JP5443015B2 - 医薬組成物 - Google Patents
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Description
本発明に係る医薬組成物の利用形態として、剤形・形態は任意であり、カプセル、粉末、顆粒、固形、液体、ゲル等の形態で利用できる。例えば、ドリンクや製剤等の形態を有する医薬品とすることができる。
乾燥ピーナッツの渋皮1000gに、16Lの60%エタノールを加え、40℃にて1時間攪拌抽出した後、ろ過し、1回目の抽出液を得た。抽出残渣に再度2Lの60%エタノールを加え、40℃にて30分攪拌抽出した後、ろ過し、2回目の抽出液を得た。1回目の抽出液と2回目の抽出液とを合わせ、40℃にて減圧濃縮し、約1/50容量まで濃縮後、ダイアイオンHP−20(商品名、三菱化学製)5Lに有効成分を吸着した。15Lの水で水洗し、糖質などを除去した後、40%エタノール10Lで有効成分を溶出させ、有効成分を含む画分を集め、40℃にて約1/50容量まで減圧濃縮した。濃縮物を凍結乾燥し、ピーナッツ渋皮抽出物115.8gを得た。
(1)試験方法
被験動物として、6週齢の雄ddYマウス(日本SLC製)であって、体重29〜31gのもの4匹を使用した。ピーナッツ渋皮抽出物をPBS(2.7mM 塩化カリウム、1.5mM リン酸二水素カリウム、137mM 塩化ナトリム、10mM リン酸水素二ナトリム;pH7.4)に溶解し、ピーナッツ渋皮抽出物のPBS溶液を調製した。ピーナッツ渋皮抽出物の投与量が、それぞれ、30μg/kg、300μg/kg、3000μg/kg体重となるように、上記溶液を上記4匹のマウスのうちの3匹に腹腔内投与した。また、残りの1匹のマウスに、PBSのみを投与し、対照(Control)群とした。
(2)試験結果
図1は、ピーナッツ渋皮抽出物を腹腔内投与した時のマウスの海馬におけるリン酸化MAPキナーゼの亢進効果の結果である。なお、縦軸はリン酸化MAPキナーゼと全MAPキナーゼの割合を示す。ピーナッツ渋皮抽出物を投与したマウスの海馬は、PBSのみを投与したマウス(コントロール)の海馬と比べ、投与量が300μg/kgのもので約4.2倍、投与量が3000μg/kgのもので約2.7倍、MAPキナーゼのリン酸化が亢進されていることが確認できた。
(1)被験動物の用意
被験動物として、6週齢の雄のddYマウス(日本SLC)を購入した。マウスは6群に分け、飼育室であるプラスチックゲージ(幅280mm×深さ440mm×高さ180 mm)内で自由飲食にて飼育した。飼育室は、室温25±1℃に保ち、7時から19時まで点灯した。
(2)ストレスの付加方法
6群のうち、A群、C群、E群を、ストレスをかけない正常マウスの群(コントロール群)とした。一方、B群、D群、F群を、ストレスをかけうつ状態にしたマウスの群(ストレス群)とした。
ine.2006;13:658−67.)のマイルドストレス法を一部改良して用い、以下のように行った。なお、マイルドストレスの負荷は前述の尾懸垂試験による選別の二日後から開始した。B群、D群、F群のマウスに対し、まず15分間の強制水泳を行った。その48時間後から傾斜ケージで48時間、汚物ケージで24時間、振とうケージで24時間飼育した。なお、各種ストレスをかけ終わって24時間はストレスをかけずにマウスを休ませた。傾斜ケージ以降のストレスを三回り繰り返した。
(3)サンプルの投与方法
サンプルの投与方法は、以下のようにした。各群のマウスに対し、前述のマイルドストレスの負荷における強制水泳の48時間後から1日1回、3週間、反復経口投与により、サンプルを投与した。投与するサンプルは、C群、D群、E群、F群については、ピーナッツ渋皮抽出物をPBSに溶解したものとした。投与量は、C群、D群については、1mg/kg体重となるように調整し、E群、F群については、3mg/kg体重となるように調整した。A群、B群については、PBSのみを投与した。
