JP5822407B2

JP5822407B2 - 軟骨・骨破壊抑制剤

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Publication number: JP5822407B2
Application number: JP2013529990A
Authority: JP
Inventors: 隆美松山; 拓永井
Original assignee: Kagoshima University NUC
Current assignee: Kagoshima University NUC
Priority date: 2011-08-22
Filing date: 2012-08-10
Publication date: 2015-11-24
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Description

本発明は、抗体又はその複合体を用いた軟骨・骨破壊抑制剤に関する。

変形性関節症（ｏｓｔｅｏａｒｔｈｒｉｔｉｓ（ＯＡ））は、加齢や機械的ストレスが原因となって、関節軟骨表面の崩壊と、これに伴う関節辺縁の新たな軟骨の増殖、関節の変形、適合性の破綻をきたし、更に関節滑膜の炎症へと進行する疾患である。一方、代表的な関節炎である関節リウマチ（ｒｈｅｕｍａｔｏｉｄａｒｔｈｒｉｔｉｓ（ＲＡ））では、免疫異常や感染症が原因となって、滑膜に炎症性細胞が浸潤し、更に、血管新生に伴って滑膜繊維芽細胞の増殖が亢進して、炎症性滑膜肉芽組織が形成され、骨や軟骨の破壊が進み、関節に不可逆的な障害がもたらされる。このため、関節リウマチ（ＲＡ）が炎症性疾患とよばれる自己免疫疾患であるのに対し、変形性関節症（ＯＡ）は非炎症性疾患とよばれている。したがって、関節リウマチの治療に用いられる治療薬は、変形性関節症では治療効果がないと一般的に考えられている。
従来、関節リウマチ（ＲＡ）の治療を目的として様々な医薬組成物が開発されてきた。そのうちの１つとして抗Ｆａｓ抗体が挙げられる（特許文献１）。しかしながら、抗Ｆａｓ抗体は、関節リウマチ（ＲＡ）の患者から採取した滑膜細胞に対してはアポトーシス誘導効果があるものの、変形性関節症（ＯＡ）の患者から採取した滑膜細胞に対してはアポトーシス誘導効果がないことが報告されている（非特許文献１）。
現在、関節リウマチや変形性関節症の関節局所投与として副腎皮質ホルモンやヒアルロン酸製剤が使用されているが、その効果は一過性であり、これらは炎症には効果があるものの軟骨・骨破壊抑制効果については一定の見解が得られていない（非特許文献２及び３）。また、各種の生物製剤（抗ＴＮＦα抗体等）の全身投与において、ＲＡの炎症や軟骨、骨破壊抑制効果が示されているが、全身投与にても治療に抵抗する関節炎がある（非特許文献４）。これらの生物製剤の全身投与に抵抗性のＲＡ関節炎に、更に生物製剤の関節局所投与を行った際の軟骨、骨破壊抑制効果については一定の見解が得られていない（非特許文献５）。これまでの本発明者らの研究から、抗葉酸リセプターβ（ＦＲ−β）イムノトキシンはＦＲ−β発現マクロファージが病態の中心である疾患の炎症を抑制することは容易に推定されるが、副腎皮質ホルモンやヒアルロン酸の投与に見られるように、あるいは非特許文献６にも述べられているように、炎症抑制が必ずしも軟骨、骨破壊を抑制するとは限らない。実際、ＲＡの軟骨・骨破壊はマクロファージから分化する破骨細胞、マクロファージが産生するＩＬ−１やＴＮＦ−α等のサイトカイン、マクロファージや線維芽細胞が産生するメタロプロテアーゼ等が複雑に絡み合った結果と考えられている（非特許文献７〜９）。
特許文献２には、葉酸リセプターβに対するＩｇＧ型抗体とトキシン（シュードモナス・エクソトキシン（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓｅｘｏｔｏｘｉｎ））とが結合してなるイムノトキシンが関節リウマチ患者の滑膜細胞に対して細胞死（アポトーシス）を誘導することが記載されているが、軟骨・骨破壊抑制効果については確認しておらず、変形性関節症（ＯＡ）については言及されていない。

特開２００４−５９５８２号公報国際公開第２００５／１０３２５０号

ＮＡＫＡＪＩＭＡｅｔａｌ．，ＡＰＯＰＴＯＳＩＳＡＮＤＦＵＮＣＴＩＯＮＡＬＦＡＳＡＮＴＩＧＥＮＩＮＲＨＥＵＭＡＴＯＩＤＡＲＴＨＲＩＴＩＳＳＹＮＯＶＩＣＹＴＥＳ，ＡＲＴＨＲＩＴＩＳ＆ＲＨＥＵＭＡＴＩＳＭ，３８（４），１９９５，ｐ４８５−ｐ４９１．ＨａｂｉｂＧＳ，ＳａｌｉｂａＷ，ＮａｓｈａｓｈｉｂｉＭ．Ｌｏｃａｌｅｆｆｅｃｔｓｏｆｉｎｔｒａ−ａｒｔｉｃｕｌａｒｃｏｒｔｉｃｏｓｔｅｒｏｉｄｓ．ＣｌｉｎＲｈｅｕｍａｔｏｌ．２０１０Ａｐｒ；２９（４）：３４７−５６．ＳａｉｔｏＳ，ＫｏｔａｋｅＳ．Ｉｓｔｈｅｒｅｅｖｉｄｅｎｃｅｉｎｓｕｐｐｏｒｔｏｆｔｈｅｕｓｅｏｆｉｎｔｒａ−ａｒｔｉｃｕｌａｒｈｙａｌｕｒｏｎａｔｅｉｎｔｒｅａｔｉｎｇｒｈｅｕｍａｔｏｉｄａｒｔｈｒｉｔｉｓｏｆｔｈｅｋｎｅｅ？Ａｍｅｔａ−ａｎａｌｙｓｉｓｏｆｔｈｅｐｕｂｌｉｓｈｅｄｌｉｔｅｒａｔｕｒｅ．ＭｏｄＲｈｅｕｍａｔｏｌ．２００９；１９（５）：４９３−５０１．ＲｏｍａｓＥ，ＧｉｌｌｅｓｐｉｅＭＴ．Ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ−ｉｎｄｕｃｅｄｂｏｎｅｌｏｓｓ：ｃａｎｉｔｂｅｐｒｅｖｅｎｔｅｄ？ＲｈｅｕｍＤｉｓＣｌｉｎＮｏｒｔｈＡｍ．２００６Ｎｏｖ；３２（４）：７５９−７３．ＦｉｓｈｅｒＢＡ，ＫｅａｔＡ．Ｓｈｏｕｌｄｗｅｂｅｕｓｉｎｇｉｎｔｒａａｒｔｉｃｕｌａｒｔｕｍｏｒｎｅｃｒｏｓｉｓｆａｃｔｏｒｂｌｏｃｋａｄｅｉｎｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙｍｏｎｏａｒｔｈｒｉｔｉｓ？ＪＲｈｅｕｍａｔｏｌ．２００６Ｏｃｔ；３３（１０）：１９３４−５．ｖａｎｄｅｎＢｅｒｇＷＢ．Ｕｎｃｏｕｐｌｉｎｇｏｆｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙａｎｄｄｅｓｔｒｕｃｔｉｖｅｍｅｃｈａｎｉｓｍｓｉｎａｒｔｈｒｉｔｉｓ．ＳｅｍｉｎＡｒｔｈｒｉｔｉｓＲｈｅｕｍ．２００１Ａｐｒ；３０（５Ｓｕｐｐｌ２）：７−１６ＵｄａｇａｗａＮ，ＫｏｔａｋｅＳ，ＫａｍａｔａｎｉＮ，ＴａｋａｈａｓｈｉＮ，ＳｕｄａＴ．Ｔｈｅｍｏｌｅｃｕｌａｒｍｅｃｈａｎｉｓｍｏｆｏｓｔｅｏｃｌａｓｔｏｇｅｎｅｓｉｓｉｎｒｈｅｕｍａｔｏｉｄａｒｔｈｒｉｔｉｓ．ＡｒｔｈｒｉｔｉｓＲｅｓ．２００２；４（５）：２８１−９．ＣａｔｒｉｎａＡＩ，ＬａｍｐａＪ，ＥｒｎｅｓｔａｍＳ，ａｆＫｌｉｎｔＥ，ＢｒａｔｔＪ，ＫｌａｒｅｓｋｏｇＬ，ＵｌｆｇｒｅｎＡＫ．Ａｎｔｉ−ｔｕｍｏｕｒｎｅｃｒｏｓｉｓｆａｃｔｏｒ（ＴＮＦ）−ａｌｐｈａｔｈｅｒａｐｙ（ｅｔａｎｅｒｃｅｐｔ）ｄｏｗｎ−ｒｅｇｕｌａｔｅｓｓｅｒｕｍｍａｔｒｉｘｍｅｔａｌｌｏｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ（ＭＭＰ）−３ａｎｄＭＭＰ−１ｉｎｒｈｅｕｍａｔｏｉｄａｒｔｈｒｉｔｉｓ．Ｒｈｅｕｍａｔｏｌｏｇｙ（Ｏｘｆｏｒｄ）．２００２Ｍａｙ；４１（５）：４８４−９．ＳｃｈｉｆｆＭＨ．Ｒｏｌｅｏｆｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ１ａｎｄｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ１ｒｅｃｅｐｔｏｒａｎｔａｇｏｎｉｓｔｉｎｔｈｅｍｅｄｉａｔｉｏｎｏｆｒｈｅｕｍａｔｏｉｄａｒｔｈｒｉｔｉｓ．ＡｎｎＲｈｅｕｍＤｉｓ．２０００Ｎｏｖ；５９Ｓｕｐｐｌ１：ｉ１０３−８．

本発明の課題は、関節リウマチ、変形性関節症や悪性腫瘍の骨転移などにみられる軟骨又は骨の破壊を抑制しうる軟骨・骨破壊抑制剤を提供することである。

本発明の要旨は以下のとおりである。
（１）葉酸リセプターβに対する抗体、又は該抗体と生物学的もしくは化学的活性物質との複合体を含有する軟骨又は骨の破壊抑制剤。
（２）葉酸リセプターβに対する抗体が一重鎖又は二重鎖である前記（１）に記載の軟骨又は骨の破壊抑制剤。
（３）生物学的もしくは化学的活性物質がトキシン、酵素、サイトカイン、アイソトープ及び化学療法剤から選ばれる少なくとも一つである前記（１）又は（２）に記載の軟骨又は骨の破壊抑制剤。
（４）葉酸リセプターβ発現マクロファージが軟骨又は骨の破壊をおこす疾患を治療するための前記（１）〜（３）のいずれかに記載の軟骨又は骨の破壊抑制剤。
（５）関節リウマチ、変形性関節症又は悪性腫瘍の骨転移による軟骨又は骨の破壊を抑制するための前記（１）〜（３）のいずれかに記載の軟骨又は骨の破壊抑制剤。

