JP2023551102A - 新型コロナウイルスに対する抗体及び新型コロナウイルスを検出するキット - Google Patents
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Abstract
Description
CDR-VH1:G-X1-T-F-T-X2-Y-X3-M-N、ここで、X1はY又はFであり、X2はD又はNであり、X3はA又はGであり、
CDR-VH2:W-X1-N-T-Y-X2-G-E-P-T-Y-A-X3-X4-F、ここで、X1はL又はIであり、X2はT又はSであり、X3はD又はEであり、X4はD又はEであり、
CDR-VH3:A-R-X1-A-X2-X3-R-S-Y、ここで、X1はS又はTであり、X2はI又はLであり、X3はI又はLであり、
CDR-VL1:K-A-S-X1-D-X2-S-T-A-X3-A、ここで、X1はQ又はEであり、X2はI、V又はLであり、X3はI、V又はLであり、
CDR-VL2:W-X1-S-T-R-H-X2、ここで、X1はA又はGであり、X2はT又はSであり、
CDR-VL3:Q-Q-H-X1-S-T-P-X2、ここで、X1はY又はWであり、X2はL、V又はIである。
CDR-VH1において、X1はYであり、
CDR-VH2において、X1はIであり、
CDR-VH3において、X1はSであり、
CDR-VL1において、X1はQであり、
CDR-VL2において、X1はAである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH1において、X2はNである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH1において、X3はAである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH1において、X3はGである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH2において、X2はTである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH2において、X2はSである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH2において、X3はDである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH2において、X3はEである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH2において、X4はDである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH2において、X4はEである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH3において、X2はIである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH3において、X2はLである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH3において、X3はIである。
いくつかの実施形態では、CDR-VH3において、X3はLである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL1において、X2はIである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL1において、X2はVである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL1において、X2はLである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL1において、X3はIである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL1において、X3はVである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL1において、X3はLである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL2において、X2はTである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL2において、X2はSである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL3において、X1はYである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL3において、X1はWである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL3において、X2はLである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL3において、X2はVである。
