JP5564193B2 - リポ多糖又はリピッドaの分析方法 - Google Patents
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[1]リポ多糖及び/又はリピッドA結合性ペプチドを固定化した担体を用いるリポ多糖及び/又はリピッドAの分析方法であって、
リポ多糖及び/又はリピッドAを含む可能性のある被検試料と、前記担体とを接触させる工程(以下、接触工程と称する)、
前記担体と未反応成分とを分離し、分離した担体を洗浄液で洗浄する工程(以下、洗浄工程と称する)、及び
前記担体に結合したリポ多糖及び/又はリピッドAを分析する工程(以下、分析工程と称する)
を含み、
(a)前記洗浄液として有機溶媒含有水溶液を使用する、及び/又は
(b)被検試料と担体との前記接触を、界面活性剤、還元剤、又はキレート剤の存在下で実施する
ことを特徴とする、前記分析方法、
[2]前記洗浄液が、界面活性剤、還元剤、又はキレート剤を更に含有する、[1]の分析方法、
[3]前記分析工程を、LAL(limulus amebocyte lysate)法、免疫学的分析方法、あるいは、細胞又は組織を用いるエンドトキシン測定法により実施する、[1]又は[2]の分析方法、
[4]前記被検試料が、アンチトロンビンIIIを含有する可能性のある被検試料である、[1]〜[3]の分析方法、
[5]前記被検試料が血液、血漿、血清、あるいは、生体試料若しくは生物材料由来物であり、前記洗浄液として有機溶媒含有水溶液を使用する、[1]〜[4]の分析方法、
[6]前記リポ多糖及び/又はリピッドA結合性ペプチドが、
配列番号1又は配列番号2で表されるアミノ酸配列、あるいは、前記アミノ酸配列において1又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含み、且つ、リポ多糖及び/又はリピッドA結合活性を示すペプチド、又はその誘導体
である、[1]〜[5]の分析方法、
に関する。
本発明の分析方法は、接触工程、洗浄工程、及び分析工程を含み、(a)前記洗浄工程で用いる洗浄液として有機溶媒含有水溶液を使用するか、あるいは、(b)前記接触工程における被検試料と担体との接触を、界面活性剤、還元剤、又はキレート剤の存在下で実施する。本発明においては、(a)又は(b)のいずれか一方のみを行うこともできるし、その両方[すなわち、(a)及び(b)]を行うこともできる。
リポ多糖及び/又はリピッドAを含む可能性のある試料としては、各種の生体試料(例えば、血液、血漿、血清)、あるいは、生体試料又は生物材料の各種の由来物(例えば、プラスミン製剤、抗生物質、ワクチン)を挙げることができ、アンチトロンビンIIIを含有する可能性のある試料としては、特に、血液、血漿、血清を挙げることができる。
また、被検試料として、血液分画製剤(ヒト免疫グロブリン製剤等)を用いる場合には、接触工程における被検試料と担体との接触を、界面活性剤、還元剤、又はキレート剤の存在下で実施することにより、有機溶媒含有水溶液を洗浄液として使用することなく、正確な測定を実施することができる。なお、このような試料を用いる場合であっても、界面活性剤、還元剤、又はキレート剤の使用の有無にかかわらず、有機溶媒含有水溶液を洗浄液として使用することもできる。
XYSSS ISSIX A(配列番号:1)
[前記アミノ酸配列中、1番目及び10番目のXは、それぞれ独立に、K、R、又はHを意味する]
XNYSS SISSI XA(配列番号:2)
[1番目及び11番目のXは、それぞれ独立に、K、R、又はHを意味する]
非極性アミノ酸:Ala、Val、Leu、Ile、Pro、Met、Phe、及びTrp
非荷電性アミノ酸:Gly、Ser、Thr、Cys、Tyr、Asn、及びGln
酸性アミノ酸:Asp及びGlu
塩基性アミノ酸:Lys、Arg、及びHis
陰イオン性界面活性剤として、具体的には、例えば、脂肪酸塩、アルキル硫酸エステル塩、アルキルベンゼンスルフォン酸塩、アルキルナフタレンスルフォン酸塩、又はアルキルスルホコハク酸塩等を挙げることができる。
陽イオン性界面活性剤として、具体的には、例えば、アルキルアミン塩、又は第4級アンモニウム塩等を挙げることができる。
両性界面活性剤として、具体的には、例えば、アルキルベタイン、アミンオキサイド、又はジメチルアンモニオプロパンスルホン酸等を挙げることができる。
