JP5069637B2 - 可視光応答型光触媒皮膜 - Google Patents
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Description
特に二酸化チタンを用いた光触媒は、安価で、化学的安定性に優れ、かつ高い触媒活性を有し、その強力な有機物分解活性により、細菌の菌体と同時に、グラム陰性菌の細胞壁外膜成分であるエンドトキシンや細菌が産生する毒素(病原性大腸菌の産生するベロ毒素等)等の有害物質を併せて分解することができ、しかも光触媒自体は人体に無害であるという利点を有している。そのため、食品容器、布帛、建材等の抗菌加工に二酸化チタン光触媒が広く用いられている(例えば、特許文献1及び2参照)。
また、仮に、窒素、炭素、硫黄等の原子を結晶格子中にドープした二酸化チタンを使用して、可視光応答型光触媒被膜を形成したとしても、その殺菌効果を更に向上させるには限界があった。
この場合において、前記基材の融点が300〜700℃であることが好ましい。
また、可視光応答型光触媒皮膜は溶射法を用いて形成されるので、高価な真空機器等を用いることなく、様々な材質及び面積の基材の表面上に、均一で強固な皮膜を安価かつ簡便に形成することができる。
また、フレーム温度が300〜700℃(700℃を除く)であるので、二酸化チタン結晶格子中にドープされた硫黄原子が溶射中に消失するのを抑制できる。そのため、得られた皮膜は、高い可視光応答性を保持している。
ここで、図1は本発明の第1の実施の形態に係る可視光応答型光触媒皮膜の製造方法の説明図、図2は同可視光応答型光触媒皮膜の製造方法で使用される原料供給装置の説明図、図3(A)は同可視光応答型光触媒皮膜の製造方法で使用される霧化ノズルの説明図、図3(B)は霧化ノズルの内部構造を示す説明図、図4は同可視光応答型光触媒皮膜の製造方法で使用される高速溶射装置の説明図、図5(A)は本発明の第2の実施の形態に係る殺菌方法の説明図、(B)は他の殺菌方法の説明図である。
硫黄ドープ二酸化チタンの微粒子と銅の微粒子とを有する混合物を分散媒の一例である水中に分散したスラリーを霧化した霧状粒子11を溶射フレーム29(図4参照)中に投入し、フレーム温度(溶射温度)300〜700℃で高速フレーム溶射する(溶射法の一例である高速フレーム溶射法を用いる)ことにより基材12の表面に硫黄ドープ二酸化チタン皮膜10が形成される。
基材12として金属を用いる場合には、高速フレーム溶射による硫黄ドープ二酸化チタン皮膜10の形成時に、溶射皮膜からの入熱により表面の一部が融解又は軟化して融着が起こり、硫黄ドープ二酸化チタン皮膜10の接着強度が向上する。そのため、融点が300〜700℃である金属材料が好ましい。このような金属材料の具体例としては、アルミニウム(660.4℃)及び亜鉛(419.5℃)が挙げられる。或いは、これらの金属を表面にめっきしためっき鋼板等でもよく、アルミニウム亜鉛の合金がめっきされたガルバリウム鋼板等でもよい。また、アルミニウムの表面は厚さ数μm〜数十μmのアルマイト処理がされていてもよい。
基材12の形状及び大きさに特に制限はなく、装置や建造物等の構造体を構成するものであってもよい。ただし、光触媒機能を発揮するためには、基材12は構造体の表面に位置することが好ましい。
原料粉である硫黄ドープ二酸化チタン微粒子、金属銅微粒子、及び水を容器21に投入し、撹拌することによりスラリーを調製する。
硫黄ドープ二酸化チタン微粒子の直径は、例えば、0.5〜10μmであり、好ましくは1〜5μmである。硫黄ドープ二酸化チタン微粒子の直径が10μmを上回ると分散性が低下し、0.5μmを下回ると、微粒子の運動エネルギーが低下するため製膜が困難になる。
