JP5219168B2

JP5219168B2 - アルツハイマー病の予防および／または治療用βシート破壊ペプチド

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Publication number: JP5219168B2
Application number: JP2010550011A
Authority: JP
Inventors: 淑▲梅▼ 徐; 根▲発▼ 周; 威王
Original assignee: Tianjin Medical University
Current assignee: Tianjin Medical University
Priority date: 2008-03-13
Filing date: 2008-03-13
Publication date: 2013-06-26
Anticipated expiration: 2028-03-13
Also published as: US20110105404A1; EP2264062B1; US8361967B2; WO2009111906A1; JP2011513440A; EP2264062A1; EP2264062A4

Description

本発明は、ポリペプチドおよびそれらの使用に関する。特に、本発明は、アルツハイマー病の予防および／または治療に使用できるタイプのβシート破壊ペプチドおよびアルツハイマー病の予防および／または治療におけるそれらの使用に関する。

老年性認知症とも呼ばれるアルツハイマー病（ＡＤ）は、神経変性疾患の一種である。それは、潜在的発症と進行性病理を示し、総合的な認識機能障害および人格変化といった典型的な臨床的特徴を伴う。ＡＤ患者は、過去および最近の記憶の機能障害に続いて、進行性知能低下、失語、推論能力の喪失、および運動障害を起こす。この疾患は、患者およびその家族の生活の質(クオリティ・オブ・ライフ)に深刻な影響を及ぼし、また、患者の家族および社会に大きな負担を課す。

高齢化が加速するにつれ、老人性疾患は、人間の健康に影響を及ぼす重大な問題となってきた。ＡＤ、癌、および心臓・脳血管の発作は、高齢者の死亡率の３つの主要原因である。ＡＤは、２１世紀の人間の健康における第４の危険因子（リスクファクター）になるであろうと考えられている。世界保健機構（ＷＨＯ）によると、ＡＤは、２１世紀の５つの主要疾患の１つである。中国は、１９９９年に高齢化社会に入った。２００４年末までに６０歳以上の高齢者は１億４３００万人となり、それは総人口の１０．９７％を占める。この数字は、２０１４年までに２億人に、２０２６年までに３億人に、２０３７年までに４億人以上になると予測されている。高齢者の人口は、２０５１年に最大となり、３億人〜４億人の規模で推移するとみられる。高齢者人口の増加は、アルツハイマー病の発生率の増加につながる。現在、ヨーロッパ、日本、および米国において、８０歳以上の人の２０％以上がこの疾患を患っていると報告されている。世界中で、５０００万人以上の６５歳以上の人々が、様々な種類の認知症を患っている。

ＡＤの主な病変には、βアミロイドペプチド（ＡβまたはβＡと略される）の析出によって細胞間に広範囲に形成される老人斑（ＳＰ）、神経細胞における過リン酸化タウタンパク質による神経原線維変化（ＮＴ）、および広範囲ニューロン消失といった特徴がある。Ａβの神経毒性が様々な病因に共通する原因であると、多くの証拠が示している。そのため、Ａβを標的とした予防および／または治療の取り組みが、近年のＡＤ研究の焦点となってきた。

Ａβは、βアミロイド前駆体タンパク質（ＡＰＰ）の代謝産物である。通常の条件下では、ＡＰＰは、αセクレターゼの酵素触媒反応の下、可溶性ｓＡＰＰαを生成する。ｓＡＰＰαは、細胞内のカルシウム濃度を下げ、シナプス可塑性を調整し、シナプス成長を促進し、ニューロンを保護する機能を持つ。これは、Ａβを生成しないＡＰＰ処理の主要経路である。他の経路において、ＡＰＰは、βセクレターゼの酵素触媒反応の下、ｓＡＰＰβおよびＣ９９を生成する。その後、Ｃ９９は、γセクレターゼの酵素触媒反応の下、Ａβペプチドを遊離させる。γセクレターゼによるＣ９９の加水分解は、アラニン７１３およびトレオニン７１４間の酵素的切断がＡβ_１−４２を生成し、バリン７１１およびイソロイシン７１２間の酵素的切断がＡβ_１−４０を生成するという不均一プロセスである（非特許文献１）。Ａβ_１−４２は、全Ａβタンパク質の約１０％を占め、Ａβ_１−４０は、全Ａβタンパク質の９０％を占める。しかしならが、Ａβ_１−４２は凝集しやすく、凝集したＡβ_１−４２は、老人斑の基本成分を構成する。

Ａβ_１−４２ペプチドの一次構造を以下に示す（配列番号:４）：
Asp-Ala-Glu-Phe-Arg-His-Asp-Ser-Gly-Tyr-Glu-Val-His-His-Gln-
1 5 10 15
Lys-Leu-Val-Phe-Phe-Ala-Glu-Asp-Val-Gly-Ser-Asn-Lys-Gly-Ala-
16 20 25 30
Ile-Ile-Gly-Leu-Met-Val-Gly-Gly-Val-Val-Ile-Ala
31 35 40 42

Ａβ_１−４２のＣ末端上の１０個のアミノ酸残基（残基３３〜４２）および残基１７〜２１は疎水性が高く、Ａβ_１−４２の疎水性領域を構成し；アミノ酸残基９〜２１もβシート高次構造を形成するかもしれないが、アミノ酸残基２８〜４２はβシート高次構造を形成する可能性がより高い。βシート高次構造は、Ａβ_１−４２ペプチドの凝集を促す。実験の結果は、Ｃ末端の３つの残基Ｖａｌ^４０、Ｉｌｅ^４１、Ａｌａ^４２が、βシート高次構造を安定させ、βシートの形成を促す事を示す。Ａβ_１−４２ペプチドのＮ末端は親水性を有し、異なる溶液の条件に応じて、αらせん、ランダムらせん、またはβシートの高次構造を形成できる。βシート高次構造は、Ａβペプチドの凝集を促し、Ａβペプチドの凝集はその疎水性領域間の相互作用に起因する事が示されてきた。Ｓｏｔｏら（非特許文献２）が、Ａβペプチドの疎水性領域に隣接するアミノ酸残基をプロリンで置き換えたところ、得られた小ペプチドはβシート高次構造を形成せずにＡβペプチドに結合し、Ａβペプチドをそのランダムらせん状の高次構造に保ち、その凝集を抑制した。また、Ａβペプチドの疎水性領域の１つであるペンタペプチドＡβ_{１６−２０}（Lys-Leu-Val-Phe-Phe）は、Ａβペプチドに結合でき、それによって凝集を防ぐことも示されてきた。アラニンによって１つずつ置換する事によって、Ｌｙｓ^１６、Ｌｅｕ^１７、およびＰｈｅ^２０が、この工程において重要な役割を果たす事が分かった。これは、Ａβ^{１６−２０}残基が、Ａβペプチドの凝集において、隣接する２つのＡβペプチドが互いに結合するための区分を構成する事を示している。Ａβの高次構造がその凝集特性に大きく影響を及ぼす事が示されてきた。すなわち、主要な二次構造がαらせんの場合、凝集は遅くなるが、主要な二次構造がβシートの場合、凝集はより速くなる。

