JP6785521B2 - エンドトキシン測定剤の感度の増強方法 - Google Patents
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Description
すなわち、本発明は以下に関する。
前記エンドトキシン測定剤は、カブトガニ由来ファクターC組換えタンパク質を含み、
エンドトキシン測定時の前記ファクターC組換えタンパク質の含有量を増加させることを含む、方法。
[2] 前記エンドトキシン測定剤が、カブトガニ由来ファクターB組換えタンパク質を含む、[1]に記載の方法。
[3] 前記エンドトキシン測定剤が、カブトガニ由来プロクロッティングエンザイム組換えタンパク質を含む、[1]または[2]に記載の方法。
[4] 前記エンドトキシン測定剤が検出用化合物を含む、[1]〜[3]のいずれかに記載の方法。
前記エンドトキシン測定剤と被検体とを含むエンドトキシン測定試料を調製することを含み、
前記エンドトキシン測定剤は、カブトガニ由来ファクターC組換えタンパク質を含み、
前記感度は、前記エンドトキシン測定試料における前記ファクターC組換えタンパク質の濃度を増加させることによって増強される、方法。
[6] 前記エンドトキシン測定剤が、カブトガニ由来ファクターB組換えタンパク質を含む、[5]に記載の方法。
[7] 前記エンドトキシン測定剤が、カブトガニ由来プロクロッティングエンザイム組換えタンパク質を含む、[5]または[6]に記載の方法。
[8] 前記エンドトキシン測定剤が検出用化合物を含む、[5]〜[7]のいずれかに記載の方法。
[10] ヘリコバクター・ピロリ(Helicobacter pylori)由来のエンドトキシンに対する感度が増強されたエンドトキシン測定剤の製造方法であって、
前記エンドトキシン測定剤は、カブトガニ由来ファクターC組換えタンパク質を含み、
前記エンドトキシン測定剤における前記ファクターC組換えタンパク質の含有量を増加させることを含む、製造方法。
[11] カブトガニ由来ファクターCを含むエンドトキシン測定剤であって、当該カブトガニ由来ファクターCは組換えタンパク質であり、ヘリコバクター・ピロリ(Helicobacter pylori)由来のエンドトキシンの相対力価が、ライセート試薬で測定される相対力価の0.1倍以上である、エンドトキシン測定剤。
[12] 前記エンドトキシン測定剤が、カブトガニ由来ファクターB組換えタンパク質を含む、[11]に記載のエンドトキシン測定剤。
[13] 前記エンドトキシン測定剤が、カブトガニ由来プロクロッティングエンザイム組換えタンパク質を含む、[11]または[12]に記載のエンドトキシン測定剤。
[14] 検出用化合物を含む、[11]〜[13]のいずれかに記載のエンドトキシン測定剤。
[15] カブトガニ由来ファクターC含むエンドトキシン測定剤であって、当該カブトガニ由来ファクターCは組換えタンパク質であり、ヘリコバクター・ピロリ(Helicobacter pylori)由来エンドトキシンの相対力価が200(EU/μg)以上である、エンドトキシン測定剤。
[16] 前記エンドトキシン測定剤が、カブトガニ由来ファクターB組換えタンパク質を含む、[15]に記載のエンドトキシン測定剤。
[17] 前記エンドトキシン測定剤が、カブトガニ由来プロクロッティングエンザイム組換えタンパク質を含む、[15]または[16]に記載のエンドトキシン測定剤。
[18] 検出用化合物を含む、[15]〜[17]のいずれかに記載のエンドトキシン測定剤。検出用化合物の一態様は、一般式Y-X-Zで表される検出用化合物であって、上記一般式中、Yは水素原子または保護基であり、Xは前記プロクロッティングエンザイム組換えタンパク質の基質となるアミノ酸配列を含むペプチドであり、ZはXから遊離すると光学検出できるようになる標識物質である。検出用化合物の別の一態様は、一般式Y-X-Zで表される検出用化合物であって、上記一般式中、Yは水素原子または保護基であり、Xは前記ファクターB組換えタンパク質の基質となるアミノ酸配列を含むペプチドであり、ZはXから遊離すると光学検出できるようになる標識物質である。検出用化合物の更に別の一態様は、一般式Y-X-Zで表される検出用化合物であって、上記一般式中、Yは水素原子または保護基であり、Xは前記ファクターCの基質となるアミノ酸配列を含むペプチドであり、ZはXから遊離すると光学検出できるようになる標識物質である。
[19] [11]〜[18]のいずれかに記載のエンドトキシン測定剤を用いて、被検体中のエンドトキシンを測定する方法。
ファクターC(C因子:FC)
組換えファクターC(rFC)
ファクターB(B因子:FB)
組換えファクターB(rFB)
プロクロッティングエンザイム(凝固酵素前駆体:PCE)
組換えプロクロッティングエンザイム(rPCE)
クロッティングエンザイム(凝固酵素)
<エンドトキシン測定剤の感度の増強方法>
