JP4538148B2 - 微小に作製されたキャピラリーアレイ電気泳動装置および方法 - Google Patents
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Description
(連邦政府によって後援された研究に関する陳述)
本発明は、許可番号第DE−FG−91ER61125号(米国エネルギー省により授与)および許可番号第HG01399号(国立衛生研究所により授与)のもとで政府の支援を伴ってなされた。政府は、本発明において一定の権利を有する。
【0002】
(発明の背景)
本発明は、一般的に電気泳動に関し、そしてより詳細には微小に作製された構造物上でキャピラリーアレイ電気泳動を実施するための装置および方法に関する。
【0003】
遺伝子マッピング、遺伝子配列決定および疾患診断のような多くの診断手順ならびに遺伝子同定手順において、デオキシリボ核酸(DNA)、リボ核酸(RNA)またはタンパク質が、それらの物理学的特性および化学的特性に従って分離される。DNA、RNAまたはタンパク質に加えて、他の小分子分析物もまた分離される必要があり得る。
【0004】
1つの電気化学的分離プロセスは、電気泳動として公知である。このプロセスにおいて、分子は、緩衝液に満たされたリザーバと連結されているキャピラリーまたはチャネル中を移動する。キロボルトの範囲の電場が、チャネルの両端部を横切って印加され、分子を移動させる。サンプルは、代表的には高ポテンシャル端部に導入され、そしてこの電場の影響下で、チャネルの低ポテンシャル端部へと移動する。チャネルを通じて移動後、分離されたサンプルは適切な検出器により検出される。
【0005】
代表的には、核酸およびタンパク質の電気泳動分離は、ゲル分離媒体中で実施される。スラブゲルは電気泳動において主要な役割を果たしてきたけれども、大きな領域にわたって均一なゲルを調製する点、異なるゲルの再現性を維持する点、サンプルをウェルにロードする点、ゲルを均一に冷却する点、多量の媒体、緩衝液、およびサンプルを使用する点、およびヌクレオチドの読み取りを拡大するために長い泳動時間を必要とする点において困難が存在する。さらに、スラブゲルは、高度の多重化および自動化には容易には従わない。近年、微小に作製されたキャピラリー電気泳動(CE)装置が、蛍光染料および蛍光標識アミノ酸を分離するために使用されている。さらに、DNA制限フラグメント、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)産物、短いオリゴヌクレオチド、およびDNA配列決定フラグメントさえもが、CE装置を用いて効率的に分離されている。また、一体型の微小装置が開発されており、これらの装置は、ポリメラーゼ連鎖反応増幅を実行し得る直後に、アンプリコン(amplicon)のサイズ決定、DNA制限/消化および続いてのサイズに基づく分離、および細胞の選別および選択された細胞の膜の溶解を伴う。しかし、これらの微小に作製された装置は、一度に1つのチャネルでの解析だけしか実施しない。集団スクリーニングまたはDNA配列決定のような適用について、このような単一チャネルでの観測および解析は、ある集団の多くのメンバーをスクリーニングするには受容できない遅滞を生じる。
【0006】
(発明の要旨)
本発明は、キャピラリーアレイ電気泳動(CAE)マイクロプレートを提供する。このマイクロプレートは、プレート上でのサンプルリザーバのアレイに連結された、分離チャネルのアレイを有する。このサンプルリザーバは1つ以上のサンプルインジェクター中によって、体系付けられる。廃液リザーバは、それぞれのサンプルインジェクターのサンプルリザーバから、廃液回収するように提供される。さらに、カソードリザーバは、1つ以上の分離チャネルと複合される。いくつか、またはすべての分離チャネルに共通なアノードリザーバはまた、マイクロプレート上に提供される。さらに、アノードからそれぞれのカソードへの距離は、折りたたまれたチャネルの配置により、一定に保たれる。これらの折り返しの角は、正しい角度であり得るか、より好ましくは、電気泳動の解像度を向上するための滑らかなカーブで有り得る。
【0007】
1つの局面において、リザーバ−は、多数のサンプルの同時ローディングを容易にするために予め決められた間隔により、サンプルリザーバを分離する基板上に配置される。
【0008】
別の局面において、カソード、アノードおよびインジェクション廃液リザーバを組み合わせて、Nが分析されるサンプル数である場合の、基板中の孔の数Nを約5/4Nに減少させるために重ね合わされる。
【0009】
別の局面において、分離チャネルは、直線部分から形成される。
【0010】
別の局面において、分離チャネルは、放射状部分を含み得る曲線部分から形成される。
【0011】
