JP5363464B2 - 癌細胞傷害性を介在するキメラ及びヒト化抗−cd44抗体 - Google Patents
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Description
本発明は、癌性疾患の診断及び治療、具体的には、腫瘍細胞の細胞傷害性の介在に関し;及び最も具体的には、細胞傷害性応答を開始する手段としての、場合により、1以上のCDMAB/化学療法剤と組み合わせた、癌性疾患修飾抗体(CDMAB)の使用に関する。本発明は、本発明のCDMABを利用する、結合アッセイにも関する。
癌におけるCD44:ヒト白血球に対するモノクローナル抗体の産生は、CD44抗原の発見をもたらした;単一鎖ヒアルロン酸(HA)結合糖タンパク質は、幅広い正常組織において発現し、すべての種類の造血細胞において発現した。それはもともと、リンパ球活性化及びホーミングに関連した。現在、その推定上の生理学的役割も、炎症遺伝子の活性化、細胞周期の調整、細胞増殖の誘導、分化及び発達の誘導、細胞骨格再組織化及び細胞転移及びアポトーシスに対する細胞生存/耐性の誘導を含む。
米国特許第5,750,102号明細書は、患者の腫瘍が患者由来の細胞又は組織からクローン化され得るMHC遺伝子でトランスフェクトされる、プロセスを開示している。これらのトランスフェクトされた細胞は、次いで、患者をワクチン化するために使用される。
本願は、癌性疾患修飾モノクローナル抗体をコードするハイブリドーマ細胞株を単離するための、米国特許第6,180,357号明細書に教示された患者特異的抗-癌抗体を産生するための方法論を利用する。これらの抗体は、1つの腫瘍に対して特異的に作製され、よって癌療法のカスタマイズを可能にする。本願の記載の範囲内で、細胞-殺傷(細胞傷害性)性又は細胞-増殖阻害(細胞増殖抑制)性のいずれかを有する抗-癌抗体は、以下の明細書において細胞傷害性と称する。これらの抗体は、癌のステージ区分及び診断の目的で使用され、腫瘍転移を治療するために使用され得る。これらの抗体は、予防的治療によって癌の抑制ためにも使用され得る。典型的な薬物発見の実例に従って作製された抗体とは異なり、このような方法で作製された抗体は、悪性組織の増殖及び/又は生存に不可欠であると以前は分かっていなかった分子及び経路を標的することがある。更に、これらの抗体の結合親和性は、より強い親和性相互作用を受けにくいかもしれない細胞傷害性事象の開始のための要件に適している。また、標準的な化学療法的様式、例えば放射性核種を、本願のCDMABと複合化し、それによって該化学療法の使用に焦点を当てることは、本発明の範囲内にある。CDMABは、毒素、細胞傷害性部分、酵素、例えばビオチン複合化酵素、サイトカイン、インターフェロン、標的又はレポータ部分又は血液原性細胞に複合化され、それによって抗体複合体を形成することができる。CDMABは、単独で又は1以上のCDMAB/化学療法剤と組み合わせて使用されてよい。
一般的に、以下の用語又は語句は、概要、説明、実施例及びクレームで使用される場合に、所定の定義を有する。
腫瘍の存在を決定するための診断アッセイキットの形態で本発明のCDMABを利用することが画される。腫瘍は、一般的に、1以上の腫瘍-特異的抗原、例えば、タンパク質及び/又は試料が患者から得られる血清、尿及び/又は腫瘍生検のような生物学的試料中のこのようなタンパク質をコードするポリヌクレオチド、の存在に基いて患者において検出されことになる。
ヒトMDA-MB-468乳癌細胞を用いるインビトロ腫瘍実験
