JP4436134B2 - ドレクスレラノール誘導体、その製法及び使用 - Google Patents
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Description
RはH、又は式−(CH(OR2))5−CH2−OR2の基であり、
R1及びR2は、それぞれ互いに独立して、
1.0 H又は
2.0 C1−C6−アルキル、C2−C6−アルケニル、C2−C6−アルキニル又はC5−C10−アリール基であり、ここで、アルキル、アルケニル及びアルキニルは直鎖又は分枝鎖であり、またこれらの基は場合により
2.1 −OH、
2.2 =O、
2.3 直鎖又は分枝鎖の−O−C1−C6−アルキル、
2.4 直鎖又は分枝鎖の−O−C2−C6−アルケニル、
2.5 −アリール、
2.6 直鎖又は分枝鎖の−NH−C1−C6−アルキル、
2.7 直鎖又は分枝鎖の−NH−C2−C6−アルケニル、
2.8 −NH2又は
2.9 ハロゲン
(ここで、2.3から2.7の置換基は−CN、−アミン又は−オキシム官能基で更に置換されることができる)で一置換又は二置換されている]の化合物、又は式(I)で表される化合物の立体異性体又は式(I)で表される化合物の生理学的に許容され得る塩、或いは、式(I)で表される化合物の立体異性体の生理学的に許容され得る塩に関する。
Rは、H又は式−(CH(OR2))5−CH2−OR2の基であり、
R1及びR2はそれぞれ互いに独立して、H又はC1−C6−アルキル、或いはこれら好ましい化合物の立体異性体及び/又は生理学的に許容され得る塩に関するものである。
Rは式−(CH(OR2))5−CH2−OR2の基であり、
R1及びR2は、Hである化合物、又はその好ましい化合物の立体異性体及び/又は生理学的に許容し得る塩に関する。そのような化合物としては、式(II)で表される化合物がある。
者にとって既知の方法により、対応する医薬品として許容され得る塩に変換することができる。
scheroder Weg 1B, 38124 Brunswick, Germanyに寄託しており、寄託番号はDSM 14524である。
(a)微生物ST 003360(DSM 14093)又はST 003360(DSM 14093)の変株及び/又は突然変異株を液体培地中で培養した後に、式(II)で表される化合物を単離し、精製し、又は微生物ST 004112(DSM 14524)若しくはST 004112(DSM 14524)の変株及び/又は突然変異株を液体培地中で培養した後に式(III)で表される化合物を単離し、精製し、そして
(b)式(II)で表される化合物又は式(III)で表される化合物を式(I)で表される化合物へ変換し、そして
(c)式(I)で表される化合物を、適当な場合は、薬理学的に許容し得る塩へ変換することより成る式(I)で表される化合物の製法に関するものである。
蓄積した活性物質の生物活性値を例えばJNK−3−又はhCK1ε−阻害活性値を測定することにより、或いは発酵液中のJNK−3−又はhCK1ε−阻害として知られている化合物を例えばHPLC又はLC−MS測定法で測定することによる検出法で行うことができる。
栄養培地中で準備し、その後、生産培養である本培養に例えば、1:10から1:100の容積比で行った。前培養は、例えば、菌糸体を栄養培地に摂取した後、約36〜120時間、好ましくは48〜72時間培養して増殖させた。菌糸体は、例えば麦芽−酵母寒天、又はポテトデキストロース寒天の固体又は液体培地中で約3〜40日間、好ましくは4〜10日間培養して増殖させた。本発明について更に実施例において具体的に説明する。パーセントは重量パーセントである。混合比は液体培地の場合は他に説明がない限り容積比である。
Haas社製、USA)、Amberchrom(R)CG(TOSO Haas社製,Philadelphia, USA)、又はその他のものが挙げられる。更に適切なものとしては、数種の逆相支持体のものがあり、例えばRP8及びRP18のように高速液体クロマト(HPLC)との関係で一般に知られるようになってきたものもある。
滅菌した300mlのエーレンマイヤーフラスコに栄養溶液(麦芽エキス2.0%、酵母エキス0.2%、グルコース1.0%、(NH4)2HPO40.05%、pH6.0)100mlを加え、菌株ドレクスレラ アウストラリエンシス(Drechslera australiensis)ST 003360、DSM 14093を接種し、回転数140rpmの回転シェーカー上で、25℃で7日間培養した後、この培養液1.5mlを50%グリセロール液2.5mlで希釈し、−135℃で貯蔵した。
ポテトデキストロース2.4g/L及び酵母エキス0.2g/Lから成る栄養溶液100mlを含んで滅菌した300mlのエーレンマイヤーフラスコに、斜面培地管(上記同様の栄養溶液に寒天2%を添加したもの)中で増殖させた菌糸を接種するか、又はグリセロール培養(実施例1参照)1mlを接種した後、回転数180rpmの回転シェーカー上で、25℃で培養した。本発明に係る式(II)で表されるドレクスレラノールの最大生成は約144時間後に達成された。10Lファーメンター培養のため、上記栄養溶液中48〜96時間培養した培養液(接種量は約10%)を用いた。