さらに別の局面において、分離チャネルは、プレートの周囲からプレートの中心領域にまたがっている。この分離チャネルは、直線または放射状様式においてプレートにまたがり得る。
【0012】
さらに別の局面において、CAEマイクロプレートアッセンブリは、マイクロプレート、リザーバアレイレイヤー、および電極アレイを用いて形成される。このアッセンブリは、サンプルの取り扱い、電極の導入を単純化し、そしてカソードおよびアノードリザーバ中に存在する緩衝液の容量の増加を可能にする。
【0013】
本発明の利点は、以下を含む。本発明のマイクロプレートは、大多数のサンプル数の分析を、1度に小さなデバイスで実施することを可能にする。さらに、マイクロプレートは、最小限の混入の危険性のもとでの容易なサンプルのロードを、可能にする。さらに、マイクロプレートは、電気的な番地付けが容易である。さらに、マイクロプレートは、サンプルのより高解像度の分離および検出、サンプルのより早い分離および検出、またはより大量のサンプルの分離および検出を提供し得る、広範な種々の形式を支持する。
【0014】
他の特徴および利点は、以下の説明および特許請求の範囲より明らかとなる。
【0015】
(詳細な説明)
図1について、キャピラリーアレイ電気泳動(CAE)マイクロプレート10が示される。マイクロプレート10は、その上にエッチングされたキャピラリーのアレイまたは分離チャネル50を有する。図1の1つの実施態様として、48の個々の分離チャネルが、150マイクロ(μm)の周期アレイにエッチングされる。この実施態様において、分離チャネル50は、それぞれ所定の距離の間隔が開いたサンプルリザーバ101の8×12アレイに枝分かれして、8チップピペッタを用いたローディングを容易にする。この場合において、各サンプルリザーバ101は、別のサンプルリザーバから1次元で9mm離れている。分離チャネル50は、インジェクション領域からアノードリザーバ100への第1の所定の距離、およびインジェクターグループ100からカソードリザーバ120への第2の所定の距離に広がる。第1の所定の距離は、約10センチメートルであり得、第2の所定の距離は、約1.8センチメートルであり得る。
【0016】
それぞれのサンプルリザーバ101は、インジェクター群100〜116の1つのようなインジェクター群に属する。さらに、インジェクター群100、102および104は、カソードリザーバ120に連結される。カソードリザーバ120は、3つのサンプルインジェクター100、102および104に連結されるが、他のカソードインジェクターは、3つ以上のサンプルインジェクターに連結される。例えば、カソードインジェクター130は、サンプルインジェクター106、108、110、112、114および116に連結される。
【0017】
アノードリザーバ180は、スキャンシステムとの衝突を避けるために、この場合においては、非対称な様式において配置される。さらに、アノードリザーバ180からカソード120または130のいずれかへの経路の距離は、全ての分離チャネルにおいて同一である。等しい距離が、アノード180と近位の特定のサンプルリザーバと接続した折りたたまれた経路を提供することにより達成され、経路長を伸ばし、そして全てのサンプルリザーバについてアノードリザーバ180とカソードリザーバ120および130のの間の距離の均一性を達成する。
【0018】
図1の実施態様において、マイクロプレート10上にある孔Hの数は、約5N/4であり、そしてより正確には、5N/4+7(ここで、Nはサンプルの数)である。96のサンプルに平行に処理する図1の実施態様について、平行に配置された127個の孔を、ドリルで穴をあけることが必要とされる。この孔の数は、理論的な最小の数の孔であるN+3に近い。孔の数の減少は、マイクロプレート10にドリルで孔をあける必要のある孔がより少なくなるという点で、有利である。このことにより、製造の効率を増大し、そしてドリルで孔をあける過程に関連した機械的なストレスによって引き起こされる、マイクロプレートの生産における欠損の可能性を減少する。カソード、アノードおよび廃液リザーバが多重である別の理由は、1つの基板上の96分離システムに適合するように、より実行可能なものにするということである。上述の利点はまた、孔がドリルで孔をあける過程の代わりに、成形過程または接着過程により孔が作られるという事象の適用可能である。
【0019】
図2に移って、図1のサンプルインジェクター100の詳細が示される。サンプルインジェクター100は、複数のサンプルリザーバ200、204、220、およに224を有する。サンプルリザーバ200および220は第1番目のサンプルを含み、サンプルリザーバ204および224は第2のサンプルを含む。
【0020】