本発明によれば、関節リウマチ、変形性関節症や悪性腫瘍の骨転移などにみられる軟骨又は骨の破壊を抑制しうる軟骨・骨破壊抑制剤を提供することができる。

図１はマウス抗ラットＦＲ−βモノクローナル抗体４Ａ６７のＦＲ−β発現細胞への結合性を示す。
図２はマウス抗ラットＦＲ−β抗体４Ａ６７のＶＬ遺伝子及び推定アミノ酸配列を示す。
図３はマウス抗ラットＦＲ−β抗体４Ａ６７のＶＨ遺伝子及び推定アミノ酸配列を示す。
図４はマウス抗ラットＦＲ−βイムノトキシンのＦＲ−β発現Ｂ３００−１９細胞に対する細胞増殖抑制効果（アポトーシス誘導能）を示す。
図５はメチル化ウシ血清アルブミン誘発ラット関節炎へのイムノトキシン投与における関節腫脹の抑制効果を示す。
図６はメチル化ウシ血清アルブミン誘発ラット関節炎へのイムノトキシン投与における病理学的解析結果を示す。
図７は関節リウマチ骨破壊部位におけるＦＲ−β発現細胞を示す。
図８は変形性関節症滑膜のＦＲ−β発現細胞を示す。
図９は肝臓がん骨転移部位におけるＦＲ−β発現細胞を示す。
図１０は抗ＦＲ−βイムノトキシンの毒素に対するラット血清中の抗体の検出の方法の概略及び結果を示す。