一定の条件の下では、高βシート疎水性領域の露顕はＡβの凝集およびオリゴマーの形成を導き、最終的にはニューロンの細胞間隙に析出される不溶性物質の形成を導く。これによって、神経毒性および脳のグリア細胞の活性の増大が起こり、アミロイド斑を一緒に形成する可能性のある炎症性メディエータおよび補体を産生する恐れがある。

モノマーの疎水性電荷の増大はＡβ凝集の主要原因の１つである。Ａβ_１−４０と比べて、Ａβ_１−４２は残基を２つ多く有するため、Ａβの疎水性が高まって凝集しやすくなるだけでなく、凝集の安定性も向上して速い段階でそれらをアミロイド斑に選択的に析出する。Ａβ_１−４２は、可溶性Ａβからオリゴマー、ファイバー、および斑（プラーク）を形成する工程の初期因子である事がある（非特許文献３）。

Ｊａｒｒｅｔｔらは、Ａβ_１−４２が「種子」として機能してＡβの析出を開始すると推測した。他のモノマーは、それから徐々に核のまわりに集まって、ペプチド鎖を伸展して原線維を形成し（伸長）、原線維はさらに広がって最終的に斑を形成した（非特許文献４）。

Ａβの凝集と析出および老人斑の形成、ならびにそれに伴うニューロンのダメージは、ＡＤの病理学的機構の中核を構成すると考えられている。そのため、Ａβペプチドの凝集を抑制し、Ａβペプチドの分解と排除を促進する事は、ＡＤの予防および／または治療の根本的な手段といえるかもしれない。

Ａβの形成の低減、Ａβの排除の促進、Ａβの凝集の防止または反転、およびＡβの毒性の抑制等の側面が、Ａβ用の薬剤の開発における最近の研究の焦点となっている。ワシントン大学医学部の研究者達は、ＡＤマウスが、脳内のアミロイド斑を排除した後にそれらの脳細胞機能を驚くほど回復させることができた事を発見したが、それは、Ａβを標的としている薬剤の有望な将来性を示す。Ａβに対する様々な薬剤の中で、βシートブロッカーに研究者の注目が集まっている。

βシートブロッカーは大きく分けて２種類ある。

（１）低分子量のアミノ糖タンパク質(グリコサミノグリカン:ＧＡＧｓ)がβアミロイド斑を安定させ斑の分解を抑制できるという認識に基づいて、カナダのＮｅｕｒｏｃｈｅｍ社はＧＡＧ誘導体を設計および合成した。生体内（in vivo）実験で、そのような低分子量ＧＡＧ類似体が、血漿及び脳内のβアミロイドレベルを著しく下げ、Ａβ凝集を抑制する事を示した為、それはＡＤの治療に使用する事ができる。そのような低分子量ＧＡＧ類似体の１つはＡｌｚｈｅｍｅｄとして設計され、臨床試験の第３段階まできている。

（２）Ｃｈａｃｏｎらは、線維性Ａβを腹腔内注射する事によってラットに行動障害を誘発させ、その後、５つのアミノ酸残基から成るβシート破壊ペプチド（５アミノ酸βシート破壊ペプチド：ｉＡｂｅｔａ５ｐ）のニューロンに対する保護効果を評価した。その結果、ｉＡｂｅｔａ５ｐはＡβ原線維の形成を抑制できるだけでなく、Ａβ原線維を分解できる事が分った（非特許文献５）。ｉＡｂｅｔａ５ｐの薬剤は臨床試験の第３段階まできている。

技術的には、βアミロイド（Ａβ_１−４２）のモノマーに特異的に結合し、その標準空間的構造を安定させ、βシートの形成を抑制し、可溶性βアミロイドオリゴマーおよびβアミロイド斑の形成を防止する事ができる新たな作用性薬剤の必要性が残っている。前述の薬剤は、Ａβペプチドの凝集を抑制し、Ａβペプチドの分解および排除を促進できなければならず、それゆえＡＤの予防および／または治療に使用可能である。

Selkoe DJ. Alzheimer's disease: genes, proteins, and therapy. Physiol Pev, 2001, 81 (2): 741-766 Soto C, Kindy MS, Baumann M, et al., Inhibition of Alzheimer's amyloidosis by peptides that prevent beta-sheet conformation. Biochem. Biophys. Res. Commun.1996, 226(3): 672-680 Younkin, S.G. 1995. Evidence that A beta 42 is the real culprit in Alzheimer’s disease. Ann. Neurol. 37: 287-288.; Matsuok Y, Saito M, Lafrancois T, et a1．Noval therapeutic approach for the treatment of Alzheimer’s disease by peripheral administration of agents with an affinity to β-amyloid[J]．J Neurosci, 2003, 23(1): 1-5 Jarrett JT, Lansbury PT Jr. Seeding "one-dimensional crystallization" of amyloid: a pathogenic mechanism in Alzheimer’s disease and scrapie? Cell. 1993, (6): 1055-1058 Chacon MA, Barria MI, Soto C, et al., Beta-sheet breaker peptide prevents beta-induced spatial memory impairments with partial reduction of amyloid deposits. Mol. Psychiatry. 2004, 9(10): 953-61

本発明の目的の１つは、βアミロイド（Ａβ_１−４２）のモノマーに特異的に結合し、その標準空間的構造を安定させ、βシートの形成を抑制し、可溶性βアミロイドオリゴマーおよびβアミロイド斑の形成を防止する事ができるポリペプチド提供する事である。また、前記ポリペプチドはＡβ原線維を分解できてもよい。前記ポリペプチドは、βシート破壊ペプチドとも言われる。

驚くべきことに、本発明の発明者らは、下記のアミノ酸配列からなるポリペプチドが、前述の目的を達成する事を見出した。
His-Lys-Gln-Leu-Pro-Phe-Phe-Glu-Glu-Asp（配列番号：２）

従って、本発明の第１の態様は、前述のアミノ酸配列からなるポリペプチドを提供する事である。

前記ポリペプチドは、βアミロイド（Ａβ_１−４２）のモノマーに特異的に結合し、その標準空間的構造を安定させ、そのβシートの形成を抑制し、可溶性βアミロイドオリゴマーおよびβアミロイド斑の形成を防止し、Ａβ原線維を分解できるため、ＡＤの予防および／または治療に使用可能である。