(4)尾懸垂試験の方法
サンプルを3週間反復経口投与した後、各群のマウスに対し、尾懸垂試験を、以下のように実施した。尻尾の先端から約1cmの所を指先で摘み、床から10cmの高さで固定し、逆さ吊りした。マウスは始めの内は激しく動き抵抗するが、次第に諦め無動化する。尾懸垂開始から6分以内の無動化時間が長いマウスほど、うつの症状が重いという指標とし、投与したピーナッツ渋皮抽出物の抗うつ効果を評価した。この尾懸垂試験の評価は19時から22時までの時間帯に実施した。
(5)尾懸垂試験の結果
図3は、尾懸垂試験の結果を表す。なお縦軸は無動化時間を示し、各群6匹の平均値±標準誤差で表示している。図中の##マークは、PBSのみを投与したコントロール群(A群)と、PBSのみを投与したストレス群(B群)との間に、試験値における有意な差(##<0.01)があることを示す。また。*マークは、PBSのみを投与したストレス群(B群)と、3mg/kgのピーナッツ渋皮抽出物を投与したストレス群(F群)との間に、の無動化時間における有意な差(p<0.05)があることを示す。
(6)ガラス玉覆い隠し試験の方法
サンプルを3週間反復経口投与した後、各群のマウスに対し、ガラス玉覆い隠し試験を、以下のように実施した。透明なアクリル製の板で作成したケージ(幅300mm×深さ300mm×高さ300mm)にチップを厚さ5cmになるように敷き詰め、その上に直径2cmの透明なガラス玉を25個、間を縦横5cmずつ空けて置いた。このケージにマウスを放ち、15分間自由行動させた後、3分の2以上がチップで覆い隠されたガラス玉の数を数えた。隠されたガラス玉の数における減少を指標として、投与したピーナッツ渋皮抽出物の抗不安あるいは抗強迫性障害、抗パニック障害効果を評価した。このガラス玉覆い隠し試験は、8時から11時までの時間帯に実施した。
(7)ガラス玉覆い隠し試験の結果
図4は、ガラス玉覆い隠し試験の結果を表す。なお、縦軸は隠したガラス玉の個数を示し、各群6匹の平均値±標準誤差で表示している。図中の#マークは、PBSのみを投与したコントロール群(A群)と、PBSのみを投与したストレス群(B群)との間に、試験値における有意な差(#<0.05)があることを示す。また。*マークは、PBSのみを投与したストレス群(B群)と、3mg/kgのピーナッツ渋皮抽出物を投与したストレス群(F群)との間に、試験値における有意な差(*:p<0.05)があることを示す。
(8)高架式十字迷路試験の試験方法
サンプルを3週間反復経口投与した後、各群のマウスに対し、高架式十字迷路試験を、以下のように実施した。図5に示すような、高架式十字迷路床を用意した。すなわち、床から高さ60cmの所に、中央で直角に交差した十字の板(幅5cm×長さ65cm)を設置し、片方向の板(クローズドアーム)については、高さ10cmの透明なアクリル製の板で両側を仕切った。この十字路にマウスを放ち、5分間自由行動させ、アクリル製の板で仕切られてないアーム(オープンアーム)にいた時間とアクリル製の板で仕切られた板(クローズドアーム)に入った回数とを計測した。オープンアームにいた時間の長短を指標として、投与したピーナッツ渋皮抽出物の抗不安効果を評価した。また、クローズドアームに入った回数を指標として、投与したピーナッツ渋皮抽出物の行動量への影響の評価とした。この高架式十字迷路試験は9時から11時までの時間帯に実施した。
(9)高架式十字迷路試験の結果
図6は、高架式十字迷路試験において、各群のマウスがオープンアームにいた時間を示す。なお、縦軸はオープンアームにいた時間を示し、各群6匹の平均値±標準誤差で表示している。図中の#マークは、PBSのみを投与したコントロール群(A群)と、PBSのみを投与したストレス群(B群)との間に、試験値における有意な差(#<0.05)があることを示す。また。*マークは、PBSのみを投与したストレス群(B群)と、3mg/kgのピーナッツ渋皮抽出物を投与したストレス群(F群)との間に、試験値における有意な差(*:p<0.05)があることを示す。