使用濃度としては、例えば、アセトニトリルを用いる場合には、通常、0.1〜100%で実施することができ、好ましくは、1〜80%、より好ましくは10〜50%で実施することができる。
なお、洗浄工程で用いる有機溶媒含有水溶液は、更に、前記の界面活性剤、還元剤、及び/又はキレート剤を含有することができる。
(1)チップカラムの調製
LPS及び/又はリピッドA結合性ペプチドとしては、WO2007/060979に記載の
ペプチドLi5−025:kYSSSISSIRAc
[前記アミノ酸配列において、小文字で示すアミノ酸(k、c)はD体アミノ酸であることを示す。すなわち、前記アミノ酸配列は、配列番号3で表される配列において、1番目のK(L体)をD体リジンに置換し、12番目のC(L体)をD体システインに置換した配列である]
を使用した。なお、比較用のLPS結合体としては、市販品であるポリε−リジン固定化ビーズ(ET-Clean;チッソ社)を使用した。
具体的には、まず、ペプチドを最少量の蒸留水で溶解し、50mmol/L Tris,5mmol/L EDTA・2Na,pH8.5のバッファー(以下、カップリングバッファーと称する)を加え、ペプチドの濃度が最終濃度で0.25〜0.5μmol/mLとなるように調整した。一方で、ビーズを蒸留水で洗浄し、カップリングバッファーで平衡化した。
ビーズ1mL当たりペプチド30μmol(Peptide 30μmol/mL Beads)となるように、洗浄したビーズとペプチド溶液とを混合し、室温で穏やかに攪拌させながら、6時間〜一晩反応させた。ペプチド固定化後の溶液を回収し、SH基定量試薬(商品名:Ellman’s Reagent, PIERCE社製)にて未結合のペプチドの濃度を測定することにより、ペプチドの固定化量を算出した。
ブロッキング後、蒸留水で良く洗浄し、未反応のメルカプトエタノールを取り除いた。最後、蒸留水を綺麗に取り除き、0.2N NaOH(95%エタノール)溶液を加え、混ぜ、穏やかに攪拌しながら30分反応させ、その後、ビーズが中性になるまで蒸留水でよく洗浄した。この操作を3回程度繰り返し行い、混在しているエンドトキシンを除去するためのアルカリ洗浄を行った。
その後、20%エタノール又はリン酸緩衝化生理食塩水(PBS)等に置換し、使用するまで4℃で保存した。
(2)エンドトキシンの測定
測定用試料として、市販のATIII溶液[製品名:ノイアート(Neuart)、生物学的製剤基準 乾燥濃縮ヒト・アンチトロンビンIII、三菱ウェルファーマ社]に、エンドトキシン標準品[E.coli UKT-B、(財)日本公定書協会]を所定濃度(0、0.025、0.05、0.1EU/mL)となるように添加し、室温で1時間インキュベートした。
各試料溶液に、終濃度100mmol/Lとなるように、DTTを加え、室温で10分間インキュベートした後、その200μLを、先に調製した各チップカラムに通流した。通流後、20mmol/L NaCl水溶液200μLで、5回洗浄した。
各ウェルに、市販のエンドトキシン測定用試薬(エンドスペシー、生化学バイオビジネス製)50μLを加え、37℃で30分間インキュベートした後、反応停止剤(製品名:トキシカラーDIA−MPセット、生化学バイオビジネス製)を加え、更にジアゾ化試薬を加えアゾ色素に変換し、吸光度計[545nm(対象波長630nm)]にて測定した。
なお、Li5−025固定化ビーズに関しては、ATIII及びエンドトキシン含有試料溶液に加え、エンドトキシンを水に溶解した試料溶液(エンドトキシン水溶液)、エンドトキシンをPBSに溶解した試料溶液(エンドトキシン含有PBS)についても、同様の操作を実施した。
図1に示すとおり、試料にATIIIが含まれる場合、公知のLPS結合体であるポリε−リジンは、LPS結合能をほとんど消失していた。一方、ペプチドLi5−025は、試料にATIIIが含まれる場合であっても、ATIIIが含まれていない場合(エンドトキシン水溶液、エンドトキシン含有PBS)と同様のLPS結合能を保持していた。
チップカラムとして、実施例1(1)と同じ手順で、Li5−025固定化ビーズをフィルターチップに充填したチップカラムを用意した。
また、測定用試料として、実施例1(2)と同じ手順で調製した各試料溶液(DTT無添加)を用意した。
