JP4716873B2 - 知的障害の改善剤 - Google Patents
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Description
これまでにHGFは肝細胞に加え様々な細胞に対して、増殖促進、細胞遊走促進、形態形成誘導、細胞死防止など様々な生物活性を発揮することが明らかにされている(非特許文献3−6参照。)。
HGFの生物活性はそのレセプター(受容体)であるc−Metチロシンキナーゼを介して発揮され、HGFは多彩な生物活性を介して様々な障害に対する各種組織の修復及び保護作用機能を担っている。
HGFのもつ組織再生、保護機能の一つとして、血管新生促進活性が挙げられる。HGFは血管内皮細胞の増殖ならびに遊走を促進するとともにインビボ(in vivo)においても強い血管新生誘導活性を有している(非特許文献7−10参照。)。
また、HGFは血管内皮細胞の細胞死を抑制する活性を有している(例えば、非特許文献11−13参照。)。
さらに、HGFはラットの脳虚血において、脳内の梗塞領域を減少し、梗塞部の血管分布の減少を抑制することが報告されている(非特許文献20参照。)。
しかし、これら文献は、虚血後の神経細胞の壊死などについての報告であり、記憶力や学習能力などの脳機能に基づく知的障害を検討したものではない。
また、脳血液関門の破綻などによる脳血管透過性亢進など、HGFの血管透過性亢進との関連を示す報告もない。
(1) 肝細胞増殖因子を含有する脳機能の低下に基づく知的障害の改善剤、
(2) 知的障害が学習能力の低下である前記(1)に記載の改善剤、
(3) 知的障害が記憶能力の低下である前記(1)に記載の改善剤。
(4) 知的障害が痴呆症である前記(1)に記載の改善剤。
(5) 肝細胞増殖因子を含有する血管透過性亢進抑制剤。
(6) 血管が脳血管である前記(5)に記載の抑制剤。
(7) 肝細胞増殖因子と薬学的に許容される添加剤を含有する、脳機能の低下に基づく知的障害を改善する組成物。
(8) 知的障害が学習能力の低下である前記(7)記載の組成物。
(9) 知的障害が記憶能力の低下である前記(7)記載の組成物。
(10) 知的障害が痴呆症である前記(7)記載の組成物。
(11) 肝細胞増殖因子と薬学的に許容される添加剤を含有する、血管透過性亢進を抑制する組成物。
(12) 血管が脳血管である前記(11)記載の組成物。
(13) 肝細胞増殖因子を哺乳動物に投与し、脳機能の低下に基づく知的障害を改善する方法。
(14) 知的障害が学習能力の低下である前記(13)記載の方法、
(15) 知的障害が記憶能力の低下である前記(13)記載の方法、
(16) 知的障害が痴呆症である前記(13)記載の方法、
(17) 肝細胞増殖因子を哺乳動物に投与し、血管透過性亢進を抑制する方法、
(18) 血管が脳血管である前記(17)記載の方法、
(19) 脳機能の低下に基づく知的障害を抑制するための医薬を製造するための肝細胞増殖因子の使用。
(20) 知的障害が学習能力の低下である前記(19)記載の使用、
(21) 知的障害が記憶能力の低下である前記(19)記載の使用、
(22) 知的障害が痴呆症である前記(19)記載の使用、
(23) 血管透過性亢進を抑制するための医薬を製造するための肝細胞増殖因子の使用、および
(24) 血管が脳血管である前記(23)記載の方法、
に関する。
さらに本発明は、HGFの投与のみならず、HGFの遺伝子を導入することからなる、脳障害により低下する知的障害又は血管透過性亢進の遺伝子治療をも包含するものである。
また、本発明の血管透過性亢進抑制剤は、脳の血液循環障害(例えば脳梗塞、脳出血、ラックネー発作、ビンスワンガー病、脳血栓症、くも膜下出血、脳血管モヤモヤ病、頚頭動脈系線維筋性形成症、脳動脈硬化症、内頸動脈閉塞症、高血圧性脳症、脳浮腫など)に基づく脳内での脳血液関門の破綻などによる脳血管透過性亢進、種々組織(内臓を含む。)における血管透過性亢進による血液漏出や浮腫、皮下出血および出血傾向などを抑制する。
