JP5747444B2 - βアミロイドに関連する病的状態の診断補助方法 - Google Patents

Description

本発明は、アルツハイマー病等の、βアミロイドに関連する病的状態の診断を補助する方法に関する。

アルツハイマー病は、初老期から老年期に起こる進行性の痴呆（認知症）を特徴とする疾患であり、現在、国内の患者数は１００万人以上と言われている。今後人口の高齢化に伴いその数は確実に増加すると予想される。アルツハイマー病の臨床症状は、記憶障害、高次脳機能障害（失語、失行、失認、構成失行）などであり、その症状は他の痴呆疾患でも共通して見られることが多く、臨床症状だけでアルツハイマー病と確定診断することは極めて困難である。

アルツハイマー病はこれまで根本治療法がなかったが、１９９９年にワクチン療法がモデルマウスで成功して以来、根本治療法開発への期待が高まっている（非特許文献１）。また、既存のアルツハイマー病治療薬の多くは対症療法薬であるが、初期から中期に使用することで高い効果が得られることが示されており、早期の処方が望まれる。これらの治療法を有効に活用するためにも、早期にアルツハイマー病を診断する必要がある。さらには、軽度認知症障害（ＭＣＩ）の患者が高頻度にアルツハイマー病に移行することが示され、ＭＣＩがアルツハイマー病に移行するかどうかの予測診断法の確立にも期待が高まっている。

アルツハイマー病の特徴的な病理組織所見としては、老人斑と神経原線維変化がある。前者の主構成成分はβシート構造をとったβアミロイド（以下Ａβともいう）の凝集体であり、後者のそれは過剰にリン酸化されたタウ蛋白である。現在、アルツハイマー病の発症には、Ａβが蓄積することが最初におこる病理変化である、というアミロイド仮説が有力である（非特許文献２）。すなわち、アルツハイマー病においては臨床症状が発症するかなり前から、脳内ではＡβが蓄積する等の上記病理的組織変化が進行することが知られている。

アルツハイマー病に係る診断、治療の研究では、ＡＰＰｓｗｅマウスがよく用いられる。前記ＡＰＰｓｗｅマウスは、１９９６年にＨｓｉａｕらによって確立され、Ｓｗｅｄｅｎ型の突然変異ＡＰＰを過剰発現する。前記ＡＰＰｓｗｅマウスのアルツハイマー病様の主な症状としては１２ヶ月齢頃から脳内に老人斑がみられるようになり、１３ヶ月齢頃に行動異常を発症し、１６−１８ヶ月では脳内の老人斑が急激に増加し、２４ヶ月齢前後で死亡する。月齢に依存して行動異常や老人斑の形成を確認できることからアルツハイマー病研究の有用なモデル動物とされている。非特許文献３では、前記ＡＰＰｓｗｅマウスにおいて、月齢に対する、脳内Ａβ濃度、髄液、血液等のＡβ濃度の変化が報告されている。

近年、脳内の老人斑の量すなわちＡβ沈着量を診断する画像診断法が注目されており、脳内に入ってＡβに選択的に結合する、ポジトロン断層撮影法（ＰＥＴ）用や核磁気共鳴（ＭＲ）画像用の造影剤の研究が進められている（特許文献１）。

研究用試薬としては、Ａβに対する特異抗体を用いたＥＬＩＳＡ法が広く用いられている。ＥＬＩＳＡ法によれば、脳脊髄液では、アルツハイマー病の進行に伴い、４２アミノ酸型のＡβ（以下Ａβ（４２））が減少することが、ほぼ確立されている（特許文献２および非特許文献４）。この減少が大脳皮質のアミロイド蓄積と相関があることが示され、早期のアルツハイマー病への移行予測や発症前診断に有用と考えられている。血液などの体液では、血漿中のＡβ（４２）と４０アミノ酸型のＡβ（以下Ａβ（４０））の比（Ａβ（４２）／Ａβ（４０））がアルツハイマー病の進行に伴い減少することが示された。

国際公開第２００３／１０６４３９号 特表平１０−５０９７９７号公報

Ｓｃｈｅｎｋ Ｄ， Ｓｅｕｂｅｒｔ Ｐ， ｅｔ ａｌ．Ｎａｔｕｒｅ ４００：ｐ．１７３−１７７，１９９９． Ｈａｒｄｙ Ｊ， Ｓｅｌｋｏｅ ＤＪ． Ｓｃｉｅｎｃｅ ２９７：ｐ．３５３−３５６，２００２． Ｔａｋｅｓｈｉ Ｋａｗａｒａｂａｙａｓｈｉ，ｅｔ ａｌ．Ｔｈｅ Ｊｏｕｎａｌ ｏｆ Ｎｅｕｒｏｓｃｉｅｎｃｅ， ２１（２）：ｐ．３７２−３８１，２００１． Ｈａｎｓｓｏｎ Ｏ， Ｚｅｔｔｅｒｂｅｒｇ Ｈ， Ｂｕｃｈｈａｖｅ Ｐ， ｅｔ ａｌ． Ｌａｎｃｅｔ Ｎｅｕｒｏｌ．５：２２８−２３４，２００６．

