JP2024023294A - 遺伝子編集のためのcpf1関連方法及び組成物 - Google Patents

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Abstract

【課題】標的核酸配列を編集し、且つ/又は標的核酸配列の発現を調整するためのCRISPR/Cpf1関連方法及び構成要素並びにこのような編集及び/又は発現の調整を評価するための方法及び組成物を提供する。【解決手段】一態様では、本開示は、治療に関連する細胞集団における、治療に関連する標的部位のCRISPR/Cpf1媒介編集の使用に関する。例えば、本開示は、治療に関連する標的部位の修飾を含む単離された細胞を提供する。特定の実施形態では、細胞は、例えば、CD8+T細胞等である。また、特定の実施形態では、本開示は、例えば、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、例えばHBG遺伝子の調節領域を含むHBG遺伝子座を標的とするgRNA分子とを含むRNP複合体の送達によって生成される、例えばHBG遺伝子座の破壊などの修飾を含む単離された細胞又は細胞集団を提供する。【選択図】なし

Description

関連出願の相互参照
本出願は、それぞれの優先権が主張され、そのそれぞれの内容が全体として本明細書に援用される、2017年12月11日に出願された米国仮特許出願第62/597,118号、2018年1月29日に出願された米国仮特許出願第62/623,501号、2018年4月30日に出願された米国仮特許出願第62/664,905号及び2018年10月16日に出願された米国仮特許出願第62/746,494号に対する優先権を主張する。
配列リスト
本明細書には、2018年12月11日にEFSを介して提出された配列リストが参照によりさらに組み込まれる。37C.F.R.§1.52(e)(5)に従い、0841770210SL.txtとして同定される配列リストのテキストファイルは、444,032バイトであり、2018年12月11日に作成された。配列表の内容全体は、本明細書に参照により援用される。配列リストは、本明細書の範囲を超えて拡張されず、したがって新しい事項は含まない。
本開示は、標的核酸配列を編集し、且つ/又は標的核酸配列の発現を調整するためのCRISPR/Cpf1関連方法及び構成要素並びにこのような編集及び/又は発現の調整を評価するための方法及び組成物に関する。
CRISPR(規則的な間隔をもってクラスター化された短鎖反復回文配列)は、細菌及び古細菌において、ウイルスの攻撃から防御するための適応性免疫系として発達した。ウイルスへの曝露に際して、ウイルスDNAの短いセグメントがCRISPR遺伝子座に組み込まれる。ウイルス配列を含むCRISPR遺伝子座の一部からRNAが転写される。ウイルスゲノムに相補的な配列を含有するそのRNAは、ウイルスゲノム中の標的配列へのCpf1タンパク質の標的化を媒介する。Cas12aとしても知られるCpf1タンパク質(「プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francisella)からのCRISPR1」)は、次に切断し、それによってウイルス標的を発現停止する。
最近、CRISPR/Cpf1システムが真核細胞内のゲノム編集のために応用されている。部位特異的二本鎖切断(DSB)の導入は、例えば、非相同末端結合(NHEJ)又は相同指向修復(HDR)などの内因性DNA修復機構を通じた標的配列改変を可能にする。
本開示は、例えば、治療に関連する細胞株における及び治療に関連する標的配列に関して、標的核酸配列を編集し、且つ/又は標的核酸配列の発現を調整するためのCRISPR/Cpf1関連方法及び構成要素の改善並びにこのような標的編集及び/又は発現の調整の効率を評価するためのストラテジーを提供する。
一態様では、本開示は、治療に関連する細胞集団における、治療に関連する標的部位のCRISPR/Cpf1媒介編集の使用に関する。例えば、限定されるものではないが、本開示は、治療に関連する標的部位の修飾を含む単離された細胞を提供する。特定の実施形態では、細胞は、例えば、CD8T細胞、CD8ナイーブT細胞、CD4中央記憶T細胞、CD8中央記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4T細胞、CD4幹細胞記憶T細胞、CD8幹細胞記憶T細胞、CD4ヘルパーT細胞、制御性T細胞、細胞毒性T細胞、ナチュラルキラーT細胞、CD4+ナイーブT細胞、TH17CD4T細胞、TH1CD4T細胞、TH2CD4T細胞、TH9CD4T細胞、CD4Foxp3T細胞、CD4CD25CD127T細胞又はCD4CD25CD127Foxp3T細胞などのT細胞である。特定の実施形態では、細胞は、リンパ系前駆細胞、造血幹細胞(HSC)、ヒト臍帯血誘導赤血球系前駆(HUDEP)細胞、ナチュラルキラー細胞又は樹状細胞である。特定の実施形態では、細胞は、HSC又はHUDEP細胞である。
特定の実施形態では、本開示は、例えば、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、例えばHBG遺伝子の調節領域を含むHBG遺伝子座を標的とするgRNA分子とを含むRNP複合体の送達によって生成される、例えばHBG遺伝子座の破壊などの修飾を含む単離された細胞又は細胞集団を提供する。特定の実施形態では、RNP複合体は、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとgRNA分子との間の複合体を含む。特定の実施形態では、HBG遺伝子座の任意の領域が標的化され得る。特定の実施形態では、HBG遺伝子のシス調節領域が標的化される。特定の実施形態では、本開示は、例えば、HBG遺伝子座のプロモーター領域の破壊などのCRISPR/Cpf1媒介編集の使用に関する。特定の実施形態では、本開示は、例えば、-110ntプロモーター領域などのHBG遺伝子座の-800~-60ntプロモーター領域のCRISPR/Cpf1媒介編集の使用に関する。特定の実施形態では、HBG遺伝子座のシス調節領域は、例えば、破壊されるなど、編集され得る。例えば、限定されるものではないが、CRISPR/Cpf1媒介編集を用いて、HBG遺伝子座のシス調節領域に存在するCAATボックスが破壊され得る。一般に、HBGプロモーター領域の破壊及びCAATボックスの破壊は、これらの配列を標的とするCRISPR/Cpf1編集システムの送達を介して達成され得る。HBG遺伝子座のこれらの配列を標的とするこのようなCRISPR/Cpf1編集システムで使用するためのgRNA分子の非限定的例は、図6、9及び11並びに表19に特定される。特定の実施形態では、HBG遺伝子配列を標的とするgRNA分子は、HBG1-1と称されるgRNA分子の配列を含む。
特定の実施形態では、本開示は、HBG遺伝子座の-110ntプロモーター領域が、CRISPR/Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、HBG遺伝子座の-110ntプロモーター領域を標的とするガイドRNAとを含む複合体を使用して破壊されている、単離されたCRISPR/Cpf1編集細胞に関する。特定の実施形態では、このようなCRISPR/Cpf1編集細胞は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含み得る。特定の実施形態では、このようなCRISPR/Cpf1編集細胞は、このような構成要素を検知するために使用される適切な方法を使用した判定でCRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含まない。特定の実施形態では、本開示は、HBG遺伝子座の-110ntプロモーター領域が、CRISPR/Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、HBG遺伝子座の-110ntプロモーター領域を標的とするガイドRNAとを含む複合体を使用して破壊されている、CRISPR/Cpf1編集細胞集団に関する。特定の実施形態では、このようなCRISPR/Cpf1編集細胞集団は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む細胞を含み得る。特定の実施形態では、このようなCRISPR/Cpf1編集細胞集団は、このような構成要素を検知するために使用される適切な方法を使用した判定でCRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含まない。特定の実施形態では、本開示は、HBGプロモーター領域に存在するCAATボックスが、CRISPR/Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、HBG遺伝子座のプロモーター領域に存在するCAATボックスを標的とするガイドRNAとを含む複合体を使用して破壊されている、CRISPR/Cpf1編集細胞に関する。特定の実施形態では、このような細胞は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む。特定の実施形態では、このようなCRISPR/Cpf1編集細胞は、このような構成要素を検知するために使用される適切な方法を使用した判定でCRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含まない。特定の実施形態では、本開示は、HBGプロモーター領域に存在するCAATボックスが、CRISPR/Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、HBG遺伝子座のプロモーター領域に存在するCAATボックスを標的とするガイドRNAとを含む複合体を使用して破壊されている、CRISPR/Cpf1編集細胞集団に関する。特定の実施形態では、このようなCRISPR/Cpf1編集細胞集団は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む細胞を含み得る。
特定の実施形態では、本開示は、例えば、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、BCL11a遺伝子配列を標的とするgRNA分子とを含む複合体の送達によって生成される、例えば転写リプレッサーBCL11aの赤血球系細胞特定発現の妨害などの修飾をはじめとするCRISPR/Cpf1を使用して編集されたCRISPR/Cpf1編集細胞又は細胞集団を提供する。特定の実施形態では、BCL11a遺伝子配列の任意の領域が標的化され得る。例えば、限定されるものではないが、例えば転写開始部位(TSS)から+55kb~+62kbの赤血球系エンハンサー領域などのBCL11a遺伝子の赤血球系エンハンサー領域が標的化され得る。特定の実施形態では、CRISPR/Cpf1媒介編集を用いて、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域に存在するBCL11aのGATA1結合モチーフが破壊され得る。BCL11aのGATA1結合モチーフの破壊は、そのモチーフを標的とするCRISPR/Cpf1編集システムの送達を介して達成され得る。BCL11aのGATA1モチーフを標的とする、このようなCRISPR/Cpf1編集システムで使用するためのgRNA分子の非限定的例は、図7、10及び12で特定される。
特定の実施形態では、本開示は、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域が破壊されている、CRISPR/Cpf1編集細胞に関する。特定の実施形態では、このようなCRISPR/Cpf1編集細胞は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含み得る。特定の実施形態では、本開示は、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域が破壊されている、CRISPR/Cpf1編集細胞集団に関する。特定の実施形態では、このようなCRISPR/Cpf1編集細胞集団は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む細胞を含み得る。特定の実施形態では、本開示は、BCL11a遺伝子のGATA1モチーフが破壊されている、CRISPR/Cpf1編集細胞に関する。特定の実施形態では、このようなCRISPR/Cpf1編集細胞は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含み得る。特定の実施形態では、本開示は、BCL11a遺伝子のGATA1モチーフが破壊されている、CRISPR/Cpf1編集細胞集団に関する。特定の実施形態では、このようなCRISPR/Cpf1編集細胞集団は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む細胞を含み得る。特定の実施形態では、細胞内又は細胞集団内でBCL11a遺伝子を修飾又は破壊するのに使用されるCRISPR/Cpf1システムの1つ又は複数の構成要素は、このような構成要素を検出するために使用される適切な手段を使用して検出不能である。
特定の実施形態では、本開示は、例えば、T細胞の1つ又は複数の内因性遺伝子の破壊などの修飾を含む単離されたCRISPR/Cpf1編集T細胞又はCRISPR/Cpf1編集T細胞集団を提供する。特定の実施形態では、本開示は、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA、TRBC及びそれらの任意の組み合わせからなる群から選択される、T細胞の内因性遺伝子のCRISPR/Cpf1媒介編集の使用に関する。例えば、限定されるものではないが、修飾は、例えば、FAS遺伝子配列の一部、BID遺伝子配列の一部、CTLA4遺伝子配列の一部、PDCD1遺伝子配列の一部、CBLB遺伝子配列の一部、PTPN6遺伝子配列の一部、B2M遺伝子配列の一部、TRAC遺伝子配列の一部、CIITA遺伝子配列の一部、TRBC遺伝子配列の一部又はそれらの組み合わせを標的とする、RNP複合体などのCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとgRNA分子とを含む1つ又は複数の複合体の送達によって生成される。例えば、限定されるものではないが、2つ以上、3つ以上、4つ以上、5つ以上、6つ以上、7つ以上、8つ以上、9つ以上又は10の複合体、例えばRNP複合体が送達され得、複合体のそれぞれは、異なる遺伝子を標的とする。特定の実施形態では、gRNAは、標的化される遺伝子のいずれかの鎖に相補的であり得る。特定の実施形態では、gRNA分子は、標的化される遺伝子の調節領域、イントロン又はエクソンを標的とし得る。
特定の実施形態では、本明細書の開示に包含されるCRISPR/Cpf1システムは、TRAC遺伝子を標的とし、例えばTRAC遺伝子の破壊などの修飾を含む例えば単離されたCRISPR/Cpf1編集T細胞又はCRISPR/Cpf1編集T細胞集団が生成される。特定の実施形態では、CRISPRシステムは、TRAC遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む。特定の実施形態では、gRNAは、TRAC遺伝子のいずれかの鎖に相補的であり得る。特定の実施形態では、TRAC遺伝子配列の標的化部分は、TRAC遺伝子のコード配列内にある。特定の実施形態では、TRAC遺伝子配列の標的化部分は、エクソン内にある。特定の実施形態では、TRAC遺伝子配列の標的化部分は、イントロン内にある。特定の実施形態では、TRAC遺伝子配列の標的化部分は、遺伝子の調節領域内にある。特定の実施形態では、2つ以上の配列が標的化され、TRAC遺伝子配列の標的化部分は、1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン、1つ若しくは複数の調節領域又は1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン及び1つ若しくは複数の調節領域内にある。特定の実施形態では、TRACを標的とするこのようなCRISPR/Cpf1システムで使用するためのgRNA分子標的化ドメインは、表2及び3に列挙される標的化ドメイン配列を含む。
特定の実施形態では、本明細書の開示に包含されるCRISPR/Cpf1システムは、TRBC遺伝子を標的とし、例えばTRBC遺伝子の破壊などの修飾を含む例えば単離されたCRISPR/Cpf1編集T細胞又はCRISPR/Cpf1編集T細胞集団が生成される。特定の実施形態では、CRISPRシステムは、TRBC遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む。特定の実施形態では、gRNAは、TRBC遺伝子のいずれかの鎖に相補的であり得る。特定の実施形態では、TRBC遺伝子配列の標的化部分は、TRBC遺伝子のコード配列内にある。特定の実施形態では、TRBC遺伝子配列の標的化部分は、エクソン内にある。特定の実施形態では、TRBC遺伝子配列の標的化部分は、イントロン内にある。特定の実施形態では、TRBC遺伝子配列の標的化部分は、遺伝子の調節領域内にある。特定の実施形態では、2つ以上の配列が標的化され、TRBC遺伝子配列の標的化部分は、1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン、1つ若しくは複数の調節領域又は1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン及び1つ若しくは複数の調節領域内にある。特定の実施形態では、TRBCを標的とするこのようなCRISPR/Cpf1システムで使用するためのgRNA分子標的化ドメインは、表4及び5に列挙される標的化ドメイン配列を含む。
特定の実施形態では、本明細書の開示に包含されるCRISPR/Cpf1システムは、B2M遺伝子を標的とし、例えばB2M遺伝子の破壊などの修飾を含む例えば単離されたCRISPR/Cpf1編集T細胞又はCRISPR/Cpf1編集T細胞集団が生成される。特定の実施形態では、CRISPRシステムは、B2M遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む。特定の実施形態では、gRNAは、B2M遺伝子のいずれかの鎖に相補的であり得る。特定の実施形態では、B2M遺伝子配列の標的化部分は、B2M遺伝子のコード配列内にある。特定の実施形態では、B2M遺伝子配列の標的化部分は、エクソン内にある。特定の実施形態では、B2M遺伝子配列の標的化部分は、イントロン内にある。特定の実施形態では、B2M遺伝子配列の標的化部分は、遺伝子の調節領域内にある。特定の実施形態では、2つ以上の配列が標的化され、B2M遺伝子配列の標的化部分は、1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン、1つ若しくは複数の調節領域又は1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン及び1つ若しくは複数の調節領域内にある。特定の実施形態では、B2Mを標的とするこのようなCRISPR/Cpf1システムで使用するためのgRNA分子標的化ドメインは、表6、7及び8に列挙される標的化ドメイン配列を含む。特定の実施形態では、B2Mを標的とするこのようなCRISPR/Cpf1システムで使用するためのgRNA分子の標的化ドメインは、核酸配列AGUGGGGGUGAAUUCAGUGUを含む。
特定の実施形態では、本明細書の開示に包含されるCRISPR/Cpf1システムは、CIITA遺伝子を標的とし、例えばCIITA遺伝子の破壊などの修飾を含む例えば単離されたCRISPR/Cpf1編集T細胞又はCRISPR/Cpf1編集T細胞集団が生成される。特定の実施形態では、CRISPRシステムは、CIITA遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む。特定の実施形態では、gRNAは、CIITA遺伝子のいずれかの鎖に相補的であり得る。特定の実施形態では、CIITA遺伝子配列の標的化部分は、CIITA遺伝子のコード配列内にある。特定の実施形態では、CIITA遺伝子配列の標的化部分は、エクソン内にある。特定の実施形態では、CIITA遺伝子配列の標的化部分は、イントロン内にある。特定の実施形態では、CIITA遺伝子配列の標的化部分は、遺伝子の調節領域内にある。特定の実施形態では、2つ以上の配列が標的化され、CIITA遺伝子配列の標的化部分は、1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン、1つ若しくは複数の調節領域又は1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン及び1つ若しくは複数の調節領域内にある。特定の実施形態では、CIITAを標的とするこのようなCRISPR/Cpf1システムで使用するためのgRNA分子標的化ドメインは、表9に列挙される標的化ドメイン配列を含む。
特定の実施形態では、本明細書の開示に包含されるCRISPR/Cpf1システムは、これらの遺伝子の2つ以上の1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン又は1つ若しくは複数の調節領域を標的とするgRNAを使用して、TRAC、CIITA、TRBC及びB2M遺伝子の2つ以上の組み合わせを標的とし、例えばTRAC、CIITA、TRBC及びB2M遺伝子の2つ以上の破壊などの修飾を含む単離されたCRISPR/Cpf1編集T細胞又はCRISPR/Cpf1編集T細胞集団が生成する。特定の実施形態では、本開示のCRISPR/Cpf1システムは、例えば、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される遺伝子の1つ又は複数を標的とする、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとgRNA分子とを含む1つ又は複数の複合体を含み得る。例えば、限定されるものではないが、本開示のCRISPR/Cpf1システムは、(a)第1の遺伝子の標的配列に相補的な第1の標的ドメインを含む第1のgRNAと、第1のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとを含む第1のRNP複合体;及び(b)第2の遺伝子の標的配列に相補的な第2の標的化ドメインを含む第2のgRNA分子と、第2のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとを含む第2のRNP複合体を含み得る。特定の実施形態では、第1の遺伝子及び第2の遺伝子は、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される。CRISPR/Cpf1システムは、1つ又は複数の追加的な遺伝子を標的とする追加的なRNP複合体をさらに含み得る。例えば、限定されるものではないが、多重化の場合、各RNP複合体は、同一のCpf1タンパク質を含有し得るか、又は各RNP複合体は、例えば、Cpf1タンパク質変異型などの異なるCpf1タンパク質を含み得る。
特定の実施形態では、例えば、単離されたCRISPR/Cpf1編集HSC若しくはCRISPR/Cpf1編集T細胞又はこのようなCRISPR/Cpf1編集細胞集団などの単離された細胞は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含まない。特定の実施形態では、このような構成要素を検知する適切な手段を使用した判定で、細胞集団内のCRISPR/Cpf1編集細胞の約10%未満、約5%未満又は約1%未満がCRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む。特定の実施形態では、細胞集団内の細胞の少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%が編集及び/又は修飾され、例えばBCL11a遺伝子の破壊、HBG遺伝子座の破壊及び/又はFAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCから選択される1つ又は複数の遺伝子の破壊を有する。特定の実施形態では、細胞集団は、約15%を超える編集、約20%を超える編集、約25%を超える編集、約30%を超える編集、約35%を超える編集、約40%を超える編集、約45%を超える編集、約50%を超える編集、約55%を超える編集又は約60%を超える編集を有する。特定の実施形態では、細胞集団内の細胞の少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%は、生産的インデルを有する。
別の態様では、本開示は、修飾Cpf1タンパク質と、標的核酸配列を編集し、且つ/又は標的核酸配列の発現を調整するためのCRISPR/Cpf1関連方法におけるそれらの使用とに関する。本開示は、修飾Cpf1タンパク質をコードする核酸をさらに提供する。
特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、アシダミノコッカス属(Acidaminococcus)種株BV3L6 Cpf1タンパク質(AsCpf1)、フランシセラ・ノビシダ(Francisella novicida)U112(FnCpf1)、モラクセラ・ボボクリ(Moraxella bovoculi)237(MbCpf1)、カンジダツス・メタノメチルフィルス(Candidatus Methanomethylphilus)alvus Mx1201(CMaCpf1)、スネアチア・アムニイ(Sneathia amnii)(SaCpfq)、モラクセラ・ラクナータ(Moraxella lacunata)(MlCpf1)、モラクセラ・ボボクリ(Moraxella bovoculi)AAX08_00205(Mb2Cpf1)、モラクセラ・ボボクリ(Moraxella bovoculi)AAX11_00205(Mb3Cpf1)、ラクノスピラ菌(Lachnospiraceae bacterium)ND2006 Cpf1タンパク質(LbCpf1)、ラクノスピラ菌(Lachnospiraceae bacterium)MA2020(Lb5Cpf1)、ラクノスピラ菌(Lachnospiraceae bacterium)MC2017(Lb4Cpf1)、フラボバクテリウム・ブランキオフィルム(Flavobacterium branchiophilum)FL-15(FbCpf1)、チオミクロスピラ属(Thiomicrospira)種XS5(TsCpf1)、パルキュバクテリア(Parcubacteria)群菌GW2011(PgCpf1)、カンジダツス・ロイズマンバクテリア(Candidatus Roizmanbacteria)菌GW2011(CRbCpf1)、カンジダツス・ペレグリンバクテリア(Candidatus Peregrinbacteria)菌GW2011(CPbCpf1)、ブチリビブリオ属(Butyrivibrio)種NC3005(BsCpf1)、ブチリビブリオ・フィブリソルベンス(Butyrivibrio fibrisolvens)(BfCpf1)、プレボテラ・ブライアンチイ(Prevotella bryantii)B14(Pb2Cpf1)及びバクテロイデス門(Bacteroidetes)口腔分類群274(BoCpf1)からなる群から選択されるCpf1タンパク質に由来する(例えば、その内容全体が参照により本明細書に援用されるZetsche et al.,bioRxiv 134015;doi:https://doi.org/10.1101/134015を参照されたい)。
特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、核局在化シグナル(NLS)を含む。例えば、限定されるものではないが、このようなNLS配列は、ヌクレオプラスミンNLS(nNLS)(配列番号1)及びシミアンウイルス40「SV40」NLS(sNLS)(配列番号2)からなる群から選択される。
特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質のNLS配列は、Cpf1タンパク質配列のC末端又はその近傍に配置される。例えば、限定されるものではないが、修飾Cpf1タンパク質は、His-AsCpf1-nNLS(配列番号3);His-AsCpf1-sNstaneyLS(配列番号4);及びHis-AsCpf1-sNLS-sNLS(配列番号5)から選択され得る。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質のNLS配列は、Cpf1タンパク質配列のN末端又はその近傍に配置される。例えば、限定されるものではないが、修飾Cpf1タンパク質は、His-sNLS-AsCpf1(配列番号6)、His-sNLS-sNLS-AsCpf1(配列番号7)及びsNLS-sNLS-AsCpf1(配列番号8)から選択され得る。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、Cpf1タンパク質配列のN末端及びC末端の両方又はその近傍に位置するNLS配列を含む。例えば、限定されるものではないが、修飾Cpf1タンパク質は、His-sNLS-AsCpf1-sNLS(配列番号9)及びHis-sNLS-sNLS-AsCpf1-sNLS-sNLS(配列番号10)から選択され得る。例えば、2つ以上のnNLS配列又はnNLS及びsNLS配列(又は他のNLS配列)の組み合わせ並びに例えば6-ヒスチジン配列などの精製配列あり又はなしの配列を付加することなどのNLS配列の同一性及びN末端/C末端位置の追加的な順列は、現在開示されている主題の範囲内である。
特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、Cpf1タンパク質配列の1つ又は複数のシステイン残基に改変(例えば、欠失又は置換)を含む。例えば、限定されるものではないが、修飾Cpf1タンパク質は、C65、C205、C334、C379、C608、C674、C1025及びC1248からなる群から選択される位置に改変を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、セリン又はアラニンの1つ又は複数のシステイン残基の置換を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、C65S、C205S、C334S、C379S、C608S、C674S、C1025S及びC1248Sからなる群から選択される改変を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、C65A、C205A、C334A、C379A、C608A、C674A、C1025A及びC1248Aからなる群から選択される改変を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、位置C334及びC674又はC334、C379及びC674に改変を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、C334S及びC674S又はC334S、C379S及びC674Sに改変を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、C334A及びC674A又はC334A、C379A及びC674Aに改変を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、例えば、His-AsCpf1-nNLS Cys-less(配列番号11)又はHis-AsCpf1-nNLS Cys-low(配列番号12)などの1つ又は複数のシステイン残基改変並びに1つ又は複数のNLS配列の導入の両方を含む。特定の実施形態では、1つ又は複数のシステイン残基の欠失又は置換を含むCpf1タンパク質は、凝集の減少を示す。
さらなる態様では、本開示は、細胞内で1つ又は複数の標的配列を修飾する方法を提供する。特定の実施形態では、このような方法は、細胞又は細胞集団を、(a)関心のある標的配列に相補的なgRNA分子;及び(b)Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼに接触させることを含む。特定の実施形態では、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、細胞又は細胞集団中の関心のある標的配列を修飾する。特定の実施形態では、細胞は、T細胞、造血幹細胞(HSC)又はヒト臍帯血誘導赤血球系前駆(HUDEP)細胞である。特定の実施形態では、細胞集団内の細胞の少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%が修飾される。特定の実施形態では、関心のある標的配列は、例えば、プロモーター領域などのHBG1遺伝子配列であり、gRNA分子は、gRNA分子HBG1-1の配列を含む。特定の実施形態では、関心のある標的配列は、BCL11a遺伝子配列である。代わりに、標的核酸配列は、FAS遺伝子配列の一部、BID遺伝子配列の一部、CTLA4遺伝子配列の一部、PDCD1遺伝子配列の一部、CBLB遺伝子配列の一部、PTPN6遺伝子配列の一部、B2M遺伝子配列の一部、TRAC遺伝子配列の一部、CIITA遺伝子配列の一部、TRBC遺伝子配列の一部及びそれらの組み合わせからなる群から選択される。
本開示は、例えば、細胞を、(a)第1の遺伝子の標的配列に相補的な第1の標的ドメインを含む第1のgRNAと、第1のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとを含む第1のRNP複合体;及び(b)第2の遺伝子の標的配列に相補的な第2の標的化ドメインを含む第2のgRNA分子と、第2のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとを含む第2のRNP複合体に接触させることを含む、細胞内で2つ以上、3つ以上又は4つ以上などの1つ又は複数の遺伝子を修飾する方法をさらに提供する。特定の実施形態では、方法は、(c)第3の遺伝子の標的配列に相補的な第3の標的化ドメインを含む第3のgRNA分子と、第3のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとを含む第3のRNP複合体、及び/又は(d)第4の遺伝子の標的配列に相補的な第4の標的化ドメインを含む第4のgRNA分子と、第4のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとを含む第4のRNP複合体をさらに含み得る。特定の実施形態では、各RNP複合体は、同一のCpf1タンパク質を含み得るか、又は各RNP複合体は、例えば、Cpf1タンパク質変異型などの異なるCpf1タンパク質を含み得る。特定の実施形態では、細胞内で例えば2つ以上、3つ以上又は4つ以上などの1つ又は複数の遺伝子を修飾する方法は、細胞を、(a)第1の遺伝子の標的配列に相補的な第1の標的化ドメインを含む第1のgRNA;(b)第2の遺伝子の標的配列に相補的な第2の標的化ドメインを含む第2のgRNA分子;及び(c)本明細書で開示されるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ又は開示されるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼをコードする核酸によってコードされるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼに接触させることを含み得る。特定の実施形態では、方法は、(d)第3の遺伝子の標的配列に相補的な第3の標的化ドメインを含む第3のgRNA分子、及び/又は(e)第4の遺伝子の標的配列に相補的な第4の標的化ドメインを含む第4のgRNA分子をさらに含み得る。Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、第1の遺伝子、第2の遺伝子、第3の遺伝子及び/又は第4の遺伝子を修飾する。特定の実施形態では、第1の遺伝子、第2の遺伝子、第3の遺伝子及び第4の遺伝子は、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子からなる群から選択される。特定の実施形態では、細胞は、T細胞である。
別の態様では、本開示は、本開示に包含されるCRISPR/Cpf1システムを用いて修飾された1つ又は複数の細胞を対象に投与することにより、対象を治療する方法に関する。特定の実施形態では、1つ又は複数の細胞は、エクスビボ又はインビトロで修飾され、次に対象に投与される。特定の実施形態では、対象を治療するための方法は、(a)標的核酸の標的配列に相補的なgRNA分子;及び(b)本明細書で開示されるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼを含むCRISPR/Cpf1システムを有する対象から得られた細胞を接触させることを含む。特定の実施形態では、本開示は、ドナーから得られ、対象への投与前に本開示のCRISPR/Cpf1システムを用いてエクスビボ又はインビトロで遺伝子改変された1つ又は複数の細胞を対象に投与することにより、それを必要とする対象を治療する方法に関する。特定の実施形態では、対象は、例えば、鎌状赤血球症又はβサラセミアなどの異常ヘモグロビン症に罹患している。特定の実施形態では、対象は、がん又は自己免疫障害に罹患している。
特定の実施形態では、本開示は、異常ヘモグロビン症に罹患している対象に細胞集団を投与する方法をさらに提供し、細胞集団は、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、HBG遺伝子配列又はBCL11a遺伝子配列を標的とするgRNA分子とを含む複合体の送達によって生成される、HBG遺伝子配列又はBCL11a遺伝子配列における修飾を含む。特定の実施形態では、細胞集団内の細胞の少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%が修飾される。特定の実施形態では、細胞は、造血幹細胞(HSC)又はヒト臍帯血誘導赤血球系前駆(HUDEP)細胞である。
さらなる態様では、本開示は、関心のある核酸配列を標的とし、例えばCRISPR/Cpf1編集細胞などの修飾細胞を生成するためのgRNA分子を提供する。特定の実施形態では、gRNA分子は、標的配列に相補的な第1の標的化ドメインを含み、標的配列は、HBG遺伝子配列又はBCL11a遺伝子配列である。このようなgRNAの非限定的例は、図6~12及び46並びに表19で提供される。特定の実施形態では、本開示は、gRNA分子を含むCRISPR/Cpf1システムを提供し、それが細胞に導入されると、gRNA分子の第1の標的化ドメインに相補的な標的配列又はその近傍にインデルが形成され、且つ/又はgRNA分子を含むCRISPR/Cpf1システムが細胞に導入されると、HBG1又はHBG2プロモーター領域内のgRNAの第1の標的化ドメインに相補的な配列に欠失が生じる。特定の実施形態では、本開示のgRNA分子を含むCRISPR/Cpf1システムは、細胞内に導入されると、胎児型ヘモグロビンの増加した発現をもたらす。特定の実施形態では、本開示のgRNA分子を含むCRISPR/Cpf1システムは、例えば、鎌状赤血球症又はβサラセミアなど、異常ヘモグロビン症の症状を部分的に又は完全に緩和するのに適した量で胎児型ヘモグロビンの発現の増加をもたらす。例えば、限定されるものではないが、胎児型ヘモグロビンの発現は、BCL11a遺伝子又はHBG遺伝子座及び/若しくは遺伝子に破壊のない細胞又は細胞集団における胎児型ヘモグロビンの発現のレベルと比較して少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約15%、少なくとも約20%、少なくとも約25%、少なくとも約30%、少なくとも約35%、少なくとも約40%、少なくとも約45%、少なくとも約50%、少なくとも約55%、少なくとも約60%、少なくとも約65%、少なくとも約70%、少なくとも約75%、少なくとも約80%、少なくとも約85%、少なくとも約90%又は少なくとも約95%増加し得る。特定の実施形態では、胎児型ヘモグロビンの発現の増加は、約1ピコグラム(pg)を超え、約2pgを超え、約3pgを超え、約4pgを超え、約5pgを超え、約6pgを超え、約7pgを超え、約8pgを超え、約9pgを超え、又は約10pgを超え得る。
本開示は、標的配列に相補的な第1の標的化ドメインを含むgRNA分子をさらに提供し、標的配列は、B2M遺伝子配列の一部、TRAC遺伝子配列の一部、CIITA遺伝子配列の一部、TRBC遺伝子配列の一部及びそれらの組み合わせからなる群から選択される。このようなgRNAの非限定的例は、表2~9で提供される。
本開示は、本明細書で開示されるgRNA分子を含む組成物を提供する。特定の実施形態では、gRNA分子は、表2~9及び19並びに図6~12で開示されるgRNAを含む。特定の実施形態では、gRNAは、表18で提供される染色体の位置(例えば、ゲノム座標)を標的とする。特定の実施形態では、組成物は、例えば、RNP複合体を生成するためにCpf1タンパク質をさらに含み得る。特定の実施形態では、本開示は、例えば、RNP複合体集団などの1つ又は複数のRNP複合体を含む組成物を提供し、各RNP複合体は、異なる遺伝子又は遺伝子領域を標的とする。特定の実施形態では、組成物を使用して、例えばがん、自己免疫障害又は異常ヘモグロビン症に罹患している対象など、それを必要とする対象が治療され得る。
別の態様では、本開示は、標的核酸配列を修飾するためのゲノム編集システムに関する。特定の実施形態では、ゲノム編集システムは、gRNA分子;及び本明細書で開示されるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼを含み得る。本開示は、例えば、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される2つ以上の遺伝子を編集するための多重ゲノム編集システムをさらに提供する。
さらなる態様では、本開示は、標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整を評価するための方法並びにそれを達成するための構成要素に関する。
特定の実施形態では、標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整を評価する方法は、標的核酸配列に関して、試験Cpf1タンパク質の活性を対照Cpf1タンパク質と比較することを含む。特定の実施形態では、試験Cpf1タンパク質は、例えば、野生型Cpf1タンパク質などの対照と比較して1つ又は複数の修飾を含む。このような修飾の例としては、1つ又は複数のNLS配列の組み込み、6-ヒスチジン精製配列の組み込み及びCpf1タンパク質システインアミノ酸の改変並びにそれらの組み合わせが挙げられるが、これらに限定されない。
特定の実施形態では、標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整を評価する方法は、「一致部位」標的核酸配列に関して、試験Cpf1タンパク質の活性を対照Cas9タンパク質と比較することを含む。本明細書の用法では、一致部位標的核酸配列は、例えば、TTTV AsCpf1野生型プロトスペーサー隣接モチーフ(「PAM」)及びNGG SpCas9野生型PAMなどのCpf1及びCas9によって編集されるという要件の両方を組み込んでいる。上述したように、試験Cpf1タンパク質は、野生型Cpf1タンパク質と比較して1つ又は複数の修飾を含み得る。このような修飾の例としては、1つ又は複数のNLS配列を組み込むための前述の修飾、6-ヒスチジン精製配列を組み込むための前述の修飾及びCpf1タンパク質システインアミノ酸の改変並びにそれらの組み合わせが挙げられるが、これらに限定されない。
特定の実施形態では、本開示は、試験CRISPR/Cpf1ゲノム編集システムによる標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整を対照RNA誘導ヌクレアーゼゲノム編集システムと比較するためのアッセイに関する。例えば、限定されるものではないが、試験及び対照ゲノム編集システムは、次の側面のいずれか1つ又は複数が異なり得る:RNA誘導ヌクレアーゼの配列;例えばゲノム編集システムの構成要素の製造方法などの供給源;ゲノム編集システムの1つ又は複数の構成要素の配合;及び例えば細胞型又は細胞の調製方法など、その中にゲノム編集システムが導入される細胞の同一性。特定の実施形態では、本明細書に記載のアッセイは、試験ゲノム編集システムの品質管理分析を可能にする。特定の実施形態では、本開示のアッセイは、標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整を評価し、標的は、一致部位配列を含む。
特定の実施形態では、一致部位標的核酸の使用は、標的核酸配列のCRISPR/Cas9媒介編集(又は別のCRISPRベースのシステムによる編集)及び/又は標的核酸配列の発現の調整と対比したCRISPR/Cpf1媒介編集のアッセイ及び/又は評価を可能にする。
特定の実施形態では、一致部位標的核酸の使用は、特定の細胞型における、標的核酸配列のCRISPR/Cas9媒介編集(又は別のCRISPRベースのシステムによる編集)及び/又は標的核酸配列の発現の調整と対比したCRISPR/Cpf1媒介編集のアッセイ及び/又は評価を可能にする。例えば、限定されるものではないが、このような方法を使用して、いくつかの細胞型中で特に、T細胞、造血幹細胞(CD34HSCをはじめとするが、これに限定されるものではないHSC)及びヒト臍帯血誘導赤血球系前駆(HUDEP)細胞における、標的核酸配列のCRISPR/Cas9媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整と対比してCRISPR/Cpf1媒介編集が評価され得る。
特定の実施形態では、一致部位標的核酸の使用は、用いられるCRISPR/Cpf1媒介編集システムの特定の属性に関して、標的核酸配列のCRISPR/Cas9媒介編集(又は別のCRISPRベースのシステムによる編集)及び/又は標的核酸配列の発現の調整と対比してCRISPR/Cpf1媒介編集のアッセイ及び/又は評価を可能にする。例えば、限定されるものではないが、このような方法を使用して、標的核酸配列のCRISPR/Cas9媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整と対比してCRISPR/Cpf1媒介編集が評価され、異なる製造プロセスによって調製されたCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び/又はgRNAの活性の差異が同定され得る。このような方法は、異なる調合物に存在し、且つ異なる送達ストラテジーを用いるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び/又はgRNAの活性の差異も同定し得る。
特定の実施形態では、一致部位標的核酸配列は、一致部位1(「MS1」;配列番号13)、一致部位5(「MS5」;配列番号14)、一致部位11(「MS11」;配列番号15)及び一致部位18(「MS18」;配列番号16)からなる群から選択される。特定の実施形態では、一致部位標的核酸配列は、MS5である。
様々なストラテジーを用いて、本開示のCRISPR/Cpf1編集システムが細胞に送達され得る。例えば、限定されるものではないが、CRISPR/Cpf1編集システムの構成要素をコードする、例えばAAV又は他のウイルスベクターなどのベクターを使用して、細胞内でCRISPR/Cpf1編集システムの構成要素の発現が誘導され得る。代わりに、例えばRNP複合体を細胞に送達するために使用され得る電気穿孔又は任意の他の適切な方法により、CRISPR/Cpf1編集システムの様々な構成要素を含むRNP複合体が細胞に送達され得る。特定の実施形態では、脂質ナノ粒子を使用して、RNP複合体が細胞に送達され得る。
添付の図面は、本開示の特定の態様及び実施形態の包括的ではなく、むしろ例示的で概略的な例を提供することを意図している。図面は、任意の特定の理論又はモデルを制限することも又はそれに拘束されることも意図されず、必ずしも縮尺通りに描かれていない。上記を限定することなく、核酸及びポリペプチドは線状配列として又は概略的な二次元若しくは三次元構造として描写され得;これらの描写は、それらの構造に関する任意の特定のモデル又は理論を制限することも又はそれに拘束されることもなく、むしろ例示的であることを意図している。
操作されたCpf1変異型がどのようにPAM標的化空間を拡大するかの概要を提供する。 Kleinstiver et al.,Nature Biotechnology,34(8):869-74 Aug.2016からの4つの一致部位の配列(MS1、MS5、MS11及びMS18)の概要及びこれらの一致部位標的配列に関連して、Cpf1及びCas9の性能を評価するのに使用された細胞型を提供する。 2つの一致部位遺伝子座(MS1及びMS5)で、Cpf1/gRNA RNPの増加する濃度をCas9/gRNA RNPと比較する用量反応実験の結果(図3A)並びに一致部位標的MS1、MS5、MS11及びMS18に対するAsCpf1及びSpCas9の活性を比較するアッセイの結果を描写し、Cpf1は、特定の標的部位をCas9よりも効率的に編集する(図3B)。 2つの一致部位遺伝子座(MS1及びMS5)で、Cpf1/gRNA RNPの増加する濃度をCas9/gRNA RNPと比較する用量反応実験の結果(図3A)並びに一致部位標的MS1、MS5、MS11及びMS18に対するAsCpf1及びSpCas9の活性を比較するアッセイの結果を描写し、Cpf1は、特定の標的部位をCas9よりも効率的に編集する(図3B)。 一致部位5ガイドを用いた、固定4.4μM RNP用量での複数の細胞型にわたる様々なAsCpf1 NLS変異型の比較を示す。データは、各細胞型について最大編集を提示する変異型に対して正規化される。 初代T細胞におけるTRAC遺伝子座を標的とするガイドRNA GWED545を用いた、4.4μM RNP用量での様々な2つの最適なAsCpf1 NLS変異型の比較(図5A)及び初代T細胞におけるTRAC遺伝子座を標的とするガイドRNA B2M-12を用いた、4.4μM RNP用量でのHis-AsCpf1-sNLS-sNLS変異型の比較(図5B)を示す。いずれの場合も、データは、最大の編集を提示する変異型に対して正規化される。 初代T細胞におけるTRAC遺伝子座を標的とするガイドRNA GWED545を用いた、4.4μM RNP用量での様々な2つの最適なAsCpf1 NLS変異型の比較(図5A)及び初代T細胞におけるTRAC遺伝子座を標的とするガイドRNA B2M-12を用いた、4.4μM RNP用量でのHis-AsCpf1-sNLS-sNLS変異型の比較(図5B)を示す。いずれの場合も、データは、最大の編集を提示する変異型に対して正規化される。 HSC及びHUDEPにおけるHBG1アッセイで用いられるgRNA配列を示す。 HSC及びHUDEPにおけるBCL11aアッセイで用いられるgRNA配列を示す。 HSC又はHUDEPのいずれかにおけるHBG1又はBCL11aの特定の配列及びそれらの対応する%編集を示す。HBBを標的とすると提案されたgRNAも提供される。 CAATボックスモチーフにgRNA AsCpf1 WT HBG1-1が結合しているHBG1プロモーター領域を示す。 GATA1モチーフにgRNA BCL11a AsCpf1 RR-8が結合しているBCL11aエンハンサー領域の一部を示す。 図6で同定されたgRNAを使用してスクリーニングされたHBG1プロモーターの領域を示す。この領域は、約150bpに及ぶ。HBG1-1は、CAATボックスモチーフと重なって示される。 図7で同定されたgRNAを使用してスクリーニングされたBCL11a赤血球エンハンサーの領域を示す。この領域は、およそ600塩基対に及び、BCL11a RR-8は、GATA1モチーフと重複して示される。 AsCpf1低システインコンストラクトが同定されたシステイン変異体を示す。 AsCpf1 C334S C379S C674S中のシステイン残基の有意に低下したアクセス性を実証するAlexaFluorマレイミドアッセイの結果を示す。 MS5基質DNAに対する、WT AsCpf1、AsCpf1システインなし及び2つの低システイン変異型の同等のエンドヌクレアーゼ活性の実証を描写する。 HUDEP及びHSCにおける、AsCpf1 WT及びRR PAM変異型によるHBG1プロモーター領域の標的化を示す。HUDEP実験は、最適なCA-137パルスプログラムとLonza溶液SEとを使用して実施された。HSCスクリーニングは、製造業者によって推奨されるように、パルスコードEO-100とLonza溶液P3とを用いて実行された。用量は、全てのガイドに対して、2:1のガイド:タンパク質比率で4.4μM RNPであった。1条件当たり5万個のHSCが処理された。AsCpf1 WT及びRRタンパク質は、<5EU/mLの内毒素レベルを有した。 HUDEP及びHSCにおける1つのWT FnCpf1標的と共に、AsCpf1 WT及びRR及びRVR PAM変異型によるBCL11aエンハンサー領域のスクリーニングを示す。HUDEPスクリーニング実行は、最適なCA-137パルスプログラムを、Lonza溶液SEを用いて実施された。HSCスクリーニングは、製造業者によって推奨されるように、パルスコードEO-100及びLonza溶液P3を用いて実行された。BCL11a(KOBEHと命名される)の対照ガイドも示される。用量は、全てのガイドに対して、2:1のガイド:タンパク質比率で4.4μM RNPであった。1条件当たり5万個のHSCが処理された。AsCpf1 WT、RR及びRVRタンパク質は、<5EU/mLの内毒素レベルを有した。 HUDEPにおけるAsCpf1のヌクレオフェクションスクリーニングを示す。用量は、2:1のガイド:タンパク質で一致部位5(MS5)ガイドRNAを使用して、2.2μM AsCpf1 RNPであった。AsCpf1 WTタンパク質は、<5EU/mLの内毒素レベルを有した。Lonza溶液SE、SF及びSGは、異なるパルスプログラムを使用して、1条件当たり5万個のHUDEPで試験された。溶液SEでのパルスコードCA-137及びCA-138は、最適な編集を実証した。 HSCにおけるAsCpf1のヌクレオフェクションスクリーニングを示す。用量は、2:1のガイド:タンパク質で一致部位5(MS5)ガイドRNAを使用して、2.2μM AsCpf1 RNPであった。AsCpf1 WTタンパク質は、<5EU/mLの内毒素レベルを有した。Lonza溶液P1、P2、P3、P4及びP5は、異なるパルスプログラムを使用して、1条件当たり5万個のHSCで試験された。溶液P2でのパルスコードCA-137及びCA-138は、最適な編集を実証し、FF-100及びFF-104も同様であった。 Lonza Amaxaにおける特定のパルスコードの使用が標的及びPAM変異型全体にわたりHSCの編集を増加させることを示す。用量は、全てのガイドに対して、2:1のガイド:タンパク質比率で4.4μM RNPであった。1条件当たり5万個のHSCが処理された。AsCpf1 WT、RR及びRVRタンパク質は、<5EU/mLの内毒素レベルを有した。 TRBC、TRAC及びB2M遺伝子座における、AsCpf1並びにそのRR及びRVR PAM変異型によるT細胞治療標的のスクリーニングを示す。予備スクリーニングでは約30%のgRNAが50%を超える編集を示し、これは、一般に観察されるSpCas9ヒット率と同レベルであり、Cpf1が、例えば、TRAC、TRBC及び/又はB2Mをはじめとするが、これに限定されるものではない、治療遺伝子座における患者のT細胞に対する遺伝子編集のために潜在的に使用され得ることが実証される。 電気穿孔パルスコードの変更が複数の治療標的遺伝子座におけるT細胞の最大編集を有意に改善することを示す。 Cpf1 RNPによる、疾患関連遺伝子座における初代T細胞の効率的なノックアウト編集を示す。図23Aは、エクスビボ細胞療法のRNPワークフローを示す。図23Bは、AsCpf1又は操作されたPAM変異型を使用した、複数の治療的に関連するT細胞遺伝子座における効率的な単一ノックアウトを示す。 Cpf1 RNPによる、疾患関連遺伝子座における初代T細胞の効率的なノックアウト編集を示す。図23Aは、エクスビボ細胞療法のRNPワークフローを示す。図23Bは、AsCpf1又は操作されたPAM変異型を使用した、複数の治療的に関連するT細胞遺伝子座における効率的な単一ノックアウトを示す。 フローサイトメトリーによって測定された、Cpf1 RNPで処理されたT細胞における2つの治療標的の高効率二重ノックアウトを示す。 TRBC、TRAC及びB2M遺伝子座における、AsCpf1並びにそのRR及びRVR PAM変異型によるT細胞治療標的のスクリーニングを示す。 3つの同種異系T細胞標的上のT細胞におけるAsCpf1 WT、RR及びRVRの高い編集効率を要約する。 ヒト初代T細胞における、Cpf1又はCas9による2つのT細胞標的の二重ノックアウトを図示する。 CIITA遺伝子座における、Cpf1によるT細胞治療標的のスクリーニングを示す。 SpCas9と比較した、3つの同種異系T細胞標的、TRAC、CIITA及びB2M上のT細胞におけるCpf1の高い編集効率を要約する。 T細胞における、Cpf1 RNPによる3つのT細胞標的の三重ノックアウトの効率を図示する。 図31Aは、3つのT細胞標的、CIITA、TRAC及びB2Mに対する上位のCpf1候補ガイドの特異性を要約し、検出されたオフターゲットの数を示す。図31Bは、標的化アンプリコン配列決定により、検出可能なオフターゲットが見いだされなかったことを示す。 図31Aは、3つのT細胞標的、CIITA、TRAC及びB2Mに対する上位のCpf1候補ガイドの特異性を要約し、検出されたオフターゲットの数を示す。図31Bは、標的化アンプリコン配列決定により、検出可能なオフターゲットが見いだされなかったことを示す。 T細胞における最大編集を改善する電気穿孔条件の同定を示す。条件1は、DS-130であり、条件2は、CA-137であった。 T細胞における遺伝子編集の効力を改善するNLS構成の同定を示す。NLS v1は、配列KRPAATKKAGQAKKKK(配列番号1)を表し、NLS v2は、配列2xPKKKRKV(配列番号2)を表す。 AsCpf1とHBG1-1ガイドを用いた、HSCのHBG-1遺伝子座における編集効率を示す。 MS5ガイドRNAを使用した、一致部位5におけるT細胞のNLS変異型の編集効率を示す。 フローサイトメトリーで測定された、CIITA遺伝子座で編集されたT細胞におけるMHC IIの減少を示す。 CIITA遺伝子座で編集されたT細胞における編集効率を示す。 CIITA gRNA、CIITA-34、CIITA-41、CIITA-45及びCIITA-10によって標的化されるゲノム位置を示す。 CIITA遺伝子座で編集されたT細胞におけるMHC IIの減少百分率を要約する。 Cpf1 CIITA gRNAの編集効率を示し、gRNAで検出されたオフターゲットの数を示す。 AspCpf1 RR及びWT TRAC、CIITA及びB2M gRNAの編集効率を示す。 異なる長さのAspCpf1 RR及びWT B2M gRNAの編集効率を示す。 異なる長さのAspCpf1 RR及びWT TRAC gRNAの編集効率を示す。 異なる長さのAspCpf1 RR及びWT CIITA gRNAの編集効率を示す。 未編集ゲノムDNA標的化部位、標的化組み込みのための例示的なDNAドナー鋳型、潜在的な挿入結果(すなわち切断部位における非標的化組み込み又は切断部位における標的化組み込み)及びP1プライミング部位及びP2プライマー部位を標的とするプライマー対(アンプリコンX)、P1プライマー部位及びP2’プライミング部位を標的とするプライマー対(アンプリコンY)又はP1’プライマー部位及びP2プライマー部位を標的とするプライマー対(アンプリコンZ)の使用から得られた3つの潜在的なPCRアンプリコンの概略図である。描写される例示的なDNAドナー鋳型は、組み込まれたプライマー部位(P1’及びP2’)及びスタッファー配列(S1及びS2)を含有する。A1/A2:ドナー相同性アーム、S1/S2:ドナースタッファー配列、P1/P2:ゲノムプライマー部位、P1’/P2’:組み込まれたプライマー部位、H1/H2:ゲノム相同性アーム、N:カーゴ、X:切断部位。 未編集ゲノムDNA標的化部位、標的化組み込みのための例示的なDNAドナー鋳型、潜在的な挿入結果(すなわち切断部位における非標的化組み込み又は切断部位における標的化組み込み)及びP1プライマー部位及びP2プライマー部位を標的とするプライマー対(アンプリコンX)又はP1’プライマー部位及びP2プライマー部位を標的とするプライマー対(アンプリコンY)の使用から得られた2つの潜在的なPCRアンプリコンの概略図である。例示的なDNAドナー鋳型は、組み込まれたプライマー部位(P1’)及びスタッファー配列(S2)を含有する。A1/A2:ドナー相同性アーム、S1/S2:ドナースタッファー配列、P1/P2:ゲノムプライマー部位、P1’:組み込まれたプライマー部位、H1/H2:ゲノム相同性アーム、N:カーゴ、X:切断部位。 未編集ゲノムDNA標的化部位、標的化組み込みのための例示的なDNAドナー鋳型、潜在的な挿入結果(すなわち切断部位における非標的化組み込み又は切断部位における標的化組み込み)及びP1プライマー部位及びP2プライマー部位を標的とするプライマー対(アンプリコンX)又はP1プライマー部位及びP2’プライマー部位を標的とするプライマー対(アンプリコンY)の使用から得られた2つの潜在的なPCRアンプリコンの概略図である。例示的なDNAドナー鋳型は、組み込まれたプライマー部位(P2’)及びスタッファー配列(S1)を含有する。A1/A2:ドナー相同性アーム、S1/S2:ドナースタッファー配列、P1/P2:ゲノムプライマー部位、P2’:組み込まれたプライマー部位、H1/H2:ゲノム相同性アーム、N:カーゴ、X:切断部位。 T細胞受容体α定数(TRAC)遺伝子座のgRNA標的化のために設計された例示的なDNAドナー鋳型を示す。 HBG1及びHBG2のプロモーター領域のスクリーニングから同定されたgRNAを示す。