H460-16-2は、MDA-MB-231ヒト乳癌異種移植モデルに対する効果を(S.N. 10/603,000に開示されているように)先に証明している。この発見を拡張するために、MDA-MB-468ヒト乳癌異種移植モデルにおいてH460-16-2を試験した。図1及び2に関連して、8〜10週齢雌性胸腺欠損ヌードマウスに、各々のマウスの右脇腹に皮下的に注射された100μlのPBS溶液中の500万個のヒト乳癌細胞(MDA-MB-468)を移植した。マウスは、無作為に、10ずつの2処理群に分けた。マウスの平均腫瘍体積が約83 mm3に近づいた移植後25日目に、20 mg/kgのH460-16-2試験抗体又はバッファー対照を、2.7 mM KCl、1 mM KH2PO4、137 mM NaCl及び20 mM Na2HPO4を含む希釈剤を用いてストック濃度から希釈した後に、300 μlの体積で各集団に腹腔内に投与した。次いで、該抗体及び対照試料を約3週間、週に2回投与した。キャリパで約3〜10日ごとに腫瘍成長を測定した。処置は抗体の8投薬後に完了した。腫瘍測定と同時に動物の体重を記録した。すべての動物は、エンドポイントに達したら直ちに試験の最後にCCACガイドラインに従って安楽死させた。
ヒトPC-3前立腺癌H460-16-2を用いるインビボ腫瘍実験は、化学療法薬であるシスプラチンを組み合わせたPC-3ヒト前立腺癌異種移植モデルに対する効果を(S.N. 10/810, 165に開示されているように)以前に証明している。その効果が薬物の非存在下で証明され得たか否かを決定するために、H460-16-2を異なったマウス株異種移植モデルにおいて単独で試験した。図3及び4と関連して、8〜10週齢雄性胸腺欠損ヌードマウスに、各マウスの右脇腹に皮下的に注射された100 μlのPBS溶液中の500万個のヒト前立腺癌細胞(PC-3)を移植した。マウスは、無作為に、10ずつの2処理群に分けた。マウスの平均腫瘍体積が約95 mm3に近づいた移植後6日目に、20 mg/kgのH460-16-2試験抗体又はバッファー対照を、2.7 mM KCl、1 mM KH2PO4、137 mM NaCl及び20 mM Na2HPO4を含む希釈剤を用いてストック濃度から希釈した後に、300μlの体積で各集団に腹腔内に投与した。次いで、該抗体及び対照試料を約3週間、週に2回投与した。キャリパで約4〜10日ごとに腫瘍成長を測定した。処置は抗体の10投薬後に完了した。腫瘍測定と同時に動物の体重を記録した。すべての動物は、エンドポイントに達したら直ちに試験の最後にCCACガイドラインに従って安楽死させた。
ヒトMDA-MB-231乳癌細胞を用いるインビボ腫瘍実験
H460-16-2は、MDA-MB-231ヒト乳癌異種移植モデルに対する効果を(S.N. 10/603,000に開示されているように)以前に証明している。効果的な投薬レベルを決定するために、(ch)ARH460-16-2-IgG1を、確立されたMDA-MB-231ヒト乳癌異種移植モデルにおける様々な投薬量において試験した。図5及び6に関連して、8〜10週齢の雌性SCIDマウスに、各マウスの右脇腹に皮下的に注射された100 μlのPBS溶液中の500万個のヒト乳癌細胞(MDA-MB-231)を移植した。マウスの平均腫瘍体積が約100 mm3に近づいた時に、マウスは、無作為に、10ずつの5処理群に分けた。移植後11日目に、20、10、2又は0.2 mg/kgの(ch)ARH460-16-2-IgG1試験抗体又はバッファー対照を、2.7 mM KCl、1 mM KH2PO4、137 mM NaCl及び20 mM Na2HPO4を含む希釈剤を用いてストック濃度から希釈した後に、300μlの体積で各集団に腹腔内に投与した。次いで、該抗体及び対照試料を約3週間、週に3回投与した。キャリパで約4〜7日ごとに腫瘍成長を測定した。処置は抗体の10投薬後に完了した。腫瘍測定と同時に動物の体重を記録した。すべての動物は、エンドポイントに達したら直ちに試験の最後にCCACガイドラインに従って安楽死させた。
ヒト結腸癌組織染色
ヒト癌へのH460-16-2の結合を更に評価するために、ヒト結腸癌組織対するIHC試験を行った。IHC最適化試験は、更なる実験の条件を決定するために行った。
正常ヒト及びカニクイザルの交差反応性
