JP4091429B2 - アセト乳酸シンターゼ遺伝子をコードする遺伝子 - Google Patents

Description

【０００１】
［技術分野］
本発明は、分岐鎖アミノ酸生合成経路における律速酵素であるアセト乳酸シンターゼをコードする遺伝子に関する。
【０００２】
［背景技術］
アセト乳酸シンターゼ（以下、「ALS」という。）は、ロイシン、バリン及びイソロイシン等の分岐鎖アミノ酸生合成経路における律速酵素であり、植物の成長にとって必須な酵素として知られている。ALSは、高等植物全体に渡って広く存在していることが知られており、種々の微生物、例えば酵母菌（Saccharomyces cerevisiae）、大腸菌（Escherichia coli）、ネズミチフス菌（Salmonella typhimurium）等においても見い出されている。
【０００３】
大腸菌及びネズミチフス菌には、ALSのイソ酵素が3種存在していることが知られている。これら各々のイソ酵素は、酵素の触媒活性を司る分子量の大きい触媒サブユニットと分岐鎖アミノ酸が結合することによりフィードバック阻害剤として機能する分子量の小さい制御サブユニットとからなるヘテロオリゴマーである（Chipman et al., Biochim. Biophys. Acta. 1385, 401-419, 1998)。触媒サブユニットは、それぞれIlv IH、Ilv GM、Ilv BNオペロンに位置している。一方、酵母菌の場合、ALSは、単一な酵素であるが、細菌と同様に触媒サブユニットと制御サブユニットとからなり（Panget al.,Biochemistry, 38, 5222-5231, 1999）、触媒蛋白質サブユニットはILV2座位に位置している。
【０００４】
一方、植物におけるALSの場合も、上述した微生物と同じように触媒サブユニットと制御サブユニットとからなることが知られている（Hershey et al., Plant Molecular Biology. 40, 795-806,1999.）。例えば、双子葉植物のタバコの場合、ALSの触媒サブユニットは、SuRA及びSuRBの2つの遺伝子座位によってコードされ（Lee et al., EMBO J. 7, 1241-1248, 1988）、トウモロコシの場合、ALSの触媒サブユニットは、als 1及びals 2の2つの遺伝子座位にコードされている（Burr et al., Trendsin Genetics 7,55-61, 1991；Lawrence et al., Plant Mol. Biol. 18,1185-1187, 1992）。触媒サブユニットをコードする遺伝子に関しては、双子葉植物の場合、タバコだけでなくアラビドプシス（Arabidopsis）、ナタネ、ワタ、オナモミ（Xanthium）、アマランサス（Amaranthus）及びホウキギ（Kochia）について完全に塩基配列が決定されている（Chipman et al., Biochim. Biophys. Acta. 1385, 401-419, 1998及び再公表特許 WO97/08327参照）。しかしながら、単子葉植物で塩基配列が完全に決定されているのはトウモロコシだけである。
【０００５】
一方、スルホニルウレア系除草剤、イミダゾリノン系除草剤、トリアゾロピリミジン系除草剤並びにピリミジニルカルボキシ系除草剤（以下、「PC系除草剤」という。）等の除草剤は、このALSを阻害することによって植物の成長を抑制することが知られている（Ray, Plant Physiol. 75, 827-831, 1984; Shaner et al., Plant Physiol.76, 545-546, 1984; Subramanian et al., Plant Physiol. 96, 310-313, 1991; Shimizu et al., J. Pestic. Sci.19, 59-67, 1994）。
【０００６】
これら除草剤に対して抵抗性を有する植物としては、ALSをコードする遺伝子において、種を越えて保存されている保存領域中の1個又は2個のアミノ酸置換を引き起こす1個又は2個の塩基置換を有しているものが知られている。例えば、スルホニルウレア系除草剤に対して特異的な抵抗性を有するALSをコードするもの（Kathleen et al., EMBO J. 7,1241-1248, 1988; Mourad et al., Planta, 188, 491-497, 1992; Guttieri etal., Weed Sci. 43,175-178, 1995; Bernasconi et al., J. Biol. Chem. 270, 17381-17385, 1995及び特開昭63-71184号公報参照）、イミダゾリノン系除草剤に対して特異的な抵抗性を有するALSをコードするもの（Mourad et al., Planta, 188, 491-497, 1992; Lee et al., FEBS Lett. 452,341-345, 1999及び特開平5-227964号公報参照）、或いはスルホニルウレア系除草剤とイミダゾリノン系除草剤の両方に対して抵抗性を有するALSをコードするもの（Kathleen et al., EMBO J. 7,1241-1248, 1988; Bernasconi et al., J. Biol. Chem. 270, 17381-17385, 1995; Hattori et al.,Mol. Gen. Genet. 246,419-425, 1995; Alison et al., Plant Physiol. 111, 1353, 1996; Rajasekarau et al., Plant Sci. 119, 115-124, 1996、特開昭63-71184号公報、特開平4-311392号公報及び Bernasconi et al., US Patent 5633437, 1997参照）が挙げられる。スルホニルウレア系除草剤とイミダゾリノン系除草剤の両方に対して抵抗性を示すALSは、PC除草剤やトリアゾロピリミジン系除草剤に対しても交差抵抗性を示すことがわかっている（Bernasconi etal., J. Biol. Chem. 270, 17381-17385, 1995）。また、スルホニルウレア系除草剤に特異的に抵抗性を示すALSを有する個体とイミダゾリノン系除草剤に特異的に抵抗性を示すALSを有する個体とを掛け合わせて、両方に抵抗性を示す植物体を作る試みもなされている（Mourad et al., Mol. Gen. Genet, 243, 178-184, 1994）。さらに、ALSをコードする遺伝子を人為的に除草剤抵抗性遺伝子へ変えることも行われており（Ott et al., J. Mol. Biol. 263, 359-368, 1996、特開昭63-71184号公報、特開平5-227964号公報、特表平11-504213号公報参照）、1個のアミノ酸の欠失がスルホニルウレア系除草剤とイミダゾリノン系除草剤の両方に抵抗性を示すことが明かにされている（特開平5-227964号公報参照）。
【０００７】
上述のように除草剤に対する抵抗性を有するALS及びALSをコードする遺伝子について精力的に研究されてきた経緯があるが、PC系除草剤抵抗性を指標とし、PC系除草剤に対して特異的な抵抗性を有する変異ALS遺伝子については現在までに報告が無かった。
【０００８】
そこで、本発明は、PC系除草剤に対して極めて高度な抵抗性を示すALSタンパク質をコードする遺伝子、該遺伝子によりコードされるALSタンパク質、該遺伝子を有する組換えベクター、該組換えベクターを有する形質転換体、該遺伝子を有する植物、該植物の育成方法及び、該遺伝子を選択マーカとして使用する形質転換細胞を選択する方法を提供することを目的とする。
【０００９】
［発明の開示］
上述した目的を達成するため、本発明者が鋭意検討した結果、野生型ALSにおける所定のアミノ酸残基を、所定のアミノ酸で置換してなる変異ALSがPC系除草剤に対して極めて高度な抵抗性を示すことを見出し本発明を完成するに至った。
【００１０】
（１）すなわち、本発明は、以下の（ａ）又は（ｂ）のタンパク質をコードする遺伝子である。
（ａ）配列番号１に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質。
（ｂ）配列番号１に記載のアミノ酸配列における少なくとも１以上のアミノ酸が置換、欠失、又は付加されたアミノ酸配列からなり、且つ、ピリミジニルカルボキシ除草剤に対する抵抗性を有し、アセト乳酸シンターゼ活性を有するタンパク質。
（２）また、本発明は、（１）記載の遺伝子によりコードされるアセト乳酸シンターゼタンパク質である。
（３）さらに、本発明は、（１）記載の遺伝子を有する組換えベクターである。
（４）さらにまた、本発明は、（３）記載の組換えベクターを有する形質転換体である。
（５）さらにまた、本発明は、（１）記載の遺伝子を有し、ピリミジニルカルボキシ除草剤に対する抵抗性を有する植物である。
（６）さらにまた、本発明は、（５）記載の植物を、ピリミジニルカルボキシ除草剤存在下で育成することを特徴とする植物育成方法である。
（７）さらにまた、本発明は、（１）記載の遺伝子を選択マーカーとして使用し、該遺伝子を有する形質転換細胞を選択する方法である。
【００１１】
［発明を実施するための最良の形態］
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明のアセト乳酸シンターゼタンパク質（以下、「変異型ALSタンパク質」という。）は、イネで発現している野生型ALSタンパク質における所定の部位を変異させることによって得ることができる。本発明の変異型ALSタンパク質のアミノ酸配列を配列番号１に示す。また、本発明のALSタンパク質をコードする遺伝子の塩基配列を配列番号２に示す。
【００１２】
変異型ALSタンパク質は、野生型ALSタンパク質における５４８番目のトリプトファンがロイシンに置換されるとともに、野生型ALSタンパク質における６２７番目のセリンがイソロイシンに置換されたものである。図１に、変異型ALSタンパク質のアミノ酸配列と野生型ALSタンパク質のアミノ酸配列とを比較した結果を示す。なお、図１において、一列目のアミノ酸配列は変異型ALSタンパク質を示し、二列目のアミノ酸配列は野生型ALSタンパク質を示している。
【００１３】
変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子（配列番号２）は、野生型ALSタンパク質をコードする遺伝子と比較して、野生型ALSタンパク質における５４８番目のトリプトファンをコードするコドンがロイシンをコードするコドンに置換されるとともに、野生型ALSタンパク質における６２７番目のセリンをコードするコドンがイソロイシンをコードするコドンに置換されたものである。図２に、変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子の塩基配列と野生型ALSタンパク質をコードする塩基配列とを比較した結果を示す。なお、図２において、一列目の塩基配列は変異型ALSタンパク質を示し、二列目の塩基配列は野生型ALSタンパク質を示している。
【００１４】
この変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子は、日本型イネ品種である金南風のゲノムDNAに存在する野生型ALSタンパク質をコードする遺伝子に対して、上述したような変異を導入することによって得ることができる。変異を導入する手法としては、従来より公知の手法を使用することができ、例えば、部位特異的変異導入法を用いることができる。部位特異的変異導入法は、市販のキット、例えばMutan-K（宝酒造株式会社製）、GeneEditor（プロメガ社製）、ExSite（ストラタジーン社製）等を使用して行うことができる。
【００１５】
また、変異ALSタンパク質をコードする遺伝子は、PC系除草剤感受性の野生株培養細胞をPC系除草剤の存在下で培養し、その後、出現したPC系除草剤に対する抵抗性を示す変異株培養細胞から得ることができる。
【００１６】
具体的には、先ず、PC系除草剤抵抗性の変異型培養細胞からmRNAを調製し、cDNAを合成後、λgt11ファージのcDNAライブラリーを作出する（抵抗性特徴に関してヘテロ接合性と考えられるライブラリー）。これを、野生型ALSタンパク質をコードする遺伝子の一部を含んでいる核酸プローブ（例えば、日本型イネ品種である日本晴から得られたEST（Expression SequenceTag、Genbank、DDBJ及びEMBLアクセッション番号：C72411））を用いてスクリーニングし、得られる陽性クローンのインサートDNAをpBluescript II SK+にサブクローニングし塩基配列を決定する。その結果、配列番号１に示すアミノ酸配列をコードするインサートDNAを有するクローンを選択することによって、変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子を得ることができる。なお、上述のようにして得られた変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子をpBluescript II SK+に組み込んだプラスミドは、Mutant ALS cDNA in pBluescript II SK+(FERM BP-7348)として工業技術院生命工学工業技術研究所（日本国茨城県つくば市東1丁目1番3号）に、平成12年11月2日付けでブタペスト条約に基づき国際寄託されている。
【００１７】
変異型ALSタンパク質は、野生型ALSタンパク質と比較して、PC系除草剤に対する優れた抵抗性を有するばかりでなく、スルホニルウレア系除草剤及びイミダゾリノン系除草剤に対しても抵抗性を有する。特に、変異型ALSタンパク質は、PC系除草剤に対する抵抗性が高度である。このことは、変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子を大腸菌等の発現ベクターに組み込み、当該発現ベクターで形質転換された大腸菌等の除草剤感受性を調べることにより判断することができる。
【００１８】
ここで、PC系除草剤としては、化１に示すように、bispyribac-sodium, pyrithiobac-sodium, pyriminobacを例示することができる。
【００１９】
【化１】