定義及び略語
別段の指定がない限り、以下の各用語は、このセクションでそれに関連した意味を有する。
不定冠詞「1つの(a)」及び「1つの(an)」は、関連した名詞の少なくとも1つを指し、「少なくとも1つ」及び「1つ又は複数」という用語と互換的に使用される。例えば、「モジュール」は少なくとも1つのモジュール又は1つ又は複数のモジュールを意味する。
接続詞「又は」及び「及び/又は」は、非排他的選言肢として同義的に使用される。
「約」又は「およそ」という用語は、本明細書の用法では、当業者による判定で特定の値の許容誤差範囲内を意味し得、これは、例えば、測定システムの制限など、値がどのように測定又は判定されるかに部分的に依存するであろう。例えば、「約」は、所与の値の慣行に従って1標準偏差又内は1標準偏差を超えることを意味し得る。特定の値が本出願本及び特許請求の範囲に記載されている場合、別段の記載がない限り、「約」という用語は、例えば、「約」という用語によって修飾された値の±10%などの特定の値の許容誤差範囲を意味し得る。
「から本質的になる」という語句は、列挙された化学種が優勢な種であるが、他の化学種が対象組成物の構造、機能又は挙動に影響を及ぼさない微量又は量で存在し得ることを意味する。例えば、特定の化学種から本質的になる組成物は、一般的に、その化学種を90%、95%、96%又はそれを超えて含む。
「ドメイン」は、タンパク質又は核酸のセグメントを表すために使用される。特に断りのない限り、ドメインは、いかなる特定の機能特性も有する必要はない。
「インデル」は、核酸配列中の挿入及び/又は欠失である。インデルは、本開示のゲノム編集システムによって形成された二本鎖切断などのDNA二本鎖切断の修復の産物であり得る。インデルは、最も一般的には、下述したNHEJ経路などの「誤りがちな」修復経路によって中断が修復された場合に形成される。
HSCに関する「生産的インデル」とは、HbF発現をもたらすインデル(欠失及び/又は挿入)を指す。特定の実施形態では、HSCの生産的インデルは、HbF発現を誘導し得る。特定の実施形態では、HSC中の生産的インデルは、HbF発現のレベルの増加をもたらし得る。T細胞に関する「生産的インデル」は、例えば、内因性T細胞遺伝子などのT細胞における標的遺伝子の発現を低下させるインデル(欠失及び/又は挿入)を指す。特定の実施形態では、T細胞内の「生産的インデル」は、T細胞上の細胞表面タンパク質又はマーカーの発現の減少又は除去をもたらす。
「遺伝子変換」とは、内因性相同配列(例えば、遺伝子アレイ内の相同配列)の組み込みによるDNA配列の改変を指す。「遺伝子修正」とは、外因性一本鎖又は二本鎖ドナー鋳型DNAなどの外因性相同配列の組み込みによるDNA配列の改変を指す。遺伝子変換及び遺伝子修正は、下述したものなどのHDR経路によるDNA二本鎖切断の修復の産物である。
インデル、遺伝子変換、遺伝子修正及び他のゲノム編集結果は、典型的には配列決定によって(最も一般的には「次世代」又は「合成による配列決定」法により、ただしサンガー配列決定も依然として使用され得る)評価され、全ての配列決定読み取りにおける数値変化の相対頻度(例えば、±1、±2又はそれを超える塩基)によって定量化される。配列決定のためのDNAサンプルは、当該技術分野で公知の多様な方法によって調製され得、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)による目的部位の増幅、Tsai et al.(Nat.Biotechnol.34(5):483(2016)、参照により本明細書に援用される)に記載されるGUIDEseqプロセスにおけるような二本鎖切断によって生じるDNA末端の捕捉を伴い得るか、又は当該技術分野で周知の別の手段によって調製され得る。ゲノム編集結果は、Genomic Vision(Bagneux,France)によって製品化されているFiberComb(商標)システムなどの原位置ハイブリダイゼーション法及び当該技術分野で公知任意の他の適切な方法によっても評価され得る。
本明細書の用法では、「標的配列における修飾」という語句並びにその均等物は、欠失、挿入、遺伝子変換、遺伝子修正及び/又はインデルの標的配列への導入を包含するが、これらに限定されない。標的配列における修飾は、標的配列の発現の変化をもたらし得、例えば、コード配列における修飾は、その配列によってコードされるタンパク質の発現を妨害し得る一方、調節配列における修飾は、調節配列がタンパク質の発現を活性化するか又は阻害するかに応じて、その調節配列の制御下にあるタンパク質の発現の増加又は減少をもたらし得る。
「Alt-HDR」、「代替相同指向修復」又は「代替HDR」は同義的に使用されて、相同核酸(例えば、姉妹染色分体などの内因性相同配列又は例えば鋳型核酸などの外因性核酸)を使用して、DNA損傷を修復するプロセスを指す。Alt-HDRは、プロセスが、標準HDRとは異なる経路を利用し、標準HDR媒介物であるRAD51及びBRCA2によって阻害され得るという点で、標準HDRと異なる。Alt-HDRは一本鎖又はニックの入った相同核酸鋳型の関与によっても区別されるのに対し、標準HDRは一般に二本鎖相同鋳型を伴う。
「標準HDR」、「標準相同指向修復」又は「cHDR」は、相同核酸(例えば、姉妹染色分体などの内因性相同配列又は例えば鋳型核酸などの外因性核酸)を使用したNA損傷を修復するプロセスを指す。標準HDRは、二本鎖切断で顕著な切除があって、少なくとも1つのDNAの一本鎖部分が形成する場合に典型的に機能する。正常細胞では、cHDRは、典型的に、切断の認識、切断の安定化、切除、一本鎖DNAの安定化、DNAクロスオーバー中間体の形成、クロスオーバー中間体の分解及びライゲーションなどの一連の工程を伴う。プロセスはRAD51及びBRCA2を必要とし、相同核酸は典型的に二本鎖である。
特に断りのない限り、「HDR」という用語は、本明細書の用法では標準HDR及びalt-HDRの両方を包含する。
「非相同末端結合」又は「NHEJ」は、標準NHEJ(cNHEJ)及び代替NHEJ(altNHEJ)などのライゲーション媒介修復及び/又は非鋳型媒介修復を指し、これは次に、マイクロホモロジー媒介末端結合(MMEJ)、一本鎖アニーリング(SSA)及び合成依存性マイクロホモロジー媒介末端結合(SD-MMEJ)を含む。
「置換」又は「置換された」は、分子(例えば、核酸又はタンパク質)の修飾に関して使用される場合、プロセス制限を必要とせず、単に置換実体が存在することを示す。
「対象」は、ヒト又は非ヒト動物を意味する。ヒト対象は、任意の年齢(例えば、乳児、子供、若年成人又は成人)であり得、疾患に罹患し得るか又は遺伝子の修飾を必要とし得る。代わりに、対象は、動物であり得、上記用語には、哺乳類、鳥類、魚類、爬虫類、両生類及びより特に非ヒト霊長類、齧歯類(マウス、ラット、ハムスターなど)、ウサギ、モルモット、イヌ、ネコなどが含まれるが、これに限定されるものではない。本開示の特定の実施形態では、対象は、例えば、ウシ、ウマ、ヒツジ又はヤギなどの家畜である。特定の実施形態では、対象は家禽である。特定の実施形態では、対象は、植物である。
「治療する」、「治療すること」及び「治療」は、疾病を抑制すること、すなわち、その発症又は進行を阻止又は防止すること;疾病を緩和し、すなわち、疾病状態の退縮を引き起こすこと;疾病の1つ又は複数の症状を緩和すること;疾病を治癒させることの1つ又は複数をはじめとする、対象(例えば、ヒト対象)における疾病の治療を意味する。
「予防する」、「予防すること」及び「予防」は、(a)疾病を回避又は排除すること;(b)疾病に対する素因に影響を及ぼすこと;又は(c)疾病の少なくとも1つの症状の発症を予防又は遅延させることをはじめとする、例えばヒトなどの哺乳類における疾病の予防を指す。
「キット」とは、特定の目的のために使用され得る機能単位を一緒に構成する、2つ以上の構成要素の任意の集合を指す。例証として(且つ限定ではなく)、本開示による1つのキットは、RNA誘導ヌクレアーゼと複合体化した又は複合体化できるガイドRNAを含み得、(例えば、その中に懸濁された又は懸濁可能な)薬学的に許容可能な担体を伴う。例えば、細胞又は対象において所望のゲノムの改変を引き起こす目的で、キットを使用して、このような細胞又は対象に複合体を導入し得る。キットの構成要素は一緒に包装され得るか、又はそれらは別々に包装され得る。本開示によるキットは、例えば、本開示の方法によるキットの使用を説明する使用説明書(DFU)も任意選択的に含む。DFUは、キットと共に物理的に包装され得るか、又はそれは、例えば、電子的手段によってキット使用者に提供され得る。
「ポリヌクレオチド」、「ヌクレオチド配列」、「核酸」、「核酸分子」、「核酸配列」及び「オリゴヌクレオチド」という用語は、DNA及びRNA中の一連のヌクレオチド塩基(「ヌクレオチド」とも称される)を指し、2つ以上のヌクレオチドの任意の鎖を意味する。ポリヌクレオチド、ヌクレオチド配列、核酸などは、一本鎖若しくは二本鎖のキメラ混合物又はそれらの誘導体若しくは修飾バージョンであり得る。それらは、例えば、塩基部分、糖部分又はリン酸骨格で修飾されて、分子の安定性、そのハイブリダイゼーションパラメーターなどが改善され得る。ヌクレオチド配列は、典型的には、タンパク質及び酵素を製造するために細胞機構によって使用される情報をはじめとするが、これに限定されるものではない、遺伝情報を保有する。これらの用語は、二本鎖又は一本鎖のゲノムDNA、RNA、任意の合成及び遺伝子操作ポリヌクレオチド並びにセンス及びアンチセンスポリヌクレオチドの両方を含む。これらの用語は、修飾塩基を含有する核酸も含む。
下記の表1に示されるように、慣用的なIUPAC表記法が、本明細書で提示されるヌクレオチド配列において使用される(参照により本明細書に援用されるCornish-Bowden A,Nucleic Acids Res.1985 May 10;13(9):3021-30も参照されたい)。しかし、配列がDNA又はRNAのいずれかにより、例えばgRNA標的化ドメインにおいてコードされ得る場合、「T」は「チミン又はウラシル」を示すことに留意すべきである。
Figure 2024023294000001
「タンパク質」、「ペプチド」及び「ポリペプチド」という用語は同義的に使用され、ペプチド結合を介して共に連結するアミノ酸の連続鎖を指す。この用語は、個々のタンパク質、共に結合するタンパク質の群又は複合体並びにそのようなタンパク質の断片又は部分、変異型、誘導体及び類似体を含む。ペプチド配列は、左側のアミノ又はN末端から開始して、右側のカルボキシル又はC末端に進む、慣用的な表記法を用いて本明細書に提示される。標準的な一文字又は三文字略語が使用され得る。
「変異型」という用語は、参照実体(例えば、野生型又は天然に存在する実体)と有意な構造的同一性を示すが、例えば参照実体と比較した、ポリペプチドに関連してアミノ酸又はポリヌクレオチドに関連してヌクレオチドなど、1つ又は複数の化学的部分の存在又はレベルが参照実体と構造的に異なる、ポリペプチド、ポリヌクレオチド又は小分子などの実体を指す。変異型という用語は、本明細書の用法では、このような実体に付随する1つ又は複数の特性において、参照実体よりも機能的により良い又は優れたポリペプチド、ポリヌクレオチド又は小分子などの実体も包含する。多くの実施形態では、変異型は、その参照実体と機能的にも異なる。例えば、限定することなく、「変異型Cpf1ポリペプチド」は、S542R/K607R置換を含み、TYCV PAMを認識するAsCpf1変異型並びにS542R/K548V/N552R置換を含み、TATV PAMを認識するAsCpf1変異型を包含する。
本明細書の用法では、「切断事象」という用語は、核酸分子の切断を指す。切断事象は、一本鎖切断事象又は二本鎖切断事象であり得る。一本鎖切断事象は、5’オーバーハング又は3’オーバーハングをもたらし得る。二本鎖切断事象は、平滑末端、2つの5’オーバーハング又は2つの3’オーバーハングをもたらし得る。
本明細書において標的核酸配列上の部位に関して使用される「切断部位」という用語は、そこで二本鎖切断が発生する、標的核酸の2つのヌクレオチド残基間の標的位置又は代わりにそこでRNA誘導ヌクレアーゼ依存性プロセスによって媒介される2つの一本鎖切断が発生する、標的核酸のいくつかのヌクレオチド残基のスパン内の標的位置を指す。切断部位は、例えば、平滑型の二本鎖切断の標的位置であり得る。代わりに、切断部位は、例えば、二本鎖切断を形成し、例えば約10塩基対によって隔てられた、2つの一本鎖切断又はニックのための、標的核酸のいくつかのヌクレオチド残基のスパン内の標的部位であり得る。二本鎖切断又は対の2つの一本鎖ニックのより近い方は、理想的には、標的位置の0~500bp以内(例えば、標的位置から450、400、350、300、250、200、150、100、50又は25bp以下)にある。デュアルニッカーゼが使用される場合、対内の2つのニックは、互いに25~55bp以内であり(例えば、25~50、25~45、25~40、25~35、25~30、50~55、45~55、40~55、35~55、30~55、30~50、35~50、40~50、45~50、35~45又は40~45bp)、互いに100bp以上離れていない(例えば、90、80、70、60、50、40、30、20又は10bp以下)。
本開示は、標的核酸配列を編集し、且つ/又は標的核酸配列の発現を調整するためのCRISPR/Cpf1関連方法及び構成要素を提供する。例えば、本開示は、造血幹細胞(HSC)の増殖、生存、持続性及び/又は機能に影響を与える核酸配列を標的化するためのCRISPR/Cpf1関連方法を提供する。特定の非限定的実施形態において、本開示は、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼによる、CD34細胞における標的核酸配列の効率的な編集の最初の証拠を提供する。さらに、本開示は、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼによる、胎児型ヘモグロビン(本明細書では「HPFH」と称される)の遺伝性持続性に関連する遺伝子である、BCL11a及びHBG1の効率的な編集の最初の証拠を提供する。本開示は、T細胞の増殖、生存、持続性及び/又は機能に影響を及ぼす核酸配列を標的化するためのCRISPR/Cpf1関連方法も提供する。本開示は、有意な編集効率を示し且つ改善された特性を示す修飾Cpf1タンパク質と、このような修飾Cpf1タンパク質の効率を評価するためのストラテジーとをさらに提供する。
修飾Cpf1タンパク質
一態様では、本開示は、修飾Cpf1タンパク質と、標的核酸配列を編集し、且つ/又は標的核酸配列の発現を調整するためのCRISPR/Cpf1関連方法におけるそれらの使用とに関する。
特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、アシダミノコッカス属(Acidaminococcus)種株BV3L6 Cpf1タンパク質(AsCpf1)、フランシセラ・ノビシダ(Francisella novicida)U112(FnCpf1)、モラクセラ・ボボクリ(Moraxella bovoculi)237(MbCpf1)、カンジダツス・メタノメチルフィルス(Candidatus Methanomethylphilus)alvus Mx1201(CMaCpf1)、スネアチア・アムニイ(Sneathia amnii)(SaCpfq)、モラクセラ・ラクナータ(Moraxella lacunata)(MlCpf1)、モラクセラ・ボボクリ(Moraxella bovoculi)AAX08_00205(Mb2Cpf1)、モラクセラ・ボボクリ(Moraxella bovoculi)AAX11_00205(Mb3Cpf1)、ラクノスピラ菌(Lachnospiraceae bacterium)ND2006 Cpf1タンパク質(LbCpf1)、ラクノスピラ菌(Lachnospiraceae bacterium)MA2020(Lb5Cpf1)、ラクノスピラ菌(Lachnospiraceae bacterium)MC2017(Lb4Cpf1)、フラボバクテリウム・ブランキオフィルム(Flavobacterium branchiophilum)FL-15(FbCpf1)、チオミクロスピラ属(Thiomicrospira)種XS5(TsCpf1)、パルキュバクテリア(Parcubacteria)群菌GW2011(PgCpf1)、カンジダツス・ロイズマンバクテリア(Candidatus Roizmanbacteria)菌GW2011(CRbCpf1)、カンジダツス・ペレグリンバクテリア(Candidatus Peregrinbacteria)菌GW2011(CPbCpf1)、ブチリビブリオ属(Butyrivibrio)種NC3005(BsCpf1)、ブチリビブリオ・フィブリソルベンス(Butyrivibrio fibrisolvens)(BfCpf1)、プレボテラ・ブライアンチイ(Prevotella bryantii)B14(Pb2Cpf1)及びバクテロイデス門(Bacteroidetes)口腔分類群274(BoCpf1)からなる群から選択されるCpf1タンパク質に由来する(例えば、その内容全体が参照により本明細書に援用されるZetsche et al.,bioRxiv 134015;doi:https://doi.org/10.1101/134015を参照されたい)。特定の実施形態では、Cpf1タンパク質は、それぞれ配列番号20~22のコドン最適化核酸配列を有する、配列番号17~19からなる群から選択される配列を含む。
Cpf1核局在化シグナル(NLS)変異型
特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、核局在化シグナル(NLS)(本明細書では「Cpf1NLS変異型」とも称される)を含む。例えば、限定されるものではないが、本明細書で開示される方法及び組成物に関連して有用なNLS配列は、細胞核へのタンパク質移入を促進できるアミノ酸配列を含むであろう。本明細書で開示される方法及び組成物に関連して有用なNLS配列は、当該技術分野で公知である。このようなNLS配列の非限定的例としては、アミノ酸配列:KRPAATKKAGQAKKKK(配列番号1)を有するヌクレオプラスミンNLS及びアミノ酸配列PKKKRKV(配列番号2)を有するシミアンウイルス40「SV40」NLSが挙げられる。
特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、例えば、2つ以上、3つ以上又は4つ以上などの1つ又は複数のNLS配列を有し得る。例えば、限定されるものではないが、修飾Cpf1タンパク質は、2つのNLS配列、3つのNLS配列又は4つのNLS配列を有し得る。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、2つのNLS配列を有し得る。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質のNLS配列は、Cpf1タンパク質配列のC末端又はその近傍に配置される。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質のNLS配列は、Cpf1タンパク質配列のN末端又はその近傍に配置される。特定の実施形態では、本開示の修飾Cpf1タンパク質は、Cpf1タンパク質配列のN末端又はその近傍に位置する1つ又は複数のNLS配列及びCpf1タンパク質配列のC末端又はその近傍に位置する1つ又は複数のNLS配列を有し得、例えば、修飾Cpf1タンパク質は、Cpf1タンパク質配列のN末端及びC末端の両方又はその近傍に位置するNLS配列を含む。
特定の実施形態では、Cpf1タンパク質配列のC末端又はその近傍に位置するNLS配列を有する修飾Cpf1タンパク質は、His-AsCpf1-nNLS(本明細書では「Asp Cpf1 NLS v1」とも称される)(配列番号3);His-AsCpf1-sNLS(配列番号4);及びHis-AsCpf1-sNLS-sNLS(本明細書では「Asp Cpf1 NLS v2」とも称される)(配列番号5)(式中、「His」は、6-ヒスチジン精製配列を指し、「AsCpf1」は、アシダミノコッカス属(Acidaminococcus)種Cpf1タンパク質配列を指し、「nNLS」は、ヌクレオプラスミンNLSを指し、「sNLS」は、SV40 NLSを指す)から選択され得る。例えば、2つ以上のnNLS配列の付加又はnNLS及びsNLS配列の組み合わせ(又は他のNLS配列)の付加並びに例えば6-ヒスチジン配列などの精製配列を含む又は含まない配列の付加などのNLS配列の同一性及びC末端位置の追加的な順列は、現在開示されている主題の範囲内である。
特定の実施形態では、Cpf1タンパク質配列のN末端又はその近傍に位置するNLS配列を有する修飾Cpf1タンパク質は、His-sNLS-AsCpf1(配列番号6)、His-sNLS-sNLS-AsCpf1(配列番号7)及びsNLS-sNLS-AsCpf1(配列番号8)から選択され得る。例えば、2つ以上のnNLS配列の付加又はnNLS及びsNLS配列の組み合わせ(又は他のNLS配列)の付加並びに例えば6-ヒスチジン配列などの精製配列を含む又は含まない配列の付加などのNLS配列の同一性及びN末端位置の追加的な順列は、現在開示されている主題の範囲内である。
特定の実施形態では、Cpf1タンパク質配列のN末端及びC末端の両方又はその近傍に位置するNLS配列を有する修飾Cpf1タンパク質は、His-sNLS-AsCpf1-sNLS(配列番号9)及びHis-sNLS-sNLS-AsCpf1-sNLS-sNLS(配列番号10)から選択され得る。例えば、2つ以上のnNLS配列又はnNLS及びsNLS配列の組み合わせ(又は他のNLS配列)のN末端/C末端位置いずれかへの付加並びに例えば6-ヒスチジン配列などの精製配列を含む又は含まない配列の付加などのNLS配列の同一性及びN末端/C末端位置の追加的な順列は、現在開示されている主題の範囲内である。
CD34細胞及びT細胞における編集に有利なNLS修飾などのCpf1タンパク質修飾を判定するために、異なる位置とタイプのNLS配列を含有するAsCpf1タンパク質が合成された。タンパク質変異型は、gRNAを標的とする一致部位5に複合体化され、CD34細胞、T細胞及びHUDEP(4.4μMのRNP)内に電気穿孔された。図4では、各細胞型の最大編集を提示する変異型に正規化された%編集として結果が描写される。データは、ヌクレアーゼの異なる種がCD34細胞及びT細胞(他の細胞の中で特に)の同一標的部位で様々な活性を有すること、並びにAsCpf1による効率的な編集がCD34細胞及びT細胞(他の細胞の中で特に)で達成できることを示す。
システイン修飾Cpf1タンパク質及びRNP
ジスルフィド結合形成は、タンパク質凝集を促進することが知られている。したがって、このようなジスルフィド結合形成の可能性を低減するために改変させ得るシステインを同定する努力の一環として、Cpf1結晶構造及び既知のCpf1一次アミノ酸配列が分析された(図13)。
本開示の修飾Cpf1タンパク質は、Cpf1タンパク質配列の1つ又は複数のシステイン残基における改変(例えば、欠失又は置換)を含み得る。このような修飾Cpf1タンパク質は、凝集の減少を示し、これは、タンパク質の製造を拡大するときに特に有用である。例えば、限定されるものではないが、修飾Cpf1タンパク質は、C65、C205、C334、C379、C608、C674、C1025及びC1248からなる群から選択される、例えば2つ以上、3つ以上、4つ以上、5つ以上、6つ以上、7つ以上又は8つの位置などの1つ又は複数の位置に改変を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、セリン又はアラニンの1つ又は複数のシステイン残基の置換を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、例えば、C65S、C205S、C334S、C379S、C608S、C674S、C1025S及びC1248Sからなる群から選択される置換などの1つ又は複数の改変を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、C65A、C205A、C334A、C379A、C608A、C674A、C1025A及びC1248Aからなる群から選択される1つ又は複数の改変を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、位置C334及びC674又はC334、C379及びC674に改変を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、C334S及びC674S又はC334S、C379S及びC674Sに改変を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、C334A及びC674A又はC334A、C379A及びC674Aに改変を含む。特定の実施形態では、修飾Cpf1タンパク質は、例えば、本明細書に記載されるようなHis-AsCpf1-nNLS Cys-less(配列番号11)又はHis-AsCpf1-nNLS Cys-low(配列番号12)などの1つ又は複数のシステイン残基改変並びに1つ又は複数のNLS配列の導入の両方を含む。
異常ヘモグロビン症に関連した標的部位におけるCD34HSCのCpf1編集
本開示は、例えば、βサラセミア及び鎌状赤血球症などの異常ヘモグロビン症治療するために標的核酸配列を編集するためのCRISPR/Cpf1関連方法をさらに提供する。例えば、限定されるものではないが、CRISPR/Cpf1関連方法は、胎児型ヘモグロビン(HbF)の発現を調節するCD34細胞における1つ又は複数の遺伝子の破壊をもたらす。
異常ヘモグロビン症を治療するための1つの治療ストラテジーは、HbFの発現の増加を伴う。HbF発現は、転写リプレッサーBCL11aの赤血球系細胞特異的発現の標的化された破壊を介して誘導され得る(Canvers et al.,Nature,527(12):192-197)。HbF発現を増加させる1つのストラテジーは、遺伝子編集を用いてBCL11a発現を妨害することである。例えば、限定されるものではないが、例えば、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼなどのRNA誘導ヌクレアーゼは、BCL11a遺伝子の発現に影響を与える特定の標的配列を標的とし得る。特定の実施形態では、BCL11a遺伝子の任意の領域が標的化され得る。
本開示は、BCL11a遺伝子に修飾を含む細胞又は細胞集団を提供し、例えばBCL11a発現を妨害、ノックダウン又はノックアウトする。例えば、限定されるものではないが、細胞又は細胞集団は、例えば、BCL11a遺伝子配列を標的とするRNP複合体など、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及びgRNA分子を含む複合体の送達によって生成され得る。特定の実施形態では、細胞集団内の細胞の少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%が修飾される。特定の実施形態では、細胞集団内の細胞の少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%は、生産的インデルを有する。
特定の実施形態では、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、BCL11a遺伝子のイントロン2を標的とし得る。特定の実施形態では、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域にあるBCL11aの赤血球特異的エンハンサーのGATA1結合モチーフを破壊するように標的化されるであろう。BCL11aを標的とするこのようなCRISPR/Cpf1編集システムで使用するための例示的なgRNA分子は、図7、10及び12で特定される。
特定の実施形態では、本開示は、BCL11a遺伝子が破壊されている細胞に関する。特定の実施形態では、例えば、転写開始部位(TSS)から+55kb~+62kbの赤血球エンハンサー領域など、BCL11a遺伝子の赤血球エンハンサー領域が標的化され得る。例えば、限定されるものではないが、本開示は、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域が破壊されている細胞に関する。特定の実施形態では、このような細胞は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含み得る。特定の実施形態では、本開示は、例えば、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域が破壊されているなどのBCL11a遺伝子が破壊されている細胞集団に関する。特定の実施形態では、このような細胞集団は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む細胞を含む。特定の実施形態では、本開示は、BCL11a遺伝子のGATA1モチーフが破壊されている細胞に関する。特定の実施形態では、このような細胞は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含み得る。特定の実施形態では、本開示は、BCL11a遺伝子のGATA1モチーフが破壊されている細胞集団に関する。特定の実施形態では、このような細胞集団は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む細胞を含み得る。
以下の実施例3で概説されるように、AsCpf1は、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域内の標的部位の編集を問題なく媒介した。最初に、異なるPAMを有するいくつかのAsCpf1変異型ガイドRNA(図1)がHUDEP2細胞でスクリーニングされ、次に最も効率的なガイドRNA及びヌクレアーゼ変異型がmPB CD34細胞内で試験された(図17)。特に、図17は、HUDEP及びHSCにおける1つのWT FnCpf1標的と共に、AsCpf1 WT及びRR及びRVR PAM変異型によるBCL11aエンハンサー領域のスクリーニングを示す。
例えば、βサラセミア及び鎌状赤血球症などの異常ヘモグロビン症の治療に関連して、胎児型ヘモグロビンの発現を誘導する別のストラテジーは、HBG遺伝子座の発現、特にHGB1及び/又はHGB2の発現を妨害することである。
特定の実施形態では、本開示は、HBG遺伝子座のCRISPR/Cpf1媒介編集の使用に関する。特定の実施形態では、HBG遺伝子座の任意の領域が標的化され得る。特定の実施形態では、本明細書に記載されるようなCRISPR/Cpf1媒介編集を用いて、HBG遺伝子座の非コード領域が破壊され得る(例えば、表18を参照されたい)。特定の実施形態では、本明細書に記載されるようなCRISPR/Cpf1媒介編集を用いて、HBG遺伝子座のイントロンが破壊され得る。特定の実施形態では、本明細書に記載されるようなCRISPR/Cpf1媒介編集を用いて、標的化されるHBG遺伝子のシス調節領域が破壊され得る。例えば、限定されるものではないが、シス調節領域は、プロモーター及び/又はエンハンサーを含み得る。特定の実施形態では、本開示は、HBG遺伝子座のプロモーター領域のCRISPR/Cpf1媒介編集の使用に関する。特定の実施形態では、本明細書に記載されるようなCRISPR/Cpf1媒介編集を用いて、HBG遺伝子座のプロモーター領域の-800~-60ntの領域が破壊され得る。例えば、限定されるものではないが、CRISPR/Cpf1媒介編集を用いて、HBGプロモーター領域の-110ntプロモーター領域及び/又はHBGプロモーター領域内に存在するCAATボックスが破壊され得る。一般に、HBGプロモーター領域の破壊及びCAATボックスの破壊は、これらの配列を標的とするCRISPR/Cpf1編集システムの送達を介して達成され得る。HBG遺伝子座のこれらの配列を標的とするこのようなCRISPR/Cpf1編集システムで使用するための例示的なgRNA分子は、図6、9及び11並びに表19に特定される。HBG遺伝子座を破壊するために標的化され得る染色体の領域(例えば、ゲノム座標)は、表18で提供される。特定の実施形態では、HBG1遺伝子座を破壊するのに使用されるgRNA分子は、HBG1-1である。
本開示は、HBG遺伝子座に修飾を含む細胞又は細胞集団を提供し、例えばHBG発現を妨害、ノックダウン又はノックアウトする。例えば、限定されるものではないが、細胞又は細胞集団は、例えば、HBG遺伝子座を標的とするRNP複合体など、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及びgRNA分子を含む複合体の送達によって生成され得る。特定の実施形態では、細胞集団内の細胞の少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%が修飾される。特定の実施形態では、細胞集団内の細胞の少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%は、生産的インデルを有する。
特定の実施形態では、本開示は、例えば、HBG遺伝子座が破壊されているCD34+造血幹及び前駆細胞などの細胞に関する。例えば、限定されるものではないが、本開示は、HBG遺伝子座のプロモーター領域が破壊されている細胞に関する。特定の実施形態では、HBG遺伝子座の-110ntプロモーター領域が破壊される。特定の実施形態では、このような細胞は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含み得る。特定の実施形態では、本開示は、HBG遺伝子座の-110ntプロモーター領域が破壊されている細胞集団に関する。特定の実施形態では、このような細胞集団は、このような構成要素を検出する適切な方法を使用した判定でCRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む細胞を含み得る。特定の実施形態では、本開示は、HBGプロモーター領域に存在するCAATボックスが破壊されている細胞に関する。特定の実施形態では、このような細胞は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む。特定の実施形態では、本開示は、HBGプロモーター領域に存在するCAATボックスが破壊されている細胞集団に関する。特定の実施形態では、このような細胞集団は、このような構成要素を検出する適切な方法を使用した判定でCRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む細胞を含み得る。特定の実施形態では、本開示は、gRNA HBG1-1を含むCRISPR/Cpf1編集システムの使用によってHBG1遺伝子座が破壊されている細胞集団を提供する。
特定の実施形態では、HBG遺伝子座又はBCL11a遺伝子に修飾を含むCRISPR/Cpf1編集細胞又はCRISPR/Cpf1編集細胞集団は、このようなCRISPR/Cpf1編集システムの構成要素を検知する適切な方法を使用した判定で1つ又は複数の構成要素を含まない。特定の実施形態では、このような構成要素を検知する適切な方法を使用した判定で、CRISPR/Cpf1編集細胞集団の約10%未満、約9%未満、約8%未満、約7%未満、約6%未満、約5%未満、約4%未満、約3%未満、約2%未満又は約1%未満の細胞は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む。特定の実施形態では、本開示は、それを必要とする対象に投与されるCRISPR/Cpf1編集細胞集団を提供し、CRISPR/Cpf1編集細胞集団の約10%未満、約9%未満、約8%未満、約7%未満、約6%未満、約5%未満、約4%未満、約3%未満、約2%未満又は約1%未満の細胞は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む。
特定の実施形態では、本開示のCRISPR/Cpf1編集システムによる細胞内のBCL11a遺伝子又はHBG遺伝子の破壊は、BCL11a遺伝子又はHBG遺伝子の破壊がない細胞と比較して細胞における胎児型ヘモグロビンの発現の増加をもたらし得る。例えば、限定されるものではないが、BCL11a遺伝子又はHBG遺伝子座及び/又は遺伝子の破壊がない細胞における胎児型ヘモグロビンの発現レベルと比較して、胎児型ヘモグロビンの発現は、少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約15%、少なくとも約20%、少なくとも約25%、少なくとも約30%、少なくとも約35%、少なくとも約40%、少なくとも約45%、少なくとも約50%、少なくとも約55%、少なくとも約60%、少なくとも約65%、少なくとも約70%、少なくとも約75%、少なくとも約80%、少なくとも約85%、少なくとも約90%又は少なくとも約95%増加され得る。
特定の実施形態では、本開示のCRISPR/Cpf1編集システムによる細胞におけるBCL11a遺伝子又はHBG遺伝子の破壊は、例えば、鎌状赤血球症又はβサラセミアなどの異常ヘモグロビン症の症状を部分的に又は完全に緩和するのに適した量で胎児型ヘモグロビンの発現の増加をもたらし得る。例えば、限定されるものではないが、胎児型ヘモグロビンの発現の増加は、約1ピコグラム(pg)を超え、約2pgを超え、約3pgを超え、約4pgを超え、約5pgを超え、約6pgを超え、約7pgを超え、約8pgを超え、約9pgを超え、約10pgを超え、約11pgを超え、約12pgを超え、約13pgを超え、約14pgを超え、又は約15pgを超え得る。
特定の実施形態では、本開示のCRISPR/Cpf1編集システムによる細胞におけるBCL11a遺伝子又はHBG遺伝子の破壊は、1細胞当たり少なくとも約1ピコグラム、少なくとも約2ピコグラム、少なくとも約3ピコグラム、少なくとも約4ピコグラム、少なくとも約5ピコグラム、少なくとも約6ピコグラム、少なくとも約7ピコグラム、少なくとも約8ピコグラム、少なくとも約9ピコグラム、少なくとも約10ピコグラム又は約8~約9ピコグラム若しくは約9~約10ピコグラムの胎児型ヘモグロビンの産生をもたらし得る。
本開示は、ゲノム編集システムによって修飾されていない細胞集団と比較してより高い百分率の細胞集団が、HbFを発現する赤血球系統の細胞集団に分化できる、上記のゲノム編集システムによって修飾された細胞集団にも関する。特定の実施形態では、より高い百分率は、少なくとも約15%、少なくとも約20%、少なくとも約25%、少なくとも約30%又は少なくとも約40%高いことができる。特定の実施形態では、細胞は、造血幹細胞であり得る。特定の実施形態では、細胞は、赤芽球、赤血球又は赤血球前駆体又は赤芽球に分化でき得る。
特定の実施形態では、例えば、HbFの相対的発現レベル(例えば、β様グロビン鎖全体に対する)などの発現レベルは、超高速液体クロマトグラフィー(UPLC)によって測定され得る。
様々なストラテジーを用いて、本開示のCRISPR/Cpf1編集システムが細胞に送達され得る。例えば、限定されるものではないが、CRISPR/Cpf1編集システムの構成要素をコードする、例えばAAV又は他のウイルスベクターなどのベクターを使用して、細胞内でCRISPR/Cpf1編集システムの構成要素の発現が誘導され得る。代わりに、CRISPR/Cpf1編集システムの構成要素を含むRNP複合体は、例えば、電気穿孔を通じて細胞に導入され得る。特定の実施形態では、RNP複合体は、脂質ナノ粒子によって細胞に送達され得る。
以下の実施例3で概説されるように、図16は、HUDEP及びHSCにおける、AsCpf1 WT及びRR PAM変異型によるHBG1プロモーター領域の成功裏の標的化を示す。
合わせて、BCL11a遺伝子及びHBG遺伝子座の破壊に関するこれらのデータは、臨床的に関連する遺伝子座(すなわち既知のHPFH標的部位)のCD34細胞における、AsCpf1変異型による効率的な編集を示す。
T細胞の増殖、生存及び/又は機能に関連する標的部位におけるT細胞のCpf1編集
がんを治療するために提案された1つの治療ストラテジーは、養子T細胞移入を伴う。遺伝子改変されたT細胞のがん治療薬としての有効性を制限する要因としては、(1)例えば、養子免疫伝達に続くT細胞の限定的増殖などのT細胞増殖;(2)例えば、腫瘍環境内因子によるT細胞アポトーシス誘導などのT細胞生存;及び(3)例えば、宿主免疫細胞及びがん細胞によって分泌される阻害因子による、細胞毒性T細胞機能の阻害などのT細胞機能が挙げられる。有効性を高める1つのストラテジーは、遺伝子編集を用いて、T細胞の増殖、生存及び/又は機能に関連するT細胞遺伝子を修飾又は破壊することである。例えば、限定されるものではないが、例えば、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼなどのRNA誘導ヌクレアーゼは、T細胞遺伝子の発現に影響を与える特定の配列を標的とし得る。
本開示に包含される方法及び組成物を使用して、例えばFAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子の1つ又は複数などの1つ又は複数のT細胞発現遺伝子を改変することにより、T細胞の増殖、生存、持続性及び/又は機能に影響を及ぼし得る。特定の実施形態では、本明細書で開示される方法及び組成物を使用して、例えばCBLB及び/又はPTPN6遺伝子などの1つ又は複数のT細胞発現遺伝子を修飾することにより、T細胞増殖に影響を及ぼし得る。特定の実施形態では、本明細書で開示される方法及び組成物を使用して、例えばFAS及び/又はBID遺伝子などの1つ又は複数のT細胞発現遺伝子を修飾することにより、T細胞の生存に影響を及ぼし得る。特定の実施形態では、本明細書で開示される方法及び組成物を使用して、例えばCTLA4、PDCD1、TRAC、CIITA及び/又はTRBC遺伝子などの1つ又は複数のT細胞発現遺伝子を修飾することにより、T細胞機能に影響を及ぼし得る。特定の実施形態では、本明細書で開示される方法及び組成物を使用して、B2M遺伝子を修飾することによってT細胞の持続性が改善され得る。
特定の実施形態では、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子をはじめとするが、これに限定されるものではない1つ又は複数のT細胞発現遺伝子は、標的化ノックアウトとして独立して標的化され、例えばT細胞の増殖、生存、持続性及び/又は機能に影響を及ぼす。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、1つのT細胞発現遺伝子(例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子からなる群から選択される1つ)をノックアウトすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、2つのT細胞発現遺伝子(例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子からなる群から選択される2つ)を独立してノックアウトすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子からなる群から選択される3つなどの3つのT細胞発現遺伝子を独立してノックアウトすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子からなる群から選択される4つなどの4つのT細胞発現遺伝子を独立してノックアウトすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子からなる群から選択される5つなどの5つのT細胞発現遺伝子を独立してノックアウトすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子からなる群から選択される6つなどの6つのT細胞発現遺伝子を独立してノックアウトすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子からなる群から選択される7つなどの7つのT細胞発現遺伝子を独立してノックアウトすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子から選択される8つのT細胞発現遺伝子を独立してノックアウトすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子から選択される9つのT細胞発現遺伝子を独立してノックアウトすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子など、9つのT細胞発現遺伝子を独立してノックアウトすることを含む。
上に記載される遺伝子に加えて、遺伝子操作T細胞の有効性に影響を及ぼすために、いくつかの他のT細胞発現遺伝子が標的化され得る。これらの遺伝子としては、TGFBRI、TGFBRII及びTGFBRIIIが挙げられるが、これに限定されるものではない(Kershaw et al.2013 Nat.Rev.Cancer 13,525-541)。特定の実施形態では、本明細書で開示される方法を使用して、TGFBRI、TGFBRII及びTGFBRIII遺伝子の1つ又は複数が個々に又は組み合わせてのいずれかで修飾され得る。特定の実施形態では、本明細書で開示された方法を使用して、TGFBRI、TGFBRII及びTGFBRIII遺伝子の1つ又は複数が個々に又は上記の8つの遺伝子(すなわちFAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子)のいずれか1つ又は複数との組み合わせてのいずれかで修飾され得る。
特定の実施形態では、本明細書で開示される方法及び組成物は、例えば、非コード領域(例えば、プロモーター領域又は調節領域)内の位置又はコード領域内の位置などの遺伝子の位置(例えば、ノックアウト位置)を標的とすることにより、又は例えばイントロンの配列又はエクソンの配列などの遺伝子の転写配列を標的とすることにより、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及び/又はTRBC遺伝子を修飾する。特定の実施形態では、コード配列、例えばコード領域、例えば遺伝子の初期コード領域(例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及び/又はTRBC遺伝子)は、発現の修飾及びノックアウトの標的になる。特定の実施形態では、T細胞発現遺伝子の非コード領域内の位置(例えば、プロモーター領域又は調節領域)(例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及び/又はTRBC遺伝子)は、T細胞発現遺伝子の発現の修飾及びノックアウトの標的になる。
特定の実施形態では、本明細書で開示される方法及び組成物は、遺伝子のコード配列を標的とすることにより、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及び/又はTRBC遺伝子を修飾する。特定の実施形態では、コード配列は、初期コード配列である。特定の実施形態では、遺伝子のコード配列は、T細胞発現遺伝子の発現のノックアウトを標的とする。
特定の実施形態では、本明細書で開示される方法及び組成物は、遺伝子の非コード配列を標的とすることにより、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及び/又はTRBC遺伝子を修飾する。特定の実施形態では、非コード配列は、プロモーター領域内の配列、エンハンサー配列、イントロン配列、3’UTR内の配列、ポリアデニル化シグナル配列又はそれらの組み合わせを含む。特定の実施形態では、遺伝子の非コード配列は、遺伝子の発現のノックアウトの標的になる。
特定の実施形態では、現在開示される方法は、例えば、遺伝子の修飾を誘導することにより、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及び/又はTRBC遺伝子の1つ又は2つの対立遺伝子をノックアウトすることを含む。特定の実施形態では、修飾は、挿入、欠失、変異又はそれらの組み合わせを含む。
特定の実施形態では、標的化ノックアウトアプローチは、Cpf1酵素を含むCRISPR/Cpf1システムを使用して、非相同末端結合(NHEJ)によって媒介される。
特定の実施形態では、本明細書で開示されるCRISPR/Cpf1システムは、TRAC遺伝子を標的とする。特定の実施形態では、CRISPRシステムは、TRAC遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む。特定の実施形態では、gRNAは、TRAC遺伝子のいずれかの鎖に相補的であり得る。特定の実施形態では、TRAC遺伝子配列の標的化部分は、TRAC遺伝子のコード配列内にある。特定の実施形態では、TRAC遺伝子配列の標的化部分は、エクソン内にある。特定の実施形態では、TRAC遺伝子配列の標的化部分は、イントロン内にある。特定の実施形態では、TRAC遺伝子配列の標的化部分は、遺伝子の調節領域内にある。特定の実施形態では、2つ以上の配列が標的化され、TRAC遺伝子配列の標的化部分は、1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン、1つ若しくは複数の調節領域又は1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン及び1つ若しくは複数の調節領域内にある。特定の実施形態では、TRAC遺伝子配列の一部は、TRAC遺伝子のコード配列の最初の500bp内にある。特定の実施形態では、TRACを標的とするこのようなCRISPR/Cpf1システムで使用するためのgRNA分子標的化ドメインは、表2及び3に列挙される標的化ドメイン配列を含む。本開示は、表2及び3で提供されるgRNAの1つ又は複数を含む組成物を提供する。本開示は、表2及び3で提供されるgRNAの1つ又は複数を含む1つ又は複数のRNP複合体を含む組成物をさらに提供する。
特定の実施形態では、本明細書で開示されるCRISPR/Cpf1システムは、TRBC遺伝子を標的とする。特定の実施形態では、CRISPRシステムは、TRBC遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む。特定の実施形態では、gRNAは、TRBC遺伝子のいずれかの鎖に相補的であり得る。特定の実施形態では、TRBC遺伝子配列の標的化部分は、TRBC遺伝子のコード配列内にある。特定の実施形態では、TRBC遺伝子配列の標的化部分は、エクソン内にある。特定の実施形態では、TRBC遺伝子配列の標的化部分は、イントロン内にある。特定の実施形態では、TRBC遺伝子配列の標的化部分は、遺伝子の調節領域内にある。特定の実施形態では、2つ以上の配列が標的化され、TRBC遺伝子配列の標的化部分は、1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン、1つ若しくは複数の調節領域又は1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン及び1つ若しくは複数の調節領域内にある。特定の実施形態では、TRBC遺伝子配列の一部は、TRBC遺伝子のコード配列の最初の500bp内にある。特定の実施形態では、TRBCを標的とするこのようなCRISPR/Cpf1システムで使用するためのgRNA分子標的化ドメインは、表4及び5に列挙される標的化ドメイン配列を含む。本開示は、表4及び5で提供されるgRNAの1つ又は複数を含む組成物を提供する。本開示は、表4及び5で提供されるgRNAの1つ又は複数を含む1つ又は複数のRNP複合体を含む組成物をさらに提供する。
特定の実施形態では、本明細書で開示されるCRISPR/Cpf1システムは、B2M遺伝子を標的とする。特定の実施形態では、CRISPRシステムは、B2M遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む。特定の実施形態では、gRNAは、B2M遺伝子のいずれかの鎖に相補的であり得る。特定の実施形態では、B2M遺伝子配列の標的化部分は、B2M遺伝子のコード配列内にある。特定の実施形態では、B2M遺伝子配列の標的化部分は、エクソン内にある。特定の実施形態では、B2M遺伝子配列の標的化部分は、イントロン内にある。特定の実施形態では、B2M遺伝子配列の標的化部分は、遺伝子の調節領域内にある。特定の実施形態では、2つ以上の配列が標的化され、B2M遺伝子配列の標的化部分は、1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン、1つ若しくは複数の調節領域又は1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン及び1つ若しくは複数の調節領域内にある。特定の実施形態では、B2M遺伝子配列の一部は、B2M遺伝子のコード配列の最初の500bp内にある。特定の実施形態では、B2M遺伝子配列の一部は、B2M遺伝子のコード配列の501番目のヌクレオチドと最後のヌクレオチドとの間にある。特定の実施形態では、B2Mを標的とするこのようなCRISPR/Cpf1システムで使用するためのgRNA分子標的化ドメインは、表6、7及び8に列挙される標的化ドメイン配列を含む。特定の実施形態では、B2Mを標的とするこのようなCRISPR/Cpf1システムで使用するためのgRNA分子の標的化ドメインは、AGUGGGGGUGAAUUCAGUGUを含む。本開示は、表6、7及び8で提供されるgRNAの1つ又は複数を含む組成物を提供する。本開示は、表6、7及び8で提供されるgRNAの1つ又は複数を含む1つ又は複数のRNP複合体を含む組成物をさらに提供する。
特定の実施形態では、本明細書で開示されるCRISPR/Cpf1システムは、CIITA遺伝子を標的とする。特定の実施形態では、CRISPRシステムは、CIITA遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む。特定の実施形態では、CRISPRシステムは、CIITA遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む。特定の実施形態では、gRNAは、CIITA遺伝子のいずれかの鎖に相補的であり得る。特定の実施形態では、CIITA遺伝子配列の標的化部分は、CIITA遺伝子のコード配列内にある。特定の実施形態では、CIITA遺伝子配列の標的化部分は、エクソン内にある。特定の実施形態では、CIITA遺伝子配列の標的化部分は、イントロン内にある。特定の実施形態では、CIITA遺伝子配列の標的化部分は、遺伝子の調節領域内にある。特定の実施形態では、2つ以上の配列が標的化され、CIITA遺伝子配列の標的化部分は、1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン、1つ若しくは複数の調節領域又は1つ若しくは複数のエクソン、1つ若しくは複数のイントロン及び1つ若しくは複数の調節領域内にある。特定の実施形態では、CIITA遺伝子配列の一部は、CIITA遺伝子のコード配列の最初の500bp内にある。特定の実施形態では、CIITAを標的とするこのようなCRISPR/Cpf1システムで使用するためのgRNA分子標的化ドメインは、表9に列挙される標的化ドメイン配列を含む。本開示は、表9で提供されるgRNAの1つ又は複数を含む組成物を提供する。本開示は、表9で提供されるgRNAの1つ又は複数を含む1つ又は複数のRNP複合体を含む組成物をさらに提供する。
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FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCのノックアウト及び/又はノックダウンは、限定することなく、がん及び例えば自己免疫障害などの非がん疾患を治療するための養子免疫療法に関連するものをはじめとする様々な状況において有用であり得る。本開示の特定の実施形態によれば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCは、治療で使用されるT細胞などの免疫細胞においてノックアウトされる。非限定的な一例として、T細胞は、キメラ抗原受容体(CAR)又は異種T細胞受容体(TCR)などの操作された受容体を発現し得、その受容体は、腫瘍細胞などの病理に関与するとされる、細胞又は組織上の抗原を認識するように構成され得る。それらが操作された受容体を発現するかどうかにかかわらず、本開示によるTCR、MHC I及び/又はMHC IIノックアウトT細胞を用いて、その中でGvH又はHvG応答が安全性又は有効性の懸念を提示することもある組織又は器官が標的化され得る。
TCR、MHC I及び/又はMHC IIノックアウト及び/又はノックダウン細胞は、「同種異系」細胞療法で用いられ得、その中で細胞が対象から採取され、修飾されて、例えばFAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC発現の妨害など、ノックアウト又はノックダウンされ、次に異なる対象に戻され得る。いずれのアプローチでも、採取と投与との間において、本開示のTCR、MHC I及び/又はMHC IIノックアウト及び/又はノックダウン細胞は、増殖、刺激、精製又は選別、導入遺伝子による形質導入、凍結及び/又は解凍などの様々な方法で操作され得る。
本明細書に記載されるようなFAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及び/又はTRBC遺伝子をノックアウト又はノックダウンすることは、(1)GvH応答を防げ;(2)HvG応答を防げ;及び/又は(3)T細胞の安全性及び有効性を改善し得る。本明細書に記載されるようなFAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及び/又はTRBCタンパク質の発現をノックダウンすることは、同様に、(1)GvH応答を防げ;(2)HvG応答を防げ;及び/又は(3)T細胞の安全性及び有効性を改善し得る。
特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞において、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される1つ又は複数の遺伝子を独立してノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞において、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される2つの遺伝子を独立してノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞において、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される3つの遺伝子を独立してノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞において、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCの全ての4つの遺伝子を独立してノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。
特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてB2M遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてTRAC遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてCIITA遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてTRBC遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてB2M及びTRAC遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてB2M及びCIITA遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてB2M及びTRBC遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてTRAC及びCIITA遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてTRAC及びTRBC遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてCIITA及びTRBC遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてB2M、TRAC及びCIITA遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてB2M、TRAC及びTRBC遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてB2M、CIITA及びTRBC遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてTRAC、CIITA及びTRBC遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。特定の実施形態では、現在開示されている方法は、T細胞においてB2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子をノックアウト及び/又はノックダウンすることを含む。
