JP4593608B2 - ヌクレオシド化合物の製造方法 - Google Patents

Description

本発明は、ヌクレオシドホスホリラーゼを用いたヌクレオシド化合物の製造方法に関する。各種のヌクレオシド及びそのアナログ化合物は、抗ウイルス医薬品、抗ガン医薬品やアンチセンス医薬品などの原料または原体として使用される。

ヌクレオシドホスホリラーゼはリン酸存在下でヌクレオシドのＮ−グリコシド結合を加リン酸分解する酵素の総称であり、リボヌクレオシドを例にすると次式で表される反応を触媒する。

リボヌクレオシド＋リン酸（塩）→核酸塩基＋リボース１−リン酸
プリンヌクレオシドホスホリラーゼとピリミジンヌクレオシドホスホリラーゼに大別される該酵素は、広く生物界に分布し、哺乳類、鳥類、魚類などの組織、酵母、細菌に存在する。この酵素反応は可逆的であり、逆反応を利用した各種ヌクレオシド化合物の合成が以前より知られている。

例えば、２'−デオキシリボース１−リン酸と核酸塩基（チミン、アデニンまたはグアニン）からチミジン（特開平０１−１０４１９０号公報）、２'−デオキシアデノシン（特開平１１−１３７２９０号公報）または２'−デオキシグアノシン（特開平１１−１３７２９０号公報）を製造する方法が知られている。更に、Agric., Biol., Chem., Vol.50 (1)., PP.121〜126, (1986)では、イノシンをリン酸存在下で、Enterobacter aerogenes由来のプリンヌクレオシドホスホリラーゼを用いた反応により、リボース１−リン酸とヒポキサンチンに分解した後、イオン交換樹脂で単離したリボース１−リン酸と１，２，４−トリアゾール−３−カルボキサミドより、同じくEnterobacter aerogenes由来のプリンヌクレオシドホスホリラーゼにより、抗ウイルス剤であるリバビリンを製造する技術が報告されている。

しかしながら、該酵素の逆反応を利用して、ペントース−１−リン酸またはその塩と核酸塩基よりヌクレオシド化合物を生成させる反応は平衡反応であるため、転化率が向上しないという技術的欠点を有していた。
特開平０１−１０４１９０号公報 特開平１１−１３７２９０号公報 特開平１１−１３７２９０号公報 Agric., Biol., Chem., Vol.50 (1)., PP.121〜126, (1986)

本発明が解決すべき課題は、工業的にヌクレオシド化合物を製造するに際して、高い転化率で反応を進行させ且つ簡便なる方法、および原料コストの低減化ならびに製品純度の向上に寄与する手段を提供することにある。

すなわち、本発明の目的は、ペントース−１−リン酸と核酸塩基もしくは核酸塩基アナログとを、ヌクレオシドホスホリラーゼ活性の存在下に反応させる工程を有し、同反応におけるヌクレオシド化合物の転化率が向上している簡便且つ汎用性の高いヌクレオシド化合物の製造方法を提供することにある。

本発明者等はこれら課題を解決するため鋭意検討した結果、反応液にリン酸イオンと難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンを存在させると、反応の副生成物であるリン酸イオンが難水溶性の塩として沈殿し反応系外に除外されることにより、反応の平衡がヌクレオシド化合物合成方向へ移動し、反応転化率が向上することを見出した。

更に、本発明者らは、リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンをペントース−１−リン酸の塩として反応液中に存在させることにより、上記のリン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンまたはその塩を添加した場合と同等の効果が得られることを見出した。

また、本発明者らはペントース−１−リン酸をヌクレオシドホスホリラーゼ存在下、リン酸基と核酸塩基または核酸塩基アナログとの交換反応によりヌクレオシド化合物を製造する方法において、一般的に溶解度が低く反応性の乏しい核酸塩基アナログをアルカリ金属水溶液として反応系に導入することにより、反応時の基質濃度を向上させる事が出来るため、高転化率でヌクレオシド化合物が得られることを見出した。

更に、このヌクレオシド化合物の製造に際して、アルカリ金属水溶液としてリチウムイオン或いはマグネシウムイオンを含有する金属カチオンの塩の水溶液を用いると、反応で生成するリン酸をリン酸リチウム或いはリン酸マグネシウムとして不溶化する為に、酵素反応の平衡がヌクレオシド化合物の合成側に傾くことで、従来技術では成し得なかった高選択性、高収率でヌクレオシド化合物が得られることを見出した。

また、特に、リン酸と難水溶性の塩を形成し得る金属カチオンの塩として水酸化マグネシウム等の水に難溶性である金属カチオンの塩を用いると、反応液の塩濃度が上昇しないため、反応液の上昇によってもたらされる反応速度の低下が防止されること、またそのような金属カチオンの塩は反応前に全量添加できるためマグネシウムを金属水溶液として添加する場合に比して操作が簡便になることに加えて、得られた反応液の濾過性が顕著に向上するなどの利点があることも見出した。

更に、金属カチオンの塩として水酸化マグネシウムを用いると、反応により得られる難水溶性のリン酸塩であるリン酸マグネシウムの結晶が比較的反応液のろ過に適した大きさ・形状であるため、反応終了後の反応液のろ過が迅速に行われる利点があることを本発明者らは見出した。

更に、工業的にヌクレオシド化合物を生産するためには、容積効率や精製時の回収率を向上させる必要から反応液中に高濃度にヌクレオシド化合物を蓄積させることが望ましい。上記のように反応液中に金属カチオンを存在させて反応の進行に伴って生じるリン酸イオンと反応させて難水溶性の塩として沈殿させる場合に、ヌクレオシド化合物の高蓄積濃度を得るために各成分の量を高めると、リン酸と金属カチオンが対応する難水溶性の塩を形成して沈殿するに従って反応液のｐＨが低下し過ぎると反応転化率が低くなる。この反応液のｐＨの低下による反応転化率の低下は生成されたヌクレオシド化合物の分解や酵素活性の部分的な失活などによるものと考えられる。

このような場合に、所望とする反応転化率を維持するには反応液のｐＨを調整することが好ましい。ところが、ヌクレオシド化合物の高蓄積濃度を得るために初期（反応開始時）の仕込み量を多くすると、反応の進行に伴って反応液の粘度が上昇し、さらには反応液の固化が生じる場合があった。そして、このような反応液の粘度の上昇や固化が生じると上述した所望とするｐＨ調整が困難になる。また、反応液の粘度が上昇すると反応液の混合攪拌にかかる動力が過大となり、設備の故障の原因ともなる。

本発明者らは、ヌクレオシド化合物の反応液中での高蓄積濃度を得るための仕込み量を用いた場合に、ペントース−１−リン酸、核酸塩基または核酸塩基アナログ及び金属カチオンから選択された少なくとも１種の仕込み量の全部または一部を反応開始後の所定の時期に添加することで反応液の高粘度化または固化を防止することができることを見出した。

即ち、上記の各知見に基づいて成された本願発明には以下の各態様が含まれる。
［１］ 水性反応媒体中で、ヌクレオシドホスホリラーゼ活性の存在下に、ペントース−１−リン酸と、核酸塩基または核酸塩基アナログとを、リン酸イオンと難水溶性の塩を形成する金属カチオンの塩の存在下、ｐＨを調整せずに反応させて、ヌクレオシド化合物を生成させるヌクレオシド化合物の製造方法であって、
前記金属カチオンがマグネシウムであり、水酸化マグネシウム、酸化マグネシウム、炭酸マグネシウム及び塩基性炭酸マグネシウムから選択された少なくとも１種として前記水性反応媒体中に添加される
ことを特徴とする製造方法。
［２］ 反応の際の水性反応媒体のｐＨが７．５から１０．０の範囲であることを特徴とする上記［１］記載のヌクレオシド化合物の製造方法。
［３］ 反応により得られた反応液をろ過して、反応液中の不溶性物質を除去し、ヌクレオシド化合物を含有するろ液を得る工程を有することを特徴とする上記［１］に記載のヌクレオシド化合物の製造方法。

