JP5363481B2 - 早産の危険性を評価するためのバイオマーカーの同定および定量化 - Google Patents
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Description
本出願は、2007年7月20日出願の米国仮特許出願第60/961,466号ならびに、2008年5月1日出願の米国仮特許出願第61/049,676号の優先権の利益を主張するものである。これらの出願に記載の教示内容全体について、その全文を本明細書に援用する。
本発明につながった研究では、一部にNational Institutes of Health,Grant Nos.R21HD047319およびU01HD050080による資金援助を受けた。本発明は米国政府が一定の権利を有し得るものである。
Rf=(バイオマーカーの溶出時間−先行する時間マーカーの溶出時間)/(後続の時間マーカーの溶出時間−先行する時間マーカーの溶出時間)。
妊娠24週目または28週目に採血した160名の妊婦で研究を実施し、妊娠が終わるまで追跡した。これらの女性のうち80名が合併症のない妊娠で、早産(PTB)の兆候は何ら認められなかった。この女性たちで対照群を構成した。残りの80名の女性にはPTB(妊娠期間37週未満)があった。この女性たちをPTBの症例とした。本明細書に記載のプロテオミクス技術を用いて、これら160名の女性の血清を研究した。
2容量のHPLCグレードのアセトニトリル(400μL)を血清200μLに加え、5秒間強くボルテックスして室温にて30分間放置した。次に、(血清採取)由来の試料を、IEC Micromax RF遠心機(Thermo Fisher Scientific,Waltham,MA)にて室温で10分間12,000rpmで遠心処理した。続いて、上清のアリコートを300μLのHPLCグレードの水が入った微小遠心管に移した。試料を軽くボルテックスして溶液を混合し、これをLabconco CentriVap Concentrator(Labconco Corporation,Kansas City,MO)にて約200μLまで凍結乾燥させた。凍結乾燥前に加える水の容量によって、溶液からアセトニトリルを完全に除去しやすくなる。これが必要なのは、アセトニトリルはタンパク質濃度を判断するのに用いるアッセイと不適合であることが理由である。製造業者の指示に従って実施するBio−Radマイクロタイタープレートタンパク質アッセイを用いて、上清タンパク質濃度を求めた。タンパク質4μgを含有するアリコートを新しい微小遠心管に移し、ほぼ乾固するまで凍結乾燥させた。HPLC水を用いて試料を最大20μLまでにした後、20μLの88%ギ酸を用いて酸性化した。
キャピラリー液体クロマトグラフィ(cCL)を実施して、試料を分画した。キャピラリーLCでは、1mm(16.2μL)のマイクロボアガードカラム(Upchurch Scientific,Oak Harbor,WA)と、インハウスで組み立てた内径15cm×250μmのキャピラリーカラムとを用いる。POROS R1逆相培地(Applied Biosystems,Framingham,MA)を用いて、ガードカラムには乾燥充填、キャピラリーカラムにはスラリー充填した。水性相(98%HPLCグレードのH2O、2%アセトニトリル、01.%ギ酸)と有機相(2%HPLC H2O、98%アセトニトリル、0.1%ギ酸)を用いて、カラム平衡およびクロマトグラフ分離を実施した。分離については、95%水溶液でカラム平衡3分、続いて60%有機相まで2.75%/分勾配増、これを7%/分で増加して95%有機相の濃度にすることで達成した。勾配を95%有機相で7分間保持し、試料の一層疎水性の成分を溶出させた後、5分かけて勾配を95%水性相に戻してこの濃度で2分間保持して、カラムを再平衡させた。分離はいずれも、流量5μL/分で実施した。クロマトグラフィでは、LC Packings Ultimate CapillaryHPLCポンプシステムを、FAMOS(登録商標)オートサンプラー(Dionex Corporation,Sunnyvale,CA)と一緒に、Analyst QS(登録商標)(Applied Biosystems,Foster City,CA)の制御下で用いた。