上述の如く従来は、アルツハイマー病等の早期診断を行うために脳の断層撮影を行ったり、あるいは髄液を採取して髄液中のＡβ量を測定したりしていた。

しかし、これらの検査は高い専門性が必要であるため、アルツハイマー病等の診断における最初の判定（スクリーニング）として選択されることは極めて稀であり、これらの検査で早期診断判定をすることは極めて困難であった。

そこで本発明は、採取しやすい検体を用いて簡便に、しかも高精度で、アルツハイマー病等の、Ａβに関連する病的状態の診断に有用な情報を提供することを課題とする。

本発明者らが鋭意検討した結果、体液や生体組織等の検体に含まれるＡβの一部は凝集又は他物質と結合又は吸着しており、免疫学的測定法で全てのＡβを測定するのは困難であることが判明した。しかし、検体に可溶化剤を添加した後Ａβ量を測定すると、Ａβの測定感度が向上することも判明した。さらに、可溶化剤を添加する前後のＡβ測定値から求めた関係値は、被験者中Ａβ量と相関しており、この関係値に基づき、被験者中Ａβ量を推定することが可能となることを見出した。

すなわち本発明は、被験者から採取された液性検体においてβアミロイド（以下Ａβという）の量を測定して、第１のＡβ測定値を得る第１の測定工程と、
前記液性検体と可溶化剤を混合して混合液を調製した後、当該混合液においてＡβの量を測定して、第２のＡβ測定値を得る第２の測定工程と、
前記第１のＡβ測定値と前記第２のＡβ測定値との関係値を算出する算出工程と、
前記関係値に基づき、前記被験者中Ａβ量を推定する推定工程と、
を包含する、Ａβに関連する病的状態の診断を補助する方法に関する。

前記算出工程が、前記第１のＡβ測定値と前記第２のＡβ測定値との差を、前記関係値として求める算出工程からなることが好ましい。

前記算出工程が、前記第１のＡβ測定値と前記第２のＡβ測定値との差を、第１の算出値として求める第１の算出工程と、前記第１のＡβ測定値に対する前記第１の算出値の比率を、前記関係値として求める第２の算出工程と、からなることが好ましい。

前記可溶化剤がギ酸であることが好ましい。

前記液性検体は、血液、脳脊髄液（ＣＳＦ）、鼻粘液、及び、尿からなる群より選択される１種であることが好ましい。

前記液性検体は、生体組織の懸濁液であることが好ましい。

前記第１の測定工程及び前記第２の測定工程において測定される前記Ａβは、４２個のアミノ酸残基からなるＡβ、及びそのアミノ基末端が切断又は修飾されたＡβであることが好ましい。

本発明によれば、採取が容易な体液や生体組織を検体として用いて、簡便に、かつ精度よく、被験者中Ａβ量を判定することが可能となる。当該Ａβ量を判断材料として用いることで、アルツハイマー病等の、Ａβに関連する病的状態の早期診断若しくはスクリーニング、又は、当該病的状態を患う患者に投薬した場合の当該病的状態の治療効果のモニターを簡易に行うことができる。

本発明の一実施形態であるＡβ測定フロー 本発明の一実施形態であるＡβ測定フローにおける（ａ）第１の測定工程の対象となる液性検体中の状態、（ｂ）第２の測定工程の対象となる液性検体中の状態、（ｃ）本発明の指標の意味を説明する概念図。 実証例における可溶化剤の効果を確認する測定フロー 実施例１の測定フロー 実施例１の測定結果に基づいた、４グループの月齢に対する指標（Ｄ）の関係を示すグラフ 非特許文献３で示される４グループの月齢に対する脳内Ａβ濃度の関係を示すグラフ 非特許文献３で示される４グループの月齢に対する髄液中Ａβ濃度の関係を示すグラフ 非特許文献３で示される４グループの月齢に対する血漿中Ａβ濃度の関係を示すグラフ

本発明は、アルツハイマー病等の、Ａβに関連する病的状態の診断を補助する方法に関するものであり、被験者中Ａβ量を判定することが可能となる。これにより判定されたＡβ量を判断材料の１つとして用いて、Ａβに関連する病的状態を診断することが可能となるため、Ａβに関連する病的状態の早期診断、治療効果のモニター、又は、スクリーニングを行う際に有用である。

