JP3650634B2 - 家禽用ワクチン - Google Patents
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Description
【産業上の利用分野】
本発明は、家禽の免疫に使用するための、新規な感染性気管支炎ウイルス血清型、この新規な血清型由来の弱毒化感染性気管支炎ウイルス株、および感染性気管支炎ウイルスの弱毒株を含む生ワクチンに関する。本発明はさらに、不活化された新規な血清型または、該血清型由来の不活化弱毒化株を含む不活化ワクチンに関する。本発明はさらに、感染性気管支炎生ワクチンの製造法に関する。
【0002】
【従来の技術および発明が解決しようとする課題】
感染性気管支炎ウイルス(IBV)は、Coronaviridae科のcoronavirus属の一構成員である。一般にこのウイルスは、約80−100nmの大きさであり、突出する20nmのスパイクを有する球状体をなしている。IBVは、呼吸器、生殖器および腎臓系に影響を与える、全ての齢のニワトリの急性高感染性疾患の原因物質である。
【0003】
IBVは、家禽産業が盛んな全ての国で報告されている。4週齢までのニワトリのひなは、呼吸器性疾患に最もかかり易く、感染による罹患率も高く、その結果二次細菌性感染する。産卵ニワトリに感染すると、産卵率の低下または不完全産卵を招き、薄く、奇形で、表面のきめの粗い、軟殻を有する低品質の卵が多く生まれる。通常、産卵ニワトリは疾患から回復はするが、その産卵率が感染前のレベルに戻ることは稀である。従って、ニワトリ集団がIBVに感染したりすれば、重大な経済的影響を被りかねない。
【0004】
SpackmanおよびCameron(Veterinary Record,(1983),113,354−355)は、呼吸性兆候および異常産卵の既往症を有するキジからIBVを分離した。このキジの疾患問題は、油性ベースの不活化IBVワクチンの使用により抑制に成功した。したがって、本明細書中に使用されている家禽という用語は、ニワトリ、キジ、および、卵または食肉を提供するIBV感受性の他のすべての家禽を含むように意図されている。
【0005】
当初、分離されたウイルス性IBV株の殆どは、マサチューセッツ血清型のものであったし、長い間、これが唯一のIBV血清型と考えられていた。しかし現在では、明確に区分された地域には異なる血清型が存在するらしいことが公知となっており、例えば、アーカンザス99(Johnsonら、Avian Dis.,(1973),17,518−523)は米国で分離されたが、D274血清型(Davelaarら、Proc.World Vet.Poultry Assoc.,Oslo,1981,p.44)は、米国では分離されていない。
【0006】
家禽の感染性気管支炎を予防する唯一の実際的な手段は、感染予防ワクチンを接種することである。ワクチンには、弱毒化されたものと、不活化されたものとの2種の主要タイプがある。
【0007】
今までに多くの国々で多くの新規な血清型が報告されている。極く最近、例えば、Goughらは、The Veterinary Record,(1992),130,493−494において、英国における感染したニワトリの可能な新IBV株について発表した。Goughらは、IBVの「新株」がM41および最近のIBVワクチンの多くが由来するオランダ変異株とは異なる抗原性を有することを示した。
【0008】
さらにParsonsらも、The Veterinary Record,(1992),131,408−411において、「既に述べた分離体とは血清学的に異なっており、ニワトリのひなに特徴的な感染性気管支炎様呼吸器性感染を起こさせ得る」IBV分離体について記載している。
【0009】
多くの新規な血清型がワクチンを接種したトリに感染性気管支炎を起こさせないことは周知である。しかし、ワクチンを接種したニワトリに歴然とした感染を起こさせることが見いだされた新規なIBV血清型が分離された。
【0010】
これらの二つの最近の刊行物はどちらも、血清型または株について当業者にIBV分離体をこの新規な血清型に属するものと認めさせ得るようには記載していない。
【0011】
【課題を解決するための手段】