本発明の軟骨・骨破壊抑制剤の有効成分としては、葉酸リセプターβ（ＦＲ−β）に対する抗体（抗ＦＲ−β抗体）を用いてもよいが、抗ＦＲ−β抗体と生物学的もしくは化学的活性物質との複合体を用いることが好ましい。
前記生物学的もしくは化学的活性物質としては、例えばトキシン、酵素、サイトカイン、アイソトープ、化学療法剤、好ましくはトキシンが挙げられる。
本発明の好ましい態様では、抗体のＨ鎖、Ｌ鎖の抗原結合部位とトキシンのＤＮＡを遺伝子操作にて結合させ、大腸菌内で蛋白を産生させることにより、一重鎖リコンビナントイムノトキシン、二重鎖リコンビナントイムノトキシンを作成することができる。リコンビナントイムノトキシンは分子量が小さいため細胞内に入りやすく、しかも化学的に抗体とトキシンの結合物を作成するのに比べて、大量な精製が可能であるという利点を有する。
キメラ抗体はヒトにおいて、マウス抗体部分に対する抗体の産生が少なく、臨床投与に有用であることが知られている。更に、マウスＦａｂ部分のＣＤＲ１、２、３でヒト免疫グロブリンのＣＤＲ１、２、３をおきかえたヒト化抗体はマウス抗体部分に対する抗体の産生が少なく、臨床投与に有用であることが報告されている。
更に、ヒト免疫グロブリンＦａｂファージディスプレイライブラリーから得られた完全ヒト型抗体は、投与抗体部分に対する抗体の産生が少なく、臨床投与に有用であることが知られている。
本明細書において使用する「抗体」の語は、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体、人体に適合化させた抗体、一重鎖抗体、及び、Ｆａｂフラグメントや、Ｆ（ａｂ’）_２フラグメント、Ｆｖフラグメント等のこれらの抗体のフラグメントや、親抗体の抗原結合能を維持しているその他のフラグメントを意味する。
本明細書において用いる「モノクローナル抗体」の語は、単一の抗体集団を構成する抗体群を意味する。この語は、その抗体の種や起源に関して限定されないし、抗体の製造方法によっても限定されることを意図するものでもない。この語は、完全なイムノグロブリンの他、ＦａｂフラグメントやＦ（ａｂ’）_２フラグメント、Ｆｖフラグメント、及び抗体の抗原結合能を維持するその他のフラグメントを包含するものである。哺乳類、鳥類のモノクローナル抗体も、本発明において使用できる。
本明細書において使用する一重鎖抗体の語は、結合性のある抗体の結合領域（Ｈ鎖及びＬ鎖の双方）を決定し、結合性が維持されるような結合部位を付与することによって調製される抗体をいうものとする。これにより、本質的に抗原に結合するための必要な可変領域部位のみを有する、徹底的に簡略化された抗体が形成される。本明細書において使用する「二重鎖抗体」の語は、結合性のある抗体の結合領域（Ｈ鎖及びＬ鎖の双方）を決定し、Ｈ鎖あるいはＬ鎖とＬ鎖あるいはＨ鎖をＳ−Ｓ結合することによって調製される抗体をいうものとする。これにより、本質的に抗原に結合するための必要な可変領域部位のみを有する、徹底的に簡略化された抗体が形成される。
本発明にいうイムノトキシン（ＩＴ）とは、細胞に結合するリガンドが、トキシンあるいはそのサブユニットに結合されたキメラ分子をいうものとする。イムノトキシンのトキシン部分は、植物や細菌等の各種起源に由来するが、ヒト起源のトキシンや合成トキシン（薬剤）も同様に用いることができる。
好ましくは、トキシン部分は、１型や２型のリボソーム不活性化タンパク質（ＲＩＰ）のような植物毒素由来である。２型のリボソーム不活性化タンパク質は、例えば、リシンを含んでいる。１型のＲＩＰは、特に、この発明によってイムノトキシンを構築するのに都合がよい。
前記トキシンとしては、例えばシュードモナス・エクソトキシン（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓｅｘｏｔｏｘｉｎ）、リシンＡ鎖（ｒｉｃｉｎＡｃｈａｉｎ）、脱糖鎖リシンＡ鎖（ｄｅｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｅｄｒｉｃｉｎＡｃｈａｉｎ）、リボソーム不活化蛋白（ｒｉｂｏｓｏｍｅｉｎａｃｔｉｖａｔｉｎｇｐｒｏｔｅｉｎ）、アルファーサルシン（ａｌｐｈａ−ｓａｒｃｉｎ）、ゲロニン（ｇｅｌｏｎｉｎ）、ブリオディン（ｂｒｙｏｄｉｎ）、モモルデイン（ｍｏｍｏｒｄｉｎ）、サポリン（ｓａｐｏｒｉｎ）、ボウガニン（ｂｏｕｇａｎｉｎ）、アスペルギリン（ａｓｐｅｒｇｉｌｌｉｎ）、リストリクトシン（ｒｅｓｔｒｉｃｔｏｃｉｎ）、リボヌクレアーゼ（ｒｉｂｏｎｕｃｌｅａｓｅ）、エピポドフィロトキシン（ｅｐｉｐｏｄｏｐｈｙｌｌｏｔｏｘｉｎ）、ジフテリア・トキシン（ｄｉｐｈｔｈｅｒｉａｔｏｘｉｎ）が挙げられる。
ＩＴのリガント部分は、通常、選択された標的細胞に結合するモノクローナル抗体をいう。本明細書の実施例で使用するＩＴのトキシン部分は、細菌由来のトキシンであるシュードモナス・エクソトキシン（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓｅｘｏｔｏｘｉｎ；ＰＥ）である。具体的にはＡＤＰリボシル化活性及び細胞膜を介してトランスロケーションする能力を具備する。更に具体的にはＰＥはアミノ酸配列２７９と２８０が切断されることにより活性型となり、天然の毒素の受容体結合ドメインＩａを欠いたＰＥをコードするＤＮＡを含有する発現プラスミドを大腸菌に遺伝子導入することにより作成できる。
本発明にいうＰＥ結合リコンビナントイムノトキシンは細胞表面に結合するＩａドメインが欠損し、アミノ酸配列２８０から始まり、Ｃ末端部位に細胞障害能を増加させるため、ＫＤＥＬ、ＲＥＤＬＫが付加されている。具体的にはトキシンが細胞に対して結合活性のないことは、非特異的な毒性を顕著に低下させる。更に具体的には遺伝子改変されたＰＥは、改変されていないＰＥに比較して、インビトロ（ｉｎｖｉｔｒｏ）でヒト又は動物細胞に対してより低い毒性を示し、かつ、インビボ（ｉｎｖｉｖｏ）で投与した場合に肝臓に対してより低い毒性を具備する。
更に、本発明でいう一重鎖リコンビナントイムノトキシンとは抗体のＨ鎖、Ｌ鎖の抗原結合部位とトキシンのＤＮＡを遺伝子操作にて結合させ、大腸菌内で蛋白を産生させることにより作成される蛋白をいう。具体的には通常、一重鎖リコンビナントイムノトキシンはＨ鎖とＬ鎖の間にアミノ酸１５程度を翻訳する介在配列を含むものをいう。（Ｒｅｉｔｅｒｅｔａｌ．ＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔＦｖｉｍｍｕｎｏｔｏｘｉｎｓａｎｄＦｖｆｒａｇｍｅｎｔｓａｓｎｏｖｅｌａｇｅｎｔｓｆｏｒｃａｎｃｅｒｔｈｅｒａｐｙａｎｄｄｉａｇｎｏｓｉｓ．ＴｒｅｎｄｓＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．１９９８Ｄｅｃ；１６（１２）：５１３−２０）
本発明でいう二重鎖リコンビナントイムノトキシンとは、Ｈ鎖あるいはＬ鎖抗原結合部位ＤＮＡとトキシンＤＮＡを遺伝子操作にて結合させ、大腸菌内で蛋白を作成し、別にＬ鎖あるいはＨ鎖抗原結合部位ＤＮＡから蛋白を作成し、これらの蛋白をＳ−Ｓ結合にて結合させたものをいう。（Ｂｒｉｎｋｍａｎｎｅｔａｌ．Ａｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔｉｍｍｕｎｏｔｏｘｉｎｃｏｎｔａｉｎｉｎｇａｄｉｓｕｌｆｉｄｅ−ｓｔａｂｉｌｉｚｅｄＦｖｆｒａｇｍｅｎｔ．ＰｒｏｃＮａｔｌＡｃａｄＳｃｉＵＳＡ．１９９３；９０（１６）：７５３８−４２）
本発明でいうキメラ化抗体とは、マウス免疫グロブリンの抗原結合部位（Ｆａｂ部分）ＤＮＡとヒト由来の免疫グロブリンＦｃ部分ＤＮＡを遺伝子操作にて結合させ、大腸菌に産生させたものをいう。（Ｓｍｉｔｈｅｔａｌ．Ｒｉｔｕｘｉｍａｂ（ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌａｎｔｉ−ＣＤ２０ａｎｔｉｂｏｄｙ）：ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓｏｆａｃｔｉｏｎａｎｄｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ．Ｏｎｃｏｇｅｎｅ．２００３；２２（４７）：７３５９−６８）
本発明でいうヒト化抗体とはマウスＦａｂ部分のＣＤＲ１、２、３でヒト免疫グロブリンのＣＤＲ１、２、３をおきかえたもの（Ｋｉｐｒｉｙａｎｏｖ．Ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎａｎｄｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎｏｆｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ．ＭｏｌＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２００４；２６（１）：３９−６０）と、ヒト免疫グロブリンＦａｂファージディスプレイライブラリーから得られた完全ヒト型抗体をいう。（ＦｅｎｇＹｅｔａｌ．Ａｆｏｌａｔｅｒｅｃｅｐｔｏｒｂｅｔａ−ｓｐｅｃｉｆｉｃｈｕｍａｎｍｏｎｏｃｌｏｎａｌａｎｔｉｂｏｄｙｒｅｃｏｇｎｉｚｅｓａｃｔｉｖａｔｅｄｍａｃｒｏｐｈａｇｅｏｆｒｈｅｕｍａｔｏｉｄｐａｔｉｅｎｔｓａｎｄｍｅｄｉａｔｅｓａｎｔｉｂｏｄｙ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔｃｅｌｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ．ＡｒｔｈｒｉｔｉｓＲｅｓＴｈｅｒ．２０１１；１３（２）：Ｒ５９）
本発明でいうリポソームとは薬剤の輸送システムとして、脂質膜で薬剤を包むものをいう。具体的には，薬剤の特異的な細胞輸送のために、リポソーム内に薬剤に加えて細胞に特異的に結合する抗体が含まれるものをいう。（Ｇａｂｉｚｏｎｅｔａｌ．Ｔａｒｇｅｔｉｎｇｆｏｌａｔｅｒｅｃｅｐｔｏｒｗｉｔｈｆｏｌａｔｅｌｉｎｋｅｄｔｏｅｘｔｒｅｍｉｔｉｅｓｏｆｐｏｌｙ（ｅｔｈｙｌｅｎｅｇｌｙｃｏｌ）−ｇｒａｆｔｅｄｌｉｐｏｓｏｍｅｓ：ｉｎｖｉｔｒｏｓｔｕｄｉｅｓ．ＢｉｏｃｏｎｊｕｇＣｈｅｍ．１９９９；１０（２）：２８９−９８）
本発明でいう生物学的、化学的に活性のある酵素とは凝固系に作用するウロキナーゼ、プラスミン、プラスミノーゲン、スタフィロキナーゼ、トロンビンや蛋白分解酵素であるメタロプロテアーゼ、コラゲナーゼ、ゲラチナーゼ、ストロメライシンが挙げられる。
本発明でいうサイトカインとは抗腫瘍作用のあるインターフェロン、ＴＧＦ−β、ＴＮＦ−αや血管新生抑制作用のあるエンドスタチンや抗炎症作用のあるＩＬ−１リセプターンタゴニスト、ＩＬ−４、ＩＬ−１０、ＩＬ−１９、ＩＬ−２０、ＩＬ−２２、ＩＬ−２４、ＩＬ−２６、ＩＬ−２８、ＩＬ−２９が挙げられる。
本発明でいうアイソトープとはガリウム６７、ガリウム６８、インジウム１１１、インジウム１１３、ヨウ素１２３、ヨウ素１２５、ヨウ素１３１、テクネシウム９９、イットリウム９０、ルビジウム９７、ルビジウム１０３が挙げられる。
本発明でいう化学療法剤とは細胞障害能のある分子をいう。具体的には代謝拮抗剤であるシトシンアラビノシド、フルオロウラシル、メソトレキサート、アミノプテリン、アンスラサイクリン、マイトマイシン、デメコルシン、エトポシド、ミスラマイシン、アルキル化剤であるクロラムブシル、メルファラン、エンドキサン、ＤＮＡ合成阻害剤であるダウノルビシン、ドキソルビシン、アドリアマイシン、チューブリン重合阻害剤であるコルヒチン、タキサン、ビンブラスチン、ビンクリスチンのようなビンカアルカロイドが挙げられる。
本発明にいう葉酸リセプターβ（ＦＲ−β）は、活性化マクロファージや急性骨髄性白血病に発現する表面抗原であり、葉酸の細胞内輸送に関与する分子をいう。