【００２０】
スルホニルウレア系除草剤としては、化2に示すように、chlorsulfuron, bensulfuron-methyl, pyrazosulfuron-ethyl, imazosulfuronを例示することができる。
【００２１】
【化２】

【００２２】
イミダゾリノン系除草剤としては、化３に示すように、imazaquin, imazapyrを例示することができる。
【００２３】
【化３】

【００２４】
一方、変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子を、標的とする植物に形質転換することによって、当該植物に対してPC除草剤抵抗性を与えることができる。植物に形質転換する手法としては、従来より公知の手法を使用することができる。例えば、アグロバクテリウム（Agrobacterium tumefaciens）を用いて外来遺伝子を標的植物細胞に導入する手法を例示することができる。
【００２５】
具体的には、アグロバクテリウムのTiプラスミドのT-DNA配列を含んでいるバイナリーベクターに変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子を挿入する。このTiプラスミドを大腸菌等に形質転換する。次に、大腸菌等で増殖させた変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子を保持するバイナリーベクターを、ヘルパープラスミドを含んでいるアグロバクテリウム菌に形質転換する。そして、このアグロバクテリウム菌を、標的とする植物に感染させた後、形質転換植物を同定する。同定された形質転換植物が培養細胞の場合には、従来より公知の手法により、その植物細胞を完全な植物に再生させることができる。
【００２６】
また、変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子を標的とする植物に形質転換する場合、従来より公知の手法を用いて直接的に植物体に導入してもよい。さらに、変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子を有する発現ベクターを形質転換する方法としては、ポリエチレングリコール法、エレクトロポーレーション法、パーティクルガン法等を使用することができる。
【００２７】
一方、変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子は、単子葉植物及び双子葉植物等のいかなる種類の植物に形質転換してもよい。変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子を形質転換する対象の作物としては、例えば、イネ、トウモロコシ、コムギ、オオムギ、大豆、棉、アブラナ、サトウダイコン及びタバコ等を挙げることができる。さらに、変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子を導入することによって、芝草や樹木等を形質転換してもよい。
【００２８】
いずれの場合であっても、変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子を植物に形質転換することによって、当該植物に対して、PC系除草剤、スルホニルウレア系除草剤及びイミダゾリノン系除草剤に対する抵抗性を付与することができる。
【００２９】
ところで、変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子は、植物形質転換実験における選択性マーカーとしても使用することができる。例えば、目的遺伝子を用いて植物細胞を形質転換する場合、変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子と目的遺伝子とを有するベクターを植物細胞内に導入した後、当該植物細胞をPC系除草剤の存在下で培養する。その結果、PC系除草剤の存在下で生存する植物細胞には、変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子と共に目的遺伝子が導入されたことが判る。また、目的遺伝子及び変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子が植物細胞の染色体に組み込まれたかどうかは、その植物の表現型を観察した後、ゲノムサザーンハイブリダイゼーション或いはPCRによって、これらの遺伝子のゲノム上の存在を調べることで確認することができる。
【００３０】
［実施例］
以下、本発明を実施例を用いて更に詳細に説明する。ただし、本発明の技術範囲はこれら実施例に限定されるものではない。
【００３１】
〔実施例１〕PC除草剤抵抗性のイネ（金南風）培養細胞の作出
イネの種子（品種；金南風、学名：Oryza sativa var.Kinmaze）の籾を除いた後、当該種子を70%のエタノール中に5分間浸漬し、その後、約5%のアンチホルミン中に20分間浸漬し、その後、滅菌蒸留水で数回洗浄した。次に、この種子を表１に示す組成の培地上で静置培養した。
【００３２】
【表１】

【００３３】
なお、上記培地組成中、2,4-Dは合成オーキシンである。培地を作製する際には、先ず、上記培地組成を１リッターのビーカーに入れ、蒸留水で１０００ｍｌにする。次に、これをｐＨ５．７に調製し、３ｇのゲルライトを添加する。次に、電子レンジを用いて加熱してゲルライトを解かした状態とし、分注機を用いて３０ｍｌずつ培養フラスコに分注する。次に、培養フラスコに３重のアルミ箔をかぶせ、オートクレーブ装置内で１２１℃で１５〜２０分間加熱滅菌する。その後、室温にまで冷却することによって、上記種子を静置培養するための培地を作製した。
【００３４】
続いて、この培地上で誘導されたカルスから胚乳の部分を除き継代培養を行った。そして、得られたカルスの一部を、PC系除草剤の1つあるbispyribac-sodiumを1μM添加した液体培地（表1の培地組成と同様であり、ゲルライトを添加しないもの）中でおよそ2週間に1回継代しながら培養を行った。その結果、2週間〜6週間程度で培養細胞が枯死し始め、約2ヵ月後でほとんどが枯死して茶色に変色している培養細胞集団の中に、変色が無く細胞分裂を行っていると考えられる細胞塊が複数個得られた。これら細胞塊を単離し、培養を行った結果、2μMの bispyribac-sodium存在下でも増殖する複数の細胞株を得ることができた。
【００３５】
その後、得られた複数の細胞株をbispyribac-sodiumの添加濃度を順次上げて培養した結果、100μMのbispyribac-sodium共存下でも増殖できる細胞株が得られた。このbispyribac-sodium抵抗性培養細胞（以下、抵抗性変異株）を100μMのbispyribac-sodiumを添加したMS-2,4-D固体培地で継代培養した。継代培養した抵抗性変異株の一部を採取し、bispyribac-sodium無添加のMS-2,4-D液体培地に添加して、8日〜10日間のサイクルで懸濁培養した。
【００３６】
そして、この抵抗性変異株約1.5 g（湿重量）を、MS-2,4-D液体培地50 mlと所定の濃度のbispyribac-sodiumとを入れておいた200mlの三角フラスコに移植し、約27℃で所定期間培養した。経時的にカルスの湿重量を測定し、移植した抵抗性変異株の湿重量を基準にして相対的な増殖量を求めた。なお、試験は、bispyribac-sodium濃度を変化させたものを3連で行ない、標準誤差（standard error）を算出した。抵抗性変異株におけるbispyribac-sodium濃度変化と8日目の相対重量との関係を図３に示す。また対照として、金南風の野生株を用いて同様な実験を行い、bispyribac-sodium濃度と8日目の相対重量との関係を測定した結果を図４に示す。
【００３７】
図４から判るように、野生株では、1 nMのbispyribac-sodium添加区で増殖阻害されなかったが、10 nM以上のbispyribac-sodium添加区で増殖阻害されていることが判る。一方、図３から判るように、抵抗性変異株では、10μMのbispyribac-sodium添加区においてもほとんど増殖に影響を受けていないことが判る。
【００３８】
一方、bispyribac-sodiumに代えてchlorsulfuronを用いた以外は、上述したように野生株及び抵抗性変異株の増殖率を測定した。野生株におけるchlorsulfuron濃度変化と９日目の相対重量との関係を図５に示す。また、抵抗性変異株におけるchlorsulfuron濃度変化と９日目の相対重量との関係を図６に示す。
【００３９】
図５から判るように、野性株では、1 nMのchlorsulfuron添加で増殖阻害を受けており、bispyribac-sodiumの場合よりも高い感受性を示した。一方、図６から判るように、抵抗性変異株では、1μMのchlorsulfuron添加により増殖が強く阻害されている。なお、bispyribac-sodium及びchlorsulfuronに対する感受性は、野性株及び抵抗性変異株において、培養時間が長くても共に大きく変化することはなかった。また、増殖速度は、抵抗性変異株及び野性株において、ともにほぼ同じであった。
【００４０】
これらの結果から、抵抗性変異株は、bispyribac-sodiumに対して特異的に抵抗性を有するものであることが明らかとなった。また、抵抗性変異株は、野生株と比較してchlorsulfuronに対する抵抗性が向上していることも明らかとなった。
【００４１】
〔実施例２〕抵抗性変異株から部分精製したALS酵素の薬剤感受性
本例では、実施例１で得られた抵抗性変異株から変異型ALSタンパク質を部分精製し、得られた変異型ALSタンパク質における薬剤感受性を検討した。変異型ALSタンパク質は以下のようにして部分精製した。
【００４２】
先ず、表１のうちゲルライトを除いた組成で液体培養法（bispyribac-sodium無添加）により抵抗性変異株を200g以上調製した。次に、これらの約150gを組織重量の3倍量の緩衝液-1（20%(v/v)のグリセロール、0.5mMのチアミンピロリン酸（TPP）、10μMのフラビンアデニンジヌクレオチド（FAD）、0.5mMのMgCl₂、組織重量の1/10量のポリビニルポリピロリドンを含む100mMのリン酸カリウム緩衝液pH7.5）でヒスコトロンを用いてホモジナイズした。ホモジネートをナイロンガーゼでろ過した後、15000×gで20分間遠心した。遠心上澄に、50%飽和となるように硫酸アンモニウムを添加し、氷中に約1時間放置した。これを再度、15000×gで20分間遠心し、その沈澱画分を約30 mlの緩衝液-2（20%(v/v)のグリセロール、0.5mMのTPP、0.5mMのMgCl₂を含む10mMのトリス塩酸緩衝液緩衝液pH7.5）に溶解した。これを再度、15000×gで20分間遠心し、その上澄画分をセファデックスG-25（アマシャム ファルマシア バイオテック社製）にアプライして素通り画分を約40ml採取した。そして、採取した液を「粗酵素液」とした。
【００４３】
次に、粗酵素液のタンパク質の濃度を、Bio-Rad Protein Assayのマニュアルに従ってBradford法で測定した。その後、粗酵素液をワットマンフィルター（ワットマン社製）でろ過し、タンパク質量として適正な量の粗酵素液（10〜15 ml）をFPLC装置（アマシャム ファルマシア バイオテック社製）を使用して、3本連結したHiTrap Q（アマシャム ファルマシア バイオテック社製）にアプライした。 HiTrap Qを用いてタンパク質成分を吸着させた後、ベッドボリュームの3〜5倍量の緩衝液-2で非吸着画分を流し出した。その後、吸着したタンパク質成分を、ベッドボリュームの10倍量（150 ml）の溶出液を用いて溶出した。ここで、溶出液は、0〜0.4 Mの直線濃度勾配で緩衝液-2にKClを溶解させたものである。タンパク質成分を溶出した溶出液は、複数の分取用試験管に5mlずつ分取した。なお、溶出したタンパク質成分に含まれるALS酵素を安定化するために、20 mMのピルビン酸ナトリウムを含む緩衝液-2（0.5 ml）を事前に分取用試験管の中へ添加しておいた。
【００４４】
次に、複数の分取用試験管に分取された溶出画分に含まれる変異型ALSタンパク質に由来するALS活性を、以下のように測定した。測定反応に使用する反応溶液は、20mMのピルビン酸ナトリウム、0.5mMのTPP、0.5mMのMgCl₂、10μMのFAD及び20mMのリン酸カリウム緩衝液(pH7.5)からなる溶液に、測定対象の溶出画分を混合したものである。この反応溶液を1ml使用した。測定反応は、測定対象の溶出画分を添加した後、30℃で40分〜60分間行った。また、測定反応は、0.1mlの6N硫酸（あるいは0.25Nの水酸化ナトリウム）を添加することにより停止させた。
【００４５】
次に、反応が終了した反応溶液を60℃で10分間インキュベートした。これにより、反応溶液中に含まれるアセト乳酸をアセトインに変化させた。
次に、反応溶液中に含まれるアセトインを定量するため、0.5%(w/v)のクレアチン1mlと2.5Nの水酸化ナトリウムに溶かした5%(w/v)のα-ナフトール1mlとを添加し、37℃で10分間インキュベートした。その後、反応溶液における吸光度525 nmを比色することでアセトインを定量し、ALS活性を評価した。なお、反応溶液中には、少量のピルビン酸ナトリウムが含まれるため、反応0時間をコントロールとした。
【００４６】
その結果、OD525nmにおける吸光度が反応溶液0.2 ml当たりで約7という高い値となった。しかしながら、上述した測定反応を水酸化ナトリウムで停止させ、ALS活性以外によるアセトイン生成活性を調べた結果、この見掛け上のALS活性の80%近くが変異型ALSタンパク質以外の直接的なアセトイン生成活性であることが判った。そこで、変異型ALSタンパク質と変異型ALSタンパク質以外のアセトイン生成活性を、陰イオン交換樹脂を使用したFPLCで分離した。その結果、図７に示すように、2つの活性ピークが検出された。
【００４７】
これら2つの活性ピークのうち、どちらに変異型ALSタンパク質が含まれているのを判定するために、両ピークのアセトイン生成活性を調べた。その結果、変異型ALSタンパク質は、先に溶出したピークで示される画分に含まれていることがわかった。
【００４８】
そして、変異型ALSタンパク質を含む酵素溶液を用いて、当該変異型ALSタンパク質のbispyribac-sodium、chlorsulfuron及びimazaquinに対する感受性を調べた。各除草剤に対する感受性は、酵素溶液を添加する前に除草剤を所定の濃度となるように反応液中に添加した以外は、上述した測定反応と同様にしてALS活性を測定することによって評価した。また、比較のために、野生型ALSタンパク質を同様にして分離精製し、実験に供した。なお、bispyribac-sodiumは水溶液とし、chlorsulfuron及びimazaquinはアセトン溶液とした。アセトン溶液は最終濃度1%とした。
【００４９】
ALS活性阻害率とbispyribac-sodium濃度との関係を図８に示す。ALS活性阻害率とchlorsulfuron濃度との関係を図９に示す。ALS活性阻害率とimazaquin濃度との関係を図１０に示す。なお、これら図８〜図１０において、白抜きの四角を結んだグラフは野生型ALSタンパク質を示し、塗りつぶしの四角を結んだグラフは変異型ALSタンパク質を示している。
【００５０】
また、上述した実験から、ALS活性を50%阻害する除草剤濃度（I50値）をプロビット法に準じて算出し、変異ALSタンパク質におけるI50値と野生型ALSタンパク質におけるI50値との比を算出した。結果を表２に示す。
【００５１】
【表２】