サンプルインジェクター100はまた、第1の分離チャネル202および第2の分離チャネル222を有する。従って、サンプルインジェクター100はそれぞれの分離チャネルにおける2つの異なったサンプルの連続した分析を可能とする。第1および第2の分離チャネルである202および222は、交差チャネル207により廃液リザーバ208に連結される。サンプルインジェクター100はまた、カソード端210およびアノード端212も有する。カソードおよびアノード端210および212は、第1の分離チャネル202の逆の端に位置する。同様に、第2のカソード端214は、廃液リザーバ208に連結された分離チャネル222によって、第2のアノード端216に連結される。以下に図示するように、アノードリザーバ211および212、カソードリザーバ200および214、サンプルリザーバ200、204、220、224および廃液リザーバ208の適切なバイアスによって、サンプルは、それらのそれぞれのサンプルリザーバ200、204、220および224から、交差チャネルを通過して、廃液リザーバへと移動し得、それによって、分離チャネルへの挿入が容易となる。
【0021】
図3A、3B,3Cおよび3Dを参照して、サンプルのそれぞれのサンプルリザーバから、交差チャネルへのローディングの過程、そして続く分離の実施について示す。図3Aにおいて、注入電圧、好ましくは、約300ボルト(3.0V/cm)が、サンプルリザーバ200および注入廃液リザーバ208との間において適用され、サンプルリザーバから廃液リザーバに通じ、分離チャネルを横切る、チャネルを通してサンプルを引き出す。
【0022】
図3Bにおいては、例えば、約3700ボルト(300V/cm)の分離電圧が、カソード端210およびアノード端212の間において適用される。これは、サンプルの電気泳動的な分離を引き起こす。さらに、サンプルリザーバ200および注入廃液リザーバ208の間の電位の逆バイアスが、適用される。好ましくは、逆バイアスの電圧は、約720ボルトである。逆バイアス操作は、注入交差チャネル213からの過剰なサンプルを一掃する。図3Bに図示したように、100μmのサンプルプラグが、注入され、そして任意の残りのサンプルが、テーリング副作用を避けるために注入領域から取り除かれる。図3Cおよび図3Dは、第2のサンプルリザーバ204からの類似した注入を示す。図2および図3A〜3Dの実施例は、2つのサンプルを操作するが、4つのサンプルを、有意な相互混入をすることなしに、一つのキャピラリーに注入し得る。
【0023】
代表的なマイクロプレート中への、エッチングパターンの工程を、以下に示す。1つの微細加工の実施例において、Schott Corporation of Yonkers,NYから入手可能な、ボロフロートグラスウェーハー(Borofloat glass wafers)は、15秒間、49%HFでプレエッチングされ、そしてプラズマ増強化学蒸着法(PECVD)システムにおける約1500Åのアモルファスシリコン犠牲レイヤーの沈着の前に洗浄される。ウェーハは、ヘキサメチルジシラザンでプライムし、Shipley Corp. of Marlborough、MAから入手可能な1818フォトレジストのようなフォトレジストを用いて、5000rpmでスピンコートされる。このフォトレジストは、Shipleyより入手可能なマイクロポジット現像濃縮液と水との1:1混合液中で現像される。次いで、ウェーハは、30分間90℃で緩やかに焼かれる。マスクパターンは、Quintelのコンタクトマスクアライナー中で紫外線にフォトレジストを露光させることにより基板に転写される。マスクパターンは、PECVDリアクターでのCF4プラズマエッチを行うことにより、アモルファスシリコンに転写される。ウェーハは、49%HF溶液中で7μm/分のエッチング速度で約3分間エッチングされ、最終的なエッチングの深さが21μmそしてチャネルの幅が、結合表面で60μmまでの幅になるように形成する。フォトレジストは、除去され、そして残されたアモルファスシリコンはCF4プラズマエッチにより取り除かれる。孔は、Westerville、OHのCrystalite Corporationから入手可能な、1.25mm直径ダイヤモンドチップドリルビットを用いて、エッチングされたプレートにドリルで孔を開けられる。エッチングされ、ドリルで孔を開けられたプレートは、プログラマブルバキュームファーネス内で類似したサイズおよびタイプの平らなウェーハと熱により接着される。接着後チャネルの表面は、コーティングプロトコールを用いてコートされる。
【0024】