本発明によれば、ヌクレオシドホスホリラーゼまたは該酵素活性を有する微生物を用いたペントース−１−リン酸と核酸塩基からのヌクレオシド化合物の製造において、リン酸と難水溶性塩を形成しうる金属塩を添加することで副生するリン酸が反応系から除外され、従来技術では達成されなかった反応収率の向上が達成される。また、反応液の高粘度化や固化を生じさせずにヌクレオシド化合物を高収率で効率的に生産することが可能となる。これらのことは、工業的見地から本発明は大きなコストダウンに繋がり、その意義は大きい。

核酸塩基又は核酸塩基アナログを水酸化リチウムなどのアルカリ水溶液に溶解して添加すると反応操作が簡便になる。

リン酸イオンと難水溶性の塩を形成し得る金属カチオンの塩として水酸化マグネシウムを用いると、水酸化マグネシウムの水に対する溶解度が低いため、（１）反応中に反応液のｐＨがほとんど変化しないので酵素の失活が防止される（水酸化マグネシウム以外の水溶性の金属カチオンの塩を用いると反応中に反応液のｐＨは若干アルカリ性側へと変化する）、（２）反応に伴う反応液の塩濃度の上昇がないので、塩濃度の上昇による反応阻害が防止され、加えてより高濃度の反応が可能になる、（３）金属カチオンを反応前に一括で添加可能である等の利点がある。また、金属カチオンとしてマグネシウムイオンを用いると反応終了後に反応液をろ過する工程においてそのろ過速度が顕著に向上するため工業上非常に有用である。

本発明におけるペントース−１−リン酸とは、ポリヒドロキシアルデヒドまたはポリヒドロキシケトンおよびその誘導体の１位にリン酸がエステル結合したもののことである。その代表例を挙げると、例えばリボース１−リン酸、２´−デオキシリボース１−リン酸、２´，３´−ジデオキシリボース１−リン酸、アラビノース１−リン酸などが挙げられるが、これらに限定されるものではない。

ここでいうポリヒドロキシアルデヒドまたはポリヒドロキシケトンとは、天然物由来のものとしては、Ｄ−アラビノース、Ｌ−アラビノース、Ｄ−キシロース、Ｌ−リキソーズ、Ｄ−リボースのようなアルドペントース、Ｄ−キシルロース、Ｌ−キシルロース、Ｄ−リブロースのようなケトペントース、Ｄ−２−デオキシリボース、Ｄ−２，３−ジデオキシリボースのようなデオキシ糖類を挙げることができるが、これらに限定されるものではない。

これらペントース−１−リン酸は、ヌクレオシドホスホリラーゼの作用によりヌクレオシド化合物の加リン酸分解反応を行って製造する方法（Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．Ｖｏｌ．１８４、４３７、１９５０）や、アノマー選択的な化学合成法等によっても調製することができる。

本発明に用いられる核酸塩基とはＤＮＡやＲＮＡの化合構造形式要素となっている窒素原子を含む複素環式化合物であり、ピリミジン、プリン、あるいは塩基アナログからなる群から選択された天然または非天然型の核酸塩基を示し、それら塩基はハロゲン原子、アルキル基、ハロアルキル基、アルケニル基、ハロアルケニル基、アルキニル基、アミノ基、アルキルアミノ基、水酸基、ヒドロキシアミノ基、アミノオキシ基、アルコキシ基、メルカプト基、アルキルメルカプト基、アリール基、アリールオキシ基またはシアノ基によって置換されていてもよい。

置換基としてのハロゲン原子としては、塩素、フッ素、ヨウ素、臭素が例示される。アルキル基としては、メチル基、エチル基、プロピル基などの炭素数１〜７のアルキル基が例示される。ハロアルキル基としては、フルオロメチル、ジフルオロメチル、トリフルオロメチル、ブロモメチル、ブロモエチルなどの炭素数１〜７のアルキル基を有するハロアルキル基が例示される。アルケニル基としては、ビニル、アリルなどの炭素数２〜７のアルケニル基が例示される。ハロアルケニル基としては、ブロモビニル、クロロビニルなどの炭素数２〜７のアルケニルを有するハロアルケニル基が例示される。アルキニル基としては、エチニル、プロピニルなどの炭素数２〜７のアルキニル基が例示される。アルキルアミノ基としては、メチルアミノ、エチルアミノなどの炭素数１〜７のアルキル基を有するアルキルアミノ基が例示される。アルコキシ基としては、メトキシ、エトキシなどの炭素数１〜７のアルコキシ基が例示される。アルキルメルカプト基としては、メチルメルカプト、エチルメルカプトなどの炭素数１〜７のアルキル基を有するアルキルメルカプト基が例示される。アリール基としては、フェニル基；メチルフェニル、エチルフェニルなどの炭素数１〜５のアルキル基を有するアルキルフェニル基；メトキシフェニル、エトキシフェニルなどの炭素数１〜５のアルコキシ基を有するアルコキシフェニル基；ジメチルアミノフェニル、ジエチルアミノフェニルなどの炭素数１〜５のアルキルアミノ基を有するアルキルアミノフェニル基；クロロフェニル、ブロモフェニルなどのハロゲノフェニル基などが例示される。

ピリミジン骨格を有する核酸塩基を具体的に例示すれば、シトシン、ウラシル、５−フルオロシトシン、５−フルオロウラシル、５−クロロシトシン、５−クロロウラシル、５−ブロモシトシン、５−ブロモウラシル、５−ヨ−ドシトシン、５−ヨ−ドウラシル、５−メチルシトシン、５−メチルウラシル（チミン）、５−エチルシトシン、５−エチルウラシル、５−フルオロメチルシトシン、５−フルオロウラシル、５−トリフルオロシトシン、５−トリフルオロウラシル、５−ビニルウラシル、５−ブロモビニルウラシル、５−クロロビニルウラシル、５−エチニルシトシン、５−エチニルウラシル、５−プロピニルウラシル、ピリミジン−２−オン、４−ヒドロキシアミノピリミジン−２−オン、４−アミノオキシピリミジン−２−オン、４−メトキシピリミジン−２−オン、４−アセトキシピリミジン−２−オン、４−フルオロピリミジン−２−オン、５−フルオロピリミジン−２−オンなどが挙げられる。

プリン骨格を有する核酸塩基を具体的に例示すれば、プリン、６−アミノプリン（アデニン）、６−ヒドロキシプリン、６−フルオロプリン、６−クロロプリン、６−メチルアミノプリン、６−ジメチルアミノプリン、６−トリフルオロメチルアミノプリン、６−ベンゾイルアミノプリン、６−アセチルアミノプリン、６−ヒドロキシアミノプリン、６−アミノオキシプリン、６−メトキシプリン、６−アセトキシプリン、６−ベンゾイルオキシプリン、６−メチルプリン、６−エチルプリン、６−トリフルオロメチルプリン、６−フェニルプリン、６−メルカプトプリン、６−メチルメルカプトプリン、６−アミノプリン−１−オキシド、６−ヒドロキシプリン−１−オキシド、２−アミノ−６−ヒドロキシプリン（グアニン）、２，６−ジアミノプリン、２−アミノ−６−クロロプリン、２−アミノ−６−ヨ−ドプリン、２−アミノプリン、２−アミノ−６−メルカプトプリン、２−アミノ−６−メチルメルカプトプリン、２−アミノ−６−ヒドロキシアミノプリン、２−アミノ−６−メトキシプリン、２−アミノ−６−ベンゾイルオキシプリン、２−アミノ−６−アセトキシプリン、２−アミノ−６−メチルプリン、２−アミノ−６−サイクロプロピルアミノメチルプリン、２−アミノ−６−フェニルプリン、２−アミノ−８−ブロモプリン、６−シアノプリン、６−アミノ−２−クロロプリン（２−クロロアデニン）、６−アミノ−２−フルオロプリン（２−フルオロアデニン）などが挙げられる。