【００５２】
これら図８〜図１０及び表２に示すように、変異型ALSタンパク質は、野生型ALSタンパク質と比較して除草剤存在下でも比較的高いALS活性を示した。特に、変異型ALSタンパク質と野生型ALSタンパク質とでは、bispyribac-sodium除草剤に対する感受性が最も顕著な差が見られた。すなわち、変異型ALSタンパク質は、特にbispyribac-sodiumに対する抵抗性に優れたものであることが判った。
【００５３】
〔実施例３〕変異型ALS遺伝子のクローニング
抵抗性変異株から変異型ALSタンパク質をコードする遺伝子（変異型ALS遺伝子）をクローニングする際に使用するプローブを以下のようにして調製した。本例においてプローブとしては、トウモロコシのALS遺伝子と高い相同性を示したイネ（日本晴）由来部分cDNAを使用した。
【００５４】
（１）トウモロコシのALS遺伝子と高い相同性を示したイネ（日本晴）由来部分cDNAの塩基配列の決定
（社）農林水産先端技術産業振興センター及び農林水産省農業生物資源研究所が行っているイネゲノムプロジェクトの一環でイネ（日本晴）のcDNAの部分塩基配列の決定が行われており、cDNAの部分塩基配列データベースが構築されている。このデータベースに含まれる約350bpの塩基配列として既に知られているcDNAクローン（アクセッション番号：C72411）がトウモロコシにおけるALS遺伝子と高い相同性を示した。なお、トウモロコシにおけるALS遺伝子は完全に塩基配列が決定されている。
【００５５】
そして、このcDNAクローン（アクセッション番号：C72411）を農業生物資源研究所から入手し、以下のように塩基配列を決定した。なお、このcDNAクローンは、ALSホモログ遺伝子がpBluescript II SK+中に挿入されており、大腸菌内で自律複製を行うことができる形であった。
【００５６】
先ず、このALSホモログ保持プラスミドベクターを大腸菌（DH5α）へ形質転換した。プレートより得られた白色のコロニーを液体培養し、菌体より常法に従いプラスミドを抽出した。インサートDNAはプラスミドベクター中のマルチクローニングサイトの制限酵素、Sal IとNot Iの間に挿入されていたのでこの2つの酵素でベクターを消化し、アガロース電気泳動でインサートの確認を行った。この後、得られたALSホモログ保持プラスミドベクターをRNaseA、PEG、LiCl等を使用する常法に従って精製し、プライマー及びABI BigDyeTerminator Cycle Sequencing kitを用いシークエンス反応を行った。PCR反応の条件はプロトコールに従った。またプライマーはM13プライマー及び決定した塩基配列から設計した合成プライマーを用いた。得られたPCR産物をエタノール沈殿で精製し、ABI PRISM 310シークエンサーで塩基配列を決定した。
【００５７】
このALSホモログ保持プラスミドベクターには、1.6 kbpのインサートDNAが入っているという情報であった。得られたALSホモログ保持プラスミドベクターをSalIとNotIの制限酵素で消化し、電気泳動を行ったところ、pBluescript II SK+も相当する約3 kbpのバンドとインサートDNA断片に相当する1.6 kbpのバンドが検出された（図示せず）。インサートDNA部分についての全塩基配列を決定し、トウモロコシの塩基配列の相同性検索を行った結果、図１１に示すように、84.7%の相同性を示した。したがって、このALSホモログは日本晴におけるALS遺伝子の部分cDNAであると判断されたので、Sal I及びNot Iで消化して切り出したインサートDNAをプローブとした。なお、図１１において、一列目は日本晴におけるALS遺伝子のcDNAの塩基配列であり、二列目はトウモロコシにおけるALS遺伝子の塩基配列である。
【００５８】
（２）抵抗性変異株からのmRNAの調製
先ず、液体窒素で凍結した抵抗性変異株を、乳鉢と乳棒を用いて摩砕した後、ミキサーにより30秒間細かく粉砕した。粉砕後の粉末を抽出緩衝液〔（100 mM Tris-HCl pH 9.0, 100 mM NaCl, 1重量% SDS, 5mM EDTA）：（β-mercaptoethanol）：（Tris飽和フェノール）＝15：3：20〕中に懸濁し,その後よく撹拌した。この溶液を12000×gで15分間遠心し上澄を回収し、200 mlのPCI〔（Tris飽和フェノール）：（chloroform）：（isoamylalcohol）＝25：24：1〕を加え、4℃で10分間振とうした後、12000×gで15分間遠心し上澄を回収した。この操作を2回繰り返した。得られた上澄に1/20量の5MのNaCl、2.2倍量のエタノールを加え、-80℃で30分間静置した後、12000×gで5分間遠心することで沈殿を回収した。沈殿を70%エタノールで洗浄し、乾燥させた後に10mMのβ-メルカプトエタノール溶液に溶かし、この溶液を27000×gで10分間遠心して不溶性画分を除いた後、10MのLiClを1/4量加えて氷上で１時間静置した。これをさらに 27000×gで10分間遠心して沈殿を回収し、4 mlのH₂Oに溶かした後、260nmの吸光度を測定してRNAの濃度を求めた。これに1/20量の5M NaClと2.2倍量のエタノールを加えて、-80℃で30分間静置した後、27000×gで10分間遠心して沈殿を回収し、70%エタノールで洗浄後乾燥させた。これを適量のH₂Oに溶かしトータルRNA溶液とした。なお、遠心操作は4℃で行った。
【００５９】
このトータルRNAから次の方法でmRNAの分離精製した。抽出したトータルRNA溶液の液量に対して等量の2×結合バッファー（20 mM Tris-HCl pH7.5, 10mM EDTA, 1M NaCl）を加えた。0.1 gのoligo dT cellulose(アマシャム ファルマシア バイオテック社製)を詰めたカラムを1×結合バッファーで洗浄した後、このトータルRNA溶液をカラムにかけた。1×結合バッファーで洗浄した後、溶出バッファー（10mM Tris-HCl pH 7.5, 5 mM EDTA）をアプライし、溶出液を0.5 mlずつ回収した。なお、カラムを素通りした画分については、別のoligo dT cellulose（アマシャム ファルマシア バイオテック社製）カラムにかけ、同様の操作を行った。各画分の吸光度から溶出されたmRNAの濃度を計算した後、1/10量の10M LiClと2.5倍量のエタノールを加えて-80℃で30分間静置した。これを遠心して沈澱画分を乾燥した後100μlのH₂Oに溶かした。こうして得られたmRNAをショ糖密度勾配遠心法によりサイズ分画した。
【００６０】
分離精製したmRNAを、25% ショ糖溶液及び5% ショ糖溶液を用いて密度勾配をつけた遠心管にアプライし、スウィングローターを用いて4℃、27000rpmで15時間超遠心を行った。遠心後、密度勾配の順に各0.5 mlずつ分画回収した。それぞれの画分の吸光度を測定し、回収されたmRNAの濃度を計算するとともにECLキット（ECL direct nucleic acid labelling and detection system, AmershamPharmacia Biotec社）によるハイブリダイゼーションによりALS mRNAの存在を確認した。ハイブリダイゼーションは、上記（１）で調製したプローブを用いて42℃で16時間行った。また、ハイブリダイゼーション後の洗浄は、キット添付の1次洗浄バッファーを用いて42℃で5分間を2回、その後、2× SSC溶液を用いて42℃で5分間を1回行った。洗浄後の膜は、透明のプラスティックフィルムで包みキット付属の発光試薬に浸し多状態を維持し、その後、X線フィルムに感光させた。
【００６１】
これらの操作により、抵抗性変異株からは、約35mgのトータルRNAを抽出するとともに、約４mgのmRNAを抽出することができた。また、ショ糖密度勾配遠心法では、予想される画分にハイブリダイゼーション陽性のスポットが認められた。
【００６２】
一方、野生株を用いたところ、約95mgのトータルRNAを抽出するとともに、約7mgのmRNAを抽出することができた。野生株からmRNAを抽出する際には、抵抗性変異株に代えて野生株を使用した以外は、上述した方法を適用した。
【００６３】
（３）抵抗性変異株由来のcDNAライブラリの作製
上記（２）で精製したmRNA2μg及びcDNA合成キット（Amersham Pharmacia Biotec社）を用いてcDNAの合成を行い、抵抗性変異株由来のcDNAライブラリの作製した。
【００６４】
先ず、逆転写反応にはキット添付のRTaseを使用し、その後の相補鎖伸長反応にはキットに添付のT4 DNApolymeraseを使用した。相補鎖伸長反応の際には、cDNA合成の収率を計算するために³²P-dCTPを加えた。合成したcDNAは、アダプターを付加した後、in vitroパッケージング方によりλファージへ組み込んだ。
【００６５】
cDNAに付加するアダプターとしては、宝酒造株式会社製のEcoRI-NotI-Bam HIアダプターを使用した。cDNAを含む溶液にcDNAに対してモル濃度で50倍のアダプターを加え、この混合溶液にT4 DNA Ligase（Pharmacia社製）を加えてライゲーション反応を4℃で一晩行った。この反応溶液をAsahiPak GS 710カラム（旭化成工業株式会社製）を用いてHPCLにアプライし、溶出液を波長260nmの紫外線でモニターした。溶出液を0.5 ml程度ずつ25本に分画し、各フラクションをCerenkovカウンターで測定し、カウントの高いフラクションを3〜4本回収した。このフラクションをT4 polynucleotide kinase（宝酒造株式会社社製）を用いてアダプターの5'末端をリン酸化した後、λgt 11 Eco RIアームを加えてライゲーションした。ライゲーション反応は、溶液にGigaPack Gold III（Stratagene社製）を加えて室温で2時間行った。反応終了後、200μlのSMバッファーと8μlのクロロホルムを加えてファージ溶液とした。このファージ溶液を10倍希釈し、これの1μlを大腸菌（Y-1088）に感染させた後、0.7% トップアガーを加え、LBプレートに蒔き、4時間から8時間後にプレートに現れたプラークの数を数えることでタイターを測定した。
【００６６】
DE 81ペーパーとCerenkovカウンティングの結果から抵抗性変異株由来のcDNAが約74 ng合成されたことが判った。アダプターを付加したベクターのライゲーション後のCerenkovカウンティングの結果から抵抗性変異株について約22 ngのインサートが挿入されたλDNAが得られた。このλDNAをファージへパッケージングし、これを抵抗性変異株細胞由来のcDNAライブラリとした。このライブラリ溶液のタイターは、16600pfu/μlであった。
【００６７】
一方、野生株から抽出したmRNAを用いて、上述した方法に準じてcDNAライブラリを調製したところ、野生株由来のcDNAが約38 ng合成されたことが判った。また、野生株についてインサートが挿入されたλDNAが約5 ng得られた。さらに、野生株由来のcDNAライブラリ溶液のタイターは18160 pfu/μlであった。
【００６８】
（４）ALS遺伝子を含むcDNAのスクリーニング
プレートに20000個程度のプラークが出るように、上記（３）で調製したライブラリ溶液を希釈した後、野性株由来及び抵抗性変異株由来のファージをそれぞれ10枚ずつ蒔いた。プラークをニトロセルロースメンブレン（Schleicher & Schnell社製, PROTORAN BA85,ポアサイズ0.45μm）へ転写し、転写したニトロセルロースメンブレンを変性溶液（0.5 M NaOH, 1.5 M NaCl）、続いて中和溶液（1.5 MNaCl, 0.5 MTris-HCl pH7.5, 1 mM EDTA）に約20秒浸した。濾紙を用いてニトロセルロースメンブレンから余分な水分を除去した後、ニトロセルロースメンブレンを80℃で2時間ベーキングした。なお、ニトロセルロースメンブレンに代えてHybond-N+（アマシャム ファルマシア バイオテック社製）を用いた際には、ベーキング操作は省略し、0.4 MNaOHにて20分間固定した。
