JP5465182B2 - ポリアルキレンイミンを含むウイルス感染症治療薬 - Google Patents
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Description
変性させたポリアルキレンイミンの具体例としては、ポリアルキレンイミンエトキシレート、特にポリエチレンイミンエトキシレートが挙げられる。ポリアルキレンイミンエトキシレートとは、ポリアルキレンイミンの窒素原子上にポリエチレングリコール鎖が結合した構造を有するポリマーである。ポリアルキレンイミンエトキシレートは、例えばポリアルキレンイミンにエポキシ化合物を反応させることによって合成することができる。より具体的には、例えばポリエチレンイミンエトキシレートは、窒素雰囲気下、高温、高圧、触媒存在の条件でポリエチレンイミンにエチレンオキサイドを液中フィードすることにより、ポリエチレンイミン中のアミノ基に含まれる活性水素を基点としてエチレンオキサイドを付加させて合成することができる。本発明に用いることができる具体的なポリアルキレンイミンエトキシレートとしては、ポリエチレンイミンエトキシレートであって、重量平均分子量が2,000〜15,000程度、好ましくは4,000〜12,000、特に5,500〜10,000程度であり、無水フタル化法で測定した水酸基価が50〜500mgKOH/g、好ましくは70〜400mgKOH/gであるものが好ましい。中でも、ポリエチレンイミンを中心とするデンドリマー構造を有するポリエチレンイミンエトキシレートが特に好ましい。利用可能なポリエチレンイミンエトキシレートの例としては、例えば日本触媒社製のエポミンSP-006あるいはSP-018にエチレンオキサイドを反応させて調製したものが挙げられる。
単純ヘルペスウイルス2型(HSV-2)に対するポリエチレンイミン(PEI)の抗ウイルス作用について、マウスを用いた感染実験を行った。
卵黄レシチン、コレステロール、ステアリルアミン(モル比で5:5:4)から成るリポソーム(総脂質20mg/ml)とSP-006を含む水溶液を、1N塩酸でpHを7.0-7.4に調整した。このポリエチレンイミン-リポソーム複合体には、SP-006が20mg/mlの濃度で含有されている。この混合物について、BALB/cマウスの性器ヘルペスモデルにおける有効性を評価した。実験は上記の実施例1と同様に行った。
HSV-2ウイルスが実際にポリエチレンイミンによって不活化されるかどうかを検討した。実験は以下の手順に従って行った。
(2)HSV-2(2x102PFU/100μlまたは2x104PFU/100μl)と上記(1)のポリエチレンイミン希釈液とを1:1で混合し、37℃、1時間処理した
(3)ウイルス量が2x102PFU/100μlの場合には希釈せずに、2x104PFU/100μlの場合にはPBSで100倍希釈後、プラークアッセイ法で残存ウイルス量を測定した
その結果を表2にまとめた。希釈処理を加えた場合は、希釈処理を行わなかった場合と比較すると残存ウイルス量が増加し、ウイルス不活化作用がやや弱まった。このことは、ポリエチレンイミンは殺ウイルス活性を有しないものの、ウイルスとの間に緩やかな結合(静電的結合)を起こして、可逆的にウイルスの感染を阻止する作用、すなわちウイルス不活化作用を有することを示している。
陽性対照として、強力な殺ウイルス活性を示す市販消毒薬ポピドンヨード(明治製菓社製イソジン(登録商標)、ポピドンヨード含有量100mg/ml)の殺ウイルス活性を、上記の実施例3と同様の方法で検討した。
HSV-2ウイルスがポリエチレンイミンによって宿主細胞への吸着を阻害されているかどうかを検討した。実験は以下の手順で行った。
(2)ウイルス液とポリエチレンイミン液とを100μlずつVero細胞に加え、4℃で1時間処理した(4℃では、ウイルスの細胞への吸着は起こるが、その後のウイルスの細胞内侵入は起こらない)
