JP5857385B2 - Ａｐｅ１／ｒｅｆ−１を含有する膀胱癌診断用組成物、及びこれを利用した膀胱癌診断キット - Google Patents

Description

本発明は、ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１を含有する膀胱癌診断用組成物、及びこれを利用した膀胱癌診断キットに関する。

膀胱癌は、泌尿器系癌のうち最もよくある癌で、発生原因が比較的多く明らかになっている。主に喫煙やさまざまな化学物質（例えば、革等の染色塗料、大気汚染物質、人工甘味料、硝酸塩）が体内に吸収されて尿で排泄さるときに膀胱壁を刺激して癌を誘発するものと知られている。

伝統的な膀胱癌検査としては、尿で非正常細胞を見つける方法を使用しているが、これは正確度が低い。また、カテーテル（導管）を膀胱に押し入れて疑わしい組職を剥しとって検査する膀胱鏡検査は、侵襲的方法として比較的正確度が高い方である。

一般的に膀胱癌を早期に診断すれば患者の生存率が高くなるが、早期に膀胱癌を診断することは容易でない実情である。現在使用されている膀胱癌診断法は、身体の一部を切開する方法を利用しているが、これは膀胱癌を早期に診断するのに困難がある。膀胱癌は、膀胱筋層の侵犯有無によって表在性又は浸潤性癌に分類し、平均的に診断当時３０％ほどの患者が浸潤性膀胱癌に該当する。したがって、患者の生存期間を伸ばそうとするなら、病変範囲が小さい時に早期診断するのが最もよい。したがって、既存の各種膀胱癌診断方法より効率的な診断方法、すなわち早期診断が可能で、大容量で検体を処理することができ、敏感度及び特異度が高い膀胱癌特異的バイオマーカーの開発が切実に必要である。

一方、ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１（ａｐｕｒｉｎｉｃ／ａｐｙｒｉｍｉｄｉｎｉｃ ｅｎｄｏｎｕｃｌｅａｓｅ１／ｒｅｄｏｘ ｆａｃｔｏｒ−１）は、酸化還元部位（ｒｅｄｏｘ ｒｅｇｉｏｎ）、ＤＮＡ修復部位（ＤＮＡ ｒｅｐａｉｒ ｒｅｇｉｏｎ）を含む３１８個のアミノ酸で構成された多機能タンパク質である。このタンパク質は、ＤＮＡの損傷時に損傷部位を復旧するＡＰＥ１の機能及びＡＰ−１、ＮＦ−ｋＢのような転写因子の還元性調節機能（ｒｅｄｏｘ ｆｕｎｃｔｉｏｎ）を有するものと知られている（Ｇｕｒｕｓａｍｙ、Ｍａｌｉｋ ｅｔ ａｌ． ２００７）。ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の転写因子還元性調節機能は、いくつかの転写因子のＤＮＡ結合領域で酸化型システイン（ｃｙｓｔｅｉｎｅ）残基を還元させることにより転写を容易にする役割を遂行する（Ｘａｎｔｈｏｕｄａｋｉｓ、Ｍｉａｏ ｅｔ ａｌ． １９９４； Ｔｅｌｌ、Ｄａｍａｎｔｅ ｅｔ ａｌ． ２００５）。

ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１は、全ての細胞及び組職に存在し、細胞内の発現位置は細胞によって異なると知られている。ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の発現調節は、転写段階及び転写後段階水準で調節されている。ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の発現を増加させる主要原因は、活性酸素種（ｒｅａｃｔｉｖｅ ｏｘｙｇｅｎ ｓｐｅｃｉｅｓ； ＲＯＳ）である。大食細胞及びリンパ球で過酸化水素及び次亜塩素酸（ｈｙｐｏｃｈｌｏｒｏｕｓ ａｃｉｄ； ＨＯＣｌ）を処理する場合、細胞内ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の発現は増加し、このようなＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の発現増加は、細胞の毒性及び酸化的損傷を保護するための細胞の適応反応と考えられている（Ｒａｍａｎａ、Ｂｏｌｄｏｇｈ ｅｔ ａｌ． １９９８）。

ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の細胞内位置についての報告は、多様である。ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１のタンパク質序列を分析してみると、このような多様な細胞内位置の多様性を考えることができる。ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１のアミノ酸末端部位に核位置信号（ｎｕｃｌｅａｒ ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ ｓｉｇｎａｌ； ＮＬＳ）が存在し（Ｊａｃｋｓｏｎ、Ｔｈｅｒｉｏｔ ｅｔ ａｌ． ２００５）、システイン９３番と３１０番アミノ酸の硝酸化は、核内に存在するＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１を細胞質に移動させるＮＥＳ（ｎｕｃｌｅａｒ ｅｘｐｏｒｔ ｓｉｇｎａｌ）が存在するものと知られている（Ｑｕ、Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ． ２００７）。また、ミトコンドリアでもＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の発現が確認されている（Ｃｈａｔｔｏｐａｄｈｙａｙ、Ｗｉｅｄｅｒｈｏｌｄ ｅｔ ａｌ． ２００６）。

細胞内に生成されたＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質は、細胞外に遊離することができる。大食細胞で内毒素による細胞の活性及び炎症反応は、ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１を細胞外に遊離させるようになる。したがって、ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１を正確に測定する能力は、心脳血管疾患、感染疾患及び腫瘍等の多くの生物学的過程でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の潜在的役割等を理解するのに重要なものと考えられる。

しかし、いまだにＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質が膀胱癌診断用マーカーとして作用するかについての報告はなく、これに関する研究も全くない状態である。したがって、健康検診時に血液で簡便に膀胱癌を早期診断して患者の生存率を増加させることができるバイオマーカーの開発の必要性が切実に要求されている。

本発明者らは、早く簡便で正確に膀胱癌を早期に診断することができるバイオマーカーについて研究していたところ、ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度が、正常者の血清でよりも膀胱癌患者の血清、特に２期以上の膀胱癌患者の血清で有意に増加し、再発回数に関係なく膀胱癌患者の血清で増加することを確認し、本発明を完成した。

本発明は、ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１を含有する膀胱癌診断用組成物を提供しようとする。

また、本発明は、ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１に特異的に結合する抗体を含有する膀胱癌診断キットを提供しようとする。

また、本発明は、膀胱癌マーカーであるＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１に特異的に結合する抗体を利用した抗原−抗体結合反応によって生物学的試料でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の濃度を測定する方法を提供しようとする。

本発明のＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の濃度は、正常者の血清でよりも膀胱癌患者の血清、特に２期以上の膀胱癌患者の血清で有意に増加する。また、膀胱癌が再発する場合、再発回数に関係なく膀胱癌患者の血清でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度は、再発していない初期膀胱癌患者の血清でよりも有意に増加する。したがって、本発明のＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質は、膀胱癌の診断又は予後を早期に予測することができるため、膀胱癌診断用マーカーとして有用に使用されることができる。

ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質のＥＬＩＳＡ標準曲線を示した図である。 膀胱癌患者と正常者の血清でのＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度をサンドイッチＥＬＩＳＡ法で測定して比較した図である。 膀胱癌の段階別による膀胱癌患者の血清でのＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度を示した図である。 膀胱癌の再発回数及び病変数による膀胱癌患者の血清でのＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度を示した図である。［（Ａ）Ｒ_０：再発しない、Ｒ_１：再発回数１回、Ｒ_３：再発回数３回、Ｒ_７：再発回数７回；（Ｂ）ｓｉｎｇｌｅ：単発性、ｍｕｌｔｉｐｌｅ：多発性］。

本発明は、ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１を含有する膀胱癌診断用組成物を提供する。

また、本発明は、ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１に特異的に結合する抗体を含有する膀胱癌診断キットを提供する。

また、本発明は、膀胱癌マーカーであるＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１に特異的に結合する抗体を利用した抗原−抗体結合反応によって生物学的試料でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の濃度を測定する方法を提供する。

以下、本発明について詳しく説明する。

本発明のＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度は、正常者の血清でよりも膀胱癌患者の血清で１．５〜３．５倍高く増加し、膀胱癌の段階が高くなるほど、特に２期以上の膀胱癌患者の血清で有意に増加する。また、膀胱癌が再発する場合、再発回数に関係なく、膀胱癌患者の血清でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度は再発していない初期膀胱癌患者の血清でよりも有意に増加する。したがって、本発明のＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質は、膀胱癌の診断又は予後を早期に予測することができるため、膀胱癌診断用マーカーとして有用に使用されることができる。

また、本発明のＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１に特異的に結合する抗体を含む膀胱癌診断キットは、上記ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質を利用して当業界で通常的に使用される製造方法によって容易に製造されることができる。