また、金属銅微粒子の直径は、例えば、0.5〜10μmであり、好ましくは5μmである。金属銅微粒子の直径が10μmを上回ると沈降や偏析が起こりやすくなり、0.5μmを下回ると、二次凝集が起こりやすくなる。
なお、硫黄ドープ二酸化チタン微粒子及び金属銅微粒子の直径は、動的光散乱法等の公知の方法を用いて測定される。
また、ノニオン系又はアニオン系の界面活性剤を分散剤として混合物に添加してもよい。好ましい界面活性剤としては、例えば、ポリカルボン酸系高分子界面活性剤等のアニオン系高分子界面活性剤が挙げられる。界面活性剤の添加量は、硫黄ドープ二酸化チタン微粒子及び金属銅微粒子の0.5〜3質量%程度が好ましい。
更に、分散媒として水の代わりにアルコール(有機溶液の一例)を使用することも可能であり、また水とアルコールとの混合液を使用することも可能である。
この霧化ノズル24は、ほぼ円筒状となったものであり、一方側には圧搾空気が吹き込まれる空気流入口25が設けられ、他方側には霧化した霧状粒子を噴出する排出口26が設けられ、側部にはスラリーが流入するスラリー流入口27が設けられている。
この霧化ノズル24内部の霧化室28内に、スラリー流入口27を介して流入したスラリーを供給すると共に、この混合液に対し空気流入口25を介して流入した圧搾空気を吹き付け、混合液を霧状にする。霧状粒子11は、排出口26から排出され、溶射フレーム(火炎)29を形成する溶射装置30の溶射原料入口(図4参照)へ供給される。
このように、溶射装置30への搬送過程、即ち溶射フレーム29への投入前にスラリーを霧化することで、原料微粒子である硫黄ドープ二酸化チタン微粒子及び金属銅微粒子の凝集を抑制、更には防止して、溶射フレーム29まで所定量ずつ安定に供給し、霧状粒子11を溶射できる。また、原料微粒子と共に供給された水の蒸発潜熱により、溶射フレーム29の温度を300〜700℃の低温に保つことができる。
図4に示すように、溶射装置30は、高圧燃焼支援ガス(O2+空気)及びガス燃料によって形成された高速の溶射フレーム29と共に、溶射原料(霧化ノズル24から排出された霧状粒子11)を基材12に対して噴出して皮膜10を形成する溶射ガン(溶射ガンバレル)31を備えている。
使用することができる可視光源は特に制限されないが、硫黄ドープ二酸化チタンが高い吸光係数を有する500nmの発光強度が高いものが好ましい。可視光源の具体例としては、蛍光灯、白熱電球、ハロゲンランプ、白色、青色、緑色等のLED(発光ダイオード)、半導体レーザー、エレクトロルミネッセンス光源等や、太陽光(自然光)が挙げられる。
硫黄ドープ二酸化チタン皮膜10が形成される衛生部材には、抗菌性を必要とする什器類並びに建材に用いられる部材があり、家庭用、業務用を問わず、任意の材質の什器類、建材等が挙げられる。
また、衛生部材が用いられる家庭用の建材の一例としては、タイル、壁紙等の屋内用建材等が挙げられる。
衛生部材が用いられる業務用の什器類の一例としては、医療用設備で用いられる寝台、診断及び手術用機器及び器具、福祉施設等で用いられる浴槽、流し台、洗面台及び便器等の衛生陶器、台所用品、洗面用品、浴室用品、洗濯用品、電話機、家電用リモートコントローラ等食品製造装置、業務用厨房設備、公共交通機関、公共施設及び福祉施設等の手すり、座席その他の内装用品等が挙げられる。
また、衛生部材が用いられる業務用施設の建材の一例としては、医療用施設、食品製造現場、公共交通機関、公共施設及び福祉施設等の内装用品等が挙げられる。