「Ａβに関連する病的状態」とは、Ａβが脳内に蓄積することで発症すると考えられている病的状態を意味し、例えば、アルツハイマー病、ダウン症候群、およびオランダタイプのアミロイド症を伴う遺伝性脳出血（Ｈｅｒｅｄｉｔａｒｙ Ｃｅｒｅｂｒａｌ Ｈｅｍｏｒｒｈａｇｅ ｗｉｔｈ Ａｍｙｌｏｉｄｏｓｉｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｄｕｔｃｈ−Ｔｙｐｅ：ＨＣＨＷＡ−Ｄ）性の病態が挙げられる。Ａβは、前記「Ａβに関連する病的状態」の患者において、患者の脳で発見される老人斑及び血管アミロイド沈着（アミロイドアンギオパシー）の主要な化学的成分である。

本発明におけるＡβとは、「アミロイドベータ蛋白質」、「アミロイドベータペプチド」、「Ａベータ」、「ベータＡＰ」、「Ａベータペプチド」又は「Ａβペプチド」と呼称される物質である。Ａβは、様々な数のアミノ酸をもつペプチドであり、一般的に３９〜４３のアミノ酸を含む。Ａβは、ベータ−アミロイド前駆体蛋白質（以降ＡＰＰとする）の断片として生成され、ＡＰＰ正常遺伝子のＡβ領域の突然変異から生じる多形型を含む場合もある。

本発明におけるＡβのうち、特にＡβ（４２）は重要であり、好適に本発明の測定対象とすることができる。従来、実際の臨床現場においても、髄液中のＡβ（４２）とＡβ（４０）が測定対象とされている。Ａβ（４２）とＡβ（４０）は、前記老人斑の主要な化学的成分であるＡβの大部分を占める。また、Ａβ（４２）はその凝集性の高さから初期の段階から老人斑の形成に関与しているものと報告されている。ここで、「Ａβ（４２）」とは、４２個のアミノ酸残基を有する全長のＡβ（４２）、及び全長Ａβ（４２）の一部が断片化又は修飾されたＡβ（４２）を総称して指す。「Ａβ（４０）」とは、４０個のアミノ酸残基を有する全長のＡβ（４０）、及び全長Ａβ（４０）の一部が断片化又は修飾されたＡβ（４０）を総称して示す。

測定対象とするＡβ（４２）は、検体内に様々な形態で含まれている。これは、Ａβ（４２）の凝集性が高いことによる。「Ａβ（４２）の凝集性が高い」ということは、Ａβ（４２）自身が会合して凝集する性質を有すること、及び、Ａβ（４２）を核として、Ａβ（４０）を含む他のＡβペプチドと会合して凝集する性質を有することを意味する。一般的に、疎水性の強いＡβ（４２）は、水溶液中で凝集物として存在するほうが安定である。ここで、凝集前のＡβ（４２）及びＡβ（４０）を含む他のＡβペプチドを、Ａβ単量体又はＡβモノマー（以降Ａβモノマーとする）という。また、凝集しているが、生理食塩水中などの水溶液に溶解状態にあるＡβを、可溶性Ａβ多量体又は可溶性Ａβオリゴマー（以降可溶性Ａβオリゴマーとする）という。さらに、前記可溶性Ａβオリゴマーの状態から凝集が進み、前記水溶液中で不溶性となったＡβを、不溶性Ａβ多量体又は不溶性Ａβ（以降不溶性Ａβとする）という。

一方で、Ａβ（４２）はＡβ以外の物質と結合又は吸着する性質を持つ。Ａβ以外の物質とは、例えば、血漿蛋白や膜脂質、細胞表面である。あるいは、Ａβ（４２）を内部に含む容器の表面でもある。前記結合又は吸着の原因としては、Ａβ以外の物質の疎水性領域とＡβ（４２）の疎水性領域との疎水相互作用が考えられる。本発明では、特に断りのない限り、「Ａβ」は、Ａβモノマー、可溶性Ａβオリゴマー、不溶性Ａβ、及び、Ａβ以外の物質と結合又は吸着したＡβを総称して指す。特に断りのない限り、「Ａβ凝集体」は、可溶性Ａβオリゴマー及び不溶性Ａβを総称して指す。