いくつかの実施形態では、CDR-VL3において、X2はIである。
CDR-VH1において、X1はFであり、
CDR-VH2において、X1はLであり、
CDR-VH3において、X1はTであり、
CDR-VL1において、X1はEであり、
CDR-VL2において、X1はGである。
結合反応が発生するのに十分な条件下で、上記のいずれか1項に記載の抗体又はその機能性断片と試料とを接触させて、結合反応を行うステップA)と、
結合反応によって生成される免疫複合体を検出するステップB)と、を含む。
結合反応が発生するのに十分な条件下で、上記のいずれか1項に記載の抗体又はその機能性断片と前記被験者からの試料とを接触させて、結合反応を行うステップA)と、
結合反応によって生成される免疫複合体を検出するステップB)と、を含む。
本明細書で使用されるように、「相補性決定領域」という用語は、無傷又は完全な抗体が2本の重鎖及び2本の軽鎖を含むことを意味し、各重鎖は可変領域(VH)及び定常領域(CH)を含有し、各軽鎖は一つの可変領域(VL)及び一つの定常領域(CL)を含有し、抗体は「Y」字状であり、Yの茎部はジスルフィド結合により一体に結合された2本の重鎖の第2定常領域及び第3定常領域から構成されており、Yの各アーム部は、単一の軽鎖の可変領域及び定常領域に結合された単一の重鎖の可変領域及び第1定常領域を含み、当該軽鎖の可変領域及び重鎖の可変領域は抗原結合を担当し、2本の鎖中の可変領域は、通常、相補性決定領域と呼ばれる3つの超可変領域を含む。
CDR-VH2:W-X1-N-T-Y-X2-G-E-P-T-Y-A-X3-X4-F、ここで、X1はL又はIであり、X2はT又はSであり、X3はD又はEであり、X4はD又はEであり、
CDR-VH3:A-R-X1-A-X2-X3-R-S-Y、ここで、X1はS又はTであり、X2はI又はLであり、X3はI又はLであり、
CDR-VL1:K-A-S-X1-D-X2-S-T-A-X3-A、ここで、X1はQ又はEであり、X2はI、V又はLであり、X3はI、V又はLであり、
CDR-VL2:W-X1-S-T-R-H-X2、ここで、X1はA又はGであり、X2はT又はSであり、
CDR-VL3:Q-Q-H-X1-S-T-P-X2、ここで、X1はY又はWであり、X2はL、V又はIである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH1において、X2はNである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH1において、X3はAである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH1において、X3はGである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH2において、X2はTである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH2において、X2はSである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH2において、X3はDである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH2において、X3はEである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH2において、X4はDである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH2において、X4はEである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH3において、X2はIである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH3において、X2はLである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH3において、X3はIである。