さらに、本発明の血管透過性亢進抑制剤は、脳血液関門の破綻などを抑制できるので、脳への不要な物質や有害物質が入り込むことを防ぐので、前記有害物質などにより誘発される脳腫瘍や老人斑(脳の一部にβアミロイド蛋白質が沈着してできるシミ)なども抑制できる。
また本発明の血管透過性亢進とは、種々組織(例えば、脳、皮膚、内臓など)での血漿成分やその他の血液成分が漏出することをいい、例えば、脳の血液循環障害(例えば脳梗塞、脳出血、ラックネー発作、ビンスワンガー病、脳血栓症、くも膜下出血、脳血管モヤモヤ病、頚頭動脈系線維筋性形成症、脳動脈硬化症、内頸動脈閉塞症、高血圧性脳症、脳浮腫など)に基づく脳内での血漿成分やその他の血液成分の漏出などを指す。
HGF遺伝子を有効成分とする遺伝子治療剤を患者に投与する場合、常法、例えば別冊実験医学,遺伝子治療の基礎技術,羊土社,1996、別冊実験医学,遺伝子導入&発現解析実験法,羊土社,1997、日本遺伝子治療学会編遺伝子治療開発研究ハンドブック、エヌ・ティー・エス,1999などに記載の方法に従って、投与することができる。
製剤形態としては、上記の各投与形態に合った種々の公知の製剤形態をとり得ることができる。
製剤中のDNAの含量は、治療目的の疾患、患者の年齢、体重等により適宜調節することができるが、通常、本発明のDNAとして約0.0001−100mg、好ましくは約0.001−10mgである。
また、HGF遺伝子とHGFは独立して使用することもできれば、両者を併用して用いることもできる。
1.実験動物
動物は体重220−250gのウイスター(Wistar)系雄性ラットを使用した。動物は、動物管理と使用に関する指導書である実験動物の管理と使用に関する指針(National Institute of Health Guide for the Care and Use of Laboratory Animals)及び実験動物に関する指針(Guideline for Experimental Animal Care:総理府発行)に従い、飼料と水を自由に与え、恒温(23±1℃)、恒湿(55±5%)、定時照明(12時間明所、12時間暗所)の人工環境下で飼育した。
ヒト組替えDNA肝細胞増殖因子(HGF)は既法(Nakamura等, Nature 342:440-443, 1989)に従って準備し、被検試料とした。
(1)マイクロスフェア脳塞栓モデルの作製
マイクロスフェア脳塞栓モデルの作製は既存の方法(Stroke 24, 415-420 (1993)、Br. J. Pharmacol., 118, 33-40 (1996)、J. Biol. Chem., 277, 6382-6390 (2002))を一部改良し実施した。ペントバルビタール・ナトリウム(ネンブタール,アボット・ラボラトリーズ,カナダ,米国)40mg/kgを腹腔内投与してラットを麻酔後、背位に固定した。頸部正中切開後、右総頸動脈を剥離し、右外頸動脈ならびに右翼突口蓋動脈の血流を一時的に遮断した。ポリエチレン・カテーテル(3 French size, アトムメディカル株式会社,東京、日本)に接続した注射針(25G,テルモ株式会社,東京,日本)を経て、右総頸動脈内に20w/v%デキストラン溶液に懸濁した700個のマイクロスフェア(直径48μm, NEN-005, New England Nuclear Inc., Boston, USA)を注入した。注入後、針跡を外科用接着剤(アロンアルファA,三共株式会社,東京,日本)で修復し、右外頸動脈ならびに右翼突口蓋動脈の血流を再開通させ、手術野を縫合した。右外頸動脈ならびに右翼突口蓋動脈の血流遮断時間は約2分であった。また、上記と同様の手術を行い,20w/v%デキストラン溶液のみを注入したラットを偽手術群(Sham)ラットとした。