本発明に用いる抗体は、好ましくはＦＲ−βモノクローナル抗体である。ＩｇＭ型、ＩｇＧ型等のいずれでもよい。本発明に用いるＦＲ−βモノクローナル抗体には、例えば、マウスをＦＲ−β発現Ｂ３００−１９細胞で免疫した後、そのマウスの脾細胞と、マウスミエローマ細胞とを融合させて得られたクローン細胞から産生されたものが含まれる。
本明細書の実施例で用いたマウス抗ラットＦＲβ抗体４Ａ６７のＬ鎖の遺伝子（ＶＬ遺伝子）及び推定アミノ酸配列を図２及び配列番号９に、Ｈ鎖の遺伝子（ＶＨ遺伝子）及び推定アミノ酸配列を図３及び配列番号１０に示す。
また、ＷＯ２００５／１０３２５０（特許文献２）に記載のＦＲ−βモノクローナル抗体産生クローン９４ｂ（ｃｌｏｎｅ９４ｂ）又はクローン３６（ｃｌｏｎｅ３６）細胞由来の抗体も本発明に用いることができるが、本発明においては、クローン９４ｂ（ｃｌｏｎｅ９４ｂ）細胞由来の抗体を用いたリコンビナントＦＲ−β抗体イムノトキシンが好ましい。
クローン３６（ｃｌｏｎｅ３６）細胞のＨ鎖の遺伝子の塩基配列は、ＷＯ２００５／１０３２５０（特許文献２）の配列表の配列番号１に記載されており、クローン９４ｂ（ｃｌｏｎｅ９４ｂ）細胞のＨ鎖の遺伝子の塩基配列は、ＷＯ２００５／１０３２５０（特許文献２）を配列表の配列番号３に記載されている。
ＷＯ２００５／１０３２５０（特許文献２）に記載のＦＲ−βモノクローナル抗体は、ＦＲ−βモノクローナル抗体産生クローン９４ｂ（ｃｌｏｎｅ９４ｂ）又はクローン３６（ｃｌｏｎｅ３６）細胞のＨ鎖とＬ鎖の遺伝子、及びその遺伝子によりコードされる蛋白質である。
なお、その遺伝子又は蛋白質と実質的に同等の生物学的活性を有するバリアントも本発明に用いることができる。このＦＲ−βモノクローナル抗体産生クローン細胞のＨ鎖の遺伝子、及びＬ鎖の遺伝子をキメラ化することにより得られた、ヒト化したＦＲ−βモノクローナル抗体も本発明に用いることができる。
本発明の有効成分にはＦＲ−βモノクローナル抗体産生クローン細胞のＨ鎖の遺伝子と、Ｌ鎖の遺伝子とを用いたリコンビナントＦＲ−β抗体イムノトキシンも含まれる。
クローン３６（ｃｌｏｎｅ３６）細胞のＨ鎖の遺伝子の塩基配列は、ＷＯ２００５／１０３２５０（特許文献２）の配列表の配列番号１に記載されており、クローン９４ｂ（ｃｌｏｎｅ９４ｂ）細胞のＨ鎖の遺伝子の塩基配列は、ＷＯ２００５／１０３２５０（特許文献２）を配列表の配列番号３に記載されている。
前記の塩基配列の一部、例えば、２０個以下、好ましくは１０個以下、更に好ましくは５個以下の塩基が欠失、置換若しくは付加された遺伝子、前記の塩基配列と９０％以上、好ましくは９５％以上、更に好ましくは９９％以上の相同性を有する遺伝子、前記の塩基配列の遺伝子とは、ストリンジェントな条件下でハイブリッドを形成する遺伝子も、ＦＲ−βモノクローナル抗体産生クローン細胞のＨ鎖又はＬ鎖と実質的に同等の生物学的活性を有する蛋白質をコードする限り、本発明に用いることができる。
遺伝子組み換え技術によれば、基本となるＤＮＡの特定の部位に、当該ＤＮＡの基本的な特性を変化させることなく、あるいはその特性を改善するように、人為的に変異を起こすことができる。
また前記の塩基配列によりコードされるアミノ酸配列の一部、例えば、２０個以下、好ましくは１０個以下、更に好ましくは５個以下のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加された蛋白質、前記の塩基配列によりコードされるアミノ酸配列と９５％以上、好ましくは９７％以上、更に好ましくは９９％以上の相同性を有する蛋白質も、ＦＲ−βモノクローナル抗体産生クローン細胞のＨ鎖又はＬ鎖と実質的に同等の生物学的活性を有する限り、本発明に用いることができる。
本明細書において「実質的に同等」とは、蛋白質の活性、例えばＦＲ−β抗原に対して特異的に結合するなどの生理学的な活性、生物学的な活性が実質的に同一であることを意味する。その用語の意味の中には実質的に同質の活性を有する場合を含んでもよく、その実質的に同質の活性とは、例えばＦＲ−β抗原に対して特異的に結合するなど、それらの活性の性質が同質であることを意味し、例えば生理的に、薬理的に、あるいは生物学的に同質であることを意味する。なお活性の量的な程度も同一であることが好ましいが、定量的な要素については異なっていてもよい。
本明細書において「ストリンジェント」なハイブリダイゼーションの条件については当業者が適宜選択をすることができるが、具体的には、一例として、以下の操作によってハイブリダイゼーションを行うことができる。試験すべきＤＮＡ又はＲＮＡ分子を転写した膜と標識したプローブを、適当なハイブリダイゼーションバッファー中でハイブリダイズさせる。ハイブリダイゼーションバッファーの組成は、例えば、５×ＳＳＣ、０．１重量％Ｎ−ラウロイルサルコシン、０．０２重量％のＳＤＳ、２重量％の核酸ハイブリダイゼーション用ブロッキング試薬及び５０％ホルムアミドからなる。核酸ハイブリダイゼーション用ブロッキング試薬としては、一例として、０．１Ｍマレイン酸と０．１５Ｍ塩化ナトリウムからなる緩衝液（ｐＨ７．５）に市販の核酸ハイブリダイゼーション用ブロッキング試薬を１０％になるように溶解したものを使用することができる。２０×ＳＳＣは、３Ｍ塩化ナトリウム、０．３Ｍクエン酸溶液であり、ＳＳＣは、より好ましくは、３〜６×ＳＳＣ、更に好ましくは４〜５×ＳＳＣの濃度で使用する。
ハイブリダイゼーションの温度は、４０〜８０℃、より好ましくは５０〜７０℃、更に好ましくは５５〜６５℃の範囲であり、数時間から一晩のインキュベーションを行った後、洗浄バッファーで洗浄する。洗浄の温度は、好ましくは室温、より好ましくはハイブリダイゼーション時の温度である。洗浄バッファーの組成は６×ＳＳＣ＋０．１重量％ＳＤＳ溶液、より好ましくは４×ＳＳＣ＋０．１重量％ＳＤＳ溶液、更に好ましくは２×ＳＳＣ＋０．１重量％ＳＤＳ溶液、更に好ましくは１×ＳＳＣ＋０．１重量％ＳＤＳ溶液、最も好ましくは０．１×ＳＳＣ＋０．１重量％ＳＤＳ溶液である。このような洗浄バッファーで膜を洗浄し、プローブがハイブリダイズしたＤＮＡ分子又はＲＮＡ分子をプローブに用いた標識を利用して識別することができる。
以下、本発明の好ましい実施態様の一例を示す。
［ＦＲ−β発現細胞の作成］
以下の方法にてＦＲ−β発現Ｂ３００−１９細胞を作成する。先ず、ｐＥＦ−ＢＯＳベクターにＦＲ−β遺伝子を組み込む。ベクターはｐＥＦ−ＢＯＳベクターに限らず、哺乳類の発現ベクターのいずれでもよい。次に、ＦＲ−β遺伝子をリポフェクタミン法にてマウスＢ３００−１９細胞に遺伝子導入する。導入法はエレクトロポレーション法でもよい。また、細胞株はマウスＢａｌｂ／Ｃ由来の細胞株であればいずれでもよい。
この細胞を免疫することにより、細胞融合法にてＦＲ−β抗原に高親和性で低分子量のＩｇＭ型又はＩｇＧ型のＦＲ−βモノクローナル抗体を作成する。抗体とトキシン（毒素分子）とは、各種周知の化学的方法のいずれか、例えばＳＰＤＰ、カルボジイミド、グルタルアルデヒド等の、異なる２価の結合性基を有するクロスリンカーの使用等によって、互いに化学的に結合される。各種イムノトキシンの製造は、当該分野において周知であり、例えば、ＭｏｎｏｃｌｏｎａｌＡｎｔｉｂｏｄｙ−ＴｏｘｉｎＣｏｎｊｕｇａｔｅｓ：ＡｉｍｉｎｇｔｈｅＭａｇｉｃＢｕｌｌｅｔ，Ｔｈｏｒｐｅｅｔａｌ．ＭｏｎｏｃｌｏｎａｌＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓｉｎＣｌｉｎｉｃａｌＭｅｄｉｃｉｎｅ，ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，ｐｐ．１６８−１９０（１９８２）及びＷａｌｄｍａｎ，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２５２：１１６５７（１９９１）に記載されている。これらの二つの文献は、引用により本明細書の一部とされる。
［ＦＲ−β抗体イムノトキシンの作成］
この抗体とトキシン、好ましくはシュードモナス・エクソトキシン（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓｅｘｏｔｏｘｉｎ；ＰＥ）をＨａａｓａｎらの方法に準じ（Ｈａａｓａｎｅｔａｌ．Ａｎｔｉ−ｔｕｍｏｒａｃｔｉｖｉｔｙｏｆＫ１−ＬｙｓＰＥ３８ＱＱＲ，ａｎｉｍｍｕｎｏｔｏｘｉｎｔａｒｇｅｔｉｎｇｍｅｓｏｔｈｅｌｉｎ，ａｃｅｌｌ−ｓｕｒｆａｃｅａｎｔｉｇｅｎｏｖｅｒｅｘｐｒｅｓｓｅｄｉｎｏｖａｒｉａｎｃａｎｃｅｒａｎｄｍａｌｉｇｎａｎｔｍｅｓｏｔｈｅｌｉｏｍａ．ＪＩｍｍｕｎｏｔｈｅｒ．２０００Ｊ；２３（４）：４７３−９）、サクシニミヂルトランス−４−マレイミヂルメチルシクロヘキサン１−カルボキシレート（Ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌｔｒａｎｓ−４−（ｍａｌｅｉｍｉｄｙｌｍｅｔｈｙｌ）ｃｙｃｌｏｈｅｘａｎｅ１−ｃａｒｂｏｘｙｌａｔｅ）（ＳＭＣＣ）にて結合させ、イムノトキシンを作成する。
抗体は、一重鎖抗体−トキシン融合タンパク質の作製工程と同様にして組換え手法によりトキシンに融合されることもできる。リガンドをコードする遺伝子とトキシンとを周知のクローニング法を用いてｃＤＮＡ中にクローニングし、これらは小さいペプチドリンカーによって直接あるいは離れた状態で結合される。例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋｅｔａｌ，ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙ，（１９８９）が参照される。
［抗ＦＲ−βイムノトキシンの作用効果］
抗ＦＲ−βイムノトキシンは関節リウマチと同様マクロファージによって軟骨、骨破壊がおこると考えられている変形性関節症の軟骨破壊、脳腫瘍、悪性黒色腫、膵臓癌、乳癌、前立腺癌、骨髄腫、大腸癌、腎癌，胃癌、子宮癌、甲状腺癌の骨転移の際の骨破壊の抑制にも有効である。
［ＦＲ−β抗体イムノトキシンの投与量、投与方法］
関節リウマチ、変形性関節症等における軟骨、骨破壊、悪性腫瘍の骨転移の際の骨破壊を抑制するのに有効である濃度で投与される。この目的を達成するために、イムノトキシンは、当該技術分野で知られている許容される種々の賦形剤を用いて処方される。典型的には、イムノトキシンは、注射によって、静脈内又は関節腔内投与される。本発明組成物は、医薬的に許容される非経口賦形剤と混合して、液剤、懸濁剤又は乳剤などの単位投与注射用形態で処方される。かかる賦形剤は、本質的に、無毒性であり、非治療的である。かかる賦形剤の例は、生理食塩水、リンゲル溶液、デキストロース溶液、及びハンクス溶液である。固定油及びオレイン酸エチルなどの非水性賦形剤を用いてもよい。好ましい賦形剤は、生理食塩水中５％のデキストロースである。賦形剤は、バッファー及び保存剤を含む、等張性及び化学的安定性を増強する物質などの少量の添加剤を含有してよい。
投与量及び投与形態は、個体に左右されるであろう。一般に、該組成物は、イムノトキシンが、最も好ましくは０．１〜２μｇ／ｋｇの用量で投与されるように投与される。好ましくは、ボーラス投薬として投与される。連続輸液を用いてもよい。特定の場合によると、必要とされるイムノトキシンの「治療有効量」は、かかる処置を必要とする患者を治療するのに又は少なくとも該当疾患及びその合併症を一部休止させのに充分な量であるとして決定されるべきである。かかる使用のために有効な量は、疾患の重篤度及び患者の全身健康状態に左右されるであろう。単投与又は多重投与は、患者によって必要とされ耐えられる投与量及び投与回数に依存して要求される。
投与形態は、変形性関節症、関節リウマチにおいては、好ましくは関節局所投与であり、悪性腫瘍の骨転移においては全身投与又は局所投与である。
本明細書は、本願の優先権の基礎である特願２０１１−１８０８９９の明細書及び／又は図面に記載される内容を包含する。

