JP5311117B2 - 免疫細胞刺激活性を有する機能ペプチド - Google Patents
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Description
哺乳類には免疫系と呼ばれる複雑で精妙な生体防御機構が存在し、外部からの細菌やウイルスの侵入を防ぎ、また生体内に取り込まれた異物の処理を行なっている(非特許文献4)。
(1)下記(I)〜(V)の全ての条件を満たす配列を有し、免疫細胞刺激活性を有するペプチド。
(I)構成アミノ酸残基の数が12〜36である、
(II)両親媒性である、
(III)分子全体の荷電が+2以上である、
(IV)α-へリックス構造をとるように構成アミノ酸を配置したときに、親水性アミノ酸残基が配置する側の側面において、少なくとも2つの正電荷アミノ酸の側鎖間に芳香族アミノ酸の側鎖が位置しない、および
(V)ミトコンドリアプロセッシング酵素による切断点のアミノ酸残基を含む。
(2)免疫細胞が好中球である、(1)のペプチド。
(3)以下の(a)および(b)から選択される(1)または(2)のペプチド:
(a)配列番号1、2、3、4、5、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、18、19、22、23、24、25、26、27、28、29、31、32、33、34、35、36、37、39、40、42、43、44、45、46、47、48、49、50または51のアミノ酸配列からなるペプチド;
(b)配列番号1、2、3、4、5、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、18、19、22、23、24、25、26、27、28、29、31、32、33、34、35、36、37、39、40、42、43、44、45、46、47、48、49、50または51のアミノ酸配列において、1もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入もしくは付加されたアミノ酸配列からなり、かつ免疫細胞刺激活性を有するペプチド。
(4)配列番号52のアミノ酸配列を有するタンパク質を受容体とする(1)〜(3)のいずれかのペプチド。
(5)(1)〜(3)のいずれかのペプチドに対する抗体。
(6)(1)〜(3)のいずれかのペプチドを検出することを特徴とする、免疫細胞が関与する疾患の検査方法。
(7)免疫細胞が好中球である、(6)の方法。
(8)下記(I)〜(V)の全ての条件を満たす配列を検索し、該配列を有するペプチドの免疫細胞刺激活性を測定することを特徴とする、免疫細胞刺激活性ペプチドの探索方法。
(I)構成アミノ酸残基の数が12〜36である、
(II)両親媒性である、
(III)分子全体の荷電が+2以上である、
(IV)α-へリックス構造をとるように構成アミノ酸を配置したときに、親水性アミノ酸残基が配置する側の側面において、少なくとも2つの正電荷アミノ酸の側鎖間に芳香族アミノ酸の側鎖が位置しない、および
(V)ミトコンドリアプロセッシング酵素による切断点のアミノ酸残基を含む。
(I)構成アミノ酸残基の数が12〜36である、
(II)両親媒性である、
(III)分子全体の荷電が+2以上である、
(IV)α-へリックス構造をとるように構成アミノ酸を配置したときに、親水性アミノ酸残基が配置する側の側面において、少なくとも2つの正電荷アミノ酸の側鎖間に芳香族アミノ酸の側鎖が位置しない、および
(V)ミトコンドリアプロセッシング酵素による切断点のアミノ酸残基を含む。
本発明のペプチドはミトコンドリアタンパク質由来のペプチドであることが好ましい。
(a)配列番号1、2、3、4、5、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、18、19、22、23、24、25、26、27、28、29、31、32、33、34、35、36、37、39、40、42、43、44、45、46、47、48、49、50または51からなる群より選ばれるアミノ酸配列からなるペプチド。
なお、(b)のペプチドのアミノ酸配列は、欠失、置換、挿入もしくは付加が導入される前のアミノ酸配列に対して、80%以上、好ましくは90%以上、より好ましくは95%以上、特に好ましくは98%以上の同一性(identity)を有することが望ましい。