脳塞栓後のラットをHGF投与群及び溶媒(vehicle)投与群に無作為に分別した。脳室内へのHGFの持続注入は、HGF10及び30μg/動物となるよう、HGFを生理食塩水に溶解し,浸透圧ポンプ(Alzet model 2001, Alzet, CA, USA)を用いてマイクロスフェア注入後10分あるいは15時間目から右脳室内に7日間持続注入した。
空間記憶学習能試験は脳塞栓後の神経欠損症状が消失し、ラットが遊泳可能であると判断した上記(1)の脳塞栓後12日目より開始した。水迷路には直径170cm、高さ45cmの円形プールを用いた。高さ30cmまで水(23±1℃)を入れ、プール周囲の照明照度を一定にした。
プールを4象限に分け、そのうち一つの象限の水面下1.5cmの場所に透明なアクリル樹脂製プラットホーム(直径12cm)を固定した。プラットホームに対し水平軸上の反対側の象限を第1象限とし、時計回りに2、3及び4象限とした。すなわちプラットホームは第3象限内の一定の位置に設置した。プールの周囲には視覚的指標となる幾何学的模様を設置し、これらの配置は実験期間中一定にした。
ラットをプール内壁面に向けて水中に静かに放った。ラットの入水場所はプラットホームが存在する象限を除いた三つの象限のいずれかをランダムに選んだ。
プールの真上(レンズ位置は底面から2m10cm上空)にはCCDカメラ(AXIS 60, Cosmicar TV lens 径4.8mm, Artist, Japan)を設置し、ラットの遊泳起動の映像信号をモニターした。この映像信号をコンピュータに入力し、解析ソフトウエア(TARGET/2, Neuroscience, 9801, NEC, Japan)を用い、プラットホームに達するまでの遊泳時間(逃避潜時,escape latency)及び遊泳軌道全試行を解析した。遊泳時間は最大180秒とし、ラットが180秒以内にプラットホームに達しない場合は、強制的にラットをプラットホームに移し、その場に30秒留まらせた後、プールから取り出した。以上の操作を1試行(trial)とした。
空間記憶学習能試験は1日当たりのtrial数を3回(1 session)とし、1時間のインターバルをおいて行った。試験は3日間(脳塞栓後12−14日目)連続して延べ9回行い、session間及びtrial間でラットの入水位置をランダムに変更した。
脳塞栓後21及び28日目に過去の記憶が保持されているのかを調べる目的で記憶保持試験を試行した。保持試験は脳塞栓後14日目,すなわち空間記憶学習能試験3日目と同様の遊泳操作を行った。
表1−3はラットの空間記憶学習能を検討するために使用した水迷路試験(water maze test)の逃避潜時(escape latency)の結果を示す。
表1は、手術後12、13、14日目の空間記憶学習能を示す。偽手術群では、trialが増すごと逃避潜時が短縮し、ラットが記憶学習能を有することを示した。脳マイクロスフェア塞栓群の逃避潜時は術後12日目の2回目、3回目試行、及び翌日、翌々日の試行でも短縮することはほとんど無かったが、HGF投与群では用量依存的に逃避潜時が短縮した。
なお、表中、Shamは偽手術群、MEは脳マイクロスフェア塞栓群、ME+HGF10は脳マイクロスフェア塞栓+HGF10μg投与群、ME+HGF30は脳マイクロスフェア塞栓+HGF30μg投与群を示し、各数値は平均値±標準誤差を示し、統計学的検定法として、群間比較には二元配置の分散分析Two-way ANOVAを使用した。ANOVAによる有意差が認められた場合、さらに他群間比較のため、post-hoc testとしてFisherのPLSD多重比較法を用いた。*はShamに対し5%の危険率で有意差(p < 0.05)があることを示し、# は、MEに対し5%の危険率で有意差(p < 0.05)があることを示す。以下表2および表3においても同様である。
実験動物、試料およびマイクロスフェア脳塞栓手術は実験例1と同様である。
(1)脳灌流血管の観察