本発明の一態様は、ヘリコバクター・ピロリ由来のエンドトキシンに対するエンドトキシン測定剤の感度を増強させる方法であって、前記エンドトキシン測定剤は、カブトガニ由来ファクターC組換えタンパク質を含み、エンドトキシン測定時の前記ファクターC組換えタンパク質の含有量を増加させることを含む、方法(以下、「本発明の増強方法」ということがある)に関する。本発明の一実施形態では、エンドトキシン測定時の前記ファクターC組換えタンパク質の含有量を、感度の増強に十分な量に増加させる。
本発明の一態様は、ヘリコバクター・ピロリ由来のエンドトキシンに対するエンドトキシン測定剤の反応性を向上させる方法であって、前記エンドトキシン測定剤は、カブトガニ由来ファクターC組換えタンパク質を含み、エンドトキシン測定時の前記ファクターC組換えタンパク質の含有量を増加させることを含む、方法に関する。本発明の更なる一態様は、ヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンに対するカブトガニ由来ファクターC組換えタンパク質の反応性を付与する方法であって、当該エンドトキシンと共存させる前記ファクターC組換えタンパク質の量を増加させることを含む方法、に関する。本発明の一実施形態では、上記反応性は、200 EU/μg以上(例えば、250 EU/μg以上、300 EU/μg以上)の相対力価として表現される。
本発明の増強方法では、組換えタンパク質を利用したエンドトキシン測定剤である組換え試薬を使用したエンドトキシン測定において、エンドトキシン測定時のファクターC組換えタンパク質の含有量を増加させることで、ヘリコバクター・ピロリ由来のエンドトキシンに対するエンドトキシン測定剤の感度を増強させることを可能としたものである。すなわち、基準であるエンドトキシン標準品に対するヘリコバクター・ピロリ由来のエンドトキシンの相対力価を向上させることができる。より具体的には、エンドトキシン測定剤と被検体とを含むエンドトキシン測定試料中のファクターC組換えタンパク質の濃度を増加させることで、ヘリコバクター・ピロリ由来のエンドトキシンに対するエンドトキシン測定剤の感度を増強させることができる。ここで、後記実施例に示される通り、エンドトキシン測定試料中のファクターC組換えタンパク質以外のリムルス因子の濃度を増加させても、エンドトキシン標準品に対するヘリコバクター・ピロリ由来のエンドトキシンの相対力価を向上できない、あるいは、バックグラウンドが上昇し、ヘリコバクター・ピロリ由来のエンドトキシンに対するエンドトキシン測定剤の感度を増強できないことを、本発明者らは知見している。
相対力価の測定は、具体的には、例えば、(i)エンドトキシン測定試料の吸光度を測定し、単位時間当たりの吸光度変化率(mAbs/min)を算出する。(ii)次いで、エンドトキシン標準品で作成した検量線より、エンドトキシン測定試料のエンドトキシン活性(EU/mL)を算出し、(iii)この値をエンドトキシン測定試料に含まれるエンドトキシンの濃度(μg/mL)で除し、エンドトキシンの相対力価(EU/μg)を算出する。吸光度の時間変化を利用した方法は、3因子系でのエンドトキシンの相対力価の測定(ファクターC、ファクターBおよびプロクロッティングエンザイムを含む反応系)に特に適している。一実施形態では、ヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの相対力価の測定は、吸光度の時間変化を利用した方法により3因子系で行われる。
相対力価の測定は、例えば、蛍光強度測定に基づいた方法により行ってもよい。より具体的には、(i)エンドトキシン測定剤を用いて、カスケード反応の進行に伴うエンドトキシン測定試料の相対蛍光強度の変化を測定し、(ii)エンドトキシン標準品で作成した検量線より、エンドトキシン測定試料のエンドトキシン活性(EU/mL)を算出し、(iii) この値をエンドトキシン測定試料に含まれるエンドトキシンの濃度(μg/mL)で除し、エンドトキシンの相対力価(EU/μg)を算出する。蛍光強度の時間変化を利用した方法は、1因子系での相対力価の測定(ファクターCを含み、ファクターBまたはプロクロッティングエンザイムを含まない反応系)および2因子系での相対力価の測定(ファクターCおよびファクターBを含み、プロクロッティングエンザイムを含まない反応系)に特に適している。一実施形態では、ヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの相対力価の測定は、蛍光強度の時間変化を利用した方法により1因子系または2因子系で行われる。
ここで、相対力価の測定に用いられるヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの量は、エンドトキシン標準品で作成した検量線よりエンドトキシン測定試料(すなわち、ヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンを含有する試料)のエンドトキシン活性(EU/mL)を算出できる量であれば特に制限されず、相対力価の測定方法の種類等の諸条件に応じて適宜設定できる。相対力価の測定に用いられるヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの量は、測定系における濃度として、例えば、0.25〜25 ng/mLであってもよく、具体的には、0.25 ng/mL、5 ng/mL、または25 ng/mLであってもよい。