JP5351724B2 - C型肝炎ウイルスのコア蛋白の検出方法及び検出用試薬キット - Google Patents
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また、本発明は、C型肝炎ウイルス(HCV)コア蛋白の検出用試薬キットであって、アルカリ性物質を含む第1前処理試薬と、酸性物質を含む第2前処理試薬と、標識抗HCVコア蛋白抗体と、磁性粒子とを含み、 前記第1前処理試薬及び前記第2前処理試薬の少なくとも一つが、メルカプトエチルアミン、メルカプトエタノール、ジチオスレイトール、システイン、ジチオエリトリトール、水素化ホウ素ナトリウム及びホスフィンから選択される少なくとも1つを含有する、試薬キットを提供する。
本例で使用する試薬は以下に示す。
カオトロピック剤として尿素を6M、界面活性剤としてBrij35(シグマ社製)を4%、及びアルカリ性物質として水酸化ナトリウムを0.45N含む水溶液を、第1処理試薬とした。
酸性物質としてクエン酸を0.15M含む、以下の第2処理試薬A〜Cの水溶液を調製した。
(第2処理試薬A)
クエン酸 0.15M
(第2処理試薬B)
クエン酸 0.15M
メルカプトエチルアミン 30mM
(第2処理試薬C)
クエン酸 0.15M
メルカプトエチルアミン 30mM
NaCl 0.6mM
ここで、第2処理試薬Bには、還元剤としてメルカプトエチルアミンが含まれている。また、第2処理試薬Cには、還元剤としてメルカプトエチルアミン、及び無機塩類としてNaClが含まれている。
標識抗体として、ALPで標識された抗HCV抗体(ALP標識HCF3−807)を用いた。ここで、HCF3−807としては、NITE P−842で受託されているハイブリドーマから産生されるモノクローナル抗体を用いた。該ハイブリドーマは、受託番号NITE P−842で、2009年11月25日に、独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センターに受託された細胞である。具体的な標識抗体試薬の作製は、ペプシン消化、及び還元することでFab’に転換した該抗体と、架橋剤としてEMCS〔N-(6-Maleimidocaproyloxy)succinimido〕(同仁化学)を用いてマレイミド化したALPを混合して、反応させることで標識抗体を調製する。この方法で調製したALP標識抗体20μlを、980μlの希釈液(Tris−HCl(pH7.5) 25mM、NaCl 0.15M、BSA 0.25%、NaN3 0.02%、MgCl2 1mM、ZnCl2 0.1mM)で50倍に希釈し、標識抗体試薬とした。
第1抗体として、ビオチン及びDNPで修飾された抗体(Biotin/DNP標識HCF4−104)を用いた。ここで、HCF4−104としては、NITE P−841で受託されているハイブリドーマから産生されるモノクローナル抗体を用いた。該ハイブリドーマは、受託番号NITE P−841で、2009年11月25日に、独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センターに受託された細胞である。具体的な第1抗体試薬の作製は、ビオチン化試薬(EZ-Link Sulfo-NHS-LC-Biotin Reagents:ピアス社)をBSAに添加して、次いでDNP標識試薬(DNP-X acid SE:ABD Bioquest社)を添加することでBiotin/DNP標識したBSAを調製する。次に、ペプシン消化、及び還元することでFab’に転換した該抗体と、架橋剤としてEMCS〔N-(6-Maleimidocaproyloxy)succinimido〕(同仁化学)を用いてマレイミド化したBiotin/DNP標識したBSAを混合して、反応させることで第1抗体を調製する。この方法で調製した5 μlの第1抗体を、495 μlの希釈液で100倍に希釈し、第1抗体試薬とした。
