JP2023500681A - 肝臓外送達 - Google Patents

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Abstract

Figure 2023500681000001
本発明の一態様は、標的遺伝子に相補的なアンチセンス鎖；前記アンチセンス鎖に相補的なセンス鎖；及び任意選択でリンカー又は担体を介して、少なくとも１つの鎖上の１つ以上の位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを含む化合物に関する。本発明の別の態様は、遺伝子サイレンシングの方法であって、親油性モノマーがコンジュゲートした化合物の治療有効量を、細胞又は必要としている対象に投与することを含む、方法に関する。

Description

ｉｎ ｖｉｖｏでの細胞へのｉＲＮＡ剤の効率的な送達は、特異的な標的化、及び細胞外環境、特に血清タンパク質からの実質的な保護を必要とする。ＲＮＡｉに基づく治療法は、肝臓関連疾患の治療のための有望な臨床データを示す。しかしながら、肝臓外組織へのｓｉＲＮＡの送達は、依然として障害であり、ｓｉＲＮＡに基づく治療法の使用を制限している。
ｉｎ ｖｉｖｏでのｉＲＮＡ剤の実験的及び治療的応用を制限する要因の１つは、インタクトなｓｉＲＮＡを効率的に送達する能力である。具体的な困難は、ｉｎ ｖｉｖｏでの網膜への非ウイルス遺伝子導入に関連している。難題の１つは、網膜のトランスフェクションを妨げる内境界膜を乗り越えることである。さらに、硝子体の負に帯電した糖が、陽性ＤＮＡ－トランスフェクション試薬複合体と相互作用して、それらの凝集を促進し、拡散及び細胞取り込みを妨げることが示されている。
中枢神経系（ＣＮＳ）中へのオリゴヌクレオチドの送達は、遊離オリゴヌクレオチドが越えられない血液脳関門（ＢＢＢ）による特定の問題を有する。オリゴヌクレオチドを中枢神経系中に送達するための一手段は、髄腔内送達による。しかしながら、オリゴヌクレオチドはまた、所望の治療効果を達成するために、中枢神経系の標的細胞に効率的に取り込まれる必要がある。過去の研究では、典型的に、ニューロン由来の細胞へのオリゴヌクレオチドの細胞内取り込みを助けるために、リポソーム、カチオン性脂質、及びナノ粒子形成複合体などの送達試薬を使用した。
したがって、ｉＲＮＡ剤の治療可能性を達成及び促進するために、組織送達試薬を用いずに、ｉｎ ｖｉｖｏでｓｉＲＮＡ分子を送達するための新規の且つ改良された方法が必要とされ続けている。
本発明の一態様は、任意選択でリンカー又は担体を介して、オリゴヌクレオチドの少なくとも１つの鎖上の１つ以上の位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを含む化合物（例えば、一本鎖又は二本鎖のいずれかであり得るオリゴヌクレオチド）を提供する。例えば、本発明の一部の実施形態は、標的遺伝子に相補的なアンチセンス鎖；前記アンチセンス鎖に相補的なセンス鎖；及び任意選択でリンカー又は担体を介して、少なくとも１つの鎖上の１つ以上の位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを含む化合物（例えば、二本鎖ｉＲＮＡ剤）を提供する。
一部の実施形態では、オクタノール－水分配係数、ｌｏｇＫｏｗによって測定される親油性部分の親油性は、０を超える。親油性部分は、１超、１．５超、２超、３超、４超、５超、又は１０超のｌｏｇＫｏｗを有し得る。
一部の実施形態では、化合物の血漿タンパク質結合アッセイにおいて非結合分画によって測定される、化合物の疎水性は、０．２を超える。一実施形態では、決定される血漿タンパク質結合アッセイは、ヒト血清アルブミンタンパク質を用いた電気泳動移動度シフトアッセイ（ＥＭＳＡ）である。結合アッセイにおいて非結合ｓｉＲＮＡの分画によって測定される、化合物の疎水性は、ｓｉＲＮＡの向上したｉｎ ｖｉｖｏ送達のために、０．１５超、０．２超、０．２５超、０．３超、０．３５超、０．４超、０．４５超、又は０．５超である。
一部の実施形態では、親油性部分は、脂肪族、環状、例えば脂環式、又は多環式、例えば多脂環式化合物、例えばステロイド（例えば、ステロール）又は直鎖若しくは分岐鎖脂肪族炭化水素である。例示的な親油性部分は、脂質、コレステロール、レチノイン酸、コール酸、アダマンタン酢酸、１－ピレン酪酸、ジヒドロテストステロン、１，３－ビス－Ｏ（ヘキサデシル）グリセロール、ゲラニルオキシヘキサノール（ｇｅｒａｎｙｌｏｘｙｈｅｘｙａｎｏｌ）、ヘキサデシルグリセロール、ボルネオール、メントール、１，３－プロパンジオール、ヘプタデシル基、パルミチン酸、ミリスチン酸、Ｏ３－（オレオイル）リトコール酸、Ｏ３－（オレオイル）コレン酸、イブプロフェン、ナプロキセン、ジメトキシトリチル、又はフェノキサジンである。
適切な親油性部分としては、飽和又は不飽和Ｃ４～Ｃ３０炭化水素鎖（例えば、Ｃ４～Ｃ３０アルキル又はアルケニル）、並びにヒドロキシル、アミン、カルボン酸、スルホネート、ホスフェート、チオール、アジド、及びアルキンからなる群から選択される任意選択の官能基を含有するものも挙げられる。この官能基は、親油性部分をｉＲＮＡ剤に結合するのに有用である。一部の実施形態では、親油性部分は、飽和又は不飽和Ｃ６～Ｃ１８炭化水素鎖（例えば、直鎖Ｃ６～Ｃ１８アルキル又はアルケニル）を含有する。一実施形態では、親油性部分は、飽和又は不飽和Ｃ１６炭化水素鎖（例えば、直鎖Ｃ１６アルキル又はアルケニル）を含有する。一部の実施形態では、親油性部分は、２つ以上の炭素－炭素二重結合を含む。
一部の実施形態では、親油性部分は、自由末端カルボン酸官能基（例えば、ヘキサン酸、ヘプタン酸、オクタン酸、ノナン酸、デカン酸、ウンデカン酸、ドデカン酸、トリデカン酸、テトラデカン酸、ペンタデカン酸、ヘキサデカン酸、ヘプタデカン酸、オクタデカン酸、オレイン酸、リノール酸、アラキドン酸、シス－４，７，１０，１３，１６，１９－ドコサヘキサエン酸）を有するＣ６～Ｃ３０部分である。
一部の実施形態では、親油性部分は、Ｃ６～Ｃ３０酸（例えば、ヘキサン酸、ヘプタン酸、オクタン酸、ノナン酸、デカン酸、ウンデカン酸、ドデカン酸、トリデカン酸、テトラデカン酸、ペンタデカン酸、ヘキサデカン酸、ヘプタデカン酸、オクタデカン酸、オレイン酸、リノール酸、アラキドン酸、シス－４，７，１０，１３，１６，１９－ドコサヘキサエン酸、ビタミンＡ、ビタミンＥ、コレステロールなど）又はＣ６～Ｃ３０アルコール（例えば、ヘキサノール、ヘプタノール、オクタノール、ノナノール、デカノール、ウンデカノール、ドデカノール、トリデカノール、テトラデカノール、ペンタデカノール、ヘキサデカノール、ヘプタデカノール、オクタデカノール、オレイルアルコール、リノレイルアルコール、アラキドン酸アルコール、シス－４，７，１０，１３，１６，１９－ドコサヘキサノール、レチノール、ビタミンＥ、コレステロールなど）である。
親油性モノマーは、ｉＲＮＡ剤、例えば、核酸塩基、糖部分、又はヌクレオシド間結合の任意の部分にコンジュゲートされた親油性部分を含み得る。親油性部分が、ｉＲＮＡ剤の核酸塩基、リボ糖、又はヌクレオシド間結合への直接結合を介して、ｉＲＮＡ剤にコンジュゲートされる場合、親油性モノマーは、核酸塩基、リボ糖、又はヌクレオシド間結合、及び親油性部分を含む。或いは、親油性モノマーは、リンカー又は担体などの非リボース置換単位にコンジュゲートされた親油性部分を含み得る。親油性部分が、リンカー又は担体などの非リボース置換単位を介してｉＲＮＡ剤にコンジュゲートされる場合、親油性モノマーは、リンカー又は担体などの非リボース置換単位、及び親油性部分を含む。
特定の実施形態では、親油性モノマーは、核酸塩基を含有しない。
特定の実施形態では、親油性モノマーは、１つ以上のリンカー（テザー）を介して、化合物にコンジュゲートされた親油性部分を含む。
一部の実施形態では、親油性モノマーは、エーテル、チオエーテル、尿素、カーボネート、アミン、アミド、マレイミド－チオエーテル、ジスルフィド、ホスホジエステル、スルホンアミド結合、クリック反応の生成物（例えば、アジド－アルキン環状付加からのトリアゾール）、又はカルバメートを含むリンカーを介して、化合物にコンジュゲートされた親油性部分を含有する。
一部の実施形態では、リンカー（テザー）の少なくとも１つは、酸化還元性切断可能リンカー（還元的に切断可能なリンカー；例えば、ジスルフィド基など）、酸性切断可能リンカー（例えば、ヒドラゾン基、エステル基、アセタール基、又はケタール基）、エステラーゼ切断可能リンカー（例えば、エステル基）、ホスファターゼ切断可能リンカー（例えば、リン酸基）、又はペプチダーゼ切断可能リンカー（例えば、ペプチド結合）である。
他の実施形態では、リンカー（テザー）の少なくとも１つは、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ジスルフィド、アミド、ガラクトサミン、グルコサミン、グルコース、ガラクトース、マンノースの官能化単糖又はオリゴ糖、及びそれらの組み合わせからなる群から選択されるバイオ切断可能リンカーである。
特定の実施形態では、親油性モノマーは、非リボース置換単位、すなわち１つ以上のヌクレオチドを置換する担体を介して、化合物にコンジュゲートされた親油性部分を含む。担体は、環状基又は非環状基であり得る。一実施形態では、環状基は、ピロリジニル、ピラゾリニル、ピラゾリジニル、イミダゾリニル、イミダゾリジニル、ピペリジニル、ピペラジニル、［１，３］ジオキソラン、オキサゾリジニル、イソキサゾリジニル、モルホリニル、チアゾリジニル、イソチアゾリジニル、キノキサリニル、ピリダジノニル、テトラヒドロフリル、及びデカリンからなる群から選択される。一実施形態では、非環状基は、セリノール骨格、グリセロール骨格又はジエタノールアミン骨格に基づく部分である。
一部の実施形態では、担体は、二本鎖ｉＲＮＡ剤において１つ以上のヌクレオチドを置換する。一部の実施形態では、担体は、二本鎖ｉＲＮＡ剤の内部位置において１つ以上のヌクレオチドを置換する。他の実施形態では、担体は、センス鎖又はアンチセンス鎖の末端においてヌクレオチドを置換する。一実施形態では、担体は、センス鎖の３’末端において末端ヌクレオチドを置換し、それによって、センス鎖の３’末端を保護するエンドキャップとして機能する。一実施形態では、担体は、アミンを有する環状基であり、例えば、担体は、ピロリジニル、ピラゾリニル、ピラゾリジニル、イミダゾリニル、イミダゾリジニル、ピペリジニル、ピペラジニル、［１，３］ジオキソラニル、オキサゾリジニル、イソキサゾリジニル、モルホリニル、チアゾリジニル、イソチアゾリジニル、キノキサリニル、ピリダジノニル、テトラヒドロフラニル、又はデカリニルであり得る。
一部の実施形態では、親油性モノマーは、下式：
Figure 2023500681000002
 のうちの１つによって表され得、
式中、
Ｊ１及びＪ２は、それぞれ独立に、Ｏ、Ｓ、ＮＲＮ、任意選択で置換されるアルキル、ＯＣ（Ｏ）ＮＨ、ＮＨＣ（Ｏ）Ｏ、Ｃ（Ｏ）ＮＨ、ＮＨＣ（Ｏ）、ＯＣ（Ｏ）、Ｃ（Ｏ）Ｏ、ＯＣ（Ｏ）Ｏ、ＮＨＣ（Ｏ）ＮＨ、ＮＨＣ（Ｓ）ＮＨ、ＯＣ（Ｓ）ＮＨ、ＯＰ（Ｎ（ＲＰ）２）Ｏ、又はＯＰ（Ｎ（ＲＰ）２）であり；
Figure 2023500681000003
 は、環状基又は非環状基であり；
ＲＮは、Ｈ、任意選択で置換されるアルキル、任意選択で置換されるアルケニル、任意選択で置換されるアルキニル、任意選択で置換されるアリール、任意選択で置換されるシクロアルキル、任意選択で置換されるアラルキル、任意選択で置換されるヘテロアリール、又はアミノ保護基であり；
ＲＰはそれぞれ、存在ごとに独立して、Ｈ、任意選択で置換されるアルキル、任意選択で置換されるアルケニル、任意選択で置換されるアルキニル、任意選択で置換されるアリール、任意選択で置換されるシクロアルキル、又は任意選択で置換されるヘテロアリールであり；
Ｌ１０は、置換若しくは非置換、飽和若しくは不飽和Ｃ３～Ｃ８炭化水素、（例えば、２つ以上の二重結合を含む、Ｃ３～Ｃ８アルキル、アルケニル、又はアルキニル、又はＣ３～Ｃ８炭化水素）であり；置換された基は、「置換された」炭化水素、アルキル、アルケニル、又はアルキニルについて本明細書に既に記載されるものを含み；
Ｌ１１は、置換若しくは非置換、飽和若しくは不飽和Ｃ６～Ｃ２６炭化水素、（例えば、２つ以上の二重結合を含む、Ｃ６～Ｃ２６アルキル、アルケニル、又はアルキニル、又はＣ３～Ｃ８炭化水素）であり；置換された基は、「置換された」炭化水素、アルキル、アルケニル、又はアルキニルについて本明細書に既に記載されるものを含み；
Ｑは、核酸塩基が担体上にない場合、存在せず、又はｉｎ ｖｉｖｏで少なくとも１０％、Ｌ１１からＬ１０を切断する切断可能基である。例えば、Ｑは、約１０～７０％、約１５～５０％、約２０～４０％、又は約２０～３０％だけ親油性モノマーからＬ１１を切断するようにｉｎ ｖｉｖｏで切断され得る切断可能基であり得る。例示的な切断可能基としては、－ＯＣ（Ｏ）－、－Ｃ（Ｏ）Ｏ－、－ＳＣ（Ｏ）－、－Ｃ（Ｏ）Ｓ－、－ＯＣ（Ｓ）－、－Ｃ（Ｓ）Ｏ－、－Ｓ－Ｓ－、－Ｃ（Ｒ５）＝Ｎ－、－Ｎ＝Ｃ（Ｒ５）－、－Ｃ（Ｒ５）＝Ｎ－Ｏ－、－Ｏ－Ｎ＝Ｃ（Ｒ５）－、－Ｃ（Ｏ）Ｎ（Ｒ５）－、－Ｎ（Ｒ５）Ｃ（Ｏ）－、－Ｃ（Ｓ）Ｎ（Ｒ５）－、－Ｎ（Ｒ５）Ｃ（Ｓ）－、－Ｎ（Ｒ５）Ｃ（Ｏ）Ｎ（Ｒ５）－、－Ｎ（Ｒ５）Ｃ（Ｏ）Ｃ（Ｒ３）（Ｒ４）ＯＣ（Ｏ）－、－Ｃ（Ｏ）ＯＣ（Ｒ３）（Ｒ４）Ｃ（Ｏ）Ｎ（Ｒ５）－、－ＯＣ（Ｏ）Ｏ－、－ＯＳｉ（Ｒ５）２Ｏ－、－Ｃ（Ｏ）（ＣＲ３Ｒ４）Ｃ（Ｏ）Ｏ－、－ＯＣ（Ｏ）（ＣＲ３Ｒ４）Ｃ（Ｏ）－、
Figure 2023500681000004
 、又はそれらの組み合わせが挙げられ、Ｒ１１は、Ｃ２～Ｃ８アルキル又はアルケニルである。存在ごとに、Ｒ３、Ｒ４、及びＲ５は、それぞれ独立に、Ｈ又はＣ１～Ｃ４アルキルである。
一実施形態では、Ｑの切断性は、脳脊髄液（ＣＳＦ）中のリガンドの安定性、血漿中のリガンドの安定性、脳ホモジネート若しくは組織ホモジネート（肝臓、眼など）中のリガンドの安定性、又は硝子体液中のリガンドの安定性によって決定される。
環状基及び非環状基としては、本明細書に既に記載されるものが挙げられる。
一実施形態では、非環状基は、セリノール、グリセロール、又はジエタノールアミン骨格である。
一実施形態では、環状基は、ピロリジニル、ヒドロキシプロリニル、シクロペンチル、シクロヘキシル、ピラゾリニル、ピラゾリジニル、イミダゾリニル、イミダゾリジニル、ピペリジニル、ピペラジニル、［１，３］ジオキソラニル、オキサゾリジニル、イソキサゾリジニル、モルホリニル、チアゾリジニル、イソチアゾリジニル、キノキサリニル、ピリダジノニル、テトラヒドロフラニル、及びデカリニルからなる群から選択される。
一実施形態では、環状基は、リボース又はリボース類似体である。リボース類似体の例としては、アラビノース、４’－チオリボース、２’－Ｏ－メチルリボース、ＧＮＡ、ＵＮＡ、及びＬＮＡ類似体が挙げられる。
一部の実施形態では、化合物の鎖の１つ以上の位置にコンジュゲートされる親油性モノマーは、
Figure 2023500681000005
Figure 2023500681000006
Figure 2023500681000007
 の構造を有する。
親油性モノマーの上記の構造において、モノマーはまた、１つ以上の不斉中心を含んでもよく、したがって、ラセミ化合物及びラセミ混合物、単一の鏡像異性体、個々のジアステレオマー及びジアステレオマー混合物として存在してもよい。モノマーの全てのこのような異性体が明示的に含まれる。
親油性モノマーの上記の構造において、アルキレン鎖は、１つ以上の不飽和結合を含み得る。
整数ｍは、０～８である。整数ｎは、１～２１である。Ｒ２’は、リボース糖のための許容される２’－修飾、例えば、２’－Ｏ－メトキシアルキル（例えば、２’－Ｏ－メトキシメチル、２’－Ｏ－メトキシエチル、又は２’－Ｏ－２－メトキシプロパニル）修飾、２’－Ｏ－アリル修飾、２’－Ｃ－アリル修飾、２’－フルオロ修飾、２’－Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド（２’－Ｏ－ＮＭＡ）修飾、２’－Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル（２’－Ｏ－ＤＭＡＥＯＥ）修飾、２’－Ｏ－アミノプロピル（２’－Ｏ－ＡＰ）修飾、又は２’－ａｒａ－Ｆ修飾である任意の官能基であり得る。例えば、Ｒ２’は、Ｈ、ＯＨ、Ｆ、ＯＭｅ、Ｏ－メトキシアルキル、Ｏ－アリル、Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド、Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル、又はＯ－アミノプロピルであり得る。Ｂは、修飾又は非修飾核酸塩基である。Ｗは、Ｃ１～Ｃ４アルキル（例えば、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ブチル、イソブチル、ｔ－ブチル）などのアルキル基である。Ｒ、Ｒ’、及びＲ”は、それぞれ独立に、Ｈ又はＣ１～Ｃ４アルキル（例えば、メチル、エチル、プロピル、イソプロピル、ｔ－ブチル）などのアルキル基である。
一部の実施形態では、化合物の鎖の１つ以上の位置にコンジュゲートされる親油性モノマーは、
Figure 2023500681000008
 （Ｒ２’は、２’－Ｆ、２’－ＯＭｅ、２’－ＮＭＡ、２’－デオキシ、又は２’－ＯＨである）；
Figure 2023500681000009
Figure 2023500681000010
 の構造を有する。これらの構造において、Ｂは、修飾又は非修飾核酸塩基である。
親油性モノマーの特定の実施形態としては、
Figure 2023500681000011
Figure 2023500681000012
Figure 2023500681000013
 が挙げられる。これらの構造において、Ｂは、修飾又は非修飾核酸塩基であり；Ｒ及びＲ’は、それぞれ独立に、Ｈ、メチル、エチル、イソプロピル、又はｔ－ブチルである。
一部の実施形態では、親油性モノマーは、
Figure 2023500681000014
 の担体を介して、化合物の鎖（一本鎖オリゴヌクレオチドの一本鎖；又は二本鎖オリゴヌクレオチドのセンス鎖及び／若しくはアンチセンス鎖）にコンジュゲートされた親油性部分を含有する。これらの実施形態ではて、Ｒは、本明細書において定義される親油性部分である。Ｒ２’は、Ｈ、ＯＨ、Ｆ、ＯＭｅ、Ｏ－メトキシアルキル、Ｏ－アリル、Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド、Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル、又はＯ－アミノプロピルである。Ｂは、修飾又は非修飾核酸塩基である。
一部の実施形態では、親油性モノマーは、
Figure 2023500681000015
 の担体を介して、化合物の鎖（一本鎖オリゴヌクレオチドの一本鎖；又は二本鎖オリゴヌクレオチドのセンス鎖及び／若しくはアンチセンス鎖）の内部位置にコンジュゲートされた親油性部分を含有する。これらの実施形態では、Ｒは、本明細書において定義される親油性部分である。ｎは、１～２１の整数である。Ｒ２’は、Ｈ、ＯＨ、Ｆ、ＯＭｅ、Ｏ－メトキシアルキル、Ｏ－アリル、Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド、Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル、又はＯ－アミノプロピルである。Ｂは、修飾又は非修飾核酸塩基である。
親油性モノマーのさらなる例は、実施例に見出され得る。
一部の実施形態では、化合物のセンス鎖及びアンチセンス鎖はそれぞれ、１５～３０ヌクレオチド長である。
一実施形態では、化合物のセンス鎖及びアンチセンス鎖はそれぞれ、１９～２５ヌクレオチド長である。
一実施形態では、化合物のセンス鎖及びアンチセンス鎖はそれぞれ、２１～２３ヌクレオチド長である。
一部の実施形態では、化合物は、末端の少なくとも１つに一本鎖オーバーハング、例えば、１～１０ヌクレオチド長の３’及び／又は５’オーバーハング、例えば、１、２、３、４、５、又は６ヌクレオチドのオーバーハングを含む。一部の実施形態では、両方の鎖は、二本鎖領域において１～５つ（例えば、１、２、３、４、又は５つ）の一本鎖ヌクレオチドの少なくとも１つの区間を有する。一実施形態では、一本鎖オーバーハングは、１、２、又は３ヌクレオチド長である。一部の実施形態では、化合物はまた、アンチセンス鎖の５’末端（又はセンス鎖の３’末端）に位置する平滑末端を有してもよく、又は逆もまた同様である。一実施形態では、化合物は、アンチセンス鎖の３’末端に３’オーバーハング、及び任意選択で、アンチセンス鎖の５’末端に平滑末端を含む。一実施形態では、化合物は、センス鎖の５’末端に５’オーバーハング、及び任意選択で、アンチセンス鎖の５’末端に平滑末端を有する。一実施形態では、化合物は、ｉＲＮＡ二重鎖の両端に２つの平滑末端を有する。
一実施形態では、化合物のセンス鎖は、２１ヌクレオチド長であり、アンチセンス鎖は、２３ヌクレオチド長であり、ここで、鎖は、３’末端に２ヌクレオチド長の一本鎖オーバーハングを有する２１の連続した塩基対の二本鎖領域を形成する。
一部の実施形態では、センス鎖は、３’末端に少なくとも１つのホスホロチオエート結合をさらに含む。一部の実施形態では、センス鎖は、３’末端に少なくとも２つのホスホロチオエート結合をさらに含む。一部の実施形態では、１つ以上の親油性モノマーが、センス鎖の３’末端に位置する。一実施形態では、ホスホロチオエート結合の１つが、親油性モノマーとセンス鎖の３’末端から１番目のヌクレオチドとの間に位置する。
一部の実施形態では、センス鎖は、５’末端に少なくとも１つのホスホロチオエート結合をさらに含む。一部の実施形態では、センス鎖は、５’末端に少なくとも２つのホスホロチオエート結合をさらに含む。一部の実施形態では、１つ以上の親油性モノマーが、センス鎖の５’末端に位置する。一実施形態では、ホスホロチオエート結合の１つが、親油性モノマーとセンス鎖の５’末端から１番目のヌクレオチドとの間に位置する。
一部の実施形態では、アンチセンス鎖は、３’末端に少なくとも１つのホスホロチオエート結合をさらに含む。一部の実施形態では、アンチセンス鎖は、３’末端に少なくとも２つのホスホロチオエート結合をさらに含む。一部の実施形態では、１つ以上の親油性モノマーが、アンチセンス鎖の３’末端に位置する。一実施形態では、ホスホロチオエート結合の１つが、親油性モノマーとアンチセンス鎖の３’末端から１番目のヌクレオチドとの間に位置する。
一部の実施形態では、化合物は、アンチセンス鎖の５’末端にリン酸塩又はリン酸塩模倣体をさらに含む。一実施形態では、リン酸塩模倣体は、５’－ビニルホスホネート（ＶＰ）である。
一部の実施形態では、化合物のアンチセンス鎖の５’末端は、５’－ビニルホスホネート（ＶＰ）を含まない。
一部の実施形態では、化合物は、少なくとも１つの末端キラルリン原子をさらに含む。
ヌクレオチド間結合の部位特異的なキラル修飾が、鎖の５’末端、３’末端、又は５’末端及び３’末端の両方において存在し得る。これは、本明細書では、「末端」キラル修飾と呼ばれる。末端修飾は、末端領域における３’又は５’末端位置において、例えば、末端ヌクレオチド又は鎖の最後の２、３、４、５、６、７、８、９若しくは１０ヌクレオチド内の位置において存在し得る。キラル修飾は、センス鎖、アンチセンス鎖、又はセンス鎖及びアンチセンス鎖の両方において起こり得る。キラル純粋リン原子のそれぞれは、Ｒｐ配置又はＳｐ配置、及びそれらの組み合わせのいずれかであり得る。キラル修飾及びキラル修飾ｄｓＲＮＡ剤に関するさらなる詳細が、参照により全内容が本明細書に組み入れられる、２０１８年１２月２１日出願の、“Ｃｈｉｒａｌｌｙ－Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｄｏｕｂｌｅ－Ｓｔｒａｎｄｅｄ ＲＮＡ Ａｇｅｎｔｓ”という名称のＰＣＴ／ＵＳ１８／６７１０３号明細書に見出され得る。
一部の実施形態では、化合物は、Ｓｐ配置で結合リン原子を有する、アンチセンス鎖の３’末端における第１のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾；Ｒｐ配置で結合リン原子を有する、アンチセンス鎖の５’末端における第１のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾；及びＲｐ配置又はＳｐ配置のいずれかで結合リン原子を有する、センス鎖の５’末端における第１のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾をさらに含む。
一実施形態では、化合物は、Ｓｐ配置で結合リン原子を有する、アンチセンス鎖の３’末端における第１及び第２のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾；Ｒｐ配置で結合リン原子を有する、アンチセンス鎖の５’末端における第１のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾；及びＲｐ又はＳｐ配置のいずれかで結合リン原子を有する、センス鎖の５’末端における第１のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾をさらに含む。
一実施形態では、化合物は、Ｓｐ配置で結合リン原子を有する、アンチセンス鎖の３’末端における第１、第２、及び第３のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾；Ｒｐ配置で結合リン原子を有する、アンチセンス鎖の５’末端における第１のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾；及びＲｐ又はＳｐ配置のいずれかで結合リン原子を有する、センス鎖の５’末端における第１のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾をさらに含む。
一実施形態では、化合物は、Ｓｐ配置で結合リン原子を有する、アンチセンス鎖の３’末端における第１及び第２のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾；Ｒｐ配置で結合リン原子を有する、アンチセンス鎖の３’末端における第３のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾；Ｒｐ配置で結合リン原子を有する、アンチセンス鎖の５’末端における第１のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾；及びＲｐ又はＳｐ配置のいずれかで結合リン原子を有する、センス鎖の５’末端における第１のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾をさらに含む。
一実施形態では、化合物は、アンチセンス鎖の３’末端における第１及び第２のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾、Ｓｐ配置で結合リン原子を有する、；Ｒｐ配置で結合リン原子を有する、アンチセンス鎖の５’末端における第１、及び第２のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾；及びＲｐ又はＳｐ配置のいずれかで結合リン原子を有する、センス鎖の５’末端における第１のヌクレオチド間結合において存在する末端キラル修飾をさらに含む。
一部の実施形態では、化合物は、（５’末端から数えて）アンチセンス鎖上の最初の５つのヌクレオチドにおいて少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を有する。
一部の実施形態では、アンチセンス鎖は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、又は１８のリン酸塩ヌクレオチド間結合によって隔てられる、１つ、２つ、又は３つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合の２つのブロックを含む。
一部の実施形態では、化合物は、特定の中枢神経系組織への送達を媒介する受容体を標的とする標的化リガンドをさらに含む。一実施形態では、標的化リガンドは、Ａｎｇｉｏｐｅｐ－２、リポタンパク質受容体関連タンパク質（ＬＲＰ）リガンド、ｂＥｎｄ．３細胞結合リガンド、トランスフェリン受容体（ＴｆＲ）リガンド、マンノース受容体リガンド、グルコーストランスポータータンパク質、及びＬＤＬ受容体リガンドからなる群から選択される。
一部の実施形態では、化合物は、眼組織への送達を媒介する受容体を標的とする標的化リガンドをさらに含む。一実施形態では、標的化リガンドは、トランス－レチノール、ＲＧＤペプチド、ＬＤＬ受容体リガンド、及び糖質系リガンドからなる群から選択される。一実施形態では、標的化リガンドは、Ｈ－Ｇｌｙ－Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｓｅｒ－Ｐｒｏ－Ｌｙｓ－Ｃｙｓ－ＯＨ又はＣｙｃｌｏ（－Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｄ－Ｐｈｅ－Ｃｙｓ）などのＲＧＤペプチドである。
一部の実施形態では、化合物は、肝組織を標的とする標的化リガンドをさらに含む。一部の実施形態では、標的化リガンドは、糖質系リガンドである。一実施形態では、標的化リガンドは、ＧａｌＮＡｃコンジュゲートである。
一部の実施形態では、化合物のアンチセンス及びセンス鎖の１００％、９５％、９０％、８５％、８０％、７５％、７０％、６５％、６０％、５５％、５０％、４５％、４０％、３５％又は３０％が修飾される。例えば、化合物の５０％が修飾される場合、化合物中に存在する全てのヌクレオチドの５０％が、本明細書に記載される修飾を含む。
一部の実施形態では、化合物のアンチセンス及びセンス鎖は、少なくとも３０％、３５％、４０％、４５％、５０％、５５％、６０％、６５％、７０％、７５％、８０％、８５％、９０％、９５％、又は実質的に１００％の２’－Ｏ－メチル修飾ヌクレオチドを含む。
一実施形態では、化合物はオリゴヌクレオチド、例えば二本鎖ｄｓＲＮＡ剤であり、二本鎖ｄｓＲＮＡ剤のヌクレオチドの少なくとも５０％が、独立に、２’－Ｏ－メチル、２’－Ｏ－アリル、２’－デオキシ、又は２’－フルオロで修飾される。
一実施形態では、オリゴヌクレオチドは、アンチセンスであり、アンチセンスのヌクレオチドの少なくとも５０％が、独立に、ＬＮＡ、ＣｅＮＡ、２’－メトキシエチル、又は２’－デオキシで修飾される。
一部の実施形態では、化合物のセンス鎖及びアンチセンス鎖は、１２未満、１０未満、８つ未満、６つ未満、４つ未満、２つ未満の２’－Ｆ修飾ヌクレオチドを含むか、又は２’－Ｆ修飾ヌクレオチドを含まない。一部の実施形態では、化合物は、センス鎖上に１２未満、１０未満、８つ未満、６つ未満、４つ未満、２つ未満の２’－Ｆ修飾を有するか、又は２’－Ｆ修飾を有さない。一部の実施形態では、化合物は、アンチセンス鎖上に１２未満、１０未満、８つ未満、６つ未満、４つ未満、２つ未満の２’－Ｆ修飾を有するか、又は２’－Ｆ修飾を有さない。
一部の実施形態では、化合物は、センス鎖又はアンチセンス鎖の任意の位置に１つ以上の２’－Ｆ修飾を有する。
一部の実施形態では、化合物は、２０％未満、１５％未満、１０％未満、５％未満の非天然ヌクレオチドを有するか、又は非天然ヌクレオチドを実質的に有さない。非天然ヌクレオチドの例としては、非環状ヌクレオチド、ＬＮＡ、ＨＮＡ、ＣｅＮＡ、２’－Ｏ－メトキシアルキル（例えば、２’－Ｏ－メトキシメチル、２’－Ｏ－メトキシエチル、又は２’－Ｏ－２－メトキシプロパニル）、２’－Ｏ－アリル、２’－Ｃ－アリル、２’－フルオロ、２’－Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド（２’－Ｏ－ＮＭＡ）、２’－Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル（２’－Ｏ－ＤＭＡＥＯＥ）、２’－Ｏ－アミノプロピル（２’－Ｏ－ＡＰ）、２’－ａｒａ－Ｆ、Ｌ－ヌクレオシド修飾（２’－修飾Ｌ－ヌクレオシド、例えば、２’－デオキシ－Ｌ－ヌクレオシドなど）、ＢＮＡ脱塩基糖、脱塩基環状及び開放鎖アルキルが挙げられる。
一部の実施形態では、化合物は、８０％超、８５％超、９０％超、９５％超、又は実質的に１００％の天然ヌクレオチドを有する。これらの実施形態の趣旨では、天然ヌクレオチドは、２’－ＯＨ、２’－デオキシ、及び２’－ＯＭｅを有するものを含み得る。
一部の実施形態では、アンチセンス鎖は、例えば、アンチセンス鎖のシード領域に、少なくとも１つのアンロック核酸（ＵＮＡ）又はグリセロール核酸（ＧＮＡ）修飾を含有する。一実施形態では、シード領域は、アンチセンス鎖の５’末端の２～８位（又は５～７位）にある。
一実施形態では、化合物は、１５～３０ヌクレオチド長をそれぞれ有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；（５’末端から数えて）アンチセンス鎖上の最初の５つのヌクレオチドにおける少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含み；ここで、二重鎖領域は、１９～２５の塩基対（好ましくは、１９、２０、２１又は２２）であり；ここで、化合物は、２０％未満、１５％未満、１０％未満、５％未満の非天然ヌクレオチドを有するか、又は非天然ヌクレオチドを実質的に有さない。
一実施形態では、化合物は、１５～３０ヌクレオチド長をそれぞれ有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；（５’末端から数えて）アンチセンス鎖上の最初の５つのヌクレオチドにおける少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含み；ここで、二重鎖領域は、１９～２５の塩基対（好ましくは、１９、２０、２１又は２２）であり；ここで、化合物は、８０％超、８５％超、９５％超、又は実質的に１００％の天然ヌクレオチドを有し、例えば、２’－ＯＨ、２’－デオキシ、又は２’－ＯＭｅを有するものである。
本発明の一態様は、１５～３５ヌクレオチド長を各鎖が独立して有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；アンチセンス鎖の５’末端から数えて最初の５つのヌクレオチドの間の少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合；センス鎖及び／又はアンチセンス鎖上の少なくとも３つ、４つ、５つ、又は６つの２’－デオキシ修飾を含む化合物を提供し；ここで、化合物は、１９～２５の塩基対の二本鎖（二重鎖）領域を有し；ここで、化合物は、リガンドを含み；ここで、センス鎖は、グリコール核酸（ＧＮＡ）を含まない。
アンチセンス鎖が、ＲＮＡ干渉を仲介するために、標的配列に対して十分な相補性を有することが理解される。言い換えると、化合物は、標的遺伝子の発現を阻害することが可能である。
一実施形態では、化合物は、少なくとも３つの２’－デオキシ修飾を含む。２’－デオキシ修飾は、アンチセンス鎖の５’末端から数えて、アンチセンス鎖の２及び１４位に、並びにセンス鎖の５’末端から数えて、センス鎖の１１位にある。
一実施形態では、化合物は、少なくとも５つの２’－デオキシ修飾を含む。２’－デオキシ修飾は、アンチセンス鎖の５’末端から数えて、アンチセンス鎖の２、１２及び１４位に、並びにセンス鎖の５’末端から数えて、センス鎖の９及び１１位にある。
一実施形態では、化合物は、少なくとも７つの２’－デオキシ修飾を含む。２’－デオキシ修飾は、アンチセンス鎖の５’末端から数えて、アンチセンス鎖の２、５、７、１２及び１４位に、並びにセンス鎖の５’末端から数えて、センス鎖の９及び１１位にある。
一実施形態では、アンチセンス鎖は、アンチセンス鎖の５’末端から数えて、２、５、７、１２及び１４位に少なくとも５つの２’－デオキシ修飾を含む。アンチセンス鎖は、１８～２５ヌクレオチド長、又は１８～２３ヌクレオチド長を有する。
一実施形態では、化合物は、１つ以上の非天然ヌクレオチドを含み得る。例えば、化合物は、２０％未満、例えば、１５％未満、１０％未満、若しくは５％未満の天然ヌクレオチドを含み得るか、又は化合物は、非天然ヌクレオチドを含まない。例えば、化合物は、全て天然のヌクレオチドを含む。いくつかの例示的な非天然ヌクレオチドとしては、限定されるものではないが、非環状ヌクレオチド、ロックド核酸（ＬＮＡ）、ＨＮＡ、ＣｅＮＡ、２’－メトキシエチル、２’－Ｏ－アリル、２’－Ｃ－アリル、２’－フルオロ、２’－Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド（２’－Ｏ－ＮＭＡ）、２’－Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル（２’－Ｏ－ＤＭＡＥＯＥ）、２’－Ｏ－アミノプロピル（２’－Ｏ－ＡＰ）、及び２’－ａｒａ－Ｆが挙げられる。
一実施形態では、化合物は、１５～３５ヌクレオチド長を各鎖が独立して有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；アンチセンス鎖の５’末端から数えて最初の５つのヌクレオチドの間の少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合；センス鎖及び／又はアンチセンス鎖上の少なくとも３つ、４つ、５つ若しくは６つの２’－デオキシヌクレオチドを含み；ここで、化合物は、１９～２５の塩基対の二重鎖領域を有し；ここで、化合物は、リガンドを含み；ここで、センス鎖は、グリコール核酸（ＧＮＡ）を含まず；ここで、化合物は、２０％未満、例えば、１５％未満、１０％未満、若しくは５％未満の非天然ヌクレオチドを含むか、又は化合物は、全て天然のヌクレオチドを含む。
一実施形態では、少なくとも１つのセンス鎖及びアンチセンス鎖は、センス鎖又はアンチセンス鎖の中心領域における少なくとも１つ、例えば、少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、少なくとも５つ、少なくとも６つ、又は少なくとも７つ若しくはそれ以上の２’－デオキシ修飾を含む。したがって、一実施形態では、化合物は、１５～３５ヌクレオチド長を各鎖が独立して有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；アンチセンス鎖の５’末端から数えて最初の５つのヌクレオチドの間の少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合；センス鎖及び／又はアンチセンス鎖上の少なくとも３つ、４つ、５つ若しくは６つの２’－デオキシヌクレオチドを含み；ここで、化合物は、１９～２５の塩基対の二重鎖領域を有し；ここで、化合物は、リガンドを含み；ここで、センス鎖及び／又はアンチセンス鎖は、センス鎖及び／又はアンチセンス鎖の中心領域において、少なくとも１つ、例えば、少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、少なくとも５つ、少なくとも６つ、又は少なくとも７つ若しくはそれ以上の２’－デオキシ修飾を含む。
一部の実施形態では、センス鎖は、１８～３０ヌクレオチド長を有し、センス鎖の中心領域において、少なくとも２つの２’－デオキシ修飾を含む。例えば、センス鎖は、１８～３０ヌクレオチド長を有し、センス鎖の５’末端から数えて、７、８、９、１０、１１、１２、及び１３位内に少なくとも２つの２’－デオキシ修飾を含む。
一実施形態では、アンチセンス鎖は、１８～３０ヌクレオチド長を有し、アンチセンス鎖の中心領域において、少なくとも２つの２’－デオキシ修飾を含む。例えば、アンチセンス鎖は、１８～３０ヌクレオチド長を有し、アンチセンス鎖の５’末端から数えて、１０、１１、１２、１３、１４、１５及び１６位内に少なくとも２つの２’－デオキシ修飾を含む。
一実施形態では、化合物は、センス鎖及びアンチセンス鎖を含み；ここで、センス鎖は、１７～３０ヌクレオチド長を有し、センス鎖の中心領域において、少なくとも１つの２’－デオキシ修飾を含み；ここで、アンチセンス鎖は、独立に、１７～３０ヌクレオチド長を有し、アンチセンス鎖の中心領域において、少なくとも２つの２’－デオキシ修飾を含む。
一実施形態では、化合物は、センス鎖及びアンチセンス鎖を含み；ここで、センス鎖は、１７～３０ヌクレオチド長を有し、センス鎖の中心領域において、少なくとも２つの２’－デオキシ修飾を含み；ここで、アンチセンス鎖は、独立に、１７～３０ヌクレオチド長を有し、アンチセンス鎖の中心領域において、少なくとも１つの２’－デオキシ修飾を含む。
一実施形態では、化合物は、１５～３５ヌクレオチド長を各鎖が独立して有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；アンチセンス鎖の５’末端から数えて最初の５つのヌクレオチドの間の少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合；センス鎖及び／又はアンチセンス鎖上の少なくとも３つ、４つ、５つ若しくは６つの２’－デオキシヌクレオチドを含み；ここで、化合物は、１９～２５の塩基対の二重鎖領域を有し；ここで、化合物は、リガンドを含み；ここで、センス鎖は、センス鎖の中心領域において、少なくとも１つ、例えば、少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、少なくとも５つ、少なくとも６つ、少なくとも７つ若しくはそれ以上の２’－デオキシ修飾を含む。
一実施形態では、化合物は、１５～３５ヌクレオチド長を各鎖が独立して有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；アンチセンス鎖の５’末端から数えて最初の５つのヌクレオチドの間の少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合；センス鎖及び／又はアンチセンス鎖上の少なくとも３つ、４つ、５つ若しくは６つの２’－デオキシヌクレオチドを含み；ここで、化合物は、１９～２５の塩基対の二重鎖領域を有し；ここで、化合物は、リガンドを含み；ここで、アンチセンス鎖は、アンチセンス鎖の中心領域において、少なくとも１つ、例えば、少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、少なくとも５つ、少なくとも６つ、少なくとも７つ若しくはそれ以上の２’－デオキシ修飾を含む。
一実施形態では、化合物は、１５～３５ヌクレオチド長を各鎖が独立して有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；アンチセンス鎖の５’末端から数えて最初の５つのヌクレオチドの間の少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合；センス鎖及び／又はアンチセンス鎖上の少なくとも３つ、４つ、５つ若しくは６つの２’－デオキシヌクレオチドを含み；ここで、化合物は、１９～２５の塩基対の二重鎖領域を有し；ここで、化合物は、リガンドを含み；ここで、化合物は、２０％未満、例えば、１５％未満、１０％未満、若しくは５％未満の非天然ヌクレオチドを含むか、又は化合物は、全て天然のヌクレオチドを含み；ここで、センス鎖及び／又はアンチセンス鎖は、センス鎖及び／又はアンチセンス鎖の中心領域において、少なくとも１つ、例えば、少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、少なくとも５つ、少なくとも６つ、少なくとも７つ若しくはそれ以上の２’－デオキシ修飾を含む。
一実施形態では、化合物は、１５～３５ヌクレオチド長を各鎖が独立して有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；アンチセンス鎖の５’末端から数えて最初の５つのヌクレオチドの間の少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合；センス鎖及び／又はアンチセンス鎖上の少なくとも３つ、４つ、５つ若しくは６つの２’－デオキシヌクレオチドを含み；ここで、化合物は、１９～２５の塩基対の二重鎖領域を有し；ここで、化合物は、リガンドを含み；ここで、化合物は、２０％未満、例えば、１５％未満、１０％未満、若しくは５％未満の非天然ヌクレオチドを含むか、又は化合物は、全て天然のヌクレオチドを含み；ここで、センス鎖は、センス鎖の中心領域において、少なくとも１つ、例えば、少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、少なくとも５つ、少なくとも６つ、少なくとも７つ若しくはそれ以上の２’－デオキシ修飾を含む。
一実施形態では、化合物は、１５～３５ヌクレオチド長を各鎖が独立して有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；アンチセンス鎖の５’末端から数えて最初の５つのヌクレオチドの間の少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合；センス鎖及び／又はアンチセンス鎖上の少なくとも３つ、４つ、５つ若しくは６つの２’－デオキシヌクレオチドを含み；ここで、化合物は、１９～２５の塩基対の二重鎖領域を有し；ここで、化合物は、リガンドを含み；ここで、化合物は、２０％未満、例えば、１５％未満、１０％未満、若しくは５％未満の非天然ヌクレオチドを含むか、又は化合物は、全て天然のヌクレオチドを含み；ここで、アンチセンス鎖は、アンチセンス鎖の中心領域において、少なくとも１つ、例えば、少なくとも２つ、少なくとも３つ、少なくとも４つ、少なくとも５つ、少なくとも６つ、少なくとも７つ若しくはそれ以上の２’－デオキシ修飾を含む。
一実施形態では、化合物が、８つ未満の非２’ＯＭｅヌクレオチドを含む場合、アンチセンス鎖は、少なくとも１つのＤＮＡを含む。例えば、本発明の実施形態のいずれか１つにおいて、化合物が、８つ未満の非２’ＯＭｅヌクレオチドを含む場合、アンチセンス鎖は、少なくとも１つのＤＮＡを含む。
一実施形態では、アンチセンスが、２つのデオキシヌクレオチドを含み、前記ヌクレオチドが、アンチセンス鎖の５’末端から数えて、２及び１４位にある場合、化合物は、８つ以下（例えば、８、７、６、５、４、３、２、１又は０）の非２’ＯＭｅヌクレオチドを含む。例えば、本発明の実施形態のいずれか１つにおいて、アンチセンスが、２つのデオキシヌクレオチドを含み、前記ヌクレオチドが、アンチセンス鎖の５’末端から数えて、２及び１４位にある場合、化合物は、０、１、２、３、４、５、６、７又は８つの非２’－ＯＭｅヌクレオチドを含む。
別の態様では、本発明はさらに、本発明の化合物を、皮下又は静脈内投与によって、対象における特定の標的に送達するための方法を提供する。本発明はさらに、前記薬剤を、皮下又は静脈内投与によって、対象における特定の標的に送達するための方法に使用するための、本発明の化合物を提供する。
本発明の別の態様は、細胞内での標的遺伝子の発現を低下させる方法であって、標的遺伝子に相補的なアンチセンス鎖；前記アンチセンス鎖に相補的なセンス鎖；及び任意選択でリンカー又は担体を介して、少なくとも１つの鎖上の１つ以上の位置にコンジュゲートされた、１つ以上の親油性部分を含有する、１つ以上の親油性モノマーを含む化合物と前記細胞を接触させるステップを含む、方法に関する。