塩基アナログを具体的に例示すれば、６−アミノ−３−デアザプリン、６−アミノ−８−アザプリン、２−アミノ−６−ヒドロキシ−８−アザプリン、６−アミノ−７−デアザプリン、６−アミノ−１−デアザプリン、６−アミノ−２−アザプリンなどが挙げられる。

本発明においてヌクレオシド化合物とは上述のポリヒドロキシアルデヒドまたはポリヒドロキシケトンおよびその誘導体の１位にピリミジン骨格を有する核酸塩基、プリン骨格を有する核酸塩基、あるいは塩基アナログがＮ―グルコシド結合したものであり、具体的にはチミジン、デオキシシチジン、デオキシウリジン、デオキシグアノシン、デオキシアデノシン、ジデオキシアデノシン、トリフルオロチミジン、リバビリン、オロチジン、ウラシルアラビノシド、アデニンアラビノシド、２−メチル−アデニンアラビノシド、２−クロル−ヒポキサンチンアラビノシド、チオグアニンアラビノシド、２，６−ジアミノプリンアラビノシド、シトシンアラビノシド、グアニンアラビノシド、チミンアラビノシド、エノシタビン、ジェムシタビン、アジドチミジン、イドクスウリジン、ジデオキシアデノシン、ジデオキシイノシン、ジデオキシシチジン、ジデヒドロデオキシチミジン、チアジデオキシシチジン、ソリブジン、５−メチルウリジン、ビラゾール、チオイノシン、テガフール、ドキシフルリジン、ブレディニン、ネブラリン、アロプリノールウラシル、５−フルオロウラシル、２'−アミノウリジン、２'−アミノアデノシン、２'−アミノグアノシン、２−クロル−２'−アミノイノシンなどが挙げられる。

本発明におけるヌクレオシドホスホリラーゼとは、リン酸存在下でヌクレオシド化合物のＮ−グリコシド結合を分解する酵素の総称であり、本発明においては逆反応を利用することができる。反応に使用する酵素は、相当するペントース−１−リン酸と核酸塩基または核酸塩基アナログから目的とするヌクレオシド化合物を生成しうる活性を有していればいかなる種類及び起源のものでもかまわない。該酵素はプリン型とピリミジン型に大別されが、公知なものとしては例えば、プリン型としてプリンヌクレオシドホスホリラーゼ（EC2.4.2.1）、グアノシンホスホリラーゼ（EC2.4.2.15）、ピリミジン型としてピリミジンヌクレオシドホスホリラーゼ（EC2.4.2.2）、ウリジンホスホリラーゼ（EC2.4.2.3）、チミジンホスホリラーゼ（EC2.4.2.4）、デオキシウリジンホスホリラーゼ（EC2.4.2.23）などが挙げられる。

本発明におけるヌクレオシドホスホリラーゼ活性を有する微生物とは、プリンヌクレオシドホスホリラーゼ（EC2.4.2.1）、グアノシンホスホリラーゼ（EC2.4.2.15）、ピリミジンヌクレオシドホスホリラーゼ（EC2.4.2.2）、ウリジンホスホリラーゼ（EC2.4.2.3）、チミジンホスホリラーゼ（EC2.4.2.4）、デオキシウリジンホスホリラーゼ（EC2.4.2.23）からなる群から選択される一種類以上のヌクレオシドホスホリラーゼを発現している微生物であれば特に限定はされない。

このような微生物の具体例としては、ノカルディア(Nocardia)属、ミクロバクテリウム(Microbacterium)属、コリネバクテリウム(Corynebacterium)属、ブレビバクテリウム属（Brevibacterium）属、セルロモナス(Cellulomonas)属、フラボバクテリウム（Flabobacterium）属、クルイヘラ(Kluyvere)属、ミコバクテリウム(Micobacterium)属、ヘモフィラス（Haemophilus）属、ミコプラナ(Micoplana)属、プロタミノバクター(Protaminobacter)属、キャンディダ(Candida)属、サッカロマイセス（Saccharomyces）属、バチルス(Bacillus)属、好熱性のバチルス属、シュードモナス(Pseudomonas)属、ミクロコッカス(Micrococcus)属、ハフニア（Hafnia）属、プロテウス(Proteus)属、ビブリオ(Vibrio)属、スタフィロコッカス(Staphyrococcus)属、プロピオニバクテリウム（Propionibacterium）属、ザルチナ(Sartina)属、プラノコッカス(Planococcus)属、エシェリシア（Escherichia）属、クルチア(Kurthia)属、ロドコッッカス(Rhodococcus)属、アシネトバクター(Acinetobacter)属、キサントバクター(Xanthobacter)属、ストレプトマイセス(Streptomyces)属、リゾビウム(Rhizobium)属、サルモネラ(Salmonella)属、クレブシエラ(Klebsiella)属、エンテロバクター(Enterobacter)属、エルウィニア(Erwinia)属、エアロモナス(Aeromonas)属、シトロバクター(Citrobacter)属、アクロモバクター(Achromobacter)属、アグロバクテリウム(Agrobacterium)属、アースロバクター属(Arthrobacter)属またはシュードノカルディア(Pseudonocardia)属に含まれる微生物株を好適な例として挙げることができる。

近年の分子生物学および遺伝子工学の進歩により、上述の微生物株のヌクレオシドホスホリラーゼの分子生物学的な性質やアミノ酸配列等を解析することにより、該蛋白質の遺伝子を該微生物株より取得し、該遺伝子および発現に必要な制御領域が挿入された組換えプラスミドを構築し、これを任意の宿主に導入し、該蛋白質を発現させた遺伝子組換え菌を作出することが可能となり、かつ、比較的容易にもなった。かかる技術水準に鑑み、このようなヌクレオシドホスホリラーゼの遺伝子を任意の宿主に導入した遺伝子組換え菌も本発明のヌクレオシドホスホリラーゼを発現している微生物に包含されるものとする。

ここでいう発現に必要な制御領域とは、プロモーター配列（転写を制御するオペレーター配列を含む）・リボゾーム結合配列（ＳＤ配列）・転写終結配列等を示している。プロモーター配列の具体例としては、大腸菌由来のトリプトファンオペロンのｔｒｐプロモーター・ラクトースオペロンのｌａｃプロモーター・ラムダファージ由来のＰ_Lプロモーター及びＰ_Rプロモーターや、枯草菌由来のグルコン酸合成酵素プロモーター（ｇｎｔ）・アルカリプロテアーゼプロモーター（ａｐｒ）・中性プロテアーゼプロモーター（ｎｐｒ）・α−アミラーゼプロモーター（ａｍｙ）等が挙げられる。また、ｔａｃプロモーターのように独自に改変・設計された配列も利用できる。リボゾーム結合配列としては、大腸菌由来または枯草菌由来の配列が挙げられるが、大腸菌や枯草菌等の所望の宿主内で機能する配列であれば特に限定されるものではない。たとえば、１６ＳリボゾームＲＮＡの３'末端領域に相補的な配列が４塩基以上連続したコンセンサス配列をＤＮＡ合成により作成してこれを利用してもよい。転写終結配列は必ずしも必要ではないが、ρ因子非依存性のもの、例えばリポプロテインターミネーター・ｔｒｐオペロンターミネーター等が利用できる。これら制御領域の組換えプラスミド上での配列順序は、５'末端側上流からプロモーター配列、リボゾーム結合配列、ヌクレオシドホスホリラーゼをコードする遺伝子、転写終結配列の順に並ぶことが望ましい。

