の品目をBSC内に入れた:(12)×50mLの遠心管6個;大小の冷蔵した冷却パック;(10)×2.5mLアンプルのDNAse5個;1000mLのDNAse洗浄バッファー;100mLの250mM MgCl2;非粒状化ワイプ;WFI水;(8)×25ゲージ針4本;25mLのピペット;サンプリングサイトカプラー(sampling site coupler);10mLのシリンジ2本;1mLのシリンジ2本;IPAワイプ;電子天秤;止血鉗子;およびチューブシーラー。
UCBUバッグへの注入に必要なDNAseの容量=UCBUバッグ容量÷25;
HSA/GENTRAN洗浄液に必要な250mM MgCl2の容量=HSA/Gentran洗浄液の容量÷100;
II.3 冷却遠心機を2〜8℃に予冷する。
遠心機の設定:
遠心速度を1,860g(4箇所キャリアを備えたSORVALL HS−4アルミニウムローターで3,080rpm)に設定する。
II.4 添付書類から低温保存容量を記録する。
II.5 1.5容量の臍帯血ユニット(UCBU)を計算する。
1.5UCBUの容量=UCBUの容量(上記の工程4)×1.5
II.6 少なくとも30分、長くて1日冷蔵したHSA/Gentran洗浄溶液およびDNAse洗浄溶液を確認する。
II.9 解凍バッグセットを冷蔵庫から取り出してBSCに入れる。サンプリングサイトカプラーを2ポートのうちの一方に挿入し、HSA/Gentran洗浄液に必要なDNAse試薬およびMgCl2を注入する。混合し、冷却パックの間に置く。
II.11 冷凍カセットを注意深く開封し、UCBUバッグ上のUCBU ID番号がカセット上のIDおよび必要書類と一致するか確認する。
II.14 UCBUをBSC内の冷却パックの間に、ポートを露出させて置く。10秒間UCBUを穏やかに揺すって混合する。
II.17 UCBUポートに接続した後すぐに、UCBUバッグに注入するためにDNAse試薬およびMgCl2を注ぐ(上記の工程2を参照)。穏やかに混合する。
注:UCBUを添加する前に解凍セットチューブ上の全てのローラークランプが確実に閉まっていることを確認する。
注:UCBUおよび全ての材料は2〜8℃で維持しなければならない。
II.20 バッグ#1から出るチューブに止血鉗子を留める。UCBUバッグへ向かうチューブのローラークランプを開ける。バッグ#1の止血鉗子を緩め、UCBU容量の1.5倍の洗浄溶液を移す(上記の工程5を参照)。加えた容量を記録する。
注:この最初の希釈工程は、解凍後できるだけ速やかに完了しなければならない。
II.22 UCBUを冷却パック間に保持しながらおよそ10秒間バッグを手で回転させることによって、UCBUバッグ内で洗浄溶液と臍帯血を十分に混合する。
II.25 UCBUバッグを天秤のプラットフォーム上に残っている冷却パック間に戻し、天秤を0に合わせる。
II.28 UCBUバッグ内で洗浄液/血液混合物を十分に混合する。UCBUバッグのポート/テール領域からもできる限り多くの臍帯血を取り出す。
II.30 バッグ#2の横のチューブを留め、UCBUバッグの横のローラークランプを閉める。
II.33 50mL管が入った遠心バケットのバランスをとる。
II.34 50mL管をおよそ1860g(4箇所キャリアを備えたSORVALL HS−4アルミニウムローターで3,080rpm)にて、0℃〜8℃で15分間遠心分離する。遠心機のブレーキは中度に設定すべきである。
II.36 セーフティーキャビネット内で、遠心分離済み管を開封し、ペレットを乱さずに、管の底におよそ5mLを残して、大部分の洗浄液を吸引する。
II.38 50mL管に50mLマークまで洗浄バッファーを満たす。
II.39 50mL管をおよそ1860g(4箇所キャリアを備えたSORVALL HS−4アルミニウムローターで3,080rpm)にて、0℃〜8℃で10分間遠心分離する。遠心機のブレーキは中度に設定すべきである。
II.41 セーフティーキャビネット内で、遠心機分離済みの管を開封し、ペレットを乱さずに、管の底におよそ5mLを残して、大部分の洗浄液を吸引する。
次に、解凍されたUCBCに対し、下記の第III節に記載されているように血液溶解液手順か、または以下の第IV節に記載されているように単核細胞(MNC: mononuclear cells)の単離のいずれかを行った。