試料を流す前に毎日、外部対照を用いてMS較正を実施した。必要があれば、設定を調節して信号対雑音比を最適化するとともに、敏感度を最大限にした。
異なる日とカラムでの試料の流が溶出時間を変える可能性があるため、有用なクロマトグラム(有用なクロマトグラム15分から35分前後)で2分前後の間隔で溶出される平均存在量の10の内因性分子種を求めた。また、目的の溶出領域に対して2分のウィンドウを確立し、ファイルサイズを取り扱い可能なままにしておけるようにする。MSコンピュータの抽出イオンクロマトグラム(XIC)機能を利用して、各溶出時間マーカーについて所望のm/z範囲の溶出画分を可視化する。それぞれの標本についてアライメントピークそれぞれの溶出時間を求め、これをSet Selection機能の平均によって2分のウィンドウの中心として使用する。これによって、すべての実施がそのウィンドウの同じ中点に対して整列される。次に、Show Spectra機能を使って、全質量スペクトルから単一の平均質量スペクトルを作製する。
Q−Star(q−TOF)質量分析計をサポートしているAnalyst(登録商標)ソフトウェアプログラムによって、16の個々の液体クロマトグラフの実施をまとめ、その中での同様の溶出時間での質量スペクトルを比較することができる。上述したようにして有用な溶出の2分のウィンドウ10個を20分間かけて確立し、データファイルの大きさを取り扱いできる程度に維持した。同じく上述したようにして2分のウィンドウを整列させた。2分の溶出間隔10のうち、第1に分析するのは、一般にペプチド種の存在量が多いことから選択した第2の2分のウィンドウであった。ペプチドの多荷電状態の特徴的な見た目によってペプチドを同定したが、これは十分に画定されたピークのクラスターのように見える(単一のピークまたは複数のピークが1質量/電荷単位で分離されるのではなく、個々のピークのガウス形状が1質量/電荷単位未満で分割される。PTBに至っている8名の被験者からなる群と対照(PTBなし)の8名の被験者からなる群とを色で区別し、重ねた。次に、データを目視検査し、ひとつの色で優勢に見える分子種を記録した。使用したソフトウェアは、16の試料しか可視化できない状態に限られていた。16を超えるサンプリングサイズの場合、複数のデータセット比較を実施する。さらに考慮される化合物では、データセットの少なくとも三分の二において2つの群間で同じ明確な差が観察される必要があった。
時間アライメントに用いた参照ピークの質量および代表的な溶出時間を表1にまとめておく。
時間アライメント後に、各々色を付けたPTB症例と対照で複数の質量スペクトルが重なった初期プロセスでバイオマーカー候補を可視的に同定した。優位に一方の色に見えるピークをさらに研究した。個々のスペクトルについて、QqTOF質量分析計(Applied Biosystems)用のオペレーティングシステムであるAnalyst(登録商標)ソフトウェア(Applied Biosystems)を備えたコンピュータでピーク高を求めた。次に、バイオマーカーの量を表にした。また、同じ時間ウィンドウで発生した第2のピークは、症例と対照とで定量的に異なるものではなく、同じく選択した。これは、非生物学的な変動性を減らすための内因性対照を表していた。これについては、候補ピークの量を内因性対照の量で割って達成した。それぞれの標本での比の大きさを記録し、PTB症例と対照とを比較するスチューデント検定を用いて統計的な差を求めた。
Rf=(バイオマーカーの溶出時間−先行する時間マーカーの溶出時間)/(後続の時間マーカーの溶出時間−先行する時間マーカーの溶出時間)
現段階の血清プロテオミクス手法の特徴のひとつに、あらゆる種で見いだされ、症例と対照とで違わなかった内因性分子を使用することがある。バイオマーカー存在量を、この内部対照に対して正規化すると、非生物学的な変化が減り、危険性の予測にバイオマーカーを利用する機能が改善される。正規化には、目的のピークの存在量を参照ピークで数学的に割ることを含む。存在量は、機械で導き出した値であった。特定の分子の存在量は、特定の質量スペクトルで質量分析計によって測定される特定質量のイオン数あるいは、全溶出期間を表すいくつかの質量スペクトルで観察される特定質量の合計を示す。分子は一般に、クロマトグラフィのカラムを移動して外に出るのに1.0〜1.5分間必要とするのに対し、質量スペクトルはその溶出期間で1秒ごとに得られる。