(b)のペプチドには、ヒト以外の動物由来のホモログペプチドや人工変異ペプチドなどが含まれる。
本明細書でいう「好中球」は、ヒトを含む動物の好中球の他、好中球様細胞を含む。好中球様細胞の具体例としては、ジブチリックサイクリックAMP処理により分化したHL−60細胞を挙げることができる。
「免疫細胞刺激活性」とは、免疫細胞の遊走や活性化を促進させる活性をいい、「好中球刺激活性」とは、ヒトを含む動物の好中球又は好中球様細胞の、遊走(「走化」ということもある)及び/又は活性化を促進する活性をいう。遊走は組織への滲潤、局所への移動を含む。活性化は活性酸素の産生及び分解酵素(例えば、β-ヘキソサミニダーゼ:β−HA)の分泌、各種サイトカイン及び過酸化物質の産生、並びに貧食を含む。好中球刺激活性は、好中球走化活性、活性酸素放出、β−HA分泌量又は細胞内Ca2+濃度の上昇を測定することにより検定することができる。また、本明細書で、あるペプチドが「好中球刺激活性を有する」というときは、好中球刺激活性のうち、好中球の遊走を促進する活性と好中球の活性化を促進する活性とのいずれか一方のみを有している場合と、双方を有している場合とを含む。
また、未分化又は好中球様に分化したHL−60細胞を用いて、遊走活性を測定することによっても、本発明のペプチドの好中球刺激活性を評価することができる。遊走活性の測定方法もまた、当業者にはよく知られている。本発明のペプチドとしては、好中球に対しては遊走活性を示すが、未分化の細胞においては遊走活性を示さないものが好ましい。例えば、未分化HL−60細胞においては遊走活性を示さないが、分化HL−60細胞においては遊走活性を示すものが好ましい。
好中球の減少、機能低下に関連する疾患又は状態としては、例えば、好中球減少症が挙げられる。
また、心筋梗塞、及び臓器移植に起因するものを含む虚血後再灌流障害、I型糖尿病、並びにリウマチ、急性腎炎、及び劇症肝炎を含む炎症性疾患を含む、好中球などの免疫細胞の活性化に関連する疾患又は状態の診断、予防又は治療にも有用である。
さらに、本発明のペプチドは、免疫細胞刺激活性の測定、好中球などの免疫細胞に関連する疾患又は状態の臨床検査、治療又は予防に有用な物質のスクリーニング方法、並びに好中球などの免疫細胞に関連する疾患若しくは状態の臨床検査、治療又は予防のためのキットなどにも用いることができる。
また、本発明のペプチドに対する中和抗体等の、本発明のペプチドの活性を抑制する物質を用いて好中球などの免疫細胞の滲潤を抑制することにより、上記の虚血後再灌流障害、I型糖尿病並びにリウマチ、急性腎炎及び劇症肝炎を含む炎症性疾患等の治療にも用いることができる。
また、本発明のペプチドを投与して好中球を刺激することにより、上記の好中球減少症等の治療に用いることができる。
さらに本発明のペプチドを過剰に投与し、好中球の炎症部位への移行を妨げることにより、上記の虚血後再灌流障害、I型糖尿病並びにリウマチ、急性腎炎及び劇症肝炎を含む炎症性疾患等における炎症を抑制することができる可能性もある。
本発明のペプチドを投与する場合、上記(a)および(b)から選ばれる2種類以上のペプチドを投与してもよい。
本発明の抗体は、本発明のペプチドを抗原として当業者によく知られたELISA法等により、本発明のペプチドとの抗原抗体反応の面から評価することができる。また、上述の好中球刺激に関する評価系を利用して、好中球刺激活性の抑制効果の面から評価することができる。
(1)活性ペプチドの予測法
好中球を活性化するペプチドのアミノ酸配列は、図2に示す手法で予測・同定した。すなわち、まずタンパク質データベースSwiss-Protよりアミノ酸配列を含むヒト・ミトコンドリアタンパク質データを網羅的に収集した。つづいてその中からミトコンドリアプロセッシングペプチターゼ等により特異的に切断されることによって生成すると予想されるペプチド配列をデータベース化した。そして、これらデータベース化したペプチド配列の中から、すでに生体から好中球活性化ペプチドとして同定されており、しかもGタンパク質を活性化することで好中球を刺激することが明らかになっているペプチドであるCOSP-1をモデルに、アミノ酸残基の鎖長、疎水性および親水性残基の配置、分子全体の荷電および電荷を持つアミノ酸残基の配置、電荷を持つアミノ酸残基と脂肪族および芳香族側鎖の配置、さらにそれら物理化学的特徴の相互関係について、設定した条件を満たしているペプチドを予測活性ペプチドとして選択した。
