JP5399710B2 - 細胞外マトリックスタンパク質のアミノ酸配列ｒｇｄに対する抗体およびその製法と用途 - Google Patents

Description

本発明は、細胞外マトリックスタンパク質のアミノ酸配列ＲＧＤに対する抗体および当該抗体を用いた癌、炎症性疾患、自己免疫疾患、感染症、骨疾患の予防、治療方法および診断方法に関する。

細胞接着は、多細胞生物の生命維持に重要な役割を果たしている。多細胞生物の細胞接着は、細胞−細胞外マトリックス間接着と細胞−細胞間接着に分類され、細胞−細胞外マトリックス間接着にはインテグリンが、細胞−細胞間接着にはカドヘリン、クローディン、ネクチンなどが細胞接着に関与していることが解明されてきている。また、これらの接着分子は、細胞接着の役割だけでなく、細胞内へのシグナル伝達にも直接関わっていることも明らかになりつつある。
細胞と細胞外マトリックスを連結する接着は、インテグリンに代表される膜貫通細胞接着タンパク質により構成されている。インテグリンは、α鎖とβ鎖のヘテロ二量体で構成され、異なるα鎖とβ鎖の組合せで、少なくとも２４種類のインテグリン分子が存在し、それぞれ特異的な細胞外マトリックス分子と結合する。それにより、インテグリンを含む膜貫通細胞接着タンパク質は、細胞と細胞外マトリックスの接着のみならず、細胞外マトリックスからの情報を細胞内へシグナルとして伝達し、細胞の増殖、運動、細胞死、分化などを調節している（Ｆ．Ｇ．Ｇｉａｎｃｏｔｔｉ，ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ，２８５，１０２８−１０３２，１９９９）。
細胞外マトリックス分子の種類は、コラーゲン群（タイプＩ〜ＸＩＸなど）、非コラーゲン性糖タンパク質群（オステオポンチン、ビトロネクチン、ファイブロネクチン、フォンビルブラント因子、ラミニン、テネイシン、フィブリノーゲン、トロンボスポンジンなど）、エラスチン群およびプロテオグリカン群（ヘパラン硫酸プロテオグリカンなど）に分類され、多くのタンパク質が知られている。これらの細胞外マトリックス分子（リガンド）は、対応するインテグリンに結合すると、細胞内のシグナル伝達経路を活性化し、続いて細胞骨格形成、移動、増殖、分化などを調節する。すなわち、リガンドと結合したインテグリンは、細胞表面のレセプター型チロシンキナーゼと協同してこれらのシグナル活性経路を制御し、リガンドの種類により、それに対応するインテグリンはそれぞれ異なるシグナルを伝達する。多くの細胞外マトリックスタンパク質に共通して存在する細胞接着領域として、ＲＧＤ（アルギニン−グリシン−アスパラギン酸）配列がある。従って、細胞外マトリックスタンパク質のＲＧＤ配列は、インテグリンと接着することにより多様な機能を発揮することから、医薬標的として注目され、多くの低分子化合物や合成ペプチドが作製されている。
ＲＧＤ配列と結合するインテグリンとして、α３β１、α５β１、α８β１、αｖβ１、αｖβ３、αｖβ５、αｖβ６、αｖβ８が存在する。インテグリンを介するシグナル伝達機構の研究は、これまでα５β１とその特異的なリガンドであるファイブロネクチンとの相互作用の解明を中心に進められてきた。その結果、α５β１は細胞接着と細胞移動だけでなく、細胞の分化や細胞死をも制御することが明らかになった（Ｓ．Ｍ．Ｆｒｉｓｃｈ ｅｔ ａｌ．：Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．，９，７０１−７０６，１９９７）。しかし、リガンドによってインテグリンを介するシグナルは異なり、ファイブロネクチンが接着した内皮細胞は増殖因子の刺激により増殖活性を示すが、同様な細胞がラミニン−１に接着すると、増殖活性がなくなり、逆に増殖抑制を示す。また、ラミニン−１０／１１からα３β１を介するシグナルは、ファイブロネクチンからα５β１を介するシグナルと異なり、癌細胞の運動を強く促進し（Ｊ．Ｇｕ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７６，２７０９０−２７０９７，２００１）、血液飢餓によるアポトーシスを強く回避する（Ｊ．Ｇｕ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２７７，１９９２２−１９９２８，２００２）。ＲＧＤ配列と結合するインテグリンのうち、αｖインテグリンは破骨細胞や新生血管に高発現しており、αｖインテグリンは、骨粗鬆症や癌治療薬の標的分子になっている。また、α５β１インテグリンは腫瘍細胞上に高発現しており、癌の悪性化に関与していることが示されている。これらのことから、抗α５β１インテグリン抗体（Ｖｏｌｏｃｉｍａｂ）、抗α４インテグリン抗体（Ｎａｔａｌｉｚｕｍａｂ）、抗αｖβ３インテグリン抗体（Ｖｉｔａｘｉｎ）は、細胞外マトリックスタンパク質がインテグリンに結合するのを阻害するアンタゴニストとしてインテグリンに対する抗体医薬品として開発されている。
一方、ＲＧＤ配列を含有する細胞外マトリックスタンパク質としては、コラーゲン、オステオポンチン（ＯＰＮ）、ビトロネクチン、ファイブロネクチン、フォンビルブラント因子、ラミニン、テネイシン、フィブリノーゲン、トロンボスポンジン等が知られている。また、ウイルスや細菌もＲＧＤ配列を有し、細胞への接着に関与している。ＲＧＤ配列を含有するＯＰＮは、骨に多く含有されるカルシウム結合性の酸性糖タンパク質で、細胞接着、細胞遊走、腫瘍形成、免疫応答ならびに補体介在の細胞溶解など多くの重要な機能を担っている。また、ＯＰＮの欠損マウスや中和抗体を用いた解析から、肝炎、関節リウマチ等の自己免疫疾患や癌転移に関与することが示されている。そこで、ＲＧＤを介する細胞と細胞外マトリックスタンパク質の接着を阻害することにより、骨粗鬆症や癌の治療が期待されるので、インテグリンとは逆に細胞外マトリックスタンパク質側からもアンタゴニスト医薬品が開発されている。

これまでＲＧＤ配列を介するインテグリンとの相互作用を阻害する低分子化合物や合成ペプチド、ＯＰＮやインテグリンに対する抗体が作製されているが、ＲＧＤ配列に対する特異的抗体は存在しない。また、ＯＰＮやインテグリンに対する抗体はＲＧＤ配列以外での細胞外マトリックスタンパク質とインテグリンの結合阻害により、目的外の生体内での作用が生じ、副作用の発生が懸念される。
従って、ＲＧＤ配列を介する接着を特異的に阻害することにより、炎症、癌、感染症、自己免疫、骨粗鬆症などの疾患に効率的な効果と同時に副作用の軽減が期待でき、これらの疾患に対してより優れた治療法の提供が強く望まれている。また、ヒトのＯＰＮやインテグリンに対する抗体は病態モデル動物で効果を評価する際に、その抗体がその動物の標的タンパク質あるいはペプチドに交差反応しないため、その動物の標的タンパク質あるいはペプチドに対する異種動物の抗体で薬効評価するのが一般的で、ヒトに投与されるキメラ抗体、ヒト化抗体またはヒト抗体と病態モデル動物で評価する抗体とは全く異なる。これは医薬品の開発上で大きな問題点であるので、ヒトの治療に使用する抗体を用いて病態モデル動物でその治療効果を評価できることが嘱望されている。