(3)氷冷したリン酸緩衝生理食塩水で2回洗浄後、サンプル無添加の培地(0.8%メチルセルロース加)を重層した。
次に、宿主細胞に吸着したHSV-2が細胞内に侵入する段階に対するポリエチレンイミンの阻害効果を検討した。実験は以下の手順で行った。
(3)氷冷したリン酸緩衝生理食塩水で2回洗浄後、ポリエチレンイミン(SP-006またはP25K)を添加した培地を加えて、37℃で培養した(この温度に置くことによって、4℃で吸着していたウイルスが侵入を開始する)
(4)30分後または3時間後にクエン酸バッファー(pH 3.0)で1分間処理して、その時間までに侵入していなかったウイルスを不活化した
(5)すぐに培地(0.8%メチルセルロース加)を重層した
(6)3日後にプラーク数を測定した
サンプル存在下で細胞内に侵入したウイルス量を表5に示す。SP-006およびP25Kは濃度依存的にウイルス侵入を阻害した。その効果は吸着阻害効果に比べて強力であった。また実施例2においてウイルスの不活化がみられなかった濃度であっても、ウイルス侵入阻害効果が観察された。
HSV-2の宿主細胞への吸着に及ぼすポピドンヨードの影響を検討した。実験は上記の実施例4と同様に行った。その結果、サンプル存在下で細胞に吸着したウイルス量を表6に示す。ポリエチレンイミンとは異なり、ポピドンヨードには濃度依存的な吸着阻害効果がほとんどみられなかった。
HSV-2の宿主細胞への吸着に及ぼすアシクロビルの影響を検討した。実験は上記の実施例4と同様に行った。その結果、アシクロビル存在下で細胞に吸着したウイルス量を表8に示す。ポリエチレンイミンとは異なり、アシクロビルには濃度依存的な吸着阻害効果がほとんどみられなかった。
単純ヘルペスウイルス1型および2型、麻疹ウイルス、A型インフルエンザウイルスならびにヒトコロナウイルスに対するポリエチレンイミンの抗ウイルス活性をin vitroにおいて評価した。
(2)無添加対照の細胞数を100%として、各濃度のポリエチレンイミンで処理した時の細胞数を%で表し、グラフ上で50%細胞増殖阻害濃度(CC50)を求めた
各種ウイルスに対するポリエチレンイミンの抗ウイルス活性は以下のようにして調べた。
以下の手順により、単純ヘルペスウイルス1型に対するポリエチレンイミンの増殖抑制効果を調べた。
(2)1-2日後に、単層状になっていることを確認した上で、0.2PFU(プラーク形成単位)/cellになるように、ウイルス液を適宜培地で希釈した
(3)ポリエチレンイミンを培地で適宜希釈した(終濃度:SP-003、SP-006、SP-012、SP-018、P-1000およびPEIE-3は0.0001〜10μl/ml、SP-200、PEIE-1およびPEIE-2は0.0001〜10μg/ml、以降の[B]〜[E]においても同様)
(4)培地を除去後、ウイルス感染を以下のように行った
A区:ウイルス液25μlとポリエチレンイミン25μlを同時に加え、室温で1時間、時々(5-10分に1回程度)プレートをゆすりながら感染させた
B区:A区のポリエチレンイミンの代わりに希釈液(培地)を加えて、A区と同様の操作を行った
(5)ウイルス液を除去後、PBS(-)で3回洗浄し、ポリエチレンイミン100μlと培地100μlとを各穴に加えた
(6)24時間後に、-80℃の冷凍庫に移し、凍結融解を3回行った
(7)35mmディッシュにVero細胞を単層状に培養しておき、3回の凍結融解が終了したサンプルをPBS(-)で100-105倍に希釈した
(8)希釈したウイルス液を、1ディッシュ当り100μl加えて、37℃、1時間、室温で感染させた
(9)メチルセルロース(MC)加MEM培地を1ディッシュ当たり1.5ml重層し、37℃のCO2インキュベータに入れた
(10)1-2日後に、プラークが適当な大きさになっていることを確認して、培地を除去し、クリスタルバイオレット液で固定・染色を行い、顕微鏡下でプラーク数を計算した