本発明の第1の態様により、ニワトリから分離され、1993年7月6日に、ブタペスト条約に基づいて、英国、ポートンダウン所在のEuropean Collection of Animal Cell Culturesに寄託され、受託番号第V93070612号の下に登録された新規な感染性気管支炎ウイルス血清型、および/または、上記寄託株に対してニワトリに産生した抗血清によって有意に交差中和化される感染性気管支炎株が提供される。
【0012】
本発明の第2の態様により、新規な血清型に属するIBV株が提供され、該血清型は上記に述べた寄託を特徴としており、上記IBV株は該寄託株に対してニワトリに産生した抗血清によって有意に交差中和化される。
【0013】
以後4/91と称される本発明の新規なIBV血清型は、市販の不活化二価感染性気管支炎ワクチンを既に接種されており、IBV感染の特徴的な症状を示したニワトリから分離された。死んだ感染トリの気管および盲腸扁桃から細胞試料を採取し、ホモジナイズし、ニワトリの胚の気管支培養物中で継代した。第2または第3の気管支培養継代後に、電子顕微鏡検査により、気管支培養の上清中で典型的なコロナウイルス(coronavirus)形態学を有するウイルス粒子が確認された。
【0014】
電子顕微鏡を用いた確認に加えて、分離されたウイルスはRNAタイプの核酸を有していることがわかった。ELISAにより、該ウイルスが公知の鳥類コロナウイルス、例えば、IBV基準株M41と共通の抗原を含んでいることが示された。さらに該ウイルスは、Lin,Z.,Archives of Virology,(1991),116,19によるIBV用の汎用プライマーを用いてウイルス性RNAとのポリメラーゼ連鎖反応を行うことにより、IBVであることが確認された。
【0015】
気管支培養で血清中和化試験を行った。41種の公知の血清型の各々に対する単一特異性抗血清をニワトリに産生させ、新規な血清型4/91の試験に使用した。表1にウイルス中和化試験の結果を要約する。さらに分離されたウイルスがニワトリの赤血球を瞬時に血球凝集することも見いだされ、この血球凝集反応は、特異性抗血清によって抑制可能であった。
【0016】
新規なIBV血清型4/91と他の7種のIBV血清型との間で交差中和化試験を行った。これは気管支培養で行われた。各単一特異性抗血清を、log102.0 CD50{CD50=中間繊毛静止用量(median ciliostatic dose)}の各ウイルスの二倍希釈範囲で試験した。その結果を表2に示す。
【0017】
表3は、Archetti,I.およびHorsfall,F.L.,J.Expt.Med.,(1950),92,441−462の方法によるデータの分析結果を株間の関係(r)の百分率で示している。この方法を胚におけるIB中和化試験に適用すると、r値が50を超えるときは緊密な関係を示し、25〜50の範囲の値は低率の関係を示し、25未満の値はほぼ無関係を示すことが示唆された(Locherら.,Berliner und Munchener Tierarztliche Wochenschrifit,(1983),96,269−274)。
【0018】
従って、「有意に交差中和化される」という用語は、ArchettiおよびHorsfallの方法を用いると、50を超える「r」値を有するIBV株は本発明の新規な血清型と密接な関連を有するものであると考えてよいことを意味している。
【0019】
さらに本発明は、弱毒化感染性気管支炎ウイルス、即ち、IBV血清型4/91、または弱毒化された上記に記載の新規な血清型に属するIBV株に関する。そのような弱毒化IBVは、IBVを好適な培地上の培養中で、その病原性を低減させ且つその免疫原性を保持するに充分な回数、継代することにより得ることが可能である。IBVを少なくとも30回継代するのが好ましい。
【0020】
新規なIBV血清型の弱毒株は、1993年7月6日、ブタペスト条約に基づいて、受託番号第V93070611号で、英国、ポートンダウン所在のEuropean Collection of Animal Cell Culturesに寄託された。
【0021】
本発明の新規なIBV血清型を弱毒化するために、ウイルスを胚形式卵中で継代してよく、尿膜腔、漿尿膜、卵黄のう、羊膜腔を介して接種するか、または胚に直接接種することが可能である。ウイルスは、7時間〜4日までの範囲の定期的な間隔で継代可能である。より一般的には、継代を16〜36時間の範囲で、好ましくは24時間毎に行う。