III.1 BSCに以下の品目を入れる。
(12)×50mL遠心管6本
160mLのUSP水(周囲温度)
160mLの2倍生理食塩水
III.2 22.5mLの周囲温度USP水を各50mL管に加える。水の添加の終了時から30秒タイマーを始動させる。ピペット操作により混合する。
III.5 50ml管をおよそ830g(4箇所キャリアを備えたSorvall HS−4アルミニウムローターで2,050rpm)にて、0℃〜8℃で10分間遠心分離する。遠心機のブレーキは中度に設定すべきである。
III.7 セーフティーキャビネット内で、遠心機分離済みの管を開封し、ペレットを乱さずに、管の底におよそ1mLを残して、大部分の洗浄液を吸引する。
III.9 さらに10mlのDNAse洗浄バッファーで管を洗浄し、これらの細胞を1本の管にプールする。
注:温度を25℃に、速度を7,000rpmに設定することにより、遠心機の温めを始める。スタートボタンを押す(一般に約30秒かかる)。
IV.1 BSC内に以下の品目を入れる:50mL遠心管6本;90mL LSM;25mLピペット10本;10mLピペット2本;コニカル管(225mL)1本。
IV.3 BSC内に6本の50mL遠心管を入れる。
IV.4 無菌の25mLピペットを用い、希釈血液を各50mL管に30mLずつ分注する。
IV.6 管の蓋を閉め、注意深く遠心機に移す。
IV.7 およそ467g(4箇所キャリアを備えたSorvall HS−4アルミニウムローターでは1,540rpm、またはS4 180ローターでは1600rpm)、32分、温度:24℃、ブレーキオフ(Heraeus Superfugeでは減速を2に設定)のスィングバケットローターに前記の管を入れる。遠心機が指定速度に達したことを確認する。
11.9 遠心分離後、層の混合が起こらないように、遠心機から前記の管を注意深く取り出し、新しい管をラックに入れる。
11.11 BSC内で、遠心機分離済みの管を開封する。上清を吸引し、単核層を露出させる。この単核層(バフィーコート)のみを、無菌の10mLピペットを用いて採取する。新しい管に移し、各管に45mLまでDNAse洗浄バッファーを満たす。
IV.14 1本の新しい50mL遠心管にラベルを付ける:「プールMNC」、「V90195」、「工程IV.14」、この製造管理のロット番号、日付、およびオペレーターのイニシャル。
IV.16 細胞をプールした後、6本の管を全て4mL容量のDNAse洗浄バッファーで洗浄し、全単核細胞(MNC)が回収されるようにする。
IV.18 前記の管を、バランス管を備えたスィングバケットローターに入れ、遠心機をおよそ467g(4箇所キャリアを備えたSORVALL HS−4アルミニウムローターで1,540rpm)、10分、10℃に設定し、ブレーキをオンとする。
IV.20 無菌の10mLピペットを用い、前記ペレットを5mLの洗浄バッファーに再懸濁させる。
II.22 よく混合したMNCの十分な容量のサンプルを生存率およびMNC細胞の計数のために管に移す。サンプリングした量を記録する。
IV.24 下式に従って細胞総数を計算する:
IV.23からの生細胞密度×(20−IV.22からサンプリングした量)。
IV.25 生細胞総数が20×106未満である場合には、臨床コーディネーターに連絡をとる。却下されたロットは、検討の転帰を保留して保持する。
V.1 BSC内に以下の品目を入れる:50mL遠心管2本;100mLの輸送培地(V90199:CIM+10%HS、2mM GlutaMAX、ガラクトースおよび100U/mLゲンタマイシン);および5mLピペット2本;無菌輸送バッグ。
V.3 ラベルを付けたMNC管を、バランス管を備えたスィングバケットローターに入れ、遠心機をおよそ467g(4箇所キャリアを備えたSorvall HS−4アルミニウムローターでは1,040rpm)、10分、10℃に設定し、ブレーキは中度の設定とする(Heraeus Superfugeでは減速を7に設定)。
V.5 無菌の10mLピペットを用い、ペレットを5mLの輸送培地に再懸濁させる。
V.7 必要なゲンタマイシンの容量を計算する。
