JP5362748B2 - 遺伝子組換え植物の栽培方法 - Google Patents
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Description
V/W>1.0 ・・・(1)
(但し、式(1)において、Vは、開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、硝酸態窒素が70mg/L〜750mg/L、および/または、アンモニウム態窒素が70mg/L〜750mg/Lとなるように調整した培地にて所定の植物を栽培した場合における該植物の種子に含まれるRNA量である。Wは、開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、窒素0mg/L〜50mg/Lとなるように調整した培地にて該植物を栽培した場合における該植物の種子に含まれるRNA量である。)
を満たす種子で発現するRNAの発現を調節するプロモーターと、前記プロモーターの下流に位置し目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドとを含む発現ベクターが導入されて形質転換された遺伝子組換え植物を、該遺伝子組換え植物の開花予定日の30日前から開花日まで間の一定期間、硝酸態窒素が70mg/L〜750mg/L、および/または、アンモニウム態窒素が70mg/L〜750mg/Lとなるよう調整した培地にて栽培することを含む、遺伝子組換え植物の栽培方法。
〔2〕下記式(2):
X/Y>1.0 ・・・(2)
(但し、式(2)において、Xは、開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、硝酸態窒素が70mg/L〜750mg/L、および/または、アンモニウム態窒素が70mg/L〜750mg/Lとなるように調整した培地にて所定の植物を栽培した場合における該植物の種子に含まれる種子貯蔵タンパク質の含有量である。Yは、開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、窒素0mg/L〜50mg/Lとなるように調整した培地にて該植物を栽培した場合における該植物の種子に含まれる該種子貯蔵タンパク質の含有量である。)
を満たす種子貯蔵タンパク質の発現を調節するプロモーターと、前記プロモーターの下流に位置し目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドとを含む発現ベクターが導入されて形質転換された遺伝子組換え植物を、該遺伝子組換え植物の開花予定日の30日前から開花日まで間の一定期間、硝酸態窒素が70mg/L〜750mg/L、および/または、アンモニウム態窒素が70mg/L〜750mg/Lとなるよう調整した培地にて栽培することを含む、遺伝子組換え植物の栽培方法。
〔3〕前記所定の植物と前記遺伝子組換え植物とが、同種の植物種である、上記〔1〕および〔2〕に記載の遺伝子組換え植物の栽培方法。
〔4〕前記所定の植物がイネ科の植物であり、前記遺伝子組換え植物がイネ科の植物である、上記〔3〕に記載の遺伝子組換え植物の栽培方法。
〔5〕前記プロモーターが、グルテリン、グロブリン、およびプロラミンからなる群より選ばれる種子貯蔵タンパク質の発現を調節するプロモーターである、上記〔4〕に記載の遺伝子組換え植物の栽培方法。
〔6〕前記遺伝子組換え植物の栽培を、水耕栽培によって行う、上記〔1〕から〔5〕のいずれか一項に記載の遺伝子組換え植物の栽培方法。
〔7〕上記〔1〕から〔6〕のいずれか一項に記載の遺伝子組換え植物を栽培し、種子を採集することを含む、種子の生産方法。
〔8〕前記植物がイネであり、前記種子が米である、上記〔7〕に記載の種子の生産方法。
1.遺伝子組換え植物の作製方法
2.遺伝子組換え植物の栽培方法および種子の生産方法
本発明において用いられる遺伝子組換え植物を作製する方法は、概要として次の工程Aと工程Bの2つの工程に分けることができる。工程Aは、所定の植物において、高窒素栽培条件下で高発現するRNAおよび種子貯蔵タンパク質を検出する工程である。工程Bは、高窒素栽培条件下で高発現するRNAおよび種子貯蔵タンパク質の発現を調節するプロモーターを単離し、目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドを含む発現ベクターを調製し、その発現ベクターを宿主植物細胞に導入して遺伝子組換え植物を作製する工程である。