特定の実施形態では、T細胞におけるB2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される1つ又は複数の遺伝子、2つ以上の遺伝子、3つ以上の遺伝子又は4つ以上の遺伝子のノックアウト及び/又はノックダウンは、(1)GvH応答を防止し;(2)HvG応答を防止し;及び/又は(3)T細胞の安全性及び有効性を改善し得る。例えば、限定されるものではないが、T細胞におけるB2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される1つ又は複数の遺伝子のノックアウト及び/又はノックダウンを使用して、例えば同種異系T細胞などの「同種異系」細胞が生成され得る。特定の実施形態では、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される1つ又は複数の遺伝子のノックアウト及び/又はノックダウンは、「同種異系」細胞療法で用いられ得、その中で細胞が対象から採取され、修飾されて、例えばB2M、TRAC、CIITA及び/又はTRBC発現の妨害など、ノックアウト又はノックダウンされ、次に異なる対象に戻される。
特定の実施形態では、T細胞における、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される1つ又は複数の遺伝子、2つ以上の遺伝子、3つ以上の遺伝子又は4つ以上の遺伝子ノックアウト及び/又はノックダウンは、修飾されていないT細胞と比較して、T細胞におけるMHC II受容体発現の減少をもたらす。特定の実施形態では、修飾されて、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される1つ又は複数の遺伝子がノックアウト及び/又はノックダウンされている細胞集団は、修飾されていない細胞集団におけるMHC II受容体、TCR又はB2M発現の量と比較して、MHC II受容体、TCR又はB2Mの発現の少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%の減少を示す。
特定の実施形態では、2つ以上の遺伝子のノックアウト及び/又はノックダウンは、各標的遺伝子の編集のための異なるヌクレアーゼの使用を伴い得る。例えば、限定されるものではないが、CRISPR/Cpf1編集システムを使用して、1つの標的遺伝子がノックアウト及び/又はノックダウンされ得、CRISPR/Cas9編集システムを使用して、第2の標的遺伝子がノックアウト及び/又はノックダウンされ得る。
本開示は、本明細書で開示されるT細胞の1つ又は複数の内因性遺伝子に1つ又は複数の修飾を含む単離されたCRISPR/Cpf1編集T細胞又はCRISPR/Cpf1編集T細胞集団を提供する。特定の実施形態では、CRISPR/Cpf1編集T細胞又はCRISPR/Cpf1編集T細胞集団は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む。代わりに、CRISPR/Cpf1編集T細胞又はCRISPR/Cpf1編集T細胞集団は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含まない。特定の実施形態では、CRISPR/Cpf1編集細胞集団の約10%未満、約9%未満、約8%未満、約7%未満、約6%未満、約5%未満、約4%未満、約3%未満、約2%未満又は約1%未満の細胞は、CRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む。
特定の実施形態では、T細胞は、CD8T細胞、CD8ナイーブT細胞、CD4中央記憶T細胞、CD8中央記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4T細胞、CD4幹細胞記憶T細胞、CD8幹細胞記憶T細胞、CD4ヘルパーT細胞、制御性T細胞、細胞毒性T細胞、ナチュラルキラーT細胞、CD4+ナイーブT細胞、TH17CD4T細胞、TH1CD4T細胞、TH2CD4T細胞、TH9CD4T細胞、CD4Foxp3T細胞、CD4CD25CD127T細胞又はCD4CD25CD127Foxp3T細胞である。
特定の実施形態では、本開示は、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA、TRBC及びそれらの任意の組み合わせからなる群から選択される、T細胞の内因性遺伝子のCRISPR/Cpf1媒介編集の使用に関する。例えば、限定されるものではないが、修飾は、例えば、FAS遺伝子配列の一部、BID遺伝子配列の一部、CTLA4遺伝子配列の一部、PDCD1遺伝子配列の一部、CBLB遺伝子配列の一部、PTPN6遺伝子配列の一部、B2M遺伝子配列の一部、TRAC遺伝子配列の一部、CIITA遺伝子配列の一部、TRBC遺伝子配列の一部又はそれらの組み合わせを標的とする、例えばRNP複合体などのCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及びgRNA分子を含む1つ又は複数の複合体の送達によって生成される。特定の実施形態では、例えば、RNP複合体などの2つ以上、3つ以上、4つ以上、5つ以上、6つ以上、7つ以上、8つ以上、9つ以上又は10の複合体が送達され得、複合体のそれぞれは、異なる遺伝子を標的とする。特定の実施形態では、T細胞集団内の細胞の少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%が編集及び/又は修飾される。特定の実施形態では、T細胞集団の細胞の少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%は、例えば、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される少なくとも1つの内因性T細胞遺伝子に生産的インデルを有する。
Cpf1変異型、異なる細胞型及び調合物についてのベンチマーキングアッセイ
標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整は、例えば、「一致部位」標的核酸配列などの標的核酸配列に関して、対照CRISPR/RNA誘導ヌクレアーゼ編集システムと、試験CRISPR/Cpf1編集システムの活性とを比較することによって評価され得る。
一致部位標的核酸配列は、Cpf1と、例えばCas9などの第2のRNA誘導ヌクレアーゼとによって編集されるという要件の両方を組み込んでいる。例えば、TTTV AsCpf1野生型プロトスペーサー隣接モチーフ(「PAM」)及びNGGSpCas9野生型PAMが本例で用いられ得る。上述したように、試験Cpf1タンパク質は、野生型Cpf1タンパク質と比較して1つ又は複数の修飾を含み得る。このような修飾の例としては、1つ又は複数のNLS配列を組み込むための前述の修飾、6-ヒスチジン精製配列を組み込むための前述の修飾及びCpf1タンパク質システインアミノ酸の改変並びにそれらの組み合わせが挙げられるが、これらに限定されない。
本例で用いられ得る例示的な一致部位標的核酸配列としては、一致部位1(「MS1」;配列番号13)、一致部位5(「MS5」;配列番号14)、一致部位11(「MS11」;配列番号15)及び一致部位18(「MS18」;配列番号16)が挙げられる。
例えば、CD34HSCなどの特定の細胞型における、CRISPR/Cpf1媒介標的核酸配列の編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整をCRISPR/Cas9媒介と対比して評価するために、CRISPR/Cpf1ゲノム編集システム、すなわちCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、一致部位標的を含む標的核酸の少なくとも一部に相補的なgRNAとを含むシステムが、例えば、RNPとして又はシステムの構成要素をコードするベクターの使用を介して、関心のある細胞型の細胞に導入される。標的核酸配列の編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整は、本明細書で開示されるように検出され得る。次に、検出された標的核酸配列の編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整は、同一の一致部位標的及び同一の細胞型に対してCRISPR/Cas9ゲノム編集システムを用いた場合に検出された標的核酸配列の編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整と比較され得る。
標的核酸配列のCRISPR/Cas9媒介編集(又は別のCRISPRベースのシステムによる編集)及び/又は標的核酸配列の発現の調整と対比して、CRISPR/Cpf1媒介を比較する上記の方法は、用いられるCRISPR/Cpf1媒介編集システムの特定の属性の評価を可能にする。例えば、限定されるものではないが、このような方法を使用して、標的核酸配列のCRISPR/Cas9媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整と対比してCRISPR/Cpf1媒介編集が評価され、異なる製造プロセスによって調製されたCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び/又はgRNAの活性の差異が同定され得る。このような方法は、異なる調合物に存在し、且つ異なる送達ストラテジーを用いるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び/又はgRNAの活性の差異も同定し得る。
特定の実施形態では、本開示は、試験CRISPR/Cpf1ゲノム編集システムによる標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整を対照RNA誘導ヌクレアーゼゲノム編集システムと比較するためのアッセイに関する。より具体的には、本開示は、一致部位における編集のレベル又は効率が、遺伝子編集システムが任意の他の部位における編集においてどの程度効率的であるかの指標となるように、それに対して遺伝子編集システム(例えば、CRISPR/Cas9又はCRISPR/Cpf1又はその変異型と、一致部位に相補的なgRNA)が標的化される、一致部位(例えば、一致部位5を含有する細胞)を用いるアッセイを提供する。換言すれば、遺伝子編集システムの様々な構成要素を変化させ、一致部位(例えば、一致部位5)で達成される編集のレベル又は効率を測定することにより、編集効率が評価され得る。
例えば、限定されるものではないが、試験及び対照遺伝子又はゲノム編集システムは、次の側面のいずれか1つ又は複数が異なり得る:RNA誘導ヌクレアーゼの配列;例えばゲノム編集システムの構成要素の製造方法などの供給源;ゲノム編集システムの1つ又は複数の構成要素の配合;及び例えば細胞型などのゲノム編集システムが導入される細胞の同一性又は細胞の調製方法。特定の実施形態では、本明細書に記載のアッセイは、試験ゲノム編集システムの品質管理分析を可能にする。特定の実施形態では、本開示のアッセイは、標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整を評価し、標的は、一致部位配列を含む。
電気穿孔パルスコードスクリーニング
本開示は、標的部位におけるより高度な編集をもたらす電気穿孔パルスコードをさらに提供する。実施例に示されるように、電気穿孔パルスコードのスクリーニングは、本開示のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼによる、より高度な効率編集をもたらすコードの同定を可能にする。例えば、限定されるものではないが、図18は、一連の特定のパルスコード及び溶液を用いた、HUDEPにおけるAsCpf1のヌクレオフェクションスクリーニングを示す。同様に、図19は、HSCにおけるAsCpf1の例示的ヌクレオフェクションスクリーニングを示す。特定の実施形態では、パルスコードCA-137及びCA-138を使用して、Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼによるより高効率の編集が促進され得る。例えば、限定されるものではないが、図20及び図23Cは、CA-137パルスコードの効率の向上を立証する。
治療方法
本開示は、開示されたゲノム編集方法使用して編集されている細胞を投与することにより、疾患及び/又は障害を治療する方法をさらに提供する。特定の実施形態では、本開示は、対象の1つ又は複数の細胞を修飾することにより、対象を治療する方法に関する。特定の実施形態では、1つ又は複数の細胞がエクスビボで修飾され、次に対象に投与される。例えば、限定されるものではないが、対象を治療するための方法は、対象からの細胞を、例えばエクスビボで、(a)標的核酸の標的配列に相補的なgRNA分子;及び(b)本明細書で開示されるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼに接触させることを含み得る。特定の実施形態では、本開示は、本開示のCRISPR/Cpf1システムによって修飾された1つ又は複数の細胞を対象に投与することを含む、対象を治療するための方法を提供する。特定の実施形態では、1つ又は複数の細胞がドナーから得られ、本開示のCRISPR/Cpf1システムを使用して遺伝子改変され、次に対象に投与される。
特定の実施形態では、本開示の方法は、例えば、同種異系T細胞を産生するために、開示されたゲノム編集方法を使用して編集されているT細胞を、それを必要とする対象に投与することを含み得る。例えば、限定されるものではないが、本開示の方法は、編集されて、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及び/又はTRBCの発現がノックアウト又はノックダウンされている1つ又は複数のT細胞の投与を含み得る。特定の実施形態では、T細胞は編集されて、B2M、TRAC、CIITA及び/又はTRBC発現がノックアウト又はノックダウンされている。特定の実施形態では、1つ又は複数のT細胞は、エクスビボで編集されており、次に対象に投与される。特定の実施形態では、1つ又は複数の細胞は、ドナーから得られる。特定の実施形態では、このようなT細胞を使用して、がん又は自己免疫障害を有する対象が治療され得る。特定の実施形態では、対象に投与されるCRISPR/Cpf1編集T細胞集団において、CRISPR/Cpf1編集細胞集団の細胞の約10%未満、約9%未満、約8%未満、約7%未満、約6%未満、約5%未満、約4%未満、約3%未満、約2%未満又は約1%未満がCRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む。
特定の実施形態では、本開示の方法は、開示されたゲノム編集方法を使用して編集されているCD34+造血幹及び前駆細胞(HSPC)を、それを必要とする対象に投与することを含み得る。特定の実施形態では、CD34+細胞は、編集されて、BCL11a又はHBG発現がノックアウト又はノックダウンされ得る。例えば、限定されるものではないが、本明細書で開示されるゲノム編集方法を使用して編集されているCD34+造血幹及び前駆細胞(HSPC)は、それを必要とする対象における異常ヘモグロビン症の治療のために使用され得る。特定の実施形態では、異常ヘモグロビン症は、重篤な鎌状赤血球症(SCD)又はβサラセミア、δサラセミア又はβ/δ-サラセミアなどのサラセミアであり得る。特定の実施形態では、異常ヘモグロビン症の治療の例示的プロトコルは、それを必要とする対象からCD34+HSPC採取すること、本明細書で開示されるゲノム編集方法を使用して自己由来CD34+HSPCをエクスビボで編集すること、それに続いて、編集された自己由来CD34+HSPCを対象に再輸液することを含み得る。特定の実施形態では、編集された自己由来CD34+HSPCによる治療は、HbF誘導の増加をもたらし得る。
特定の実施形態では、CD34+HSPCの採取前に、対象は、適用可能な場合にはヒドロキシ尿素による治療を中止し、十分なヘモグロビン(Hb)レベルを維持するために輸血を受け得る。特定の実施形態では、骨髄から末梢血中にCD34+HSPCを動員するために、対象にプレリキサホル(例えば、0.24mg/kg)が静脈内投与され得る。特定の実施形態では、対象は、1回又は複数回の白血球アフェレーシスサイクルを受け得る(例えば、サイクル間がおよそ1ヶ月間で、1サイクルは、連日実施される2回のプレリキサホル動員白血球アフェレーシス採取として定義される)。特定の実施形態では、対象に実施される白血球アフェレーシスサイクルの回数は、バックアップ保存のための未編集の自己由来CD34+HSPC/kgの用量と共に、対象に再輸液するための(例えば、≧1.5×10細胞/kg)、編集された自己由来CD34+HSPCの用量(例えば、≧2×10細胞/kg、≧3×10細胞/kg、≧4×10細胞/kg、≧5×10細胞/kg、2×10細胞/kg~3×10細胞/kg、3×10細胞/kg~4×10細胞/kg、4×10細胞/kg~5×10細胞/kg)を達成するのに必要な回数であり得る。特定の実施形態では、対象から採取されたCD34+HSPCは、本明細書で考察されるゲノム編集方法のいずれかを使用して編集され得る。特定の実施形態では、本明細書で開示される、gRNAの任意の1つ又は複数及びRNA誘導ヌクレアーゼの1つ又は複数がゲノム編集方法で使用され得る。
特定の実施形態では、治療は、自己由来幹細胞移植を含み得る。特定の実施形態では、対象は、ブスルファン馴化による骨髄破壊的馴化を受け得る(例えば、1mg/kgの試験用量で、初回用量薬物動態分析に基づいて用量調整される)。特定の実施形態では、馴化は、4日間連続して行われ得る。特定の実施形態では、3日間のブスルファン休薬期間後、編集された自己由来CD34+HSPC(例えば、≧2×10細胞/kg、≧3×10細胞/kg、≧4×10細胞/kg、≧5×10細胞/kg、2×10細胞/kg~3×10細胞/kg、3×10細胞/kg~4×10細胞/kg、4×10細胞/kg~5×10細胞/kg)が対象に再輸液され得る(例えば、末梢血中に)。特定の実施形態では、編集された自己由来CD34+HSPCは、特定の対象のために製造され、凍結保存され得る。特定の実施形態では、対象は、連続的な骨髄破壊的馴化レジメン及び編集された自己由来CD34+細胞の輸液に続いて、好中球の移植を達成し得る。好中球移植は、≧0.5×10/LのANCの3回の連続測定として定義され得る。特定の実施形態では、対象に投与されるCRISPR/Cpf1編集CD34+HSPC集団において、CRISPR/Cpf1編集CD34+HSPC集団の細胞の約10%未満、約9%未満、約8%未満、約7%未満、約6%未満、約5%未満、約4%未満、約3%未満、約2%未満又は約1%未満の細胞がCRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む。
特定の実施形態では、本開示のCRISPR/Cpf1媒介編集システムは、約10%以上の臨床的に関連するか又は治療的に関連する編集効率をもたらし得る。例えば、限定されるものではないが、本開示のCRISPR/Cpf1媒介編集システムは、約5%以上、約10以上、15%以上、約20%以上、約25%以上、約30%以上、約35%以上、約40%以上、約45%以上、約50%以上、約55%以上、約60%以上、約65%以上、約70%以上、約75%以上、約80%以上、約85%以上、約90%以上、約95%以上、約96%以上、約97%以上、約98%以上又は約99%以上の臨床的に関連するか又は治療的に関連する編集効率をもたらし得る。
特定の実施形態では、本明細書で開示される治療方法で投与される細胞集団内の細胞の少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%が修飾される。
特定の実施形態では、CRISPR/Cpf1編集細胞集団内の細胞の約10%未満、約5%未満、約1%未満、約0.5%未満、約0.25%未満又は約0.1%未満がCRISPR/Cpf1編集システムの1つ又は複数の構成要素を含む。
ゲノム編集システム
「ゲノム編集システム」又は「遺伝子編集システム」という用語は、RNA誘導DNA編集活性を有する任意のシステムを指す。本開示のゲノム編集システムは、天然に存在するCRISPRシステムから適合された、ガイドRNA(gRNA)及びRNA誘導ヌクレアーゼの少なくとも2つの構成要素を含む。これらの2つの構成要素は、特定の核酸配列と結合して、例えば1つ又は複数の一本鎖切断(SSB又はニック)、二重鎖切断(DSC)及び/又は点変異を生成することにより、核酸配列中又はその周囲のDNAを編集できる複合体を形成する。
天然に存在するCRISPRシステムは、進化的に2つのクラスと5つの型に組織化され(Makarova et al.Nat Rev Microbiol.2011 Jun;9(6):467-477(Makarova)、参照により本明細書に援用される)、本開示のゲノム編集システムは、任意の型又はクラスの天然に存在するCRISPRシステムの構成要素を適合させ得る一方、本明細書に提示される実施形態は、一般にクラス2及びII型又はV型のCRISPRシステムから適合される。II型及びV型を包含するクラス2システムは、相対的に大型の多ドメインRNA誘導ヌクレアーゼタンパク質(例えば、Cas9又はCpf1)と、1つ又は複数のガイドRNA(例えば、crRNA、任意選択的にtracrRNA)とによって特徴付けられ、それは、crRNAの標的(又はスペーサー)配列に相補的な特定の遺伝子座と会合(標的化)して切断する、リボ核タンパク質(RNP)複合体を形成する。本開示によるゲノム編集システムは、細胞DNA配列を同様に標的化して編集するが、天然に存在するCRISPRシステムとは著しく異なる。例えば、本明細書に記載の単分子ガイドRNAは自然界に存在せず、且つ本開示によるガイドRNA及びRNA誘導ヌクレアーゼは、いずれも天然に存在しない任意の数の修飾を組み込み得る。
ゲノム編集システムは、様々な方法で実装され得(例えば、細胞又は対象に投与又は送達され得る)、異なる実装が異なる用途に適し得る。例えば、ゲノム編集システムは、特定の実施形態では、タンパク質/RNA複合体(リボ核タンパク質又はRNP)として実装され、それは、脂質又はポリマーの微粒子又はナノ粒子、ミセル、リポソームなどの薬学的に許容可能な担体及び/又は封入剤を任意選択的に含む医薬組成物に含まれ得る。特定の実施形態では、ゲノム編集システムは、上述したRNA誘導ヌクレアーゼ及びガイドRNA構成要素をコードする1つ又は複数の核酸として(任意選択的に、1つ又は複数の追加的な構成要素と共に)実装され;特定の実施形態では、ゲノム編集システムは、このような核酸を含む1つ又は複数のベクター、例えばアデノ随伴ウイルスなどのウイルスベクターとして実装され;特定の実施形態では、ゲノム編集システムは、前述のいずれかの組み合わせとして実装される。本明細書に記載の原理に従って動作する追加的な又は修正された実装は、当業者に明らかであり、本開示の範囲内である。
本開示のゲノム編集システムは、単一の特定のヌクレオチド配列を標的化し得るか又は標的化し得、2つ以上のガイドRNAの使用により、2つ以上の特定のヌクレオチド配列を並行して編集できることに留意すべきである。複数のgRNAの使用は、本開示を通して「多重化」と称され、関心のある複数の無関係の標的配列を標的化するため又は単一の標的ドメイン内に複数のSSB若しくはDSBを形成するため、場合によりこのような標的ドメイン内で特定の編集をするために用いられ得る。例えば、参照により本明細書に援用される、Maeder et al.(Maeder)による国際公開第2015/138510号パンフレットは、潜在的なスプライス部位の生成をもたらし、その結果として遺伝子の機能を低下させ又は排除する、ヒトCEP290遺伝子における点変異を修正する(C.2991+1655AからGへ)ためのゲノム編集システムを記載する。Maederのゲノム編集システムは、点変異の両側の(すなわちそれを挟む)配列を標的化する2つのガイドRNAを利用して、変異側面に位置するDSBを形成する。これは次に、変異を含む介在配列の欠失を促進し、それによって潜在的スプライス部位を除去し正常な遺伝子機能を回復させる。
別の例とし、参照によりその全体が本明細書に援用される、Cotta-Ramusinoら(「Cotta-Ramusinoら」)による国際公開第2016/073990号パンフレットは、「二重ニッカーゼシステム」と称される配置である、Cas9ニッカーゼ(S.ピオゲネス(S.pyogenes)D10Aなどの一本鎖ニックを生じるCas9)と組み合わせて、2つのgRNAを利用するゲノム編集システムを記載する。Cotta-Ramusinoらの二重ニッカーゼシステムは、1つ又は複数のヌクレオチドでオフセットされている目的の配列の逆ストランドに、2つのニックを生じるように構成され、上記ニックが組み合わされて、オーバーハングを有する二本鎖切断を作り出す(Cotta-Ramusinらoの場合には5’であるが3’オーバーハングも可能である)。オーバーハングは、次に、いくつかの状況において相同指向修復事象を促進し得る。また、別の例として、Palestrantらによる国際公開第2015/070083号パンフレット(「Palestrant」、参照によりその全体が本明細書に援用される)は、Cas9をコードするヌクレオチド配列を標的化するgRNA(「支配RNA」と称される)を記載し、それは、例えば、いくつかのウイルス形質導入細胞において、さもなければ構成的に発現され得るCas9の一過性発現を可能にするために、1つ又は複数の追加的なgRNAを含むゲノム編集システムに含まれ得る。これらの多重化用途は限定的ではなく、むしろ例示的であること意図しており、当業者は、他の多重化用途が一般に、本明細書に記載のゲノム編集システムと適合性があることを理解するであろう。
ゲノム編集システムは、場合により、NHEJ又はHDRなどの細胞DNA二本鎖切機序断によって修復される二本鎖切断を形成し得る。これらの機序は、例えば、Davis&Maizels,PNAS,111(10):E924-932,March 11,2014(Davis)(Alt-HDRについて記載する);Frit et al.DNA Repair 17(2014)81-97(Frit)(Alt-NHEJについて記載する);及びIyama and Wilson III,DNA Repair(Amst.)2013-Aug;12(8):620-636(Iyama)(標準HDR及びNHEJ経路について一般的に記載する)などの文献にわたり記載されている。
ゲノム編集システムがDSBを形成することによって機能する場合、このようなシステムは任意選択的に、特定の様式の二本鎖切断修復又は特定の修復結果を促進し又は容易にする、1つ又は複数の構成要素を含む。例えば、Cotta-Ramusinoらは、その中に一本鎖オリゴヌクレオチド「ドナー鋳型」が付加されているゲノム編集システムも記載しており;ドナー鋳型は、ゲノム編集システムによって切断される細胞DNAの標的領域に組み込まれ、標的配列の変化をもたらし得る。
特定の実施形態では、ゲノム編集システムは、一本鎖又は二本鎖の切断を引き起こすことなく、標的配列を改変するか、又は標的配列中又はその付近の遺伝子の発現を改変する。例えば、ゲノム編集システムは、DNAに作用する機能ドメインに融合したRNA誘導ヌクレアーゼを含み得、それによって標的配列又はその発現を改変する。一例として、RNA誘導ヌクレアーゼは、シチジンデアミナーゼ機能ドメインに結合(例えば、融合)し得、標的化されたCからAへの置換を生成することによって機能し得る。例示的なヌクレアーゼ/デアミナーゼ融合体は、参照により援用される、Komor et al.Nature 533,420-424(19 May 2016)(「Komor」)に記載される。代わりに、ゲノム編集システムは、デッドCas9(dCas9)などの切断不活性化(すなわち「デッド」)ヌクレアーゼを利用し得、細胞DNAの1つ又は複数の標的化領域上に安定な複合体を形成し、それにより、限定されるものではないが、mRNA転写、クロマチンリモデリングなどをはじめとする、標的領域が関与する機能を妨害することによって機能し得る。
特定の実施形態では、本開示に包含されるゲノム編集システムは、標準アッセイにおいて特定の最小限の編集百分率を示すであろう。例えば、限定されるものではないが、本開示に包含される特定のゲノム編集システムは、特定の標準アッセイにおいて、少なくとも10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%又は95%の編集を示すであろう。当該技術分野で公知の1つ若しくは複数のアッセイ又は例えば後述の実施例1に記載されるものなどの本明細書に記載されるアッセイは、標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集を評価するために使用され得る。一例として、後述の実施例1では、例えばCD34HSCなどの特定の細胞型における、CRISPR/Cpf1媒介標的核酸配列の編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整をCRISPR/Cas9媒介と対比した評価が記載され、CRISPR/Cpf1ゲノム編集システム、すなわちCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、一致部位標的を含む標的核酸の少なくとも一部に相補的なgRNAとを含むシステムが、例えば、RNPとして又はシステムの構成要素をコードするベクターの使用を介して、関心のある細胞型の細胞に導入される。標的核酸配列の編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整は、本明細書で開示されるように検出される。次に、検出された標的核酸配列の編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整は、同一の一致部位標的及び同一の細胞型に対してCRISPR/Cas9ゲノム編集システムを用いた場合に検出された標的核酸配列の編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整と比較され得る。
特定の実施形態では、本開示のゲノム編集システムは、細胞集団内で同時に、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される1つ又は複数、2つ以上、3つ以上又は4つ以上の遺伝子をノックアウト又はノックダウンし得る。特定の実施形態では、本開示のゲノム編集システムは、1つ又は複数、2つ以上、3つ以上又は4つ以上のgRNA分子を含み得、各gRNA分子は、例えば、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子から選択される遺伝子などの異なる遺伝子に対する標的化ドメインを含む。例えば、限定されるものではないが、本開示の多重ゲノム編集システムは、(i)第1の遺伝子の標的配列に相補的な第1の標的化ドメインを含む第1のガイドRNA(gRNA)と、第1のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとを含む第1のRNP複合体、(ii)第2の遺伝子の標的配列に相補的な第2の標的化ドメインを含む第2のgRNA分子と、第2のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとを含む第2のRNP複合体、(iii)第3の遺伝子の標的配列に相補的な第3の標的化ドメインを含む第3のgRNA分子と、第4のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとを含む第3のRNP複合体、及び/又は(iv)第4の遺伝子の標的配列に相補的な第4の標的化ドメインを含む第4のgRNA分子と、第4のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼとを含む第4のRNP複合体を含み得る。特定の実施形態では、第1の遺伝子、第2の遺伝子、第3の遺伝子及び第4の遺伝子は、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される。特定の実施形態では、B2Mを標的化するためのgRNA分子の標的化ドメインは、表6、7及び8に列挙される標的化ドメイン配列を含む。特定の実施形態では、TRACを標的化するためのgRNA分子の標的化ドメインは、表2及び3に列挙される標的化ドメイン配列を含む。特定の実施形態では、CIITAを標的化するためのgRNA分子の標的化ドメインは、表9に列挙される標的化ドメイン配列を含む。特定の実施形態では、TRBCを標的化するためのgRNA分子の標的化ドメインは、表4及び5に列挙される標的化ドメイン配列を含む。特定の実施形態では、編集効率は、全ての標的遺伝子について>80%、>85%、>90%、>95%、>98%又は>99%であり得る。特定の実施形態では、細胞集団は、T細胞集団であり得る。
ガイドRNA(gRNA)分子
「ガイドRNA」及び「gRNA」という用語は、細胞内のゲノム又はエピソーム配列などの標的配列に対する、Cpf1などのRNA誘導ヌクレアーゼの特定の結合(又は「標的化」)を促進する、任意の核酸を指す。gRNAは、単分子(単一のRNA分子を含むか又はキメラとも称される)又はモジュール型(例えば、二重化によって通常互いに結合する、crRNA及びtracrRNAなどの2つ以上、典型的には2つの別々のRNA分子を含む)であり得る。gRNA及びそれらの構成部分は、例えば、Briner et al.(Molecular Cell56(2),333-339,October 23,2014(Briner)、参照により援用される)及びCotta-Ramusinoなどの文献にわたり記載される。
細菌及び古細菌では、II型CRISPRシステムは一般に、Cas9などのRNA誘導ヌクレアーゼタンパク質;外来配列に相補的な5’領域を含むCRISPR RNA(crRNA);及びcrRNAの3’領域に相補的でありそれと二重鎖を形成する、5’領域を含むトランス活性化crRNA(tracrRNA)を含む。いかなる理論にも拘束されることは意図されないが、この二重鎖はCas9/gRNA複合体の形成を促進し、その活性に必要であると考えられる。II型CRISPRシステムを遺伝子編集における使用に適合させる間、1つの非限定的例において、crRNA(その3’末端)及びtracrRNA(その5’末端)の相補的領域を架橋する、4ヌクレオチド(例えば、GAAA)「テトラループ」又は「リンカー」配列により、crRNA及びtracrRNAが単一の単分子又はキメラガイドRNAに連結され得ることが発見された。(それらの全てが参照により本明細書に援用される、Mali et al.Science.2013 Feb 15;339(6121):823-826(「Mali」);Jiang et al.Nat Biotechnol.2013 Mar;31(3):233-239(「Jiang」);及びJinek et al.,2012 Science Aug.17;337(6096):816-821(「Jinek」))。
ガイドRNAは、単分又はモジュラー型を問わず、編集が望まれる細胞のゲノム中のDNA配列などの標的配列中の標的ドメインに完全に又は部分的に相補的な「標的化ドメイン」を含む。標的化ドメインは、限定されるものではないが、「ガイド配列」(Hsu et al.,Nat Biotechnol.2013 Sep;31(9):827-832,(「Hsu」)、参照により本明細書に援用される)、「相補的領域」(Cotta-Ramusinoら)、「スペーサー」(Briner)及び包括的に「crRNA」(Jiang)をはじめとする文献において、様々な名称で呼ばれている。それらに与えられた名称とはかかわりなく、標的化ドメインは、典型的には10~30ヌクレオチド長であり、特定の実施形態では16~24ヌクレオチド長(例えば、16、17、18、19、20、21、22、23又は24ヌクレオチド長)であり、Cas9 gRNAの場合には5’末端又はその付近にあり、Cpf1 gRNAの場合には3’末端又はその付近にある。
標的化ドメインに加えて、gRNAは、典型的には(以下で考察されるように必ずしもそうとは限らないが)、gRNA/Cas9及びgRNA/Cpf1複合体の形成又は活性に影響を及ぼし得る複数のドメインを含む。例えば、上記のように、gRNAの第1及び第2の相補的ドメイン(リピート:アンチリピート二重鎖とも称される)によって形成される二重鎖構造は、Cas9の認識(REC)ローブと相互作用して、Cas9/gRNA複合体の形成を媒介し得る。(Nishimasu et al.,Cell 156,935-949,February 27、2014(Nishimasu 2014)及びNishimasu et al.,Cell 162,1113-1126,August 27,2015(Nishimasu 2015)、いずれも参照により本明細書に援用される)。第1及び/又は第2の相補的ドメインは、RNAポリメラーゼによって終結シグナルとして認識され得る、1つ又は複数のポリA鎖を含有し得ることに留意すべきである。そのため、第1及び第2の相補的ドメインの配列は、例えば、Brinerに記載されるようなA-Gスワップの使用又はA-Uスワップの使用を通じて任意選択的に修飾され、これらの区域が除去されてgRNAの完全なインビトロ転写が促進される。第1及び第2の相補的ドメインに対するこれらの及び他の類似の改変は、本開示の範囲内である。
第1及び第2の相補的ドメインと共に、Cas9g RNAは典型的には、インビボでヌクレアーゼ活性に関与するが、インビトロでは必ずしも関与しない、2つ以上の追加的な二重鎖領域を含む。(Nishimasu 2015)。第二の相補的ドメインの3’部分の付近にある第1のステムループ1は、「近位ドメイン」(Cotta-Ramusino)、「ステムループ1」(Nishimasu 2014及び2015)及び「nexus」(Briner)など様々に呼ばれる。1つ又は複数の追加的なステムループ構造は、一般に、gRNAの3’末端の付近に存在し、数は種によって異なり、S.ピオゲネス(S.pyogenes)gRNAが典型的に2つの3’ステムループ(リピート:アンチリピート二重鎖を含む合計4つのステムループ構造:アンチリピート二重鎖)を含む一方で、S.アウレウス(S.aureus)及び他の種は、単に1つのみ有する(合計3つのステムループ構造)。種毎にまとめられた、保存的ステムループ構造(及びより一般的にはgRNA構造)の説明は、Brinerに提供されている。
前述の説明は、Cas9と共に使用するためのgRNAに焦点を当ててきたが、ここまでに記載されたものといくつかの点で異なるgRNAを利用する、他のRNA誘導ヌクレアーゼが発見され又は発明されている(又は将来的に発見される可能性がある)ことを理解されたい。例えば、Cpf1(「プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francicella)1」由来のCRISPR)は最近発見されたRNA誘導ヌクレアーゼであり、機能するためにtracrRNAを必要としない。(Zetsche et al.,2015,Cell 163,759-771 October 22,2015(Zetsche I)、参照により本明細書に援用される)。Cpf1ゲノム編集システムにおいて使用するためのgRNAは、一般に、標的化ドメイン及び相補的ドメイン(交互に「ハンドル」と称される)を含む。Cpf1と共に使用するためのgRNAにおいて、標的化ドメインは通常、Cas9 gRNAに関して上述したように、5’末端ではなくむしろ3’末端又はその付近に存在する(ハンドルはCpf1 gRNAの5’末端又はその付近にある)ことにも留意すべきである。
当業者は、異なる原核生物種由来のgRNA間又はCpf1とCas9のgRNA間に構造上の相違が存在し得るが、gRNAが作用する原理は概して一貫していることを理解するであろう。この動作の一貫性のために、gRNAは、広い意味で、それらの標的化ドメイン配列によって定義され得、当業者は、所与の標的化ドメイン配列が、単分子若しくはキメラgRNA又は1つ若しくは複数の化学修飾及び/若しくは配列修飾(置換、追加のヌクレオチド、切断など)を含むgRNAをはじめとする、任意の適切なgRNAに組み込まれ得ることを理解するであろう。したがって、本開示における提示の経済性のために、gRNAはそれらの標的化ドメイン配列の観点のみから記載され得る。
より一般的には、当業者は、本開示のいくつかの態様が、複数のRNA誘導ヌクレアーゼを使用して実装され得るシステム、方法及び組成物に関することを理解するであろう。この理由から、別段の指定がない限り、gRNAという用語は、Cas9又はCpf1の特定の種と適合性のgRNAだけでなく、任意のRNA誘導ヌクレアーゼと共に使用され得る任意の適切なgRNAを包含するものと理解されるべきである。例として、gRNAという用語は、特定の実施形態では、II型又はV型などのクラス2 CRISPRシステム又はCRISPRシステムに存在する任意のRNA誘導ヌクレアーゼと共に、又はそれに由来するか、又はそれから適合化されたRNA誘導ヌクレアーゼと共に、使用するためのgRNAを含み得る。
本開示は、表2~9及び19で提供されるgRNAのいずれか1つの配列を含むgRNA分子及びその組成物を提供する。本開示は、表2~9及び19に記載されるgRNAの配列を含む1つ又は複数のgRNAを含む組成物及びその組成物をさらに提供する。本開示は、表18で提供される染色体領域(例えば、ゲノム座標)を標的とするgRNA及びその組成物を提供する。
本開示は、例えば、細胞集団において、標的部位に約10%を超える編集をもたらすgRNAを提供する。例えば、限定されるものではないが、本開示のgRNAは、例えば、細胞集団において標的部位において、約15%を超える編集、約20%を超える編集、約25%を超える編集、約30%を超える編集、約35%を超える編集、約40%を超える編集、約45%を超える編集、約50%を超える編集、約55%を超える編集、約60%を超える編集、約65%を超える編集、約70%を超える編集、約75%を超える編集、約80%を超える編集、約85%を超える編集、約90%を超える編集、約95%を超える編集、約96%を超える編集、約97%を超える編集、約98%を超える編集又は約99%を超える編集をもたらす。
gRNA設計
標的配列の選択及び検証並びにオフターゲット分析の方法は、例えば、Mali;Hsu;Fu et al.,2014 Nat biotechnol 32(3):279-84,Heigwer etal.,2014 Nat methods 11(2):122-3;Bae et al.(2014)Bioinformatics 30(10):1473-5;及びXiao A et al.(2014)Bioinformatics 30(8):1180-1182に以前記載されている。これらの参考文献のそれぞれは、参照により本明細書に援用される。非限定的例として、gRNA設計は、例えば、ゲノム全体にわたる総オフターゲット活性を最小化するために、使用者の標的配列に対応する潜在的な標的配列の選択を最適化するためのソフトウェアツールの使用を伴い得る。オフターゲット活性は切断に限定されないものの、各オフターゲット配列における切断効率は、例えば、実験的に導出された重み付けスキームを用いて予測され得る。これらの及び他のガイド選択方法は、Maeder及びCotta-Ramusinoらに詳細に記載されている。
gRNA修飾
gRNAの活性、安定性又は他の特徴は、特定の修飾を組み込むことによって改変され得る。一例として、一過性に発現又は送達された核酸は、例えば、細胞ヌクレアーゼによる分解を起こし易くあり得る。したがって、本明細書に記載のgRNAは、ヌクレアーゼに対して安定性を導入する、1つ又は複数の修飾されたヌクレオシド又はヌクレオチドを含み得る。理論による拘束は望まないが、本明細書に記載の特定の修飾gRNAは、細胞に導入された際に、先天性免疫応答の低下を示し得るとも考えられている。当業者は、外因性核酸、特にウイルス又は細菌起源のものに応答して、例えば哺乳類細胞などの細胞において一般的に観察される特定の細胞応答を承知している。サイトカインの発現及び放出の誘導並びに細胞死を含み得るそのような応答は、本明細書に提示される修飾によって低下し又は完全に排除され得る。
このセクションで論じられる特定の例示的な修飾は、限定されるものではないが、5’末端又はその付近(例えば、5’末端の1~10、1~5又は1~2ヌクレオチド以内)及び/又は3’末端又はその付近(例えば、3’末端の1~10、1~5又は1~2ヌクレオチド以内)などのgRNA配列中の任意の位置に含まれ得る。場合により、修飾は、Cas9 gRNAのリピート:アンチリピート二重鎖、Cas9又はCpf1 gRNAのステムループ構造及び/又はgRNAの標的化ドメインなどの機能的モチーフ内に位置する。
一例として、gRNAの5’末端は、以下で示されるような、真核生物のmRNAキャップ構造又はGキャップ類似体(例えば、G(5’)ppp(5’)Gキャップ類似体、m7G(5’)ppp(5’)Gキャップ類似体又は3’-O-Me-m7G(5’)ppp(5’)G抗キャップ類似体(ARCA))を含み得る。
Figure 2024023294000027
キャップ又はキャップ類似体は、gRNAの化学合成又はインビトロ転写中に含まれ得る。
似たような路線で、gRNAの5’末端には5’三リン酸基が欠如し得る。例えば、インビトロ転写gRNAを(例えば、仔ウシ腸アルカリホスファターゼを使用することで)ホスファターゼ処理して、5’三リン酸基が除去され得る。
別の一般的な修飾は、gRNAの3’末端に、ポリAトラクトと称される複数の(例えば、1~10、10~20又は25~200個の)アデニン(A)残基を付加することを伴う。ポリA配列は、ポリアデノシンポリメラーゼ(例えば、大腸菌(E.coli)ポリ(A)ポリメラーゼ)を使用したインビトロ転写に続く化学合成中に又はMaederに記載されるようにインビボでポリアデニル化配列によってgRNAに付加され得る。
本明細書に記載の修飾は任意の適切な方法で組み合わされ得、例えばインビボでDNAベクターから転写されるか、又はインビトロで転写されたgRNAは、5’キャップ構造又はキャップ類似体のいずれか又は両方と、3’ポリA配列とを含み得ることに留意すべきである。
ガイドRNAは、3’末端Uリボースで修飾され得る。例えば、Uリボースの2つの末端ヒドロキシル基が、アルデヒド基に酸化され得、同時のリボース環の開環が、下に示される修飾ヌクレオシドをもたらし、
Figure 2024023294000028
式中、「U」は、未修飾又は修飾ウリジンであり得る。
3’末端Uリボースは、以下で示されるように2’3’環状リン酸エステルで修飾され得、
Figure 2024023294000029
式中、「U」は、未修飾又は修飾ウリジンであり得る。
ガイドRNAは、例えば、本明細書に記載の修飾ヌクレオチドの1つ又は複数を組み込むことによって分解に対して安定化され得る、3’ヌクレオチドを含有し得る。特定の実施形態では、ウリジンは、例えば、5-(2-アミノ)プロピルウリジン及び5-ブロモウリジン又は本明細書に記載されるいずれかの修飾ウリジンなどの修飾ウリジンで置換され得;アデノシン及びグアノシンは、例えば、8-ブロモグアノシンなどの例えば8位が修飾された修飾アデノシン及びグアノシン又は本明細書に記載されるいずれかの修飾アデノシン又はグアノシンによって置換され得る。
特定の実施形態では、糖修飾リボヌクレオチドがgRNAに組み込まれ得、例えば、2’OH基が、H、-OR、-R(式中、Rは、例えば、アルキル、シクロアルキル、アリール、アラルキル、ヘテロアリール又は糖であり得る)、ハロ、-SH、-SR(式中、Rは、例えば、アルキル、シクロアルキル、アリール、アラルキル、ヘテロアリール又は糖であり得る)、アミノ(式中、アミノは、例えば、NH;アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ、ジヘテロアリールアミノ又はアミノ酸であり得る);又はシアノ(-CN)から選択される基によって置換される。特定の実施形態では、リン酸骨格は、例えば、ホスホロチオエート(PhTx)基で、本明細書に記載されるように修飾され得る。特定の実施形態では、gRNAのヌクレオチドの1つ又は複数は、それぞれ独立して、2’-O-メチル、2’-O-メトキシエチルなどの2’-糖修飾又は例えば2’-F若しくは2’-O-メチル、アデノシン(A)、2’-F若しくは2’-O-メチル、シチジン(C)、2’-F若しくは2’-O-メチル、ウリジン(U)、2’-F若しくは2’-O-メチル、チミジン(T)1,2’-F若しくは2’-O-メチル、グアノシン(G)をはじめとする2’-フルオロ修飾、2’-O-メトキシエチル-5-メチルウリジン(Teo)、2’-O-メトキシエチルアデノシン(Aeo)、2’-O-メトキシエチル-5-メチルシチジン(m5Ce0)及びそれらの任意の組み合わせをはじめとするが、これに限定されるものではない、修飾又は未修飾ヌクレオチドであり得る。
ガイドgRNAは、「ロックド」核酸(LNA)も含み得、その中で、2’OH基は、例えば、同一リボース糖の4’炭素へのC1~6アルキレン又はC1~6ヘテロアルキレン架橋によって結合され得る。このような架橋を提供するために、限定されるものではないが、メチレン、プロピレン、エーテル又はアミノ架橋;O-アミノ(式中、アミノは、例えば、NH;アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ又はジヘテロアリールアミノ、エチレンジアミン又はポリアミノであり得る)及びアミノアルコキシ又はO(CH-アミノ(式中、アミノは、例えば、NH;アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ又はジヘテロアリールアミノ、エチレンジアミン又はポリアミノであり得る)をはじめとする任意の適切な部分が使用され得る。
特定の実施形態では、gRNAは、多環である修飾ヌクレオチド(例えば、トリシクロ;及びグリコール核酸(GNA)などの「アンロックド」形態(例えば、その中でリボースがリン酸ジエステル結合に付着するグリコール単位で置換される、R-GNA又はS-GNA)又はトレオース核酸(その中でリボースがα-L-トレオフラノシル-(3’→2’)で置換される、TNA)を含み得る。
一般に、gRNAは、酸素を有する5員環の糖類であるリボースを含む。代表的な修飾gRNAとしては、限定されるものではないが、リボース中の酸素の置換(例えば、イオウ(S)、セレン(Se)又は例えばメチレン又はエチレンなどのアルキレンによる);二重結合の付加(例えば、リボースをシクロペンテニル又はシクロヘキセニルで置換する);リボース環縮小(例えば、シクロブタン又はオキセタンの4員環を形成する);リボース環拡大(例えば、アンヒドロヘキシトール、アルトリトール、マンニトール、シクロヘキサニル、シクロヘキセニル及びホスホロアミダート骨格も有するモルホリノなどの追加的な炭素又はヘテロ原子を有する6又は7員環を形成する)が挙げられる。糖類似体改変の大部分は2’位に局在するが、4’位をはじめとする他の部位も修飾を受け入れやすい。特定の実施形態では、gRNAは、4’-S、4’-Se又は4’-C-アミノメチル-2’-O-Me修飾を含む。
特定の実施形態では、例えば、7-デアザ-アデノシンなどのデアザヌクレオチドがgRNAに組み込まれ得る。特定の実施形態では、例えば、N6-メチルアデノシンなどのO-及びN-アルキル化ヌクレオチドがgRNAに組み込まれ得る。特定の実施形態では、gRNA中の1つ又は複数の又は全てのヌクレオチドが、デオキシリボヌクレオチドである。
特定の実施形態では、gRNAは、その内容全体が参照により本明細書に援用される整理番号PCT/米国特許出願公開第17/69019号明細書を有する国際特許出願に記載されるものから選択される1つ又は複数のリンカー及び/又はgRNA合成のプロセスを含むであろう。
RNA誘導ヌクレアーゼ
本開示によるRNA誘導ヌクレアーゼとしては、Cpf1などの天然に存在するクラス2CRISPRヌクレアーゼ並びに例えば変異型などのそれから誘導されるか又はそれから得られる他のヌクレアーゼが挙げられるが、これらに限定されない。RNA誘導ヌクレアーゼは、機能的にも定義され得る。例えば、RNA誘導ヌクレアーゼは、(a)gRNAと相互作用し(例えば、複合体形成し);及び(b)gRNAと一緒に、(i)gRNAの標的化ドメインに相補的な配列、及び任意選択的に(ii)下でより詳細に記載される、「プロトスペーサー隣接モチーフ」又は「PAM」と称される追加的な配列を含むDNAの標的領域と結合し、任意選択的に切断又は修飾するヌクレアーゼとして定義される。以下の実施例が例証するように、たとえ同一PAM特異性又は切断活性を共有する個々のRNA誘導ヌクレアーゼ間に変動が存在し得るとしても、RNA誘導ヌクレアーゼは、広い意味で、それらのPAM特異性及び切断活性によって定義され得る。当業者は、本開示のいくつかの態様が、特定のPAM特異性及び/又は切断活性を有する任意の適切なRNA誘導ヌクレアーゼを使用して実装され得るシステム、方法及び組成物に関することを理解するであろう。この理由から、別段の指定がない限り、RNA誘導ヌクレアーゼという用語は総称として理解されるべきであり、RNA誘導ヌクレアーゼのいかなる特定の型(例えば、Cas9と対比したCpf1)、種(例えば、S.ピオゲネス(S.pyogenes)と対比したS.アウレウス(S.aureus))又はバリエーション(例えば、完全長と対比した短縮型又は分割;天然PAM特異性と対比した操作されたPAM特異性など)にも限定されない。
PAM配列は、gRNA標的化ドメイン(又は「スペーサー」)に相補的な「プロトスペーサー」配列とのその配列関係からその名称を取っている。プロトスペーサー配列と共に、PAM配列は、特定のRNA誘導ヌクレアーゼ/gRNAの組み合わせのための標的領域又は配列を規定する。
様々なRNA誘導ヌクレアーゼは、PAMとプロトスペーサーとの間の異なる配列関係を必要とし得る。一般に、Cas9は、プロトスペーサーの3’であるPAM配列を認識する。他方、Cpf1は、一般にプロトスペーサーの5’であるPAM配列を認識する。
PAM及びプロトスペーサーの特定の配列の向きを認識することに加えて、RNA誘導ヌクレアーゼは、特定のPAM配列も認識し得る。例えば、S.アウレウス(S.aureus)Cas9は、NNGRRT又はNNGRRVのPAM配列を認識し、その中ではN残基が、gRNA標的化ドメインによって認識される領域の3’に隣接する。S.ピオゲネス(S.pyogenes)Cas9は、NGG PAM配列を認識する。また、F.ノビシダ(F.novicida)Cpf1は、TTN PAM配列を認識する。PAM配列は様々なRNA誘導ヌクレアーゼについて同定されており、新規PAM配列を同定するためのストラテジーは、Shmakov et al.,2015,Molecular Cell 60,385-397,November 5,2015によって記載されている。操作されたRNA誘導ヌクレアーゼは、参照分子のPAM特異性とは異なるPAM特異性を有し得ることにも留意すべきである(例えば、操作されたRNA誘導ヌクレアーゼの場合、参照分子はRNA誘導ヌクレアーゼがそれに由来する天然に存在する変異型であり得るか、又は操作されたRNA誘導ヌクレアーゼとの最大アミノ酸配列相同性を有する天然に存在する変異型であり得る)。
それらのPAM特異性に加えて、RNA誘導ヌクレアーゼは、それらのDNA切断活性によって特徴付けられ得、天然RNA誘導ヌクレアーゼは、典型的には標的核酸中でDSBを形成するが、SSBのみを生じるか又は全く切断しない、操作された変異型が生成されている(上で論じた)Ran&Hsu,et al.,Cell 154(6),1380-1389,September 12,2013(Ran)、参照により本明細書に援用される)。
Cpf1
crRNAと、TTTN PAM配列などの二本鎖(ds)DNA標的と複合体形成したアシダミノコッカス属(Acidaminococcus)種Cpf1の結晶構造が、Yamano et al.(Cell.2016 May 5;165(4):949-962(Yamano)、参照により本明細書に援用される)によって解析されている。Cas9と同様に、Cpf1には、REC(認識)ローブとNUC(ヌクレアーゼ)ローブの2つのローブがある。RECローブはREC1及びREC2ドメインを含み、これらはいかなる既知のタンパク質構造とも類似性がない。その一方で、NUCローブは、3つのRuvCドメイン(RuvC-I、-II及び-III)と1つのBHドメインとを含む。しかし、Cas9とは対照的に、Cpf1 RECローブはHNHドメインを欠いており、既知のタンパク質構造との類似性を欠く他のドメイである、構造的にユニークなPIドメインと、3つのウェッジ(WED)ドメイン(WED-I、-II及び-III)と、ヌクレアーゼ(Nuc)ドメインとを含む。
Cas9及びCpf1が構造及び機能において類似性を共有する一方で、特定のCpf1活性はいずれのCas9ドメインにも類似していない、構造ドメインによって媒介されることを理解すべきである。例えば、標的DNAの相補鎖の切断は、Cas9のHNHドメインとは配列的及び空間的に異なる、Nucドメインによって媒介されるようである。さらに、Cpf1 gRNAの非標的化部分(ハンドル)は、Cas9 gRNA中のリピート:アンチリピート二重鎖によって形成されるステムループ構造ではなく、むしろ偽結び目構造を取る。
RNA誘導ヌクレアーゼの修飾
上述したRNA誘導ヌクレアーゼは、様々な用途に有用であり得る活性及び特性を有するが、当業者は、RNA誘導ヌクレアーゼも場合により修飾されて、切断活性、PAM特異性又は他の構造的若しくは機能的特徴が改変され得ることを認識するであろう。
まず、切断活性を改変する修飾に目を向けると、NUCローブ内のドメインの活性を低減又は排除する変異が上に記載されている。RuvCドメイン、Cas9 HNHドメイン又はCpf1 Nucドメインに生成され得る例示的な変異は、Ran and Yamano及びCotta-Ramusinoに記載されている。一般に、2つのヌクレアーゼドメインの1つの活性を低減又は排除する変異は、ニッカーゼ活性を有するRNA誘導ヌクレアーゼをもたらすが、ニッカーゼ活性の種類は、いずれのドメインが不活性化されるかによって変化することに留意すべきである。一例として、Cas9のRuvCドメインの不活性化は、相補鎖又は上部鎖を切断するニッカーゼをもたらす。他方、Cas9 HNHドメインの不活性化は、下部鎖又は非相補鎖を切断するニッカーゼをもたらす。
天然に存在するCas9参照分子と比較したPAM特異性の修飾は、Kleinstiver et al.により、S.ピオゲネス(S.pyogenes)(Kleinstiver et al.,Nature.2015 Jul 23;523(7561):481-5(Kleinstiver I)及びS.アウレウス(S.aureus)(Kleinstiver et al.,Nat Biotechnol.2015 Dec;33(12):1293-1298(Klienstiver II))の両方について記載されている。Kleinstiver et al.は、Cas9の標的化忠実度を改善する修飾についても記載している(Nature,2016 January 28;529,490-495(Kleinstiver III))。天然に存在するCas9参照分子と比較したPAM特異性の修飾は、Kleinstiver et al.により、S.ピオゲネス(S.pyogenes)(Kleinstiver et al.,Nature.2015 Jul 23;523(7561):481-5(Kleinstiver I)の両方について記載されている。これらの参考文献のそれぞれは、参照により本明細書に援用される。
天然に存在するCpf1参照分子と比較したPAM特異性の修飾は、Gao et al.によって記載されている(参照により本明細書に援用されるGao et al.,Nat Biotechnol.2017 Aug;35(8):789-792)。特定の実施形態では、RNA誘導ヌクレアーゼは、例えば、AsCpf1変異型などのCpf1変異型であり得る。特定の実施形態では、Cpf1変異型は、S542R/K607Rバリエーションを含むAsCpf1変異型であり、それは、TYCV PAMを認識する。特定の実施形態では、Cpf1変異型は、S542R/K548V/N552Rバリエーションを含むAsCpf1変異型であり、それは、TATV PAMを認識する。
RNA誘導ヌクレアーゼは、Zetsche et al.(Nat Biotechnol.2015Feb;33(2):139-42(Zetsche II)、参照により援用される)及びFine et al.(Sci Rep.2015 Jul1;5:10777(Fine)、参照により援用される)によって記載されるように、2つ以上の部分に分割される。
RNA誘導ヌクレアーゼは、特定の実施形態では、例えば、gRNA結合、標的及びPAM認識並びに切断活性をなおも維持しながら、ヌクレアーゼのサイズを低下させる1つ又は複数の欠失を通じて、サイズ最適化又は短縮され得る。特定の実施形態では、RNA誘導ヌクレアーゼは、任意選択でリンカーにより、別のポリペプチド、ヌクレオチド又は他の構造に共有結合的に又は非共有結合的に結合する。例示的な結合ヌクレアーゼ及びリンカーは、本明細書におけるあらゆる目的のために参照により援用される、Guilinger et al.,Nature Biotechnology 32,577-582(2014)によって記載される。