選択可能な実施形態では、CDR-VH3において、X3はLである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL1において、X2はIである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL1において、X2はVである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL1において、X2はLである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL1において、X3はIである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL1において、X3はVである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL1において、X3はLである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL2において、X2はTである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL2において、X2はSである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL3において、X1はYである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL3において、X1はWである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL3において、X2はLである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL3において、X2はVである。
選択可能な実施形態では、CDR-VL3において、X2はIである。
結合反応が発生するのに十分な条件下で、上記の抗体又はその機能性断片と試料とを接触させて、結合反応を行うステップA)と、
結合反応によって生成される免疫複合体を検出するステップB)とを含む。
結合反応が発生するのに十分な条件下で、上記抗体又はその機能性断片を被験者由来の試料と接触させて、結合反応を行うステップA)と、
結合反応によって生成される免疫複合体を検出するステップB)と、を含む。
本実施例では、制限エンドヌクレアーゼ、Prime Star DNAポリメラーゼはTakara社から購入したものである。MagExtractor-RNA抽出キットはTOYOBO社から購入したものである。BD SMARTTM RACE cDNA Amplification KitキットはTakara社から購入したものである。pMD-18TベクターはTakara社から購入したものである。プラスミド抽出キットは天根公司から購入したものである。プライマー合成と遺伝子シークエンシングはInvitrogen社によって行われた。
(1)抗体遺伝子の調製
新型コロナウイルスのNタンパク質に対する抗体を分泌するハイブリドーマ細胞株からmRNAを抽出し、RT-PCR方法によりDNA産物を取得し、当該産物に対してrTaq DNAポリメラーゼでA添加反応を行った後、pMD-18Tベクターに挿入し、DH5αコンピテント細胞に形質転換し、コロニーが成長した後、重鎖(Heavy Chain)及び軽鎖(Light Chain)遺伝子クローンをそれぞれ採集し、シークエンシングのために、それぞれの4つのクローンを遺伝子シークエンシング会社に送った。
上記のシークエンシングによって得られた遺伝子配列をIMGT抗体データベース(IMGT抗体データベースの出所:http://www.imgt.org)に入れて分析し、VNTI11.5ソフトウェアで分析して、重鎖と軽鎖プライマーペアから増幅された遺伝子がいずれも正しいことを決定し、ここで、軽鎖から増幅された遺伝子断片のうち、VL遺伝子配列は324bpで、VkII遺伝子ファミリーに属し、その前方に57bpのプリアンブルペプチド配列があり、重鎖プライマーペアから増幅された遺伝子断片のうち、VH遺伝子配列は357bpで、VH1遺伝子ファミリーに属し、その前方に57bpのプリアンブルペプチド配列がある。
pcDNATM3.4 TOPO(登録商標) vectorは、構築された組換え抗体真核発現ベクターであり、当該発現ベクターは、すでにHindIII、BamHI、EcoRIなどの多重クローニング酵素切断部位が導入され、pcDNA3.4A発現ベクターと命名し、その後、3.4A発現ベクターと略称した。上記のpMD-18T中の抗体可変領域の遺伝子シークエンシング結果に基づいて、当該抗体のVL及びVH遺伝子特異性プライマーを設計し、プライマーの両端のそれぞれにHindIII、EcoRI酵素切断部位と保護塩基があり、PCR増幅方法により0.73kbの軽鎖遺伝子断片及び1.42kbの重鎖遺伝子断片を増幅した。
(1)組換え抗体発現プラスミドをCHO細胞に一過性トランスフェクションし、発現プラスミド活性を決定する
ステップ1-(3)で得られたプラスミドを超純水で400ng/mlに希釈し、CHO細胞を遠心分離管で1.43×107個細胞/mlに調整して、100μLのプラスミドと700μLの細胞を混合してエレクトロポレーションカップに入れ、エレクトロポレーションを行い、3、5、7日目に試料を採取してカウントし、7日目に試料を採取して検出した。