第2抗体として抗DNP抗体(DNP−1753)を固定化した磁性粒子(Dynabeads M−270;インビトロジェン社製)を用いた。ここで、DNP−1753としては、NITE P−845で受託されているハイブリドーマから産生されるモノクローナル抗体を用いた。該ハイブリドーマは、受託番号NITE P−845で、2009年11月25日に、独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センターに受託された細胞である。100μlの該磁性粒子を、900μlの希釈液で10倍に希釈し、磁性粒子試薬とした。
<第1処理工程>
40μlのHCV陰性血清と、60μlの第1処理試薬とを混合し、室温にて8分間インキュベーションすることで、第1処理工程を実施した。
<第2処理工程>
第1処理工程で得られた試料に、60μlの第2処理試薬A〜Cをそれぞれ添加し、室温にて5分間インキュベーションすることで、第1処理工程を実施した。なお、第2処理工程後の試料はpH7〜7.5であることをpH試験紙(Whatman社製)により確認した。
<形成工程>
第2処理工程で得られた160μlの試料と、75μlの標識抗体試薬とを、反応キュベット(HISCL用反応キュベット;シスメックス社製)で混合し、室温で10分間インキュベートした。次に、反応キュベットに、50μlの第1抗体試薬を添加し、室温で10分間インキュベートした。次に、反応キュベットに、80μlの磁性粒子試薬を添加し、室温で10分間インキュベートすることで、形成工程を実施した。
<分離工程>
形成工程で得られた試料を含む反応キュベットを、集磁装置(MINITUBE MAG SEPARATOR:SPHERO TECH社製)を用いて磁気分離を行った。
++:凝集が認められる。
+:やや凝集が認められる。
−:凝集が認められない。
第2処理工程において、第2処理試薬A〜Cを用いた試料における、反応キュベット内の凝集の評価を表1に示す。
還元剤を含有する第2処理試薬による凝集抑制が、還元剤の種類に依存するものであるかを調べるため、以下の第2処理試薬D〜Fを調製した。また、試料として使用する血清中のHCVの存在の有無が凝集に影響するかを調べるため、本例では、HCV陰性血清に代えて、HCV陽性血清を用いた。
酸性物質としてクエン酸を0.15M含む、以下の第2試薬D〜Fの水溶液を調製した。
(第2処理試薬D)
クエン酸 0.15M
メルカプトエチルアミン 45mM
(第2処理試薬E)
クエン酸 0.15M
ジチオトレイトール 45mM
(第2処理試薬F)
クエン酸 0.15M
システイン塩酸塩 90mM
ここで、第2処理試薬Dには、還元剤としてメルカプトエチルアミンが含まれている。また、第2処理試薬Eには、還元剤としてジチオトレイトールが含まれている。また、第2処理試薬Dには、還元剤としてシステイン塩酸塩が含まれている。
還元剤及び無機塩類を含有する第2処理試薬による凝集抑制が、無機塩類に依存するものであるかを調べるため、以下の第2処理試薬G〜Iを調製した。
酸性物質としてクエン酸を0.15M含む、以下の第2試薬D〜Fの水溶液を調製した。
(第2処理試薬G)
クエン酸 0.15M
塩化ナトリウム 0.6M
(第2処理試薬H)
クエン酸 0.15M
塩化カリウム 0.6M
(第2処理試薬I)
クエン酸 0.15M
硫酸ナトリウム 0.6M
ここで、第2処理試薬Gには、無機塩類として塩化ナトリウムが含まれている。また、第2処理試薬Hには、無機塩類として塩化カリウムが含まれている。さらにまた、第2処理試薬Iには、無機塩類として硫酸ナトリウムが含まれている。
Claims (16)
- C型肝炎ウイルス(HCV)コア蛋白の検出方法であって、
HCVを含む疑いのある試料を、アルカリ性物質を含有する試薬で処理する第1処理工程と、
第1処理工程で得られた試料を、酸性物質を含有する試薬で処理する第2処理工程と、