工程AのRNAの検出においては、少なくとも2つの異なる窒素条件下で植物を栽培し、RNAの含有量の違いを指標として、ある植物種において所定の高窒素栽培条件下で高発現するRNAを検出するものである。
工程AのRNAの検出方法の実施形態としては、下記式(1)を満たすRNAを検出する。
V/W>1.0 ・・・(1)
(但し、式(1)において、Vは、開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、硝酸態窒素が70mg/L〜750mg/L、および/または、アンモニウム態窒素が70mg/L〜750mg/Lとなるように調整した培地にて所定の植物を栽培した場合における該植物の種子に含まれるRNA量である。Wは、開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、窒素0mg/L〜50mg/Lとなるように調整した培地にて該植物を栽培した場合における該植物の種子に含まれるRNA量である。)
<工程A:種子貯蔵タンパク質の検出>
工程Aの種子貯蔵タンパク質の検出においては、少なくとも2つの異なる窒素条件下で植物を栽培し、種子貯蔵タンパク質の蓄積量の違いを指標として、ある植物種において所定の高窒素栽培条件下で高発現する種子貯蔵タンパク質を検出するものである。
工程Aの種子貯蔵タンパク質の検出方法の実施形態としては、下記式(2)を満たす種子貯蔵タンパク質を検出する。
X/Y>1.0 ・・・(2)
(但し、式(2)において、Xは、開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、硝酸態窒素が70mg/L〜750mg/L、および/または、アンモニウム態窒素が70mg/L〜750mg/Lとなるように調整した培地で植物を栽培したときの該植物の種子貯蔵タンパク質含有量である。Yは、開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、窒素0mg/L〜50mg/Lとなるように調整した培地で植物を栽培したときの該植物の種子貯蔵タンパク質含有量である。)
工程Aにおける「所定の植物」とは、被検対象とする植物のことを意味する。工程Aにおいて被検対象とする植物は、RNAおよび種子貯蔵タンパク質の発現を促進するプロモーターを探索する対象とする植物であり、後に作製する遺伝子組換え植物の種類等の条件も参酌しつつ、適宜選択してよい。RNAおよび種子貯蔵タンパク質の検出対象となる植物としては、種子が形成されるものであれば、特に限定されるものではない。例えば、双子葉植物としては、タバコ、ナタネ、ダイズ等を、単子葉植物としては、イネ、トウモロコシ、オオムギ、コムギ等の穀類や、アスパラガス等を、代表的なものとして挙げることができる。これらのうちでもイネは、種子中へのタンパク質の蓄積能力が高く、種子の保存性が良好という点で好適な植物である。
被検対象となる植物は、少なくとも2つの異なる窒素条件下で栽培される。好ましい実施形態としては、第1の栽培条件および第2の栽培条件で栽培を行う。第1の栽培条件下は、供給される窒素濃度が高い条件下である。他方、第2の栽培条件は、第1の栽培条件より相対的に窒素濃度の低い条件下である。具体的には、次のような条件が例示される。
また、アンモニウム態窒素とは、窒素成分のうちアンモニウム塩の形態で存在する窒素成分のことである。
上記第1および第2の栽培条件下でそれぞれ栽培された植物から得られた種子に含まれるRNAを測定する。第1の栽培条件下で栽培された植物の種子に含まれるRNA量をV、第2の栽培条件下で栽培された植物の種子含まれるRNA量をWとする。
V/W>1.0 ・・・(1)
を満たすRNAを選抜する。式(1)を満たすということは、所定の高窒素栽培条件下において発現量が多くなるRNAである蓋然性が高い。また、このようなRNAをコードするDNAのプロモーターは、高窒素栽培条件下でタンパク質の発現をより促進する蓋然性が高い。V/Wの値は、好ましくは1.25以上であり、より好ましくは1.5以上であり、さらに好ましくは2.0以上である。他方、V/Wの値が1以下の場合、培地中の窒素量を増やしても、所望の目的タンパク質を高生産させる効果は期待できない。
上記第1および第2の栽培条件下でそれぞれ栽培された植物から得られた種子に貯蔵されるタンパク質を測定する。第1の栽培条件下で栽培された植物の種子貯蔵タンパク質含有量をX、第2の栽培条件下で栽培された植物の種子貯蔵タンパク質含有量をYとする。
X/Y>1.0 ・・・(2)