10Lファーメンターは、以下の条件下で行った。
栄養培地:
ポテトデキストロース 2.4g/L
酵母エキス 0.2g/L
滅菌前のpH 5.1
培養時間:115時間
培養温度:25℃
撹拌数 :200rpm
通気量 :15L/min
培養中の泡形成は、エタノール性多価アルコール溶液の連続添加により抑制することができた。最大生成は96〜144時間の間に達成した。
名目10Lのガラス製ファーメンターによる1回培養の発酵液を真空凍結乾燥した後、1回当たりメタノール3Lで3回抽出を行った。メタノール抽出画分を真空下で約500mlに濃縮し、水で希釈してメタノール含量を10%とした。希釈抽出物(5L)を、約0.5LのMCl−Gel(R)CHP−20P材質(三菱化学社製の吸着樹脂)を充填したガラスカラム(BPG100、4L内部容量、Pharmacia Biotech社製)に供した。カラムは水100%からアセトニトリル100%の傾斜を用い60分間かけて溶出した。カラム流速は、50ml/minで溶出液を50mlずつの画分で採集した。全ての画分をJNK−3検定法でテストし、活性画分(画分26〜44)を採集後混合した。真空下で濃縮した後真空凍結乾燥し、褐色粉末1.21gを得た。
実施例4で単離した化合物の物理化学的及びスペクトル分析特性は以下のように要約される。
実験式:C26H24O9
分子量:480
最大UV吸収:226, 236, 260, 312, 340nm
1H−及び13C−NMR:表2参照
栄養溶液(麦芽エキス2.0%、酵母エキス0.2%、グルコース1.0%、(NH4)2HPO40.05%、pH6.0)100mlを含む滅菌した300mlのエーレンマイヤーフラスコに菌株DSM 14524を接種し、140rpm回転の回転シェーカー上で、25℃で7日間培養した。この培養液1.5mlを50%グリセロール溶液2.5mlで希釈して−13
5℃で保存した。
滅菌した25cm×25cmのプレート50枚に、麦芽エキス20g/L、酵母エキス2g/L及び寒天2%を含み、pH7.0の栄養溶液200mlを各々に注ぎ込んだ。これらのプレートに25℃で培養しておいた前培養液2mlを各々接種した。式(III)で表される化合物の最大生成は、培養360時間後に達成した。
ポテトデキストロース2.4g/L及び酵母エキスト0.2g/Lから成る栄養溶液100mlを含む滅菌した300mlのエーレンマイヤーフラスコに、上記の栄養溶液に寒天2%を添加した斜面培養管中で増殖させた培養菌株を接種し、又はグリセロール培養液(実施例6参照)1mlを接種し、回転数180rpmの回転シェーカー上で、25℃で培養した。式(III)で表される化合物の最大生成は培養144時間後に達成した。10Lファーメンター培養は、上記同様の栄養溶液中で48〜96時間培養した培養液を接種した(接種量は約10%)。
50枚の培養プレート(各プレート 20cm×20cm)を採集し、真空凍結乾燥後、1回当たりメタノール10Lで2回抽出した。メタノール抽出液を真空下で500mlに濃縮した後、水を添加してメタノール含量を10%までに希釈した。希釈した抽出液(5L)は、0.5LのMCl−Gel(R)CHP−20P材質(三菱化学社製の吸着樹脂)を充填したガラスカラム(BPG100、4L内部容量、Pharmacia Biotech社製)に供した。カラムは水100%からアセトニトリル100%までの傾斜で、30分間かけて溶出した。カラムの溶出速度は50ml/minで、溶出画分を50ml毎の画分として採集した。すべての画分をJNK−3検定法によりテストし、活性画分(画分30〜44)を採集混合した。真空下で濃縮した後、真空凍結乾燥して、ゴムのような褐色残留物を得た。
実施例9に基づいて単離された化合物の物理化学的及びスペクトル特性は以下のように要約することができる。
実験式:C20H12O3
分子量:300
最大UV吸収:226,236,260,312,340nm
1H−及び13C−NMR:表3参照
該検定は384穴プレートを用いたCyBioピペッター方式により行った。検定液は、3%DMSOに溶解した標品10μl(抽出物又は純品、例えば、式(II)で表される化合物、又は式(III)で表される化合物)、10μlの酵素/基質混合物(JNK−3/GST−ATF2)及びATP 10μlを含み、最終容量は30μlである。37℃で20分間インキュベートした後、50μlのHTRF抗体混合物(XL665−抗GST/(Eu)クリプテート 抗−P−ATF2)を添加した。室温に120分間静置した後、標品をVictor(R)(WALLAC)中で340nm照射で得られるエネルギー転移及び665と615nmにおけるユウロピウム(Eu)のシグナル放射を測定した。
HEPES、pH7.5 25mM
MgCl2 100μM
TRITON×100 0.03%
DTT 10mM
グリセロール 5%
HEPES、pH7.0 100mM
KF 100mM
EDTA 133mM
BSA 1g/L
JNK3キナーゼ Biotech, Vitry 8ng/穴
GST−ATF2 Biotech, Vitry 88ng/穴