次いで、図4Aおよび4Bにおいては、CAEマイクロプレートの分解組立図および断面図が示される。図4Aは、CAEマイクロプレート302上に形成されるエッチングされた分離チャネル301および複数のリザーバ303がCAEマイクロプレート302と共に提供される。リザーバアレイレイヤー304は、CAEマイクロプレート302の上にマウントされ、マイクロプレート302上に形成されるリザーバの上にさらなるリザーバ空間を提供する。リザーバアレイレイヤー304の存在は、カソードおよびアノードリザーバ中の緩衝液の溶量を増加させ、そしてサンプルの操作および電極の導入を簡便にする。好ましくは、リザーバアレイレイヤー304は、ガラスマイクロプレート302と接触させた場合、防水シールが作製された、1ミリメートルの厚みのエラストマーシートである。リザーバアレイレイヤー304は、Midland、MichiganのDow Corningから入手可能なSylgard 184のようなエラストマーにであり得る。
【0025】
リザーバアレイレイヤー304は、チャネルが分離培地で満たされる前に、マイクロプレート302の上に置かれる。好ましくは、分離培地は、1μMのエチジウムブロマイドを含有する、1XTBE緩衝液中の、0.75% (重量/容量)の、ヒドロキシエチルセルロース(HEC)である。さらに、リザーバアレイ304は、リザーバからお互いに十分に単離される。分離チャネルは、全てのチャネルが満たされるまで、アノードリザーバ180からのシービングマトリックス(sieving Matrix)で圧力で満たされる。次いで、アノードおよびカソードリザーバ180および120は、電気泳動中のイオンの枯渇を減少するために、10XTBE緩衝液で満たされる。このサンプルリザーバは、脱イオン水でリンスされる。次いで、サンプルは、8チップピペッタを用いて、マイクロタイタープレートからロードされる。
【0026】
リザーバアレイレイヤー304を、マイクロプレート302の上に置いた後、電極アレイ306が、リザーバアレイ304の上に置かれる。電極アレイ306は、プリント回路基板を通して、プラチナワイヤーのような導体のアレイを配置して組み立てられる。各導体は、マイクロプレート302上で、リザーバと系合するように適合される。さらに、ワイヤーは、回路基板上の金属ストリップと電気的に連結され、個々の共通なタイプのリザーバを、電気的に並行して処理することを可能にする。電極アレイ306はまた、緩衝液の蒸発の可能性を減少する。次に電極アレイ306は、1つ以上のコンピューター制御電源と連結される。
【0027】
図4Bに示すように、リザーバアレイレイヤー304は、マイクロプレート302と連結して用いた場合、マイクロプレート302に本来つくられたリザーバの有効容積を拡大する。さらに、電極アレイ306の電極は、マイクロプレート302およびリザーバアレイレイヤー306のリザーバをプローブするのに適合されている。溶液は、ピペッタ308によりリザーバ中に置かれる。
【0028】
アセンブリ後、図5に示すように、CAEマイクロプレート302は、ガルボスキャナシステム400でプローブされる。システム400は、チャネルの検出帯域で検出器を用いて蛍光を計測する。電気泳動のプロセスの間に、蛍光種は、検出帯域を横切りながら、入射レーザービームにより励起される。直接蛍光検出システムにおいて、標的種は蛍光性であるか、またはそれが発蛍光団で標識することにより蛍光性種へと変換されているかのどちらかである。蛍光性種が検出帯域を横切って通過すると変化を生じる(典型的にはシステム400により検出し得る蛍光の増大)。
【0029】
次に分析システムにもどり、ガルボスキャナ400は、周波数が倍増された(frequency−doubled)YGAレーザー(例えば、YGAレーザーはCalifornia、San JoseのUniphase Corporationから入手可能)を有する。YGAレーザーは、30mW、532nmビームであり得るビームを発生する。レーザー402により発生したビームは、励起フィルター404を通過し、そしてミラー406により方向を変えられる。ミラー406から、ビームはビームエキスパンダー408を通過する。拡大後、ビームはダイクロイックビームスプリッタ410に向けられる。レーザービームは、最終レンズアセンブリ422へビームを向ける反照検流計(galvonometer)420へ向けられる。このように、ビームは、約5μmのスポットに焦点を合わされ、ここで、ビームがチャネル中の分子からの蛍光を励起し、そして40Hzでチャネルを横切ってスキャンされる。生じた蛍光は、最終レンズによって集められ、そして反照検流計(galvomirror)およびダイクロイックビームスプリッタ410を約545〜620nmの範囲で作動する発光フィルター412へ向かって通り抜けた。発光フィルター412を通り抜けた後、ビームは、レンズ412によって焦点を合わされる。次に、ビームは、ピンホール416(例えば、増倍電光管(PMT)418へ送達する400μmピンホール)の中を通るように向けられる。
【0030】
