JP5114392B2 - 細胞傷害性リボヌクレアーゼ変異株 - Google Patents
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Description
本出願は、2005年6月16日に出願された米国特許仮出願第60/690,970号の優先権を主張している。
本発明は、政府機関である国立衛生研究所により授与された連邦政府の支援CA073808によりなされた。連邦政府は本発明において一定の権利を有する。
可能性のあるRNase A変異株のどれが成功する可能性があるかを検討するために、発現ベクターを作り、上で提案された変質の各々についてRNase A変異株を産生した。その後これらの変異株は、触媒活性、RIに対する親和性、安定性及び細胞傷害性についてテストされた。
リボヌクレアーゼは、細胞傷害性であるためにはその触媒活性を保持しなければならない。したがって、各リボヌクレアーゼの触媒活性は、もしあるならば、アミノ酸置換のどれが、RNAを分解する酵素の能力を低減することにより細胞傷害性を弱めることができるかを決めるためにアッセイを行った。野性型RNase A、その変異株、及びONCのKcat/KMの値を、この分析の結果をまとめている表2に示す。野生型RNase A、G88RRNase A、K7A/G88RRNase A、及びONCのKcat/KMの値は、それぞれ、5.2×107、7.4×107、5.3×106、及び2.2×105M-1s-1であり、これらは以前に報告された値とよく一致している。RNase Aの交換残基38と39とでは酵素による触媒への影響が比較的小さかった。D38R/R39DRNase AのKcat/KMの値は、1.8×107M-1s-1であり、これはリボ核酸分解活性が3倍低下したにすぎないことを意味している。同様に、D38R/R39D/G88R変異株でも小さな影響が見られ、3.1×107M-1s-1のそのKcat/KMの値は、G88RRNase Aの値の2.5倍低かった。興味深いことに、G88R置換との関連で単一のR39D置換を行った場合は、リボ核酸分解活性に対する影響はより明白で、G88RRNase AのKcat/KMの値は17倍低く4.3×106M-1s-1になる。このような低下は、この領域における負の電荷を上げ、おそらく酵素とそのアニオン性基質との間の生産的衝突数を下げることにより生じるのであろう。
aRNase A及びその変異株のTmの値(±2℃)は紫外分光法によりPBS中で 測定した。
bRNase A及びその変異株のKcat/KMの値(±SE)は、NaCl(0.10 M)を含むpH6.0における0.10MのMES−NaOH緩衝液(OVSフリー)中( 23±2)℃における6−FAM−dArU(dA)2−6−TAMRA開裂の触媒作用に 関するものである。ONCのKcat/KMの値(±SE)は、NaCl(0.010M)を 含むpH6.0における0.020MのMES−NaOH緩衝液(OVSフリー)中(23 ±2)℃における6−FAM−dArU(dA)2−6−TAMRA開裂の触媒作用に関す るものである。
cKdの値(±SE)は、(23±2)℃におけるpRIとの錯体に関するものである。ON CのKdの値は(Wu et al.,(1993)J.Biol.Chem.268,1 0686−10693)からの推定値である。
dΔΔGの値は、式:ΔΔG=−RTln(Kd 野生型/Kd 変異株)を用いて計算した。
eKdの値(±SE)は、(23±2)℃におけるhRIとの錯体に関するものである。
f(Kcat/KM)cytoの値は、式1及びhRIとの錯体に関するKdの値を用いて計算した 。
gIC50の値(±SE)は、リボヌクレアーゼに対して露出したK−562細胞のDNA内へ の[メチル−3H]チミジンの組み込みに関するものであり、式3を用いて計算した。
h(Vicentini et al.,Biochemistry29,8827−883 4)から。
i(Leland et al.,(1998)Proc.Natl.Acad.Sci.U SA95,10407−10412)から。
j(Abel et al.,(2002)Anal.Biochem.306,100−1 07)から。
kフルオレセインで標識を付けたG88RRNase Aに関する。