(11)無添加対照区のプラーク数を100%として、ポリエチレンイミン添加区のプラークの%を計算し、片対数グラフ上で50%ウイルス増殖阻害濃度(IC50)を求めた
(12)Vero細胞に対するCC50値とIC50値から、選択指数を求めた
単純ヘルペスウイルス1型は、アシクロビル(ACV)感受性株(KOS株)と耐性株(A4-3株)とを用いた。これらのウイルスに対するポリエチレンイミンの増殖抑制効果を表10(KOS株)と表11(A4-3株)に示す。ここで選択指数は、1以上あれば抗ウイルス活性を有すると考えられ、特に10以上あれば強力な抗ウイルス活性を有すると考えられる。
[A]と同様のプラークアッセイ法により、単純ヘルペスウイルス2型に対するポリエチレンイミンの増殖抑制効果を調べた。その結果を表12に示す。SP-006、SP-012およびSP-018はA区において高い選択指数を示し、SP-012が最も効果的であった。
[A]と同様のプラークアッセイ法により、麻疹ウイルスに対するポリエチレンイミンの増殖抑制効果を調べた。その結果を表13に示す。SP-006(A区)は10以上の選択指数を示した。
以下の手順により、A型インフルエンザウイルスに対するポリエチレンイミンの増殖抑制効果を調べた。
(2)1-2日後に、単層状になっていることを確認した上で、ウイルス液を0.2PFU/cellとなるように、適宜培地で希釈した
(3)ポリエチレンイミンを適宜培地で希釈した
(4)培地を除去後、ウイルス感染を次のように行った
A区:ウイルス液25μlとポリエチレンイミン25μlを同時に加え、室温で1時間、時々(5-10分に1回程度)プレートをゆすりながら感染させた
B区:A区のポリエチレンイミンの代わりに希釈液(培地)を加えて、A区と同様の操作を行った
(5)ウイルス液を除去後、PBS(-)で3回洗浄し、ポリエチレンイミン100μlと維持培地100μlとを各穴に加えた
(6)24時間後に、-80℃の冷凍庫に移した
(7)35mmディッシュにMDCK細胞を単層状に培養しておき、凍結保存しておいた培養物の上清をPBS(-)で100-105倍に希釈した
(8)希釈したウイルス液を、1ディッシュ当り100μl加えて、37℃、1時間、室温で感染させた
(9)インフルエンザウイルスアッセイ用寒天培地を1ディッシュ当たり2ml重層し、寒天が固化してから37℃のCO2インキュベータに入れた
(10)2日後に、プラークが適当な大きさになっていることを確認して、染色後プラーク数を計算した
(11)無添加対照区のプラーク数を100%として、ポリエチレンイミン添加区のプラークの%を計算し、片対数グラフ上で50%ウイルス増殖阻害濃度(IC50)を求めた
(12)MDCK細胞に対するCC50値とIC50値から、選択指数を求めた
用いたウイルスは、A/NWS/33(H1N1)である。結果を表14に示す。選択指数10以上のポリエチレンイミンはなかったが、PEIE-3は最も効果があり、次いでSP-012、SP-006が比較的高い選択性を示した。
以下の手順により、ヒトコロナウイルスに対するポリエチレンイミンの増殖抑制効果を調べた。
(2)1-2日後に、ほぼ単層状になっていることを確認した上で、ウイルス液を0.002TCID50になるように、適宜培地で希釈した
(3)ポリエチレンイミンを適宜培地で希釈した
(4)培地を除去後、ウイルス感染を次のように行った
A区:ウイルス液25μlとポリエチレンイミン25μlを同時に加え、室温で1時間、時々(5-10分に1回程度)プレートをゆすりながら感染させた
B区:A区のポリエチレンイミンの代わりに希釈液(培地)を加えて、A区と同様の操作を行った
(5)ウイルス液を除去後、PBS(-)で3回洗浄し、ポリエチレンイミン150μlと培地150μlとを各穴に加え、36℃で処理した