化合物に関する本発明の第１の態様における親油性モノマー、親油性部分、及び化合物へのそれらのコンジュゲーションに関する上記の実施形態は全て、細胞内での標的遺伝子の発現を低下させる方法に関する本発明のこの態様において好適である。
一実施形態では、細胞は、肝臓外細胞である。
一実施形態では、細胞は、肝細胞でない。
本発明の別の態様は、対象における標的遺伝子の発現を低下させる方法であって、標的遺伝子に相補的なアンチセンス鎖；前記アンチセンス鎖に相補的なセンス鎖；及び任意選択でリンカー又は担体を介して、少なくとも１つの鎖上の１つ以上の内部位置にコンジュゲートされた、１つ以上の親油性部分を含有する、１つ以上の親油性モノマーを含む化合物と前記細胞を接触させることを含む、化合物を対象に投与するステップを含む、方法に関する。
化合物に関する本発明の第１の態様における親油性モノマー、親油性部分、及び化合物へのそれらのコンジュゲーションに関する上記の実施形態は全て、対象における標的遺伝子の発現を低下させる方法に関する本発明のこの態様において好適である。
一部の実施形態では、化合物は、肝臓外で投与される。
一実施形態では、化合物は、髄腔内に又は脳室内に投与される。化合物の髄腔内又は脳室内投与によって、本方法は、脳又は脊椎組織、例えば、大脳皮質、小脳、頚椎、腰椎、及び胸椎における標的遺伝子の発現を低下させ得る。
一部の実施形態では、例示的な標的遺伝子は、ＡＰＰ、ＡＴＸＮ２、Ｃ９ｏｒｆ７２、ＴＡＲＤＢＰ、ＭＡＰＴ（タウ）、ＨＴＴ、ＳＮＣＡ、ＦＵＳ、ＡＴＸＮ３、ＡＴＸＮ１、ＳＣＡ１、ＳＣＡ７、ＳＣＡ８、ＭｅＣＰ２、ＰＲＮＰ、ＳＯＤ１、ＤＭＰＫ、及びＴＴＲである。対象におけるこれらの標的遺伝子の発現を低下させるために、化合物は直接眼に、例えば硝子体内に投与され得る。化合物の硝子体内投与によって、本方法は、眼組織における標的遺伝子の発現を低下させることができる。
本発明の別の態様は、中枢神経系疾患に罹患している対象を治療する方法であって、治療有効量の二本鎖ＲＮＡｉ剤を対象に投与し、それによって、対象を治療するステップを含む、方法に関する。二本鎖ＲＮＡｉ剤は、標的遺伝子に相補的なアンチセンス鎖；前記アンチセンス鎖に相補的なセンス鎖；及び任意選択でリンカー又は担体を介して、少なくとも１つの鎖上の１つ以上の内部位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを含む。
化合物に関する本発明の第１の態様における親油性モノマー、１つ以上の親油性部分及び化合物へのそれらのコンジュゲーションに関する上記の実施形態は全て、中枢神経系疾患に罹患している対象を治療する方法に関する本発明のこの態様において好適である。本発明の方法によって治療され得る例示的な中枢神経系疾患としては、アルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、前頭側頭認知症、ハンチントン病、パーキンソン病、脊髄小脳失調、プリオン病、及びラフォラ病が挙げられる。
セラミドの一般構造を示すスキームである。 ２４時間にわたってラットＣＳＦと共にｓｉＲＮＡ二重鎖をインキュベートした後の、ラットＣＳＦにおけるｓｉＲＮＡコンジュゲートの安定性を示すグラフである。 ２４時間にわたるウサギ及びカニクイザル（ＮＨＰ）の硝子体液中のｓｉＲＮＡコンジュゲートの安定性を示すグラフである。リガンドコンジュゲート二重鎖の残りの量をプロットした。 ２４時間にわたるウサギ及びカニクイザル（ＮＨＰ）の硝子体液中のｓｉＲＮＡコンジュゲートの安定性を示すグラフである。リガンドコンジュゲート二重鎖の残りの量をプロットした。 ４時間にわたるラット脳ホモジネート中のｓｉＲＮＡコンジュゲートの安定性を示すグラフである。リガンドコンジュゲート二重鎖の残りの量をプロットした。 ４時間にわたるラット脳ホモジネート中のｓｉＲＮＡコンジュゲートの安定性を示すグラフである。ＰＳ結合の安定性をプロットした。 ２４時間にわたるウサギ及びカニクイザル（ＮＨＰ）の硝子体液中のエステラーゼ切断可能コンジュゲートを有するｓｉＲＮＡコンジュゲートの安定性を示すグラフである。加水分解されたリガンドコンジュゲート二重鎖のパーセンテージをプロットした。 ２４時間にわたるラット血漿、ＣＳＦ及び脳ホモジネート中のエステラーゼ切断可能コンジュゲートを有するｓｉＲＮＡコンジュゲートの安定性を示すグラフである。加水分解されたリガンドコンジュゲート二重鎖のパーセンテージをプロットした。 様々な濃度のＨＳＡにおけるｓｉＲＮＡコンジュゲートのヒト血清アルブミン結合を示すグラフである。結合ｓｉＲＮＡの割合を、ヒト血清アルブミン濃度に対してプロットした。 様々な濃度のＨＳＡにおける露出されたカルボン酸を有するｓｉＲＮＡコンジュゲートのヒト血清アルブミン結合を示すグラフである。結合ｓｉＲＮＡの割合を、ヒト血清アルブミン濃度に対してプロットした。 ＰＢＳ対照と比較した、単回の７．５μｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖の硝子体内投与後のマウスの眼における、ｑＰＣＲによる眼内ＴＴＲ発現の阻害を示すグラフである。 ＰＢＳ対照と比較した、単回の１μｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖の硝子体内投与後のラットの眼における、ｑＰＣＲによる眼内ＴＴＲ発現の阻害を示すグラフである。 ＰＢＳ対照と比較した、単回の７．５μｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖の硝子体内投与後のマウスの眼におけるｑＰＣＲによる眼内ＴＴＲ発現の阻害を示すグラフである。 ＰＢＳ対照と比較した、単回の１μｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖の硝子体内投与後のラットの眼におけるｑＰＣＲによる眼内ＴＴＲ発現の阻害を示すグラフである。 ＰＢＳ対照と比較した、単回の７．５μｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖の硝子体内投与後のマウスの眼におけるｑＰＣＲによる眼内ＴＴＲ発現の阻害を示すグラフである。 ＰＢＳ対照と比較した、単回の１μｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖の硝子体内投与後のラットの眼におけるｑＰＣＲによる眼内ＴＴＲ発現の阻害を示すグラフである。 ３つの異なる濃度における対照二重鎖ＡＤ－９００９５４と比較した、Ｑ３６７によって修飾されたｓｉＲＮＡ二重鎖による細胞のトランスフェクションの２４時間後の初代マウス肝細胞におけるＴＴＲ遺伝子発現の阻害を示すグラフである。ヌクレオチドのそれぞれを、Ｑ３６７によってセンス鎖にわたって修飾した。 ３つの異なる濃度における対照二重鎖ＡＤ－９００９５４と比較した、Ｑ３６７によって修飾されたｓｉＲＮＡ二重鎖による細胞のトランスフェクションの２４時間後の初代マウス肝細胞におけるＳＯＤ１遺伝子発現の阻害を示すグラフである。ヌクレオチドのそれぞれを、Ｑ３６７によってセンス鎖にわたって修飾した。 １４日後の人工ＣＳＦ投与対照群と比較した、単回の０．９ｍｇのｓｉＲＮＡ二重鎖／ラットのＩＴ投与後の、ラットの脊髄におけるｑＰＣＲによるＳＯＤ１発現の阻害を示すグラフである。 １４日後の人工ＣＳＦ投与対照群と比較した、単回の０．９ｍｇのｓｉＲＮＡ二重鎖／ラットのＩＴ投与後の、ラットの小脳におけるｑＰＣＲによるＳＯＤ１発現の阻害を示すグラフである。 １４日後の人工ＣＳＦ投与対照群と比較した、単回の０．９ｍｇのｓｉＲＮＡ二重鎖／ラットのＩＴ投与後の、ラットの前頭葉におけるｑＰＣＲによるＳＯＤ１発現の阻害を示すグラフである。 １４日後の人工ＣＳＦ投与対照群と比較した、単回の０．９ｍｇのｓｉＲＮＡ二重鎖／ラットのＩＴ投与後の、ラットの心臓におけるｑＰＣＲによるＳＯＤ１発現の阻害を示すグラフである。 １４日後の人工ＣＳＦ投与対照群と比較した、単回の０．９ｍｇのｓｉＲＮＡ二重鎖／ラットのＩＴ投与後の、ラットの脊髄におけるｑＰＣＲによるＳＯＤ１発現の阻害を示すグラフである。 １４日後の人工ＣＳＦ投与対照群と比較した、単回の０．９ｍｇのｓｉＲＮＡ二重鎖／ラットのＩＴ投与後の、ラットの脳幹におけるｑＰＣＲによるＳＯＤ１発現の阻害を示すグラフである。 １４日後の人工ＣＳＦ投与対照群と比較した、単回の０．９ｍｇのｓｉＲＮＡ二重鎖／ラットのＩＴ投与後の、ラットの小脳におけるｑＰＣＲによるＳＯＤ１発現の阻害を示すグラフである。 １４日後の人工ＣＳＦ投与対照群と比較した、単回の０．９ｍｇのｓｉＲＮＡ二重鎖／ラットのＩＴ投与後の、ラットの前頭葉におけるｑＰＣＲによるＳＯＤ１発現の阻害を示すグラフである。 １４日後の人工ＣＳＦ投与対照群と比較した、単回の０．９ｍｇのｓｉＲＮＡ二重鎖／ラットのＩＴ投与後の、ラットの心臓におけるｑＰＣＲによるＳＯＤ１発現の阻害を示すグラフである。 １４日後の人工ＣＳＦ投与対照群と比較した、単回の０．９ｍｇのｓｉＲＮＡ二重鎖／ラットのＩＴ投与後の、ラット脳（小脳及び前頭葉）及び脊髄（胸髄）におけるｑＰＣＲによるＳＯＤ１発現の阻害を示すグラフである。 １４日後の人工ＣＳＦ投与対照群と比較した、単回の５０μｇのｓｉＲＮＡ二重鎖／マウスのＩＣＶ投与後の、マウス脳（右半球）におけるｑＰＣＲによるＳＯＤ１発現の阻害を示すグラフである。 ７日後の人工ＣＳＦ投与対照群と比較した、単回の１１０μｇのｓｉＲＮＡ二重鎖／マウスのＩＣＶ投与後の、マウス脳（右半球）及び心臓におけるｑＰＣＲによるＳＯＤ１発現の阻害を示すグラフである。
本発明者らは、特に、親油性部分を含有する親油性モノマーを、化合物の少なくとも１つの鎖上の１つ以上の位置にコンジュゲートすることが、二本鎖ｉＲＮＡのｉｎ ｖｉｖｏ眼内送達（例えば、硝子体内送達）及び髄腔内又は脳室内送達に意外なほど良好な結果をもたらし、中枢神経系組織及び眼組織への効率的な進入をもたらし、中枢神経系及び視覚系の細胞に効率的に取り込まれることを見出した。
本発明の一態様は、標的遺伝子に相補的なアンチセンス鎖；前記アンチセンス鎖に相補的なセンス鎖；及び任意選択でリンカー又は担体を介して、少なくとも１つの鎖上の１つ以上の位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する、１つ以上の親油性モノマーを含む化合物を提供する。
「親油部」又は「親油性部分」という語は、脂質に対する親和性を有する任意の化合物又は化学部分を広く指す。親油性部分の親油性を特徴付けるための一方法は、オクタノール－水分配係数、ｌｏｇＫｏｗによるものであり、ここで、Ｋｏｗは、平衡状態における二相系の水性相中の化学物質の濃度に対するオクタノール相中のその濃度の比率である。オクタノール－水分配係数は、物質の実験室で測定される特性である。しかしながら、それはまた、第１原理法又は経験的方法を用いて計算される化学物質の構成成分に起因する係数を用いることによって予測され得る（例えば、参照により全内容が本明細書に組み入れられる、Ｔｅｔｋｏ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｃｈｅｍ．Ｉｎｆ．Ｃｏｍｐｕｔ．Ｓｃｉ．４１：１４０７－２１（２００１）を参照されたい）。それは、水より非水性又は油性環境を好む物質の傾向の熱力学的な尺度を提供する（即ち、その親水性／親油性バランス）。原理的に、化学物質は、そのｌｏｇＫｏｗが０を超える場合に親油性である。典型的に、親油性部分は、１超、１．５超、２超、３超、４超、５超、又は１０超のｌｏｇＫｏｗを有する。例えば、６－アミノヘキサノールのｌｏｇＫｏｗは、例えば、約０．７であると予測される。同じ方法を用いて、コレステリルＮ－（ヘキサン－６－オール）カルバメートのｌｏｇＫｏｗは、１０．７であると予測される。
分子の親油性は、それが保有する官能基に対して変化し得る。例えば、ヒドロキシル基又はアミン基を、親油性部分の末端に付加すると、親油性部分の分配係数（例えば、ｌｏｇＫｏｗ）値を増加又は減少させ得る。
或いは、１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーにコンジュゲートされた化合物（例えば二本鎖ｉＲＮＡ剤）の疎水性は、そのタンパク質結合特性によって測定され得る。例えば、化合物の血漿タンパク質結合アッセイにおける非結合分画は、二本鎖ｉＲＮＡ剤のサイレンシング活性に正に相関し得る、二本鎖ｉＲＮＡ剤の相対的疎水性に相関すると決定され得る。
一実施形態では、決定される血漿タンパク質結合アッセイは、ヒト血清アルブミンタンパク質を用いた電気泳動移動度シフトアッセイ（ＥＭＳＡ）である。結合アッセイにおいて非結合ｓｉＲＮＡの分画によって測定される、二本鎖ｉＲＮＡ剤の疎水性は、ｓｉＲＮＡの向上したｉｎ ｖｉｖｏ送達のために、０．１５超、０．２超、０．２５超、０．３超、０．３５超、０．４超、０．４５超、又は０．５超である。
したがって、親油性部分を含有する親油性モノマーを、化合物の内部位置にコンジュゲートすることは、ｓｉＲＮＡの向上したｉｎ ｖｉｖｏ送達のために最適な疎水性を提供する。
特定の実施形態では、親油性部分は、脂肪族、環状、例えば脂環式、又は多環式、例えば多脂環式化合物、例えばステロイド（例えば、ステロール）又は直鎖若しくは分岐鎖脂肪族炭化水素である。親油性部分は、一般に、環状又は非環状であり得る炭化水素鎖を含み得る。炭化水素鎖は、様々な置換基及び／又は１個以上のヘテロ原子、例えば酸素又は窒素原子を含み得る。このような親油性脂肪族部分としては、限定されるものではないが、飽和又は不飽和Ｃ４～Ｃ３０炭化水素（例えば、Ｃ６～Ｃ１８炭化水素）、飽和又は不飽和脂肪酸、ワックス（例えば、脂肪酸及び脂肪ジアミドの一価アルコールエステル）、テルペン（例えば、Ｃ１０テルペン、Ｃ１５セスキテルペン、Ｃ２０ジテルペン、Ｃ３０トリテルペン、及びＣ４０テトラテルペン）、及び他の多脂環式炭化水素が挙げられる。例えば、親油性部分は、Ｃ４～Ｃ３０炭化水素鎖（例えば、Ｃ４～Ｃ３０アルキル又はアルケニル）を含有し得る。一部の実施形態では、親油性部分は、飽和又は不飽和Ｃ６～Ｃ１８炭化水素鎖（例えば、直鎖Ｃ６～Ｃ１８アルキル又はアルケニル）を含有する。一実施形態では、親油性部分は、飽和又は不飽和Ｃ１６炭化水素鎖（例えば、直鎖Ｃ１６アルキル又はアルケニル）を含有する。
親油性部分を含有する親油性モノマーは、ヒドロキシ基（例えば、－ＣＯ－ＣＨ２－ＯＨ）などの、親油性モノマー中に既に存在するか又はｉＲＮＡ剤中に導入される官能基を介するなど、当分野で公知の任意の方法によって、ｉＲＮＡ剤に結合され得る。親油性モノマー中に既に存在するか又はｉＲＮＡ剤中に導入される官能基としては、限定されるものではないが、ヒドロキシル、アミン、カルボン酸、スルホネート、ホスフェート、チオール、アジド、及びアルキンが挙げられる。
ｉＲＮＡ剤及び親油性モノマーのコンジュゲーションは、例えば、ヒドロキシ及びアルキル基Ｒ－、アルカノイル基ＲＣＯ－又は置換カルバモイル基ＲＮＨＣＯ－の間の、エーテル又はカルボキシル又はカルバモイルエステル結合の形成によって起こり得る。アルキル基Ｒは、環状（例えば、シクロヘキシル）又は非環状（例えば、直鎖若しくは分岐鎖；及び飽和若しくは不飽和）であり得る。アルキル基Ｒは、ブチル、ペンチル、ヘキシル、ヘプチル、オクチル、ノニル、デシル、ウンデシル、ドデシル、トリデシル、テトラデシル、ペンタデシル、ヘキサデシル、ヘプタデシル又はオクタデシル基などであり得る。
一部の実施形態では、親油性部分を含有する親油性モノマーは、エーテル、チオエーテル、尿素、カーボネート、アミン、アミド、マレイミド－チオエーテル、ジスルフィド、ホスホジエステル、スルホンアミド結合、クリック反応の生成物（例えば、アジド－アルキン環状付加からのトリアゾール）、又はカルバメートを含むリンカーを介して、化合物にコンジュゲートされる。
別の実施形態では、親油性部分は、ステロールなどのステロイドである。ステロイドは、ペルヒドロ－１，２－シクロペンタノフェナントレン環系を含有する多環式化合物である。ステロイドとしては、限定されるものではないが、胆汁酸（例えば、コール酸、デオキシコール酸及びデヒドロコール酸）、コルチゾン、ジゴキシゲニン、テストステロン、コレステロール、及びカチオン性ステロイド、例えばコルチゾンが挙げられる。「コレステロール誘導体」は、例えば、置換基の置換、付加、又は除去によって、コレステロールから誘導される化合物を指す。
別の実施形態では、親油性部分は、芳香族部分である。これに関連して、「芳香族」という語は、単環及び多環芳香族炭化水素を広く指す。芳香族基としては、限定されるものではないが、任意選択で置換され得る１～３つの芳香環を含むＣ６～Ｃ１４アリール部分；そのいずれかが、独立に、任意選択で置換されていても又は置換されていなくてもよい、アルキル基に共有結合されたアリール基を含む「アラルキル」又は「アリールアルキル」基；及び「ヘテロアリール」基が挙げられる。本明細書で使用される「ヘテロアリール」という語は、５～１４個の環原子、好ましくは、５、６、９、又は１０個の環原子を有し；環状の配置で共有された６、１０、又は１４個のπ電子を有し、且つ炭素原子に加えて、窒素（Ｎ）、酸素（Ｏ）、及び硫黄（Ｓ）からなる群から選択される１～約３個のヘテロ原子を有する基を指す。
本明細書で使用される「置換された」アルキル、シクロアルキル、アリール、ヘテロアリール、又は複素環式基は、１～約４個、好ましくは、１～約３個、より好ましくは、１又は２個の、非水素置換基を有するものである。適切な置換基としては、限定されるものではないが、ハロ、ヒドロキシ、ニトロ、ハロアルキル、アルキル、アルカリール、アリール、アラルキル、アルコキシ、アリールオキシ、アミノ、アシルアミノ、アルキルカルバモイル、アリールカルバモイル、アミノアルキル、アルコキシカルボニル、カルボキシ、ヒドロキシアルキル、アルカンスルホニル、アレンスルホニル、アルカンスルホンアミド、アレンスルホンアミド、アラルキルスルホンアミド、アルキルカルボニル、アシルオキシ、シアノ、及びウレイド基が挙げられる。
一部の実施形態では、親油性部分は、アラルキル基、例えば、２－アリールプロパノイル部分である。アラルキル基の構造的特徴は、親油性部分が、少なくとも１つのタンパク質にｉｎ ｖｉｖｏで結合するように選択される。特定の実施形態では、アラルキル基の構造的特徴は、親油性部分が、血清、血管、又は細胞タンパク質に結合するように選択される。特定の実施形態では、アラルキル基の構造的特徴は、アルブミン、免疫グロブリン、リポタンパク質、α－２－マクログロブリン、又はα－１－糖タンパク質への結合を促進する。
特定の実施形態では、リガンドは、ナプロキセン又はナプロキセンの構造的誘導体である。ナプロキセンの合成のための手順が、参照によりその全内容が本明細書に組み入れられる、米国特許第３，９０４，６８２号明細書及び米国特許第４，００９，１９７号明細書に見出される。ナプロキセンは、化学名（Ｓ）－６－メトキシ－α－メチル－２－ナフタレン酢酸を有し、構造は、
Figure 2023500681000016
 である。
特定の実施形態では、リガンドは、イブプロフェン又はイブプロフェン構造的誘導体である。イブプロフェンの合成のための手順が、参照によりその全内容が本明細書に組み入れられる、米国特許第３，２２８，８３１号明細書に見出される。イブプロフェンの構造は、
Figure 2023500681000017
 である。
さらなる例示的なアラルキル基が、参照により全内容が本明細書に組み入れられる、米国特許第７，６２６，０１４号明細書に示されている。
別の実施形態では、適切な親油性部分としては、脂質、コレステロール、レチノイン酸、コール酸、アダマンタン酢酸、１－ピレン酪酸、ジヒドロテストステロン、１，３－ビス－Ｏ（ヘキサデシル）グリセロール、ゲラニルオキシヘキサノール、ヘキサデシルグリセロール、ボルネオール、メントール、１，３－プロパンジオール、ヘプタデシル基、パルミチン酸、ミリスチン酸、Ｏ３－（オレオイル）リトコール酸、Ｏ３－（オレオイル）コレン酸、イブプロフェン、ナプロキセン、ジメトキシトリチル、又はフェノキサジンが挙げられる。
一部の実施形態では、親油性部分は、Ｃ６～Ｃ３０酸（例えば、ヘキサン酸、ヘプタン酸、オクタン酸、ノナン酸、デカン酸、ウンデカン酸、ドデカン酸、トリデカン酸、テトラデカン酸、ペンタデカン酸、ヘキサデカン酸、ヘプタデカン酸、オクタデカン酸、オレイン酸、リノール酸、アラキドン酸、シス－４，７，１０，１３，１６，１９－ドコサヘキサエン酸、ビタミンＡ、ビタミンＥ、コレステロールなど）又はＣ６～Ｃ３０アルコール（例えば、ヘキサノール、ヘプタノール、オクタノール、ノナノール、デカノール、ウンデカノール、ドデカノール、トリデカノール、テトラデカノール、ペンタデカノール、ヘキサデカノール、ヘプタデカノール、オクタデカノール、オレイルアルコール、リノレイルアルコール、アラキドン酸アルコール、シス－４，７，１０，１３，１６，１９－ドコサヘキサノール、レチノール、ビタミンＥ、コレステロールなど）である。
特定の実施形態では、特に、親油性部分が、低い親油性又は疎水性を有する場合、２つ以上の親油性部分を含有する親油性モノマーが、二本鎖ｉＲＮＡ剤に組み込まれ得る。一実施形態では、２つ以上の親油性部分を含有する親油性モノマーが、二本鎖ｉＲＮＡ剤の同じ鎖に組み込まれる。一実施形態では、二本鎖ｉＲＮＡ剤の各鎖には、１つ以上の親油性部分を含有する親油性モノマー部分が組み込まれる。一実施形態では、２つ以上の親油性部分を含有する親油性モノマーが、二本鎖ｉＲＮＡ剤の同じ位置（即ち、同じ核酸塩基、同じ糖部分、又は同じヌクレオシド間結合）に組み込まれる。これは、例えば、２つ以上の親油性部分を連結し得る担体、及び／又は分岐リンカー、及び／又は１つ以上のリンカーを含有する親油性モノマーを用いることによって達成され得る。
親油性部分が、ｉＲＮＡ剤の核酸塩基、リボ糖、又はヌクレオシド間結合への直接結合を介して、ｉＲＮＡ剤にコンジュゲートされる場合、親油性モノマーは、核酸塩基、リボ糖、又はヌクレオシド間結合、及び親油性部分を含む。或いは、親油性モノマーは、リンカー又は担体などの非リボース置換単位にコンジュゲートされた親油性部分を含み得る。親油性部分が、リンカー又は担体などの非リボース置換単位を介して、二本鎖ｉＲＮＡ剤にコンジュゲートされる場合、親油性モノマーは、リンカー又は担体などの非リボース置換単位、及び親油性部分を含む。
特定の実施形態では、親油性モノマーは、１つ以上のリンカー（テザー）を介して、ｉＲＮＡ剤にコンジュゲートされた親油性部分を含む。
一実施形態では、親油性モノマーは、エーテル、チオエーテル、尿素、カーボネート、アミン、アミド、マレイミド－チオエーテル、ジスルフィド、ホスホジエステル、スルホンアミド結合、クリック反応の生成物（例えば、アジド－アルキン環状付加からのトリアゾール）、又はカルバメートを含有するリンカーを介して、化合物にコンジュゲートされた親油性部分を含む。
リンカー／テザー
リンカー／テザーは、「テザー付着点（ｔｅｔｈｅｒｉｎｇ ａｔｔａｃｈｍｅｎｔ ｐｏｉｎｔ）（ＴＡＰ）」において親油性部分に連結される。リンカー／テザーは、任意のＣ１～Ｃ１００炭素含有部分、（例えばＣ１～Ｃ７５、Ｃ１～Ｃ５０、Ｃ１～Ｃ２０、Ｃ１～Ｃ１０；Ｃ１、Ｃ２、Ｃ３、Ｃ４、Ｃ５、Ｃ６、Ｃ７、Ｃ８、Ｃ９、又はＣ１０）を含んでもよく、少なくとも１つの窒素原子を有し得る。特定の実施形態では、窒素原子は、親油性部分のための連結点として働き得るリンカー／テザーにおいて末端アミノ又はアミド（ＮＨＣ（Ｏ）－）基の一部を成す。リンカー／テザー（下線）の非限定的な例としては、
Figure 2023500681000018
 が挙げられ；ここで、ｎは、１～２０（例えば、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、又は２０）であり、Ｒ’’’’は、Ｃ１～Ｃ６アルキルである。好ましくは、ｎは、５、６、又は１１である。他の実施形態では、窒素は、末端オキシアミノ基、例えば、－ＯＮＨ２、又はヒドラジノ基、－ＮＨＮＨ２の一部を成し得る。リンカー／テザーは、例えば、ヒドロキシ、アルコキシ、ペルハロアルキルで、任意選択で置換されてもよく、及び／又は１つ以上のさらなるヘテロ原子、例えば、Ｎ、Ｏ、若しくはＳが任意選択で挿入され得る。好ましい連結配位子は、例えば、
Figure 2023500681000019
 を含み得る。一部の実施形態では、アミノ末端リンカー／テザー（例えば、ＮＨ２、ＯＮＨ２、ＮＨ２ＮＨ２）は、リガンドと共にイミノ結合（即ち、Ｃ＝Ｎ）を形成し得る。一部の実施形態では、アミノ末端リンカー／テザー（例えば、ＮＨ２、ＯＮＨ２、ＮＨ２ＮＨ２）は、例えば、Ｃ（Ｏ）ＣＦ３によりアシル化され得る。
一部の実施形態では、リンカー／テザーは、メルカプト基（即ち、ＳＨ）又はオレフィン（例えば、ＣＨ＝ＣＨ２）で終端し得る。例えば、テザーは、
Figure 2023500681000020
 であり得、ここで、ｎは、他の箇所に記載される通りであり得る。テザーは、例えば、ヒドロキシ、アルコキシ、ペルハロアルキルで、任意選択で置換されてもよく、及び／又は１つ以上のさらなるヘテロ原子、例えば、Ｎ、Ｏ、若しくはＳが任意選択で挿入され得る。二重結合は、シス又はトランス又はＥ又はＺであり得る。
他の実施形態では、リンカー／テザーは、好ましくは、リンカー／テザーの末端位置に求電子部分を含み得る。例示的な求電子部分としては、例えば、アルデヒド、ハロゲン化アルキル、メシレート、トシレート、ノシレート、若しくはブロシレート、又は活性カルボン酸エステル、例えばＮＨＳエステル、又はペンタフルオロフェニルエステルが挙げられる。好ましいリンカー／テザー（下線）としては、
Figure 2023500681000021
 が挙げられ、ここで、ｎは、１～６であり、Ｒ’’’’は、Ｃ１～Ｃ６アルキル；又は
Figure 2023500681000022
 であり、ここで、ｎは、１～６であり、Ｒ’’’’は、Ｃ１～Ｃ６アルキル；
Figure 2023500681000023
 であり、ここで、ｎは、１～１１であり、Ｒ’’’’は、Ｃ１～Ｃ６アルキル；又は
Figure 2023500681000024
 であり、ここで、ｎは、他の箇所に記載される通りであり得、Ｒ’’’’は、Ｃ１～Ｃ６アルキルである（ＬＧは、脱離基、例えば、ハロゲン化物、メシレート、トシレート、ノシレート、ブロシレートであり得る）。連結（ｔｅｔｈｅｒｉｎｇ）は、リガンドの求核基、例えば、チオール又はアミノ基を、求電子基とテザー上でカップリングすることによって行われ得る。
他の実施形態では、モノマーが、リンカー／テザーの末端位置にフタルイミド基（Ｋ）を含むことが望ましいことがある。
Figure 2023500681000025
他の実施形態では、他の保護アミノ基は、リンカー／テザーの末端位置、例えば、アロック、モノメトキシトリチル（ＭＭＴ）、トリフルオロアセチル、Ｆｍｏｃ、又はアリールスルホニルにあり得る（例えば、アリール部分は、オルト－ニトロフェニル又はオルト、パラ－ジニトロフェニルであり得る）。
本明細書に記載されるリンカー／テザーのいずれかは、１つ以上のさらなる連結基、例えば、－Ｏ－（ＣＨ２）ｎ－、－（ＣＨ２）ｎ－ＳＳ－、－（ＣＨ２）ｎ－、又は－（ＣＨ＝ＣＨ）－をさらに含み得る。
切断可能リンカー／テザー
一部の実施形態では、リンカー／テザーの少なくとも１つは、酸化還元性切断可能リンカー、酸性切断可能リンカー、エステラーゼ切断可能リンカー、ホスファターゼ切断可能リンカー、又はペプチダーゼ切断可能リンカーであり得る。
一実施形態では、リンカー／テザーの少なくとも１つは、還元的に切断可能なリンカー（例えば、ジスルフィド基）であり得る。
一実施形態では、リンカー／テザーの少なくとも１つは、酸性切断可能リンカー（例えば、ヒドラゾン基、エステル基、アセタール基、又はケタール基）であり得る。
一実施形態では、リンカー／テザーの少なくとも１つは、エステラーゼ切断可能リンカー（例えば、エステル基）であり得る。
一実施形態では、リンカー／テザーの少なくとも１つは、ホスファターゼ切断可能リンカー（例えば、リン酸基）であり得る。
一実施形態では、リンカー／テザーの少なくとも１つは、ペプチダーゼ切断可能リンカー（例えば、ペプチド結合）であり得る。
切断可能連結基は、切断剤、例えば、ｐＨ、酸化還元電位又は分解性分子の存在の影響を受けやすい。一般に、切断剤は、血清又は血液中よりも細胞内において、より行き渡る、又はより高いレベル若しくは活性で存在する。このような分解剤の例としては、還元によって酸化還元性切断可能連結基を分解することができる、例えば、細胞内に存在する、酸化酵素若しくは還元酵素又は還元剤、例えば、メルカプタンを含む、特定の基質に対して選択されるか、若しくは基質特異性を有さない酸化還元剤；エステラーゼ；酸性環境を生じさせる、例えば、５以下のｐＨにすることができるエンドソーム又は作用剤；一般酸、ペプチダーゼ（基質特異的であってもよい）、及びホスファターゼとしての機能を果たすことによって酸性切断可能連結基を加水分解又は分解することができる酵素が挙げられる。
切断可能連結基、例えば、ジスルフィド結合は、ｐＨの影響を受けやすい。ヒト血清のｐＨは、７．４であるが、平均細胞内ｐＨは、わずかに低く、約７．１～７．３の範囲である。エンドソームは、５．５～６．０の範囲のより酸性のｐＨを有し、リソソームは、約５．０のさらに酸性のｐＨを有する。いくつかのテザーは、好ましいｐＨで切断され、それによって、リガンド（例えば、標的化又は細胞透過性リガンド、例えばコレステロール）から細胞内へ、又は細胞の所望の区画内にｉＲＮＡ剤を放出する連結基を有する。
リガンドをｉＲＮＡ剤に連結する化学結合（例えば、連結基）は、ジスルフィド結合を含み得る。ｉＲＮＡ剤／リガンド複合体が、エンドサイトーシスによって細胞に取り込まれる場合、エンドソームの酸性環境は、ジスルフィド結合を切断させ、それによって、リガンドからｉＲＮＡ剤を放出する（Ｑｕｉｎｔａｎａ ｅｔ ａｌ．，Ｐｈａｒｍ Ｒｅｓ．１９：１３１０－１３１６，２００２；Ｐａｔｒｉ ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｃｕｒｒ．Ｂｉｏｌ．６：４６６－４７１，２００２）。リガンドは、標的化リガンド又はｉＲＮＡ剤の治療効果を補完し得る二次治療剤であり得る。
テザーは、特定の酵素によって切断可能である連結基を含み得る。テザーに組み込まれる連結基の種類は、ｉＲＮＡ剤によって標的とされる細胞によって異なり得る。例えば、肝細胞内のｍＲＮＡを標的とするｉＲＮＡ剤は、エステル基を含むテザーにコンジュゲートされ得る。肝細胞は、エステラーゼが豊富であり、したがって、テザーは、エステラーゼが豊富でない細胞型よりも肝細胞でより効率的に切断される。テザーの切断は、テザーの遠心端に結合されたリガンドからｉＲＮＡ剤を放出し、それによって、ｉＲＮＡ剤のサイレンシング活性を潜在的に高める。エステラーゼが豊富な他の細胞型としては、肺、腎皮質、及び睾丸の細胞が挙げられる。
ペプチド結合を含むテザーは、ペプチダーゼが豊富な細胞型、例えば、肝細胞及び滑膜細胞を標的とするｉＲＮＡ剤にコンジュゲートされ得る。例えば、炎症性疾患（例えば、関節リウマチ）の治療のために、例えば、滑膜細胞に標的化されたｉＲＮＡ剤は、ペプチド結合を含むテザーにコンジュゲートされ得る。
一般に、候補の切断可能連結基の適合性は、候補連結基を切断する分解剤の能力（又は条件）を試験することによって評価することができる。血中での、又は他の非標的組織、例えば、対象に投与されるときにｉＲＮＡ剤が曝される組織と接触しているときの切断に抵抗する能力について候補の切断可能連結基を試験することも望ましい。したがって、第１の条件と第２の条件との間の相対的な切断のしやすさを決定することができ、この第１の条件は、標的細胞内の切断を示すために選択され、この第２の条件は、他の組織又は体液、例えば、血液若しくは血清中での切断を示すために選択される。無細胞系、細胞、細胞培養物、器官若しくは組織培養物、又は動物全体で評価を行うことができる。無細胞又は培養条件で最初の評価を行い、動物全体でのさらなる評価によって確認することが有用であり得る。好ましい実施形態では、有用な候補化合物は、血液若しくは血清（又は細胞外の条件を模倣するように選択されるｉｎ ｖｉｔｒｏでの条件下）と比較して細胞内（又は細胞内の条件を模倣するように選択されるｉｎ ｖｉｔｒｏでの条件下）で少なくとも２倍、４倍、１０倍又は１００倍速く切断される。
酸化還元性切断可能連結基
切断可能連結基の１つのクラスは、還元又は酸化時に切断される酸化還元性切断可能連結基である。還元的に切断可能な連結基の一例は、ジスルフィド連結基（－Ｓ－Ｓ－）である。候補の切断可能連結基が、適切な「還元的に切断可能な連結基」であるか否か、又は例えば特定のｉＲＮＡ部分及び特定の標的作用剤と共に使用するのに適しているか否かを決定するために、本明細書に記載される方法を確認することができる。例えば、候補は、細胞、例えば、標的細胞で観察され得る切断速度を模倣する、当分野で公知の試薬を使用して、ジチオスレイトール（ＤＴＴ）、又は他の還元剤と共にインキュベートすることによって評価することができる。候補はまた、血液又は血清条件を模倣するために選択される条件下でも評価することができる。好ましい実施形態では、候補化合物は、血中では最大で１０％切断される。好ましい実施形態では、有用な候補化合物は、血液（又は細胞外の条件を模倣するように選択されるｉｎ ｖｉｔｒｏでの条件下）と比較して、細胞内（又は細胞内の条件を模倣するように選択されるｉｎ ｖｉｔｒｏでの条件下）では少なくとも２倍、４倍、１０倍又は１００倍速く分解される。候補化合物の切断速度は、細胞内培地を模倣するように選択される条件下で標準的な酵素反応速度アッセイを使用して決定して、細胞外培地を模倣するように選択される条件と比較することができる。
リン酸塩系切断可能連結基
リン酸塩系連結基は、リン酸基を分解又は加水分解する作用剤によって切断される。細胞内のリン酸基を切断する作用剤の一例は、細胞内の酵素、例えば、ホスファターゼである。リン酸塩系の連結基の例は、－Ｏ－Ｐ（Ｏ）（ＯＲｋ）－Ｏ－、－Ｏ－Ｐ（Ｓ）（ＯＲｋ）－Ｏ－、－Ｏ－Ｐ（Ｓ）（ＳＲｋ）－Ｏ－、－Ｓ－Ｐ（Ｏ）（ＯＲｋ）－Ｏ－、－Ｏ－Ｐ（Ｏ）（ＯＲｋ）－Ｓ－、－Ｓ－Ｐ（Ｏ）（ＯＲｋ）－Ｓ－、－Ｏ－Ｐ（Ｓ）（ＯＲｋ）－Ｓ－、－Ｓ－Ｐ（Ｓ）（ＯＲｋ）－Ｏ－、－Ｏ－Ｐ（Ｏ）（Ｒｋ）－Ｏ－、－Ｏ－Ｐ（Ｓ）（Ｒｋ）－Ｏ－、－Ｓ－Ｐ（Ｏ）（Ｒｋ）－Ｏ－、－Ｓ－Ｐ（Ｓ）（Ｒｋ）－Ｏ－、－Ｓ－Ｐ（Ｏ）（Ｒｋ）－Ｓ－、－Ｏ－Ｐ（Ｓ）（Ｒｋ）－Ｓ－である。好ましい実施形態は、－Ｏ－Ｐ（Ｏ）（ＯＨ）－Ｏ－、－Ｏ－Ｐ（Ｓ）（ＯＨ）－Ｏ－、－Ｏ－Ｐ（Ｓ）（ＳＨ）－Ｏ－、－Ｓ－Ｐ（Ｏ）（ＯＨ）－Ｏ－、－Ｏ－Ｐ（Ｏ）（ＯＨ）－Ｓ－、－Ｓ－Ｐ（Ｏ）（ＯＨ）－Ｓ－、－Ｏ－Ｐ（Ｓ）（ＯＨ）－Ｓ－、－Ｓ－Ｐ（Ｓ）（ＯＨ）－Ｏ－、－Ｏ－Ｐ（Ｏ）（Ｈ）－Ｏ－、－Ｏ－Ｐ（Ｓ）（Ｈ）－Ｏ－、－Ｓ－Ｐ（Ｏ）（Ｈ）－Ｏ－、－Ｓ－Ｐ（Ｓ）（Ｈ）－Ｏ－、－Ｓ－Ｐ（Ｏ）（Ｈ）－Ｓ－、－Ｏ－Ｐ（Ｓ）（Ｈ）－Ｓ－である。好ましい実施形態は、－Ｏ－Ｐ（Ｏ）（ＯＨ）－Ｏ－である。これらの候補は、上記の方法と類似した方法を使用して評価することができる。
酸性切断可能連結基
酸性切断可能連結基は、酸性条件下で切断される連結基である。好ましい実施形態では、酸性切断可能連結基は、約６．５以下（例えば、約６．０、５．５、５．０、又はそれ以下）のｐＨの酸性環境において、又は一般酸として機能し得る作用剤、例えば、酵素剤によって切断される。細胞において、特定のｐＨの低い細胞小器官、例えば、エンドソーム及びリソソームは、酸性切断可能連結基に切断環境を提供することができる。酸性切断可能連結基の例としては、限定されるものではないが、ヒドラゾン、ケタール、アセタール、エステル、及びアミノ酸のエステルが挙げられる。酸性切断可能な基は、一般式－Ｃ＝ＮＮ－、Ｃ（Ｏ）Ｏ、又は－ＯＣ（Ｏ）を有し得る。好ましい実施形態は、エステル（アルコキシ基）の酸素に結合した炭素が、アリール基、置換アルキル基、又は第３級アルキル基、例えば、ジメチルペンチル若しくはｔ－ブチルである場合である。これらの候補は、上記の方法と類似した方法を使用して評価することができる。
エステル系連結基
エステル系連結基は、細胞内の酵素、例えば、エステラーゼ及びアミダーゼによって切断される。エステル系切断可能連結基の例としては、限定されるものではないが、アルキレン基、アルケニレン基及びアルキニレン基のエステルが挙げられる。エステル切断可能連結基は、一般式－Ｃ（Ｏ）Ｏ－、又は－ＯＣ（Ｏ）－を有する。これらの候補は、上記の方法と類似した方法を用いて評価することができる。
ペプチド系切断連結基
ペプチド系連結基は、細胞内の酵素、例えば、ペプチダーゼ及びプロテアーゼによって切断される。ペプチド系切断可能連結基は、オリゴペプチド（例えば、ジペプチド、トリペプチドなど）及びポリペプチドが生じる、アミノ酸間に形成されるペプチド結合である。ペプチド系切断可能基は、アミド基（－Ｃ（Ｏ）ＮＨ－）を含まない。アミド基は、任意のアルキレン、アルケニレン又はアルキニレン間で形成され得る。ペプチド結合は、ペプチド及びタンパク質が生じる、アミノ酸間に形成されるアミド結合の特別な種類である。ペプチド系切断基は、一般に、ペプチド及びタンパク質が生じる、アミノ酸間に形成されるペプチド結合（即ち、アミド結合）に限定され、アミド官能基全体を含むものではない。ペプチド切断可能連結基は、一般式－ＮＨＣＨＲ１Ｃ（Ｏ）ＮＨＣＨＲ２Ｃ（Ｏ）－を有し、ここで、Ｒ１及びＲ２は、２つの隣接するアミノ酸のＲ基である。これらの候補は、上記の方法と類似した方法を用いて評価することができる。
バイオ切断可能リンカー／テザー
リンカーは、分子の２つの部分、例えば、ビス（ｓｉＲＮＡ）を生成する２つの個別のｓｉＲＮＡ分子の一方又は両方の鎖を連結する、ヌクレオチド及び非ヌクレオチドリンカー又はそれらの組み合わせであるバイオ切断可能リンカーも含み得る。一部の実施形態では、２つの個別のｓｉＲＮＡ間の単なる静電又はスタッキング相互作用が、リンカーを表し得る。非ヌクレオチドリンカーは、単糖類、二糖類、オリゴ糖、及びそれらの誘導体、脂肪族、脂環式、複素環式、及びそれらの組み合わせから誘導されるテザー又はリンカーを含む。
一部の実施形態では、リンカー（テザー）の少なくとも１つは、ＤＮＡ、ＲＮＡ、ジスルフィド、アミド、ガラクトサミン、グルコサミン、グルコース、ガラクトース、及びマンノースの官能化単糖又はオリゴ糖、及びそれらの組み合わせからなる群から選択されるバイオ切断可能リンカーである。
一実施形態では、バイオ切断可能糖質リンカーは、２つのｓｉＲＮＡ単位を連結することが可能な少なくとも１つの芳香族連結を有する１～１０の糖単位を有し得る。２つ以上の糖が存在する場合、これらの単位は、１～３、１～４、又は１～６の糖連結を介して、又はアルキル鎖を介して連結され得る。
例示的なバイオ切断可能リンカーとしては、
Figure 2023500681000026
Figure 2023500681000027
Figure 2023500681000028
Figure 2023500681000029
 が挙げられる。
バイオ切断可能リンカーについてのさらなる説明は、参照により全内容が本明細書に組み入れられる、２０１８年１月１８日出願の、“Ｅｎｄｏｓｏｍａｌ Ｃｌｅａｖａｂｌｅ Ｌｉｎｋｅｒｓ”という名称のＰＣＴ出願番号ＰＣＴ／ＵＳ１８／１４２１３号明細書に見出され得る。
担体
特定の実施形態では、親油性モノマーは、非リボース置換単位、すなわち１つ以上のヌクレオチドを置換する担体を介してｉＲＮＡ剤にコンジュゲートされた親油性部分を含む。
担体は、環状基又は非環状基であり得る。一実施形態では、環状基は、ピロリジニル、ピラゾリニル、ピラゾリジニル、イミダゾリニル、イミダゾリジニル、ピペリジニル、ピペラジニル、［１，３］ジオキソラン、オキサゾリジニル、イソキサゾリジニル、モルホリニル、チアゾリジニル、イソチアゾリジニル、キノキサリニル、ピリダジノニル、テトラヒドロフリル、及びデカリンからなる群から選択される。一実施形態では、非環状基は、セリノール骨格又はジエタノールアミン骨格に基づく部分である。
担体は、二本鎖ｉＲＮＡ剤の１つ以上のヌクレオチドを置換し得る。
一部の実施形態では、担体は、二本鎖ｉＲＮＡ剤の内部位置において１つ以上のヌクレオチドを置換する。
他の実施形態では、担体は、センス鎖又はアンチセンス鎖の末端においてヌクレオチドを置換する。一実施形態では、担体は、センス鎖の３’末端において末端ヌクレオチドを置換し、それによって、センス鎖の３’末端を保護するエンドキャップとして機能する。一実施形態では、担体は、アミンを有する環状基であり、例えば、担体は、ピロリジニル、ピラゾリニル、ピラゾリジニル、イミダゾリニル、イミダゾリジニル、ピペリジニル、ピペラジニル、［１，３］ジオキソラニル、オキサゾリジニル、イソキサゾリジニル、モルホリニル、チアゾリジニル、イソチアゾリジニル、キノキサリニル、ピリダジノニル、テトラヒドロフラニル、又はデカリニルであり得る。
サブユニットのリボース糖がこのように置換されたリボヌクレオチドサブユニットは、リボース置換修飾サブユニット（ＲＲＭＳ）と呼ばれる。担体は、環状又は非環状部分であってもよく、２つの「骨格付着点」（例えば、ヒドロキシル基）及びリガンド（例えば、親油性部分）を含む。親油性部分は、担体に直接結合されるか、又は上述されるように、介在リンカー／テザーによって間接的に担体に結合され得る。
Figure 2023500681000030
リガンド－コンジュゲートモノマーサブユニットは、ｉＲＮＡ分子の５’又は３’末端サブユニットであってもよく、即ち、２つの「Ｗ」基の一方が、ヒドロキシル基であり得、他方の「Ｗ」基が、２つ以上の非修飾又は修飾リボヌクレオチドの鎖であり得る。或いは、リガンド－コンジュゲートモノマーサブユニットは、内部位置を占めてもよく、両方の「Ｗ」基は、１つ以上の非修飾又は修飾リボヌクレオチドであり得る。２つ以上のリガンド－コンジュゲートモノマーサブユニットが、ｉＲＮＡ剤中に存在し得る。
糖置換に基づくモノマー、例えば、リガンド－コンジュゲートモノマー（環状）
環状糖置換に基づくモノマー、例えば、置換に基づくリガンド－コンジュゲートモノマーは、本明細書では、ＲＲＭＳモノマー化合物とも呼ばれる。担体は、以下に示される一般式（ＬＣＭ－２）を有し得る（その構造において、好ましい骨格付着点が、Ｒ１又はＲ２；Ｒ３又はＲ４；又はＹがＣＲ９Ｒ１０である場合Ｒ９及びＲ１０から選択され得る（２つの位置が、２つの骨格付着点、例えば、Ｒ１及びＲ４、又はＲ４及びＲ９を生じるように選択される））。好ましいテザー付着点は、Ｒ７；ＸがＣＨ２である場合Ｒ５又はＲ６を含む。担体は、鎖に組み込まれ得る物質として後述される。したがって、構造は、付着点の１つ（末端位置の場合）又は２つ（内部位置の場合）、例えば、Ｒ１又はＲ２；Ｒ３又はＲ４；又はＲ９又はＲ１０（ＹがＣＲ９Ｒ１０である場合）が、リン酸塩、又は修飾リン酸塩、例えば、硫黄含有骨格に連結される場合も包含することが理解される。例えば、上に挙げたＲ基の１つは、－ＣＨ２－であり得、ここで、１つの結合が、担体に連結され、１つが、骨格原子、例えば、連結酸素又は中央リン原子に連結される。
Figure 2023500681000031
 式中：
Ｘは、Ｎ（ＣＯ）Ｒ７、ＮＲ７又はＣＨ２であり；
Ｙは、ＮＲ８、Ｏ、Ｓ、ＣＲ９Ｒ１０であり；
Ｚは、ＣＲ１１Ｒ１２であるか又は存在せず；
Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３、Ｒ４、Ｒ９、及びＲ１０のそれぞれは、独立に、Ｈ、ＯＲａ、又は（ＣＨ２）ｎＯＲｂであり、ただし、Ｒ１、Ｒ２、Ｒ３、Ｒ４、Ｒ９、及びＲ１０のうちの少なくとも２つが、ＯＲａ及び／又は（ＣＨ２）ｎＯＲｂであり；
Ｒ５、Ｒ６、Ｒ１１、及びＲ１２のそれぞれは、独立に、リガンド、Ｈ、１～３つのＲ１３で、任意選択で置換されるＣ１～Ｃ６アルキル、又はＣ（Ｏ）ＮＨＲ７であり；又はＲ５及びＲ１１は、一緒に、Ｒ１４で、任意選択で置換されるＣ３～Ｃ８シクロアルキルであり；
Ｒ７は、リガンドであり得、例えば、Ｒ７は、Ｒｄであり得、又はＲ７は、例えば、テザー部分を介して、担体に間接的に連結されるリガンド、例えば、ＮＲｃＲｄで置換されるＣ１～Ｃ２０アルキル；又はＮＨＣ（Ｏ）Ｒｄで置換されるＣ１～Ｃ２０アルキルであり得；
Ｒ８は、Ｈ又はＣ１～Ｃ６アルキルであり；
Ｒ１３は、ヒドロキシ、Ｃ１～Ｃ４アルコキシ、又はハロであり；
Ｒ１４は、ＮＲｃＲ７であり；
Ｒ１５は、シアノで、任意選択で置換されるＣ１～Ｃ６アルキル、又はＣ２～Ｃ６アルケニルであり；
Ｒ１６は、Ｃ１～Ｃ１０アルキルであり；
Ｒ１７は、液相又は固相担体試薬であり；
Ｌは、－Ｃ（Ｏ）（ＣＨ２）ｑＣ（Ｏ）－、又は－Ｃ（Ｏ）（ＣＨ２）ｑＳ－であり；
Ｒａは、保護基、例えば、ＣＡｒ３；（例えば、ジメトキシトリチル基）又はＳｉ（Ｘ５’）（Ｘ５”）（Ｘ５”’）であり、ここで、（Ｘ５’），（Ｘ５”）、及び（Ｘ５”’）は、上述される通りである。
Ｒｂは、Ｐ（Ｏ）（Ｏ－）Ｈ、Ｐ（ＯＲ１５）Ｎ（Ｒ１６）２又はＬ－Ｒ１７であり；
Ｒｃは、Ｈ又はＣ１～Ｃ６アルキルであり；
Ｒｄは、Ｈ又はリガンドであり；
Ａｒのそれぞれは、独立に、Ｃ１～Ｃ４アルコキシで、任意選択で置換されるＣ６～Ｃ１０アリールであり；
ｎは、１～４であり；ｑは、０～４である。
例示的な担体としては、例えば、Ｘが、Ｎ（ＣＯ）Ｒ７又はＮＲ７であり、Ｙが、ＣＲ９Ｒ１０であり、Ｚが存在せず；又はＸが、Ｎ（ＣＯ）Ｒ７又はＮＲ７であり、Ｙが、ＣＲ９Ｒ１０であり、Ｚが、ＣＲ１１Ｒ１２であり；又はＸが、Ｎ（ＣＯ）Ｒ７又はＮＲ７であり、Ｙが、ＮＲ８であり、Ｚが、ＣＲ１１Ｒ１２であり；又はＸが、Ｎ（ＣＯ）Ｒ７又はＮＲ７であり、ＹがＯであり、Ｚが、ＣＲ１１Ｒ１２であり；又はＸが、ＣＨ２であり；Ｙが、ＣＲ９Ｒ１０であり；Ｚが、ＣＲ１１Ｒ１２であり、Ｒ５及びＲ１１が、一緒に、Ｃ６シクロアルキル（Ｈ、ｚ＝２）、又はインダン環系を形成し、例えば、Ｘが、ＣＨ２であり；Ｙが、ＣＲ９Ｒ１０であり；Ｚが、ＣＲ１１Ｒ１２であり、Ｒ５及びＲ１１が、一緒に、Ｃ５シクロアルキル（Ｈ、ｚ＝１）を形成するものが挙げられる。
特定の実施形態では、担体は、ピロリン環系又は４－ヒドロキシプロリン環系に基づいていてもよく、例えば、Ｘは、Ｎ（ＣＯ）Ｒ７又はＮＲ７であり、Ｙは、ＣＲ９Ｒ１０であり、Ｚは、存在しない（Ｄ）。
Figure 2023500681000032
 ＯＦＧ１は、好ましくは、５員環中の炭素（Ｄ中の－ＣＨ２ＯＦＧ１）の１つに連結された、一次炭素、例えば、環外アルキレン基、例えば、メチレン基に結合される。ＯＦＧ２は、好ましくは、５員環中の炭素（Ｄ中の－ＯＦＧ２）の１つに直接結合される。ピロリン系担体については、－ＣＨ２ＯＦＧ１は、Ｃ－２に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－３に結合されてもよく；又は－ＣＨ２ＯＦＧ１は、Ｃ－３に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－４に結合されてもよい。特定の実施形態では、ＣＨ２ＯＦＧ１及びＯＦＧ２は、上記の炭素の１つにジェミナルに置換され得る（ｇｅｍｉｎａｌｌｙ ｓｕｂｓｔｉｔｕｔｅｄ）。３－ヒドロキシプロリン系担体については、－ＣＨ２ＯＦＧ１は、Ｃ－２に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－４に結合されてもよい。したがって、ピロリン系及び４－ヒドロキシプロリン系モノマーは、結合回転がその特定の結合の周りに制限される（例えば環の存在に起因する制限）結合（例えば、炭素－炭素結合）を含み得る。したがって、ＣＨ２ＯＦＧ１及びＯＦＧ２は、上で説明される対のいずれにおいても互いに対してシス又はトランスであり得る。したがって、全てのシス／トランス異性体が明示的に含まれる。モノマーはまた、１つ以上の不斉中心を含んでもよく、したがって、ラセミ化合物及びラセミ混合物、単一の鏡像異性体、個々のジアステレオマー及びジアステレオマー混合物として存在してもよい。モノマーの全てのこのような異性体が明示的に含まれる（例えば、ＣＨ２ＯＦＧ１及びＯＦＧ２を有する中心が両方ともＲ配置を有するか；又は両方ともＳ配置を有するか；又は一方の中心が、Ｒ配置を有し得、他方の中心が、Ｓ配置を有し得、逆もまた同様である）。テザー付着点は、好ましくは、窒素である。担体Ｄの好ましい例としては、以下：