すなわち、1)アミノ酸残基の鎖長が12残基以上36残基以下であること、2)ペプチドの配列を公知のヘリカルホイールにプロット(市販のGenetyx 等でプロット可能)したとき、片側に脂肪族あるいは芳香族のアミノ酸残基、反対側に親水性のアミノ酸残基が配位する、両親媒性構造をとる部分が存在すること、3)ペプチドに正電荷アミノ酸残基(アミノ末端のアミノ酸残基を含む)が3個以上存在し、ペプチドの正味の電荷が+2以上であること(カルボキシル末端は常に負電荷(-1)とする)、4)正電荷アミノ酸残基(アミノ末端の正電荷を含む)を基準にして、3または4残基目、7または8残基目、10または11残基目、14または15残基目、18残基目、21または22残基目のいずれかに正電荷アミノ酸残基が配位すること、5)親水性アミノ酸残基が配位する側面において、少なくとも2個の正電荷アミノ酸残基の間に芳香族アミノ酸残基側鎖が配位しないこと(ただし正電荷アミノ酸間の配列にPro残基が存在するものは除く)、以上の条件を満たす配列を予測活性ペプチドとした。
発明者らは、既に生体からミトコンドリア由来の好中球活性化ペプチドfCyt bならびにCOSP-1を単離・精製するとともに、他にも多数のミトコンドリアタンパク質由来の好中球活性化ペプチドが存在することを示している(非特許文献7,8,特許文献1)。これら多数存在する未知の好中球活性化ペプチドを、従来のように単離・同定していたのでは多大な労力と時間が必要となる。そこで本発明では、上記のような方法で活性ペプチドの配列を予測し、それらを化学合成、予測ペプチドの活性を検証することにより好中球活性化ペプチドの同定を試みた。
表1に示した活性を持つと予測したペプチドならびに受容体同定実験で用いたペプチドは全てFmoc法を用いた固相法(非特許文献11)により化学合成した。合成はマルチペプチド合成機(アドバンストケムテク社製)あるいはペプチド合成用手動撹拌装置(ハイペップ社製)を用いて行った。各アミノ酸の側鎖に対する保護基として、AspならびにGluにはt-butyl ester (OBut)基、Ser、ThrならびにTyrの側鎖にはt-butyl (But)基、LysならびにTrpにはt-butyloxycarbonyl (Boc)基、Argには2,2,4,6,7-pentamethyldihydrobenzofuran-5-sulfonyl (Pbf)基、His、Asn、GlnならびにCysにはtriphenylmethyl (Trt)基を用いた。
ペプチド鎖の伸長は、25%ピペリジンによるFmoc基の切断と、DIC-HOBt法、またはHBTU-DIEA法あるいはHATU-DIEA法によるFmocアミノ酸の縮合を繰り返すことにより行った(非特許文献11)。すなわち、C末端のアミノ酸残基に相当するFmocアミノ酸を導入した樹脂をNMPとDMFで洗浄し、NMP中で30分間膨潤させた後、25%ピペリジン処理によりN末端の保護基であるFmoc基を切断した。次に、C末端から2番目の配列に相当するFmoc-アミノ酸ならびにDIC、HOBtそれぞれ2.5当量を加え、NMP中で2時間反応させることにより縮合した。手動合成においては、反応の終了をニンヒドリンテストにより確認し(非特許文献11)、反応が不十分の場合は、HBTUを2.25等量、HOBtを2.5等量、DIEAを4.5当量を加え、再度縮合反応を2時間行なった。さらに縮合反応を繰り返しても反応が不十分である場合は、樹脂の導入量に対しDIEAを9等量、HOBtを5等量、HBTUを4.5等量加えること、あるいは反応時間を4時間、6時間と延長することによって縮合反応を進行させた。このように、ピペリジンによるFmoc基の切断とFmocアミノ酸の縮合反応を繰り返し、ペプチド鎖の伸長を行なった。