【００６９】
上記（１）で調製したインサートDNAを、RI及び非RIの2種類の方法でラベル化しプローブDNAとして使用した。RIラベル化とハイブリダイゼーションは次の方法で行った。まず、約200〜500ngのプローブDNAを熱変性させた。BcaBEST DNA labelling kit（宝酒造株式会社製）を用いてラベルを行った。このラベル化反応に際して、キットに添付のバッファー、ランダムプライマー及び³²P-dCTPを加えた。BcaBESTを加え、65℃で30分間インキュベートした。その後、EDTAを加えて反応を停止させた。ニトロセルロースメンブレン8枚程度にプローブがおよそ100 ng程度含まれる容量を加え、42℃、一晩、微振とうでハイブリダイゼーションを行った。ハイブリダイゼーション後、2×SSC,0.1% SDS溶液で３回洗浄し後、BAS 2000イメージングアナライザー（富士フィルム株式会社製）のイメージングプレートに約1時間露光させた。露光後イメージングアナライザーを用いて陽性クローンを検出した。
【００７０】
一方、非RIラベル化は次の方法で行った。約200〜500ngのプローブDNAを熱変性させた後、ECLダイレクトDNA/RNAラベリング・検出システム（Amersham Pharmacia Biotech社）添付のDNA標識試薬（ペルオキシダーゼ）及びグルタルアルデヒドを加えて37℃でインキュベートした。この場合、ニトロセルロースメンブレン膜8枚程度におよそ100 ng程度のラベル化プローブDNAが含まれるように添加した後、42℃、一晩、微振とうでハイブリダイゼーションを行った。ハイブリダイゼーション終了後、primary washing bufferを室温、10分間、3回、その後2×SSCで室温、10分間、1回で膜の洗浄を行った。膜をECLキット添付の発光液に浸し、30分から3時間でX線フィルムに露光した。
【００７１】
ハイブリダイゼーション（1次スクリーニング）の結果得られた陽性ファージを滅菌した爪楊枝でトップアガーごと掻き取り、200μlのSMバッファーに懸濁し、ファージ溶液を得た。このファージ溶液を各クローンごと適宜希釈を行い、大腸菌Y-1088株に感染させ、LBプレートに蒔いた。この新たに作製したプレートを用いて、同様にハイブリダイゼーション（2次スクリーニング）を行い、陽性ファージを200μlのSMバッファーに懸濁し、シングルファージとした。なお、2次スクリーニングでシングルファージとして単離できなかった場合、もう一度希釈してLBプレートに蒔き、ハイブリダイゼーション（3次スクリーニング）を行ってシングルファージにした。
【００７２】
このシングルファージから次の方法でλDNAを調製した。竹串又は爪楊枝を使って陽性クローンのプラークから集めたλファージを、新鮮な宿主大腸菌（Y1088）懸濁液を5μl含む200μlの2xYT培地（10 mM MgCl₂と0.2%マルトースを含む）にイノキュレートした。静置状態42℃で一晩インキュベートした後、再度宿主大腸菌（Y1088）懸濁液を25μl含む1 mlの2xYT培地（10 mM MgCl₂と0.2%マルトースを含む）にイノキュレートし一晩振とう培養した（以上が前培養）。前培養した溶液（10〜50μl）を10 mMのMgCl₂と0.5mlの大腸菌Y1088懸濁液とを含む12 mlの2xYT培地にイノキュレートし、比較的強く振とうしながら溶菌後濁度が増すまで42℃で一晩インキュベートした。培養終了後、50μlのクロロホルムと1.2 mlの5 M NaClを加え、振とうしながら42℃で10分間インキュベートした。これを27000×gで10分間遠心した後、新たに遠心管に移した上澄に5 mlの50 % PEGを加え、氷上で1時間以上インキュベートした。これを27000×gで10分間遠心し上澄を捨てた後、再度27000×gで遠心して液体部分を捨てた。沈澱画分を4μgのDNase I、20μgのRNase Aならびに10mMのMgCl₂を含む30mMのトリス塩酸緩衝液pH7.5の300μlに懸濁させ、1.5 mlチューブへ移した。この懸濁液を37℃で30分間インキュベートした後、7.5μlの20%SDS、3μlのproteinase K (10 mg/ml)、12μlの0.5M EDTAを加え、さらに55℃で15分間インキュベートした。これに150μlのフェノールを加えて激しく撹拌した後、トミーマイクロ遠心機MR-150（トミー精工社製）を用いて15000 rpmで3分間遠心し、水層を回収した。集めた水層に800μlのエチルエーテル（蒸留水を加えて過酸化物を除いておく）を加え激しく撹拌した後、15000rpmで10秒間遠心しエーテル層を捨てた。このエーテル抽出操作を繰り返した後、水層に残存するエーテルを窒素ガスで除去した。水層に30μlの5M NaCl、875μlのエタノールを加えることで沈澱してきたλDNAを速やかに回収し、λDNAを1 ml程度の70%エタノールでリンスした後、約1分間減圧下で乾燥させてエタノールを除いた。これを20μl〜50μlのTE 緩衝液（pH8.0）に溶かしてλDNA溶液とした。
【００７３】
得られたλDNA中のインサートDNAのサブクローニング及び塩基配列決定は次の方法で行った。得られたλDNA溶液（1μl）をNot Iで消化し、インサートDNAを切り出した。切り出し反応の反応液組成は制限酵素添付の説明書に従い、37℃で約2時間反応させた後、1%アガロースゲルを使用した電気泳動でインサートサイズの確認を行った。インサートDNAを持つλDNA（10μl〜 20μl）をNot Iで消化し、インサートDNAを切り出した。これを分取用のアガロースゲルで分離した後、相当するバンドをゲルから切り出し、常法によりインサートDNAを精製した。このインサートDNAとBAP処理（エビのアルカリフォスファターゼを用いた脱リン酸化処理）したベクターとをモル比で1：1の割合で混合し、T4 DNAリガーゼで16℃、2時間以上ライゲーション反応を行った。なお、インサートDNAはNot Iで切り出したものを材料としたので、BAP処理についてもNot Iで切断したベクターについて行った。ライゲーション終了後、その溶液の一部をコンピテントセル（DH5α）と混合し、氷上に30分間放置した。これを42℃で30秒間ヒートショックを行い、さらに氷上に2分間放置した。続いてSOCを添加し37℃で1時間インキュベートした後、2×YT（50μg/mlのアンピシリン入り）の100μ及び3 %X-Gal 30μlならびに1 M IPTG 3μlを混合したものを事前に均一になるようにまいておいたLB培地上プレートにまき、37℃で10時間以上培養した。形質転換された白色コロニーをアンピシリン入りのLB培地あるいは2×YT培地の2 mlに1つのコロニーを接種した後37℃で一晩培養した。この培養液から常法によりプラスミドを調製しH₂Oに溶かしDNA濃度を定量した後シークエンス用PCR反応に供した。PCR反応及び塩基配列決定は上述した方法で行った。
【００７４】
以上の実験により、約2.2 kbの不完全長のALS cDNAが得られた。このDNAの5'側から約250 bpの位置にSma Iサイトが存在したので。さらに次の方法で新たなプローブを作製した。約2.2 kbpを保持するpBluescript II SK+を宿主大腸菌のJM109で増やした後、プラスミドを自動分離装置（KURABO PI-100）で抽出した。このプラスミドを直接Sma Iで消化し、生成した約250 bp の断片を１%のアガロース電気泳動で分離精製し濃度を算出後プローブとした。このプローブを用いて上述のRIを使用した方法で再度ライブラリをスクリーニングした。その結果得られたシングファージからλDNAを調製し、そのλDNA溶液（1μl）をEco RIで消化し、電気泳動でサイズを確認した後、ニトロセルロースメンブランに固定した。電気泳動後のゲルを1.5 M NaClを含む0.5 M NaOH 溶液中に浸し15分間程度軽く振とうした。この後ゲルを水洗し、3 MのNaClを含む0.5 M Tris-HCl pH7.5に浸し15分程度振とうしながらゲルを中和した。ステンレスバットに20×SSCを張り、その中に工業用の厚手のろ紙を5枚程度重ねた台座を置いた。その上に中和後のゲル、メンブラン（所定の大きさに切断したニトロセルロースメンブランを蒸留水になじませた後、20×SSCでさらに10分間なじませた）、2枚重ねのろ紙を順番に乗せた後、さらにその上に3cm〜4cm厚のペーパータオルを重ねた。この上にガラス板を乗せ、その上に軽い重しを乗せた後、約5分間ブロッティングを行った。この後、ゲルとメンブランの間に気泡が入っていないことを確かめた上で10分間程度ブロッティングを行った。ブロッティング終了後、メンブランをトランスイルミネーターでUV処理し、15分から30分程度80℃でベーキングした。ベーキング終了後、³²Pでラベルした上述の250 bpプローブDNAによるハイブリダイゼーション（ハイブリダイゼーション緩衝液組成：5×SSPE, 0.5% SDS, 5×Denharlts, solum sperm DNA, 50 %formamide）を行い、結合したバンドの放射能をイメージングプレートへ写し取り、BAS-2000でその結果を解析した。このハイブリダイゼーションで陽性を示したインサートの中で比較的大きなサイズを示したものを大量に調製し、上述した方法でEco RI消化後BAP処理したpBluescript IISK+にサブクローニングした(FERM BP-7348)。これを大腸菌（JM 105）に形質転換し、得られた形質転換体を液体培養後、常法によりプラスミドを調製し、上述の方法で塩基配列を決定した。
【００７５】
その結果、完全長の変異ALS遺伝子を含む cDNAを取得することができた。このcDNAの塩基配列を配列番号２に示す。また、野生株由来のcDNAライブラリからは、完全長ALS遺伝子を含む cDNAを一種類を取得することができた。これら変異型ALS遺伝子と野生型のALS遺伝子との相同性を比較した結果を図１に示した。
【００７６】
〔実施例４〕変異型ALSタンパク質の発現
実施例３（４）で得られたプラスミドをEco RIで消化して、野性型のALS遺伝子を含むcDNA及び変異型ALS遺伝子を含むcDNAを切り出した後、pGEX発現ベクターにそれぞれ組み込んだ。野生型ALS遺伝子を含むcDNAは、開始コドンよりも47塩基長い5'非翻訳領域を有しており、pGEX-2TのEco RIサイトに組み込んだ。また、変異型ALS遺伝子を含むcDNAは、開始コドンよりも31塩基長い5'非翻訳領域を有しており、pGEX-4T-3のEco RIサイトに組み込んだ。
【００７７】
これらを大腸菌（JM 105）にそれぞれ形質転換し、形質転換により得られたコロニーを液体培養してプラスミドを抽出し、制限酵素切断パターン及びシークエンスによりインサートDNAの挿入方向を確認した。インサートDNAの方向が正しいクローンを1つずつ選び、これを2 mlのアンピシリンを含有するLB培地中27℃で振とう培養した。この前培養液1 mlを用いて50 mlあるいは250 mlのアンピシリン含有LB培地で本培養を行った。一晩培養後、1mM IPTGを加えて3時間〜4時間、GST融合タンパク質の発現誘導を行った。
【００７８】
ここで、IPTGを添加してから3〜4時間培養した後のALS活性を測定した結果を表３に示す。
【００７９】
【表３】