本発明者は、ＲＧＤ配列を介する細胞外マトリックスタンパク質とインテグリンの結合を阻害する目的で、ＲＧＤ配列に対する抗体の作製に関して種々の研究を行った結果、ＲＧＤ配列を含むマウスＯＰＮの部分ペプチドでマウスのモノクローナル抗体を作製することができ、そのＲＧＤ配列に対する抗体はヒトの細胞外マトリックスタンパク質のＲＧＤ配列にも交差反応し、抗炎症効果、抗癌効果などを有していることを見出し、本発明を完成した。
すなわち、具体的には、本発明は、以下に記載の抗ＲＧＤ抗体、該抗ＲＧＤ抗体の製造方法、該抗ＲＧＤ抗体を有効性として含む、癌、炎症性疾患、感染症、自己免疫疾患または骨疾患の診断剤および治療剤、ならびに該抗ＲＧＤ抗体のキメラ抗体、ヒト化抗体あるいはヒト抗体の製造方法等を提供するものである。
（１）配列番号１〜１２のうちのいずれかのアミノ酸配列を含む抗ＲＧＤ抗体。
（２）配列番号１、３、５、７、９または１１のアミノ酸配列を含む抗ＲＧＤ抗体。
（３）配列番号１、３、５、７、９および１１のアミノ酸配列を含む抗ＲＧＤ抗体。
（４）配列番号２、４、６、８、１０または１２のアミノ酸配列を含む抗ＲＧＤ抗体。
（５）配列番号２、４、６、８、１０および１２のアミノ酸配列を含む抗ＲＧＤ抗体。
（６）重鎖の相補性決定領域（ＣＤＲＨ）におけるアミノ酸配列として配列番号１〜６のいずれかのアミノ酸配列を、軽鎖の相補性決定領域（ＣＤＲＬ）におけるアミノ酸配列として配列番号７〜１２のいずれかのアミノ酸配列を含む、上記（１）〜（５）のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体。
（７）ヒト、マウス、またはその両方の細胞外マトリックスタンパク質のＲＧＤ配列を特異的に認識する上記（１）〜（６）のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体。
（８）モノクローナル抗体である、上記（１）〜（７）のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体。
（９）ヒトおよびマウスの細胞外マトリックスタンパク質のＲＧＤ配列を特異的に認識するモノクローナル抗体。
（１０）ヒト、マウス、またはその両方の細胞外マトリックスタンパク質とＲＧＤ受容体との結合を阻害する上記（１）〜（９）のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体。
（１１）キメラ抗体である上記（１）〜（１０）のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体。
（１２）ヒト化抗体である上記（１）〜（１０）のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体。
（１３）ヒト抗体である上記（１）〜（１０）のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体。
（１４）受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０４４０、ＦＥＲＭ ＢＰ−１０４４１で標示されるハイブリドーマ細胞により産生される抗ＲＧＤモノクローナル抗体。
（１５）上記（１）〜（１４）のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体を有効成分として含む癌、炎症性疾患、感染症、自己免疫疾患または骨疾患の治療剤。
（１６）上記（１）〜（１４）のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体を有効成分として含む癌、炎症性疾患、感染症、自己免疫疾患または骨疾患の診断剤。
（１７）ＣＶＤＶＰＮＧＲＧＤＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号１３）を抗原として用いることを特徴とする、上記（１）〜（１４）のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体の製造方法。
（１８））上記（１）〜（１４）のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体の相補性決定領域をヒト抗体に遺伝子工学的に組込んだキメラ抗体の製造方法。
（１９）上記（１）〜（１４）のいずれかに記載のモノクローナル抗体の相補性決定領域をヒト抗体に遺伝子工学的に組込んだヒト化抗体の製造方法。
（２０）ＣＶＤＶＰＮＧＲＧＤＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号１３）を抗原として用いることを特徴とする、ヒト抗体の製造方法。
本発明のモノクローナル抗体は、マウスとヒトの細胞外マトリックスタンパク質に存在するアミノ酸配列ＲＧＤに特異的に反応し、一部の抗体はＲＧＤ構造を有する細胞外マトリックスタンパク質であるオステオポンチン（ＯＰＮ）、ファイブロネクチン（ＦＮ）、ビトロネクチン（ＶＮ）、ラミニンと交差反応性を示した。また、本発明のモノクローナル抗体は、ヒトとマウスの細胞外マトリックスタンパク質に反応することから、病態モデル・マウスで薬効の評価を行うことが可能である。さらに、本発明のモノクローナル抗体は、細胞外マトリックスタンパク質が関与する肝炎などの炎症性疾患、癌の増殖・転移、リウマチなどの自己免疫疾患などの治療に用いることができる。

図１は、ヒトおよびマウスのＯＰＮの部分ペプチドを用いて、得られた抗体（４Ｐ１１，１１Ｍ６，２５Ｈ１５，３５Ｂ６）が認識するエピトープ解析結果を示す図である。
図２は、ヒトおよびマウスのＯＰＮの部分ペプチドを用いて、得られた抗体（２９Ｒ５，３０Ｃ１７，３３Ｅ１０，３８Ｉ８）が認識するエピトープ解析結果を示す図である。
図３は、マウスのＯＰＮのＲＧＤを含む部分ペプチドを用いて、得られた抗体（３３Ｅ１０，３５Ｂ６）が認識するエピトープ解析結果を示す図である。
図４は、マウスのＯＰＮの部分ペプチドを用いて、得られた抗体（３３Ｅ１０，３５Ｂ６）が認識するエピトープ解析結果を示す図である。
図５は、マウスのＯＰＮの部分ペプチド（ＣＧＤＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号１９））を用いて、得られた抗体（３３Ｅ１０，３５Ｂ６）が認識するエピトープ解析結果を示す図である。
図６は、抗ＲＧＤ抗体の重鎖における相補性決定領域（ＣＤＲ）を解析した結果を示す図である。なお、３３Ｅ１０および３５Ｂ６の両方の重鎖の配列において、１番目のアミノ酸は示されていない（２番目のアミノ酸残基から示されている）。また、３３Ｅ１０の配列中の９９番目の残基（Ｆ）および３５Ｂ６の配列中の９８番目の残基（Ｆ）は、ＫまたはＲであり得る。
図７は、抗ＲＧＤ抗体の軽鎖における相補性決定領域（ＣＤＲ）を解析した結果を示す図である。
図８は、抗ＲＧＤ抗体とＲＧＤ配列を含有する種々の細胞外マトリックスタンパク質との結合を調べた結果を示す図である。
図９は、抗ＲＧＤ抗体のｍＯＰＮ Ｎ−ｈａｌｆと癌細胞（ＮＩＨ３Ｔ３細胞）における細胞接着阻害効果を調べた結果を示す図である。
図１０は、抗ＲＧＤ抗体の各種細胞外マトリックスタンパク質と癌細胞（ＮＩＨ３Ｔ３細胞）における細胞接着阻害効果を調べた結果を示す図である。