l(Haigis et al.,(2002)J.Biol.Chem.277,1157 6−11581)から。
m(Leland et al.,(1998)Proc.Natl.Acad.Sci.U SA95,10407−10412)から及び円偏光二色性分光法により測定した。
pRI及びhRIのアミノ酸配列はよく似ている(同一性77%)。その上、RNase Aと接触するpRI中の28の残基の内、hRIでは2つだけが類似していない残基により置換されている。これら2つの阻害剤たんぱく質は、RNase A変異株に対して似た親和性を有すると仮定したが、我々はpRI及びhRIとの錯体のKdの値を測定し、これらのKdの値を上の表2に示す。
リボヌクレアーゼの立体的安定性は、細胞傷害性を含む生物学的機能にとって必要である。したがって、各RNase A変異株のTm値を測定し、表2に示す。N67R置換は最も不安定化する置換であり、野生型RNase AのTm値を57℃へ7℃も下げる。立体的安定性のこのようなロスは、N67Rを含むすべての変異株において認められている追加置換によって回復することはなかった。N67R/G88R及びD38R/R39D/N67R/G88Rの変異株は、それぞれ、58及び56CのTm値を有する。K31A/D38R/R39D/N67R/G88RRNase Aは、54℃の最低Tm値を有し、この温度は野生型酵素のTm値より約10C低い。更に、このTm値は生理的温度よりもかなり高い。他のアミノ酸置換には、Tm値を数度以上下げられるものはない。
各リボヌクレアーゼの毒性は、K−562ヒト白血病細胞系を用いて測定した。図3のデータ(12の細胞傷害性RNaseの場合、h=1.43±0.02)に式3(下で説明している)を適用して導かれたIC50値を用いて、細胞傷害性が大きくなる順番で表2にRNaseを示す。ONC、G88RRNase A、及びK7A/G88RRNase Aは、以前に報告された値と類似のIC50値を示した。D38R/R39DRNase A(図3A)及びN67RRNase A(図3C)は、25μMの濃度においてさえも細胞傷害活性を示さなかった。後の2つの変異株がG88R置換との関連で示した細胞傷害性の大きな増加を考えると、これら2つの変異株に細胞傷害性がないことは興味深いことである。
物質
大腸菌BL21(DE3)細胞及びpET22b(+)及びpET27b(+)プラスミドは、ウィスコンシン州マジソン(Madison)のノバゲン(Novagen)から得た。K−562細胞は、バージニア州マナサス(Manassas)のアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(The American Type Culture Collection)から入手した慢性のヒト骨髄性白血病系から連続的に誘導された。細胞培養媒体及び助剤は、カリフォルニア州カールスバッド(Carlsbad)のインビトロゲン(Invitrogen)から得た。[メチル−3H]チミジン(6.7Ci/mmol)は、マサチューセッツ州ボストン(Boston)のパーキンエルマー(Perkin Elmer)から得た。酵素は、ウィスコンシン州マジソン(Madison)のプロメガ(Promega)又はマサチューセッツ州ベバーリー(Beverly)のニューイングランド・バイオラブス(New England Biolabs)から得た。リボヌクレアーゼ基質6−FAM−dArUdAdA−6−TAMRA及び6−FAMdArUdGdA〜6−TAMRAは、アイオワ州コラルビル(Coralville)のインテグレーテッドDNAテクノロジーズ(Integrated DNA Technologies)から得た。用いた他のすべての化学物質は市販の試薬級又はそれ以上の品質のもので精製せずにそのまま用いた。