チップカラムのフィルター部分を切断し、エンドトキシンフリーの純水50μLにより、チップカラム中のビーズを、それぞれ、96ウェル エンドトキシンフリープレート(製品名:トキシペット プレート LP、生化学バイオビジネス製)の各ウェルに押し出した。
各ウェルに、市販のエンドトキシン測定用試薬(エンドスペシー、生化学バイオビジネス製)50μLを加え、37℃で30分間インキュベートした後、反応停止剤(製品名:トキシカラーDIA−MPセット、生化学バイオビジネス製)を加え、更にジアゾ化試薬を加えアゾ色素に変換し、吸光度計[545nm(対象波長630nm)]にて測定した。
Li5−025固定化ビーズは、試料にATIIIが含まれる場合であっても、変わらないLPS結合能を保持していた。
フィルターチップとして、実施例1(1)と同じ手順で、Li5−025固定化ビーズをフィルターチップに充填したチップカラムを用意した。
また、測定用試料として、ヒト血漿にエンドトキシン標準品を0、0.1、0.5、1EU/mLとなるように加え、氷中で30分間インキュベートした後、Triton X−100を最終濃度0.1%となるように更に添加し、ボルテックスにより充分に混合した。
なお、比較例として、25%アセトニトリル含有の5mmol/L Tris(pH7.5)緩衝液の代わりに、0.5mol/L NaCl、50mmol/L Tris、20mol/L EDTA含有の洗浄液を用いた場合についても、同時に評価した。
各ウェルに、市販のエンドトキシン測定用試薬(LAL試薬)50μLを加え、更にジアゾ化試薬を加えアゾ色素に変換し、吸光度計[545nm(対象波長630nm)]にて測定した。
0.5M NaCl含有溶液で洗浄したときは全く測定することができなかったが、有機溶媒含有溶液で洗浄することにより、LPS回収率がほぼ100%前後であり、低濃度のLPSを効率よく測定できることが示された。
また、血漿にTriton X−100を添加することによって、血漿中のLPS定量を可能にできることが示された。
ビーズに非特異的に結合していた脂質等のLALの反応阻害物質がアセトニトリルで綺麗に洗浄できたため、測定が可能になったと考えられる。
配列表の配列番号1の配列で表される各アミノ酸配列における1番目及び10番目の各アミノ酸「Xaa」は、それぞれ独立に、リジン、アルギニン、又はヒスチジンを意味する。
配列表の配列番号2の配列で表される各アミノ酸配列における1番目及び11番目の各アミノ酸「Xaa」は、それぞれ独立に、リジン、アルギニン、又はヒスチジンを意味する。
Claims (6)
- リポ多糖及び/又はリピッドA結合性ペプチドを固定化した担体を用いるリポ多糖及び/又はリピッドAの分析方法であって、
リポ多糖及び/又はリピッドAを含む可能性のある被検試料と、前記担体とを接触させる工程、
前記担体と未反応成分とを分離し、分離した担体を洗浄液で洗浄する工程、及び
前記担体に結合したリポ多糖及び/又はリピッドAを分析する工程
を含み、
(a)前記洗浄液としてアセトニトリル含有水溶液を使用する、及び/又は
(b)被検試料と担体との前記接触を、界面活性剤、還元剤、又はキレート剤の存在下で実施する
ことを特徴とする、前記分析方法。 - 前記洗浄液が、界面活性剤、還元剤、又はキレート剤を更に含有する、請求項1に記載の分析方法。
- 前記分析工程を、LAL(limulus amebocyte lysate)法、免疫学的分析方法、あるいは、細胞又は組織を用いるエンドトキシン測定法により実施する、請求項1又は2に記載の分析方法。
- 前記被検試料が、アンチトロンビンIIIを含有する可能性のある被検試料である、請求項1〜3のいずれか一項に記載の分析方法。
- 前記被検試料が血液、血漿、血清、あるいは、生体試料若しくは生物材料由来物であり、前記洗浄液としてアセトニトリル含有水溶液を使用する、請求項1〜4のいずれか一項に記載の分析方法。
- 前記リポ多糖及び/又はリピッドA結合性ペプチドが、
配列番号1又は配列番号2で表されるアミノ酸配列、あるいは、前記アミノ酸配列において1又は数個のアミノ酸が欠失、置換、及び/又は付加されたアミノ酸配列を含み、且つ、リポ多糖及び/又はリピッドA結合活性を示すペプチド、又はその誘導体
である、請求項1〜5のいずれか一項に記載の分析方法。
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