(6)3日後に、細胞変性効果(CPE)(円形化および腐肉形成(rounding and sloughing))を観察して(必要に応じてその程度を記録)、-80℃の冷凍庫に移した
(7)96穴プレートにほぼ単層状のMRC-5細胞を準備した
(8)3回凍結融解したウイルス液について、培地で3倍希釈系列(31-310)を作り、上記のプレートに4穴づつ、25μlを加えて感染させた(室温、1時間)
(9)培地を1穴当たり100μl加え、36℃のCO2インキュベータに入れた
(10)5日後に、CPEの有無を確認した
(11)Reed-Muench法でTCID50を求めた
(12)MRC-5細胞に対するCC50値とTCID50値から、選択指数を求めた
結果を表15に示す。ほぼすべてのポリエチレンイミンが高い選択指数を示し、SP-012が最も有効であった。PEIE-3も高い選択性を示した。この場合も、A区の方がB区よりも選択指数が高くなった。
(a)PEIE-1
ポリエチレンイミン(日本触媒社製のエポミンSP-006)172.3gを1.2Lオートクレーブに仕込み、150℃へ昇温した。その後エチレンオキサイド167.4g(3.8mol)をフィードして、ポリエチレンイミンにエチレンオキサイドを付加した。次いで、80℃まで冷却し、49%KOH水溶液を2.5g仕込み、165℃へ昇温した。20ml/分の流量で窒素バブリングしながら、0.05MPaへ減圧して脱水した後、エチレンオキサイドを443.5g(10.1mol)フィードして、ポリエチレンイミンにエチレンオキサイドを付加した。次いで80℃まで冷却し、酢酸を加えてpH7へ調整した。純水をポリエチレンイミンポリエトキシレート全量に対して10%添加し、20ml/分の流量で窒素バブリングしながら、0.005MPaへ減圧し、5時間脱気を行った。軽質不純物を除去することで、目的のPEI/PEG=22/78(重量比)、GPC法による重量平均分子量5,500、無水フタル化法による水酸基価370±20mgKOH/gのポリエチレンイミンポリエトキシレート(PEIE-1)を得た。
ポリエチレンイミン(日本触媒社製のエポミンSP-018)172.3gを1.2Lオートクレーブに仕込み、150℃へ昇温した。その後エチレンオキサイド167.4g(3.8mol)をフィードしてポリエチレンイミンにエチレンオキサイドを付加した。次いで80℃まで冷却し、49%KOH水溶液を2.5g仕込み、165℃へ昇温した。20ml/分の流量で窒素バブリングしながら、0.05MPaへ減圧して脱水した後、エチレンオキサイドを349.5g(7.9mol)フィードして、ポリエチレンイミンにエチレンオキサイドを付加した。次いで80℃まで冷却し、酢酸を加えてpH7へ調整した。純水をポリエチレンイミンポリエトキシレート全量に対して10%添加し、20ml/分の流量で窒素バブリングしながら、0.005MPaへ減圧し、5時間脱気を行った。軽質不純物を除去することで、目的のPEI/PEG=25/75(重量比)、GPC法による重量平均分子量7,500、無水フタル化法による水酸基価345±20mgKOH/gのポリエチレンイミンポリエトキシレート(PEIE-2)を得た。
ポリエチレンイミン(日本触媒社製のエポミンSP-006)180.0gを1.2Lオートクレーブに仕込み、150℃へ昇温した。その後エチレンオキサイド174.8g(3.97mol)をフィードして、ポリエチレンイミンにエチレンオキサイドを付加した。次いで80℃まで冷却し、49%KOH水溶液28.8g仕込み、165℃へ昇温した。20ml/分の流量で窒素バブリングしながら、0.05MPaへ減圧して脱水した後、エチレンオキサイドを469.4g(10.67mol)フィードして、ポリエチレンイミンにエチレンオキサイドを付加した。次いで80℃まで降温し、オートクレーブ内容液を抜出、抜出後の残液量を173.0gとした後、エチレンオキサイドを620.1g(13.2mol)フィードして、ポリエチレンイミンにエチレンオキサイドを付加した。