電極アレイ306は、1つ以上の電源装置428(例えば、シリーズPS300、Sunnyvale、CaliforniaのStanford Research Systemsから入手可能)に接続される。電源装置は、コンピューターに接続され、そしてソフトウェアが自動的に時間および電極アレイ306への適切な電圧の切り換えを制御する。そのソフトウェアは従来のコンピューター言語で書かれ得るか、またはLabVIEW(National Instruments of Austin、Texasより入手可能)のようなデータ収集ソフトウェアに特定され得る。次に、空間的に別々の蛍光発光に相当するデータは、Burr−Brown Corporation of Tucson,Arizonaの16ビットA/Dコンバーターを用い約77kHzで取得し得る。次に、対数データ圧縮は、動的測定範囲の5つの線形順序の生成に適用される。そのデータは、16ビットイメージとして得られ、次に、電気泳動図は、各チャネルを横切るデータポイントを計算するのに適したソフトウェア(例えば、IPLab、Signal Analytics,Vienna,Virginiaより入手可能)を用いて作成される。全てのレーンの検出が、0.09秒時間分解能で、システム400により成し遂げられた。
【0031】
(実験)
HFE(遺伝ヘモクロマトーシスのためのマーカー遺伝子)の電気泳動分離および蛍光検出は、本発明のCAEマイクロプレートを用いた生物学的に関連のあるサンプルの高処理量分析を実証するために行われた。HFEは、時が経てば疾患を生じる組織中の鉄の蓄積を生ずる遺伝的障害である。この蓄積は最初に肝臓に影響する。白人(コーカサス人)集団の0.1〜0.5%は、この疾患の原因であるHFE C282Y変異体についてホモ接合性である。もし早期に検出されれば、処理が開始され得、そして長期的効果を避けられ得る。このマーカー遺伝子について集団をスクリーニングするため、高処理量スクリーニングシステムが必要とされる。
【0032】
本実験において、サンプルは、HFE遺伝子中のC282Y変異をアッセイするためにPCR増幅そして消化を用いて調製された。ヌクレオチド845のこのGA変異は、HFE遺伝子中にRsaI制限部位を生じる。DNA物質は、標準的な方法を用いて末梢血白血球から単離された。変異体部位を含むHFEエキソンは、以下のプライマーで増幅させた:
HH−E4B:5’GACCTCTTCAGTGACCACTC3’
HC282R:5’CTCAGGCACTCCTCTCAACC3’
HC282Rプライマーは、Federら、Nature Genet.13,399〜408(1996)(本明細書で参考として援用する)で議論されたプライマーである。HH−E4Bプライマーは、5’ビオチンタグを含む。25μl増殖反応は、10mM Tris−HCl(pH=8.8)、50mM KCl、0.75mM MgCl2、0.2mM dNTP、各プライマー7.5pMおよび1.5U AmpliTaq DNA(Perkin Elmer,Branchburg,NJから入手可能)を含む。このPCRを、3つの継続的条件下で実行した:5サイクル(95℃1分間、64℃1分間、72℃1分間)、5サイクル(95℃1分間、60℃1分間、72℃1分間)、および25サイクル(95℃1分間、56℃1分間、72℃1分間)。増幅産物の制限消化は、2U Rsa I(Sigma,St.Louis,MO)を含む6μl緩衝液へ各増幅されたサンプルの4μlを加え、そして37℃で90分間消化することにより実行された。サンプルは、96サンプル透析プレート(Millipore,Bedford,MAから入手可能)上でDI水に対して透析された。サンプル型は初め、0.5×TBE中、1%アガロース−3%SeaPlaqueゲル(FMC Bioproducts,Rockland,MEから入手可能)上の制限フラグメントの分離により確立された。ゲルは、30分間0.5μg/ml臭化エチジウムで染色し、そしてUV透過照明器(Spectroline モデル TR−302)上で、123bpラダ―(Life Technologies Inc.,Gaithersburg,MDから入手可能)を用いて可視化して、フラグメントサイズを決定した。
【0033】
図6Aおよび6BはCAEマイクロプレート上の96個のHFEサンプルの分離のイメージを示す。96個のサンプルを、1チャネルあたり二つのインジェクションリザーバに相当する、48個のサンプルの2回の実行に別けた。本実験において、19個の異なるサンプルを96サンプルウェルに分散して、サンプル分析において5倍の冗長性を与えた。オリジナルイメージ500は、第1の注入について得られ、一方オリジナルイメージ504は、第2の注入について得られた。さらに、オリジナルイメージ500および504に相当する、拡大イメージ502および506が示されている。示されている電気泳動イメージの幅は、48レーンについて7.4mmであり、そして96サンプルの完全な分析は、8分未満で行われた。拡大イメージは、そのバンドが、高い強度および分解能であることを示す。このイメージは右レーンが左より約20秒速いスマイルを示す。これは、スキャニングレンズからの適切な間隔を守る注入領域側へのアノードの配置により生じる電気泳動電圧の勾配によって生じる。