相対力価の測定に用いられるヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの量は、特に、1因子系で相対力価の測定が実施される場合に、測定系における濃度として、0.25〜25 ng/mLであってもよく、具体的には、0.25 ng/mL、5 ng/mL、または25 ng/mLであってもよい。また、相対力価の測定に用いられるヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの量は、特に、2因子系または3因子系で相対力価の測定が実施される場合に、測定系における濃度として、0.25 ng/mLであってもよい。
エンドトキシン測定時における測定試料中のファクターC組換えタンパク質の含有量の上限は特に制限されないが、例えば10 mg/mL以下、生産効率の観点から好ましくは10 μg/mL未満(例えば5 μg/mL以下、2 μg/mL以下)である。
なお、本明細書において、ファクターC組換えタンパク質の含有量は、実施例に記載のELISA法により算出した値である。
本発明のさらなる一態様は、ヘリコバクター・ピロリ由来のエンドトキシンに対するエンドトキシン測定剤の感度が増強されたエンドトキシン測定方法であって、前記エンドトキシン測定剤と被検体とを含むエンドトキシン測定試料を調製することを含み、前記エンドトキシン測定剤は、カブトガニ由来ファクターC組換えタンパク質を含み、前記感度の増強は、前記エンドトキシン測定試料における前記ファクターC組換えタンパク質の濃度を増加させることによってされる、方法(以下、「本発明の測定方法」ということがある)に関する。本発明の別の実施形態は、エンドトキシンを測定する方法であって、エンドトキシン測定剤と被検体とを含むエンドトキシン測定試料を調製することを含み、前記エンドトキシン測定剤は、カブトガニ由来ファクターC組換えタンパク質を含み、前記エンドトキシン測定試料における前記ファクターC組換えタンパク質の濃度が、ヘリコバクター・ピロリ由来のエンドトキシンに対する前記エンドトキシン測定剤の感度の増強に十分な量に増加されている、方法に関する。
本発明の測定方法は、例えば、下記(A)および(B)の工程を含む、エンドトキシンの測定方法である。
(A)カブトガニ由来ファクターC組換えタンパク質、および被験体を混合する工程。
(B)リムルス因子のプロテアーゼ活性を測定する工程。
(1)配列番号2に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド。
(2)配列番号4に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド。
(3)配列番号12に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド。
(4)上記(1)〜(3)のいずれかに示されるアミノ酸配列において、1個若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、および/または付加されたアミノ酸配列を有し、かつカブトガニファクターCの機能を有するポリペプチド。
(5)配列番号6に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド。
(6)上記(5)に示されるアミノ酸配列において、1個若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、および/または付加されたアミノ酸配列を有し、かつカブトガニファクターBの機能を有するポリペプチド。
(7)配列番号8に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチド。
(8)上記(7)に示されるアミノ酸配列において、1個若しくは複数個のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、および/または付加されたアミノ酸配列を有し、かつカブトガニプロクロッティングエンザイムの機能を有するポリペプチド。
上記ポリペプチドをコードするDNAとしては、例えば以下のものが挙げられる。
〔2〕配列番号3に示される塩基配列を有するDNA。
〔3〕配列番号5に示される塩基配列を有するDNA。
〔4〕配列番号7に示される塩基配列を有するDNA。
〔5〕配列番号9に示される塩基配列を有するDNA。
〔6〕配列番号10に示される塩基配列を有するDNA。
〔7〕配列番号11に示される塩基配列を有するDNA。
本発明の別の側面では、カブトガニ由来ファクターCを含むエンドトキシン測定剤を提供する。本発明に係るエンドトキシン測定剤に含まれるカブトガニ由来ファクターCは下記(a)であり、さらに(b)および/または(c)を含んでもよく、ヘリコバクター・ピロリ由来のエンドトキシンの相対力価が、ライセート試薬で測定される相対力価の0.1倍以上である、エンドトキシン測定剤の態様も含みうる。
(a)カブトガニ由来ファクターC組換えタンパク質