【0022】
あるいは、ウイルスをヒヨコ胚腎細胞のような鳥類の細胞培養中で継代することにより弱毒化を行ってもよい。
【0023】
上記のように調製された弱毒化IBV、または寄託された弱毒株を生ワクチンの調製に使用してもよい。このように、本発明の他の態様により、家禽の免疫に使用するための、上記に記載のIBV由来の感染性気管支炎生ワクチンが提供される。
【0024】
本発明の別の態様により、新規なIBV血清型または上記に記載の株を、好適な培地上の培養中で、その病原性を低減させ且つその免疫原性を保持するに充分な回数、継代する段階、および採取された物質を処理してワクチンを得る段階を含む感染性気管支炎生ワクチンの製造法が提供される。ウイルスを少なくとも30回継代するのが好ましい。
【0025】
さらに本発明は、IBVに対する家禽の予防接種に使用するワクチンを調製するための、上記に記載の弱毒化感染性気管支炎ウイルス株の使用に関する。
【0026】
そのような生ワクチンは、1日齢〜産卵時点(約18週)の間の齢のトリに点眼剤、点鼻薬として、または飲料水に加えて、または噴霧することにより投与してよい。使用される投与量は、トリ1羽当たりlog10 3.0〜log107.0EID50、好ましくは、トリ1羽当たりlog10 4.0〜log10 5.0EID50の範囲である。
【0027】
そのような弱毒化IBワクチンは、他の鳥類用生ワクチン、例えば、ニューカッスル病ウイルス(NDV)、マレック病ウイルス(MDV)、滑液のう感染症(IBD)、レオウイスル、トリ脳脊髄炎、ニワトリ貧血因子(CAA)および他のIBV血清型と組み合わせて投与してもよい。
【0028】
あるいは、本発明の新規なIBV血清型および/または上記に記載の新規な弱毒化IBV株を不活化ワクチンとして用いてもよい。本発明のさらに別の態様により、家禽の免疫に使用するための不活化感染性気管支炎ワクチンが提供され、該ワクチンは、上記の新規なIBV血清型由来のIBV、上記に定義のIBV株または上記の弱毒化IBV株を含む。
【0029】
生ワクチンおよび不活化ワクチンの調製には、通常、特異性病原体未感染(SPF)の胚形成鶏卵中でIBVを増殖させる。採取後、死滅化ワクチンに使用するために、例えば、ホルムアルデヒドまたはβ−プロピオラクトンを用いて、ウイルスを不活化してよい。
【0030】
不活化後、必要なら、pHを調整し、且つ不活化物を中和化して、不活化ウイルスをアジュバントと混合してもよい。アジュバントは、水酸化アルミニウム、または鉱油(例えば、Marcol82)若しくは植物油およびTween80およびSpan80のような1種以上の乳化剤からなる組成物であってよい。
【0031】
不活化ワクチンは、10〜20週齢の間に皮下または筋肉内注射によって投与されるのが一般的である。不活化ワクチンは、トリ1羽当たりlog10 5.0〜log10 8.0の範囲、好ましくはlog10 6.0〜log10 8.0の範囲のEID50抗原当量(antigenic equivalent)を含んでいてよい。
【0032】
そのような不活化IBVワクチンは、不活化鳥類ワクチン、例えば、NDV,CAA,エッグドロップ(Egg Drop)症候群1976および他のIBV血清型と組み合わせて投与してよい。
【0033】
本発明のさらに別の態様により、上記のワクチンをウイルス感受性のトリに投与することを含む、IBVに対して家禽を保護する方法が提供される。
【0034】
【実施例】
本発明を下記の実施例により示す。
【0035】
実施例1
感染性気管支炎ウイルスの分離
気管、腎臓および盲腸扁桃試料をIBV感染の臨床的兆候を示す集団中の死亡したトリから採取した。ペニシリンおよびストレプトマイシンを含むイーグルの無血清培地中で組織試料をホモジナイズして、10%(w/v)懸濁液を得た。
【0036】
1,500gで15分間遠心分離した後で、上清0.1mlを10個の徐々に消耗する気管支培養物(TDC)の各々に接種した。37℃で1時間吸着させた後、イーグルの無血清培地0.5mlを各培養に加えた。TOCを37℃でローラードラム上で培養し、繊毛静止(ciliostasis)を毎日検査した。試料が陰性であるとして廃棄される前に「盲」継代を3回までおこなった。