粗ペプチドの分析は逆相高速液体クロマトグラフィー(reverse-phase high performance liquid chromatography、RP-HPLC)により行なった。分析にはDevelosil ODS-HGカラム (4.6×150 mm)を用い、0.1%TFAの存在下、流速1 ml/minでアセトニトリルの濃度勾配により溶出し、それぞれのピークを214 nmの吸収により分取した。得られたピークに含まれるペプチドの質量はmatrix assisted laser desorption ionization time of flight mass spectrometer (MALDI-TOF-MS)装置(アプライドバイオシステムズ社製)を用いて測定した。すなわち溶出画分と測定用マトリックスであるα-cyano-4-hydroxycinnamic acid (α-CHCA)飽和溶液を1:1の割合で混ぜ合わせ、そのうち1 μlをサンプルプレートに乗せて乾燥させた。次にMALDI-TOF-MSによってサンプルプレートにレーザー照射し、分子量を測定し目的とするペプチドを同定した。
(1)細胞培養ならびに好中球様細胞への分化
HL-60細胞の培養は、RPMI-1640培地に熱非働化したウシ胎児血清(FBS)を終濃度10%となるように加えたもの(10% FBS-RPMI1640培地)を用い、75 cm2の培養フラスコ(イワキガラス製;Non-treated Flask)中で5% CO2存在下インキュベーター中に静置させて行った。このとき細胞密度が1.0×105 cells/ml〜1.5×106 cells/mlの範囲で継代を行い、顕微鏡を用いて細胞数を計測するとともに、細胞の状態の確認も行なった。
分化したHL-60細胞懸濁液を遠心(1000 rpm, 5 min, 4 ℃)して細胞を採取した後、氷冷した0.1% BSAを含むHepes緩衝Hank's平衡塩溶液(Hepes buffered Hank's solution(HBHS);1.2 mM CaCl2・2H2O、5.4 mM KCl、0.44 mM KH2PO4、0.49 mM MgCl2・6H2O 、0.41 mM MgSO47H2O、136.9 mM NaCl、0.34 mM Na2HPO4、10 mM Hepes、4.2 mM NaHCO3、5.5 mM D-glucose, pH 7.4)を加えて転倒懸濁し、再び遠心(1000 rpm, 5 min, 4 ℃)する作業を3回繰り返し細胞を洗浄した。続いて、細胞密度が5.6×106 cells/mlになるようにHBHSを加えて懸濁し、終濃度5 μg/mlとなるようにそれぞれDNase I、cytochalasin Bを加え、細胞懸濁液を氷上で90 μl (5×105 cells)ずつ分注した。ペプチドによる細胞の刺激は、まず分注したチューブを37℃で10分間プレインキュべートした後、各チューブに最終濃度の10倍に調製した10 μlのペプチド溶液を加えて、37℃で10分間行った。また10種類の混合ペプチドによるβ-ヘキソサミニダーゼ分泌活性測定の場合は、最終濃度の100倍に調製したそれぞれのペプチド溶液を等量ずつ混合し、このペプチド溶液10 μl で細胞を刺激した。10分間の細胞刺激後、氷冷しておいた反応停止溶液(25 mM Tris、123 mM NaCl、2.7 mM KCl , pH 7.4) 100 μlを加えてただちに遠心(5000 rpm, 1 min, 4 ℃)し、上清200 μlを新しいチューブに移した。
分化HL-60細胞を遠心(1000 rpm, 5 min, 4 ℃)して細胞を採取した後、10% FBS-RPMI1640を加えて転倒懸濁し、再び遠心(1000 rpm, 5 min, 4 ℃)する操作を3回繰り返し、細胞を洗浄した後、細胞密度が4×106 cells/mlとなるように培地(10% FBS-RPMI1640)を加えて細胞懸濁液を調製した。つづいて24ウェルプレートの各ウェルにペプチド溶液(10% FBS-RPMI 1640に溶解)を1 mlずつ移し、37 ℃で20分間インキュベートした後、ケモタキセル(クラボウ、3μm)に、500 μlの細胞懸濁液(2×106 cells)を入れ、これをプレートに静置して、5% CO2存在下、37 ℃で1時間インキュベートした。その後ケモタキセルを取り外し、プレートの各ウェルをピペッティングしてプレート側に遊走した細胞をよく懸濁し細胞数を計測した。なおペプチドによる遊走活性は無刺激時にケモタキセルを通過した細胞数に対する比(Chemotaxis Index,CI)で表した。