(b)カブトガニ由来ファクターB組換えタンパク質
(c)カブトガニ由来プロクロッティングエンザイム組換えタンパク質
ここで、(a)、(b)および(c)のリムルス因子の組換えタンパク質の態様は、前記<エンドトキシンの測定方法>における態様と同じである。
ライセート試薬としては、例えば、上記<エンドトキシン測定剤の感度の増強方法>に前述したものであってよい。
前述の通り、エンドトキシン測定剤を用いて測定されるヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの相対力価が所望の力価にない場合、エンドトキシン測定時のファクターC組換えタンパク質の含有量を増加させることで、ヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの相対力価を向上させることができる。
ここで、(a)、(b)および(c)のリムルス因子の組換えタンパク質の態様は、前記<エンドトキシンの測定方法>における態様と同じである。
ヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの相対力価は、例えば200(EU/μg)以上3000(EU/μg)以下、250(EU/μg)以上2500(EU/μg)以下、または300(EU/μg)以上2000(EU/μg)以下であってもよい。一実施形態では、エンドトキシン測定剤は、上記相対活性となる量のファクターC組換えタンパク質を含有する。ヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの相対力価は、定量下限以上の濃度のヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンを含む測定試料を用いて測定された値である。
なお、本態様は、上記ヘリコバクター・ピロリ由来のエンドトキシンの相対力価が、ライセート試薬で測定される相対力価の0.1倍以上である態様の具体例であってもよい。
一実施形態では、エンドトキシン測定剤は2因子系であり、上記一般式Y-X-Z(式中、Yは水素原子または保護基であり、XはファクターBの基質となるアミノ酸配列を含むペプチドであり、ZはXから遊離すると光学検出できるようになる標識物質である。)で表される検出用化合物を含む。Zはパラニトロアニリン、7-メトキシクマリン-4-酢酸、7-アミノ-4-メチルクマリン、および7-アミノ-4-トリフルオロメチルクマリン等が例示できる。具体的な一実施形態では、ZはXから遊離すると蛍光として検出できるようになる標識物質であり、好ましくは7-メトキシクマリン-4-酢酸、7-アミノ-4-メチルクマリン、または7-アミノ-4-トリフルオロメチルクマリンである。
一実施形態では、エンドトキシン測定剤は1因子系であり、上記一般式Y-X-Z(式中、Yは水素原子または保護基であり、XはファクターCの基質となるアミノ酸配列を含むペプチドであり、ZはXから遊離すると光学検出できるようになる標識物質である。)で表される検出用化合物を含む。Zはパラニトロアニリン、7-メトキシクマリン-4-酢酸、7-アミノ-4-メチルクマリン、および7-アミノ-4-トリフルオロメチルクマリン等が例示できる。具体的な一実施形態では、ZはXから遊離すると蛍光として検出できるようになる標識物質であり、好ましくは7-メトキシクマリン-4-酢酸、7-アミノ-4-メチルクマリン、または7-アミノ-4-トリフルオロメチルクマリンである。なお、1因子系の場合、2因子系や3因子系と比較して、少ない量のファクターC組換えタンパク質であっても、ヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの相対力価200 EU/μg以上を達成できる。
本発明のさらなる一態様は、ヘリコバクター・ピロリ由来のエンドトキシンに対する感度が増強されたエンドトキシン測定剤の製造方法であって、前記エンドトキシン測定剤は、カブトガニ由来ファクターC組換えタンパク質を含み、前記エンドトキシン測定剤における前記ファクターC組換えタンパク質の含有量を増加させることを含む、製造方法(以下、「本発明の製造方法」ということがある)に関する。本発明の一実施形態では、エンドトキシン測定剤における前記ファクターC組換えタンパク質の含有量を、感度の増強に十分な量に増加させる。
エンドトキシン測定剤における前記ファクターC組換えタンパク質の含有量の感度の増強に十分な量の態様としては、例えば、上記<エンドトキシン測定剤の感度の増強方法>に記載のエンドトキシン測定時における測定試料中のファクターC組換えタンパク質の含有量の態様となるように設定できる。具体的には、目的とする相対力価、測定系、ファクターC組換えタンパク質の宿主等に応じ変更できる。測定系が3因子系の場合、限定されないが、エンドトキシン測定剤(1回使用分)におけるファクターC組換えタンパク質の含有量を、エンドトキシン測定時における測定試料中の濃度として、140 ng/mL以上、162 ng/mL以上、180 ng/mL以上、200 ng/mL以上、250 ng/mL以上、300 ng/mL以上、400 ng/mL以上、500 ng/mL以上、600 ng/mL以上または700 ng/mL以上となる量に設定することができる。