JP5868601B2 - 液体培地用足場部材 - Google Patents
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発明者らは培養生物種として微生物を選択した。そこで、国立大学法人筑波大学(茨城県つくば市内)の大学内の池水から採取した微生物を用い、採取池水を滅菌水により適宜希釈し、次述の試作例1ないし10の培地それぞれに対して接種、培養した。各試作例の培養にはインキュベータを用い、加湿状態で30℃を48時間維持した。
生育量の評価は、生育可能面積当たりの微生物の生育面積(コロニー等の面積総和)を概算した。具体的に、直径1mm以上のコロニーが培地1cm2あたり1個以上の存在している試作例の培地を「○」とした。直径1mm以上のコロニーが培地1cm2あたり1個未満の試作例の培地を「△」とした。生育可能面積のほぼ全てに微生物が成育している試作例の培地を「◎」とした。なお、コロニーの存在を確認できなかった試作例の培地を「×」とした。各培地における生育状態の評価は、培養後の培地表面にみられるコロニーの大きさ、広がり、色等の状態を総合的に勘案して「良好」、「通常」、「やや悪い」の3段階の評価下した。
培養した微生物の微生物群集構造解析に当たり、PCR−DGGE法を用いた。同法は遺伝子を増幅するPCR法と塩基配列の相違を鋭敏に検出する変性剤濃度勾配ゲル電気泳動(DGGE:Denature Gradient Gel Electrophoresis)を組み合わせた方法となる。そこで、全細菌に存在しPCR法に適した塩基鎖長と構造を有する16SrDNAを用いた。
R2A寒天粉末培地(日本製薬株式会社製)を加熱溶解して調製し、オートクレーブ滅菌した後に滅菌済プラスチックシャーレ(直径9cm、以下同様)に無菌的に分注した。室温まで放冷して固化し、試作例1のR2A寒天培地を調製した。当該寒天培地表面に微生物を接種した。
R2A粉末培地(日本製薬株式会社製)を溶解後、1.5%のジェランガム(関東化学株式会社製)を加えて加熱溶解し、試作例1と同様の手順でR2Aジェランガム培地を調製した。当該ジェランガム培地表面に微生物を接種した。
試作例1と同様にR2A寒天培地を調製した。次に、透過性膜部として再生セルロースフィルムの半透膜であるセロハンフィルム(フタムラ化学株式会社製,PL#300,膜厚18μm)を用意し、これをシャーレの内径に合わせて切り取った。R2A寒天培地表面に大きさを合わせたセロハンフィルム(次述の前処理済み)を載せ、同セロハンフィルム上に微生物を接種した。
試作例2と同様にR2Aジェランガム培地を調製した。次に、試作例3と同様、培地表面にセロハンフィルムを載せ、同セロハンフィルム上に微生物を接種した。
浸透台部として濾紙(アドバンテック株式会社製,No.1)を用意し、これをシャーレ内に設置可能な大きさに方形状に切断して蒸留水により洗浄した。濾紙を蒸留水に浸漬した状態のままオートクレーブし、クリーンベンチ内で風乾した。はじめに、滅菌済プラスチックシャーレ内に前記の処理を経た浸透部台を設置した。次に、浸透部台上に試作例3にて用いたセロハンフィルムを透過性膜部として重ねて液体培地用足場部材とした。試作例5においては、R2A粉末培地(日本製薬株式会社製)を所定濃度に溶解しオートクレーブにより滅菌してR2A液体培地を調製し、これをシャーレ内に分注した。シャーレでは液体培地の液面を透過性膜部よりも下側とし、併せて透過性膜部への培地成分の供給を十分とするべく浸透部台の厚さ、液体培地の量を調整した。透過性膜部のセロハンフィルム上に微生物を接種した。
試作例5における濾紙の浸透台部を再生セルロース繊維からなる不織布(フタムラ化学株式会社製,TCF#408)に変更した。浸透台部の材質以外は全て試作例5と同一とし、透過性膜部のセロハンフィルム上に微生物を接種した。
試作例3におけるセロハンフィルムの透過性膜部をメンブレンフィルター(日本ミリポア株式会社製,ミリポアエクスプレス)に変更した。透過性膜部の材質変更以外、試作例3と同様に処理しメンブレンフィルター上に微生物を接種した。
試作例4におけるセロハンフィルムの透過性膜部をメンブレンフィルター(試作例7に同じ)に変更した。透過性膜部の材質変更以外、試作例4と同様に処理しメンブレンフィルター上に微生物を接種した。