ATP Sigma, A7699 15μM
抗−GST−XL665 CisBio 125ng/穴
抗−P−ATF2−(Eu)クリプテート NEB/CisBio 6ng/穴
各プレートは、16穴の陽性対照(最大エネルギー転移、標品の代りに緩衝液I)、8穴の無処理対照(最低エネルギー転移、ATPの代りに緩衝液II)及び8穴はEDTA200μMを含んでいる。
測定結果は以下のように算定した。
デルタF(%)=(シグナル比(標品)−シグナル比(最低エネルギー転移))/(シグナル比(最低エネルギー転移)×100)
標品の活性は、以下のようにして算定した。
阻止能力(%)=100×[1−デルタF(標品)/デルタF(最大エネルギー転移)]
該検定は、384穴プレートを用いたJobi−Well(CyBio社)及びBiomek2000ピペッター方式により行った。384穴プレートは、コーティング緩衝液中100μg/mlの濃度のカゼイン溶液で各穴当たり50μlでコーティングし(各穴当りのカゼイン量は5μg相当、カゼインはSigma社製)、一夜4℃で保存した。洗浄溶液1(HEPES pH7.4 50mM及びNaCl 150mM)を1回につき90μlを用いて、4回洗浄した。最終容量を50μlとして、反応を行わせた。例えば、式(II)で表される化合物又は式(III)で表される化合物を10μlに希釈したもの、20μlのhCK1ε酵素溶液(穴当たりカゼイン29ng相当)及び20μlのATP溶液(最終濃度:穴当たり、0.4μCiの33P−γ−ATP放射性同位体標識及び0.4μMの無標識ATP)をコーティングしたプレート上にピペットで移した。プレートはその後37℃で1時間インキュベートした。プレートはその後、洗浄溶液2(リン酸 3%)を1回当たり75μlで4回洗浄し、MicroBeta Trilux測定機(WALLAC)中で30秒間測定した。
キナーゼ緩衝液:
HEPES、pH7.4 50M
MgCl2 10mM
DTT 0.25mM
EGTA 0.6mM
コーテイン緩衝液:
Na2CO3 27.5mM
NaHCO3(pH9.6) 22.5mM
NaCl 0.9%
ATP溶液:
33P−γ−ATP 20μCi/ml
無標識ATP 1μM
標品の阻止能力は以下の式を用いて、算定することができる。
[1−(CPM(標品)−CPM(非選択的))/(CPM(酵素濃度)−(CPM(非選択的)))×100(%)
CPM=1分間当たりの放射能測定数
JNK−3及びhCK1εを検定結果は表1に要約した通りである(前記参照)。
Claims (14)
- ST 003360(DSM 14093)を培養液中に式(II)の化合物が蓄積するまで培地中に培養し、続いて式(II)の化合物を単離し、そして適当な場合は、式(II)の化合物の薬理学的に許容し得る塩に変換することによって得られる、請求項1の式(II)の化合物、又は式(II)の化合物の薬理学的に許容し得る塩。
- ST 004112(DSM 14524)を培養液中に式(III)の化合物が蓄積するま
で培地中に培養し、続いて式(III)の化合物を単離し、そして適当な場合は、式(III)の化合物の薬理学的に許容し得る塩に変換することによって得られる、請求項2の式(III)の化合物、又は式(III)の化合物の薬理学的に許容し得る塩。 - (a)微生物ST 003360(DSM 14093)を培養し、
(b)式(II)の化合物を単離及び精製し、そして
(c)式(II)の化合物を、適当な場合は、薬理学的に許容し得る塩に変換する
ことを特徴とする、請求項1に記載した式(II)の化合物又は式(II)の化合物の薬理学的に許容し得る塩の製法。 - (a)微生物ST 004112(DSM 14524)を培養し、
(b)式(III)の化合物を単離及び精製し、そして
(c)式(III)の化合物を、適当な場合は、薬理学的許容し得る塩に変換する
ことを特徴とする、請求項2に記載した式(III)の化合物又は式(III)の化合物の薬理学的に許容し得る塩の製法。 - 請求項1〜4のいずれか1項に記載した化合物の医薬品の製造のための使用。
- 請求項1〜4のいずれか1項に記載した化合物の変性神経障害の治療又は予防用医薬品の製造のための使用。
- 請求項1〜4のいずれか1項に記載した化合物のアルツハイマー病の治療又は予防用医薬品の製造のための使用。
- 請求項1〜4のいずれか1項に記載した化合物の心理的障害の治療又は予防用医薬品の製造のための使用。
- 請求項1〜4のいずれか1項に記載した化合物のうつ病、睡眠障害又は季節関連性情動障害の治療又は予防用医薬品の製造のための使用。
- 請求項1〜4のいずれか1項に記載した少なくとも1つの化合物および1つまたは2つ以上の生理学的に適切な賦形剤を含む医薬品。
- DSMZに受託番号DSM 14093として寄託された微生物株ドレクスレラ アウストラリエンシス(Drechslera australiensis)ST 003360。
- DSMZに受託番号DSM 14524として寄託された真菌株ST 004112。
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