JP4928853B2 - キウイ類検出用プライマーセット - Google Patents
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Description
(1) マタタビ属植物のリボソームRNA遺伝子のITS-1領域における、マタタビ属植物に特異的な塩基配列に基づいて設計した一対のオリゴヌクレオチドから構成される、キウイ類検出用プライマーセット。
(2) 下記の配列番号1、2、又は3に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドの1種又は2種以上の混合物と、配列番号4に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとから構成される、マタタビを除くキウイ類検出用プライマーセット(但し、配列番号3に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号4に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとから構成されるものは除く)。
5'-CGGGTGTGCTCGTGCTG-3' (配列番号1)
5'-CGGGTGTGCTCGTGTTG-3' (配列番号2)
5'-CGGGTGTGCTCGTGCCG-3' (配列番号3)
5'-CTTGTTCAAGTTCCTTGACGCG-3' (配列番号4)
(3) 下記の配列番号5に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと、配列番号6に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとから構成される、キウイ類検出用プライマーセット。
5'-GTGACACTCTCATTCCCCG-3' (配列番号5)
5'-TTGCATTCTTGTTCAAGTTCCTTGA-3' (配列番号6)
(4) 試料より抽出したDNAを鋳型とし、(1)〜(3)のいずれかに記載のプライマーセットを用いてPCRを行い、該PCRにより得られた増幅産物の有無を検出することを特徴とする、キウイ類の検出方法。
(5) (1)〜(3)のいずれかに記載のプライマーセットを含む、キウイ類検出用キット。
(1) ITS(Internal Trascribed Spacer)-1領域のアラインメント
マタタビ属(Actinidia属)には、キウイフルーツ(A. deliciosa, A. chinensis)のほか、その近縁種であるサルナシ(A. arguta)、シマサルナシ(A. rufa)、マタタビ(A. polygama)等が存在する。これらのうち、主に食用とされているのは、キウイフルーツとサルナシであり、キウイフルーツとサルナシの掛け合わせ品種もまた開発されている。また、シマサルナシは、キウイフルーツの近縁種であり、ジャム等で一部使用されているとの情報もある。従って、本実施例においては、主に食用とされ、掛け合わせによる品種改良が盛んなキウイフルーツとサルナシ、シマサルナシを少なくとも検出できるプライマーセットを設計することとした。
以下の設計方法、設計基準に基づいてプライマーの設計、選択を行った。
(a) 検知対象としている種や属に共通で、かつ他の果物と区別可能な塩基を3’末端塩基とする。
(b) プライマーとテンプレートDNA配列との相同性が全体的に高く、特に3’側が高い配列とする。
(c) Tm値が60℃付近に設定できる領域を選択する。
(d) プライマーはダイマーや立体構造を形成しないこととする。
(e) PCR増幅産物が100bp程度とする。
F123: 5'-CGGGTGTGCTCGTGCTG-3' (配列番号1)
: 5'-CGGGTGTGCTCGTGTTG-3' (配列番号2)
: 5'-CGGGTGTGCTCGTGCCG-3' (配列番号3)
R178: 5'-CTTGTTCAAGTTCCTTGACGCG-3' (配列番号4)
プライマーセットB(増幅産物74 bp)
F151: 5'-GTGACACTCTCATTCCCCG-3' (配列番号5)
R182: 5'-TTGCATTCTTGTTCAAGTTCCTTGA-3' (配列番号6)