上記膀胱癌診断キットは、ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１に特異的に結合する抗体、基質との反応によって発色する標識体が接合した２次抗体接合体（ｃｏｎｊｕｇａｔｅ）、上記標識体と発色反応する発色基質溶液、洗滌溶液及び酵素反応停止溶液等を含むことができる。

上記２次抗体接合体の標識体は、発色反応をする通常の発色剤が好ましく、ＨＲＰ（ｈｏｒｓｅｒａｄｉｓｈ ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ）、塩基性脱リン酸化酵素（ａｌｋａｌｉｎｅ ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ）、コロイドゴールド（ｃｏｌｏｉｄ ｇｏｌｄ）、ＦＩＴＣ（ｐｏｌｙ Ｌ−ｌｙｓｉｎｅ−ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ ｉｓｏｔｈｉｏｃｙａｎａｔｅ）、ＲＩＴＣ（ｒｈｏｄａｍｉｎｅ−Ｂ−ｉｓｏｔｈｉｏｃｙａｎａｔｅ）等の蛍光物質（ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ）、及び色素（ｄｙｅ）等が使用されることができる。

上記発色基質溶液は、標識体に応じて使用するのが好ましく、ＴＭＢ（３、３'、５、５'−ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌ ｂｅｚｉｄｉｎｅ）、ＡＢＴＳ［２、２'−ａｚｉｎｏ−ｂｉｓ（３−ｅｔｈｙｌｂｅｎｚｏｔｈｉａｚｏｌｉｎｅ−６−ｓｕｌｆｏｎｉｃ ａｃｉｄ）］、ＯＰＤ（ｏ−ｐｈｅｎｙｌｅｎｅｄｉａｍｉｎｅ）等を使用することができる。この時、発色基質は、緩衝溶液（０．１Ｍ ＮａＯＡｃ、ｐＨ５．５）に溶解された状態で提供されることがさらに好ましい。

洗滌溶液は、リン酸塩緩衝溶液、ＮａＣｌ及びツイーン２０を含むことが好ましく、０．０２Ｍリン酸塩緩衝溶液、０．１３Ｍ ＮａＣｌ、及び０．０５％ツイーン２０で構成された緩衝溶液（ＰＢＳＴ）がさらに好ましい。洗滌溶液は、抗原−抗体結合反応後、抗原−抗体結合体に２次抗体を反応させてから、適量を固定体に加えて３ないし６回洗滌する。反応停止溶液は、硫酸溶液が使用されることができる。

また、本発明は、膀胱癌マーカーであるＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１に特異的に結合する抗体を利用した抗原−抗体結合反応によって生物学的試料でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度を測定して、膀胱癌の診断又は予後を早期に予測することができる。具体的には、生物学的試料を、固定体に固定化した捕獲抗体と接触させ、固定化した捕獲抗体から残った試料を分離した後、固定化した捕獲抗体−標的分子の複合体を検出抗体と接触させる。次に、検出抗体を認知することができる検出方法を利用して生物学的試料でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度を測定する。すなわち、膀胱癌患者と正常者の血清でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の濃度を測定して比較し、膀胱癌患者の血清でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の濃度が正常者の血清でより高ければ、膀胱癌を有するものと診断するか、膀胱癌を有するようになるものと予測する。特に、ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度は、膀胱癌の段階が高くなるほど、好ましくは、２期以上の膀胱癌患者の血清で有意に増加する。

上記生物学的試料は、哺乳動物から収得された組職、細胞、全血、血清、血漿、唾液、喀痰、尿のような試料を含むことができるが、これに限定されない。上記試料は、使用する前に濾過、蒸溜、抽出、濃縮、妨害成分の不活性化、試薬の添加等で前処理することができる。

上記抗原−抗体結合反応のための固定体としては、ニトロセルロース膜、ＰＶＤＦ膜（ｐｏｌｙｖｉｎｙｌｉｄｅｎｅ ｄｉｆｌｕｏｒｉｄｅ ｍｅｍｂｒａｎｅ）、ポリビニル樹脂又はポリスチレン樹脂で合成された９６ウェルプレート、及びガラスからなったスライドグラス等が使用されることができる。