必要なゲンタマイシンの容量(mL)=工程V.2からの細胞の総容量÷500
V.8 保有のために3mlの細胞を抜き取り、15mlコニカル管に移す。
V.9 ゲンタマイシン(V.7で計算された容量)を細胞懸濁液に加え、穏やかに混合する。
V.11 前記バッグにラベルを付ける:「冷凍UCBUから調製されたMNC」、「ID#」、「V90195」、「工程V.11」、この製造管理のロット番号、総細胞数、日付、およびオペレーターのイニシャル。
V.14 1.0mLのサンプルは、1週間、保有サンプルとして2〜8℃で保存すべきである。管には「冷凍UCBUから調製されたMNCの2〜8℃保有サンプル」、ID番号、「工程V.14」、ロット番号、総細胞数、日付、およびオペレーターのイニシャルのラベルを付ける。
航空貨物でバッグの包装物が到着した際、処理を行うまで安全な場所に、その包装物をその容器内で保管し、その包装物の温度監視を続けた。処理前に、包装物をその変化に関して検査し、報告した。処理のために元の血液ユニットを最初に解凍してから経過した総時間も記録した。
輸送容器を開封し、hUCB−MNCバッグが入った包装物を取り出し、指定の温度(RT)で維持したバイオセーフティーキャビネット(BSC)内で、前記のバッグを損傷または漏れに関して検査した。バイオセーフティーキャビネット内で、バッグを穏やかに揺すって細胞を混合した。1対の無菌手袋とルアーロックシリンジを用い、各バッグの内容物をhUCB−MNCのラベルを付けた無菌の30ml、50ml、または100ml遠心管に移した。次に、これらの管を400xgにて10分間、指定の温度(RT)で遠心分離した。10mlのピペットを用い、ペレットを乱さずに、遠心管から上清を吸引し、無菌性検査に用いた(サンプル1)。この細胞ペレットを臨床グレードの生理食塩水中、1%の正常血清アルブミン(NSA)1mlに再懸濁させ、注射用の初期細胞懸濁液を形成した。
1.生存率アッセイ
セーフティーキャビネット内で、100μlチップを用いて分注し、1%NSAを添加した生理食塩水450μlの入った12×75mm管中に50μlの細胞懸濁液を混合することにより、1:10細胞希釈液を調製した。100μlチップを用い、40μlの希釈細胞懸濁液を0.5mlエッペンドルフ管中の10μlトリパンブルー溶液にピペットで注いだ。数回のピペット操作により混合した後、トリパンブルー染色細胞懸濁液を改良型ノイバイエル血球計算盤にのせ、16の小さな四角を含む各1mm×1mmの4つの大きな四角内で、青色に染色された死細胞と染色されない生細胞の数を計数した。有核RBCは、顕微鏡下で対物レンズを上下させることにより反射鏡のように見えることから、染色されない生有核細胞から容易に識別することができた。次に、生細胞のパーセンテージを、非染色細胞の数を青色に染色された細胞と非染色細胞の総数で割ることによって計算した。
セーフティーキャビネット内で、50μlの上述の初期細胞懸濁液を12×75mm管内の、メチレンブルーを含む3%酢酸溶液450μlに移すことによって、1:100細胞希釈液を調製した。得られた細胞懸濁液を、改良型ノイバイエル血球計算盤の上および下の両方のチャンバーに装填し、上および下の両チャンバーにおける、各1mm×1mmの8つの大きな四角内で、青色に染色された細胞の数を計数した。細胞数は、総数を8で割り、100(希釈倍率)および10,000を掛けることによって計算した。
細胞懸濁液は血液分析装置Beckman Coulter ACT Diffでも計数し、手作業による計数の精度を対比確認した。
細胞生存率および細胞総数を記録した後、細胞を含有する管に400xgで5分間、遠心分離を行った。各管の上清を、細胞ペレットを乱さずに吸引し、1%NSAを添加した臨床グレードの生理食塩水に細胞を再懸濁させ、1×105生細胞/μlの濃度に調整した。得られた細胞懸濁液100μlを2本(1本はバックアップ用)の無菌0.25mlエッペンドルフ管に移した。次に、細胞懸濁液を以下の注射投与に用いた。
b.8μl×注射4回分(32×105生細胞)
c.16μl×注射4回分(64×105生細胞)