図１１は、抗ＲＧＤ抗体の肝炎発症抑制効果を調べた結果を示す図である。
図１２は、実験的肺転移モデルで抗ＲＧＤ抗体の肺転移抑制効果を調べた結果を示す図である（Ａ：転移細胞数、Ｂ：体重の推移）。
図１３は、自然的肺転移モデルで抗ＲＧＤ抗体の肺転移抑制効果を調べた結果を示す図である（Ａ：腫瘍サイズ、Ｂ：転移細胞数、Ｃ：体重の推移）。
図１４は、抗ＲＧＤ抗体のリウマチ病態モデルにおけるリウマチの治療効果を示す図である。

本発明者らは、以下の点を注意深く進めることにより、マウスとヒトの細胞外マトリックスタンパク質に存在するアミノ酸配列ＲＧＤに特異的に反応するマウス・モノクローナル抗体を得ることができた。
まず、マウスの病態モデルで薬効評価する目的もあり、ＲＧＤ配列のモノクローナル抗体を作製するに当たり、ヒトＯＰＮのアミノ酸配列ではなく、マウスＯＰＮから設計したＲＧＤ配列を含む部分ペプチドでマウスでのモノクローナル抗体作製を試みた。その結果、一般的には不可能であると考えられる、マウスＯＰＮの部分ペプチドでマウスのモノクローナル抗体８種類を作製することができた。得られたモノクローナル抗体はＲＧＤ配列を認識する抗体であることを確認した。また、得られたモノクローナル抗体は、抗体により反応性は異なるが、ＲＧＤ配列を含有するヒトの細胞外マトリックスタンパク質と交差反応することを見出した。さらに、これらのモノクローナル抗体はＲＧＤ配列とインテグリンの結合を阻害することも確認した。
次に、得られたモノクローナル抗体の考えられる薬効を病態モデル・マウスで評価した。ＣｏｎＡ投与で発症する劇症肝炎モデルにおいて得られたモノクローナル抗体投与で肝炎の指標であるＡＳＴとＡＬＴが明らかに低下することが観察された。また、癌転移のモデルである実験的癌転移モデルと自然的癌転移モデルで得られたモノクローナル抗体の癌転移抑制効果を検討した。すなわち、実験的癌転移モデルではマウスの静脈内にマウスの癌細胞Ｂ１６−Ｌｕｃを投与し、マウスの肺における癌転移の数を、自然的癌転移モデルではＢ１６−ＢＬ６細胞をマウスの足蹠に投与した後、その肺への転移数を計測し、得られたモノクローナル抗体の癌転移抑制効果を調べた。その結果、両モデルにおいて得られたモノクローナル抗体が癌転移の抑制効果を示した。さらに、ＴｙｐｅＩＩコラーゲン抗体カクテルとＬＰＳ投与によるリウマチ発症モデル・マウスで得られたモノクローナル抗体が明らかなリウマチに治療効果を示すことも確認した。
１．本発明の抗ＲＧＤ抗体
本発明は、ＲＧＤ配列に対するモノクローナル抗体を提供する。より具体的には、本発明は、ヒトおよびマウスの細胞外マトリックスタンパク質のアミノ酸配列ＲＧＤを特異的に認識するモノクローナル抗体を提供する。
本明細書中、「細胞外マトリックスタンパク質」とは、細胞外マトリックスを構成するタンパク質をいうものとし、これらには、例えば、オステオポンチン、ビトロネクチン、ファイブロネクチン、フォンビルブラント因子、コラーゲン、ラミニン、テネイシン、フィブリノーゲン、トロンボスポンジン、アンギオスタチン、プラスミン、ＶＣＡＭ−１等が含まれるが、これらに限定されない。なお、本明細書中、「細胞外マトリックス」は、当該分野で常用される意味に従い、組織中の細胞外の空間を満たしている生体高分子の複雑な集合体をいうものとする（例えば、「分子細胞生物学辞典」、３２３頁、東京化学同人（１９９７）を参照）。また、本明細書中、「細胞外マトリックスタンパク質」という用語は、「細胞外マトリックス分子」と互換的に使用される。
本明細書中、「抗体」とは、抗体分子全体またはその断片（例えば、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）_２、などの断片）を意味し、ポリクローナル抗体であってもモノクローナル抗体であってもよい。好ましくは、本発明においてはモノクローナル抗体を意味する。また、本発明において「抗体」は、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体を包含する。
本明細書中、抗体があるタンパク質またはその断片を「特異的に認識する」とは、その抗体が他のアミノ酸配列に対するその親和性よりも、これらのタンパク質またはその断片の特定のアミノ酸配列に対して実質的に高い親和性で結合することを意味する。ここで、「実質的に高い親和性」とは、所望の測定装置によって、その特定のアミノ酸配列を他のアミノ酸配列から区別して検出することが可能な程度に高い親和性を意味し、典型的には、結合定数（Ｋ_ａ）が少なくとも１０^７Ｍ^−１、好ましくは、少なくとも１０^８Ｍ^−１、より好ましくは、１０^９Ｍ^−１、さらにより好ましくは、１０^１０Ｍ^−１、１０^１１Ｍ^−１、１０^１２Ｍ^−１またはそれより高い、例えば、最高で１０^１３Ｍ^−１またはそれより高いものであるような結合親和性を意味する。
本明細書中、「抗ＲＧＤ抗体」とは、タンパク質またはポリペプチドまたはペプチド中のＲＧＤ配列を特異的に認識する抗体を意味する。
本明細書中、「モノクローナル抗体」とは、実質的に均質な抗体の集団、即ち、集団を構成する個々の抗体が、天然において起こり得る少量で存在する変異体を除いては均一である抗体集団から得られた抗体を指す。モノクローナル抗体は高度に特異的であり、単一の抗原部位に対して作用するものである。さらに、異なるエピトープに対する異なる抗体を含むポリクローナル抗体と比べて、各モノクローナル抗体は、抗原上の単一のエピトープに向けられる。その特異性に加えて、モノクローナル抗体は、他の免役グロブリンが混在しないハイブリドーマの培養により、均一な抗体が恒常的に合成され、より簡便に精製できる点で有利である。「モノクローナル」という修飾語は、実質的に均一な抗体の集団より得られた抗体の特性を示唆するものであって、抗体が特定の方法により製造されることを限定するものではない。
本明細書中、「抗体断片」とは、全長抗体の一部を指し、抗原結合領域または可変領域のことである。例えば、抗体断片にはＦａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）_２、およびＦｖ断片が含まれる。これらの抗体断片は抗体のパパイン消化、ペプシン消化など一般的に知られている方法で作製することができる。
上記「キメラ抗体」とは、本発明で得られた抗ＲＧＤ抗体の定常領域をヒトの抗体と同じ定常領域を有するように遺伝子工学的に改変したヒト・マウス・キメラ抗体（欧州特許公開公報ＥＰ０１２５０２３参照）を指す。「ヒト化抗体」とは、本発明で得られた抗ＲＧＤ抗体のＨ鎖とＬ鎖の相補性決定領域以外の一次構造をヒトの抗体に対応する一次構造に遺伝子工学的に改変した抗体を言う。「ヒト抗体」とは、ヒトの抗体産生に関与する遺伝子を導入したトランスゲニック動物を用いて作製したモノクローナル抗体（欧州特許公開公報ＥＰ０５４６０７３参照）を意味する。
本発明において特に好ましい抗体は、本明細書の実施例に示される受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０４４０、ＦＥＲＭ ＢＰ−１０４４１で標示されるハイブリドーマ細胞により産生される抗ＲＧＤ抗体である。
以下、抗ＲＧＤモノクローナル抗体の作製について詳述するが、抗体の作製方法はこれに限定されるものではない。