カニクイザルの正常組織上のH460-16-2抗原を特徴付けるためにIHC試験を行った。抗体(ch)ARH460-16-2-IgG1(LifeSpan, Seattle, WA, USAによってFITC標識された)及び同位体対照抗体(Sigma, labeled by LifeSpan, Seattle, WA, USA)を用いて抗体力価実験を行い、最小バックグラウンド及びシグナル最大検出をもたらす濃度を確立した。最適化のために、ホルマリン固定組織、パラフィン包埋組織及び新鮮冷凍組織で、20 μg/mL、10 μg/mL、5 μg/mL及び2.5 μg/mLで段階的希釈を行った。一次抗体として抗体(ch)ARH460-16-2-IgG1及び同位体対照抗体を使用し、二次抗体はウサギで作製された抗-FITC抗体であった(DAKO, Mississauga, ON, Canada)。主な検出系は、色原体としてDABを有するDAKO Envisionペルオキシダーゼ標識ポリマー(DAKO, Mississauga, ON, Canada)から成った。これは、茶色の沈殿物を生成するために使用した。陰性対照は、一次抗体の非存在下で隣接するフラグメント上で完全に免疫組織化学的方法を行うことから成った。Nikon顕微鏡に取り付けられたDVC 131OCデジタルカメラで、スライドの高電力画像を取得した。Leica DMLA顕微鏡を備えたLifeSpan所有の画像化装置(ALIASシステム)で、完全なフラグメントの画像を取得した。画像をAdobe PhotoshopでTIFFファイルとして保存した。
交差競争試験
H460-16-2及びAR37A335.8の結合性を更に特徴付けるために(S.N. 11/364,013に開示されているように)、H460-16-2及びAR37A335.8がCD44の類似又は異なったエピトープを認識するかどうかについて決定するためにウェスタンブロットによって抗体競争実験を行った。500 μgのMDA-MB-231総膜調製物を、2つの10パーセントポリアクリルアミドゲルの各々の長さ全体を補うプレパラティブウェルコンボを用いて、非-還元条件下でSDS-PAGEに供した。4℃で2時間150Vでゲル由来のタンパク質をPVDF膜に移した。回転プラットフォーム上で4℃で約7時間、5パーセントミルクのTBST溶液で該膜をブロックした。該膜を約20 mLのTBSTで2回洗浄し、異なった処理溶液が適用されている20個の別々の溝を生じるウェスタンマルチスクリーン器具中に置いた。先に、ビオチン化H460-16-2及びAR37A335.8は、EZ-Link NHS-PEO Solid Phase Biotinylation Kit(Pierce, Rockford, IL)を用いて調製した。一次抗体溶液は、ビオチン化H460-16-2又はビオチン化AR37A335.8を様々な濃度の非-ビオチン化抗体と混合することによって調製した。具体的には、3パーセントのスキムミルクTBST溶液に1 μg/mLのビオチン化H460-16-2、及び2 μg/mL、10 μg/mL、100 μg/mL、500 μg/mL又は1000 μg/mLの非-ビオチン化抗体を含む溶液を調製した。使用した非-ビオチン化抗体は、H460-16-2、AR37A335.8及び対照抗体1B7.11(アイソトープ対照、すなわち会社内で精製した抗-TNPネズミIgG1)であった。上で挙げた同一濃度の非-ビオチン化抗体AR37A335.8、H460-16-2及び対照抗体8B1B.1(同位体対照、すなわち会社内で精製した抗-ブルータングウイルス・ネズミIgG2b)で、1 μg/mLのビオチン化AR37A335.8を含む溶液を調製した。
rhCD44へのAR37A335.8の結合親和性の決定
組換えCD44(rhCD44)へのAR37A335.8の結合親和性は、表面プラズモン共鳴(SPR)によって決定した。
ホスホ-RTK(受容体チロシンキナーゼ)プロテオーム・プロファイラ・プロット
キメラ(ch)ARH460-16-2-IgG1処理によって影響された細胞内シグナル伝達経路を同定するために、プロテオーム・プロファイラ・プロット・ヒトホスホ-RTK抗体アレイ(ARYOO1, R&D Systems Inc., Minneapolis, MN)を用いて、(ch)ARH460-16-2-IgG1によって処理した細胞由来の溶解物を選別した。