を満たす種子貯蔵タンパク質を選抜する。式(2)を満たすということは、所定の高窒素栽培条件下において発現量が多くなる種子貯蔵タンパク質である蓋然性が高い。また、このような種子貯蔵タンパク質のプロモーターは、高窒素栽培条件下でタンパク質の発現をより促進する蓋然性が高い。X/Yの値は、好ましくは1.5以上であり、より好ましくは2.0以上である。他方、X/Yの値が1以下の場合、培地中の窒素量を増やしても、所望の目的タンパク質を高生産させる効果は期待できない。
工程Bでは、まず高窒素栽培条件下で高発現するRNAおよび種子貯蔵タンパク質の発現を調節するプロモーターを単離する。このようなプロモーターは、例えば、上記工程Aで被検対象とされ、高窒素栽培条件下で高発現するRNAおよび種子貯蔵タンパク質が検出された植物から単離することができる。プロモーターは、RNAおよび種子貯蔵タンパク質をコードする核酸の上流に位置する発現調節領域から単離し得る。
目的タンパク質を発現させるための発現ベクターを構築する。発現ベクターは、少なくとも上記のようにして特定されたプロモーターと目的タンパク質をコードする核酸とを含む。発現ベクターにはその他にもターミネーター、公知の発現促進配列、マーカー配列などを挿入してもよい。
まず、ステップ(S1)として、工程Aで選抜された植物の細胞に含まれる染色体Gに含まれるプロモーター(pmr1)を単離する。プロモーター(pmr1)は、ターミネーター(tmr1)と共にタンパク質(ptn1)の発現を調整する領域を構成している。この染色体からPCRなどの手法により、プロモーター(pmr1)とターミネーター(tmr1)を増幅する。PCRプライマーは、染色体Gにおいてプロモーター(pmr1)およびターミネーター(tmr1)をそれぞれ挟む前後の配列に基づいて適宜設計できる。
上記のようにして作製されたベクターが導入される宿主としては、遺伝子組換え植物として目的タンパク質を生産する植物の細胞が用いられる。宿主とする植物の種類は、上記のプロモーターが認識され、目的タンパク質を発現し得るものであればよく、その他の点について限定されるものではない。宿主とする植物は、栽培管理の容易さ、栽培地の環境、成育期間、収穫の容易性、並びに、種子の性質、大きさ及び収量などの条件を考慮し、目的タンパクの生産面から好適なものを適宜選択してよい。また、上記にて取得したRNAおよび種子貯蔵タンパク質の発現を促進するプロモーターの由来と同じ種類の植物を宿主とすることにより、遺伝子発現システム上の弊害は避けやすい。そのため、好ましい一実施形態としては、プロモーターの由来と同じ植物種を宿主として選択する形態が挙げられる。
次に、構築した発現ベクターを用いて植物の形質転換細胞を作製する。形質転換される植物細胞は、工程の簡略化という観点からは、ホストとなる植物細胞は、これをそのまま再生し、遺伝子組換え植物として大量に栽培し得る植物であることが好ましい。
次に、上記の方法で外来遺伝子を導入した植物細胞から、組換え組織または組換え個体を培養する。遺伝子導入処理を行った細胞を、適宜、目的遺伝子や選抜マーカー遺伝子による特定形質の発現、遺伝子の欠失等による特定形質の消失などを指標として選抜を行いつつ、定法によって増殖させ、再分化させ、組換え組織または組換え個体を培養することができる。再分化して得られた植物から種子を採取し、得られた種子を利用して、遺伝子組換え体を繁殖させることができる。
本発明の遺伝子組換え植物の栽培方法は、上記「1.遺伝子組換え植物の作製方法」のようにして準備し得る遺伝子組換え植物を所定の条件下で栽培するものである。なお、具体的な実施形態については下記にて後述するが、上記「1.遺伝子組換え植物の作製方法」のようにして一旦、高窒素栽培条件下で目的タンパク質を高発現するように形質転換された遺伝子組換え植物を得た後は、上記のような工程A:RNAおよび種子貯蔵タンパク質の検出や、工程B:形質転換の作製を、必ずしもそれぞれ繰り返す必要はない。すなわち、一旦高窒素栽培条件下で目的タンパク質を高発現するように形質転換された遺伝子組換え植物を得た後は、その遺伝子組換え植物をその植物種の通常の繁殖方法にしたがって系統維持し、その植物を繰り返し栽培してもよい。
上記「1.遺伝子組換え植物の作製方法」により作製された遺伝子組換え植物を、該植物の開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、硝酸態窒素が70mg/L〜750mg/L、および/または、アンモニウム態窒素が70mg/L〜750mg/Lとなるよう調整した培地で栽培する。
本発明で栽培された遺伝子組換え植物は、そのまま、あるいは導入された目的タンパク質を分離・精製した形で摂取して、利用することができる。
遺伝子組換え植物が種子植物である場合、本発明の遺伝子組換え植物の栽培方法は、種子の生産方法でもある。種子タンパク質の貯蔵性が高いことから、種子物としては、イネ科の植物、より好ましくはイネが挙げられる。