殺菌対象物に特に限定はなく、抗菌性を有する水溶液に接触させることが可能な任意の物体に本方法を適用することができる。硫黄ドープ二酸化チタン皮膜10が形成された衛生部材そのものの殺菌に、本殺菌方法を適用してもよい。
殺菌の対象となる微生物についても特に限定されず、例えば、グラム陽性菌、グラム陰性菌等の細菌類、真菌類等が挙げられる。
殺菌の対象となる種子に特に制限はないが、一例として、カイワレダイコン、モヤシ等の、水耕栽培により栽培される野菜の種子が挙げられる。
図5(A)に示すように、深さが浅い容器40(例えば、シャーレ)内の底に硫黄ドープ二酸化チタン皮膜10を配置し、その表面に種子41を配置する。そして、容器40内に抗菌性を有する水溶液42を供給し、この水溶液42中に、硫黄ドープ二酸化チタン皮膜10と種子を浸漬させる。
これにより、容器40の上方に配置された光源43から、硫黄ドープ二酸化チタン皮膜10に可視光を照射して、水溶液42及び光触媒反応の作用により、殺菌、更には滅菌を行うことができる。なお、ここでは、二酸化チタン皮膜10、容器40、水溶液42、及び光源43が、殺菌装置を構成する。
これにより、容器44の上方に配置された光源43から、硫黄ドープ二酸化チタン皮膜10に可視光を照射して、水溶液42及び光触媒反応の作用により、殺菌、更には滅菌を行うことができる。なお、ここでは、二酸化チタン皮膜10、容器44、水溶液42、及び光源43が、殺菌装置を構成する。
以上の方法では、硫黄ドープ二酸化チタン皮膜10を使用するに際し、抗菌性を有する水溶液42を用いているが、この水溶液42を使用することなく、殺菌対象物に接触又は近接配置させても、本発明の作用効果は得られる。この場合、水溶液42を除いたものが殺菌装置を構成する。
チオ尿素とチタンテトライソプロポキシド(Ti(OiPr)4)とをエタノール中で混合した。得られた溶液を減圧濃縮すると、スラリー状の混合物が得られた。これを室温で乾燥し、得られた粉末を空気中400〜600℃で焼成することにより、黄色粉末状の硫黄ドープ二酸化チタン(以下「S−TiO2」という)を得た。
原料微粒子10質量部、水90質量部、及びポリカルボン酸型高分子界面活性剤(花王製ポイズ532A)0.1質量部を混合し、超音波照射器で超音波照射を行い、均一なスラリーを得た。
スラリーの製造に用いた原料微粒子を表1に示す。
上記(2)で得られたスラリーを、スラリーポンプを介して一定流量で霧化装置(霧化ノズル)に供給した。霧化装置に圧縮空気と高圧窒素ガスの混合ガスを供給してアトマイズした。このようにして得られたアトマイズ粉(霧状粒子)を溶射装置に供給し、フレーム温度600℃で、アルミニウム試験片(15mm×70mm×6mmt、20mm×20mm×6mmt、又は55mm×55mm×6mmt)の表面に高速フレーム溶射し、溶射皮膜を形成した。溶射皮膜を形成後、試験片をアセトンで洗浄し風乾した。
以下、表1のNo.X(Xは、1〜10の整数)に示す原料微粒子を用いて形成された溶射皮膜を、表1の番号を用いて「溶射皮膜No.X」と略称する。
光触媒活性の評価に広く用いられているメチレンブルーは、可視光(波長664nm)の照射により分解することが知られているので、可視光領域に吸収を有しない2−プロパノールを用いて、溶射皮膜No.1〜7による光触媒分解試験を行った。
2−プロパノールは、下記の反応式に示す光触媒酸化を受けてアセトンを生じる。
CH3CH(OH)CH3 → CH3COCH3+2(H)
結果は、下記の表2に示すとおりである。なお、「N.D.」は、アセトン濃度がガスクロマトグラフィ法による検出限界以下であったことを示す。