２．ＲＧＤ配列含有ペプチド（抗原）
本発明において抗原として使用するＲＧＤ配列含有ペプチドには、例えば、本実施例において用いたマウスの細胞外マトリックスタンパク質の細胞接着配列であるＲＧＤ配列を含むアミノ酸配列ＣＶＤＶＰＮＧＲＧＤＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号１３）のように、細胞接着配列である「ＲＧＤ」配列を少なくとも含み、免疫により、ＲＧＤ配列に対する抗体を産生することが可能なアミノ酸配列からなるペプチドが含まれる。
そのような「ＲＧＤ配列含有ペプチド」、「ＲＧＤ配列を含有するペプチド」、または「ＲＧＤ配列を含むアミノ酸配列からなるペプチド」の例としては、ＲＧＤ配列を含有する細胞外マトリックスタンパク質として知られているオステオポンチン（ＯＰＮ）、ビトロネクチン、ファイブロネクチン、フォンビルブラント因子、コラーゲン、ラミニン、テネイシン、フィブリノーゲン、トロンボスポンジン等のＲＧＤ配列含有ペプチドが含まれる。また、本発明における「ＲＧＤ配列含有ペプチド」、「ＲＧＤ配列を含有するペプチド」、または「ＲＧＤ配列を含むアミノ酸配列からなるペプチド」は、少なくとも約５個のアミノ酸、好ましくは、約５から約５０個のアミノ酸、より好ましくは約１０個から約２０個のアミノ酸からなるアミノ酸配列である。なお、本明細書中、「ＲＧＤ配列含有ペプチド」という用語は、「ＲＧＤ配列を含有するペプチド」または「ＲＧＤ配列を含むアミノ酸配列からなるペプチド」と互換的に使用される。
ここで、実質的に同等の抗原性を有する限り、該アミノ酸配列において、複数個のアミノ酸、好ましくは１ないし１０個のアミノ酸、特に好ましくは１ないし数個（例えば、１ないし５個）のアミノ酸が置換、欠失、および／または修飾されているアミノ酸配列を含む変異ポリペプチド、あるいは該アミノ酸配列中に、複数個のアミノ酸、好ましくは１ないし１０個のアミノ酸、特に好ましくは１ないし数個（例えば、１ないし５個）のアミノ酸が付加または挿入されたアミノ酸配列を含む変異ポリペプチドも本発明において使用する「ＲＧＤ配列含有ペプチド」または「ＲＧＤ配列を含むアミノ酸配列からなるペプチド」に含まれる。さらに、「ＲＧＤ配列含有ペプチド」または「ＲＧＤ配列を含むアミノ酸配列からなるペプチド」は、そのような置換、欠失、修飾、付加、及び挿入を複数有する変異ポリペプチドであってもよい。
本発明において使用するＲＧＤ配列を含むアミノ酸配列からなるペプチドは、化学的合成法のほか、遺伝子組換え技術、細胞培養方法等のような当該技術分野において公知の方法あるいはその修飾方法を適宜用いることにより製造することができる。単離した細胞外マトリックスタンパク質をタンパク分解酵素等により適切に切断することで製造することができる。また、ＲＧＤ配列を含むアミノ酸配列からなるペプチドは、マウス、ラット、ヒト、ブタ、サル、ウシ、ウサギ等の哺乳動物由来のものであり得、ＲＧＤ配列に対する抗体を産生することが可能なＲＧＤ配列含有ペプチドであれば、その製法は特に限定されない。
上記のＲＧＤ配列を含有するペプチドを、さらにその抗原性を高めるために他の生体高分子と結合させてもよい。そのような抗原性を高める生体高分子の例としては、サイログロブリン、スカシ貝ヘモシアニン（ＫＬＨ）、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、卵白アルブミン（ＯＶＡ）、ウシ・グロブリン等があるが、サイログロブリンがより好ましい。また、ＲＧＤ配列を含むペプチドと生体高分子との結合はカップリング試薬法（活性エステルとマレンイミドの官能基を有する結合試薬：活性エステルでタンパク質またはペプチドのアミノ基と、マレンイミドでタンパク質またはペプチドのＳＨ基と結合する。）（Ｓ．Ｙｏｓｈｉｔａｋｅ ｅｔ ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，１０１，３９５−３９９，１９７９．）混合酸無水物法（Ｂ．Ｆ．Ｅｒｌａｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．，２３４，１０９０−１０９４，１９５４．）、活性エステル法（Ａ．Ｅ．Ｋａｒｕ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ａｇｒｉｃ．Ｆｏｏｄ Ｃｈｅｍ．，４２，３０１−３０９，１９９４．）等があり、好ましい方法としてはカップリング試薬法である。
３．抗体産生細胞の調製
抗原は、免疫される動物に対して投与により抗体産生が可能な部位にそれ自体あるいは担体、希釈剤とともに投与される。投与に際して抗体産生能を高めるため、完全フロイントアジュバントや不完全フロイントアジュバントを投与してもよい。投与は通常１〜６週毎に１回ずつ、計２〜１０回程度行われる。用いられる温血動物としては、例えば、マウス、サル、ウサギ、イヌ、モルモット、ラット、ハムスター、ヒツジ、ヤギ、ニワトリ等が挙げられるが、本発明ではマウスが好適に用いられる。
治療の対象がヒトであり、抗ＲＧＤ抗体産生動物がマウスの場合には、ヒト・マウス・キメラ抗体やヒト化抗体を用いるのが望ましく、さらには、抗体産生に関与するヒト遺伝子を導入したマウス等のトランスジェニック動物を用いてヒト型モノクローナル抗体を作成して用いるのが望ましい。
４．抗体産生細胞とミエローマ細胞との細胞融合
ミエローマ細胞としては、マウス、ラット、ヒト等に由来する細胞が用いられる。例えば、マウスミエローマＰ３Ｕ１、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８−Ｕ１、Ｐ３ＮＳ１−Ａｇ４、ＳＰ２／０−Ａｇ１４、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８−６５３等があげられるが、抗体産生細胞とミエローマ細胞とは同種動物、特に同系統の動物由来であることが好ましい。ミエローマ細胞は凍結保存するか、ウシ胎児血清を添加した一般的な培地で継代して維持することができる。細胞融合には対数増殖期の細胞を用いるのが好ましい。本発明ではＰ３Ｘ６３−Ａｇ８−６５３が好適に用いられる。
抗体産生細胞とミエローマ細胞とを融合させてハイブリドーマを形成させる方法としては、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を用いる方法、センダイウイルスを用いる方法、電気融合装置を用いる方法などがあげられる。例えば、ＰＥＧ法の場合、約３０〜６０％のＰＥＧ（平均分子量１０００〜６０００）を含む適当な培地または緩衝液中に脾細胞とミエローマ細胞を１〜１０：１、好ましくは５〜１０：１の混合比で懸濁し、温度約２５〜３７℃、ｐＨ６〜８の条件下で、約３０秒〜５分間程度反応させればよい。反応終了後、ＰＥＧ溶液を除いて培地に再懸濁し、セルウェルプレート中に播種して培養を続ける。
５．ハイブリドーマ細胞の選別
モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞の選別は、公知あるいはそれに準じる方法に従って行なうことができる。通常、ＨＡＴ（ヒポキサンチン、アミノプテリン、チミジン）を添加した動物細胞用培地で行なうことができる。選別および育種用培地としては、ハイブリドーマ細胞が生育できるものならばどのような培地を用いても良い。例えば、１〜２０％、好ましくは１０〜２０％の牛胎児血清を含むＲＰＭＩ １６４０培地、１〜１０％の牛胎児血清を含むＧＩＴ培地（和光純薬工業（株））あるいはハイブリドーマ培養用無血清培地（ＳＦＭ−１０１、日水製薬（株））などを用いることができる。培養温度は、通常２０〜４０℃、好ましくは約３７℃である。培養時間は、通常、５日〜３週間、好ましくは１週間〜２週間である。培養は、通常５％ＣＯ_２下で行なうことができる。
本発明のモノクローナル抗体の産生は、リンパ球機能探索法（矢田純一、藤原道夫編著、中外医学社、５８８−５９２頁，１９９４）に記載されるＥＬＩＳＡ法を用いて確認およびスクリーニングできる。ＥＬＩＳＡにて陽性反応が得られたクローンから限界希釈法を１から５回、好適には２から４回繰り返すことによりモノクローナル抗体を調製できる。細胞融合で得られた種々のハイブリドーマからＲＧＤ配列に反応するクローンを得るために、抗原としてＲＧＤ配列を含むペプチド、例えば、ＣＶＤＶＰＮＧＲＧＤＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号１３）を９６ウエルプレートに固相化し、ハイブリドーマの培養上清と反応後、酵素標識抗マウスＩｇＧ抗体で検出するＥＬＩＳＡ法でＲＧＤ配列を認識する抗体を産生するハイブリドーマをスクリーニングできる。
６．抗体の分離精製
得られた抗体は、均一にまで精製することができる。抗体の分離、精製は通常のタンパク質で使用されている分離、精製方法を使用すればよい。例えばゲルろ過、イオン交換クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー等のクロマトグラフィーカラム、フィルター、限外濾過、塩析、透析、ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動、等電点電気泳動等を適宜選択、組み合わせれば、抗体を分離、精製することができる（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ．Ｅｄ Ｈａｒｌｏｗ ａｎｄ Ｄａｖｉｄ Ｌａｎｅ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，１９８８）が、これらに限定されるものではない。アフィニティークロマトグラフィーに用いる担体としては、抗原結合樹脂、プロテインＡ結合樹脂、プロテインＧ結合樹脂が挙げられる。抗原結合樹脂として、チオールセファロースビーズ（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）等があり、これに抗原としてＲＧＤ配列を含むペプチド、例えば、ＣＶＤＶＰＮＧＲＧＤＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号１３）を結合した担体を用いたアフィニティークロマトグラフィーが好ましい。
７．抗体の製剤
このようにして得られたモノクローナル抗体は、常法に従って製剤化し、癌、炎症性疾患、感染症、自己免疫疾患および骨疾患等の予防および／または治療剤として用いることができる。これらの予防および／または治療剤としての剤形は注射剤、点滴用剤などの非経口製剤とすることができ、創意工夫により経口製剤として使用することができる。また、製剤化に当たっては、薬事上および薬学的に許容される範囲内で、剤形に適した担体、希釈剤もしくは添加剤などを使用することができる。
本発明のモノクローナル抗体を有効成分とする製剤は、癌、例えば癌細胞の増殖、転移、炎症性疾患（例えば変形性関節症、肝炎、気管支喘息、綿維症、糖尿病、動脈硬化、多発性硬化症、炎症性腸疾患（潰瘍性大腸炎、クローン病））、感染症（例えば肝炎）、自己免疫疾患（例えば関節リウマチ、全身性エリテマトーデス、多発性筋炎、自己免疫性甲状腺疾患、尿細管間質性腎炎、重症筋無力症）および骨疾患（例えば骨粗鬆症）等の予防および／または治療剤として用いることができる。
投与量は、投与対象、対象疾患、症状、投与ルートなどによっても異なるが、例えば、癌患者の予防および／または治療のために使用する場合には、本発明の抗体を１回量として、通常０．０１〜２０ｍｇ／ｋｇ体重程度、好ましくは０．１〜１０ｍｇ／ｋｇ体重程度、さらに好ましくは０．１〜５ｍｇ／ｋｇ体重程度を、１月１〜１０回程度、好ましくは１月１〜５回程度、静脈注射により投与するのが好都合である。他の非経口投与および経口投与の場合もこれに準ずる量を投与することができる。症状が特に重い場合には、その症状に応じて増量または投与回数を増加させてもよい。
本発明の抗体は、それ自体または適当な医薬組成物として投与することができる。上記投与に用いられる医薬組成物は、上記抗体またはその塩と薬理学的に許容され得る担体、希釈剤もしくは賦形剤とを含むものである。このような組成物は、非経口投与または経口に適する剤形として提供される。
すなわち、非経口投与のための組成物としては、例えば、注射剤、点鼻剤、坐剤などが用いられ、注射剤は静脈注射剤、皮下注射剤、皮内注射剤、筋肉注射剤、点滴注射剤などの剤形を包含する。このような注射剤は、公知の方法に従って、例えば、上記抗体またはその塩を通常注射剤に用いられる無菌の水性もしくは油性液に溶解、懸濁または乳化することによって調製する。注射用の水性液としては、例えば、生理食塩水、ブドウ糖、蔗糖、マンニトールなどその他の補助薬を含む等張液などが用いられ、適当な溶解補助剤、例えば、アルコール（例、エタノール）、ポリアルコール（例、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール）、非イオン界面活性剤〔例、ポリソルベート８０、ポリソルベート２０、ＨＣＯ−５０（ｐｏｌｙｏｘｙｅｔｈｙｌｅｎｅ（５０ｍｏｌ）ａｄｄｕｃｔ ｏｆ ｈｙｄｒｏｇｅｎａｔｅｄ ｃａｓｔｏｒ ｏｉｌ）〕などと併用してもよい。油性液としては、例えば、ゴマ油、大豆油などが用いられ、溶解補助剤として安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールなどを併用してもよい。調製された注射液は、通常、適当なアンプル、バイアル、シリンジに充填される。点鼻剤や坐剤は、上記抗体を通常の点鼻薬用基剤、坐薬用基剤に混合することによって調製される。なお、一般的に抗体などのタンパク質の経口投与は消化器により分解されるため、困難とされるが、抗体断片や修飾した抗体断片と剤形の創意工夫により、経口投与の可能性もある。
上記の非経口用医薬組成物は、活性成分の投与量に適合するような投薬単位の剤形に調製されることが好適である。このような投薬単位の剤形としては、注射剤（アンプル、バイアル、プレフィルド・シリンジ）、点鼻剤、坐剤などが例示され、それぞれの投薬単位剤形当たり通常５〜５００ｍｇ、とりわけ注射剤では５〜１００ｍｇ、その他の剤形では１０〜２５０ｍｇの上記抗体が含有されていることが好ましい。
なお、前記した各組成物は、上記抗体との配合により好ましくない相互作用を生じない限り他の活性成分を含有してもよい。