測定系が2因子系の場合、限定されないが、エンドトキシン測定剤(1回使用分)におけるファクターC組換えタンパク質の含有量を、エンドトキシン測定時における測定試料中の濃度として、235 ng/mL以上、250 ng/mL以上、300 ng/mL以上または350 ng/mL以上となる量に設定することができる。測定系が1因子系の場合、限定されないが、エンドトキシン測定剤(1回使用分)におけるファクターC組換えタンパク質の含有量を、エンドトキシン測定時における測定試料中の濃度として、10 ng/mL以上、20 ng/mL以上、30 ng/mL以上、40 ng/mL以上、50 ng/mL以上、60 ng/mL以上、70 ng/mL以上、100 ng/mL以上、500 ng/mL以上または800 ng/mL以上となる量に設定することができる。
エンドトキシン測定時における測定試料中のファクターC組換えタンパク質の含有量の上限は特に制限されないが、例えば10 mg/mL以下、生産効率の観点から好ましくは10 μg/mL未満(例えば5 μg/mL以下、2 μg/mL以下)である。
本発明の測定剤および本発明の製造方法により製造されるエンドトキシン測定剤は、ファクターC組換えタンパク質の含有量を増加させることで、エンドトキシン測定剤を用いて測定されるヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの相対力価が増強されている。
さらに本発明は、上記エンドトキシン測定剤を構成品として含むことを特徴とするエンドトキシン測定用キットの態様も含みうる。
上記キットは、本発明の測定方法を行うために好適に用いることができる。
組換え試薬およびライセート試薬を用いて、由来が異なるエンドトキシンに対する感度の相違を比較した。
(2)PyroGene(ロンザ社):市販組換え試薬B
(3)EndoZyme(登録商標)II(ビオメリュー社):市販組換え試薬C
(4)Endospecy(登録商標)ES-50M(生化学工業株式会社):市販ライセート試薬A
(5)Kinetic QCL(ロンザ社):市販ライセート試薬B
A. 組換えタンパク質の調製
Mizumura H, Ogura N, Aketagawa J, Aizawa M, Kobayashi Y, Kawabata SI, Oda T. Innate Immun. 2017 Feb;23(2):136-146.または、「リムルス属由来の組換え蛋白質及びこれをコードするDNA」(WO 2018/074498 A1)に従い、タキプレウス・トリデンタツス(Tachypleus tridentatus、T.t.)由来のrFC、rFBおよびrPCEを下記の通り発現させ、各種酵素液を得た。なお、T.t.由来のFCをコードするDNAとして配列番号1を、T.t.由来のFBをコードするDNAとして配列番号5または9を、T.t.由来のPCEをコードするDNAとして配列番号7を用いた。
チャイニーズハムスター卵巣由来細胞株(CHO DG44細胞)を宿主として用いて、以下の手順により、rFC酵素液を調製した。
昆虫細胞(Sf9細胞)を宿主細胞として用いて、以下の手順により、rFC酵素液を調製した。
T.t.由来のFCをコードするDNA(配列番号1)を発現ベクター(pIZ-V5;Life Technologies Corporation)のEcoRVとMluI認識部位の間に挿入し、FC発現プラスミドを作製した。FC発現プラスミドを、セルフェクチン試薬(Life Technologies Corporation)を用いてSf9細胞に導入した。細胞を28 ℃で静置培養し、発現プラスミドがゲノム上に導入された細胞をゼオシン(Invitrogen)で選択した。その後、ファクターC遺伝子を安定発現している候補をクローニングシリンダー法で単離し、ファクターC高発現Sf9細胞株を選抜した。rFC高発現Sf9細胞株を、1xペニシリン/ストレプトマイシン(Life Technologies Corporation)と50 μg/mLゼオシンとを含んだSf900III培地で対数増殖期後半(6-8x106cells/mL)まで浮遊培養(28 ℃)した。培養液を遠心分離(3,000xg、30分、4 ℃)して培養上清を得て、rFC酵素液を調製した。
昆虫細胞(Sf9細胞)を宿主として用いて、以下の手順により、rFBおよびrPCE酵素液を調製した。
T.t.由来のFBおよびPCEをコードするDNA(配列番号7,9)を発現ベクター(pIZ-V5;Life Technologies Corporation)のEcoRVとMluI認識部位の間に挿入し、FB発現プラスミドおよびPCE発現プラスミドをそれぞれ作製した。なお、配列番号9に示す塩基配列は、配列番号5に示す塩基配列が、昆虫細胞での発現に最適化された塩基配列である。FCの場合と同様の方法により、rFBおよびrPCE酵素液を調製した。rFBおよびrPCE酵素液中のタンパク濃度は、プロテインアッセイキット(Bio-Rad Laboratories)により測定した。
