JP2715375B2 - セサミノール配糖体及び水溶性抗酸化剤 - Google Patents

セサミノール配糖体及び水溶性抗酸化剤

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Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は新規のセサミノール配糖
体及び水溶性抗酸化剤に関する。食品中の脂質が酸化さ
れると、該食品の風味が損なわれるばかりでなく、その
酸化生成物が癌の発生原因になるとの指摘がなされてい
る。本発明は、例えばハム、ソーセイジ等の食肉加工工
程で加水分解によりセサミノールを生成して該食肉中の
脂質の酸化を有効防止するセサミノール配糖体に関す
る。
【0002】
【従来の技術】従来、各種の抗酸化剤が知られている
が、これらのうちで胡麻種子由来の天然抗酸化剤として
は、セサミノール、セサモリノール、ピノレジノール等
が知られている(特開昭62−581)。これらは胡麻
種子中に含まれるリグナン化合物であり、天然であるた
め、相応にして安全であるという利点がある。ところ
が、これら従来の天然抗酸化剤には、いずれも油溶性
(非水溶性)であるため、その使用に制約が伴うという
欠点がある。
【0003】また従来、胡麻種子を水溶性溶媒で抽出す
ると、その抽出物中に上記のようなリグナン化合物の配
糖体が含まれてくることが知られている(特公昭61−
26342、特開昭62−238287)。かかる抽出
物中に含まれてくる配糖体は水溶性であり、したがって
該抽出物を水溶性抗酸化剤として使用することが考えら
れる。ところが、かかる抽出物中に含まれてくる配糖体
の内容は不明であり、該抽出物、その濃縮物、更にはそ
の物理的な精製物を水溶性抗酸化剤として使用してみて
も、その効果が低いという欠点がある。
【0004】
【発明が解決しようとする課題】本発明が解決しようと
する課題は、従来の胡麻種子由来の天然抗酸化剤には、
いずれも油溶性(非水溶性)であるため、その使用に制
約が伴う、また従来の水溶性溶媒を用いた胡麻種子から
の抽出物等には、これらを水溶性抗酸化剤として使用し
てみても、その効果が低い、という点である。
【0005】
【課題を解決するための手段】しかして本発明者らは、
叙上の如き従来の課題を解決するべく研究した結果、胡
麻種子に所定の処理を施すと、新規の化合物である水溶
性のセサミノール配糖体が得られ、該セサミノール配糖
体は加水分解によりセサミノールを生成して、該セサミ
ノールが脂質の酸化を有効防止することを見出した。
【0006】すなわち本発明は、下記の式1で示される
セサミノール配糖体及び該セサミノール配糖体から成る
水溶性抗酸化剤に係る。
【0007】
【式1】 (式1において、Rは下記の式2又は式3で示される有
機基)
【式2】
【式3】
【0008】本発明のセサミノール配糖体は、下記の第
1工程、第2工程及び第3工程を経ることにより得られ
る。 第1工程:胡麻種子を破砕し、脱脂した後、水、水溶性
溶媒又はこれらの混合溶媒で抽出して、抽出物を得る工
程 第2工程:上記の抽出物をβ−グルコシダーゼで処理し
て、セサミノール配糖体を含有する胡麻処理物を得る工
程 第3工程:上記の胡麻処理物を、移動相として水、水溶
性溶媒又はこれらの混合溶媒を用いた液体クロマトグラ
フィーに供し、セサミノール配糖体含有区分を分画し
て、実質的に純粋な形態のセサミノール配糖体を得る工
【0009】先ず第1工程について説明する。本発明で
用いる原料の胡麻種子としては、栽培種であるセサマム
インディカム( sesamum indicum )の他に、各種の野
生種が挙げられる。これらの胡麻種子は、抽出効率から
みて破砕されていることが好ましく、また胡麻種子中に
約50%の油脂分が含まれているので、抽出効率からみ
て該油脂分もなるべく除去されていることが好ましい。
したがって本発明では、胡麻種子を破砕し、脱脂した後
に、抽出する。このように破砕された脱脂胡麻種子とし
ては、ミルで破砕した後にヘキサンで油脂分を抽出して
除去した脱脂胡麻種子を用いることができるが、通常の
食用胡麻油製造工程においてエキスペラーで搾油した後
の脱脂胡麻種子も用いることができる。
【0010】上記の破砕された脱脂胡麻種子を、水、水
溶性溶媒又はこれらの混合溶媒で抽出する。かかる水溶
性溶媒としてはメタノール、エタノール、n−プロピル
アルコール、イソプロピルアルコール等の低級アルコー