1.植物の栽培
下記のように第1の栽培条件および第2の栽培条件で、イネを栽培した。栽培のスケジュールの概要を図1に示す。また、用いた栽培液Aおよび栽培液Bの組成を表1に示す。
イネの一品種である日本晴の種子を次亜塩素酸とエタノールで殺菌後、滅菌水が入ったシャーレに均等に広げ、遮光した後、28度で5日間培養した。
日本晴の種子を次亜塩素酸とエタノールで殺菌後、滅菌水が入ったシャーレに均等に広げ、遮光した後、28度で5日間培養した。
<マイクロアレイ用試料の調整>
上記条件で栽培して得た開花後20日目の各々の種子を、液体窒素で凍結後、乳鉢で破砕し、Fruit−mate for RNA Purification(タカラバイオ社より購入)で処理後、RNAiso Plus(タカラバイオ社より購入)で抽出した。その後Recombinant DNase I(RNase−free)(タカラバイオ社より購入)で処理し、OligotexTM−dT30<Super>mRNA Purification Kit(From Total RNA)(タカラバイオ社より購入)で精製して、RNA溶液を得た。
シアニン 3−CTP色素ラベルしたcDNA825ngとシアニン 5−CTP色素ラベルしたcDNA825ngをそれぞれチューブに分注し、Gene Expression Hybridization Kit(アジレント・テクノロジー株式会社より購入)で処理後、イネ オリゴDNAマイクロアレイ 4 x 44K RAP−DB(アジレント・テクノロジー株式会社より購入)へ充填し、ハイブリダイゼーションさせた。
DNA マイクロアレイスキャナ(アジレント・テクノロジー株式会社製)で画像をスキャンし、スポットを数値化した。さらに、画像解析ソフトGeneSpring GX(アジレント・テクノロジー株式会社製)を用いて、V/W>1.0となるRNAを検出した。スポット強度の値を表2に示す。
<2次元ゲル用試料の調製>
上記第1および第2の栽培条件下で栽培して得た開花後45日目の各々の種子を、胚盤を取り除いた後に、マルチビーズショッカー(安井器械社製)で破砕し、8M尿素、4%(w/v)SDS、20%(w/v)グリセロール、50mMリン酸バッファーを含有する抽出溶液中にホモジナイズして、タンパク質溶液を得た。得られたタンパク質溶液をReadyPre 2−D Cleanup Kit(BIO−RAD LABORATORIES社(以下、BIO−RAD社と略称する)より購入)で精製し、ReadyStrip 7-10 Buffer(BIO−RAD社より購入)を添加した。RC DC Protein Assay(BIO−RAD社より購入)を用いて全タンパク質濃度を決定した。
1次元目のタンパク質分離用等電点電気泳動は、PROTEAN IEF cell(BIO−RAD社より購入)および7cm ReadyStrip IPG Strip 3−7NL(BIO−RAD社より購入)を用いて実施した。2次元目のタンパク質分離用電気泳動は、IPG Strip をequilibration buffer I、 equilibration buffer II(BIO−RAD社より購入) で平衡化し、PROTEAN cell(BIO−RAD社より購入)および 10−20% resolving Ready Gel Precast Gel(BIO−RAD社より購入)を用いて実施した。画像解析の際のタンパク質スポットの分子量および等電点計算のために、試料は分子量マーカー および等電点pl較正マーカーとともに泳動した。2次元SDS−PAGEの直後に、Gel を40%エタノール、10%酢酸を含有する固定液に2時間浸透し、Flamingo Gelstain(BIO−RAD社より購入)で処理した。
処理したゲルをPharos FX Molecular Imager(BIO−RAD社より購入)を用いてデジタル化した。Quantity OneおよびPDQuest(BIO−RAD社より購入)を用いて、6種類の種子貯蔵タンパク質のスポット位置をそれぞれ特定し、スポット強度を測定した。6種類の種子貯蔵タンパク質は、グロブリン、グルテリン、グルテリンB−5、グルテリンB−1、10KDaプロラミン、および13KDaプロラミンである。2次元ゲルの画像解析図を図2に、スポット強度の値を表3に示す。
<発現ベクターの作製>