Expi CHO Expression System(Thermo Fisher Scientific)を用いて、添付の説明書に従い、rFC酵素液を調製した。
試料中のrFC濃度は、Kobayashi Y, Shiga T, Shibata T, Sako M, Maenaka K, Koshiba T, Mizumura H, Oda T, Kawabata S. J Biol Chem. 2014 Sep 12;289(37):25987-95.を参考に、抗FC抗体を用いたELISA法により算出した。具体的には、捕捉抗体として抗FC抗体である2C12モノクローナル抗体(マウス)を、検出抗体として抗FCポリクローナル抗体(ウサギ)を、二次抗体としてホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP)標識抗ウサギIgGポリクローナル抗体(ヤギ)(Bio-Rad Laboratories)を用いた。TMB One Component HRP Microwell Substrate(SURMODICS)を用いて450 nm(対照630 nm)の吸光度を測定した。試料中のrFC濃度は、精製FCであらかじめ作成した検量線により算出した。なお、市販組換え試薬Aを用いた試験において、エンドトキシン測定時のrFC濃度は162 ng/mL未満であった。
ライセート試薬を用いた場合、ヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価は約2000 EU/μgであった(表1)。このことから、組換え試薬を用いた場合のヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシン相対力価は、200 EU/μg以上であることが望ましい(菊池裕・他 医薬品医療機器レギュラトリーサイエンスVol.48 (2017), No.4, P252-260)。
CHO DG44細胞で作製したrFCとrFBおよびrPCEを含む3因子系でのヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。
CHO DG44細胞で作製したrFCおよびrFBを含む(rPCEを含まない)2因子系でのヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。
CHO DG44細胞で作製したrFCを含む(rFBまたはrPCEを含まない)1因子系でのヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。
Expi CHO Expression System(一過性発現系)で作製したrFCとrFBおよびrPCEを含む3因子系でのヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。
実施例2C.(1)に準じてヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。その結果、測定試料中のrFC濃度が743 ng/mL以上のとき、相対力価が200 EU/μg以上となった。すなわち、測定試料中のrFC濃度を増やすことで、感度が増強されることが判明した(表5)。なお、測定試料中のrFC濃度を高くしても、ブランクの吸光度変化率は上昇しなかった。
Expi CHO Expression System(一過性発現系)で作製したrFCを含む(rFBまたはrPCEを含まない)1因子系でのヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。
実施例2C.(3)に準じてヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。その結果、測定試料中のrFC濃度が77 ng/mL以上のとき、相対力価が200 EU/μg以上となった。すなわち、測定試料中のrFC濃度を増やすことで、感度が増強されることが判明した(表6)。なお、測定試料中のrFC濃度を高くしても、ブランクのΔRFUはほとんど上昇しなかった。
Sf9細胞で作製したrFC、rFBおよびrPCEを含む3因子系でのヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。
実施例2C.(1)に準じてヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。その結果、測定試料中のrFC濃度が394 ng/mL以上のとき、相対力価が200 EU/μg以上となった。すなわち、測定試料中のrFC濃度を増やすことで、感度が増強されることが判明した(表7)。なお、測定試料中のrFC濃度を高くしても、ブランクの吸光度変化率は上昇しなかった。
Sf9細胞で作製したrFCを含む(rFBまたはrPCEを含まない)1因子系でのヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。