先の実験(S.N. 11/364,013の開示されている)は、重度の複合免疫不全(SCID)マウスで成長したMDA-MB-231乳癌細胞を用いて、乳癌異種移植モデルでの(ch)ARH460-16-2-IgG1のインビボでの効果を証明した。従って、細胞内シグナル伝達分子の活性化のためのスクリーニングをMDA-MB-231細胞株を用いて行った。MDA-MB-231細胞はコンフルエンス近くに成長し、リン酸緩衝整理食塩水(PBS)で洗浄し、次いで37℃で終夜、血清及び栄養物-欠損媒体中で飢えさせた。この後、(ch)ARH460-16-2-IgG1(20 μg/mL)又はヒトIgG1(Sigma-Aldrich, St. Louis, MI)(20 μg/mL) を細胞に加え、4℃で20分間結合させた。次いで、ウシ胎児血清 (FBS)、L-グルタミン及びピルビン酸ナトリウムを細胞に加えることによって細胞を刺激して、10パーセントFBS、1パーセントL-グルタミン及び1パーセントピルビン酸ナトリウムの終濃度とした。該細胞を37℃のインキュベータに置き、細胞溶解物を刺激後1時間に回収した。溶解物は細胞をPBSで2回洗浄し、及びNP-40溶解バッファー(20 mM Tris-HCl (pH 8.0)、137 mM塩化ナトリウム, 10パーセントグリセロール, 2 mM EDTA, 1 mMオルトバナジウム酸ナトリウム, 10 μg/mLアプロチニン, 10 μg/mLロイペプチン, 1パーセントNP-40 (Igepal(登録商標)CA-630, Sigma-Aldrich, St. Louis, MI))で採取することによって回収した。該細胞はピペッティングによって懸濁し、1.5 mLの微量遠心管に移し、4℃で30分間回転することによって混合した。溶解物は、14000xgで5分間遠心し、上清を透明チューブに移した。ビシンコニン酸(BCA)タンパク質アッセイ(Pierce, Rockford, IL)によってタンパク質濃度を決定した。
製造者(Third Revision, November 2005, R&D Systems antibody array ARYOO1)によって記されたプロトコルに従ってMDA-MB-231細胞溶解物で、ヒトホスホ-RTK抗体アレイを選別した。すなわち、ロッキング・プラットフォーム振とう器上で1時間、1.5 mLのアレイバッファー1(Part番号895477: R&D Systems抗体アレイARYOO1)でインキュベートすることによって、各ヒトホスホ-RTKプロファイラ膜を調製した。各処理について、150 μgの総タンパク質をアレイバッファー1で希釈して1.5 mLの総体積にした。この混合物を調製したプロファイラ膜に加え、ロッキング・プラットフォーム振とう器上で終夜4℃でインキュベートした。次いで、各膜をIX洗浄バッファー(25Xストックから精製した蒸留水で希釈した(Part番号 895003: R&D Systems抗体アレイARYOO1))で3回洗浄し、1Xアレイバッファー2(5Xアレイバッファー2, Part番号895478: R&D Systems抗体アレイARYOO1)で希釈した、1.5 mLの抗-ホスホチロシン-HRP検出抗体カクテル(Part番号841403: R&D Systems抗体アレイARYOO1)で、2時間インキュベートした。膜を1X洗浄バッファーで3回洗浄し、現像のためにECL及びウェスタン検出試薬(GE Healthcare, Life Sciences, Piscataway, NJ)に曝露した。膜を化学発光フィルム(Kodak, Cedex, France)に曝露し、X-線医療プロセッサを用いて現像した。現像したXデンフィルムについてのホスホ-RTKアレイデータは、転送モードスキャナで該フィルムをスキャンし、Image J分析ソフトウェア(Image J 1.37v, NIH)を用いてアレイ画像ファイルを分析することによって定量した。各RTKについて、対応する二重スポットの平均ピクセル密度は、膜上の透明領域のピクセル密度を用いてバックグラウンドシグナルから計算し差し引いた。(ch)ARH460-16-2-IgG1-処理試料の平均標準化ピクセル密度を、各対応するホスホ-タンパク質標的について、同位体対照、ヒトIgG1-処理試料の平均標準化ピクセル密度によって割って、相対的変化の割合を得た。1から相対的変化の割合を差し引き、100を乗じることによって、ホスホ-タンパク質シグナルのパーセント減少を決定した。