【0037】
TOCの繊毛静止が認められた試料中にIBVが示された。「陽性」試料の上清を血球凝集の不在について(ニューカッスル病ウイルスにかかっていないことを確実にするべく)検査し、次いでそれらのIBとの同一性を血清学的分析によって確認した。
【0038】
さらに分離体を特定するべくELISA検定を用いた(Mockett.A.P.A.およびCook,J.K.A.,Avian Pathology,(1986),15,437参照)。経鼻的に接種された、特異性病原体未感染(SPF)のロードアイランド赤色ニワトリに血清型4/91に対する抗血清を産生させ、4週間後に出血させた。分離体4/91に対する単一特異性抗血清は、IBVのM41株をコートしたプレートを用いたELISA試験において、log2 13.0の力価に反応することが示され、それによって、該分離体が感染性気管支炎ウイルスであることが証明された。
【0039】
実施例2
IBV株4/91の弱毒化
先ず、8日〜11日の間の予備培養を通して使用されたSPF白色レグホンの胚形成卵に、尿膜腔を介してlog10 6.4 CD50/mlのウイルスを含む病原体IBV4/910.1mlを接種し、37℃で24時間培養した。1群当たり半数の胚の尿膜液を指定時間に採取した。IBV感染を示す異常の有無を検査する17−18日齢になるまで残りの胚形成卵を培養した。
【0040】
採取された尿膜液を適切に希釈して10個の胚に接種(0.1ml)し、上記のように24時間培養した後で採取した。充分な回数の継代(少なくとも30回)が達成されるまで、7〜36時間の範囲内のさまざまな培養時間でこの継代を連続的に行った。
【0041】
選択された継代時に、採取しておいた尿膜液を滴定した。該液の10倍希釈系列を調製し、9−11日齢の胚(尿膜路を介して接種)またはニワトリ胚の気管支培養物(TOC)で検定した。
【0042】
間隔を置いて、TOCでの中和化試験により、継代されたウイルスの同一性を検査した。2倍希釈系列の既知の陽性4/91特異的ニワトリ抗血清を、等量の胚継代IBV4/91(log10 2.0 CD50)と混合し、37℃で1時間インキュベートし、次いで徐々に消耗されるTOC(5倍希釈)に接種した。37℃で1時間吸着させた後、TOCに、ヘペス(HEPES)およびα−メチルグルコシドを含むイーグルMEMを重層(0.5ml)し、次いで37℃でインキュベートし、3〜4日後に読み取りを行った。
【0043】
実施例3
弱毒化IBVワクチンの調製および評価
実施例2に記載されているように調製した弱毒化IBVを尿膜腔から採取した。遠心分離および/または濾過により尿膜液を清澄化し、続いて処理してそれ自体公知の方法によって好適なワクチンを調製した。
【0044】
9日齢のヒヨコの群に、上記の弱毒化IBVワクチンまたはマサチューセッツワクチン(H120)若しくはMA5ワクチンを、点眼(0.1ml)によって接種した。30日齢の時点で、気管支培養物で増殖したIBV血清型4/91log10 4.6 CD50を接種してヒヨコをチャレンジした。7日後、5羽のヒヨコ/群を殺し、「繊毛静止」試験のためにヒヨコの気管を取り出した(Darbyshire,J.H.,Avian Pathology,(1980),9,179−184参照)。
【0045】
ユータタル(Euthatal)を静脈注射してヒヨコを殺した。ヒヨコの気管を注意深く取り出し、小刀を用いて、10個の輪(頂部から3個、中間部から4個、底部から3個)を注意深く切り出した。10個の輪を低倍率で検査し、それぞれ0(繊毛活性100%)〜4(繊毛静止100%)の範囲の目盛り上に評点をつけた。
【0046】
結果
表4に要約されている結果は、1回目の試験(チャレンジ後7日)では、実施例2で調製された弱毒化IBV株は高い均一のチャレンジに対して充分に保護されたことを示している。2種のワクチン株(H120およびMA5)は、この高チャレンジに対する保護力が弱く、どちらの場合にも、保護されたのはニワトリの1/5であった。
【0047】
実施例4
不活化IBワクチンの調製