RNA誘導ヌクレアーゼは、任意選択的に、核局在化シグナルをはじめとするが、これに限定されるものではない標識を含んで、核内へのRNA誘導ヌクレアーゼタンパク質の移動も容易にする。特定の実施形態では、RNA誘導ヌクレアーゼは、C末端及び/又はN末端の核局在化シグナルを組み込み得る。核局在化配列は、当該技術分野で公知であり、Maeder及び他の箇所に記載される。
前述の修飾のリストは、本質的に例示的であることを意図しており、当業者は、本開示に鑑みて、他の修正が特定の用途において可能であるか、又は望ましいことがあり得ることを理解するであろう。したがって、簡潔さのために、本開示の例示的なシステム、方法及び組成物は、特定のRNA誘導ヌクレアーゼを参照して提示されるが、使用されるRNA誘導ヌクレアーゼはそれらの動作原理を変えない様式で改変され得るものと理解されるべきである。このような改変は、本開示の範囲内である。
RNA誘導ヌクレアーゼをコードする核酸
例えば、Cpf1又はその機能性断片などのRNA誘導ヌクレアーゼをコードする核酸が、本明細書で提供される。RNA誘導ヌクレアーゼをコードする例示的な核酸が、以前記載されている(例えば、Cong 2013;Wang 2013;Mali 2013;Jinek 2012を参照されたい)。
場合により、RNA誘導ヌクレアーゼをコードする核酸は、合成核酸配列であり得る。例えば、合成核酸分子は化学修飾され得る。特定の実施形態では、RNA誘導ヌクレアーゼをコードするmRNAは、以下の特性の1つ又は複数の(例えば、全て)を有するであろう:それはキャップされ得;ポリアデニル化され得;5-メチルシチジン及び/又はプソイドウリジンで置換され得る。
合成核酸配列もコドン最適化され得、例えば、少なくとも1つの一般的でないコドン又はそれほど一般的でないコドンが、一般的なコドンによって置き換えられる。例えば、合成核酸は、例えば、本明細書に記載される哺乳類発現系内での発現のために最適化された、最適化メッセンジャーmRNAの合成を誘導し得る。コドン最適化されたCas9コード配列の例は、Cotta-Ramusinoに提示されている。
さらに又は代わりに、RNA誘導ヌクレアーゼをコードする核酸は、核局在化配列(NLS)を含み得る。核局在化配列は、当該技術分野で公知である。
候補分子の機能解析
候補RNA誘導ヌクレアーゼ、gRNA及びそれらの複合体は、当該技術分野で公知の標準法によって評価され得る。例えば、Cotta-Ramusinoらを参照されたい。RNP複合体の安定性は、下述される示差走査型蛍光定量法によって評価され得る。
示差走査型蛍光定量法(DSF)
gRNA及びRNA誘導ヌクレアーゼを含むリボ核タンパク質(RNP)複合体の熱安定性は、DSFによって測定され得る。DSF技術は、例えば、gRNAなどの結合RNA分子の添加などの好ましい条件下で増加し得る、タンパク質の熱安定性を測定する。
DSFアッセイは、任意の適切なプロトコルに従って実施され得、限定されるものではないが、(a)異なる条件(例えば、異なる化学量論比のgRNA:RNA誘導ヌクレアーゼタンパク質、異なる緩衝液など)を試験して、RNP形成のための最適条件を同定すること;及び(b)RNA誘導ヌクレアーゼ及び/又はgRNAの修飾(例えば、化学修飾、配列改変など)を試験して、RNP形成又は安定性を改善する修飾を同定することをはじめとする、任意の適切な設定で使用され得る。DSFアッセイの1つの読み取りは、RNP複合体の融解温度の変化であり;比較的高い変化は、RNP複合体が、より低い変化によって特徴付けられる標準RNP複合体と比較して、より安定している(したがってより大きい活性又はより好ましい形成動態、分解動態又は別の機能特性を有し得る)ことを示唆する。DSFアッセイがスクリーニングツールとして展開される場合、閾値融解温度変化が特定され得、それにより、結果は、閾値以上の融解温度変化を有する1つ又は複数のRNPである。例えば、閾値は、5~10°C(例えば、5℃°、6℃、7℃、8℃、9℃、10℃)又はそれを超えるものであり得、結果は、閾値以上の融解温度変化によって特徴付けられる1つ又は複数のRNPであり得る。
DSFアッセイ条件の2つの非限定的例は、下記の通りである(条件は、Cas9の使用を参照する一方、Cpf1に関しても同様の条件を用い得る)。
RNP複合体を形成するための最良の溶液を判定するために、水中の固定濃度(例えば、2μM)のCas9+10×SYPRO Orange(登録商標)(Life Technologies、カタログ番号S-6650)を384ウェルプレート内に分注する。次に、様々なpH及び塩を有する溶液中に希釈された、等モル量のgRNAを添加する。室温で10分間インキュベートし、短時間遠心分離してあらゆる気泡を除去した後、Bio-Rad CFXマネージャーソフトウエアと共に、Bio-Rad CFX384(商標)リアルタイムシステムC1000 Touch(商標)サーマルサイクラーを使用して、20℃から90℃まで、10秒毎に1℃の増分で勾配を実行する。
第2のアッセイは、様々な濃度のgRNAを、上記のアッセイ1からの最適緩衝液中の固定濃度(例えば、2μM)のCas9iに混合し、384ウェルプレート内で(例えば、室温で10分間)インキュベートすることからなる。等容積の最適緩衝液+10×SYPRO Orange(登録商標)(Life Technologies、カタログ番号S-6650)を添加し、プレートをMicroseal(登録商標)B接着剤(MSB-1001)で密封する。短時間遠心分離してあらゆる気泡を除去した後、Bio-Rad CFXマネージャーソフトウエアと共に、Bio-Rad CFX384(商標)リアルタイムシステムC1000 Touch(商標)サーマルサイクラーを使用して、20℃から90℃まで、10秒毎に1℃の増分で勾配を実行する。
ゲノム編集ストラテジー
上述したゲノム編集システムを使用して、本開示の様々な実施形態において、細胞内で又は細胞から得られたDNAの標的領域内で編集する(すなわち修飾する)。特定の編集をするための様々なストラテジーが本明細書に記載され、これらのストラテジーは、一般に所望の修復結果、個々の編集(例えば、SSB又はDSB)の数と位置及びこのような編集の標的部位によって記述される。
SSB又はDSBの形成を伴うゲノム編集ストラテジーは、(a)標的領域の全部又は一部の欠失;(b)標的領域の全部又は一部内への挿入又はその置換;又は(c)標的領域の全部又は一部の中断をはじめとする修復結果によって特徴付けられる。このグループ分けは、任意の特定の理論又はモデルを制限することも又はそれに拘束されることも意図されず、提示の経済性のためにのみ提供される。当業者は、列挙される結果が相互に排他的でなく、いくつかの修復が他の結果をもたらし得ることを理解するであろう。特定の編集ストラテジー又は方法の説明は、別段の指定がない限り、特定の修復結果を必要とすると理解されるべきではない。
標的領域の置換は、例えば、HDR経路によって媒介される2つの修復結果である、遺伝子修正又は遺伝子変換を通じた、相同配列による、標的領域内に存在する配列の全部又は一部の置換を一般に伴う。HDRは、以下でより詳細に記載されるように、一本鎖又は二本鎖であり得るドナー鋳型の使用によって促進される。一本鎖又は二本鎖鋳型は外因性であり得、その場合、それらは遺伝子修正を促進するか、又はそれらは内因性(例えば、細胞ゲノム中の相同配列)であり得、遺伝子変換を促進する。外因性鋳型は、例えば、Richardson et al.(Nature Biotechnology 34,339-344(2016)、(Richardson)、参照により援用される)によって記載されるように、非対称オーバーハングを有することができる(すなわち、DSBの部位に相補的な鋳型の部分は、鋳型内の中心に位置するのではなく、むしろ3’又は5’方向にオフセットされ得る)。鋳型が一本鎖である場合、それは標的領域の相補的(上部)又は非相補的(下部)鎖のいずれかに対応し得る。
Ran及びCotta-Ramusinoらに記載されるように、遺伝子変換及び遺伝子修正は、場合により、標的領域内又はその周囲に、1つ又は複数のニックを形成することによって促進される。場合により、二重ニッカーゼストラテジーを使用して、2つのオフセットSSBが形成され、次に、オーバーハング(例えば、5’オーバーハング)を有する単一のDSBが形成される。
標的配列の全部又は一部の中断及び/又は欠失は、様々な修復結果によって達成され得る。一例として、LCA10変異についてMaederに記載されているように、標的領域を挟む2つ以上のDSBを同時に生成することによって配列を欠失させ得、次にそれはDSBが修復される際に切除される。別の例として、配列は、一本鎖オーバーハングを有する二本鎖切断の形成と、それに続く修復前のオーバーハングのヌクレオチド末端加水分解プロセシングによって生成される欠失によって中断され得る。
標的配列中断の1つの特定のサブセットは、標的配列中のインデルの形成によって媒介され、その中では修復結果は典型的にはNHEJ経路(Alt-NHEJをはじめとする)によって媒介される。NHEJは、そのインデル変異との関連のために「誤りがちな」修復経路と称される。しかし、場合により、DSBはその周囲の配列の改変なしにNHEJによって修復され(いわゆる「完璧」又は「無瘢痕」修復);これは一般に、DSBの両端が完全にライゲートされることを必要とする。その一方で、インデルは、それらがライゲートされる前の遊離DNA末端の酵素的プロセシングから生じると考えられ、それは、片方又は両方の遊離末端の片方又は両方の鎖にヌクレオチドを付加し及び/又はそれから除去する。
遊離DSB末端の酵素的プロセシングは、本質的に確率論的であり得るため、インデル変異は変動する傾向があり、分布に沿って発生し、特定の標的部位、使用される細胞型、使用されるゲノム編集ストラテジーをはじめとする、様々な要因によって影響され得る。それでもなお、インデル形成について限定的に一般化することは可能であり:単一のDSBの修復によって形成される欠失は、最も一般的には1~50bpの範囲であるが、100~200bpを超えることもあり得る。単一のDSBの修復によって形成された挿入はより短くなる傾向があり、多くの場合に切断部位を直接取り囲む配列の短い重複を含む。しかし、大きい挿入を得ることが可能であり、これらの場合、挿入配列は、多くの場合、ゲノムの他の領域又は細胞内に存在するプラスミドDNAに由来が突き止められている。
インデル変異及びインデルを生成するように構成されたゲノム編集システムは、例えば、特定の最終配列の生成が必要でない場合及び/又はフレームシフト変異が耐容される場合、標的配列を中断するのに有用である。それらは、所望の特定の配列が所与の部位におけるSSB又はDSBの修復から優先的に生じる傾向がある限り、特定の配列が好ましい状況でも有用であり得る。インデル変異は、特定のゲノム編集システム及びそれらの構成要素の活性を評価又はスクリーニングするための有用なツールでもある。これらの及び他の設定では、インデルは、(a)ゲノム編集システムと接触される細胞のゲノムにおけるそれらの相対的及び絶対的頻度、及び(b)例えば、未編集の配列に対する±1、±2、±3などの数値的な差の分布によって特徴付けられ得る。一例として、リード発見設定では、複数のgRNAをスクリーニングして、制御された条件下でのインデル読み取りに基づいて、標的部位での切断を最も効率的に推進するgRNAが同定され得る。閾値頻度以上のインデルを生成するガイド又はインデルの特定の分布を生成するガイドが、さらなる研究及び開発のために選択され得る。インデルの頻度及び分布は、例えば、gRNAを一定に保ち、他の特定の反応条件又は送達方法を変化させることにより、異なるゲノム編集システムの実装又は製剤化及び送達方法を評価するための読み取りとしても有用であり得る。
多重ストラテジー
上記の例示的なストラテジーは、単一のDSBによって媒介される修復結果に焦点を合わせている一方で、本開示によるゲノム編集システムを使用して、同一遺伝子座又は異なる遺伝子座のいずれかで2つ以上のDSBが生成され得る。複数のDSB又はSSBの形成を含む編集ストラテジーは、例えば、Cotta-Ramusinoらに記載される。本明細書に記載されるように、本開示に包含される方法及び組成物を使用して、例えば2つ以上、3つ以上、4つ以上、5つ以上、6つ以上、7つ以上、8つ以上、9つ以上又は10以上のFAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子などの2つ以上のT細胞発現遺伝子を修飾することにより、T細胞の増殖、生存、持続性及び/又は機能に影響を及ぼし得る。
ドナー鋳型設計
ドナー鋳型設計は、例えば、Cotta-Ramusinoなどの文献に詳細に記載される。一本鎖(ssODN)又は二本鎖(dsODN)であり得るDNAオリゴマードナー鋳型(オリゴデオキシヌクレオチド又はODN)が、DSBのHDRに基づく修復を容易にするために使用され得、それは、標的DNA配列に修飾を導入し、新しい配列を標的配列に挿入するか、又は標的配列を完全に置換するのに特に有用である。
一本鎖であるか又は二本鎖であるかにかかわらず、ドナー鋳型は、切断される標的配列中の又はその付近の(例えば、側方の又は隣接している)DNA領域と相同的な領域を一般に含む。これらの相同領域は、本明細書「相同性アーム」と称され、下に概略的に示される。
[5’相同性アーム]--[置換配列]--[3’相同性アーム]
相同性アームは任意の適切な長さ(1つの相同性アームのみが使用される場合には皆無のヌクレオチドを含む)を有し得、3’及び5’相同性アームは、同じ長さを有し得るか又は長さが異なり得る。適切な相同性アーム長の選択は、Alu反復配列又は他の非常に一般的な要素などの特定の配列との相同性又はミクロ相同性を回避したいという願望などの様々な要因によって影響を受け得る。例えば、5’相同性アームが短縮されて配列反復要素が回避され得る。他の実施形態では、3’相同性アームが短縮されて配列反復要素が回避され得る。特定の実施形態では、5’及び3’相同性アームの両方が短縮されて、特定の配列反復要素の包含が回避され得る。さらに、いくつかの相同性アームデザインは、編集効率を改善し又は所望の修復結果の頻度を増加させ得る。例えば、参照により援用されるRichardson et al.Nature Biotechnology 34,339-344(2016)(Richardson)は、一本鎖ドナー鋳型の3’及び5’相同性アームの相対的非対称性が、修復率及び/又は結果に影響を及ぼすことを見いだした。
ドナー鋳型中の置換配列は、Cotta-Ramusinoらをはじめとする他の箇所に記載されている。置換配列は、任意の適切な長さ(所望の修復結果が欠失である場合には皆無のヌクレオチドを含む)であり得、典型的には、編集が所望される細胞内の天然配列に対して1、2、3個又はそれを超える配列修飾を含む。1つの一般的な配列修飾は、処置が所望される疾患又は病状に関連する変異を修復するための天然配列の改変を伴う。別の一般的な配列修飾は、SSB若しくはDSBを生成するために使用される、RNA誘導ヌクレアーゼのPAM配列又はgRNAの標的化ドメインに、相補的であり又はそれをコードする1つ又は複数の配列を改変し、置換配列が標的部位に組み込まれた後に標的部位の反復切断を低減又は排除することを伴う。
直鎖ssODNが使用される場合、それは(i)標的核酸のニックの入った鎖にアニールされ、(ii)無傷の標的核酸鎖にアニールされ、(iii)標的核酸のプラス鎖にアニールされ、及び/又は(iv)標的核酸のマイナス鎖にアニールされるように構成され得る。ssODNは、例えば、約若しくは少なくとも150~200ヌクレオチド又はそれ以下(例えば、150、160、170、180、190又は200ヌクレオチド)などの任意の適切な長さを有し得る。
鋳型核酸は、ウイルスゲノムなどの核酸ベクター又は例えばプラスミドなどの環状二本鎖DNAでもあり得ることに留意すべきである。ドナー鋳型を含む核酸ベクターは、他のコーディング又は非コード要素を含み得る。例えば、鋳型核酸は、特定のゲノム骨格要素(例えば、AAVゲノムの場合には逆方向末端反復)を含み、任意選択的に、gRNA及び/又はRNA誘導ヌクレアーゼをコードする追加の配列を含むウイルスゲノムの一部として(例えばAAV又はレンチウイルスゲノム中で)送達され得る。特定の実施形態では、ドナー鋳型は、1つ又は複数のgRNAによって認識される標的部位に隣接するか又はそれに挟まれ、ドナー鋳型の一端又は両端における遊離DSBの形成を容易にし得、それは、同一gRNAを使用して細胞DNA中に形成された対応するSSB又はDSBの修復に関与し得る。ドナー鋳型として使用するのに適した例示的な核酸ベクターは、Cotta-Ramusino et al.に記載される。
どのような形態が使用されても、鋳型核酸は、望ましくない配列を回避するように設計され得る。特定の実施形態では、片方又は両方の相同性アームが短縮され、例えばAlu反復、LINE要素などの特定の配列反復要素との重複が回避され得る。
標的化組み込み
本開示は、細胞内の標的核酸の切断部位における切断分離事象時に生じる遺伝子編集事象の定量的評価を可能にするように特別に設計されたドナー鋳型を含むゲノム編集システムをさらに提供する。本明細書に記載のゲノム編集システムのドナー鋳型は、DNAオリゴデオキシヌクレオチド(ODN)であり、それは、一本鎖(ssODN)又は二本鎖(dsODN)であり得、二本鎖破断のHDRベースの修復を促進するために使用され得る。ドナー鋳型は、特に、標的DNA配列に修飾を導入するか、標的配列に新規配列を挿入するか、又は標的配列全体を置換するのに有用である。本開示は、カーゴ、1つ又は2つの相同性アーム及び1つ又は複数のプライミング部位を含むドナー鋳型を提供する。ドナー鋳型のプライミング部位は、標的核酸へのドナー鋳型の一部の組み込み頻度が容易に評価及び定量化され得るような様式で空間的に配置される。
図44A、44B及び44Cは、代表的なドナー鋳型と、これらのドナー鋳型の使用から得られた潜在的な標的化組み込み結果とを図解する概略図である。本明細書に記載の例示的ドナー鋳型の使用は、標的化核酸中の少なくとも1つのプライミング部位の標的化組み込みをもたらし、これは、標的細胞内の標的化核酸へのカーゴ(例えば、導入遺伝子)の標的化組み込みの頻度を判定するために配列決定され得るアンプリコンを生成するために使用され得る。
例えば、図44Aは、5’から3’方向に、第1の相同性アーム(A1)、第1のスタッファー配列(S1)、第2のプライミング部位(P2’)、カーゴ、第1のプライミング部位、第2のスタッファー配列及び第2の相同性アームを含む例示的ドナー鋳型を図示する。ドナー鋳型の第1の相同性アーム(A1)は、標的核酸の第1の相同性アームと実質的に同一である一方、ドナー鋳型の第2の相同性アーム(A2)は、標的核酸の第2の相同性アームと実質的に同一である。ドナー鋳型は、第2のプライミング部位(P2’)が標的核酸の第1のプライミング部位(P1)と実質的に同一であるように、且つ第1のプライミング部位(P1’)が標的核酸の第2のプライミング部位(P2)と実質的に同一であるように設計される。本明細書に記載のヌクレアーゼを使用した標的核酸の切断分離事象時、単一のプライマー対セットを使用して、標的核酸の切断部位周囲の核酸配列(すなわちP1及びP2間、P1及びP2’間並びにP1’及びP2間に存在する核酸)を増幅させ得る。有利には、標的化組み込みなし又は標的化組み込みありの切断分離事象から得られるアンプリコン(アンプリコンX、Y及びZとして示される)のサイズは、ほぼ同じである。アンプリコンは、次に、例えば配列決定又はプローブ配列へのハイブリダイゼーションによって評価され、標的化組み込みの頻度が判定され得る。
代わりに、図44B及び44Cは、カーゴ核酸配列から3’(図44B)又は5’(図44C)のいずれかに位置する単一プライミング部位を含む例示的ドナー鋳型を描写する。この場合も、本明細書に記載のヌクレアーゼを使用した標的核酸の切断分離事象時、これらの例示的ドナー鋳型は、ほぼ同じサイズの2つのアンプリコンが得られるように、単一のプライマー対を使用して、標的核酸の切断部位周囲の核酸配列が増幅され得るように設計される。ドナー鋳型のプライミング部位がカーゴ核酸から3’に位置する場合、非標的化組み込み事象に対応するアンプリコン又は標的化組み込み部位の5’接合部に対応するアンプリコンが増幅され得る。ドナー鋳型のプライミング部位がカーゴ核酸から5’に位置する場合、非標的化組み込み事象に対応するアンプリコン又は標的化組み込み部位の3’接合部に対応するアンプリコンが増幅され得る。これらのアンプリコンを配列決定して、標的化組み込みの頻度が判定され得る。
本開示によるドナー鋳型は、限定することなく、直線又は環状、裸の一本鎖又は二本鎖DNAをはじめとする任意の適切な様式で実装され得るか若しくはベクター内に含まれ得、且つ/又は(例えば、直接ハイブリダイゼーション若しくはスプリントハイブリダイゼーションによって)ガイドRNAと共有結合的若しくは非共有結合的に結合し得る。特定の実施形態では、ドナー鋳型はssODNである。直鎖ssODNが使用される場合、それは、(i)標的核酸のニックの入った鎖にアニールされ、(ii)無傷の標的核酸鎖にアニールされ、(iii)標的核酸のプラス鎖にアニールされ、且つ/又は(iv)標的核酸のマイナス鎖にアニールされるように構成され得る。ssODNは、例えば、約150~200ヌクレオチド又はそれを下回るもの(例えば、150、160、170、180、190又は200ヌクレオチド)などの任意の適切な長さを有し得る。他の実施形態では、ドナー鋳型は、dsODNである。特定の実施形態では、ドナー鋳型は、第1の鎖を含む。別の実施形態では、ドナー鋳型は、第1の鎖及び第2の鎖を含む。特定の実施形態では、ドナー鋳型は、例えば、細胞に天然に存在しないオリゴヌクレオチドなどの外因性オリゴヌクレオチドである。
ドナー鋳型は、ウイルスゲノム又は例えばプラスミドなどの環状二本鎖DNAなどの核酸ベクター内にも含まれ得ることに留意すべきである。特定の実施形態では、ドナー鋳型は、犬用の骨の形状のDNAであり得る(例えば、米国特許第9,499,847号明細書を参照されたい)。ドナー鋳型を含む核酸ベクターは、他のコーディング又は非コード要素を含み得る。例えば、ドナー鋳型核酸は、特定のゲノム骨格要素(例えば、AAVゲノムの場合には逆方向末端反復)を含み、任意選択的に、gRNA及び/又はRNA誘導ヌクレアーゼをコードする追加の配列を含むウイルスゲノムの一部として(例えば、AAV又はレンチウイルスゲノム中で)送達され得る。特定の実施形態では、ドナー鋳型は、1つ又は複数のgRNAによって認識される標的部位に隣接するか又はそれに挟まれ、ドナー鋳型の一端又は両端における遊離DSBの形成を容易にし得、それは、同一gRNAを使用して細胞DNA中に形成された対応するSSB又はDSBの修復に関与し得る。ドナー鋳型として使用するのに適した例示的な核酸ベクターは、Cotta-Ramusino et al.に記載される。
相同性アーム
一本鎖又は二本鎖を問わず、ドナー鋳型は、一般に、例えば、例えば切断部位などの切断される標的配列内の又はその近傍の(例えば、それを挟むか又はそれに隣接している)標的核酸などのDNAの領域と相同的な1つ又は複数の領域を含む。これらの相同領域は、本明細書では「相同性アーム」と称され、下に概略的に示される。
[5’相同性アーム]-[置換配列]-[3’相同性アーム]
本明細書に記載のドナー鋳型の相同性アームは、ドナー鋳型を必要とするDNA修復プロセスによる標的核酸の切断部位の効率的な分離を可能にするのに十分な長さである限り、任意の適切な長さであり得る。例えば、PCRによる相同性アーム増幅が望まれる特定の実施形態では、相同性アームは、増幅が実施され得るような長さである。相同性アームの配列決定が望まれる特定の実施形態では、相同性アームは、配列決定が実施され得るような長さである。アンプリコンの定量的評価が望まれる特定の実施形態では、相同性アームは、例えば、同様のG/C含有量、増幅温度などを有することにより、各アンプリコンの同様の増幅回数が達成されるような長さである。特定の実施形態では、相同性アームは、二本鎖である。特定の実施形態では、二本鎖相同性アームは、一本鎖である。
特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが50~250ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが50~2000ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが50~1500ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが50~1000ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが50~500ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが150~250ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが2000ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが1500ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが1000ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが700ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが650ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが600ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが550ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが500ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが400ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが300ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが250ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが200ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが150ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが100ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが50ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが250、200、190、180、170、160、150、140、130、120、110、100、90、80、70、60、50、49、48、47、46、45、44、43、42、41、40、39、38、37、36、35、34、33、32、31、30、29、28、27、26、25、24、23、22、21又は20ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも20ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも40ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも50ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも70ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも100ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも200ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも300ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも400ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも500ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも600ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも700ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも1000ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも1500ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも2000ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが約20ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが約40ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが250ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが約100ヌクレオチドである。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが約200ヌクレオチドである。
特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50~250ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50~2000ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50~1500ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50~1000ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50~500ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが150~250ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが2000ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが1500ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが1000ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが700ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが650ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが600ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが550ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが500ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが400ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが300ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが200ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが150ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが100ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが250、200、190、180、170、160、150、140、130、120、110、100、90、80、70、60、50、49、48、47、46、45、44、43、42、41、40、39、38、37、36、35、34、33、32、31、30、29、28、27、26、25、24、23、22、21又は20ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも20ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも40ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも50ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも70ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも100ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも200ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも300ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも400ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも500ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも600ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも700ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも1000ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも1500ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも2000ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが約20ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが約40ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが250ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが約100ヌクレオチドである。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが約200ヌクレオチドである。
特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが50~250塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが50~2000塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが50~1500塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが50~1000塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが50~500塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが150~250塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが2000塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが1500塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが1000塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが700塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが650塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが600塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが550塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが500塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが400塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが300塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが250塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが200塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが150塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが100塩基対未満である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが50塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが250、200、190、180、170、160、150、140、130、120、110、100、90、80、70、60、50、49、48、47、46、45、44、43、42、41、40、39、38、37、36、35、34、33、32、31、30、29、28、27、26、25、24、23、22、21又は20塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも20塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも40塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも50塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも70塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも100塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも200塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも300塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも400塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも500塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも600塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも700塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも1000塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも1500塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが少なくとも2000塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが約20塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが約40塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが250塩基対以下である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが約100塩基対である。特定の実施形態では、5’相同性アームは、長さが約200塩基対である。
特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50~250塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50~2000塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50~1500塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50~1000塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50~500塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが150~250塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが2000塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが1500塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが1000塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが700塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが650塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが600塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが550塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが500塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが400塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが300塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが250塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが200塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが150塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが100塩基対未満である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが250、200、190、180、170、160、150、140、130、120、110、100、90、80、70、60、50、49、48、47、46、45、44、43、42、41、40、39、38、37、36、35、34、33、32、31、30、29、28、27、26、25、24、23、22、21又は20塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも20塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも40塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも50塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも70塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも100塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも200塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも300塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも400塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも500塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも600塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも700塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも1000塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも1500塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが少なくとも2000塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが約20塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが約40塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが250塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが約100塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが約200塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが250塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが200塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが150塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが100塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが50塩基対以下である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが250、200、190、180、170、160、150、140、130、120、110、100、90、80、70、60、50、49、48、47、46、45、44、43、42、41、40、39、38、37、36、35、34、33、32、31、30、29、28、27、26、25、24、23、22、21又は20塩基対である。特定の実施形態では、3’相同性アームは、長さが40塩基対である。
5’及び3’相同性アームは、同じ長さであり得るか又は長さが異なり得る。特定の実施形態では、5’及び3’相同性アームは、増幅されて、標的核酸における標的化組み込みなどの遺伝子編集事象の定量的評価を可能にする。特定の実施形態では、遺伝子編集事象の定量的評価は、単一増幅反応で一対のPCRプライマー対を使用して、相同性アームの全体又は一部を増幅させることによる、標的化組み込み部位における5’接合部及び3’接合部の両方の増幅に依存し得る。したがって、5’及び3’相同性アームの長さは、異なり得るが、各相同性アームの長さは、必要に応じて、(例えば、PCRを使用して)増幅可能でなければならない。さらに、単一PCR反応において、5’相同性アームの増幅と、5’及び3’相同性アームの長さの差との両方が望まれる場合、5’及び3’相同性アームの長さの差は、一対のPCRプライマーを使用してPCR増幅可能でなければならない。
特定の実施形態では、5’及び3’相同性アームの長さには、75ヌクレオチドを超える差がない。したがって、特定の実施形態では、5’及び3’相同性アームの長さが異なる場合、相同性アーム間の長さの差は、70、60、50、40、30、20、10、9、8、7、6、5、4、3、2、1ヌクレオチド又は塩基対よりも小さい。特定の実施形態では、5’及び3’相同性アームは、長さが少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74又は75ヌクレオチドだけ異なる。特定の実施形態では、5’及び3’相同性アーム間の長さの差は、70、60、50、40、30、20、10、9、8、7、6、5、4、3、2、1塩基対未満である。特定の実施形態では、5’及び3’相同性アームは、長さが少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74又は75塩基対だけ異なる。
本開示のドナー鋳型は、切断部位を有する標的核酸との相同組換えを促進するように設計され、標的核酸は、5’から3’方向にP1--H1--X--H2--P2を含み、
ここで、P1は、第1のプライミング部位であり;H1は、第1の相同性アームであり;Xは、切断部位であり;H2は、第2の相同性アームであり;P2は、第2のプライミング部位であり;ドナー鋳型は、5’から3’方向にA1--P2’--N--A2又はA1--N--P1’--A2を含み、
ここで、A1は、H1と実質的に同一の相同性アームであり;P2’は、P2と実質的に同一のプライミング部位であり;Nは、カーゴであり;P1’は、P1と実質的に同一のプライミング部位であり;A2は、H2と実質的に同一の相同性アームである。特定の実施形態では、標的核酸は、二本鎖である。特定の実施形態では、標的核酸は、第1の鎖及び第2の鎖を含む。別の実施形態では、標的核酸は、一本鎖である。特定の実施形態では、標的核酸は、第1の鎖を含む。
特定の実施形態では、ドナー鋳型は、5’から3’方向にA1--P2’--N--A2を含む。
特定の実施形態では、ドナー鋳型は、5’から3’方向にA1--P2’--N--P1’--A2を含む。
特定の実施形態では、標的核酸は、5’から3’方向にP1--H1--X--H2--P2を含み、
ここで、P1は、第1のプライミング部位であり;H1は、第1の相同性アームであり;Xは、切断部位であり;H2は、第2の相同性アームであり;P2は、第2のプライミング部位であり;ドナー鋳型の第1の鎖は、5’から3’方向にA1--P2’--N--A2又はA1--N--P1’--A2を含み、
ここで、A1は、H1と実質的に同一の相同性アームであり;P2’は、P2と実質的に同一のプライミング部位であり;Nは、カーゴであり;P1’は、P1と実質的に同一のプライミング部位であり;A2は、H2と実質的に同一の相同性アームである。
特定の実施形態では、ドナー鋳型の第1の鎖は、5’から3’方向にA1--P2’--N--P1’--A2を含む。
特定の実施形態では、ドナー鋳型の第1の鎖は、5’から3’方向にA1--N--P1’--A2を含む。
特定の実施形態では、A1は、長さが700塩基対以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが650塩基対以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが600塩基対以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが550塩基対以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが500塩基対以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが400塩基対以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが300塩基対以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが250塩基対未満である。特定の実施形態では、A1は、長さが200塩基対未満である。特定の実施形態では、A1は、長さが150塩基対未満である。特定の実施形態では、A1は、長さが100塩基対未満である。特定の実施形態では、A1は、長さが50塩基対未満である。特定の実施形態では、A1は、長さが250、200、190、180、170、160、150、140、130、120、110、100、90、80、70、60、50、49、48、47、46、45、44、43、42、41、40、39、38、37、36、35、34、33、32、31、30、29、28、27、26、25、24、23、22、21又は20塩基対である。特定の実施形態では、A1は、長さが40塩基対である。特定の実施形態では、A1は、長さが30塩基対である。特定の実施形態では、A1は、長さが20塩基対である。
特定の実施形態では、A2は、長さが700塩基対以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが650塩基対以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが600塩基対以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが550塩基対以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが500塩基対以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが400塩基対以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが300塩基対以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが250塩基対未満である。特定の実施形態では、A2は、長さが200塩基対未満である。特定の実施形態では、A2は、長さが150塩基対未満である。特定の実施形態では、A2は、長さが100塩基対未満である。特定の実施形態では、A2は、長さが50塩基対未満である。特定の実施形態では、A2は、長さが250、200、190、180、170、160、150、140、130、120、110、100、90、80、70、60、50、49、48、47、46、45、44、43、42、41、40、39、38、37、36、35、34、33、32、31、30、29、28、27、26、25、24、23、22、21又は20塩基対である。特定の実施形態では、A2は、長さが40塩基対である。特定の実施形態では、A2は、長さが30塩基対である。特定の実施形態では、A2は、長さが20塩基対である。
特定の実施形態では、A1は、長さが700ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが650ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが600ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが550ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが500ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが400ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが300ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A1は、長さが250ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、A1は、長さが200ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、A1は、長さが150ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、A1は、長さが100ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、A1は、長さが50ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、A1は、長さが250、200、190、180、170、160、150、140、130、120、110、100、90、80、70、60、50、49、48、47、46、45、44、43、42、41、40、39、38、37、36、35、34、33、32、31、30、29、28、27、26、25、24、23、22、21又は20ヌクレオチドである。特定の実施形態では、A1は、長さが少なくとも40ヌクレオチドである。特定の実施形態では、A1は、長さが少なくとも30ヌクレオチドである。特定の実施形態では、A1は、長さが少なくとも20ヌクレオチドである。
特定の実施形態では、A2は、長さが700ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが650塩基対以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが600ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが550ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが500ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが400ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが300ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、A2は、長さが250ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、A2は、長さが200ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、A2は、長さが150ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、A2は、長さが100ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、A2は、長さが50ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、A2は、長さが250、200、190、180、170、160、150、140、130、120、110、100、90、80、70、60、50、49、48、47、46、45、44、43、42、41、40、39、38、37、36、35、34、33、32、31、30、29、28、27、26、25、24、23、22、21又は20ヌクレオチドである。特定の実施形態では、A2は、長さが少なくとも40ヌクレオチドである。特定の実施形態では、A2は、長さが少なくとも30ヌクレオチドである。特定の実施形態では、A2は、長さが少なくとも20ヌクレオチドである。
特定の実施形態では、A1の核酸配列は、H1の核酸配列と実質的に同一である。特定の実施形態では、A1は、H1と同一であるか、又は1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39若しくは40ヌクレオチド以下だけ異なる配列を有する。特定の実施形態では、A1は、H1と同一であるか、又は1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39若しくは40塩基対以下だけ異なる配列を有する。
特定の実施形態では、A2の核酸配列は、H2の核酸配列と実質的に同一である。特定の実施形態では、A2は、H2と同一であるか、又は1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39若しくは40ヌクレオチド以下だけ異なる配列を有する。特定の実施形態では、A2は、H2と同一であるか、又は1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39若しくは40塩基対以下だけ異なる配列を有する。
どのような形式であれ、ドナー鋳型は、望ましくない配列を回避するように設計され得る。特定の実施形態では、片方又は両方の相同性アームが短縮され、例えばAlu反復、LINE要素などの特定の配列反復要素との重複が回避され得る。
プライミング部位
本明細書に記載のドナー鋳型は、標的核酸内のプライミング部位の配列と実質的に類似するか又はそれと同一であるが、ドナー鋳型内の相同性配列/相同性アームに対して異なる空間的順序又は配向にある配列を有する少なくとも1つのプライミング部位を含む。ドナー鋳型が標的核酸と相同的に組換えされる場合、プライミング部位は、有利には標的核酸に組み込まれ、その結果、組換え事象によって生じる修飾核酸配列の一部の増幅を可能にする。特定の実施形態では、ドナー鋳型は、少なくとも1つのプライミング部位を含む。特定の実施形態では、ドナー鋳型は、第1及び第2のプライミング部位を含む。特定の実施形態では、ドナー鋳型は、3つ以上のプライミング部位を含む。