プライマーセットA(配列番号1,2,3のオリゴヌクレオチド混合物と配列番号4のオリゴヌクレオチド、配列番号1のオリゴヌクレオチドと配列番号4のオリゴヌクレオチド、配列番号2のオリゴヌクレオチドと配列番号4のオリゴヌクレオチド及び配列番号3のオリゴヌクレオチドと配列番号4のオリゴヌクレオチドの4プライマーセット)、及びプライマーセットB(配列番号5のオリゴヌクレオチドと配列番号6のオリゴヌクレオチド)について、Amplify 1.0によるPCRシミュレーションを行い、キウイ類に特異的な増幅産物が得られるかどうかを確認した。塩基配列としてマタタビ属植物(キウイフルーツ、サルナシ、シマサルナシ、マタタビ等)、その他の果物及び穀物のITS配列を用いた。結果を下記表1および2に示す(表中、Accession No.:GenBankで取得したNo.、「H」:実際のシークエンスで得られた配列、Weight:増幅産物が得られる可能性の6段階評価(最大6、最小1)、「-」:増幅産物が得られないものを示す。)
(1) PCRテンプレートDNAの抽出
[サンプル]
キウイ類:キウイフルーツ(Hayward、Hort16A)(果肉)、サルナシ(Issai、Baby kiwi)(果肉)、マタタビ(果肉)
その他の果物類:アロエ(果肉)、パイナップル(果肉)、パパイヤ(果肉)、オレンジ(果肉)、ミカン(果肉)、メロン(果肉)、カキ(種)、イチジク(果肉)、リンゴ(種)、マンゴー(果肉)、バナナ(果肉)、アボカド(果肉)、アンズ(果肉)、サクランボ(葉)、ウメ(種)、モモ(果肉)、プルーン(果肉)、洋ナシ(種)、ラズベリー(果肉)、イチゴ、ブルーベリー(種)、ブドウ(種)
主要穀物:コメ、トウモロコシ、コムギ、ダイズ
上記サンプルのうち、リンゴやモモなどの、加工品として使用する際に皮を剥くと考えられたものについては、皮を剥いで試験に用いた。また、イチゴ、ブルーベリーなどの、加工品として使用する際に皮を剥かないと考えられたものついてはそのまま試験に用いた。
CP03-5' :5'-CGG ACG AGA ATA AAG ATA GAG T-3’(配列番号7)
CP03-3’:5'-TTT TGG GGA TAG AGG GAC TTG A-3’(配列番号8)
上記のようにしてサンプルから抽出したDNAを、PCRのテンプレートとして各反応液(tubeあたり)のDNA量が50ngDNAになるように添加し、前記2組のプライマーセットA(配列番号1,2,3のオリゴヌクレオチドの混合物と配列番号4のオリゴヌクレオチド)、及びプライマーセットB(配列番号5のオリゴヌクレオチドと配列番号6のオリゴヌクレオチド)を用いてPCR(アニーリング温度T:60℃、サイクル数N:40)を行った。
PCR反応は、AmpliTaqGold(Applied Biosystems社製)、0.2mlチューブ、GeneAmp PCR System2400,9600(PerkinElmer社製)を用い、下記表3に示す条件にて行った。
PCR増幅産物のアガロースゲル電気泳動図を図1及び2に示す。プライマーセットAでは、マタタビを除くキウイ類で約92bpの標的増幅産物が確認できたが、数種のその他の果物のサンプル(リンゴ、マンゴー、ミカン)で非標的増幅産物が見られた。しかしながら、標的増幅産物とはバンドの位置が異なるため、特異性は確保されると判断した(図1)。また、プライマーセットBでは、キウイ類で約74bpの標的増幅産物が確認でき、その他のサンプル(その他の果物、穀物)について増幅産物は得られず、特異性が確認できた(図2)。
サンプルはキウイフルーツ(Hayward、Hort16A)、サルナシ(Issai)、サルナシ(Baby kiwi)、マタタビを用い、50〜500fg DNA/tubeを検出できるかどうかを指標にして評価した。上記と同様にしてサンプルから抽出・調製した20ng/μlDNAを5ng/μlサケ精子DNA緩衝液で段階希釈して、DNAテンプレートとし、前記2組のプライマーセットA(配列番号1,2,3のオリゴヌクレオチドの混合物と配列番号4のオリゴヌクレオチド)、及びプライマーセットB(配列番号5のオリゴヌクレオチドと配列番号6のオリゴヌクレオチド)を用いてPCRを行った。DNA量は1反応液 (25μl)あたり500pg、5pg、500fg、50fg、5fgに調製した。PCR反応は、前記表3と同じ条件で行った。
上記プライマーセットの内、プライマーセットBについて、アニーリング温度(T)、サイクル数(N)を変更し、増幅条件を緩くすることによって感度が向上するかどうかを確認した。
PCRのアニーリング温度(T)を60℃から58℃に、サイクル数(N)を40から50に変更する以外は、実施例2と同様のサンプル、反応条件にてPCRを行い、プライマーの特異性評価及び感度評価を行った。特異性評価試験結果を図5に、また、感度評価試験結果を図6に示す。本条件では、感度の最も悪かったサルナシ(Baby kiwi)に対して50fgの感度が得られた(図6)。また、特異性も確認できたが(図5)、アボカド、アロエ、メロンなどに非標的増幅産物が出現した。