本発明における液性検体とは、Ａβを含み得る検体であり、被験者から採取された体液、又は、被験者から採取された体液又は生体組織を測定に適した状態に調整した液体をいう。具体的には、血液、脳脊髄液（ＣＳＦ）、鼻粘液（鼻汁）、尿、涙、唾液などの体液が挙げられる。あるいは、鼻粘膜や細胞等の生体組織の懸濁液が挙げられる。当該懸濁液は、生理食塩水などの、生理的条件を満たす液体を用いて調製することができる。前記懸濁液は、例えば、鼻粘膜を生理食塩水で洗浄して得られる洗浄液、又は、当該洗浄液を所定容量に調製した懸濁液であってもよい。

本発明の第１の測定工程及び第２の測定工程におけるＡβ量の測定では、液性検体中においてＡβモノマーを特異的に検出できる測定法を用いる。より具体的には、４２個のアミノ酸残基からなるＡβ及びそのアミノ基末端が切断又は修飾されたＡβ（これらをＡβ（ｘ−４２）という）を液性検体中において特異的に検出できる測定法を用いる。具体的には、本発明におけるＡβ量の測定は、免疫学的測定法により実施できる。免疫学的測定法は、検出するペプチド又は蛋白質に特異的である抗体などの結合物質を使用する免疫学的測定法であって、当該分野で公知である。免疫学的測定法の例としては、ＥＬＩＳＡ法、ウエスタンブロット法、ラジオイムノアッセイ等が含まれる。以下の実施例で用いた和光純薬（株）製の測定キットは、ＥＬＩＳＡ法を基本原理としたものである。

本発明でＡβを測定する際に免疫学的測定法で使用する抗体は、Ａβと特異的に反応及び結合する抗体である。抗体の作製法は数種類確立されており、既に公知である。代表的な作製法としては、マウスに測定対象物を抗原として免疫し、その後マウスの脾臓を取り出し、マウスの脾臓と癌細胞であるミエローマーとを融合することにより、ハイブリドーマ（抗体産生細胞）を作製する方法がある。この方法における抗原として、本発明ではＡβモノマーを使用する。具体的には、Ａβ（４２）である。さらに、抗原と結合する抗体は、Ａβのどの領域を認識して結合するかが重要である。例えば、抗体がＡβ（４２）とＡβ（４０）を区別するには、Ａβ（４２）とＡβ（４０）とで異なる領域のアミノ酸配列を認識する必要がある。即ち、Ａβ（４２）に関しては、Ａβ（４２）のアミノ酸配列のＣ末端側の２つのアミノ酸を含むアミノ酸配列を認識できる抗体がＡβ（４２）に特異的な抗体といえ、当該配列を認識できない抗体がＡβ（４０）に特異的な抗体であるといえる。また、Ａβ（４２）とＡβ（４０）のＮ末端側は、同じアミノ酸配列から構成されるため、Ｎ末端側のアミノ酸配列を認識できる抗体は、Ａβ（４２）とＡβ（４０）のいずれとも結合する抗体である。前述の和光純薬（株）の測定キットでは、これらの抗体が適切に組み合わされて使用されており、Ａβ（ｘ−４２）を特異的に測定するキットである
図１は、本発明の一実施形態であるＡβ測定フローを示す。本実施形態は、第１の測定工程１１及び第２の測定工程１２からなる。

第１の測定工程１１では、免疫学的測定法を用いて液性検体中のＡβ濃度を測定する。測定の前には、必要に応じて、免疫学的測定法に適した濃度に液性検体を希釈してよい。以下では、ＡβとしてＡβ（４２）濃度を測定する場合について説明する。具体的には、液性検体中のＡβ（４２）濃度をＥＬＩＳＡ法により測定する。Ａβの少なくとも一部は、前述するように、水溶液中でその凝集性及び吸着性の高さに起因して、可溶性Ａβオリゴマー又は不溶性Ａβを形成しているか、あるいは、Ａβ以外の物質と結合又は吸着していると考えられる。本発明の一実施様態である免疫学的測定法では、可溶性Ａβオリゴマー又は不溶性Ａβを形成しているＡβモノマーのうち、免疫学的測定法で使用される抗体の認識部位が可溶性Ａβオリゴマー又は不溶性Ａβの内部に埋もれているＡβモノマーは測定できない。また、Ａβ以外の物質と結合又は吸着しているＡβのうち、免疫学的測定法で使用される抗体の認識部位が前記結合又は吸着により内部に埋もれているＡβモノマーについても測定できない。第１の測定工程１１において測定できるのは、以上のＡβモノマー以外のＡβモノマーである。従って、液性検体を直接測定対象とする本発明の第１の測定工程１１で得られるＡβ（４２）濃度は、実際の総Ａβ（４２）濃度よりも低くなる。この点については後の実証例で実証している。