（実施例１）マウス抗ラットＦＲ−βモノクローナル抗体の作製
［抗原であるＦＲ−β発現細胞の調製］
Ｌｅｗｉｓラット肝臓からトリゾール（Ｔｒｉｚｏｌ）（ＧｉｂｃｏＢＲＬ）、ｃＤＮＡｓｙｎｔｈｅｓｉｓｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にて添付説明書に従って全ＲＮＡを抽出後、ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔｐｌａｓｍｉｄＳｙｓｔｅｍ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にて添付説明書に従ってｃＤＮＡを合成した。Ｌｅｗｉｓラット肝臓ｃＤＮＡをＢｉｏｎｅｅｒＰＣＲｐｒｅｍｉｘ（Ｂｉｏｎｅｅｒ）に加え、１０ピコモル量に調整したセンスプライマー（ラット肝臓：ｔｃｔａｇａａａｇａｃａｔｇｇｃｃｔｇｇａａａｃａｇ配列番号１）及びアンチセンスプライマー（ｃｃｃａａｃａｔｇｇａｔｃａｇｇａａｃｔ配列番号２）を加え、９４℃２０秒、５８℃３０秒、７２℃６０秒で３０サイクルＰＣＲを行い、その後７２℃５分で反応させることにより、ラットＦＲ−βを増幅した。増幅したＦＲ−β遺伝子のＰＣＲ産物をｐＴＡＣ−１（バイオダイナミックラボラトリー社）にライゲーションを行った。すなわちＰＣＲ産物２．５μｌにＮａＣｌ溶液を１μｌ、滅菌蒸留水１．５μｌ、ベクタープラスミド（ＰＣＲ２．１−ＴＯＰＯ）１μｌを加えて室温で５分間インキュベートし、その内の２μｌを大腸菌（ＴＯＰ１０Ｆ’）に加えて氷中で３０分反応後、４２℃３０秒の熱処理をし、氷中で２分間静置し、２５０μｌのＳＯＣ培地を加えた後、３７℃、１時間シェーカー内で培養した。培養終了後、ＬＢ培地に捲き、３７℃で一晩培養した。
大腸菌培養のため、プレート上より採取した白いコロニーをアンピシリン（０．１ｍｇ／ｍｌを含むＬＢ液体培地に加えて３７℃一晩培養した。プラスミドの精製はＱｉａｇｅｎプラスミド精製キット（Ｑｉａｇｅｎ）にて行った。組み込まれたＦＲ−β遺伝子は、制限酵素ＥｃｏＲＩによる処理後、アガロース電気泳動に展開し、約０．８ｋｂ（７８２ｂｐ）のＦＲ−β遺伝子産物を確認後、その部位を切り出し、遺伝子産物の抽出をＱｕｉａｇｅｎＰＣＲｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎｋｉｔ（Ｑｕｉａｇｅｎ）にて精製した。次にあらかじめＥｃｏＲＩ処理を行った哺乳細胞発現用ベクターｐＥＦ−ＢＯＳ（Ｍｉｚｕｓｈｉｍａｅｔａｌ．ｐＥＦ−ＢＯＳ，ａｐｏｗｅｒｆｕｌｍａｍｍａｌｉａｎｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｖｅｃｔｏｒ．ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄＲｅｓ．１９９０；１８（１７）：５３２２）と混和し、Ｔ４ｌｉｇａｓｅ（Ｒｏｃｈｅ）を用いてライゲーションを行った。ライゲーション産物の大腸菌（ＴＯＰ１０Ｆ’）への遺伝子導入ならびに、ＦＲ−β遺伝子の確認は前記と同様の手法で行った。
ｐＥＦ−ＢＯＳに組み込まれたＦＲ−β遺伝子を確認後、マウスＢ３００−１９細胞にそれぞれ遺伝子導入を行った。すなわち、あらかじめ１ｘ１０^５個に調整した各細胞に、２０μｌのリポフェクタミン（ＧｉｂｃｏＢＲＬ）と混和したＦＲ−βベクター１μｇを加えて遺伝子導入を行った。遺伝子導入されたＢ３００−１９マウス細胞及びラットＲＢＬ２Ｈ３細胞は抗生物質Ｇ４１８耐性を獲得するため、１ｍｇ／ｍｌの濃度のＧ４１８を含む培地にて遺伝子導入された細胞を選択培養した。遺伝子導入された細胞のＦＲ−β遺伝子導入の確認はＰＣＲ法にて行った。すなわち、１ｘ１０^７個に調整した各細胞をｃＤＮＡｓｙｎｔｈｅｓｉｓｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にてｃＤＮＡを合成し、１０ピコモル量に調整したセンスプライマー（ラット肝臓：ｔｃｔａｇａａａｇａｃａｔｇｇｃｃｔｇｇａａａｃａｇ配列番号１）及びアンチセンスプライマー（ｃｃｃａａｃａｔｇｇａｔｃａｇｇａａｃｔ配列番号２）に加え、９４℃２０秒、５８℃３０秒、７２℃６０秒で３０サイクルＰＣＲを行い、その後７２℃５分で反応させることにより、ラットＦＲ−βを増幅した。増幅後アガロース電気泳動を行い、ＦＲ−βが示すバンド０．８ｋｂを確認した。
［マウス抗ラットＦＲ−βモノクローナル抗体の作製］
ラットＦＲ−β発現マウスＢ３００−１９細胞を１ｘ１０^７個に調整し、フロインド完全アジュバンドと混合し、Ｂａｌｂ／Ｃマウスの尾部に３ヵ所、腹腔内に免疫した。この免疫を２〜４回繰り返した。
モノクローナル抗体の作成はＫｏｈｌｅｒの方法（Ｋｏｈｌｅｒ＆Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ（１９７５）２５６：４９５−９６）に従って行った。すなわち、脾臓あるいは腸骨リンパ節を取りだし、単一細胞に解離させた。解離した細胞を骨髄腫由来の細胞（ＮＳ−１）と細胞融合させてハイブリドーマを作製し、ＨＡＴ選択培地にて培養し、培養上清中に分泌された抗体を、先のラットＦＲ−β発現細胞との反応性で選別を行った。
得られたハイブリドーマのクローン化は、９６穴プレートの各穴あたり１細胞となるように調整した限界希釈培養にて行った。クローン化細胞の選別は、ＦＲ−β発現細胞との反応性で行った。マウスモノクローナル抗体のアイソタイプは、マウス免疫グロブリンアイソタイピングＥＬＩＳＡキット（Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）を用いて決定した。その結果、マウス抗ラットＦＲ−βモノクローナル抗体はＩｇＭタイプのクローン４Ａ６７が得られた。これら各抗体の抗原に対する反応性はフローサイトメトリーにて解析した。フローサイトメトリーの結果を図１に示す。
図１の上段は、１ｘ１０^５に調整したＢ３００−１９細胞（左）及びＦＲ−β発現Ｂ３００−１９（右）に、４Ａ６７抗体、あるいは陰性対照抗体を反応させ、更にＡＰＣでラベルした抗マウスＩｇＭ抗体で更に反応させた。反応終了後の染色性をフローサイトメーターで測定した。下段は、Ｌｅｗｉｓラットに３％チオグリコレートを腹腔内投与し、４日後に腹腔マクロファージを採取した。１ｘ１０^５に調整したマクロファージに陰性対照抗体あるいは４Ａ６７抗体を添加して前記と同じ反応を行った後、更にフィコエリスリンでラベルした抗ＣＤ１１ｂ／ｃ抗体あるいはフィコエリスリンでラベルした陰性対照抗体を添加して反応させた。反応後の染色性をフローサイトメーターで測定した。左は陰性対照群を、右は４Ａ６７と抗ＣＤ１１ｂ／ｃによる染色性を示す。
得られた抗体４Ａ６７はラットＦＲ−β発現Ｂ３００−１９及びチオグリコレートで誘発させた腹腔マクロファージに反応することが明らかとなった。
［マウス抗ラットＦＲ−βモノクローナル抗体の重鎖遺伝子可変領域（ＶＨ）及び軽鎖遺伝子可変領域（ＶＬ）遺伝子の決定］
ハイブリドーマクローン４Ａ６７を１ｘ１０^７個にそれぞれ調整し、ｃＤＮＡｓｙｎｔｈｅｓｉｓｋｉｔ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にてｃＤＮＡを合成した４Ａ６７はＩｇ−ＰｒｉｍｅＫｉｔを用いてＶＨ及びＶＬの遺伝子をＰＣＲにて決定した。ＰＣＲ条件は添付の説明書に従って行った。すなわち、９４℃６０秒、５０℃６０秒、７２℃１２０秒で３０サイクルＰＣＲを行い、その後７２℃５分で反応させ、ＶＨ及びＶＬの遺伝子を増幅した。増幅したＶＨ及びＶＬのＰＣＲ産物をプラスミドＰＣＲ２．１−ＴＯＰＯ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）にライゲーションし、大腸菌（ＴＯＰ１０Ｆ’）に遺伝子導入した。遺伝子導入した大腸菌よりプラスミドを精製し、４Ａ６７のＶＨ及びＶＬの塩基配列を決定した。塩基配列はＢｉｇＤｙｅＴｅｒｍｉｎａｏｒＶ３．１ｃｙｃｌｅｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇｋｉｔ（ＡＢＩ）を用いてＰＣＲを行い、ＰＣＲ産物をＡＢＩ３１０ＤＮＡｓｅｑｕｅｎｃｅｒにて解析した。
図２に、マウス抗ラットＦＲ−β抗体４Ａ６７のＶＬ遺伝子及び推定アミノ酸配列を示す。システインに変異させたＪＫ部分の３番目のアミノ酸を囲み線で示す。図３に、マウス抗ラットＦＲ−β抗体４Ａ６７のＶＨ遺伝子及び推定アミノ酸配列を示す。変異させたＦＷＲ２部分の９番目のアミノ酸を囲み線で示す。
図２及び３において、ＦＷＲはフレームワーク領域、ＣＤＲは超可変領域（相補性決定領域）、ＪＫはジャンクション領域を表す。
（実施例２）リコンビナントイムノトキシンの作製
［免疫グロブリン重鎖遺伝子可変領域（ＶＨ）にシステインの変異を導入］
マウス抗ラットＦＲ−βモノクローナル抗体４Ａ６７の免疫グロブリン重鎖遺伝子可変領域（ＶＨ）の６３番目のアミノ酸グリシン（塩基配列ｇｇｃ）をシステイン（塩基配列ｔｇｔ）に変異させるようにデザインしたプライマーを作製し（センス：ｇｔｇａａｇｃａｇｇｃｔｃｃａｇｇａａａｇＴＧＴｔｔａａａｇｔｇｇａｔｇｇｇｃｔｇｇａｔａ配列番号３；アンチセンス：ｔａｔｃｃａｇｃｃｃａｔｃｃａｃｔｔｔａａＡＣＡｃｔｔｔｃｃｔｇｇａｇｃｃｔｇｃｔｔｃａｃ配列番号４）、Ｑｕｉｃｋｃｈａｎｇｅｓｉｔｅ−ｄｉｒｅｃｔｅｄｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓｋｉｔ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）を用いて実施例１で得た４Ａ６７のＶＨを含むプラスミドｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯ４Ａ６７ＶＨに変異誘発処理を行った。このＰＣＲ反応は、反応液を９５℃３０秒、５５℃６０秒、６８℃４分のサイクルを１２回連続して行った。
次に、反応後のＤＮＡを大腸菌ＸＬ１−Ｂｌｕｅに遺伝子導入し、０．１ｍｇ／ｍｌのアンピシリンを含むＬＢ培地で選択培養した。選択した形質転換体のプラスミドをＱＩＡｐｒｅｐｓｐｉｎＭｉｎｉｐｒｅｐＫＩＴ（Ｑｉａｇｅｎ）により精製した。更に塩基配列をＢｉｇＤｙｅＴｅｒｍｉｎａｔｏｒｖ３．１ｃｙｃｌｅｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇｋｉｔ（ＡＢＩ）とＡＢＩ３１０シーケンサーにて決定し、システイン（塩基配列ｔｇｔ）に変異したことを確認した。
［ｐＲＳＥＴＰＥ３８ベクターに変異を導入したＶＨを挿入］
次に、ＰＥ３８遺伝子を含むｐＲＳＥＴベクターｐＲＳＥＴＰＥ３８に４Ａ６７ＶＨの変異を導入したＶＨの挿入を以下の方法にて行った。
変異を導入した４Ａ６７の５’末端部と３’末端部のアニーリングプライマーとしてＧＧＡＴＣＣｃａｇａｔｃｃａｇｔｔｇｇｔｇｃａｇｔｃｔｇｇａ配列番号５とｔｃｃｇｇＡＡＧＣＴＴｔｔｇａｇｇａｇａｃｇｇｔｇａｃｔｇａｇｇｔｔｃｃ配列番号６をそれぞれデザインした。アニーリングプライマーにはそれぞれ制限酵素であるＢａｍＨＩが、もう片方のアニーリングプライマーにはＨｉｎｄＩＩＩ部位が挿入されており、この部位でのクローニングにより、ＶＨとＰＥ遺伝子が結合した融合タンパク質の発現が可能である。