ル類、アセトン、ジメチルアセトアミド、ジメチルホル
ムアミドが挙げられるが、溶媒としては水、低級アルコ
ール類、又は水と低級アルコール類との混合溶媒が好ま
しく、なかでも水とエタノールとの混合溶媒が特に好ま
しい。
【0011】抽出操作は破砕された脱脂胡麻種子の2〜
7倍重量の溶媒を用いて行なうことが好ましい。2倍重
量以下では溶媒が破砕された脱脂胡麻種子に吸収されて
抽出操作が困難であり、逆に7倍重量以上では抽出効率
が悪い。抽出操作は任意の温度で行なうことができる
が、目的物質を変質させないようにするため、0〜50
℃の温度下で行なうことが好ましい。好ましい抽出操作
として、室温で3〜5倍重量の溶媒を用いて8〜24時
間撹拌し、次いで濾過する方法が挙げられる。
【0012】かくして得られる抽出液は、用いた抽出溶
媒との関係で、抽出物としてそのまま第2工程に供する
こともできるが、目的物を変質させないように、0〜5
0℃の温度下で濃縮し、又は更に凍結乾燥するのが好ま
しい。濃縮した濃縮液又は更に凍結乾燥した凍結乾燥物
を抽出物として第2工程に供するのである。
【0013】次に第2工程について説明する。第2工程
では、第1工程で得た抽出物に水系でβ−グルコシダー
ゼを加えて処理する。かかる処理により、式1で示され
るセサミノール配糖体を0.03〜0.3重量%含有す
る胡麻処理物が得られる。胡麻処理物中に含まれてくる
セサミノール配糖体は、β−グルコシダーゼでは最早加
水分解されない構造を有するものであり、第1工程で得
た抽出物中の配糖体すなわち式2又は式3で示される糖
に更に他の糖類がβ−グルコシド結合した構造不明の配
糖体とは相違する。
【0014】β−グルコシダーゼによる処理方法として
は通常、第1工程で得た抽出物をPH3〜7の水系に調
整し、これにβ−グルコシダーゼを加えて、50℃に保
温しつつ所要時間振とう処理する方法が挙げられる。
【0015】最後に第3工程について説明する。第3工
程では、第2工程で得た胡麻処理物を、移動相として
水、水溶性溶媒又はこれらの混合溶媒を用いた液体クロ
マトグラフィーに供し、本発明のセサミノール配糖体を
含有する区分を分画して、実質的に純粋な形態のセサミ
ノール配糖体を得る。
【0016】液体クロマトグラフィーによる分画方法と
しては公知の方法が適用できる。例えばその固定相とし
てはシリカゲル、アルミナ、ODSシリカ、架橋ポリス
チレン、イオン交換樹脂等の公知の担体を適宜に選択し
て使用することができ、また移動相としては水、水溶性
溶媒又はこれらの混合溶媒を適宜に組み合わせて用いる
ことができる。そして分画操作は、単独の固定相を用い
て行なうことができ、又は別種の固定相を用い繰り返し
て行なうこともできる。
【0017】かくして単離される本発明のセサミノール
配糖体は、詳しくは後述するような分析結果を有してお
り、かかる分析結果から、前記の式1で示される化学構
造を有するものであることが決定された。すなわち式1
においてRが式2で示される有機基である場合のセサミ
ノール2’−O−β−D−グルコピラノシドとRが式3
で示される有機基である場合のセサミノール2’−O−
β−D−グルコピラノシル(1→2)−β−D−グルコ
ピラノシドとである。
【0018】式1で示されるセサミノール配糖体は水溶
性物質であって、結果的に水系媒体中に共存する脂質の
酸化を防止するのに有効である。
【0019】式1で示されるセサミノール配糖体を用い
て脂質の酸化を防止するには、脂質と水系媒体とが共存
する系において、セサミノール配糖体を該水系媒体中へ
含有させることにより達成される。この場合、脂質と水
系媒体が共存する系に米コウジ、大豆コウジ、枯草菌等
の菌体が産生する酵素類や生体内酵素類のうちでグルコ
ピラノシド結合を加水分解し得るような酵素が存在する
と、脂質の酸化をより有効に防止できる。
【0020】脂質と水系媒体が共存する系としては、水
系媒体中に油脂類が乳化分散されている系(牛乳、豆
乳)、魚肉、豚肉、牛肉等の脂質と水系媒体とが共存す
る生食肉組織系、ハム、ソーセージ等の食肉加工品等、
更には水と脂質が共存する各種の生体組織が挙げられ
る。
【0021】式1で示されるセサミノール配糖体を前記
した水と脂質が共存する系に含有させる量は通常脂質1
g当たりセサミノール配糖体として1〜200μMであ
る。
【0022】式1で示されるセサミノール配糖体を前記
した水と脂質とが共存する系に含有させる方法として