本発明の第２の測定工程１２では、第１の測定工程でＡβ濃度を測定した後、同じ液性検体に対し、Ａβを可溶化できる可溶化剤を添加して混合液を調製した後、その混合液について再度、同じ手法によりＡβ濃度を測定する。本発明者らは、前記液性検体に可溶化剤を添加することで、Ａβの測定値が大きくなることを見いだした（後の実証例を参照）。これは、可溶化剤の添加により、液性検体中に存在する、Ａβ凝集体、又は、Ａβ以外の物質と結合若しくは吸着しているＡβからＡβモノマーが遊離し、第１の測定工程では認識されなかったＡβのＣ末端又はＮ末端を抗体が認識できるようになったと考えられる。より具体的には、Ａβ凝集体、又は、Ａβ以外の物質と結合若しくは吸着しているＡβがＡβモノマーにより近い状態になったと考えられる。可溶化剤を添加する前後のＡβの測定値の変化は、第１の測定工程で液性検体に含まれる、Ａβ凝集体、又は、Ａβ以外の物質と結合若しくは吸着しているＡβの量が多いほど大きくなると予想される。従って、本発明によれば、液性検体中のＡβ凝集体、又は、Ａβ以外の物質と結合若しくは吸着しているＡβの存在量を間接的に測定することができる。

本発明における可溶化剤は、Ａβ凝集体、又は、Ａβ以外の物質と結合若しくは吸着しているＡβからＡβモノマーの遊離を引き起こす成分である。可溶化剤としては、カルボキシル基又はアルデヒド基を有する化合物から選択できる。具体的には、ギ酸が挙げられる。液性検体に添加するギ酸の濃度としては、５０％以上１００％以下であることが好ましく、６８％以上８５％以下がより好ましい。ギ酸以外に、蛋白質の可溶化剤として知られるグアニジン塩酸又は尿素、あるいは、クエン酸、リンゴ酸、ギ酸アンモニウム等が可溶化剤として使用できる。また、例えば、クルクミン等の、分子内に二重結合、三重結合、及び／又は共役結合を持つ化合物も可溶化剤として使用できる。

図２は、本発明の一実施形態であるＡβ測定フローにおける液性検体中の状態を説明する概念図である。第１の測定工程１１で測定されるＡβを「存在がマスクされていないＡβ」という。第１の測定工程１１において測定できるＡβは、Ａβモノマー２１、Ａβ凝集体２２、及び、Ａβ以外の物質と結合若しくは吸着しているが液相中にあるＡβ２３であり、容器表面や細胞表面等の固体に結合又は吸着（沈着）し、液相にないＡβ２４は測定できない（図２ａ）。また、測定できるＡβであっても、Ａβ凝集体２２は、例えば３つのＡβモノマーが凝集しているにも関らず、２つのＡβモノマーの認識部位が表面に現れていない場合は、１つのＡβとして測定される。Ａβ以外の物質と結合若しくは吸着しているが液相中にあるＡβ２３についても同様であり、実際よりも少ないＡβとして測定される可能性がある。つまり、液性検体を直接免疫学的測定法の対象とすると、正確な測定を行うことができない。従って、従来は正確性の高い早期診断判断が困難であった。

これに対して、第２の測定工程１２で可溶化剤を添加すると、Ａβ凝集体２２、Ａβ以外の物質と結合若しくは吸着しているが液相中にあるＡβ２３、及び、容器表面や細胞表面等の固体に結合又は吸着（沈着）し、液相にないＡβ２４からＡβモノマーが遊離する（図２ｂ）。そのため、可溶化剤の添加後においてＡβ濃度を測定すると、第１の測定工程では測定されなかったＡβも測定することができ、Ａβ総量の濃度が得られるため、より正確な定量が可能となる。

第２の測定工程１２で得られたＡβ濃度から第１の測定工程１１で得られたＡβ濃度を差し引いた値は、「存在がマスクされたＡβ」（図２ｃ中のＡβモノマー２１以外のＡβ）の濃度といえる。

本発明では、前記第１の測定工程で得られた第１の測定値と、前記第２の測定工程で得られた第２の測定値とから、両者の関係値を算出し、この関係値に基づいて、被験者内Ａβ量（例えば、脳内Ａβ濃度、ＣＳＦ中Ａβ濃度）を推定する。前記関係値としては、例えば、両測定値の差、比率が挙げられる。上述したように、両測定値の差は、液性検体中の「存在がマスクされたＡβ」量を示す。また、両測定値の比率は、液性検体中の「存在がマスクされたＡβ」が占める割合を示す。