それゆえ、本発明の第２の態様は、ＡＤの予防および／または治療用の薬剤の製造における、本発明のポリペプチドの使用を提供する事である。

本発明の第３の態様は、本発明のポリペプチドおよび薬学的に許容される担体を含む医薬組成物を提供する事である。

図１は、ポリペプチドを調製するための方法の一例の工程および調製した生産物の試験結果を表す。図１Ａは、ポリペプチドＨ１０１を合成および精製するための方法の一例の基本工程を表す。図１Ｂは、Ｈ１０１のクロマトグラフィー結果を表す。図１Ｃは、Ｈ１０１の質量スペクトル結果を表す。図２は、Ａβ_１−４２ペプチドの凝集および原線維の形成のチオフラビンＴ蛍光分析の結果を表し、Ａβ凝集による蛍光強度における本発明のポリペプチドの効果を実証する。所定の濃度のＡβ_１−４２ペプチドとペプチドＨ１０１もしくはＨ１０３、本発明のＨ１０２、またはビタミンＥ（ＶＥ）もしくはＬ５を、３７℃で２４時間インキュベートし、ＴｈＴ蛍光強度を測定した。ｎ＝５、Ａβ_１−４２のグループと比較し、^＊はＰ＜０．０５を示す。図３は、Ｈ１０２およびビタミンＥによるＡβ_１−４２の原線維形成の抑制の容量依存曲線を表す。それぞれ１０μｍｏｌ／Ｌ、２０μｍｏｌ／Ｌ、４４．３０μｍｏｌ／Ｌ、および１００μｍｏｌ／Ｌの濃度のＨ１０２またはビタミンＥを１１．０７μｍｏｌ／ＬのＡβ_１−４２ペプチドと３７℃で２４時間インキュベートし、ＴｈＴ蛍光強度を測定した。ｎ＝５。図４は、Ｈ１０２およびビタミンＥによるＡβ_１−４２の原線維形成の抑制の時間依存曲線を表す。４４．３０μｍｏｌ／Ｌの濃度のＨ１０２またはビタミンＥを１１．０７μｍｏｌ／ＬのＡβ_１−４２ペプチドと３７℃でインキュベートし、１２時間後、１日後、３日後、５日後、および７日後の時点でのＴｈＴ蛍光強度を測定した。ｎ＝５。図５は、４４．３０μｍｏｌ／Ｌの異なるペプチドを１１．０７μｍｏｌ／ＬのＡβ_１−４２ペプチドと３７℃で５日間インキュベートした後のＡβ_１−４２の原線維形成の電子顕微鏡法の結果を表す。図５Ａは、Ａβ_１−４２単独の５日間のインキュベーションによって得られた前記電子顕微鏡法の結果を表す。拡大率＝３５０００倍。図５Ｂは、Ａβ_１−４２単独の５日間のインキュベーションによって得られた前記電子顕微鏡法の結果を表す。拡大率＝５００００倍。図５Ｃは、Ａβ_１−４２とＬ５ペプチドの５日間のインキュベーションによって得られた前記電子顕微鏡法の結果を表す。拡大率＝３５０００倍。図５Ｄは、Ａβ_１−４２とＨ１０１ペプチドの５日間のインキュベーションによって得られた前記電子顕微鏡法の結果を表す。拡大率＝３５０００倍。図５Ｅは、Ａβ_１−４２とＨ１０２ペプチドの５日間のインキュベーションによって得られた前記電子顕微鏡法の結果を表す。拡大率＝３５０００倍。図５Ｆは、Ａβ_１−４２とＨ１０３ペプチドの５日間のインキュベーションによって得られた前記電子顕微鏡法の結果を表す。拡大率＝３５０００倍。図６は、５μｍｏｌ／ＬのＡβ_１−４２ペプチドと７２時間インキュベートしたヒト神経芽細胞腫細胞ＳＨ−ＳＹ５Ｙの生存率に対する異なる濃度（１０μｍｏｌ／Ｌ、２０μｍｏｌ／Ｌ、および４０μｍｏｌ／Ｌ）の各種ペプチドの効果を表す。ｎ＝１２、Ａβ_１−４２のグループと比較し、^＊はＰ＜０．０５を示す。図７は、抗ＡＰＰＮ末端抗体および抗Ａβ抗体を使用して、各種グループのマウスの海馬ＣＡ１領域におけるニューロンの切片を免疫組織化学染色した結果を表す。拡大率＝４００倍。図７Ａは、抗ＡＰＰＮ末端抗体を使用した、コントロールグループのマウスの免疫組織化学染色の結果を表す。図７Ｂは、抗Ａβ抗体を使用した、コントロールグループのマウスの免疫組織化学染色の結果を表す。図７Ｃは、抗ＡＰＰＮ末端抗体を使用した、モデルグループのマウスの免疫組織化学染色の結果を表す。図７Ｄは、抗Ａβ抗体を使用した、モデルグループのマウスの免疫組織化学染色の結果を表す。図７Ｅは、抗ＡＰＰＮ末端抗体を使用した、注射したグループのマウスの免疫組織化学染色の結果を表す。図７Ｆは、抗Ａβ抗体を使用した、注射したグループのマウスの免疫組織化学染色の結果を表す。図８は、各種グループのマウスの側頭皮質および海馬をコンゴーレッド染色した結果を表す。拡大率＝４００倍。図８Ａは、コントロールグループのマウスの側頭皮質のコンゴーレッド染色の結果を表す。図８Ｂは、コントロールグループのマウスの海馬のコンゴーレッド染色の結果を表す。図８Ｃは、モデルグループのマウスの側頭皮質のコンゴーレッド染色の結果を表す。図８Ｄは、モデルグループのマウスの海馬のコンゴーレッド染色の結果を表す。図８Ｅは、注射したグループのマウスの側頭皮質のコンゴーレッド染色の結果を表す。図８Ｆは、注射したグループのマウスの海馬のコンゴーレッド染色の結果を表す。

発明の詳細な説明
ここで、一連のポリペプチドのアミノ酸配列を開示する。アミノ酸残基が一文字または三文字で表わされる配列は、ポリペプチドのアミノ酸配列を、そのＮ末端（アミノ末端）からＣ末端（カルボキシ末端）まで示すという事が、当業者によって認識されている。例えば、ポリペプチドが“His-Gln-Lys-Leu-Val-Phe-Phe-Ala-Glu-Asp”または“HQKLVFFAED”と示されている場合、このポリペプチドの配列は“Ｎ末端-His-Gln-Lys-Leu-Val-Phe-Phe-Ala-Glu-Asp-Ｃ末端”、すなわち、“Ｎ末端-HQKLVFFAED-Ｃ末端”である事を意味する。

本発明の第１の態様は、アミノ酸配列
His-Lys-Gln-Leu-Pro-Phe-Phe-Glu-Glu-Asp（配列番号：２）からなるポリペプチドを提供する事である。

本発明のポリペプチドは、前述のアミノ酸配列からなる。

参考例として、Ｈ１０１として設計される下記の配列を有するポリペプチドを例示する。
Ｈ１０１: His-Lys-Gln-Leu-Val-Phe-Phe-Glu-Glu-Asp(HKQLVFFEED)(配列番号:１)。