【0034】
図7は、図6Aおよび図6Bのイメージから得られた96個の電気泳動図を示す。全ての電気泳動図は、分離物と比較する目的で167 bpダブレットと整列させるために移動されている。167 bpフラグメントは、HH E4Bプライマーの部分的なビオチン化(ビオチン化形態がそのダブレット中のより遅く移動するフラグメントを説明するように)に起因してダブレットとして現れる。167 bpダブレットは、分離を比較する電気泳動図のアライメントのための有用な基準点を提供し、そしてサイズ決定ラダーの必要なしに正確な遺伝子型決定を許容する。図7に示すように、111 bpと140 bpバンドとの間の平均距離は、第1の注入について、それぞれ、0.8秒および0.6秒の標準偏差(SD)を伴って7.3秒、および第2の注入について、それぞれ、1.1秒および0.5秒のSDを伴って6.6秒である。t検定を用いて、両注入の型決定(typing)は、約99.9%の信頼水準であると決定された。
【0035】
図8に言及すると、CAEマイクロプレート600の第二の実施態様が示されている。図8において、マイクロプレート600は、それぞれ廃液リザーバ602および608、サンプルリザーバ604、606、610および612を含むインジェクターのアレイである。各インジェクター単位は、それぞれ、2つのカソードリザーバ614または616の1方と接続されている。さらに、各インジェクター単位は、キャピラリーまたはチャネル620のアレイの1つのキャピラリーと接続されている。キャピラリーまたはチャネル620は、アノード630と接続されている。この設計において、96個のサンプルは、1つのキャピラリーに連続的に4個のサンプルを注入することにより分析され得る。さらに、24個の分離キャピラリーまたはチャネルは、96個のサンプルリザーバ中の物質の分析に用いられる。その上、インジェクター単位のそれぞれは、2つの廃液リザーバを有する。合計で、図8の実施態様は3N/2+3の孔数を有する。
【0036】
次に図9に言及すると、CAEマイクロプレート650の第3の実施態様が、開示される。図9のCAEマイクロプレート650において、カソードリザーバ652は、CAEマイクロプレート650の周囲に配置される。さらに、1つのアノードリザーバ660は、CAEマイクロプレート650の中心に配置される。より長い分離チャネルが所望される場合、分離チャネルまたはキャピラリーは単に、螺旋型のマイクロプレート650の中心に向かってマイクロプレート650の外周から広がり得る。あるいは、短い経路が所望される場合、分離チャネルまたはキャピラリーは単に、CAEマイクロプレート650の中心660へ向かってマイクロプレート650の周囲を接続する直線であり得る。
【0037】
次に図10および11にもどると、図9のCAEマイクロプレートのインジェクター単位および図9のマイクロプレートの周囲のインジェクター単位の位置が、詳細に図示されている。図10において、2つの分離チャネルまたは、キャピラリー670および671は、共通廃液リザーバ672または共通カソードリザーバ674に接続されている。さらに、分離チャネル670および671は、サンプルリザーバ676および678に接続されている。図10および11に示すように、サンプルと廃液リザーバとの間の接続は、オフセットした方法(off−set manner)で交差し得る。
【0038】
次に図12に言及すると、図9の共通アノード660が、詳細に図示されている。図11に示すように、複数の分離チャネルまたはキャピラリー800〜810は、中心領域820に集まる、放射状のパターンであり得る、曲線パターンを形成する。中心領域820から、分離チャネルまたはキャピラリーは、中心領域820の周囲から、CAEマイクロプレートの中心での共通アノードリザーバ660への通路を形成する。中心領域820は、回転スキャナが検出目的で用いられ得る領域である。
【0039】
サンプルは、手動または自動で充填され得る。連続的注入は、予定されたキャピラリーの数のサンプル処理能力の増大に用いられ得る。さらに、本発明の1つの実施態様は1チャネルあたり2つのサンプルを注入する一方、1チャネルあたり4個のサンプルの注入を用いて、1プレートあたり192個のサンプルを分析し得る。その上、CAEマイクロプレート上のキャピラリーの数の増加は、任意のサンプル汚染の導入なしに処理能力を対応し増大させた。さらに、プレートはガラスまたはプラスチックで作られ得る。
【0040】