８．本発明のモノクローナル抗体を含有する診断剤
本発明のモノクローナル抗体は、炎症性疾患、例えばリウマチ関節炎、肝炎、気管支喘息、線維症、糖尿病、癌転移、動脈硬化、多発性硬化症、肉芽腫等の診断剤、また臓器移植後の慢性拒絶反応抑制、全身性自己免疫疾患・エリテマトーデス・ぶどう膜炎・ベーチェト病・多発性筋炎・糸状体増殖性腎炎・サルコイドーシス等の自己免疫疾患の診断剤として用いることができる。本発明のモノクローナル抗体は、ＲＧＤ配列を特異的に認識することができるので、被検液中の細胞外マトリックスタンパク質の定量をサンドイッチ免疫測定法、競合免疫測定法、イムノメトリック法あるいはネフロメトリーなどにより可能である。これら個々の免疫学的測定法を本発明の測定方法に適用するにあたっては、特別の条件、操作等の設定は必要としない。それぞれの方法における通常の条件、操作法に当業者の通常の技術的配慮を加えて測定系を構築すればよい。これらの一般的な技術手段の詳細については、総説、成書などを参照することができる。
以上のように、本発明の抗体を用いることによって、細胞外マトリックスタンパク質を感度良く定量することができる。さらに、本発明の抗体を用いる、生体内での細胞外マトリックスタンパク質の定量法を利用することにより、細胞外マトリックスタンパク質が関連する各種疾患の診断をすることができる。例えば、細胞外マトリックスタンパク質の濃度の増減が検出された場合は、細胞外マトリックスタンパク質が関連する疾患、例えば炎症性疾患である可能性が高いまたは将来罹患する可能性が高いと診断することができる。また、本発明のモノクローナル抗体は、体液や組織などの被検体中に存在する細胞外マトリックスタンパク質のＲＧＤ配列を特異的に検出するために使用することができる。また、細胞外マトリックスタンパク質を精製するために使用する抗体カラムの作製、精製時の各分画に含まれる細胞外マトリックスタンパク質の検出、被検細胞内における細胞外マトリックスタンパク質の挙動の分析等に使用することができる。
以下に実施例を示して本発明をより詳細に説明するが、これは本発明の範囲を限定するものではない。

実施例１：抗体作製方法
細胞外マトリックスタンパク質の細胞接着配列であるＲＧＤ配列とＳＬＡＹＧＬＲ配列（配列番号２５）とを含むＣＶＤＶＰＮＧＲＧＤＳＬＡＹＧＬＲ配列（配列番号１３）を合成し、ＥＭＣＳ（Ｄｏｊｉｎ社）を介してサイログロブリン（Ｓｉｇｍａ社）に結合させ、これを免疫原としてアジュバンドとともにマウスに免疫した。４回免疫後、脾細胞を回収し、ミエローマ細胞Ｘ６３−Ａｇ８−６５３と細胞融合した。ＨＡＴ培地で選択後、抗原ペプチドを固相したＥＬＩＳＡ法で培養上清のスクリーニングを行い、ＲＧＤ配列を認識する抗体を産生するハイブリドーマ（８クローン：４Ｐ１１、１１Ｍ６、２５Ｈ１５、２９Ｒ５、３０Ｃ１７、３３Ｅ１０、３５Ｂ６、３８Ｉ８）を選択した。チオールセファロースビーズ（アマシャムバイオサイエンス社）を用いて抗原ペプチドカラムを作製し、ハイブリドーマの培養上清から、抗体を精製した。
なお、ここで得られたハイブリドーマ細胞３３Ｅ１０および３５Ｂ６は、それぞれ受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０４４０およびＦＥＲＭ ＢＰ−１０４４１として、２００５年１０月２７日に茨城県つくば市東１丁目１番地１ 中央第６（郵便番号３０５−８５６６）、独立行政法人産業技術総合研究所 特許生物寄託センターに寄託されている。
実施例２：エピトープの解析
［解析に用いたペプチド］
合成したマウスＯＰＮ由来の部分ペプチドを含むｍＯＰＮ１（ＣＬＰＶＫＴＤＳＧＳＳＥＥＫＬＹ（配列番号１４））、ｍＯＰＮ５（ＣＶＤＶＰＮＧＲＧＤＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号１３））、ＣＶＤＶＰＮＧＲＧＤＳ（配列番号１５）、ＣＰＮＧＲＧＤ（配列番号１６）、ＣＧＲＧＤＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号１７）、ＣＧＤＳＬＡＹＧ（配列番号１８）、ＣＧＤＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号１９）およびＣＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号２０）、ヒトＯＰＮ由来の部分ペプチドｈＯＰＮ５（ＣＶＤＴＹＤＧＲＧＤＳＶＶＹＧＬＲＳ（配列番号２１））およびＣＳＶＶＹＧＬＲ（配列番号２２）、マウスとヒト共通の部分ペプチドを含むＣＧＲＧＤＳ（配列番号２３）を、ＥＭＣＳ（Ｄｏｊｉｎ社）を介してＢＳＡ（Ｓｉｇｍａ社）に結合させＥＬＩＳＡ解析用ペプチドとして用いた。
［ＥＬＩＳＡ法］
９６ウエルプレートに、ペプチド（１０μｇ／ｍｌ）、あるいはタンパク質（５μｇ／ｍｌ）を３７℃、１時間放置して固定化し、０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳ／０．０５％ＮａＮ_３溶液でブロッキング後、抗体を種々の濃度で３７℃、１時間反応させた。次に二次抗体として、ＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ抗体（Ｊａｃｋｓｏｎ社）を３７℃、３０分反応後、ＯＰＤで１５分間発色、１Ｎ Ｈ_２ＳＯ_４で反応を停止させ、４９０ｎｍにおける吸光度を測定した。
［エピトープマッピング］
合成したペプチドのサイログロブリン結合体をそれぞれ固定化した９６ウエルプレートでＥＬＩＳＡを行った。
その結果、図１、２、３、４および５に示すように、４Ｐ１１、１１Ｍ６、２５Ｈ５、３５Ｂ６および３３Ｅ１０はｍＯＰＮ５およびｈＯＰＮ５と結合したことから、マウスとヒトの両方の部分ペプチドを認識する抗体であった。その中で、３３Ｅ１０はＲＧＤ配列以降の配列を含むＣＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号２０）、ＣＳＶＶＹＧＬＲ（配列番号２２）には反応せず、ＣＧＲＧＤＳ（配列番号２３）、ＣＶＤＶＰＮＧＲＧＤＳ（配列番号１５）およびＣＰＮＧＲＧＤ（配列番号１６）と反応したことから、これらペプチドの共通配列であるＲＧＤを認識する抗体であり、マウスとヒトの両方に反応性を示す抗体であった。また、３５Ｂ６はＣＧＲＧＤＳ（配列番号２３）、ＣＶＤＶＰＮＧＲＧＤＳ（配列番号１５）およびＣＰＮＧＲＧＤ（配列番号１６）に反応せず、ＣＧＲＧＤＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号１７）、ＣＧＤＳＬＡＹＧ（配列番号１８）、ＣＧＤＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号１９）に反応したことから、ＲＧＤ配列のＧＤを含むＲＧＤ配列以降の配列も認識する抗体であることが示唆された。２９Ｒ５、３０Ｃ１７および３８Ｉ８はＧＲＧＤＳ（配列番号２４）、ＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号２５）またはＳＶＶＹＧＬＲ（配列番号２６）と若干の反応性も見られたが、ｍＯＰＮ５のみと反応することから、マウスのＯＰＮのＶＤＶＰＮＧＲＧＤＳＬＡＹＧＬＲ（配列番号２７）を認識する抗体であった。