分化したHL-60細胞懸濁液を遠心(1000 rpm, 5 min, 4 ℃)して細胞を採取した後、氷冷したPBSを加えて転倒懸濁し、遠心(1000 rpm, 5 min, 4 ℃)することを3回繰り返し細胞を洗浄した。そして沈殿した細胞を細胞膜画分調製用緩衝液(20 mM Tris-HCl, 250 mM sucrose, 1.5 mM MgCl2, 3 mM benzamidine hydrochloride monohydrate, 1 μM leupeptin, 1 μM PMSF, 2 μg/ml trypsin inhibitor, pH 7.5)に懸濁し、窒素加圧-減圧式細胞破砕装置(窒素圧:350 psi)を用いて細胞ホモジェネートを調製した。その後これを超遠心(20,000 g, 4℃, 30分)し上清を除去、沈殿を膜画分緩衝液(20 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA, 1 mM DTT, 77.5 mTIU/ml aprotinin, pH 7.5)に懸濁、細胞膜画分とし、分注後-80 ℃で保存した。Gタンパク質の活性は、GTPをGDP加水分解する活性を指標に定量した。すなわち、まず氷冷下反応チューブに5 μlのペプチド水溶液を入れた後、Gタンパク質活性測定用緩衝液(Hepes 50 mM, 1 mM EDTA, 1 mM DTT, 10 nM [γ-32P]GTP, 50 nM GDP, 1.1 mM MgSO4, 0.1 mg/ml BSA, pH 8.0)20 μlを加えた。この後各反応チューブに分化HL-60細胞膜画分(25 ng protein/ 5 μl)あるいは大腸菌で発現・精製したウシGi1-Gタンパク質(6 pmol/ 5 μl)それぞれ5 μl加えて反応を開始し、30 ℃で10分間インキュベートした後、氷冷した反応停止液(5 % charcoal, 50 mM NaHPO4)を加え遠心(15,000 rpm, 1 min, 4 ℃)し、上清の放射活性を測定した。
活性を持つと予測したペプチドが実際に活性を持つかどうかを明らかにするため、好中球様に分化したHL-60細胞を刺激してβ-ヘキソサミニダーゼ分泌活性を示すかどうか検討した。その結果、予測した51配列のうち44配列が活性を持つこと、そのうち、25配列は10-6 M以下の濃度で作用することが示された(表1)。このため好中球活性化能を持つこれらペプチドをmitocryptideと総称することとした。次にβ-ヘキソサミニダーゼ分泌活性を持つ44種のペプチドについては遊走活性も測定し、β-ヘキソサミニダーゼ分泌活性とその濃度依存性を比較した。その結果、44種のペプチドすべてが遊走活性も持つことが示された(これらペプチドのβ-ヘキソサミニダーゼ分泌刺激ならびに遊走刺激における濃度依存性を図3〜8に示した)。すなわちmitocryptide-3、-4、-5、-14、-15、および-16は100 nM以下の濃度でも有意なβ-ヘキソサミニダーゼ分泌活性を示し(EC50's : mitocryptide-3, 200 nM ; mitocryptide-4, 300 nM ; mitocryptide-5, 380 nM ; mitocryptide-14, 110 nM ; mitocryptide-15, 100 nM ; mitocryptide-16, 120 nM)(図3,6)、mitocryptide-3、-5および-10のC末端を延長した-3-2、-5-2および-10-2は、いずれも延長する前のペプチドに比較して活性が高くなることが示された。(EC50's : mitocryptide-3-2, 150 nM ;mitocryptide-5-2, 200 nM ;mitocryptide-10, 8 μM;mitocryptide-10-2, 6 μM)(図3〜5)。さらにこれら高い活性を示したペプチドのうち、mitocryptide-3および-3-2はβ-ヘキソサミニダーゼ分泌活性が認められる濃度以下で遊走活性が確認されたのに対し、mitocryptide-4、-5、-5-2、-14、および-15ではほぼ同じ濃度でβ-ヘキソサミニダーゼ分泌活性と遊走活性が認められた(図3,6)。このように本研究で同定した活性ペプチドは、遊走活性がβ-ヘキソサミニダーゼ分泌活性よりも低濃度で認められるものと同程度の濃度で認められるものに大別されることが示された(図3〜7)。加えてこれらペプチドによる遊走活性は、濃度が上昇するに伴い脱感作されたが、特にmitocryptide-3、-4、-5、および-14では、遊走活性が完全に脱感作することも示された(図3〜7)。