ここでいうプラスミドの具体例としては、大腸菌中での自律複製可能な領域を有しているｐＢＲ３２２、ｐＵＣ１８、Ｂｌｕｅｓｃｒｉｐｔ ＩＩ ＳＫ（＋）、ｐＫＫ２２３−３、ｐＳＣ１０１や、枯草菌中での自律複製可能な領域を有しているｐＵＢ１１０、ｐＴＺ４、ｐＣ１９４、ρ１１、φ１、φ１０５等をベクターとして利用することができる。また、２種類以上の宿主内での自律複製が可能なプラスミドの例として、ｐＨＶ１４、ＴＲｐ７、ＹＥｐ７及びｐＢＳ７をベクターとして利用することができる。

ここでいう任意の宿主には、後述の実施例のように大腸菌(Escherichia coli)が代表例として挙げられるが、とくに大腸菌に限定されるのものではなく枯草菌(Bacillus subtilis)等のバチルス属菌、酵母や放線菌等の他の微生物菌株も含まれる。

本発明におけるヌクレオシドホスホリラーゼまたは、該酵素活性を有する微生物としては市販の酵素、該酵素活性を有する微生物菌体、及び菌体処理物またはそれらの固定化物などが使用できる。菌体処理物とは、例えばアセトン乾燥菌体や機械的破壊、超音波破砕、凍結融解処理、加圧減圧処理、浸透圧処理、自己消化、細胞壁分解処理、界面活性剤処理などにより調製した菌体破砕物などであり、また、必要に応じて硫安沈殿やアセトン沈殿、カラムクロマトグラフィーにより精製を重ねたものを用いても良い。

リン酸イオンと難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンとは、反応において副生したリン酸イオンと難水溶性の塩を形成し、反応液中に沈殿しうるものであれば限定されない。そのようなものとして、ナトリウム、カリウム、カルシウム、マグネシウム、アルミニウム、バリウム、鉄、コバルト、ニッケル、銅、銀、モリブデン、鉛、亜鉛、リチウムなどの金属カチオンが挙げられる。それらのうち工業的に汎用性や安全性が高く、反応に影響を与えない金属塩が特に好ましく、そのようなものの例としてマグネシウム、カルシウムイオン、バリウムイオン、または、アルミニウムイオンが挙げられる。金属カチオンは、本発明の効果を損なわない範囲内で２種以上を組み合わせて用いてもよい。本発明では金属カチオンとしてマグネシウムが用いられる。

本発明において、リン酸イオンと難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンは、炭酸イオン及び水酸イオンの中から選ばれる１種類以上のアニオンとの金属塩として反応液中に添加することができる。具体的には、水酸化マグネシウムなどが例示される。

本発明における金属カチオンは、ペントース−１−リン酸の塩として反応液中に存在させてもよい。具体的には、リボース−１−リン酸・カルシウム塩、２−デオキシリボース−１−リン酸・カルシウム塩、２，３−ジデオキシリボース−１−リン酸・カルシウム塩、アラビノース−１−リン酸・カルシム塩、リボース−１−リン酸・バリウム塩、２−デオキシリボース−１−リン酸・バリウム塩、２，３−ジデオキシリボース−１−リン酸・バリウム塩、アラビノース−１−リン酸・バリウム塩、リボース−１−リン酸・アルミニウム塩、２−デオキシリボース−１−リン酸・アルミニウム塩、２，３−ジデオキシリボース−１−リン酸・アルミニウム塩、アラビノース−１−リン酸・アルミニウム塩、などが挙げられる。

リン酸イオンと難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンの塩を核酸塩基又は核酸塩基アナログの水溶液中に含有させて反応媒体中へ添加する場合には、水溶液中の金属カチオンの添加量は、核酸塩基または核酸塩基アナログに対し０．５〜２０倍モル量、好ましくは１〜４倍モル量である。

金属カチオンの塩を、核酸塩基又は核酸塩基アナログの水溶液に含有させて反応媒体中へ添加する場合には、当該水溶液を反応前に一括で反応媒体中に添加してもよいし、当該水溶液を逐次的に反応媒体へ添加して、反応させてもよい。ここにおいて、逐次的に添加とは、核酸塩基又は核酸塩基アナログを金属カチオンの塩の水溶液に溶解または懸濁して、２以上に分割または１分間〜２４時間、好ましくは３０分間〜２４時間かけて連続して反応系に加えることを示す。

なお、反応に必要な成分を一括して混合した場合に、その使用量によっては、反応液の固化などが生じる場合があり、このような場合には、反応開始後に、（１）ペントース−１−リン酸、（２）核酸塩基または核酸塩基アナログ及び（３）金属カチオンから選択した少なくとも１種の成分を反応途中の水性反応媒体中に添加することでかかる固化などの問題を回避することができる。ここで反応開始とは、ヌクレオシドホスホリラーゼ活性の存在下、ペントース−１−リン酸および核酸塩基または核酸塩基アナログの添加されるべき量の少なくとも一部が添加された状態をいう。

なお、反応開始後に添加する成分は上記のように１回に一括して添加する方法、２回以上に分けた回分法または連続法、あるいは回分法と連続法の組合せからなる添加方法で添加することができる。反応開始後に添加する成分が複数あるときは、上記の３成分から選択された少なくとも１種の成分の少なくとも１種について分割して添加する方法を採用することができる。すなわち、反応開始後に添加する成分が複数のときには、各成分ごとに添加方法を選択できる。

金属カチオンの塩の水溶液を、核酸塩基または核酸塩基アナログと混合して用いる場合には、金属カチオンの塩の水溶液の使用量は金属カチオンが核酸塩基又は核酸塩基アナログに対し０．５〜２０倍モル量、好ましくは１〜４倍モル量となる量である。

リン酸と難水溶性の塩を形成する金属カチオンの塩のうち特にそれ自体水に難水溶性であるものは、反応開始前にその反応終了までに添加される量を水性反応媒体に添加することが可能であり、且つ反応液のｐＨを調整する必要がない場合があるため、本発明において使用される金属カチオンの塩として適当である。そのような金属カチオンの塩の代表的なものとして各種金属カチオンの水酸化合物、特に水酸化マグネシウムが例示できる。

本発明の方法に使用される水性反応媒体は、水を主体として構成される反応媒体で、本発明で目的とする酵素活性を利用した反応が進行し、金属カチオンを添加する効果が得られるようなものであればよい。そのような水性反応媒体としては、水、または水に水溶性の有機溶剤を添加した水性反応媒体を挙げることができる。この有機溶媒としては、例えばメタノール、エタノール等の低級アルコール、アセトン、ジメチルスルホキシド及びそれらの混合物などを例示できる。溶媒の使用量に特に制限はなく反応が良好に進行する程度使用すればよいが、水に対する水溶性の有機溶媒の量は、好ましくは、０．１〜７０重量％の範囲とすることができる。更に、反応の安定性を確保するために、水性反応媒体を用いた反応液は緩衝液として調製することもできる。この緩衝液としては、本発明にかかる酵素反応用として利用できる公知の緩衝液を用いることができる。