H460-16-2のヒト化
必要に応じて当該分野で周知の方法において使用される酵素の使用のための供給者の教示と共に、該方法を用いて組換えDNA技術を行った。詳細な実験室的方法も以下に記載する。
ネズミH460-16-2及び(hu)ARH460-16-2変異体の、rhCD44への結合親和性の決定
H460-16-2、(hu)ARH460-16-2変異体1及び(hu)ARH460-16-2変異体2の結合親和性を、組換えCD44(rhCD44)への結合に続く各々の解離定数の決定によって比較した。
競争的結合物の単離
抗体があれば、当業者は、同一のエピトープを認識する競争的に阻害するCDMAB、例えば競争する抗体、を作製することができる(Belanger L他, Clinica Chimica Acta 48: 15-18 (1973))。ある方法は、抗体によって認識される抗原を発現するイムノゲンで免疫することを伴う。試料は。組織、単離されたタンパク質(複数)又は細胞株(複数)を含むことがあるが、これらに限定されない。得られるハイブリドーマは、ELISA、FACS又はウェスタンブロッティングのような、試験抗体の結合を阻害する抗体を同定する競争アッセイを用いて選別することができた。別の方法は、前記抗原の少なくとも1つのエピトープを認識する抗体のためのファージディスプレイ抗体ライブラリ及びパニングを利用することができた(Rubinstein JL et al. Anal Biochem 314: 294-300(2003))。いずれの場合にも、抗体は、その標的抗原の少なくとも1つのエピトープへの、元の標識された抗体の結合を置き換えるその能力に基づいて選択される。そのため、かかる抗体は、元の抗体として抗原の少なくとも1つのエピトープを認識する特性を有することになる。
H460-16-2モノクローナル抗体の可変領域のクローニング
H460-16-2ハイブリドーマ細胞株によって産生されたモノクローナル抗体の重鎖(VH)及び軽鎖(VL)由来の可変領域の配列は、(S.N. 11/364,013に開示されているように)先に決定された。キメラ及びヒト化IgGに対して、可変軽ドメイン及び可変重ドメインは、発現用の好適なバクターにサブクローン化され得る(上の実施例9に開示されている)。
モノクローナ抗体をコードするDNA(実施例9に概略した)は、慣用的な手段を用いて(例えば、モノクローナル抗体の重鎖及び軽鎖をコードする遺伝子に特異的に結合することができるオリゴヌクレオチドプローブを用いて)、容易に単離され、配列決定される。ハイブリドーマ細胞は、このようなDNAの好ましい起源として役立つ。一旦単離されると、DNAは、発現ベクターに導入され、これは、次いで、E.コリ細胞、サルOCS細胞、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞、又は他には免疫グロブリンタンパク質を産生しない骨髄腫細胞のような宿主に形質移入されて、組換え宿主細胞中でモノクローナル抗体の合成を得ることができる。DNAは、例えば、相同なネズミ配列の代わりに、ヒト重鎖及び軽鎖定常ドメインのためのコーディング配列を置き換えることによって修飾されてもよい。キメラ又はハイブリッド抗体も、架橋剤を含む方法を含む合成タンパク質化学において公知の方法を用いて、インビトロで調製され得る。例えば、抗毒素は、ジスルフィド交換反応を用いて、又はチオエーテル結合を形成することによって構築され得る。この目的のための好適な試薬の例は、イミノチオエート及びメチル−4-メルカプトブチルイミデートを含む。
ヒト化抗体は、非-ヒト起源からそこに導入された1以上のアミノ酸残基を有する。これらの非-ヒトアミノ酸残基は、典型的には「インポート」可変ドメインから得られる「インポート」残基を通常言う。ヒト化は、齧歯動物のCDR又はCDR配列をヒト化抗体の対応する配列と置き換えることによって、Winter及び協力者の方法によって行われる(Jones他, Nature 321: 522-525 (1986); Riechmann他, Nature 332: 323-327 (1988); Verhoeyen他, Science 239: 1534-1536 (1988); Clark, Immunol. Today 21: 397-402 (2000)参照)。