Figure 2023500681000033
 が挙げられる。
特定の実施形態では、担体は、ピペリジン環系（Ｅ）に基づいていてもよく、例えば、Ｘは、Ｎ（ＣＯ）Ｒ７又はＮＲ７であり、Ｙは、ＣＲ９Ｒ１０であり、Ｚは、ＣＲ１１Ｒ１２である。
Figure 2023500681000034
 ＯＦＧ１は、好ましくは、六員環中の炭素［Ｅ中の－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１］の１つに連結された、一次炭素、例えば、環外アルキレン基、例えば、メチレン基（ｎ＝１）又はエチレン基（ｎ＝２）に結合される。ＯＦＧ２は、好ましくは、六員環中の炭素（Ｅ中の－ＯＦＧ２）の１つに直接結合される。－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１及びＯＦＧ２は、環上でジェミナルに配置されてもよく、即ち、両方の基が、同じ炭素に、例えば、Ｃ－２、Ｃ－３、又はＣ－４で結合され得る。或いは、－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１及びＯＦＧ２は、環上でビシナルに配置されてもよく、即ち、両方の基が、隣接する環炭素原子に結合されてもよく、例えば、－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１は、Ｃ－２に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－３に結合されてもよく；－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１は、Ｃ－３に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－２に結合されてもよく；－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１は、Ｃ－３に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－４に結合されてもよく；又は－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１は、Ｃ－４に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－３に結合されてもよい。したがって、ピペリジン系モノマーは、結合回転がその特定の結合の周りに制限される（例えば環の存在に起因する制限）結合（例えば、炭素－炭素結合）を含み得る。したがって、－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１及びＯＦＧ２は、上で説明される対のいずれにおいても互いに対してシス又はトランスであり得る。したがって、全てのシス／トランス異性体が明示的に含まれる。モノマーはまた、１つ以上の不斉中心を含んでもよく、したがって、ラセミ化合物及びラセミ混合物、単一の鏡像異性体、個々のジアステレオマー及びジアステレオマー混合物として存在してもよい。モノマーの全てのこのような異性体が明示的に含まれる（例えば、ＣＨ２ＯＦＧ１及びＯＦＧ２を有する中心が両方ともＲ配置を有するか；又は両方ともＳ配置を有するか；又は一方の中心が、Ｒ配置を有し得、他方の中心が、Ｓ配置を有し得、逆もまた同様である）。テザー付着点は、好ましくは、窒素である。
特定の実施形態では、担体は、ピペラジン環系（Ｆ）に基づいていてもよく、例えば、Ｘは、Ｎ（ＣＯ）Ｒ７又はＮＲ７であり、Ｙは、ＮＲ８であり、Ｚは、ＣＲ１１Ｒ１２、又はモルホリン環系（Ｇ）であり、例えば、Ｘは、Ｎ（ＣＯ）Ｒ７又はＮＲ７であり、Ｙは、Ｏであり、Ｚは、ＣＲ１１Ｒ１２である。
Figure 2023500681000035
 ＯＦＧ１は、好ましくは、六員環中の炭素（Ｆ又はＧ中の－ＣＨ２ＯＦＧ１）の１つに連結された、一次炭素、例えば、環外アルキレン基、例えば、メチレン基に結合される。ＯＦＧ２は、好ましくは、六員環中の炭素（Ｆ又はＧ中の－ＯＦＧ２）の１つに直接結合される。Ｆ及びＧの両方について、－ＣＨ２ＯＦＧ１は、Ｃ－２に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－３に結合されてもよく；又は逆もまた同様である。特定の実施形態では、ＣＨ２ＯＦＧ１及びＯＦＧ２は、上記の炭素の１つにジェミナルに置換され得る。したがって、ピペラジン系及びモルホリン系モノマーは、結合回転がその特定の結合の周りに制限される（例えば環の存在に起因する制限）結合（例えば、炭素－炭素結合）を含み得る。したがって、ＣＨ２ＯＦＧ１及びＯＦＧ２は、上で説明される対のいずれにおいても互いに対してシス又はトランスであり得る。したがって、全てのシス／トランス異性体が明示的に含まれる。モノマーはまた、１つ以上の不斉中心を含んでもよく、したがって、ラセミ化合物及びラセミ混合物、単一の鏡像異性体、個々のジアステレオマー及びジアステレオマー混合物として存在してもよい。モノマーの全てのこのような異性体が明示的に含まれる（例えば、ＣＨ２ＯＦＧ１及びＯＦＧ２を有する中心が両方ともＲ配置を有するか；又は両方ともＳ配置を有するか；又は一方の中心が、Ｒ配置を有し得、他方の中心が、Ｓ配置を有し得、逆もまた同様である）。Ｒ’’’は、例えば、Ｃ１～Ｃ６アルキル、好ましくは、ＣＨ３であり得る。テザー付着点は、好ましくは、Ｆ及びＧの両方の中の窒素である。
特定の実施形態では、担体は、デカリン環系に基づいていてもよく、例えば、Ｘは、ＣＨ２であり；Ｙは、ＣＲ９Ｒ１０であり；Ｚは、ＣＲ１１Ｒ１２であり、Ｒ５及びＲ１１は、一緒に、Ｃ６シクロアルキル（Ｈ、ｚ＝２）、又はインダン環系を形成し、例えば、Ｘは、ＣＨ２であり；Ｙは、ＣＲ９Ｒ１０であり；Ｚは、ＣＲ１１Ｒ１２であり、Ｒ５及びＲ１１は、一緒に、Ｃ５シクロアルキル（Ｈ、ｚ＝１）を形成する。
Figure 2023500681000036
 ＯＦＧ１は、好ましくは、Ｃ－２、Ｃ－３、Ｃ－４、又はＣ－５［Ｈ中の－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１］の１つに連結された一次炭素、例えば、環外メチレン基（ｎ＝１）又はエチレン基（ｎ＝２）に結合される。ＯＦＧ２は、好ましくは、Ｃ－２、Ｃ－３、Ｃ－４、又はＣ－５（Ｈ中の－ＯＦＧ２）の１つに直接結合される。－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１及びＯＦＧ２は、環上でジェミナルに配置されてもよく、即ち、両方の基が、同じ炭素に、例えば、Ｃ－２、Ｃ－３、Ｃ－４、又はＣ－５で結合され得る。或いは、－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１及びＯＦＧ２は、環上でビシナルに配置されてもよく、即ち、両方の基が、隣接する環炭素原子に結合されてもよく、例えば、－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１は、Ｃ－２に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－３に結合されてもよく；－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１は、Ｃ－３に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－２に結合されてもよく；－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１は、Ｃ－３に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－４に結合されてもよく；又は－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１は、Ｃ－４に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－３に結合されてもよく；－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１は、Ｃ－４に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－５に結合されてもよく；又は－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１は、Ｃ－５に結合されてもよく、ＯＦＧ２は、Ｃ－４に結合されてもよい。したがって、デカリン又はインダン系モノマーは、結合回転がその特定の結合の周りに制限される（例えば環の存在に起因する制限）結合（例えば、炭素－炭素結合）を含み得る。したがって、－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１及びＯＦＧ２は、上で説明される対のいずれにおいても互いに対してシス又はトランスであり得る。したがって、全てのシス／トランス異性体が明示的に含まれる。モノマーはまた、１つ以上の不斉中心を含んでもよく、したがって、ラセミ化合物及びラセミ混合物、単一の鏡像異性体、個々のジアステレオマー及びジアステレオマー混合物として存在してもよい。モノマーの全てのこのような異性体が明示的に含まれる（例えば、ＣＨ２ＯＦＧ１及びＯＦＧ２を有する中心が両方ともＲ配置を有するか；又は両方ともＳ配置を有するか；又は一方の中心が、Ｒ配置を有し得、他方の中心が、Ｓ配置を有し得、逆もまた同様である）。好ましい実施形態では、Ｃ－１及びＣ－６における置換基が、互いに対してトランスである。テザー付着点は、好ましくは、Ｃ－６又はＣ－７である。
他の担体は、３－ヒドロキシプロリン（Ｊ）に基づくものを含み得る。
Figure 2023500681000037
 したがって、－（ＣＨ２）ｎＯＦＧ１及びＯＦＧ２は、互いに対してシス又はトランスであり得る。したがって、全てのシス／トランス異性体が明示的に含まれる。モノマーはまた、１つ以上の不斉中心を含んでもよく、したがって、ラセミ化合物及びラセミ混合物、単一の鏡像異性体、個々のジアステレオマー及びジアステレオマー混合物として存在してもよい。モノマーの全てのこのような異性体が明示的に含まれる（例えば、ＣＨ２ＯＦＧ１及びＯＦＧ２を有する中心が両方ともＲ配置を有するか；又は両方ともＳ配置を有するか；又は一方の中心が、Ｒ配置を有し得、他方の中心が、Ｓ配置を有し得、逆もまた同様である）。テザー付着点は、好ましくは、窒素である。
より代表的な環状の糖置換に基づく担体についての詳細が、参照によりその全内容が本明細書に組み入れられる、米国特許第７，７４５，６０８号明細書及び同第８，０１７，７６２号明細書に見出される。
糖置換に基づくモノマー（非環状）
非環状の糖置換に基づくモノマー、例えば、糖置換に基づくリガンド－コンジュゲートモノマーは、本明細書ではリボース置換モノマーサブユニット（ＲＲＭＳ）モノマー化合物とも呼ばれる。好ましい非環状担体は、式ＬＣＭ－３又はＬＣＭ－４：
Figure 2023500681000038
 を有し得る。
一部の実施形態では、ｘ、ｙ、及びｚのそれぞれは、互いに独立に、０、１、２、又は３であり得る。式ＬＣＭ－３において、ｙ及びｚが異なる場合、第３級炭素は、Ｒ又はＳ配置のいずれかを有し得る。好ましい実施形態では、式ＬＣＭ－３（例えば、セリノールに基づく）において、ｘは０であり、ｙ及びｚはそれぞれ、１であり、式ＬＣＭ－３において、ｙ及びｚはそれぞれ、１である。下式ＬＣＭ－３又はＬＣＭ－４のそれぞれは、例えば、ヒドロキシ、アルコキシ、ペルハロアルキルで、任意選択で置換され得る。
より代表的な非環状の糖置換に基づく担体についての詳細が、参照によりその全内容が本明細書に組み入れられる、米国特許第７，７４５，６０８号明細書及び同第８，０１７，７６２号明細書に見出される。
一部の実施形態では、化合物は、センス鎖の５’末端又はアンチセンス鎖の５’末端にコンジュゲートされた親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを含む。
特定の実施形態では、親油性モノマーは、担体及び／又はリンカーを介して、鎖の５’末端にコンジュゲートされた親油性部分を含有する。一実施形態では、親油性モノマーは、式：
Figure 2023500681000039
 （式中、Ｒは、親油性部分などのリガンドである）の担体を介して、鎖の５’末端にコンジュゲートされた親油性部分を含有する。
一部の実施形態では、化合物は、センス鎖の３’末端又はアンチセンス鎖の３’末端にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを含む。
特定の実施形態では、親油性モノマーは、担体及び／又はリンカーを介して、鎖の３’末端にコンジュゲートされた親油性部分を含有する。一実施形態では、親油性モノマーは、式：
Figure 2023500681000040
 （式中、Ｒは、親油性部分などのリガンドである）の担体を介して、鎖の３’末端にコンジュゲートされた親油性部分を含有する。
特定の実施形態では、親油性モノマーは、担体及び／又はリンカーを介して、鎖の内部位置にコンジュゲートされた親油性部分を含有する。一実施形態では、親油性モノマーは、式：
Figure 2023500681000041
 （式中、Ｒは、親油性部分などのリガンドである）の担体を介して、鎖の内部位置にコンジュゲートされた親油性部分を含有する。
一部の実施形態では、化合物は、センス鎖の両端にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを含む。
一部の実施形態では、化合物は、アンチセンス鎖の両端にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを含む。
一部の実施形態では、化合物は、センス鎖又はアンチセンス鎖の内部位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを含む。一部の実施形態では、１つ以上の親油性部分は、リボース、核酸塩基に、及び／又はヌクレオチド間結合においてコンジュゲートされる。一部の実施形態では、１つ以上の親油性部分は、リボースの２’位、３’位、４’位、及び／又は５’位においてリボースにコンジュゲートされる。一部の実施形態では、１つ以上の親油性部分は、本明細書において定義される天然の（Ａ、Ｔ、Ｇ、Ｃ、若しくはＵなど）又は修飾された核酸塩基においてコンジュゲートされる。一部の実施形態では、１つ以上の親油性部分は、本明細書において定義されるホスフェート又は修飾リン酸基においてコンジュゲートされる。
一部の実施形態では、化合物は、センス鎖の５’末端又は３’末端にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマー、及びアンチセンス鎖の５’末端又は３’末端にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを含む。
一部の実施形態では、親油性モノマーは、１つ以上のリンカー（テザー）及び／又は担体を介して、鎖の末端にコンジュゲートされた親油性部分を含有する。
一実施形態では、親油性モノマーは、１つ以上のリンカー（テザー）を介して、鎖の末端にコンジュゲートされた親油性部分を含有する。
一実施形態では、親油性モノマーは、環状担体、任意選択で、１つ以上の介在リンカー（テザー）を介して、センス鎖又はアンチセンス鎖の５’末端にコンジュゲートされた親油性部分を含有する。
一部の実施形態では、少なくとも１つの親油性モノマーは、センス鎖又はアンチセンス鎖の１つ以上の末端位置に位置する。一実施形態では、少なくとも１つの親油性モノマーは、センス鎖の３’末端又は５’末端に位置する。一実施形態では、少なくとも１つの親油性モノマーは、アンチセンス鎖の３’末端又は５’末端に位置する。
一部の実施形態では、親油性部分を含有する親油性モノマーは、少なくとも１つの鎖上の１つ以上の内部位置にコンジュゲートされる。鎖の内部位置は、鎖の３’末端及び５’末端から末端の位置を除く（例えば、２つの位置：３’末端から数えて１位及び５’末端から数えて１位を除く）、鎖の任意の位置にあるヌクレオチドを指す。
一実施形態では、少なくとも１つの親油性モノマーは、鎖の各末端から末端の２つの位置を除く全ての位置を含む、少なくとも１つの鎖上の１つ以上の内部位置（例えば、４つの位置：３’末端から数えて１及び２位並びに５’末端から数えて１及び２位を除く）に位置する。一実施形態では、親油性モノマーは、鎖の各末端から末端の３つの位置を除く全ての位置を含む、少なくとも１つの鎖上の１つ以上の内部位置（例えば、６つの位置：３’末端から数えて１、２、及び３位並びに５’末端から数えて１、２、及び３位を除く）に位置する。
一実施形態では、少なくとも１つの親油性モノマーは、二重鎖領域内の全ての位置を含むが、オーバーハング領域を含まない、二重鎖領域の少なくとも１つの端部の１つ以上の位置、又はセンス鎖の３’末端において末端ヌクレオチドを置換する担体上に位置する。
一実施形態では、少なくとも１つの親油性モノマーは、二重鎖領域のアンチセンス鎖の５’末端における最初の５つ、４つ、３つ、２つ、又は最初の塩基対内のセンス鎖上に位置する。
一実施形態では、少なくとも１つの親油性モノマーは、センス鎖の切断部位領域を除く、少なくとも１つの鎖上の１つ以上の内部位置上に位置し、例えば、親油性モノマーは、センス鎖の５’末端から数えて９～１２位上に位置せず、例えば、親油性モノマーは、センス鎖の５’末端から数えて９～１１位上に位置しない。或いは、内部位置は、センス鎖の３’末端から数えて１１～１３位を除く。
一実施形態では、少なくとも１つの親油性モノマーは、アンチセンス鎖の切断部位領域を除く、少なくとも１つの鎖上の１つ以上の内部位置に位置する。例えば、内部位置は、アンチセンス鎖の５’末端から数えて１２～１４位を除く。
一実施形態では、少なくとも１つの親油性モノマーは、３’末端から数えてセンス鎖上の１１～１３位、及び５’末端から数えてアンチセンス鎖上の１２～１４位を除く、少なくとも１つの鎖上の１つ以上の内部位置に位置する。
一実施形態では、１つ以上の親油性モノマーは、以下の内部位置の１つ以上：各鎖の５’末端から数えて、センス鎖上の４～８及び１３～１８位、並びにアンチセンス鎖上の６～１０及び１５～１８位に位置する。
一実施形態では、１つ以上の親油性モノマーは、以下の内部位置の１つ以上：各鎖の５’末端から数えて、センス鎖上の５、６、７、１５、及び１７位、並びにアンチセンス鎖上の１５及び１７位に位置する。
定義
特定の定義が示されない限り、本明細書に記載される分析化学、合成有機化学、及び医学・薬化学に関連して用いられる命名法、及び分析化学、合成有機化学、及び医学・薬化学の手順及び技術は、当分野で周知であり、一般的に使用されるものである。標準的な技術が、化学合成、及び化学分析に使用され得る。いくつかのこのような技術及び手順が、例えば、“Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ”Ｅｄｉｔｅｄ ｂｙ Ｓａｎｇｖｉ ａｎｄ Ｃｏｏｋ，Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｃｈｅｍｉｃａｌ Ｓｏｃｉｅｔｙ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ Ｄ．Ｃ．，１９９４；“Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ’ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ”，Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，Ｐａ．，１８ｔｈ ｅｄｉｔｉｏｎ，１９９０；及び“Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｄｒｕｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｐｒｉｎｃｉｐｌｅｓ，Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ，ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ”Ｅｄｉｔｅｄ ｂｙ Ｓｔａｎｌｅｙ Ｔ．Ｃｒｏｏｋｅ，ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ，Ｂｏｃａ Ｒａｔｏｎ，Ｆｌａ．；及びＳａｍｂｒｏｏｋ ｅｔ ａｌ．，“Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ”，２ｎｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ，１９８９に見出され、これらは、あらゆる目的のために参照により本明細書に組み入れられる。許容される場合、本開示を通して言及される全ての特許、出願、公開出願及び他の刊行物及び他のデータは、参照により全内容が本明細書に組み入れられる。
本明細書で使用される「標的核酸」という語は、発現又は活性がｓｉＲＮＡ化合物によって調節されることが可能である任意の核酸分子を指す。標的核酸としては、限定されるものではないが、標的タンパク質をコードするＤＮＡから転写されるＲＮＡ（限定されるものではないが、ｐｒｅ－ｍＲＮＡ及びｍＲＮＡ又はその部分を含む）、及びさらにこのようなＲＮＡから得られるｃＤＮＡ、及びｍｉＲＮＡが挙げられる。例えば、標的核酸は、その発現が特定の障害若しくは病態に関連している細胞遺伝子（又はその遺伝子から転写されるｍＲＮＡ）であり得る。一部の実施形態では、標的核酸は、感染因子由来の核酸分子であり得る。
本明細書で使用される「ｉＲＮＡ」という語は、ＲＮＡ転写物の標的切断を媒介する作用剤を指す。これらの作用剤は、ＲＮＡｉ誘導サイレンシング複合体（ＲＩＳＣ）として知られている細胞質多タンパク質複合体と結合する。ＲＮＡ干渉を誘導する際に有効な作用剤は、本明細書において、ｓｉＲＮＡ、ＲＮＡｉ剤、又はｉＲＮＡ剤とも呼ばれる。したがって、これらの語は、本明細書において同義的に使用され得る。本明細書で使用されるｉＲＮＡという語は、マイクロＲＮＡ及びｐｒｅ－マイクロＲＮＡを含む。さらに、本明細書で使用される本発明の「化合物」又は「複数の化合物」も、ｉＲＮＡ剤を指し、ｉＲＮＡ剤と同義的に使用され得る。
ｉＲＮＡ剤は、標的遺伝子に対して十分に相同の領域を含み、ヌクレオチドについて十分な長さのものであるべきであり、それによって、ｉＲＮＡ剤、又はそのフラグメントは、標的遺伝子の下方制御を媒介することができる。（説明を容易にするために、ヌクレオチド又はリボヌクレオチドという語は、本明細書において、ｉＲＮＡ剤の１つ以上のモノマーサブユニットに関連して使用されることがある。本明細書における「リボヌクレオチド」又は「ヌクレオチド」という語の使用が、修飾ＲＮＡ又はヌクレオチドサロゲートの場合、修飾ヌクレオチド、又は１つ以上の位置におけるサロゲート置換部分も指し得ることが、本明細書において理解されよう）。したがって、ｉＲＮＡ剤は、少なくとも部分的に、及び一部の実施形態では完全に、標的ＲＮＡに相補的な領域であるか又はそれを含む。ｉＲＮＡ剤と標的との間に完全な相補性がある必要はないが、一致は、ｉＲＮＡ剤、又はその切断産物が、例えば、標的ＲＮＡ、例えば、ｍＲＮＡのＲＮＡｉ切断によって、配列特異的サイレンシングを指令するのを可能にするのに十分でなければならない。標的鎖との相補性、又は相同の程度は、アンチセンス鎖において最も重要である。完全な相補性が、特にアンチセンス鎖において、望ましいことが多いが、一部の実施形態は、特にアンチセンス鎖において、１つ以上、又は例えば、６、５、４、３、２、又はそれ以下のミスマッチ（標的ＲＮＡに対して）を含み得る。センス鎖は、分子の全体的な二本鎖の性質を維持するのに十分に、アンチセンス鎖と相補的でありさえすればよい。
ｉＲＮＡ剤としては、インターフェロン応答を引き起こすのに十分に長く（Ｄｉｃｅｒによって切断され得る（Ｂｅｒｎｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．２００１．Ｎａｔｕｒｅ，４０９：３６３－３６６）、ＲＩＳＣに入る分子（ＲＮＡｉ誘導サイレンシング複合体））；及び、インターフェロン応答を引き起こさないほど十分に短い分子（この分子はまた、Ｄｉｃｅｒによって切断されるか、及び／又はＲＩＳＣに入り得る）、例えば、ＲＩＳＣへの進入を可能にするサイズの分子、例えば、Ｄｉｃｅｒ切断産物に類似する分子が挙げられる。インターフェロン応答を引き起こさないほど十分に短い分子は、本明細書では、ｓｉＲＮＡ剤又は短鎖ｉＲＮＡ剤と呼ばれる。本明細書で使用される「ｓｉＲＮＡ剤又は短鎖ｉＲＮＡ剤」は、ヒト細胞内での有害なインターフェロン応答を誘導しないほど十分に短いｉＲＮＡ剤、例えば、二本鎖ＲＮＡ剤又は一本鎖剤を指し、例えば、それは、６０、５０、４０、又は３０未満のヌクレオチド対の二重鎖領域を有する。ｓｉＲＮＡ剤、又はその切断産物は、例えば、標的ＲＮＡに対してＲＮＡｉを誘導することによって、標的遺伝子を下方制御することができ、ここで、標的は、内因性又は病原体標的ＲＮＡを含み得る。
本明細書で使用される「一本鎖ｉＲＮＡ剤」は、単一の分子から構成されるｉＲＮＡ剤である。それは、鎖内の対合によって形成される二重鎖領域を含んでもよく、例えば、それは、ヘアピン又はパンハンドル構造であり得るか、又はそれを含み得る。一本鎖ｉＲＮＡ剤は、標的分子に対してアンチセンスであり得る。一本鎖ｉＲＮＡ剤は、ＲＩＳＣに入り、標的ｍＲＮＡのＲＩＳＣ媒介切断に関与し得るのに十分に長いことがある。一本鎖ｉＲＮＡ剤は、少なくとも１４、及び他の実施形態では、少なくとも１５、２０、２５、２９、３５、４０、又は５０ヌクレオチド長である。特定の実施形態では、それは、２００、１００、又は６０ヌクレオチド長未満である。
ループは、ｉＲＮＡ鎖の部分が別の鎖又は同じ鎖の別の部分と共に塩基対を形成する場合、二重鎖内の対向するヌクレオチドと対合しないｉＲＮＡ鎖の領域を指す。
ヘアピンｉＲＮＡ剤は、１７、１８、１９、２９、２１、２２、２３、２４、若しくは２５ヌクレオチド対に等しいか又は少なくともそのようなヌクレオチド対の二重鎖領域を有する。二重鎖領域は、２００、１００、又は５０以下の長さであり得る。特定の実施形態では、二重鎖領域の範囲は、１５～３０、１７～２３、１９～２３、及び１９～２１ヌクレオチド対の長さである。ヘアピンは、一部の実施形態では３’に、及び特定の実施形態では、ヘアピンのアンチセンス側に、一本鎖オーバーハング又は末端非対合領域を有する。一部の実施形態では、オーバーハングは、２～３ヌクレオチド長である。
本明細書で使用される「二本鎖（ｄｓ）ｉＲＮＡ剤」は、鎖間のハイブリダイゼーションにより二重鎖構造の領域が形成され得る、２つ以上、場合によっては２つの鎖を含むｉＲＮＡ剤である。
本明細書で使用される「ｓｉＲＮＡ活性」及び「ＲＮＡｉ活性」という語は、ｓｉＲＮＡによる遺伝子サイレンシングを指す。
本明細書で使用される、ＲＮＡ干渉分子による「遺伝子サイレンシング」は、標的遺伝子について、ｍｉＲＮＡ又はＲＮＡ干渉分子が存在しない細胞に見出されるｍＲＮＡレベルの少なくとも約５％、少なくとも約１０％、少なくとも約２０％、少なくとも約３０％、少なくとも約４０％、少なくとも約５０％、少なくとも約６０％、少なくとも約７０％、少なくとも約８０％、少なくとも約９０％、少なくとも約９５％、１００％までを含む少なくとも約９９％、及びこれらの間のあらゆる整数％の、細胞内のｍＲＮＡレベルの減少を指す。好ましい一実施形態では、ｍＲＮＡレベルは、少なくとも約７０％、少なくとも約８０％、少なくとも約９０％、少なくとも約９５％、１００％までを含む少なくとも約９９％及び５％～１００％の間のあらゆる整数％の減少である。
本明細書で使用される「遺伝子発現を調節する」という語は、１つ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットをコードする遺伝子の発現、又はＲＮＡ分子若しくは均等なＲＮＡ分子のレベルを、上方制御又は下方制御して、発現、レベル、又は活性が、モジュレーターの非存在下で観察されるものより高く又は低くなるようにすることを意味する。例えば、「調節する」という語は、「阻害する」を意味し得るが、「調節する」という語の使用は、この定義に限定されない。
本明細書で使用される遺伝子発現調節は、１つ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットをコードする遺伝子の発現、又はＲＮＡ分子若しくは均等なＲＮＡ分子のレベルが、ｓｉＲＮＡ、例えば、ＲＮＡｉ剤の非存在下で観察されるものと少なくとも５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、１００％、２倍、３倍、４倍、５倍又はそれ以上異なる場合に起こる。％及び／又は倍率差は、対照又は非対照に対して、例えば、以下のように計算され得る。
Figure 2023500681000042
本明細書で使用される、遺伝子発現に関して、「阻害する」、「下方制御する」、又は「低下させる」という語は、１つ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットをコードする遺伝子の発現、又はＲＮＡ分子若しくは均等なＲＮＡ分子のレベル、又は１つ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットの活性が、モジュレーターの非存在下で観察されるものより低く低下されることを意味する。１つ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットをコードする遺伝子の発現、又はＲＮＡ分子若しくは均等なＲＮＡ分子のレベル、又は１つ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットの活性が、対応する非調節対照と比べて少なくとも１０％低く、好ましくは、少なくとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、９９％、又は最も好ましくは、１００％（即ち、遺伝子発現なし）低く低下される場合、遺伝子発現は下方制御される。
本明細書で使用される、遺伝子発現に関して、「増加させる」又は「上方制御する」という語は、１つ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットをコードする遺伝子の発現、又はＲＮＡ分子若しくは均等なＲＮＡ分子のレベル、又は１つ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットの活性が、モジュレーターの非存在下で観察されるものより高く増加されることを意味する。１つ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットをコードする遺伝子の発現、又はＲＮＡ分子若しくは均等なＲＮＡ分子のレベル、又は１つ以上のタンパク質若しくはタンパク質サブユニットの活性が、対応する非調節対照と比べて、少なくとも１０％、好ましくは、少なくとも１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、９５％、９８％、１００％、１．１倍、１．２５倍、１．５倍、１．７５倍、２倍、３倍、４倍、５倍、１０倍、５０倍、１００倍又はそれ以上増加される場合、遺伝子発現は上方制御される。
本明細書で使用される「増加した」又は「増加させる」という語は、一般に、統計的に有意な量の増加を意味し；誤解を避けるために、「増加した」は、基準レベルと比較して少なくとも１０％の増加、例えば、基準サンプルと比較して少なくとも約２０％、又は少なくとも約３０％、又は少なくとも約４０％、又は少なくとも約５０％、又は少なくとも約６０％、又は少なくとも約７０％、又は少なくとも約８０％、又は少なくとも約９０％の増加又は１００％以下の増加又は１０～１００％の間のあらゆる増加、或いは基準レベルと比較して少なくとも約２倍、又は少なくとも約３倍、又は少なくとも約４倍、又は少なくとも約５倍又は少なくとも約１０倍の増加、又は２倍～１０倍以上のあらゆる増加を意味する。
本明細書で使用される「減少した」又は「減少させる」という語は、一般に、統計的に有意な量の減少を意味する。しかしながら、誤解を避けるために、「減少した」は、基準レベルと比較して少なくとも１０％の減少、例えば、少なくとも約２０％、又は少なくとも約３０％、又は少なくとも約４０％、又は少なくとも約５０％、又は少なくとも約６０％、又は少なくとも約７０％、又は少なくとも約８０％、又は少なくとも約９０％の減少又は１００％以下の減少（即ち、基準サンプルと比較してゼロレベル）、又は基準レベルと比較して１０～１００％の間のあらゆる減少を意味する。
二本鎖ｉＲＮＡは、ハイブリダイズして二重鎖構造を形成するのに十分に相補的な２つのオリゴヌクレオチド鎖を含む。一般に、二重鎖構造は、１５～３０、より一般的には１８～２５、さらにより一般的には１９～２４、最も一般的には１９～２１塩基対の長さである。一部の実施形態では、２５～３０塩基対の長さのより長い二本鎖ｉＲＮＡが好ましい。一部の実施形態では、１０～１５塩基対の長さのより短い二本鎖ｉＲＮＡが好ましい。別の実施形態では、二本鎖ｉＲＮＡは、少なくとも２１ヌクレオチド長である。
一部の実施形態では、二本鎖ｉＲＮＡは、センス鎖及びアンチセンス鎖を含み、ここで、アンチセンスＲＮＡ鎖は、標的配列の少なくとも一部と相補的な相補性の領域を有し、二重鎖領域は、１４～３０ヌクレオチド長である。同様に、標的配列に対する相補性の領域は、１４～３０、より一般的には１８～２５、さらにより一般的には１９～２４、最も一般的には１９～２１ヌクレオチド長である。
本明細書で使用される「化合物」は、オリゴヌクレオチド、アンチセンス、又はｓｉＲＮＡなどのｉＲＮＡ剤であり得るオリゴマー化合物を指す。
本明細書で使用される「アンチセンス鎖」という句は、目的とする標的配列に対して実質的に又は１００％相補的であるオリゴマー化合物を指す。「アンチセンス鎖」という句は、２つの別個の鎖から形成される両方のオリゴマー化合物のアンチセンス領域、並びにヘアピン又はダンベル型構造を形成することが可能な単分子オリゴマー化合物を含む。「アンチセンス鎖」及び「ガイド鎖」という語は、同義的に使用される。
「センス鎖」という句は、メッセンジャーＲＮＡ又はＤＮＡの配列などの標的配列と、全体的に又は部分的に同じヌクレオシド配列を有するオリゴマー化合物を指す。「センス鎖」及び「パッセンジャー鎖」という語は、同義的に使用される。
「特異的にハイブリダイズ可能な」及び「相補的な」とは、核酸が、ワトソン－クリック又は他の非伝統的タイプのいずれかにより、別の核酸配列と水素結合を形成し得ることを意味する。本発明の核酸分子に関連して、核酸分子とその相補的配列との結合自由エネルギーが、核酸の関連機能、例えば、ＲＮＡｉ活性を進行させるのに十分である。核酸分子の結合自由エネルギーの決定は、当分野において周知である（例えば、Ｔｕｒｎｅｒ ｅｔ ａｌ，１９８７，ＣＳＨ Ｓｙｍｐ．Ｑｕａｎｔ．Ｂｉｏｌ．ＬＩＩ ｐｐ．１２３－１３３；Ｆｒｉｅｒ ｅｔ ａｌ．，１９８６、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ８３：９３７３－９３７７；Ｔｕｒｎｅｒ ｅｔ ａｌ．，１９８７，／．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１０９：３７８３－３７８５を参照されたい）。相補性パーセントは、第２の核酸配列と水素結合（例えば、ワトソン－クリック塩基対合）を形成し得る核酸分子中の連続した残基のパーセンテージ（例えば、１０のうちの５、６、７、８、９、１０は、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％、及び１００％相補的である）を示す。「完全に相補的」又は１００％の相補性は、核酸配列の連続した残基が全て、第２の核酸配列中の同数の連続した残基と水素結合することを意味する。完全ではない相補性は、２つの鎖の一部（全てではない）のヌクレオシド単位が、互いに水素結合し得る状況を指す。「実質的な相補性」は、非相補的であるように選択された、オーバーハングなどのポリヌクレオチド鎖の領域を除いて、９０％以上の相補性を示すポリヌクレオチド鎖を指す。特異的結合は、特異的結合が所望される条件下、即ち、ｉｎ ｖｉｖｏアッセイ若しくは治療的処置の場合、生理学的条件下で、又はｉｎ ｖｉｔｒｏアッセイの場合、アッセイが行われる条件下で、非標的配列へのオリゴマー化合物の非特異的結合を回避するのに十分な程度の相補性を必要とする。非標的配列は、典型的に、少なくとも５ヌクレオチド異なる。
一部の実施形態では、化合物の二本鎖領域は、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０若しくはそれ以上のヌクレオチド対の長さに等しいか又は少なくともそのようなヌクレオチド対の長さである。
一部の実施形態では、化合物のアンチセンス鎖は、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、若しくは３０ヌクレオチド長に等しいか又は少なくともそのようなヌクレオチド長である。
一部の実施形態では、化合物のセンス鎖は、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、若しくは３０ヌクレオチド長に等しいか又は少なくともそのようなヌクレオチド長である。
一実施形態では、化合物のセンス鎖及びアンチセンス鎖はそれぞれ、１５～３０ヌクレオチド長である。
一実施形態では、化合物のセンス鎖及びアンチセンス鎖はそれぞれ、１９～２５ヌクレオチド長である。
一実施形態では、化合物のセンス鎖及びアンチセンス鎖はそれぞれ、２１～２３ヌクレオチド長である。
一部の実施形態では、１つの鎖は、二本鎖領域内に１～５つの一本鎖ヌクレオチドの少なくとも１つの区間を有する。「二本鎖領域内の一本鎖ヌクレオチドの区間」とは、一本鎖区間の両端に少なくとも１つのヌクレオチド塩基対が存在することを意味する。一部の実施形態では、両方の鎖は、二本鎖領域内に１～５つ（例えば、１、２、３、４、又は５つ）の一本鎖ヌクレオチドの少なくとも１つの区間を有する。両方の鎖が、二本鎖領域内に１～５つ（例えば、１、２、３、４、又は５）の一本鎖ヌクレオチドの区間を有する場合、このような一本鎖ヌクレオチドは、高いに反対（例えば、ミスマッチの区間）であってもよく、又はそれらは、第２の鎖が、第１の鎖の一本鎖ｉＲＮＡと反対の一本鎖ヌクレオチドを有さないように配置され得、逆もまた同様である（例えば、一本鎖ループ）。一部の実施形態では、一本鎖ヌクレオチドは、いずれかの末端から８ヌクレオチド以内、例えば、２つの鎖の間の相補性の領域の５’又は３’末端のいずれかから８、７、６、５、４、３、又は２ヌクレオチドに存在する。
一実施形態では、化合物は、末端の少なくとも１つに一本鎖オーバーハングを含む。一実施形態では、一本鎖オーバーハングは、１、２、又は３ヌクレオチド長である。
一実施形態では、ｉＲＮＡ剤のセンス鎖は、２１ヌクレオチド長であり、アンチセンス鎖は、２３ヌクレオチド長であり、ここで、鎖は、３’末端に２ヌクレオチド長の一本鎖オーバーハングを有する２１の連続した塩基対の二本鎖領域を形成する。
一部の実施形態では、二本鎖ｉＲＮＡの各鎖は、参照により全内容が本明細書に組み入れられる、ＰＣＴ公開番号国際公開第２００４０８０４０６号パンフレットに記載されるものなどのＺＸＹ構造を有する。
特定の実施形態において、二本鎖オリゴマー化合物の２つの鎖が、互いに連結され得る。２つの鎖は、両端、又は一端のみで互いに連結され得る。一端で連結するとは、第１の鎖の５’末端が、第２の鎖の３’末端に連結されるか、又は第１の鎖の３’末端が、第２の鎖の５’末端に連結されることを意味する。２つの鎖が、両端で互いに連結される場合、第１の鎖の５’末端が、第２の鎖の３’末端に連結され、第１の鎖の３’末端が、第２の鎖の５’末端に連結される。２つの鎖は、限定されるものではないが、（Ｎ）ｎ（ここでＮは、独立に、修飾又は非修飾ヌクレオチドであり、ｎは、３～２３である）を含むオリゴヌクレオチドリンカーによって互いに連結され得る。一部の実施形態では、ｎは、３～１０、例えば、３、４、５、６、７、８、９、又は１０である。一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドリンカーは、ＧＮＲＡ、（Ｇ）４、（Ｕ）４、及び（ｄＴ）４からなる群から選択され、ここで、Ｎは、修飾又は非修飾ヌクレオチドであり、Ｒは、修飾又は非修飾プリンヌクレオチドである。リンカー中のヌクレオチドの一部は、リンカー中の他のヌクレオチドとの塩基対合相互作用に関与し得る。２つの鎖はまた、非ヌクレオシドリンカー、例えば、本明細書に記載されるリンカーによって互いに連結され得る。本明細書に記載される任意のオリゴヌクレオチド化学修飾又は改変が、オリゴヌクレオチドリンカーに使用され得ることが、当業者によって理解されよう。
ヘアピン及びダンベル型オリゴマー化合物は、１４、１５、１５、１６、１７、１８、１９、２９、２１、２２、２３、２４、若しくは２５ヌクレオチド対に等しいか又は少なくともそのようなヌクレオチド対の二重鎖領域を有する。二重鎖領域は、２００、１００、又は５０以下の長さであり得る。一部の実施形態では、二重鎖領域の範囲は、１５～３０、１７～２３、１９～２３、及び１９～２１ヌクレオチド対の長さである。
ヘアピンオリゴマー化合物は、一部の実施形態では３’に、及び一部の実施形態ではヘアピンのアンチセンス側に、一本鎖オーバーハング又は末端非対合領域を有し得る。一部の実施形態では、オーバーハングは、１～４、より一般的には２～３ヌクレオチド長である。ＲＮＡ干渉を誘導し得るヘアピンオリゴマー化合物は、本明細書では、「ｓｈＲＮＡ」とも呼ばれる。
特定の実施形態では、２つのオリゴマー鎖は、特異的結合が所望される条件下、即ち、ｉｎ ｖｉｖｏアッセイ若しくは治療的処置の場合、生理学的条件下で、及びｉｎ ｖｉｔｒｏアッセイの場合、アッセイが行われる条件下で、非標的核酸配列へのアンチセンス化合物の非特異的結合を回避するのに十分な程度の相補性がある場合に特異的にハイブリダイズする。
本明細書で使用される「ストリンジェントなハイブリダイゼーション条件」又は「ストリンジェントな条件」は、アンチセンス化合物がその標的配列にハイブリダイズするが、最小数の他の配列にハイブリダイズする条件を指す。ストリンジェントな条件は、配列依存的であり、様々な環境で異なり、アンチセンス化合物が標的配列にハイブリダイズする「ストリンジェントな条件」は、アンチセンス化合物の性質及び組成並びにそれらが試験されるアッセイによって決定される。
ヌクレオチド親和性修飾の組み込みにより、非修飾化合物と比較してより多数のミスマッチを可能にし得ることが、当分野において理解される。同様に、特定のオリゴヌクレオチド配列は、他のオリゴヌクレオチド配列よりミスマッチに対してより耐性であり得る。当業者は、オリゴヌクレオチド間、又はオリゴヌクレオチドと標的核酸との間の適切な数のミスマッチを、例えば溶融温度（Ｔｍ）を決定することによって、決定することができる。Ｔｍ又はΔＴｍは、当業者に周知の技術によって計算され得る。例えば、Ｆｒｅｉｅｒ ｅｔ ａｌ．（Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，１９９７，２５，２２：４４２９－４４４３）に記載される技術により、当業者は、ＲＮＡ：ＤＮＡ二重鎖の溶融温度を高める能力についてヌクレオチド修飾を評価することができる。
ｓｉＲＮＡ設計
一実施形態では、ｉＲＮＡ剤は、１９ｎｔ長の平滑末端二本鎖（ｄｏｕｂｌｅ ｅｎｄｅｄ ｂｌｕｎｔｍｅｒ）であり、ここで、センス鎖は、５’末端から７、８、９位に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｆ修飾の少なくとも１つのモチーフを含む。アンチセンス鎖は、５’末端から１１、１２、１３位に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｏ－メチル修飾の少なくとも１つのモチーフを含む。
一実施形態では、ｉＲＮＡ剤は、２０ｎｔ長の平滑末端二本鎖であり、ここで、センス鎖は、５’末端から８、９、１０位に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｆ修飾の少なくとも１つのモチーフを含む。アンチセンス鎖は、５’末端から１１、１２、１３位に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｏ－メチル修飾の少なくとも１つのモチーフを含む。
一実施形態では、ｉＲＮＡ剤は、２１ｎｔ長の平滑末端二本鎖であり、ここで、センス鎖は、５’末端から９、１０、１１位に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｆ修飾の少なくとも１つのモチーフを含む。アンチセンス鎖は、５’末端から１１、１２、１３位に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｏ－メチル修飾の少なくとも１つのモチーフを含む。
一実施形態では、ｉＲＮＡ剤は、２１ヌクレオチド（ｎｔ）センス鎖及び２３ヌクレオチド（ｎｔ）アンチセンスを含み、ここで、センス鎖は、５’末端から９、１０、１１位に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｆ修飾の少なくとも１つのモチーフを含み；アンチセンス鎖は、５’末端から１１、１２、１３位に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｏ－メチル修飾の少なくとも１つのモチーフを含み、ここで、ｉＲＮＡの一方の末端が平滑である一方、他方の末端は、２ｎｔオーバーハングを含む。好ましくは、２ｎｔオーバーハングは、アンチセンスの３’末端にある。任意選択で、ｉＲＮＡ剤は、リガンド（例えば、ＧａｌＮＡｃ３）をさらに含む。
一実施形態では、ｉＲＮＡ剤は、センス鎖及びアンチセンス鎖を含み、ここで、センス鎖は、２５～３０ヌクレオチド残基長であり、５’末端ヌクレオチド（１位）を起点として、前記第１の鎖の１～２３位が、少なくとも８つのリボヌクレオチドを含み；アンチセンス鎖は、３６～６６のヌクレオチド残基長であり、３’末端ヌクレオチドを起点として、センス鎖の１～２３位と対合される位置に少なくとも８つのリボヌクレオチドを含んで、二重鎖を形成し；ここで、アンチセンス鎖の少なくとも３’末端ヌクレオチドが、センス鎖と対合されず、最大で６連続の３’末端ヌクレオチドが、センス鎖と対合されず、それによって、１～６つのヌクレオチドの３’一本鎖オーバーハングを形成し；ここで、アンチセンス鎖の５’末端は、センス鎖と対合されない１０～３０連続ヌクレオチドを含み、それによって、１０～３０ヌクレオチド一本鎖５’オーバーハングを形成し；ここで、少なくともセンス鎖５’末端及び３’末端ヌクレオチドは、センス鎖及びアンチセンス鎖が最大の相補性のために整列される場合、アンチセンス鎖のヌクレオチドと対合される塩基であり、それによって、センス鎖とアンチセンス鎖との間に実質的に二重鎖の領域を形成し；アンチセンス鎖は、前記二本鎖核酸が哺乳動物細胞中に導入されたときに標的遺伝子発現を低下させるように、アンチセンス鎖長の少なくとも１９個のリボヌクレオチドに沿って標的ＲＮＡに十分に相補的であり；ここで、センス鎖は、３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｆ修飾の少なくとも１つのモチーフを含み、ここで、モチーフの少なくとも１つは、切断部位又はその近傍に存在する。アンチセンス鎖は、切断部位又はその近傍に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｏ－メチル修飾の少なくとも１つのモチーフを含む。