ヌクレオシド化合物の合成反応は、目的とするヌクレオシド化合物、基質であるペントース−１−リン酸と核酸塩基、反応触媒であるヌクレオシドホスホリラーゼまたは該酵素活性を有する微生物、そしてリン酸を反応系より除外させるための金属塩の種類とその特性により、適切なｐＨや温度などの反応条件を選べばよいが、通常はｐＨ５〜１１、好ましくはｐＨ７．５〜１０．０、より好ましくは８．０〜１０の範囲であり、温度は氷温〜８０℃、好ましくは１０〜６０℃の範囲で行うことができる。ｐＨに関して、その管理幅を外れた場合、目的物や基質の安定性、酵素活性の低下、リン酸との難水溶性塩の未形成などが原因で反応転化率の低下を招く可能性がある。反応途中、ｐＨの変化が生じるようであれば必要に応じて塩酸、硫酸などの酸や水酸化ナトリウム、水酸化カリウムなどのアルカリを適時添加すればよい。本発明においては、金属カチオンとしてマグネシウムを用い、その水酸化物など使用するので反応液のｐＨを調整する必要はない。

反応に使用するペントース−１−リン酸と核酸塩基の濃度は０．１〜１０００ｍＭ程度が適当であり、両者のモル比は添加する核酸塩基の比率をペントース−１−リン酸またはその塩に対して０．１〜１０倍モル量で行える。反応転化率を考えれば０．９５倍モル量以下が好ましい。

反応時間は原料、水性溶媒の種類、反応温度によって異なるが、1分から７８時間、好ましくは３０分から２４時間である。

また、添加するリン酸と難水溶性の塩を形成し得る金属塩は、反応に使用するペントース−１−リン酸に対して０．１〜１０倍モル量、より好ましくは０．５〜５倍モル量添加するのが良い。なお、高濃度の反応においては、基質の核酸塩基や生成物のヌクレオシド化合物が溶解しきれずに反応液中に存在する場合もあるが、このような場合にも本発明は適用される。

本発明におけるペントース−１−リン酸またはその塩、リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンまたはその塩、核酸塩基の中から選ばれる１種類以上を反応液が固化しないように添加する方法は、代表例として以下のようなものが挙げられる。尚、本発明は、以下の例に限られたものではなく、反応液が固化しなければペントース−１−リン酸またはその塩、リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンまたはその塩、核酸塩基の中から選ばれる１種類以上の添加する時期や分割する回数は特に制限されないものとする。

１．ペントース−１−リン酸またはその塩と、核酸塩基または核酸塩基アナログを一括に仕込み、反応を開始させ、適当な濃度までヌクレオシド化合物を蓄積させた後に、リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンまたはその塩を一括添加する方法。この場合のヌクレオシド化合物の蓄積濃度とは、好ましくは１０ｍＭ以上、より好ましくは３０ｍＭ以上である。

２．ペントース−１−リン酸またはその塩と、核酸塩基または核酸塩基アナログを一括に仕込み、反応を開始させた後にヌクレオシド化合物の蓄積濃度にあわせて段階的または連続的にリン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンまたはその塩を添加する方法。この場合、金属カチオンの添加は、ヌクレオシド化合物が好ましくは１０ｍＭ以上より好ましくは３０ｍＭ以上蓄積した時に開始すればよい。

３．ペントース−１−リン酸またはその塩と、リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンまたはその塩を一括添加したのち、反応液が固化しないように核酸塩基または核酸塩基アナログを段階的または連続的に添加する方法。この場合、初発の核酸塩基または核酸塩基アナログの添加量は、好ましくは３０ｍＭ以下、より好ましくは１０ｍＭ以下である。

４．核酸塩基または核酸塩基アナログと、リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンまたはその塩を一括添加したのち、反応液が固化しないようにペントース−１−リン酸またはその塩を段階的または連続的に添加する方法。この場合、初発のペントース−１−リン酸またはその塩の添加量は、好ましくは３０ｍＭ以下、より好ましくは１０ｍＭ以下である。

５．ペントース−１−リン酸またはその塩、リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンまたはその塩、核酸塩基または核酸塩基アナログを酵素溶液中に段階的または連続的に添加する方法。この場合、反応開始時点のペントース−１−リン酸またはその塩、あるいは核酸塩基または核酸塩基アナログの添加量は、好ましくは３０ｍＭ以下、より好ましくは１０ｍＭ以下である。

このようにして製造したヌクレオシド化合物を反応液から単離するには、濃縮、晶析、溶解、電気透析処理、イオン交換樹脂や活性炭による吸脱着処理などの常法が適用できる。

以下に実施例、参考例及び比較例を挙げて本発明を説明するが、本発明はこれら実施例等によって何等制限されるものではない。

（分析法）
生成したヌクレオシド化合物はすべて高速液体クロマトグラフィーにより定量した。分析条件は以下による。
カラム；ＹＭＣ−Ｐａｃｋ ＯＤＳ−Ａ３１２ １５０×６．０ｍｍＩ．Ｄ．（ＹＭＣ Ｃｏ．，Ｌｔｄ）
カラム温度；４０℃
ポンプ流速；０．７５ｍｌ／ｍｉｎ
検出；ＵＶ２６０ｎｍ、
溶離液；１０ｍＭリン酸：アセトニトリル＝９５：５（Ｖ／Ｖ）
参考例１
２．５ｍＭの２´−デオキシリボース１−リン酸ジ（モノシクロヘキシルアンモニウム）塩（ＳＩＧＭＡ製）、２．５ｍＭのアデニン（和光純薬製、特級）、１２ｕｎｉｔｓ／ｍｌのプリンヌクレオシドホスホリラーゼ（フナコシ製）、１０ｍＭの塩化カルシウム（和光純薬、特級）、１０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．４）から成る反応液１ｍｌを３０℃、２４時間反応させた。反応終了後、白色の沈殿物が生成していた。反応液を希釈した後分析したところ、２．４０ｍＭのデオキシアデノシンが生成していた。その時の反応収率は９６．０％であった。

比較例１
塩化カルシウムを添加しないこと以外はすべて参考例１と同じ手順と条件で反応を行った。反応終了後、沈殿物は生成しなかった。反応液を希釈した後分析したところ、２．０１ｍＭのデオキシアデノシンが生成していた。その時の反応収率は８０．４％であった。

参考例２
塩化カルシウム濃度を２．５ｍＭにする以外はすべて参考例１と同じ手順と条件で反応を行った。反応終了後、白色の沈殿物が生成していた。反応液を希釈した後分析したところ、２．２７ｍＭのデオキシアデノシンが生成していた。その時の反応収率は９０．８％であった。

参考例３
塩化カルシウムの代わりに塩化アルミニウムを添加する以外はすべて参考例１と同じ手順と条件で反応を行った。反応終了後、白色の沈殿物が生成していた。反応液を希釈した後分析したところ、２．３１ｍＭのデオキシアデノシンが生成していた。その時の反応収率は９３．３％であった。

参考例４
塩化カルシウムの代わりに塩化バリウムを添加する以外はすべて参考例１と同じ手順と条件で反応を行った。反応終了後、白色の沈殿物が生成していた。反応液を希釈した後分析したところ、２．３１ｍＭのデオキシアデノシンが生成していた。その時の反応収率は９２．４％であった。