さらに、スキャニング検出システムは、その対物レンズの反転および下からのスキャニングにより変化し得る。プレートの下の光学機器の構成部品の位置は、容易な操作およびサンプルの導入を許容した。スキャニングの反転もまた、アノードリザーバとの空間的衝突をさけ、それによってアノードの中心配置を許容した。その上、PCR反応チャンバのアレイは、本発明のマイクロプレートとともに用いられて低容量サンプルの完全な増幅を可能にし得、サンプル操作および手動の移動の排除し得、およびコスト削減し得る。さらに、本発明は、電子電熱器、熱伝対、および検出システムが、CAE電気泳動プロセスを増強する微小流体(microfluidic)キャピラリーのアレイを用いられ得ることを熟慮する。
【0041】
本発明は、その1つの実施態様を参照して示しそして記載してきたが、当業者は、形態および詳細における上記および他の変化が、以下の請求の範囲の精神および範囲から逸脱することなくなされ得ることを理解する。
【図面の簡単な説明】
明細書に取り込まれ、そしてその一部を構成する添付した図面は、本発明を模式的に示し、および上記の一般的な説明、および以下の詳細な説明とともに、本発明の原理を説明する。
【図1】 図1は、キャピラリーアレイ電気泳動(CAE)マイクロプレートの配置図である。
【図2】 図2は、図1のサンプルインジェクターの模式図である。
【図3】 図3A〜3Dは、図2のサンプルインジェクターの操作の図である。
【図4】 図4Aは、CAEマイクロプレートアッセンブリの分解透視図である。図4Bは、図4AのCAEマイクロプレートアッセンブリの断面図である。
【図5】 図5は、CAEマイクロプレートと連結したレーザー励起ガルボスキャナーの図である。
【図6】 図6Aおよび6Bは、遺伝性ヘモクロマトーシスのための遺伝子マーカーの分離イメージである。
【図7】 図7は、図6Aおよび6Bのイメージから作成される電気泳動図のプロットである。
【図8】 図8は、第二のCAEマイクロプレートの配置図である。
【図9】 図9は、第三のCAEマイクロプレートの配置図である。
【図10】 図10は、図9のサンプルインジェクターの模式図である。
【図11】 図11は、図9のCAEマイクロプレート配置図の周辺部分の拡大図である。
【図12】 図12は、図9のCAEマイクロプレート配置図の中心部分の拡大図である。
Claims (23)
- キャピラリーアレイ電気泳動プレートであって:
該プレート上に作製される複数の分離チャネル;
該分離チャネルに連結される複数のサンプルリザーバであって、ここで、各分離チャネルは、少なくとも2つのサンプルリザーバに液体連結される、サンプルリザーバ;
2つ以上の該分離チャネルに連結される廃液リザーバ;
2つ以上の該分離チャネルに連結されるアノードリザーバ;および
2つ以上の該分離チャネルに連結されるカソードリザーバ;
を備える、キャピラリーアレイ電気泳動プレート。 - 前記プレート上にマウントされたリザーバアレイレイヤーをさらに備え、該リザーバアレイレイヤーは、それを通って延びる複数の孔を有するシートを備え、ここで、該孔は、該プレート上の該リザーバに対応するパターンで分散される、請求項1に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記リザーバアレイレイヤー上にマウントされた電極アレイをさらに備え、該電極アレイは基板を備え、該基板は該基板の表面から延びる導体のアレイを有し、該導体は、各導体が該リザーバアレイレイヤー内の前記複数の孔のうちの一つと係合することを可能にするパターンで分散される、請求項2に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記複数のサンプルリザーバが、前記プレート中に規則正しく間隔を置いて配置される、請求項1に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記分離チャネルが、前記キャピラリーアレイ電気泳動プレート上に放射状のパターンで配置される、請求項1に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記分離チャネルが、前記キャピラリーアレイ電気泳動プレート上に螺旋方のパターンで配置される、請求項1に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記分離チャネルが、前記キャピラリーアレイ電気泳動プレート上に折りたたまれたパターンで配置される、請求項1に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 請求項1に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレートであって、前記廃液リザーバは、
前記複数の分離チャネルに連結された複数の廃液リザーバ、
を備え、前記プレートは、