一実施形態では、ｉＲＮＡ剤は、センス鎖及びアンチセンス鎖を含み、ここで、前記ｉＲＮＡ剤は、少なくとも２５且つ２９以下のヌクレオチド長を有する第１の鎖と、５’末端から１１、１２、１３位に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｏ－メチル修飾の少なくとも１つのモチーフを含む、３０ヌクレオチド長以下を有する第２の鎖とを含み；ここで、前記第１の鎖の前記３’末端及び前記第２の鎖の前記５’末端は、平滑末端を形成し、前記第２の鎖は、その３’末端で第１の鎖より１～４ヌクレオチド長く、二重鎖領域は、少なくとも２５ヌクレオチド長であり、前記第２の鎖は、前記ｉＲＮＡ剤が哺乳動物細胞中に導入されたときに標的遺伝子発現を低下させるように、前記第２の鎖長の少なくとも１９ｎｔに沿って標的ｍＲＮＡに十分に相補的であり、前記ｉＲＮＡのダイサー切断（ｄｉｃｅｒ ｃｌｅａｖａｇｅ）が、前記第２の鎖の前記３’末端を含むｓｉＲＮＡを優先的にもたらし、それによって、哺乳動物における標的遺伝子の発現を低下させる。任意選択で、ｉＲＮＡ剤は、リガンド（例えば、ＧａｌＮＡｃ３）をさらに含む。
一実施形態では、ｉＲＮＡ剤のセンス鎖は、３連続ヌクレオチドにおける３つの同一の修飾の少なくとも１つのモチーフを含み、ここで、モチーフの１つは、センス鎖の切断部位に存在する。例えば、センス鎖は、５’末端から７～１５位以内の３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｆ修飾の少なくとも１つのモチーフを含み得る。
一実施形態では、ｉＲＮＡ剤のアンチセンス鎖も、３連続ヌクレオチドにおける３つの同一の修飾の少なくとも１つのモチーフを含むことができ、ここで、モチーフの１つは、アンチセンス鎖の切断部位又はその近傍に存在する。例えば、アンチセンス鎖は、５’末端から９～１５位以内の３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｏ－メチル修飾の少なくとも１つのモチーフを含み得る。
１７～２３ｎｔ長の二重鎖領域を有するｉＲＮＡ剤については、アンチセンス鎖の切断部位は、典型的に、５’末端から１０、１１及び１２位の付近である。したがって、３つの同一の修飾のモチーフは、アンチセンス鎖の５’末端から１つ目のヌクレオチドから数え始めて、又は、アンチセンス鎖の５’末端から、二重鎖領域内の１つ目の対合ヌクレオチドから数え始めて、アンチセンス鎖の９、１０、１１位；１０、１１、１２位；１１、１２、１３位；１２、１３、１４位；又は１３、１４、１５位に存在し得る。アンチセンス鎖中の切断部位はまた、５’末端からｉＲＮＡの二重鎖領域の長さに応じて変化し得る。
一部の実施形態では、ｉＲＮＡ剤は、１４～３０のヌクレオチドをそれぞれが有するセンス鎖及びアンチセンス鎖を含み、ここで、センス鎖は、３連続ヌクレオチドにおける３つの同一の修飾の少なくとも２つのモチーフを含み、ここで、モチーフの少なくとも１つは、鎖内の切断部位又はその近傍に存在し、モチーフの少なくとも１つは、少なくとも１つのヌクレオチドによって切断部位におけるモチーフから隔てられた鎖の別の部分に存在する。一実施形態では、アンチセンス鎖も、３連続ヌクレオチドにおける３つの同一の修飾の少なくとも１つのモチーフを含むことができ、ここで、モチーフの少なくとも１つは、鎖内の切断部位又はその近傍に存在する。センス鎖中の切断部位又はその近傍に存在するモチーフにおける修飾は、アンチセンス鎖中の切断部位又はその近傍に存在するモチーフにおける修飾と異なる。
一部の実施形態では、ｉＲＮＡ剤は、１４～３０ヌクレオチドをそれぞれが有するセンス鎖及びアンチセンス鎖を含み、ここで、センス鎖は、３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｆ修飾の少なくとも１つのモチーフを含み、ここで、モチーフの少なくとも１つは、鎖の切断部位又はその近傍に存在する。一実施形態では、アンチセンス鎖も、切断部位又はその近傍に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｏ－メチル修飾の少なくとも１つのモチーフを含む。
一部の実施形態では、ｉＲＮＡ剤は、１４～３０ヌクレオチドをそれぞれが有するセンス鎖及びアンチセンス鎖を含み、ここで、センス鎖は、５’末端から９、１０、１１位に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｆ修飾の少なくとも１つのモチーフを含み、アンチセンス鎖は、５’末端から１１、１２、１３位に３連続ヌクレオチドにおける３つの２’－Ｏ－メチル修飾の少なくとも１つのモチーフを含む。
一実施形態では、ｉＲＮＡ剤は、標的とのミスマッチ、二重鎖内のミスマッチ、又はそれらの組み合わせを含む。ミスマッチは、オーバーハング領域又は二重鎖領域に生じ得る。塩基対は、解離又は融解（例えば、特定の対合の結合又は解離の自由エネルギーに対するものであり、最も簡単な手法は、個々の対ごとに対を調べることであるが、類似の又は同様の分析も使用され得る）を促進するそれらの傾向に基づいて評価され得る。解離の促進に関して：Ａ：Ｕが、Ｇ：Ｃより好ましく；Ｇ：Ｕが、Ｇ：Ｃより好ましく；Ｉ：Ｃが、Ｇ：Ｃより好ましい（Ｉ＝イノシン）。ミスマッチ、例えば、非正準又は正準以外の対合（本明細書の他の箇所に記載される）が、正準な（Ａ：Ｔ、Ａ：Ｕ、Ｇ：Ｃ）対合より好ましく；ユニバーサル塩基を含む対合が、正準な対合より好ましい。
一実施形態では、ｉＲＮＡ剤は、Ａ：Ｕ、Ｇ：Ｕ、Ｉ：Ｃの群から独立に選択され得るアンチセンス鎖の５’末端から二重鎖領域内の最初の１、２、３、４、又は５つの塩基対のうちの少なくとも１つ、及び二重鎖の５’末端におけるアンチセンス鎖の解離を促進するためのミスマッチ対、例えば、非正準又は正準以外の対合又はユニバーサル塩基を含む対合を含む。
一実施形態では、アンチセンス鎖の５’末端から二重鎖領域内の１位におけるヌクレオチドは、Ａ、ｄＡ、ｄＵ、Ｕ、及びｄＴからなる群から選択される。或いは、アンチセンス鎖の５’末端から二重鎖領域内の最初の１、２又は３つの塩基対のうちの少なくとも１つは、ＡＵ塩基対である。例えば、アンチセンス鎖の５’末端から二重鎖領域内の最初の塩基対は、ＡＵ塩基対である。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤の１００％、９５％、９０％、８５％、８０％、７５％、７０％、６５％、６０％、５５％、５０％、４５％、４０％、３５％又は３０％が修飾される。例えば、ｄｓＲＮＡ剤の５０％が修飾される場合、ｄｓＲＮＡ剤中に存在する全てのヌクレオチドの５０％が、本明細書に記載される修飾を含む。
一実施形態では、センス鎖及びアンチセンス鎖は、それぞれ独立に、非環状ヌクレオチド、ＬＮＡ、ＨＮＡ、ＣｅＮＡ、２’－メトキシエチル、２’Ｏ－メチル、２’－Ｏ－アリル、２’－Ｃ－アリル、２’－デオキシ、２’－フルオロ、２’－Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド（２’－Ｏ－ＮＭＡ）、２’－Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル（２’－Ｏ－ＤＭＡＥＯＥ）、２’－Ｏ－アミノプロピル（２’－Ｏ－ＡＰ）、又は２’－ａｒａ－Ｆで修飾されている。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤のセンス鎖及びアンチセンス鎖のそれぞれは、少なくとも２つの異なる修飾を含む。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤は、２’－Ｆ修飾を含まない。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤のセンス鎖及び／又はアンチセンス鎖は、ホスホロチオエート又はメチルホスホネートヌクレオチド間結合の１つ以上のブロックを含む。一例では、センス鎖は、２つのホスホロチオエート又はメチルホスホネートヌクレオチド間結合の１つのブロックを含む。一例では、アンチセンス鎖は、２つのホスホロチオエート又はメチルホスホネートヌクレオチド間結合の２つのブロックを含む。例えば、ホスホロチオエート又はメチルホスホネートヌクレオチド間結合の２つのブロックは、１６～１８のリン酸ヌクレオチド間結合によって分離されている。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤のセンス鎖及びアンチセンス鎖のそれぞれは、１５～３０のヌクレオチドを有する。一例では、センス鎖は、１９～２２のヌクレオチドを有し、アンチセンス鎖は、１９～２５のヌクレオチドを有する。別の例では、センス鎖は、２１のヌクレオチドを有し、アンチセンス鎖は、２３のヌクレオチドを有する。
一実施形態では、二重鎖におけるアンチセンス鎖の５’末端の１位のヌクレオチドは、Ａ、ｄＡ、ｄＵ、Ｕ、及びｄＴからなる群から選択される。一実施形態では、アンチセンス鎖の５’末端からの第１、第２、及び第３の塩基対の少なくとも１つが、ＡＵ塩基対である。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤のアンチセンス鎖は、標的ＲＮＡにハイブリダイズしてその発現をＲＮＡ干渉によって阻害するための標的ＲＮＡに対して１００％相補的である。別の実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤のアンチセンス鎖は、標的ＲＮＡに対して少なくとも９５％、少なくとも９０％、少なくとも８５％、少なくとも８０％、少なくとも７５％、少なくとも７０％、少なくとも６５％、少なくとも６０％、少なくとも５５％、又は少なくとも５０％相補的である。
一態様では、本発明は、標的遺伝子の発現を阻害することができる、本明細書で定義されるｄｓＲＮＡ剤に関する。ｄｓＲＮＡ剤は、センス鎖及びアンチセンス鎖を含み、各鎖は、１４～４０のヌクレオチドを有する。センス鎖は、少なくとも１つの熱不安定化ヌクレオチドを含み、前記熱不安定化ヌクレオチドの少なくとも１つは、アンチセンス鎖のｓｅｅｄ領域（即ち、アンチセンス鎖の５’末端の２位～８位）の反対側の部位又はその近傍に存在する。
熱不安定化ヌクレオチドは、例えば、センス鎖が２１ヌクレオチド長である場合は、センス鎖の５’末端の１４位～１７位の間に存在し得る。アンチセンス鎖は、立体的要求が高い２’－ＯＭｅ修飾よりも小さい少なくとも２つの修飾核酸を含む。好ましくは、立体的要求が高い２’－ＯＭｅよりも小さい２つの修飾核酸は、１１ヌクレオチド長離間している。例えば、２つの修飾核酸は、アンチセンス鎖の５’末端の２位及び１４位にある。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤は、
（ａ）センス鎖であって：
（ｉ）１８～２３ヌクレオチド長；
（ｉｉ）７～１５位における３つの連続した２’－Ｆ修飾を有する、センス鎖；並びに
（ｂ）アンチセンス鎖であって：
（ｉ）１８～２３ヌクレオチド長；
（ｉｉ）鎖のいずれかの箇所に少なくとも２’－Ｆ修飾；及び
（ｉｉｉ）最初の５つのヌクレオチド（５’末端から数えて）における少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を有する、アンチセンス鎖を含み；
このｄｓＲＮＡ剤は、少なくとも１つの鎖における１つ以上の位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを有し；アンチセンス鎖の３’末端における２つのヌクレオチドオーバーハング、及びアンチセンス鎖の５’末端における平滑末端；又は二重鎖の両端における平滑末端のいずれかを有する。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤は、
（ａ）センス鎖であって：
（ｉ）１８～２３ヌクレオチド長；
（ｉｉ）４つ未満の２’－Ｆ修飾を有する、センス鎖；
（ｂ）アンチセンス鎖であって：
（ｉ）１８～２３ヌクレオチド長；
（ｉｉ）１２未満の２’－Ｆ修飾；及び
（ｉｉｉ）最初の５つのヌクレオチド（５’末端から数えて）における少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を有する、アンチセンス鎖を含み；
このｄｓＲＮＡ剤は、少なくとも１つの鎖における１つ以上の位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを有し；アンチセンス鎖の３’末端における２つのヌクレオチドオーバーハング、及びアンチセンス鎖の５’末端における平滑末端；又は二重鎖の両端における平滑末端のいずれかを有する。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤は、
（ａ）センス鎖であって：
（ｉ）１９～３５ヌクレオチド長；
（ｉｉ）４つ未満の２’－Ｆ修飾を有する、センス鎖；
（ｂ）アンチセンス鎖であって：
（ｉ）１９～３５ヌクレオチド長；
（ｉｉ）１２未満の２’－Ｆ修飾；及び
（ｉｉｉ）最初の５つのヌクレオチド（５’末端から数えて）における少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を有する、アンチセンス鎖を含み；
ここで、二重鎖領域は、１９～２５の塩基対（好ましくは、１９、２０、２１又は２２）であり；このｄｓＲＮＡ剤は、少なくとも１つの鎖における１つ以上の位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを有し；アンチセンス鎖の３’末端における２つのヌクレオチドオーバーハング、及びアンチセンス鎖の５’末端における平滑末端；又は二重鎖の両端における平滑末端のいずれかを有する。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤は、１５～３０ヌクレオチドの長さを有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；（５’末端から数えて）アンチセンス鎖上の最初の５つのヌクレオチドにおける少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含み；ここで、二重鎖領域は、１９～２５の塩基対（好ましくは、１９、２０、２１又は２２）であり；このｄｓＲＮＡ剤は、少なくとも１つの鎖における１つ以上の位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを有し；このｄｓＲＮＡ剤は、２０％未満、１５％未満及び１０％未満の非天然ヌクレオチドを有する。
非天然ヌクレオチドの例としては、非環状ヌクレオチド、ＬＮＡ、ＨＮＡ、ＣｅＮＡ、２’－メトキシエチル、、２’－Ｏ－アリル、２’－Ｃ－アリル、２’－デオキシ、２’－フルオロ、２’－Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド（２’－Ｏ－ＮＭＡ）、２’－Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル（２’－Ｏ－ＤＭＡＥＯＥ）、２’－Ｏ－アミノプロピル（２’－Ｏ－ＡＰ）、又は２’－ａｒａ－Ｆ、及びその他が挙げられる。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤は、１５～３０ヌクレオチドの長さを有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；（５’末端から数えて）アンチセンス鎖上の最初の５つのヌクレオチドにおける少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含み；ここで、二重鎖領域は、１９～２５の塩基対（好ましくは、１９、２０、２１又は２２）であり；このｄｓＲＮＡ剤は、少なくとも１つの鎖における１つ以上の位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを有し；このｄｓＲＮＡ剤は、８０％超、８５％超及び９０％超の天然ヌクレオチドを有し、例えば、２’－ＯＨ、２’－デオキシ及び２’－ＯＭｅが、天然ヌクレオチドである。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤は、１５～３０ヌクレオチドの長さを有するセンス鎖及びアンチセンス鎖；（５’末端から数えて）アンチセンス鎖上の最初の５つのヌクレオチドにおける少なくとも２つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合を含み；ここで、二重鎖領域は、１９～２５の塩基対（好ましくは、１９、２０、２１又は２２）であり；このｄｓＲＮＡ剤は、少なくとも１つの鎖における１つ以上の位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを有し；このｄｓＲＮＡ剤は、１００％の天然ヌクレオチドを有し、例えば、２’－ＯＨ、２’－デオキシ及び２’－ＯＭｅが、天然ヌクレオチドである。
一実施形態では、ｄｓＲＮＡ剤は、１４～３０ヌクレオチドをそれぞれが有するセンス鎖及びアンチセンス鎖を含み、ここで、センス鎖配列は、式（Ｉ）によって表される：
５’ｎｐ－Ｎａ－（ＸＸＸ）ｉ－Ｎｂ－ＹＹＹ－Ｎｂ－（ＺＺＺ）ｊ－Ｎａ－ｎｑ３’ （Ｉ）
式中：
ｉ及びｊは、それぞれ独立に、０又は１であり；
ｐ及びｑは、それぞれ独立に、０～６であり；
各Ｎａは、独立に、０～２５の修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表し、各配列は、少なくとも２つの異なる修飾のヌクレオチドを含み；
各Ｎｂは、独立に、１、２、３、４、５、又は６つの修飾ヌクレオチドを含むオリゴヌクレオチド配列を表し；
各ｎｐ及びｎｑは、独立に、オーバーハングヌクレオチドを表し；
Ｎｂ及びＹは、同じ修飾を有さず；
ＸＸＸ、ＹＹＹ及びＺＺＺは、それぞれ独立に、３連続ヌクレオチドにおける３つの同一の修飾の１つのモチーフを表し；
このｄｓＲＮＡ剤は、少なくとも１つの鎖における１つ以上の位置にコンジュゲートされた１つ以上の親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを有し；
ｄｓＲＮＡのアンチセンス鎖は、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、又は１８つのリン酸塩ヌクレオチド間結合によって隔てられる１つ、２つ又は３つのホスホロチオエートヌクレオチド間結合の２つのブロックを含む。
様々な刊行物に、多量体ｓｉＲＮＡが記載されており、これらは全て本発明のｉＲＮＡと共に使用され得る。このような刊行物としては、参照により全内容が本明細書に組み入れられる、国際公開第２００７／０９１２６９号パンフレット、米国特許第７８５８７６９号明細書、国際公開第２０１０／１４１５１１号パンフレット、国際公開第２００７／１１７６８６号パンフレット、国際公開第２００９／０１４８８７号パンフレット及び国際公開第２０１１／０３１５２０号パンフレットが挙げられる。
一部の実施形態では、本発明のｉＲＮＡ剤の１００％、９５％、９０％、８５％、８０％、７５％、７０％、６５％、６０％、５５％、５０％、４５％、４０％、３５％又は３０％が、２’－ＯＭｅで修飾される。
一部の実施形態では、ｉＲＮＡ剤のセンス鎖及びアンチセンス鎖のそれぞれは、独立に、非環状ヌクレオチド、ＬＮＡ、ＨＮＡ、ＣｅＮＡ、２’－メトキシエチル、２’－Ｏ－メチル、２’－Ｏ－アリル、２’－Ｃ－アリル、２’－デオキシ、２’－フルオロ、２’－Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド（２’－Ｏ－ＮＭＡ）、２’－Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル（２’－Ｏ－ＤＭＡＥＯＥ）、２’－Ｏ－アミノプロピル（２’－Ｏ－ＡＰ）、又は２’－ａｒａ－Ｆで修飾される。
一部の実施形態では、ｉＲＮＡ剤のセンス鎖及びアンチセンス鎖のそれぞれは、少なくとも２つの異なる修飾を含む。
一部の実施形態では、本発明の化合物は、任意の２’－Ｆを含まない。
一部の実施形態では、本発明の化合物は、１つ、２つ、３つ、４つ、５つ、６つ、７つ、８つ、９つ、１０、１１又は１２の２’－Ｆ修飾を含む。一例では、本発明の化合物は、９つ又は１０の２’－Ｆ修飾を含む。
本発明のｉＲＮＡ剤は、少なくとも１つのホスホロチオエート又はメチルホスホネートヌクレオチド間結合をさらに含み得る。ホスホロチオエート又はメチルホスホネートヌクレオチド間結合修飾は、鎖のいずれかの位置のセンス鎖又はアンチセンス鎖又は両方の任意のヌクレオチドに存在し得る。例えば、ヌクレオチド間結合修飾は、センス鎖又はアンチセンス鎖における全てのヌクレオチドに存在してもよく；各ヌクレオチド間結合修飾は、センス鎖又はアンチセンス鎖において交互のパターンで存在してもよく；又はセンス鎖又はアンチセンス鎖は、交互のパターンで両方のヌクレオチド間結合修飾を含み得る。センス鎖におけるヌクレオチド間結合の修飾の交互パターンは、アンチセンス鎖と同じでも異なっても良く、センス鎖におけるヌクレオチド間結合の修飾の交互パターンは、アンチセンス鎖におけるヌクレオチド間結合の修飾の交互パターンに対してシフトを有しても良い。
一実施形態では、ｉＲＮＡ剤は、オーバーハング領域にホスホロチオエート又はメチルホスホネートのヌクレオチド間結合の修飾を含む。例えば、オーバーハング領域は、２つのヌクレオチド間にホスホロチオエート又はメチルホスホネートのヌクレオチド間結合を有する２つのヌクレオチドを含有し得る。ヌクレオチド間結合の修飾は、オーバーハングヌクレオチドを二重鎖領域内の末端の塩基対形成ヌクレオチドに結合させるために形成することもできる。例えば、少なくとも２つ、３つ、４つ、又は全てのオーバーハングヌクレオチドを、ホスホロチオエート又はメチルホスホネートのヌクレオチド間結合によって結合することができ、任意選択で、オーバーハングヌクレオチドをその次の塩基対形成ヌクレオチドに結合する追加的なホスホロチオエート又はメチルホスホネートのヌクレオチド間結合が存在しても良い。例えば、末端の３つのヌクレオチド間に少なくとも２つのホスホチオエートのヌクレオチド間結合が存在しても良く、この末端の３つのヌクレオチドのうちの２つは、オーバーハングヌクレオチドであり、第３のヌクレオチドは、オーバーハングヌクレオチドの次の塩基対形成ヌクレオチドである。好ましくは、これらの末端の３つのヌクレオチドは、アンチセンス鎖の３’末端に存在し得る。
一部の実施形態では、ｉＲＮＡ剤のセンス鎖及び／又はアンチセンス鎖は、ホスホロチオエート又はメチルホスホネートヌクレオチド間結合の１つ以上のブロックを含む。一例では、センス鎖は、２つのホスホロチオエート又はメチルホスホネートヌクレオチド間結合の１つのブロックを含む。一例では、アンチセンス鎖は、２つのホスホロチオエート又はメチルホスホネートヌクレオチド間結合の２つのブロックを含む。例えば、ホスホロチオエート又はメチルホスホネートヌクレオチド間結合の２つのブロックは、１６～１８のリン酸塩ヌクレオチド間結合によって隔てられる。
一部の実施形態では、ｉＲＮＡ剤のアンチセンス鎖は、標的ＲＮＡにハイブリダイズするために及びＲＮＡ干渉によってその発現を阻害するために標的ＲＮＡに対して１００％相補的である。別の実施形態では、ｉＲＮＡ剤のアンチセンス鎖は、標的ＲＮＡに対して少なくとも９５％、少なくとも９０％、少なくとも８５％、少なくとも８０％、少なくとも７５％、少なくとも７０％、少なくとも６５％、少なくとも６０％、少なくとも５５％、又は少なくとも５０％相補的である。
核酸修飾
一部の実施形態では、化合物は、本明細書に記載される少なくとも１つの核酸修飾を含む。例えば、少なくとも１つの修飾は、修飾ヌクレオシド間結合、修飾核酸塩基、修飾糖、及びそれらの任意の組み合わせからなる群から選択される。限定されるものではないが、このような修飾は、化合物のいずれかの箇所に存在し得る。例えば、修飾は、ＲＮＡ分子の１つに存在し得る。
核酸修飾（核酸塩基）
ヌクレオシドの天然に存在する塩基部分は、典型的に、複素環式塩基である。このような複素環式塩基の２つの最も一般的な種類は、プリン及びピリミジンである。ペントフラノシル糖を含むヌクレオシドの場合、リン酸基は、糖の２’、３’又は５’ヒドロキシル部分に連結され得る。オリゴヌクレオチドを形成する際、それらのリン酸基は、隣接するヌクレオシドを互いに共有結合させて、直鎖ポリマー化合物を形成する。オリゴヌクレオチド内で、リン酸基は、一般的に、オリゴヌクレオチドのヌクレオシド間骨格を形成するものとされる。ＲＮＡ及びＤＮＡの天然に存在する結合又は骨格は、３’－５’ホスホジエステル結合である。
プリン核酸塩基アデニン（Ａ）及びグアニン（Ｇ）、及びピリミジン核酸塩基チミン（Ｔ）、シトシン（Ｃ）及びウラシル（Ｕ）などの「非修飾」又は「天然」核酸塩基に加えて、当業者に公知の多くの修飾核酸塩基又は核酸塩基模倣体が、本明細書に記載される化合物で使用可能である。非修飾又は天然核酸塩基は、改良された特性を有するｉＲＮＡを提供するために、修飾又は置換され得る。例えば、ヌクレアーゼ耐性オリゴヌクレオチドは、これらの塩基又は合成及び天然核酸塩基（例えば、イノシン、キサンチン、ヒポキサンチン、ヌブラリン、イソグアニシン、又はツベルシジン）並びに本明細書に記載されるオリゴマー修飾のいずれか１つを用いて調製され得る。或いは、上記の塩基及び「ユニバーサル塩基」のいずれかの置換又は修飾類似体が用いられ得る。天然塩基が、非天然及び／又はユニバーサル塩基で置換される場合、ヌクレオチドは、本明細書において、修飾核酸塩基及び／又は核酸塩基修飾を含むといわれる。修飾核酸塩基及び／又は核酸塩基修飾は、コンジュゲート部分、例えば、本明細書に記載されるリガンドを含む、天然、非天然及びユニバーサル塩基も含む。核酸塩基とのコンジュゲーションのために好ましいコンジュゲート部分は、カチオン性アミノ基を含み、これらは、適切なアルキル、アルケニル又はアミド結合を有するリンカーを介して、核酸塩基にコンジュゲートされ得る。
本明細書に記載されるオリゴマー化合物は、核酸塩基（当分野において単に「塩基」と呼ばれることが多い）修飾又は置換も含み得る。本明細書で使用される「非修飾」又は「天然」核酸塩基は、プリン塩基アデニン（Ａ）及びグアニン（Ｇ）、及びピリミジン塩基チミン（Ｔ）、シトシン（Ｃ）及びウラシル（Ｕ）を含む。例示的な修飾核酸塩基としては、限定されるものではないが、他の合成及び天然核酸塩基、例えば、イノシン、キサンチン、ヒポキサンチン、ヌブラリン、イソグアニシン、ツベルシジン、２－（ハロ）アデニン、２－（アルキル）アデニン、２－（プロピル）アデニン、２－（アミノ）アデニン、２－（アミノアルキル）アデニン、２－（アミノプロピル）アデニン、２－（メチルチオ）－Ｎ６－（イソペンテニル）アデニン、６－（アルキル）アデニン、６－（メチル）アデニン、７－（デアザ）アデニン、８－（アルケニル）アデニン、８－（アルキル）アデニン、８－（アルキニル）アデニン、８－（アミノ）アデニン、８－（ハロ）アデニン、８－（ヒドロキシル）アデニン、８－（チオアルキル）アデニン、８－（チオール）アデニン、Ｎ６－（イソペンチル）アデニン、Ｎ６－（メチル）アデニン、Ｎ６、Ｎ６－（ジメチル）アデニン、２－（アルキル）グアニン、２－（プロピル）グアニン、６－（アルキル）グアニン、６－（メチル）グアニン、７－（アルキル）グアニン、７－（メチル）グアニン、７－（デアザ）グアニン、８－（アルキル）グアニン、８－（アルケニル）グアニン、８－（アルキニル）グアニン、８－（アミノ）グアニン、８－（ハロ）グアニン、８－（ヒドロキシル）グアニン、８－（チオアルキル）グアニン、８－（チオール）グアニン、Ｎ－（メチル）グアニン、２－（チオ）シトシン、３－（デアザ）－５－（アザ）シトシン、３－（アルキル）シトシン、３－（メチル）シトシン、５－（アルキル）シトシン、５－（アルキニル）シトシン、５－（ハロ）シトシン、５－（メチル）シトシン、５－（プロピニル）シトシン、５－（プロピニル）シトシン、５－（トリフルオロメチル）シトシン、６－（アゾ）シトシン、Ｎ４－（アセチル）シトシン、３－（３－アミノ－３－カルボキシプロピル）ウラシル、２－（チオ）ウラシル、５－（メチル）－２－（チオ）ウラシル、５－（メチルアミノメチル）－２－（チオ）ウラシル、４－（チオ）ウラシル、５－（メチル）－４－（チオ）ウラシル、５－（メチルアミノメチル）－４－（チオ）ウラシル、５－（メチル）－２，４－（ジチオ）ウラシル、５－（メチルアミノメチル）－２，４－（ジチオ）ウラシル、５－（２－アミノプロピル）ウラシル、５－（アルキル）ウラシル、５－（アルキニル）ウラシル、５－（アリルアミノ）ウラシル、５－（アミノアリル）ウラシル、５－（アミノアルキル）ウラシル、５－（グアニジニウムアルキル）ウラシル、５－（１，３－ジアゾール－１－アルキル）ウラシル、５－（シアノアルキル）ウラシル、５－（ジアルキルアミノアルキル）ウラシル、５－（ジメチルアミノアルキル）ウラシル、５－（ハロ）ウラシル、５－（メトキシ）ウラシル、ウラシル－５－オキシ酢酸、５－（メトキシカルボニルメチル）－２－（チオ）ウラシル、５－（メトキシカルボニル－メチル）ウラシル、５－（プロピニル）ウラシル、５－（プロピニル）ウラシル、５－（トリフルオロメチル）ウラシル、６－（アゾ）ウラシル、ジヒドロウラシル、Ｎ３－（メチル）ウラシル、５－ウラシル（即ち、プソイドウラシル）、２－（チオ）プソイドウラシル，４－（チオ）プソイドウラシル、２，４－（ジチオ）プソイドウラシル，５－（アルキル）プソイドウラシル、５－（メチル）プソイドウラシル、５－（アルキル）－２－（チオ）プソイドウラシル、５－（メチル）－２－（チオ）プソイドウラシル、５－（アルキル）－４－（チオ）プソイドウラシル、５－（メチル）－４－（チオ）プソイドウラシル、５－（アルキル）－２，４－（ジチオ）プソイドウラシル、５－（メチル）－２，４－（ジチオ）プソイドウラシル、１－置換プソイドウラシル、１－置換２（チオ）－プソイドウラシル、１－置換４－（チオ）プソイドウラシル、１－置換２，４－（ジチオ）プソイドウラシル、１－（アミノカルボニルエチレニル）－プソイドウラシル、１－（アミノカルボニルエチレニル）－２（チオ）－プソイドウラシル、１－（アミノカルボニルエチレニル）－４－（チオ）プソイドウラシル、１－（アミノカルボニルエチレニル）－２，４－（ジチオ）プソイドウラシル、１－（アミノアルキルアミノカルボニルエチレニル）－プソイドウラシル、１－（アミノアルキルアミノカルボニルエチレニル）－２（チオ）－プソイドウラシル、１－（アミノアルキルアミノカルボニルエチレニル）－４－（チオ）プソイドウラシル、１－（アミノアルキルアミノカルボニルエチレニル）－２，４－（ジチオ）プソイドウラシル、１，３－（ジアザ）－２－（オキソ）－フェノキサジン－１－イル、１－（アザ）－２－（チオ）－３－（アザ）－フェノキサジン－１－イル、１，３－（ジアザ）－２－（オキソ）－フェンチアジン－１－イル、１－（アザ）－２－（チオ）－３－（アザ）－フェンチアジン－１－イル、７－置換１，３－（ジアザ）－２－（オキソ）－フェノキサジン－１－イル、７－置換１－（アザ）－２－（チオ）－３－（アザ）－フェノキサジン－１－イル、７－置換１，３－（ジアザ）－２－（オキソ）－フェンチアジン－１－イル、７－置換１－（アザ）－２－（チオ）－３－（アザ）－フェンチアジン－１－イル、７－（アミノアルキルヒドロキシ）－１，３－（ジアザ）－２－（オキソ）－フェノキサジン－１－イル、７－（アミノアルキルヒドロキシ）－１－（アザ）－２－（チオ）－３－（アザ）－フェノキサジン－１－イル、７－（アミノアルキルヒドロキシ）－１，３－（ジアザ）－２－（オキソ）－フェンチアジン－１－イル、７－（アミノアルキルヒドロキシ）－１－（アザ）－２－（チオ）－３－（アザ）－フェンチアジン－１－イル、７－（グアニジニウムアルキルヒドロキシ）－１，３－（ジアザ）－２－（オキソ）－フェノキサジン－１－イル、７－（グアニジニウムアルキルヒドロキシ）－１－（アザ）－２－（チオ）－３－（アザ）－フェノキサジン－１－イル、７－（グアニジニウムアルキル－ヒドロキシ）－１，３－（ジアザ）－２－（オキソ）－フェンチアジン－１－イル、７－（グアニジニウムアルキルヒドロキシ）－１－（アザ）－２－（チオ）－３－（アザ）－フェンチアジン－１－イル、１，３，５－（トリアザ）－２，６－（ジオキサ）－ナフタレン、イノシン、キサンチン、ヒポキサンチン、ヌブラリン、ツベルシジン、イソグアニシン、イノシニル、２－アザ－イノシニル、７－デアザ－イノシニル、ニトロイミダゾリル、ニトロピラゾリル、ニトロベンズイミダゾリル、ニトロインダゾリル、アミノインドリル、ピロロピリミジニル、３－（メチル）イソカルボスチリリル、５－（メチル）イソカルボスチリリル、３－（メチル）－７－（プロピニル）イソカルボスチリリル、７－（アザ）インドリル、６－（メチル）－７－（アザ）インドリル、イミジゾピリジニル、９－（メチル）－イミジゾピリジニル、ピロロピリジニル、イソカルボスチリリル、７－（プロピニル）イソカルボスチリリル、プロピニル－７－（アザ）インドリル、２，４，５－（トリメチル）フェニル、４－（メチル）インドリル、４，６－（ジメチル）インドリル、フェニル、ナフタレニル、アントラセニル、フェナントラセニル、ピレニル、スチベニル、テトラセニル、ペンタセニル、ジフルオロトリル、４－（フルオロ）－６－（メチル）ベンズイミダゾール、４－（メチル）ベンズイミダゾール、６－（アゾ）チミン、２－ピリジノン、５－ニトロインドール、３－ニトロピロール、６－（アザ）ピリミジン、２－（アミノ）プリン、２，６－（ジアミノ）プリン、５－置換ピリミジン、Ｎ２－置換プリン、Ｎ６－置換プリン、Ｏ６－置換プリン、置換１，２，４－トリアゾール、ピロロ－ピリミジン－２－ｏｎ－３－イル、６－フェニル－ピロロ－ピリミジン－２－ｏｎ－３－イル、パラ－置換－６－フェニル－ピロロ－ピリミジン－２－ｏｎ－３－イル、オルト－置換－６－フェニル－ピロロ－ピリミジン－２－ｏｎ－３－イル、ビス－オルト－置換－６－フェニル－ピロロ－ピリミジン－２－ｏｎ－３－イル、パラ－（アミノアルキルヒドロキシ）－６－フェニル－ピロロ－ピリミジン－２－ｏｎ－３－イル、オルト－（アミノアルキルヒドロキシ）－６－フェニル－ピロロ－ピリミジン－２－ｏｎ－３－イル、ビス－オルト－－（アミノアルキルヒドロキシ）－６－フェニル－ピロロ－ピリミジン－２－ｏｎ－３－イル、ピリドピリミジン－３－イル、２－オキソ－７－アミノ－ピリドピリミジン－３－イル、２－オキソ－ピリドピリミジン－３－イル、又はそれらの任意のＯ－アルキル化若しくはＮ－アルキル化誘導体が挙げられる。或いは、上記の塩基及び「ユニバーサル塩基」のいずれかの置換又は修飾類似体が用いられ得る。
本明細書で使用されるユニバーサル核酸塩基は、融解挙動、細胞内酵素による認識又はｉＲＮＡ二重鎖の活性に実質的に影響を与えずに、４つの天然に存在する核酸塩基の全てと塩基対合し得る任意の核酸塩基である。一部の例示的なユニバーサル核酸塩基としては、限定されるものではないが、２，４－ジフルオロトルエン、ニトロピロリル、ニトロインドリル、８－アザ－７－デアザアデニン、４－フルオロ－６－メチルベンズイミダゾール、４－メチルベンズイミダゾール、３－メチルイソカルボスチリリル、５－メチルイソカルボスチリリル、３－メチル－７－プロピニルイソカルボスチリリル、７－アザインドリル、６－メチル－７－アザインドリル、イミジゾピリジニル、９－メチル－イミジゾピリジニル、ピロロピリジニル、イソカルボスチリリル、７－プロピニルイソカルボスチリリル、プロピニル－７－アザインドリル、２，４，５－トリメチルフェニル、４－メチリノリル、４，６－ジメチルインドリル、フェニル、ナフタレニル、アントラセニル、フェナントラセニル、ピレニル、スチベニル、テトラセニル、ペンタセニル、及びそれらの構造的誘導体が挙げられる（例えば、Ｌｏａｋｅｓ，２００１，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２９，２４３７－２４４７を参照されたい）。
さらなる核酸塩基としては、米国特許第３，６８７，８０８号明細書に開示されるもの；２００９年３月２６日出願の国際出願番号ＰＣＴ／ＵＳ０９／０３８４２５号明細書に開示されるもの；ｔｈｅ Ｃｏｎｃｉｓｅ Ｅｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａ Ｏｆ Ｐｏｌｙｍｅｒ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ａｎｄ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，ｐａｇｅｓ ８５８－８５９，Ｋｒｏｓｃｈｗｉｔｚ，Ｊ．Ｉ．，ｅｄ．Ｊｏｈｎ Ｗｉｌｅｙ ＆ Ｓｏｎｓ，１９９０に開示されるもの；Ｅｎｇｌｉｓｈ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｇｅｗａｎｄｔｅ Ｃｈｅｍｉｅ，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ Ｅｄｉｔｉｏｎ，１９９１，３０，６１３によって開示されるもの；Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅｓ ｉｎ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｈｅｒｄｅｗｉｊｉｎ，Ｐ．Ｅｄ．Ｗｉｌｅｙ－ＶＣＨ，２００８に開示されるもの；及びＳａｎｇｈｖｉ，Ｙ．Ｓ．，Ｃｈａｐｔｅｒ １５，ｄｓＲＮＡ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，ｐａｇｅｓ ２８９－３０２，Ｃｒｏｏｋｅ，Ｓ．Ｔ．ａｎｄ Ｌｅｂｌｅｕ，Ｂ．，Ｅｄｓ．，ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ，１９９３によって開示されるものが挙げられる。上記の内容は全て、参照により本明細書に組み入れられる。
特定の実施形態では、修飾核酸塩基は、例えば、７－デアザプリン、５－メチルシトシン、又はＧ－クランプなどの親核酸塩基と構造がかなり類似する核酸塩基である。特定の実施形態では、核酸塩基模倣体は、例えば三環式フェノキサジン核酸塩基模倣体などのように、より複雑な構造を含む。上記の修飾核酸塩基の調製方法は、当業者に周知である。
核酸修飾（糖）
本明細書において提供される本発明の化合物は、修飾糖部分を有する、ヌクレオシド又はヌクレオチドを含む、１つ以上（例えば、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５又はそれ以上）のモノマーを含み得る。例えば、ヌクレオシドのフラノシル糖環は、限定されるものではないが、置換基の付加、２つの非ジェミナル環原子の架橋によるロックド核酸又は二環式核酸の形成を含むいくつかの方法で修飾され得る。特定の実施形態では、オリゴマー化合物は、ＬＮＡである１つ以上（例えば、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５又はそれ以上の）モノマーを含む。
ロックド核酸の一部の実施形態では、フラノシルの２’位は、－［Ｃ（Ｒ１）（Ｒ２）］ｎ－、－［Ｃ（Ｒ１）（Ｒ２）］ｎ－Ｏ－、－［Ｃ（Ｒ１）（Ｒ２）］ｎ－Ｎ（Ｒ１）－、－［Ｃ（Ｒ１）（Ｒ２）］ｎ－Ｎ（Ｒ１）－Ｏ－、－［Ｃ（Ｒ１Ｒ２）］ｎ－Ｏ－Ｎ（Ｒ１）－、－Ｃ（Ｒ１）＝Ｃ（Ｒ２）－Ｏ－、－Ｃ（Ｒ１）＝Ｎ－、－Ｃ（Ｒ１）＝Ｎ－Ｏ－、－Ｃ（＝ＮＲ１）－、－Ｃ（＝ＮＲ１）－Ｏ－、－Ｃ（＝Ｏ）－、－Ｃ（＝Ｏ）Ｏ－、－Ｃ（＝Ｓ）－、－Ｃ（＝Ｓ）Ｏ－、－Ｃ（＝Ｓ）Ｓ－、－Ｏ－、－Ｓｉ（Ｒ１）２－、－Ｓ（＝Ｏ）ｘ－及び－Ｎ（Ｒ１）－から独立に選択されるリンカーによって４’位に連結され；
式中：
ｘは、０、１、又は２であり；
ｎは、１、２、３、又は４であり；
各Ｒ１及びＲ２は、独立に、Ｈ、保護基、ヒドロキシル、Ｃ１～Ｃ１２アルキル、置換Ｃ１～Ｃ１２アルキル、Ｃ２～Ｃ１２アルケニル、置換Ｃ２～Ｃ１２アルケニル、Ｃ２～Ｃ１２アルキニル、置換Ｃ２～Ｃ１２アルキニル、Ｃ５～Ｃ２０アリール、置換Ｃ５～Ｃ２０アリール、複素環ラジカル、置換複素環ラジカル、ヘテロアリール、置換ヘテロアリール、Ｃ５～Ｃ７脂環式ラジカル、置換Ｃ５～Ｃ７脂環式ラジカル、ハロゲン、ＯＪ１、ＮＪ１Ｊ２、ＳＪ１、Ｎ３、ＣＯＯＪ１、アシル（Ｃ（＝Ｏ）－Ｈ）、置換アシル、ＣＮ、スルホニル（Ｓ（＝Ｏ）２－Ｊ１）、又はスルホキシル（Ｓ（＝Ｏ）－Ｊ１）であり；
各Ｊ１及びＪ２は、独立に、Ｈ、Ｃ１～Ｃ１２アルキル、置換Ｃ１～Ｃ１２アルキル、Ｃ２～Ｃ１２アルケニル、置換Ｃ２～Ｃ１２アルケニル、Ｃ２～Ｃ１２アルキニル、置換Ｃ２～Ｃ１２アルキニル、Ｃ５～Ｃ２０アリール、置換Ｃ５～Ｃ２０アリール、アシル（Ｃ（＝Ｏ）－Ｈ）、置換アシル、複素環ラジカル、置換複素環ラジカル、Ｃ１～Ｃ１２アミノアルキル、置換Ｃ１～Ｃ１２アミノアルキル又は保護基である。
一部の実施形態では、ＬＮＡ化合物のリンカーのそれぞれは、独立に、－［Ｃ（Ｒ１）（Ｒ２）］ｎ－、－［Ｃ（Ｒ１）（Ｒ２）］ｎ－Ｏ－、－Ｃ（Ｒ１Ｒ２）－Ｎ（Ｒ１）－Ｏ－又は－Ｃ（Ｒ１Ｒ２）－Ｏ－Ｎ（Ｒ１）－である。別の実施形態では、前記リンカーのそれぞれは、独立に、４’－ＣＨ２－２’、４’－（ＣＨ２）２－２’、４’－（ＣＨ２）３－２’、４’－ＣＨ２－Ｏ－２’、４’－（ＣＨ２）２－Ｏ－２’、４’－ＣＨ２－Ｏ－Ｎ（Ｒ１）－２’及び４’－ＣＨ２－Ｎ（Ｒ１）－Ｏ－２’－であり、ここで、各Ｒ１は、独立に、Ｈ、保護基又はＣ１～Ｃ１２アルキルである。
特定のＬＮＡは、特許文献並びに科学文献において調製及び開示されている（Ｓｉｎｇｈ ｅｔ ａｌ．，Ｃｈｅｍ．Ｃｏｍｍｕｎ．，１９９８，４，４５５－４５６；Ｋｏｓｈｋｉｎ ｅｔ ａｌ．，Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ，１９９８，５４，３６０７－３６３０；Ｗａｈｌｅｓｔｅｄｔ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．，２０００，９７，５６３３－５６３８；Ｋｕｍａｒ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔｔ．，１９９８，８，２２１９－２２２２；国際公開第９４／１４２２６号パンフレット；国際公開第２００５／０２１５７０号パンフレット；Ｓｉｎｇｈ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．，１９９８，６３，１００３５－１００３９；ＬＮＡを開示する交付済み米国特許及び公開出願の例としては、例えば、米国特許第７，０５３，２０７号明細書；同第６，２６８，４９０号明細書；同第６，７７０，７４８号明細書；同第６，７９４，４９９号明細書；同第７，０３４，１３３；及び６，５２５，１９１；及び米国特許出願公開第２００４－０１７１５７０号明細書；同第２００４－０２１９５６５号明細書；同第２００４－００１４９５９号明細書；同第２００３－０２０７８４１号明細書；同第２００４－０１４３１１４号明細書；及び同第２００３００８２８０７号明細書が挙げられる。
リボシル糖環の２’－ヒドロキシル基が、糖環の４’炭素原子に連結され、それによって、メチレンオキシ（４’－ＣＨ２－Ｏ－２’）結合を形成して、二環式糖部分を形成するＬＮＡも、本明細書において提供されている（Ｅｌａｙａｄｉ ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎｉｏｎ Ｉｎｖｅｎｓ．Ｄｒｕｇｓ，２００１，２，５５８－５６１；Ｂｒａａｓｃｈ ｅｔ ａｌ．，Ｃｈｅｍ．Ｂｉｏｌ．，２００１，８ １－７；及びＯｒｕｍ ｅｔ ａｌ．，Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎｉｏｎ Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．，２００１，３，２３９－２４３において概説され；米国特許第６，２６８，４９０号明細書及び同第６，６７０，４６１号明細書も参照されたい）。連結は、２’酸素原子及び４’炭素原子を架橋するメチレン（－ＣＨ２－）基であってもよく、メチレンオキシ（４’－ＣＨ２－Ｏ－２’）ＬＮＡという語が、二環式部分に使用され；この位置にエチレン基がある場合、エチレンオキシ（４’－ＣＨ２ＣＨ２－Ｏ－２’）ＬＮＡという語が使用される（Ｓｉｎｇｈ ｅｔ ａｌ．，Ｃｈｅｍ．Ｃｏｍｍｕｎ．，１９９８，４，４５５－４５６：Ｍｏｒｉｔａ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｏｒｇａｎｉｃ Ｍｅｄｉｃｉｎａｌ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，２００３，１１，２２１１－２２２６）。メチレンオキシ（４’－ＣＨ２－Ｏ－２’）ＬＮＡ及び他の二環式糖類似体は、相補的ＤＮＡ及びＲＮＡとの非常に高い二重鎖熱安定性（Ｔｍ＝＋３～＋１０℃）、３’－エキソヌクレアーゼ分解に対する安定性及び良好な溶解特性を示す。ＢＮＡを含む強力且つ非毒性アンチセンスオリゴヌクレオチドが記載されている（Ｗａｈｌｅｓｔｅｄｔ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．，２０００，９７，５６３３－５６３８）。
同様に説明されているメチレンオキシ（４’－ＣＨ２－Ｏ－２’）ＬＮＡの異性体は、α－Ｌ－メチレンオキシ（４’－ＣＨ２－Ｏ－２’）ＬＮＡであり、これは、３’－エキソヌクレアーゼに対する優れた安定性を有することが示されている。α－Ｌ－メチレンオキシ（４’－ＣＨ２－Ｏ－２’）ＬＮＡは、アンチセンスギャップマー及びキメラに組み込まれて、これらは、強力なアンチセンス活性を示した（Ｆｒｉｅｄｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２００３，２１，６３６５－６３７２）。
メチレンオキシ（４’－ＣＨ２－Ｏ－２’）ＬＮＡモノマーアデニン、シトシン、グアニン、５－メチル－シトシン、チミン及びウラシルの合成及び調製は、それらのオリゴマー化、及び核酸認識特性と共に記載されている（Ｋｏｓｈｋｉｎ ｅｔ ａｌ．，Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ，１９９８，５４，３６０７－３６３０）。ＢＮＡ及びその調製も、国際公開第９８／３９３５２号パンフレット及び国際公開第９９／１４２２６号パンフレットに記載されている。