K−562ゲノムDNA中への[メチル−3H]チミジンの組み込みは、マサチューセッツ州ウエルズリー(Wellesley)のパーキンエルマー(Perkin Elmer)のミクロベータ・トリルックス(Microbeta Trilux)液体シンチレーション及びルミネッセンス計数器を用いたシンチレーション計数により定量した。各たんぱく質変異株の質量は、カリフォルニア州フォスターシティー(Foster City)のアプライド・バイオシステムズ(Applied Biosystems)のボイジャー・ド・プロ・バイオスペクトロメトリ・ワークステーション(Voyager−DE−PRO Biospectrometry Workstation)を用いたマルディトフ(MALDI−TOF)質量分光法により確認した。蛍光測定は、ニュージャージー州サウス・ブルンスウイック(South Brunthwick)のフォトン・テクノロジー・インターナショナル(Photon Technology International)の試料撹拌付きクアンタマスター1(QuantaMaster1)光子計数蛍光計を用いて行った。熱変性データは、カリフォルニア州パロアルト(Palo Alto)のバリアン(Varian)のケアリー(Cary)温度調節器を備えたケアリー3ダブルビーム分光光度計を用いて得た。
高速原子密度評価装置(FADE)プログラムにより、複雑な界面におけるたんぱく質の形状補完性マーカーを計算する。原子密度は、以前に説明した方法に基づいてフーリエ変換アルゴリズムを用いて測定する。結晶性pRI・RNase A錯体の構造を用いて(PDB入口1DFJ)、形状補完性マーカーの大きなクラスターに近接している必須のRNase A残基を識別し、上の表1に示す。最大の静電又は立体的矛盾を創り、好ましいクーロン又は短距離の相互作用を排除するように、アミノ酸置換を選択した。
RNase A変異株を符号化するcDNA分子は、pET22b(+)又はpET27b(+)プラスミドを用いてオリゴヌクレオチドが仲介した部位特異的突然変異生成により創られ、該プラスミドは、それぞれ、野生型RNase A又はそのG88R変異株を符号化するcDNAを含む。ONC、野生型RNase A、及びRNase A変異株は、次のような例外があるが、ハイジスら(Haigis et al.),(2002)ザ・ジャーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー(J Biol Chem)277,11576−11581において以前に記載されたとおりに産生された。大腸菌からの封入体は、グアニジン−HCl(7M)、DTT(0.1M)、及びEDTA(10mM)を含む、20mMトリス−HCl緩衝液中pH8.0において、完全に溶解するまで撹拌した。リボヌクレアーゼは、NaCl(0.1M)、還元グルタチオン(1.0mM)、及び酸化グルタチオン(0.2mM)を含む、0.1Mトリス−HCl緩衝液中に、pH8.0において、ゆっくりと希釈した後室温で1晩再び放置した。精製後、たんぱく質はPBSに対して透析し、生化学アッセイで使用する前に0.2μmシリンジを用いてろ過した。たんぱく質濃度は、RNase A及びその変異株についてはε278=0.72mg・ml-1cm-1、ONCについてはε280=0.87mg・ml-1cm-1の吸収係数を用いて紫外分光法により測定した。
ブタのリボヌクレアーゼ阻害剤(pRI)は、クリンクら(Klink et al.),(2001)プロテイン・イクスプレッション・アンド・ピュリフィケーション(Protein Expr.Purif.)22,174−179に記載されたとおりに調製した。新たに調製したpRIは、野生型のRNase Aのリボ核酸分解活性を上げる能力により100%活性であることを確認した。
pRI及びhRI両方のRNase A変異株への親和性をアベルら(Abel et al.),(2002)アナリティカル・バイオケミストリー(Anal.Biochem.)306,100−107において以前に報告された競合アッセイを少し変えた方法を用いて測定した。要するに、フルオレセインで標識を付けたG88RRNase A(最終濃度:50nM)及び標識をつけていない種々の濃度のリボヌクレアーゼの両方を、DTT(5mM)を含む2.0mlのPBSに加えた。(23±2)℃で15分培養後、光から保護し、フルオレセインで標識を付けた結合していないG88RRNase Aの最初の蛍光強度を3分間監視した(励起:493nm,発光:515nm)。次いで、pRIを加え(最終濃度は50nMで、これは標識を付けない競合者がない場合は、フルオレセインで標識を付けたG88RRNase Aの90%を結合するのに十分な濃度である)、最終蛍光強度を測定した。競合アッセイはhRIの場合と同様に行った。ただし、hRIの場合は、親和性が低いので、フルオレセインで標識を付けたG88RRNase Aの90%を結合するには、pRIの場合より多くのhRIを必要とした(最終濃度115nM)。フルオレセインで標識を付けたG88RRNase Aに対するhRIの親和性は、hRIの量を0.5−1000nMの範囲で変えて、フルオレセインで標識を付けたG88RRNase Aを50nMに上げ、結合して低下した蛍光を記録して測定した。Kd値は7.8nMであることが判明した。