S−TiO2を原料とする溶射皮膜No.5及びS−TiO2とWO3とを複合化した溶射皮膜No.6については、両者とも可視光の照射により光触媒活性を示すことが確認された。なお、溶射皮膜No.6の方が高い光触媒活性を示したのは、WO3との複合化による溶射被膜の厚膜化が原因であると考えられる。
窒素ドープTiO2を原料とする溶射皮膜No.7は、可視光の照射により光触媒活性を示さなかったが、溶射時の熱によって不活性化したと考えられる。
検定菌として、Escherichia Coli IFO 3972(以下「E.Coli」と略称する)を使用した。1L三角フラスコにニュートリエント・ブロス培地(NB培地)250mLを取り、オートクレーブ処理(121℃、20分)により滅菌した後、E.Coliを接種し、37℃で24時間振とう培養した。培養液を遠心分離(4200rpm、10分間)して上清を除去した後、滅菌水を添加して、細菌濃度約1.0×106CFU(コロニー形成単位)/mLのE.Coli懸濁液を調製した。
溶射皮膜No.5、No.8、及びNo.9が形成されたアルミニウム試験片、(20mm×20mm×6mmt)及びブランクとして溶射皮膜が形成されていない同一サイズのアルミニウム板を用意し、紫外線を3時間照射して滅菌した。
滅菌したシャーレ(直径30mm)に、滅菌した試験片及びブランクをそれぞれ取り、E.Coli懸濁液各3mLを加えた。これらのシャーレに蓋をし、蛍光灯照射下(照度1200lux)30℃で放置した。照射開始から24時間経過後に、コロニーカウント法により残存細菌数を計測した。
結果は、下記の表3に示すとおりである。
(5)と同様の方法により、細菌濃度約1.0×106CFU(コロニー形成単位)/mLのE.Coli懸濁液を調製した。
溶射皮膜No.1、No.5、No.9、及びNo.10が形成されたアルミニウム試験片、(55mm×55mm×6mmt)及びブランクとして溶射皮膜が形成されていない同一サイズのアルミニウム板を用意し、紫外線を3時間照射して滅菌した。
滅菌したシャーレ(直径30mm)に、滅菌した試験片及びブランクをそれぞれ取り、E.Coli懸濁液各30mLを加えた。これらのシャーレに蓋をし、蛍光灯照射下(照度1700lux)30℃で放置した。照射開始から5分、10分、30分、及び60分経過後に、コロニーカウント法により残存細菌数を計測した。
結果は、図6に示すとおりである。
溶射皮膜No.9の観測結果から、S−TiO2に銅を配合した溶射皮膜において、光触媒活性との相乗効果により抗菌活性は更に向上し、5分後にはE.Coliの生菌が観測されなくなるほど強力な抗菌活性を示すことがわかる。
(5)と同様の方法により、細菌濃度約1.0×107CFU(コロニー形成単位)/mLのE.Coli懸濁液を調製した。カイワレダイコンの種子を、E.Coli懸濁液200mLに5分間浸漬後種子を取り出し、40℃の乾燥機で、浸漬前の含水量になるまで乾燥したものを接種種子として使用した。
抗菌性を有する水溶液として、次亜塩素酸ナトリウム水溶液(500〜5000ppm)、及び殺菌作用を有することが知られているビワ種子抽出物水溶液(2006年6月に収穫した長崎県産茂木ビワの種子を水洗後、破砕機により微粉末化し、滅菌水中25℃で24時間抽出した)(50〜300mg/mL)を調製した。
抗菌性を有する水溶液又は滅菌水(ブランク)は、同一のものを2検体ずつ調製し、一方には溶射皮膜No.9が形成された試験片を入れた。接種種子を加えた後、蛍光灯で照射(照度950lux)しながら12時間放置した。接種種子を取り出し、滅菌水20mL中、22±1℃の暗所で4日間培養後、E.Coliの生菌数、発芽率及び発芽したカイワレダイコンの全長を測定した。