【００８０】
この表３から判るように、プラスミドを有さない対照区と比較して、野生株ALS遺伝子を有する大腸菌及び変異型ALS遺伝子を有する大腸菌では、3倍〜4倍程度高い比活性を示した。したがって、IPTGを添加してから3〜4時間培養した後、形質転換大腸菌を-80℃に保存し、これを用いてGST融合ALSタンパク質を精製した。
【００８１】
大腸菌からのALSの調製と精製は次の方法で行った。先ず、-80℃に保存しておいた形質転換大腸菌のペレットをALS抽出緩衝液（30%グリセロールと0.5 mM MgCl₂を含んだリン酸カリウム緩衝液pH7.5）に懸濁した（培養液50 mlから得られたペレットに対して2.5 mlの緩衝液を添加）。この懸濁液を超音波処理（Heat Systems-Ultrasonics社製、Sonicator W-225R、マイクロチップ、アウトプットコントロール8、約1秒インターバル、40秒2回）した後、4℃、15000×gで20分間遠心し、その上澄を粗酵素溶液とした。
【００８２】
粗酵素溶液からのGST融合ALSタンパク質（以下GST-ALS）の精製は次の方法で行った。培養液250 ml分のペレットから調製した粗酵素溶液（12.5 ml）をグルタチオンセファロース4Bアフィニティーカラム（アマシャム ファルマシア バイオテック社製、ベッドボリュームは約1 mlで事前に10 mlの1×PBS （0.14 M NaCl, 2.7mM KCl,10.1 mM Na₂HPO₄, 1.8 mM KH₂PO₄, pH7.3）で平衡化しておいた）にアプライした後、10 mlの1×PBSで当該カラムを洗浄し、吸着したGST-ALSを2 mlの10 mMグルタチオン溶液で溶出（4回）した。各々の画分のGST活性及びALS活性を測定し、高活性画分を集めた。なお、ALS抽出緩衝液を使った場合には、上記カラムへの吸着率が悪かったため、1×PBSで酵素を抽出した後に上記カラムに吸着させる実験も併せて行った。ALS活性測定及びタンパク質定量は上述の方法に従い、GST活性測定は、1-chloro-2,4-dinitrobenzene(別名2,4-dichloronitrobenzen（CDNB）と略記)を基質とする方法で行った。反応液量を3 ml、反応液組成を1 mM CDNB、1 mMグルタチオン（還元型）、酵素溶液、100 mMリン酸カリウム緩衝液pH 6.5とした。酵素溶液を添加後30℃で340 nmの吸光度増加をレートアッセイした。なお、CDNBは100倍濃度のエタノール溶液を調製して反応液に添加した。
【００８３】
上記アフィニティーカラムに吸着しない活性（ALS活性及びGST活性）も多く検出されたが、アフィニティーカラムに吸着した分についてはその大部分の活性が初めと2回目のグルタチオン溶出画分に検出されたのでこれを合わせて精製GST-ALSとした。
【００８４】
このGST-ALSをトロンビンプロテアーゼ（25 unit）で4℃、一晩消化したものをGSTから遊離したALSとした。表４に、粗酵素溶液、上記アフィニティーカラムを用いたクロマトグラフィ後及びトロンビンプロテアーゼ処理後の、ALS活性、タンパク質量及び比活性を示す。
【００８５】
【表４】