(10)オープンフィールド試験の試験方法
サンプルを3週間反復経口投与した後、各群のマウスに対し、オープンフィールド試験を、以下のように実施した。幅×深さ×高さが各40cmである白色のアクリル板製のケージの床に、縦4本横4本等間隔に線を引き、床を16等分した。このケージにマウスを放ち、5分間自由行動させ、その間に中央の4マスにいた時間と、マウスが動いていた時間とをそれぞれ測定した。中央にいた時間の長短を指標として、投与したピーナッツ渋皮抽出物の抗不安効果を評価した。また、マウスが動いていた時間を指標として、投与したピーナッツ渋皮抽出物の活動量に与える効果を評価した。このオープンフィールド試験は8時から10時の時間帯に実施した。
(11)オープンフィールド試験の結果
図7は、オープンフィールド試験において、各群のマウスが中央の4マスにいた時間を表す。なお、縦軸は中央の4マスにいた時間を示し、各群6匹の平均値±標準誤差で表示している。図中の##マークは、PBSのみを投与したコントロール群(A群)と、PBSのみを投与したストレス群(B群)との間に、試験値における有意な差(##<0.01)があることを示す。また。**マークは、PBSのみを投与したストレス群(B群)と、3mg/kgのピーナッツ渋皮抽出物を投与したストレス群(F群)との間に、試験値における有意な差(**:p<0.01)があることを示す。
(1)被験動物の準備
6週齢の雄のddYマウス(日本SLC)を使用した。マウスはコントロール群、ピーナッツ渋皮抽出物1mg/kg投与群、3mg/kg投与群、10mg/kg投与群の4群に分け、飼育室であるプラスチックゲージ(幅280mm×深さ440mm×高さ180mm)内で自由飲食にて一週間飼育した。飼育室は、室温25±1℃に保ち、7時から19時まで点灯した。
(2)サンプル投与方法
ピーナッツ渋皮抽出物をPBSに溶解し、ピーナッツ渋皮抽出物のPBS溶液を調製した。ピーナッツ渋皮抽出物の投与量が、それぞれ、1mg/kg、3mg/kg、10mg/kg体重となるように、上記溶液を、1mg/kg投与群、3mg/kg投与群、10mg/kg投与群のマウスに、一日一回、反復経口投与した。なお、コントロール群には、上記溶液の代わりに、PBSのみを投与した。
(3)Y字迷路試験の試験方法
サンプルを2週間反復経口投与した後、各群のマウスに対し、Y字迷路試験を、以下の
ように実施した。アームの全長が40cm、壁の高さが30cm、床の幅が5cmで、3本のアームがそれぞれ120度の角度で接続されたY字迷路を使用した。マウスを、最後
のサンプル投与から12時間後に、Y字迷路のいずれかのアームの先端に置き、8分間迷
路内を自由探索させ、マウスが選択したアームを、選択した順に記録した。マウスが測定時間内に各アームを選択した回数を記録し、これを総アーム選択数とした。次に、この中から連続して異なる3本のアームを選択した組み合わせを調べ、この数を交替行動数とした。交替行動数を、総アーム選択数から2を引いた数で割り、その値に100をかけて交替行動率を求めた。交替行動率が高いほど作業記憶が改善されたことを示している。なお、Y迷路試験は8:00から11:00の時間帯に実施した。
(4)Y字迷路試験の結果
図8は、Y字迷路試験における交替行動率を表す。なお縦軸は交替行動率を示し、各群6匹の平均値±標準誤差で表示している。図中の#マークは、コントロール群と、3mg/kg投与群との間に、試験値における有意な差(#<0.05)があることを示している。ピーナッツ渋皮抽出物を3mg/kg投与した群では、コントロール群に比べ、交替行動率が有意に増加した。このことからピーナッツ渋皮抽出物による作業記憶の改善作用が確認された。また、ピーナッツ渋皮抽出物を過剰量投与した(10mg/kg)群には改善作用が認められなかった。
(5)新規物質認識試験の試験方法