参考例５
塩化バリウム濃度を２．５ｍＭにする以外はすべて参考例４と同じ手順と条件で反応を行った。反応終了後、白色の沈殿物が生成していた。反応液を希釈した後分析したところ、２．２７ｍＭのデオキシアデノシンが生成していた。その時の反応収率は９０．２％であった。

参考例６
Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｉｏｌｏｇｃａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ、Ｖｏｌ．１８４、ｐｐ４４９−４５９、１９５０記載の方法により２−デオキシリボース１−リン酸バリウム塩を調製した。２．５ｍＭの２−デオキシリボース−１−リン酸バリウム塩、２．５ｍＭのアデニン（和光純薬製、特級）、１２ｕｎｉｔｓ／ｍｌのプリンヌクレオシドホスホリラーゼ（フナコシ製）、１０ｍＭの塩化カルシウム（和光純薬、特級）、１０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．４）から成る反応液１ｍｌを３０℃、２４時間反応させた。反応終了後、白色の沈殿物が生成していた。反応液を希釈した後分析したところ、２．４０ｍＭのデオキシアデノシンが生成していた。その時の反応収率は９１．１％であった。

参考例７
２．５ｍＭの２−デオキシリボース−１−リン酸ジ（モノシクロヘキシルアンモニウム）塩（ＳＩＧＭＡ製）、２．５ｍＭのチミン（和光純薬製、特級）、１２ｕｎｉｔｓ／ｍｌのチミジンホスホリラーゼ（ＳＩＧＭＡ製）、１０ｍＭの硝酸カルシウム（和光純薬、特級）、１０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．４）から成る反応液１ｍｌを３０℃、２４時間反応させた。反応終了後、白色の沈殿物が生成していた。反応液を希釈した後分析したところ、２．２８ｍＭのチミジンが生成していた。その時の反応収率は９１．２％であった。

比較例２
硝酸カルシウムを添加しないこと以外はすべて参考例７と同じ手順と条件で反応を行った。反応終了後、沈殿物は生成しなかった。反応液を希釈した後分析したところ、１．８８ｍＭのチミジンが生成していた。その時の反応収率は７５．２％であった。

参考例８
２．５ｍＭのリボース−１−リン酸シクロヘキシルアンモニウム塩（ＳＩＧＭＡ製）、２．５ｍＭの２，６−ジアミノプリン（アルドリッチ製）、１２ｕｎｉｔｓ／ｍｌのプリンヌクレオシドホスホリラーゼ（フナコシ製）、１０ｍＭの塩化カルシウム（和光純薬、特級）、１０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７．４）から成る反応液１ｍｌを３０℃、２４時間反応させた。反応終了後、白色の沈殿物が生成していた。反応液を希釈した後分析したところ、１．９４ｍＭの２，６−ジアミノプリンリボシドが生成していた。その時の反応収率は７７．６％であった。

比較例３
塩化カルシウムを添加しないこと以外はすべて参考例８と同じ手順と条件で反応を行った。反応終了後、沈殿物は生成しなかった。反応液を希釈した後分析したところ、１．５４ｍＭの２，６−ジアミノプリンリボシドが生成していた。その時の反応収率は６１．６％であった。

参考例９
大腸菌染色体ＤＮＡを次のようにして調製した。エシェリヒア・コリＫ−１２／ＸＬ−１０株（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ社）を５０ｍｌのＬＢ培地に接種し、３７℃で一夜培養した後集菌し、リゾチーム１ｍｇ／ｍｌを含む溶菌液で溶菌した。溶菌液をフェノール処理した後、通常の方法によりエタノール沈殿によりＤＮＡを沈殿させた。生じたＤＮＡの沈殿は、ガラス棒に巻き付けて回収した後、洗浄し、ＰＣＲに用いた。

ＰＣＲ用のプライマーには、エシェリヒア・コリの既知のｄｅｏＤ遺伝子の塩基配列（GenBank accession No. AE000508（コード領域は塩基番号11531-12250）に基づいて設計した配列番号１及び２に示す塩基配列を有するオリゴヌクレオチド（北海道システム・サイエンス株式会社）に委託して合成した）を用いた。
配列番号１：
gtgaattcac aaaaaggata aaacaatggc
配列番号２：
tcgaagcttg cgaaacacaa ttactcttt
これらのプライマーの５'末端付近及び３'末端付近には、それぞれＥｃｏＲＩ及びＨｉｎｄIIIの制限酵素認識配列を有する。

制限酵素ＨｉｎｄIIIで完全に消化した前記大腸菌染色体ＤＮＡ ６ｎｇ／μｌ及びプライマー各３μＭを含む０．１ｍｌのＰＣＲ反応液を用いて、変性：９６℃、１分間、アニーリング：５５℃、１分間、伸長反応：７４℃、１分間からなる反応サイクルを、３０サイクルの条件でＰＣＲを行なった。

上記反応産物及びプラスミドｐＵＣ１８（宝酒造（株））を、ＥｃｏＲＩ及びＨｉｎｄIIIで消化し、ライゲーション・ハイ（東洋紡（株））を用いて連結した後、得られた組換えプラスミドを用いて、エシェリヒア・コリＤＨ５αを形質転換した。形質転換株を、アンピシリン（Ａｍ）５０μｇ／ｍｌ及びＸ−Ｇａｌ（５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリル−β−Ｄ−ガラクトシド）を含むＬＢ寒天培地で培養し、Ａｍ耐性で且つ白色コロニーとなった形質転換株を得た。

このようにして得られた形質転換株よりプラスミドを抽出し、目的のＤＮＡ断片が挿入されたプラスミドを、ｐＵＣ−ＰＮＰ７３と命名した。こうして得られた形質転換体を、エシェリヒア・コリ ＭＴ−１０９０５と名づけた。

エシェリヒア・コリ ＭＴ−１０９０５株をＡｍ５０μｇ／ｍｌを含むＬＢ培地１００ｍＬで３７℃・１晩振とう培養した。得られた培養液を１３０００ｒｐｍで１０ｍｉｎ遠心分離し、菌体を集めた。菌体を１０ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）１０ｍＬに懸濁し、超音波により破砕したものを酵素源として用いた。

１００ｍＭの２´−デオキシリボース１−リン酸ジ（モノシクロヘキシルアンモニウム）塩（ＳＩＧＭＡ製）、１０〜８０ｍＭのアデニン（和光純薬製、特級）、１００ｍＭのトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）、２０ｕｎｉｔｓ／ｍｌの上述のプリンヌクレオシドホスホリラーゼからなる反応液１．０ｍｌを５０℃で２０時間反応させた。反応開始８時間後に１５０ｍＭとなるように塩化カルシウムを添加した。結果を表１に示した。

比較例４
酵素源の添加と同時に塩化カルシウムを添加し、参考例９と同様に反応を行った。結果を表２に示した。

比較例５
緩衝液を添加しないで８０ｍＭのアデニンの反応を参考例９と同様に行った。結果を表３に示した。

参考例１０
１００ｍＭの２´−デオキシリボース１−リン酸ジ（モノシクロヘキシルアンモニウム）塩（ＳＩＧＭＡ製）、１０〜８０ｍＭのチミン（和光純薬製、特級）、１００ｍＭのトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）、２０ｕｎｉｔｓ／ｍｌのチミジンホスホリラーゼ（ＳＩＧＭＡ製）からなる反応液１．０ｍｌを５０℃で２０時間反応させた。反応開始８時間後に１５０ｍＭとなるように塩化カルシウムを添加した。結果を表４に示した。