【００８６】
また、調製したALS酵素の中には、大腸菌由来のALS活性が含まれる。しかしながら、表５に示すように、大腸菌由来のALS活性は、ALSアイソザイムIによるもので1 mMのバリン添加によりほぼ完全に阻害できる。
【００８７】
【表５】

【００８８】
〔実施例５〕変異型ALSタンパク質の薬剤感受性
実施例４で得られた粗酵素溶液を用いて、変異型ALSタンパク質の薬剤感受性を調べた。薬剤感受性試験は、実施例２と同様な手順に従って行った。この薬剤感受性試験には、PC除草剤としてbispyribac-sodium, pyrithiobac-sodium, pyriminobacの3薬剤、スルホニルウレア系除草剤としてchlorsulfuron, bensulfuron-methyl, pyrazosulfuron-ethyl, imazosulfuronの4薬剤、イミダゾリノン系除草剤としてimazaquin, imazapyrの2薬剤を使用した。
【００８９】
これら薬剤は、変異型ALSタンパク質を添加する前に、これらの薬剤の所定の濃度の溶液（bispyribac-sodiumとpyrithiobac-sodiumは水溶液、その他はアセトン溶液）を反応液中に添加した。アセトンの最終濃度は1 %とした。なお、大腸菌内で発現するイネcDNAからのALSタンパク質はバリン非感受性である（Kil et al., J. Biochem. Mol.Biol. 31 287-295,1998）ので、大腸菌由来のALS活性をバリンで阻害した条件下で薬剤感受性試験を行った。
【００９０】
bispyribac-sodiumを用いた場合の感受性を示す結果を図１２に示す。また、chlorsulfuronを用いた場合の感受性を示す結果を図１３に示す。図１２から判るように、bispyribac-sodiumにより野生型ALSの活性が阻害されたのに対して、変異型ALSの活性は完全に阻害されなかった。また、図１３から判るように、chlorsulfuronについては、変異型ALSタンパク質は、野生型ALSタンパク質と比較して所定の濃度まで高い活性を維持したが、bispyribac-sodiumの場合と比較すると抵抗性は中程度であった。
【００９１】
また、薬剤としてpyrithiobac-sodiumを用いた場合の感受性を示す結果を図１４に示し、薬剤としてpyriminobacを用いた場合の感受性を示す結果を図１５に示し、薬剤としてbensulfuron-methylを用いた場合の感受性を示す結果を図１６に示し、薬剤としてpyrazosulfuron-ethylを用いた場合の感受性を示す結果を図１７に示し、薬剤としてimazosulfuronを用いた場合の感受性を示す結果を図１８に示し、薬剤としてimazaquinを用いた場合の感受性を示す結果を図１９に示し、薬剤としてimazapyrを用いた場合の感受性を示す結果を図２０に示す。なお、図１２〜図２０において、塗りつぶしの三角を結んだグラフが野生型ALSタンパク質を含む粗酵素溶液を示し、塗りつぶしの四角を結んだグラフが変異型ALSタンパク質を含む粗酵素溶液を示ている。
【００９２】
これら図１４〜図２０に示すように、変異型ALSタンパク質は、野生型ALSタンパク質と比較して各薬剤に対して優れた抵抗性を有しており、特に、PC系除草剤に対して優れた抵抗性を有していることが判る。また、図１２、図１４及び図１５を比較すると、変異型ALSタンパク質は、PC系除草剤のうちでbispyribac-sodiumに対する抵抗性が最も優れていることが判る。
【００９３】
これらの結果は、実施例２の結果と相関すると判断できるため、実施例２においてPC系除草剤に対する抵抗性を向上させた要因が変異型ALS遺伝子であることを示している。
【００９４】
一方、実施例４で調製した精製GST-ALS及び遊離ALSを用いて薬剤感受性試験を行った。野生型ALSタンパク質のbispyribac-sodiumに対する抵抗性を示す結果を図２１に示し、変異型ALSタンパク質のbispyribac-sodiumに対する抵抗性を示す結果を図２２に示す。また、変異型ALSタンパク質のchlorsulfuronに対する抵抗性を示す結果を図２３に示し、変異型ALSタンパク質のimazaquinに対する抵抗性を示す結果を図２４に示す。なお、図２１〜図２４に結果を示す薬剤感受性試験においては、バリン非添加で行った。また、図２１において、塗りつぶしの三角を結んだグラフが野生型ALSタンパク質を含む粗酵素溶液を示し、塗りつぶしの四角を結んだグラフが野生型GST-ALSを示し、塗りつぶしの円を結んだグラフが遊離したALSタンパク質を示している。図２２〜図２４において、塗りつぶしの三角を結んだグラフが変異型ALSタンパク質を含む粗酵素溶液を示し、塗りつぶしの四角を結んだグラフが変異型GST-ALSを示している。
【００９５】
これら図２１〜図２４に示すように、精製GST-ALSにおいても、粗酵素溶液を用いた場合と同様な薬剤感受性を示した。
【００９６】
〔実施例６〕変異型ALS遺伝子における変異箇所と薬剤感受性との関係
実施例３（４）で決定した変異型ALS遺伝子における変異箇所は、図１に示したように、野生型における５４８番目のトリプトファン（W）がロイシン（L）に変異したW548L変異と、野生型における６２７番目のセリン（S）がイソロイシン（I）に変異したS627I変異とであった。そこで、これらの変異による薬剤感受性に対する影響を検討するため、これらW548L変異及びS627I変異のいずれかの変異のみを有する変異型ALS遺伝子を調製し、いずれか一方の変異のみを有するALSタンパク質の薬剤感受性を調べた。
【００９７】
（１）変異遺伝子の調製
具体的に、W548L変異のみを有する変異型ALS遺伝子（以下、「W548L変異型ALS遺伝子」と呼ぶ）は、図２５及び図２６に示すようにして調製した。まず、ALS-Rsp6と命名したセンスプライマー（5'-CATCACCAACCACCTCTT-3'：配列番号３）とALS-RspFと命名したアンチセンスプライマー（5'-ACACGGACTGCAGGAATA-3'：配列番号４）とを用いて、2点変異型ALS遺伝子を保持するpBluescript II SK+(FERM BP-7348)を鋳型としてPCRを行い、W548L変異を有し、S627I変異を有さないDNA断片を増幅させた（図２５）。一方、ALS-RspEと命名したセンスプライマー（5'-TTACAAGGCGAATAGGGC-3'：配列番号５）とM13Rのアンチセンスプライマー（5'-GGAAACAGCTATGACCATG-3'：配列番号６）を用いて、野性型ALS遺伝子を保持するpBluescript II SK+を鋳型として、627番目のセリンをコードする領域を含むDNA断片を増幅させた（図２５）。
【００９８】
次に、これらの2つのDNA断片を元にしてSPR法（1本鎖のDNA同士を配列が対応する末端部分で結合させ、互いを鋳型としてDNA polymeraseで複製させて2本鎖DNAとする遺伝子作製法: Self Polymerase Reaction）により2つのDNA断片が連結したサイズの大きいDNA断片を得た（図２６）。得られたDNA断片をAcc I及びEco RIで消化しAcc I-Eco RI断片を得た。また、野性型のALS遺伝子を組み込んだpGEX-2Tプラスミド（pGEX-2T-wALS）をAcc Iサイトで消化した後さらにEcoRIで37℃1分の部分消化を行い、pGEX-2Tプラスミド部分断片を得た（図２６）。そして、Acc I-Eco RI断片とpGEX-2Tプラスミド部分断片とをライゲーションすることによって、W548L変異型ALS遺伝子を有するプラスミドを得た。
【００９９】
なお、S627I変異のみを有する変異型ALS遺伝子（以下、「S627I変異型ALS遺伝子」と呼ぶ）は、上述したW548L変異型ALS遺伝子を調製した方法に準じて得ることができた。すなわち、pBluescript II SK+(FERM BP-7348)を鋳型としたPCRでALS-RspE及びM13Rをプライマーとして用い、野性型ALS遺伝子を保持するpBluescript II SK+を鋳型としたPCRでALS-Rsp6及びALS-RspFをプライマーとして用いた以外は同様に行った。
【０１００】
W548L変異型ALS遺伝子を有するプラスミド及びS627I変異型ALS遺伝子を有するプラスミドを用いて、それぞれ大腸菌（JM109株）に形質転換した。得られた大腸菌コロニーのALS遺伝子の全シークエンスを行ったところ、W548L変異及びS627I変異の1点変異を確認することができた
【０１０１】
（２）各変異タンパク質の薬剤感受性
W548L変異型ALS遺伝子を有するプラスミド又はS627I変異型ALS遺伝子を有するプラスミドを大腸菌（JM 109）に形質転換し、形質転換により得られたコロニーを液体培養し、実施例４及び５と同様にして、GST誘導タンパク質の発現誘導を行い、粗酵素液を調製し、1 mMのバリン存在下でALSの薬剤感受性を調べた。
【０１０２】
bispyribac-sodiumを用いた場合の結果を図２７に示す。またchlorsulfuron及びimazaquinを用いた場合の結果を図２８及び図２９に示す。bispyribac-sodiumの図２７から判るように、W548L変異及びS627I変異のそれぞれの1点変異はbispyribac-sodiumに対する抵抗性を与え、その度合いはW548L変異のみの1点変異の方がS627L変異のみの1点変異よりも高かった。
【０１０３】
しかしながら、これら1点変異の抵抗性の度合いは、いずれも実施例５で示した2点変異の場合よりも数段低いことが判った。すなわち、W548L変異及びS627L変異を併せ持つ場合には、W548L変異又はS627L変異いずれかを有する場合から予測できない程、bispyribac-sodiumに対する抵抗性が著しく強くなった。
【０１０４】
一方、chlorsulfuronの場合には（図２８）、W548L変異のみの場合は、chlorsulfuronに対する抵抗性を与えたが、S627I変異のみの場合は明確な抵抗性を与えなかった。また、W548L変異のみの場合とW548L変異及びS627I変異の場合とを比較すると、chlorsulfuronに対する抵抗性の度合いは同程度であった。さらに、imazaquinの場合には（図２９）、bispyribac-sodiumと同じような結果が得られたが、本例の濃度範囲では2点変異を併せ持つことによる相乗的な抵抗性の増大については確認できなかった。
【０１０５】
以上の結果、今回新たに見つかったS627I変異は、W548L変異によるbispyribac-sodium抵抗性を飛躍的に高めることが判明した。従ってW548L変異及びS627I変異を有するALS遺伝子は、bispyribac-sodiumに特異的に高い抵抗性を与える遺伝子であると結論できた。
【０１０６】
〔実施例７〕形質転換植物の作出
実施例３（４）で決定した変異型ALS遺伝子を用いて、イネ（日本晴）を形質転換し、形質転換イネのbispyribac-sodium抵抗性を調べた。
【０１０７】
（１）変異ALS遺伝子を組み込んだバイナリーベクターの作製
イネの形質転換用に開発されたバイナリベクターであるpMLH 7133（Mitsuhara et al., Plant Cell Physiol. 37 49-59, 1996）に以下の方法により、実施例３（４）で得られた変異型ALS遺伝子を組み込んだ。
【０１０８】
すなわち、図３０に示すように、先ず、変異型ALS遺伝子を組み込んだpBluescript II SK+（FERM BP-7348）から変異ALS遺伝子を、マルチクローニングサイトの制限酵素切断部位とアダプターの切断部位を利用して切り出した（Sac I消化及びBam HIによる部分消化）。また、pMLH 7133をSac I及びBam HIを用いて消化し、pMLH 7133におけるGUS領域を切り出して直鎖状にした。変異型ALS遺伝子を含むDNA断片と直鎖状のpMLH 7133とをライゲーションし、pMLH 7133-ALSを得た。
【０１０９】
得られたpMLH 7133-ALSを大腸菌（JM 105株）に形質転換し、得られたシングルコロニーを液体培養後プラスミドを調製した。調製したプラスミドをSac IとBam HIとで消化してインサートの有無を確認（図31）することで、変異ALS遺伝子を保持しているクローンを選別した。インサートが確認できたプラスミドを鋳型として変異ALS遺伝子の少なくとも一部を特異的に増幅させる２セットのプライマーを用いてPCRを行った。プライマーセットは、ALS-Rsp1センスプライマー（5’-GCTCTGCTACAACAGAGCACA-3’：配列番号７）と4-83-3アンチセンスプライマー（5’-GCTTTGCCAACATACAG-3’：配列番号８）とのセット、3-1-4センスプライマー（5’-AGGTGTCACAGTTGTTG-3’：配列番号９）と3-1-1アンチセンスプライマー（5’-GCATCTTCTTGAATGGCG-3’：配列番号１０）とセットを用いた。その結果、特異的なフラグメントバンドが検出され（図３２）、実施例３（４）で得られた変異型ALS遺伝子がpMLH7133ベクターへ組み込まれたと判断することができた。
【０１１０】
また、変異型ALS遺伝子が正常に組み込まれたか否かは、PCRによるインサートの挿入方向の確認及びシークエンスの決定により確認した。PCRによるインサートの挿入方向確認は次の方法で行った。pMLH7133-ALSをEco RIで完全消化することによりTNOS部分を取り除くとともに直鎖状とし、これを鋳型として上記ALS-Res1及び4-83-3のセットと3-1-4及び3-1-1のセットとを用いてPCRを行った。その結果（図３３）、予想される位置にPCR産物のバンドが確認されたことから、変異型ALS遺伝子が順方向で挿入されていると判断された。なお、変異型ALS遺伝子が逆方向で挿入されている場合にはEco RI消化により当該変異型ALS遺伝子部分がpMLH7133-ALSから切り出されてしまうためDNA断片が増幅されず、PCR産物が検出されない。
【０１１１】
一方、シークエンスの決定は、pMLH7133-ALSを調製し、これを鋳型として変異ALS遺伝子の5’側とpMLH7133との接合領域について行った。なお、pMLH7133-ALSは、大腸菌内でのコピー数が少ないことから、従来の20倍量の培養液（2 mlの培養液20本分）からアルカリSDS法で調製した。その結果、変異ALS遺伝子は順方向で挿入されていると判断された。
【０１１２】
（２）アグロバクテリウム菌に対するバイナリーベクターの導入
上記（１）で得られたバイナリーベクター（pMLH 7133-ALS）を、以下のようにアグロバクテリウム菌に導入した。アグロバクテリウム菌としては、-80℃で保存しているAgrobacterium tumefaciens EHA 105のコンピテントセルを氷中で溶かして使用した。Agrobacterium tumefaciens EHA 105のコンピテントセルを含む溶液に、pMLH 7133-ALSを加え、氷中で15分放置した後、37℃で5分間の熱ショックを加えた。その後、氷中に2分間放置し、続いて1 ml のSOC液体培地を加え、28℃で2〜4時間ゆっくり振とうした。その後、遠心して上澄みの大部分を捨て、沈殿した菌体を、残った上澄みに懸濁させた。カナマイシンとハイグロマイシンとをそれぞれ50 ppm含有するLBプレート培地に、懸濁液を塗り広げ、28℃で2〜3日インキュベートして、シングルコロニーを得た。
【０１１３】
（３）pMLH 7133-ALS導入アグロバクテリウム菌によるイネの形質転換
（２）で得られたアグロバクテリウム菌を、滅菌したミクロスパーテルで1/2さじ程度とり、表6に示したアセトシリンゴンを10 mg/lの濃度で加えた30 ml のAAM培地（ファルコンチューブ）によく懸濁した。
【０１１４】
【表６】