メチレンオキシ（４’－ＣＨ２－Ｏ－２’）ＬＮＡの類似体、ホスホロチオエート－メチレンオキシ（４’－ＣＨ２－Ｏ－２’）ＬＮＡ及び２’－チオ－ＬＮＡも調製されている（Ｋｕｍａｒ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔｔ．，１９９８，８，２２１９－２２２２）。核酸ポリメラーゼの基質としてオリゴデオキシリボヌクレオチド二重鎖を含むロックドヌクレオシド類似体の調製も記載されている（Ｗｅｎｇｅｌらの国際公開第９９／１４２２６号パンフレット）。さらに、新規の配座固定された高親和性オリゴヌクレオチド類似体である、２’－アミノ－ＬＮＡの合成が、当分野において記載されている（Ｓｉｎｇｈ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．，１９９８，６３，１００３５－１００３９）。さらに、２’－アミノ－及び２’－メチルアミノ－ＬＮＡが調製され、相補的ＲＮＡ及びＤＮＡ鎖とのそれらの二重鎖の熱安定性が既に報告されている。
修飾糖部分は、周知であり、その標的に対するアンチセンス化合物の親和性を改変する、典型的に増大する、及び／又はヌクレアーゼ耐性を増大するのに使用され得る。好ましい修飾糖の代表的なリストには、限定されるものではないが、メチレンオキシ（４’－ＣＨ２－Ｏ－２’）ＬＮＡ及びエチレンオキシ（４’－（ＣＨ２）２－Ｏ－２’架橋）ＥＮＡを含む二環式修飾糖；置換された糖、特に、２’－Ｆ、２’－ＯＣＨ３又は２’－Ｏ（ＣＨ２）２－ＯＣＨ３置換基を有する２’－置換糖；及び４’－チオ修飾糖が含まれる。糖は、中でも特に、糖模擬基で置換することもできる。修飾糖の調製方法は、当業者に周知である。このような修飾糖の調製を教示するいくつかの代表的な特許及び刊行物としては、限定されるものではないが、米国特許第４，９８１，９５７号明細書；同第５，１１８，８００号明細書；同第５，３１９，０８０号明細書；同第５，３５９，０４４号明細書；同第５，３９３，８７８号明細書；同第５，４４６，１３７号明細書；同第５，４６６，７８６号明細書；同第５，５１４，７８５号明細書；同第５，５１９，１３４号明細書；同第５，５６７，８１１号明細書；同第５，５７６，４２７号明細書；同第５，５９１，７２２号明細書；同第５，５９７，９０９号明細書；同第５，６１０，３００号明細書；同第５，６２７，０５３号明細書；同第５，６３９，８７３号明細書；同第５，６４６，２６５号明細書；同第５，６５８，８７３号明細書；同第５，６７０，６３３号明細書；同第５，７９２，７４７号明細書；同第５，７００，９２０号明細書；同第６，５３１，５８４号明細書；及び同第６，６００，０３２号明細書；及び国際公開第２００５／１２１３７１号パンフレットが挙げられる。
「オキシ」－２’ヒドロキシル基修飾の例としては、アルコキシ又はアリールオキシ（ＯＲ、例えば、Ｒ＝Ｈ、アルキル、シクロアルキル、アリール、アラルキル、ヘテロアリール又は糖）；ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）、Ｏ（ＣＨ２ＣＨ２Ｏ）ｎＣＨ２ＣＨ２ＯＲ、ｎ＝１～５０；ヌクレオシドのフラノース部分が、フラノース環上の２つの炭素原子を連結する架橋を含み、それによって二環式環系を形成する「ロックド」核酸（ＬＮＡ）；Ｏ－ＡＭＩＮＥ又はＯ－（ＣＨ２）ｎＡＭＩＮＥ（ｎ＝１～１０、ＡＭＩＮＥ＝ＮＨ２；アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ、ジヘテロアリールアミノ、エチレンジアミン又はポリアミノ）；及びＯ－ＣＨ２ＣＨ２（ＮＣＨ２ＣＨ２ＮＭｅ２）２が挙げられる。
「デオキシ」修飾としては、水素（即ち、一本鎖オーバーハングと特に関連するデオキシリボース糖）；ハロ（例えば、フルオロ）；アミノ（例えばＮＨ２；アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ、ジヘテロアリールアミノ、又はアミノ酸）；ＮＨ（ＣＨ２ＣＨ２ＮＨ）ｎＣＨ２ＣＨ２－ＡＭＩＮＥ（ＡＭＩＮＥ＝ＮＨ２；アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ、又はジヘテロアリールアミノ）；－ＮＨＣ（Ｏ）Ｒ（Ｒ＝アルキル、シクロアルキル、アリール、アラルキル、ヘテロアリール又は糖）；シアノ；メルカプト；アルキル－チオ－アルキル；チオアルコキシ；チオアルキル；アルキル；シクロアルキル；アリール；アルケニル及びアルキニルが挙げられ、これらは、例えば、アミノ官能基で、任意選択で置換され得る。
他の好適な２’－修飾、例えば、修飾ＭＯＥが、参照によりその内容が本明細書に組み入れられる、米国特許出願公開第２０１３０１３０３７８号明細書に記載されている。
２’位における修飾は、アラビノース立体配置に存在し得る。「アラビノース立体配置」という語は、アラビノースにおける２’－ＯＨと同じ立体配置でのリボースのＣ２’上の置換基の配置を指す。
糖は、糖の同じ炭素に２つの異なる修飾、例えば、ｇｅｍ修飾を含み得る。糖基は、リボースにおける対応する炭素の立体化学配置と反対の立体化学配置を有する１つ以上の炭素も含み得る。したがって、オリゴマー化合物は、例えば、糖としてアラビノースを含有する１つ以上のモノマーを含み得る。モノマーは、糖の１’位にα結合、例えば、α－ヌクレオシドを有し得る。モノマーはまた、４’位に反対の配置を有してもよく、例えば、Ｃ５’及びＨ４’又はそれらを置換する置換基が、相互に交換される。Ｃ５’及びＨ４’又はそれらを置換する置換基が、相互に交換される場合、糖は、４’位で修飾されているといわれる。
本明細書に開示される本発明の化合物は、脱塩基糖、即ち、Ｃ－１’に核酸塩基が欠如しているか又はＣ１’に核酸塩基の代わりに他の化学基を有する糖も含み得る。例えば、その全内容が本明細書に組み入れられる、米国特許第５，９９８，２０３号明細書を参照されたい。これらの脱塩基糖はまた、構成糖原子の１つ以上に修飾をさらに含み得る。本発明の化合物は、Ｌ異性体、例えばＬ－ヌクレオシドで１つ以上の糖も含み得る。糖基に対する修飾は、硫黄、任意選択で置換される窒素又はＣＨ２基による４’－Ｏの置換も含み得る。一部の実施形態では、Ｃ１’と核酸塩基との連結は、α立体配置にある。
糖修飾は、「非環状ヌクレオチド」も含むことができ、これは、例えば、リボース炭素間のＣ－Ｃ結合（例えば、Ｃ１’－Ｃ２’、Ｃ２’－Ｃ３’、Ｃ３’－Ｃ４’、Ｃ４’－Ｏ４’、Ｃ１’－Ｏ４’）が存在しないか、及び／又はリボース炭素又は酸素（例えば、Ｃ１’、Ｃ２’、Ｃ３’、Ｃ４’又はＯ４’）の少なくとも１つが、独立に又は組み合わせで、ヌクレオチドに存在しない、非環状リボース糖を有する任意のヌクレオチドを指す。一部の実施形態では、非環状ヌクレオチドは、
Figure 2023500681000043
 であり、ここで、Ｂは、修飾又は非修飾核酸塩基であり、Ｒ１及びＲ２は、独立に、Ｈ、ハロゲン、ＯＲ３、又はアルキルであり；Ｒ３は、Ｈ、アルキル、シクロアルキル、アリール、アラルキル、ヘテロアリール又は糖である）。
一部の実施形態では、糖修飾は、２’－Ｈ、２’－Ｏ－Ｍｅ（２’－Ｏ－メチル）、２’－Ｏ－ＭＯＥ（２’－Ｏ－メトキシエチル）、２’－Ｆ、２’－Ｏ－［２－（メチルアミノ）－２－オキソエチル］（２’－Ｏ－ＮＭＡ）、２’－Ｓ－メチル、２’－Ｏ－ＣＨ２－（４’－Ｃ）（ＬＮＡ）、２’－Ｏ－ＣＨ２ＣＨ２－（４’－Ｃ）（ＥＮＡ）、２’－Ｏ－アミノプロピル（２’－Ｏ－ＡＰ）、２’－Ｏ－ジメチルアミノエチル（２’－Ｏ－ＤＭＡＯＥ）、２’－Ｏ－ジメチルアミノプロピル（２’－Ｏ－ＤＭＡＰ）、２’－Ｏ－ジメチルアミノエチルオキシエチル（２’－Ｏ－ＤＭＡＥＯＥ）及びアラビノース立体配置で２’－Ｏ－Ｍｅを有するｇｅｍ２’－ＯＭｅ／２’Ｆからなる群から選択される。
特定のヌクレオチドが、その２’位を介して次のヌクレオチドに連結される場合、本明細書に記載される糖修飾は、その特定のヌクレオチド、例えば、その２’位を介して連結されるヌクレオチドについて、糖の３’位に配置され得ることが理解されるべきである。３’位における修飾は、キシロース立体配置で存在し得る。「キシロース立体配置」という語は、キシロース糖における３’－ＯＨと同じ立体配置でのリボースのＣ３’上の置換基の配置を指す。
Ｃ４’及び／又はＣ１’に結合された水素は、直鎖又は分岐鎖の、任意選択で置換されるアルキル、任意選択で置換されるアルケニル、任意選択で置換されるアルキニルで置換され得、ここで、アルキル、アルケニル及びアルキニルの骨格は、Ｏ、Ｓ、Ｓ（Ｏ）、ＳＯ２、Ｎ（Ｒ’）、Ｃ（Ｏ）、Ｎ（Ｒ’）Ｃ（Ｏ）Ｏ、ＯＣ（Ｏ）Ｎ（Ｒ’）、ＣＨ（Ｚ’）、リン含有結合、任意選択で置換されるアリール、任意選択で置換されるヘテロアリール、任意選択で置換される複素環式又は任意選択で置換されるシクロアルキルの１つ以上を含有することができ、ここで、Ｒ’は、水素、アシル又は任意選択で置換される脂肪族であり、Ｚ’は、ＯＲ１１、ＣＯＲ１１、ＣＯ２Ｒ１１、
Figure 2023500681000044
 、ＮＲ２１Ｒ３１、ＣＯＮＲ２１Ｒ３１、ＣＯＮ（Ｈ）ＮＲ２１Ｒ３１、ＯＮＲ２１Ｒ３１、ＣＯＮ（Ｈ）Ｎ＝ＣＲ４１Ｒ５１、Ｎ（Ｒ２１）Ｃ（＝ＮＲ３１）ＮＲ２１Ｒ３１、Ｎ（Ｒ２１）Ｃ（Ｏ）ＮＲ２１Ｒ３１、Ｎ（Ｒ２１）Ｃ（Ｓ）ＮＲ２１Ｒ３１、ＯＣ（Ｏ）ＮＲ２１Ｒ３１、ＳＣ（Ｏ）ＮＲ２１Ｒ３１、Ｎ（Ｒ２１）Ｃ（Ｓ）ＯＲ１１、Ｎ（Ｒ２１）Ｃ（Ｏ）ＯＲ１１、Ｎ（Ｒ２１）Ｃ（Ｏ）ＳＲ１１、Ｎ（Ｒ２１）Ｎ＝ＣＲ４１Ｒ５１、ＯＮ＝ＣＲ４１Ｒ５１、ＳＯ２Ｒ１１、ＳＯＲ１１、ＳＲ１１、及び置換又は非置換複素環式からなる群から選択され；Ｒ２１及びＲ３１は存在ごとに独立して、水素、アシル、非置換又は置換脂肪族、アリール、ヘテロアリール、複素環式、ＯＲ１１、ＣＯＲ１１、ＣＯ２Ｒ１１、又はＮＲ１１Ｒ１１’であり；又はＲ２１及びＲ３１は、それらが結合される原子と一緒になって、複素環を形成し；Ｒ４１及びＲ５１は存在ごとに独立して、水素、アシル、非置換又は置換脂肪族、アリール、ヘテロアリール、複素環式、ＯＲ１１、ＣＯＲ１１、又はＣＯ２Ｒ１１、又はＮＲ１１Ｒ１１’であり；Ｒ１１及びＲ１１’は、独立に、水素、脂肪族、置換脂肪族、アリール、ヘテロアリール、又は複素環式である。一部の実施形態では、５’末端ヌクレオチドのＣ４’に結合された水素は、置換されている。
一部の実施形態では、Ｃ４’及びＣ５’は一緒に、好ましくは、少なくとも１つの－ＰＸ（Ｙ）－を含む任意選択で置換される複素環式を形成し、ここで、Ｘは、Ｈ、ＯＨ、ＯＭ、ＳＨ、任意選択で置換されるアルキル、任意選択で置換されるアルコキシ、任意選択で置換されるアルキルチオ、任意選択で置換されるアルキルアミノ又は任意選択で置換されるジアルキルアミノであり、ここで、Ｍは存在ごとに独立して、＋１の総電荷を有するアルカリ金属又は遷移金属であり；Ｙは、Ｏ、Ｓ、又はＮＲ’であり、ここで、Ｒ’は、水素、任意選択で置換される脂肪族である。好ましくは、この修飾は、ｉＲＮＡの５’末端にある。
特定の実施形態では、本発明の化合物は、上の式の少なくとも２つの連続したモノマーの少なくとも２つの領域を含む。特定の実施形態では、本発明の化合物は、ギャップモチーフを含む。特定の実施形態では、本発明の化合物は、約８～約１４の連続したβ－Ｄ－２’－デオキシリボフラノシルヌクレオシドの少なくとも１つの領域を含む。特定の実施形態では、本発明の化合物は、約９～約１２の連続したβ－Ｄ－２’－デオキシリボフラノシルヌクレオシドの少なくとも１つの領域を含む。
特定の実施形態では、本発明の化合物は、式：
Figure 2023500681000045
 （式中、Ｂｘは、複素環式塩基部分である）
の少なくとも１つ（例えば、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５又はそれ以上）の（Ｓ）－ｃＥｔモノマーを含む。
特定の実施形態では、モノマーは、糖模倣体を含む。特定のこのような実施形態では、模倣体が、糖又は糖－ヌクレオシド間結合組み合わせの代わりに使用され、核酸塩基は、選択された標的とのハイブリダイゼーションのために維持される。糖模倣体の代表例としては、限定されるものではないが、シクロヘキセニル又はモルホリノが挙げられる。糖－ヌクレオシド間結合組み合わせの模倣体の代表例としては、限定されるものではないが、非荷電アキラル結合によって連結されたペプチド核酸（ＰＮＡ）及びモルホリノ基が挙げられる。一部の例では、模倣体が、核酸塩基の代わりに使用される。代表的な核酸塩基模倣体は、当分野で周知であり、限定されるものではないが、三環式フェノキサジン類似体及びユニバーサル塩基（参照により本明細書に組み入れられる、Ｂｅｒｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃ Ａｃｉｄ Ｒｅｓ．２０００，２８：２９１１－１４）が挙げられる。糖、ヌクレオシド及び核酸塩基模倣体の合成方法は、当業者に周知である。
核酸修飾（糖間結合）
モノマー（限定されるものではないが、修飾及び非修飾ヌクレオシド及びヌクレオチドを含む）を互いに連結し、それによってオリゴマー化合物、例えば、オリゴヌクレオチドを形成する連結基が、本明細書に記載される。このような連結基は、糖間結合とも呼ばれる。２つの主なクラスの連結基は、リン原子の存在又は非存在によって規定される。代表的なリン含有結合としては、限定されるものではないが、ホスホジエステル（Ｐ＝Ｏ）、ホスホトリエステル、メチルホスホネート、ホスホラミデート、及びホスホロチオエート（Ｐ＝Ｓ）が挙げられる。代表的な非リン含有連結基としては、限定されるものではないが、メチレンメチルイミノ（－ＣＨ２－Ｎ（ＣＨ３）－Ｏ－ＣＨ２－）、チオジエステル（－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｓ－）、チオノカルバメート（－Ｏ－Ｃ（Ｏ）（ＮＨ）－Ｓ－）；シロキサン（－Ｏ－Ｓｉ（Ｈ）２－Ｏ－）；及びＮ，Ｎ’－ジメチルヒドラジン（－ＣＨ２－Ｎ（ＣＨ３）－Ｎ（ＣＨ３）－）が挙げられる。天然ホスホジエステル結合と比較して、修飾された結合は、オリゴヌクレオチドのヌクレアーゼ耐性を改変、典型的に増大するのに使用され得る。特定の実施形態では、キラル原子を有する結合は、別個の鏡像異性体として、ラセミ混合物として調製され得る。代表的なキラル結合としては、限定されるものではないが、アルキルホスホネート及びホスホロチオエートが挙げられる。リン含有及び非リン含有結合の調製方法は、当業者に周知である。
連結基中のリン酸基は、酸素の１つを異なる置換基で置換することによって修飾され得る。この修飾の１つの結果は、核酸分解に対するオリゴヌクレオチドの耐性増大であり得る。修飾リン酸基の例としては、ホスホロチオエート、ホスホロセレネート、ボラノリン酸塩、ボラノリン酸エステル、水素ホスホネート、ホスホロアミデート、アルキル又はアリールホスホネート及びホスホトリエステルが挙げられる。一部の実施形態では、連結における非架橋リン酸塩酸素原子の１つは、以下：Ｓ、Ｓｅ、ＢＲ３（Ｒは、水素、アルキル、アリールである）、Ｃ（即ち、アルキル基、アリール基など）、Ｈ、ＮＲ２（Ｒは、水素、任意選択で置換されるアルキル、アリールである）、ｏｒ（Ｒは、任意選択で置換されるアルキル又はアリールである）のいずれかで置換され得る。非修飾リン酸基中のリン原子は、アキラルである。しかしながら、上記の原子又は原子団の１つによる非架橋酸素の１つの置換は、リン原子をキラルにし；言い換えると、このように修飾されたリン酸基中のリン原子は、立体中心である。立体形成性リン原子は、「Ｒ」配置（本明細書では、Ｒｐ）又は「Ｓ」配置（本明細書では、Ｓｐ）のいずれかを有し得る。
ホスホロジチオエートは、硫黄によって置換された両方の非架橋酸素を有する。ホスホロジチオエート中のリン中心は、オリゴヌクレオチドジアステレオマーの形成を妨げるキラルである。したがって、理論に拘束されることを望むものではないが、両方の非架橋酸素に対する修飾は、不斉中心、例えばホスホロジチオエート形成をなくし、それらがジアステレオマー混合物を生成することができないことから、望ましい場合がある。したがって、非架橋酸素は、独立に、Ｏ、Ｓ、Ｓｅ、Ｂ、Ｃ、Ｈ、Ｎ、又はＯＲ（Ｒは、アルキル又はアリールである）のいずれか１つであり得る。
リン酸塩リンカーはまた、窒素（架橋ホスホロアミデート）、硫黄（架橋ホスホロチオエート）及び炭素（架橋メチレンホスホネート）による、架橋酸素、（即ち、リン酸塩をモノマーの糖に連結する酸素）の置換によって修飾され得る。この置換は、連結酸素のいずれか一方又は両方の連結酸素において起こり得る。架橋酸素が、ヌクレオシドの３’－酸素である場合、炭素による置換が好ましい。架橋酸素、ヌクレオシドの５’－酸素である場合、窒素による置換が好ましい。
リン酸塩に連結された酸素の少なくとも１つが置換されているか、又はリン酸基が非リン基によって置換されている修飾リン酸塩結合は、「非ホスホジエステル糖間結合」又は「非ホスホジエステルリンカー」とも呼ばれる。
特定の実施形態では、リン酸基は、非リン含有コネクター、例えばデホスホリンカーによって置換され得る。デホスホリンカーは、本明細書では、非ホスホジエステルリンカーと呼ばれる。理論に拘束されることを望むものではないが、荷電ホスホジエステル基が核酸分解の反応中心であるため、中性構造模倣体によるその置換が、向上したヌクレアーゼ安定性を付与するはずであると考えられる。やはり、理論に拘束されることを望むものではないが、一部の実施形態では、荷電リン酸基が中性部分によって置換される改変を導入することが望ましい場合がある。
リン酸基を置換し得る部分の例としては、限定されるものではないが、アミド（例えばアミド－３（３’－ＣＨ２－Ｃ（＝Ｏ）－Ｎ（Ｈ）－５’）及びアミド－４（３’－ＣＨ２－Ｎ（Ｈ）－Ｃ（＝Ｏ）－５’））、ヒドロキシルアミノ、シロキサン（ジアルキルシロキサン）、カルボキサミド、炭酸塩、カルボキシメチル、カルバメート、カルボン酸エステル、チオエーテル、エチレンオキシドリンカー、硫化物、スルホン酸塩、スルホンアミド、スルホン酸エステル、チオホルムアセタール（３’－Ｓ－ＣＨ２－Ｏ－５’）、ホルムアセタール（３’－Ｏ－ＣＨ２－Ｏ－５’）、オキシム、メチレンイミノ、メチレンカルボニルアミノ、メチレンメチルイミノ（ＭＭＩ、３’－ＣＨ２－Ｎ（ＣＨ３）－Ｏ－５’）、メチレンヒドラゾ、メチレンジメチルヒドラゾ、メチレンオキシメチルイミノ、エーテル（Ｃ３’－Ｏ－Ｃ５’）、チオエーテル（Ｃ３’－Ｓ－Ｃ５’）、チオアセトアミド（Ｃ３’－Ｎ（Ｈ）－Ｃ（＝Ｏ）－ＣＨ２－Ｓ－Ｃ５’、Ｃ３’－Ｏ－Ｐ（Ｏ）－Ｏ－ＳＳ－Ｃ５’、Ｃ３’－ＣＨ２－ＮＨ－ＮＨ－Ｃ５’、３’－ＮＨＰ（Ｏ）（ＯＣＨ３）－Ｏ－５’及び３’－ＮＨＰ（Ｏ）（ＯＣＨ３）－Ｏ－５’及び混合Ｎ、Ｏ、Ｓ及びＣＨ２構成部分を含む非イオン性結合が挙げられる。例えば、Ｃａｒｂｏｈｙｄｒａｔｅ Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓ ｉｎ Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ；Ｙ．Ｓ．Ｓａｎｇｈｖｉ ａｎｄ Ｐ．Ｄ．Ｃｏｏｋ Ｅｄｓ．ＡＣＳ Ｓｙｍｐｏｓｉｕｍ Ｓｅｒｉｅｓ ５８０；Ｃｈａｐｔｅｒｓ ３及び４，（ｐｐ．４０－６５）を参照されたい。好ましい実施形態としては、メチレンメチルイミノ（ＭＭＩ）、メチレンカルボニルアミノ、アミド、カルバメート及びエチレンオキシドリンカーが挙げられる。
当業者は、特定の例では、非架橋酸素の置換が、隣接する２’－ＯＨによる糖間結合の切断の増強をもたらし得るため、多くの場合、非架橋酸素の修飾が、２’－ＯＨの修飾、例えば、隣接する糖間結合、例えば、アラビノース糖、２’－Ｏ－アルキル、２’－Ｆ、ＬＮＡ及びＥＮＡの切断に関与しない修飾を必要とし得ることを十分に認識している。
好ましい非ホスホジエステル糖間結合は、ホスホロチオエート、少なくとも１％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％ ９５％又はそれ以上の鏡像体過剰率のＳｐ異性体を含むホスホロチオエート、少なくとも１％、５％、１０％、２０％、３０％、４０％、５０％、６０％、７０％、８０％、９０％ ９５％又はそれ以上の鏡像体過剰率のＲｐ異性体を含むホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、ホスホトリエステル、アミノアルキルホスホトリエステル、アルキル－ホスホネート（例えば、メチル－ホスホネート）、セレノホスフェート、ホスホラミデート（例えば、Ｎ－アルキルホスホラミデート）、及びボラノホスホネートを含む。
一部の実施形態では、本発明の化合物は、少なくとも１つ（例えば、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５又はそれ以上及び最大で全てを含む）の修飾又は非ホスホジエステル結合を含む。一部の実施形態では、本発明の化合物は、少なくとも１つ（例えば、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５又はそれ以上及び最大で全てを含む）のホスホロチオエート結合を含む。
リン酸塩リンカー及び糖がヌクレアーゼ耐性ヌクレオシド又はヌクレオチドサロゲートによって置換される、本発明の化合物を構築することもできる。理論に拘束されることを望むものではないが、繰り返し荷電された骨格の非存在は、ポリアニオンを認識するタンパク質（例えばヌクレアーゼ）に対する結合を弱めると考えられる。やはり、理論に拘束されることを望むものではないが、一部の実施形態では、塩基が中性サロゲート骨格によって連結される改変を導入するのが望ましい場合がある。例としては、モルホリノ、シクロブチル、ピロリジン、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、アミノエチルグリシルＰＮＡ（ａｅｇＰＮＡ）及び骨格伸張ピロリジンＰＮＡ（ｂｅｐＰＮＡ）ヌクレオシドサロゲートが挙げられる。好ましいサロゲートは、ＰＮＡサロゲートである。
本明細書に記載される本発明の化合物は、１つ以上の不斉中心を含むことができ、したがって、鏡像異性体、ジアステレオマー、及び絶対立体化学に関して、糖アノマーなどの場合、（Ｒ）若しくは（Ｓ）として、又はアミノ酸などの場合、（Ｄ）若しくは（Ｌ）として規定され得る他の立体異性体配置を生じる。本明細書において提供される本発明の化合物には、全てのこのような可能な異性体、並びにそれらのラセミ形態及び光学的に純粋な形態が含まれる。
核酸修飾（末端修飾
一部の実施形態では、化合物は、アンチセンス鎖の５’末端にリン酸塩又はリン酸塩模倣体をさらに含む。一実施形態では、リン酸塩模倣体は、５’－ビニルホスホネート（ＶＰ）である。
一部の実施形態では、化合物のアンチセンス鎖の５’末端は、５’－ビニルホスホネート（ＶＰ）を含まない。
本発明のｉＲＮＡ剤の末端は、修飾され得る。このような修飾は、一方の末端又は両方の末端にあり得る。例えば、ｉＲＮＡの３’及び／又は５’末端は、標識部分、例えば、フルオロフォア（例えば、ピレン、ＴＡＭＲＡ、フルオレセイン、Ｃｙ３又はＣｙ５色素）又は保護基（例えば、硫黄、ケイ素、ホウ素若しくはエステル系）などの他の機能分子実体にコンジュゲートされ得る。機能分子実体は、リン酸基及び／又はリンカーを介して、糖に結合され得る。リンカーの末端原子は、リン酸基の連結原子又は糖のＣ－３’若しくはＣ－５’Ｏ、Ｎ、Ｓ若しくはＣ基に連結するか、又はそれを置換することができる。或いは、リンカーは、ヌクレオチドサロゲート（例えば、ＰＮＡ）の末端原子に連結するか、又はそれを置換することができる。
リンカー／リン酸塩－機能分子実体－リンカー／リン酸塩アレイが、二本鎖オリゴマー化合物の２つの鎖の間に配置される場合、このアレイは、ヘアピン型オリゴマー化合物中のヘアピンループの代わりになり得る。
活性を調節するのに有用な末端修飾は、リン酸塩又はリン酸塩類似体によるｉＲＮＡの５’末端の修飾を含む。特定の実施形態では、ｉＲＮＡの５’末端は、リン酸化されているか、又はホスホリル類似体を含む。例示的な５’－リン酸修飾としては、ＲＩＳＣ媒介性遺伝子サイレンシングに適合する修飾が挙げられる。５’末端における修飾はまた、対象の免疫系を刺激又は阻害するのに有用であり得る。一部の実施形態では、オリゴマー化合物の５’末端は、修飾
Figure 2023500681000046
 を含み、式中、Ｗ、Ｘ及びＹは、それぞれ、独立に、Ｏ、ＯＲ（Ｒは、水素、アルキル、アリールである）、Ｓ、Ｓｅ、ＢＲ３（Ｒは、水素、アルキル、アリールである）、ＢＨ３ －、Ｃ（即ち、アルキル基、アリール基など）、Ｈ、ＮＲ２（Ｒは、水素、アルキル、アリールである）、又はＯＲ（Ｒは、水素、アルキル又はアリールである）からなる群から選択され；Ａ及びＺはそれぞれ、存在ごとに独立して、存在しないか、Ｏ、Ｓ、ＣＨ２、ＮＲ（Ｒは、水素、アルキル、アリールである）、又は任意選択で置換されるアルキレンであり、ここで、アルキレンの骨格は、内部に及び／又は末端に、Ｏ、Ｓ、ＳＳ及びＮＲ（Ｒは、水素、アルキル、アリールである）の１つ以上を含むことができ；ｎは、０～２である。一部の実施形態では、ｎは、１又は２である。Ａは、糖の５’炭素に連結された酸素を置換することが理解される。ｎが０である場合、Ｗ及びＹは、それらが結合されるＰと一緒に、任意選択で置換される５～８員複素環式を形成することができ、ここで、Ｗ及びＹは、それぞれ、独立に、Ｏ、Ｓ、ＮＲ’又はアルキレンである。好ましくは、複素環式は、アリール又はヘテロアリールで置換される。一部の実施形態では、５’末端ヌクレオチドのＣ５’上の一方又は両方の水素が、ハロゲン、例えば、Ｆで置換される。
例示的な５’－修飾としては、限定されるものではないが、５’－一リン酸（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ－Ｏ－５’）；５’－二リン酸（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ－Ｏ－Ｐ（ＨＯ）（Ｏ）－Ｏ－５’）；５’－三リン酸（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ－Ｏ－（ＨＯ）（Ｏ）Ｐ－Ｏ－Ｐ（ＨＯ）（Ｏ）－Ｏ－５’）；５’－モノチオリン酸（ホスホロチオエート；（ＨＯ）２（Ｓ）Ｐ－Ｏ－５’）；５’－モノジチオリン酸（ホスホロジチオエート；（ＨＯ）（ＨＳ）（Ｓ）Ｐ－Ｏ－５’）、５’－ホスホロチオレート（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ－Ｓ－５’）；５’－α－チオ三リン酸；５’－β－チオ三リン酸；５’－γ－チオ三リン酸；５’－ホスホラミデート（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ－ＮＨ－５’、（ＨＯ）（ＮＨ２）（Ｏ）Ｐ－Ｏ－５’）が挙げられる。他の５’－修飾としては、５’－アルキルホスホネート（Ｒ（ＯＨ）（Ｏ）Ｐ－Ｏ－５’、Ｒ＝アルキル、例えば、メチル、エチル、イソプロピル、プロピルなど）、５’－アルキルエーテルホスホネート（Ｒ（ＯＨ）（Ｏ）Ｐ－Ｏ－５’、Ｒ＝アルキルエーテル、例えば、メトキシメチル（ＣＨ２ＯＭｅ）、エトキシメチルなど）が挙げられる。他の例示的な５’－修飾としては、Ｚが、任意選択で少なくとも１回置換されるアルキルであるもの、例えば、（（ＨＯ）２（Ｘ）Ｐ－Ｏ［－（ＣＨ２）ａ－Ｏ－Ｐ（Ｘ）（ＯＨ）－Ｏ］ｂ－５’、（（ＨＯ）２（Ｘ）Ｐ－Ｏ［－（ＣＨ２）ａ－Ｐ（Ｘ）（ＯＨ）－Ｏ］ｂ－５’、（（ＨＯ）２（Ｘ）Ｐ－［－（ＣＨ２）ａ－Ｏ－Ｐ（Ｘ）（ＯＨ）－Ｏ］ｂ－５’；ジアルキル末端リン酸塩及びリン酸塩模倣体：ＨＯ［－（ＣＨ２）ａ－Ｏ－Ｐ（Ｘ）（ＯＨ）－Ｏ］ｂ－５’、Ｈ２Ｎ［－（ＣＨ２）ａ－Ｏ－Ｐ（Ｘ）（ＯＨ）－Ｏ］ｂ－５’、Ｈ［－（ＣＨ２）ａ－Ｏ－Ｐ（Ｘ）（ＯＨ）－Ｏ］ｂ－５’、Ｍｅ２Ｎ［－（ＣＨ２）ａ－Ｏ－Ｐ（Ｘ）（ＯＨ）－Ｏ］ｂ－５’、ＨＯ［－（ＣＨ２）ａ－Ｐ（Ｘ）（ＯＨ）－Ｏ］ｂ－５’、Ｈ２Ｎ［－（ＣＨ２）ａ－Ｐ（Ｘ）（ＯＨ）－Ｏ］ｂ－５’、Ｈ［－（ＣＨ２）ａ－Ｐ（Ｘ）（ＯＨ）－Ｏ］ｂ－５’、Ｍｅ２Ｎ［－（ＣＨ２）ａ－Ｐ（Ｘ）（ＯＨ）－Ｏ］ｂ－５’が挙げられ、ここで、ａ及びｂは、それぞれ、独立に、１～１０である。他の実施形態は、ＢＨ３、ＢＨ３ －及び／又はＳｅによる酸素及び／又は硫黄の置換を含む。
末端修飾はまた、分布を監視するのに有用であり得、このような場合、付加されるのに好ましい基としては、フルオロフォア、例えば、フルオレセイン又はＡｌｅｘａ色素、例えば、Ａｌｅｘａ ４８８が挙げられる。末端修飾はまた、取り込みを促進するのに有用であり得、このための有用な修飾は、標的化リガンドを含む。末端修飾はまた、オリゴヌクレオチドを別の部分に架橋するのに有用であり得；このための有用な修飾は、マイトマイシンＣ、ソラレン、及びそれらの誘導体を含む。
熱不安定化修飾
ｉＲＮＡ又はｄｓＲＮＡ剤などの、本発明の化合物は、アンチセンス鎖のｓｅｅｄ領域（即ち、アンチセンス鎖の５’末端の２位～８位）の反対側の部位でセンス鎖に熱不安定化修飾を導入してｉＲＮＡ二重鎖の解離又は溶解の性質を強める（二重鎖の結合の自由エネルギーを減少させる）ことによってＲＮＡ干渉を最適化することができる。この修飾は、アンチセンス鎖のｓｅｅｄ領域における二重鎖の解離又は溶解の性質を強めることができる。
熱不安定化修飾は、脱塩基修飾；対向する鎖における対向するヌクレオチドとのミスマッチ；及び糖修飾、例えば、２’－デオキシ修飾又は非環状ヌクレオチド、例えば、アンロック核酸（ＵＮＡ）又はグリセロール核酸（ＧＮＡ）を含み得る。
例示的な脱塩基修飾は、以下の通りである：
Figure 2023500681000047
例示的な糖修飾は、以下の通りである：
Figure 2023500681000048
「ＵＮＡ」という語は、糖の全ての結合が除去されてアンロック「糖」残基が形成されている、アンロック非環状核酸を指す。一例では、ＵＮＡは、Ｃ１’－Ｃ４’間の結合（即ち、Ｃ１’とＣ４’炭素間の炭素－酸素－炭素の共有結合）が除去された単量体も含む。別の例では、糖のＣ２’－Ｃ３’結合（即ち、Ｃ２’とＣ３’炭素間の炭素－炭素の共有結合）が除去される（参照によりそれぞれの全内容が本明細書に組み入れられる、Ｍｉｋｈａｉｌｏｖ ｅｔ．ａｌ．，Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔｅｒｓ，２６ （１７）：２０５９ （１９８５）；及びＦｌｕｉｔｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｍｏｌ．Ｂｉｏｓｙｓｔ．，１０：１０３９ （２００９）を参照されたい）。非環状誘導体は、ワトソン・クリック塩基対形成に影響を与えることなく、主鎖のより高い柔軟性を提供する。非環状ヌクレオチドは、２’－５’又は３’－５’結合によって連結することができる。
「ＧＮＡ」という語は、ＤＮＡ又はＲＮＡに類似したポリマーであるが、ホスホジエステル結合によって連結された反復グリセロール単位からなるためその「主鎖」の組成が異なるグリコール核酸を指す：
Figure 2023500681000049
熱不安定化修飾は、熱不安定化ヌクレオチドとｄｓＲＮＡ二重鎖内の対向する鎖における対向するヌクレオチドとのミスマッチ（即ち、非相補的な塩基対）であり得る。例示的なミスマッチ塩基対としては、Ｇ：Ｇ、Ｇ：Ａ、Ｇ：Ｕ、Ｇ：Ｔ、Ａ：Ａ、Ａ：Ｃ、Ｃ：Ｃ、Ｃ：Ｕ、Ｃ：Ｔ、Ｕ：Ｕ、Ｔ：Ｔ、Ｕ：Ｔ、又はこれらの組み合わせが挙げられる。当分野で公知の他のミスマッチ塩基対合も本発明に適している。ミスマッチは、天然に存在するヌクレオチド又は修飾ヌクレオチドであるヌクレオチド間で起こり得る、即ち、ミスマッチ塩基対合は、ヌクレオチドのリボース糖における修飾とは無関係のそれぞれのヌクレオチドからの核酸塩基間で起こり得る。特定の実施形態では、ｓｉＲＮＡ又はｉＲＮＡ剤などの、本発明の化合物は、２’－デオキシ核酸塩基である少なくとも１つの核酸塩基をミスマッチ対合中に含み；例えば、２’－デオキシ核酸塩基は、センス鎖中にある。
脱塩基ヌクレオチド、非環状ヌクレオチド修飾（ＵＮＡ及びＧＮＡを含む）、及びミスマッチ修飾のさらなる例は、参照によりその全内容が本明細書に組み入れられる国際公開第２０１１／１３３８７６号パンフレットに詳細に記載されている。
熱不安定化修飾は、対向する塩基と水素結合を形成する能力が低下又は喪失したユニバーサル塩基、及びリン酸修飾を含み得る。
対抗する鎖における塩基と水素結合を形成する能力が低下した又は完全に喪失した核酸塩基修飾を、参照によりその全内容が本明細書に組み入れられる国際公開第２０１０／００１１８９５号パンフレットに記載されているｄｓＲＮＡ剤二重鎖の中心領域の不安定化について評価した。例示的な核酸塩基修飾は、次の通りである：
Figure 2023500681000050
天然のホスホジエステル結合と比較してｄｓＲＮＡ二重鎖の熱安定性を低下させることが知られている例示的なリン酸修飾は、次の通りである：
Figure 2023500681000051
一部の実施形態では、本発明の化合物は、２’－５’結合（２’－Ｈ、２’－ＯＨ及び２’－ＯＭｅを伴う、且つＰ＝Ｏ又はＰ＝Ｓを伴う）を含み得る。例えば、２’－５’結合の修飾は、ヌクレアーゼ耐性を高めるため、若しくはセンス鎖のアンチセンス鎖への結合を阻害するために使用され得、又はＲＩＳＣによるセンス鎖の活性化を避けるためにセンス鎖の５’末端で使用され得る。
別の実施形態では、本発明の化合物は、Ｌ糖（例えば、Ｌリボース、２’－Ｈ、２’－ＯＨ及び２’－ＯＭｅを含むＬ－アラビノース）を含み得る。例えば、これらのＬ糖修飾は、ヌクレアーゼ耐性を高めるため、若しくはセンス鎖のアンチセンス鎖への結合を阻害するために使用され得、又はＲＩＳＣによるセンス鎖の活性化を避けるためにセンス鎖の５’末端で使用され得る。
一実施形態では、本発明のｉＲＮＡ剤は、担体を介してリガンドにコンジュゲートし、この担体は、環状基又は非環状基であり得；好ましくは、環状基は、ピロリジニル、ピラゾリニル、ピラゾリジニル、イミダゾリニル、イミダゾリジニル、ピペリジニル、ピペラジニル、［１，３］ジオキソラン、オキサゾリジニル、イソキサゾリジニル、モルホリニル、チアゾリジニル、イソチアゾリジニル、キノキサリニル、ピリダジノニル、テトラヒドロフリル、及びデカリンから選択され；好ましくは、非環状基は、セリノール骨格又はジエタノールアミン骨格から選択される。
一部の実施形態では、本明細書に開示されるｉＲＮＡ剤の少なくとも１つの鎖は、５’リン酸化されるか、又は５’末端にホスホリル類似体を含む。５’－リン酸修飾は、ＲＩＳＣ媒介性遺伝子サイレンシングに適合する修飾を含む。適切な修飾としては：５’－一リン酸（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ－Ｏ－５’）；５’－二リン酸（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ－Ｏ－Ｐ（ＨＯ）（Ｏ）－Ｏ－５’）；５’－三リン酸（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ－Ｏ－（ＨＯ）（Ｏ）Ｐ－Ｏ－Ｐ（ＨＯ）（Ｏ）－Ｏ－５’）；５’－グアノシンキャップ（７－メチル化又は非メチル化）（７ｍ－Ｇ－Ｏ－５’－（ＨＯ）（Ｏ）Ｐ－Ｏ－（ＨＯ）（Ｏ）Ｐ－Ｏ－Ｐ（ＨＯ）（Ｏ）－Ｏ－５’）；５’－アデノシンキャップ（Ａｐｐｐ）、及び任意の修飾又は非修飾ヌクレオチドキャップ構造（Ｎ－Ｏ－５’－（ＨＯ）（Ｏ）Ｐ－Ｏ－（ＨＯ）（Ｏ）Ｐ－Ｏ－Ｐ（ＨＯ）（Ｏ）－Ｏ－５’）；５’－モノチオホスフェート（ホスホロチオエート；（ＨＯ）２（Ｓ）Ｐ－Ｏ－５’）；５’－モノジチオホスフェート（ホスホロジチオエート；（ＨＯ）（ＨＳ）（Ｓ）Ｐ－Ｏ－５’）、５’－ホスホロチオレート（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ－Ｓ－５’）；酸素／硫黄置換一リン酸、二リン酸、及び三リン酸（例えば、５’－α－チオ三リン酸、５’－γ－チオ三リン酸など）、５’－ホスホラミデート（（ＨＯ）２（Ｏ）Ｐ－ＮＨ－５’、（ＨＯ）（ＮＨ２）（Ｏ）Ｐ－Ｏ－５’）、５’－アルキルホスホネート（Ｒ＝アルキル＝メチル、エチル、イソプロピル、プロピルなど、例えば、ＲＰ（ＯＨ）（Ｏ）－Ｏ－５’－、５’－アルケニルホスホネート（即ち、ビニル、置換ビニル）、（ＯＨ）２（Ｏ）Ｐ－５’－ＣＨ２－）、５’－アルキルエーテルホスホネート（Ｒ＝アルキルエーテル＝メトキシメチル（ＭｅＯＣＨ２－）、エトキシメチルなど、例えば、ＲＰ（ＯＨ）（Ｏ）－Ｏ－５’－）の任意のさらなる組み合わせが挙げられる。
標的遺伝子
限定されるものではないが、ｓｉＲＮＡの標的遺伝子としては、限定されるものではないが、不要な細胞増殖を促進する遺伝子、増殖因子遺伝子、増殖因子受容体遺伝子、遺伝子発現キナーゼ、アダプタータンパク質遺伝子、Ｇプロテインスーパーファミリー分子をコードする遺伝子、転写因子をコードする遺伝子、血管新生を媒介する遺伝子、ウイルス遺伝子、ウイルス複製に必要な遺伝子、ウイルス機能を媒介する細胞遺伝子、細菌性病原体の遺伝子、アメーバ性病原体の遺伝子、寄生体病原体の遺伝子、真菌性病原体の遺伝子、不要な免疫応答を媒介する遺伝子、疼痛のプロセシングを媒介する、神経疾患を媒介する遺伝子、ヘテロ接合性喪失によって特徴付けられる細胞に見出される対立遺伝子、又は多型遺伝子の１つの対立遺伝子が挙げられる。
ｓｉＲＮＡの特定の例示的な標的遺伝子としては、限定されるものではないが、ＰＣＳＫ－９、ＡｐｏＣ３、ＡＴ３、ＡＧＴ、ＡＬＡＳ１、ＴＭＰＲ、ＨＡＯ１、ＡＧＴ、Ｃ５、ＣＣＲ－５、ＰＤＧＦ ｂｅｔ遺伝子；Ｅｒｂ－Ｂ遺伝子、Ｓｒｃ遺伝子；ＣＲＫ遺伝子；ＧＲＢ２遺伝子；ＲＡＳ遺伝子；ＭＥＫＫ遺伝子；ＪＮＫ遺伝子；ＲＡＦ遺伝子；Ｅｒｋ１／２遺伝子；ＰＣＮＡ（ｐ２１）遺伝子；ＭＹＢ遺伝子；ｃ－ＭＹＣ遺伝子；ＪＵＮ遺伝子；ＦＯＳ遺伝子；ＢＣＬ－２遺伝子；サイクリンＤ遺伝子；ＶＥＧＦ遺伝子；ＥＧＦＲ遺伝子；サイクリン遺伝子；サイクリンＥ遺伝子；ＷＮＴ－１遺伝子；β－カテニン遺伝子；ｃ－ＭＥＴ遺伝子；ＰＫＣ遺伝子；ＮＦＫＢ遺伝子；ＳＴＡＴ３遺伝子；サバイビン遺伝子；Ｈｅｒ２／Ｎｅｕ遺伝子；トポイソメラーゼＩ遺伝子；トポイソメラーゼＩＩ α遺伝子；ｐ７３遺伝子；ｐ２１（ＷＡＦ１／ＣＩＰ１）遺伝子、ｐ２７（ＫＩＰ１）遺伝子；ＰＰＭ１Ｄ遺伝子；カベオリンＩ遺伝子；ＭＩＢ Ｉ遺伝子；ＭＴＡＩ遺伝子；Ｍ６８遺伝子；腫瘍抑制遺伝子；ｐ５３遺伝子；ＤＮ－ｐ６３遺伝子；ｐＲｂ腫瘍抑制遺伝子；ＡＰＣ１腫瘍抑制遺伝子；ＢＲＣＡ１腫瘍抑制遺伝子；ＰＴＥＮ腫瘍抑制遺伝子；ＭＬＬ融合遺伝子、例えば、ＭＬＬ－ＡＦ９、ＢＣＲ／ＡＢＬ融合遺伝子；ＴＥＬ／ＡＭＬ１融合遺伝子；ＥＷＳ／ＦＬＩ１融合遺伝子；ＴＬＳ／ＦＵＳ１融合遺伝子；ＰＡＸ３／ＦＫＨＲ融合遺伝子；ＡＭＬ１／ＥＴＯ融合遺伝子；α ｖ－インテグリン遺伝子；Ｆｌｔ－１受容体遺伝子；チューブリン遺伝子；ヒトパピローマウイルス遺伝子、ヒトパピローマウイルス複製に必要な遺伝子、ヒト免疫不全ウイルス遺伝子、ヒト免疫不全ウイルス複製に必要な遺伝子、Ａ型肝炎ウイルス遺伝子、Ａ型肝炎ウイルス複製に必要な遺伝子、Ｂ型肝炎ウイルス遺伝子、Ｂ型肝炎ウイルス複製に必要な遺伝子、Ｃ型肝炎ウイルス遺伝子、Ｃ型肝炎ウイルス複製に必要な遺伝子、Ｄ型肝炎ウイルス遺伝子、Ｄ型肝炎ウイルス複製に必要な遺伝子、Ｅ型肝炎ウイルス遺伝子、Ｅ型肝炎ウイルス複製に必要な遺伝子、Ｆ型肝炎ウイルス遺伝子、Ｆ型肝炎ウイルス複製に必要な遺伝子、Ｇ型肝炎ウイルス遺伝子、Ｇ型肝炎ウイルス複製に必要な遺伝子、Ｈ型肝炎ウイルス遺伝子、Ｈ型肝炎ウイルス複製に必要な遺伝子、呼吸器合胞体ウイルス遺伝子、呼吸器合胞体ウイルス複製に必要な遺伝子、単純ヘルペスウイルス遺伝子、単純ヘルペスウイルス複製に必要な遺伝子、ヘルペスサイトメガロウイルス遺伝子、ヘルペスサイトメガロウイルス複製に必要な遺伝子、ヘルペスエプスタインバーウイルス遺伝子、ヘルペスエプスタインバーウイルス複製に必要な遺伝子、カポジ肉腫関連ヘルペスウイルス遺伝子、カポジ肉腫関連ヘルペスウイルス複製に必要な遺伝子、ＪＣウイルス遺伝子、ＪＣウイルス複製に必要なヒト遺伝子、ミクソウイルス遺伝子、ミクソウイルス遺伝子複製に必要な遺伝子、ライノウイルス遺伝子、ライノウイルス複製に必要な遺伝子、コロナウイルス遺伝子、コロナウイルス複製に必要な遺伝子、ウエストナイルウイルス遺伝子、ウエストナイルウイルス複製に必要な遺伝子、セントルイス脳炎遺伝子、セントルイス脳炎複製に必要な遺伝子、ダニ媒介性脳炎ウイルス遺伝子、ダニ媒介性脳炎ウイルス複製に必要な遺伝子、マリーバレー脳炎ウイルス遺伝子、マリーバレー脳炎ウイルス複製に必要な遺伝子、デングウイルス遺伝子、デングウイルス遺伝子複製に必要な遺伝子、シミアンウイルス４０遺伝子、シミアンウイルス４０複製に必要な遺伝子、ヒトＴ細胞リンパ向性ウイルス遺伝子、ヒトＴ細胞リンパ向性ウイルス複製に必要な遺伝子、モロニー－マウス白血病ウイルス遺伝子、モロニー－マウス白血病ウイルス複製に必要な遺伝子、脳心筋炎ウイルス遺伝子、脳心筋炎ウイルス複製に必要な遺伝子、麻疹ウイルス遺伝子、麻疹ウイルス複製に必要な遺伝子、水痘・帯状疱疹ウイルス遺伝子、水痘・帯状疱疹ウイルス複製に必要な遺伝子、アデノウイルス遺伝子、アデノウイルス複製に必要な遺伝子、黄熱病ウイルス遺伝子、黄熱病ウイルス複製に必要な遺伝子、ポリオウイルス遺伝子、ポリオウイルス複製に必要な遺伝子、ポックスウイルス遺伝子、ポックスウイルス複製に必要な遺伝子、プラスモジウム（ｐｌａｓｍｏｄｉｕｍ）遺伝子、プラスモジウム（ｐｌａｓｍｏｄｉｕｍ）遺伝子複製に必要な遺伝子、マイコバクテリウム・ウルセランス（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｕｌｃｅｒａｎｓ）遺伝子、マイコバクテリウム・ウルセランス（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｕｌｃｅｒａｎｓ）複製に必要な遺伝子、結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）遺伝子、結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）複製に必要な遺伝子、らい菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｅｐｒａｅ）遺伝子、らい菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｅｐｒａｅ）複製に必要な遺伝子、黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ）遺伝子、黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ）複製に必要な遺伝子、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）遺伝子、肺炎連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）複製に必要な遺伝子、化膿連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ）遺伝子、化膿連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｙｏｇｅｎｅｓ）複製に必要な遺伝子、クラミジア肺炎菌（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）遺伝子、クラミジア肺炎菌（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）複製に必要な遺伝子、マイコプラズマ肺炎菌（Ｍｙｃｏｐｌａｓｍａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）遺伝子、マイコプラズマ肺炎菌（Ｍｙｃｏｐｌａｓｍａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）複製に必要な遺伝子、インテグリン遺伝子、セレクチン遺伝子、補体系遺伝子、ケモカイン遺伝子、ケモカイン受容体遺伝子、ＧＣＳＦ遺伝子、Ｇｒｏ１遺伝子、Ｇｒｏ２遺伝子、Ｇｒｏ３遺伝子、ＰＦ４遺伝子、ＭＩＧ遺伝子、前血小板塩基性タンパク質遺伝子、ＭＩＰ－１Ｉ遺伝子、ＭＩＰ－１Ｊ遺伝子、ＲＡＮＴＥＳ遺伝子、ＭＣＰ－１遺伝子、ＭＣＰ－２遺伝子、ＭＣＰ－３遺伝子、ＣＭＢＫＲ１遺伝子、ＣＭＢＫＲ２遺伝子、ＣＭＢＫＲ３遺伝子、ＣＭＢＫＲ５ｖ、ＡＩＦ－１遺伝子、Ｉ－３０９遺伝子、イオンチャネルの構成要素の遺伝子、神経伝達物質受容体の遺伝子、神経伝達物質リガンドの遺伝子、アミロイドファミリー遺伝子、プレセニリン遺伝子、ＨＤ遺伝子、ＤＲＰＬ遺伝子、ＳＣＡ１遺伝子、ＳＣＡ２遺伝子、ＭＪＤ１遺伝子、ＣＡＣＮＬ１Ａ４遺伝子、ＳＣＡ７遺伝子、ＳＣＡ８遺伝子、ヘテロ接合性喪失（ＬＯＨ）細胞に見出される対立遺伝子、多型遺伝子の１つの対立遺伝子及びそれらの組み合わせが挙げられる。
ヘテロ接合性喪失（ＬＯＨ）は、ＬＯＨの領域に、配列、例えば、遺伝子へのヘミ接合をもたらし得る。これは、正常細胞と疾患状態の細胞、例えば、癌細胞との間に有意な遺伝的差異が生じさせ得、正常細胞と疾患状態の細胞、例えば、癌細胞との間の有用な差異を提供する。この差異は、遺伝子又は他の配列が、二倍体細胞においてヘテロ接合性であるが、ＬＯＨを有する細胞ではヘミ接合性であるため、起こり得る。ＬＯＨの領域は、多くの場合、喪失によって不要な増殖を促進する遺伝子、例えば、腫瘍抑制遺伝子、及び例えば、他の遺伝子、一部の例では、正常な機能、例えば、成長に不可欠な遺伝子を含む他の配列を含む。本発明の方法は、部分的に、本発明の組成物による必須遺伝子の１つの対立遺伝子の特異的な調節に依拠するものである。
特定の実施形態では、本発明は、マイクロＲＮＡを調節する本発明の化合物を提供する。
中枢神経系のターゲティング
一部の実施形態では、本発明は、早期発症型家族性アルツハイマー病のためにＡＰＰ、脊髄小脳失調２及びＡＬＳのためにＡＴＸＮ２、並びに筋萎縮性側索硬化症及び前頭側頭認知症のためにＣ９ｏｒｆ７２を標的とする化合物を提供する。
一部の実施形態では、本発明は、ＡＬＳのためにＴＡＲＤＢＰ、前頭側頭認知症のためにＭＡＰＴ（タウ）、及びハンチントン病のためにＨＴＴを標的とする化合物を提供する。
一部の実施形態では、本発明は、パーキンソン病のためにＳＮＣＡ、ＡＬＳのためにＦＵＳ、脊髄小脳失調３のためにＡＴＸＮ３、ＳＣＡ１のためにＡＴＸＮ１、ＳＣＡ７及びＳＣＡ８のために遺伝子、ＤＲＰＬＡのためにＡＴＮ１、ＸＬＭＲのためにＭｅＣＰ２、プリオン病、劣性中枢神経系疾患：ラフォラ病のためにＰＲＮＰ、ＤＭ１のためにＤＭＰＫ（中枢神経系及び骨格筋）、及びｈＡＴＴＲのためにＴＴＲ（中枢神経系、眼内及び全身）を標的とする化合物を提供する。
脊髄小脳失調は、遺伝性脳機能障害である。ＳＣＡ１－８などの優性遺伝型の脊髄小脳失調は、疾患修飾治療のない重篤な疾患である。例示的な標的としては、ＳＣＡ２、ＳＣＡ３、及びＳＣＡ１が挙げられる。
ＳＣＡ２のためのＡＴＸＮ２のターゲティング
進行性失調症である脊髄小脳失調２（ＳＣＡ２）は、２番目に多いＳＣＡである。この標的に関連する別の疾患は、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）である。これらの疾患は、疾患修飾治療のない、消耗性の、最終的には致死性の疾患である。ＳＣＡの有病率は、１００，０００人当たり２～６人であり；ＡＴＸＮ２は、世界のＳＣＡ人口の１５％及び一部の国、特にキューバ（１００，０００人当たり４０人）でははるかに多いＳＣＡ人口を引き起こす。ヒト分子遺伝学によるＡＴＸＮ２のターゲティングが優良であり得、例えば、ＡＴＸＮ２におけるコードＣＡＧリピート伸長が、家族性及び孤発性ＳＣＡ及びＡＬＳで、脊髄、脳幹、又は小脳などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＡＴＸＮ２の常染色体優性コードＣＡＧ伸長が、有害なミスフォールドタンパク質の発現及びプルキンエ細胞及び神経細胞死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＡＴＸＮ２ ｍＲＮＡの７０％のノックダウン（ＫＤ）によって示され；ｍＡＴＸＮ２マウスＫＤ ＰＯＣが実証された。安全性に関して、ｍＡＴＸＮ２ノックアウト（ＫＯ）マウスは、健常であると報告された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＣＡＧ ｍＲＮＡ及びペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