比較例６
酵素源の添加と同時に塩化カルシウムを添加し、参考例１０と同様に反応を行った。結果を表５に示した。

比較例７
緩衝液を添加しないで８０ｍＭのチミンの反応を参考例１０と同様に行った。結果を表６に示した。

参考例１１
２００ｍＭのチミン（和光純薬製、特級）、２００ｍＭのトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）、２０ｕｎｉｔｓ／ｍｌのチミジンホスホリラーゼ（ＳＩＧＭＡ製）からなる反応液０．５ｍｌを５０℃に保温し、２´−デオキシリボース１−リン酸ジ（モノシクロヘキシルアンモニウム）塩（ＳＩＧＭＡ製）の２００ｍＭ溶液を酵素液添加後１時間おきに０．１ｍＬづつ５回に分けて添加した。その結果、反応液は液状のままであった。

比較例８
トリス塩酸緩衝液を存在させないで酵素源の添加と同時に２００ｍＭの２´−デオキシリボース１−リン酸ジ（モノシクロヘキシルアンモニウム）塩（ＳＩＧＭＡ製）０．５ｍＬを添加し、参考例１１と同様に反応を行った。その結果、反応液は固化した。

参考例１２
２００ｍＭの２´−デオキシリボース１−リン酸ジ（モノシクロヘキシルアンモニウム）塩（ＳＩＧＭＡ製）、２００ｍＭのトリス塩酸緩衝液（ｐＨ８．０）、２０ｕｎｉｔｓ／ｍｌのチミジンホスホリラーゼ（ＳＩＧＭＡ製）、１５０ｍＭの塩化カルシウムからなる反応液０．５ｍｌを５０℃に保温し、２００ｍＭのチミン（和光純薬製、特級）溶液を１時間おきに０．１ｍＬづつ５回に分けて添加した。その結果、反応液は液状のままであった。

比較例９
トリス塩酸緩衝液を存在させないで酵素源の添加と同時に２００ｍＭのチミン溶液０．５ｍＬを添加し、参考例１２と同様に反応を行った。その結果、反応液は固化した。

以降の実施例等で生成したヌクレオシド化合物はすべて以下の分析条件で高速液体クロマトグラフィーにより定量した。
カラム：ＹＭＣ−Ｐａｃｋ ＯＤＳ−Ａ５１４ ３００×６．０ｍｍＩ．Ｄ．（ＹＭＣ Ｃｏ．，Ｌｔｄ）
カラム温度：４０℃
ポンプ流速：１ｍｌ／ｍｉｎ
検出波長：ＵＶ２５４ｎｍ、
溶離液：２０ｍｍｏｌの酢酸アンモニウム水溶液（２７００ｍｌ）にりん酸を加えｐＨ３．５に調整し、メタノール（３００ｍｌ）を加え、混合、脱気する。
内標準物質：ニコチン酸
参考例１３
２−デオキシリボース１−リン酸ジ（アンモニウム）塩の合成
２−デオキシリボース１−リン酸ジ（モノシクロヘキシルアンモニウム）塩（１ｇ、２．４２ｍｍｏｌ、ＳＩＧＭＡ製）をメタノール（１０ｇ）に懸濁し、アンモニアガス（０．６２ｇ、３６．５ｍｍｏｌ）を吹き込み、５０℃で２時間攪拌する。得られた反応マスを３０℃でろ過後、メタノール（５ｇ）で２回洗浄、乾燥し、所望の２'−デオキシリボース１−リン酸ジ（アンモニウム）塩（０．５７ｇ）を収率９５％で得た。
¹H-NMR (D₂O, 270 MHz) d 5.56 (s, 1 H), 4.03 (m, 2 H), 3.52 (dd, J = 3.3,12.2 Hz, 1 H), 3.41 (dd, J = 5.3, 12.2 Hz, 1 H), 2.17 (m, 1 H) , 1.87 (d, J = 13.9 Hz, 1 H)、 MS (APCI) m/z 213 (M-H)
参考例１４
２'−デオキシグアノシンの合成（１）
２−デオキシリボース１−リン酸ジ（モノシクロヘキシルアンモニウム）塩（３．２２ｇ、７．７２ｍｍｏｌ、ＳＩＧＭＡ製）を水（４７．１ｇ）に溶解し、参考例９で得た酵素液（０．１ｍｌ）を加えた反応液に、４．０２ｗｔ％の水酸化ナトリウム水溶液（１６．４５ｇ、１６．５ｍｍｏｌ）にグアニン（１ｇ、６．６２ｍｍｏｌ）を溶解した液を、５０℃で１時間かけて滴下した。反応マスを同温で２時間反応後、反応マスをＨＰＬＣで分析した所、所望の２'−デオキシグアノシンを反応収率８０％で得た。

参考例１５
２'−デオキシグアノシンの合成（２）
参考例１３で合成した２−デオキシリボース１−リン酸ジ（アンモニウム）塩（２．０ｇ、７．７２ｍｍｏｌ）を水（４７．１ｇ）に溶解し、参考例９で得た酵素液（０．１ｍｌ）を加えた反応液に、４．０２ｗｔ％の水酸化ナトリウム水溶液（１６．４５ｇ、１６．５ｍｍｏｌ）にグアニン（１ｇ、６．６２ｍｍｏｌ）を溶解した液を、５０℃で１時間かけて滴下した。反応マスを同温で２時間反応後、反応マスをＨＰＬＣで分析した所、所望の２'−デオキシグアノシンを反応収率８１％で得た。

参考例１６
２'−デオキシグアノシンの合成（３）
参考例１３で合成した２−デオキシリボース１−リン酸ジ（アンモニウム）塩（２．０ｇ、７．７２ｍｍｏｌ）を水（４７．１ｇ）に溶解し、参考例９で得た酵素液（０．１ｍｌ）を加えた反応液に、５．６ｗｔ％の水酸化カリウム水溶液（１６．５ｇ、１６．５ｍｍｏｌ）にグアニン（１ｇ、６．６２ｍｍｏｌ）を溶解した液を、５０℃で１時間かけて滴下した。反応マスを同温で２時間反応後、反応マスをＨＰＬＣで分析した所、所望の２'−デオキシグアノシンを反応収率７９％で得た。

参考例１７
２'−デオキシグアノシンの合成（４）
参考例１３で合成した２−デオキシリボース１−リン酸ジ（アンモニウム）塩（２．０ｇ、７．７２ｍｍｏｌ）を水（４７．１ｇ）に溶解し、参考例９で得た酵素液（０．１ｍｌ）を加えた反応液に、２．４ｗｔ％の水酸化リチウム水溶液（１６．５ｇ、１６．５ｍｍｏｌ）にグアニン（１ｇ、６．６２ｍｍｏｌ）を溶解した液を、５０℃で１時間かけて滴下した。反応マスを同温で２時間反応後、反応マスをＨＰＬＣで分析した所、所望の２'−デオキシグアノシンを反応収率９６％で得た。

参考例１８
２'−デオキシアデノシンの合成
参考例１３で合成した２−デオキシリボース１−リン酸ジ（アンモニウム）塩（２．０ｇ、７．７２ｍｍｏｌ）を水（３０ｇ）に溶解し、参考例９で得た酵素液（０．０５ｍｌ）を加えた反応液に、２．４ｗｔ％の水酸化リチウム水溶液（１６．５ｇ、１６．５ｍｍｏｌ）にアデニン（０．８９ｇ、６．６２ｍｍｏｌ）を溶解した液を、５０℃で１時間かけて滴下した。反応マスを同温で２時間反応後、反応マスをＨＰＬＣで分析した所、所望の２'−デオキシアデノシンを反応収率９８％で得た。