試作例5におけるセロハンフィルムの透過性膜部をメンブレンフィルター(試作例7に同じ)に変更した。透過性膜部の材質変更以外、試作例5と同様に処理しメンブレンフィルター上に微生物を接種した。
試作例6におけるセロハンフィルムの透過性膜部をメンブレンフィルター(試作例7に同じ)に変更した。透過性膜部の材質変更以外、試作例6と同様に処理しメンブレンフィルター上に微生物を接種した。
試作例1ないし10の各培地における培養結果について、培地構成、浸透台部の有無と材料、及び透過性膜部の有無と材料について表1,2に示した。
試作例1ないし10の培地について、培養した微生物のコロニーを回収し、各試料の微生物についてのDNAを抽出し、PCR−DGGE法により微生物群集構造解析を行った。図6はその電気泳動写真である。泳動レーンごとに試作例1ないし10と対応する。電気泳動ゲルのバンドの位置が同一であれば、同一の微生物種の存在を推定することができる。これに対し、写真の枠部Aにより囲まれた部分に着目したとき、試作例3ないし6,10に特異的なバンドが存在する。ここに発現した微生物は、透過性膜部があるときに生育可能であることを示唆する。
発明者らは、本発明の足場部材の性能を確認するべくさらに別の場所から微生物を採取し、検証した。そこで、前出の筑波大学内の土壌から採取した微生物を用い、採取土壌を滅菌水により適宜希釈し、次述の試作例11ないし15の培地それぞれに対して接種、培養した。各試作例の培養にはインキュベータを用い、加湿状態で30℃を48時間維持した。併せて、試作例11ないし15の各培地における培養結果を表3に記した。
接種する微生物を上記の土壌由来とする以外は、前出の試作例1と同様の条件に基づき培地を作成し、培養した。
接種する微生物を上記の土壌由来とする以外は、前出の試作例5と同様の条件に基づき培地を作成し、培養した。
接種する微生物を上記の土壌由来とする以外は、前出の試作例6と同様の条件に基づき培地を作成し、培養した。
接種する微生物を上記の土壌由来とする以外は、前出の試作例9と同様の条件に基づき培地を作成し、培養した。
接種する微生物を上記の土壌由来とする以外は、前出の試作例10と同様の条件に基づき培地を作成し、培養した。
試作例1ないし14の培地について、培養した微生物のコロニーを回収し、各試料の微生物についてのDNAを抽出し、PCR−DGGE法により微生物群集構造解析を行った。図7はその電気泳動写真である。電気泳動ゲルの泳動レーンごとに試作例11ないし14と対応する。試作例15では生育が確認できなかったため、回収できず本処理に供することができなかった。
発明者らは、透過性膜部上に増殖した微生物(そのコロニー)の分離をより容易にするため、透過性膜部上に区画部を設けた液体培地用足場部材を作成した(試作例16)。はじめに、前出の試作例3にて用いたセロハンフィルム表面に対し、公知の卓上用の塗工装置を用いて耐水性塗料としてウレタンエナメル塗料(株式会社ナガシマ製)を塗工線幅1mm、塗工厚さ0.1mm、塗工間隔3mmとし、塗工線を互いに直交させながら格子状に塗布した。結果、交差する塗工線により3mm×3mmの独立区画(ひとつひとつの正方形の穴部分)を得た。区画部(すなわち、塗料の格子全体)の塗工後、当該セロハンフィルムを試作例3にて説明した殺菌方法に準じて処理した。
2 シャーレの蓋部
3 液体培地
10A,10B 液体培地用足場部材
11 浸透台部
12 台底部
13 台上部
15 透過性膜部
16 膜部下面
17 膜部上面
20 区画部
24 格子状突部
25 独立区画
C 微生物のコロニー
Claims (5)
- 液体培地と接触し該液体培地を吸液して保持する浸透台部と、前記浸透台部に載置され前記浸透台部に吸液された前記液体培地を透過させる再生セルロースフィルムの半透膜である透過性膜部とを備えることを特徴とする液体培地用足場部材。
- 前記浸透台部が、不織布である請求項1に記載の液体培地用足場部材。
- 前記浸透台部が、再生セルロース繊維からなる不織布である請求項1に記載の液体培地用足場部材。
- 前記浸透台部と密着しない側の前記透過性膜部において、当該透過性膜部の表面を区画する区画部が設けられる請求項1ないし3のいずれか1項に記載の液体培地用足場部材。
- 前記区画部が、耐水性樹脂を前記透過性膜部の表面に塗工して得た格子状突部である請求項4に記載の液体培地用足場部材。
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