上記抗原−抗体結合反応は、通常の酵素免疫分析法（ＥＬＩＳＡ）、放射能免疫分析法（ｒａｄｉｏｉｍｍｎｏａｓｓａｙ、ＲＩＡ）、サンドイッチＥＬＩＳＡ法、ウエスタンブロッティング、免疫沈降法、免疫組織化学染色法（ｉｍｍｎｏｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ ｓｔａｉｎｉｎｇ）、流体細胞測定法（ｆｌｏｗ ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ）、蛍光活性化細胞分類法（ＦＡＣＳ）、酵素基質発色法、抗原−抗体凝集法等の方法を利用して行うことができる。

本発明で、抗体は、全体形態の抗体（以下「全抗体」という）又はその機能的な断片であることができる。上記全抗体は、単量体又は、２以上の全抗体が結合されている多量体の形態であることができる。上記抗体の機能的な断片は、全抗体の重鎖及び軽鎖の可変領域を有する抗体であって、実質的に全抗体が認識するものと同一の抗原結合部位（ｅｐｉｔｏｐｅ）を認識するものを意味する。上記抗体の機能的な断片には、単一鎖可変領域断片（ｓｃＦｖ）、（ｓｃＦｖ）２、Ｆａｂ、Ｆａｂ'及びＦ（ａｂ'）２等が含まれるが、これに限定されない。上記単一鎖可変領域（ｓｃＦｖ）は、重鎖可変領域と軽鎖可変領域がリンカーペプチドによって連結されて単一鎖ポリペプチド形態を取る抗体断片を意味する。

上記抗体は酵素、蛍光物質、放射線物質及びタンパク質等のような多様な分子と結合して変形することができる。変形した抗体は、化学的に抗体を変形して収得することができる。このような変形方法は、当業界で通常的に使用される。また、上記抗体は、非ヒト抗体から由来した変形部位（ｖａｒｉａｂｌｅ ｒｅｇｉｏｎ）とヒト抗体から由来した不変部位（ｃｏｎｓｔａｎｔ ｒｅｇｉｏｎ）が結合したキメラ抗体（ｃｈｉｍｅｒｉｃ ａｎｔｉｂｏｄｙ）で収得されたり、又はヒトでない抗体から誘導された相補性決定部位を含んでヒト抗体から誘導された構造部位（ｆｒａｍｅ ｗｏｒｋ ｒｅｇｉｏｎ、ＦＲ）と不変部位が結合したヒト化抗体（ｈｕｍａｎｉｚｅｄ ａｎｔｉｂｏｄｙ）として収得されることができる。このような抗体は、当業界に知られている方法を利用して製造されることができる。

以下、本発明の理解を助けるために好ましい実施例を提示する。しかし下記の実施例は、本発明をより容易に理解するために提供されるものであるだけで、実施例によって本発明の内容が限定されるものではない。

実施例１：膀胱癌患者の血清でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度測定

膀胱癌患者の血清でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度を測定するために、サンドイッチＥＬＩＳＡ法を利用して下記のような実験を行った。

１．ＥＬＳＩＡのための試料準備
膀胱癌患者と正常者の血清内ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の量を測定するために、抗凝固剤が入っている全血採取チューブを利用して正常者と膀胱癌患者の血液を採取した。膀胱癌患者５１人と健康検診のために来院した正常者６人からそれぞれ１０ｍｌ程度の血液を採取した。上記採取した血液を室温で揺らしながら放置した後、２５００ｒｐｍで１０分間遠心分離して上澄み液（すなわち、プラズマ）を分離した。分離した上澄み液を４℃の低温で保管した後、サンドイッチＥＬＳＩＡの遂行時に試料当り１００μｌずつ使用した。

２．ＥＬＩＳＡのための抗体と標準物質の決定
ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１を認知する捕獲抗体として抗−ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１ポリクロナール抗体（Ａｂｃａｍ、ａｂ６４８６５）を使用した。捕獲抗体に結合したＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１を認知する検出抗体としては、抗−ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１モノクロナール抗体（Ａｂｃａｍ、ａｂ１９４）を使用した。ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の標識物質としては、大膓菌から分離、精製した組み換えヒトＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１−Ｈｉｓを５倍ずつ連続的に希薄して（０−２５ｎｇ）使用した。