簡単に述べると、細胞を含むエッペンドルフ管を操作室に送った。操作室で、細胞懸濁液を、1%NSAを添加した臨床グレードの生理食塩水とともにハミルトンシリンジおよびバタフライニードルに充填した。より具体的には、3群の被験体A、BおよびCに投与する前に、適当な容量の細胞懸濁液を、バタフライニードルを介して50μlまたは100μlハミルトンシリンジに充填した。A群またはB群では、50μlハミルトンシリンジを使用し、A群では20μl(5μl×4)を、またはB群では40μl(10μl×4)を吸引した。C群では、100μlハミルトンシリンジを用い、80μlを吸引した。各被験体の脊髄の脊髄後根侵入帯に4回の注射を行った。
上述のサンプル1およびサンプル2(工程38)の両方に、病院の標準的プロトコールまたは適正な手作業によるプロトコールの後すぐに無菌性検査を行った。
まず、生細胞数を計数し、次に、培養を行い、2週間かけて形成されたCFUの数を決定した。簡単に述べると、IMDM(イスコブの改変ダルベッコ培地)に増殖因子、rhG−CSFおよびrhIL−3を添加したプレミックスメチルセルロース培地(Methocult H4230;STEMCELL TECHNOLOGIES Inc.)に細胞をピペットで移した。最終調整濃度は1%メチルセルロース、30%ウシ胎児血清、1%ウシ血清アルブミン、10−4M 2−メルカプトエタノール、2mM 1−グルタミン、10ng/ml rhIL−3、および500ng/ml rhG−CSFであった。細胞を穏やかにボルテックスにかけ、1.1mlの細胞懸濁液(5×104細胞)を35mm×10mm無菌培養ディッシュ(FISHER SCIENTIFIC)に2連で播種した。水で飽和した5%CO2インキュベーターにて37℃で細胞を培養した後、20以上の細胞からなるCFU−GMコロニーを、標準的な倒立顕微鏡で手作業により計数した。細菌または真菌で汚染されていた培養物があれば記録した。
以下は、十分な残存細胞があった場合に行うべき任意選択の分析である。施設の慣行によって、分析技術は二重または単一プラットフォームのいずれかであり、洗浄有り無しのいずれかであり得る。ISHAGEゲーティング法を用いて、CD34+細胞およびCD133+細胞を計数した。
2.12×75mm試験管にラベルを付け、次のように抗体および細胞を分配する。
4.Q−PrepディスペンサーおよびImmunoPrep全血溶解試薬を用い、溶解、中和、固定染色を行う。シグナル獲得前に少なくとも1時間暗所に静置するか、または
図6には、ISHAGE指針に従うプロトコールを用いたCD34計数の例が示されている。非洗浄プロトコールを用い、細胞をCD45−FITCおよびCD34−PEで標識した。分析前、7−AADを加えた。SSとCD45のサイトグラムに領域Aを設定し、白血球を画定した。CD34+ve細胞を囲むために領域Bを設定した。ゲートで選別したSSとCD45(AおよびB)のドットプロット上に、弱い陽性のCD45細胞を含むように領域Cを設定した。領域DはSSとCD45プロット上でリンパ球を囲んだものであり、SSとFSのプロットのゲート選別に使用した。領域Eは全てのリンパ球を含むように描かれ、この領域はゲートで選別される別の分散プロット上にコピーした(AおよびBおよびC)、(E2)。領域Fは、SSと7−AADのドットプロット上に、7−AAD陽性細胞(死)およびこの領域にゲートで選別されたこれまでプロットを全て排除するように描いた。次に、領域E2の細胞をCD34+細胞として記録した。
図2に示されるように、幹細胞を上述の3種のバッグで3日かけて輸送した場合、バッグの種類と輸送温度は両方とも、回収率(図2A)、細胞生存率(図2B)、CD34+細胞集団のレベル(図2C)、CD133+細胞集団のレベル(図2D)、およびCFU(図1E)に様々な程度で影響を及ぼした。
輸送培地の影響も検討した。CIM培地で輸送した細胞は、IMDMで輸送したものよりも約2日後により高い細胞生存率を有することが判明した(図3および4)。特に、5日後に、CIM培地中の細胞はなお約74%の生存率を有していた。
Claims (15)
- 複数の多能性細胞とCO 2 非依存性培地とを含有する組成物と、
前記組成物を保持し、かつ、ポリマーからなる基質を含む容器と
を含む、包装製品。 - 前記ポリマーがポリテトラフルオロエチレン(PTFE)、ペルフルオロアルコキシ(PFA)、フッ化エチレンプロピレン(FEP)、ポリフッ化ビニリデン(PVDF)、ポリエチレン、またはポリ塩化ビニル(PVC)である、請求項1に記載の包装製品。