本発明の実施形態において、本発明においてＨ１０２として設計される下記の配列を有するポリペプチドを提供する。
Ｈ１０２: His-Lys-Gln-Leu-Pro-Phe-Phe-Glu-Glu-Asp(HKQLPFFEED)(配列番号:２)。

別の参考例として、Ｈ１０３として設計される下記の配列を有するポリペプチドを例示する。
Ｈ１０３: His-Gln-Lys-Leu-Val-Phe-Phe-Ala-Glu-Asp(HQKLVFFAED)(配列番号:３)。

一連のポリペプチドのアミノ酸配列を開示する。様々な修飾が本発明のポリペプチドになされ得るのは明らかである。前記修飾としては、制限されないが、プロリンおよびリジンのヒドロキシル化、セリンまたはトレオニン残基上のヒドロキシル基のリン酸化、リジン、アルギニン、およびヒスチジンの側鎖上のo-アミノ基のメチル化、Ｎ末端アミノのアセチル化が挙げられ、場合によっては、Ｃ末端カルボキシルのアミド化も挙げられる。当然の事ながら、本発明のポリペプチドのアミノ酸配列に基づいてこれらの修飾を行う事は当業者にとって明らかであり、前記開示したアミノ酸配列からなるこれら修飾ポリペプチドは、本発明の範囲に包含される。

本発明のこれらのポリペプチドは、βシート破壊ペプチドとして機能する事ができる。本発明のポリペプチドは、βアミロイド（Ａβ_１−４２）のモノマーに特異的に結合し、その標準空間的構造を安定させ、βシートの形成を抑制し、可溶性βアミロイドオリゴマーおよびβアミロイド斑の形成を防止し、Ａβ原線維を分解できるため、ＡＤの予防および／または治療用の薬剤として使用可能である。

それゆえ、本発明の他の態様は、ＡＤの予防および／または治療用の薬剤の製造における、本発明のポリペプチドの使用を提供する事である。

ここで使用される、「予防する」、「予防すること」、または「予防」という語は、被検者が疾患を患うリスクを軽減する事、または、疾患や関連症状の発症の時期を遅らせる事をいう。ここで使用される、「治療する」、「治療すること」、または「治療」という語は、必ずしも全治する事だけでなく、基礎疾患の症状を改善する事および／または前記症状を誘発し得る１種類以上の基礎細胞性、生理学的、または生化学的な原因またはメカニズムを低減する事をいう。当然の事ながら、ここでいう「改善する」は、病気の状態に関し、疾患の生理学的状態だけでなく分子パターンにも言及される。

また、本発明のポリペプチドおよび薬学的に許容される担体を含む医薬組成物を提供する。

ここで使用される「薬学的に許容される担体」という語は、生物学的に、または、他の側面において、いかなる好ましくない影響も起こさない物質をいう。すなわち、前記物質は、本発明のポリペプチドと共に被検者に投与でき、いかなる生理学的に好ましくない影響も起こさず、前記医薬組成物の他の成分と好ましくない相互作用も起こさない。有効成分の分解や被検者の副作用を最小限にするように前記担体を選択しなければならない事は、当業者にとって明白でありよく知られている。

通常、本発明の医薬組成物は、本発明のポリペプチドおよび１種類以上の薬学的に許容される担体を含む。好適な担体としては、制限されないが、抗酸化剤、保存剤、着色剤、香味料および希釈剤、乳化剤、懸濁化剤、溶媒、充填剤、膨張性薬剤、緩衝剤、媒体、増量剤、賦形剤、および／または補助薬が挙げられる。例えば、好適な担体としては、生理食塩水、クエン酸塩緩衝剤、または人工脳脊髄液（ＣＳＦ）、および従来の非経口組成物に添加される場合があるその他の物質でもよい。担体は、例えば、中性緩衝生理食塩水または血清アルブミンと混合された生理食塩水である。当業者であれば、本発明の前記組成物および投薬形態において使用できる、様々な緩衝剤を容易に決定する事ができる。代表的な緩衝剤としては、制限されないが、薬学的に許容される弱酸、弱塩基、またはそれらの組み合わせが挙げられる。前記緩衝成分は、好ましくは、リン酸、酒石酸、乳酸、コハク酸、クエン酸、酢酸、アスコルビン酸、アスパラギン酸、およびグルタミン酸などの水溶性物質、およびそれらの塩である。

前記担体における一次溶媒は、自然界において水性であっても非水性であってもよい。また、前記担体は、ｐＨ、透過性、粘性、透明性、色調および滅菌性、安定性、溶解率、または製剤の匂いを向上または保持するために使用する事ができる、その他の薬学的に許容される賦形剤であってもよい。本発明の医薬組成物は、更に、本発明のポリペプチドの放出率を向上または保持するために使用する事ができる他の薬学的に許容される担体を有する事ができる。そのような担体は、徐放性製剤を調製する事に熟練した者にとって既知である。

本発明の医薬組成物が製剤される時、それらは、溶液、懸濁液、ゲル、エマルション、固体、または脱水または凍結乾燥粉末の形で滅菌管に保存する事ができる。これらの製剤は、すぐに使用できる形、使用前にもどされる凍結乾燥粉末の形、または使用前に薄められる溶液の形で保存されてもよい。本発明の医薬組成物は、使用前は２〜８℃で保存し、単回投与分を滅菌管の形で提供する事が好ましい。本発明の医薬組成物は、投与に先立って、前述のクエン酸塩緩衝剤のような好適な滅菌緩衝剤によって希釈できる。

被検者に本発明のポリペプチドを有効量投与する事を含む、被検者のＡＤの予防および／または治療方法も提供する。

ここで使用される「有効量」という語は、使用される化合物の、疾患または関連症状の発症を防止、または疾患または状態の１つ以上の病因または症状を改善するのに有効な量をいう。前記改善とは、軽減または好転する場合も含み、必ずしも排除する事ではない。本発明のポリペプチドの予防および／または治療有効量は、個体や使用するポリペプチドに応じて変化させなければならない。使用するポリペプチドの予防および／または治療有効量は、固体の年齢、体形、体重、および状態等の多くの因子に応じても変化させなければならない。特定の被検者に対する本発明のポリペプチドの予防および／または治療有効量の決定は、当業者の知識の範囲内である。

本発明のポリペプチドまたは予防／治療方法がＡＤ被検者に適用されると、被検者の脳組織におけるＡβ蓄積の抑制、アミロイド斑の数および面積の低減、およびＡＤ症状の好転といった有意な効果が見られる。例えば、それらは、活動性および注意力を向上させて反応時間を短縮し、発音、表情、姿勢、匂い、セクシュアリティ、性機能、および情動状態を向上させ、幸福な感情を引き起こすのに使用できる。本発明の他の実施形態において、本発明のポリペプチドは、ＡＤ患者に認識促進剤として適切に投与する事ができるため、特に認知症によってダメージをうけた学習能力が向上、または、認知機能低下および／または認知症が抑制される。