３．サンドイッチＥＬＩＳＡ法
コーティング緩衝液（０．５Ｍ炭酸水素ナトリウム緩衝液、ｐＨ９．６）で捕獲抗体は２００ｎｇ／ｍｌの濃度に希薄してＥＬＩＳＡ用９６−ウェルマイクロリットルプレート（ＢＤ Ｆａｌｃｏｎ ３０７２、Ｆｒａｎｋｌｉｎ、ＮＪ）にコーティングした。プレートを４℃で一晩中コーティングした。結合していないＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１ポリクロナール抗体を除去するために、プレートを洗滌溶液（ＰＢＳ、０．０５％ Ｔｗｅｅｎ２０）で３回洗滌した。洗滌した後に、プレートを遮断溶液（ＰＢＳ、５％ Ｂｏｖｉｎｅ Ｓｅｒｕｍ Ａｌｂｕｍｉｎ、ＢＳＡ）２５０μｌで常温で１時間の間遮断した。膀胱癌患者と正常者の血漿試料を９６−ウェルプレートにそれぞれ１００μｌずつ添加し、３７℃で９０分間反応させた。プレートを洗滌溶液で５回洗滌した。捕獲抗体に結合したＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の程度を調べるために、検出抗体の抗−ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１モノクロナール抗体を２００ｎｇ／ｍｌの濃度に希薄して室温で２時間の間反応させた。プレートを洗滌溶液で７回洗滌した。検出抗体を認知するＨＲＰ−接合した抗−マウスＩｇＧ二次抗体を、１：５０００に希薄してプレートに添加した。プレートを３０分間の間室温で反応させ、洗滌溶液で５回洗滌した。プレートにテトラメチルベンジデン（ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌ ｂｅｎｚｉｄｉｎｅ、ＴＭＢ）ペルオキシターゼ基質及びペルオキシターゼ溶液（ＢＤ５５５２１４、Ｆｒａｎｋｌｉｎ、ＮＪ）を添加した。プレートを室温で色が現われ出しながら４分間反応させて規則的に揺らした。反応停止液として２．５Ｍ Ｈ_２ＳＯ_４を添加して４５０ｎｍで吸光度を測定した。

４．本発明によるＥＬＩＳＡの標準範囲の決定
精製分離した組み換えヒトＡＰＥ１／Ｒｅｆ−Ｈｉｓを０−２５ｎｇの範囲内で連続希薄して直線性を提示する標準曲線を得て、表１及び図１に示した。

膀胱癌患者と正常者の血清でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度をサンドイッチＥＬＩＳＡ法で測定して比較した結果は表２及び図２に示し、膀胱癌の段階別による膀胱癌患者の血清でのＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度は図３に示し、膀胱癌の再発回数及び病変数による膀胱癌患者の血清でのＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度は図４に示した［（Ａ）Ｒ_０：再発しない、Ｒ_１：再発回数１回、Ｒ_３：再発回数３回、Ｒ_７：再発回数７回；（Ｂ）ｓｉｎｇｌｅ：単発性、ｍｕｌｔｉｐｌｅ：多発性］．

表２及び図２に示されたように、膀胱癌患者の血清でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度は正常者の血清でより１．５〜３．５倍高く増加した。

また図３に示されたたように、膀胱癌の段階が高くなるほど、特に２期以上の膀胱癌患者の血清でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度が有意に増加することを確認した。

また図４に示されたたように、膀胱癌が再発する場合（Ｒ_１、Ｒ_３、Ｒ_７）、再発回数に関係なく膀胱癌患者の血清でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度は、再発していない（Ｒ_０）初期膀胱癌患者の血清でよりも有意に増加した。しかし、膀胱癌患者の血清でＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度は、膀胱癌の再発回数に比例して増加しはしなかった（図４Ａ）。また、膀胱癌の病変数が多発性の場合、単発性の場合よりＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質の濃度が増加する傾向をみせたが、有意な差をみせはしなかった（図４Ｂ）。

本発明のＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１タンパク質は、膀胱癌の診断又は予後を早期に予測することができるため、膀胱癌診断用マーカーとして有用に使用されることができる。

Claims (4)

1. 膀胱癌を診断するために、血液中のＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の濃度を測定する方法であって、
   血液中のＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１に捕獲抗体を結合することと、
   検出抗体を用いて前記捕獲抗体に結合したＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１を検出することと、
   検出されたＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１を用いて前記血液中のＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１の濃度を測定することと
   を含むことを特徴とする方法。
2. 前記血液が全血であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
3. 前記捕獲抗体が、抗−ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１ポリクローナル抗体であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
4. 前記検出抗体が、抗−ＡＰＥ１／Ｒｅｆ−１モノクローナル抗体であることを特徴とする請求項１に記載の方法。

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