実施例2C.(3)に準じてヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。ただし、RSEおよびヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの測定試料中の濃度は、それぞれ0.25 EU/mLおよび0.25 ng/mLとなるよう調製した。その結果、測定試料中のrFC濃度が93 ng/mL以上のとき、相対力価が200 EU/μg以上となった。すなわち、測定試料中のrFC濃度を増やすことで、感度が増強されることが判明した(表8)。なお、測定試料中のrFC濃度を高くしても、ブランクのΔRFUはほとんど上昇しなかった。
A. 組換えタンパク質の調製
実施例2A.(1)に準じて、チャイニーズハムスター卵巣由来細胞株(CHO DG44細胞)を宿主として、リムルス・ポリフェムス(Limulus Polyphemus、L.p.)由来rFCを発現させ、L.p. rFC酵素液を得た。なお、L.p.由来のFCをコードするDNAとしては、配列番号11のものを用いた。
実施例2B.に準じて試料中のL.p. rFC濃度を測定した。試料中のL.p. rFC濃度は、精製したL.p. rFCであらかじめ作成した検量線により算出した。
(1) CHO DG44細胞で作製したL.p. rFCを含むエンドトキシン測定剤(1因子系)
CHO DG44細胞で作製したL.p. rFCを含む(rFBまたはrPCEを含まない)1因子系でのヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。なお、RSEおよびヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの測定試料中の濃度は、それぞれ5 EU/mLおよび25 ng/mLとなるよう調製した。
rFCとして市販組換え試薬B(PyroGene、ロンザ社)に含まれるrFC Enzyme Solutionを用いた。
実施例2B.に準じて試料中のrFC濃度を測定した。試料中のrFC濃度は、精製したカルシノスコルピウス・ロツンディカウダ(Carcinoscorpius rotundicauda、C.r.)rFCであらかじめ作成した検量線により算出した。
(1) rFCを含むエンドトキシン測定剤(1因子系)
rFC Enzyme Solution(rFBまたはrPCEを含まない)を用いて、1因子系でのヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。なお、RSEおよびヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの測定試料中の濃度は、それぞれ0.025 EU/mLおよび5 ng/mLとなるよう調製した。
rFB含有量が異なる測定試料を調製し、実施例2C.(1)に準じてヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。なお、測定試料間のrFCおよびrPCEは同一濃度になるよう調製した。
その結果、測定試料中のrFBの濃度を増加すると、ブランクおよびRSEの吸光度変化率は上昇したが、ヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの吸光度変化率はほとんど変化しなかった。つまり、測定試料中のrFBを増加させても、ヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンに対する感度は増強されなかった(図2)。
rPCE含有量が異なる測定試料を調製し、実施例2C.(1)に準じてヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの相対力価を求めた。なお、測定試料間のrFCおよびrFBは同一濃度になるよう調製した。
その結果、測定試料中のrPCEの濃度を増加すると、ブランク、RSEおよびヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンの吸光度変化率が同時に上昇した。すなわち、測定試料中のrPCEを増加させても、ヘリコバクター・ピロリCA2由来エンドトキシンに対する感度は増強されなかった(図3)。
配列番号1:タキプレウス・トリデンタツスのファクターCのcDNAの塩基配列
配列番号2:タキプレウス・トリデンタツスのファクターCのアミノ酸配列
配列番号3:カルシノスコルピウス・ロツンディカウダのファクターCのcDNAの塩基配列
配列番号4:カルシノスコルピウス・ロツンディカウダのファクターCのアミノ酸配列
配列番号5:タキプレウス・トリデンタツスのファクターBのcDNAの塩基配列
配列番号6:タキプレウス・トリデンタツスのファクターBのアミノ酸配列
配列番号7:タキプレウス・トリデンタツスのプロクロッティングエンザイムのcDNAの塩基配列
配列番号8:タキプレウス・トリデンタツスのプロクロッティングエンザイムのアミノ酸配列
配列番号9:昆虫細胞での発現にコドンを最適化した、タキプレウス・トリデンタツスのファクターBのcDNAの塩基配列
配列番号10:リムルス・ポリフェムスのファクターCのcDNAの塩基配列