本発明では、被験者内Ａβ量を推察するために、以下の新たな指標を使用することができる。第１の測定工程で得られた第１の測定値を値（Ａ）とし、第２の測定工程で得られた第２の測定値を値（Ｂ）とする。値（Ｂ）から値（Ａ）を差し引いた値を値（Ｃ）とする。値（Ａ）に対する値（Ｃ）の比率（Ｃ／Ａ）を、前記関係値とすることができる（実施例１を参照）。また、値（Ａ）に対する値（Ｂ）の比率（Ｂ／Ａ）を算出し、これを前記関係値としてもよい。

本発明は、別の局面において、患者の脳脊髄液や血液などの液性検体中に含まれる可溶性Ａβオリゴマーの有用な測定法を提供し得る。この方法は、前記第１の測定工程と、前記第２の測定工程とを含み、前記第２の測定工程で得られた第２の測定値から、前記第１の測定工程で得られた第１の測定値を差し引いて「存在がマスクされたＡβ」を求めることで、他の医療的所見に貢献することができることもある。

本発明の診断補助方法を実施するためのキットは、少なくとも、希釈液、可溶化剤、及び、Ａβに対する免疫反応試薬から構成されている。具体的には、希釈液は、血液サンプルを希釈するための溶液で血清アルブミン等を含むリン酸緩衝液である。また、可溶化剤は、ギ酸を含む溶液である。さらに、免疫反応試薬は、免疫測定方式として選択されるものに適応した形態で、例えば、ＥＬＩＳＡ方式で測定する場合は、Ａβの抗体が固定化されているマイクロタイタープレートである。

以下の詳細な実施例は、単に例示するものであって、本開示および特許請求の範囲を決して限定するものではない。当業者が、前述の記載を使用して、本発明を最大限実行することができる。また、当業者は、適した変更を行なうことができる。

本実施の形態において使用した市販の試薬は、特記しない限り製造元の説明書に従って用いられた。検出対象のＡβの測定はＥＬＩＳＡ法により行った。

（実証例）
液性サンプル中における可溶化剤の効果
図３は、実証例における測定フローを示す。

１．サンプルの調製
市販のＡβ（４２）合成ペプチド（（株）ペプチド研究所製；商品番号４３４９−Ｖ）をＤＭＳＯ（ジメチルスルフォキサイド）に溶解して１００ｕｍｏｌ／Ｌとした。次いで濃度１０ｍＭのリン酸緩衝液ｐＨ７．４を加えて１０００倍に希釈してサンプル４１を調製した。

サンプル４１の一部を、ｐＨ８．２の１％ＢＳＡを含むＴＢＳ溶液４２で希釈して、Ａβの濃度が５又は１０ｐｍｏｌ／Ｌとなる２種類のサンプルａを調製した。

一方で、サンプル４１の一部を１００倍量の７０％ギ酸（可溶化剤）溶液４３と混合し、さらに２４倍量の濃度１ＭのＴｒｉｓ（ｐＨ未調整）溶液により中和した。その後、１％ＢＳＡを含むＴＢＳ溶液（ｐＨ８．２）で希釈して、Ａβ（４２）の濃度が５又は１０ｐｍｏｌ／Ｌとなる２種類のサンプルｂを調製した。

２．Ａβ量の測定
測定は、和光純薬（株）製の、Ａβを測定するＥＬＩＳＡの測定キット（Ｈｕｍａｎ／Ｒａｔ βＡｍｙｌｏｉｄ４２ ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ ｗａｋｏ、Ｈｉｇｈ−Ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ；商品番号２９２−６４５０１）を用い、製造元の説明書に従って行った。

サンプルａとサンプルｂのＡβ濃度を上記キットを用いて測定した。結果を（表１）に示す。

（表１）中の既定値とは、サンプルａとｂが示す理論上の設定濃度のことである。上述のとおり、サンプルａとｂの濃度は５又は１０ｐｍｏｌ／Ｌに調整している。

（表１）から、希釈のみを行ったサンプルａでは既定値の３０から３８％と低い値を示すのに対して、ギ酸処理を行ったサンプルｂでは既定値の９６から１００％と、既定値とほぼ同等の値を示していることが分かる。

従って、可溶化剤を含んでいない液性サンプル（サンプルａ）では、Ａβの一部は測定されず、サンプルａの測定値とサンプルｂの測定値を比較することにより、液性サンプル中に存在する凝集体や吸着Ａβなどの「存在がマスクされたＡβ」の量を推測できることが確認された。