各群のマウスに対し、新規物質認識試験を、以下のように実施した。幅、深さ、高さがいずれも30cmの白色のアクリル板製のケージを使用した。13日目のサンプル投与終了から12時間後に、試験に用いるケージに1時間マウスを放ち、ケージに慣れさせた。
次に、14日目のサンプル投与終了から12時間後に、形が同じ二つの木製の白色球体(直径3cm)を、壁から10cmの所に互いに10cmの間隔を空けて置いた前述のケージにマウスを15分間放ち、二つの球体を記憶させた。更にその24時間後、今度は二つの球体の内一つを黒色の立方体(縦×横×高さいずれも3cm)に置き換え、マウスを10分間ケージに放ち、新しく置いた立方体(新規物質)を探している時間と記憶させた球体を探している時間とをそれぞれ測定した。新規物質を探している時間と記憶させた球体を探している時間とを足した時間を総探索時間とし、新規物質探索時間を総探索時間で割り、その値に100をかけて新規物質認識指数を求めた。新規物質認識指数が高いほど、少なくとも24時間の記憶保持を有する物質認識記憶が改善されたことを示している。なお、新規物質認識試験は8:00から12:00の時間帯に実施した。
(6)新規物質認識試験の結果
図9は、新規物質認識試験における新規物質認識指数を表す。なお、縦軸は新規物質認識指数を示し、各群5匹の平均値±標準誤差で表示している。図中の#マークは、コントロール群と1mg/kg投与群との間に、試験値における有意な差(#<0.05)があることを示す。また、図中の##マークは、コントロール群と3mg/kg投与群との間に、試験値における有意な差(##<0.01)があることを示す。ピーナッツ渋皮抽出物を1mg/kg投与した群と3mg/kg投与した群とでは、コントロール群に比べ、新規物質認識指数が有意に増加した。特に、ピーナッツ渋皮抽出物を3mg/kg投与した群では、顕著に新規物質認識指数が増加していた。このことからピーナッツ渋皮抽出物による作業記憶の改善作用が確認された。また、ピーナッツ渋皮抽出物を過剰量投与した(10mg/kg)群では、改善作用が認められなかった。
(1)被験動物の準備
7週齢の雄のddYマウス(日本SLC製)を使用した。マウスを、それぞれ8匹ずつから成るX、Y、Z群に分け、プラスチックケージ(幅280mm×深さ440mm×180mm)内で自由飲食にて1週間飼育した。
(2)サンプル投与
X群のマウスには、1週間の間、滅菌したPBSに溶解したピーナッツ渋皮抽出物を1日1回腹腔内投与した。ピーナッツ渋皮抽出物の1回あたりの投与量は300μg/kg体重とした。Y群とZ群のマウスには、1週間の間、滅菌したPBS(X群に投与したものと同量)を1日1回腹腔内投与した。
(3)トリメチルスズ(TMT)の投与
X群、及びY群のマウスに対し、滅菌した生理食塩水に溶解したTMT(塩化トリメチルスズ)を、前記(2)の腹腔内投与のうちの最後の投与の翌日に腹腔内投与した。TMTの投与量は、2.5mg/kg体重とした。なお、TMTは、ヒトアルツハイマー病態に類似した記憶障害を惹起することが知られており(薬学雑誌.2007 127(3):451−461)、アルツハイマー病の有用なモデルを形成する。Z群のマウスに対しては、滅菌した生理食塩水のみを投与した。
(4)再度のサンプル投与
X群のマウスに対し、前記(3)のTMT投与の翌日と2日後において、滅菌したPBSに溶解したピーナッツ渋皮抽出物を1日1回腹腔内投与した。ピーナッツ渋皮抽出物の1回あたりの投与量は300μg/kg体重とした。また、Y群とZ群のマウスに対し、前記(3)のTMT投与の翌日と2日後において、滅菌したPBS(X群に投与したものと同量)を1日1回腹腔内投与した。
(5)試験結果
X、Y、Z群のマウスについて、前記(4)における最後のサンプル投与から1時間後に、前述のY字迷路試験を行った。その結果を図10に示す。なお、図10における縦軸は交替行動率を示し、各群8匹の平均値±標準誤差で表示している。