結果は、表4に示すとおりである。
濃度100mg/mLのビワ種子抽出物水溶液及び溶射皮膜No.9が形成された試験片をそれぞれ単独で用いた場合(エントリー2、3)には、12時間の処理時間では十分に生菌数を減少させることができなかった。
しかし、溶射皮膜No.9が形成された試験片の存在下で抗菌性を有する水溶液としてビワ種子抽出物水溶液を用いた場合(エントリー4)は、生菌数が検出限界以下に低下していたにもかかわらず、高い発芽率(90%)を示すと共に、発芽後のカイワレダイコンの成長にも殆ど影響が見られなかった。このことから、ビワ種子抽出物水溶液を可視光応答型光触媒と組み合わせて使用することにより、カイワレダイコンの発芽や成長に悪影響を及ぼすことなく、相乗効果により殺菌効率を大きく向上させていることがわかる。
なお、表4には示していないが、抗菌性を有する水溶液として次亜塩素酸ナトリウム水溶液を使用した試料については、溶射皮膜No.9の存否に関わりなく、生菌数の減少が見られたものの、エントリー4では観測されなかった、発芽率やカイワレダイコンの全長の低下も併せて観測された。
溶射皮膜No.9の非存在下で次亜塩素酸ナトリウム水溶液を用いて殺菌処理を行った場合、発芽率が60%以下に低下してしまうことが確認された。次亜塩素酸ナトリウム濃度を低下させたり、処理時間を短縮することにより発芽率の改善を試みたところ、殺菌効果が失われる程濃度を低下させたにもかかわらず発芽率については改善が見られなかった。
溶射皮膜No.9の非存在下でビワ種子抽出物水溶液を用いて殺菌処理を行った場合、ビワ種子抽出物の濃度が150mg/mLである場合に(図7中の点a)、大腸菌数が最低(検出限界以下)となり、発芽率の顕著な低下が見られないものの、発芽後のカイワレダイコンの全長は、約2.5cmと短くなった。
これらの結果より、カイワレダイコンの種子の殺菌には、S−TiO2+Cu皮膜を、ビワ種子抽出物水溶液及びカイワレダイコンの種子と接触させ、可視光を照射して、ビワ種子抽出物の抗菌活性及びS−TiO2+Cuの光触媒活性の相乗効果を利用して殺菌を行うのが最も好ましいことがわかる。
(8−1)培養法
検定菌として、Escherichia Coli IFO 3972(以下、大腸菌という)と、Staphylococcus Aureus IFO 12732(以下、黄色ブドウ球菌という)を使用した。1L三角フラスコにNB培地250mLを取り、オートクレーブ処理(121℃、20分)により滅菌した後、大腸菌と黄色ブドウ球菌を接種し、これを30℃、70rpmで24時間振とう培養した。この培養液を遠心分離(4200rpm、20分間)して上清を除去した後、滅菌水を添加して、細菌濃度約1.0×106CFU(コロニー形成単位)/mLの大腸菌と黄色ブドウ球菌の各懸濁液(水溶液)を調製した。
各種試験片をアセトン洗浄し、紫外線UVで12時間照射して、微生物を排除した。そして、滅菌したシャーレ(直径90mm)に、上記滅菌した試験片及びブランク(原液)をそれぞれ取り、各懸濁液を30mLずつ加えた。これらのシャーレに蓋をし、設定温度を30℃とした明条件と暗条件の各環境下で、測定開始から5分、10分、30分、60分、120分、180分の経過時間ごとに、コロニーカウント法により残存細菌数を経時的に計測した。
(8−3−1)S−TiO2とCu併用の抗菌効果(大腸菌)の検討
試験片に、S−TiO2+Cu、S−TiO2、及びTiO2を使用し、検定菌に大腸菌を使用した。これを、設定温度が30℃の明条件(蛍光灯・照度950lux)の環境下に配置し、残存細菌数を経時的に計測した。この結果を、図8に示す。