は、例えば食肉加工品、ヨーグルト、豆乳等の加工食品
に対してはその原料の混練時若しくは製品に直接添加す
る方法、また生体組織に対しては経口服用する方法が挙
げられる。
【0023】
【実施例】中国産胡麻種子250gをすりつぶしてフラ
スコに採り、ヘキサン1リットルを加えて室温で5時間
撹拌した後、濾過した。濾過後の固形分に対して同様の
操作を更に2回繰り返し、固形分を室温で通風乾燥し
て、脱脂胡麻種子115gを得た。この脱脂胡麻種子1
15gをフラスコに採り、エタノール736g及び水1
84gを加えて、室温で15時間撹拌した後、濾過し
て、濾液355gを得た。この濾液を40℃以下の温度
で減圧下に80gまで濃縮し、更に凍結乾燥して、抽出
物2.7gを得た(フラクションR−1)。
【0024】別に、同様にして抽出物6gを得た。この
抽出物6gにクロロホルム50ml及び水50mlを加え、
激しく振とうし、静置した後、クロロホルム層を分取
し、クロロホルムを留去して、クロロホルム可溶分1.
8gを得た。このクロロホルム可溶分にアセトン30ml
を加え、撹拌した後、濾別したアセトン不溶分を真空デ
シケーター中で乾燥して、アセトン不溶分0.8gを得
た。このアセトン不溶分をクロロホルム/アセトン=4
/1の混合溶液10mlに溶解し、シリカゲル(商品名ワ
コーゲルC−100、和光純薬社製)を充填したガラス
製カラムの上部より流入して、シリカゲルに吸着させ
た。そして移動相としてアセトン/メタノール=9/2
の混合溶媒を50ml流し、その溶出液を集め、脱溶媒し
て、配糖体濃縮物70mgを得た(フラクションR−
2)。
【0025】また別に、同様にして抽出物2.7gを得
た。この抽出物2.7gをPH5.0に調整した水10
0gに溶解し、β−グルコシダーゼ100mgを添加し
て、40℃で20時間処理した。次にその処理液を50
0ml容の分液ロートに移し、酢酸エチル200mlを加え
て抽出を行ない、その酢酸エチル抽出液を40℃以下の
温度で減圧下に60gまで濃縮し、更に凍結乾燥して、
胡麻処理物1.5gを得た(フラクションR−3)。
【0026】更にまた別に、同様にして抽出物2.7g
を得、この抽出物2.7gから胡麻処理物1.5gを得
た。この胡麻処理物を下記の条件で液体クロマトグラフ
ィーを用いて更に分画した。 固定相:デベロシルODS−10(商品名、野村化学社
製) カラム径:20mm カラム長:250mm 移動相:メタノール/水=60/40(v/v) 移動相流量:6ml/分 検出:UV280nm ここで保持時間19分で流出する区分を回収した後、4
0℃以下の温度で減圧下に濃縮し、更に凍結乾燥して、
固状物113.8mgを得た(フラクションA)。また保
持時間15分で流出する区分を回収した後、40℃以下
の温度で減圧下に濃縮し、更に凍結乾燥して、固状物
8.9mgを得た(フラクションB)。
【0027】かくして抽出し、β−グルコシダーゼで処
理して、更に液体クロマトグラフィーで分画して得たフ
ラクションAが前記の式1においてRが式2で示される
有機基である場合のセサミノール2’−O−β−D−グ
ルコピラノシドであり、またフラクションBが前記の式
1においてRが式3で示される有機基である場合のセサ
ミノール2’−O−β−D−グルコピラノシル(1→
2)−β−D−グルコピラノシドであることを、以下の
各種分析結果により確定した。
【0028】フラクションAの分析結果 マススペクトル: [M+1]+;533,[M+Na]+;555 紫外線吸収スペクトル: λmax;290.2nm,236.4nm εmax;8710,10000 比旋光度[α]D:−6.2
【0029】1 HNMRδケミカルシフト(帰属水素): 2.98(2H,m),3.50(4H,m),3.72
(1H,m),3.87(1H,dd),3.94(1
H,m),4.06(1H,d),4.19(1H,
d),4.26(1H,d),4.63(1H,d),
4.85(1H,d),5.18(1H,d),5.93
(2H,s),5.96(2H,s),6.78(1H,
d),6.81(1H,dd),6.82(2H,s),
6.85(1H,d)
【0030】13 CNMRδケミカルシフト(帰属炭素): 54.7(C−5),55.4(C−1),62.6(G
−6),71.2(G−4),71.9(C−4),7
3.6(C−8),74.7(G−2),77.8(G−
3),78.0(G−5),82.1(C−2),85.