【０１１５】
このときアグロバクテリウム菌の塊が残らないようにパスツールピペットでよくピペッティングした。得られた懸濁液を9 cmシャーレに入れた。
【０１１６】
一方、日本晴の種子から誘導し、表7に示したN6D培地で前培養したカルスをステンレスメッシュ（あるいは茶こし）に入れ、メッシュごと1.5から2分間アグロバクテリウムの懸濁液につけた（このときカルス全体が菌液に浸るようにし、薬さじで穏やかにかき混ぜた）。その後、ステンレスメッシュを、滅菌したろ紙の上に置き、余分な菌液を除去した。このように処理されたカルスを、表8に示した2N6AS固形培地（アセトシリンゴン10 mg/l）に置床し（1シャーレに16カルス）、サージカルテープでシールして28℃、暗条件で2〜3日間培養した（菌体がカルスをうっすら覆うように増殖するまで培養した）。
【０１１７】
【表７】

【０１１８】
【表８】

【０１１９】
３日間の共存培養でカルスにうっすら菌体がかぶるくらいになった時点で、次の方法でカルスを洗浄し、アグロバクテリウム菌を除去した。上述のように処理されたカルスをステンレスメッシュ（あるいは茶こし）に入れ、メッシュごとN6D液体培地（カルベニシリンを500mg/lを含む）に浸し、当該培地が白濁しなくなるまでシャーレを交換した。この処理によって、カルスに付着したアグロバクテリウム菌を洗い流した。その後、メッシュを滅菌したろ紙の上に乗せて、余分な水分を除去した。このカルスをN6D固形培地（500mg/lのカルベニシリンと50mg/lのハイグロマイシンを含む）に置床して、28℃、明所で２〜３週間培養した。なお、この操作の後、アグロバクテリウムが再び増殖する場合には、同様に再び洗浄して新しい培地に置床した。
【０１２０】
28℃、明所で２〜３週間の培養により選抜した後、カルスを再分化培地（250mg/lのカルベニシリンと50mg/lのハイグロマイシンを含む）に1シャーレにつき9カルスずつ移植し、28℃、明条件で2〜3週間培養した。カルスから茎葉部と根部がそれぞれ1cm以上分化した時点で、ホルモンフリー培地（50 mg/l のハイグロマイシンを含む）に1シャーレにつき2〜3カルスとなるように移植した。この後、得られた植物体がシャーレいっぱいに広がった時点で、培養土（ボンソル）に鉢上げし、訓化させた。なお、移植の時には、根に付着している培地は水中で完全に洗い落とした。以上の操作フローを図34に示した。
【０１２１】
一方、上述した鉢上げをする時点で、再分化していないカルスの一部（9株）（図35）を、実施例１で使用したbispyribac-sodium抵抗性カルス作出用の個体培地で継代培養した。なお、この個体培地には10μMのbispyribac-sodiumを含有している。その結果、9株の内6つが正常に増殖した。そこで、正常に増殖したbispyribac-sodium抵抗性を示すカルス6株の1つについて、液体培養を行い、bispyribac-sodiumに対する薬剤感受性を詳しく調べた。その結果、図３６に示すように、2点変異型遺伝子の由来株であるbispyribac-sodium抵抗性のSr系統株とほぼ同様に、bispyribac-sodium抵抗性を示した。なお、図３７に示すように、野生型イネ（日本晴）のカルスにおいては、bispyribac-sodium感受性を示した。このことから、10μMのbispyribac-sodium含有固体培地で生育した6株は総べて強いbispyribac-sodium抵抗性を有すると判断された。
【０１２２】
一方、これらのbispyribac-sodium抵抗性のカルスから、QIAGEN社のDNeasy Plant Kitを用いてゲノムDNAを調製して、これを鋳型として、2点変異部分を挟むセンスプライマー(3-1-4：配列番号９)とアンチセンスプライマー(4-83-3：配列番号８)のセットでPCRを行った。その結果、図３８に示すように、予想されるDNA断片が増幅した。増幅したDNA断片を精製後、塩基配列を調べた（センス鎖を読むのにはプライマー（3-1-4：配列番号９）、アンチセンス鎖を読むのにはプライマー（ALS-Rsp2：5’-AGTCCTGCCATCACCATCCAG-3’：配列番号１１）を用いた。
【０１２３】
ALSタンパク質における５４８番目のアミノ酸をコードする塩基配列周辺の解析結果を図39A及びBに示す。また、ALSタンパク質における６２７番目のアミノ酸をコードする塩基配列周辺の解析結果を図39C及びDに示す。これら図39A〜Dに示すように、これらの株の2点変異部位には野性型と変異型のヘテロな配列が認められた。したがって、変異型ALS遺伝子がゲノム中に組み込まれていることが確認された。なお、9株の内3つにおいては10μMbispyribac-sodium存在下で生育が悪かったが、これは導入された2点変異型ALS遺伝子の発現量が低いためと考えられた。
【０１２４】
他方、鉢上げしたハイグロマイシン抵抗性の形質転換イネ約80株の中で5葉期の段階で正常に生育しているものは、変異型ALS遺伝子を導入したもので27個体、野性型ALS遺伝子を導入したもので46個体であった。野性型ALS遺伝子を導入したものの方が変異型ALS遺伝子を導入したものよりも健全に生育している傾向にあった。この時点で、変異型ALS遺伝子導入の4株及び野性型ALS遺伝子導入の5株を適当に選別して、1 kg a.i./haのbispyribac-sodium塩を、0.2%サーファクタントKを添加して茎葉部に散布した。その後、約40日後に生育調査を行った結果を図４０に示す。なお、図４０中、Aの草丈は約90 cmであった。
【０１２５】
図４０より変異型ALS遺伝子を導入した1個体がほぼ正常に生育（A）し、この株がbispyribac-sodium抵抗性であることが判明した。このbispyribac-sodium抵抗性の形質転換イネからゲノムDNAをQIAGEN社のDNeasy Plant Kitにより調製し、2点変異部分を挟むセンスプライマー(3-1-4：配列番号９)とアンチセンスプライマー(4-83-3：配列番号８)のセットでPCRを行い得られたDNA断片の塩基配列を、上述したカルスの場合と同じ方法で調べた。その結果、この形質転換イネには2点変異が存在していることが確認された。
【０１２６】
本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願をそのまま参考として本明細書に取り入れるものとする。
【０１２７】
［産業上の利用の可能性］
以上、詳細に示したように、本発明よれば、あらゆる薬剤に対して優れた抵抗性を有するとともに、PC系除草剤に対して極めて高度な抵抗性を示すALS酵素をコードするALS遺伝子を提供することができる。
【０１２８】
【配列表】
SEQUENCE LISTING
<110> KUMIAI CHEMICAL INDUSTRY CO., LTD
National Institute of Agrobiological Sciences
<120> A gene coding for aceto-lactate-sythetase
<130> P03-0026
<150> JP 2000-362630
<151> 2000-11-29
<160> 12
<170> PatentIn Ver. 2.0
<210> 1
<211> 644
<212> PRT
<213> Oryza sativa var.Kinmaze
<400> 1
Met Ala Thr Thr Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Leu Ser Ala Ala Ala
1 5 10 15
Thr Ala Lys Thr Gly Arg Lys Asn His Gln Arg His His Val Leu Pro
20 25 30
Ala Arg Gly Arg Val Gly Ala Ala Ala Val Arg Cys Ser Ala Val Ser
35 40 45
Pro Val Thr Pro Pro Ser Pro Ala Pro Pro Ala Thr Pro Leu Arg Pro
50 55 60
Trp Gly Pro Ala Glu Pro Arg Lys Gly Ala Asp Ile Leu Val Glu Ala
65 70 75 80
Leu Glu Arg Cys Gly Val Ser Asp Val Phe Ala Tyr Pro Gly Gly Ala
85 90 95
Ser Met Glu Ile His Gln Ala Leu Thr Arg Ser Pro Val Ile Thr Asn
100 105 110
His Leu Phe Arg His Glu Gln Gly Glu Ala Phe Ala Ala Ser Gly Tyr
115 120 125
Ala Arg Ala Ser Gly Arg Val Gly Val Cys Val Ala Thr Ser Gly Pro
130 135 140
Gly Ala Thr Asn Leu Val Ser Ala Leu Ala Asp Ala Leu Leu Asp Ser
145 150 155 160
Val Pro Met Val Ala Ile Thr Gly Gln Val Pro Arg Arg Met Ile Gly
165 170 175
Thr Asp Ala Phe Gln Glu Thr Pro Ile Val Glu Val Thr Arg Ser Ile
180 185 190
Thr Lys His Asn Tyr Leu Val Leu Asp Val Glu Asp Ile Pro Arg Val
195 200 205
Ile Gln Glu Ala Phe Phe Leu Ala Ser Ser Gly Arg Pro Gly Pro Val
210 215 220
Leu Val Asp Ile Pro Lys Asp Ile Gln Gln Gln Met Ala Val Pro Val
225 230 235 240
Trp Asp Thr Ser Met Asn Leu Pro Gly Tyr Ile Ala Arg Leu Pro Lys
245 250 255
Pro Pro Ala Thr Glu Leu Leu Glu Gln Val Leu Arg Leu Val Gly Glu
260 265 270
Ser Arg Arg Pro Ile Leu Tyr Val Gly Gly Gly Cys Ser Ala Ser Gly
275 280 285
Asp Glu Leu Arg Trp Phe Val Glu Leu Thr Gly Ile Pro Val Thr Thr
290 295 300
Thr Leu Met Gly Leu Gly Asn Phe Pro Ser Asp Asp Pro Leu Ser Leu
305 310 315 320
Arg Met Leu Gly Met His Gly Thr Val Tyr Ala Asn Tyr Ala Val Asp
325 330 335
Lys Ala Asp Leu Leu Leu Ala Phe Gly Val Arg Phe Asp Asp Arg Val
340 345 350
Thr Gly Lys Ile Glu Ala Phe Ala Ser Arg Ala Lys Ile Val His Ile
355 360 365
Asp Ile Asp Pro Ala Glu Ile Gly Lys Asn Lys Gln Pro His Val Ser
370 375 380
Ile Cys Ala Asp Val Lys Leu Ala Leu Gln Gly Leu Asn Ala Leu Leu
385 390 395 400
Gln Gln Ser Thr Thr Lys Thr Ser Ser Asp Phe Ser Ala Trp His Asn
405 410 415
Glu Leu Asp Gln Gln Lys Arg Glu Phe Pro Leu Gly Tyr Lys Thr Phe
420 425 430
Gly Glu Glu Ile Pro Pro Gln Tyr Ala Ile Gln Val Leu Asp Glu Leu
435 440 445
Thr Lys Gly Glu Ala Ile Ile Ala Thr Gly Val Gly Gln His Gln Met
450 455 460
Trp Ala Ala Gln Tyr Tyr Thr Tyr Lys Arg Pro Arg Gln Trp Leu Ser
465 470 475 480
Ser Ala Gly Leu Gly Ala Met Gly Phe Gly Leu Pro Ala Ala Ala Gly
485 490 495
Ala Ser Val Ala Asn Pro Gly Val Thr Val Val Asp Ile Asp Gly Asp
500 505 510
Gly Ser Phe Leu Met Asn Ile Gln Glu Leu Ala Leu Ile Arg Ile Glu
515 520 525
Asn Leu Pro Val Lys Val Met Val Leu Asn Asn Gln His Leu Gly Met
530 535 540
Val Val Gln Leu Glu Asp Arg Phe Tyr Lys Ala Asn Arg Ala His Thr
545 550 555 560
Tyr Leu Gly Asn Pro Glu Cys Glu Ser Glu Ile Tyr Pro Asp Phe Val
565 570 575
Thr Ile Ala Lys Gly Phe Asn Ile Pro Ala Val Arg Val Thr Lys Lys
580 585 590
Ser Glu Val Arg Ala Ala Ile Lys Lys Met Leu Glu Thr Pro Gly Pro
595 600 605
Tyr Leu Leu Asp Ile Ile Val Pro His Gln Glu His Val Leu Pro Met
610 615 620
Ile Pro Ile Gly Gly Ala Phe Lys Asp Met Ile Leu Asp Gly Asp Gly
625 630 635 640
Arg Thr Val Tyr