図8から明らかなように、試験片に硫黄をドープしたTiO2を使用した場合の抗菌効果は、試験片との接触時間が180分程度で、大腸菌の減少量が4オーダー(1万分の1、以下同様)程度であった。一方、試験片にS−TiO2+Cuを使用した場合の抗菌効果は、試験片との接触時間がわずか5分程度で、大腸菌を6オーダー(100万分の1、以下同様)まで、急激に減少できることを確認できた。
試験片に、表面のCu存在比が1質量%〜20質量%となるように調整したS−TiO2+Cuを使用し、検定菌に大腸菌を使用した。
図9に示すように、設定温度が30℃の明条件(蛍光灯・照度950lux)の環境下では、S−TiO2中のCu存在比が4質量%、5質量%、7質量%の試験片は、試験片との接触時間が5分程度で、大腸菌の減少量が6オーダー程度であった。なお、図9において、Cu存在比が4質量%(×)と7質量%(△)は、5質量%(■)と同様の挙動を示している。また、10質量%の試験片は、試験片との接触時間が10分程度で、大腸菌の減少量が6オーダー程度であった。なお、S−TiO2中のCu存在比が12質量%以上の試験片と3質量%以下の試験片では、抗菌機能性の低下が認められた。
一方、暗条件では、図10に示すように、全く抗菌効果が認められなかった。
上記した大腸菌はグラム陰性菌であり、細胞壁が10nm程度と薄いのが特徴である。これに対して、グラム陽性菌はペプチドグリカン層に覆われ、細胞壁が厚い構造をとっていることから、このような検定菌として黄色ブドウ球菌を用い、同様に抗菌効果を調べた。
図11に示すように、S−TiO2中のCu存在比が4質量%、7質量%、10質量%の試験片は、試験片との接触時間が5分程度で、黄色ブドウ球菌の減少量が6オーダー程度であった。なお、図11において、Cu存在比が4質量%(×)と7質量%(△)は、10質量%(▲)と同様の挙動を示している。また、5質量%の試験片は、試験片との接触時間が10分程度で、黄色ブドウ球菌の減少量が6オーダー程度であった。なお、S−TiO2中のCu存在比が12質量%以上の試験片と3質量%以下の試験片では、抗菌機能性の低下が認められた。
一方、暗条件では、図12に示すように、全く抗菌効果が認められなかった。
検定菌に大腸菌と黄色ブドウ球菌をそれぞれ用い、蛍光灯で照度1700luxと650(600〜700)luxにおける抗菌効果を調べた。この大腸菌の結果を図13に、黄色ブドウ球菌の結果を図14に、それぞれ示す。
図13、図14から明らかなように、光強度が650luxに低下したときでも、試験片との接触時間が60分以上であれば、大腸菌と黄色ブドウ球菌のいずれも、その減少量が6オーダー程度の抗菌効果があることを確認できた。
従って、照度が600ルックス以上の蛍光灯を可視光の発光源として使用する場合、その照射時間を60分以上とすることで、十分な抗菌効果が得られる。
銅以外にも、抗菌効果のあることで知られている銀やニッケルを、同じくS−TiO2に10質量%加えて、抗菌効果の比較を行った。大腸菌の結果を図15に、黄色ブドウ球菌の結果を図16に、それぞれ示す。なお、図15、図16は、それぞれ設定温度が30℃の明条件(蛍光灯・照度950lux)と暗条件の各環境下で試験を行った結果である。
図15、図16から明らかなように、明条件において、S−TiO2に銀又はニッケルを混合した場合、銅の結果(5分で6オーダー)には、はるかに及ばない結果であったが、試験片との接触時間が120分程度で、その減少量が6オーダー程度の抗菌効果が認められた。