前記HCVコア蛋白と標識抗HCVコア蛋白抗体と磁性粒子とを含む複合体を形成するために前記第2処理工程で得られた試料と標識抗HCVコア蛋白抗体と磁性粒子とを液相中で接触させる接触工程と、
前記磁性粒子を液相から分離する分離工程と、
分離された磁性粒子を液相に分散する分散工程と、
前記磁性粒子が分散された分散液からの標識に基づいて前記HCVコア蛋白を検出する検出工程とを含み、
第1処理工程及び第2処理工程で用いられる試薬の少なくとも一つが、メルカプトエチルアミン、メルカプトエタノール、ジチオスレイトール、システイン、ジチオエリトリトール、水素化ホウ素ナトリウム及びホスフィンから選択される少なくとも1つを含有する、HCVコア蛋白検出方法。 - 前記標識抗HCVコア蛋白抗体が結合するエピトープとは異なるエピトープに結合する粒子結合抗体が前記磁性粒子に固定されており、
前記試料中にHCVが含まれている場合は、前記接触工程により、前記粒子結合抗体に前記HCVコア蛋白が結合し、前記HCVコア蛋白に前記標識抗HCVコア蛋白抗体が結合することによって前記複合体が形成される、請求項1記載の方法。 - 第1処理工程で用いられる試薬が、さらに非イオン性界面活性剤を含有する、請求項1または2に記載の方法。
- 非イオン性界面活性剤が、ポリオキシエチレン系非イオン性界面活性剤から選択される請求項3に記載の方法。
- 第1処理工程で用いられる試薬が、さらにカオトロピック剤を含有する、請求項1〜4のいずれかに記載の方法。
- カオトロピック剤が、尿素、グアニジン塩酸塩、サリチル酸ナトリウム、アセトアミド及びホルムアミドから選択される少なくとも1つである請求項5に記載の方法。
- アルカリ性物質が、水酸化ナトリウム、水酸化カリウム及び水酸化マグネシウムから選択される少なくとも1つである請求項1〜6いずれかに記載の方法。
- 酸性物質が、酢酸、乳酸、クエン酸、リンゴ酸、コハク酸、リン酸、ギ酸、フマル酸、酒石酸、塩酸及び硫酸から選択される少なくとも1つである請求項1〜7のいずれかに記載の方法。
- 第1処理工程及び第2処理工程で用いられる試薬の少なくとも一つが、無機塩類を含有する、請求項1〜8のいずれかに記載の方法。
- 無機塩類が、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化マグネシウム及び硫酸ナトリウムから選択される少なくとも1つである請求項9に記載の方法。
- 前記分離工程の後、前記磁性粒子を洗浄液中に分散し、前記洗浄液と前記磁性粒子とを分離することにより、前記磁性粒子を洗浄する洗浄工程をさらに含み、洗浄された磁性粒子を前記分散工程において分散させる、請求項1〜10のいずれかに記載の方法。
- C型肝炎ウイルス(HCV)コア蛋白の検出用試薬キットであって、
アルカリ性物質を含む第1前処理試薬と、酸性物質を含む第2前処理試薬と、標識抗HCVコア蛋白抗体と、磁性粒子とを含み、
前記第1前処理試薬及び前記第2前処理試薬の少なくとも一つが、メルカプトエチルアミン、メルカプトエタノール、ジチオスレイトール、システイン、ジチオエリトリトール、水素化ホウ素ナトリウム及びホスフィンから選択される少なくとも1つを含有する、試薬キット。 - 第1前処理試薬及び第2前処理試薬の少なくとも一つが、無機塩類を含有する、請求項12に記載の試薬キット。
- 第1前処理試薬が、さらに非イオン性界面活性剤を含有する、請求項12または13に記載の試薬キット。
- 第1前処理試薬が、さらにカオトロピック剤を含有する、請求項12〜14のいずれかに記載の試薬キット。
- 前記標識抗HCVコア蛋白抗体が結合するエピトープとは異なるエピトープに結合する粒子結合抗体が前記磁性粒子に固定されている、請求項12〜15のいずれかに記載の試薬キット
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