特定の実施形態では、ドナー鋳型は、標的核酸内において、プライミング部位Pと実質的に同様であるか又は同一のプライミング部位P1’を含み、ドナー鋳型が標的核酸に組み込まれると、P1’は、P1の下流に組み込まれる。特定の実施形態では、ドナー鋳型は、第1のプライミング部位P1’及び第2のプライミング部位P2’を含み;P1’は、標的核酸内で第1のプライミング部位P1と実質的に同様であるか又は同一であり;P2’は、標的核酸内で第2のプライミング部位P2と実質的に同様であるか又は同一であり;P1及びP2は、実質的に同様でないか又は同一でない。特定の実施形態では、ドナー鋳型は、第1のプライミング部位P1’及び第2のプライミング部位P2’を含み;P1’は、標的核酸内で第1のプライミング部位P1と実質的に同様であるか又は同一であり;P2’は、標的核酸内で第2のプライミング部位P2と実質的に同様であるか又は同一であり;P2は、標的核酸上でP1の下流に位置し;P1及びP2は、実質的に同様でないか又は同一でなく;ドナー鋳型が標的核酸に組み込まれると、P1’は、P1の下流に組み込まれる。P2’は、P2の上流に組み込まれ、P2’は、P1の上流に組み込まれる。
特定の実施形態では、標的核酸は、第1のプライミング部位(P1)及び第2のプライミング部位(P2)を含む。標的核酸の第1のプライミング部位は、第1の相同性アーム内にあり得る。代わりに、標的核酸の第1のプライミング部位は、5’にあり、第1の相同性アームに隣接し得る。標的核酸の第2のプライミング部位は、第2の相同性アーム内にあり得る。代わりに、標的核酸の第2のプライミング部位は、3’にあり、第2の相同性アームに隣接し得る。
ドナー鋳型は、カーゴ配列、第1のプライミング部位(P1’)及び第2のプライミング部位(P2’)を含み得、P2’は、カーゴ配列の5’に位置し、P1’は、カーゴ配列の3’に位置し(すなわちA1--P2’--N--P1’--A2)、P1’は、P1と実質的に同一であり、P2’は、P2と実質的に同一である。このシナリオにおいて、P1’及びP1を標的とするオリゴヌクレオチドを含むプライマー対並びにP2’及びP2を含むオリゴヌクレオチドを使用して、標的化される遺伝子座が増幅され得、それにより同様のサイズの3つのアンプリコンが生成され、これを配列決定して標的化組み込みが生じたかどうかが判定され得る。第1のアンプリコン、アンプリコンXは、標的核酸における非標的化組み込みの結果として、P1及びP2間の核酸配列の増幅によって生じる。第2のアンプリコン、アンプリコンYは、標的核酸の標的化組み込み事象後にP1及びP2’間の核酸配列の増幅によって生じ、それによって5’接合部を増幅させる。第3のアンプリコン、アンプリコンZは、標的核酸の標的化組み込み事象後にP1’及びP2間の核酸配列の増幅によって生じ、それによって3’接合部を増幅させる。他の実施形態では、P1’は、P1と同一であり得る。さらに、P2’は、P2と同一であり得る。
特定の実施形態では、ドナー鋳型は、カーゴ及びプライミング部位(P1’)を含み、P1’は、カーゴ核酸配列の3’に位置し(rnpA1--N--P1’--A2)、P1’は、P1と実質的に同一である。このシナリオにおいて、P1’及びP1を標的とするオリゴヌクレオチドを含むプライマー対及びP2を標的とするオリゴヌクレオチドを使用して、標的化される遺伝子座が増幅され得、それにより同様のサイズの2つのアンプリコンが生成され、これを配列決定して標的化組み込みが生じたかどうかが判定され得る。第1のアンプリコン、アンプリコンXは、標的核酸における非標的化組み込みの結果として、P1及びP2間の核酸配列の増幅によって生じる。第2のアンプリコン、アンプリコンZは、標的核酸の標的化組み込み事象後にP1’及びP2間の核酸配列の増幅によって生じ、それによって3’接合部を増幅させる。他の実施形態では、P1’は、P1と同一であり得る。さらに、P2’は、P2と同一であり得る。
特定の実施形態では、標的核酸は、第1のプライミング部位(P1)及び第2のプライミング部位(P2)を含み、ドナー鋳型は、プライミング部位P2’を含み、P2’は、カーゴ核酸配列の5’に位置し(すなわちA1--P2’--N--A2)、P2’は、P2と実質的に同一である。このシナリオにおいて、P2’及びP2を標的とするオリゴヌクレオチドを含むプライマー対及びP1を標的とするオリゴヌクレオチドを使用して、標的化される遺伝子座が増幅され得、それにより同様のサイズの2つのアンプリコンが生成され、これを配列決定して標的化組み込みが生じたかどうかが判定され得る。第1のアンプリコン、アンプリコンXは、標的核酸における非標的化組み込みの結果として、P1及びP2間の核酸配列の増幅によって生じる。第2のアンプリコン、アンプリコンYは、標的核酸の標的化組み込み事象後にP1及びP2’間の核酸配列の増幅によって生じ、それによって5’接合部を増幅させる。他の実施形態では、P1’は、P1と同一であり得る。さらに、P2’は、P2と同一であり得る。
ドナー鋳型のプライミング部位は、標的核酸の一部の増幅及び/又は配列決定による、標的核酸における遺伝子編集事象の定量的評価が可能になる任意の長さであり得る。例えば、特定の実施形態では、標的核酸は、第1のプライミング部位(P1)を含み、ドナー鋳型は、プライミング部位(P1’)を含む。これらの実施形態では、P1’プライミング部位及びP1プライマー部位の長さは、単一のプライマーが両方のプライミング部位に特異的にアニールし得るような長さである(例えば、特定の実施形態では、P1’プライミング部位及びP1プライミング部位の長さは、いずれも同一の又は非常に良く類似したGC含有量を有するような長さである)。
特定の実施形態では、ドナー鋳型のプライミング部位は、長さが60ヌクレオチドである。特定の実施形態では、ドナー鋳型のプライミング部位は、長さが60ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、ドナー鋳型のプライミング部位は、長さが50ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、ドナー鋳型のプライミング部位は、長さが40ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、ドナー鋳型のプライミング部位は、長さが30ヌクレオチド未満である。特定の実施形態では、ドナー鋳型のプライミング部位は、長さが20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59又は60ヌクレオチドである。特定の実施形態では、ドナー鋳型のプライミング部位は、長さが60塩基対である。特定の実施形態では、ドナー鋳型のプライミング部位は、長さが60塩基対未満である。特定の実施形態では、ドナー鋳型のプライミング部位は、長さが50塩基対未満である。特定の実施形態では、ドナー鋳型のプライミング部位は、長さが40塩基対未満である。特定の実施形態では、ドナー鋳型のプライミング部位は、長さが30塩基対未満である。特定の実施形態では、ドナー鋳型のプライミング部位は、長さが20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59又は60塩基対である。
特定の実施形態では、標的核酸の切断部位における切断分離事象及び標的核酸によるドナー鋳型の相同組換えに際して、標的核酸の第1のプライミング部位(P1)と現在組み込まれたP2’プライミング部位との間の距離は、600塩基対以下である。特定の実施形態では、標的核酸の切断部位における切断分離事象及び標的核酸によるドナー鋳型の相同組換えに際して、標的核酸の第1のプライミング部位(P1)と現在組み込まれたP2’プライミング部位との間の距離は、550、500、450、400、350、300、250、200、150塩基対以下である。特定の実施形態では、標的核酸における切断分離事象及び標的核酸によるドナー鋳型の相同組換えに際して、標的核酸の第1のプライミング部位(P1)と現在組み込まれたP2’プライミング部位との間の距離は、600ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、標的核酸における切断分離事象及び標的核酸によるドナー鋳型の相同組換えに際して、標的核酸の第1のプライミング部位(P1)と現在組み込まれたP2’プライミング部位との間の距離は、550、500、450、400、350、300、250、200、150ヌクレオチド以下である。
特定の実施形態では、標的核酸は、第2のプライミング部位(P2)を含み、ドナー鋳型は、P2と実質的に同一のプライミング部位(P2’)を含む。特定の実施形態では、標的核酸における切断分離事象及び標的核酸によるドナー鋳型の相同組換えに際して、標的核酸の第2のプライミング部位(P2)と現在組み込まれたP1’プライミング部位との間の距離は、600塩基対以下である。特定の実施形態では、標的核酸における切断分離事象及び標的核酸によるドナー鋳型の相同組換えに際して、標的核酸の第2のプライミング部位(P2)と現在組み込まれたP1’プライミング部位との間の距離は、550、500、450、400、350、300、250、200、150塩基対以下である。特定の実施形態では、標的核酸における切断分離事象及び標的核酸によるドナー鋳型の相同組換えに際して、標的核酸の第2のプライミング部位(P2)と現在組み込まれたP1’プライミング部位との間の距離は、600ヌクレオチド以下である。特定の実施形態では、標的核酸における切断分離事象及び標的核酸によるドナー鋳型の相同組換えに際して、標的核酸の第2のプライミング部位(P2)と現在組み込まれたP1’プライミング部位との間の距離は、550、500、450、400、350、300、250、200、150ヌクレオチド以下である。
特定の実施形態では、P2’の核酸配列は、A1の核酸配列内に含まれる。特定の実施形態では、P2’の核酸配列は、A1の核酸配列に直接隣接する。特定の実施形態では、P2’の核酸配列は、Nの核酸配列に直接隣接する。特定の実施形態では、P2’の核酸配列は、Nの核酸配列内に含まれる。
特定の実施形態では、P1’の核酸配列は、A2の核酸配列内に含まれる。特定の実施形態では、P1’の核酸配列は、A2の核酸配列に直接隣接する。特定の実施形態では、P1’の核酸配列は、Nの核酸配列に直接隣接する。特定の実施形態では、P1’の核酸配列は、Nの核酸配列内に含まれる。
特定の実施形態では、P2’の核酸配列は、S1の核酸配列内に含まれる。特定の実施形態では、P2’の核酸配列は、S1の核酸配列に直接隣接する。特定の実施形態では、P1’の核酸配列は、S2の核酸配列内に含まれる。特定の実施形態では、P1’の核酸配列は、S2の核酸配列に直接隣接する。
カーゴ
本明細書に記載の遺伝子編集システムのドナー鋳型は、カーゴ(N)を含む。カーゴは、所望の結果を達成するために必要な任意の長さであり得る。例えば、カーゴ配列は、長さが2500塩基対未満又は2500ヌクレオチド未満であり得る。他の実施形態では、カーゴ配列は、12kb以下であり得る。他の実施形態では、カーゴ配列は、10kb以下であり得る。他の実施形態では、カーゴ配列は、7kb以下であり得る。他の実施形態では、カーゴ配列は、5kb以下であり得る。他の実施形態では、カーゴ配列は、4kb以下であり得る。他の実施形態では、カーゴ配列は、3kb以下であり得る。他の実施形態では、カーゴ配列は、2kb以下であり得る。他の実施形態では、カーゴ配列は、1kb以下であり得る。特定の実施形態では、カーゴは、長さが約5~10kbであり得る。別の実施形態では、カーゴは、長さが約1~5kbであり得る。別の実施形態では、カーゴは、長さが約0~1kbであり得る。例えば、例示的な実施形態では、カーゴは、長さが約1000、900、800、700、600、500、400、300、200又は100塩基対又はヌクレオチドであり得る。他の例示的実施形態では、カーゴは、長さが約100、90、80、70、60、50、40、30、20、10、9、8、7、6、5、4、3、2、1又は0塩基対又はヌクレオチドであり得る。当業者は、サイズ制限がある送達ビヒクル(例えば、アデノ随伴ウイルス(AAV)、アデノウイルス、レンチウイルス、組み込み欠損レンチウイルス(IDLV)又は単純ヘルペスウイルス(HSV)送達ビヒクルなどのウイルス送達ビヒクル)を使用してドナー鋳型を送達する際、カーゴを含めたドナー鋳型のサイズが送達システムのサイズ制限を超えてはならないことを容易に確認するであろう。
特定の実施形態では、カーゴは、置換配列を含む。特定の実施形態では、カーゴは、遺伝子配列のエクソンを含む。特定の実施形態では、カーゴは、遺伝子配列のイントロンを含む。特定の実施形態では、カーゴは、cDNA配列を含む。特定の実施形態では、カーゴは、転写調節エレメントを含む。特定の実施形態では、カーゴは、置換配列の逆相補体、遺伝子配列のエクソン、遺伝子配列のイントロン、cDNA配列又は転写調節エレメントを含む。特定の実施形態では、カーゴは、置換配列の一部、遺伝子配列のエクソン、遺伝子配列のイントロン、cDNA配列又は転写調節エレメントを含む。特定の実施形態では、カーゴは、導入遺伝子配列である。特定の実施形態では、カーゴは、標的核酸に欠失を導入する。特定の実施形態では、カーゴは、外因性配列を含む。他の実施形態では、カーゴは、内因性配列を含む。
ドナー鋳型中の置換配列は、Cotta-Ramusino et al.をはじめとする他の箇所に記載されている。置換配列は、任意の適切な長さ(所望の修復結果が欠失である場合には皆無のヌクレオチドを含む)であり得、典型的には、編集が所望される細胞内の天然配列に対して1つ、2つ、3つ又はそれを超える配列修飾を含む。1つの一般的な配列修飾は、治療が所望される疾患又は病状に関連する変異を修復するための天然配列の改変を伴う。別の一般的な配列修飾は、SSB又はDSBを生成するために使用される、RNA誘導ヌクレアーゼのPAM配列又はgRNAの標的化ドメインに相補的であるか又はそれをコードする1つ又は複数の配列を改変し、置換配列が標的部位に組み込まれた後に標的部位の反復切断を低減又は排除することを伴う。
編集される細胞型、標的核酸及び達成すべき効果に基づいて、所与の用途のために特定のカーゴが選択され得る。
例えば、特定の実施形態では、標的細胞内の選択された染色体遺伝子座で所望の遺伝子配列を「ノックイン」することが望ましい場合がある。このような場合、カーゴは、所望の遺伝子配列を含み得る。特定の実施形態では、遺伝子配列は、例えば、外因性タンパク質、オルソロガスタンパク質若しくは内因性タンパク質又はそれらの組み合わせなどの所望のタンパク質をコードする。
特定の実施形態では、カーゴは、野生型配列又は野生型配列に関して1つ又は複数の修飾を含む配列を含有し得る。例えば、細胞内の標的遺伝子の変異を修正することが望ましいいくつかの実施形態では、カーゴは、野生型配列を標的タンパク質に復元するように設計され得る。
他の実施形態では、標的細胞内の選択された染色体遺伝子座で、遺伝子配列を「ノックアウト」することも望ましいことがあり得る。このような場合、カーゴは、例えば、標的遺伝子配列のコード領域又は例えば標的遺伝子配列のプロモーター若しくはエンハンサーなどの標的遺伝子配列の発現制御領域などの標的遺伝子配列の発現を妨害する部位に組み込まれるように設計され得る。他の実施形態では、カーゴは、標的遺伝子配列を破壊するように設計され得る。例えば、特定の実施形態では、カーゴは、欠失、挿入、停止コドン又はフレームシフト変異を標的核酸に導入し得る。
特定の実施形態では、ドナーは、標的核酸配列の全部又は一部を欠失させるように設計される。特定の実施形態では、ドナーの相同性アームは、所望の欠失部位を挟むように設計され得る。特定の実施形態では、ドナーは、相同性アーム間にカーゴ配列を含有せず、ドナーの標的化組み込みに続いて、相同性アーム間に位置する標的核酸の一部の欠失をもたらす。他の実施形態では、ドナーは、標的核酸に相同的なカーゴ配列を含み、標的核酸配列の1つ又は複数のヌクレオチドがカーゴに存在しない。ドナーの標的組込みに続いて、標的核酸は、カーゴ配列に存在しない残基に欠失を含むであろう。欠失のサイズは、標的核酸のサイズと所望の効果に基づいて選択され得る。特定の実施形態では、ドナーは、標的組込みに続いて標的核酸に1~2000ヌクレオチドの欠失を導入するように設計される。他の実施形態では、ドナーは、標的組込みに続いて標的核酸に1~1000ヌクレオチドの欠失を導入するように設計される。他の実施形態では、ドナーは、標的組込みに続いて標的核酸に1~500ヌクレオチドの欠失を導入するように設計される。他の実施形態では、ドナーは、標的組込みに続いて標的核酸に1~100ヌクレオチドの欠失を導入するように設計される。例示的な実施形態では、ドナーは、標的組込みに続いて、標的核酸に約2000、1500、1000、900、800、700、600、500、400、300、200、100、90、80、70、60、50、40、30、20、15、10、9、8、7、6、5、4、3、2又は1ヌクレオチドの欠失を導入するように設計される。他の実施形態では、ドナーは、標的組込みに続いて、標的核酸から例えば約2000、3000、4000、5000、6000、7000、8000、9000、10,000ヌクレオチド以上の欠失などの2000ヌクレオチドを超える欠失を導入するように設計される。
特定の実施形態では、カーゴは、プロモーター配列を含み得る。他の実施形態では、カーゴは、標的細胞に内因性のプロモーターの制御下にある部位に組み込まれるように設計される。
特定の実施形態では、染色体配列は、不活性化されるが、外因性配列が発現されるように、外因性又はオルソロガスタンパク質又はポリペプチドをコードするカーゴが、タンパク質をコードする染色体配列に組み込まれ得る。他の実施形態では、カーゴ配列は、染色体配列の発現を変化させることなく、染色体配列に組み込まれ得る。これは、Rosa26遺伝子座、HPRT遺伝子座又はAAV遺伝子座などの「セーフハーバー」遺伝子座にカーゴを組み込むことによって達成され得る。
特定の実施形態では、カーゴは、疾患又は障害に関連するタンパク質をコードする。特定の実施形態では、カーゴは、タンパク質の野生型形態をコードし得るか、又は疾患又障害に罹患した対象においてタンパク質が欠損している場合、タンパク質の野生型形態の発現を回復するように設計される。他の実施形態では、カーゴは、疾患又は障害に関連するタンパク質をコードし、カーゴによってコードされるタンパク質は、タンパク質の改変バージョンが疾患又は障害の発症から保護するように少なくとも1つの修飾を含む。他の実施形態では、カーゴは、タンパク質の改変バージョンが疾患又は障害を引き起こすか又は増強するように、少なくとも1つの修飾を含むタンパク質をコードする。
特定の実施形態では、カーゴを使用して、1つの種からの遺伝子が異なる種のゲノムに挿入され得る。例えば、「ヒト化」動物モデル及び/又は「ヒト化」動物細胞は、例えば、マウス、ラット又は非ヒト霊長類種などの非ヒト動物種のゲノムへのヒト遺伝子の標的化組み込みを通じて生成され得る。特定の実施形態では、このようなヒト化動物モデル及び動物細胞は、1つ又は複数のヒトタンパク質をコードする組み込まれた配列を含有する。
別の実施形態では、カーゴは、穀物、果物又は野菜などの作物をはじめとする植物種に利益を与えるタンパク質をコードする。例えば、カーゴは、植物をより高い温度で栽培することを可能にするタンパク質をコードし得、収穫に続く貯蔵寿命の延長又は耐病性を付与し得る。特定の実施形態では、カーゴは、病気及び害虫への耐性を与えるタンパク質をコードし得る(例えば、Jones et al.(1994)Science 266:789(クラドスポリウム クラドスポリウム・フルブム(Cladosporium fulvum)耐性のためのトマトCf-9遺伝子のクローニング);Martin et al.(1993)Science 262:1432;Mindrinos et al.(1994)Cell 78:1089(シュードモナス・シリンガエ(Pseudomonas syringae)に対する耐性のためのRSP2遺伝子);国際公開第96/30517号パンフレット(大豆嚢胞線虫への耐性)参照されたい)。他の実施形態では、その内容全体が参照により本明細書に援用される米国特許出願公開第2013/0326645A1号明細書に記載されるように、カーゴは、除草剤への耐性をコードするタンパク質をコードし得る。別の実施形態では、カーゴは、例えば、限定することなく、例えばデンプンの分岐パターンを変化させる酵素をコードする遺伝子で植物を形質転換することによってもたらされる、脂肪酸代謝の改変、フィチン酸塩含有量の低下及び炭水化物組成の変化などの付加価値のある形質を植物細胞に与えるタンパク質をコードする(例えば、Shiroza et al.(1988)J.Bacteol.170:810(ストレプトコッカス属(Streptococcus)変異体フルクトシルトランスフェラーゼ遺伝子のヌクレオチド配列);Steinmetz et al.(1985)Mol.Gen.Genet.20:220(レバンスクラーゼ遺伝子);Pen et al.(1992)Bio/Technology 10:292(α-アミラーゼ);Elliot et al.(1993)Plant Molec.Biol.21:515(トマトインベルターゼ遺伝子のヌクレオチド配列);Sogaard et al.(1993)J.Biol.Chem.268:22480(大麦α-アミラーゼ遺伝子);及びFisher et al.(1993)Plant Physiol.102:1045(トウモロコシ内胚乳デンプン分枝酵素II)を参照されたい)。植物細胞における標的化組み込みに有用な他の例示的なカーゴは、その内容全体が参照により本明細書に援用される米国特許出願公開第2013/0326645A1号明細書に記載されている。
追加的なカーゴは、編集される細胞型、標的核酸及び達成すべき効果に基づいて、所与の用途のために当業者によって選択され得る。
スタッファー
特定の実施形態では、ドナー鋳型は、任意選択的に1つ又は複数のスタッファー配列を含み得る。一般に、スタッファー配列は、(a)本開示のドナー鋳型の標的部位への標的化組み込み及び本開示の特定の方法によるスタッファー配列を含むアンプリコンの引き続く増幅を促進する(又は阻害しない)が、(b)ドナー鋳型の別の部位への組み込みを推進することを回避するように選択されている異種又はランダムな核酸配列である。スタッファー配列は、例えば、相同性アームA1とプライマー部位P2’との間に配置され、ドナー鋳型配列が標的部位に組み込まれたときに生成されるアンプリコンのサイズが調節され得る。このようなサイズ調節を用いて、一例として、組み込まれた標的及び組み込まれていない標的部位によって生成されるアンプリコンのサイズの平衡が保たれ、その結果、各アンプリコンが単一のPCR反応で生成される効率の平衡が保たれ;続いて、これは、反応混合物中の2つのアンプリコンの相対存在量に基づいて、標的化組み込みの定量的評価を容易にし得る。
標的化組み込み及び増幅を容易にするために、スタッファー配列を選択して、DNA修復機構(例えば、相同組換えを介した)によって断部位の分離を妨げ得るか又は増幅を妨げ得る二次構造の形成が最小化され得る。特定の実施形態では、ドナー鋳型は、5’から3’方向にA1--S1--P2’--N--A2又はA1--N--P1’--S2--A2を含み;
ここで、S1は、第1のスタッファー配列であり、S2は、第2のスタッファー配列である。
特定の実施形態では、ドナー鋳型は、5’から3’方向にA1--S1--P2’--N--P1’--S2--A2を含み、
ここで、S1は、第1のスタッファー配列であり、S2は、第2のスタッファー配列である。
特定の実施形態では、スタッファー配列は、細胞全体のゲノムとほぼ同じグアニン-シトシン含有量(「GC含有量」)を含む。特定の実施形態では、スタッファー配列は、標的化される遺伝子座とほぼ同じGC含有量を含む。例えば、標的細胞がヒト細胞である場合、スタッファー配列は、約40%のGC含有量を含む。特定の実施形態では、スタッファー配列は、所望のGC含有量を含むランダム核酸配列を作成することによって設計され得る。例えば、40%のGC含有量を含むスタッファー配列を生成するために、次のヌクレオチドの分布を有する核酸配列が設計され得る:A=30%、T=30%、G=20%、C=20%。ゲノムのGC含有量又は標的遺伝子座のGC含有量を判定するための方法は、当業者に知られている。したがって、特定の実施形態では、スタッファー配列は、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、55%60%、65%、70%又は75%のGC含有量を含む。40±5%のGC含有量を有する例示的な2.0キロベーススタッファー配列が配列番号23~123として本明細書で提供される。
特定の実施形態では、第1のスタッファーは、配列番号23~123に記載される配列の少なくとも5、少なくとも10、少なくとも15、少なくとも20、少なくとも25、少なくとも30、少なくとも35、少なくとも40、少なくとも45、少なくとも50、少なくとも55、少なくとも60、少なくとも65、少なくとも70、少なくとも75、少なくとも80、少なくとも85、少なくとも90、少なくとも95、少なくとも100、少なくとも105、少なくとも110、少なくとも115、少なくとも120、少なくとも125、少なくとも130、少なくとも135、少なくとも140、少なくとも145、少なくとも150、少なくとも155、少なくとも160、少なくとも165、少なくとも170、少なくとも175、少なくとも180、少なくとも185、少なくとも190、少なくとも195、少なくとも200、少なくとも205、少なくとも210、少なくとも215、少なくとも220、少なくとも225、少なくとも230、少なくとも235、少なくとも240、少なくとも245、少なくとも250、少なくとも275、少なくとも300、少なくとも325、少なくとも350、少なくとも375、少なくとも400、少なくとも425、少なくとも450、少なくとも475又は少なくとも500ヌクレオチドを含む配列を有する。別の実施形態では、第2のスタッファーは、配列番号23~123に記載される配列の少なくとも5、少なくとも10、少なくとも15、少なくとも20、少なくとも25、少なくとも30、少なくとも35、少なくとも40、少なくとも45、少なくとも50、少なくとも55、少なくとも60、少なくとも65、少なくとも70、少なくとも75、少なくとも80、少なくとも85、少なくとも90、少なくとも95、少なくとも100、少なくとも105、少なくとも110、少なくとも115、少なくとも120、少なくとも125、少なくとも130、少なくとも135、少なくとも140、少なくとも145、少なくとも150、少なくとも155、少なくとも160、少なくとも165、少なくとも170、少なくとも175、少なくとも180、少なくとも185、少なくとも190、少なくとも195、少なくとも200、少なくとも205、少なくとも210、少なくとも215、少なくとも220、少なくとも225、少なくとも230、少なくとも235、少なくとも240、少なくとも245、少なくとも250、少なくとも275、少なくとも300、少なくとも325、少なくとも350、少なくとも375、少なくとも400、少なくとも425、少なくとも450、少なくとも475又は少なくとも500ヌクレオチドを含む配列を有する。
スタッファー配列は、標的核酸における切断部位の分離を妨害しないことが好ましい。したがって、スタッファー配列は、標的核酸の切断部位において、核酸配列との最小の配列同一性を有するべきである。特定の実施形態では、スタッファー配列は、標的核酸の切断部位から500、450、400、350、300、250、200、150、100、50ヌクレオチド以内の任意の核酸配列と80%、70%、60%、55%、50%、45%、40%、35%、30%、25%、20%又は10%未満が同一である。特定の実施形態では、スタッファー配列は、標的核酸の切断部位から500、450、400、350、300、250、200、150、100、50塩基対以内の任意の核酸配列と80%、70%、60%、55%、50%、45%、40%、35%、30%、25%、20%又は10%未満が同一である。
オフターゲット分子組換え事象を回避するために、スタッファー配列は、標的細胞のゲノム中の核酸配列に対して最小の相同性を有することが好ましい。特定の実施形態では、スタッファー配列は、標的細胞のゲノム中の核酸に対して最小の配列同一性を有する。特定の実施形態では、スタッファー配列は、標的細胞のゲノム内の(塩基対又はヌクレオチドでの測定で)同一長さの任意の核酸配列と80%、70%、60%、55%、50%、45%、40%、35%、30%、25%、20%又は10%未満が同一である。特定の実施形態では、スタッファー配列の20塩基対のストレッチは、標的細胞ゲノムの核酸の任意の少なくとも20塩基対のストレッチと80%、70%、60%、55%、50%、45%、40%、35%、30%、25%、20%又は10%未満が同一である。特定の実施形態では、スタッファー配列の20ヌクレオチドのストレッチは、標的細胞ゲノムの核酸の任意の少なくとも20ヌクレオチドのストレッチと60%、55%、50%、45%、40%、35%、30%、25%、20%又は10%未満が同一である。
特定の実施形態では、スタッファー配列は、ドナー鋳型中の核酸配列(例えば、カーゴの核酸配列又はドナー鋳型に存在するプライミング部位の核酸配列)との最小の配列同一性を有する。特定の実施形態では、スタッファー配列は、ドナー鋳型内の(塩基対又はヌクレオチドでの測定で)同一長さの任意の核酸配列と80%、70%、60%、55%、50%、45%、40%、35%、30%、25%、20%又は10%未満が同一である。特定の実施形態では、スタッファー配列の20塩基対のストレッチは、ドナー鋳型の核酸の任意の20塩基対のストレッチと80%、70%、60%、55%、50%、45%、40%、35%、30%、25%、20%又は10%未満が同一である。特定の実施形態では、スタッファー配列の20ヌクレオチドのストレッチは、ドナー鋳型の核酸の任意の20ヌクレオチドのストレッチと80%、70%、60%、55%、50%、45%、40%、35%、30%、25%、20%又は10%未満が同一である。
特定の実施形態では、第1の相同性アーム及びその隣接するスタッファー配列(すなわちA1+S1)の長さは、第2の相同性アーム及びその隣接するスタッファー配列(すなわちA2+S2)の長さにほぼ等しい。例えば、特定の実施形態では、A1+S1の長さは、A2+S2の長さと同じである(塩基対又はヌクレオチドでの判定による)。特定の実施形態では、A1+S1の長さは、A2+S2の長さと25ヌクレオチド以下だけ異なる。特定の実施形態では、A1+S1の長さは、A2+S2の長さと24、23、22、21、20、19、18、17、16、15、14、13、12、11、10、9、8、7、6、5、4、3又は2ヌクレオチド以下だけ異なる。特定の実施形態では、A1+S1の長さは、A2+S2の長さと25塩基対以下だけ異なる。特定の実施形態では、A1+S1の長さは、A2+S2の長さと24、23、22、21、20、19、18、17、16、15、14、13、12、11、10、9、8、7、6、5、4、3又は2塩基対以下だけ異なる。
特定の実施形態では、A1+H1の長さは、250塩基対以下である。特定の実施形態では、A1+H1の長さは、200塩基対以下である。特定の実施形態では、A1+H1の長さは、150塩基対以下である。特定の実施形態では、A1+H1の長さは、100塩基対以下である。特定の実施形態では、A1+H1の長さは、50塩基対以下である。特定の実施形態では、A1+H1の長さは、250、200、190、180、170、160、150、140、130、120、110、100、90、80、70、60、50、49、48、47、46、45、44、43、42、41、40、39、38、37、36、35、34、33、32、31、30、29、28、27、26、25、24、23、22、21又は20塩基対である。特定の実施形態では、A1+H1の長さは、40塩基対である。特定の実施形態では、A2+H2の長さは、250塩基対以下である。特定の実施形態では、A2+H2の長さは、200塩基対以下である。特定の実施形態では、A2+H2の長さは、150塩基対以下である。特定の実施形態では、A2+H2の長さは、100塩基対以下である。特定の実施形態では、A2+H2の長さは、50塩基対以下である。特定の実施形態では、A2+H2の長さは、250、200、190、180、170、160、150、140、130、120、110、100、90、80、70、60、50、49、48、47、46、45、44、43、42、41、40、39、38、37、36、35、34、33、32、31、30、29、28、27、26、25、24、23、22、21又は20塩基対である。特定の実施形態では、A2+H2の長さは、40塩基対である。
特定の実施形態では、A1+S1の長さは、H1+X+H2の長さと同じである(ヌクレオチド又は塩基対での判定による)。特定の実施形態では、A1+S1の長さは、H1+X+H2の長さと25ヌクレオチド未満だけ異なる。特定の実施形態では、A1+S1の長さは、H1+X+H2の長さと24、23、22、21、20、19、18、17、16、15、14、13、12、11、10、9、8、7、6、5、4、3又は2ヌクレオチドだけ異なる。特定の実施形態では、A1+S1の長さは、H1+X+H2の長さと25塩基対未満だけ異なる。特定の実施形態では、A1+S1の長さは、H1+X+H2長さと24、23、22、21、20、19、18、17、16、15、14、13、12、11、10、9、8、7、6、5、4、3又は2塩基対だけ異なる。
特定の実施形態では、A2+S2の長さは、H1+X+H2の長さと同じである(ヌクレオチド又は塩基対での判定による)。特定の実施形態では、A2+S2の長さは、H1+X+H2の長さと25ヌクレオチド未満だけ異なる。特定の実施形態では、A2+S2の長さは、H1+X+H2の長さと24、23、22、21、20、19、18、17、16、15、14、13、12、11、10、9、8、7、6、5、4、3又は2ヌクレオチドだけ異なる。特定の実施形態では、A2+S2の長さは、H1+X+H2の長さと25塩基対未満だけ異なる。特定の実施形態では、A2+S2の長さは、H1+X+H2長さと24、23、22、21、20、19、18、17、16、15、14、13、12、11、10、9、8、7、6、5、4、3又は2塩基対だけ異なる。
標的細胞
本開示によるゲノム編集システムを使用して、細胞が操作又は修飾され、例えば標的核酸が編集又は修飾され得る。操作は、様々な実施形態において、インビボ又はエクスビボで行われ得る。
本開示の実施形態に従って様々な細胞型が操作又は修飾され得、インビボ用途などの場合、例えば本開示によるゲノム編集システムを複数の細胞型に送達することにより、複数の細胞型が修飾又は操作され得る。しかし、他の場合、操作又は修飾を特定の細胞型に限定することが望ましいことがあり得る。例えば、いくつかの例では、遺伝子型の修飾が細胞表現型の変化をもたらすと予想される、Maederの例における光受容細胞などの、限定された分化能を有する細胞又は最終分化細胞を編集することが望ましくあり得る。しかし、他の場合、低分化型、多分化能(multipotent)又は多能性(pluripotent)、幹細胞又は前駆細胞を編集することが望ましいことがある。例として、細胞は、胚性幹細胞、誘導多能性幹細胞(iPSC)、造血幹/前駆細胞(HSPC)又は所与の用途又は適応症に関連する細胞型に分化する他の幹細胞又は前駆細胞型であり得る。
特定の実施形態では、操作される細胞は、真核細胞である。例えば、限定されるものではないが、細胞は、脊椎動物、哺乳類、齧歯類、ヤギ、豚、鳥、鶏、七面鳥、ウシ、ウマ、ヒツジ、魚類、霊長類又はヒト細胞である。特定の実施形態では、操作される細胞は、体細胞、胚芽細胞又は出生前細胞である。特定の実施形態では、操作される細胞は、接合体細胞、胚盤胞細胞、胎芽細胞、幹細胞、有糸分裂コンピテント細胞又は減数分裂コンピテント細胞である。特定の実施形態では、操作される細胞は、ヒト胚の一部でない。特定の実施形態では、操作される細胞は、T細胞、CD8T細胞、CD8ナイーブT細胞、CD4中央記憶T細胞、CD8中央記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4T細胞、CD4幹細胞記憶T細胞、CD8幹細胞記憶T細胞、CD4ヘルパーT細胞、制御性T細胞、細胞毒性T細胞、ナチュラルキラーT細胞、CD4+ナイーブT細胞、TH17CD4T細胞、TH1CD4T細胞、TH2CD4T細胞、TH9CD4T細胞、CD4Foxp3T細胞、CD4CD25CD127T細胞、CD4CD25CD127Foxp3T細胞である。特定の実施形態では、操作される細胞は、長期造血幹細胞、短期造血幹細胞、多能性前駆細胞、系統限定前駆細胞、リンパ系前駆細胞、骨髄系前駆細胞、共通骨髄系前駆細胞、赤血球前駆細胞、巨核球赤血球前駆細胞、レチナール細胞、光受容体細胞、棒細胞、円錐細胞、網膜色素上皮細胞、小柱網細胞、蝸牛毛細胞、外有毛細胞、内有毛細胞、肺上皮細胞、気管支上皮細胞、肺胞上皮細胞、肺上皮前駆細胞、横紋筋細胞、心筋細胞、筋肉衛星細胞、ニューロン、神経細胞幹細胞、間葉系幹細胞、誘導多能性幹(iPS)細胞、胚性幹細胞、単球、巨核球、好中球、好酸球、好塩基球、肥満細胞、網状赤血球、B細胞(例えば、前駆細胞B細胞、プレB細胞、プロB細胞、記憶B細胞、血漿B細胞など)、胃腸上皮細胞、胆管上皮細胞、膵管上皮細胞、腸管幹細胞、肝実質細胞、肝臓星細胞、クッパー細胞、骨芽細胞、破骨細胞、脂肪細胞、前脂肪細胞、膵島細胞(例えば、β細胞、α細胞、δ細胞)、膵臓外分泌細胞、シュワン細胞又は乏突起膠細胞である。特定の実施形態では、操作される細胞は、例えば、単子葉植物又は双子葉植物細胞などの植物細胞である。
特定の実施形態では、標的細胞は、例えば、網状赤血球、巨核球赤血球前駆細胞(MEP)細胞、骨髄系前駆細胞(CMP/GMP)、リンパ系前駆細胞(LP)細胞、造血幹/前駆細胞(HSC)又は内皮細胞(EC)などの循環血液細胞である。特定の実施形態では、標的細胞は、骨髄細胞(例えば、網状赤血球、赤血球系細胞(例えば、赤芽球)、MEP細胞、骨髄系前駆細胞(CMP/GMP)、LP細胞、赤血球前駆(EP)細胞、HSC、多能性前駆細胞(MPP)細胞、内皮細胞(EC)、造血内皮(HE)細胞又は間葉系幹細胞)である。特定の実施形態では、標的細胞は、骨髄系前駆細胞(例えば、共通骨髄系前駆細胞(CMP)細胞又は顆粒球マクロファージ前駆細胞(GMP)細胞)である。特定の実施形態では、標的細胞は、例えば、共通リンパ系前駆(CLP)細胞などのリンパ系前駆細胞である。特定の実施形態では、標的細胞は赤血球前駆細胞(例えば、MEP細胞)である。特定の実施形態では、標的細胞は、造血幹/前駆細胞(例えば、長期HSC(LT-HSC)、短期HSC(ST-HSC)、MPP細胞又は系統制限前駆(LRP)細胞)である。特定の実施形態では、標的細胞は、CD34細胞、CD34CD90細胞、CD34CD38細胞、CD34CD90CD49fCD38CD45RA細胞、CD105細胞、CD31若しくはCD133細胞又はCD34CD90CD133細胞である。特定の実施形態では、標的細胞は、臍帯血CD34HSPC、臍帯静脈内皮細胞、臍帯動脈内皮細胞、羊水CD34細胞、羊水内皮細胞、胎盤内皮細胞又は胎盤造血CD34細胞である。特定の実施形態では、標的細胞は、動員された末梢血造血CD34細胞である(患者が例えばG-CSF又はプレリキサホルなどの動員剤で治療された後)。特定の実施形態では、標的細胞は、末梢血内皮細胞である。
当然ながら、修飾又は操作される細胞は、標的化される細胞型及び/又は所望の編集結果に応じて、様々に、分裂細胞又は非分裂細胞である。
細胞がエクスビボで操作又は修飾される場合、細胞は直ちに使用され得る(例えば、対照に投与され得る)か、又はそれらは後で使用するために維持又は保存され得る。当業者は、当該技術分野において公知の任意の適切な方法を使用して、細胞が培養物中で維持又は保存され得る(例えば、液体窒素中で凍結される)ことを理解するであろう。
ゲノム編集システムの実装:送達、配合及び投与経路
上で考察されるように、本開示のゲノム編集システムは、任意の適切な方法で実装され得、これは、限定されるものではないが、RNA誘導ヌクレアーゼ、gRNA、任意のドナー鋳型核酸をはじめとするシステムの構成要素が、ゲノム編集システムの形質導入、発現又は導入をもたらすような、且つ/又は細胞、組織又は対象において所望の修復結果を引き起こすような、任意の適切な形態又は形態の組み合わせで、送達、配合又は投与され得ることを意味する。ゲノム編集システム実装のいくつかの非限定的例が、表10及び11に記載される。しかし、当業者は、これらの一覧が包括的でなく、他の実装が可能であることを理解するであろう。特に表10を参照すると、この表は、単一のgRNA及び任意のドナー鋳型を含むゲノム編集システムのいくつかの例示的実装を列挙する。しかし、本開示によるゲノム編集システムには、複数のgRNA、複数のRNA誘導ヌクレアーゼ及びタンパク質などの他の構成要素が組み込まれ得、当業者には、表に示された原理に基づいて様々な実装が明らかになるであろう。表中、[N/A]は、ゲノム編集システムが、示された構成要素を含まないことを示す。
Figure 2024023294000030
表11は、本明細書に記載されるようなゲノム編集システムの構成要素のための様々な送達方法を要約する。この場合も、一覧は、限定的ではなく、むしろ例示的であることが意図される。
Figure 2024023294000031
ゲノム編集システムの核酸ベースの送達
本開示によるゲノム編集システムの様々な要素をコードする核酸は、当該技術分野で公知の方法によって又は本明細書に記載されるようにして、対象に投与され又は細胞内に送達され得る。例えば、RNA誘導ヌクレアーゼをコードするDNA及び/又はgRNAをコードするDNA並びにドナー鋳型核酸は、例えば、ベクター(例えば、ウイルスベクター又は非ウイルスベクター)、非ベクターベースの方法(例えば、裸のDNA又はDNA複合体を使用する)又はそれらの組み合わせによって送達され得る。
ゲノム編集システムをコードする核酸又はその構成要素は、例えば、形質移入若しくは電気穿孔によって裸のDNA若しくはRNAとして細胞に直接送達され得るか、又は標的細胞(例えば、赤血球、HSC)による取り込みを促進する分子(例えば、N-アセチルガラクトサミン)にコンジュゲートされ得る。表11に要約されるベクターなどの核酸ベクターも使用され得る。
核酸ベクターは、RNA誘導ヌクレアーゼ、gRNA及び/又はドナー鋳型などのゲノム編集システム構成要素をコードする、1つ又は複数の配列を含み得る。ベクターは、タンパク質をコードする配列と結合する(例えば、その中に挿入され又はそれに融合する)シグナルペプチド(例えば、核局在化、核小体局在化又はミトコンドリア局在化のための)をコードする配列も含み得る。一例として、核酸ベクターは、1つ又は複数の核局在化配列(例えば、SV40由来の核局在化配列)を含むCpf1コード配列を含み得る。
核酸ベクターは、例えば、プロモーター、エンハンサー、イントロン、ポリアデニル化シグナル、コザックコンセンサス配列又は内部リボソーム進入部位(IRES)などの任意の適切な数の調節/制御要素も含み得る。これらの要素は当該技術分野で周知であり、Cotta-Ramusinoらに記載される。
本開示による核酸ベクターは、組換えウイルスベクターを含む。例示的なウイルスベクターは表11に記載され、追加的な適切なウイルスベクター及びそれらの使用と製造は、Cotta-Ramusinoらに記載される。当該技術分野で公知の他のウイルスベクターも使用され得る。さらに、ウイルス粒子を使用して、ゲノム編集システムの構成要素が、核酸及び/又はペプチドの形態で送達され得る。例えば、「空の」ウイルス粒子が、任意の適切な積荷を含有するように組み立てられ得る。ウイルスベクター及びウイルス粒子は、標的化リガンドを組み込んで、標的組織特異性が改変されるようにも操作され得る。
ウイルスベクターに加えて、非ウイルスベクターが、本開示によるゲノム編集システムをコードする核酸を送達するために使用され得る。非ウイルス核酸ベクターの1つの重要なカテゴリーはナノ粒子であり、これは有機又は無機であり得る。ナノ粒子は当該技術分野で周知であり、Cotta-Ramusinoらに要約される。任意の適切なナノ粒子設計を用いて、ゲノム編集システム構成要素又はこのような構成要素をコードする核酸を、送達し得る。例えば、有機(例えば、脂質及び/又はポリマー)ナノ粒子は、本開示の特定の実施形において送達ビヒクルとして使用するのに適し得る。ナノ粒子製剤及び/又は遺伝子移入で使用するための例示的な脂質が表12に示され、表13は遺伝子移入及び/又はナノ粒子製剤で使用するための例示的ポリマーを列挙する。
Figure 2024023294000032
Figure 2024023294000033
Figure 2024023294000034
非ウイルスベクターは標的化修飾を任意選択的に含み、取り込みを改善し及び/又は特定の細胞型を選択的に標的化する。これらの標的化修飾としては、例えば、細胞特異的抗原、モノクローナル抗体、一本鎖抗体、アプタマー、ポリマー、糖(例えば、N-アセチルガラクトサミン(GalNAc))及び細胞透過性ペプチドが挙げられる。このようなベクターはまた、任意選択的に、融合誘導性及びエンドソーム不安定化ペプチド/ポリマーを使用し、(例えば、積荷のエンドソーム漏出を促進するための)酸誘発立体構造変化を受け、且つ/又は例えば細胞区画への放出のための刺激切断可能ポリマーを組み込む。例えば、還元性細胞環境内で切断されるジスルフィドベースのカチオン性ポリマーが、使用され得る。
特定の実施形態では、例えば、本明細書に記載されるRNA誘導ヌクレアーゼ構成要素及び/又はgRNA構成要素などの、ゲノム編集システムの構成要素以外の1つ又は複数の核酸分子(例えば、DNA分子)が送達される。特定の実施形態では、核酸分子は、ゲノム編集システムの構成要素の1つ又は複数と同時に送達される。特定の実施形態では、核酸分子は、ゲノム編集システムの構成要素の1つ又は複数が送達される(例えば、約30分間、1時間、2時間、3時間、6時間、9時間、12時間、1日、2日間、3日間、1週間、2週間又は4週間未満)前又は後に送達される。特定の実施形態では、核酸分子は、例えば、RNA誘導ヌクレアーゼ構成要素及び/又はgRNA構成要素などのゲノム編集システムの1つ又は複数の構成要素が送達されるのとは、異なる手段によって送達される。核酸分子は、本明細書に記載される送達方法のいずれかによって送達され得る。例えば、核酸分子は、例えば、核酸(例えば、DNA)によって引き起こされる毒性が低下され得るように、例えば組み込み欠損レンチウイルスなどのウイルスベクターによって送達され得、RNA誘導ヌクレアーゼ分子構成要素及び/又はgRNA構成要素は、電気穿孔によって送達され得る。特定の実施形態では、核酸分子は、例えば、本明細書に記載されるタンパク質などの治療用タンパク質をコードする。特定の実施形態では、核酸分子は、例えば、本明細書に記載されるRNA分子などのRNA分子をコードする。
RNP及び/又はRNAをコードするゲノム編集システム構成要素の送達
RNP(gRNA及びRNA誘導ヌクレアーゼの複合体)及び/又はRNA誘導ヌクレアーゼ及び/又はgRNAをコードするRNAは、そのいくつかがCotta-Ramusinoらに記載される当該技術分野で公知の方法により、細胞に送達されるか又は対象に投与され得る。インビトロでは、RNA誘導ヌクレアーゼをコードし及び/又はgRNAをコードするRNAが、例えば、マイクロインジェクション、電気穿孔、一過性細胞圧縮又は圧搾によって送達され得る(例えば、Lee 2012を参照されたい)。脂質媒介トランスフェクション、ペプチド媒介送達、GalNAc又は他のコンジュゲート媒介送達及びそれらの組み合わせもインビトロ及びインビボ送達のために使用され得る。
インビトロでは、電気穿孔を通じた送達は、カートリッジ、チャンバー又はキュベット内において、ドナー鋳型核酸分子の存在下又は非存在下で細胞をRNA誘導ヌクレアーゼ及び/又はgRNAをコードするRNAと混合するステップと、1回又は複数回の規定の長さ及び振幅の電気インパルスを適用するステップとを含む。電気穿孔のシステム及びプロトコルは、当該技術分野で公知であり、本開示の様々な実施形態に関連して、任意の適切な電気穿孔ツール及び/又はプロトコルが使用され得る。例示的なシステムとしては、Nucleofector(商標)technologies(Lonza)、Gene Pulser Xcell(商標)(BioRad)、Flow Electroporation(商標)形質移入システム(MaxCyte)及びNeon(商標)形質移入システム(ThermoFisher)が挙げられるが、これらに限定されない。
投与経路
ゲノム編集システム又はそのようなシステムを用いて修飾又は操作された細胞は、局所的又は全身的を問わず、任意の適切な様式又は経路によって対象に投与され得る。全身性の投与法としては、経口及び非経口経路が挙げられる。非経口経路としては、例として、静脈内、骨髄内、動脈内、筋肉内、皮内、皮下、鼻腔内及び腹腔内経路が挙げられる。全身投与される構成要素は、例えば、HSC、造血幹/前駆細胞又は赤血球前駆体若しくは前駆細胞を標的化するように修飾又は配合され得る。
局所投与様式としては、例として、骨梁への骨髄内注射又は骨髄腔への大腿内注射及び門脈への注入が挙げられる。特定の実施形態では、全身投与(例えば、静脈内)と比較して、局所的に(例えば、骨髄内に直接)投与された場合、(全身的アプローチと比較して)有意により少量の構成要素が効果を発揮し得る。局所投与法は、治療有効量の構成要素が全身投与された場合に起こることもある、潜在的に毒性の副作用の発生を低減又は排除し得る。
投与は、周期的ボーラス(例えば、静脈内)として又は内部リザーバー若しくは外部リザーバーからの持続注入(例えば、静注バッグ又は植込み型ポンプから)として提供され得る。構成要素は、例えば、持続放出薬物送達デバイスからの連続放出により、局所的に投与され得る。
加えて、構成要素は、長時間にわたって放出されるように調合され得る。放出系は、生分解性材料又は拡散によって組み込まれた構成要素を放出する材料のマトリックスを含み得る。構成要素は、放出系内で均一に又は不均一に分布し得る。多様な放出系が有用であり得るが、適切なシステムの選択は、特定の用途によって要求される放出速度に左右される。非分解性及び分解性放出系の両方が使用され得る。適切な放出系としては、ポリマー及びポリマーマトリックス、非ポリマーマトリックス又は炭酸カルシウム及び糖(例えば、トレハロース)などであるが、これに限定されるものではない、無機及び有機賦形剤及び希釈剤が挙げられる。放出系は、天然又は合成であり得る。しかし、通常、より信頼でき、より再現可であり、より画定された放出プロファイルを生じることから、合成放出系が好ましい。放出系材料は、異なる分子量を有する構成要素が、材料を通じた又は材料の分解による、拡散によって放出されるように選択され得る。
典型的な合成生分解性ポリマーとしては、例えば、ポリ(アミノ酸)及びポリ(ペプチド)などのポリアミド;ポリ(乳酸)、ポリ(グリコール酸)、ポリ(乳酸-コ-グリコール酸)及びポリ(カプロラクトン)などのポリエステル;ポリ(無水物);ポリオルトエステル;ポリカーボネート;及びその化学誘導体(例えば、アルキル及びアルキレンなどの化学基の置換及び付加、ヒドロキシル化、酸化及び当業者によって日常的に行われる他の修飾)、共重合体及びそれらの混合物が挙げられる。典型的な合成非分解性ポリマーとしては、例えば、ポリ(酸化エチレン)、ポリ(エチレングリコール)及びポリ(テトラメチレンオキシド)などのポリエーテル;メチル、エチル、他のアルキル、ヒドロキシエチルメタクリレート、アクリル及びメタクリル酸及びポリ(ビニルアルコール)、ポリ(ビニルピロリドン)及びポリ(酢酸ビニル)などのビニルポリマー-ポリアクリレート及びポリメタクリレート;ポリ(ウレタン);セルロースと、アルキル、ヒドロキシアルキル、エーテル、エステル、ニトロセルロース及び様々な酢酸セルロースなどのその誘導体;ポリシロキサン;任意のその化学的誘導体(例えば、アルキル、アルキレンなどの化学基の置換、付加、ヒドロキシル化、酸化及び当業者によって慣例的に加えられる他の修飾)、共重合体及びそれらの混合物が挙げられる。
ポリ(ラクチド-コ-グリコリド)微小球も使用され得る。典型的に、微小球は、中空球を形成するように構造化された、乳酸及びグリコール酸ポリマーから構成される。球は直径がおよそ15~30ミクロンであり得、本明細書に記載される構成要素が負荷され得る。
構成要素の多峰性又は差動送達
当業者は、本開示に鑑みて、本明細書で開示されるゲノム編集システムの異なる構成要素が、一緒に又は別々に且つ同時に又は非同時に送達され得ることを理解するであろう。ゲノム編集システム構成要素の別々の及び/又は非同期の送達は、ゲノム編集システムの機能に対する時間的又は空間的制御を提供し、それらの活性によって引き起こされる特定の効果を制限するために、特に望ましくあり得る。
異なる又は差動様式は、本明細書の用法では、例えば、RNA誘導ヌクレアーゼ分子、gRNA、鋳型核酸又はペイロードなどの対象構成要素分子に、異なる薬力学的又は薬物動態特性を付与する送達様式を指す。例えば、送達様式は、例えば、選択された区画、組織又は臓器に、異なる組織分布、異なる半減期又は異なる時間的分布をもたらし得る。
例えば、自律複製又は細胞核酸内への挿入により、細胞内又は細胞子孫内に残留する核酸ベクターによる送達などのいくつかの送達様式は、構成要素のより持続性の発現及び存在をもたらす。例としては、例えば、AAV又はレンチウイルス性などのウイルス性送達が挙げられる。
例として、例えば、RNA誘導ヌクレアーゼ及びgRNAなどのゲノム編集システムの構成要素は、その結果生じる、体内、特定の区画、組織又は臓器に送達された構成要素の半減期又は持続性に関して異なる様式によって送達され得る。特定の実施形態では、gRNAはこのような様式によって送達され得る。RNA誘導ヌクレアーゼ分子構成要素は、身体又は特定の区画、若しくは組織、若しくは臓器に対して、より低い持続性又はより少ない曝露をもたらす様式によって送達され得る。
より一般的には、特定の実施形態では、第1の送達様式が使用されて第1の構成要素が送達され、且つ第2の送達様式が使用されて第2の構成要素が送達される。第1の送達様式は、第1の薬力学的又は薬物動態学的特性を与える。第1の薬力学的特性は、例えば、身体、区画、組織又は臓器内における、構成要素又は構成要素をコードする核酸の、分布、持続性又は曝露であり得る。第2の送達様式は、第2の薬力学又は薬物動態学的特性を与える。第2の薬力学的特性は、例えば、身体、区画、組織又は臓器内における、構成要素又は構成要素をコードする核酸の、分布、持続性又は曝露であり得る。
特定の実施形態では、例えば、分布、持続性又は曝露などの第1の薬力学的又は薬物動態学的特性は、第2の薬力学的又は薬物動態学的特性よりも限定的である。
特定の実施形態では、第1の送達様式は、例えば、分布、持続性又は曝露などの薬力学的又は薬物動態学的特性を最適化するように、例えば最小化するように選択される。
特定の実施形態では、第2の送達様式は、例えば、分布、持続性又は曝露などの薬力学的又は薬物動態学的特性を最適化するように、例えば最大化するように選択される。
特定の実施形態では、第1の送達様式は、例えば、核酸、例えばプラスミド又はウイルスベクター、例えばAAV又はレンチウイルスなどの相対的に持続性の要素の使用を含む。このようなベクターは比較的持続性であるため、それらから転写される生成物は、比較的持続性になる。
特定の実施形態では、第2の送達様式は、例えば、RNA又はタンパク質などの比較的一過性の要素を含む。
特定の実施形態では、第1の構成要素はgRNAを含み、送達様式は比較的持続性であり、例えばgRNAは、例えば、AAV又はレンチウイルスなどのプラスミド又はウイルスベクターから転写される。これらの遺伝子はタンパク質生成物をコードせず、gRNAは単独で作用できないため、これらの遺伝子の転写は、生理学的に重要でない。第2の構成要素であるRNA誘導ヌクレアーゼ分子は、例えば、mRNAとして又はタンパク質として一過性様式で送達され、完全RNA誘導ヌクレアーゼ分子/gRNA複合体のみが存在し、短期間活性であることを確実にする。
さらに、構成要素は、互いに補完して安全性及び組織特異性を高める異なる分子形態又は異なる送達ベクターで送達され得る。
差動送達様式の使用は、性能、安全性及び/又は有効性を高め得、例えば最終的なオフターゲット修飾の可能性を低減し得る。細菌由来Cas酵素からのペプチドはMHC分子によって細胞表面に提示されるため、例えば、Cas9分子などの免疫原性構成要素のより低持続性様式による送達は、免疫原性を低下させ得る。二部送達系は、これらの欠点を軽減し得る。
差動送達様式を使用して、異なるが重複する標的領域に、構成要素が送達され得る。形成活性複合体は、標的領域の重なりの外で最小化される。したがって、特定の実施形態では、例えば、gRNAなどの第1の構成要素は、第1の送達様式によって送達され、例えば組織分布などの第1の空間的分布がもたらされる。例えば、RNA誘導ヌクレアーゼ分子などの第2の構成要素は、第2の送達様式によって送達され、例えば組織分布などの第2の空間的分布がもたらされる。特定の実施形態では、第1の様式は、リポソーム、例えばポリマーナノ粒子などのナノ粒子及び例えばウイルスベクターなどの核酸から選択された第1の要素を含む。第2の様式は、群から選択された第2の要素を含む。特定の実施形態では、第1の送達様式は、例えば、細胞特異的受容体又は抗体などの第1の標的化要素を含み、第2の送達様式はその要素を含まない。特定の実施形態では、第2の送達様式は、例えば、第2の細胞特異的受容体又は第2の抗体などの第2の標的化要素を含む。
RNA誘導ヌクレアーゼ分子が、ウイルス送達ベクター、リポソーム又はポリマーナノ粒子中で送達される場合、単一組織のみを標的化することが望ましいことがあり得る場合、複数組織への送達とその中での治療活性の可能性がある。二部送達系はこの難題を解決し、組織特異性を高め得る。gRNA及びRNA誘導ヌクレアーゼ分子が、別個であるが重複する組織向性がある別々の送達ビヒクルにパッケージされれば、完全に機能的な複合体は、両方のベクターによって標的化される組織内のみに形成される。
例示的な非限定的実施形態
A.特定の非限定的な実施形態では、本明細書で開示された主題は、核局在化シグナル(NLS)を含む、プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francisella)1(Cpf1)RNA誘導ヌクレアーゼからの単離されたCRISPRを提供する。
A1.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、ヌクレアーゼのN末端又はその近傍にNLSを含む、前述のAのCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
A2.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、ヌクレアーゼのC末端又はその近傍にNLSを含む、前述のAのCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
A3.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、ヌクレアーゼのN末端又はその近傍に2つのNLS配列を含む、前述のA1のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
A4.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、ヌクレアーゼのC末端又はその近傍に2つのNLS配列を含む、前述のA2のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
A5.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、ヌクレアーゼのN末端及びC末端の両方又はその近傍にNLSを含む、前述のAのCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
A6.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼが2つ以上のNLS配列を含む場合、NLS配列は、同一であるか又は異なる、前述のAのCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
A7.NLS配列又は配列群は、ヌクレオプラスミンNLS(nNLS)(配列番号1)及びシミアンウイルス40「SV40」NLS(sNLS)(配列番号2)からなる群から選択される、前述のAのCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
A8.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼの配列は、NLS(配列番号3);His-AsCpf1-sNLS(配列番号4;His-AsCpf1-sNLS-sNLS(配列番号5);His-sNLS-AsCpf1(配列番号6);His-sNLS-sNLS-AsCpf1(配列番号7);sNLS-sNLS-AsCpf1(配列番号8);His-sNLS-AsCpf1-sNLS(配列番号9);及びHis-sNLS-sNLS-AsCpf1-sNLS-sNLS(配列番号10)からなる群から選択される、前述のAのCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
B.特定の非限定的実施形態では、本明細書で開示された主題は、システインアミノ酸の欠失又は置換を含む単離されたCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼを提供する。
B1.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、野生型AsCpf1アミノ酸配列のC65、C205、C334、C379、C608、C674、C1025又はC1248に欠失又は置換を含む、前述のBのCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