（実施例１）
血清サンプルを用いた実施例
図４は、実施例１における測定フローを示す。

１．血清サンプルの調製
月齢の異なるＡＰＰｓｗｅマウスの２１検体から血液を採取した。該２１検体は異なった日に測定を行った。まず、ＡＰＰｓｗｅマウスより採血を行い、採取した血液を氷上にて１−４時間インキュベートし、３，０００×ｒｐｍ、４度、１５分間の遠心処理をした後、上澄みである血清サンプル７１を採取した。

血清サンプルの希釈には、特に断りのない限り、Ｈｕｍａｎ／Ｒａｔ βＡｍｙｌｏｉｄ４２ ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ ｗａｋｏ、Ｈｉｇｈ−Ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ；商品番号２９２−６４５０１に添付されたスタンダード希釈液７２を用いた。

最初に、血清サンプル７１を希釈液７２にて単に希釈したサンプルＡを調製した。

一方で、血清サンプル７１と９５％ギ酸（可溶化剤）７３を１：３の割合で、ギ酸の終濃度が７１％となるように混合した。得られた混合液を、２４倍量の濃度１ＭのＴｒｉｓ（ｐＨ未調整）溶液により中和し、サンプルＢとした。なお、サンプルＡ、Ｂとも同等の希釈率とした。本実施例１では１００倍及び２００倍希釈であった。

２．サンプルＡ、Ｂ中のＡβ量の測定
サンプルＡとサンプルＢのＡβ濃度を、和光純薬（株）製の、Ａβを測定するＥＬＩＳＡの測定キット（Ｈｕｍａｎ／Ｒａｔ βＡｍｙｌｏｉｄ４２ ＥＬＩＳＡ Ｋｉｔ ｗａｋｏ、 Ｈｉｇｈ−Ｓｅｎｓｉｔｉｖｅ；商品番号２９２−６４５０１）を用い、製造元の説明書に従って測定した。

１２．４ヶ月齢、１６．７ヶ月齢、２１．７ヶ月齢のＡＰＰｓｗｅマウス各１匹の計３検体のＡβ（４２）に関する測定結果について（表２）に示す。

（表２）より、Ａβ（４２）濃度は、サンプルＡに比べサンプルＢが１．２から２．９倍高い値を示すことが分かる。従って、血清中のＡβ（４２）についても、前記（表１）に示した結果と同様、サンプルＡとサンプルＢの測定値を比較することにより、液性サンプル中に存在する凝集体や吸着Ａβなどの「存在がマスクされたＡβ」の量を推測できることが確認された。

３．ＡＰＰマウス月齢に対する、本発明の指標の影響
前記測定により得られたサンプルＡとサンプルＢの測定値の比率を算出した。ここで、サンプルＡの測定値が液性サンプル中で存在がマスクされていないＡβ量（Ａ）であり、サンプルＢの測定値が液性サンプル中の総Ａβ量（Ｂ）であり、総Ａβ量（Ｂ）からＡβ量（Ａ）を差し引いた値が存在がマスクされたＡβ量（Ｃ）である。次いで、存在がマスクされたＡβ量（Ｃ）と存在がマスクされていないＡβ量（Ａ）との比率（Ｃ／Ａ）を算出し、これを指標として用いた。

指標である比率（Ｃ／Ａ）を、採取したＡＰＰｓｗｅマウスの月齢により４つのグループに分類した。

月齢３から５．９ヶ月のＡＰＰｓｗｅマウス群においては脳内でのＡβ沈着はみられず、月齢６から８．９ヶ月のＡＰＰマウス群においては、老人斑形成の核となるＣｏｒｅｄ ｐｌａｑｕｅｓの形成がみられる。その後、月齢９から１５．９ヶ月のＡＰＰｓｗｅマウス群においては、老人斑形成初期段階となり、引き続き、月齢１６から２３ヶ月のＡＰＰｓｗｅマウス群において、老人斑形成増殖期となる。非特許文献３において、ＡＰＰｓｗｅマウスに関し同様の説明が記載されている。

測定の日間差を除くために比率（Ｃ／Ａ）の標準化を行った。具体的には、まず、各実施日ごとに、グループ３の比率（Ｃ／Ａ）の平均値を求め、同日実施した各検体の比率（Ｃ／Ａ）を前記グループ３の比率（Ｃ／Ａ）の平均値で割った値（Ｄ）で評価した。この結果をグラフにして図５に示す。なお、図５において、１グループは、ｎ数が２であるので、平均値のみの記載とした。