これらのプライマーの組み合わせとｐｆｕＤＮＡｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）を使って変異を導入したｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯ−４Ａ６７ＶＨプラスミドのＰＣＲを行った。この反応は９４℃２０秒、５５℃３０秒、７２℃６０秒で３０サイクルＰＣＲを行い、その後７２℃５分で反応させた。次に、ＰＣＲ産物を精製し、精製産物に制限酵素ＢａｍＨＩ（ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＢｉｏｌａｂｓ）とＨｉｎｄＩＩＩ（ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＢｉｏｌａｂｓ）を加えて反応後、電気泳動に展開し、ＱＩＡｑｕｉｃｋｇｅｌｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてゲルから目的の大きさのＤＮＡを回収した。回収したＤＮＡに、制限酵素処理した変異導入ＶＨと同様の制限酵素で処理したｐＲＳＥＴＰＥ３８を添加し、更にＬｉｇａｔｉｏｎＨｉｇｈ（Ｔｏｙｏｂｏ）を用いてＶＨとｐＲＳＥＴＰＥ３８のライゲーション反応を行った。ライゲーション反応終了後、大腸菌ＴＯＰ１０Ｆ’（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）に遺伝子導入し、０．１ｍｇ／ｍｌのアンピシリンを含むＬＢ培地にて形質転換体を選択した。選択した形質転換体のプラスミドｐＲＳＥＴ−ＶＨＰＥをＱＩＡｐｒｅｐｓｐｉｎＭｉｎｉｐｒｅｐＫＩＴ（Ｑｉａｇｅｎ）により精製した。更に塩基配列をＢｉｇＤｙｅＴｅｒｍｉｎａｔｏｒｖ３．１ｃｙｃｌｅｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇｋｉｔ（ＡＢＩ）とＡＢＩ３１０シーケンサーにて決定し、変異導入ＶＨの塩基配列がｐＲＳＥＴベクターのＰＥ３８塩基配列と連結していることを確認した。
［免疫グロブリン軽鎖遺伝子可変領域にシステイン変異を導入］
マウス抗ラットＦＲ−βモノクローナル４Ａ６７の免疫グロブリン軽鎖遺伝子可変領域（ＶＬ）の１２５番目のアミノ酸をシステイン（塩基配列ｔｇｔ）に変異させるようにデザインしたプライマーを作製した。
センス：ｔａａｇａａｇｇａｇａｔａｔａｃａｔａｔｇＣＡＡＡＴＴＧＴＴＣＴＣＡＣＣＣＡＧＴＣＴ配列番号７（このプライマーは制限酵素ＮｄｅＩ切断可能な塩基ｃａｔａｔｇを含むため、この部位でクローニングすることにより、ａｔｇを開始コドンとしたタンパク質の発現が可能である）
アンチセンス：ｇｃｔｔｔｇｔｔａｇｃａｇｃｃｇａａｔｔｃｃｔａＴＴＴＴＡＴＴＴＣＣＡＡＣＴＴＴＧＴＣＣＣＡＣＡＧＣＣＧＡＡＣＧＴ配列番号８（このプライマーは１２５番目のアミノ酸をシステイン（ｔｇｔ）に変異させ、終始コドンｔａｇに続いて制限酵素ＥｃｏＲＩ切断可能な塩基ｇａａｔｔｃが来るようにデザインしてある）
これらのプライマーの組み合わせとｐｆｕＤＮＡｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）を使ってｐＣＲ２．１−ＴＯＰＯ−４Ａ６７ＶＬプラスミドのＰＣＲを行った。この反応は９４℃２０秒、５５℃３０秒、７２℃６０秒で３０サイクルＰＣＲを行い、その後７２℃５分で反応させた。次に、ＰＣＲ産物を精製し、精製産物に制限酵素ＮｄｅＩ（ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＢｉｏｌａｂｓ）とＥｃｏＲＩ（ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＢｉｏｌａｂｓ）を加えて反応後、電気泳動に展開し、ＱＩＡｑｕｉｃｋｇｅｌｅｘｔｒａｃｔｉｏｎｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いてゲルから目的の大きさのＤＮＡを回収した。回収したＤＮＡに、制限酵素処理した変異導入ＶＬと同様の制限酵素で処理したｐＲＳＥＴＰＥ３８を添加し、更にＬｉｇａｔｉｏｎＨｉｇｈ（Ｔｏｙｏｂｏ）を用いてＶＨとｐＲＳＥＴＰＥ３８のライゲーション反応を行った。ライゲーション反応終了後、大腸菌ＴＯＰ１０Ｆ’（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）に遺伝子導入し、０．１ｍｇ／ｍｌのアンピシリンを含むＬＢ培地にて形質転換体を選択した。選択した形質転換体のプラスミドｐＲＳＥＴ−ＶＬ４Ａ６７をＱＩＡｐｒｅｐｓｐｉｎＭｉｎｉｐｒｅｐＫＩＴ（Ｑｉａｇｅｎ）により精製した。更に塩基配列をＢｉｇＤｙｅＴｅｒｍｉｎａｔｏｒｖ３．１ｃｙｃｌｅｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇｋｉｔ（ＡＢＩ）とＡＢＩ３１０シーケンサーにて決定し、変異導入ＶＬのアミノ酸がシステインに変異していることや、終始コドンｔａｇが配置されていることを確認した。
［リコンビナントタンパク質封入体の調製］
前記の変異導入ＶＨを組み込んだプラスミドｐＲＳＥＴ−４Ａ６７ＶＨＰＥ、変異導入ＶＬを組み込んだプラスミドｐＲＳＥＴ−ＶＬ４Ａ６７を５０ｎｇ調製し、タンパク質発現用大腸菌ＢＬ２１（ＤＥ３）に遺伝子導入した。遺伝子が導入された大腸菌の選抜は０．１ｍｇ／ｍｌのアンピシリンを含むＬＢ培地にて３７℃１５〜１８時間の培養で行った。
選択終了後の大腸菌は１０００ｍｌのスーパーブロス培地で３７℃の条件で培養し、可視吸光度６００ｎｍで１．０−１．５に到達するまで培養した。培養後、ＩＰＴＧ（ｉｓｏｐｒｏｐｙ１−ｂｅｔａ−Ｄ−ｔｈｉｏ−ｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）を終濃度１ｍＭになるように培地に添加し、更に９０分間３７℃で培養した。培養終了後、遠心分離にて大腸菌を回収後、５０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ７．４、２０ｍＭＥＤＴＡを含む）を用いて２００ｍｌとなるまで懸濁した。懸濁終了後、卵白リゾチームを最終濃度０．２ｍｇ／ｍｌとなるように加え、室温で１時間反応させて大腸菌の破壊を行った。破壊後、２０，０００ｘｇで遠心分離を行い、沈殿物を回収した。沈殿物は更に５０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ７．４、２．５％のＴｒｉｔｏｎＸ−１００、０．５ＭＮａＣｌ、２０ｍＭＥＤＴＡを含む）で２００ｍｌとなるまで懸濁し、卵白リゾチームを最終濃度０．２ｍｇ／ｍｌとなるように加え、室温で１時間反応させた。反応終了後、２０，０００ｘｇで遠心分離を行い、沈殿物を回収した。沈殿物は更に５０ｍＭトリス緩衝液（ｐＨ７．４、２．５％のＴｒｉｔｏｎＸ−１００、０．５ＭＮａＣｌ、２０ｍＭＥＤＴＡを含む）で２００ｍｌとなるまで懸濁し、十分混和させた後、２０，０００ｘｇで遠心分離を行い、沈殿物を回収した。この操作を５回繰り返した後の沈殿物をリコンビナントイムノトキシン封入体とし、更に０．１Ｍトリス緩衝液（ｐＨ８．０、６Ｍグアニジン塩酸塩、１ｍＭＥＤＴＡを含む）で溶解させ、最終濃度１０ｍｇ／ｍｌとなるように調節した。
［リコンビナント二重鎖Ｆｖ抗ＦＲ−βイムノトキシンの作製］
前記で調製した４Ａ６７−ＶＨＰＥと４Ａ６７−ＶＬを混和させ、リコンビナント二重鎖Ｆｖ抗ＦＲ−βイムノトキシンを作製した。
まず、０．５ｍｌのＶＨＰＥ、０．２５ｍｌのＶＬを混和し、ジチオトレイトール（ＤＴＴ）を最終濃度１０ｍｇ／ｍｌとなるように加え、室温で４時間の還元処理を行った。処理後、７５ｍｌの０．１Ｍトリス緩衝液（ｐＨ８．０、０．５Ｍアルギニン、０．９ｍＭ酸化型グルタチオン、２ｍＭＥＤＴＡを含む）に溶解させた。この溶液を１０℃で４０時間放置することによって、ＶＨとＶＬを結合させた。結合終了後、分子量１０，０００カットの遠心濃縮器（Ｃｅｎｔｒｉｃｏｎ１０、Ａｍｉｃｏｎ）で５ｍｌまで濃縮し、更に５０ｍｌのトリス緩衝液（ｐＨ７．４、０．１Ｍ尿素、１ｍＭＥＤＴＡを含む）で希釈した。この希釈液をリコンビナントイムノトキシン精製の出発物質とした。
次に、トリス緩衝液（ｐＨ７．４、１ｍＭＥＤＴＡを含む）で平衡化したイオン交換カラムＨｉ−ＴｒａｐＱ（ＧＥ）に、３０ｍｌ／時間の流速で、前記出発物質を吸着させた後、トリス緩衝液（ｐＨ７．４、１ｍＭＥＤＴＡを含む）で洗浄した。洗浄後、吸着したリコンビナントタイプイムノトキシンの溶出をトリス緩衝液（ｐＨ７．４、０．３ＭＮａＣｌ、１ｍＭＥＤＴＡを含む）で行った。溶出サンプルはトリス緩衝液（ｐＨ７．４、１ｍＭＥＤＴＡを含む）で透析した後、イオン交換カラムＰＯＲＯＳＨＱ（ＰＯＲＯＳ）で更に精製した。すなわち、透析した精製物質を１０ｍｌ／分の流速で吸着させ、トリス緩衝液（ｐＨ７．４、１ｍＭＥＤＴＡを含む）で洗浄後、前記緩衝液に０Ｍから１．０ＭのＮａＣｌ勾配を設定することにより、リコンビナントタイプイムノトキシンの溶出を行った。精製リコンビナントタイプイムノトキシンの最終調製はＴＳＫ３００ＳＷ（Ｔｏｓｏｈ）ゲル濾過クロマトグラフィーにて行った。まず、７５％の消毒用エタノールで４８時間洗浄することによってＴＳＫ３００ＳＷカラム中のエンドトキシン除去を行った。次に日本薬局方注射用蒸留水で洗浄し、その後日本薬局方生理食塩水でＴＳＫ３００ＳＷカラムの平衡化を行った。平衡化終了後、リコンビナントタイプイムノトキシンを投与し、流速０．２５ｍｌ／分でカラムからの溶出液を採取した。採取後、０．２２μｍの濾過滅菌機で処理し、純度をＳＤＳ−ＰＡＧＥにて確認後、−８０℃で保存した。
［ＳＤＳ−ＰＡＧＥによる純度検定］
ＳＤＳ−ＰＡＧＥ（ドデシル硫酸ナトリウムを含むポリアクリルアミド電気泳動）は０．１％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）を含む１２％ポリアクリルアミドの平板ゲルを用い、移動相には終濃度０．１％のＳＤＳ、１３０ｍＭグリシン、２５ｍＭトリスを含む水溶液を用いた。各サンプルは終濃度０．１％のＳＤＳを含む１００ｍＭトリス緩衝液ｐＨ６．５で調製し、５分間の煮沸処理を行った。煮沸終了後、平板ゲルにサンプルを投与し、３０ｍＡの定電流で電気泳動を展開させた。展開後、０．０５％のクマシーブリリアントブルーＲ溶液（ナカライテスク）でリコンビナントタイプイムノトキシンの染色を行った。
［イムノトキシンにおける細胞増殖抑制の測定］
ラットＦＲ−β発現Ｂ３００−１９細胞を２４ウェルの細胞培養プレートに１ウェルあたり５×１０^４個となるように添加し、更に終濃度０−１μｇ／ｍｌとなるようにイムノトキシン及びＶＨＰＥを加え、３７℃、ＣＯ_２インキュベーターで培養した。培養２４、４８、７２時間後における細胞増殖をＣｅｌｌＣｏｕｎｔｉｎｇＫｉｔ−８（細胞毒性測定試薬、Ｄｏｊｉｎｄｏ社）を用いて測定した。測定方法は添付マニュアルに従い、マイクロプレートリーダー（Ｔｈｅｒｍｏ社）にて測定した。
図４にマウス抗ラットＦＲ−βイムノトキシンのラットＦＲ−β発現Ｂ３００−１９細胞に対する細胞増殖抑制効果（アポトーシス誘導能）を示す。
図４において、縦軸はアポトーシス誘導能を、横軸は各培養時間におけるマウス抗ラットＦＲβイムノトキシン（▲，２４時間；■，４８時間；●，７２時間）及びＶＨＰＥ（×，７２時間）の濃度を示す。データは５回の独立した実験結果の平均値を示し、エラーバーは標準誤差を示す。＊＊：Ｐ＜０．０１
イムノトキシンは培養時間及び添加濃度依存的にラットＦＲ−β発現Ｂ３００−１９細胞の増殖を抑制した。一方、対照として用いたＶＨＰＥでは同条件においても顕著な増殖抑制を示さなかった。このイムノトキシンが示した５０％の細胞抑制に必要とする濃度（ＩＣ５０）は２４時間４００ｎｇ／ｍｌであり、４８時間２００ｎｇ／ｍｌであり、７２時間５０ｎｇ／ｍｌであった。
（実施例３）リコンビナントイムノトキシンによるメチル化ウシ血清アルブミン誘発ラット関節炎の軟骨・骨破壊抑制効果
［メチル化ウシ血清アルブミン（メチル化ＢＳＡ）誘発アジュバンドラット関節炎モデルの作製とイムノトキシンの投与］
メチル化ＢＳＡ誘発アジュバンドラット関節炎モデルはＮｉｃｏｌａｕＢｅｃｋｍａｎｎの方法（ＮｉｃｏｌａｕＢｅｃｋｍａｎｎ、ＭａｇｎｅｔｉｃＲｅｓｏｎａｎｃｅｉｎＭｅｄｉｃｉｎｅ（２００３）４９：１０４７−１０５５）に従って行った。この関節炎においては、軟骨・骨破壊が生じることが知られている。まず５０μｌに調整したメチル化ＢＳＡ（５ｍｇ／ｍｌ、５０％フロインド完全アジュバンドを含む）をＬｅｗｉｓラット（♀、６−９週齢）の腹部皮下に投与した。更に投与７日後に同操作を行った。