ＳＣＡ３のためのＡＴＸＮ３のターゲティング
進行性失調症である脊髄小脳失調３（ＳＣＡ３）は、世界で最も多いＳＣＡである。この疾患は、疾患修飾治療のない、消耗性の、最終的に致死性の疾患である。それは、ＳＣＡの最も多い原因であり、ＳＣＡの有病率は、１００，０００人当たり２～６人であり；ＡＴＸＮ３は、米国のＳＣＡ人口の２１％を引き起こし、欧州、特にポルトガルではるかに多い。ヒト分子遺伝学によるＡＴＸＮ３のターゲティングが優良であり得、例えば、ＡＴＸＮ３におけるコードＣＡＧリピート伸長が、家族性及び孤発性ＳＣＡで、脊髄、脳幹、又は小脳などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＡＴＸＮ３の常染色体優性コードＣＡＧ伸長が、有害なミスフォールドタンパク質の発現、プルキンエ細胞及び神経細胞死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＡＴＸＮ３ ｍＲＮＡの７０％のＫＤによって示され；ｍＡＴＸＮ３ ＫＤマウスＰＯＣが実証された。安全性に関して、ｍＡＴＸＮ３ ＫＯマウスは、健常であると報告された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＣＡＧ ｍＲＮＡ及びペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
ＳＣＡ１のためのＡＴＸＮ１のターゲティング
進行性失調症である脊髄小脳失調１（ＳＣＡ１）は、１９９３年に発見された最初のＳＣＡ遺伝子である。この疾患は、疾患修飾治療のない、消耗性の、最終的に致死性の疾患である。ＳＣＡの有病率は、１００，０００人当たり２～６人であり；ＡＴＸＮ１は、米国及び世界のＳＣＡ人口の６％を引き起こし、一部の国（日本では２５％）、特にポーランド（６４％）及びシベリア（１００％）でははるかに多い。ヒト分子遺伝学によるＡＴＸＮ１のターゲティングが優良であり得、例えば、ＡＴＸＮ１におけるコードＣＡＧリピート伸長が、家族性及び孤発性ＳＣＡで、脊髄、脳幹、又は小脳などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＡＴＸＮ１の常染色体優性コードＣＡＧ伸長が、有害なミスフォールドタンパク質の発現、プルキンエ細胞及び神経細胞死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＡＴＸＮ１ ｍＲＮＡの７０％のＫＤによって示され；ｍＡＴＸＮ１マウスＰＯＣが実証された。安全性に関して、ｍＡＴＸＮ１ ＫＯマウスは、健常であると報告された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＣＡＧ ｍＲＮＡ及びペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
ＳＣＡ７のためのＡＴＸＮ７のターゲティング
脊髄小脳失調７（ＳＣＡ７）は、進行性失調症及び網膜変性を引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、消耗性の、最終的に致死性の網膜及び小脳疾患である。ＳＣＡの有病率は、１００，０００人当たり２～６人であり；ＡＴＸＮ７は、世界のＳＣＡ人口の５％を引き起こし、一部の国、特に南アフリカでははるかに多い。ヒト分子遺伝学によるＡＴＸＮ７のターゲティングが優良であり得、例えば、ＡＴＸＮ７におけるコードＣＡＧリピート伸長が、家族性及び孤発性ＳＣＡで、脊髄、脳幹、小脳、又は網膜などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＡＴＸＮ１の常染色体優性コードＣＡＧ伸長が、有害なミスフォールドタンパク質の発現、原因となる錐体杆体変性、プルキンエ細胞及び神経細胞致死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、髄腔内（ＩＴ）及び硝子体内（ＩＶＴ）投与による、ＡＴＸＮ１ ｍＲＮＡの７０％のＫＤによって示された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＣＡＧ ｍＲＮＡ及びペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
ＳＣＡ８のためのＡＴＸＮ８のターゲティング
脊髄小脳失調８（ＳＣＡ８）、進行性神経変性失調は、ＡＴＸＮ８におけるＣＴＧリピート伸長によって引き起こされる。この疾患は、疾患修飾治療のない、消耗性の、最終的に致死性の疾患である。有病率：ＳＣＡは、１００，０００人当たり２～６人であり；ＡＴＸＮ８は、世界のＳＣＡ人口の３％を引き起こし、一部の国、特にフィンランドでははるかに多い。ヒト分子遺伝学によるＡＴＸＮ８のターゲティングが優良であり得、例えば、ＡＴＸＮ８におけるコードＣＴＧリピート伸長が、家族性及び孤発性ＳＣＡで、脊髄、脳幹、又は小脳などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＡＴＸＮ８の常染色体優性コードＣＴＧ伸長が、有害なミスフォールドタンパク質の発現、原因となるプルキンエ細胞及び神経細胞致死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＡＴＸＮ８ ｍＲＮＡの７０％のＫＤによって示された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＣＴＧ ｍＲＮＡ及びペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
ＳＣＡ６のためのＣＡＣＮＡ１Ａのターゲティング
脊髄小脳失調６（ＳＣＡ６）は、進行性失調症である。この疾患は、疾患修飾治療のない、消耗性の、最終的に致死性の疾患である。ＳＣＡの有病率は、１００，０００人当たり２～６人であり；ＣＡＣＮＡ１Ａは、世界のＳＣＡ人口の１５％を引き起こす。ヒト分子遺伝学によるＣＡＣＮＡ１Ａのターゲティングが優良であり得、例えば、ＣＡＣＮＡ１ＡにおけるコードＣＡＧリピート伸長が、家族性及び孤発性ＳＣＡで、脊髄、脳幹、又は小脳などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＣＡＣＮＡ１Ａの常染色体優性コードＣＡＧ伸長が、有害なミスフォールドタンパク質の発現及びプルキンエ細胞及び神経細胞死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＣＡＣＮＡ１Ａ ＣＡＧ伸長の７０％のＫＤによって示された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＣＡＧ ｍＲＮＡ及びペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
遺伝性ポリグルタミン障害の例示的な標的は、ハンチントン病（ＨＤ）を含む。
ハンチントン病のためのＨＴＴのターゲティング
ハンチントン病突然変異は、進行性中枢神経系変性疾患であるＨＤを引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、消耗性の、最終的に致死性の疾患である。ＨＤの有病率は、世界的に１００，０００人当たり５～１０人であり、いくつかの国、特にベネズエラでははるかに多い。ヒト分子遺伝学によるＨＴＴのターゲティングが優良であり得、例えば、ＨＴＴにおけるコードＣＡＧリピート伸長が、家族性及び孤発性ＨＤで、線条体、又は大脳皮質などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＨＴＴの常染色体優性コードＣＡＧ伸長が、有害なミスフォールドタンパク質の発現及び神経細胞死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＨＴＴ ＣＡＧ伸長のみの７０％のＫＤによって示され；マウスＰＯＣが実証された。安全性に関して、マウスにおけるＨＴＴのＫＯは、致死的であり得；ヒトにおけるＫＤが実証された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ｍＲＮＡ及びペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
ＤＲＰＬＡのためのＡＴＮ１のターゲティング
アトロフィン１突然変異は、ＨＤと類似の進行性脊髄小脳疾患である、歯状核赤核・淡蒼球ルイ体萎縮症（ＤＲＰＬＡ）を引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、消耗性の、最終的に致死性の疾患である。ＤＲＰＬＡの有病率は、日本で１，０００，０００人当たり２～７人である。ヒト分子遺伝学によるＡＴＮ１のターゲティングが優良であり得、例えば、ＡＴＮ１におけるコードＣＡＧリピート伸長が、家族性及び孤発性ＳＣＡで、脊髄、脳幹、小脳、又は大脳皮質などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＡＴＮ１の常染色体優性コードＣＡＧ伸長が、有害なミスフォールドタンパク質の発現及び神経細胞死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＡＴＮ１の７０％のＫＤによって示された。安全性に関して、ＡＴＮ１ ＫＯマウスは、健常であると報告された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＣＡＧ ｍＲＮＡ及びペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
球脊髄性筋萎縮症のためのＡＲのターゲティング
アンドロゲン受容体突然変異は、進行性筋肉消耗疾患である球脊髄性筋萎縮症（ＳＢＭＡ、ケネディ病）、及び他の疾患を引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、消耗性の、最終的に致死性の疾患である。ＳＢＭＡの有病率は、男性１００，０００人当たり２人であり；女性は、軽度の表現型を有する。ヒト分子遺伝学によるＡＲのターゲティングが優良であり得、例えば、ＡＲにおけるコードＣＡＧリピート伸長が、家族性ＳＢＭＡで、脊髄、又は脳幹などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＡＲのＸ連鎖コードＣＡＧ伸長が、有害な機能獲得及び運動ニューロン致死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＡＲの７０％のＫＤによって示された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＣＡＧ ｍＲＮＡ及びペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
フリードライヒ運動失調症のためのＦＸＮのターゲティング
ＦＸＮの劣性機能喪失型ＧＡＡ伸長は、進行性変性運動失調であるフリードライヒ運動失調症（ＦＡ）を引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、消耗性の、最終的に致死性の疾患である。ＦＡの有病率は、世界的に１００，０００人当たり２人である。ヒト分子遺伝学によるＦＸＮのターゲティングが優良であり得、例えば、ＦＸＮにおけるイントロンＧＡＡリピート伸長が、家族性ＦＡで、脊髄、小脳、又はおそらく網膜及び心臓などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＦＸＮの常染色体劣性非コードＦＡＡ伸長が、重要なミトコンドリアタンパク質であるＦＸＮの発現の低下を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＦＸＮイントロンＧＡＳ伸長の７０％のＫＤによって示された。安全性に関して、イントロンＧＡＡのＫＤは、マウスにおいて、安全で且つ有効である。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ｍＲＮＡ及びペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
ＦＸＴＡＳのためのＦＭＲ１のターゲティング
成人の運動失調及び認知障害の進行性疾患である脆弱Ｘ関連振戦／運動失調症候群（ＦＸＴＡＳ）は、ＦＭＲ１過剰発現によって引き起こされる。この疾患は、疾患修飾治療のない、重篤な疾患である。ＦＭＲ１前突然変異の有病率は、男性５００人当たり１人である。ヒト分子遺伝学によるＦＭＲ１のターゲティングが優良であり得、例えば、ＦＭＲ１におけるコードＣＣＧリピート伸長前突然変異が、ＦＸＴＡＳで、脊髄、小脳、又は大脳皮質などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＦＭＲ１のＸ連鎖コードＣＣＧ伸長が、毒性ｍＲＮＡを引き起こすことによるものであり得る。有効性は、毒性ｍＲＮＡの７０％のＫＤによって示された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ｍＲＮＡ及びペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
脆弱性Ｘ症候群のためのＦＭＲ１の上流のターゲティング
精神遅滞の進行性疾患である脆弱性Ｘ症候群（ＦＲＡＸＡ）は、ＦＭＲ１の上流ｍＲＮＡを標的にすることによって治療され得る。この疾患は、疾患修飾治療のない、消耗性の疾患である。ＦＲＡＸＡの有病率は、男性４，０００人当たり１人及び女性８，０００人当たり１人である。ヒト分子遺伝学によるＦＭＲ１のターゲティングが優良であり得、例えば、ＦＭＲ１におけるコードＣＣＧリピート伸長が、ＦＲＡＸＡで、中枢神経系などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＦＭＲ１のＸ連鎖コードＣＣＧ伸長が、ＬＯＦを引き起こすことによるものであり得；正常なＦＭＲ１は、特異的ｍＲＮＡを核から輸送するように機能する。有効性は、毒性ｍＲＮＡの７０％のＫＤによって示された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ｍＲＮＡ及びペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
優性遺伝性筋萎縮性側索硬化症は、疾患修飾治療のない重篤な疾患である。例示的な標的は、Ｃ９ｏｒｆ７２、ＡＴＸＮ２（ＳＣＡ２も引き起こす）、及びＭＡＰＴを含む。
ＡＬＳのためのＣ９ｏｒｆ７２のターゲティング
Ｃ９ｏｒｆ７２は、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）及び前頭側頭認知症（ＦＴＤ）の最も多い原因である。これらの疾患は、疾患修飾治療のない、運動ニューロンの致死性疾患である。ＡＬＳの有病率は、１００，０００人当たり２～５人であり（１０％は家族性である）；Ｃ９ｏｒｆ７２は、米国及び欧州の家族性ＡＬＳの３９％及び孤発性ＡＬＳの７％を引き起こす。ヒト分子遺伝学によるＣ９ｏｒｆ７２のターゲティングが優良であり得、例えば、ヘキサヌクレオチド伸長が、家族性及び孤発性ＡＬＳで、上位及び下位運動ニューロン（ＡＬＳについて）；又は大脳皮質（ＦＴＤについて）などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、常染色体優性ヘキサヌクレオチド伸長が、毒性のジペプチドリピートタンパク質のリピート関連非ＡＵＧ依存性翻訳及び神経細胞致死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、Ｃ９ｏｒｆ７２の７０％のＫＤによって示された。安全性に関して、Ｃ９ｏｒｆ７２のへテロ接合ＬＯＦ突然変異は、ヒト及びマウスにおいて安全であるようである。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦヘキサヌクレオチドリピートｍＲＮＡ及びジペプチドリピートタンパク質が挙げられる。
ＡＬＳのためのＴＡＲＤＢＰのターゲティング
ＴＡＲＤＢＰ突然変異は、ＡＬＳ及び前頭側頭認知症（ＦＴＤ）を引き起こす。これらの疾患は、疾患修飾治療のない、運動ニューロンの致死性疾患である。ＡＬＳの有病率は、１００，０００人当たり２～５人であり（１０％は家族性である）；ＴＡＲＤＢＰは、家族性ＡＬＳの５％及び孤発性ＡＬＳの１．５％を引き起こす。ヒト分子遺伝学によるＴＡＲＤＢＰのターゲティングが優良であり得、例えば、突然変異が、家族性及び孤発性ＡＬＳで、上位及び下位運動ニューロン（ＡＬＳについて）；又は大脳皮質（ＦＴＤについて）などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、常染色体優性ＴＲＤＢＰ突然変異が、有害なＴＲＤＢＰタンパク質及び神経細胞致死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＴＡＲＤＢＰ変異対立遺伝子の７０％のＫＤによって示された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦタンパク質が挙げられる。
ＡＬＳのためのＦＵＳのターゲティング
ＦＵＳ突然変異は、ＡＬＳ及びＦＴＤを引き起こす。これらの疾患は、疾患修飾治療のない、運動ニューロンの致死性疾患である。ＡＬＳの有病率は、１００，０００人当たり２～５であり（１０％は家族性である）；ＦＵＳは、家族性ＡＬＳの５％を引き起こし；ＦＵＳ封入体が、多くの場合、孤発性ＡＬＳにおいて見られる。ヒト分子遺伝学によるＦＵＳのターゲティングが優良であり得、例えば、突然変異が、家族性ＡＬＳで、ＡＬＳについて上位及び下位運動ニューロンなどの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、常染色体優性ＦＵＳ突然変異は、異常なタンパク質フォールディング及び神経細胞致死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＦＵＳ変異対立遺伝子の７０％のＫＤによって示された。安全性に関して、ＫＯマウスは、悶え反応を示すが生存し、ＡＤＨＤ表現型を有する。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦタンパク質が挙げられる。
ＡＬＳのためのＳＯＤ１のターゲティング
ＳＯＤ１の優性及び劣性突然変異は、ＡＬＳを引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、運動ニューロンの致死性疾患である。ＡＬＳの有病率は、１００，０００人当たり２～５人であり（１０％は家族性である）；ＳＯＤ１は、家族性ＡＬＳの５～２０％を引き起こす。ヒト分子遺伝学によるＳＯＤ１のターゲティングが優良であり得、例えば、多くのＳＯＤ１突然変異が、ＡＬＳについて上位及び下位運動ニューロンなどの組織において、家族性のＡＤ及びＡＲ ＡＬＳと関連している。このターゲティングの有効性は、突然変異特異的ＫＤを必要とし得る。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。バイオマーカーは、突然変異特異的であり得る。
優性遺伝性前頭側頭認知症及び進行性核上性まひ。標的は、ＭＡＰＴを含むが、これは、ＭＡＰＴが、ＡＤ、又はＣ９ｏｒｆ７２にとって重要であり得るためである。
ＦＴＤ－１７及びＰＳＰのための微小管結合タンパク質タウのターゲティング
１７番染色体に連鎖する家族性ＦＴＤである家族性前頭側頭認知症１７（ＦＴＤ－１７）、及び家族性進行性核上性まひは、ＭＡＰＴ突然変異によって引き起こされ得、ＭＡＰＴ突然変異は、珍しい型の進行性核上性まひ、大脳皮質基底核変性症、呼吸不全を伴うタウオパチー、発作を伴う認知症も引き起こし得る。これらの疾患は、疾患修飾治療のない、致死性の神経変性疾患である。ＦＴＤの有病率は、１００，０００人当たり１５～２２であり；オランダにおけるＦＴＤ－１７の有病率は、人口１，０００，０００人当たり１人である。ヒト分子遺伝学によるＭＡＰＴのターゲティングが優良であり得、例えば、ＭＡＰＴのＧＯＦ点及びスプライス部位突然変異が、家族性及び孤発性ＦＴＤで、前頭葉又は側頭葉などの組織において発見された。このターゲティングのメカニズムは、ＭＡＰＴの常染色体優性ＧＯＦ突然変異が、有害なタウペプチド及び神経細胞死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＭＡＰＴの７０％のＫＤによって示された。安全性に関して、ＭＡＰＴ ＫＯマウスは、健常であると報告された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦタウｍＲＮＡ及びタンパク質が挙げられる。
ＦＴＤ及びＡＬＳのためのセクエストソーム１のターゲティング
孤発性ＦＴＤ／ＡＬＳは、優性ＳＱＳＴＭ１突然変異と関連している。この疾患は、疾患修飾治療のない、致死性の神経変性疾患である。これは、極めて希少な疾患である。ヒト分子の遺伝的関連によるセクエストソーム１のターゲティングは、孤発性の症例で、前頭葉及び側頭葉、又は小脳及び脊髄などの組織において、合理的である。可能性のある診断は、遺伝子検査；早期症状を含む。
優性遺伝性パーキンソン病は、疾患修飾治療のない重篤な疾患である。標的は、ＳＮＣＡを含む。
パーキンソン病のためのＳＮＣＡのターゲティング
αシヌクレイン突然変異は、家族性パーキンソン病（ＰＤ）及びレビー小体型認知症を引き起こす。これらの疾患は、疾患修飾治療のない、致死性の神経変性疾患である。ＰＤの有病率は、世界で４００万人であり；ＰＤの１／３が家族性であり；ｆＰＤの１％が、ＳＮＣＡによって引き起こされる。ヒト分子遺伝学によるＳＮＣＡのターゲティングが優良であり得、例えば、ＳＮＣＡ点突然変異及び重複が、延髄；又は中脳の黒質などの組織において、家族性ＰＤを引き起こす。このターゲティングのメカニズムは、過剰発現又は異常なＳＮＣＡタンパク質の発現が、毒性ペプチド及び神経細胞死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＳＮＣＡの７０％のＫＤによって示された。安全性に関して、ＳＮＣＡ ＫＯマウスは、健常である。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＳＮＣＡ ｍＲＮＡ及びタンパク質が挙げられる。
パーキンソン病のためのＬＲＲＫ２のターゲティング
ロイシンリッチリピートキナーゼ２突然変異は、家族性パーキンソン病を引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、致死性の神経変性疾患である。ＰＤの有病率は、世界で４００万人であり；ＰＤの１／３が家族性であり；ｆＰＤの３～７％が、ＬＲＲＫ２によって引き起こされる。ヒト分子遺伝学によるＬＲＲＫ２のターゲティングが優良であり得、例えば、ＬＲＲＫ２点突然変異が、延髄；又は中脳の黒質などの組織において、家族性ＰＤを引き起こす。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ｍＲＮＡ及びタンパク質が挙げられる。
脊髄性筋萎縮症ＶのためのＧＡＲＳのターゲティング
常染色体優性Ｇｌｙｃｙｌ－ｔＲＮＡシンテターゼ突然変異は、脊髄性筋萎縮症Ｖ（ＳＭＡＶ）又は遠位遺伝性運動神経障害Ｖａを引き起こす。これらの疾患は、疾患修飾治療のない、神経変性疾患である。これらは、極めて希少な疾患である。ヒト分子遺伝学によるＧＡＲのターゲティングは良好であり得、例えば、ＧＡＲＳ点突然変異が、脊髄などの組織において、家族性ＳＭＡを引き起こす。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；早期症状を含む。
脊髄性筋萎縮症のためのセイピンのターゲティング
常染色体優性セイピン突然変異は、脊髄性筋萎縮症（ＳＭＡ）又は遠位遺伝性運動神経障害を引き起こす。これらの疾患は、疾患修飾治療のない、神経変性疾患である。これらは、極めて希少な疾患である。ヒト分子遺伝学によるセイピンのターゲティングは良好であり得、例えば、セイピン点突然変異が、脊髄などの組織において、家族性ＳＭＡを引き起こす。このターゲティングのメカニズムは、おそらくＧＯＦ及び毒性ペプチドである。有効性は、５０％のＫＤによって示された。安全性に関して、劣性ＬＯＦ突然変異が、リポジストロフィーを伴うか又は伴わない進行性脳症を引き起こす。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。
優性遺伝性アルツハイマー病は、疾患修飾治療のない重篤な疾患である。標的は、家族性疾患における中心的な機構的役割及び一般的なＡＤにおける役割の可能性のため、ＡＰＰを含む。
アルツハイマー病のためのＡＰＰのターゲティング
アミロイド前駆体タンパク質突然変異は、早期発症型家族性アルツハイマー病（ＥＯＦＡＤ）；ダウン症におけるＡＤ；又はＡＤを引き起こす。これらの疾患は、疾患修飾治療のない、致死性の神経変性疾患である。ＥＯＦＡＤ－ＡＰＰの有病率は、１％のＡＤであり；２１トリソミーの有病率は、１％のＡＤであり；ＡＤの有病率は、米国で約２５０万～５００万人である。ヒト分子遺伝学によるＡＰＰのターゲティングが優良であり得、例えば、ＡＰＰ重複及び点突然変異が、大脳皮質又は海馬などの組織において、ＥＯＦＡＤを引き起こす。このターゲティングのメカニズムは、ＡＰＰ過剰発現又は毒性代謝産物の発現が、進行性神経細胞死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＡＰＰの７０％のＫＤによって示された。安全性に関して、ＫＤマウスは、いくらかの行動異常があるものの健常であると報告され；ＫＤマウスは、いくらかの空間記憶欠陥があるものの健常であると報告された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；早期症状；又はＭＲＩを含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＡＰＰ ｍＲＮＡ及びペプチドが挙げられる。
アルツハイマー病のためのＰＳＥＮ１のターゲティング
プレセニリン１突然変異は、早期発症型家族性アルツハイマー病（ＥＯＦＡＤ）；又はＡＤを引き起こす。これらの疾患は、疾患修飾治療のない、致死性の神経変性疾患である。ヒト分子遺伝学によるＰＳＥＮ１のターゲティングが優良であり得、例えば、ＰＳＥＮ１点突然変異が、大脳皮質；又は海馬などの組織において、ＥＯＦＡＤを引き起こす。このターゲティングのメカニズムは、ＰＳＥＮ１の常染色体優性突然変異が、異常なＡＰＰ代謝を引き起こし、毒性ペプチドが、進行性神経細胞死を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＡＰＰ ＫＤがＰＳＥＮ１特異的治療の必要性をなくし得ることによって示された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；早期症状；又はＭＲＩを含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＰＳＥＮ１及びＡＰＰペプチドが挙げられる。
アルツハイマー病のためのＰＳＥＮ２のターゲティング
プレセニリン２突然変異は、早期発症型家族性アルツハイマー病（ＥＯＦＡＤ）；又はＡＤを引き起こす。これらの疾患は、疾患修飾治療のない、致死性の神経変性疾患である。ヒト分子遺伝学によるＰＳＥＮ２のターゲティングが優良であり得、例えば、ＰＳＥＮ２点突然変異は、大脳皮質又は海馬などの組織において、ＥＯＦＡＤを引き起こす。このターゲティングのメカニズムは、ＰＳＥＮ２の常染色体優性突然変異が、異常なＡＰＰ代謝を引き起こし、毒性ペプチドが、進行性神経細胞死を引き起こすことによるものであり得る。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；早期症状；又はＭＲＩを含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＰＳＥＮ２及びＡＰＰペプチドが挙げられる。
アルツハイマー病のためのＡｐｏ Ｅのターゲティング
アポリポタンパク質Ｅ４は、高齢者の孤発性ＡＤに関連している。この疾患は、疾患修飾治療のない、致死性の神経変性疾患である。ＡＤの有病率は、米国で２５０万～５００万人である。ＡｐｏＥ４とＡＤとの間の関連を裏付けるゲノム的証拠が、多くの集団において優良であるため、Ａｐｏ Ｅのターゲティングは、有効であり得る。標的組織は、大脳皮質であり得る。多くの集団における強い関連にかかわらず、Ａｐｏ Ｅ４がＡＤの発症に寄与するかどうかはまだ明らかでない。これまでのところ、データは、Ａｐｏ Ｅ４ホモ接合性が、高齢者のＡＤの増加したリスクを示すが、高齢者においてさえ、ＡＤを引き起こすのに十分でないことを示す。安全性に関して、中枢神経系におけるＡｐｏ ＥのＫＤは、Ａｐｏ ＥにおけるヒトＬＯＦ突然変異が明らかな神経学的異常に関連していないため、安全であり得るが、全身暴露は、ＩＩＩ型高リポタンパク血症を引き起こし得る。可能性のある診断は、ＡＤの臨床診断；ＥＯＦＡＤ突然変異の除外；Ａｐｏ Ｅ４遺伝子型についての遺伝子検査を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＡＰＰ、タウｍＲＮＡ及びペプチドが挙げられる。
中枢神経系遺伝子重複障害。半分の一貫したＫＤは、これらの障害を改善し得る。標的は、ＭｅＣＰ２を含む。
Ｘ連鎖精神遅滞のためのＭｅＣＰ２のターゲティング
メチルＣｐＧ結合タンパク質２遺伝子重複は、Ｘ連鎖精神遅滞（ＸＬＭＲ）を引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、致死性の認知障害である。Ｘ連鎖ＭＲの１～１５％が、ＭｅＣＰ２重複によって引き起こされ；集団の２～３％が、ＭＲを有する。ヒト分子遺伝学によるＭｅＣＰ２のターゲティングが優良であり得、例えば、ＭｅＣＰ２重複が、大脳皮質などの組織において、ＸＬＭＲを引き起こす。このターゲティングのメカニズムは、ＭｅＣＰ２過剰発現が、他の遺伝子の調節異常及び神経変性を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＭｅＣＰ２の５０％のＫＤによって示され；マウスモデルにおけるＡＳＯ ＫＤは、表現型を逆転させる。安全性に関して、ＭｅＣＰ２ ＬＯＦ突然変異は、レット症候群を引き起こし得る。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＭｅＣＰ２ ｍＲＮＡ及びペプチドが挙げられる。
優性遺伝性脳アミロイド血管症は、疾患修飾治療のない重篤な疾患である。標的は、ＴＴＲを含む。
ｈＡＴＴＲ ＣＡＡのためのＴＴＲのターゲティング
このターゲティングは、中枢神経系ｓｉＲＮＡへの手低リスクの導入であり得る。脳アミロイド血管症（ＣＡＡ）及び髄膜アミロイドは、疾患修飾治療のない、致死性疾患である。ヒト遺伝学及び薬理学によるＴＴＲのターゲティングが優良であり得る。標的組織は、中枢神経系血管系、又は中枢神経系であり得る。このターゲティングのメカニズムは、変異タンパク質が血管外膜に蓄積し、中枢神経系の出血を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＴＴＲの７０％のＫＤによって示された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ｍＲＮＡ及びタンパク質が挙げられる。
ＣＡＡのためのＩＴＭ２Ｂのターゲティング
内在性膜タンパク質２Ｂ突然変異は、脳アミロイド血管症（ＣＡＡ）、英国型又は家族性英国型認知症（ＦＢＤ）を引き起こす。特異的突然変異は、優性網膜変性も引き起こし得る。この疾患は、疾患修飾治療のない、致死性疾患である。これは、希少疾患である。ヒト分子遺伝学によるＩＴＭ２Ｂのターゲティングが優良であり得る。標的組織は、中枢神経系血管系、又は中枢神経系であり得る。このターゲティングのメカニズムは、おそらくＧＯＦ突然変異に関与する。有効性は、ＩＴＭ２Ｂ変異対立遺伝子の７０％のＫＤによって示された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ｍＲＮＡ及び可能性のあるタンパク質が挙げられる。
ＣＡＡのためのＣＳＴ３のターゲティング
シスタチンＣ突然変異は、アイスランド型家族性脳アミロイド血管症を引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、致死性疾患である。これは、アイスランド及びデンマークを除いて、希少疾患である。ヒト遺伝学によるＣＳＴ３のターゲティングが優良であり得る。標的組織は、中枢神経系血管系であり得る。このターゲティングのメカニズムは、変異タンパク質が、血管外膜に蓄積し、中枢神経系の出血を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、おそらく、変異対立遺伝子の７０％のＫＤによって示された。安全性に関して、ＣＳＴ３ ＫＯマウスは、関節炎のリスクを有し得る。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ｍＲＮＡ及び可能性のあるタンパク質が挙げられる。
痙性対麻痺のためのＳＰＡＳＴのターゲティング
ＳＰＡＳＴＩＮ突然変異は、認知障害を伴う痙性対麻痺（ＳＰ）４を引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、下位運動神経変性疾患である。ＳＰの有病率は、人口１００，０００人当たり５人であり；ＳＰ４は、優性ＳＰの４５％である。ヒト分子遺伝学によるＳＰＡＳＴのターゲティングが優良であり得、例えば、ＳＰＡＳＴトリヌクレオチド突然変異は、脊髄；又は中枢神経系などの組織において、家族性ＳＰを引き起こす。このターゲティングのメカニズムは、ナンセンス及び推定ドミナントネガティブ型突然変異が、異常な微小管代謝及び神経変性を引き起こすことによるものであり得る。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＳＰＡＳＴ ｍＲＮＡ及び可能性のあるタンパク質が挙げられる。
痙性対麻痺のためのＫＩＦ５Ａのターゲティング
キネシンファミリーメンバー５Ａ突然変異は、末梢神経障害及び他の疾患を伴う痙性対麻痺（ＳＰ）１０を引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、下位運動神経変性疾患である。ＳＰの有病率は、１００，０００人当たり５人であり；ＳＰ１０は、１，０００，０００人当たり１人である。ヒト分子遺伝学によるＫＩＦ５Ａのターゲティングが優良であり得、例えば、ＫＩＦ５Ａアミノ末端ミスセンス突然変異が、ＳＰ１０を引き起こし；ＫＩＦ５Ａが、中枢神経系において発現され、微小管モータータンパク質をコードする。標的組織は、脊髄であり得る。このターゲティングのメカニズムは、常染色体優性ミスセンス突然変異は、ＳＰ１０がおそらくモーターへの微小管の結合に影響を与えること引き起こすことによるものであり得る。有効性は、変異対立遺伝子のおそらくＫＤによって提供され得る。安全性に関して、ＫＩＦ５Ａフレームシフト型突然変異が、新生児難治性ミオクローヌスを引き起こし、スプライス部位突然変異が、おそらくＬＯＦ機構を介して、家族性ＡＬＳに関連している。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ｍＲＮＡ及び可能性のあるタンパク質が挙げられる。
痙性対麻痺のためのＡＴＬ１のターゲティング
アトラスチン突然変異は、痙性対麻痺３Ａ及び感覚神経障害１Ｄ、遺伝性感覚神経障害（ＨＳＮ）を引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、下位運動神経変性疾患である。ＳＰの有病率は、１００，０００人当たり５人であり；ＳＰ３Ａは、希少優性型である。ヒト分子遺伝学によるＡＴＬ１のターゲティングが優良であり得、例えば、ＡＴＬ１点突然変異は、家族性ＳＰを引き起こす。標的組織は、脊髄であり得る。このターゲティングのメカニズムは、ドミナントネガティブ型ＡＴＬ１タンパク質の常染色体優性発現が、ＳＰ３Ａを引き起こすが；ＬＯＦ突然変異が、感覚神経障害１Ｄを引き起こすことによるものであり得る。有効性は、特異的ＡＴＬ１対立遺伝子の７０％のＫＤによって示された。安全性に関して、ＡＴＬ１へテロ接合ＬＯＦ突然変異は、ＨＳＮ１Ｄを引き起こす。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ＡＴＬ１ ｍＲＮＡ及びタンパク質が挙げられる。
痙性対麻痺のためのＮＩＰＡ１のターゲティング
ＬＯＦ ＮＩＰＡ１突然変異は、てんかん及び発作を伴う痙性対麻痺６を引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、下位運動神経変性疾患である。ＳＰの有病率は、１００，０００人当たり５人であり；ＳＰ６は、希少優性型である。ヒト分子遺伝学によるＮＩＰＡ１のターゲティングが優良であり得、例えば、ＮＩＰＡ１点突然変異は、家族性ＳＰを引き起こす。標的組織は、脊髄；又は中枢神経系であり得る。このターゲティングのメカニズムは、欠陥膜タンパク質の常染色体優性発現が、ＳＰ３Ａ；及びおそらくＬＯＦを引き起こすことによるものであり得る。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ｍＲＮＡ及び可能性のあるタンパク質が挙げられる。
優性遺伝性筋強直性ジストロフィーは、中枢神経系及び全身治療を必要とする、中枢神経系、骨格筋及び心筋の疾患である。標的は、ＤＭ１についてはＭＰＫを含む。
筋強直性ジストロフィー１のためのＤＭＰＫのターゲティング
中枢神経系及び全身治療が、筋緊張性異栄養症プロテインキナーゼを標的とする有効な治療に必要とされた。筋強直性ジストロフィー１（ＤＭ１）は、筋肉及び中枢神経系の変性疾患である。それは、疾患修飾治療のない、致死性疾患である。ＤＭ１の有病率は、世界的に８，０００人当たり１人である。ヒト分子遺伝学によるＤＭＰＫのターゲティングが優良であり得、例えば、ＤＭＰＫ ＣＴＧリピート伸長は、家族性ＤＭ１を引き起こす。標的組織は、骨格筋、心筋、又は中枢神経系であり得る。このターゲティングのメカニズムは、常染色体優性非コードＣＴＧリピートが、異常なＲＮＡプロセシング及びドミナントネガティブ効果を引き起こし；極端な伸長からの予測が、早期発症型の疾患を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＤＭＰＫの７０％によって示され；ＡＳＯ有効性が、マウスにおいて実証された。マウスにおける安全性が、ＫＯ及びＡＳＯ ＫＤにより実証された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、血液及びＣＳＦ ｍＲＮＡ及びタンパク質が挙げられる。
筋強直性ジストロフィー２のためのＺＮＦ９のターゲティング
亜鉛フィンガータンパク質９突然変異は、骨格筋の変性疾患である筋強直性ジストロフィー２（ＤＭ２）を引き起こす。これは、疾患修飾治療のない、重篤な疾患である。ＤＭ２の有病率は、世界で８，０００人当たり１人であり；それは、成人において最も多い筋ジストロフィーである。ヒト分子遺伝学によるＺＮＦ９のターゲティングが優良であり得、例えば、イントロン１におけるＺＮＦ９ ＣＴＴＧリピート伸長が、家族性ＤＭ２を引き起こす。標的組織は、骨格筋、又は心筋であり得る。このターゲティングのメカニズムは、イントロン１における常染色体優性ＣＴＴＧリピート伸長が、異常なＲＮＡ代謝及びドミナントネガティブ効果を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、ＺＮＦ９の７０％によって示された。マウスにおける安全なＫＤが実証された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、血液ｍＲＮＡ及びタンパク質が挙げられる。
優性遺伝性プリオン病は、遺伝性、孤発性及び伝染性ＰＲＮＰ疾患である。標的は、ＰＲＮＰを含む。
筋強直性プリオン病のためのＰＲＮＰのターゲティング
筋強直性プリオン病は、ＰＲＮＰ関連脳アミロイド血管症、ゲルストマン・ストロイスラー病（ＧＳＤ）、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、致死性家族性不眠症（ＦＦＩ）、ハンチントン病様１（ＨＤＬ１）、及びクールーへの感受性を含む優性遺伝性プリオン病である。これらの疾患は、疾患修飾治療のない、致死性の神経変性疾患である。このタイプの疾患の有病率は、１，０００，０００人当たり１人である。ヒト分子遺伝学によるＰＲＮＰのターゲティングが優良であり得、例えば、ＰＲＮＰ突然変異は、家族性及び孤発性プリオン病を引き起こす。標的組織は、中枢神経系であり得る。このターゲティングのメカニズムは、常染色体優性タンパク質ミスフォールディングが、神経毒性を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、７０％のＰＲＮＰ ＫＤによって示され；ＰＲＮＰ多型は、クールーに対して保護的であるようである。安全性に関して、ＰＲＮＰ ＫＯマウスは、健常であると報告された。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ｍＲＮＡ及びタンパク質が挙げられる。
ラフォラ病のミオクローヌスてんかんのためのグリコーゲンシンターゼのターゲティング
ラフォリン（ＥＰＭ２Ａ）遺伝子突然変異は、ＡＲミオクローヌスてんかん、遺伝性進行性発作性疾患を引き起こす。この疾患は、疾患修飾治療のない、発作及び認知低下を伴う致死性疾患である。この疾患の有病率は、１，０００，０００人当たり４人である。ヒト分子遺伝学によるグリコーゲンシンターゼのターゲティングが優良であり得、例えば、突然変異は、ラフォラ病のＡＲ家族性ミオクローヌスてんかんを引き起こす。標的組織は中枢神経系であり得る。このターゲティングのメカニズムは、ラフォリンの常染色体劣性機能障害が、グリコーゲンのミスフォールディング及び発作の焦点を引き起こすことによるものであり得る。有効性は、グリコーゲンシンターゼＧＹＳ１の７０％のＫＤによって示された。安全性に関して、ＧＹＳ１欠損が、骨格筋及び心筋グリコーゲン欠損を引き起こし；生存するＧＹＳ１マウスは、筋肉異常を有する。可能性のある診断は、家族歴；遺伝子検査；又は早期症状を含む。使用され得るバイオマーカーとしては、例えば、ＣＳＦ ｍＲＮＡ及びタンパク質が挙げられる。
一部の実施形態では、本発明は、限定されるものではないが、加齢性黄斑変性症（ＡＭＤ）（ドライ型及びウェット型）、バードショット脈絡網膜炎、優性網膜色素変性症４、フックスジストロフィー、ｈＡＴＴＲアミロイド症、遺伝性及び散発性緑内障、及びシュタルガルト病を含む疾患の遺伝子を標的とする化合物を提供する。
一部の実施形態では、本発明は、ウェット型（又は滲出性）ＡＭＤのためのＶＥＧＦを標的とする化合物を提供する。
一部の実施形態では、本発明は、ドライ型（又は非滲出性）ＡＭＤのためのＣ３を標的とする化合物を提供する。
一部の実施形態では、本発明は、ドライ型（又は非滲出性）ＡＭＤのためのＣＦＢを標的とする化合物を提供する。
一部の実施形態では、本発明は、緑内障のためのＭＹＯＣを標的とする化合物を提供する。
一部の実施形態では、本発明は、緑内障のためのＲＯＣＫ２を標的とする化合物を提供する。
一部の実施形態では、本発明は、緑内障のためのＡＤＲＢ２を標的とする化合物を提供する。
一部の実施形態では、本発明は、緑内障のためのＣＡ２を標的とする化合物を提供する。
一部の実施形態では、本発明は、白内障のためのＣＲＹＧＣを標的とする化合物を提供する。
一部の実施形態では、本発明は、ドライアイ症候群のためのＰＰＰ３ＣＢを標的とする化合物を提供する。
リガンド
特定の実施形態では、本発明の化合物は、１つ以上のコンジュゲート基の共有結合によってさらに修飾される。一般に、コンジュゲート基は、限定されるものではないが、薬力学、薬物動態、結合、吸収、細胞分布、細胞取り込み、電荷及びクリアランスを含む、本発明の結合された化合物の１つ以上の特性を調節する。コンジュゲート基は、化学分野で日常的に使用されており、オリゴマー化合物などの親化合物に、直接又は任意選択の連結部分若しくは連結基を介して連結される。コンジュゲート基の好ましいリストには、限定されるものではないが、挿入剤、レポーター分子、ポリアミン、ポリアミド、ポリエチレングリコール、チオエーテル、ポリエーテル、コレステロール、チオコレステロール、コール酸部分、葉酸塩、脂質、リン脂質、ビオチン、フェナジン、フェナントリジン、アントラキノン、アダマンタン、アクリジン、フルオレセイン、ローダミン、クマリン及び色素が含まれる。
一部の実施形態では、化合物は、特定の中枢神経系組織への送達を媒介する受容体を標的とする標的化リガンドをさらに含む。これらの標的化リガンドは、特異的な髄腔内及び全身送達を可能にするために、親油性部分と組み合わせてコンジュゲートされ得る。
中枢神経系組織への受容体媒介性送達を標的とする例示的な標的化リガンドは、Ａｎｇｉｏｐｅｐ－２などのペプチドリガンド、リポタンパク質受容体関連タンパク質（ＬＲＰ）リガンド、ｂＥｎｄ．３細胞結合リガンド；トランスフェリン受容体（ＴｆＲ）リガンド（脳内の鉄輸送系及び脳実質へのカーゴ輸送を用いることができる）；マンノース受容体リガンド（嗅神経鞘細胞、グリア細胞を標的とする）、グルコーストランスポータータンパク質、及びＬＤＬ受容体リガンドである。
一部の実施形態では、化合物は、特定の眼組織への送達を媒介する受容体を標的とする標的化リガンドをさらに含む。これらの標的化リガンドは、特異的な眼内送達（例えば硝子体内送達）及び全身送達を可能にするために、親油性部分と組み合わせてコンジュゲートされ得る。眼組織への受容体媒介性送達を標的とする例示的な標的化リガンドは、オールトランスレチノール（レチノイン酸受容体を標的とする）などの親油性リガンド；Ｈ－Ｇｌｙ－Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｓｅｒ－Ｐｒｏ－Ｌｙｓ－Ｃｙｓ－ＯＨ又はＣｙｃｌｏ（－Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｄ－Ｐｈｅ－ＣｙｓなどのＲＧＤペプチド（網膜色素上皮細胞を標的とする）；ＬＤＬ受容体リガンド；及び糖質系リガンド（後眼部の内皮細胞を標的とする）である。