50μLのBuffer、100μg/管のDNA、10μLのPuv I酵素、及び500μLになるまでの残量の無菌水の試薬を用意して、37℃の水浴にて一晩酵素切断し、先に等体積のフェノール/クロロホルム/イソアミルアルコール(下層)25:24:1を用いて、続いてクロロホルム(水相)を用いて順次抽出し、0.1倍体積(水相)の3M酢酸ナトリウムと2倍体積のエタノールを氷上に沈殿させ、70%のエタノールで沈殿物をリンスして、有機溶媒を除去し、エタノールが完全に揮発すると、適量の殺菌水で再溶解し、最後に濃度を測定した。
ステップ2-(2)で得られたプラスミドを超純水で400ng/mlに希釈し、CHO細胞を遠心分離管で1.43×107個細胞/mlに調整し、100μLのプラスミドと700μLの細胞とを混合してエレクトロポレーションカップに入れ、エレクトロポレーションを行い、翌日カウントし、25umol/LのMSX96ウェルにて加圧培養を約25日間行った。
(1)細胞拡大培養
ステップ2-(3)で得られた継代による細胞を蘇生させた後、125ml規格の振とうフラスコにて培養し、接種体積は30mlであり、培地は100%のDynamis培地であり、回転数が120r/minで、温度が37℃で、二酸化炭素が8%であるシェーカーに置いた。72h培養し、50万個細胞/mlの接種密度で接種して拡大培養し、拡大培養体積は、生産のニーズに応じて計算し、培地は100%のDynamis培地である。その後、72hごとに一回拡大培養した。細胞量が生産のニーズを満たす場合には、接種密度を50万個細胞/ml程度に厳格に制御して生産した。
振とうフラスコパラメータ:回転速度が120r/minで、温度が37℃で、二酸化炭素が8%である。流加補充:振とうフラスコで72h培養した後から始まって材料を毎日補充し、初期培養体積の3%のHyClone Cell Boost Feed 7aを毎日流加し、初期培養体積の1000分の1の流加量で、Feed 7bを毎日流加し、12日目(12日目も補充)までに補充した。6日目にブドウ糖を3g/L補充した。13日目に試料を採取した。プロテインA(proteinA)アフィニティークロマトグラフィーカラムを用いてアフィニティー精製を行った。精製された抗体を4μg取って還元性SDS-PAGEを行い、4μgの外因性対照抗体を対照とし、電気泳動図は図1に示すように、還元性SDS-PAGEの後に2本のバンドを示し、1本のMrは50KD(重鎖、配列番号14)で、もう1つのMrは28KD(軽鎖、配列番号13)である。
抗体の性能検出
(1)実施例1の抗体及びその突然変異体の活性検出
実施例1の抗体(WT)配列を分析すると、その重鎖可変領域は配列番号12で示され、ここで、重鎖可変領域上の各相補性決定領域のアミノ酸配列は以下のとおりであり、
CDR-VH1:G-F(X1)-T-F-T-D(X2)-Y-A(X3)-M-N、
CDR-VH2:W-L(X1)-N-T-Y-S(X2)-G-E-P-T-Y-A-E(X3)-D(X4)-F、
CDR-VH3:A-R-T(X1)-A-I(X2)-L(X3)-R-S-Y、
その軽鎖可変領域は配列番号11で示され、軽鎖可変領域上の各相補性決定領域のアミノ酸配列は以下のとおりであり、
CDR1-VL:K-A-S-E(X1)-D-L(X2)-S-T-A-L(X3)-A、
CDR-VL2:W-G(X1)-S-T-R-H-S(X2)、
CDR-VL3:Q-Q-H-W(X1)-S-T-P-L(X2)。
コーティング液(主成分NaHCO3)で2019-nCoV Nタンパク質抗原を1μg/mlに希釈し、1ウェル当たり100μlでマイクロプレートコーティングを行い、4℃で一晩放置し、翌日、洗浄液で2回洗浄し、叩いて乾かし、ブロッキング液(20%BSA+80%PBS)を1ウェル当たり120μlになるように加え、37℃で1h叩いて乾かし、希釈された表1のモノクローナル抗体を100μl/ウェルで加え、37℃で30min~60minであり、洗浄液で5回洗浄し、叩いて乾かし、ヤギ抗マウスIgG-HRPを1ウェル当たり100μlになるように加え、37℃で30minであり、洗浄液(PBS)で5回洗浄し、叩いて乾かし、発色液A(50μl/ウェル、2.1g/Lのクエン酸、12.25g/Lのクエン酸、0.07g/Lのアセトアニリド、及び0.5g/Lの過酸化尿素を含む)を加え、発色液B液(50μl/ウェル、1.05g/Lのクエン酸、0.186g/LのEDTA・2Na、0.45g/LのTMB、0.2ml/Lの濃HClを含む)を加え、10minであり、停止液(50μl/ウェル、0.75g/LのEDTA・2Na及び10.2ml/Lの濃H2SO4を含む)を加え、マイクロプレートリーダの450nm(630nm参照)でOD値を読み取った。結果を次の表2に示した。
AMCセンサーを利用して、精製した抗体をPBST(リン酸塩ツイーン緩衝液、主成分はNa2HPO4+NaCl+TW-20である)で10μg/mLに希釈し、2019-nCoV Nタンパク質抗原をPBSTで1.41μg/mL、0.70μg/mL、0.35μg/mL、0.18μg/mL、0.09μg/mL、0.04μg/mLに段階的に希釈した。