１回目の皮下投与から１４日後に５０μｌに調整したメチル化ＢＳＡ（５ｍｇ／ｍｌＰＢＳ）をラットの関節腔内に投与し、関節炎を誘発させた。メチル化ＢＳＡ投与１日後に関節の腫脹を確認後、イムノトキシンと陰性対照のＶＨＰＥの関節腔内投与を行った。まず、無作為にＶＨＰＥ群（８匹）と、イムノトキシン群（２４匹）を選択し、５０μｌに調整した５０μｇのＶＨＰＥ、あるいは５０μｌに調整したイムノトキシン（２，１０，５０μｇ）を左の関節内に投与した。対象として、５０μｌに調整した生理的食塩水を右の関節内に投与した。同投与は、メチル化ＢＳＡの関節腔内投与後３、５、７日目についても行った（合計４回）。関節の腫脹はキャリパーにて系日的に２１日目まで測定した。腫脹の測定結果を図５に示す。
図５において、縦軸は関節炎誘発後の日数を示し、縦軸は正常関節に比して増加した関節幅（ｍｍ）を示す。エラーバーは標準誤差を示す。＊：Ｐ＜０．０５
図５より、メチル化ＢＳＡ投与後３日以降に１０μｇ及び５０μｇのイムノトキシン投与群はＶＨＰＥ群と比較して有意に腫脹を抑制した。
［病理組織学的解析と免疫染色］
投与後２１日目にラットを安楽死させ、両脚を切除してアセトン固定を行った。アセトン固定後のラット関節は、０．５ＭＥＤＴＡを含むｐＨ８．０の２０ｍＭトリス緩衝液にて脱灰処理を行った。脱灰処理後、純水で５０％に希釈したＯ．Ｔ．ＣＣｏｍｐｏｕｎｄ（ＳＡＫＵＲＡ社）で組織を包埋した。凍結組織切片の作製は川本らの方法に従い（Ｕｓｅｏｆａｎｅｗａｄｈｅｓｉｖｅｆｉｌｍｆｏｒｔｈｅｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｏｆｍｕｌｔｉ−ｐｕｒｐｏｓｅｆｒｅｓｈ−ｆｒｏｚｅｎｓｅｃｔｉｏｎｓｆｒｏｍｈａｒｄｔｉｓｓｕｅｓ，ｗｈｏｌｅ−ａｎｉｍａｌｓ，ｉｎｓｅｃｔｓａｎｄｐｌａｎｔｓ．ＡｒｃｈＨｉｓｔｏｌＣｙｔｏｌ．２００３Ｍａｙ；６６（２）：１２３−４３．）、粘着フィルムを用いて凍結切片を作製した。
凍結切片は風乾後、ヘマトキシリン・エオシン染色を行った。染色後、軟骨・骨破壊の病理学的スコアを解析した。病理学的スコアの評価はＲｉｃｈａｒｄｓＰＪらの方法に従い（Ｌｉｐｏｓｏｍａｌｃｌｏｄｒｏｎａｔｅｅｌｉｍｉｎａｔｅｓｓｙｎｏｖｉａｌｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓ，ｒｅｄｕｃｅｓｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎａｎｄａｍｅｌｉｏｒａｔｅｓｊｏｉｎｔｄｅｓｔｒｕｃｔｉｏｎｉｎａｎｔｉｇｅｎ−ｉｎｄｕｃｅｄａｒｔｈｒｉｔｉｓ．Ｒｈｅｕｍａｔｏｌｏｇｙ（Ｏｘｆｏｒｄ）．１９９９Ｓｅｐ；３８（９）：８１８−２５）、軟骨・骨破壊の程度をそれぞれ；無変化、１；病変１０％未満、２；病変５０％未満、３；病変５０％以上とし、評点として算出した。図６は、イムノトキシン投与群（ｒＩＴ）及びＶＨＰＥ投与群の病理組織染色結果を示す。
図６の上図は、切除した関節は脱灰処理後、薄切してヘマトキシリン・エオシン染色を行ったときの状態を示す。また、軟骨・骨破壊の程度を評点として算出した。値は各群（８匹）の平均値を示し、エラーバーは標準誤差を示す。＊＊：Ｐ＜０．０１
イムノトキシン投与群（ｒＩＴ）では軟骨・骨破壊がＶＨＰＥ投与群に比べて抑制された。また、軟骨・骨破壊スコアもイムノトキシン投与群において優位に抑制されていることが分かる。
抗原誘発関節炎モデルにおけるステロイド（メチルプレドニゾロン）、ヒアルロン酸製剤、及び本発明の抗ＦＲ−βイムノトキシンの関節内投与の比較を表１に示す。
ステロイド関節内投与はむしろ軟骨細胞のアポトーシス死をおこすとの報告がある（ＮａｋａｚａｗａＦ，ＭａｔｓｕｎｏＨ，ＹｕｄｏｈＫ，ＷａｔａｎａｂｅＹ，ＫａｔａｙａｍａＲ，ＫｉｍｕｒａＴ．ＣｌｉｎＥｘｐＲｈｅｕｍａｔｏｌ．２００２Ｎｏｖ−Ｄｅｃ；２０（６）：７７３−８１）。イムノトキシン投与では軟骨細胞のアポトーシス死はみられない。
重症変形性関節症モデルにおいては、ステロイド及びヒアルロン酸は組織学的改善効果がないことが報告されている（ＥｙｉｇｏｒＳ，ＨｅｐｇｕｌｅｒＳ，ＳｅｚａｋＭ，ＯｚｔｏｐＦ，ＣａｐａｃｉＫ．ＣｌｉｎＥｘｐＲｈｅｕｍａｔｏｌ．２００６Ｎｏｖ−Ｄｅｃ；２４（６）：７２４）。イムノトキシンではより炎症の強い関節リウマチにおいて組織学的改善がみられたので、重症変形性関節症での有効性が期待できる。
（実施例４）臨床応用の可能性
（１）関節リウマチ骨破壊部位にはＦＲ−β発現細胞が存在する（図７参照）。
骨を含む関節リウマチ滑膜をアセトン固定後、脱灰のため、１％ＥＤＴＡ／リン酸緩衝液（ＰＢＳ）、ｐＨ７．０中で、毎日緩衝液を交換しながら、２週間置換した。その後、組織をパラフィン包埋し、免疫染色のため各５μｍの切片をスライドに張り付けた。６０℃で３０分間処理後、脱パラフィン処理のため、切片スライドをキシレンで５分間、３回置換、脱水操作のため、エタノールで５分間、３回置換、９０％エタノール、７０％エタノールでそれぞれ３分間、置換した。
抗原回復のため、ＤｉｖａＤｅｃｌｏａｋｅｒ溶液（ＢｉｏｃａｒｅＭｅｄｉｃａｌ，ＣＡ，ＵＳＡ）中にて１０分間１２０℃でオートクレーブした。
内因性ペルオキシダーゼを不活化するため、１％過酸化水素・ＰＢＳ液で１０分反応させた。１０％ヤギ血清ＰＢＳを１０分間反応させ、非特異的吸着をブロックした。マウス抗ヒトＦＲ−β抗体（９４ｂ、ＩｇＧ１）、陰性コントロール抗体（ＩｇＧ１）を３０分間反応させ、ＰＢＳで３回洗浄した。ペルオキシダーゼ標識ヤギ抗マウス抗体（ニチレイバイオサイエンス、東京）を３０分間反応させ、ＰＢＳで５分間洗浄を３回繰り返した後、ＤＡＢ試薬（ニチレイバイオサイエンス、東京）にて１０分間発色させた。ＰＢＳで３回洗浄後、３０秒間ヘマトキシリン染色を行い、蒸留水で洗浄し、乾燥後鏡検した。反応はすべて室温にて行った。骨破壊部位でも、ＦＲ−β発現マクロファージが観察された。
（２）変形性関節症滑膜におけるＦＲ−β発現細胞が存在する（ＴｓｕｎｅｙｏｓｈｉＹ，ＴａｎａｋａＭ，ＮａｇａｉＴ，ＳｕｎａｈａｒａＮ，ＭａｔｓｕｄａＴ，ＳｏｎｏｄａＴ，ＩｊｉｒｉＫ，ＫｏｍｉｙａＳ，ＭａｔｓｕｙａｍａＴ．ＳｃａｎｄＪＲｈｅｕｍａｔｏｌ．２０１２；４１（２）：１３２−４０；図８参照）。
変形性関節症（ＯＡ）滑膜をアセトン固定後、凍結切片を作成した。１％過酸化水素・リン酸バッファー（ＰＢＳ）を１０分間反応させ、内因性ペルオキシダーゼを不活化した。ＰＢＳで５分間洗浄を３回繰り返した後、１０％ヤギ血清ＰＢＳを１０分間反応させ、非特異的吸着をブロックした。マウス抗ヒトＦＲ−β抗体（９４ｂ、ＩｇＧ１）、マウス抗ＣＤ１６３抗体（Ｒ２０，ＩｇＧ１）、陰性コントロール抗体（ＩｇＧ１）を３０分間反応させ、ＰＢＳで３回洗浄した。ペルオキシダーゼ標識ヤギ抗マウス抗体（ニチレイバイオサイエンス、東京）を３０分間反応させ、ＰＢＳで５分間洗浄を３回繰り返した後、ＡＥＣ試薬（ニチレイバイオサイエンス、東京）にて１０分間発色させた。ＰＢＳで３回洗浄後、３０秒間ヘマトキシリン染色を行い、蒸留水で洗浄し、乾燥後鏡検した。反応はすべて室温にて行った。ＯＡ滑膜でも、ＦＲ−β発現マクロファージが観察された。
（３）肝臓がんの骨転移部位には葉酸リセプターベータ発現細胞が存在する（図９参照）。
肝臓がんの骨転移部位をアセトン固定後、脱灰のため、１％ＥＤＴＡ／リン酸緩衝液（ＰＢＳ）、ｐＨ７．０中で、毎日緩衝液を交換しながら、２週間置換した。その後、組織をパラフィン包埋し、免疫染色のため各５μｍの切片をスライドに張り付けた。６０℃で３０分間処理後、脱パラフィン処理のため、切片スライドをキシレンで５分間、３回置換、脱水操作のため、エタノールで５分間、３回置換、９０％エタノール、７０％エタノールでそれぞれ３分間、置換した。
抗原回復のため、ＤｉｖａＤｅｃｌｏａｋｅｒ溶液（ＢｉｏｃａｒｅＭｅｄｉｃａｌ，ＣＡ，ＵＳＡ）中にて１０分間１２０℃でオートクレーブした。
内因性ペルオキシダーゼを不活化するため、１％過酸化水素・ＰＢＳ液で１０分反応させた。１０％ヤギ血清ＰＢＳを１０分間反応させ、非特異的吸着をブロックした。マウス抗ヒトＦＲ−β抗体（９４ｂ、ＩｇＧ１）、陰性コントロール抗体（ＩｇＧ１）を３０分間反応させ、ＰＢＳで３回洗浄した。ペルオキシダーゼ標識ヤギ抗マウス抗体（ニチレイバイオサイエンス、東京）を３０分間反応させ、ＰＢＳで５分間洗浄を３回繰り返した後、ＤＡＢ試薬（ニチレイバイオサイエンス、東京）にて１０分間発色させた。ＰＢＳで３回洗浄後、３０秒間ヘマトキシリン染色を行い、蒸留水で洗浄し、乾燥後鏡検した。反応はすべて室温にて行った。骨転移部位でも、ＦＲ−β発現マクロファージが観察された。
（４）抗ＦＲ−βイムノトキシンの毒素に対するラット血清中の抗体の検出
シュードモナス・エクソトキシン（緑膿菌毒素）イムノトキシンの静脈注射では、シュードモナス・エクソトキシンに対する中和抗体が高度に出現し、効果の減弱や副作用をおこすことが報告されている（ＰａｓｔａｎＩ，ＯｎｄａＭ，ＷｅｌｄｏｎＪ，ＦｉｔｚｇｅｒａｌｄＤ，ＫｒｅｉｔｍａｎＲ．ＬｅｕｋＬｙｍｐｈｏｍａ．２０１１Ｊｕｎ；５２Ｓｕｐｐｌ２：８７−９０）。
そこで、以下のようにして、抗ＦＲ−βイムノトキシンの毒素に対するラット血清中の抗体を検出した。
メチル化ＢＳＡ誘発ラット関節炎モデルに５０ｍｇのイムノトキシンの関節腔内投与を行い、関節炎誘発後７（ｎ＝５）、１４（ｎ＝５）、２１（ｎ＝１２）日後にラット血清を採取した（図１０Ａ）。
（方法）
（ａ）０．１Ｍ炭酸緩衝液（ｐＨ９．６）で１μｇ／ｍｌの濃度に調整したＶＨ−ＰＥ３８を、ＥＬＩＳＡプレート（マキシソープ）に５０μｌ（５０ｎｇ）／ウェルの条件で滴下し、１０℃で一晩インキュベートした。インキュベート終了後、溶液を除去してリン酸緩衝液（ＰＢＳ）で３回洗浄した。洗浄後、３％スキムミルクを溶解させたＰＢＳを２００μｌ（５０ｎｇ）／ウェルの条件で滴下し、３７℃で１時間インキュベートした。
（ｂ）インキュベート終了後、ラット血清サンプルの２倍希釈系列を３％スキムミルクＰＢＳにて調整し、３７℃で１時間インキュベートした。尚、抗イムノトキシン抗体の陽性コントロールは抗シュードモナス・エクソトキシンウサギ血清（シグマ社製）を用いた。インキュベート終了後、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳでプレートを３回洗浄した。
（ｃ）洗浄後、３％スキムミルクＰＢＳで２０００倍に希釈した西洋ワサビペルオキシダーゼ標識二次抗体（抗ラットＩｇＭ−ＩｇＧ、ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ社製、及び抗ウサギＩｇＧ、ＳｏｕｔｈｅｒｎＢｉｏｔｅｃｈ社製）を５０μｌ／ウェルの条件で滴下し、３７℃で３０分間インキュベートした。インキュベート終了後、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０を含むＰＢＳでプレートを３回洗浄した。
（ｄ）洗浄後、２，２’−Ａｚｉｎｏ−ｂｉｓ発色基質溶液（シグマ社製）を５０μｌ／ウェルの条件で滴下し、室温で１５分間インキュベートした。インキュベート終了後、プレートリーダーにて波長４１５ｎｍの吸光度を測定した。
（結果）
関節炎誘発７、１４、２１日後に採取したラット血清のＶＨ−ＰＥに対する反応性を図１０Ｂに示した。値は１００倍希釈時における各群の吸光度を示す。イムノトキシンを投与しない関節炎ラット（Ｎ＝６）血清の値はすべて０．１以下であった。１４日後に採取した群では吸光度０．１以上が１個体存在した。７日及び２１日後に採取した個体が示す吸光度は全て０．１以下であった。
したがって、抗ラットＦＲ−β抗体イムノトキシンの関節炎関節局所内投与では、シュードモナス・エクソトキシンに対する抗体の出現は稀であり、関節局所内投与の有用性が期待できる。
本明細書中で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願をそのまま参考として本明細書中にとり入れるものとする。