実施例３：抗体のアミノ酸配列解析
ハイブリドーマ細胞を、ＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉキット（Ｑｉａｇｅｎ社）を用いてＲＮＡを抽出し、Ｆｉｒｓｔ−ｓｔｒａｎｄ ｃＤＮＡ合成キット（アマシャムバイオサイエンス社）にてｃＤＮＡを作製した。Ｈｅａｖｙ ｐｒｉｍｅｒ増幅キット（アマシャムバイオサイエンス社）を用いてＰＣＲを行い、抗体の重鎖（Ｈｅａｖｙ ｃｈａｉｎ）ｃＤＮＡを伸張させ、ｐＣＲＩＩ−ＴＯＰＯベクター（ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）へ組み込み、ｃＤＮＡ配列、アミノ酸配列を決定した。ＣＤＲ領域は、ＡＢＧ：Ｄｉｒｅｃｔｏｒｙ ｏｆ ３Ｄ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ ｏｆ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｉｂｔ．ｕｎａｍ．ｍｘ／ｖｉｒ／ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ／ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ．ｈｔｍｌ）とｂｌａｓｔ ｆｏｒ Ｉｇ ｓｅｑｕｅｎｃｅ（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｉｇｂｌａｓｔ）を利用して決定した。
その結果、重鎖および軽鎖の可変領域とＣＤＲ領域は図６および図７に示すアミノ酸配列となった。具体的には、以下の通りである。
（重鎖）
［ＣＤＲＨ１］
３３Ｅ１０： ＧＦＴＦＴＤＹＹＭＩ（配列番号１）
３５Ｂ６： ＧＹＴＦＴＮＹＷＭＨ（配列番号２）
［ＣＤＲＨ２］
３３Ｅ１０： ＷＬＧＦＩＲＮＫＡＮＧＹＴＴＥＹＳＡＳＶＫＧ（配列番号３）
３５Ｂ６： ＷＩＧＮＩＮＰＲＮＧＤＳＮＹＮＥＫＦＲＳ（配列番号４）
［ＣＤＲＨ３］
３３Ｅ１０： ＧＡＹ（配列番号５）
３５Ｂ６： ＧＹＦＤＶ（配列番号６）
（軽鎖）
［ＣＤＲＬ１］
３３Ｅ１０： ＲＳＳＱＳＩＶＨＳＮＧＮＴＹＬＥ（配列番号７）
３５Ｂ６： ＫＡＳＱＤＩＮＳＹＬＳ（配列番号８）
［ＣＤＲＬ２］
３３Ｅ１０： ＲＶＳＮＲＦＳ（配列番号９）
３５Ｂ６： ＲＡＮＲＬＶＤ（配列番号１０）
［ＣＤＲＬ３］
３３Ｅ１０： ＧＳＦＶＰＷ（配列番号１１）
３５Ｂ６： ＹＤＥＦＰＦ（配列番号１２）
なお、本実験では、ＡＢＧを用いてＣＤＲ領域を決定したが、使用するソフトウェアにより得られる結果に多少の違いが生じ得ることは当業者に理解され得る。
実施例４：ＲＧＤを有する細胞外マトリックスタンパク質との結合
［解析に用いたタンパク質］
ヒト・オステオポンチン（ｈＯＰＮ）、マウス・オステオポンチン（ｍＯＰＮ）は、それぞれの遺伝子を導入したＣＨＯ−Ｋ１細胞の培養上清から抗ＯＰＮ抗体カラムを用いて精製した。ヒト・ビトロネクチン（ＶＮ）は旭テクノグラス社より、ヒト・ファイブロネクチン（ＦＮ）、ヒト・トロンボスポンジン、マウス・ラミニンはＳｉｇｍａ社から入手した。
［ＥＬＩＳＡ法］
９６ウエルプレートに、ペプチド（１０μｇ／ｍｌ）、あるいはタンパク質（５μｇ／ｍｌ）を３７℃、１時間放置して固定化し、０．１％ＢＳＡ／ＰＢＳ／０．０５％ＮａＮ_３溶液でブロッキング後、抗体を種々の濃度で３７℃、１時間反応させた。次に二次抗体として、ＨＲＰ標識抗マウスＩｇＧ抗体（Ｊａｃｋｓｏｎ社）を３７℃、３０分反応後、ＯＰＤで１５分間発色、１Ｎ Ｈ_２ＳＯ_４で反応を停止させ、４９０ｎｍにおける吸光度を測定した。
［細胞マトリックスとの結合能］
ｈＯＰＮ、ｍＯＰＮ、ＦＮ、ＶＮまたはラミニンをそれぞれ固定化した９６ウエルプレートを用いてＥＬＩＳＡを行った。
その結果を図８に示す。３３Ｅ１０は、ラミニンでの反応性は低いが、調べた全ての細胞外マトリックスタンパク質と交差反応することが示唆された。３５Ｂ６はｈＯＰＮとｍＯＰＮには反応するが、ＦＮ、ＶＮおよびラミニンには反応しないことがわかった。
実施例５：細胞接着試験
［解析に用いたタンパク質］
ヒト・オステオポンチン（ｈＯＰＮ）、マウス・オステオポンチン（ｍＯＰＮ）は、それぞれの遺伝子を導入したＣＨＯ−Ｋ１細胞の培養上清から抗ＯＰＮ抗体カラムを用いて精製した。ｍＯＰＮ Ｎ−ｈａｌｆは、マウスＯＰＮのトロンビン切断部位のＮ末をＧＳＴ融合タンパク質として大腸菌から精製した。ヒト・ファイブロネクチン（ＦＮ）、ヒト・ビトロネクチン（ＶＮ）、はＳｉｇｍａ社から入手した。
［細胞接着試験方法］
タンパク質を９６ウエルプレートに５０μｌずつ添加し、３７度で１時間静置することにより固定化した。ブロッキング液（０．５％ ＢＳＡ／ ＰＢＳ）にてブロッキング後、ＰＢＳで１度洗浄し、０．２５％ ＢＳＡ添加Ｄ−ＭＥＭで懸濁したＮＩＨ３Ｔ３細胞とモノクローナル抗体とを混合させ、１．０×１０^５個／ｍｌとなるように２００μｌずつ添加した。３７℃、５％ＣＯ_２下で１時間反応後、０．５％ クリスタルバイオレット（ＷＡＫＯ、Ｏｓａｋａ、Ｊａｐａｎ）／２０％メタノール溶液を５０μｌずつウェルに加え、室温で３０分間放置することにより細胞の固定と染色を行った。蒸留水でプレートを洗浄後、２０％ 酢酸溶液にて転溶し、５９０ｎｍにおける吸光度を測定した。
［細胞接着阻害能］
ｍＯＰＮ Ｎ−ｈａｌｆを固定化した９６ウエルプレートにＮＩＨ３Ｔ３細胞と３３Ｅ１０または３５Ｂ６を混和した溶液を入れ、ＮＩＨ３Ｔ３細胞のｍＯＰＮ Ｎ−ｈａｌｆとの接着に及ぼす抗体の影響を検討した（図９）。また、ｍＯＰＮ Ｎ−ｈａｌｆ、ＦＮまたはＶＮをそれぞれ固定化した９６ウエルプレートにＮＩＨ３Ｔ３細胞と３３Ｅ１０を混和した溶液を入れ、それぞれのタンパク質への細胞の接着に及ぼす抗体の影響を検討した（図１０）。
その結果、図９および１０に示すように、ＮＩＨ３Ｔ３細胞はｍＯＰＮ Ｎ−ｈａｌｆに接着し、抗ＲＧＤ抗体で細胞接着が阻害され、３３Ｅ１０は３５Ｂ６と比べＲＧＤ依存性接着阻害能が高かった。また、ＮＩＨ３Ｔ３細胞は検討した全ての細胞外マトリックスタンパク質へ接着することが確認され、３３Ｅ１０はｍＯＰＮ Ｎ−ｈａｌｆとの細胞接着を阻害するが、ＦＮおよびＶＮとの細胞接着を阻害せず、ＯＰＮと細胞の接着を特異的に阻害すると示唆された。
実施例６：肝炎抑制試験
［肝炎モデル動物］
肝炎は、Ｃ５７ＢＬ／６マウスにコンカナバリンＡ（ＣｏｎＡ）（２００μｇ／匹）を尾静脈投与し、１２時間後に肝炎のマーカーであるＡＬＴ、ＡＳＴを調べるモデルを用いた。
［肝炎治療効果］
モノクローナル抗体を４００μｇ／匹を尾静脈へ投与し、３時間後にＣｏｎＡを投与した後、その１２時間後にＡＬＴ、ＡＳＴを測定した。なお、マウスは１群５匹で実施し、コントロール抗体としてマウスＩｇＧを用いた。
その結果を図１１に示すが、２５Ｈ１５は肝炎発症を全く抑制せず、４Ｐ１１、１１Ｍ６、２９Ｒ５、３０Ｃ１７および３８Ｉ８は若干の抑制効果を示したが、３３Ｅ１０および３５Ｂ６はＡＬＴ、ＡＳＴの活性上昇が全く観察されないので、肝炎発症を抑制することが示唆された。
実施例７：癌転移抑制試験