この後、80℃まで冷却し、酢酸を加えてpH7へ調整した。純水をポリエチレンイミンポリエトキシレート全量に対して10%添加し、20ml/分の流量で窒素バブリングしながら、0.005MPaへ減圧し、5時間脱気を行った。軽質不純物を除去し、さらに純水を全量に対して20%添加し、固形分80%の水割り品として、目的のPEI/PEG=5/95(重量比)、GPC法による重量平均分子量10,000、無水フタル化法による水酸基価74.0±3.0mgKOH/gのポリエチレンイミンエトキシレート(PEIE-3)を得た。
実施例6のin vitroでの抗HSV-2活性試験において高い選択指数を示したSP-006及びSP-012を対象として、これらのポリエチレンイミンの抗ウイルス作用についてマウスを用いた感染実験を再度行った。
単純ヘルペスウイルス2型(HSV-2)がポリエチレンイミン(SP-012)の投与により薬剤耐性を有し得るか否かを検証した。
単純ヘルペスウイルス2型(HSV-2)治療薬であるアシクロビルとポリエチレンイミン(SP-012)とを同一投与量で処置した時のマウスの性器におけるHSV-2増殖の時間的過程を追跡した。
ポリエチレンイミン(SP-012)とリポソームの複合体を調製し、単純ヘルペスウイルス2型(HSV-2)に対する抗ウイルス活性をin vitroにおいて評価した。
中性のリポソーム(卵黄レシチン(EPC):コレステロール(Cho)=5:5、モル比)をポリエチレンイミン(SP-012)水溶液と混合し(最終脂質濃度20mg/ml、ポリエチレンイミン濃度100mg/ml)、1N塩酸でpHを7.0-7.4に調整した。
ポリエチレングリコール(PEG)でコートしたリポソーム(EPC:Cho:PEG=5:5:0.5、モル比)をポリエチレンイミン(SP-012)水溶液と混合し(最終脂質濃度20mg/ml、ポリエチレンイミン濃度100mg/mL)、1N塩酸でpH7.0-7.4に調整した。
実施例6(特に[B]を参照)と同様の手順により、アシクロビル、ポリエチレンイミン(SP-012)、ポリエチレンイミン(SP-012)-中性リポソーム複合体、ポリエチレンイミン(SP-012)-PEGリポソーム複合体のそれぞれのサンプルを用い、細胞毒性(50%細胞増殖阻害濃度(CC50))、単純ヘルペスウイルス2型に対する抗ウイルス活性(50%ウイルス増殖阻害濃度(IC50))および選択指数(CC50/IC50)を求めた。アシクロビルあるいはポリエチレンイミンの濃度範囲は、細胞毒性試験時は0.02〜2000μg/ml、抗ウイルス活性試験時は0.01〜1000μg/mlとした。その結果を表19に示す。ポリエチレンイミンと中性リポソームあるいはPEGリポソームとの複合体は、ポリエチレンイミンを単独で用いた場合と比べてより高い選択指数を示し、非常に高い抗ウイルス活性を有することがわかった。
Claims (5)
- 重量平均分子量が300〜30,000の範囲である分岐鎖ポリエチレンイミンを含む、ヘルペスウイルス科、パラミクソウイルス科、オルトミクソウイルス科またはコロナウイルス科に属するウイルスによるウイルス感染症を治療または予防するための外用医薬組成物。
- 分岐鎖ポリエチレンイミンを20mg/ml以下の量で含む、請求項1に記載の医薬組成物。
- さらに脂質粒子を含む、請求項1または2に記載の医薬組成物。
- ヘルペスウイルス、麻疹ウイルス、インフルエンザウイルス、またはヒトコロナウイルスによる感染症を治療または予防するための、請求項1〜3のいずれか1項に記載の医薬組成物。
- ヘルペスウイルス感染症を治療または予防するための、請求項1〜4のいずれか1項に記載の医薬組成物。
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