上記の抗体を4℃(冷蔵庫)、-80℃(冷蔵庫)、37℃(恒温槽)にて21日間放置し、7日目、14日目、21日目に試料を取って状態を観察し、21日目の試料に対して活性検出を行った結果は、抗体を3種類の評価条件で21日間放置し、いずれにもタンパク質状態の明らかな変化が見られず、活性も評価温度の上昇に伴って低下する傾向が見られないことを示し、これは、上記の抗体が安定していることを説明する。表7の突然変異1抗体は、21日間評価した酵素結合免疫活性検出のOD結果である。
Claims (18)
- 新型コロナウイルス又はそのNタンパク質に対する抗体又はその機能性断片であって、前記抗体又はその機能性断片は、下記の相補性決定領域を含み、
CDR-VH1:G-X1-T-F-T-X2-Y-X3-M-N、ここで、X1はY又はFであり、X2はD又はNであり、X3はA又はGであり、
CDR-VH2:W-X1-N-T-Y-X2-G-E-P-T-Y-A-X3-X4-F、ここで、X1はL又はIであり、X2はT又はSであり、X3はD又はEであり、X4はD又はEであり、
CDR-VH3:A-R-X1-A-X2-X3-R-S-Y、ここで、X1はS又はTであり、X2はI又はLであり、X3はI又はLであり、
CDR-VL1:K-A-S-X1-D-X2-S-T-A-X3-A、ここで、X1はQ又はEであり、X2はI、V又はLであり、X3はI、V又はLであり、
CDR-VL2:W-X1-S-T-R-H-X2、ここで、X1はA又はGであり、X2はT又はSであり、
CDR-VL3:Q-Q-H-X1-S-T-P-X2、ここで、X1はY又はWであり、X2はL、V又はIであることを特徴とする新型コロナウイルス又はそのNタンパク質に対する抗体又はその機能性断片。 - CDR-VH1において、X1はYであり、
CDR-VH2において、X1はIであり、
CDR-VH3において、X1はSであり、
CDR-VL1において、X1はQであり、
CDR-VL2において、X1はAであり、
好ましくは、CDR-VH1において、X2はDであり、
好ましくは、CDR-VH1において、X2はNであり、
好ましくは、CDR-VH1において、X3はAであり、
好ましくは、CDR-VH1において、X3はGであり、
好ましくは、CDR-VH2において、X2はTであり、
好ましくは、CDR-VH2において、X2はSであり、
好ましくは、CDR-VH2において、X3はDであり、
好ましくは、CDR-VH2において、X3はEであり、
好ましくは、CDR-VH2において、X4はDであり、
好ましくは、CDR-VH2において、X4はEであり、
好ましくは、CDR-VH3において、X2はIであり、
好ましくは、CDR-VH3において、X2はLであり、
好ましくは、CDR-VH3において、X3はIであり、
好ましくは、CDR-VH3において、X3はLであり、
好ましくは、CDR-VL1において、X2はIであり、
好ましくは、CDR-VL1において、X2はVであり、
好ましくは、CDR-VL1において、X2はLであり、
好ましくは、CDR-VL1において、X3はIであり、
好ましくは、CDR-VL1において、X3はVであり、
好ましくは、CDR-VL1において、X3はLであり、
好ましくは、CDR-VL2において、X2はTであり、
好ましくは、CDR-VL2において、X2はSであり、
好ましくは、CDR-VL3において、X1はYであり、
好ましくは、CDR-VL3において、X1はWであり、
好ましくは、CDR-VL3において、X2はLであり、
好ましくは、CDR-VL3において、X2はVであり、
好ましくは、CDR-VL3において、X2はIであり、
好ましくは、前記抗体又はその機能性断片の各相補性決定領域は、下記の突然変異組み合わせ1~42から選ばれるいずれか1つであることを特徴とする請求項1に記載の抗体又はその機能性断片。
- 前記抗体又はその機能性断片は新型コロナウイルスのNタンパク質にKD≦8×10-9mol/Lの親和性で、好ましくは、KD≦4×10-10mol/Lの親和性で結合することを特徴とする請求項2に記載の抗体又はその機能性断片。
- 前記抗体は、配列が順番に配列番号1~4に示される如き軽鎖フレームワーク領域FR1-L、FR2-L、FR3-L及びFR4-L、及び/又は、配列が順番に配列番号5~8に示される如き重鎖フレームワーク領域FR1-H、FR2-H、FR3-H及びFR4-Hを含み、
好ましくは、前記抗体は定常領域をさらに含み、
好ましくは、前記定常領域は、IgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA、IgM、IgE及びIgDから選択されるいずれか1つの定常領域であり、
好ましくは、前記定常領域の由来となる種属は牛、馬、乳牛、豚、ヒツジ、ヤギ、ラット、マウス、イヌ、ネコ、ウサギ、ラクダ、ロバ、鹿、ミンク、ニワトリ、アヒル、ガチョウ、七面鳥、闘鶏又はヒトであり、
好ましくは、前記定常領域はマウスに由来し、
好ましくは、前記定常領域の軽鎖定常領域配列は配列番号9に示され、前記定常領域の重鎖定常領域配列は配列番号10で示され、