分離チャネルを横切り、そして、廃液リザーバに連結するサンプルリザーバに連結した交差チャネルによって形成される、インジェクター、
をさらに備える、キャピラリーアレイ電気泳動プレート。 - 前記複数の分離チャネルが第1の基板の表面に形成され、そして、第2の基板の対応する表面が該第1の基板の表面に結合する、請求項8に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記プレート上にマウントされたリザーバアレイレイヤーをさらに備える、請求項8に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレートであって、ここで、該リザーバアレイレイヤーは、それを通って延びる複数の孔を有するシートを備え、ここで、該孔は、該プレート上の該リザーバに対応するパターンで分散される、キャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記第1の基板が、前記サンプルリザーバ、前記廃液リザーバ、前記カソードリザーバ、および、前記アノードリザーバと整列した電極のアレイを備え、該電極のアレイは、該サンプルリザーバ、該廃液リザーバ、該カソードリザーバ、および、該アノードリザーバの組合せ中の複数の溶液に対して電気的に接触する、請求項9に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記電極アレイが前記2つの基板と一体である、請求項11に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記キャピラリーアレイ電気泳動プレートがH個のリザーバを備え、Hは5N/4+7に等しく、ここでNはサンプルリザーバの数である、請求項8に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- さらに、前記プレートと電気的接触をする電極アレイを備える、請求項8に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記両方の基板がガラスから作製される、請求項9に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記両方の基板がプラスチックから作製される、請求項9に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記キャピラリーアレイ電気泳動プレートが、ガラスとプラスチックの組合せから作製される、請求項9に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 請求項1に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレートであって、さらに、以下:
前記プレートの外周近傍に位置するカソードリザーバの第1のセット;
前記プレートの中心近傍に位置するアノードリザーバの第2のセット;
をさらに備え、ここで、該第2のセット内のリザーバの数は、該第1のセット内のリザーバの数よりも少なく、そして、ここで、前記複数の分離チャネルは、該カソードリザーバの第1のセットを、該アノードリザーバの第2のセットに連結する、キャピラリーアレイ電気泳動プレート。 - 前記複数の分離チャネルが、前記リザーバの第1のセットを、前記リザーバの第2のセットに放射状に連結する、請求項18に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 請求項1に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレートであって、前記廃液リザーバは、前記分離チャネルに連結した廃液リザーバのアレイを備える、キャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記カソードリザーバが、前記分離チャネルに連結されたカソードリザーバのアレイを備える、請求項1に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 前記アノードリザーバが、前記分離チャネルに連結されたアノードリザーバのアレイを備える、請求項1に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレート。
- 請求項13に記載のキャピラリーアレイ電気泳動プレートであって、さらに、前記サンプルリザーバおよび前記廃液リザーバと整列し、そして、該サンプルリザーバおよび該廃液リザーバの組合せ中の複数の溶液に対して電気的に接触する電極のアレイを備える、キャピラリーアレイ電気泳動プレート。
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