本発明に適した好ましいコンジュゲート基としては、コレステロール部分などの脂質部分（Ｌｅｔｓｉｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，１９８９，８６，６５５３）；コール酸（Ｍａｎｏｈａｒａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔｔ．，１９９４，４，１０５３）；チオエーテル、例えば、ヘキシル－Ｓ－トリチルチオール（Ｍａｎｏｈａｒａｎ ｅｔ ａｌ．，Ａｎｎ．Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，１９９２，６６０，３０６；Ｍａｎｏｈａｒａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔ．，１９９３，３，２７６５）；チオコレステロール（Ｏｂｅｒｈａｕｓｅｒ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．，１９９２，２０，５３３）；脂肪族鎖、例えば、ドデカンジオール又はウンデシル残基（Ｓａｉｓｏｎ－Ｂｅｈｍｏａｒａｓ ｅｔ ａｌ．，ＥＭＢＯ Ｊ．，１９９１，１０，１１１；Ｋａｂａｎｏｖ ｅｔ ａｌ．，ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．，１９９０，２５９，３２７；Ｓｖｉｎａｒｃｈｕｋ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｉｍｉｅ，１９９３，７５，４９）；リン脂質、例えば、ジ－ヘキサデシル－ｒａｃ－グリセロール又はトリエチルアンモニウム－１，２－ジ－Ｏ－ヘキサデシル－ｒａｃ－グリセロ－３－Ｈ－ホスホネート（Ｍａｎｏｈａｒａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔ．，１９９５，３６，３６５１；Ｓｈｅａ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．，１９９０，１８，３７７７）；ポリアミン又はポリエチレングリコール鎖（Ｍａｎｏｈａｒａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅｓ ＆ Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ，１９９５，１４，９６９）；アダマンタン酢酸（Ｍａｎｏｈａｒａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ Ｌｅｔｔ．，１９９５，３６，３６５１）；パルミチル部分（Ｍｉｓｈｒａ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｉｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ａｃｔａ，１９９５，１２６４、２２９）；又はオクタデシルアミン又はヘキシルアミノ－カルボニル－オキシコレステロール部分（Ｃｒｏｏｋｅ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｅｘｐ．Ｔｈｅｒ．，１９９６，２７７，９２３）が挙げられる。
一般に、多種多様な実体、例えば、リガンドが、本明細書に記載されるオリゴマー化合物に結合され得る。リガンドは、天然に存在する分子、又は組換え若しくは合成分子を含み得る。例示的なリガンドとしては、限定されるものではないが、ポリリジン（ＰＬＬ）、ポリＬ－アスパラギン酸、ポリＬ－グルタミン酸、スチレン－無水マレイン酸コポリマー、ポリ（Ｌ－ラクチド－コ－グリコリド）コポリマー、ジビニルエーテル－無水マレイン酸コポリマー、Ｎ－（２－ヒドロキシプロピル）メタクリルアミドコポリマー（ＨＭＰＡ）、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ、例えば、ＰＥＧ－２Ｋ、ＰＥＧ－５Ｋ、ＰＥＧ－１０Ｋ、ＰＥＧ－１２Ｋ、ＰＥＧ－１５Ｋ、ＰＥＧ－２０Ｋ、ＰＥＧ－４０Ｋ）、ＭＰＥＧ、［ＭＰＥＧ］２、ポリビニルアルコール（ＰＶＡ）、ポリウレタン、ポリ（２－エチルアクリル酸）、Ｎ－イソプロピルアクリルアミドポリマー、ポリホスファジン、ポリエチレンイミン、カチオン性基、スペルミン、スペルミジン、ポリアミン、擬似ペプチド－ポリアミン、ペプチド模倣ポリアミン、デンドリマーポリアミン、アルギニン、アミジン、プロタミン、カチオン性脂質、カチオン性ポルフィリン、ポリアミンの第四級塩、サイロトロピン、メラノトロピン、レクチン、糖タンパク質、サーファクタントタンパク質Ａ、ムチン、グリコシル化ポリアミノ酸、トランスフェリン、ビスホスホネート、ポリグルタミン酸塩、ポリアスパラギン酸塩、アプタマー、アシアロフェチュイン、ヒアルロナン、プロコラーゲン、免疫グロブリン（例えば、抗体）、インスリン、トランスフェリン、アルブミン、糖－アルブミンコンジュゲート、挿入剤（例えば、アクリジン）、架橋剤（例えばソラレン、マイトマイシンＣ）、ポルフィリン（例えば、ＴＰＰＣ４、テキサフィリン、サフィリン）、多環式芳香族炭化水素（例えば、フェナジン、ジヒドロフェナジン）、人工エンドヌクレアーゼ（例えば、ＥＤＴＡ）、親油性分子（例えば、ステロイド、胆汁酸、コレステロール、コール酸、アダマンタン酢酸、１－ピレン酪酸、ジヒドロテストステロン、１，３－ビス－Ｏ（ヘキサデシル）グリセロール、ゲラニルオキシヘキシル基、ヘキサデシルグリセロール、ボルネオール、メントール、１，３－プロパンジオール、ヘプタデシル基、パルミチン酸、ミリスチン酸、Ｏ３－（オレオイル）リトコール酸、Ｏ３－（オレオイル）コレン酸、ジメトキシトリチル、若しくはフェノキサジン）、ペプチド（例えば、αらせんペプチド、両親媒性ペプチド、ＲＧＤペプチド、細胞透過ペプチド、エンドソーム溶解／融合ペプチド）、アルキル化剤、リン酸塩、アミノ、メルカプト、ポリアミノ、アルキル、置換アルキル、放射性標識マーカー、酵素、ハプテン（例えばビオチン）、輸送／吸収促進剤（例えば、ナプロキセン、アスピリン、ビタミンＥ、葉酸）、合成リボヌクレアーゼ（例えば、イミダゾール、ビスイミダゾール、ヒスタミン、イミダゾールクラスター、アクリジン－イミダゾールコンジュゲート、テトラアザマクロ環のＥｕ３＋複合体）、ジニトロフェニル、ＨＲＰ、ＡＰ、抗体、ホルモン及びホルモン受容体、レクチン、糖質、多価糖質、ビタミン（例えば、ビタミンＡ、ビタミンＥ、ビタミンＫ、ビタミンＢ、例えば、葉酸、Ｂ１２、リボフラビン、ビオチン及びピリドキサール）、ビタミン補因子、リポ多糖、ｐ３８ ＭＡＰキナーゼの活性化因子、ＮＦ－κＢの活性化因子、タキソン、ビンクリスチン、ビンブラスチン、サイトカラシン、ノコダゾール、ジャスプラキノリド、ラトルンクリンＡ、ファロイジン、スウィンホリドＡ、インダノシン、ミオセルビン、腫瘍壊死因子α（ＴＮＦα）、インターロイキン－１β、γインターフェロン、天然若しくは組換え低密度リポタンパク（ＬＤＬ）、天然若しくは組換え高密度リポタンパク質（ＨＤＬ）、及び細胞透過剤（例えば、αらせん状細胞透過剤）が挙げられる。
ペプチド及びペプチド模倣リガンドとしては、天然又は修飾ペプチド、例えば、Ｄ若しくはＬペプチド；α、β、若しくはγペプチド；Ｎ－メチルペプチド；アザペプチド；１つ以上のアミドを有するペプチド、即ち、ペプチド、１つ以上の尿素、チオ尿素、カルバメート、又はスルホニル尿素結合で置換された結合；又は環状ペプチドを有するものが挙げられる。ペプチド模倣体（本明細書では、オリゴペプチド模倣体とも呼ばれる）は、天然ペプチドに類似した明確な３次元構造にフォールディングすることが可能な分子である。ペプチド又はペプチド模倣リガンドは、約５～５０アミノ酸長、例えば、約５、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、４５、又は５０アミノ酸長であり得る。
例示的な両親媒性ペプチドとしては、限定されるものではないが、セクロピン、リコトキシン（ｌｙｃｏｔｏｘｉｎ）、パラダキシン（ｐａｒａｄａｘｉｎ）、ブフォリン、ＣＰＦ、ボンビニン－様ペプチド（ＢＬＰ）、カテリシジン、セラトトキシン（ｃｅｒａｔｏｔｏｘｉｎ）、エボヤ（Ｓ．ｃｌａｖａ）ペプチド、メクラウナギ腸抗菌ペプチド（ＨＦＩＡＰ）、マガイニン、ブレビニン－２、デルマセプチン、メリチン、プレウロシジン、Ｈ２Ａペプチド、アフリカツメガエルペプチド、エスクレンチニス－１（ｅｓｃｕｌｅｎｔｉｎｉｓ－１）、及びカエリンが挙げられる。
本明細書で使用される「エンドソーム溶解リガンド」という語は、エンドソーム溶解特性を有する分子を指す。エンドソーム溶解リガンドは、本発明の組成物、若しくはその成分の溶解及び／又は本発明の組成物、若しくはその成分の、エンドソーム、リソソーム、小胞体（ＥＲ）、ゴルジ体、微小管、ペロキシソーム、又は細胞内の他の小胞体などの細胞区画から、細胞の細胞質への輸送を促進する。いくつかの例示的なエンドソーム溶解リガンドとしては、限定されるものではないが、イミダゾール、ポリ又はオリゴイミダゾール、直鎖若しくは分岐鎖ポリエチレンイミン（ＰＥＩ）、直鎖若しくは分岐鎖ポリアミン、例えばスペルミン、カチオン性直鎖及び分岐鎖ポリアミン、ポリカルボキシレート、ポリカチオン、マスクオリゴ若しくはポリカチオン又はアニオン、アセタール、ポリアセタール、ケタール／ポリケタール、オルトエステル、マスク若しくは非マスクカチオン又はアニオン電荷を有する直鎖若しくは分岐鎖ポリマー、マスク若しくは非マスクカチオン又はアニオン電荷を有するデンドリマー、ポリアニオン性ペプチド、ポリアニオン性ペプチド模倣薬、ｐＨ感受性ペプチド、天然及び合成融合性脂質、天然及び合成カチオン性脂質が挙げられる。
例示的なエンドソーム溶解／融合性ペプチドとしては、限定されるものではないが、ＡＡＬＥＡＬＡＥＡＬＥＡＬＡＥＡＬＥＡＬＡＥＡＡＡＡＧＧＣ（ＧＡＬＡ）；ＡＡＬＡＥＡＬＡＥＡＬＡＥＡＬＡＥＡＬＡＥＡＬＡＡＡＡＧＧＣ（ＥＡＬＡ）；ＡＬＥＡＬＡＥＡＬＥＡＬＡＥＡ；ＧＬＦＥＡＩＥＧＦＩＥＮＧＷＥＧＭＩＷＤＹＧ（ＩＮＦ－７）；ＧＬＦＧＡＩＡＧＦＩＥＮＧＷＥＧＭＩＤＧＷＹＧ（Ｉｎｆ ＨＡ－２）；ＧＬＦＥＡＩＥＧＦＩＥＮＧＷＥＧＭＩＤＧＷＹＧＣＧＬＦＥＡＩＥＧＦＩＥＮＧＷＥＧＭＩＤ ＧＷＹＧＣ（ｄｉＩＮＦ－７）；ＧＬＦＥＡＩＥＧＦＩＥＮＧＷＥＧＭＩＤＧＧＣＧＬＦＥＡＩＥＧＦＩＥＮＧＷＥＧＭＩＤＧＧＣ（ｄｉＩＮＦ－３）；ＧＬＦＧＡＬＡＥＡＬＡＥＡＬＡＥＨＬＡＥＡＬＡＥＡＬＥＡＬＡＡＧＧＳＣ（ＧＬＦ）；ＧＬＦＥＡＩＥＧＦＩＥＮＧＷＥＧＬＡＥＡＬＡＥＡＬＥＡＬＡＡＧＧＳＣ（ＧＡＬＡ－ＩＮＦ３）；ＧＬＦ ＥＡＩ ＥＧＦＩ ＥＮＧＷ ＥＧｎＩ ＤＧ Ｋ ＧＬＦ ＥＡＩ ＥＧＦＩ ＥＮＧＷ ＥＧｎＩ ＤＧ（ＩＮＦ－５、ｎはノルロイシンである）；ＬＦＥＡＬＬＥＬＬＥＳＬＷＥＬＬＬＥＡ（ＪＴＳ－１）；ＧＬＦＫＡＬＬＫＬＬＫＳＬＷＫＬＬＬＫＡ（ｐｐＴＧ１）；ＧＬＦＲＡＬＬＲＬＬＲＳＬＷＲＬＬＬＲＡ（ｐｐＴＧ２０）；ＷＥＡＫＬＡＫＡＬＡＫＡＬＡＫＨＬＡＫＡＬＡＫＡＬＫＡＣＥＡ（ＫＡＬＡ）；ＧＬＦＦＥＡＩＡＥＦＩＥＧＧＷＥＧＬＩＥＧＣ（ＨＡ）；ＧＩＧＡＶＬＫＶＬＴＴＧＬＰＡＬＩＳＷＩＫＲＫＲＱＱ（Ｍｅｌｉｔｔｉｎ）；Ｈ５ＷＹＧ；及びＣＨＫ６ＨＣが挙げられる。
理論に拘束されることを望むものではないが、融合性脂質は、膜と融合し、その結果、膜を不安定化する。融合性脂質は、通常、小さい頭部基及び不飽和アシル鎖を有する。例示的な融合性脂質としては、限定されるものではないが、１，２－ジオレオイル－ｓｎ－３－ホスホエタノールアミン（ＤＯＰＥ）、ホスファチジルエタノールアミン（ＰＯＰＥ）、パルミトイルオレオイルホスファチジルコリン（ＰＯＰＣ）、（６Ｚ，９Ｚ，２８Ｚ，３１Ｚ）－ヘプタトリアコンタ－６，９，２８，３１－テトラエン－１９－オール（Ｄｉ－Ｌｉｎ）、Ｎ－メチル（２，２－ジ（（９Ｚ，１２Ｚ）－オクタデカ－９，１２－ジエニル）－１，３－ジオキソラン－４－イル）メタンアミン（ＤＬｉｎ－ｋ－ＤＭＡ）及びＮ－メチル－２－（２，２－ジ（（９Ｚ，１２Ｚ）－オクタデカ－９，１２－ジエニル）－１，３－ジオキソラン－４－イル）エタンアミン（本明細書では、ＸＴＣとも呼ばれる）が挙げられる。
本発明に適したエンドソーム溶解活性を有する合成ポリマーが、参照により全内容が本明細書に組み入れられる、米国特許出願公開第２００９／００４８４１０号明細書；同第２００９／００２３８９０号明細書；同第２００８／０２８７６３０号明細書；同第２００８／０２８７６２８号明細書；同第２００８／０２８１０４４号明細書；同第２００８／０２８１０４１号明細書；同第２００８／０２６９４５０号明細書；同第２００７／０１０５８０４号明細書；同第２００７００３６８６５号明細書；及び同第２００４／０１９８６８７号明細書に記載されている。
例示的な細胞透過性ペプチドとしては、限定されるものではないが、ＲＱＩＫＩＷＦＱＮＲＲＭＫＷＫＫ（ペネトラチン）；ＧＲＫＫＲＲＱＲＲＲＰＰＱＣ（Ｔａｔ断片４８～６０）；ＧＡＬＦＬＧＷＬＧＡＡＧＳＴＭＧＡＷＳＱＰＫＫＫＲＫＶ（シグナル配列ベースのペプチド）；ＬＬＩＩＬＲＲＲＩＲＫＱＡＨＡＨＳＫ（ＰＶＥＣ）；ＧＷＴＬＮＳＡＧＹＬＬＫＩＮＬＫＡＬＡＡＬＡＫＫＩＬ（トランスポルタン）；ＫＬＡＬＫＬＡＬＫＡＬＫＡＡＬＫＬＡ（両親媒性モデルペプチド）；ＲＲＲＲＲＲＲＲＲ（Ａｒｇ９）；ＫＦＦＫＦＦＫＦＦＫ（細菌細胞壁透過性ペプチド）；ＬＬＧＤＦＦＲＫＳＫＥＫＩＧＫＥＦＫＲＩＶＱＲＩＫＤＦＬＲＮＬＶＰＲＴＥＳ（ＬＬ－３７）；ＳＷＬＳＫＴＡＫＫＬＥＮＳＡＫＫＲＩＳＥＧＩＡＩＡＩＱＧＧＰＲ（セクロピンＰ１）；ＡＣＹＣＲＩＰＡＣＩＡＧＥＲＲＹＧＴＣＩＹＱＧＲＬＷＡＦＣＣ（α－デフェンシン）；ＤＨＹＮＣＶＳＳＧＧＱＣＬＹＳＡＣＰＩＦＴＫＩＱＧＴＣＹＲＧＫＡＫＣＣＫ（β－デフェンシン）；ＲＲＲＰＲＰＰＹＬＰＲＰＲＰＰＰＦＦＰＰＲＬＰＰＲＩＰＰＧＦＰＰＲＦＰＰＲＦＰＧＫＲ－ＮＨ２（ＰＲ－３９）；ＩＬＰＷＫＷＰＷＷＰＷＲＲ－ＮＨ２（インドリシジン）；ＡＡＶＡＬＬＰＡＶＬＬＡＬＬＡＰ（ＲＦＧＦ）；ＡＡＬＬＰＶＬＬＡＡＰ（ＲＦＧＦ類似体）；及びＲＫＣＲＩＶＶＩＲＶＣＲ（バクテネシン）が挙げられる。
例示的なカチオン性基としては、限定されるものではないが、例えば、Ｏ－ＡＭＩＮＥ（ＡＭＩＮＥ＝ＮＨ２；アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ、又はジヘテロアリールアミノ、エチレンジアミン、ポリアミノ）；アミノアルコキシ、例えば、Ｏ（ＣＨ２）ｎＡＭＩＮＥ、（例えば、ＡＭＩＮＥ＝ＮＨ２；アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ、又はジヘテロアリールアミノ、エチレンジアミン、ポリアミノ）；アミノ（例えばＮＨ２；アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ、ジヘテロアリールアミノ、又はアミノ酸）；及びＮＨ（ＣＨ２ＣＨ２ＮＨ）ｎＣＨ２ＣＨ２－ＡＭＩＮＥ（ＡＭＩＮＥ＝ＮＨ２；アルキルアミノ、ジアルキルアミノ、ヘテロシクリル、アリールアミノ、ジアリールアミノ、ヘテロアリールアミノ、又はジヘテロアリールアミノ）から得られるプロトン化アミノ基が挙げられる。
本明細書で使用される「標的化リガンド」という語は、選択された標的、例えば、細胞、細胞型、組織、器官、体の領域、又は区画、例えば、細胞、組織若しくは器官の区画に対する増大した親和性を提供する任意の分子を指す。いくつかの例示的な標的化リガンドとしては、限定されるものではないが、抗体、抗原、葉酸塩、受容体リガンド、糖質、アプタマー、インテグリン受容体リガンド、ケモカイン受容体リガンド、トランスフェリン、ビオチン、セロトニン受容体リガンド、ＰＳＭＡ、エンドセリン、ＧＣＰＩＩ、ソマトスタチン、ＬＤＬ及びＨＤＬリガンドが挙げられる。
糖質系標的化リガンドとしては、限定されるものではないが、Ｄ－ガラクトース、多価ガラクトース、Ｎ－アセチル－Ｄ－ガラクトサミン（ＧａｌＮＡｃ）、多価ＧａｌＮＡｃ、例えばＧａｌＮＡｃ２及びＧａｌＮＡｃ３（ＧａｌＮＡｃ及び多価ＧａｌＮＡｃは、本明細書では、ＧａｌＮＡｃコンジュゲートと総称される）；Ｄ－マンノース、多価マンノース、多価ラクトース、Ｎ－アセチル－グルコサミン、グルコース、多価グルコース、多価フコース、グリコシル化ポリアミノ酸及びレクチンが挙げられる。多価という語は、２つ以上の単糖単位が存在することを示す。このような単糖サブユニットは、グリコシド結合を介して互いに連結されるか、又は骨格分子に連結され得る。
リガンドとして、本発明に適したいくつかの葉酸塩及び葉酸塩類似体が、参照によりその全内容が本明細書に組み入れられる、米国特許第２，８１６，１１０号明細書；同第５，５５２，５４５号明細書；同第６，３３５，４３４号明細書及び同第７，１２８，８９３号明細書に記載されている。
本明細書で使用される「ＰＫ調節リガンド」及び「ＰＫモジュレーター」という語は、本発明の組成物の薬剤動態を調節し得る分子を指す。いくつかの例示的なＰＫモジュレーターとしては、限定されるものではないが、親油性分子、胆汁酸、ステロール、リン脂質類似体、ペプチド、タンパク質結合剤、ビタミン、脂肪酸、フェノキサジン、アスピリン、ナプロキセン、イブプロフェン、スプロフェン、ケトプロフェン、（Ｓ）－（＋）－プラノプロフェン、カルプロフェン、ＰＥＧ、ビオチン、及びトランスサイレチン結合リガンド（例えば、テトラヨードチロ酢酸、２、４、６－トリヨードフェノール及びフルフェナム酸）が挙げられる。いくつかのホスホロチオエート糖間結合を含むオリゴマー化合物は、血清タンパク質と結合することも知られており、したがって、短いオリゴマー化合物、例えば、約５～３０ヌクレオチド（例えば、５～２５ヌクレオチド、好ましくは、５～２０ヌクレオチド、例えば、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、又は２０ヌクレオチド）を含み、骨格に複数のホスホロチオエート結合を含むオリゴヌクレオチドも、リガンドとして（例えば、ＰＫ調節リガンドとして）本発明に適している。ＰＫ調節オリゴヌクレオチドは、少なくとも３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５又はそれ以上のホスホロチオエート及び／又はホスホロジチオエート結合を含み得る。一部の実施形態では、ＰＫ調節オリゴヌクレオチド中の全てのヌクレオチド間結合は、ホスホロチオエート及び／又はホスホロジチオエート結合である。さらに、血清成分（例えば血清タンパク質）に結合するアプタマーも、ＰＫ調節リガンドとして、本発明に適している。血清成分（例えば、血清タンパク質）への結合は、Ｏｒａｖｃｏｖａ，ｅｔ ａｌ．，Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ Ｂ（１９９６），６７７：１－２７に記載されるものなどのアルブミン結合アッセイから予測され得る。
２つ以上のリガンドが存在する場合、リガンドは、全て同じ特性を有してもよく、全てが異なる特性を有するか、又は一部のリガンドが、同じ特性を有する一方、他のリガンドは、異なる特性を有してもよい。例えば、リガンドは、標的化特性を有するか、エンドソーム溶解活性を有するか、又はＰＫ調節特性を有し得る。好ましい実施形態では、リガンドは全て、異なる特性を有する。
リガンド又は連結配位子は、モノマーが、本発明の化合物の構成要素（例えば、本発明の化合物又はリンカー）に組み込まれる場合、前記モノマー上に存在し得る。一部の実施形態では、リガンドは、「前駆体」モノマーが、本発明の化合物の構成要素（例えば、本発明の化合物又はリンカー）に組み込まれた後、カップリングによって前記「前駆体」モノマーに組み込まれ得る。例えば、アミノ末端テザー（即ち、リガンドが結合していない）を有するモノマー、例えば、モノマー－リンカー－ＮＨ２は、本発明の化合物の構成要素（例えば、本発明の化合物又はリンカー）に組み込まれ得る。次の操作において、即ち、本発明の化合物の構成要素（例えば、本発明の化合物又はリンカー）への前駆体モノマーの組み込みの後、求電子基、例えば、ペンタフルオロフェニルエステル又はアルデヒド基を有するリガンドが、リガンドの求電子基と前駆体モノマーのテザーの末端求核基とのカップリングによって、前駆体モノマーに結合され得る。
別の例では、クリック化学反応に参加するのに適した化学基を有するモノマーを、例えば、末端がアジド又はアルキンのテザー／リンカーに組み込むことができる。これに続く作業、即ち、前駆体モノマーが鎖に組み込まれた後で、相補的な化学基、例えば、アルキン又はアジドを有するリガンドを、アルキン及びアジドを共に結合することによって前駆体モノマーに結合することができる。
一部の実施形態では、リガンドは、本発明の化合物の核酸塩基、糖部分、又はヌクレオシド間結合にコンジュゲートすることができる。プリン核酸塩基又はその誘導体に対するコンジュゲーションは、環内原子及び環外原子を含む任意の位置に生じ得る。一部の実施形態では、プリン核酸塩基の２位、６位、７位、又は８位が、コンジュゲート部分に結合している。また、ピリミジン核酸塩基又はその誘導体に対するコンジュゲーションは、どの位置で生じても良い。一部の実施形態では、ピリミジン核酸塩基の２位、５位、及び６位を、コンジュゲート部分と置換することができる。リガンドが、核酸塩基にコンジュゲートされる場合、好ましい位置は、ハイブリダイゼーションを妨げない、即ち、塩基対合に必要な水素結合相互作用を妨げない位置である。
ヌクレオシドの糖部分に対するコンジュゲーションは、どの炭素原子で生じても良い。コンジュゲート部分に結合することができる糖部分の炭素原子の例には、２’、３’、及び５’炭素原子が挙げられる。１’位も、コンジュゲート部分、例えば、脱塩基残基に結合することができる。ヌクレオシド間結合も、コンジュゲート部分を保持することができる。リン含有結合（例えば、ホスホジエステル、ホスホロチオエート、ホスホロジチオテート、及びホスホロアミデートなど）の場合、コンジュゲート部分は、リン原子に直接結合する、又はリン原子に結合しているＯ、Ｎ、又はＳ原子に結合することができる。アミン又はアミドを含有するヌクレオシド間結合（例えば、ＰＮＡ）の場合、コンジュゲート部分は、アミン又はアミドの窒素原子に、又は隣接する炭素原子に結合することができる。
オリゴヌクレオチドのコンジュゲートを調製するための多くの方法がある。一般に、オリゴヌクレオチドは、オリゴヌクレオチドの反応性基（例えば、ＯＨ、ＳＨ、アミン、カルボキシル、アルデヒドなど）をコンジュゲート部分の反応性基と接触させることによって、コンジュゲート部分に結合される。一部の実施形態では、一方の反応性基が求電子性であり、他方が求核性である。
例えば、求電子基は、カルボニル含有官能基であってよく、求核基は、アミン又はチオールであり得る。連結基を用いる及び用いない核酸及び関連オリゴマー化合物のコンジュゲーションのための方法は、例えば、参照により全内容が本明細書に組み入れられる、Ｍａｎｏｈａｒａｎ ｉｎ Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｃｒｏｏｋｅ ａｎｄ ＬｅＢｌｅｕ，ｅｄｓ．，ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ，Ｂｏｃａ Ｒａｔｏｎ，Ｆｌａ．，１９９３，Ｃｈａｐｔｅｒ １７などの文献に十分に記載されている。
リガンドは、リンカー又は担体モノマー、例えば、リガンド担体を介して、本発明の化合物に結合される。担体は、（ｉ）少なくとも１つの「骨格付着点」、好ましくは、２つの「骨格付着点」及び（ｉｉ）少なくとも１つの「テザー付着点」を含む。本明細書で使用される「骨格付着点」は、官能基、例えばヒドロキシル基、又は一般に、オリゴヌクレオチドの骨格、例えば、リン酸塩の骨格、若しくは例えば、硫黄を含有する修飾リン酸塩の骨格への担体モノマーの組み込みに利用可能であり、且つ適した結合を指す。「テザー付着点」（ＴＡＰ）は、選択された部分を接続する担体モノマーの原子、例えば、炭素原子又はヘテロ原子（骨格付着点を提供する原子とは異なる）を指す。選択された部分は、例えば、糖質、例えば単糖、二糖、三糖、四糖、オリゴ糖及び多糖であり得る。任意選択で、選択された部分は、介在テザーによって担体モノマーに接続される。したがって、担体は、しばしば、官能基、例えば、アミノ基を含む、又は一般に、別の化学物質、例えば、リガンドの構成原子への組み込み又は連結に適した結合を可能にする。
核酸のコンジュゲートの調製を教示する代表的な米国特許としては、限定されるものではないが、参照によりその全内容が本明細書に組み入れられる、米国特許第４，８２８，９７９号明細書；同第４，９４８，８８２号明細書；同第５，２１８，１０５号明細書；同第５，５２５，４６５号明細書；同第５，５４１，３１３号明細書；同第５，５４５，７３０号明細書；同第５，５５２，５３８号明細書；同第５，５７８，７１７号明細書、同第５，５８０，７３１号明細書；同第５，５８０，７３１号明細書；同第５，５９１，５８４号明細書；同第５，１０９，１２４号明細書；同第５，１１８，８０２号明細書；同第５，１３８，０４５号明細書；同第５，４１４，０７７号明細書；同第５，４８６，６０３号明細書；同第５，５１２，４３９号明細書；同第５，５７８，７１８号明細書；同第５，６０８，０４６号明細書；同第４，５８７，０４４号明細書；同第４，６０５，７３５号明細書；同第４，６６７，０２５号明細書；同第４，７６２，７７９号明細書；同第４，７８９，７３７号明細書；同第４，８２４，９４１号明細書；同第４，８３５，２６３号明細書；同第４，８７６，３３５号明細書；同第４，９０４，５８２号明細書；同第４，９５８，０１３号明細書；同第５，０８２，８３０号明細書；同第５，１１２，９６３号明細書；同第５，２１４，１３６号明細書；同第５，０８２，８３０号明細書；同第５，１１２，９６３号明細書；同第５，１４９，７８２号明細書；同第５，２１４，１３６号明細書；同第５，２４５，０２２号明細書；同第５，２５４，４６９号明細書；同第５，２５８，５０６号明細書；同第５，２６２，５３６号明細書；同第５，２７２，２５０号明細書；同第５，２９２，８７３号明細書；同第５，３１７，０９８号明細書；同第５，３７１，２４１号明細書、同第５，３９１，７２３号明細書；同第５，４１６，２０３号明細書、同第５，４５１，４６３号明細書；同第５，５１０，４７５号明細書；同第５，５１２，６６７号明細書；同第５，５１４，７８５号明細書；同第５，５６５，５５２号明細書；同第５，５６７，８１０号明細書；同第５，５７４，１４２号明細書；同第５，５８５，４８１号明細書；同第５，５８７，３７１号明細書；同第５，５９５，７２６号明細書；同第５，５９７，６９６号明細書；同第５，５９９，９２３号明細書；同第５，５９９，９２８号明細書；同第５，６７２，６６２号明細書；同第５，６８８，９４１号明細書；同第５，７１４，１６６号明細書；同第６，１５３，７３７号明細書；同第６，１７２，２０８号明細書；同第６，３００，３１９号明細書；同第６，３３５，４３４号明細書；同第６，３３５，４３７号明細書；同第６，３９５，４３７号明細書；同第６，４４４，８０６号明細書；同第６，４８６，３０８号明細書；同第６，５２５，０３１号明細書；同第６，５２８，６３１号明細書；同第６，５５９，２７９号明細書が挙げられる。
一部の実施形態では、化合物は、肝組織を標的とする標的化リガンドをさらに含む。一部の実施形態では、標的化リガンドは、糖質系リガンドである。一実施形態では、標的化リガンドは、ＧａｌＮＡｃコンジュゲートである。
リガンドが、リンカー又は担体を介してｉＲＮＡ剤にコンジュゲートされ得るため、及びリンカー又は担体が、分岐リンカーを含み得るため、ｉＲＮＡ剤は、担体への同じか若しくは異なる骨格付着点を介して、又は分岐リンカーを介して、複数のリガンドを含み得る。例えば、分岐リンカーの分岐点は、二価、三価、四価、五価、若しくは六価の原子、又はそのような多価を示す基であってもよい。特定の実施形態では、分岐点は、－Ｎ、－Ｎ（Ｑ）－Ｃ、－Ｏ－Ｃ、－Ｓ－Ｃ、－ＳＳ－Ｃ、－Ｃ（Ｏ）Ｎ（Ｑ）－Ｃ、－ＯＣ（Ｏ）Ｎ（Ｑ）－Ｃ、－Ｎ（Ｑ）Ｃ（Ｏ）－Ｃ、又は－Ｎ（Ｑ）Ｃ（Ｏ）Ｏ－Ｃであり；ここで、Ｑは存在ごとに独立して、Ｈ又は任意選択で置換されるアルキルである。他の実施形態では、分岐点は、グリセロール又はグリセロール誘導体である。
候補のｉＲＮＡの評価
作用剤又は修飾分子及び対照分子を、適切な条件に曝し、選択された特性の存在を評価することによって、選択された特性について、候補のｉＲＮＡ剤、例えば、修飾ＲＮＡを評価することができる。例えば、分解剤に対する耐性が、以下のように評価され得る。候補の修飾ＲＮＡ（及び対照分子、通常、非修飾形態）が、分解条件に曝され、例えば、分解剤、例えば、ヌクレアーゼを含む環境に曝され得る。例えば、生体サンプル、例えば、治療的使用の際に直面し得る環境、例えば、血液又は細胞分画に類似したもの、例えば、無細胞のホモジネート又は破壊細胞を使用することができる。次に、候補及び対照は、いくつかの手法のいずれかによって、分解に対する耐性について評価され得る。例えば、候補及び対照は、例えば、放射性若しくは酵素標識、又は蛍光標識、例えば、Ｃｙ３又はＣｙ５による暴露の前に標識され得る。対照及び修飾ＲＮＡは、分解剤、及び任意選択で、対照、例えば、不活性化、例えば、熱で不活性化された分解剤と共にインキュベートされ得る。次に、修飾及び対照分子の物理的パラメータ、例えば、サイズが決定される。それらは、物理的方法、例えば、ポリアクリルアミドゲル電気泳動又はサイジングカラム（ｓｉｚｉｎｇ ｃｏｌｕｍｎ）によって、分子がその元の長さを維持しているかどうかを評価するために決定され、又は機能的に評価され得る。或いは、ノーザンブロット分析が、標識されていない修飾分子の長さをアッセイするのに使用され得る。
機能的アッセイも、候補の作用剤を評価するのに使用され得る。機能的アッセイは、最初に適用されるか又は前の非機能的アッセイ（例えば、分解に対する耐性のためのアッセイ）の後に適用されて、修飾が、遺伝子発現をサイレンシングする分子の能力を改変するかどうかを決定することができる。例えば、細胞、例えば、哺乳動物細胞、例えば、マウス又はヒト細胞が、蛍光タンパク質、例えば、ＧＦＰを発現するプラスミド、及び蛍光タンパク質をコードする転写物と相同な候補のＲＮＡ剤と共トランスフェクトされ得る（例えば、国際公開第００／４４９１４号パンフレットを参照されたい）。例えば、ＧＦＰ ｍＲＮＡと相同な修飾ｄｓｉＲＮＡが、対照細胞と比較した、細胞の蛍光の減少について監視することによって、ＧＦＰ発現を阻害する能力についてアッセイされ得、ここで、トランスフェクションは、候補のｄｓｉＲＮＡ、例えば、作用剤が加えられていない対照及び／又は非修飾ＲＮＡが加えられた対照を含んでいなかった。遺伝子発現に対する候補の作用剤の有効性は、修飾及び非修飾ｄｓｓｉＲＮＡ化合物の存在下で細胞の蛍光を比較することによって評価され得る。
代替的な機能性アッセイにおいて、内因性マウス遺伝子、例えば、母方で発現した遺伝子、例えばｃ－ｍｏｓと相同な候補のｄｓｓｉＲＮＡ化合物が、ｉｎ ｖｉｖｏで遺伝子発現を阻害する作用剤の能力を評価するために、未熟マウス卵母細胞に注入され得る（例えば、国際公開第０１／３６６４６号パンフレットを参照されたい）。卵母細胞の表現型、例えば、分裂中期ＩＩにおいて停止を維持する能力は、作用剤が発現を阻害している指標として監視され得る。例えば、ｄｓｓｉＲＮＡ化合物によるｃ－ｍｏｓ ｍＲＮＡの切断によって、卵母細胞は、分裂中期停止を終了し、単為発生を開始する（Ｃｏｌｌｅｄｇｅ ｅｔ ａｌ．Ｎａｔｕｒｅ ３７０：６５－６８，１９９４；Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ ｅｔ ａｌ．Ｎａｔｕｒｅ，３７０：６８－７１，１９９４）。標的ＲＮＡレベルに対する修飾作用剤の効果を、ノーザンブロットによって検証して、陰性対照と比較して、標的ｍＲＮＡのレベルの低下についてアッセイするか、又はウエスタンブロットによって検証して、標的タンパク質のレベルの低下をアッセイすることができる。対照は、作用剤が加えられていない細胞及び／又は非修飾ＲＮＡが加えられた細胞を含み得る。
生理学的効果
本明細書に記載されるｓｉＲＮＡ化合物は、治療毒性の決定が、ヒト及び非ヒト動物配列の両方に対する、ｓｉＲＮＡの相補性によって容易になるように設計され得る。これらの方法によって、ｓｉＲＮＡは、ヒトからの核酸配列及び少なくとも１つの非ヒト動物、例えば、非ヒト哺乳動物、例えば、げっ歯類、反すう動物又は霊長類からの核酸配列に完全に相補的な配列からなり得る。例えば、非ヒト哺乳動物は、マウス、ラット、イヌ、ブタ、ヤギ、ヒツジ、ウシ、サル、ボノボ（Ｐａｎ ｐａｎｉｓｃｕｓ）、チンパンジー（Ｐａｎ ｔｒｏｇｌｏｄｙｔｅｓ）、アカゲザル（Ｍａｃａｃａ ｍｕｌａｔｔｏ）、又はカニクイザルであり得る。ｓｉＲＮＡ化合物の配列が、非ヒト哺乳動物及びヒトの相同の遺伝子、例えば、癌遺伝子又は腫瘍抑制遺伝子内の配列に相補的であり得る。非ヒト哺乳動物におけるｓｉＲＮＡ化合物の毒性を決定することによって、ヒトにおけるｓｉＲＮＡ化合物の毒性を推定することができる。より厳しい毒性試験について、ｓｉＲＮＡは、ヒト及び２つ以上、例えば、２つ又は３つ以上の非ヒト動物に相補的であり得る。
本明細書に記載される方法は、ヒトに対するｓｉＲＮＡ化合物の任意の生理学的効果、例えば、毒性作用などの任意の望ましくない効果、又は任意のプラス効果、又は所望の効果を関連付けるのに使用され得る。
ｓｉＲＮＡの細胞取り込みの増加
細胞取り込みを増加させる共有結合されたコンジュゲートを含む様々なｓｉＲＮＡ組成物及び／又はｓｉＲＮＡの細胞内標的化が、本明細書に記載される。
細胞へのｓｉＲＮＡの取り込みに影響を与えるｓｉＲＮＡ化合物及び薬物を投与するステップを含む本発明の方法がさらに提供される。薬物は、ｓｉＲＮＡ化合物が投与される前、後、又は同じ時点で投与され得る。薬物は、ｓｉＲＮＡ化合物に共有結合又は非共有結合され得る。薬物は、例えば、リポ多糖、ｐ３８ ＭＡＰキナーゼの活性化因子、又はＮＦ－κＢの活性化因子であり得る。薬物は、細胞に一時的な影響を及ぼし得る。薬物は、例えば、細胞の細胞骨格を破壊することによって、例えば、細胞の微小管、マイクロフィラメント、及び／又は中間径フィラメントを破壊することによって、細胞へのｓｉＲＮＡ化合物の取り込みを増加させることができる。薬物は、例えば、タキソン、ビンクリスチン、ビンブラスチン、サイトカラシン、ノコダゾール、ジャスプラキノリド、ラトルンクリンＡ、ファロイジン、スウィンホリドＡ、インダノシン、又はミオセルビンであり得る。薬物はまた、例えば、炎症反応を活性化することによって、所与の細胞又は組織へのｓｉＲＮＡ化合物の取り込みを増加させることができる。このような効果を有し得る例示的な薬物としては、腫瘍壊死因子α（ＴＮＦα）、インターロイキン－１β、ＣｐＧモチーフ、γインターフェロン又はより一般的にｔｏｌｌ様受容体を活性化する作用剤が挙げられる。
ｓｉＲＮＡ産生
ｓｉＲＮＡは、様々な方法によって、例えば、大量に産生され得る。例示的な方法としては、有機合成及びＲＮＡ切断、例えば、ｉｎ ｖｉｔｒｏ切断が挙げられる。
有機合成。ｓｉＲＮＡは、一本鎖ＲＮＡ分子、又は二本鎖ＲＮＡ分子の各それぞれの鎖を別々に合成することによって作製され得、その後、構成鎖をアニールすることができる。
大型生物反応器、例えば、ＯｌｉｇｏＰｉｌｏｔ ＩＩ ｆｒｏｍ Ｐｈａｒｍａｃｉａ Ｂｉｏｔｅｃ ＡＢ（Ｕｐｐｓａｌａ Ｓｗｅｄｅｎ）が、所与のｓｉＲＮＡのための大量の特定のＲＮＡ鎖を産生するのに使用され得る。ＯｌｉｇｏＰｉｌｏｔＩＩ反応器は、１．５モル過剰のみのホスホラミダイトヌクレオチドを用いてヌクレオチドを効率的にカップリングすることができる。ＲＮＡ鎖を作製するために、リボヌクレオチドアミダイトが使用される。ｓｉＲＮＡのための２１～２３ヌクレオチド鎖を合成するために、モノマー添加の標準的なサイクルが使用され得る。典型的に、２つの相補鎖が、別々に産生され、次に、例えば、固体担体からの放出及び脱保護の後にアニールされる。
別個のｓｉＲＮＡ種を産生するために、有機合成が使用され得る。特定の標的遺伝子に対する種の相補性は、正確に指定され得る。例えば、種は、多型、例えば、一塩基ヌクレオチド多型を含む領域に相補的であり得る。さらに、多型の位置は、正確に規定され得る。一部の実施形態では、多型は、内部領域、例えば、末端の一方又は両方から少なくとも４、５、７、又は９ヌクレオチドに位置する。
ｄｓｉＲＮＡ切断。ｓｉＲＮＡはまた、より大きいｓｉＲＮＡを切断することによって作製され得る。切断は、ｉｎ ｖｉｔｒｏ又はｉｎ ｖｉｖｏで媒介され得る。例えば、ｉｎ ｖｉｔｒｏでの切断によってｉＲＮＡを産生するために、以下の方法が使用され得る。
Ｉｎ ｖｉｔｒｏ転写。ｄｓｉＲＮＡは、両方の方向に核酸（ＤＮＡ）セグメントを転写することによって産生される。例えば、ＨｉＳｃｒｉｂｅ（商標）ＲＮＡｉ転写キット（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏｌａｂｓ）は、ｐベクター及びＴ７プロモーターによっていずれの側にも隣接する位置においてベクターにクローン化される核酸セグメントのためにｄｓｉＲＮＡを産生するための方法を提供する。別々の鋳型が、ｄｓｉＲＮＡのための２つの相補鎖のＴ７転写のために生成される。鋳型は、Ｔ７ ＲＮＡポリメラーゼの添加によってｉｎ ｖｉｔｒｏで転写され、ｄｓｉＲＮＡが産生される。ＰＣＲ及び／又は他のＲＮＡポリメラーゼ（例えば、Ｔ３若しくはＳＰ６ポリメラーゼ）を用いた同様の方法も、組み換え酵素の調製物を汚染し得る内毒素である可能性がある。
Ｉｎ Ｖｉｔｒｏ切断。ｄｓｉＲＮＡは、例えば、Ｄｉｃｅｒ又は同等のＲＮＡｓｅ ＩＩＩベースの活性を用いて、ｓｉＲＮＡにｉｎ ｖｉｔｒｏで切断される。例えば、ｄｓｉＲＮＡは、ショウジョウバエ（Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ）からのｉｎ ｖｉｔｒｏ抽出物中で又は精製された成分、例えば、精製されたＲＮＡｓｅ又はＲＩＳＣ複合体（ＲＮＡ誘導サイレンシング複合体）を用いてインキュベートされ得る。例えば、Ｋｅｔｔｉｎｇ ｅｔ ａｌ．Ｇｅｎｅｓ Ｄｅｖ ２００１ Ｏｃｔ １５；１５（２０）：２６５４－９、及びＨａｍｍｏｎｄ Ｓｃｉｅｎｃｅ ２００１ Ａｕｇ １０；２９３（５５３２）：１１４６－５０を参照されたい。
ｄｓｉＲＮＡ切断は、一般に、複数のｓｉＲＮＡ種を産生し、それぞれは、元のｄｓｉＲＮＡ分子の特定の２１～２３ｎｔ断片である。例えば、元のｄｓｉＲＮＡ分子の重複領域及び隣接領域に相補的な配列を含むｓｉＲＮＡが存在し得る。
合成の方法にかかわらず、ｓｉＲＮＡ調製物は、製剤に適切な溶液（例えば、水溶液及び／又は有機溶液）中で調製され得る。例えば、ｓｉＲＮＡ調製物は、純粋な２回蒸留水中で沈殿及び再溶解され、凍結乾燥され得る。次に、乾燥ｓｉＲＮＡは、目的とする製剤化プロセスに適切な溶液中で再懸濁され得る。
親油性部分にコンジュゲートされた化合物の作製
一部の実施形態では、親油性部分を含有する親油性モノマーは、核酸塩基、糖部分、又はヌクレオシド間結合を介して、化合物にコンジュゲートされる。
プリン核酸塩基又はその誘導体へのコンジュゲーションは、環内原子及び環外原子を含む任意の位置に生じ得る。一部の実施形態では、プリン核酸塩基の２位、６位、７位、又は８位が、コンジュゲート部分に結合される。ピリミジン核酸塩基又はその誘導体へのコンジュゲーションは、任意の位置に生じ得る。一部の実施形態では、ピリミジン核酸塩基の２位、５位、及び６位が、コンジュゲート部分で置換され得る。親油性部分が、核酸塩基にコンジュゲートされる場合、好ましい位置は、ハイブリダイゼーションを妨げない位置、即ち、塩基対合に必要な水素結合相互作用を妨げない位置である。一実施形態では、親油性部分を含有する親油性モノマーは、アルキル、アルケニル又はアミド結合を含むリンカーを介して、核酸塩基にコンジュゲートされ得る。
ヌクレオシドの糖部分へのコンジュゲーションは、任意の炭素原子に生じ得る。親油性部分が結合され得る糖部分の例示的な炭素原子としては、２’、３’、及び５’炭素原子が挙げられる。親油性部分はまた、脱塩基残基などにおける、１’位に結合され得る。一実施形態では、親油性部分は、リンカーを用いて又は用いずに、２’－Ｏ修飾を介して、糖部分にコンジュゲートされ得る。
ヌクレオシド間結合も、親油性部分も有し得る。リン含有結合（例えば、ホスホジエステル、ホスホロチオエート、ホスホロジチオエート、ホスホロアミデートなど）の場合、親油性部分は、リン原子に直接結合されるか、又はリン原子に結合されたＯ、Ｎ、若しくはＳ原子に結合され得る。アミン又はアミドを含有するヌクレオシド間結合（例えば、ＰＮＡ）の場合、親油性部分は、アミン若しくはアミドの窒素原子に、又は隣接する炭素原子に結合され得る。
オリゴヌクレオチドのコンジュゲートを調製するための多くの方法がある。一般に、オリゴヌクレオチドは、オリゴヌクレオチドの反応性基（例えば、ＯＨ、ＳＨ、アミン、カルボキシル、アルデヒドなど）をコンジュゲート部分の反応性基と接触させることによって、コンジュゲート部分に結合される。一部の実施形態では、一方の反応性基が求電子性であり、他方が求核性である。
例えば、求電子基は、カルボニル含有官能基であってよく、求核基は、アミン又はチオールであり得る。連結基を用いる及び用いない核酸及び関連オリゴマー化合物のコンジュゲーションのための方法は、例えば、参照により全内容が本明細書に組み入れられる、Ｍａｎｏｈａｒａｎ ｉｎ Ａｎｔｉｓｅｎｓｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ａｎｄ Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｃｒｏｏｋｅ ａｎｄ ＬｅＢｌｅｕ，ｅｄｓ．，ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ，Ｂｏｃａ Ｒａｔｏｎ，Ｆｌａ．，１９９３，Ｃｈａｐｔｅｒ １７などの文献に十分に記載されている。
一実施形態では、第１の（相補的）ＲＮＡ鎖及び第２の（センス）ＲＮＡ鎖が、別々に合成され得、ＲＮＡ鎖の一方が、ペンダント親油性部分を含み、第１及び第２のＲＮＡ鎖が、混合されて、ｄｓＲＮＡを形成し得る。ＲＮＡ鎖を合成するステップは、好ましくは、固相合成を含み、ここで、個々のヌクレオチドが、連続した合成サイクルにおいて、ヌクレオチド間３’－５’ホスホジエステル結合の形成によって、末端間で結合される。
一実施形態では、ホスホラミダイト基を有する親油性分子が、最後の合成サイクルにおいて、第１の（相補的）又は第２の（センス）ＲＮＡ鎖のいずれかの３’末端又は５’末端に結合される。ＲＮＡの固相合成において、ヌクレオチドは、最初は、ヌクレオシドホスホラミダイトの形態である。各合成サイクルにおいて、さらなるヌクレオシドホスホラミダイトが、予め組み込まれたヌクレオチドの－ＯＨ基に連結される。親油性分子が、ホスホラミダイト基を有する場合、それは、ヌクレオシドホスホラミダイトと同様の方法で、固相合成において予め合成されたＲＮＡの遊離ＯＨ末端に結合され得る。合成は、従来のＲＮＡ合成装置を用いて、自動化及び標準化された方法で行われ得る。ホスホラミダイト基を有する親油性分子の合成は、ホスホラミダイト基を生成するための遊離ヒドロキシルのホスフィチル化を含み得る。
一般に、オリゴヌクレオチドは、例えば、参照によりそれぞれの全内容が本明細書に組み入れられる、Ｃａｒｕｔｈｅｒｓ ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ（１９９２）２１１：３－１９；国際公開第９９／５４４５９号パンフレット；Ｗｉｎｃｏｔｔ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９９５）２３：２６７７－２６８４；Ｗｉｎｃｏｔｔ ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ．Ｂｉｏ．，（１９９７）７４：５９；Ｂｒｅｎｎａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．Ｂｉｏｅｎｇ．（１９９８）６１：３３－４５；及び米国特許第６，００１，３１１号明細書に記載されるように、当分野で公知のプロトコルを用いて合成され得る。一般に、オリゴヌクレオチドの合成は、５’末端におけるジメトキシトリチル、及び３’末端におけるホスホラミダイトなどの従来の核酸保護及びカップリング基を必要とする。非限定的な例において、小規模の合成が、ＣｈｅｍＧｅｎｅｓ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ（Ａｓｈｌａｎｄ，Ｍａｓｓ．）によって販売されるリボヌクレオシドホスホラミダイトを用いて、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．（Ｗｅｉｔｅｒｓｔａｄｔ，Ｇｅｒｍａｎｙ）によって販売されるＥｘｐｅｄｉｔｅ ８９０９ ＲＮＡ合成装置において行われる。或いは、合成は、Ｐｒｏｔｏｇｅｎｅ（Ｐａｌｏ Ａｌｔｏ、Ｃａｌｉｆ．）によって製造される機器などの９６ウェルプレート合成装置において、又は参照によりそれぞれの全内容が本明細書に組み入れられる、Ｕｓｍａｎ ｅｔ ａｌ．，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．（１９８７）１０９：７８４５；Ｓｃａｒｉｎｇｅ，ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９９０）１８：５４３３；Ｗｉｎｃｏｔｔ，ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９９０）２３：２６７７－２６８４；及びＷｉｎｃｏｔｔ，ｅｔ ａｌ．，Ｍｅｔｈｏｄｓ Ｍｏｌ．Ｂｉｏ．（１９９７）７４：５９に記載されるものなどの方法によって行われ得る。
本発明の核酸分子は、別々に合成され、例えば、ライゲーションによって（Ｍｏｏｒｅ ｅｔ ａｌ．，Ｓｃｉｅｎｃｅ（１９９２）２５６：９９２３；国際公開第９３／２３５６９号パンフレット；Ｓｈａｂａｒｏｖａ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．（１９９１）１９：４２４７；Ｂｅｌｌｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｎｕｃｌｅｏｓｉｄｅｓ ＆ Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ（１９９７）１６：９５１；Ｂｅｌｌｏｎ ｅｔ ａｌ．，Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｃｈｅｍ．（１９９７）８：２０４；又は合成及び／又は脱保護の後のハイブリダイゼーションによって、合成後に互いに結合され得る。核酸分子は、従来の方法を用いたゲル電気泳動によって精製され得、又は高圧液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ；参照により全内容が本明細書に組み入れられる、Ｗｉｎｃｏｔｔ ｅｔ ａｌ．、上記を参照されたい）によって精製され得、水中で再懸濁され得る。
医薬組成物
一態様では、本発明は、ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物（例えば、前駆体、例えば、ｓｓｉＲＮＡ化合物へとプロセシングされ得る、より大きいｓｉＲＮＡ化合物、又は標的ＲＮＡに相補的な、例えば、実質的に及び／又は正確に相補的なヌクレオチド配列を含む、ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、又はその前駆体をコードするＤＮＡ）を含む医薬組成物を特徴とする。標的ＲＮＡは、内因性ヒト遺伝子の転写物であり得る。一実施形態では、ｓｉＲＮＡ化合物は、（ａ）１９～２５ヌクレオチド長、例えば、２１～２３ヌクレオチド長であり、（ｂ）内因性標的ＲＮＡに相補的であり、且つ、任意選択で、（ｃ）１～５ｎｔ長の少なくとも１つの３’オーバーハングを含む。一実施形態では、医薬組成物は、エマルション、マイクロエマルション、クリーム、ゼリー、又はリポソームであり得る。