なお、図10中の#マークは、Y群とZ群との間に、試験値における有意な差(#<0.05)があることを示す。また、*マークは、X群とY群との間に、試験値における有意な差(*<0.05)があることを示す。
(1)試験方法
Wistar系妊娠ラット(妊娠17日目;日本SLC製)から取り出した胎仔の大脳皮質神経細胞(以下、単に神経細胞ともいう)を、ポリ−DL−オルニチンコーティングした6穴プレートに収容した。この神経細胞を、培地1(5%FBS、亜セレン酸ナトリウム、抗生物質入りのDulbeccos‘s Modified Eagle’s Medium(DMEM;Invitrogen製))を用い、1×105細胞/cm2の密度で24時間培養した。その後、培地1を培地2(2%B27サプリメント、1mMピルビン酸ナトリウム、抗生物質、2mMグルタミン入りのNeurobasal Medium(Invitrogen製))に交換した。
6穴プレートにおける穴を第1の群、第2の群、第3の群に区分し、培地を交換した三日後に、第1の群には、滅菌PBSに溶解したピーナッツ渋皮抽出物を30μg/mL添加し、第2の群には、滅菌PBSに溶解したピーナッツ渋皮抽出物を100μg/mL添加し、第3の群には、滅菌PBSのみを添加した。
上記の添加の3時間後に培地2を除き、氷冷した滅菌PBSで神経細胞を洗浄した。次に、TRIzol(Invitrogen)を用いて神経細胞からRNAを抽出し、その1μgを逆転写酵素(Prime Script RTase、TaKaRa製)とcDNA合成プライマーによりDNAへ逆転写した。
その後、BDNF(350bp)のプライマーを用いて標的遺伝子の増幅を行った。増幅する際の条件は、変性を94℃で45秒、アニーリングを61℃で45秒、伸長を72℃で30秒で32サイクルとし、最終的なPCR産物は2%アガロースゲルにて30分間電気泳動を行った。バンドの強度はFLA−5100(FUJIFILM製)を用いて解析した。内部標準としては、β−actin(542bp)を用いた。
(2)試験結果
図11に、RT−PCR法によるBDNF遺伝子発現解析結果を表す。なお、縦軸はBDNFとβ−アクチンの割合を示す。
ピーナッツ渋皮抽出物を30μg/mL又は100μg/mL添加した神経細胞では、PBSのみを添加した神経細胞に比べて、BDNFのmRNA発現量が有意に増加していることが確認できた。
なお、図11中の*マーク及び**マークは、ピーナッツ渋皮抽出物を添加した神経細胞と、PBSのみ添加した神経細胞との間に、試験値における有意な差(*:p<0.05、**:p<0.01)があることを示している。
(参考例2)
濃縮果汁 5重量部
クエン酸 6重量部
香料 2重量部
ピーナッツ渋皮抽出物 2重量部
(参考例3)
(参考例4)
(参考例5)
を製造した。
ビタミンB1 30mg
ビタミンC 50mg
クエン酸 300mg
エチルアルコール 500mg
果糖 3000mg
香料 100mg
水 合計で100mlとした
(参考例6)
トウモロコシ 58重量部
トウモロコシグルテン 5.5重量部
チキンミール 22重量部
乾燥チコリー 2.5重量部
残りは塩、ビタミン及びミネラルから成る。
Claims (2)
- ピーナッツの渋皮及び/又はその抽出物を有効成分として含有し、脳神経疾患治療、脳神経疾患予防、及び脳機能改善から成る群から選ばれる1以上を用途とし、
前記脳神経疾患は、うつ症状、不安症状、及び記憶障害から成る群から選ばれる1以上であることを特徴とする医薬組成物。 - ピーナッツの渋皮及び/又はその抽出物を有効成分として含有し、脳神経疾患治療、脳神経疾患予防、及び脳機能改善から成る群から選ばれる1以上を用途とし、
前記脳機能改善とは、記憶学習能改善であることを特徴とする医薬組成物。
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