尿膜腔を介して、8〜11日の間予備培養された胚形成卵にIBVを接種した。約1−3日インキュベートした後、尿膜液を採取し、プールし、遠心分離によって清澄化し、ホルマリンを添加してウイルスを不活化した。尿膜腔を介して9日齢の胚形成卵に接種し、次いで胚にIB感染兆候があるかどうかを検査することによりIBウイルスの不活化を確認した。次いで、標準的手順を用いて油乳化ワクチンを調製した。これをニワトリ群の皮下または筋肉内に接種した。該ニワトリ群には、初期に弱毒化IB生ワクチンを投与することにより「初回抗原刺激」を受けさせておいてもよいし、そうしなくてもよい。少なくとも7週後にこれらのニワトリを出血させ、ELISAにより、それらの血清をIB特異抗体について検査した。
【0048】
結果
1)初回抗原刺激を受けず、不活化ワクチンを投与し、7週後に出血した場合:
平均タイター(log2)9.1、
範囲 log2 7.6−10.6。
【0049】
2)初回抗原刺激を受け、不活化ワクチン投与し、7週後に出血した場合:
平均タイター(log2)12.6、
範囲 log2 11.6−13.6。
【0050】
【表1】
表1
下記のIBV血清型の各々に対して産生した単一特異性抗血清に対する中和化試験においてIBウイルス血清型4/91を試験した。
【0051】
各ケースにおける中和タイターは<1:8であった。
【0052】
英国血清型
A;B;C;D;F;F1;H;I;J;690;317;183;918;225;HV1−116;D41;VF70−861;Allen
オランダ
D207;D3896;D3128;D212
ポルトガル
135355/82
イスラエル
IBV−11
ドイツ
5423/86;332/88;IBV−10
イタリア
1767/84;フォルリ(Forli) 1;フォルリ 2
ベルギー
B−1486
米国
マサチューセッツ;コネティカット;アイオワ 609;アイオワ 97;ホルテ(Holte);グレイ(Gray);アーカンザス;632
南アフリカ
890/80;145/86
【0053】
【表2】
【0054】
【表3】
【0055】
【表4】
Claims (11)
- 英国、ポートンダウン所在のEuropean Collection of Animal Cell Culturesに受託番号第V93070612号で寄託されている新規な血清型に属し、且つ、前記寄託された株に対してニワトリに産生した抗血清によって有意に交差中和化されることを特徴とする感染性気管支炎ウイルス(IBV)株。
- 前記ウイルスが弱毒化されていることを特徴とする請求項1に記載の感染性気管支炎ウイルス。
- その病原性を低減させ且つその免疫原性を保持するに充分な回数、感染性気管支炎ウイルスを好適な培地上の培養中で継代することによって得ることができる請求項2に記載の弱毒化感染性気管支炎ウイルス。
- ウイルスを少なくとも30回継代することによって得られる請求項3に記載の弱毒化IBV。
- 英国、ポートンダウン所在のEuropean Collection of Animal Cell Culturesに受託番号第V93070611号で寄託されている弱毒化感染性気管支炎ウイルス(IBV)。
- 請求項1から5のいずれか一項に記載のIBV由来である、家禽の免疫に使用するための感染性気管支炎生ワクチン。
- 請求項1から5のいずれか一項に記載のIBV由来である、家禽の免疫に使用するための不活化感染性気管支炎ワクチン。
- その病原性を低減させ且つその免疫原性を保持するに充分な回数、請求項1に記載のIBV株を好適な培地上の培養中で継代し、弱毒化ウイルスを採取し、および採取した物質を処理してワクチンを得ることを含む感染性気管支炎生ワクチンの製造法。
- IBVを少なくとも30回継代する請求項8に記載の方法。
- 感染性気管支炎ウイルスに対する家禽の予防接種用のワクチン製造のための、請求項2から4のいずれか一項に記載の弱毒化感染性気管支炎ウイルス株の使用。
- 請求項6または7に記載のワクチンをウイルス感受性の鳥類に投与することを特徴とする感染性気管支炎ウイルスから家禽を保護する方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
NL93306033.7 | 1993-07-30 | ||
EP93306033 | 1993-07-30 |
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