本発明のポリペプチドの調製
本発明のポリペプチドは、当業者に知られているポリペプチドの調製方法によって調製する事ができる。

本発明のポリペプチドは、化学合成によって合成する事ができる。ポリペプチドの合成は溶液の中で行う事ができる。あるいは、固相合成を用いる事もできる。ポリペプチドの固相合成方法としては、Ｆｍｏｃ固相合成およびｔＢｏｃ固相合成が挙げられる。通常、ポリペプチドの合成方法は、ポリペプチドのＣ末端（カルボキシル末端）からＮ末端（アミノ末端）まで行われる。

一実施形態において、本発明のポリペプチドは、Ｆｍｏｃ固相合成によって合成され、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）によって精製される。図１は、ポリペプチドＨ１０１を調製および精製する本参考例の基本工程の一例ならびに調製したポリペプチドの試験結果を表す。本参考例において、ポリペプチドは、生産物精製の困難が大きく低減されるように、固相ポリペプチド合成機を用いて合成カラム上で合成される。副反応を最小限にするために、合成カラムおよび添加したアミノ酸の側鎖は保護される。Ｃ末端は遊離しており、反応前に活性化しなければならない。本発明のポリペプチドは、Ｆｍｏｃ固相合成によって合成され、調製用の高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）カラムによって精製された後、質量分析（ＭＳ）によって同定する事ができる。当然の事ながら、本発明のポリペプチドは、前述の実施形態と同様に調製、精製、および同定する事ができる。

本発明のポリペプチドは、組換え遺伝子操作によっても作成する事ができる。すなわち、本発明のポリペプチドをコード化するポリヌクレオチドを、当技術分野で既知の方法を用いて、合成し、好適な宿主細胞に変換する事ができる。そして、変換したポリヌクレオチドを発現し、発現した生産物を精製または処理して本発明のポリペプチドを得る事ができる。

当業者が本発明をよりよく理解できるように、下記の実施例によって本発明を更に説明する。これらの実施例は例示であって、本発明を制限するものではない。関連する数値（例えば数や温度）の精度を保つための努力がなされてきた。しかし、当然の事ながら、誤差や偏差は起こり得る。他に指定のない限り、部数は重量部であり、温度は外気温または摂氏で表わされる温度であり、圧力は気圧と同等または近い圧力である。

実施例１：ポリペプチドの調製
参考例として、下記ポリペプチドＨ１０１を、まずＦｍｏｃまたはｔＢｕ固相合成によって合成した。Ｈ１０１の配列は以下の通りである。
His-Lys-Gln-Leu-Val-Phe-Phe-Glu-Glu-Asp（配列番号:１)

本実施例で使用される合成方法において、Ｆｍｏｃ−Ａｓｐ（ＯｔＢｕ）−ＷａｎｇＲｅｓｉｎ（０．３７ｍｍｏｌ／ｇ）、Ｆｍｏｃ−Ｖａｌ−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｇｌｕ（ＯｔＢｕ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｈｉｓ（ｔｒｔ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｇｌｎ（ｔｒｔ）−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｌｅｕ−ＯＨ、Ｆｍｏｃ−Ｌｙｓ（Ｂｏｃ）−ＯＨ、およびＦｍｏｃ−Ｐｈｅ−ＯＨを出発物質として使用した。

本実施例で用いられる合成方法および精製方法の基本工程を図１Ａに示す。

図１Ａに示される形態で使用されるＴＦＡ剤の製剤は[ＴＦＡ：Ｈ_２Ｏ：エチレンメルカプタン：フェノールが９２．５：２．５：２．５：２．５（ｖ／ｖ）で混合]である。

調製したペプチドの粗生成物をＨＰＬＣによって精製し、純度が９５％より高い最終産物を産生した。ＨＰＬＣの結果を図１Ｂに示す。

上述のように調製および精製したポリペプチドＨ１０１を、質量分析（ＭＳ）によって同定し、配列決定した。質量分析の結果を図１Ｃに示す。同定および配列決定の結果は、前述の方法で調製したポリペプチドが予測された配列および分子量を有する事を示した。

そして、実施例として、下記ポリペプチドＨ１０２を、前述の方法と同様にして調製した。さらに、参考例として、下記ポリペプチドＨ１０３を、前述の方法と同様にして調製した。
Ｈ１０２： His-Lys-Gln-Leu-Pro-Phe-Phe-Glu-Glu-Asp（配列番号：２）
Ｈ１０３： His-Gln-Lys-Leu-Val-Phe-Phe-Ala-Glu-Asp（配列番号：３）

これらのポリペプチドの配列決定および同定の結果は、本実施例に記載の合成方法および精製方法が、本発明のポリペプチドに好適である事を証明している。前述の方法で調製したポリペプチドは、予測された配列および分子量を有する。また、前述の精製方法によって得られたポリペプチド産物の純度は９５％より高い事もある。

実施例２：βアミロイドタンパク質に対する本発明のポリペプチドの効果
材料および方法

１：試薬
Ａβ_１−４２（純度＞９８％）、ビタミンＥ、チオフラビンＴ（ＴｈＴ）、チアゾリルブルー（ＭＴＴ）、およびジメチル・スルホキシド（ＤＭＳＯ）は、すべて、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社製である。ＭＥＭ培地、ウシ胎仔血清（ＦＢＳ）、およびトリプシンは、すべて、Ｇｉｂｃｏ−ＢＲＬ社製である。ポリペプチドＨ１０１、Ｈ１０３、および本発明のＨ１０２は、それぞれ実施例１に記載のように調製した。また、ペンタペプチドLeu-Pro-Phe-Phe-Aspは、実施例１と同様にして調製した。このペンタペプチドは、Ｓｏｔｏ−Ｊａｒａらによって発明され、ここでＬ５として設計されるβシート破壊ペプチドｉＡｂｅｔａ５と同じ配列を有する。ペンタペプチドＬ５を、本実施例および以下の実施例において、コントロールとして使用した。これらのポリペプチドは、全て、ＧＬＢｉｏｃｈｅｍ社（上海）によって合成し、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）によって精製し、純度＞９５％で質量分析（ＭＳ）によって同定した。