9(C−6),99.6(C−3’),101.9(−O
C’H2−O−),102.0(−OC”H2−O−),1
03.4(G−1),105.8(C−6’),107.
2(C−2”),108.6(C−5”),120.1
(C−6”),125.5(C−1’),136.8(C
−1”),143.3(C−4’),147.1(C−
5’),147.8(C−3”),148.7(C−
4”),150.4(C−2’)
【0031】フラクションBの分析結果 マススペクトル: [M+1]+;695,[M+Na]+;717 紫外線吸収スペクトル: λmax;290.6nm,235.8nm εmax;9120,10233 比旋光度[α]D:−25.6
【0032】1 HNMRδケミカルシフト(帰属水素): 2.81(1H,m),2.89(1H,m),3.03
(1H),3.10(1H),3.19(1H),3.2
0(1H),3.21(1H),3.40(1H),3.
41(1H),3.53(1H),3.54(1H),
3.55(1H),3.56(1H),3.70(1
H),3.78(1H,dd),4.00(1H,d
d),4.18(2H,dd),4.59(1H,d),
4.63(1H,d),4.96(1H,d),5.06
(1H,d),5.95(2H,d),5.99(2H,
s),6.80(1H,s),6.12(1H,s),
6.83(1H,dd),6.84(1H,d),6.9
1(1H,d)
【0033】13 CNMRδケミカルシフト(帰属炭素): 53.9(C−5),54.2(C−1),60.3(G
−6’),60.6(G−6),69.3(G−4’),
69.5(G−4),71.0(C−4),72.3(C
−8),74.9(G−2’),76.3(G−5’),
76.6(G−5),76.8(G−3),77.0(G
−3’),80.5(C−2),81.4(G−2),8
4.4(C−6),97.5(C−3’),98.7(G
−1),100.9(−OCH2−O−),101.0
(−OCH2−O−),104.0(G−1’),10
4.6(C−6’),107.9(C−2”),119.
3(C−5”),124.0(C−6”),135.5
(C−1’),141.5(C−1”),146.3(C
−5’),146.5(C−4”),147.3(C−
3”),148.1(C−2’)
【0034】抗酸化性能の評価 1リットルのビーカーに豆乳500mlとフラクションA
を70μM投入し、40℃に保温して空気をバブリング
しながら、3時間処理した。同様に、フラクションBを
70μM添加した豆乳、フラクションR−1を40mg添
加した豆乳、フラクションR−2を40mg添加した豆
乳、フラクションR−3を40mg添加した豆乳、セサミ
ノールを70μM添加した豆乳(以上、添加区分)、及
び無添加の豆乳(無添加区分)を処理した。処理後の豆
乳0.1ml及びt−ブチルハイドロパーオキサイド水溶
液(2.16mg/ml)0.05mlをスクリューキャップ
付き試験管に入れ、37℃で20分間振とうした後、2
0%トリクロロ酢酸水溶液1ml及び0.67%チオバル
ビツール酸水溶液2mlを加えて、100℃で10分間加
熱発色させ、3500rpmで15分間遠心分離を行な
い、上澄み液について532nmの吸光度を測定し、下
記の式4で発色度を算出した。結果を表1に示した。上
澄み液の発色は過酸化脂質の生成度に依存し、したがっ
て発色度が低い程、脂質の酸化防止に有効であることを
示す。尚、油溶性の天然抗酸化剤であるセサミノールは
水系媒体中では脂質と混ざり難いものとして比較に使用
した。
【式4】発色度=(添加区分の上澄み液の吸光度/無添
加区分の上澄み液の吸光度)×100
【0035】
【表1】
【0036】
【発明の効果】既に明らかなように、以上説明した式1
で示されるセサミノール配糖体は水系媒体中に共存する
脂質の酸化を防止するのに有効であるという効果があ
る。
フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 A23D 9/06 A23L 3/3562 A23L 3/3562 A23B 4/14

Claims (2)

    (57)【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 下記の式1で示されるセサミノール配糖
    体。 【式1】 (式1において、Rは下記の式2又は式3で示される有
    機基) 【式2】 【式3】
  2. 【請求項2】 請求項1記載のセサミノール配糖体から
    成る水溶性抗酸化剤
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