配列番号11:CHO細胞での発現にコドンを最適化した、リムルス・ポリフェムスのファクターCのcDNAの塩基配列
配列番号12:リムルス・ポリフェムスのファクターCのアミノ酸配列
Claims (13)
- ヘリコバクター・ピロリ(Helicobacter pylori)由来のエンドトキシンに対するエン
ドトキシン測定剤の感度を増強させる方法であって、
前記エンドトキシン測定剤は、哺乳類細胞、昆虫細胞、酵母、及び寄生性原生動物からなる群から選択される培養細胞を宿主とするカブトガニ由来ファクターC組換えタンパク
質を含み、
エンドトキシン測定時の前記ファクターC組換えタンパク質の含有量を、日本薬局方エ
ンドトキシン標準品(大腸菌O113:H10由来のエンドトキシン)に対するヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの相対力価が200(EU/μg)以上となるのに十分な量に調整す
ることを含む、方法。 - 前記エンドトキシン測定剤が、カブトガニ由来ファクターB組換えタンパク質を含む、
請求項1に記載の方法。 - 前記エンドトキシン測定剤が、カブトガニ由来プロクロッティングエンザイム組換えタンパク質を含む、請求項1または2に記載の方法。
- 前記エンドトキシン測定剤が検出用化合物を含む、請求項1〜3のいずれか1項に記載の方法。
- ヘリコバクター・ピロリ(Helicobacter pylori)由来のエンドトキシンに対するエン
ドトキシン測定剤の感度が増強されたエンドトキシン測定方法であって、
前記エンドトキシン測定剤と被検体とを含むエンドトキシン測定試料を調製することを含み、
前記エンドトキシン測定剤は、哺乳類細胞、昆虫細胞、酵母、及び寄生性原生動物からなる群から選択される培養細胞を宿主とするカブトガニ由来ファクターC組換えタンパク
質を含み、
前記感度は、前記エンドトキシン測定試料における前記ファクターC組換えタンパク質
の濃度を、日本薬局方エンドトキシン標準品(大腸菌O113:H10由来のエンドトキシン)に対するヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの相対力価が200(EU/μg)以上とな
るのに十分な量に調整することによって増強される、方法。 - 前記エンドトキシン測定剤が、カブトガニ由来ファクターB組換えタンパク質を含む、
請求項5に記載の方法。 - 前記エンドトキシン測定剤が、カブトガニ由来プロクロッティングエンザイム組換えタンパク質を含む、請求項5または6に記載の方法。
- 前記エンドトキシン測定剤が検出用化合物を含む、請求項5〜7のいずれか1項に記載の方法。
- ヘリコバクター・ピロリ(Helicobacter pylori)由来のエンドトキシンに対する感度
が増強されたエンドトキシン測定剤の製造方法であって、
前記エンドトキシン測定剤は、カブトガニ由来ファクターC組換えタンパク質を含み、
前記エンドトキシン測定剤における前記ファクターC組換えタンパク質の含有量を、日
本薬局方エンドトキシン標準品(大腸菌O113:H10由来のエンドトキシン)に対するヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの相対力価が200(EU/μg)以上となるのに十分な
量に調整することを含む、製造方法。 - カブトガニ由来ファクターCを含むエンドトキシン測定剤であって、
当該カブトガニ由来ファクターCは、哺乳類細胞、昆虫細胞、酵母、及び寄生性原生動
物からなる群から選択される培養細胞を宿主とする組換えタンパク質であり、
日本薬局方エンドトキシン標準品(大腸菌O113:H10由来のエンドトキシン)に対するヘリコバクター・ピロリ由来エンドトキシンの相対力価が200(EU/μg)以上となるのに十
分な量の前記カブトガニ由来ファクターCを含む、エンドトキシン測定剤。 - カブトガニ由来ファクターB組換えタンパク質、カブトガニ由来プロクロッティングエ
ンザイム組換えタンパク質、および一般式Y-X-Zで表される検出用化合物を含む、請求項
10に記載のエンドトキシン測定剤:
ただし、上記一般式中、Yは水素原子または保護基であり、Xは前記プロクロッティングエンザイム組換えタンパク質の基質となるアミノ酸配列を含むペプチドであり、ZはXから遊離すると光学検出できるようになる標識物質である。 - カブトガニ由来ファクターB組換えタンパク質、および一般式Y-X-Zで表される検出用化合物を含む、請求項10に記載のエンドトキシン測定剤:
ただし、上記一般式中、Yは水素原子または保護基であり、Xは前記ファクターB組換え
タンパク質の基質となるアミノ酸配列を含むペプチドであり、ZはXから遊離すると光学検出できるようになる標識物質である。 - 一般式Y-X-Zで表される検出用化合物を含む、請求項10に記載のエンドトキシン測定
剤:
ただし、上記一般式中、Yは水素原子または保護基であり、Xは前記ファクターCの基質
となるアミノ酸配列を含むペプチドであり、ZはXから遊離すると光学検出できるようになる標識物質である。
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