上述したように、バイオマーカーの予測力についての一般的な尺度の一つが、その敏感度と特異度である。PTBを発症する危険性のある被験者を識別するために、表4に示す4つのlog比それぞれの閾値を求めた。それぞれの閾値については、特異度(真陰性率)が80%以上になるようにして算出した。上述のように、これは偽陽性率が20%以下であるのと同じである。これらの数学的に求めた閾値を使用して、4つの比で独立して、表5に示すような以下の敏感度(真陽性)と特異度(真陰性)の比を得た。
親ペプチドのフラグメンテーションを引き起こす2つの質量分析計の間に衝突セルを挟んだタンデムMSを用いて、検索可能なデータベース(MASCOT)と比較して第2のMSステップで観察されたフラグメンテーションパターンからアミノ配列を求めた。このペプチドのうちの3つは、同じ親タンパク質すなわちインターαトリプシン阻害剤重鎖4(ITIH4)由来であったのに対し、最終ペプチドは第2のタンパク質すなわちインターαトリプシン阻害剤重鎖関連タンパク質(IHRP)から得られた。表6にバイオマーカー(配列番号1〜4)をあげておく。
以下のELISAアッセイを利用して、生物学的試料における目的のバイオマーカーを検出および定量化することが可能である。目的のペプチド(抗原)に対して免疫学的に特異な第1の抗体を、96ウェルのマイクロタイタープレートの表面に吸着させる。25マイクロリットルの血清または目的のペプチドの周知のグレード濃度の標準を個々のウェルに加える。血清を第1の抗体と一緒に30分間インキュベートする。ウェル表面にコーティングされた第1の抗体が抗原を結合し、これを固定化する。抗原に対して免疫学的に特異な第2の抗体を含有する第2の溶液200マイクロリットルを、それぞれのウェルに加える。第2の抗体については、西洋ワサビペルオキシダーゼなどのマーカーまたは化学発光前駆体で標識しておく。ウェルを30分間インキュベートし、第2の抗体が抗原−第1の抗体複合体と結合して、それ自体がウェルの表面に結合した抗体−抗原−抗体「サンドイッチ」を形成できるようにする。次にウェルを慎重かつ十分に洗浄し、未結合の第2の抗体を除去する。さらに、第2の抗体標識に対する特異的基質を含有する溶液を加える。西洋ワサビペルオキシダーゼの場合、結合した第2の抗体の量に対応する色の変化がウェルに起こる。化学発光マーカーの場合、基質は非化学発光分子種から、化学発光製品に変換される。製品によって放出される光は、ウェルに存在する抗原の量に比例し、「プレートリーダー」で測定される。このプレートリーダーは、特定の波長で放出された光を測定し、その強度を記録する特別なスペクトロメータである。
以下のELISAアッセイを利用して、目的のバイオマーカーを生物学的試料で検出および定量化することが可能である。このアッセイは、第2の抗体をビオチン分子で標識すること以外はELISAアッセイIと同様である。抗体−抗原−抗体形成後のウェルの洗浄に続いて、西洋ワサビペルオキシダーゼに結合したストレプトアビジンを含む溶液をウェルに加え、ビオチン分子と反応させる。この特定のアッセイでは、未着色の基質が着色製品に変換される。特定波長の光の吸光度として測定した色の強度は、ウェルに存在する抗原の量に比例する。その吸光度と、既知でグレード濃度の抗原の一連の較正標準の吸光度vs.濃度のプロットとを比較をすれば、未知の濃度を推測することが可能である。
Claims (20)
- (a)被験者由来の生物学的試料中に存在する、アミノ酸配列の配列番号1、配列番号2、配列番号3、配列番号4またはそれらの組み合わせを含む少なくとも1つのバイオマーカーを検出し、
(b)前記生物学的試料における少なくとも1つのバイオマーカーの量を定量化することを含む、懐妊被験者における早産の危険性を評価するための方法であって、