上記「2.RNAの解析」「3.タンパク質の解析」の結果、V/W=1.47、X/Y=2.17であったグルテリンB−1をコードする核酸配列(GluB−1 gene:Accession No.X54314、AK107343)と、そのプロモーター配列(GluB−1 Promoter region:Accession No.AY427569)をNCBI Home Page, Nucleotide Databaseより取得した。グルテリンB−1をコードする核酸周辺の核酸配列をRice Annotation Project Databaseより検索し、グルテリンB−1をコードする核酸の下流1.0kbの核酸配列をターミネーター配列として取得した。
アグロバクテリウム ツメファシエンス(A.ツメファシエンス)EHA105株を、10mlのYEB液体培地(5g/lビーフエキス、1g/l酵母エキス、5g/lペプトン、5g/lショ糖、2mM MgSO4、22℃でのpH7.2(以下、特に示さない場合、22℃でのpHとする。))に接種し、OD.630が0.4から0.6の範囲に至るまで、28℃で培養した後、培養液を6900×g、4℃、10分間遠心して菌体を回収した。回収した菌体は、20mlの10mM HEPES(pH8.0)に懸濁して、再度6900×g、4℃、10分間遠心することにより集菌し、この菌体を200μlのYEB液体培地に懸濁して、プラスミド導入用菌液とした。 0.5mlチューブ内で、上記プラスミド導入用菌液50μlと発現ベクターとを混合し、エレクトロポレーション法(ジーンパルサーIIシステム(BIORAD社より購入))を用いて、A.ツメファシエンスEHA105株への発現ベクター導入処理を行った。発現ベクター導入処理後の菌体は、200μlのYEB液体培地を加えて25℃で、振とうしつつ1時間培養を行ってから、50mg/lカナマイシン添加YEB寒天培地(寒天1.5w/v%、他の組成は上記に同じ。)に播種し、28℃、2日間培養した。次いで、生じた菌コロニーをYEB液体培地に移植して更に培養し、増殖した菌体からアルカリ法でプラスミドを抽出して、これらの菌体に発現ベクターが導入されていることを確認した。
イネ品種「日本晴」の完熟種子を、細胞工学別冊 植物細胞工学シリーズ4 モデル植物の実験プロトコール(p93−98)の方法に従い殺菌した後、この完熟種子を、N6Cl2培地(N6無機塩類及びビタミン類(Chu C.C.、1978, Proc.Symp.Plant TissueCuture、Sience Press Peking、pp.43−50)、30g/lシュークロース、2.8g/lプロリン、0.3g/lカザミノ酸、2mg/l 2,4−D、4g/lゲルライト、pH=5.8)に置床し、サージカルテープでシールしてから28℃明所で培養して発芽させ、アグロバクテリウムEHA105による感染材料とした。YEB寒天培地(15g/lバクトアガー、他の組成は上記に同じ。)にて培養した発現ベクターを導入したアグロバクテリウムEHA105を、YEB液体培地に移植して、25℃、180rpmで一晩培養した後、3000rpm、20分間遠心して集菌し、アセトシリンゴン10mg/lを含むN6液体培地(N6無機塩類及びビタミン類、30g/lシュークロース、2mg/l 2,4−D、pH=5.8)に、OD.630=0.15となるように懸濁し、感染用アグロバクテリウム懸濁液とした。調整したイネの発芽種子を50mlチューブに入れ、感染用アグロバクテリウム懸濁液を注いで1.5分間浸漬した。浸漬後、アグロバクテリウム懸濁液を捨て、発芽種子を滅菌したろ紙の上に置いて余分な水分を除去してから、この種子を、共存培養培地N6Cl2培地(N6無機塩類及びビタミン類、30g/lシュークロース、2.8g/lプロリン、0.3g/lカザミノ酸、2mg/l 2,4−D、4g/lゲルライト、pH=5.2)に置床し、サージカルテープでシールして28℃暗所で3日間培養し、次いで、N6Cl2TCH25培地(N6無機塩類及びビタミン類、30g/lシュークロース、2.8g/lプロリン、0.3g/lカザミノ酸、2mg/l 2,4−D、500mg/lカルベニシリン、25mg/lハイグロマイシン、4g/lゲルライト)に移植して培養した。
上記N6Cl2TCH25培地での培養開始から1週間後、発芽した芽を胚盤組織から除去して、残った胚盤組織を、N6Cl4TCH25培地(N6無機塩類及びビタミン類、30g/lシュークロース、2.8g/lプロリン、0.3g/lカザミノ酸、4mg/l 2,4−D、500mg/lカルベニシリン、25mg/lハイグロマイシン、4g/lゲルライト)で1週間培養し、更に、MSRC培地(MS無機塩類及びビタミン類(Murashige、T. and Skoog、F.、1962 Physiol. Plant.、15、473)、30g/lシュークロース、30g/lソルビトール、2g/lカザミノ酸、500mg/lカルベニシリン、4g/lゲルライト)に移植して培養することにより、芽又は幼植物体を再分化させた。
