JP4494399B2 - L‐乳酸の製造方法 - Google Patents
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Description
また本発明者らは、胞子を形成したSANK 70182株を用いることで、乳酸発酵を行う微生物の取り扱い性を向上させ、生産性の制御の容易化と、さらなるコストの低減が可能であることを見出した。
を得る第一工程と、前記バチルス属の微生物、又はSANK 70182株を用いて前記基質を乳酸発酵する第二工程とを有し、前記基質を加熱殺菌せず、前記第二工程において発酵温度を45〜60℃とすることを特徴とする。ここで、前記木質系バイオマスは、古紙であることが好ましい。前記バチルス属の微生物、又は前記SANK 70182株の、胞子を用いることが好ましい。
木質系バイオマスとしては、例えば、古紙、木材、農業廃棄物等が挙げられる。古紙としては、例えば、オフィス紙の古紙(以下「オフィス古紙」という)、雑誌、段ボール紙、新聞紙等が挙げられる。木材としては、例えば、建設系廃木材、間伐材、林地残材、製紙廃液等を用いることができる。また農業廃棄物としては、例えば、籾殻、稲わら、麦わら、トウモロコシの茎・葉、バガス等を用いることができる。
上記の木質系バイオマスの中でも、特に古紙はセルロース分を多く含み、且つリグニン分が少ないので、薬品や熱を用いた前処理をしなくても酵素によって比較的容易に加水分解される。このような理由から、古紙を用いることが好ましい。
ここで、バチルス属の新種であるSANK 70182株を用いることができ、当該SANK 70182株の変異株を用いてもよい。SANK 70182の変異株を用いる場合、16S rDNAの塩基配列が配列番号1で示される変異株が好ましく用いられる。
SANK 70182株は、乳酸発酵を行うために通気を必要としない。したがって、前記第二工程を嫌気的に行うことができ、製造装置において通気機構を設けないことで、運転および設備コストを低減することができる。
第二工程において、前記基質は滅菌することなく用いる。また、第二工程において、発酵温度は45〜60℃とする。
特定塩基配列を有するバチルス属の新種、又は前記SANK 70182株としては、胞子を用いることが好ましい。
例えば、発酵容器に窒素源、少量の無機塩類、及び前記基質を入れて発酵培地を調製し、この発酵培地に胞子を形成した前記SANK 70182株の菌体を、シード(以下、「シード」という)として添加することができる。
胞子は環境条件を整えると速やかに発芽し、生育するので、乳酸発酵の前段にシード培養(予備培養)を行う必要がなく、ストックした胞子を一定量添加することによって発酵を行うことができる。したがって、シード培養に必要な時間、エネルギー、予備培養槽などの装置、等を削減することができ、コストを削減することができるとともに、添加する胞子の量を調整することによって、生産速度や総生産量の制御を容易に行うことができる。また、培養槽を木質系バイオマスの発生場所に立地させることができ、その輸送に必要な時間・コストを低減することができる。
また、胞子は乾燥に強いため、SANK 70182株などの胞子を乾燥、粉末化して保存、輸送することができる。このように乾燥して粉末化したものを用いれば、大量培養に容易に対応可能となるだけでなく、取り扱いが簡便となり、菌の保存・輸送コストを低減することができる。上述のように菌体が取り扱いやすいため、菌体の管理において熟練した技術が必要なく、自動化が容易となる。
例えば、上述の前処理の施された木質系バイオマスを糖化槽に供給し、糖化槽において前記第一工程を完了して基質を得た後に、該基質を配管を介して発酵槽に移送して、前記第二工程を開始することができる。また、前記第一工程による加水分解と、得られた基質の発酵槽への移送と、前記第二工程による乳酸発酵とを、並行して進行させてもよい。
このように資化可能な炭素源からL−乳酸を製造する場合、微生物を予備培養するための予備発酵槽を有さず、基質を加熱殺菌するための殺菌機構を有さず、コンタミネーション防止機構を有さない上述の製造装置を用いることができる。