２．チオフラビンＴ（ＴｈＴ）蛍光分析および電子顕微鏡法
ＴｈＴ蛍光強度がＡβ凝集の程度を反映する事ができるため、チオフラビンＴ（ＴｈＴ）蛍光分析が、Ａβ凝集を分析するために用いられた。ビタミンＥ（ＶＥ）が、Ａβ凝集および原線維形成を効果的に抑制する事ができたとの報告があったため、ビタミンＥを、この研究における陽性のコントロールとして使用した。Ａβ_１−４２凍結乾燥粉末を、５０ｍｍｏｌ／ＬのＰＢＳ（ｐＨ７．４）の中で製剤し、２２．１５μｍｏｌ／Ｌの濃度の溶液を得た。前記４種類のポリペプチド（Ｈ１０１、Ｈ１０２、Ｈ１０３、およびＬ５）も５０ｍｍｏｌ／ＬのＰＢＳ（ｐＨ７．４）で製剤し、８８．６１μｍｏｌ／Ｌの濃度の溶液を得た。ビタミンＥを、０．２％のＴｗｅｅｎ−８０を含むＰＢＳの中で製剤し、８８．６１μｍｏｌ／Ｌの濃度のエマルションを得た。実験において、最終濃度がそれぞれ１１．０７μｍｏｌ／Ｌおよび４４．３０μｍｏｌ／Ｌとなるように、Ａβ_１−４２ペプチドの溶液を、各ポリペプチドの溶液と等容積で混合した。Ａβ_１−４２ペプチドの溶液を、ビタミンＥエマルションと等容積で混合し、陽性コントロールとして使用した。そして、Ａβ_１−４２を単独で含む溶液を陰性コントロールとして使用した。各溶液を３７℃で２４時間インキュベートし、其々から１０μｌを取り出して３．０μｍｏｌ／ＬのＴｈＴリン酸緩衝液９９０μｌに加えた。ＴｈＴ蛍光強度は、励起波長４５３ｎｍおよび発光波長４７８〜４８６ｎｍで測定した。

３．Ａβ_１−４２に対する本発明のポリペプチドの容量効果および時間効果の関係
ポリペプチドＨ１０２を前述のＰＢＳの中で製剤して一連の濃度を得た。そして、前記溶液に、１１．０７μｍｏｌ／Ｌの濃度になるまでＡβ_１−４２を加えた。Ａβ_１−４２に対する本発明のポリペプチドの容量効果関係を判定するために、得られた溶液を、３７℃で２４時間インキュベートし、サンプルを取得してＴｈＴ蛍光強度を測定した。４４．３０μｍｏｌ／ＬのＨ１０２と１１．０７μｍｏｌ／ＬのＡβ_１−４２を含む溶液、または４４．３０μｍｏｌ／ＬのビタミンＥと１１．０７μｍｏｌ／ＬのＡβ_１−４２を含む溶液を、それぞれ３７℃でインキュベートした。Ａβ_１−４２に対する各種ポリペプチドの時間効果関係を判定するために、サンプルを取得して、インキュベーションの１２時間後（１２ｈ）、１日後（１ｄ）、３日後（３ｄ）、５日後（５ｄ）、および７日後（７ｄ）のＴｈＴ蛍光強度を測定した。一方、Ａβ_１−４２ペプチドを単独で含む溶液をインキュベートし、陰性コントロールとして使用した。

４．電子顕微鏡法
原線維形成を更に調査するために、４４．３０μｍｏｌ／Ｌの各種ポリペプチドと１１．０７μｍｏｌ／ＬのＡβ_１−４２を含む溶液を、それぞれ３７℃で５日間インキュベートした。サンプル５μｌを各グループから取り出して、カーボン支持膜を張った３００メッシュの脱イオン銅線網に滴下し、室温で１５分間静置した。前記サンプルを、２％の酢酸ウラニルを用いて暗所で２分間ネガティヴ染色した。乾燥後、前記サンプルを、透過型電子顕微鏡を用いて観察した。一方、Ａβ_１−４２ペプチドを単独で含む溶液を５日間インキュベートし、陰性コントロールとして使用した。

５．細胞毒性試験
首都医科大学のＸｕａｎｗｕ病院から入手し、３７℃の５％ＣＯ_２の恒温器において、従来の方法によってＭＥＭ培地（１０％（ｖ／ｖ）のウシ胎仔血清が補充されている）で培養した、一般的な株化細胞であるヒト神経芽細胞腫ＳＨ−ＳＹ５Ｙを、毒性試験において使用した。株化細胞を、５日に１回継代培養した。ＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞が対数期において安定して成長すると、前記細胞を、培地２００μｌがウェル毎に添加された１．０×１０^４／ｍｌの密度の９６ウェルプレート（Ｃｏｓｔａｒ社製）に接種した。２４時間後、前記培地を無血清培地と交換し、５μｍｏｌ／Ｌの濃度となるまでＡβ_１−４２を加えた。前記ウェルを、いくつかのグループに分類した。前述の４種のポリペプチド（Ｈ１０１、Ｈ１０２、Ｈ１０３、およびＬ５）を、各グループの培地に、それぞれ、１０μｍｏｌ／Ｌ、２０μｍｏｌ／Ｌ、および４０μｍｏｌ／Ｌの濃度となるように加えた。Ａβ_１−４２およびポリペプチドを加えずに無血清培地を単独で加えた細胞グループを陽性コントロールとして使用し、前述のポリペプチドを加えずにＡβ_１−４２ペプチドを加えた細胞グループを陰性コントロールとして使用した。前記ポリペプチドの添加の７２時間後、各ウェルに、３−（４，５−ジメチル−２−チアゾリル）−２，５−ジフェニルテトラゾリウムブロミド（ＭＴＴ）（５ｍｇ／ｍｌ）を２０μｌ加え、プレートを３７℃で４時間インキュベートした。その後、最初の培地を処分し、各ウェルにＤＭＳＯを２００μｌ加えた。プレートを１０分間静置してから１分間振動させ、ホルマザン粒子を完全に溶解した。その後、４９２ｎｍにおける光学濃度（ＯＤ）を、自動マイクロプレートリーダーを用いて測定した。

６．統計分析
２グループ間のデータ比較にはｔ検定法を用い、３グループ以上のデータ比較にはＦ検定法を用いた。

結果
１．Ａβ_１−４２凝集および原線維形成に対する各種試験済みのポリペプチドの抑制作用
ＴｈＴ蛍光分析を用いて、Ａβ_１−４２凝集および原線維形成に対する各種ポリペプチドおよびビタミンＥの効果を評価した。ＰＢＳ溶液中のＡβ_１−４２単体が、極めて高い蛍光強度を生じる事ができた事は、Ａβ_１−４２が自己凝集してＡβ原線維を形成できる事を示す。試験ポリペプチドまたはビタミンＥを含まず、Ａβ_１−４２を単独で含む陰性コントロール溶液から得られる蛍光強度を、１００％に規準化した。Ａβ_１−４２凝集および原線維形成に対する各種試験済みのポリペプチドの抑制率を計算した（％）。結果を表１に示す。（ここで、表１に示すデータは、器材システムそのものによって生じたバックグラウンド蛍光を差し引いてある）