上記「3.遺伝子組換え植物の作製」により得られたイネを以下の要領にて栽培した。栽培に用いた栽培液Cおよび栽培液Dの組成を表3に示す。
まず、上記「3.遺伝子組換え植物の作製」により得られた胚盤組織から再分化させた芽又は幼植物体を、発根培地に移植して背丈20cm程度の幼苗となるまで生育させた。
栽培液D(表3参照)の成分になるよう追肥を行い、明条件:気温28度、湿度50%、11時間、暗条件:気温23度、湿度50%、13時間で45日間培養した。
上記「4.遺伝子組換え植物の栽培」にて得られた植物から種子を採取し、種子中のタンパク質含有量を、下記の要領にて測定した。
<種子の総タンパク質含有量>
杯盤を除去した種子中のタンパク質含有量を、近赤外線タンパク質解析装置NIRFLEX N−500(BUCHI社製)で測定し、種子重量から総タンパク質含有量を算出した。
種子中のタンパク質と既知濃度のタンパク質マーカーをSDS−PAGEキット(BIO−RAD社より購入)で泳動し、Gel を40%エタノール、10%酢酸を含有する固定液に2時間浸透し、Flamingo Gelstain(BIO−RAD社より購入)で処理した。処理したゲルをPharos FX Molecular Imager(BIO−RAD社より購入)を用いてデジタル化した。Quantity One(BIO−RAD社より購入)を用いて7crpのバンド位置を特定し、濃度既知のマーカーのバンド強度と比較して、花粉症緩和ペプチド(7crp)の重量を算出した。このようにして、遺伝子組換え植物から採取された種子中の総タンパク質の量と、形質転換により導入された機能性タンパク質の量とを求めた。
培養液Dのアンモニウム態窒素含有量を150mg/Lとした以外は、実施例1と同様にして遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
培養液Dの硝酸態窒素含有量を50mg/Lとし、アンモニウム態窒素含有量を150mg/Lとした以外は、実施例1と同様にして遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
培養液Dの硝酸態窒素含有量を600mg/Lとし、アンモニウム態窒素含有量を200mg/Lとした以外は、実施例1と同様にして遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
培養液Dの硝酸態窒素含有量を70mg/Lとし、アンモニウム態窒素含有量を70mg/Lとした以外は、実施例1と同様にして遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
培養液Dの硝酸態窒素含有量を750mg/Lとし、アンモニウム態窒素含有量を750mg/Lとした以外は、実施例1と同様にして遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
目的タンパク質の発現用プロモーターとしてグルテリンB−5のプロモーターを用いた以外は、実施例1と同様にして、遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
Yの栽培条件を水耕栽培とした以外は、実施例1と同様にして、遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
培養液Bのアンモニウム態窒素含有量を20mg/Lとした以外は、実施例1と同様にして、遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
培養液Bの硝酸態窒素含有量を20mg/Lとした以外は、実施例1と同様にして、遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
培養液Dの硝酸態窒素含有量を20mg/Lとし、アンモニウム態窒素含有量を20mg/Lとした以外は、実施例1と同様にして、遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
培養液Dの硝酸態窒素含有量を800mg/Lとし、アンモニウム態窒素含有量を800mg/Lとした以外は、実施例1と同様にして、遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
目的タンパク質の発現用プロモーターとして10KDaプロラミンのプロモーターを用いた以外は、実施例1と同様にして、遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