なお、資化可能な炭素源からのL−乳酸の製造において、上記特定配列を有するバチルス属の新種、又は前記SANK 70182株の胞子を用いることが好ましい。
バチルス(Bacillus)属の新種であるSANK 70182株は、埼玉県新座市の堆肥から分離された株である。
1.形態学的性状
普通寒天培地(栄研)で45℃、24時間培養後の観察では、細胞が幅1μm、長さが4−6μmの桿菌であり、運動する。グラム染色は、陽性である。培養72時間後には、タマゴ型または長い楕円の胞子が細胞の端に形成され、胞子を形成した細胞の端が膨張する。
普通寒天培地(栄研)で45℃、48時間培養後のコロニーは扁平、周辺は波状である。コロニーの色調は灰味茶黄で、鈍光を有する。
(1)カタラーゼ:+
(2)好気条件下での生育:+
(3)嫌気条件下での生育:+
(4)酸の生成
D−グルコース:+
D−キシロース:+
L−アラビノース:+
D−マンニトール:−
可溶性でんぷん:+
(5)硝酸塩の還元:+
(6)ガスの生成:−
(7)カゼインの分解:−
(8)ゼラチンの分解:−
(9)VP試験:+
(10)生育温度
27℃:+(微弱)
40℃:+
45℃:+(良好)
50℃:+(良好)
55℃:+
65℃:−
(11)NaCl含有培地での生育
5%:+
7%:−
(1)G+C含量:46.6%
(2)16S rDNAの解析:解読した塩基配列(463)(配列番号1で示される)の38−463塩基部分をジーンバンク(GenBank)に登録されている細菌の各種の基準株のデータと比較し、サイトウ・エヌ・エンド・エム・ネイ、モル・バイオ・エボル(Saitou N.,and M.Nei,Mol.Bio.Evol.)4、406−425(1987年)の近隣結合法により系統解析したところ図1に示す結果が得られ、系統的にはバチルス(Bacillus)属に属した(図1)。しかし、最も近接であるバチルス・コアグランス(Bacillus coagulans)の基準株とは8塩基異なった。
SANK 70182株は、「バチルス(Bacillus)属の新種 SANK 70182」として2004年3月29日、日本国茨城県つくば市東1‐1‐1中央第6の独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに国際寄託され、受託番号FERM BP−08672を付与された。
(シード)
予め、スラント固体培地を用いてSANK 70182株を37℃で培養し、保存用スラントとした。
保存用スラントからコロニーを約10mm×10mm採取し、下記組成の発酵培地に添加して、下記培養条件で培養した。
(発酵培地)
炭素源:グルコース、100g/L
窒素源:CSL、20g/L
無機塩:MgSO4・7H2O、0.3g/L
pH調整:CaCO3、40g/L(培養初期に添加)
(培養条件)
発酵容器:200mL三角フラスコ、液量50mL、シリコーンゴム栓
温度:47℃
振とう:往復80rpm
(分析)
培養終了後、培養液を遠心分離し、遠心上清中のL‐乳酸、D‐乳酸の濃度を、ロシュ・ダイアグノスティック社製「F−キット D−乳酸/L−乳酸)を用いた酵素法によって分析した。
培養40時間後の上清の乳酸の量は55.7g/L、その中のL−乳酸の量は54.4g/L、D−乳酸の量は1.3g/Lであり、L−体の光学純度は95.3%であった。なお、L‐乳酸の光学純度は、次式により算出した。
L‐乳酸の光学純度(%)=(L−D)/(D+L)×100
ここで、LはL‐乳酸の濃度、DはD‐乳酸の濃度(L‐乳酸の濃度と同一の単位とする)を示す。
木質系バイオマス:オフィス古紙を用いた。
菌株:バチルス(Bacillus)属の新種であるSANK 70182株(FERM BP−08672)
シード:炭素源としてグルコースを用い、60時間培養し、胞子を形成させた培養液を1ヶ月冷蔵保存したものを用いた。
(第一工程)
オフィス古紙10w/w%分散液に、セルラーゼ(「セルロシン T2」、エイチビイアイ製)をオフィス古紙に対して5w/w%添加し、45℃、pH4.5にて48時間処理して加水分解した後、吸引濾過した濾液を回収して、基質となる古紙糖化液を得た。