好ましくは、前記機能性断片は前記抗体のVHH、F(ab’)2、Fab’、Fab、Fv及びscFvから選択されるいずれか1つであることを特徴とする請求項1~4のいずれか1項に記載の抗体又はその機能性断片。 - 前記抗体は、それぞれ順番に配列番号1、2、3、4と少なくとも80%の相同性を有する軽鎖フレームワーク領域FR1-L、FR2-L、FR3-L及びFR4-L、及び/又は、それぞれ順番に配列番号5、6、7、8と少なくとも80%の相同性を有する重鎖フレームワーク領域FR1-H、FR2-H、FR3-H及びFR4-Hを含むことを特徴とする請求項1~4のいずれか1項に記載の新型コロナウイルスに対する抗体又はその機能性断片。
- 請求項1~6のいずれか1項に記載の抗体又はその機能性断片を含むことを特徴とする新型コロナウイルス又はそのNタンパク質検出を検出する試薬又はキット。
- 前記抗体又はその機能性断片には、検出可能なマーカーが標識されており、
好ましくは、前記検出可能なマーカーは、蛍光染料、基質の発色を触媒する酵素、放射性同位元素、化学発光試薬及びナノ粒子類マーカーから選択され、
好ましくは、前記蛍光染料は、フルオレセイン類染料及びその誘導体、ローダミン類染料及びその誘導体、Cy系染料及びその誘導体、Alexa系染料及びその誘導体、並びにタンパク質類染料及びその誘導体から選択され、
好ましくは、前記基質の発色を触媒する酵素は、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β-ガラクトシダーゼ、グルコースオキシダーゼ、炭酸脱水酵素、アセチルコリンエステラーゼ及びグルコース6リン酸脱水素酵素から選択され、
好ましくは、前記放射性同位元素は、212Bi、131I、111In、90Y、186Re、211At、125I、188Re、153Sm、213Bi、32P、94mTc、99mTc、203Pb、67Ga、68Ga、43Sc、47Sc、110mIn、97Ru、62Cu、64Cu、67Cu、68Cu、86Y、88Y、121Sn、161Tb、166Ho、105Rh、177Lu、172Lu及び18Fから選択され、
好ましくは、前記化学発光試薬は、ルミノール及びその誘導体、ルシゲニン、甲殻類動物のフルオレセイン及びその誘導体、ビピリジンルテニウム及びその誘導体、アクリジニウムエステル及びその誘導体、ジオキシシクロエタン及びその誘導体、ロフィン及びその誘導体、並びにペルオキシシュウ酸塩及びその誘導体から選択され、
好ましくは、前記ナノ粒子類マーカーは、ナノ粒子、コロイド、有機ナノ粒子、磁性ナノ粒子、量子ドットナノ粒子及び希土類錯体ナノ粒子から選択され、
好ましくは、前記コロイドは、コロイド金属、分散型染料、染料標識のミクロスフェア及びラテックスから選択され、
好ましくは、前記コロイド金属は、コロイド金、コロイド銀及びコロイドセレンから選択されることを特徴とする請求項7に記載の試薬又はキット。 - 請求項1~6のいずれか1項に記載の抗体又はその機能性断片をコードする核酸分子。
- 請求項1~6のいずれか1項に記載の抗体又はその機能性断片をコードする核酸断片を含有することを特徴とするベクター。
- 請求項10に記載のベクターを含有することを特徴とする組換え細胞。
- 請求項1~6のいずれか1項に記載の抗体又はその機能性断片、又は請求項7又は8に記載の試薬又はキットの、新型コロナウイルスの検出における使用。
- 新型コロナウイルスを検出するために使用される、請求項1~6のいずれか1項に記載の抗体又はその機能性断片、又は請求項7又は8に記載の試薬又はキット。
- 結合反応が発生するのに十分な条件下で、請求項1~6のいずれか1項に記載の抗体又はその機能性断片と試料とを接触させて、結合反応を行うステップA)と、
結合反応によって生成される免疫複合体を検出するステップB)とを含む新型コロナウイルスを検出する方法。 - 被験者の新型コロナウイルスの感染又は新型コロナウイルス感染に関連する疾患を診断する方法であって、
結合反応が発生するのに十分な条件下で、請求項1~6のいずれか1項に記載の抗体又はその機能性断片と前記被験者からの試料とを接触させて、結合反応を行うステップA)と、
結合反応によって生成される免疫複合体を検出するステップB)とを含む方法。 - 前記新型コロナウイルス感染に関連する疾患には、呼吸器症状、発熱、咳、息切れ、呼吸困難、肺炎、重症急性呼吸器症候群、腎不全が含まれる請求項15に記載の方法。
- 前記新型コロナウイルスに感染した被験者には、無症候性感染者、明らかな症状のない感染者、症状のある感染者が含まれる請求項15に記載の方法。
- 請求項11に記載の組換え細胞を培養し、培養物から単離精製して前記抗体又はその機能性断片を得るステップを含むことを特徴とする請求項1~6のいずれか1項に記載の抗体又はその機能性断片を調製する方法。
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