RNase A及びその変異株のリボ核酸分解活性は、過敏な蛍光発生基質6−FAM〜dArUdAdA〜6−TAMRA(50nM)を開裂させるこれらの能力をアッセイして測定した。該基質は開裂すると蛍光(励起:493nm,発光:515nm)を180倍に上げる。アッセイは、NaCl(0.10M)を含むpH6.0における2.0mlの0.10MのMES−NaOH緩衝液中(23±2)℃にて行った。この緩衝液の調製に用いたMESは、微量のオリゴマー性ビニルスルホン酸を除去するためにアニオン交換クロマトグラフィにより精製した。該スルホン酸は、市販の緩衝液を合成する際の副産物であり、RNase Aの強力な阻害剤であることが分かっている。Kcat/KMの値は次式により得られた。
RNase A、その変異株及びONCのIC50値は、リボヌクレアーゼの存在下でK−562細胞の細胞DNA内への[メチル−3H]チミジンの組み込みを測定して決めた。細胞傷害性アッセイはすべて、三重に少なくとも3度繰り返した。各データ点は、3又はそれ以上の実験値の平均(±SE)を表す。IC50値は、非線形回帰を用いた曲線を次式に用いたシグモイド用量反応曲線へ合致させて計算した。
Claims (13)
- リボヌクレアーゼの天然のアミノ酸配列から少なくとも2つのアミノ酸変化を有するRNアーゼAスーパーファミリーの遺伝子操作されたリボヌクレアーゼであって、前記第1の変化は、ウシの膵臓のRNアーゼAのアミノ酸残基85〜94に対応する領域におけるアミノ酸置換であり、前記第2の変化は、ウシの膵臓のRNアーゼAの残基38、39及び67に対応するアミノ酸からなる群から選択された位置における置換又はアミノ酸交換であり、前記遺伝子操作されたリボヌクレアーゼは、アミノ酸残基85〜94に対応する前記領域においてのみ修飾を有する対応する遺伝子操作されたリボヌクレアーゼと比較して高い細胞傷害活性を有する前記遺伝子操作されたリボヌクレアーゼ。
- 前記第2の変化が、残基38のアスパラギン酸と残基39のアルギニンとを交換することである、請求項1に記載の遺伝子操作されたリボヌクレアーゼ。
- 前記第2の変化が、残基67におけるアスパラギンをアルギニンで置換することである、請求項1に記載の遺伝子操作されたリボヌクレアーゼ。
- 前記第1の変化が、残基88におけるグリシンをアルギニンで置換することである、請求項1に記載の遺伝子操作されたリボヌクレアーゼ。
- 遺伝子操作されたウシの膵臓のリボヌクレアーゼAであるD38R/R39D/G88R。
- 遺伝子操作されたウシの膵臓のリボヌクレアーゼAであるD38R/R39D/N67R/G88R。
- 請求項1〜6のいずれか1項記載の遺伝子操作されたリボヌクレアーゼを符号化するDNAを発現可能に有するDNA構成体。
- 請求項7のDNA構成体の宿主を務める細胞。
- 請求項1〜6のいずれか1項に記載の遺伝子操作されたリボヌクレアーゼをin vitroで前記細胞に供給する工程を含む、細胞傷害活性を細胞に供給する方法。
- ヒト又は動物体の治療方法に使用される請求項1〜6のいずれか1項記載の遺伝子操作されたリボヌクレアーゼ。
- 細胞への細胞傷害活性の供給に使用される請求項10記載の遺伝子操作されたリボヌクレアーゼ。
- 結腸癌、肺癌、肺腺癌、乳腺癌、前立腺癌、CNSグリア芽腫、卵巣腺癌、及び肝臓癌からなる群から選択される癌の治療用薬剤の調製における請求項1〜6、10及び11のいずれか1項記載の遺伝子操作されたリボヌクレアーゼの使用。
- 結腸癌、肺癌、肺腺癌、乳腺癌、前立腺癌、CNSグリア芽腫、卵巣腺癌、及び肝臓癌からなる群から選択される癌の治療に使用される薬剤であって、請求項1〜6、10及び11のいずれか1項記載の遺伝子操作されたリボヌクレアーゼを含むことを特徴とする薬剤。
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