B2.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、野生型AsCpf1アミノ酸配列と比較して、C65S/A、C205S/A、C334S/A、C379S/A、C608S/A、C674S/A及びC1025S/Aからなる群から選択される置換を含む、前述のB1のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
B3.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、野生型AsCpf1アミノ酸配列のC334及びC674又はC334、C379及びC674のいずれかに欠失又は置換を含む、前述のB1のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
B4.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、野生型AsCpf1アミノ酸配列と比較して、(1)C334S/A及びC674S/A;及び(2)C334S/A、C379S/A及びC674S/Aからなる群から選択される置換を含む、前述のB3のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
B5.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、NLSをさらに含む、前述のBのCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
B6.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼの配列は、His-AsCpf1-nNLSCys-less(配列番号11)及びHis-AsCpf1-nNLSCys-low(配列番号12)から選択される、前述のB5のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
C.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、A~A8及びB~B8のいずれかの前述のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼをコードする単離された核酸を提供する。
D.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、
ガイドRNA(gRNA);及び
A~A8及びB~B8のいずれかの前述のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ又は前述のCの核酸によってコードされるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ
を含むゲノム編集システムを提供する。
E.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、細胞内において、関心のある標的配列を修飾する方法であって、細胞を、
関心のある標的配列と相補的なgRNA;及び
A~A8及びB~B8のいずれかの前述のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ又は前述のCの核酸によってコードされるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ
に接触させることを含み、前記Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、関心のある標的配列を修飾する、方法を提供する。
E1.細胞は、T細胞、造血幹細胞(HSC)又はヒト臍帯血誘導赤血球前駆細胞(HUDEP細胞)である、前述のEの方法。
E2.HSCは、CD34+細胞、CD34+CD90+細胞、CD34+CD38-細胞、CD34+CD90+CD49f+CD38-CD45RA-細胞、CD105+細胞、CD31+若しくはCD133+細胞又はCD34+CD90+CD133+細胞である、前述のE1の方法。
E3.T細胞は、CD8T細胞、CD8ナイーブT細胞、CD4中央記憶T細胞、CD8中央記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4T細胞、CD4幹細胞記憶T細胞、CD8幹細胞記憶T細胞、CD4ヘルパーT細胞、制御性T細胞、細胞毒性T細胞、ナチュラルキラーT細胞、CD4+ナイーブT細胞、TH17CD4T細胞、TH1CD4T細胞、TH2CD4T細胞、TH9CD4T細胞、CD4Foxp3T細胞、CD4CD25CD127T細胞又はCD4CD25CD127Foxp3T細胞である、前述のE1の方法。
E4.Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、関心のある標的配列を修飾して、少なくとも20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%又は90%の編集を達成する、前述のEの方法。
E5.関心のある第2の標的配列と相補的な第2のgRNAさらに含む、前述のEの方法。
E6.第2のRNA誘導ヌクレアーゼをさらに含む、前述のEの方法。
E7.関心のある標的配列は、HBG1遺伝子配列の一部;及びBCL11a遺伝子配列の一部からなる群から選択される、前述のEの方法。
E8.HBG1遺伝子配列の一部は、HBG遺伝子の-110ntプロモーター領域である、前述のE7の方法。
E9.HBG1遺伝子配列の一部は、HBG遺伝子の-110ntプロモーター領域のCAATボックスである、前述のE8の方法。
E10.Bcl11a遺伝子配列の一部は、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域である、前述のE7の方法。
E11.Bcl11a遺伝子配列の一部は、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域のGATA1モチーフである、前述のE10の方法。
E12.関心のある標的配列は、FAS遺伝子配列の一部;BID遺伝子配列の一部;CTLA4遺伝子配列の一部;PDCD1遺伝子配列の一部;CBLB遺伝子配列の一部;PTPN6遺伝子配列の一部;B2M遺伝子配列の一部;TRAC遺伝子配列の一部;及びTRBC遺伝子配列の一部からなる群から選択される、前述のEの方法。
E13.関心のある標的配列は、B2M遺伝子配列の一部;TRAC遺伝子配列の一部;及びTRBC遺伝子配列の一部からなる群から選択される、前述のE12の方法。
E14.B2M遺伝子配列の一部は、B2M遺伝子のコード配列の最初の500bp内にある、前述のE13の方法。
E15.B2M遺伝子配列の一部は、B2M遺伝子のコード配列の501番目のヌクレオチドと最後のヌクレオチドとの間にある、前述のE13の方法。
E16.TRAC遺伝子配列の一部は、TRAC遺伝子のコード配列の最初の500bp内にある、前述のE12の細胞。
E17.TRBC遺伝子配列の一部は、TRBC遺伝子のコード配列の最初の500bp内にある、前述のE12の細胞。
F.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、対象を治療する方法であって、対象からの細胞を、
標的核酸の標的配列に相補的なgRNA;及び
A~A8及びB~B8のいずれかの前述のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ
に接触させることを含む方法を提供する。
F1.Cpf1分子は、標的核酸における二本鎖切断を形成する、前述のFの方法。
F2.Cpf1分子は、アシダミノコッカス属(Acidaminococcus)種株BV3L6 Cpf1分子(AsCpf1)、ラクノスピラ菌(Lachnospiraceae bacterium)ND2006 Cpf1分子(LbCpf1)及びラクノスピラ菌(Lachnospiraceae bacterium)MA2020(Lb2Cpf1)からなる群から選択される、前述のF又はF1の方法。
F3.対象は、異常ヘモグロビン症に罹患している、前述のF~F2のいずれか1つの方法。
F4.異常ヘモグロビン症は、鎌状赤血球症又はβサラセミアである、前述のF3の方法。
F5.細胞は、T細胞、造血幹細胞(HSC)又はヒト臍帯血誘導赤血球前駆細胞(HUDEP細胞)である、前述のF~F4のいずれか1つの方法。
F6.T細胞は、CD8T細胞、CD8ナイーブT細胞、CD4中央記憶T細胞、CD8中央記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4T細胞、CD4幹細胞記憶T細胞、CD8幹細胞記憶T細胞、CD4ヘルパーT細胞、制御性T細胞、細胞毒性T細胞、ナチュラルキラーT細胞、CD4+ナイーブT細胞、TH17CD4T細胞、TH1CD4T細胞、TH2CD4T細胞、TH9CD4T細胞、CD4Foxp3T細胞、CD4CD25CD127T細胞又はCD4CD25CD127Foxp3T細胞である、前述のF5の方法。
F7.HSC細胞は、CD34細胞、CD34CD90細胞、CD34CD38細胞、CD34CD90CD49fCD38CD45RA細胞、CD105細胞、CD31若しくはCD133細胞又はCD34CD90CD133細胞である、前述のF5の方法。
F8.接触は、エクスビボで実施される、前述のF~F7のいずれか1つの方法。
F9.接触細胞は、対象の身体に戻される、前述のF~F8のいずれか1つの方法。
G.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、
(a)A~A8及びB~B8のいずれかの前述のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ、
(b)標的核酸の標的配列に相補的なgRNA;及び
(c)標的核酸の1つ又は複数の修正から利益を得るであろう対象からの細胞
を含む反応液混合物を提供する。
H.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、
(a)A~A8及びB~B8のいずれか1つの前述のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ又はCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼをコードする核酸組成物、及び
(b)標的核酸の標的配列又はgRNAの核酸組成物に相補的なgRNA
を含むキットを提供する。
I.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、前述のDのゲノム編集システムを通じて導入された、標的核酸配列における修飾を含む細胞を提供する。
I1.修飾は、HBG1遺伝子配列又はBcl11a遺伝子配列に対するものである、前述のIの細胞。
I2.修飾HBG1遺伝子配列は、HBG遺伝子の-110ntプロモーター領域である、前述のI1の細胞。
I3.修飾HBG1遺伝子配列は、HBG遺伝子の-110ntプロモーター領域のCAATボックスである、前述の請求項I1に記載の細胞。
I4.修飾Bcl11a遺伝子配列は、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域である、前述の請求項I1に記載の細胞。
I5.修飾Bcl11a遺伝子配列は、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域のGATA1モチーフである、前述の請求項I1に記載の細胞。
J.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼによる標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整を評価する方法であって、
(a)一致部位標的核酸配列を含む標的核酸配列の編集及び/又は発現の調整に関して、試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼの活性を判定すること;
(b)一致部位標的核酸配列を含む標的核酸配列の編集及び/又は発現の調整に関して、試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼの活性を対照RNA誘導ヌクレアーゼの活性と比較すること
を含む方法を提供する。
J1.一致側標的核酸配列は、一致部位1(配列番号13)、一致部位5(配列番号14)、一致部位11(配列番号15)及び一致部位18(配列番号16)からなる群から選択される、前述のJの方法。
J2.試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び対照RNA誘導ヌクレアーゼは、
(a)同一アミノ酸配列を有し;
(b)異なる細胞型で活性についてアッセイされる、前述のJの方法。
J3.試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び対照RNA誘導ヌクレアーゼは、
(a)同一アミノ酸配列を有し;
(b)異なる調合物中の活性についてアッセイされる、前述のJの方法。
J4.試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び対照RNA誘導ヌクレアーゼは、
(a)同一アミノ酸配列を有し;
(b)異なる濃度における活性についてアッセイされる、前述のJの方法。
J5.試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び対照RNA誘導ヌクレアーゼは、
(a)同一アミノ酸配列を有し;
(b)異なるプロセスを介して製造された後に活性についてアッセイされる、前述のJの方法。
J6.試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び対照RNA誘導ヌクレアーゼは、
(a)同一アミノ酸配列を有し;
(b)異なるプロセスを介して細胞に送達された後に活性についてアッセイされる、前述のJの方法。
J7.試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び対照RNA誘導ヌクレアーゼは、異なるアミノ酸配列を含む、前述のJの方法。
K.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、BC11a及びHBG1からなる群から選択される、内因性遺伝子の遺伝子発現を下方制御できるCRISPRシステムを含む細胞を提供する。
K1.CRISPRシステムは、BC11a遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む、前述のKの細胞。
K2.BC11a遺伝子配列の一部は、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域である、前述のK1の細胞。
K3.BC11a遺伝子配列の一部は、BCL11a遺伝子のイントロン2の+58DHS領域のGATA1モチーフである、前述のK1の細胞。
K4.CRISPRシステムは、HBG1遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む、前述のKの細胞。
K5.HBG1遺伝子配列の一部は、HBG1遺伝子の-110ntプロモーター領域である、前述のK4の細胞。
K6.HBG1遺伝子配列の一部は、HBG1遺伝子の-110ntプロモーター領域のCAATボックスである、前述のK4の細胞。
K7.細胞は、CD34+細胞、CD34+CD90+細胞、CD34+CD38-細胞、CD34+CD90+CD49f+CD38-CD45RA-細胞、CD105+細胞、CD31+若しくはCD133+細胞又はCD34+CD90+CD133+細胞である、前述のKの細胞。
L.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、FAS、BID、CTLA4、PDCD1、CBLB、PTPN6、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される、少なくとも1つの内因性遺伝子の遺伝子発現を下方制御できるCRISPRシステムを含む、細胞を提供する。
L1.CRISPRシステムは、B2M遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む、前述のLの細胞。
L2.B2M遺伝子配列の一部は、B2M遺伝子のコード配列の最初の500bp内にある、前述のL1の細胞。
L3.B2M遺伝子配列の一部は、B2M遺伝子のコード配列の501番目のヌクレオチドと最後のヌクレオチドとの間にある、前述のL1の細胞の方法。
L4.CRISPRシステムは、TRAC遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む、前述のL~L3のいずれかの細胞。
L5.TRAC遺伝子配列の一部は、TRAC遺伝子のコード配列の最初の500bp内にある、前述のL4の細胞。
L6.CRISPRシステムは、TRBC遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む、前述のL~L5のいずれかの細胞。
L7.TRBC遺伝子配列の一部は、TRBC遺伝子のコード配列の最初の500bp内にある、前述のL6の細胞。
L8.CRISPRシステムは、CIITA遺伝子配列の一部に相補的なgRNAを含む、前述のL~L7のいずれかの細胞。
L9.CIITA遺伝子配列の一部は、CIITA遺伝子のコード配列の最初の500bp内にある、前述のL8の細胞。
L10.CRISPRシステムは、B2M、TRAC及びCIITAからなる群の遺伝子発現を下方制御できる、前述のLの細胞。
L11.CRISPRシステムは、B2M、TRAC、TRBC及びCIITAからなる群の遺伝子発現を下方制御できる、前述のLの細胞。
L12.細胞は、CD8T細胞、CD8ナイーブT細胞、CD4中央記憶T細胞、CD8中央記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4T細胞、CD4幹細胞記憶T細胞、CD8幹細胞記憶T細胞、CD4ヘルパーT細胞、制御性T細胞、細胞毒性T細胞、ナチュラルキラーT細胞、CD4+ナイーブT細胞、TH17CD4T細胞、TH1CD4T細胞、TH2CD4T細胞、TH9CD4T細胞、CD4Foxp3T細胞、CD4CD25CD127T細胞又はCD4CD25CD127Foxp3T細胞である、L~L11のいずれか1つの前述の細胞。
M.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼによる標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整を評価するためのアッセイであって、
(a)一致部位標的核酸配列を含む標的核酸配列の編集及び/又は発現の調整に関して、試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼの活性を判定すること;
(b)一致部位標的核酸配列を含む標的核酸配列の編集及び/又は発現の調整に関して、試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼの活性を対照RNA誘導ヌクレアーゼの活性と比較すること
を含むアッセイを提供する。
M1.一致側標的核酸配列は、一致部位1(配列番号13)、一致部位5(配列番号14)、一致部位11(配列番号15)及び一致部位18(配列番号16)からなる群から選択される、前述のMのアッセイ。
M2.試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び対照RNA誘導ヌクレアーゼは、
(a)同一アミノ酸配列を有し;
(b)異なる細胞型で活性についてアッセイされる、前述のM1のアッセイ。
M3.試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び対照RNA誘導ヌクレアーゼは、
(a)同一アミノ酸配列を有し;
(b)異なる調合物中の活性についてアッセイされる、前述のM2のアッセイ。
M4.試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び対照RNA誘導ヌクレアーゼは、
(a)同一アミノ酸配列を有し;
(b)異なる濃度における活性についてアッセイされる、前述のMのアッセイ。
M5.試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び対照RNA誘導ヌクレアーゼは、
(a)同一アミノ酸配列を有し;
(b)異なるプロセスを介して製造された後に活性についてアッセイされる、前述のMのアッセイ。
M6.試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び対照RNA誘導ヌクレアーゼは、
(a)同一アミノ酸配列を有し;
(b)異なるプロセスを介して細胞に送達された後に活性についてアッセイされる、前述のMのアッセイ。
N.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、
第1の遺伝子の標的配列に相補的な第1の標的化ドメインを含む第1のガイドRNA(gRNA);
第2の遺伝子の標的配列に相補的な第2の標的化ドメインを含む第2のgRNA分子;及び
A~A8及びB~B8のいずれかの前述のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ又は前述のCの核酸によってコードされるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ
を含む多重ゲノム編集システムを提供する。
N1.第1の遺伝子及び第2の遺伝子は、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される、前述のNの多重ゲノム編集システム。
N2.第3の遺伝子の標的配列に相補的な第3の標的化ドメインを含む第3のgRNA分子をさらに含む、前述のNの多重ゲノム編集システム。
N3.第1の遺伝子、第2の遺伝子及び第3の遺伝子は、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される、前述のN2の多重ゲノム編集システム。
N4.第4の遺伝子の標的配列に相補的な第4の標的化ドメインを含む第4のgRNA分子をさらに含む、前述のN2の多重ゲノム編集システム。
N5.第1の遺伝子、第2の遺伝子、第3の遺伝子及び第4の遺伝子は、B2M、TRAC、CIITA及びTRBCからなる群から選択される、前述のN4の多重ゲノム編集システム。
O.特定の実施形態では、本明細書で開示された主題は、細胞内において複数の遺伝子を修飾する方法であって、細胞を、
第1の遺伝子の標的配列に相補的な第1の標的化ドメインを含む第1の(gRNA);
第2の遺伝子の標的配列に相補的な第2の標的化ドメインを含む第2のgRNA分子;及び
A~A8及びB~B8のいずれかの前述のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ又は前述のCの核酸によってコードされるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ
に接触させることを含み、前記Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、第1の遺伝子及び第2の遺伝子を修飾する、方法を提供する。
O1.第3の遺伝子の標的配列に相補的な第3の標的化ドメインを含む第3のgRNA分子をさらに含み、前記Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、第1の遺伝子、第2の遺伝子及び第3の遺伝子を修飾する、前述のOの方法。
O2.第4の遺伝子の標的配列に相補的な第4の標的化ドメインを含む第4のgRNA分子をさらに含み、前記Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、第1の遺伝子、第2の遺伝子、第3の遺伝子及び第4の遺伝子を修飾する、前述のO1の方法。
O3.第1の遺伝子、第2の遺伝子、第3の遺伝子及び第4の遺伝子は、B2M、TRAC、CIITA及びTRBC遺伝子からなる群から選択される、前述のO2の方法。
O4.細胞は、T細胞である、前述のOの方法。
以下の実施例は、単なる例示であり、決して本発明の範囲又は内容を限定することを意図されない。
実施例1 - 一致部位を使用したベンチマーキングアッセイによって評価される、S.ピオゲネス(S.pyogenes)Cas9及びAsCpf1変異型による成人ヒトCD34+細胞の効率的な編集
標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整は、例えば、「一致部位」標的核酸配列などの標的核酸配列に関して、対照CRISPR/RNA誘導ヌクレアーゼ編集システムと、試験CRISPR/Cpf1編集システムの活性とを比較することによって評価され得る。
一致部位標的核酸配列は、Cpf1と、例えばCas9などの第2のRNA誘導ヌクレアーゼとによって編集されるという要件の両方を組み込んでいる。例えば、TTTV AsCpf1野生型プロトスペーサー隣接モチーフ(「PAM」)及びNGGSpCas9野生型PAMを本例で用いた。上述したように、試験Cpf1タンパク質は、野生型Cpf1タンパク質と比較して1つ又は複数の修飾を含み得る。このような修飾の例としては、1つ又は複数のNLS配列を組み込むための前述の修飾、6-ヒスチジン精製配列を組み込むための前述の修飾及びCpf1タンパク質システインアミノ酸の改変並びにそれらの組み合わせが挙げられるが、これらに限定されない。
本例で用いられた例示的な一致部位標的核酸配列としては、一致部位1(「MS1」;配列番号13)、一致部位5(「MS5」;配列番号14)、一致部位11(「MS11」;配列番号15)及び一致部位18(「MS18」;配列番号18)が挙げられる(図2)。
例えば、CD34HSCなどの特定の細胞型における、CRISPR/Cpf1媒介標的核酸配列の編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整をCRISPR/Cas9媒介と対比して評価するために、CRISPR/Cpf1ゲノム編集システム、すなわちCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、一致部位標的を含む標的核酸の少なくとも一部に相補的なgRNAとを含むシステムが、例えば、RNPとして又はシステムの構成要素をコードするベクターの使用を介して、関心のある細胞型の細胞に導入される。標的核酸配列の編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整は、本明細書で開示されるように検出される。検出された標的核酸配列の編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整は、同一の一致部位標的及び同一の細胞型に対してCRISPR/Cas9ゲノム編集システムを用いた場合に検出された標的核酸配列の編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整と比較される。
標的核酸配列のCRISPR/Cas9媒介編集(又は別のCRISPRベースのシステムによる編集)及び/又は標的核酸配列の発現の調整と対比して、CRISPR/Cpf1媒介を比較する上記の方法は、用いられるCRISPR/Cpf1媒介編集システムの特定の属性の評価を可能にする。例えば、限定されるものではないが、このような方法を使用して、標的核酸配列のCRISPR/Cas9媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整と対比してCRISPR/Cpf1媒介編集が評価され、異なる製造プロセスによって調製されたCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び/又はgRNAの活性の差異が同定され得る。このような方法は、異なる調合物に存在し、且つ異なる送達ストラテジーを用いるCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ及び/又はgRNAの活性の差異も同定し得る。
この実施例では、成人ヒト動員末梢血CD34造血幹/前駆細胞において、野生型(WT)S.ピオゲネス(S.pyogenes)(Sp)Cas9及びAsCpf1ヌクレアーゼの編集のベースラインレベルを比較した。これらのCD34細胞は、病的表現型がヌクレアーゼ修飾遺伝子型によって修正され得る血液学的障害(例えば、β異常ヘモグロビン症)の治療のための臨床標的である。CD34細胞におけるSpCas9及びAsCpf1によるベースライン編集を判定するために、細胞を解凍してサイトカインで予備刺激し、次にヒトゲノム中の一致部位(MS)を標的とするガイドRNAに複合体化されたAsCpf1又はSpCas9タンパク質で電気穿孔した(図2)。「一致部位」という用語は、ヌクレアーゼによって標的化される部位が、異なるPAM配列(それぞれNGG及びTTTV)を利用しているにもかかわらず、AsCpf1及びSpCas9の両方について同一であるという事実を指す。CD34細胞における効率的な編集に必要なリボ核酸(RNP)の最小有効濃度を判定するために、CD34細胞において、いくつかの一致部位についてRNP用量反応を実施したが、そのうちの2つが図3Aに描写される。標的部位における編集の百分率を判定するために、AsCpf1又はSpCas9電気穿孔細胞からゲノム(g)DNAを抽出し、標的部位でアンプリコンPCRを実施し、DNA配列決定分析がそれに続いた。
図3Aは、AsCpf1が同一標的部位の編集においてSpCas9よりも実質的に効率的である1つの事例(MS5)及びSpCas9が同一標的部位の編集においてAsCpf1と比較してより効率的である1つの事例(MS1)の結果を図示する。MS5を標的とするために使用したgRNAは、MS5ガイドRNAであった。この例では、約4μMのCpf1 RNPは、一致部位5において効率的な(約60%)編集をサポートし、この編集は、その部位を標的とする同一用量のSpCas9 RNPによって達成された編集と比較してより高かった(図3A)。
図3Bは、電気穿孔後に複数の一致部位を4.4μM RNPで比較した結果を示す。これらの結果は、部位において編集が生じたことを確立し、その中では、a)SpCas9は、AsCpf1よりも効率的であり、b)AsCpf1は、SpCas9よりも効率的であり、c)編集のレベルは、SpCas9とAsCpf1との間で同様であった。
CD34細胞における編集のための最適なタンパク質構成を判定するために、例えばAsCpf1タンパク質のC末端又はN末端などの異なる位置に位置する、異なるタイプのNLS配列を含有するAsCpf1タンパク質を合成した。本明細書に記載されるように、nNLSは、ヌクレオプラスミンNLSを表し、sNLSは、SV40 NLSを指す(図4)。この実施例では、次のNLS構成を分析した:His-AsCpf1-nNLS(配列番号3)、His-sNLS-sNLS-AsCpf1(配列番号7)、His-sNLS-AsCpf1(配列番号6)、His-sNLS-AsCpf1-sNLS(配列番号9)、His-AsCpf1-sNLS-sNLS(配列番号5)及びHis-AsCpf1-sNLS(配列番号4)。異なるタンパク質変異型をMS5 gRNAと複合体化させ、次にCD34細胞、T細胞及びHUDEP内に電気穿孔した(4.4μM RNP)。図4では、各細胞型の最大編集を提示する変異型に正規化された%編集として結果が描写される。総合して、これらのデータは、異なる種のヌクレアーゼがCD34細胞(他の細胞の中で特に)の同一標的部位において様々な活性を有していること及び効率的な編集が(他の細胞の中で特に)CD34細胞においてAsCpf1によって達成され得ることを示す。特に、図4に示されるように、NLS構成His-sNLS-sNLS-AsCpf1、His-sNLS-AsCpf1及びHis-AsCpf1-sNLS-sNLSを有するタンパク質変異型は、全ての細胞型にわたりMS5における高い編集を示した。
実施例2 - 電気穿孔パルスコードスクリーニング
本開示のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼによるより高効率の編集可能にする電気穿孔パルスコードを同定するために、可能なパルスコードのスクリーニングを実施した。図18は、HUDEPにおけるAsCpf1のヌクレオフェクションスクリーニングを示す。用量は、2:1のガイド:タンパク質で一致部位5ガイドRNAを使用して2.2μM AsCpf1 RNPであった。AsCpf1 WTタンパク質は、<5EU/mLの内毒素レベルを有した。Lonza溶液SE、SF及びSGは、異なるパルスプログラムを使用して、1条件当たり5万個のHUDEPで試験した。溶液SEでのパルスコードCA-137及びCA-138は、最適な編集を実証した。
図19は、HSCにおけるAsCpf1のヌクレオフェクションスクリーニングを示す。用量は、2:1のガイド:タンパク質で一致部位5(MS5)ガイドRNAを使用して2.2μM AsCpf1 RNPであった。AsCpf1 WTタンパク質は、<5EU/mLの内毒素レベルを有した。Lonza溶液P1、P2、P3、P4及びP5は、異なるパルスプログラムを使用して、1条件当たり5万個のHSCで試験した。溶液P2でのパルスコードCA-137(本明細書では「条件2」とも称される)及びCA-138は、最適な編集を実証し、FF-100及びFF-104も同様であった。
図20は、上記のスクリーニングで同定されたパルスコードの効率の向上を確認する。具体的には、図20は、Lonza Amaxaにおける特定のパルスコードの使用が、様々なgRNA及びPAM変異型を使用したHSC中のBCL11a遺伝子座における編集を増加させることを示す。用量は、全てのガイドに対して、2:1のガイド:タンパク質比率で4.4μM RNPであった。1条件当たり5万個のHSCを処理した。AsCpf1 WT、RR及びRVRタンパク質は、<5EU/mLの内毒素レベルを有した。
実施例3 - 胎児型ヘモグロビンの産生の増加に関連するヒトゲノム中の標的部位におけるCD34細胞のAsCpf1指向編集
胎児型ヘモグロビン(HbF)の発現は、転写リプレッサー、BCL11Aの赤血球細胞特異的発現の標的化された破壊を通じて誘導される(Canvers et al.,Nature,527(12):192-197)。遺伝子編集ストラテジーを通じてHbF発現を増加させる1つの潜在的なストラテジーは、Cpf1が、BCL11A遺伝子のイントロン2の+58DHS領域にあるBCL11A遺伝子の赤血球特異的エンハンサーのGATA1結合モチーフを破壊するように誘導することである。この例では、BCL11A遺伝子のイントロン2の+58DHS領域にある標的部位のAsCpf1媒介編集を評価した。
最初に、異なるPAMを有するAsCpf1変異型ガイドRNA(図1)をHUDEP2細胞でスクリーニングし、次に最も効率的なガイドRNA及びヌクレアーゼ変異型をmPB CD34細胞内で試験した(図17)。図17で試験されたガイドRNAの配列は、図7に提供される。特に、図17は、HUDEP及びHSCにおける1つのWT FnCpf1標的と共に、AsCpf1 WT及びRR及びRVR PAM変異型によるBCL11aエンハンサー領域のスクリーニングを示す。HUDEPスクリーニングは、CA-137パルスプログラム及びLonza溶液SEを用いて実施した。HSCスクリーニングは、パルスコードEO-100とLonza溶液P3とを用いて実施した。BCL11a(図17ではKOBEHと命名される)の対照ガイドも示される。用量は、全てのガイドに対して、2:1のガイド:タンパク質比率で4.4μM RNPであった。1条件当たりおよそ5万個のHSCを処理した。AsCpf1 WT、RR及びRVRタンパク質は、<5EU/mL)の内毒素レベルを有した。
HbF発現を増加させる別の潜在的なストラテジーは、例えば、HBG1又はHBG2などのHBG遺伝子の標的化された破壊を介したものである。図16は、HUDEP及びHSCにおける、AsCpf1 WT及びRR PAM変異型によるHBG1プロモーター領域の標的化を示す。図16で試験されたガイドRNAの配列は、図6に提供される。モラクセラ・ボボクリ(Moraxella bovoculi)AAX11_00205(Mb3Cpf1)も試験したが、それは、図6でMbCpf1と称される。HUDEP実験は、CA-137パルスプログラムとLonza溶液SEとを用いて実施した。HSCスクリーニングは、パルスコードEO-100とLonza溶液P3とを用いて実施した。用量は、全てのガイドに対して、2:1のガイド:タンパク質比率で4.4μM RNPであった。1条件当たりおよそ5万個のHSCを処理した。AsCpf1 WT及びRRタンパク質は、<5EU/mLの内毒素レベルを有した。図34は、HBG1-1gRNAを使用したHBG1遺伝子座の編集を示す。AsCpf1は、細胞内で8μMの最終RNP用量のために、1:4のタンパク質:ガイド比でgRNAと複合体化させた。RNPは、複合体形成のために室温で30分間インキュベートした。図34に示されるように、HBG1-1gRNAの使用は、HSCに60%を超える編集をもたらした。図16及び図34で示される編集効率間の差異は、例えば、電気穿孔パルスコードなどのその下で実験が実施された異なる条件を反映する。
総合して、これらのデータは、臨床的に関連する遺伝子座におけるCD34細胞のAsCpf1変異型による効率的な編集を示す(すなわち既知のHPFH標的部位)。
実施例4 - システイン修飾Cpf1タンパク質及びRNPの生成
ジスルフィド結合形成は、タンパク質凝集を促進することが知られていることから、改変されて、ジスルフィド結合形成の可能性を減少させ得るシステインを同定する努力の一環として、Cpf1結晶構造及び既知のCpf1一次アミノ酸配列を分析した(図13)。Cpf1に存在する8つのシステインのいくつかは、溶媒に曝露されているようであった一方、他のものは、埋没され、他の分子間システインから隔絶されているようであり、したがってジスルフィド結合形成のリスクは、高くなかった(図13)。AlexaFluor 488 C5マレイミド(パーツ番号A10254、ThermoFisher Scientific)によるシステイン標識アッセイを使用して、48時間のインキュベーション後における、野生型及び残基C379がセリンに変異していない変異型と比較した、AsCpf1 C334S C379S C674S中のシステイン残基の有意に低下したアクセス性を実証した(図14)。「AsCpf1システインなし」サンプルは、マレイミド試薬による標識を示さない。C379で変異していない変異型であるAsCpf1 C334S C674Sサンプルは、野生型とほぼ同等の標識を示し、結晶構造内で部分的に曝露しているようであるC379がAlexaFluor 488 C5マレイミド試薬に容易にアクセス可能であることが示唆された。全ての標識反応は、製造業者の推奨事項に従って実施した。簡潔に述べると、これは、H150緩衝液及び10%DMSO中で最低24時間にわたり4°Cでインキュベートされる、10μMのタンパク質を有するAlexaFluor 488 C5マレイミド染料の20倍のモル過剰量を必要とする。
上述した野生型及び3つの変異型の編集能力は、図15で比較された。Cys-less AsCpf1では編集の減少が観察される一方、AsCpf1-C334S-C674S及びAsCpf1-C334S-C379S-C674S変異型では、AsCpf1野生型と同様の編集レベルが達成された(図15)。
実施例5 - 初代T細胞におけるCRISPR-Cpf1による高効率編集
序論
CRISPR-Cpf1(Cas12a)システムは、エクスビボゲノム編集治療において、他のヌクレアーゼに比べて、容易に合成され得るより小さい単一crRNA、野生型タンパク質及び操作されたPAM変異型によってT及びCに富むPAMを標的とする能力及び異なる修復結果をもたらし得る5’ねじれ型カットをはじめとする、いくつかの潜在的な利点を提供し得る。
エクスビボ送達のために、リボ核タンパク質(RNP)複合体の使用は、多くの場合、プラスミドDNAなどの核酸ベースの送達よりも好ましくあり得る。本明細書では、いくつかのCpf1オルソログをRNPとして生成し、複数の細胞型においてSpCas9により、標的化可能な複数のゲノム遺伝子座で堅固に編集した。AsCpf1及びその遺伝子操作されたRR及びRVRPAM変異型による、T細胞における90%を超える編集が実証された。
タンパク質レベル及びガイドレベルの両方におけるCpf1 RNP複合体の活性の改善が実証され、それは、細胞型全体にわたり効性を改善した。集合的に、知見は、ゲノム編集治療のための、Cpf1ヌクレアーゼのRNP送達の有望性を強調した。
結果
いくつかの試験Cpf1オルソログからAsCpf1を選択した。初代T細胞におけるAsCpf1スクリーニングは、いくつかの適切な標的部位を産生した。図21及び図25は、TRBC、TRAC及びB2M遺伝子座における、AsCpf1及びそのRR及びRVR PAM変異型によるT細胞治療標的のスクリーニングを示す。図21で試験されたガイドRNAの配列は、表4に提供される。各標的について、パルスコードCA-137及び緩衝液P2を用いてAmaxa nucleofector(Lonza)を使用して、2μLの50μM Cas9又はCpf1 TRACガイド(2:1のタンパク質:ガイド比率)の最終濃度4.4μMで50万個のT細胞を電気穿孔した。タンパク質のノックアウト百分率は、フローサイトメトリーによって測定した。予備スクリーニングで、約30%のgRNAが50%を超える編集を示し、これは、一般に観察されたSpCas9ヒット率と同レベルであり、Cpf1が、重要な治療遺伝子座又は複数の治療遺伝子座において遺患者のT細胞を遺伝子編集するために潜在的に使用され得ることが示された。図21、図25及び図28に概説された結果は、4つの同種異系T細胞標的(TRBC、TRAC、B2M及びCIITA)上のT細胞における、AsCpf1 WT、RR及びRVRの高い編集効率を示し、これは、図26に要約される。特に、37~43%のガイドが>50%の編集を与え、ヒットに分類される。
T細胞における効率的な編集は、NLSの構成及び電気穿孔条件を変更することで達成した。CAR及びTCR操作されたT細胞療法は、免疫腫瘍学の展望に変革的付加価値をもたらす可能性を有する。図32に示されるように、特定の電気穿孔条件は、T細胞における最大編集を改善する。図32でRR-25と標識されるガイドRNAは、本明細書において、「B2M-2」、「B2M-29」及び「B2M29-RR」とも本明細書で称される。図32でWT-11と標識されるガイドRNAは、本明細書において、「B2M-1」、「B2M-12」及び「B2M12-WT」とも本明細書で称される。さらに、電気穿孔パルスコードの変更も、図22に示されるように、複数の治療標的遺伝子座におけるT細胞の最大編集を有意に改善した。標的番号2は、TRBCであり、標的番号3は、B2Mであった。パルスコード番号1は、DS-130であり(本明細書では「条件1」とも称される)、パルスコード番号2は、CA-137であった(本明細書では「条件2」とも称される)。各標的について、パルスコードDS-130と、緩衝液P2又はパルスコードCA-137と、緩衝液P2とを用いてAmaxa nucleofector(Lonza)を使用して、各RNPについて、2μLの50μM Cas9又はCpf1 RNPと、TRBC又はB2Mを標的とするガイド(2:1のガイド:タンパク質の比率)の4.4μMの最終濃度で50万個のT細胞を電気穿孔した。タンパク質のノックアウト百分率は、4日後にフローサイトメトリーによって測定した。図33に示されるように、NLSの構成を変更することは、T細胞における効力も改善した。AspCpf1 NLS v2(本明細書では「His-AsCpf1-sNLS-sNLS」とも称される)は、AspCpf1 NLS v1(本明細書では「His-AsCpf1-sNLS」とも称される」)より優れた編集効率を示した。
効率的な単一及び複数のノックアウト編集は、Cpf1 RNPを用いて、疾患関連遺伝子座の初代T細胞で達成された。図23Aは、エクスビボ細胞療法のRNPワークフローを示す。AsCpf1又は操作されたPAM変異型を使用した、治療に関連する複数のT細胞座(TRAC、TRBC及びB2M)における効率的な単一ノックアウトを図23Bに示す。3つのT細胞標的(TRAC、TRBC及びB2M)における単一ノックアウトで比較を行った。各標的について、パルスコードDS-130及び緩衝液P2を用いてAmaxa nucleofector(Lonza)を使用して、2μLの50μM Cas9又はCpf1 RNP(2:1のタンパク質:ガイド比率)の最終濃度4.4μMで50万個のT細胞を電気穿孔した。タンパク質のノックアウト百分率は、4日後にフローサイトメトリーによって測定した。TRACガイドは、AsCpf1 RR酵素を有するTRAC-140であった(本明細書では「TRAC-2」及び「TRAC-140RR」とも称される)。TRBCガイドは、AsCpf1 WT酵素を有するTRBC-4であった。B2Mガイドは、AsCpf1 WT酵素を有するB2M-12であった。図29は、SpCas9と比較した、Cpf1 RNPを使用した複数の治療的に関連するT細胞座における単一ノックアウトの効率を示す。
Cpf1 RNPで処理されたT細胞における2つの治療標的(TCR及びB2M)の高効率な二重ノックアウトは、図24に示すようにフローサイトメトリーによって測定した。図24は、TRAC及びB2Mが効果的にノックダウンされたT細胞の分布を示す。各標的について、パルスコードDS-130と緩衝液P2とを用いてAmaxa nucleofector(Lonza)を使用して、各RNPについて、1μLの100μM Cas9又はCpf1 RNPと、B2Mを標的とするガイドと並んで、1μLの100μM Cas9又はCpf1 RNPと、TRACを標的とするガイド(2:1のタンパク質:ガイド比率)の最終濃度4.4μMで50万個のT細胞を電気穿孔した。タンパク質%ノックアウトは、4日後にフローサイトメトリーによって測定した。TRACガイドは、AsCpf1 RR酵素を有するTRAC-140であった。B2Mガイドは、AsCpf1 WT酵素を有するB2M-12であった。
図27は、ヒト初代T細胞における、Cpf1又はCas9による2つのT細胞標的、B2M及びTRACの二重ノックアウトを図示する。各標的について、パルスコードCA-137と緩衝液P2とを用いてAmaxa nucleofector(Lonza)を使用して、TRAC又はB2M Cas9又はCpf1ガイドのいずれかと複合体化した(4:1のタンパク質:ガイド比率)2μLの50μM Cas9又はCpf1タンパク質の最終RNP濃度4.4μMで50万個のT細胞を電気穿孔した。タンパク質のノックアウト百分率は、フローサイトメトリーによって測定した。図27に示されるように、ほとんどのT細胞は、B2MとTRACとの両方をノックダウンするように問題なく編集された。また、これらの結果は、それぞれのT細胞標的に対して異なるヌクレアーゼを使用し得ることを示す。使用したCpf1 TRACガイドは、TRAC-140であり、Cpf1 B2Mガイドは、B2M-12であった。
図30は、ヒト初代T細胞におけるCpf1 RNPによる3つのT細胞標的(TRAC、B2M及びCIITA)の三重ノックアウトを図示する。タンパク質のノックアウト百分率は、フローサイトメトリーによって測定した。図30に示されるように、全ての3つのT細胞標的で効率的な編集が観察された。この実験は、TRACガイドTRAC-140に複合体化したAsCpf1 RR(PRO282)を有する2.9μMのRNPの、B2MガイドB2M-12に複合体化したAsCpf1 WT(PRO281)を有する2.9μMのRNP、CIITAガイドCIITA-34に複合体化したAsCpf1 WT(PRO281)を有する2.9μMのRNPを合計RNP濃度8.7μMで一緒に送達して実施した。各RNPについて、ガイド:タンパク質比率は、2:1であった。RNPは、Lonzaシステム上でパルスコードCA-137と緩衝液P2を使用して50万個のT細胞に送達した。編集は、TRAC及びB2Mではフローサイトメトリー及びNGSにより、CIITAではNGSのみで評価した。同様の結果は、TRACガイドTRAC-13、B2MガイドB2M-29及びCIITAガイドCIITA-45、CIITA-41及びCIITA-10を同一条件下で使用しても得られた。
図31Aは、潜在的なオフターゲットを同定し検証するために使用したワークフローを図示する。図31Bは、3つのT細胞標的、CIITA、TRAC及びB2Mに対するトップCpf1候補ガイドの特異性を要約する。図31A及び図31Bに示されるように、コンピュータを用いたDigenome-seq及びGUIDE-seqオフターゲットアッセイからの潜在的なオフターゲット部位の標的化アンプリコン配列決定により、検出可能なオフターゲットは、見いだされず、試験した全てのガイドRNAは、高い編集効率をもたらした。
図40は、T細胞標的TRAC、B2M及びCIITAについて、WT AsCpf1及びRR AsCpf1変異型のT細胞におけるトップ同種異系ガイドRNAの用量反応を示す。最高用量のRNPで処理された細胞からのゲノムDNAは、標的化アンプリコン配列決定に送って、ガイドのそれぞれの標的部位のインデルを評価した。この実験は、Lonza電気穿孔装置及びパルスコードCA-137を使用してT細胞において実施した。
実施例6 - CIITAのCpf1媒介性ノックアウトの表現型解析
T細胞におけるCIITAのノックアウトが主要組織適合性複合体クラスII(MHC II)受容体の発現に及ぼす影響を判定するために、CIITA遺伝子のエクソンを標的とするように操作されたRNPで細胞を形質移入した。この遺伝子は、MHC II受容体の表面発現に関与している。エクソン中のインデルは、CIITAを不活性化するトランケーションをもたらし、T細胞表面上のMHC II(HLA DR、DP、DQ)受容体の発現を妨げる。
AsCpf1変異型とガイドRNAとを1:2の比率で組み合わせることにより、AsCpf1 RNPを複合体化した。使用したgRNAは、CIITA-34(エクソン1を標的とする)、CIITA-41(エクソン2を標的とする)、CIITA-45(エクソン3を標的とする)及びCIITA-10(エクソン6を標的とする)であった(図37B)。gRNA CIITA-45は、本明細書では「CIITA-45 RR」及び「CIITA-2」とも称される。gRNA CIITA-41は、本明細書では「CIITA-41 RR」とも称される。gRNA CIITA-34は、本明細書では「CIITA-34 WT」とも称される。gRNA CIITA-10は、本明細書では「CIITA-1」及び「CIITA-10WT」とも称される。次に、サンプルを室温で30分間インキュベートした後、チューブを液体窒素に浸し、ヌクレオフェクションまで-80℃で保存した。3μLのRNPを96ウェルLonzaヌクレオフェクションプレートの各ウェルに移した。1条件当たり、50万個のT細胞を1500rpmで5分間遠心分離した。ペレットを1サンプル当たり20μLのLonzaP2ヌクレオフェクション緩衝液に再懸濁し、次に20μLの再懸濁T細胞をLonza96ウェルプレートの各ウェルに入れた。パルスコードCA-137を用いて、細胞を速やかにヌクレオフェクションした。次に、80μLの予熱した(37℃)増殖培地を各ウェルに混合した。100μLの増殖培地を有する予熱した96ウェルの非TC処理プレートに全量(3μLのRNP、P2バッファー中の20μLのT細胞及び80μLの培地)を移した。細胞は、分析まで5%COで37℃においてインキュベートした。ヌクレオフェクション後4日目に細胞のサブセットを溶解し、ゲノムDNAをIllumina配列決定のために提出した。残りの細胞をヌクレオフェクションの6日後に増殖させ、刺激培地(高IL-2、IL-7及びIL-15)内でCD3/CD28ビーズを使用して活性化し、MHC IIの表面発現を刺激した。7日目に細胞をビーズから洗い落とし、MHC II(HLA DR、DP、DQ)受容体を標的とするモノクローナル抗体で染色して、CIITAのノックアウトを表現型で評価した。この結合は、フローサイトメトリーを介して定量化した。
図36に提供される画像は、フローサイトメーターによるmAb(細胞表面)上のFITC-Aフルオロフォアの検出を描写する。蛍光強度は、細胞表面上のMHC II受容体へのmAb結合の有無に直接相関する。高い蛍光がMHC II受容体の表面発現が高いことを示す一方、シグナルの不在は、これらの受容体の成功裏のノックアウトを示す。X軸は、対数目盛上の蛍光強度の増加(左から右)を示す。Y軸は、事象(細胞)の発生率を直線的に表す。10の閾値は、ノックアウト集団と未編集団を離てる点として判定された。10の左側の細胞は、ノックアウト細胞として分類され、この閾値の右側の細胞は、未編集と見なされる。図36に示されるように、Cpf1ガイドCIITA-45は、MHC II陽性細胞の明らかな減少を示し、これは、未処理の細胞では見られない。T細胞は、パルスコードCA-137でLonzaシステムを使用して、CIITA-45と複合体化したAsCpf1 RRで処理した。さらに、ガイドは、CIITA遺伝子座で高い編集効率を有した(図37A)。
ガイドCIITA-41、CIITA-10及びCIITA-34は、CIHC-45と同様のMHC IIの減少を示した(図38)。このデータは、これら4つのガイドのそれぞれがCIITAを効率的に編集するだけでなく、望ましい表現型の効果も示すことを検証した。CIITAを高効率で編集することが知られているSpCas9ガイドは、陽性対照として示される。全てのCpf1又はSpCas9 CIITAガイドは、パルスコードCA-137でLonzaシステムを使用して、T細胞で4μMのRNP用量で試験した。最高用量のRNPで処理された細胞からのゲノムDNAは、標的化アンプリコン配列決定に送って、オフターゲット部位のインデルを評価した。CIITA-45及びCIITA-10の予測オフターゲット部位における検出の閾値を超えるインデル形成が観察されなかった一方、CIITA-34は、1つのオフターゲットを有した(図39)。
実施例7 - 編集効率に関するプロトスペーサーの長さ
ガイドRNAの標準プロトスペーサーは、20ヌクレオチド長であり、この配列は、標的DNA配列に相補的である。標的配列に相補的なヌクレオチドの数を増減することにより、ガイドRNAのその標的DNAへの結合エネルギーを変化させ得、形成されたインデルの百分率を変化させ得る。長さを18及び19に調節することで、ガイドB2M-12、B2M-29、TRAC-13(本明細書では「TRAC-13WT」及び「TRAC-1」とも称される)、CIITA-10及びCIITA-45のインデル形成が減少する(図41、図42及び図43)。さらに、図41、図42及び図43に示されるように、長さを20から21、22又は23ヌクレオチドに増やすことは、TRAC-140などのいくつかのガイドに対する最小限の影響を有し、TRAC-13、B2M-12、B2M-29、CIITA-10及びCIITA-45などの他のほとんどものの効力を向上させる。Lonza電気穿孔装置及びパルスコードCA-137を使用して、AsCpf1 WT又はAsCpf1 RRのいずれかにより、T細胞における用量反応の実験を実施した。
実施例8 - TRAC遺伝子座における標的化組み込み
図45に示されるように、T細胞受容体α定常(TRAC)遺伝子座を標的とするgRNAのために、例示的なDNAドナー鋳型を設計した。各ドナーは、同一カーゴ(hPGK-GFP-polyA配列)を含有したが、5’及び3’オーバーハング領域をはじめとする異なる相同性アーム配列を有した(表14)。各ドナーの相同性アーム長及びアーム配列は、それぞれ表Y及びZに示される。ドナー1は、両方のドナーの長さを同様に保つためのスタッファー配列(表16)を有する。適切なgRNA及び関連するAAVドナー鋳型を有するAsCpf1RRリボ核タンパク質を用いて、2つのドナー濃度で初代CD4+T細胞を用いて標的化組み込み実験を実施した。実験後、細胞を7日目まで増殖させ、フローサイトメトリーを行って、GFP発現による標的化組み込み率を調べた。
使用したgRNAは、TRAC-140:GUGACAAGUCUGUCUGCCUA(RNA配列);GTGACAAGTCTGTCTGCCTA(DNA配列)である。
Figure 2024023294000035
Figure 2024023294000036
Figure 2024023294000037
より高いAAVドナー濃度を使用した、TRAC遺伝子座における標的化組み込み効率は、表17に示される。
Figure 2024023294000038
表17に示されるように、長い相同性アーム(500bp)を含有するドナー鋳型は、より短い相同性アームを含有するドナーよりもわずかに高いレベルの標的化組み込みを有した。
実施例9:HBGプロモーター領域を標的とするCpf1 gRNAのスクリーニング
単一RNPの構成要素として又は「ブースター要素」と組み合わせて、CD34+細胞におけるHBGプロモーター領域の編集を増加させ、修飾細胞の赤血球子孫における胎児型グロビン発現を誘導するために使用し得る他のAsCpf1 gRNAを同定するために、HBGプロモーターのいくつかのドメインを標的とするHis-AsCpf1-NLS-NLS(「AsCpf1」);AsCpf1 S542R/K607R(「AsCpf1 RR」);又はAsCpf1 S542R/K548V/N552R(「AsCpf1 RVR」)gRNA配列(表18)を設計した(表19及び図46に列挙される)。AsCpf1 RR及びAsCpf1 RVRは、それぞれTYCV/ACCC/CCCC及びTATV/RATR PAMを認識する操作されたAsCpf1変異型である(Gao 2017)。
Figure 2024023294000039
Figure 2024023294000040
Figure 2024023294000041
Figure 2024023294000042
Figure 2024023294000043
Figure 2024023294000044
Figure 2024023294000045
Figure 2024023294000046
Amaxa電気穿孔装置(Lonza)を使用して、RNP(5μM)含有AsCpf1タンパク質、AsCpf1 RRタンパク質又は表19の単一gRNAと複合体化したAsCpf1 RVR(使用した特定のCpf1分子についてはgRNA ID名称を参照されたい;図46は、gRNAの登録簿識別番号を提供する)を動員された末梢血(mPB)CD34+細胞に送達した。72時間後、細胞からゲノムDNAを抽出し、次にPCR増幅された標的部位のIllumina配列決定(NGS)により、挿入/欠失のレベルを分析した。各gRNAの編集の百分率(インデル=欠失及び挿入)が上記の表19に示される。特定の実施形態では、表19(及び図46)に記載されるgRNAの1つ又は複数を含むCpf1 RNPを使用して、表18に列挙される領域を標的とし、HbF発現を誘導し得る。
RNP複合体を生成するために、Cpf1 gRNAを1xH150+マグネシウム(10nmolesに対して28.4μl)中で352μMに希釈し、AB1400 PCRプレートに移し、スローアニールプロトコル(90℃~25℃で2%ランプとそれに続く4℃)で稼働するPCR装置に入れた。AB1400L PCRプレートに5μlの352uMアニールガイドを添加し、Cpf1を1xHG300で176μMに希釈し、5μlの352μMアニールガイドに5μlの176μM Cpf1を添加して、10μlの88μM RNPを得た。
LonzaヌクレオフェクションによってRNPを成人体HSCに導入するために、必要な増殖因を有する130μlの完全HSC培地をCellStarプレート130μlに添加し、必要になるまで37°Cのインキュベーターに入れた。成人HSCをCountess上で係数し、50K細胞/ウェル:2.50e6細胞/ml(2プレートのバイオレップスでは10.5e6細胞)の処方に基づいて、2つのバイオレップス(2プレート)をカバーするのに十分な細胞を15ml又は50mlの円錐管にピペットで移した。次に、1本の管(2プレートバイオレップス相当)をBeckman遠心分離機内において1000rpmで5分間遠心沈殿させた。培地を除去し、細胞をP2溶液(全プレートでは4.2ml)に再懸濁した。大容量分注スチップを備えたMantisを使用して、Nucleocuvetteプレートの1ウェル当たり20μlの細胞溶液を分注した。P50チップを備えたBiomekを使用して、細胞を含有するNucleocuvetteプレートに2μlのRNPを移し、ピペットで上下させることによって混合した。次に、プレートをAmaxaシャトルに入れて、CA-137/溶液P2のプログラムCpf1を実行した。P50チップを備えたBiomekを使用して、細胞を培地と共にNuclecocuvetteプレートから余熱したCellStarプレートに移し、37℃で72時間インキュベートした。製造業者の使用説明に従ってDNAdvanceキットを使用して、ゲノムDNAを細胞から抽出した。hg38参照ゲノムに対する挿入/欠失は、標的部位のNGS分析を使用して定量化した。
参照による援用
全本明細書で言及される全ての文献、特許及び特許出願は、あたかも個々の出版物、特許又は特許出願が、具体的に且つ個別に、参照により援用されると示されるかのように、その内容全体を参照により本明細書に援用する。矛盾する場合、本明細書の任意の定義をはじめとして、本出願が優先される。
均等物
当業者は、日常的実験のみを用いて、本明細書に記載される特定の実施形態の多数の均等物を認識するか又は見極めることができるであろう。このような均等物は、以下の特許請求の範囲に包含されることが意図される。