脳血管の形態学的観察を行う目的でアルブミン−フルオレセインイソシアネート(albumin fluorescein isothiocyanate ;FITC−アルブミン, Sigma)を脳血管内に注入した。FITC−アルブミンの脳血管内への注入は既存の方法(Brain Res., 910, 81-93 (2001))を一部改良して行った。マイクロスフェア脳塞栓手術を施したラットにペントバルビタール・ナトリウム(ネンブタール:アボット ラボラトリーズ)40mg/kgを腹腔内投与し麻酔後、背位に固定した。頸部正中切開後、両側総頸動脈より0.1MのPBSに溶解した10mg/mLFITC−アルブミンを2.5mLシリンジに接続したポリエチレンチューブ(SP-31, Natume, Tokyo, Japan)を通してシリンジポンプ(CFV-2100, 日本光電、東京、日本)を用いて1mL/minの速度で体重1kg当たり1mL注入した。注入直後に腹部大静脈より脱血した。
脳血管の走行性を観察する目的で、FITC−アルブミンが注入された脳組織を水溶性包埋剤のOCTコンパウンドで冠状凍結ブロックを作製し、クリオスタットを用い、40μmの薄切切片を作製した。切片はスライドガラスに封入後、落射式蛍光顕微鏡にてFITCの緑色蛍光画像を観察した。
図1は脳マイクロスフェア塞栓7日目の脳冠状切片(40μm)の顕微鏡の画像解析の結果示す。脳マイクロスフェア塞栓により脳半球の約28%にFITC−アルブミン漏出が観察された。脳マイクロスフェア塞栓+HGF30μg投与群はこの漏出をほぼ完全に阻止した。このことは血液・脳関門破綻をHGFが著しく軽減すること、並びにHGFが虚血傷害に対する血管組織の保護作用を有することを意味している。
また、このことはHGFが各種脳疾患の脳血管透過性の亢進や脳以外の組織での血管透過性の亢進を抑制することを示唆しているものである。
なお、図中、Shamは偽手術群、MEは脳マイクロスフェア塞栓群、ME+HGFは脳マイクロスフェア塞栓+HGF30μg投与群を示し、各カラムは平均値±標準誤差を示し、統計学的検定法として、群間比較には二元配置の分散分析Two-way ANOVAを使用した。ANOVAによる有意差が認められた場合、さらに他群間比較のため、post-hoc testとしてFisherのPLSD多重比較法を用いた。*はShamに対し5%の危険率で有意差(p < 0.05)があることを示し、# は、MEに対し5%の危険率で有意差(p < 0.05)があることを示す。
生理食塩水100ml中にHGF1mgを無菌的に溶解し、1mlずつバイアルに分注した後、常法に従い凍結乾燥して密封することにより凍結乾燥製剤を得る。
0.02Mリン酸緩衝液(0.15M NaCl及び0.01w/v%ポリソルベート80含有、pH7.4)100ml中にHGF1mgを無菌的に溶解し、1mlずつバイアルに分注した後、常法に従い凍結乾燥して密封することにより凍結乾燥製剤を得る。
また、本発明の血管透過性亢進抑制剤は、脳の血液循環障害(例えば脳梗塞、脳出血、ラックネー発作、ビンスワンガー病、脳血栓症、くも膜下出血、脳血管モヤモヤ病、頚頭動脈系線維筋性形成症、脳動脈硬化症、内頸動脈閉塞症、高血圧性脳症、脳浮腫など)に基づく脳内での血管透過性亢進、種々組織(内臓を含む。)における血管透過性亢進による血液漏出や浮腫、並びに皮下出血および出血傾向などの抑制剤として有用である。
さらに、本発明の血管透過性亢進抑制剤は、脳血液関門の破綻などを抑制できるので、脳への不要な物質や有害物質が入り込むことを防ぎ、前記有害物質などにより誘発される脳腫瘍や老人斑(脳の一部にβアミロイド蛋白質が沈着してできるシミ)などの抑制剤としても有用である。
Claims (3)
- 肝細胞増殖因子を含有する脳血管透過性亢進による脳浮腫の抑制剤。
- 肝細胞増殖因子と薬学的に許容される添加剤を含有する、脳血管透過性亢進による脳浮腫を抑制するための組成物。
- 脳血管透過性亢進による脳浮腫を抑制するための医薬を製造するための肝細胞増殖因子の使用。
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