培養液Bの硝酸態窒素含有量を20mg/Lとし、アンモニウム態窒素含有量を20mg/Lとした以外は、実施例1と同様にして、遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
培養液Bの硝酸態窒素含有量を800mg/Lとし、アンモニウム態窒素含有量を800mg/Lとした以外は、実施例1と同様にして、遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
[比較例6]
培養液Dの硝酸態窒素含有量を20mg/Lとし、アンモニウム態窒素含有量を20mg/Lとした以外は、比較例3と同様にして、遺伝子組換え植物の栽培、タンパク質含有量の測定を行った。
pmr1 プロモーター
ptn1、ptn2 タンパク質をコードする構造遺伝子領域
tmr1 ターミネーター
vct プラスミドベクター
配列番号2:プライマー2
配列番号3:プライマー3
配列番号4:プライマー4
Claims (8)
- 下記式(1):
V/W>1.0 ・・・(1)
(但し、式(1)において、Vは、開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、硝酸態窒素が70mg/L〜750mg/L、および/または、アンモニウム態窒素が70mg/L〜750mg/Lとなるように調整した培地にて所定の植物を栽培した場合における該植物の種子に含まれるRNA量である。Wは、開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、窒素0mg/L〜50mg/Lとなるように調整した培地にて該植物を栽培した場合における該植物の種子に含まれるRNA量である。)
を満たす種子で発現するRNAの発現を調節するプロモーターと、前記プロモーターの下流に位置し目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドとを含む発現ベクターが導入されて形質転換された遺伝子組換え植物を、該遺伝子組換え植物の開花予定日の30日前から開花日まで間の一定期間、硝酸態窒素が70mg/L〜750mg/L、および/または、アンモニウム態窒素が70mg/L〜750mg/Lとなるよう調整した培地にて栽培することを含む、遺伝子組換え植物の栽培方法。 - 下記式(2)
X/Y>1.0 ・・・(2)
(但し、式(2)において、Xは、開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、硝酸態窒素が70mg/L〜750mg/L、および/または、アンモニウム態窒素が70mg/L〜750mg/Lとなるように調整した培地にて所定の植物を栽培した場合における該植物の種子に含まれる種子貯蔵タンパク質の含有量である。Yは、開花予定日の30日前から開花日までの間の一定期間、窒素0mg/L〜50mg/Lとなるように調整した培地にて該植物を栽培した場合における該植物の種子に含まれる該種子貯蔵タンパク質の含有量である。)
を満たす種子貯蔵タンパク質の発現を調節するプロモーターと、前記プロモーターの下流に位置し目的タンパク質をコードするポリヌクレオチドとを含む発現ベクターが導入されて形質転換された遺伝子組換え植物を、該遺伝子組換え植物の開花予定日の30日前から開花日まで間の一定期間、硝酸態窒素が70mg/L〜750mg/L、および/または、アンモニウム態窒素が70mg/L〜750mg/Lとなるよう調整した培地にて栽培することを含む、遺伝子組換え植物の栽培方法。 - 前記所定の植物と前記遺伝子組換え植物とが、同種の植物種である、請求項1または請求項2に記載の遺伝子組換え植物の栽培方法。
- 前記所定の植物がイネ科の植物であり、前記遺伝子組換え植物がイネ科の植物である、請求項3に記載の遺伝子組換え植物の栽培方法。
- 前記プロモーターが、グルテリン、グロブリン、およびプロラミンからなる群より選ばれる種子貯蔵タンパク質の発現を調節するプロモーターである、請求項4に記載の遺伝子組換え植物の栽培方法。
- 前記遺伝子組換え植物の栽培を、水耕栽培によって行う、請求項1から5のいずれか一項に記載の遺伝子組換え植物の栽培方法。
- 請求項1から6のいずれか一項に記載の遺伝子組換え植物の栽培方法によって前記遺伝子組換え植物を栽培し、種子を採集することを含む、種子の生産方法。
- 前記植物がイネであり、前記種子が米である、請求項7に記載の種子の生産方法。
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