一方、暗条件では、いずれの場合も抗菌効果が認められなかった。
一般的に利用されている塩素の殺菌効果の結果を、図17、図18にそれぞれ示す。なお、図17は、検定菌として大腸菌を使用した場合の結果であり、図18は検定菌として黄色ブドウ球菌を使用した場合の結果である。
この試験は、前記した本願発明のS−TiO2とCu併用の抗菌効果と同様の結果、即ち、5分程度で生菌数を0にするために、塩素濃度をどの程度まで上昇させる必要があるのかを検討したものである。このため、図17、図18においては、塩素濃度を、0mg/L、0.05mg/L、0.1mg/L、0.2mg/L、0.4mg/L、及び0.8mg/Lにそれぞれ調整した場合の生菌数を検討した。
また、図18から明らかなように、検定菌として黄色ブドウ球菌を使用した場合、本願発明と同程度の抗菌効果を得るには、塩素濃度を0.8mg/L以上とする必要があることが分かった。
なお、通常の水道水では、塩素濃度が0.2mg/L程度であることから、本願発明と同程度の抗菌効果を得るには、塩素濃度を非常に高める必要があることが分かった。
以上のことから、本願発明の可視光応答型光触媒皮膜は、従来法と比較して殺菌効果を非常に高めることができることを確認できた。
例えば、前記実施の形態の可視光応答型光触媒皮膜において、可視光応答型光触媒として硫黄ドープ二酸化チタンを用いたが、窒素原子又は炭素原子をドープした二酸化チタン等の他の材料を用いてもよい。
また、前記実施の形態に係る可視光応答型光触媒皮膜の製造方法においては高速溶射フレーム法を用いたが、可視光応答型光触媒と抗菌性を有する金属とを含むエアロゾル状の微粒子を、一定の温度で基材に噴射するのにコールドスプレー法を用いてもよい。コールドスプレー法においては、原料微粒子をより低温下(例えば、200℃)で、ある一定速度(例えば、500m/秒)の高速で基材に噴射することにより製膜を行う方法である。原料微粒子への入熱量が少ないので、二酸化チタン結晶格子にドープした原子の消失を抑制できる。
これらの金属のうち、比較的融点の低い亜鉛(419.5℃)、アルミニウム(660.4℃)、銀(961℃)、及び銅(1083℃)は、可視光応答型溶射皮膜のバインダーとしても作用するので、その機械的強度及び耐剥離強度を向上させる効果も有している。
Claims (4)
- 硫黄原子を結晶格子中にドープした二酸化チタンを含む可視光応答型光触媒の微粒子と、抗菌性を有する銅系又は銀系の金属の微粒子とを含む混合物を原料として、該原料を水中に分散させたスラリーとし、該スラリーを溶射法を用いて基材の表面に成膜した可視光応答型光触媒皮膜であって、前記溶射法がフレーム温度300〜700℃(700℃を除く)の高速フレーム溶射法であり、前記スラリーは前記可視光応答型光触媒の微粒子を1〜30質量%含み、更に、前記可視光応答型光触媒の微粒子の直径は、0.5〜10μmであることを特徴とする可視光応答型光触媒皮膜。
- 請求項1記載の可視光応答型光触媒皮膜において、前記金属は銅であって、前記スラリーは、前記金属の微粒子を1〜30質量%を含み、しかも、前記金属の微粒子の直径は、0.5〜10μmであることを特徴とする可視光応答型光触媒皮膜。
- 請求項1記載の可視光応答型光触媒皮膜において、前記基材の融点が300〜700℃であることを特徴とする可視光応答型光触媒皮膜。
- 請求項1記載の可視光応答型光触媒皮膜において、前記基材は融点が300〜700℃である金属を表面にめっきした鋼板であることを特徴とする可視光応答型光触媒皮膜。
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