本発明によれば、副作用のリスクが低減された軟骨・骨破壊抑制剤が提供される。本発明の軟骨・骨破壊抑制剤は、ＦＲ−β発現性マクロファージの細胞死又は細胞傷害を選択的に誘導することによって、直接あるいは間接的に軟骨・骨破壊が認められる疾患に対して治療効果をもたらすことができる。

配列番号１−人工配列の説明：プライマー
配列番号２−人工配列の説明：プライマー
配列番号３−人工配列の説明：プライマー
配列番号４−人工配列の説明：プライマー
配列番号５−人工配列の説明：プライマー
配列番号６−人工配列の説明：プライマー
配列番号７−人工配列の説明：プライマー
配列番号８−人工配列の説明：プライマー
［配列表］

Claims

葉酸リセプターβに対する抗体、又は該抗体と生物学的もしくは化学的活性物質との複合体を含有する軟骨の破壊抑制剤。
葉酸リセプターβに対する抗体が一重鎖又は二重鎖である請求項１記載の軟骨の破壊抑制剤。
生物学的もしくは化学的活性物質がトキシン、酵素、サイトカイン、アイソトープ及び化学療法剤から選ばれる少なくとも一つである請求項１又は２記載の軟骨の破壊抑制剤。
葉酸リセプターβ発現マクロファージが軟骨の破壊をおこす疾患を治療するための請求項１〜３のいずれか１項に記載の軟骨の破壊抑制剤。
関節リウマチ、変形性関節症又は悪性腫瘍の骨転移による軟骨の破壊を抑制するための請求項１〜３のいずれか１項に記載の軟骨の破壊抑制剤。
変形性関節症又は悪性腫瘍の骨転移による軟骨の破壊を抑制するための請求項１〜３のいずれか１項に記載の軟骨の破壊抑制剤。
変形性関節症による軟骨の破壊を抑制するための請求項１〜３のいずれか１項に記載の軟骨の破壊抑制剤。
関節局所投与用である請求項１〜７のいずれか１項に記載の軟骨の破壊抑制剤。