［癌転移モデル動物］
実験的肺転移モデルは、Ｃ５７ＢＬ／６マウスにマウスメラノーマ細胞株Ｂ１６−Ｌｕｃ細胞（１ｘ１０^５個／匹）を尾静脈投与し、１４日後に肺転数を調べるモデルを用いた。
自然的肺転移モデルは、Ｃ５７ＢＬ／６マウスの右後足蹠にＢ１６−ＢＬ６細胞（４×１０^５）を皮下接種した。接種１９日後に原発腫瘍を外科的に切除した。原発腫瘍切除１４日後（Ｂ１６−ＢＬ６細胞投与後３３日後）に犠牲死させ、肺での腫瘍コロニー数を計測した。
［癌転移抑制効果］
実験的肺転移モデルでは、モノクローナル抗体４００μｇ／匹とＢ１６−Ｌｕｃ細胞とを混和して同時に投与し、１４日後に肺転数を調べた。なお、コントロール抗体として、同じサブクラス（ｍＩｇＧ１）抗体を用いた。
その結果、図１２に示すように、コントロールに比べ、３３Ｅ１０と３５Ｂ６共に肺転数の平均は低下し、３５Ｂ６は有意に肺転移を抑制した。
一方、自然的肺転移モデルにおいては、モノクローナル抗体を腫瘍移植後３、５、７、９、１１、１３、１５、および１７日目に２００μｇを合計８回腹腔内投与し、腫瘍移植後１９日目に原発腫瘍を外科的に切除するまでの原発腫瘍のサイズを測定した。さらに、原発腫瘍切除後１４日目における肺での腫瘍コロニー数を計測した。なお、コントロール抗体として、同じサブクラス（ｍＩｇＧ１）抗体を用いた。
原発腫瘍サイズの経日的変化および肺転移した腫瘍数を図１３に示す。３３Ｅ１０と３５Ｂ６の投与により、原発腫瘍サイズはコントロールに比べて有意に小さく、３３Ｅ１０と３５Ｂ６は共に腫瘍の増殖を抑制する効果が認められた。また、コントロール５匹中２匹の転移腫瘍数が多かったため、３５Ｂ６は統計的に有意差が得られなかったが、転移腫瘍数の平均において３３Ｅ１０と３５Ｂ６はコントロールに比較して少ないことから、３３Ｅ１０と３５Ｂ６は共に癌の肺転移を抑制することが示唆された。
実施例８：関節リウマチ抑制試験
［関節リウマチ・モデル動物］
関節リウマチは、抗ｔｙｐｅ ＩＩ ｃｏｌｌａｇｅｎに対する抗体を投与する関節用カクテル（ＩＢＬ）を用いて、説明書に従って発症させた。すなわち、ＢＡＬＢ／ｃマウスに抗ｔｙｐｅ ＩＩ ｃｏｌｌａｇｅｎ抗体カクテルを投与し、３日後にＬＰＳを投与して発症させた。なお、関節炎の評価は、四肢それぞれについて次に示す関節炎スコア（０：症状無し。１：四肢の指など小関節が一本のみ腫脹発赤。２：小関節２本以上、あるいは手首や足首などの比較的大きな関節が腫脹発赤。３：１本の手や足全体が腫脹発赤。４：さらに１本の手や足の全体的な腫脹が最大限に達している。四肢の合計で最大１６点になる。）で行った。
［関節リウマチ発症抑制効果］
モノクローナル抗体は、関節用カクテル投与の前日から関節用カクテル投与の６日後まで毎日２００μｇを全８回腹腔内に投与し、関節用カクテル投与後毎日観察して関節炎スコアを算出した。
その結果、図１４に示すように、３３Ｅ１０と３５Ｂ６は共にコントロールに比べて関節炎スコアが小さく、３３Ｅ１０と３５Ｂ６は共に関節リウマチ発症を抑制する効果を有するといえる。

本発明のモノクローナル抗体は、細胞外マトリックスタンパク質の機能抑制により、癌（例えば癌細胞の増殖、転移）、炎症性疾患（例えば変形性関節症、肝炎、気管支喘息、綿維症、糖尿病、動脈硬化、多発性硬化症、炎症性腸疾患（潰瘍性大腸炎、クローン病））、感染症（例えば肝炎）、自己免疫疾患（例えば関節リウマチ、全身性エリテマトーデス、多発性筋炎、自己免疫性甲状腺疾患、尿細管間質性腎炎、重症筋無力症）および骨疾患（例えば骨粗鬆症）等に対する治療効果を奏する。また、本発明のモノクローナル抗体は、体液、細胞または組織における細胞外マトリックスタンパク質を検出できることから、診断薬としても利用できる。
［配列表］

Claims (15)

1. 重鎖の相補性決定領域１（ＣＤＲＨ１）、２（ＣＤＲＨ２）、および３（ＣＤＲＨ３）におけるアミノ酸配列として、それぞれ配列番号１、３、および５のアミノ酸配列を、軽鎖の相補性決定領域１（ＣＤＲＬ１）、２（ＣＤＲＬ２）、および３（ＣＤＲＬ３）におけるアミノ酸配列として、それぞれ配列番号７、９、および１１のアミノ酸配列を含む抗ＲＧＤ抗体。
2. 重鎖の相補性決定領域１（ＣＤＲＨ１）、２（ＣＤＲＨ２）、および３（ＣＤＲＨ３）におけるアミノ酸配列として、それぞれ配列番号２、４、および６のアミノ酸配列を、軽鎖の相補性決定領域１（ＣＤＲＬ１）、２（ＣＤＲＬ２）、および３（ＣＤＲＬ３）におけるアミノ酸配列として、それぞれ配列番号８、１０、および１２のアミノ酸配列を含む抗ＲＧＤ抗体。
3. ヒト、マウス、またはその両方の細胞外マトリックスタンパク質のＲＧＤ配列を特異的に認識する請求項１または２に記載の抗ＲＧＤ抗体。
4. モノクローナル抗体である、請求項１〜３のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体。
5. ヒトおよびマウスの細胞外マトリックスタンパク質のＲＧＤ配列を特異的に認識する、請求項１〜４のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体。
6. ヒト、マウス、またはその両方の細胞外マトリックスタンパク質とＲＧＤ受容体との結合を阻害する請求項１〜５のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体。
7. キメラ抗体である請求項１〜６のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体。
8. ヒト化抗体である請求項１〜６のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体。
9. 受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０４４０、ＦＥＲＭ ＢＰ−１０４４１で標示されるハイブリドーマ細胞により産生される抗ＲＧＤモノクローナル抗体。
10. 請求項１〜９のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体を有効成分として含む癌、炎症性疾患、感染症、自己免疫疾患または骨疾患の治療剤。
11. 請求項１〜９のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体を有効成分として含む癌、炎症性疾患、感染症、自己免疫疾患または骨疾患の診断剤。
12. 受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０４４０またはＦＥＲＭ ＢＰ−１０４４１で表示されるハイブリドーマ細胞から抗体を産生することを特徴とする、請求項１〜９のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体の製造方法。
13. 請求項１〜９のいずれかに記載の抗ＲＧＤ抗体の相補性決定領域をヒト抗体に遺伝子工学的に組込んだキメラ抗体の製造方法。
14. 請求項１〜９のいずれかに記載のモノクローナル抗体の相補性決定領域をヒト抗体に遺伝子工学的に組込んだヒト化抗体の製造方法。
15. 受託番号ＦＥＲＭ ＢＰ−１０４４０またはＦＥＲＭ ＢＰ−１０４４１で表示されるハイブリドーマ細胞。