図６、図７及び図８は、非特許文献３から引用したグラフである。図６は、上記４グループに対する脳内のＡβ（４２）濃度を示すものである。また、図７は、上記４グループに対する髄液（ＣＳＦ）中のＡβ（４２）濃度を示すものである。図６及び図７によると、グループ２からグループ３にかけて、脳内Ａβ（４２）量が増大し、ＣＳＦ中のＡβ（４２）濃度が変化していることが分かる。一方、本発明の結果である図５においてもグループ２からグループ３にかけて変化が見えている。このことから、本発明で血清サンプルを用いることで、脳内Ａβ濃度及びＣＳＦ中Ａβ濃度を推定できることが分かる。以上より、画像診断又は髄液検査をすることなく、血液検査によって、脳内のＡβ量を推定することが可能となる。

また、図８の血漿の結果をみると、グループ３からグループ４にかけてＡβ濃度変化が見えるのに対して、本発明の結果である図５ではグループ２からグループ３にかけて変化が見えている。このことにより、同じ血液サンプルを測定する場合でも、指標（Ｃ／Ａ）を用いることにより、より鋭敏に脳内Ａβ濃度及びＣＳＦ中のＡβ濃度を推定することができる。

従って、グループ２からグループ３にかけての変化が、指標（Ｃ／Ａ）で推定することができる。よって、本発明は、アルツハイマー病等の、Ａβに関連する病的状態の早期診断、治療効果のモニター、又は、スクリーニングにおいて有用な判断材料を提供することができる。

以上の実施例１で説明したように本発明を用いると、従来の血液検査で用いていた指標と比較して、より早期において、信頼性の高い診断判定を極めて簡便に行うことができる。

本発明は、ヒト患者において、アルツハイマー病等の、Ａβに関連する病的状態の早期診断、治療効果のモニター、又は、スクリーニングにおいて有用な判断材料を提供することができる。本実施例１では、血液検体を液性サンプルとして用いたが、その他の体液や生体組織の懸濁液を用いることもできる。これにより、ヒト患者への負担を最小限に抑え、しかも低リスクで被験者内Ａβ量を判定することができる。

本発明の方法は、アミロイド形成のほか、複合体形成の程度を知ることが必要な疾患の診断又はモニターを補助するための方法として応用可能である。

Ａβに関連する病的状態を診断するにあたっては、本発明の方法により得られた結果を他の臨床的徴候と合わせて考慮することができる。従って、本発明は、ＰＥＴやＭＲＩといったリスクを伴う診断を行う前のスクリーニングとして有用である。

本発明のＡβに関連する病的状態の診断を補助する方法は、血液などの体液又は鼻粘膜若しくは細胞などの生体組織のサンプルを使用して低リスクかつ高精度の、Ａβに関連する病的状態の診断を行うことを可能とし、Ａβに関連する病的状態の早期診断、治療効果のモニター、又は、スクリーニングを行う際に有用な情報を提供し得る。

１１ 第１の測定工程
１２ 第２の測定工程
２１ Ａβモノマー
２２ Ａβ凝集体
２３ Ａβ以外の物質と結合若しくは吸着しているが液相中にあるＡβ
２４ 容器表面や細胞表面等の固体に結合又は吸着（沈着）し、液相にないＡβ
２５ 可溶化されたＡβモノマー
４１ 市販Ａβペプチド
４２ １％ＢＳＡ・ＴＢＳｐＨ８．２
４３ ７０％ギ酸
７１ 血清
７２ 希釈
７３ ９５％ギ酸

Claims (5)

1. 被験者から採取された血液検体においてβアミロイド（以下Ａβという）の量を測定して、第１のＡβ測定値を得る第１の測定工程と、
   前記血液検体と可溶化剤を混合して混合液を調製した後、当該混合液においてＡβの量を測定して、第２のＡβ測定値を得る第２の測定工程と、
   前記第１のＡβ測定値と前記第２のＡβ測定値との差を、第１の算出値として求め、前記第１のＡβ測定値に対する前記第１の算出値の比率を、関係値として求める算出工程と、
   前記関係値に基づき、前記被験者の脳内あるいはＣＳＦ中のＡβ量を推定する推定工程と、
   を包含する、Ａβに関連する病的状態の診断を補助する方法。
2. 前記可溶化剤がギ酸である、請求項１に記載のＡβに関連する病的状態の診断を補助する方法。
3. 前記可溶化剤がグアニジン塩酸である、請求項１に記載のＡβに関連する病的状態の診断を補助する方法。
4. 前記血液検体は、血清検体である、請求項１〜３のいずれかに記載のＡβに関連する病的状態の診断を補助する方法。
5. 前記第１の測定工程及び前記第２の測定工程において測定される前記Ａβは、４２個のアミノ酸残基からなるＡβ、及びそのアミノ基末端が切断又は修飾されたＡβである、請求項１〜４のいずれかに記載のＡβに関連する病的状態の診断を補助する方法。

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