表１に示すように、Ｈ１０２は、Ａβ_１−４２凝集に対して最も高い抑制作用を示し、次いで、Ｌ５、ビタミンＥ、Ｈ１０１、Ｈ１０３となった。

表１に示す結果を、図２に示すヒストグラムにプロットした。

図２に示すように、Ｈ１０２はＡβ_１−４２凝集および原線維形成を著しく抑制することができ、また、ビタミンＥも、Ａβ_１−４２とインキュベートされると、Ａβ_１−４２凝集および原線維形成を著しく抑制することができる。しかしながら、ビタミンＥの効果はＨ１０２よりも低い。

２．Ａβ_１−４２に対する本発明のポリペプチドの容量効果関係
図３は、さまざまな濃度のＨ１０２またはビタミンＥと１１．０７μｍｏｌ／ＬのＡβ_１−４２ペプチドをインキュベート（３７℃で２４時間）して得られたＴｈＴ蛍光分析の結果を表す。図３に示すように、Ａβ原線維形成に対するＨ１０２およびビタミンＥの効果は用量依存し、全ての濃度においてＨ１０２の抑制率はビタミンＥを上回った。また、Ｈ１０２およびビタミンＥのもっとも効果的な濃度は約２０μｍｏｌ／Ｌである。

３．Ａβ_１−４２に対する本発明のポリペプチドの時間効果関係
図４は、Ｈ１０２またはビタミンＥと１１．０７μｍｏｌ／ＬのＡβ_１−４２ペプチドをさまざまな期間インキュベートして得られたＴｈＴ蛍光分析の結果を表す。図４に示すように、１１．０７μｍｏｌ／ＬのＡβ_１−４２ペプチドを単独でインキュベートした場合、得られる蛍光強度は最初の２４時間は低く、３日目に急増し、その後はほぼ横ばいである。Ｈ１０２およびビタミンＥのグループから得られる蛍光強度は、各時点で著しく低く、最も効果的な結果はＨ１０２処理したグループにみられる。曲線の変化は、蛍光強度がピークの半分に達するＴ_１／２時点に特徴づけられ、Ａβ単独のグループのＴ_１／２は３日目に現れ、Ｈ１０２およびビタミンＥのグループのＴ_１／２は４日目と遅れる。

４．電子顕微鏡法の結果
図５は、４４．３０μｍｏｌ／Ｌの各種ペプチドを、それぞれ１１．０７μｍｏｌ／ＬのＡβ_１−４２ペプチドと３７℃で５日間インキュベートして得られたＡβ_１−４２ペプチド原線維形成の電子顕微鏡法の結果を表す。図示のように、Ａβを単独で５日間インキュベートした場合、直径約８〜１０ｎｍ且つ長さ約０．５〜５μｍの大量のＡβ原線維が形成される。前記原線維は、枝を有し、ネットワーク状に織り込まれてさえいるプリックタイプの結晶体に凝集され、凝集状態で少量の非晶構造が点在している（図５Ａおよび図５Ｂ。コントロールグループ）。ＡβをＬ５と５日間インキュベートした場合、形成されるＡβ原線維はより細くなり、直径は約４〜８ｎｍで長さは０．３〜５μｍとなる。前記原線維はネットワーク状に織り込まれ、凝集状態で極少量の非晶構造が点在している（図５Ｃ）。ＡβをＨ１０１と５日間インキュベートした場合、形成されるＡβ原線維の直径は約５〜８ｎｍで長さは０．５〜５μｍとなる。前記原線維は枝を有するネットワーク状に織り込まれ、凝集状態で極少量の非晶構造が点在している（図５Ｄ）。ＡβをＨ１０２と５日間インキュベートした場合、形成されるＡβ原線維はより少なく且つより細くなり、直径は約３〜６ｎｍで長さは０．３〜３μｍとなる。前記原線維はネットワーク状に織り込まれ、凝集状態で極少量の非晶構造が点在している（図５Ｅ）。ＡβをＨ１０３と５日間インキュベートした場合、直径約５〜８ｎｍ且つ長さ約０．５〜５μｍのＡβ原線維が形成される。前記原線維はプリックタイプの結晶体に凝集され、ネットワーク状に織り込まれ、凝集状態で少量の非晶構造が点在している（図５Ｆ）。

５．ＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞の生存率に対する本発明のポリペプチドの効果
図６は、５μｍｏｌ／ＬのＡβ_１−４２ペプチドと７２時間インキュベートしたヒト神経芽細胞腫細胞ＳＨ−ＳＹ５Ｙの生存率に対する異なる濃度（１０μｍｏｌ／Ｌ、２０μｍｏｌ／Ｌ、および４０μｍｏｌ／Ｌ）の各種ペプチドの効果を表す。ｎ＝１２、Ａβ_１−４２のグループと比較し、^＊はＰ＜０．０５を示す。

図６に示すように、Ａβ_１−４２と７２時間インキュベートした後、ＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞の生存率は減少する。Ａβ_１−４２を含有する培養液に異なる濃度（１０μｍｏｌ／Ｌ、２０μｍｏｌ／Ｌ、および４０μｍｏｌ／Ｌ）の４種類のペプチドを添加すると、細胞の生存率は向上し、その効果は用量依存性がある。これらの結果は、細胞の生存率の向上にはＨ１０２が最も効果的であり、その最良の濃度が２０μｍｏｌ／Ｌである事を証明している。

実施例３：ＡＰＰ遺伝子導入マウスの脳におけるβアミロイド（Ａβ）およびβアミロイド前駆体タンパク質（ＡＰＰ）の遺伝子発現に対するＨ１０２の効果
材料および方法

実験動物
９ヵ月のＡＰＰ６９５遺伝子導入マウス３０匹と、遺伝的背景および月齢が適合するＣ５７ＢＬ／６Ｊマウス１０匹を、中国医学科学院の北京協和医学院の実験動物研究センターから調達した。

試薬
抗Ａβ_１−４２抗体をＣｈｅｍｉｃｏｎ社（米国）から調達した。抗ＡＰＰ抗体、すぐに使用できるＳＡＢＣ免疫組織化学染色キット、ＤＢＡ発色キット、およびコンゴーレッドをＷｕｈａｎＢｏｓｔｅｒＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社から調達した。他の試薬としては、分析用純度を有する従来の試薬を用いた。ポリペプチドＨ１０２は、実施例１に記載のように合成、精製、および同定され、本実験で使用するために生理食塩水中で４０μｍｏｌ／Ｌに製剤された。

動物のグループ分けおよびモデルの作成
ＡＰＰ６９５遺伝子導入マウス３０匹を、１５匹のモデルグループと１５匹のポリペプチド注射グループに無作為に分類した。Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウス１０匹を通常のコントロールグループとして用いた。ポリペプチド注射グループでは、前記動物は、毎回、４０μｍｏｌ／ＬのＨ１０２を含む生理食塩水３μｌを脳室内注入された。コントロールグループとモデルグループでは、前記動物は、毎回、生理食塩水３μｌを脳室内注入された。前記注射は１０日間毎日行われた。全ての動物は、天津医科大学の実験動物研究センターのＳＰＦマウスルームで同条件の下で保管された。