- 前記容器がバッグ、チューブ、シリンジ、または注射器用バイアルである、請求項1または2に記載の包装製品。
- 前記多能性細胞が幹細胞、造血幹細胞、間葉系幹細胞、胚性幹細胞、CD34+細胞、またはCD133+細胞である、請求項1乃至3のいずれか一項に記載の包装製品。
- 前記組成物が末梢血細胞、臍帯血細胞、骨髄細胞、または胎盤血細胞を含有する、請求項1乃至4のいずれか一項に記載の包装製品。
- 前記組成物が5〜30℃の範囲内の温度を有する、請求項1乃至5のいずれか一項に記載の包装製品。
- 前記培地が血清またはヒト血清を含有する、請求項1乃至6のいずれか一項に記載の包装製品。
- 請求項1乃至7のいずれか一項に記載の包装製品を作製するための方法であって、前記方法は、
多能性細胞を含有する組成物を準備する工程;
ポリマーからなる基質を含む容器を準備する工程;
前記組成物を前記容器に入れる工程;および
前記容器を密封する工程、
を含む、方法。 - 多能性細胞を輸送するための方法であって、請求項1乃至7のいずれか一項に記載の包装製品を準備する工程、および前記包装製品を受取人に5〜30℃の範囲内の温度にて配送する工程、を含む、方法。
- 前記配送する工程が10〜30℃の範囲内の温度で行われる、請求項9に記載の方法。
- 前記配送する工程が15〜25℃の範囲内の温度で行われる、請求項10に記載の方法。
- 前記配送する工程が少なくとも1日かけて行われる、請求項9乃至11のいずれか一項に記載の方法。
- 前記配送する工程が少なくとも3日かけて行われる、請求項12に記載の方法。
- 前記配送する工程が少なくとも5日かけて行われる、請求項13に記載の方法。
- 請求項12乃至14のいずれか一項に記載の方法において、
配送時、前記多能性細胞が、以下の特徴:
40%を超える回収率;
70%を超える生存率;
0.5%を超えるCD34 + 細胞;
0.25%を超えるCD133 + 細胞;及び
2CFU/5×10 4 細胞より多く形成可能であること、
のうちの1つ以上を有する、方法。
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EP0740544B1 (en) * | 1994-11-22 | 2001-10-31 | Baxter International Inc. | Storage container for blood components |
US5728581A (en) * | 1995-06-07 | 1998-03-17 | Systemix, Inc. | Method of expanding hematopoietic stem cells, reagents and bioreactors for use therein |
US20020132343A1 (en) * | 2001-03-19 | 2002-09-19 | Clark Lum | System and method for delivering umbilical cord-derived tissue-matched stem cells for transplantation |
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EP1678295B1 (en) * | 2003-10-08 | 2013-03-06 | Vet-Stem Inc | Methods of preparing and using stem cell compositions and kits comprising the same |
US20070020754A1 (en) * | 2003-10-20 | 2007-01-25 | Rui Yuge | Cell handling device, human tissue regeneration composition, and human tissue regeneration method |
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