実施例１
２´−デオキシアデノシンの合成
純水（１３ｇ）に２−デオキシリボース１−リン酸２アンモニウム塩（１．６７ｇ、６．７ｍｍｏｌ）、アデニン（０．８７ｇ、６．４ｍｍｏｌ）と水酸化マグネシウム（０．５９ｇ、１０．１ｍｍｏｌ）を加えた。該マスに、０．０５ｍｌの酵素液を加え、４５℃、３時間攪拌下で反応させた。その時の反応収率は９８％であった。得られた反応マスを７０℃に加熱し、２´−デオキシアデノシンを溶解した後、反応で生成した不溶なリン酸マグネシウムを５Ａろ紙を用いろ過、水（５ｇ）で洗浄し、澄明な濾過液（１８．２ｇ）を反応マスから９９％の収率で得た。この濾過速度は１０００ｋｇ／ｍ３／ｈｒであり、濾過ケーキへの２´−デオキシアデノシンのロス率は１％であった。この様にして得られた濾過液を５℃で２時間晶析し、析出した結晶を濾過、水（５ｇ）で洗浄、減圧乾燥し、所望の２´−デオキシアデノシン（１．６ｇ）を収率９３％で得た。

比較例１０
２´−デオキシアデノシンの合成
純水（１３ｇ）に２−デオキシリボース１−リン酸２アンモニウム塩（１．６７ｇ、６．７ｍｍｏｌ）、アデニン（０．８７ｇ、６．４ｍｍｏｌ）および０．０５ｍｌの酵素液を懸濁した液に、４５℃で塩化カルシウム１水和物（１．４８ｇ）を溶かした水溶液（３．７ｇ）および４％水酸化ナトリウム水溶液（２０．１ｇ）を同時に２時間かけて滴下する。滴下終了後、反応マスを同温で３時間反応させた。その時の反応収率は９７％であった。得られた反応マスを７０℃に加熱し、２´−デオキシアデノシンを溶解した後、反応で生成した不溶なリン酸カルシウムを５Ａろ紙を用いろ過、水（５ｇ）で洗浄し、澄明な濾過液（２８．２ｇ）を反応マスから８５％の収率で得た。この濾過速度は５０ｋｇ／ｍ３／ｈｒであり、濾過ケーキへの２´−デオキシアデノシンのロス率は１５％であった。この様にして得られた濾過液を５℃で２時間晶析し、析出した結晶を濾過、水（５ｇ）で洗浄、減圧乾燥し、所望の２´−デオキシアデノシン（１．３ｇ）を収率７５％で得た。

実施例２
２´−デオキシアデノシンの合成
純水（１３ｇ）に２−デオキシリボース１−リン酸２アンモニウム塩（１．６７ｇ、６．７ｍｍｏｌ）、アデニン（０．８７ｇ、６．４ｍｍｏｌ）と水酸化マグネシウム（０．５９ｇ、１０．１ｍｍｏｌ）を加えた。該マスに、参考例９で得た酵素液（０．０５ｍｌ）を加え、４５℃、３時間攪拌下で反応させた。３時間後に反応マスをＨＰＬＣで分析した所、所望の２´−デオキシアデノシンを反応収率９８％で得た。この時の反応中のｐＨは８〜１０を示した。

実施例３
２´−デオキシグアノシンの合成
純水（１５ｇ）に２−デオキシリボース１−リン酸２アンモニウム塩（１．６７ｇ、６．７ｍｍｏｌ）、グアニン（０．９２ｇ、６．１ｍｍｏｌ）と水酸化マグネシウム（０．５９ｇ、１０．１ｍｍｏｌ）を加えた。該マスに、参考例９で得た酵素液（０．２ｍｌ）を加え、５０℃、６時間攪拌下で反応させた。６時間後に反応マスをＨＰＬＣで分析した所、所望の２´−デオキシグアノシンを反応収率９８％で得た。この時の反応中のｐＨは８〜１０を示した。
参考例１９
２´−デオキシアデノシンの合成
純水（１３ｇ）に２−デオキシリボース１−リン酸２アンモニウム塩（１．６７ｇ、６．７ｍｍｏｌ）、アデニン（０．８７ｇ、６．４ｍｍｏｌ）と水酸化マグネシウム（０．５９ｇ、１０．１ｍｍｏｌ）を加えた。該マスに、参考例９で得た酵素液（０．０５ｍｌ）を加え、酢酸でｐＨを８．５に調整しながら、４５℃、３時間攪拌下で反応させた。３時間後に反応マスをＨＰＬＣで分析した所、所望の２´−デオキシアデノシンを反応収率９８％で得た。

比較例１１
２´−デオキシアデノシンの合成
純水（１３ｇ）に２−デオキシリボース１−リン酸２アンモニウム塩（１．６７ｇ、６．７ｍｍｏｌ）、アデニン（０．８７ｇ、６．４ｍｍｏｌ）と塩化マグネシウム６水塩（２．０５ｇ、１０．１ｍｍｏｌ）を加えた。該マスに、参考例９で得た酵素液（０．０５ｍｌ）を加え、４５℃、３時間攪拌下で反応させた。３時間後に反応マスをＨＰＬＣで分析した所、所望の２´−デオキシアデノシンを反応収率６５％で得た。この時の反応中のｐＨは６〜７．５を示した。

比較例１２
２´−デオキシグアノシンの合成
純水（１５ｇ）に２−デオキシリボース１−リン酸２アンモニウム塩（１．６７ｇ、６．７ｍｍｏｌ）、グアニン（０．９２ｇ、６．１ｍｍｏｌ）と塩化マグネシウム６水塩（２．０５ｇ、１０．１ｍｍｏｌ）を加えた。該マスに、参考例９で得た酵素液（０．２ｍｌ）を加え、５０℃、３時間攪拌下で反応させた。３時間後に反応マスをＨＰＬＣで分析した所、所望の２´−デオキシグアノシンを反応収率６５％で得た。この時の反応中のｐＨは６〜７．５を示した。

比較例１３
２´−デオキシアデノシンの合成
参考例１９と同様に、反応ｐＨを酢酸またはアンモニア、ＮａＯＨを用いｐＨを調整しながら反応を行なった時の収率を下記の表７に示す。結果からｐＨが７．５未満でも１０．５以上でも収率が低下する事がわかる。

比較例１４
２´−デオキシアデノシンの合成
実施例２、比較例１１の反応方法で、反応ｐＨをアンモニアを用い９．０に調整しながら、加える純水の量を変化させた時の反応収率の変化を下記の表８に示す。この表から、塩化物の塩では、生成する塩化アンモニウムの影響で反応濃度を低くしなければ収率が向上できない事がわかる。

Claims (3)

1. 水性反応媒体中で、ヌクレオシドホスホリラーゼ活性の存在下に、ペントース−１−リン酸と、核酸塩基または核酸塩基アナログとを、リン酸イオンと難水溶性の塩を形成する金属カチオンの塩の存在下、ｐＨを調整せずに反応させて、ヌクレオシド化合物を生成させるヌクレオシド化合物の製造方法であって、
   前記金属カチオンがマグネシウムであり、水酸化マグネシウム、酸化マグネシウム、炭酸マグネシウム及び塩基性炭酸マグネシウムから選択された少なくとも１種として前記水性反応媒体中に添加される
   ことを特徴とする製造方法。
2. 反応の際の水性反応媒体のｐＨが７．５から１０．０の範囲であることを特徴とする請求項１記載のヌクレオシド化合物の製造方法。
3. 反応により得られた反応液をろ過して、反応液中の不溶性物質を除去し、ヌクレオシド化合物を含有するろ液を得る工程を有することを特徴とする請求項１に記載のヌクレオシド化合物の製造方法。