PCRのアニーリング温度(T)を60℃のままで、サイクル数(N)を40から50に変更にする以外は、実施例2と同様のサンプル、反応条件にてPCRを行い、プライマーの特異性評価及び感度評価を行った。特異性評価試験結果を図7に、また、感度評価試験結果を図8に示す。本条件では、感度が最も悪かったサルナシ(Baby kiwi)で50fgの感度が得られた(図8)。また、特異性も確認でき、しかも非標的増幅産物は減少した(図7)。再現性試験では、8回行った感度テストはすべてのサンプルで、8回とも50fgDNA/tubeが得られた。3回行った特異性については、同一抽出DNAを3回PCRに供したうち、1回でオレンジ、イチゴ、カキで非標的増幅産物が確認されたが、バンドの位置が異なるため、特異性はあると判断した。
(1) PCRテンプレートDNAの抽出
[サンプル]
キウイフルーツ同士の掛け合わせ品種「さぬきゴールド」、サルナシとキウイフルーツの掛け合わせ品種「香粋」、「信山」の3種
[DNA抽出]
上記3種を使用すること以外は実施例2と同一の方法でDNAを抽出した。
実施例2と同様の方法および条件でPCRを行った。次に、PCR増幅産物を2%アガロースゲル電気泳動によって分離し、検出を行った。PCR増幅産物のアガロースゲル電気泳動図を図9及び図10に示す。
プライマーセットAでは、キウイフルーツと同様に前記各サンプルで約92dpの標的増幅産物が確認された(図9)。また、プライマーセットBでは、キウイフルーツと同様に前記各サンプルで約74dpの標的増幅産物が確認された(図10)。
前記サンプルに対し、50〜500fg DNA/tubeを検出できるかどうかを指標にして、実施例2と同様の方法でプライマーの感度評価を行った。その結果、プライマーセットAでは、「香粋」、「さぬきゴールド」、「信山」共に50fg〜500fgであった(図9)。一方、プライマーセットBでは、前記3種共に5fgの感度が得られた(図10)。
Claims (4)
- 試料より抽出したDNAを鋳型とし、マタタビ属植物のリボソームRNA遺伝子のITS-1領域における、マタタビ属植物に特異的な塩基配列に基づいて設計した一対のオリゴヌクレオチドから構成されるプライマーセットを用いてPCRを行い、該PCRにより得られた標的増幅産物の有無を検出することを特徴とする、マタタビ属植物の検出方法であって、
(i) 前記マタタビ属植物が、キウイフルーツ、サルナシ、シマサルナシ、又はキウイフルーツとサルナシの掛け合わせ品種の場合は、配列番号1、2、3に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドの混合物と配列番号4に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとから構成されるプライマーセットAを使用してPCRを行い、該PCRにより得られた92bpの標的増幅産物の有無を検出すること、
(ii) 前記マタタビ属植物がキウイフルーツ、サルナシ、シマサルナシ、マタタビ、又はキウイフルーツとサルナシの掛け合わせ品種の場合は、配列番号5に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと配列番号6に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとから構成されるプライマーセットBを使用してPCRを行い、該PCRにより得られた74bpの標的増幅産物の有無を検出すること、
を特徴とする、上記検出方法。 - 配列番号1、2、3に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドの混合物と、配列番号4に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとから構成される、キウイフルーツ、サルナシ、シマサルナシ、及びキウイフルーツとサルナシの掛け合わせ品種から成る群から選択される1種以上のマタタビ属植物検出用プライマーセットA。
- 配列番号5に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと、配列番号6に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチドとから構成される、キウイフルーツ、サルナシ、シマサルナシ、マタタビ、及びキウイフルーツとサルナシの掛け合わせ品種から成る群から選択される1種以上のマタタビ属植物検出用プライマーセットB。
- 請求項2または3に記載のプライマーセットを含む、マタタビ属植物検出用キット。
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