<210> 2
<211> 2279
<212> DNA
<213> Oryza sativa var.Kinmaze
<400> 2
ctcgccgccg ccgccgccgc caccacccac catggctacg accgccgcgg ccgcggccgc 60
cgccctgtcc gccgccgcga cggccaagac cggccgtaag aaccaccagc gacaccacgt 120
ccttcccgct cgaggccggg tgggggcggc ggcggtcagg tgctcggcgg tgtccccggt 180
caccccgccg tccccggcgc cgccggccac gccgctccgg ccgtgggggc cggccgagcc 240
ccgcaagggc gcggacatcc tcgtggaggc gctggagcgg tgcggcgtca gcgacgtgtt 300
cgcctacccg ggcggcgcgt ccatggagat ccaccaggcg ctgacgcgct ccccggtcat 360
caccaaccac ctcttccgcc acgagcaggg cgaggcgttc gcggcgtccg ggtacgcgcg 420
cgcgtccggc cgcgtcgggg tctgcgtcgc cacctccggc cccggggcaa ccaacctcgt 480
gtccgcgctc gccgacgcgc tgctcgactc cgtcccgatg gtcgccatca cgggccaggt 540
cccccgccgc atgatcggca ccgacgcctt ccaggagacg cccatagtcg aggtcacccg 600
ctccatcacc aagcacaatt accttgtcct tgatgtggag gacatccccc gcgtcataca 660
ggaagccttc ttcctcgcgt cctcgggccg tcctggcccg gtgctggtcg acatccccaa 720
ggacatccag cagcagatgg ccgtgccggt ctgggacacc tcgatgaatc taccagggta 780
catcgcacgc ctgcccaagc cacccgcgac agaattgctt gagcaggtct tgcgtctggt 840
tggcgagtca cggcgcccga ttctctatgt cggtggtggc tgctctgcat ctggtgacga 900
attgcgctgg tttgttgagc tgactggtat cccagttaca accactctga tgggcctcgg 960
caatttcccc agtgacgacc cgttgtccct gcgcatgctt gggatgcatg gcacggtgta 1020
cgcaaattat gccgtggata aggctgacct gttgcttgcg tttggtgtgc ggtttgatga 1080
tcgtgtgaca gggaaaattg aggcttttgc aagcagggcc aagattgtgc acattgacat 1140
tgatccagca gagattggaa agaacaagca accacatgtg tcaatttgcg cagatgttaa 1200
gcttgcttta cagggcttga atgctctgct acaacagagc acaacaaaga caagttctga 1260
ttttagtgca tggcacaatg agttggacca gcagaagagg gagtttcctc tggggtacaa 1320
aacttttggt gaagagatcc caccgcaata tgccattcag gtgctggatg agctgacgaa 1380
aggtgaggca atcatcgcta ctggtgttgg gcagcaccag atgtgggcgg cacaatatta 1440
cacctacaag cggccacggc agtggctgtc ttcggctggt ctgggcgcaa tgggatttgg 1500
gctgcctgct gcagctggtg cttctgtggc taacccaggt gtcacagttg ttgatattga 1560
tggggatggt agcttcctca tgaacattca ggagctggca ttgatccgca ttgagaacct 1620
ccctgtgaag gtgatggtgt tgaacaacca acatttgggt atggtggtgc aattggagga 1680
taggttttac aaggcgaata gggcgcatac atacttgggc aacccggaat gtgagagcga 1740
gatatatcca gattttgtga ctattgctaa ggggttcaat attcctgcag tccgtgtaac 1800
aaagaagagt gaagtccgtg ccgccatcaa gaagatgctc gagactccag ggccatactt 1860
gttggatatc atcgtcccgc accaggagca tgtgctgcct atgatcccaa ttgggggcgc 1920
attcaaggac atgatcctgg atggtgatgg caggactgtg tattaatcta taatctgtat 1980
gttggcaaag caccagcccg gcctatgttt gacctgaatg acccataaag agtggtatgc 2040
ctatgatgtt tgtatgtgct ctatcaataa ctaaggtgtc aactatgaac catatgctct 2100
tctgttttac ttgtttgatg tgcttggcat ggtaatccta attagcttcc tgctgtctag 2160
gtttgtagtg tgttgttttc tgtaggcata tgcatcacaa gatatcatgt aagtttcttg 2220
tcctacatat caataataag agaataaagt acttctatgt aaaaaaaaaa aaaaaaaaa 2279
<210> 3
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:primer
<400> 3
CATCACCAAC CACCTCTT 18
<210> 4
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:primer
<400> 4
ACACGGACTG CAGGAATA 18
<210> 5
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:primer
<400> 5
TTACAAGGCG AATAGGGC 18
<210> 6
<211> 19
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:primer
<400> 6
GGAAACAGCT ATGACCATG 19
<210> 7
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:primer
<400> 7
GCTCTGCTAC AACAGAGCAC A 21
<210> 8
<211> 17
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:primer
<400> 8
GCTTTGCCAA CATACAG 17
<210> 9
<211> 17
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:primer
<400> 9
AGGTGTCACA GTTGTTG 17
<210> 10
<211> 18
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:primer
<400> 10
GCATCTTCTT GAATGGCG 18
<210> 11
<211> 21
<212> DNA
<213> Artificial Sequence
<220>
<223> Description of Artificial Sequence:primer
<400> 11
AGTCCTGCCA TCACCATCCA G 21
<210> 12
<211> 644
<212> PRT
<213> Oryza sativa
<400> 12
Met Ala Thr Thr Ala Ala Ala Ala Ala Ala Ala Leu Ser Ala Ala Ala
1 5 10 15
Thr Ala Lys Thr Gly Arg Lys Asn His Gln Arg His His Val Leu Pro
20 25 30
Ala Arg Gly Arg Val Gly Ala Ala Ala Val Arg Cys Ser Ala Val Ser
35 40 45
Pro Val Thr Pro Pro Ser Pro Ala Pro Pro Ala Thr Pro Leu Arg Pro
50 55 60
Trp Gly Pro Ala Glu Pro Arg Lys Gly Ala Asp Ile Leu Val Glu Ala
65 70 75 80
Leu Glu Arg Cys Gly Val Ser Asp Val Phe Ala Tyr Pro Gly Gly Ala
85 90 95
Ser Met Glu Ile His Gln Ala Leu Thr Arg Ser Pro Val Ile Thr Asn
100 105 110
His Leu Phe Arg His Glu Gln Gly Glu Ala Phe Ala Ala Ser Gly Tyr
115 120 125
Ala Arg Ala Ser Gly Arg Val Gly Val Cys Val Ala Thr Ser Gly Pro
130 135 140
Gly Ala Thr Asn Leu Val Ser Ala Leu Ala Asp Ala Leu Leu Asp Ser
145 150 155 160
Val Pro Met Val Ala Ile Thr Gly Gln Val Pro Arg Arg Met Ile Gly
165 170 175
Thr Asp Ala Phe Gln Glu Thr Pro Ile Val Glu Val Thr Arg Ser Ile
180 185 190
Thr Lys His Asn Tyr Leu Val Leu Asp Val Glu Asp Ile Pro Arg Val
195 200 205
Ile Gln Glu Ala Phe Phe Leu Ala Ser Ser Gly Arg Pro Gly Pro Val
210 215 220
Leu Val Asp Ile Pro Lys Asp Ile Gln Gln Gln Met Ala Val Pro Val
225 230 235 240
Trp Asp Thr Ser Met Asn Leu Pro Gly Tyr Ile Ala Arg Leu Pro Lys
245 250 255
Pro Pro Ala Thr Glu Leu Leu Glu Gln Val Leu Arg Leu Val Gly Glu
260 265 270
Ser Arg Arg Pro Ile Leu Tyr Val Gly Gly Gly Cys Ser Ala Ser Gly
275 280 285
Asp Glu Leu Arg Trp Phe Val Glu Leu Thr Gly Ile Pro Val Thr Thr
290 295 300
Thr Leu Met Gly Leu Gly Asn Phe Pro Ser Asp Asp Pro Leu Ser Leu
305 310 315 320
Arg Met Leu Gly Met His Gly Thr Val Tyr Ala Asn Tyr Ala Val Asp
325 330 335
Lys Ala Asp Leu Leu Leu Ala Phe Gly Val Arg Phe Asp Asp Arg Val
340 345 350
Thr Gly Lys Ile Glu Ala Phe Ala Ser Arg Ala Lys Ile Val His Ile
355 360 365
Asp Ile Asp Pro Ala Glu Ile Gly Lys Asn Lys Gln Pro His Val Ser
370 375 380
Ile Cys Ala Asp Val Lys Leu Ala Leu Gln Gly Leu Asn Ala Leu Leu
385 390 395 400
Gln Gln Ser Thr Thr Lys Thr Ser Ser Asp Phe Ser Ala Trp His Asn
405 410 415
Glu Leu Asp Gln Gln Lys Arg Glu Phe Pro Leu Gly Tyr Lys Thr Phe
420 425 430
Gly Glu Glu Ile Pro Pro Gln Tyr Ala Ile Gln Val Leu Asp Glu Leu
435 440 445
Thr Lys Gly Glu Ala Ile Ile Ala Thr Gly Val Gly Gln His Gln Met
450 455 460
Trp Ala Ala Gln Tyr Tyr Thr Tyr Lys Arg Pro Arg Gln Trp Leu Ser
465 470 475 480
Ser Ala Gly Leu Gly Ala Met Gly Phe Gly Leu Pro Ala Ala Ala Gly
485 490 495
Ala Ser Val Ala Asn Pro Gly Val Thr Val Val Asp Ile Asp Gly Asp
500 505 510
Gly Ser Phe Leu Met Asn Ile Gln Glu Leu Ala Leu Ile Arg Ile Glu
515 520 525
Asn Leu Pro Val Lys Val Met Val Leu Asn Asn Gln His Leu Gly Met
530 535 540
Val Val Gln Trp Glu Asp Arg Phe Tyr Lys Ala Asn Arg Ala His Thr
545 550 555 560
Tyr Leu Gly Asn Pro Glu Cys Glu Ser Glu Ile Tyr Pro Asp Phe Val
565 570 575
Thr Ile Ala Lys Gly Phe Asn Ile Pro Ala Val Arg Val Thr Lys Lys
580 585 590
Ser Glu Val Arg Ala Ala Ile Lys Lys Met Leu Glu Thr Pro Gly Pro
595 600 605
Tyr Leu Leu Asp Ile Ile Val Pro His Gln Glu His Val Leu Pro Met
610 615 620
Ile Pro Ser Gly Gly Ala Phe Lys Asp Met Ile Leu Asp Gly Asp Gly
625 630 635 640
Arg Thr Val Tyr
【図面の簡単な説明】
【図１】 図１は、変異型ALSタンパク質のアミノ酸配列及び野生型ALSタンパク質のアミノ酸配列を比較した図である。
【図２】 図２は、変異型ALS遺伝子の塩基配列及び野生型ALS遺伝子の塩基配列を比較した図である。
【図３】 図３は、抵抗性変異株のbispyribac-sodiumに対する感受性を示す特性図である。
【図４】 図４は、野生株のbispyribac-sodiumに対する感受性を示す特性図である。
【図５】 図５は、野性株のchlorsulfuronに対する感受性を示す特性図である。
【図６】 図６は、抵抗性変異株のchlorsulfuronに対する感受性を示す特性図である。
【図７】 図７は、野生株から抽出したALSタンパク質粗酵素の陰イオンクロマトグラムを示す特性図である。
【図８】 図８は、野生型ALSタンパク質及び変異型タンパク質におけるbispyribac-sodiumに対する感受性を示す特性図である。
【図９】 図９は、野生型ALSタンパク質及び変異型タンパク質におけるchlorsulfuronに対する感受性を示す特性図である。
【図１０】 図１０は、野生型ALSタンパク質及び変異型タンパク質におけるimazaquinに対する感受性を示す特性図である。
【図１１】 図１１は、日本晴ESTとトモロコシALS遺伝子の塩基配列を比較した図である
【図１２】 図１２は、実施例４で得られた粗酵素溶液におけるbispyribac-sodiumに対する感受性を示す特性図である。
【図１３】 図１３は、実施例４で得られた粗酵素溶液におけるchlorsulfuronに対する感受性を示す特性図である。
【図１４】 図１４は、実施例４で得られた粗酵素溶液におけるpyrithiobac-sodiumに対する感受性を示す特性図である。
【図１５】 図１５は、実施例４で得られた粗酵素溶液におけるpyriminobacに対する感受性を示す特性図である。
【図１６】 図１６は、実施例４で得られた粗酵素溶液におけるbensulfuron-methylに対する感受性を示す特性図である。
【図１７】 図１７は、実施例４で得られた粗酵素溶液におけるpyrazosulfuron-ethylに対する感受性を示す特性図である。
【図１８】 図１８は、実施例４で得られた粗酵素溶液におけるimazosulfuronに対する感受性を示す特性図である。
【図１９】 図１９は、実施例４で得られた粗酵素溶液におけるImazaquinに対する感受性を示す特性図である。
【図２０】 図２０は、実施例４で得られた粗酵素溶液におけるImazapyrに対する感受性を示す特性図である。
【図２１】 図２１は、実施例４で得られた野生型の粗酵素溶液、GST-ALS及びALSタンパク質のbispyribac-sodiumに対する感受性を示す特性図である。
【図２２】 図２２は、実施例４で得られた変異型の粗酵素溶液及びGST-ALSのbispyribac-sodiumに対する感受性を示す特性図である。
【図２３】 図２３は、実施例４で得られた変異型の粗酵素溶液及びGST-ALSのchlorsulfuronに対する感受性を示す特性図である。
【図２４】 図２４は、実施例４で得られた変異型の粗酵素溶液及びGST-ALSのImazaquinに対する感受性を示す特性図である。
【図２５】 図２５は、W548L変異のみを有するALS遺伝子の作製法を示す概念図である。
【図２６】 図２６は、図２５の続きであり、W548L変異のみを有するALS遺伝子の作製法を示す概念図である。
【図２７】 図２７は、実施例６（２）で得られた粗酵素溶液におけるbispyribac-sodiumに対する感受性を示す特性図である。
【図２８】 図２８は、実施例６（２）で得られた粗酵素溶液におけるchlorsulfuronに対する感受性を示す特性図である。
【図２９】 図２９は、実施例６（２）で得られた粗酵素溶液におけるimazaquinに対する感受性を示す特性図である。
【図３０】 図３０は、実施例７で作製したバイナリーベクターの作製法を示す概念図である。
【図３１】 図３１は、大腸菌（JM 109）のシングルコロニーから単離したプラスミド中のALS遺伝子インサートの確認した電気泳動写真であり、レーン1はλHind III/100 bp DNAマーカー、レーン2は変異型ALS遺伝子を保持するpMLH 7133で形質転換した大腸菌由来プラスミド、レーン3は野性型ALS遺伝子を保持するpMLH 7133で形質転換した大腸菌由来プラスミド、レーン4はGUS遺伝子（対照区）を保持するpMLH 7133であり、矢印はインサートDNAを指し示している。
【図３２】 図３２は、プラスミドDNAを鋳型としたPCRの結果を示す電気泳動写真であり、レーン1はλHind III/100 bp DNAマーカー、レーン2及び5は野性型ALS遺伝子を保持するpBI 121プラスミド（対照区）、レーン3及び6は変異型ALS遺伝子を保持すると考えられるpMLH 7133、レーン4及び7は野性型ALS遺伝子を保持すると考えられるpMLH 7133であり、矢印はPCR産物を指し示している。
【図３３】 図３３は、ALS遺伝子のインサート方向を確認した結果を示す電気泳動写真であり、レーン1はλHind III/100 bp DNAマーカー、レーン2は変異型ALS遺伝子を保持するpMLH 7133、レーン3は野性型ALS遺伝子を保持するpMLH 7133、レーン4はGUS遺伝子を保持するpMLH 7133（対照区）であり、矢印はPCR産物を指し示している。
【図３４】 図３４は、アグロバクテリウム菌を用いたイネ（日本晴）の形質転換方法を示すフローチャートである。
【図３５】 図３５は、カルスから再分化中にあるイネ（日本晴）の写真である。
【図３６】 図３６は、変異型ALS遺伝子で形質転換したイネ（日本晴）カルスのbispyribac-sodium感受性を示す特性図である。
【図３７】 図３７は、野性型イネ（日本晴）カルスのbispyribac-sodium感受性を示す特性図である。
【図３８】 図３８は、形質転換カルスから調製したゲノムDNAを鋳型にして行ったPCRの結果を示す電気泳動写真であり、レーン1はλHind III/100 bp DNAマーカー、レーン2〜7はそれぞれ異なるカルス由来のゲノムDNAを鋳型とした場合のPCR結果であり、矢印はPCR産物を指し示している。
【図３９】 図３９は、形質転換カルスから調製したゲノムDNAを鋳型にして行ったPCRの結果、得られたPCR産物のシークエンスを行った結果を示す特性図であり、Aはセンスプライマー（3-1-4）による548番目周辺の解析結果、Bはアンチセンスプライマー（ALS-Rsp2）による548番目周辺の解析結果、Cはセンスプライマー（3-1-4）による627番目周辺の解析結果、Dはアンチセンスプライマー（ALS-Rsp2）による627番目周辺の解析結果を示している。
【図４０】 図４０は、変異型ALS遺伝子で形質転換したイネ（日本晴）のbispyribac-sodium感受性を測定した結果を示す写真であり、Aは変異型ALS遺伝子で形質転換したイネ、Bは野性型ALS遺伝子で形質転換したイネを示している。

Claims (9)

1. 配列番号１２に記載のアミノ酸配列を含む野生型イネアセト乳酸シンターゼにおける６２７番目のセリンに相当するセリンをイソロイシンに変異させてなり、ピリミジニルカルボキシ除草剤に対して耐性を有するアセト乳酸シンターゼをコードする遺伝子。
2. 配列番号１２に記載のアミノ酸配列を含む野生型イネアセト乳酸シンターゼにおける５４８番目のトリプトファンに相当するトリプトファンをロイシンに変異させてなることを特徴とする請求項１記載の遺伝子。
3. 請求項１又は２記載の遺伝子によりコードされるアセト乳酸シンターゼタンパク質。
4. 請求項１又は２記載の遺伝子を有する組換えベクター。
5. 請求項４記載の組換えベクターを有する形質転換体。
6. 請求項１又は２記載の遺伝子を有し、ピリミジニルカルボキシ除草剤に対する抵抗性を有する植物。
7. 請求項６記載の植物を、ピリミジニルカルボキシ除草剤存在下で育成することを特徴とする植物育成方法。
8. 請求項１又は２記載の遺伝子を選択マーカーとして使用し、該遺伝子を有する形質転換細胞を選択する方法。
9. 請求項６記載の植物を栽培するため、同植物を生育させた圃場にピリミジニルカルボキシ除草剤を処理して、雑草を枯殺又は雑草の生育を抑制する方法。

Images