表1に示すように、同定した活性ペプチドはそのアミノ酸配列にほとんど類似性がないものの、二次構造上の共通性によりGタンパク質と共役した同一の受容体に結合し作用するとすると、複数のペプチドで同時に刺激した場合協奏効果が起こるものと考えられる。そこでβ-ヘキソサミニダーゼ分泌を刺激するより低い濃度のペプチドを10種類混合することにより、好中球様に分化したHL-60細胞を刺激し、β-ヘキソサミニダーゼ分泌を惹起するかどうか検討した。すなわち、図10-Aに濃度依存性を示した高い活性を持つmitocryptide-3、-4、-5、-6、-7、-8、-9、-10、-11、および-12を、それぞれ単独ではβ-ヘキソサミニダーゼ分泌を刺激しない濃度(mitocryptide-3, 50 nM ; mitocryptide-4, 50 nM ; mitocryptide-5, 10 nM ; mitocryptide-6, 30 nM ; mitocryptide-7, 50 nM ; mitocryptide-8, 50 nM ; mitocryptide-9, 100 nM ; mitocryptide-10, 100 nM ; mitocryptide-11, 200 nMおよびmitocryptide-12, 100 nM)で混合し、それら混合ペプチド刺激によるβ-ヘキソサミニダーゼ分泌刺激活性を検討した。その結果、10種の異なるペプチド混合物は、10 μM fMLP刺激によるβ-ヘキソサミニダーゼ分泌に対して53.7%の分泌活性を示した(図10-B)。このように、これらのペプチドは協奏的に作用し、分化HL-60細胞を刺激することが示された(図10)。
なお、表中◎:300 nM以下の濃度でβ-ヘキソサミニダーゼ分泌活性が確認されたペプチド、○:1 μM以下の濃度でβ-ヘキソサミニダーゼ分泌活性が確認されたペプチド、●:10 μM以下の濃度でβ-ヘキソサミニダーゼ分泌活性が確認されたペプチド、▲:100 μM以下の濃度でβ-ヘキソサミニダーゼ分泌活性が確認されたペプチド、×:β-ヘキソサミニダーゼ分泌活性が認められなかったペプチド、を表す。また複数の記号を示したペプチドの活性は、行った実験の中で複数のカテゴリーに属する結果が得られたことを示す。
実施例3に記載の実験により好中球を活性化する機能ペプチドが同定されたので、次に化学的架橋法を用いてこれら機能ペプチドによる受容体を同定した。
まず同定した機能ペプチドのうち最も高い活性を示したmitocryptide-3および-5について、そのN末端にCys残基を延長したペプチド([Cys0]mitocryptide-3および[Cys0]mitocryptide-5)、またmitocryptide-3のC末端にCys残基を延長したペプチド([Cys24]mitocryptide-3)、さらにはそれらおよびmitocryptide-3ならびに-5のN末端にbiotinを導入したペプチド(N-biotinyl-mitocryptide-3、N-biotinyl-mitocryptide-5、N-biotinyl-[Cys0]mitocryptide-3、N-biotinyl-[Cys0]mitocryptide-5およびN-biotinyl-[Cys24]mitocryptide-3)を実施例2に記述したように化学合成した。
Claims (4)
- 以下の(a)および(b)から選択されるペプチド:
(a)配列番号19、15、23、37、48または51のアミノ酸配列からなるペプチド;
(b)配列番号19、15、23、37、48または51のアミノ酸配列において、1〜2個のアミノ酸が付加されたアミノ酸配列からなり、かつ好中球刺激活性を有するペプチド。 - 配列番号52のアミノ酸配列を有するタンパク質を受容体とする、請求項1に記載のペプチド。
- 請求項1に記載のペプチドに対する抗体。
- 請求項1に記載のペプチドを検出することを特徴とする、好中球が関与する疾患の検査方法。
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