(第二工程)
得られた基質を炭素源として、下記組成の発酵培地を調整した。この発酵培地に、上記で得られたシードを5v/v%添加し、下記培養条件で48時間培養することにより乳酸発酵を行った。
(発酵培地)
炭素源:古紙糖化液
窒素源:CSL、20g/L
無機塩:MgSO4・7H2O、0.3g/L
pH調整:5mol/Lアンモニア水溶液でpH7.0に制御した。
(培養条件)
発酵容器:5Lジャーファーメンター、液量2L
温度:45℃
攪拌:80rpm
通気:なし
第二工程において、発酵培地中の乳酸、酢酸、糖類[グルコース(Glu)、キシロース(Xyl)、マンノース(Man)、セロビオース(Cello)]の濃度、及び乾燥菌体重量を経時的に測定した。測定においては、高速液体クロマトグラフィー(HPLC)を用い、カラムはBioRad社製「HPX−87P」を用いた。結果を図2に示す。以下、図2、3において、左縦軸は有機酸(乳酸、酢酸)、糖類の濃度を示し、右縦軸は乾燥菌体重量を示し、横軸は培養時間を示す。
また、得られた乳酸について、上記と同様の方法でL‐体の光学純度を求めたところ、D‐乳酸の濃度が1.2g/L、L‐乳酸の濃度が48.6g/L、L‐体の光学純度が95.2%であった。
得られた乳酸において、D‐乳酸の濃度が2.2g/L、L‐乳酸の濃度が39.6g/L、L‐体の光学純度が89.5%であった。
第二工程において、発酵温度を35℃とした以外は、実施例2と同様にして乳酸を製造した。その結果、乳酸の生産量が低下した。なお、実施例2と同様にL‐体の光学純度を求めたところ、89%であった。
基質としてデンプンの糖化液を用いた以外は実施例2と同様にして乳酸を製造した。生産性は良好であったが実施例2よりもコストが高かった。なお、D‐乳酸の濃度が5.8g/L、L‐乳酸の濃度が61.2g/L、L‐体の光学純度が82.7%であった。
グルコースは20時間程度でほぼ全て消費され、乳酸生産量もこれに連動して0時間〜20時間の間で大きく増加した。古紙糖化液において糖の10%程度を占めていたキシロースは、グルコースに比べ消費される速度が遅いものの、実施例3では30時間でほぼ100%消費され、実施例2では70時間で80%程度消費された。発酵率、即ち糖に対する乳酸収率は仕込んだ基質中の糖ベースで実施例2、3につきそれぞれ75%、90%であった。また消費した糖ベースでそれぞれ77%、92%であった。
また、実施例で得られた乳酸は、L‐体の光学純度が高く、ポリ乳酸の原料を得るために良好なものであった。
一方、発酵温度を35℃とした比較例1では、乳酸の生産量が低下し、効率が悪かった。
Claims (6)
- バチルス属の微生物であるSANK 70182株(FERM BP−08672)。
- バチルス属の微生物であるSANK 70182株(FERM BP−08672)の変異株であり、
配列番号1で示される16S rDNAの塩基配列を有し、
D−キシロースからの酸の生成、L−アラビノースからの酸の生成、硝酸塩の還元、及び5%NaCl含有培地での生育が陽性であるバチルス(Bacillus)属の微生物。 - 請求項2に記載のバチルス属の微生物、又は請求項1に記載のSANK 70182株と、資化可能な炭素源とを用いるL−乳酸の製造方法。
- 木質系バイオマスを加水分解して糖を含む基質を得る第一工程と、請求項2に記載のバチルス属の微生物又は請求項1に記載のSANK 70182株を用いて前記基質を乳酸発酵する第二工程とを有し、前記基質を加熱殺菌せず、前記第二工程において発酵温度を45〜60℃とすることを特徴とするL−乳酸の製造方法。
- 前記木質系バイオマスは、古紙であることを特徴とする請求項4に記載のL‐乳酸の製造方法。
- 前記バチルス属の微生物又は前記SANK 70182株の、胞子を用いることを特徴とする請求項4又は5に記載のL−乳酸の製造方法。
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