前記動物に、投与量４００ｍｇ／Ｋｇの１０％の抱水クロラールを用いて、腹腔内麻酔した。前記動物を、脳定位固定枠に固定して毛を切った。Ａｎｅｒｄｉａｎで消毒した後、頭部正中線に沿って皮膚を約１ｃｍ切開した。骨マークを露出させるように骨膜をはがした。ブレグマとラムダが同じ高さになるように、マウスの皿頭を調製した。Ｇｅｏｒｇｅ’ｓｂｒａｉｎｓｔｅｒｅｏｔａｃｔｉｃａｔｌａｓに従って、針を入れるための１ｍｍの開口部を頭蓋骨の側脳室（Ｐ_{０．．５８、}Ｒ_１、Ｈ_−１．５）に形成した。手術後２日目から注射を開始した。小動物用の脳定位固定装置を用い、ポリペプチド溶液または生理食塩水３μｌを、微量注入器によってゆっくりと着実に側脳室に注入した。注入終了時に、針をその位置に１分間置いた後、ゆっくりと引き抜いた。注射した箇所を圧迫止血した。前記注射は１０日間毎日行われた。

マウスの海馬のパラフィン切片の作成
各グループの動物に１０日間脳室内注入した後、投与量４ｍＬ／Ｋｇの０．１ｋｇ／Ｌの抱水クロラールを用いて、腹腔内麻酔した。左心室を介して迅速な挿管を行った。一方、右心房を切開し、生理食塩水を迅速に注入した。肝臓が白くなった場合は、代わりに４０ｇ／Ｌのパラホルムアルデヒドを、マウスの四肢が硬化するまで、最初は早く、その後はゆっくりと注入した。脳を取り出し、３０％のショ糖を含むパラホルムアルデヒド溶液に迅速に入れ、２〜４日間固定した。脳組織が沈み込んだ後、パラフィンに包埋した。マウスの脳を矢状面にそってスライスした。海馬ＣＡ１領域が露出すると、引き続きスライスし、１０切片毎に１回サンプルを取り出した。各マウスについて、各抗体用に５μｍの厚みの切片を３つずつ取り出した。

免疫組織化学染色
免疫組織化学検査キットの説明書に従って、ＡβおよびＡＰＰに対して免疫組織化学染色を行った。第一抗体の希釈度は、それぞれ、１：１００および１：２００、第二抗体の希釈度は、１：１００とした。染色した切片を、４００倍の拡大率で観察および撮像した。

マウス脳切片のコンゴーレッド染色
パラフィンに包埋した切片を、水・エタノール混合物に浸漬し、脱脂した（グラジエント：エタノール・水→水）。脱脂した切片を、１０％のパラホルムアルデヒド溶液に１５分間浸漬し、コンゴーレッド染色溶液に１５分間直接浸漬した。その後、前記切片を水で４分間洗浄し、ヘマトキシリン溶液に２分間浸漬し、水で洗浄し、そして０．５％の塩酸エタノール溶液に浸漬して分化した。前記切片を、青色を示すまで水で完全に洗浄し、エタノールで脱水した。その後、キシレンで透明にし、中性のガムで固定した。最終的に、染色した切片を、４００倍の拡大率で観察および撮像した。

結果
１．抗ＡＰＰＮ末端抗体および抗Ａβ抗体による免疫組織化学染色
図７は、抗ＡＰＰＮ末端抗体および抗Ａβ抗体により、各グループの動物の海馬ＣＡ１ニューロンの切片を免疫組織化学染色した結果を表す。

図７に示すように、抗ＡＰＰＮ末端抗体および抗Ａβ抗体による免疫組織化学染色の結果は以下の事を示す。（１）コントロールグループの海馬ＣＡ１ニューロンの染色は、陰性または弱陽性である（図７Ａおよび図７Ｂ）。（２）コントロールグループと比較して、モデルグループのサンプルの陽性細胞の数は多く、発現は増加し、染色はより濃い（図７Ｃおよび図７Ｄ）。（３）モデルグループと比較して、ポリペプチド注射グループの陽性細胞の数は少なく、発現は減少し、染色は薄い（図７Ｅおよび図７Ｆ）。

２．コンゴーレッド染色
マウスの脳の病理切片をコンゴーレッドで染色し、マウスの側頭皮質および海馬におけるアミロイド斑の状態を観察した。結果を図８に示す。

図８は以下の事を示す。（１）コントロールグループのマウスの側頭皮質（図８Ａ）および海馬（図８Ｂ）には陽性アミロイド斑は観察されない。（２）モデルグループのマウスの側頭皮質（図８Ｃ）および海馬（図８Ｄ）には大小の薄赤色のクランピングアミロイド斑が観察され、そのうちのほとんどは円形または楕円形で不均等分布され、大体がニューロンで囲まれている。（３）ポリペプチド注射グループのマウスの側頭皮質（図８Ｅ）および海馬（図８Ｆ）にも、いくつかのクランピングアミロイド斑が観察されるが、その数はモデルグループよりも明らかに少ない。

結論
免疫組織化学染色は、モデルマウスの脳ＣＡ１領域におけるＡβ_１−４２陽性細胞の量が、通常のコントロールグループよりもはるかに多い事を示す。ところが、Ｈ１０２ポリペプチド注射グループにおけるＡβ_１−４２陽性細胞の量は、モデルグループよりもはるかに少ない。そのため、Ｈ１０２が、Ａβ凝集を抑制し、生体内におけるＡβの毒性を低減する事ができると推測される。さらに、コンゴーレッド染色は、アミロイド斑が遺伝子導入マウスの脳においてはっきりと形成され、通常のコントロールマウスには形成されないが、Ｈ１０２ポリペプチド注射マウスに形成されるアミロイド斑は、遺伝子導入グループよりも少なく、面積も小さい事を示す。これらの結果は、Ｈ１０２がＡβの発生を低減し、その凝集を抑制することができる事を裏付ける。

本発明において様々な文献を引用しているが、本発明が関係する最先端技術を詳細に記述するために、その全てをここに本明細書の一部を構成するものとして援用する。

本発明の様々な改良および変更が、本発明の範囲および精神から逸脱することなく実施できることは、当業者にとって明らかである。本発明の他の実施形態は、ここに開示される記載と実施例を考慮する事により、当業者にとって明らかである。ここに開示される記載および実施例はあくまで例示であって、本発明の実際の範囲および精神は添付の請求項によって決定される。

Claims

アミノ酸配列
His-Lys-Gln-Leu-Pro-Phe-Phe-Glu-Glu-Asp（配列番号：２）からなるポリペプチド。
請求項１記載のポリペプチドを含むアルツハイマー病の予防および／または治療用の薬剤。
請求項１記載のポリペプチドおよび薬学的に許容される担体を含む医薬組成物。