上記生物学的試料が、血清、血漿、又は血液である、方法。 - ステップ(b)が、少なくとも1つのバイオマーカーの存在量を測定することを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記生物学的試料における少なくとも1つのバイオマーカーの存在量と、早産に至らなかった被験体に由来する対照生物学的試料における少なくとも1つのバイオマーカーの対照濃度とを比較して、早産の危険性が高いことを識別することをさらに含む、請求項2に記載の方法。
- 早産の危険性が高いことを識別することが、前記生物学的試料における少なくとも1つのペプチドの存在量が、前記対照生物学的試料における少なくとも1つのペプチドの対照濃度よりも有意に低いと判断することを含む、請求項3に記載の方法。
- 前記生物学的試料における少なくとも1つのバイオマーカーの存在量と、前記被験者から得た前記生物学的試料における参照分子の対照濃度とを比較し、早産の危険性が高いことを識別することをさらに含む、請求項2に記載の方法。
- 前記少なくとも1つのバイオマーカーが、アミノ酸配列の配列番号1、配列番号2、配列番号3または配列番号4を有する少なくとも2つのペプチドである、請求項1に記載の方法。
- 前記少なくとも1つのバイオマーカーが、アミノ酸配列の配列番号1、配列番号2、配列番号3または配列番号4を有する少なくとも3つのペプチドを含む、請求項1に記載の方法。
- 検出ステップ(a)がプロテオミクス技術を含む、請求項1に記載の方法。
- 検出ステップ(a)が、(1)抗体抗原複合体の形成を可能にする条件下で、少なくとも1つのバイオマーカーに対して免疫学的に特異な抗体に前記生物学的試料を接触させ、(2)抗体抗原複合体の形成をアッセイして、前記生物学的試料における少なくとも1つのバイオマーカーを検出することを含む、請求項1に記載の方法。
- 前記抗体がモノクローナル抗体を含む、請求項9に記載の方法。
- 前記抗体が、キャリア分子に結合またはコンジュゲートされている、請求項9に記載の方法。
- 前記抗体が、固相支持体に結合またはコンジュゲートされている、請求項9に記載の方法。
- 前記抗体抗原複合体の形成後、前記固相支持体上の抗体に結合しない前記生物学的試料の成分を除去する、請求項12に記載の方法。
- 前記生物学的試料が血清である、請求項1〜13のいずれか一項に記載の方法。
- 前記生物学的試料が血液である、請求項1〜13のいずれか一項に記載の方法。
- (a)被験者から生物学的試料を取得し、
(b)抗体抗原複合体の形成を可能にする条件下で、配列番号1、配列番号2、配列番号3、配列番号4を含むアミノ酸またはそれらの組み合わせを有する少なくとも1つのバイオマーカーに対して免疫学的に特異な少なくとも1つの抗体に前記生物学的試料を接触させ、
(c)抗体抗原複合体の形成をアッセイして、前記生物学的試料における少なくとも1つのバイオマーカーを定量化し、
(d)前記生物学的試料におけるバイオマーカーの量を、早産に至らなかった被験者における同じバイオマーカーの量と比較して、早産の危険性を評価することを含む、懐妊被験者における早産の危険性を評価するための方法であって、
上記生物学的試料が、血清、血漿、又は血液である、方法。 - 前記少なくとも1つの抗体が少なくとも1つのモノクローナル抗体を含む、請求項16に記載の方法。
- (a)配列番号1、配列番号2、配列番号3、配列番号4を含むアミノ酸配列を有する少なくとも1つのバイオマーカーに選択的に結合可能な少なくとも1つの抗体と、
(b)少なくとも1つのモノクローナル抗体と少なくとも1つのバイオマーカーとの間の抗体抗原複合体の形成をアッセイするために前記抗体と機能的に関連するインジケーターと、を含む、懐妊被験者における早産の危険性を評価するためのキット。 - 前記生物学的試料における少なくとも1つのバイオマーカーの量を定量化するよう構成されたインジケーターをさらに含む、請求項18に記載のキット。
- 前記抗体がモノクローナル抗体を含む、請求項18に記載のキット。
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