SEQUENCE LISTING

<110> EDITAS MEDICINE, INC.

<120> CPF1-RELATED METHODS AND COMPOSITIONS FOR GENE EDITING

<130> 084177.0233

<150> PCT/US2018/065032
<151> 2018-12-11

<150> US 62/597,118
<151> 2017-12-11

<150> US 62/623,501
<151> 2018-01-29

<150> US 62/664,905
<151> 2018-04-30

<150> US 62/746,494
<151> 2018-10-16

<160> 1299

<170> PatentIn version 3.5

<210> 1
<211> 16
<212> PRT
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> the nucleoplasmin NLS (nNLS)

<400> 1

Lys Arg Pro Ala Ala Thr Lys Lys Ala Gly Gln Ala Lys Lys Lys Lys
1 5 10 15


<210> 2
<211> 7
<212> PRT
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> simian virus 40 "SV40" NLS

<400> 2

Pro Lys Lys Lys Arg Lys Val
1 5


<210> 3
<211> 1332
<212> PRT
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Asp Cpf1 NLS v1

<400> 3

Met Lys His His His His His His Met Thr Gln Phe Glu Gly Phe Thr
1 5 10 15


Asn Leu Tyr Gln Val Ser Lys Thr Leu Arg Phe Glu Leu Ile Pro Gln
20 25 30


Gly Lys Thr Leu Lys His Ile Gln Glu Gln Gly Phe Ile Glu Glu Asp
35 40 45


Lys Ala Arg Asn Asp His Tyr Lys Glu Leu Lys Pro Ile Ile Asp Arg
50 55 60


Ile Tyr Lys Thr Tyr Ala Asp Gln Cys Leu Gln Leu Val Gln Leu Asp
65 70 75 80


Trp Glu Asn Leu Ser Ala Ala Ile Asp Ser Tyr Arg Lys Glu Lys Thr
85 90 95


Glu Glu Thr Arg Asn Ala Leu Ile Glu Glu Gln Ala Thr Tyr Arg Asn
100 105 110


Ala Ile His Asp Tyr Phe Ile Gly Arg Thr Asp Asn Leu Thr Asp Ala
115 120 125


Ile Asn Lys Arg His Ala Glu Ile Tyr Lys Gly Leu Phe Lys Ala Glu
130 135 140


Leu Phe Asn Gly Lys Val Leu Lys Gln Leu Gly Thr Val Thr Thr Thr
145 150 155 160


Glu His Glu Asn Ala Leu Leu Arg Ser Phe Asp Lys Phe Thr Thr Tyr
165 170 175


Phe Ser Gly Phe Tyr Glu Asn Arg Lys Asn Val Phe Ser Ala Glu Asp
180 185 190


Ile Ser Thr Ala Ile Pro His Arg Ile Val Gln Asp Asn Phe Pro Lys
195 200 205


Phe Lys Glu Asn Cys His Ile Phe Thr Arg Leu Ile Thr Ala Val Pro
210 215 220


Ser Leu Arg Glu His Phe Glu Asn Val Lys Lys Ala Ile Gly Ile Phe
225 230 235 240


Val Ser Thr Ser Ile Glu Glu Val Phe Ser Phe Pro Phe Tyr Asn Gln
245 250 255


Leu Leu Thr Gln Thr Gln Ile Asp Leu Tyr Asn Gln Leu Leu Gly Gly
260 265 270


Ile Ser Arg Glu Ala Gly Thr Glu Lys Ile Lys Gly Leu Asn Glu Val
275 280 285


Leu Asn Leu Ala Ile Gln Lys Asn Asp Glu Thr Ala His Ile Ile Ala
290 295 300


Ser Leu Pro His Arg Phe Ile Pro Leu Phe Lys Gln Ile Leu Ser Asp
305 310 315 320


Arg Asn Thr Leu Ser Phe Ile Leu Glu Glu Phe Lys Ser Asp Glu Glu
325 330 335


Val Ile Gln Ser Phe Cys Lys Tyr Lys Thr Leu Leu Arg Asn Glu Asn
340 345 350


Val Leu Glu Thr Ala Glu Ala Leu Phe Asn Glu Leu Asn Ser Ile Asp
355 360 365


Leu Thr His Ile Phe Ile Ser His Lys Lys Leu Glu Thr Ile Ser Ser
370 375 380


Ala Leu Cys Asp His Trp Asp Thr Leu Arg Asn Ala Leu Tyr Glu Arg
385 390 395 400


Arg Ile Ser Glu Leu Thr Gly Lys Ile Thr Lys Ser Ala Lys Glu Lys
405 410 415


Val Gln Arg Ser Leu Lys His Glu Asp Ile Asn Leu Gln Glu Ile Ile
420 425 430


Ser Ala Ala Gly Lys Glu Leu Ser Glu Ala Phe Lys Gln Lys Thr Ser
435 440 445


Glu Ile Leu Ser His Ala His Ala Ala Leu Asp Gln Pro Leu Pro Thr
450 455 460


Thr Leu Lys Lys Gln Glu Glu Lys Glu Ile Leu Lys Ser Gln Leu Asp
465 470 475 480


Ser Leu Leu Gly Leu Tyr His Leu Leu Asp Trp Phe Ala Val Asp Glu
485 490 495


Ser Asn Glu Val Asp Pro Glu Phe Ser Ala Arg Leu Thr Gly Ile Lys
500 505 510


Leu Glu Met Glu Pro Ser Leu Ser Phe Tyr Asn Lys Ala Arg Asn Tyr
515 520 525


Ala Thr Lys Lys Pro Tyr Ser Val Glu Lys Phe Lys Leu Asn Phe Gln
530 535 540


Met Pro Thr Leu Ala Ser Gly Trp Asp Val Asn Lys Glu Lys Asn Asn
545 550 555 560


Gly Ala Ile Leu Phe Val Lys Asn Gly Leu Tyr Tyr Leu Gly Ile Met
565 570 575


Pro Lys Gln Lys Gly Arg Tyr Lys Ala Leu Ser Phe Glu Pro Thr Glu
580 585 590


Lys Thr Ser Glu Gly Phe Asp Lys Met Tyr Tyr Asp Tyr Phe Pro Asp
595 600 605


Ala Ala Lys Met Ile Pro Lys Cys Ser Thr Gln Leu Lys Ala Val Thr
610 615 620


Ala His Phe Gln Thr His Thr Thr Pro Ile Leu Leu Ser Asn Asn Phe
625 630 635 640


Ile Glu Pro Leu Glu Ile Thr Lys Glu Ile Tyr Asp Leu Asn Asn Pro
645 650 655


Glu Lys Glu Pro Lys Lys Phe Gln Thr Ala Tyr Ala Lys Lys Thr Gly
660 665 670


Asp Gln Lys Gly Tyr Arg Glu Ala Leu Cys Lys Trp Ile Asp Phe Thr
675 680 685


Arg Asp Phe Leu Ser Lys Tyr Thr Lys Thr Thr Ser Ile Asp Leu Ser
690 695 700


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Gly Ile Phe Tyr Asp Ser Arg Asn Tyr Glu Ala Gln Glu Asn Ala
1160 1165 1170


Ile Leu Pro Lys Asn Ala Asp Ala Asn Gly Ala Tyr Asn Ile Ala
1175 1180 1185


Arg Lys Val Leu Trp Ala Ile Gly Gln Phe Lys Lys Ala Glu Asp
1190 1195 1200


Glu Lys Leu Asp Lys Val Lys Ile Ala Ile Ser Asn Lys Glu Trp
1205 1210 1215


Leu Glu Tyr Ala Gln Thr Ser Val Lys His
1220 1225


<210> 19
<211> 1206
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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Met Tyr Tyr Glu Ser Leu Thr Lys Gln Tyr Pro Val Ser Lys Thr Ile
1 5 10 15


Arg Asn Glu Leu Ile Pro Ile Gly Lys Thr Leu Asp Asn Ile Arg Gln
20 25 30


Asn Asn Ile Leu Glu Ser Asp Val Lys Arg Lys Gln Asn Tyr Glu His
35 40 45


Val Lys Gly Ile Leu Asp Glu Tyr His Lys Gln Leu Ile Asn Glu Ala
50 55 60


Leu Asp Asn Cys Thr Leu Pro Ser Leu Lys Ile Ala Ala Glu Ile Tyr
65 70 75 80


Leu Lys Asn Gln Lys Glu Val Ser Asp Arg Glu Asp Phe Asn Lys Thr
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Gln Asp Leu Leu Arg Lys Glu Val Val Glu Lys Leu Lys Ala His Glu
100 105 110


Asn Phe Thr Lys Ile Gly Lys Lys Asp Ile Leu Asp Leu Leu Glu Lys
115 120 125


Leu Pro Ser Ile Ser Glu Asp Asp Tyr Asn Ala Leu Glu Ser Phe Arg
130 135 140


Asn Phe Tyr Thr Tyr Phe Thr Ser Tyr Asn Lys Val Arg Glu Asn Leu
145 150 155 160


Tyr Ser Asp Lys Glu Lys Ser Ser Thr Val Ala Tyr Arg Leu Ile Asn
165 170 175


Glu Asn Phe Pro Lys Phe Leu Asp Asn Val Lys Ser Tyr Arg Phe Val
180 185 190


Lys Thr Ala Gly Ile Leu Ala Asp Gly Leu Gly Glu Glu Glu Gln Asp
195 200 205


Ser Leu Phe Ile Val Glu Thr Phe Asn Lys Thr Leu Thr Gln Asp Gly
210 215 220


Ile Asp Thr Tyr Asn Ser Gln Val Gly Lys Ile Asn Ser Ser Ile Asn
225 230 235 240


Leu Tyr Asn Gln Lys Asn Gln Lys Ala Asn Gly Phe Arg Lys Ile Pro
245 250 255


Lys Met Lys Met Leu Tyr Lys Gln Ile Leu Ser Asp Arg Glu Glu Ser
260 265 270


Phe Ile Asp Glu Phe Gln Ser Asp Glu Val Leu Ile Asp Asn Val Glu
275 280 285


Ser Tyr Gly Ser Val Leu Ile Glu Ser Leu Lys Ser Ser Lys Val Ser
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Ala Phe Phe Asp Ala Leu Arg Glu Ser Lys Gly Lys Asn Val Tyr Val
305 310 315 320


Lys Asn Asp Leu Ala Lys Thr Ala Met Ser Asn Ile Val Phe Glu Asn
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Trp Arg Thr Phe Asp Asp Leu Leu Asn Gln Glu Tyr Asp Leu Ala Asn
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Leu Lys Lys Asn Lys Ser Tyr Ser Leu Glu His Leu Cys Asn Leu Ser
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Glu Asp Ser Cys Asn Leu Ile Glu Asn Tyr Ile His Gln Ile Ser Asp
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Asp Ile Glu Asn Ile Ile Ile Asn Asn Glu Thr Phe Leu Arg Ile Val
405 410 415


Ile Asn Glu His Asp Arg Ser Arg Lys Leu Ala Lys Asn Arg Lys Ala
420 425 430


Val Lys Ala Ile Lys Asp Phe Leu Asp Ser Ile Lys Val Leu Glu Arg
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Glu Leu Lys Leu Ile Asn Ser Ser Gly Gln Glu Leu Glu Lys Asp Leu
450 455 460


Ile Val Tyr Ser Ala His Glu Glu Leu Leu Val Glu Leu Lys Gln Val
465 470 475 480


Asp Ser Leu Tyr Asn Met Thr Arg Asn Tyr Leu Thr Lys Lys Pro Phe
485 490 495


Ser Thr Glu Lys Val Lys Leu Asn Phe Asn Arg Ser Thr Leu Leu Asn
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Gly Trp Asp Arg Asn Lys Glu Thr Asp Asn Leu Gly Val Leu Leu Leu
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Lys Asp Gly Lys Tyr Tyr Leu Gly Ile Met Asn Thr Ser Ala Asn Lys
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545 550 555 560


Val Asp Tyr Lys Leu Leu Pro Val Pro Asn Gln Met Leu Pro Lys Val
565 570 575


Phe Phe Ala Lys Ser Asn Ile Asp Phe Tyr Asn Pro Ser Ser Glu Ile
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Tyr Ser Asn Tyr Lys Lys Gly Thr His Lys Lys Gly Asn Met Phe Ser
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Lys His Glu Asp Trp Ser Lys Phe Gly Phe Lys Phe Ser Asp Thr Ala
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Ser Tyr Asn Asp Ile Ser Glu Phe Tyr Arg Glu Val Glu Lys Gln Gly
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Leu Ile Ile His Lys Ala Gly Glu Glu Ile Lys Asn Lys Asn Pro Asn
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Asp Met Ile Ile Ser Asn Glu Glu Ala Glu Phe Tyr Arg Arg Leu
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Asp Ala Asp Ala Asn Gly Ala Tyr Asn Ile Ala Arg Lys Gly Leu
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Trp Val Leu Glu Gln Ile Arg Gln Lys Ser Glu Gly Glu Lys Ile
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aagtacggca tcaactacca gcagggcgac atccgggccc tgctgtgcga gcagagcgac 3360

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ttctacgaca gccggaacta cgaggcccag gagaacgcca tcctgcccaa gaacgccgac 3540

gccaacggcg cctacaacat cgcccggaag gtgctgtggg ccatcggcca gttcaagaag 3600

gccgaggacg agaagctgga caaggtgaag atcgccatca gcaacaagga gtggctggag 3660

tacgcccaga ccagcgtgaa gcacaagcgg cccgccgcca ccaagaaggc cggccaggcc 3720

aagaagaaga agggcagcta cccctacgac gtgcccgact acgcctaccc ctacgacgtg 3780

cccgactacg cctaccccta cgacgtgccc gactacgcct ga 3822


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ctgtacaacc agaagaacca gaaggccaac ggcttccgga agatccccaa gatgaagatg 780

ctgtacaagc agatcctgag cgaccgggag gagagcttca tcgacgagtt ccagagcgac 840

gaggtgctga tcgacaacgt ggagagctac ggcagcgtgc tgatcgagag cctgaaaagc 900

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gacagcatca aggtgctgga gcgggagctg aagctgatca acagcagcgg ccaggagctg 1380

gagaaggacc tgatcgtgta cagcgcccac gaggagctgc tggtggagct gaagcaggtg 1440

gacagcctgt acaacatgac ccggaactac ctgaccaaga agcccttcag caccgagaag 1500

gtgaagctga acttcaaccg gagcaccctg ctgaacggct gggaccggaa caaggagacc 1560

gacaacctgg gcgtgctgct gctgaaggac ggcaagtact acctgggcat catgaacacc 1620

agcgccaaca aggccttcgt gaaccccccc gtggccaaga ccgagaaggt gttcaagaag 1680

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agcaacatcg acttctacaa ccccagcagc gagatctaca gcaactacaa gaagggcacc 1800

cacaagaagg gcaacatgtt cagcctggag gactgccaca acctgatcga cttcttcaag 1860

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agctacaacg acatcagcga gttctaccgg gaggtggaga agcagggcta caagctgacc 1980

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<210> 23
<211> 2000
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 23
tcaatagccc agtcggtttt gttagataca ttttatcgaa tctgtaaaga tattttataa 60

taagataata tcagcgccta gctgcggaat tccactcaga gaatacctct cctgaatatc 120

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aaagatttgc attcagttgt tccatcggcc tgggtagtaa agggggtatg ctcgctccga 300

gtcgatggaa ctgtaaatgt tagccctgat acgcggaaca tatcagtaac aatctttacc 360

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caaaattatt ttgaagaagt aatcatcaac ttaggcgctt tttagtgtta agagcgcgtt 600

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<211> 2000
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<210> 25
<211> 2000
<212> DNA
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<223> Synthetic

<400> 25
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<211> 2000
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actgcttata taggaggtac aaacagatac aatccttagt taactagaga gaatgctttt 60

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<223> Synthetic

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<211> 2000
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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 77
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<223> Synthetic

<400> 78
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<223> Synthetic

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cuucucccau cauagaggau 20


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auucagucau uccaguuuuu 20


<210> 145
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 145
gucauuccag uuuuucucua 20


<210> 146
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 146
aguuuuucuc uaauuuauuc 20


<210> 147
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 147
guuuuucucu aauuuauucu 20


<210> 148
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 148
gauucaguca uuccaauuuu 20


<210> 149
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 149
auucagucau uccaauuuuu 20


<210> 150
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 150
gucauuccaa uuuuucucua 20


<210> 151
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 151
aauuuuucuc uaauuuauuc 20


<210> 152
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 152
auuuuucucu aauuuauucu 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 153
uucucccauc auagaggaua 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 155
accauagaag auaccaggac 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 156
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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 157
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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 158
ucaaugcaaa uaucugucug 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cucuuggggg ccccuucccc 20


<210> 160
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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 160
gauucaguca uuccaauuuu 20


<210> 161
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 161
auucagucau uccaauuuuu 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 162
aaaaaaauua gcaguauccu 20


<210> 163
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 163
gccuuugccu uguuccgauu 20


<210> 164
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 164
aaaaaaauua agcagcagua 20