抗体フラグメントの製造のための様々な技術が開発されている。これらのフラグメントは、組換え宿主細胞によって製造され得る(Hudson, Curr. Opin. Immunol. 11: 548-557 (1999);Little他, Immunol. Today 21: 364-370 (2000) 参照)。例えば、Fab'-SHフラグメントは、E.コリから直接的に回収され、化学的に結合されてF(ab')2フラグメントを形成し得る(Carter他, Biotechnology 10: 163-167 (1992))。別の実施態様では、F(ab')2は、ロイシンジッパーGCN4を用いて形成されて、F(ab')2分子の会合を促進する。別の方法によれば、Fv、Fab又はF(ab')2フラグメントは、組換え宿主細胞培養物から直接的に単離され得る。
本発明の抗体を含む組成物
本発明の抗体は、癌を予防/治療するための組成物として使用され得る。本発明の抗体を含む癌を予防/治療するための組成物は、液状調製物の形態のままで、又は好適な調製物の医薬組成物として、ヒト又は哺乳動物(例えば、ラット、ウサギ、ヤギ、ブタ、ウシ、ネコ、イヌ、サル等)に、経口的又は非経口的に(例えば、静脈内に、腹腔内に、皮下的に)投与され得る。本発明の抗体は、それ自体自体投与してもよく、又は好適な組成物として投与してもよい。投与のために使用される組成物は、本発明の抗体又はその塩、希釈剤及び賦形剤と共に薬理学的に許容される担体を含むことがある。かかる組成物は、経口又は非経口投与のために好適な薬学的調製物の形態で提供される。
Claims (7)
- 配列番号7又は配列番号9のアミノ酸配列の重鎖可変部位、及び配列番号8のアミノ酸配列の軽鎖可変部位を含む、ヒトCD44に特異的に結合するヒト化抗体、又はそのヒトCD44結合フラグメント。
- 配列番号9のアミノ酸配列の重鎖可変部位、及び配列番号8のアミノ酸配列の軽鎖可変部位を含む、請求項1記載のヒト化抗体又はそのヒトCD44結合フラグメント。
- ヒト癌を治療するために有効な医薬組成物であって、以下:
請求項1又は2記載のヒト化抗体又はその結合フラグメント;
該抗体又はその抗原結合フラグメントと、細胞傷害性部分、酵素、放射性化合物、サイトカイン、インターフェロン、標的又はレポータ部分及び造血細胞からなる群より選ばれるメンバーとの複合体;並びに
薬理学的に許容される担体の必要量
を組み合わせて含み、
該組成物は、該ヒト癌を治療するために有効である、医薬組成物。 - ヒト癌を治療するために有効な医薬組成物であって、以下:
請求項1又は2記載のヒト化抗体又はその結合フラグメント;及び
薬理学的に許容される担体の必要量
を組み合わせて含み、
該組成物は、該ヒト癌を治療するために有効である、医薬組成物。 - ヒト癌を治療するために有効な医薬組成物であって、以下:
請求項1又は2記載のヒト化抗体又はその結合フラグメントと、
細胞傷害性部分、酵素、放射性化合物、サイトカイン、インターフェロン、標的又はレポータ部分及び造血細胞からなる群より選ばれるメンバーとの複合体;並びに
薬理学的に許容される担体の必要量
を組み合わせて含み、
該組成物は、該ヒト癌を治療するために有効である、医薬組成物。 - ヒト癌性腫瘍の存在を検出するためのアッセイキットであって、
該ヒト癌性腫瘍は、請求項1又は2記載のヒト化抗体又はその結合フラグメントに特異的に結合する抗原の少なくとも1つのエピトープを発現し、
以下:
前記ヒト化抗体又はその結合フラグメント、及び
該ヒト化抗体又はその結合フラグメントが、特定のカットオフレベルでのポリペプチドの存在が該ヒト癌性腫瘍の存在の診断に用いるそのポリペプチドに結合されるか否かを検出するための手段
を含む、キット。 - 前記癌が、乳癌、前立腺癌、膵臓癌、卵巣癌及び結腸癌からなる群より選択される、請求項3〜5のいずれか1項記載の医薬組成物。
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