<210> 165
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 165
cucaguaaag augaugguag 20


<210> 166
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 166
acuggauaag uguaugugcu 20


<210> 167
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 167
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<210> 168
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 168
cucgguaaag augaugguag 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 169
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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 170
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<210> 171
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 171
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<210> 172
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 172
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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 173
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<210> 174
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 174
tctaatttat tcttcccttt 20


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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 176
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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 177
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<210> 178
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 178
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 179
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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 180
tcactggata agtgtatgtg 20


<210> 181
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 181
gtgtagctct tctatgctcg 20


<210> 182
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 182
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 183
ccttgtcaag gctattggtc 20


<210> 184
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 184
gacagatatt tgcattgaga 20


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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 185
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<210> 186
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 186
cacactatct caatgcaaat 20


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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 187
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 188
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 190
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<210> 191
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 191
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 192
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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 193
gtttttctct aatttattct 20


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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<210> 196
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 196
gattcagtca ttccaatttt 20


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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 197
attcagtcat tccaattttt 20


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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 198
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 199
aatttttctc taatttattc 20


<210> 200
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 200
atttttctct aatttattct 20


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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 201
ttctcccatc atagaggata 20


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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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atcatagagg ataccaggac 20


<210> 203
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 203
accatagaag ataccaggac 20


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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 204
cagtacctgc caaagaacat 20


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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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tagtatctgg taaagagcat 20


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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 206
tcaatgcaaa tatctgtctg 20


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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 207
ctcttggggg ccccttcccc 20


<210> 208
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 208
aaaaaaatta gcagtatcct 20


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<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 209
gcctttgcct tgttccgatt 20


<210> 210
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 210
aaaaaaatta agcagcagta 20


<210> 211
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 211
ctcagtaaag atgatggtag 20


<210> 212
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 212
actggataag tgtatgtgct 20


<210> 213
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 213
tgctggctga tgacccaggg 20


<210> 214
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 214
ctcggtaaag atgatggtag 20


<210> 215
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 215
tggtaaagag cattctacca 20


<210> 216
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uugcuccagg ccacagcacu 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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agaaucaaaa ucggugaaua 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<210> 220
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 220
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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 221
uuugagaauc aaaaucggug 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 222
auucucaaac aaauguguca 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cuuuuagaaa guuccuguga 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aaagcuuuuc ucgaccagcu 20


<210> 225
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gagucucuca gcugguacac 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ucugugauau acacaucaga 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uaaaaggaaa aacagacauu 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cagauacgaa ccuaaacuuu 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<220>
<223> Synthetic

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<211> 20
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aucugcucau gacgcugcgg 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ggccacagca cuguugcucu 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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agaagacacc uucuucccca 20


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<211> 20
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ucaccucagc uggaccacag 20


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<211> 20
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 20
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uaucuguaaa accaagaggc 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aggccccuca ccucagcugg 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gaacccaauc acugacaggu 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 245
ugugauguca agcuggucga 20


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<211> 20
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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acucccagcu ucaaggcccc 20


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<211> 20
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ugucuuaccu guuucaaagc 20


<210> 248
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cagcccaggu aagggcagcu 20


<210> 249
<211> 20
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 249
gaacccugac ccugccgugu 20


<210> 250
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 250
gaauccuccu ccugaaagug 20


<210> 251
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 251
gaagacaccu ucuuccccag 20


<210> 252
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 252
ggaggaggau ucggaaccca 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gcugagguga ggggccuuga 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 254
gugacaaguc ugucugccua 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 255
agcuucaagg ccccucaccu 20


<210> 256
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 256
aagcuuuucu cgaccagcuu 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 257
ccagcccagg uaagggcagc 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 258
uuuuagaaag uuccugugau 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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agcccaggua agggcagcuu 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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agagcaacag ugcuguggcc 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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ccgauuuuga uucucaaaca 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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acaacagcau uauuccagaa 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aaaccuguca gugauugggu 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uagaccucau gucuagcaca 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cagaacccug acccugccgu 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gacuucaaga gcaacagugc 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ugugggacaa gaggaucagg 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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uguaaaacca agaggccaca 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cacaucagaa uccuuacuuu 20


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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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aaaaccuguc agugauugg 19


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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aaaaccuguc agugauuggg uu 22


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aaaaccuguc agugauuggg uuc 23


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aaaaccuguc agugauuggg uucc 24


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<400> 282
000

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<212> RNA
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<223> Synthetic

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<212> RNA
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<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aaaguuuagg uucguaucug ua 22


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<212> RNA
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<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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agaaaguucc ugugauguca 20


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<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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agaaaguucc ugugauguca ag 22


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 319
agaaucaaaa ucggugaaua gg 22


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<211> 23
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 320
agaaucaaaa ucggugaaua ggc 23


<210> 321
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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 321
agaaucaaaa ucggugaaua ggca 24


<210> 322
<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aggaggagga uucggaac 18


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<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aggaggagga uucggaacc 19


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aggaggagga uucggaaccc 20


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<212> RNA
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<220>
<223> Synthetic

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aggaggagga uucggaaccc a 21


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aggaggagga uucggaaccc aa 22


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<220>
<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aucugcucau gacgcugcg 19


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aucugcucau gacgcugcgg 20


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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aucugcucau gacgcugcgg cu 22


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aucugcucau gacgcugcgg cugu 24


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<211> 18
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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auucucaaac aaauguguc 19


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 342
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<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<210> 344
<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 344
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<210> 345
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cacaugcaaa gucagauuug 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 349
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<210> 350
<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 350
cagauacgaa ccuaaacu 18


<210> 351
<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 351
cagauacgaa ccuaaacuu 19


<210> 352
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cagauacgaa ccuaaacuuu 20


<210> 353
<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 353
cagauacgaa ccuaaacuuu c 21


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<211> 22
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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<211> 23
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 355
cagauacgaa ccuaaacuuu caa 23


<210> 356
<211> 24
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 356
cagauacgaa ccuaaacuuu caaa 24


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
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<213> Artificial Sequence

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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caugugcaaa cgccuucaac aa 22


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 362
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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 374
cucgaccagc uugacaucac a 21


<210> 375
<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 375
cucgaccagc uugacaucac ag 22


<210> 376
<211> 23
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cucgaccagc uugacaucac agg 23


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 377
cucgaccagc uugacaucac agga 24


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<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 380
cuuuuagaaa guuccuguga 20


<210> 381
<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 381
cuuuuagaaa guuccuguga u 21


<210> 382
<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cuuuuagaaa guuccuguga ug 22


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 384
cuuuuagaaa guuccuguga uguc 24


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<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<212> RNA
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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gaaaguuccu gugaugucaa gcug 24


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gagucucuca gcugguac 18


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gagucucuca gcugguacac g 21


<210> 403
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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gagucucuca gcugguacac gg 22


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 404
gagucucuca gcugguacac ggc 23


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 408
gauucucaaa caaauguguc 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 409
gauucucaaa caaauguguc a 21


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<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 410
gauucucaaa caaauguguc ac 22


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<211> 23
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 412
gauucucaaa caaauguguc acaa 24


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<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<210> 414
<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 414
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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<210> 416
<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 416
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<210> 417
<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 417
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<210> 418
<211> 23
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 418
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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<210> 420
<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 420
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<210> 421
<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gucugugaua uacacaucag 20


<210> 423
<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 423
gucugugaua uacacaucag a 21


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<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 424
gucugugaua uacacaucag aa 22


<210> 425
<211> 23
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 425
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<211> 24
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 426
gucugugaua uacacaucag aauc 24


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<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 427
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<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 428
uaaaaggaaa aacagacau 19


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uaaaaggaaa aacagacauu 20


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<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<210> 431
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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 431
uaaaaggaaa aacagacauu cu 22


<210> 432
<211> 23
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 432
uaaaaggaaa aacagacauu cuu 23


<210> 433
<211> 24
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 433
uaaaaggaaa aacagacauu cuuu 24


<210> 434
<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 434
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<210> 435
<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 435
uccuuuuaga aaguuccug 19


<210> 436
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 436
uccuuuuaga aaguuccugu 20


<210> 437
<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 437
uccuuuuaga aaguuccugu g 21


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<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 438
uccuuuuaga aaguuccugu ga 22


<210> 439
<211> 23
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 439
uccuuuuaga aaguuccugu gau 23


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<211> 24
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 440
uccuuuuaga aaguuccugu gaug 24


<210> 441
<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ucgaccagcu ugacauca 18


<210> 442
<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 442
ucgaccagcu ugacaucac 19


<210> 443
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<210> 444
<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 444
ucgaccagcu ugacaucaca g 21


<210> 445
<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 445
ucgaccagcu ugacaucaca gg 22


<210> 446
<211> 23
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 446
ucgaccagcu ugacaucaca gga 23


<210> 447
<211> 24
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 447
ucgaccagcu ugacaucaca ggaa 24


<210> 448
<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 448
ucugugauau acacauca 18


<210> 449
<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 449
ucugugauau acacaucag 19


<210> 450
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 450
ucugugauau acacaucaga 20


<210> 451
<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 451
ucugugauau acacaucaga a 21


<210> 452
<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 452
ucugugauau acacaucaga au 22


<210> 453
<211> 23
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 453
ucugugauau acacaucaga auc 23


<210> 454
<211> 24
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 454
ucugugauau acacaucaga aucc 24


<210> 455
<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 455
ugacacauuu guuugaga 18


<210> 456
<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 456
ugacacauuu guuugagaa 19


<210> 457
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ugacacauuu guuugagaau 20


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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

<400> 458
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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 459
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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cagaggaccu gaaaaacgu 19


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cagaggaccu gaaaaacgug 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cagguccucu ggaaaggga 19


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cagguccucu ggaaagggaa 20


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<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 22
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<220>
<223> Synthetic

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cagguccucu ggaaagggaa ga 22


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<211> 23
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 556
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<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cuuccccugu uuucuuuc 18


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<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cuuccccugu uuucuuuca 19


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cuuccccugu uuucuuucag 20


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<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
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<400> 561
cuuccccugu uuucuuucag ac 22


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<211> 23
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 562
cuuccccugu uuucuuucag acu 23


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<211> 24
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 563
cuuccccugu uuucuuucag acug 24


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<211> 18
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 568
cuuucagacu guggcuucac cu 22


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

<400> 570
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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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gcccuauccu ggguccacuc 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gcccuauccu ggguccacuc g 21


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gcccuauccu ggguccacuc gu 22


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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ggugugggag aucucugcuu 20


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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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gcagagaaug gaaagucaaa 20


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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<211> 19
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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

<400> 770
cugaauugcu augugucug 19


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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cugaauugcu augugucugg 20


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<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<220>
<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<211> 19
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uucuccacug ucuuuuuca 19


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uucuccacug ucuuuuucau 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uuucuccacu gucuuuuuc 19


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uuucuccacu gucuuuuuca 20


<210> 870
<211> 21
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 870
uuucuccacu gucuuuuuca u 21


<210> 871
<211> 22
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uuucuccacu gucuuuuuca ua 22


<210> 872
<211> 23
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uuucuccacu gucuuuuuca uag 23


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<212> RNA
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<220>
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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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uuuucuccac ugucuuuuuc auag 24


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 978
cgagggaaau caggugucgc 20


<210> 979
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 979
ucaccgauau uggcauaagc 20


<210> 980
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 980
acuucacacu gcaugcagga 20


<210> 981
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 981
agugguuuaa aaaaugaacu 20


<210> 982
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 982
aagguaaaaa ggccgggaaa 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 983
ggucugccgg aagcuccucu 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 984
ccgagggaaa ucaggugucg 20


<210> 985
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 985
uccucgugcc cucagcuucc 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 986
cauccaacuc gagaaaauau 20


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<211> 20
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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agcccaccug cccugcacac 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 988
cggccuuuuu accuuggggc 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aaccccagcc caccugcccu 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aauccugcau gcagugugaa 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uacacaaugc guugccuggc 20


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<211> 20
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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ccccaaagcu caccaucuga 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ugggccacca ccuuccacau 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gccaggucca ucuggucaua 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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augucacaca acagccugcu 20


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ggccuuuuua ccuuggggcu 20


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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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uaccuaccaa cgcacuacaa 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ucuggucaua gaagugguag 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 999
cacugcaugc aggauuugaa 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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agcuggaggg ccugagcaag 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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aaggaugccu ucggaugccc 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ugugccucua ccacuucuau 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uagaaggugg cuaccuggag 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uugucugggc agcggaacug 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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acccaccaca aacuuacuga 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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uccaagggac uuuuccuccc 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ucugguccua ugugcucuac 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1008
cugcccagac aaggaaaagc 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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agccaggcag cagcucccgg 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1010
gaugcccagc ucagaagcac 20


<210> 1011
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ucucccacca gcugagaugg 20


<210> 1012
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ugaagaucag ugcaugcauc 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ccuaccuacc aacgcacuac 20


<210> 1014
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1014
accagaugga ccuggcugga 20


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<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ugcucuacuu ugagaaaaac 20


<210> 1016
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1016
ucuuccagga cucccagcug 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1017
cuguucccag aagagaugca 20


<210> 1018
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1018
ggugaggaag caccugagcc 20


<210> 1019
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1019
ccaauaucgg ugaggaagca 20


<210> 1020
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1020
gagaugccag cagaaguugg 20


<210> 1021
<211> 20
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1021
gtgacaagtc tgtctgccta 20


<210> 1022
<211> 143
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1022
actccagcct gggttggggc aaagagggaa atgagatcat gtcctaaccc tgatcctctt 60

gtcccacaga tatccagaac cctgaccctg ccgtgtacca gctgagagac tctaaatcga 120

gtgacaagtc tgtctgccta ttc 143


<210> 1023
<211> 314
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1023
gctctggtgg ttagtctcct caaaatctgt agtaactggt ctcgagaccc gtcttggacc 60

ggtaaggact tcgttccttt gtcggacgct tccgtggttt cgacgggaat ggacccgacc 120

ccttcttcca cagaagacct tattacgaca acaacttccg caaacgtgta cgtttcagtc 180

taaacaacga ggtccggtgt cgtgacaacg agaacttcag gtatctggag tacagatcgt 240

gtcaaaacag acactatatg tgtagtctta ggaatgaaac actgtgtaaa caaactctta 300

gttttagcca ctta 314


<210> 1024
<211> 500
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1024
tggggagacc actccagatt ccaagatgta cagtttgctt tgctgggcct ttttcccatg 60

cctgccttta ctctgccaga gttatattgc tggggttttg aagaagatcc tattaaataa 120

aagaataagc agtattatta agtagccctg catttcaggt ttccttgagt ggcaggccag 180

gcctggcgtg aacgttcact gaaatcatgg cctcttggcc aagattgata gcttgtgcct 240

gtccctgagt cccagtccat cacgagcagc tggtttctaa gatgctattt cccgtataaa 300

gcatgagacc gtgacttgcc agccccacag agccccgccc ttgtccatca ctggcatctg 360

gactccagcc tgggttgggg caaagaggga aatgagatca tgtcctaacc ctgatcctct 420

tgtcccacag atatccagaa ccctgaccct gccgtgtacc agctgagaga ctctaaatcg 480

agtgacaagt ctgtctgcct 500


<210> 1025
<211> 500
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1025
gtcattcccc gtttgtcaga ctcgtttccg tccgtccgtc cttgagtcaa cctctctgac 60

tccgacccgg tgcacgggag aggacggtgg aagagaagta gacgaaaaaa gggcacagta 120

agagacctga cggtcttgtt ccgagtgaca aagaatcatt tttctcccaa aaccaccgtt 180

acctattccg gctctggtgg ttagtctcct caaaatctgt agtaactggt ctcgagaccc 240

gtcttggacc ggtaaggact tcgttccttt gtcggacgct tccgtggttt cgacgggaat 300

ggacccgacc ccttcttcca cagaagacct tattacgaca acaacttccg caaacgtgta 360

cgtttcagtc taaacaacga ggtccggtgt cgtgacaacg agaacttcag gtatctggag 420

tacagatcgt gtcaaaacag acactatatg tgtagtctta ggaatgaaac actgtgtaaa 480

caaactctta gttttagcca 500


<210> 1026
<211> 310
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1026
tactcttaat tcattacata ttgtgcggtc gaattcaggg agccgataat gcggttacaa 60

taattcctat acttaaatat acaaagattt aaaatttcaa aaaatggtta ccagcatcgt 120

tagtgcgtat acatcaagag gcacgtgccc cggagacagc aagtaagctc tttaaacatg 180

ctttgacata cgatttttaa taaaacatga gcatttgaat aaaaacgact tcctcatact 240

gtaaacatca cgcatgcaca ttagacaata atccagtaac gaaacggctt cagtcgtaat 300

cgcccatata 310


<210> 1027
<211> 139
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1027
actacctaca aggattccag acgttgttta ctacatgtta gtaaattggc taggttttac 60

aagggccaaa accttgtagc tttgtacaac actatactgt cccctctaga ctattgctat 120

cctaataagg cattatacg 139


<210> 1028
<211> 304
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1028
tcctaaagct tggaacactt tcccttcctt aagaaccatc cttgctactc agctgcaatc 60

aatccagccc ccaggtcttc actgaacctt ttcccatctc ttccaaaaca tctgtttctg 120

agaagtcctg tcctatagag gtctttcttc ccaccggatt tctcctacac catttactcc 180

cacttgcaga actcccgtgt acaagtgtct ttactgcttt tatttgctca tcaaaatgca 240

catctcatat aaaaataaat gaggagcatg cacacaccac aaacacaaac aggcatgcag 300

aaat 304


<210> 1029
<211> 665
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1029
ataaagatga acccatagtg agctgagagc tccagcctgg cctccagata actacacacc 60

aagcttccac ccagaatcaa gcctatgtta acttccctca aagcctgaga ttttgccttc 120

ccattaaatg caggtagttg ttccccttca agcactagtc actggccata atttaaatct 180

tgctatcttc ttgccaccat gaaccctgta tgttgtaggc tgaagacgtt aaaagaaaca 240

cacgctgaca cacacacaca cacgcgcgcg cgcacacaca cacacacaca cagagctgac 300

tttcaaaatc tactccagcc caaatgtttc aattgttcct cacccctgga catactttgc 360

ccccatctgg aattaaagga tataagtttg taatgaagca ttagcagcat tttatatgtg 420

tccagctgat ataggaatag ccttagcaat gtatgtttgg ccaccaaagt tccccacttt 480

gactgagcca atatatgcct tctgcctgca tctttttaac gaccatactt gtcctgcctc 540

cagatagatg ttttaaaaca acaaaaatga gggaaagatg aaagttcttt ctactggaat 600

ctaataaaga aaagtcattt tcctcatttc cacctctctt ttctcaaagt caaaattgtc 660

catct 665


<210> 1030
<211> 165
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1030
ccctaaaaca ttaccactgg gtctcagccc agttagtcct ctgcagtttc ttcaccccca 60

accccagtat cttcaaacag ctcacaccct gctgtgctca gatcaatact ccgttgtcta 120

agttgcctcg agactaaagg caacagggct gaaacatctc ctgga 165


<210> 1031
<211> 122
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1031
ctgtgagatt gacaagaaca gtttgacagt cagaaggtgc cacaaatcct gagaagcgac 60

ctggactttt gccaggcaca gggtccttcc ttccctccct tgtcctggtc accagagcct 120

ac 122


<210> 1032
<211> 24
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1032
gccgccggcc cctggcctca ctgg 24


<210> 1033
<211> 33
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1033
ccttgtcaag gctattggtc aaggcaaggc tgg 33


<210> 1034
<211> 36
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1034
tgagatagtg tggggaaggg gcccccaaga ggatac 36


<210> 1035
<211> 41
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1035
tatagccttt gccttgttcc gattcagtca ttccagtttt t 41


<210> 1036
<211> 114
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1036
tcttcccttt agctagtttc cttctcccat catagaggat accaggactt cttttgtcag 60

ccgtttttta ccttcttgtc tctagctcca gtgaggcctg tagtttaaag ctaa 114


<210> 1037
<211> 86
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1037
ccacagtttc agcgcagtaa tagattagtg ttacataata taagacctaa tgcttacctc 60

aatatctact tatccgtacc tatttg 86


<210> 1038
<211> 142
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1038
tattcaggta tgtatgtata caccagatga tgtgtattta ccactggata agtgtgtgtg 60

ctggctgatg acccagggtt ttggcgtagc tcttctatgc tcagtaaaga tgatggtaga 120

atgttctttg gcaggtactg tg 142


<210> 1039
<211> 697
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1039
caataaagat gaacccatag tgagctgaga gctccagcct ggcctccaga taactacaca 60

ccaagcttcc acccagaatc aagcctatgt taacttccct caaagcctga gattttgctt 120

tcccattaaa tgcaggtagt tgttcttctt gcagcactag tcactggcca taatttaaat 180

cttgttatct tcttgccacc atgaaccctg tatgctgtag gctgaaaacg ttaaaagaaa 240

cacacgctct cacacacaca caaacacacg cgcgcacaca cacacacaca cacacagagc 300

tgactttcaa aatctactcc agcccaaatg tttcaattgt tcctcacccc tggacatact 360

ttgcccccat ctggaattaa aggatataag tttgtaatga agcattagca gcattttata 420

tgtgtccagc tgatatagga atagccttag caatgtatgt ttggccacca aagttcccca 480

ctttgactga gccaatatat gccttctgcc tgcatctttt taatgaccat acttgtcctg 540

cctccagata gatgttttaa aacgaataac aaaaataggg gaaaggtgaa agttctttct 600

accgaaatct aataaagaaa agtcattttc ctcatttcca cctctctttt ctcaaagtca 660

aagttgtcca tctagatttt cagaggcact ccttagg 697


<210> 1040
<211> 185
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1040
ccctaaaaca ttgccactgg gtctcagccc agttagtcct ctgcagtttc ttcactccca 60

accccagtat cttcaaacag ctcacaccct gctgtgctca gatcaatact cagttgtcta 120

agttgcctcg agactaaagg caacagtgct gaaacatctc ctggactcac cttgaagttc 180

tcagg 185


<210> 1041
<211> 137
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1041
agcctgtgag attgacaaga acagtttgac agtcagaagg tgccacaaat cctgagaagc 60

gacctggact tttgccaggc acagggtcct tccttccctc ccttgtcctg gtcaccagag 120

cctaccttcc cagggtt 137


<210> 1042
<211> 38
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1042
ccgccggccc ctggcctcac tggatactct aagactat 38


<210> 1043
<211> 31
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1043
ccttgtcaag gctattggtc aaggcaaggc t 31


<210> 1044
<211> 75
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1044
cagggaccgt ttcagacaga tatttgcatt gagatagtgt ggggaagggg cccccaagag 60

gatactgctg cttaa 75


<210> 1045
<211> 29
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1045
ttgccttgtt ccgattcagt cattccaat 29


<210> 1046
<211> 104
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1046
tttagctagt tttcttctcc caccatagaa gataccagga cttcttttgt cagccgtttt 60

tcaccttctt gtctgtagct ccagtgaggc ctgtagttta aagt 104


<210> 1047
<211> 38
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1047
ggacacgtct tagtctcatt tagtaagcat tggtttcc 38


<210> 1048
<211> 124
<212> DNA
<213> Homo sapiens

<400> 1048
ttttttatat tcaggtatgt atgtaggcac ccgatgatgt gtatttatca ctggataagt 60

gtatgtgctg gctgatgacc cagggttttg gtgtagctct tctatgctcg gtaaagatga 120

tggt 124


<210> 1049

<400> 1049
000

<210> 1050
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1050
ccuugucaag gcuauugguc 20


<210> 1051
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1051
uaauuucuac ucuuguagau 20


<210> 1052
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1052
uaauuucuac ucuuguagau ccuugucaag gcuauugguc 40


<210> 1053
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1053
cccauggguu ggccagccuu 20


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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<212> RNA
<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

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<223> Synthetic

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tccacgttca ccttgcccca c 21


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<223> Synthetic

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<223> Synthetic

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<220>
<223> Synthetic

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catgg 65


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ccatgggttg gccagccttg ccttgaccaa tagccttgac aaggcaaact tgaccaatag 60

tctta 65


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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gtcttagagt atccagtgag gccaggggcc g 31


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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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tattggtcaa gtttgccttg tcaaggctat tggtcaaggc aaggctggcc aacccatggg 60

tggagtttag ccagggaccg tttcagacag atatttgcat tgagatagtg tggggaaggg 120

g 121


<210> 1223
<211> 121
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ccccttcccc acactatctc aatgcaaata tctgtctgaa acggtccctg gctaaactcc 60

acccatgggt tggccagcct tgccttgacc aatagccttg acaaggcaaa cttgaccaat 120

a 121


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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1224
ggggagagtg cagacagggg aagcttcacc tcctttacaa ttttgggagt ccacacggca 60

tggcatacaa attatttcat tcccattgag aaataaaatc caatt 105


<210> 1225
<211> 105
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1225
aattggattt tatttctcaa tgggaatgaa ataatttgta tgccatgccg tgtggactcc 60

caaaattgta aaggaggtga agcttcccct gtctgcactc tcccc 105


<210> 1226
<211> 101
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1226
ctccatcacc aagagagcct tccgaaagag gcccccctgg gcaaacggcc accgatggag 60

aggtctgcca gtcctcttct accccaccca cgcccccacc c 101


<210> 1227
<211> 101
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1227
gggtgggggc gtgggtgggg tagaagagga ctggcagacc tctccatcgg tggccgtttg 60

cccagggggg cctctttcgg aaggctctct tggtgatgga g 101


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<211> 73
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1228
taatcagagg ccaaaccctt cctggagcct gtgataaaag caactgttag cttgcactag 60

actagcttca aag 73


<210> 1229
<211> 73
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ctttgaagct agtctagtgc aagctaacag ttgcttttat cacaggctcc aggaagggtt 60

tggcctctga tta 73


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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ttgtattgac cctggtgtgt tatgtctaag agtagatgcc atatctcttt tctctggcct 60

atgttattac ctgtatggac tttgcactgg aatcagcta 99


<210> 1231
<211> 99
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1231
tagctgattc cagtgcaaag tccatacagg taataacata ggccagagaa aagagatatg 60

gcatctactc ttagacataa cacaccaggg tcaatacaa 99


<210> 1232
<211> 99
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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tctgctctta cttatgcaca cctggggcat agagccagcc ctgtatcgct tttcagccat 60

ctcactacag ataactccca agtcctgtct agctgcctt 99


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<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ggcagctaga caggacttgg gagttatctg tagtgagatg gctgaaaagc gatacagggc 60

tggctctatg ccccaggtgt gcataagtaa gagcaga 97


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<211> 83
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1234
ccttatcaca ggaatagcac ccaaggtcca tcagtacctc agagtagaac cccctataaa 60

ctagtctggt ttgcccatgg ggc 83


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<211> 83
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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gccccatggg caaaccagac tagtttatag ggggttctac tctgaggtac tgatggacct 60

tgggtgctat tcctgtgata agg 83


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<211> 103
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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ggtacctgga aaactgtaat tcttttcctg ctcaaagaca ggcaattcaa taccccttcc 60

cccaaccaaa aacccttgcc accatgggag cctggggcag aga 103


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<211> 103
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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tctctgcccc aggctcccat ggtggcaagg gtttttggtt gggggaaggg gtattgaatt 60

gcctgtcttt gagcaggaaa agaattacag ttttccaggt acc 103


<210> 1238
<211> 24
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1238
uuuvccuugg ggcucugaca ggua 24


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<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

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atggacagtc tcggggttcc attt 24


<210> 1240
<211> 24
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic


<220>
<221> misc_feature
<222> (1)..(1)
<223> n is a, c, g, or u

<220>
<221> misc_feature
<222> (4)..(4)
<223> n is a, c, g, or u

<400> 1240
nyynucccag gcagcucaca gugu 24


<210> 1241
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1241
tgtgacactc gacggaccct ccct 24


<210> 1242
<211> 24
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic


<220>
<221> misc_feature
<222> (1)..(1)
<223> n is a, c, g, or u

<220>
<221> misc_feature
<222> (4)..(4)
<223> n is a, c, g, or u

<400> 1242
nyyngcaggc uguuguguga caug 24


<210> 1243
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1243
gtacagtgtg ttgtcggacg actt 24


<210> 1244
<211> 24
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic


<220>
<221> misc_feature
<222> (4)..(4)
<223> n is a, c, g, or u

<400> 1244
uuunucugca gccuucccag agga 24


<210> 1245
<211> 24
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1245
aggagaccct tccgacgtct cttt 24


<210> 1246
<211> 78
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1246
tgctgggtcc tacctgtcag agccccaagg taaaaaggcc gggaaagcat cttaatttag 60

cgtgcagtct cagctggt 78


<210> 1247
<211> 78
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1247
accagctgag actgcacgct aaattaagat gctttcccgg cctttttacc ttggggctct 60

gacaggtagg acccagca 78


<210> 1248
<211> 74
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1248
ggtgactgag cattgtcttc cctcccaggc agctcacagt gtgccaccat ggagttgggg 60

cccctagaag gtgg 74


<210> 1249
<211> 74
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1249
ccaccttcta ggggccccaa ctccatggtg gcacactgtg agctgcctgg gagggaagac 60

aatgctcagt cacc 74


<210> 1250
<211> 74
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1250
cagttcagca ggctgttgtg tgacatggaa ggtgatgaag agaccaggga ggcttatgcc 60

aatatcggtg agga 74


<210> 1251
<211> 74
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1251
tcctcaccga tattggcata agcctccctg gtctcttcat caccttccat gtcacacaac 60

agcctgctga actg 74


<210> 1252
<211> 82
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1252
catgttttct ctgcagcctt cccagaggag cttccggcag acctgaagca ctggaagcca 60

ggtgtgcagg gcaggtgggc tg 82


<210> 1253
<211> 82
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1253
cagcccacct gccctgcaca cctggcttcc agtgcttcag gtctgccgga agctaatctg 60

ggaaggctgc agagaaaaca tg 82


<210> 1254
<211> 20
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1254
agugggggug aauucagugu 20


<210> 1255
<211> 84
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1255
acagtcaggc tgttttccag ggtggggtgc agacattctc tgcctgttgt gatgcttaca 60

tataacgtca taacagacac acgt 84


<210> 1256
<211> 84
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1256
acgtgtgtct gttatgacgt tatatgtaag catcacaaca ggcagagaat gtctgcaccc 60

caccctggaa aacagcctga ctgt 84


<210> 1257
<211> 92
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1257
atgtgttgtg atccctgtgg tttgagagtt tggagcttcc ctaaaagtca aaatattctc 60

aatgggccct caatcagcac atacacacaa aa 92


<210> 1258
<211> 92
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1258
ttttgtgtgt atgtgctgat tgagggccca ttgagaatat tttgactttt agggaagctc 60

caaactctca aaccacaggg atcacaacac at 92


<210> 1259
<211> 23
<212> DNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1259
aggacagtct cggggttcca ttt 23


<210> 1260
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1260
uaauuucuac ucuuguagau agacagauau uugcauugag 40


<210> 1261
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1261
uaauuucuac ucuuguagau cauugagaua guguggggaa 40


<210> 1262
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1262
uaauuucuac ucuuguagau uagccuuugc cuuguuccga 40


<210> 1263
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1263
uaauuucuac ucuuguagau ccuuguuccg auucagucau 40


<210> 1264
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1264
uaauuucuac ucuuguagau ucuaauuuau ucuucccuuu 40


<210> 1265
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1265
uaauuucuac ucuuguagau cuucucccau cauagaggau 40


<210> 1266
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1266
uaauuucuac ucuuguagau uucucccacc auagaagaua 40


<210> 1267
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1267
uaauuucuac ucuuguagau ccacuggaua agugugugug 40


<210> 1268
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1268
uaauuucuac ucuuguagau gcguagcucu ucuaugcuca 40


<210> 1269
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1269
uaauuucuac ucuuguagau cugagcauag aagagcuacg 40


<210> 1270
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1270
uaauuucuac ucuuguagau ucacuggaua aguguaugug 40


<210> 1271
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1271
uaauuucuac ucuuguagau guguagcucu ucuaugcucg 40


<210> 1272
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1272
uaauuucuac ucuuguagau ccgagcauag aagagcuaca 40


<210> 1273
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1273
uaauuucuac ucuuguagau gacagauauu ugcauugaga 40


<210> 1274
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1274
uaauuucuac ucuuguagau acacuaucuc aaugcaaaua 40


<210> 1275
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1275
uaauuucuac ucuuguagau cacacuaucu caaugcaaau 40


<210> 1276
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1276
uaauuucuac ucuuguagau ccacacuauc ucaaugcaaa 40


<210> 1277
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1277
uaauuucuac ucuuguagau uuccccacac uaucucaaug 40


<210> 1278
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1278
uaauuucuac ucuuguagau gauucaguca uuccaguuuu 40


<210> 1279
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1279
uaauuucuac ucuuguagau auucagucau uccaguuuuu 40


<210> 1280
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1280
uaauuucuac ucuuguagau gucauuccag uuuuucucua 40


<210> 1281
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1281
uaauuucuac ucuuguagau aguuuuucuc uaauuuauuc 40


<210> 1282
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1282
uaauuucuac ucuuguagau guuuuucucu aauuuauucu 40


<210> 1283
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1283
uaauuucuac ucuuguagau gucauuccaa uuuuucucua 40


<210> 1284
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1284
uaauuucuac ucuuguagau aauuuuucuc uaauuuauuc 40


<210> 1285
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1285
uaauuucuac ucuuguagau auuuuucucu aauuuauucu 40


<210> 1286
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1286
uaauuucuac ucuuguagau uucucccauc auagaggaua 40


<210> 1287
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1287
uaauuucuac ucuuguagau aucauagagg auaccaggac 40


<210> 1288
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1288
uaauuucuac ucuuguagau accauagaag auaccaggac 40


<210> 1289
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1289
uaauuucuac ucuuguagau caguaccugc caaagaacau 40


<210> 1290
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1290
uaauuucuac ucuuguagau uaguaucugg uaaagagcau 40


<210> 1291
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1291
uaauuucuac ucuuguagau cucuuggggg ccccuucccc 40


<210> 1292
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1292
uaauuucuac ucuuguagau gauucaguca uuccaauuuu 40


<210> 1293
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1293
uaauuucuac ucuuguagau auucagucau uccaauuuuu 40


<210> 1294
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1294
uaauuucuac ucuuguagau gccuuugccu uguuccgauu 40


<210> 1295
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1295
uaauuucuac ucuuguagau cucaguaaag augaugguag 40


<210> 1296
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1296
uaauuucuac ucuuguagau acuggauaag uguaugugcu 40


<210> 1297
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1297
uaauuucuac ucuuguagau ugcuggcuga ugacccaggg 40


<210> 1298
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1298
uaauuucuac ucuuguagau cucgguaaag augaugguag 40


<210> 1299
<211> 40
<212> RNA
<213> Artificial Sequence

<220>
<223> Synthetic

<400> 1299
uaauuucuac ucuuguagau ugguaaagag cauucuacca 40

Claims (36)

  1. プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francisella)1(Cpf1)RNA誘導ヌクレアーゼからのCRISPRと、HBG遺伝子配列又はBCL11a遺伝子配列を標的とするgRNA分子とを含むRNP複合体の送達によって生成される、前記HBG遺伝子配列又は前記BCL11a遺伝子配列における修飾を含む単離された細胞。
  2. HBG遺伝子のシス調節領域の破壊を含む1つ又は複数の細胞を有するCD34+細胞又は造血幹細胞(HSC)集団であって、前記破壊は、CRISPR/Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、前記HBG遺伝子の前記シス調節領域を標的とするgRNAとを含むRNP複合体を使用して生成される、CD34+細胞又は造血幹細胞(HSC)集団。
  3. 前記シス調節領域は、HBG遺伝子プロモーターのCAATボックスを含む、請求項2に記載の細胞集団。
  4. 異常ヘモグロビン症の症状の治療又は緩和を、それを必要とする対象において行う方法であって、請求項2又は3に記載の細胞集団を前記対象に投与することを含む方法。
  5. 前記細胞集団は、未修飾細胞集団と比較して胎児型ヘモグロビン発現の発現の増加を有するか、又は投与に引き続いて胎児型ヘモグロビンの増加した発現をもたらし、前記胎児型ヘモグロビンの発現の前記増加は、前記異常ヘモグロビン症の症状を部分的に又は完全に緩和するのに適した量である、請求項4に記載の方法。
  6. プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francisella)1(Cpf1)RNA誘導ヌクレアーゼからのCRISPRと、核酸配列を標的とするgRNA分子とを含む複合体の送達によって生成される、前記核酸配列における修飾を含む単離されたT細胞であって、前記核酸配列は、FAS遺伝子配列の一部、BID遺伝子配列の一部、CTLA4遺伝子配列の一部、PDCD1遺伝子配列の一部、CBLB遺伝子配列の一部、PTPN6遺伝子配列の一部、B2M遺伝子配列の一部、TRAC遺伝子配列の一部、CIITA遺伝子配列の一部、TRBC遺伝子配列の一部及びそれらの組み合わせからなる群から選択される、単離されたT細胞。
  7. TRAC、TRBC、B2M及びCIITAからなる群から選択される1つ又は複数の遺伝子の破壊を含むT細胞集団であって、前記破壊は、CRISPR/Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼと、TRAC、TRBC、CIITA及びB2Mからなる群から選択される遺伝子を標的とするgRNAとを含む1つ又は複数のRNP複合体を使用して生成され、前記T細胞集団の少なくとも60%のT細胞は、前記T細胞の表面上において、検出可能なレベルのMHC II受容体、TCR又はB2Mを含まない、T細胞集団。
  8. 破壊されたTRAC遺伝子座に挿入されたキメラ抗原受容体(CAR)又は操作されたT細胞受容体(eTCR)をさらに含む、請求項7に記載のT細胞集団。
  9. 前記T細胞は、CD8T細胞、CD8ナイーブT細胞、CD4中央記憶T細胞、CD8中央記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4エフェクター記憶T細胞、CD4T細胞、CD4幹細胞記憶T細胞、CD8幹細胞記憶T細胞、CD4ヘルパーT細胞、制御性T細胞、細胞毒性T細胞、ナチュラルキラーT細胞、CD4+ナイーブT細胞、TH17CD4T細胞、TH1CD4T細胞、TH2CD4T細胞、TH9CD4T細胞、CD4Foxp3T細胞、CD4CD25CD127T細胞又はCD4CD25CD127Foxp3T細胞である、請求項6~8のいずれ一項に記載の単離されたT細胞又はT細胞集団。
  10. 核局在化シグナル(NLS)を含む、プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francisella)1(Cpf1)RNA誘導ヌクレアーゼからの単離されたCRISPRであって、前記Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、前記ヌクレアーゼのN末端若しくはその近傍の1つ若しくは複数のNLS配列、前記ヌクレアーゼのC末端若しくはその近傍の1つ若しくは複数のNLS配列又は前記ヌクレアーゼのN末端及びC末端若しくはその近傍の1つ若しくは複数のNLS配列を含む、単離されたCRISPR。
  11. 前記NLS配列は、ヌクレオプラスミンNLS(nNLS)(配列番号1)及びシミアンウイルス40「SV40」NLS(sNLS)(配列番号2)からなる群から選択される、請求項10に記載の単離されたCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ。
  12. システインアミノ酸の欠失又は置換を含む、プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francisella)1(Cpf1)RNA誘導ヌクレアーゼからの単離されたCRISPRであって、前記Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼは、野生型AsCpf1アミノ酸配列のC65、C205、C334、C379、C608、C674、C1025又はC1248に欠失又は置換を含み、前記置換は、C65S/A、C205S/A、C334S/A、C379S/A、C608S/A、C674S/A及びC1025S/Aからなる群から選択される、単離されたCRISPR。
  13. 請求項10~12のいずれか一項に記載のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼをコードする単離された核酸。
  14. HSC又はT細胞の集団において、関心のある1つ又は複数の標的配列を修飾する方法であって、前記細胞集団を、
    (a)前記関心のある標的配列に相補的なgRNA分子;及び
    (b)請求項10~12のいずれか一項に記載のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ
    を含む1つ又は複数のRNP複合体とエクスビボ又はインビトロで接触させることを含み、前記1つ又は複数のRNP複合体は、前記細胞集団内の前記1つ又は複数の関心のある標的配列を修飾する、方法。
  15. 前記細胞集団内の前記細胞の少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%は、生産的インデルを含む、請求項14に記載の方法。
  16. 前記標的核酸配列は、B2M遺伝子配列の一部、TRAC遺伝子配列の一部、CIITA遺伝子配列の一部、TRBC遺伝子配列の一部及びそれらの組み合わせからなる群から選択される、請求項14又は15に記載の方法。
  17. 細胞集団を対象に投与する方法であって、前記細胞集団は、プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francisella)1(Cpf1)RNA誘導ヌクレアーゼからのCRISPRと、HBG遺伝子配列又はBCL11a遺伝子配列を標的とするgRNA分子とを含む複合体の送達によって生成される、前記HBG遺伝子配列又は前記BCL11a遺伝子配列における修飾を含む、方法。
  18. 前記対象は、異常ヘモグロビン症に罹患している、請求項17に記載の方法。
  19. 前記細胞集団は、造血幹細胞(HSC)又はヒト臍帯血誘導赤血球前駆(HUDEP)細胞を含む、請求項17又は18に記載の方法。
  20. T細胞の集団を対象に投与する方法であって、前記細胞集団は、プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francisella)1(Cpf1)RNA誘導ヌクレアーゼと、遺伝子を標的とするgRNA分子とを含む複合体の送達によって生成される、TRAC、TRBC、CIITA及びB2Mからなる群から選択される前記遺伝子における修飾を含む、方法。
  21. 前記対象は、がん又は自己免疫障害に罹患している、請求項20に記載の方法。
  22. 前記細胞集団内の前記細胞の少なくとも約5%、少なくとも約10%、少なくとも約20%、少なくとも約30%、少なくとも約40%、少なくとも約50%、少なくとも約60%、少なくとも約70%、少なくとも約80%又は少なくとも約90%は、生産的インデルを含む、請求項17~21のいずれか一項に記載の方法。
  23. 標的配列に相補的な第1の標的化ドメインを含む、プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francisella)1(Cpf1)RNA誘導ヌクレアーゼからのCRISPRのgRNA分子であって、前記標的配列は、HBG遺伝子配列又はBCL11a遺伝子配列であり、前記gRNA分子は、図6、図7、図8、図46及び表19で提供される配列と同一であるか、又は3つ以下のヌクレオチドだけ異なる配列を含む、gRNA分子。
  24. (a)前記gRNA分子を含むCRISPR/Cpf1システムは、細胞に導入され、インデルは、前記gRNA分子の前記第1の標的化ドメインに相補的な前記標的配列又はその近傍に形成され;及び/又は(b)前記gRNA分子を含むCRISPR/Cpf1システムが細胞に導入されると、欠失は、HBG1プロモーター領域又はHBG2プロモーター領域内における、前記gRNAの第1の標的化ドメインに相補的な配列に生じる、請求項23に記載のgRNA分子。
  25. 前記gRNA分子を含むCRISPRシステムが細胞集団に導入されると、
    (a)胎児型ヘモグロビンの発現は、前記gRNA分子が導入されなかった細胞集団又はその子孫集団における胎児型ヘモグロビンの発現のレベルと比較して前記細胞集団又はその子孫で増加し;及び/又は
    (b)異常ヘモグロビン症の症状を部分的に又は完全に緩和するのに適した量で前記胎児型ヘモグロビンの発現の増加をもたらす、請求項23に記載のgRNA分子。
  26. 請求項23~25のいずれか一項に記載のgRNA分子を含む組成物。
  27. プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francisella)1(Cpf1)RNA誘導ヌクレアーゼからのCRISPRをさらに含む、請求項26に記載の組成物。
  28. 請求項27に記載の組成物を含むリボ核タンパク質(RNP)複合体を含む組成物。
  29. 異常ヘモグロビン症に罹患している対象の治療で使用するための、請求項23~25のいずれか一項に記載のgRNA分子又は請求項26~28のいずれか一項に記載の組成物。
  30. 標的配列に相補的な第1の標的化ドメインを含む、プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francisella)1(Cpf1)RNA誘導ヌクレアーゼからのCRISPRのgRNA分子であって、前記標的配列は、B2M遺伝子配列の一部、TRAC遺伝子配列の一部、CIITA遺伝子配列の一部、TRBC遺伝子配列の一部及びそれらの組み合わせからなる群から選択され、前記gRNA分子は、表2~9で提供される配列と同一であるか、又は3つ以下のヌクレオチドだけ異なる配列を含む、gRNA分子。
  31. (a)前記gRNA分子を含むCRISPR/Cpf1システムは、細胞に導入され、インデルは、前記gRNA分子の前記第1の標的化ドメインに相補的な前記標的配列又はその近傍に形成され;及び/又は(b)前記gRNA分子を含むCRISPR/Cpf1システムが細胞に導入されると、欠失は、前記B2M遺伝子配列、前記TRAC遺伝子配列、前記CIITA遺伝子配列又は前記TRBC遺伝子配列内における、前記gRNAの第1の標的化ドメインに相補的な配列に生じる、請求項30に記載のgRNA分子。
  32. 請求項30又は31に記載のgRNA分子を含む組成物。
  33. プレボテラ属(Prevotella)及びフランシセラ属(Francisella)1(Cpf1)RNA誘導ヌクレアーゼからのCRISPRをさらに含む、請求項32に記載の組成物。
  34. がんに罹患している対象の治療で使用するための、請求項30若しくは31に記載のgRNA分子又は請求項32若しくは34に記載の組成物。
  35. ゲノム編集システムであって、
    (a)図6、図7、図8、図9、図10、図11、図12、図46並びに表2~9及び19で提供される配列を含むgRNA分子;及び
    (b)請求項10~12のいずれか一項に記載のCpf1 RNA誘導ヌクレアーゼ
    を含む1つ又は複数のRNP複合体を含むゲノム編集システム。
  36. 試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼによる標的核酸配列のCRISPR/Cpf1媒介編集及び/又は標的核酸配列の発現の調整を評価するためのアッセイであって、
    (a)一致部位標的核酸配列を含む標的核酸配列の編集及び/又は発現の調整に関して、前記試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼの活性を判定すること;
    (b)前記一致部位標的核酸配列を含む前記標的核酸配列の前記編集及び/又は発現の調整に関して、前記試験Cpf1 RNA誘導ヌクレアーゼの前記活性を対照RNA誘導ヌクレアーゼの活性と比較すること
    を含むアッセイ。
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