一例では、医薬組成物は、局所送達剤と混合されたｓｉＲＮＡ化合物を含む。局所送達剤は、複数の微細小胞であり得る。微細小胞は、リポソームであり得る。一部の実施形態では、リポソームは、カチオン性リポソームである。
別の態様では、医薬組成物は、局所浸透促進剤と混合された、ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物（例えば、前駆体、例えば、ｓｓｉＲＮＡ化合物へとプロセシングされ得る、より大きいｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、又はその前駆体をコードするＤＮＡ）を含む。一実施形態では、局所浸透促進剤は、脂肪酸である。脂肪酸は、アラキドン酸、オレイン酸、ラウリン酸、カプリル酸、カプリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、リノール酸、リノレン酸、ジカプレート、トリカプレート、モノレイン、ジラウリン、グリセリル１－モノカプレート、１－ドデシルアザシクロヘプタン－２－オン、アシルカルニチン、アシルコリン、若しくはＣ１～１０アルキルエステル、モノグリセリド、ジグリセリド又はそれらの薬学的に許容される塩であり得る。
別の実施形態では、局所浸透促進剤は、胆汁酸塩である。胆汁酸塩は、コール酸、デヒドロコール酸、デオキシコール酸、グルコール酸、グリコール酸、グリコデオキシコール酸、タウロコール酸、タウロデオキシコール酸、ケノデオキシコール酸、ウルソデオキシコール酸、タウロ－２４，２５－ジヒドロ－フシジン酸ナトリウム、グリコジヒドロフシジン酸ナトリウム、ポリオキシエチレン－９－ラウリルエーテル又はそれらの薬学的に許容される塩であり得る。
別の実施形態では、浸透促進剤は、キレート剤である。キレート剤は、ＥＤＴＡ、クエン酸、サリチレート、コラーゲンのＮ－アシル誘導体、ラウレス－９、β－ジケトンのＮ－アミノアシル誘導体又はそれらの混合物であり得る。
別の実施形態では、浸透促進剤は、界面活性剤、例えば、イオン性又は非イオン性界面活性剤である。界面活性剤は、ラウリル硫酸ナトリウム、ポリオキシエチレン－９－ラウリルエーテル、ポリオキシエチレン－２０－セチルエーテル、ペルフルオロケミカルエマルション又はそれらの混合物であり得る。
別の実施形態では、浸透促進剤は、不飽和環状尿素、１－アルキル－アルコン、１－アルケニルアザシクロ－アラカノン、ステロイド性抗炎症薬及びそれらの混合物からなる群から選択され得る。さらに別の実施形態では、浸透促進剤は、グリコール、ピロール、アゾン、又はテルペンであり得る。
一態様では、本発明は、経口送達に適した形態で、ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物（例えば、前駆体、例えば、ｓｓｉＲＮＡ化合物へとプロセシングされ得る、より大きいｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、又はその前駆体をコードするＤＮＡ）を含む医薬組成物を特徴とする。一実施形態では、経口送達は、ｓｉＲＮＡ化合物組成物を、胃腸管、例えば、小腸、結腸（例えば、結腸癌を治療するために）などの細胞又は領域に送達するために使用され得る。経口送達形態は、錠剤、カプセル又はゲルカプセルであり得る。一実施形態では、医薬組成物のｓｉＲＮＡ化合物は、細胞接着タンパク質の発現を調節し、細胞増殖速度を調節し、又は真核病原体若しくはレトロウイルスに対する生物活性を有する。別の実施形態では、医薬組成物は、哺乳動物の胃において錠剤、カプセル又はゲルカプセルの溶解を実質的に防止する腸溶材料を含む。一部の実施形態では、腸溶材料は、コーティングである。コーティングは、酢酸フタル酸、プロピレングリコール、モノオレイン酸ソルビタン、トリメリト酸酢酸セルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロースフタレート又は酢酸フタル酸セルロースであり得る。
別の実施形態では、医薬組成物の経口剤形は、浸透促進剤を含む。浸透促進剤は、胆汁酸塩又は脂肪酸であり得る。胆汁酸塩はまた、ウルソデオキシコール酸、ケノデオキシコール酸、及びそれらの塩であり得る。脂肪酸は、カプリン酸、ラウリン酸、及びそれらの塩であり得る。
別の実施形態では、医薬組成物の経口剤形は、賦形剤を含む。一例では、賦形剤は、ポリエチレングリコールである。別の例では、賦形剤は、プレシロールである。
別の実施形態では、医薬組成物の経口剤形は、可塑剤を含む。可塑剤は、フタル酸ジエチル、セバシン酸トリアセチンジブチル、フタル酸ジブチル又はクエン酸トリエチルであり得る。
一態様では、本発明は、ｓｉＲＮＡ化合物及び送達ビヒクルを含む医薬組成物を特徴とする。一実施形態では、ｓｉＲＮＡ化合物は、（ａ）１９～２５ヌクレオチド長、例えば、２１～２３ヌクレオチドであり、（ｂ）内因性標的ＲＮＡに相補的であり、且つ、任意選択で、（ｃ）１～５ヌクレオチド長の少なくとも１つの３’オーバーハングを含む。
一実施形態では、送達ビヒクルは、局所投与経路によって、ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物（例えば、前駆体、例えば、ｓｓｉＲＮＡ化合物へとプロセシングされ得る、より大きいｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、又はその前駆体をコードするＤＮＡ）を細胞に送達することができる。送達ビヒクルは、微細小胞であり得る。一例では、微細小胞は、リポソームである。一部の実施形態では、リポソームは、カチオン性リポソームである。別の例では、微細小胞は、ミセルである。一態様では、本発明は、注射可能な剤形で、ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物（例えば、前駆体、例えば、ｓｓｉＲＮＡ化合物へとプロセシングされ得る、より大きいｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、又はその前駆体をコードするＤＮＡ）を含む医薬組成物を特徴とする。一実施形態では、医薬組成物の注射可能な剤形は、滅菌水溶液又は分散液及び滅菌粉末を含む。一部の実施形態では、滅菌溶液は、水；生理食塩溶液；固定油、ポリエチレングリコール、グリセロール、又はプロピレングリコールなどの希釈剤を含み得る。
一態様では、本発明は、経口剤形で、ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物（例えば、前駆体、例えば、ｓｓｉＲＮＡ化合物へとプロセシングされ得る、より大きいｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、又はその前駆体をコードするＤＮＡ）を含む医薬組成物を特徴とする。一実施形態では、経口剤形は、錠剤、カプセル及びゲルカプセルからなる群から選択される。別の実施形態では、医薬組成物は、哺乳動物の胃において錠剤、カプセル又はゲルカプセルの溶解を実質的に防止する腸溶材料を含む。一部の実施形態では、腸溶材料は、コーティングである。コーティングは、酢酸フタル酸、プロピレングリコール、モノオレイン酸ソルビタン、トリメリト酸酢酸セルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロースフタレート又は酢酸フタル酸セルロースであり得る。一実施形態では、医薬組成物の経口剤形は、浸透促進剤、例えば、本明細書に記載される浸透促進剤を含む。
別の実施形態では、医薬組成物の経口剤形は、賦形剤を含む。一例では、賦形剤は、ポリエチレングリコールである。別の例では、賦形剤は、プレシロールである。
別の実施形態では、医薬組成物の経口剤形は、可塑剤を含む。可塑剤は、フタル酸ジエチル、トリアセチンセバシン酸ジブチル、フタル酸ジブチル又はクエン酸トリエチルであり得る。
一態様では、本発明は、経直腸剤形で、ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物（例えば、前駆体、例えば、ｓｓｉＲＮＡ化合物へとプロセシングされ得る、より大きいｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、又はその前駆体をコードするＤＮＡ）を含む医薬組成物を特徴とする。一実施形態では、経直腸剤形は、かん腸剤である。別の実施形態では、経直腸剤形は、坐剤である。
一態様では、本発明は、経膣剤形で、ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物（例えば、前駆体、例えば、ｓｓｉＲＮＡ化合物へとプロセシングされ得る、より大きいｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、又はその前駆体をコードするＤＮＡ）を含む医薬組成物を特徴とする。一実施形態では、経膣剤形は、坐剤である。別の実施形態では、経膣剤形は、フォーム、クリーム、又はゲルである。
一態様では、本発明は、経肺又は経鼻剤形で、ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物（例えば、前駆体、例えば、ｓｓｉＲＮＡ化合物へとプロセシングされ得る、より大きいｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、又はその前駆体をコードするＤＮＡ）を含む医薬組成物を特徴とする。一実施形態では、ｓｉＲＮＡ化合物は、粒子、例えば、マクロ粒子、例えば、マイクロスフェアに組み込まれる。粒子は、噴霧乾燥、凍結乾燥、蒸発、流動床乾燥、真空乾燥、又はそれらの組み合わせによって生成され得る。マイクロスフェアは、懸濁液、粉末、又は埋め込み可能な固体として製剤化され得る。
治療方法及び送達経路
本発明の別の態様は、細胞内での標的遺伝子の発現を低下させる方法であって、前記細胞を、本発明の化合物と接触させるステップを含む、方法に関する。一実施形態では、細胞は、肝臓外細胞である。
本発明の別の態様は、対象における標的遺伝子の発現を低下させる方法であって、本発明の化合物を対象に投与するステップを含む、方法に関する。
本発明の別の態様は、中枢神経系疾患に罹患している対象を治療する方法であって、治療有効量の本発明の二本鎖ＲＮＡｉ剤を対象に投与し、それによって、対象を治療するステップを含む、方法に関する。本発明の方法によって治療され得る例示的な中枢神経系疾患としては、アルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、前頭側頭認知症、ハンチントン病、パーキンソン病、脊髄小脳失調、プリオン病、及びラフォラ病が挙げられる。
本発明の化合物は、標的とされる遺伝子のタイプ及び治療される疾患のタイプに応じて、様々な経路によって、対象に送達され得る。一部の実施形態では、化合物は、眼内投与（例えば、硝子体内投与）、髄腔内投与又は脳室内投与などのように、肝臓外で投与される。
一実施形態では、化合物は、髄腔内に又は脳室内に投与される。化合物の髄腔内投与又は脳室内投与によって、本方法は、脳又は脊椎組織、例えば、大脳皮質、小脳、頚椎、腰椎、及び胸椎における標的遺伝子の発現を低下させることができる。
一部の実施形態では、例示的な標的遺伝子は、ＡＰＰ、ＡＴＸＮ２、Ｃ９ｏｒｆ７２、ＴＡＲＤＢＰ、ＭＡＰＴ（タウ）、ＨＴＴ、ＳＮＣＡ、ＦＵＳ、ＡＴＸＮ３、ＡＴＸＮ１、ＳＣＡ１、ＳＣＡ７、ＳＣＡ８、ＭｅＣＰ２、ＰＲＮＰ、ＳＯＤ１、ＤＭＰＫ、及びＴＴＲである。対象におけるこれらの標的遺伝子の発現を低下させるために、化合物は直接眼に（例えば硝子体内に）投与され得る。化合物の硝子体内投与によって、本方法は、眼組織における標的遺伝子の発現を低下させることができる。
説明を簡単にするために、この項の製剤、組成物及び方法は、主に、修飾ｓｉＲＮＡ化合物に関して説明される。しかしながら、これらの製剤、組成物及び方法は、他のｓｉＲＮＡ化合物、例えば、非修飾ｓｉＲＮＡ化合物で実施することができ、このような実施は本発明の範囲内であることが理解され得る。ｉＲＮＡを含む組成物は、様々な経路によって、対象に送達され得る。例示的な経路としては、静脈内、局所、経直腸、経肛門、経膣、経鼻、経肺、眼内が挙げられる。
本発明のｉＲＮＡ分子は、投与に適した医薬組成物に含めることができる。このような組成物は、典型的には、１種以上のｉＲＮＡ及び薬学的に許容され得る担体を含む。本明細書で使用される「薬学的に許容され得る担体」という語は、医薬品投与に適合したあらゆる溶媒、分散媒、コーティング、抗菌剤、抗真菌剤、等張剤、及び吸収遅延剤などを含むものとする。薬学的に活性な物質用のこのような媒体及び作用剤の使用は、当分野で周知である。あらゆる従来の媒体又は作用剤が活性化合物と適合性でない場合を除き、その組成物中での使用が想定される。補助活性化合物を組成物に含めても良い。
本発明の医薬組成物は、局所治療又は全身治療が望ましいか否か、及び治療される領域に基づいて様々な方式で投与することができる。投与は、局所（眼、膣、直腸、鼻、経皮を含む）、経口、又は非経口とすることができる。非経口投与としては、点滴、皮下、腹腔内もしくは筋肉内注射、又は気管支内、脳室内（ｉｎｔｒａｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ）若しくは脳室内（ｉｎｔｒａｃｅｒｅｂｒｏｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ）投与が挙げられる。
投与の経路及び部位は、標的化を強めるために選択することができる。例えば、筋細胞を標的とするためには、目的の筋肉内への筋肉注射は、論理的な選択であろう。肺細胞は、ｉＲＮＡを噴霧形態で投与することによって標的とすることができる。血管内皮細胞は、バルーンカテーテルをｉＲＮＡでコーティングして、ＤＮＡを機械的に導入することによって標的とすることができる。
局所投与用の製剤としては、経皮パッチ、軟膏、ローション、クリーム、ゲル、点滴、坐剤、スプレー、液体及び粉末が挙げられる。従来の医薬担体、水性基剤、粉末状基剤又は油性基剤、増粘剤などが必要であるか又は望ましいことがある。被覆されたコンドーム、手袋なども有用であり得る。
経口投与用の組成物としては、粉末若しくは顆粒、水中の懸濁液若しくは溶液、シロップ、エリキシル剤又は非水性溶媒、錠剤、カプセル、舐剤、又はトローチが挙げられる。錠剤の場合、使用され得る担体としては、ラクトース、クエン酸ナトリウム及びリン酸塩が挙げられる。デンプンなどの様々な崩壊剤、並びにステアリン酸マグネシウム、ラウリル硫酸ナトリウム及びタルクなどの潤滑剤が、一般的に錠剤に使用される。カプセル形態での経口投与のために、有用な希釈剤は、ラクトース及び高分子量ポリエチレングリコールである。水性懸濁液が経口使用に必要とされる場合、核酸組成物は、乳化剤及び懸濁化剤と組み合わされ得る。必要に応じて、特定の甘味剤及び／又は着香剤が添加され得る。
髄腔内又は脳室内（ｉｎｔｒａｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ）若しくは脳室内（ｉｎｔｒａｃｅｒｅｂｒｏｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ）投与用の組成物は、緩衝剤、希釈剤及び他の適切な添加剤も含み得る滅菌水溶液を含み得る。
非経口投与用の製剤は、緩衝剤、希釈剤及び他の適切な添加剤も含み得る滅菌水溶液を含み得る。脳室内注入は、例えば、リザーバに取り付けられた脳室内カテーテルによって促進され得る。静脈内使用のために、溶質の総濃度は、調製物を等張性にするように制御され得る。
眼内投与のために、軟膏又は点滴液体が、アプリケータ又は点眼器などの、当分野で公知の眼内送達システムによって送達され得る。このような組成物は、ヒアルロン酸、コンドロイチン硫酸、ヒドロキシプロピルメチルセルロース又はポリ（ビニルアルコール）などの粘液模倣物、ソルビン酸、ＥＤＴＡ又は塩化ベンジルクロム（ｂｅｎｚｙｌｃｈｒｏｎｉｕｍ ｃｈｌｏｒｉｄｅ）などの防腐剤、並びに通常の量の希釈剤及び／又は担体を含み得る。
一実施形態では、ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、組成物の投与は、非経口、例えば、静脈内（例えば、ボーラスとして又は拡散注入として）、皮内、腹腔内、筋肉内、髄腔内、脳室内（ｉｎｔｒａｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ）、脳室内（ｉｎｔｒａｃｅｒｅｂｒｏｖｅｎｔｒｉｃｕｌａｒ）、頭蓋内、皮下、経粘膜、頬側、舌下、内視鏡、直腸、経口、膣、局所、肺、鼻、尿道又は眼内である。投与は、対象によって、又は別の人間、例えば、医療提供者によって行うことができる。薬物治療は、測定した用量で、又は測定した用量を送達するディスペンサーで行うことができる。選択される送達方式は、以下に詳細に説明される。
髄腔内投与。一実施形態では、化合物は、髄腔内注入（即ち、脳及び脊髄組織を浸している髄液への注入）によって送達される。髄液へのｉＲＮＡ剤の髄腔内注入は、ボーラス注入法として又は皮膚の下に埋め込まれ得るミニポンプによって行うことができ、髄液へのｓｉＲＮＡの規則的な及び定量の送達を提供する。髄液が産生される脈絡叢からの髄液は、脊髄及び後根神経節の周りに下り、続いて小脳を通り過ぎて上り、大脳皮質にわたって、くも膜顆粒へと循環し、ここで、髄液は中枢神経系を出ることができ、注入される化合物のサイズ、安定性、及び溶解度に応じて、髄腔内に送達される分子が、中枢神経系全体にわたって標的に到達し得る。
一部の実施形態では、髄腔内投与は、ポンプを用いたものである。ポンプは、外科的に埋め込まれた浸透圧ポンプであり得る。一実施形態では、浸透圧ポンプは、髄腔内投与を容易にするために、脊柱管のくも膜下腔に埋め込まれる。
一部の実施形態では、髄腔内投与は、薬剤の体積を含むリザーバを含む、薬剤のための髄腔内送達系、及びリザーバに含まれる薬剤の分量を送達するように構成されたポンプを用いたものである。この髄腔内送達系についてのさらなる詳細は、参照により全内容が組み入れられる、２０１５年１月２８日出願のＰＣＴ／ＵＳ２０１５／０１３２５３号明細書に見出され得る。
髄腔内又は脳室内に注入されるｉＲＮＡ剤の量は、１つの標的遺伝子と別の標的遺伝子とで異なり得、適用される必要のある適切な量は、各標的遺伝子について個別に決定される必要があり得る。典型的に、この量は、１０μｇ～２ｍｇ、好ましくは、５０μｇ～１５００μｇ、より好ましくは、１００μｇ～１０００μｇの範囲である。
直腸投与。本発明は、本明細書に記載されるｓｉＲＮＡ化合物の直腸投与又は送達のための、方法、組成物、及びキットも提供する。
したがって、本明細書に記載されるｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物（例えば、前駆体、例えば、ｓｓｉＲＮＡ化合物へとプロセシングされ得る、より大きいｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、又はその前駆体をコードするＤＮＡ）、例えば、治療有効量の、本明細書に記載されるｓｉＲＮＡ化合物、例えば、４０未満、及び、例えば、３０未満のヌクレオチドの二本鎖領域を有し、且つ１つ又は２つの、１～３ヌクレオチド一本鎖３’オーバーハングを有するｓｉＲＮＡ化合物が、直腸投与され、例えば、直腸を介して下部又は上部結腸に導入され得る。この手法は、炎症性疾患、不要な細胞増殖によって特徴付けられる疾患、例えば、ポリープ、又は結腸癌の治療に特に有用である。
薬剤は、分注デバイス、例えば、薬剤の送達のための手段を含む、結腸の視診又はポリープの除去に使用されるものと同様のフレキシブルなカメラ誘導デバイスを導入することによって、結腸内の部位に送達され得る。
ｓｉＲＮＡ化合物の直腸投与は、かん腸剤を用いる。かん腸剤のｓｉＲＮＡ化合物は、生理食塩水又は緩衝液に溶解され得る。直腸投与はまた、他の成分、例えば、賦形剤、例えば、カカオ脂又はヒドロキシプロピルメチルセルロースを含み得る、坐剤を用いることができる。
眼内送達。本明細書に記載されるｉＲＮＡ剤は、眼組織に投与され得る。例えば、薬剤は、眼組織又は周囲組織、例えば、眼瞼の内側の表面に適用され得る。それらは、例えば、噴霧することによって、点滴剤中で、洗眼液として、又は軟膏として、局所的に適用され得る。投与は、対象によって、又は別の人、例えば、医療提供者によって提供され得る。薬物治療は、測定した用量で、又は測定した用量を送達するディスペンサーで行うことができる。薬物治療はまた、眼内に投与することもでき、薬物を選択された範囲又は構造に導入することができる、針又は他の送達デバイスによって導入することができる。眼治療は、眼組織又は周囲組織の炎症を治療するのに特に望ましい。
特定の実施形態では、二本鎖ｉＲＮＡ剤は、眼組織注入、例えば、周囲、結膜、テノン嚢下、前房内、硝子体内、眼内、前部若しくは後部強膜近傍（ａｎｔｅｒｉｏｒ ｏｒ ｐｏｓｔｅｒｉｏｒ ｊｕｘｔａｓｃｌｅｒａｌ）、網膜下、結膜下、眼球後、若しくは管内注入によって、眼に直接送達されるか；カテーテル又は他の留置デバイス例えば、網膜ペレット（ｒｅｔｉｎａｌ ｐｅｌｌｅｔ）、眼内挿入物、坐剤又は多孔質、非多孔質、若しくはゼラチン状材料を含むインプラントを用いた、眼への直接適用によって；局所点眼剤若しくは軟膏によって；又は結膜嚢における持続放出デバイスによって送達されるか、又は強膜に隣接して（経強膜）若しくは強膜の中に（強膜内）若しくは眼内に埋め込まれ得る。前房内注入は、角膜を介して、前眼房へと行われ、薬剤を小柱網に到達させ得る。管内注入は、静脈集合路（ｖｅｎｏｕｓ ｃｏｌｌｅｃｔｏｒ ｃｈａｎｎｅｌ）内へと行われ、シュレム管から又はシュレム管からへと排液することができる。
一実施形態では、二本鎖ｉＲＮＡ剤は、眼内に、例えば、医療関係者による使用のために注射の準備が整った形態の予め充填された注射器などによる硝子体内注入によって眼の硝子体腔に投与され得る。
眼内送達のために、二本鎖ｉＲＮＡ剤は、眼科学的に許容される防腐剤、共溶媒、界面活性剤、粘度向上剤、浸透促進剤、緩衝剤、塩化ナトリウム、又は水と組み合わされて、水性、滅菌眼用懸濁剤又は液剤を形成し得る。液剤は、生理学的に許容される等張性の水性緩衝液にコンジュゲートを溶解させることによって調製され得る。さらに、液剤は、二本鎖ｉＲＮＡ剤を溶解させるのを助けるために許容される界面活性剤を含み得る。ヒドロキシメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、メチルセルロース、ポリビニルピロリドンなどの粘度向上剤が、二本鎖ｉＲＮＡ剤の滞留性を改善するために医薬組成物に添加され得る。
滅菌眼用軟膏製剤を調製するために、二本鎖ｉＲＮＡ剤は、適切なビヒクル、例えば、鉱油、液体ラノリン、又は白色ワセリン中で防腐剤と組み合わされる。滅菌眼用ゲル製剤は、当分野で公知の方法にしたがって、例えば、ＣＡＲＢＯＰＯＬ（登録商標）－９４０（ＢＦ Ｇｏｏｄｒｉｃｈ，Ｃｈａｒｌｏｔｔｅ，Ｎ．Ｃ．）などの組み合わせから調製される親水性基剤中で二本鎖ｉＲＮＡ剤を懸濁させることによって調製され得る。
局所送達。本明細書に記載されるｓｉＲＮＡ化合物はいずれも、皮膚に直接投与され得る。例えば、薬剤は、局所的に適用されるか、又は例えば、皮膚は貫通するが、例えば、下層の筋組織は貫通しないマイクロニードル又は一連のマイクロニードルの使用によって、皮膚の層に送達され得る。ｓｉＲＮＡ化合物組成物の投与は、局所的であり得る。局所適用は、例えば、対象の真皮又は表皮に組成物を送達することができる。局所投与は、経皮パッチ、軟膏、ローション、クリーム、ゲル、点滴、坐剤、スプレー、液体又は粉末の形態であり得る。局所投与用の組成物は、リポソーム、ミセル、エマルション、又は他の親油性分子集合体として製剤化され得る。経皮投与は、イオントフォレーシス、フォノフォレーシス、及びソノフォレーシスなどの少なくとも１つの浸透促進剤を用いて適用され得る。
説明を簡単にするために、この項の製剤、組成物及び方法は、主に、修飾ｓｉＲＮＡ化合物に関して説明される。しかしながら、これらの製剤、組成物及び方法は、他のｓｉＲＮＡ化合物、例えば、非修飾ｓｉＲＮＡ化合物で実施することができ、このような実施は本発明の範囲内であることが理解され得る。一部の実施形態では、ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物（例えば、前駆体、例えば、ｓｓｉＲＮＡ化合物へとプロセシングされ得る、より大きいｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、又はその前駆体をコードするＤＮＡ）が、局所投与によって対象に送達される。「局所投与」は、製剤を対象の表面に直接接触させることによる、対象への送達を指す。最も一般的な形態の局所送達は、皮膚への送達であるが、本明細書に開示される組成物はまた、身体の他の表面、例えば、眼、粘膜、体腔の表面又は内面に直接適用され得る。上述されるように、最も一般的な局所送達は、皮膚への送達である。この用語は、限定されるものではないが、局所及び経皮を含むいくつかの投与経路を包含する。これらの投与方法は、典型的に、皮膚の透過障壁への浸透及び標的組織又は層への効率的な送達を含む。局所投与は、表皮及び真皮に浸透し、最終的に組成物の全身送達を達成するための手段として使用され得る。局所投与は、対象の表皮若しくは真皮、又はその特定の層、又は下層組織にオリゴヌクレオチドを選択的に送達するための手段としても使用され得る。
本明細書で使用される「皮膚」という語は、動物の表皮及び／又は真皮を指す。哺乳動物の皮膚は、２つの主要な異なる層からなる。皮膚の外層は、表皮と呼ばれる。表皮は、角質層、顆粒層、有棘層、及び基底層から構成され、角質層は、皮膚の表面にあり、基底層は、表皮の最深部分にある。表皮は、身体上のその位置に応じて、５０μｍ～０．２ｍｍの厚さである。
表皮の下には、表皮よりはるかに厚い真皮がある。真皮は、主に、繊維束の形態のコラーゲンから構成される。コラーゲン束は、とりわけ、血管、毛細リンパ管、腺、神経終末、及び免疫学的に活性な細胞に対する支持を提供する。
器官としての皮膚の主要な機能のうちの１つは、体内に物質が入ることを制御することである。皮膚の主要な透過障壁は、分化の様々な状態で細胞の多くの層から形成される角質層によって提供される。角質層層中の細胞間の空間は、皮膚の透過障壁をさらに強化するための密閉を提供する、格子状の構造に配列された異なる脂質で充填される。
皮膚によって提供される透過障壁は、約７５０Ｄａを超える分子量を有する分子に概して不浸透性であるような障壁である。より大きい分子が皮膚の透過障壁を通過するために、通常の浸透作用以外の機構が使用されなければならない。
いくつかの要因が、投与された作用剤に対する皮膚の透過性を決定する。これらの要因としては、治療された皮膚の特徴、送達剤の特徴、薬物と送達剤との間及び薬物と皮膚との間の両方の相互作用、適用される薬物の投与量、治療形態、及び治療後レジメンが挙げられる。表皮及び真皮を選択的に標的化するために、予め選択された層に対する薬物の浸透を可能にする１つ以上の浸透促進剤を含む組成物を製剤化することが可能である場合がある。
経皮送達は、脂溶性治療薬の投与に有益な経路である。真皮は、表皮より透過性であり、したがって、吸収は、擦りむいた皮膚、火傷した皮膚、又は剥離された皮膚を通じてはるかに急速である。炎症及び皮膚への血流量を増加させる他の生理学的条件もまた、経皮吸収を促進する。この経路を介した吸収は、油性媒体（塗擦）の使用によって、又は１つ以上の浸透促進剤の使用によって促進され得る。経皮経路を介して本明細書に開示される組成物を送達する他の有効な方法としては、皮膚の水和及び制御放出局所パッチの使用が挙げられる。経皮経路は、全身及び／又は局所療法のために本明細書に開示される組成物を送達するための潜在的に有効な手段を提供する。
さらに、イオントフォレーシス（電場の影響下での生体膜を通じたイオン性溶質の輸送）（Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ．，Ｃｒｉｔｉｃａｌ Ｒｅｖｉｅｗｓ ｉｎ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｄｒｕｇ Ｃａｒｒｉｅｒ Ｓｙｓｔｅｍｓ，１９９１，ｐ．１６３）、フォノフォレーシス又はソノフォレーシス（生体膜特に皮膚及び角膜にわたる様々な治療剤の吸収を促進するための超音波の使用）（Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ．，Ｃｒｉｔｉｃａｌ Ｒｅｖｉｅｗｓ ｉｎ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｄｒｕｇ Ｃａｒｒｉｅｒ Ｓｙｓｔｅｍｓ，１９９１，ｐ．１６６）、及び投与部位における用量状態及び滞留性に対する媒体特徴の最適化（Ｌｅｅ ｅｔ ａｌ．，Ｃｒｉｔｉｃａｌ Ｒｅｖｉｅｗｓ ｉｎ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ Ｄｒｕｇ Ｃａｒｒｉｅｒ Ｓｙｓｔｅｍｓ，１９９１，ｐ．１６８）が、皮膚及び粘膜部にわたる局所的に適用される組成物の輸送を促進するための有用な方法であり得る。
提供される組成物及び方法はまた、ｉｎ ｖｉｔｒｏで培養又は保存真皮組織中で、及び動物において、様々なタンパク質及び遺伝子の機能を調べるために使用され得る。したがって、本発明は、任意の遺伝子の機能を調べるために適用され得る。本発明の方法はまた、治療的又は予防的に使用され得る。例えば、乾癬、扁平苔癬、中毒性表皮壊死症、多形性紅斑、基底細胞癌、扁平上皮細胞癌、悪性黒色腫、パジェット病、カポジ肉腫、肺線維症、ライム病並びに皮膚のウイルス感染、真菌感染、及び細菌感染などの疾病に罹患していることが既知であるか、又はその疑いがある動物の治療に使用され得る。
経肺送達。本明細書に記載されるｓｉＲＮＡ化合物はいずれも、肺系統に投与され得る。経肺投与は、吸入によって、又は肺系統への送達デバイスの導入によって、例えば、薬剤を分注し得る送達デバイスの導入によって達成され得る。特定の実施形態は、吸入による経肺送達の方法を使用し得る。薬剤は、例えば、湿潤又は乾燥した薬剤を送達するディスペンサーで、それが吸入され得るのに十分に小さい形態で提供され得る。デバイスは、測定した用量の薬剤を送達し得る。対象、又は別の人間が、薬剤を投与することができる。経肺送達は、肺組織を直接侵す疾患だけでなく、他の組織を侵す疾患にも有効である。ｓｉＲＮＡ化合物は、経肺送達のための液体又は非液体、例えば、粉末、結晶、又はエアロゾルとして製剤化され得る。
説明を簡単にするために、この項の製剤、組成物及び方法は、主に、修飾ｓｉＲＮＡ化合物に関して説明される。しかしながら、これらの製剤、組成物及び方法は、他のｓｉＲＮＡ化合物、例えば、非修飾ｓｉＲＮＡ化合物で実施することができ、このような実施は本発明の範囲内であることが理解され得る。ｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物（例えば、前駆体、例えば、ｓｓｉＲＮＡ化合物へとプロセシングされ得る、より大きいｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｉＲＮＡ化合物、例えば、二本鎖ｓｉＲＮＡ化合物、又はｓｓｉＲＮＡ化合物、又はその前駆体をコードするＤＮＡ）を含む組成物が、経肺送達によって対象に投与され得る。経肺送達組成物は、分散剤中の組成物、例えば、ｉＲＮＡが、肺に達することができ、肺内で肺胞領域を通じて血液循環に直接容易に吸収されることができるように、分散剤の患者による吸収によって送達され得る。経肺送達は、全身送達及び肺疾患を治療するための局所送達の両方に有効であり得る。
経肺送達は、ネブライザー、エアロゾル、ミセル及び乾燥粉末ベースの製剤の使用を含む、異なる手法によって達成され得る。送達は、液体ネブライザー、エアロゾル吸入器、及び乾燥粉末分散装置を用いて達成され得る。定量デバイスが使用されてもよい。アトマイザー又は吸入器を使用する利点の１つは、デバイスが内蔵式であるため、汚染の可能性が最小限に抑えられることである。乾燥粉末分散装置は、例えば、乾燥粉末として容易に製剤化され得る薬物を送達する。ｉＲＮＡ組成物は、単独で、又は適切な粉末担体と組み合わせて、凍結乾燥又は噴霧乾燥粉末として安定的に保存され得る。吸入のための組成物の送達は、投薬タイミング要素によって媒介され得、投薬タイミング要素としては、デバイスに組み込まれた場合に、エアロゾル薬剤の投与中に患者に対する用量追跡、コンプライアンス監視、及び／又は用量トリガーを可能にする、タイマー、用量カウンター、時間測定デバイス、又は時間指示器が挙げられ得る。
「粉末」という語は、自由流動性であり、吸入デバイス内で容易に分散され、続いて対象によって吸入され、粒子が肺に達し、肺胞への浸透を可能にすることができる、微細分散した固体粒子からなる組成物を意味する。したがって、粉末は、「呼吸に適している」と考えられる。例えば、平均粒径は、直径が約１０μｍ未満であり、比較的均一な球状の分布を有する。一部の実施形態では、直径は、約７．５μｍ未満であり、一部の実施形態では、約５．０μｍ未満である。通常、粒度分布は、直径が約０．１μｍ～約５μｍであり、場合により、約０．３μｍ～約５μｍである。
「乾燥」という語は、組成物が、約１０重量％（％ｗ）未満の水、通常、約５％ｗ未満、ある場合に、約３％ｗ未満の水分含量を有することを意味する。乾燥組成物は、粒子が、エアロゾルを形成するために吸入デバイス内で容易に分散可能であるような組成物であり得る。
「治療有効量」という語は、予測される生理学的反応をもたらすために、治療されている対象において所望のレベルの薬物を提供するために必要な組成物中に存在する量である。
「生理学的有効量」という語は、所望の緩和又は治療効果をもたらすために対象に送達される量である。
「薬学的に許容される担体」という語は、肺への有意な有害毒性作用を伴わずに、担体を肺に取り込むことができることを意味する。
担体として有用な医薬品賦形剤の種類としては、ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）などの安定剤、糖質、アミノ酸及びポリペプチドなどの増量剤；ｐＨ調整剤又は緩衝剤；塩化ナトリウムなどの塩などが挙げられる。これらの担体は、結晶性又は非晶質形態であってもよく、又は２つの混合物であってもよい。
特に有益な増量剤としては、適合する糖質、ポリペプチド、アミノ酸又はそれらの組み合わせが挙げられる。適切な糖質としては、ガラクトース、Ｄ－マンノース、ソルボースなどの単糖類；ラクトース、トレハロースなどの二糖類；２－ヒドロキシプロピル－β－シクロデキストリンなどのシクロデキストリン；及びラフィノース、マルトデキストリン、デキストランなどの多糖類；マンニトール、キシリトールなどのアルジトールが挙げられる。糖質の群としては、ラクトース、トレハロース、ラフィノースマルトデキストリン、及びマンニトールが挙げられる。適切なポリペプチドとしては、アスパルテームが挙げられる。アミノ酸としては、アラニン及びグリシンが挙げられ、一部の実施形態では、グリシンが使用される。
本発明の組成物の微量構成成分である添加剤は、噴霧乾燥中の構造安定性及び粉末の分散性の改善のために含まれてもよい。これらの添加剤としては、トリプトファン、チロシン、ロイシン、フェニルアラニンなどの疎水性アミノ酸が挙げられる。
適切なｐＨ調整剤又は緩衝剤としては、クエン酸ナトリウム、アスコルビン酸ナトリウムなどの有機酸及び塩基から調製される有機塩が挙げられ；一部の実施形態では、クエン酸ナトリウムが使用され得る。
ミセルｉＲＮＡ製剤の経肺投与は、テトラフルオロエタン、ヘプタフルオロエタン、ジメチルフルオロプロパン、テトラフルオロプロパン、ブタン、イソブタン、ジメチルエーテル並びに他の非ＣＦＣ及びＣＦＣ噴射剤などの噴射剤を用いた定量噴霧デバイスによって達成され得る。
経口又は経鼻送達。本明細書に記載されるｓｉＲＮＡ化合物はいずれも、例えば、錠剤、カプセル、ゲルカプセル、舐剤、トローチ又は液体シロップの形態で、経口投与され得る。さらに、組成物は、口腔の表面に局所的に適用され得る。
本明細書に記載されるｓｉＲＮＡ化合物はいずれも、経鼻投与され得る。経鼻投与は、鼻への送達デバイスの導入によって、例えば、薬剤を分注し得る送達デバイスの導入によって達成され得る。経鼻送達の方法としては、例えば、点鼻剤による、又は鼻腔の表面への局所投与による、スプレー、エアロゾル、液体が挙げられる。薬剤は、例えば、湿潤又は乾燥した薬剤を送達するディスペンサーで、それが吸入され得るのに十分に小さい形態で提供され得る。デバイスは、測定した用量の薬剤を送達することができる。対象、又は別の人間が、薬剤を投与することができる。
経鼻送達は、鼻腔組織を直接侵す疾患だけでなく、他の組織を侵す疾患にも有効である。ｓｉＲＮＡ化合物は、液体又は非液体、例えば、粉末、結晶として、又は経鼻送達用に製剤化され得る。本明細書で使用される「結晶性」という語は、結晶の構造又は特徴を有する固体、即ち、平面が明確な角度で交差し、且つ規則正しい内部構造がある三次元構造の粒子を表す。本発明の組成物は、様々な結晶形態を有し得る。結晶形態は、例えば、噴霧乾燥を含む様々な方法によって調製され得る。
説明を簡単にするために、この項の製剤、組成物及び方法は、主に、修飾ｓｉＲＮＡ化合物に関して説明される。しかしながら、これらの製剤、組成物及び方法は、他のｓｉＲＮＡ化合物、例えば、非修飾ｓｉＲＮＡ化合物で実施することができ、このような実施は本発明の範囲内であることが理解され得る。口膜及び鼻粘膜の両方は、他の投与経路に優る利点を提供する。例えば、これらの膜を通して投与される薬物は、作用の急速な発現を有し、治療血漿レベルを提供し、肝代謝の初回通過効果を回避し、好ましくない胃腸（ＧＩ）環境への薬物の暴露を回避する。さらなる利点としては、薬剤が容易に適用、局所化、及び除去され得るような、膜部位への容易なアクセスが挙げられる。
経口送達において、組成物は、口腔の表面、例えば、舌の腹側表面の膜及び口底を含む舌下粘膜又は頬の内面を構成する頬粘膜に標的化され得る。舌下粘膜は、比較的透過性であり、したがって、多くの薬物の急速な吸収及び許容可能なバイオアベイラビリティをもたらす。さらに、舌下粘膜は、便利で、許容可能で、且つ容易にアクセス可能である。
分子が口腔粘膜に浸透する能力は、分子量、脂溶性及びペプチドタンパク質イオン化に関連するようである。１０００ダルトン未満の小分子は、急速に粘膜を横断するようである。分子量が増加するにつれて、透過性は急速に低下する。脂溶性化合物は、非脂溶性分子より透過性である。最大吸収は、分子がイオン化されていないか、又は電荷において中性である場合に生じる。したがって、荷電分子は、口腔粘膜を介した吸収にとって最大の課題を示す。
ｉＲＮＡの医薬組成物はまた、上記の混合ミセル医薬品製剤及び噴射剤を定量噴霧ディスペンサーから吸入なしで口腔に噴霧することによって、ヒトの口腔に投与されてもよい。一実施形態では、ディスペンサーは、医薬製剤及び噴射剤を口腔に噴霧する前に最初に振とうされる。例えば、薬剤は、口腔に噴霧されるか、又は例えば、液体、固体、若しくはゲル形態で、口腔の表面に直接適用され得る。この投与は、口腔、例えば、歯茎又は舌の炎症の治療に特に望ましく、例えば、一実施形態では、口腔投与は、ディスペンサー、例えば、医薬組成物及び噴射剤を分注する定量噴霧ディスペンサーから、例えば吸入なしで口腔に噴霧することによって行われる。
本発明の一態様はまた、オリゴヌクレオチドを、髄腔内若しくは脳室内送達によって中枢神経系に、又は眼内送達、例えば、硝子体内送達によって眼組織に送達する方法にも関する。
一部の実施形態は、細胞内での標的遺伝子の発現を低下させる方法であって、前記細胞を、任意選択で、リンカー又は担体を介して、オリゴヌクレオチドにコンジュゲートされた親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを有するオリゴヌクレオチドと接触させることを含む、方法に関する。一実施形態では、細胞は、中枢神経系中の細胞である。一実施形態では、細胞は、眼細胞である。
一部の実施形態は、対象における標的遺伝子の発現を低下させる方法であって、任意選択で、リンカー又は担体を介して、オリゴヌクレオチドにコンジュゲートされた親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーを有するオリゴヌクレオチドを対象に投与することを含む、方法に関する。一実施形態では、オリゴヌクレオチドコンジュゲートは、（脳又は脊椎組織における標的遺伝子の発現を低下させるために）髄腔内に又は脳室内に投与される。一実施形態では、オリゴヌクレオチドコンジュゲートは、（眼組織における標的遺伝子の発現を低下させるために）眼内に、例えば、硝子体内に投与される。
一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドは、二本鎖である。一実施形態では、オリゴヌクレオチドは、標的遺伝子に相補的なアンチセンス鎖及び前記アンチセンス鎖に相補的なセンス鎖を含む化合物である。
一部の実施形態では、オリゴヌクレオチドは、一本鎖である。一実施形態では、オリゴヌクレオチドは、アンチセンスである。
一部の実施形態では、親油性部分を含有する親油性モノマーは、オリゴヌクレオチドの少なくとも１つの鎖上の１つ以上の内部位置上に位置する。一部の実施形態では、親油性部分を含有する親油性モノマーは、オリゴヌクレオチドの少なくとも１つの鎖上の１つ以上の末端位置上に位置する。
本発明は、以下の実施例によってさらに例示されるが、これらの実施例は、さらなる限定と解釈されるべきものではない。本出願で言及される全ての参照文献、出願中の特許出願及び公開特許の内容は、参照により本明細書に明確に組み入れられるものとする。
ここで、本発明が、一般に説明され、以下の実施例を参照してより容易に理解されるが、これらの実施例は、本発明の特定の態様及び実施形態の例示を目的として含まれるに過ぎず、本発明を限定することは意図されていない。
実施例１．親油性モノマーの合成
親油性モノマーを、固体担体としてｓｉＲＮＡの様々な位置（末端及び／又は内部位置）に親油性リガンド又はホスホラミダイトを導入するように合成した。様々な脂質が、以下のスキーム（例えば、一般的な手順のためのスキーム１～３）に示される方法を用いてヒドロキシプロリノール誘導体を介してコンジュゲートされ得、得られた構成単位ホスホラミダイトは、ｓｉＲＮＡ中に導入され得る。
Figure 2023500681000052
Figure 2023500681000053
Figure 2023500681000054
５’末端におけるプロリノール上の親油性コンジュゲートの合成
Figure 2023500681000055
 化合物２：加熱オーブン乾燥された１００ｍＬの丸底フラスコに、無水ＤＣＭ（５０ｍＬ）中の化合物１、（３ｇ、２４．２８ｍｍｏｌ、１．０当量）の溶液を加えた。テトラデカン酸２ａ（６．１０ｇ、２６．７０ｍｍｏｌ、１．１当量）を溶液に加えた後、ＨＢＴＵ（１０．１３ｇ、２６．７０ｍｍｏｌ、１．１当量）及びＤＩＰＥＡ（１２．６８ｍＬ、７２．５３ｍｍｏｌ、３当量）を加えた。得られた溶液を、一晩、アルゴン下で、室温で撹拌した。８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサンを用いたＴＬＣは、生成物の形成を示した。反応混合物を塩水溶液でクエンチし、ＤＣＭで抽出した。組み合わされた有機溶液を無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、油状残渣が得られるまで濃縮した。８０ｇのシリカゲルカラムを用いたＩＳＣＯカラムクロマトグラフィーによる精製により、０～７０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサンで化合物２を溶離した。白色の油状化合物が得られた（７．２ｇ）。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ４．５８－４．４５（ｍ，１Ｈ）、３．７０－３．３７（ｍ，４Ｈ）、２．３１－２．１８（ｍ，２Ｈ）、２．０９－１．８７（ｍ，３Ｈ）、１．６３（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．３６－１．２７（ｍ，６Ｈ）、１．２５（ｓ，１４Ｈ）、０．８７（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）．Ｍ＋１＝２９８．３．
化合物３：化合物２を合成するための上記の手順と同様の手順で化合物１及びパルミチン酸を使用することによって、化合物３が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．００（ｓ，１Ｈ）、３．６７－３．４７（ｍ，２Ｈ）、２．９５（ｓ，３Ｈ）、２．８７（ｓ，３Ｈ）、２．７９（ｓ，６Ｈ）、２．３０－２．１８（ｍ，１Ｈ）、２．０４（ｈ，Ｊ＝３．５Ｈｚ、１Ｈ）、１．６２（ｐ，Ｊ＝７．２、６．８Ｈｚ、２Ｈ）、１．３２－１．２６（ｍ，４Ｈ）、１．２４（ｓ，１１Ｈ）、０．８７（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、２Ｈ）．Ｍ＋１＝３２６．４．
化合物４：化合物２を合成するための上記の手順と同様の手順で化合物１及びステアリン酸を使用することによって、化合物４が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ４．５７－４．４５（ｍ，１Ｈ）、３．５６（ｄｄｄｄ，Ｊ＝３１．４、１３．１、１０．０、６．５Ｈｚ、４Ｈ）、２．８０（ｓ，３Ｈ）、２．３１－２．１８（ｍ，３Ｈ）、２．０４（ｔｄ，Ｊ＝５．８、２．９Ｈｚ、１Ｈ））、１．２８（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、２８Ｈ）、０．８７（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．Ｍ＋１＝３５４．４．
化合物５：化合物２を合成するための上記の手順と同様の手順で化合物１及びオレイン酸を使用することによって、化合物５が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ５．４０－５．２７（ｍ，２Ｈ）、３．６７－３．４６（ｍ，４Ｈ）、２．８０（ｓ，９Ｈ）、２．３６－２．１６（ｍ，３Ｈ）、１．３６－１．２１（ｍ，２０Ｈ）、０．９１－０．８３（ｍ，３Ｈ）．Ｍ＋１＝３５２．３．
化合物６：化合物２を合成するための上記の手順と同様の手順で化合物１及びドデカン酸を使用することによって、化合物６が得られた。Ｍ＋１＝２７０．３。
化合物７：化合物２を合成するための上記の手順と同様の手順で化合物１及びドコサン酸を使用することによって、化合物７が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ４．５２（ｄ，Ｊ＝１８．９Ｈｚ、２Ｈ）、３．６９－３．１５（ｍ，５Ｈ）、２．３２－２．１８（ｍ，２Ｈ）、２．０３（ｄｄｐ，Ｊ＝１３．４、９．０、４．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．７３－１．６０（ｍ，３Ｈ）、１．３２（ｔ，Ｊ＝９．６Ｈｚ、８Ｈ）、１．２５（ｓ，２５Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、３Ｈ）．Ｍ＋１＝４１０．４．
化合物８：化合物２（７．２ｇ、２４．２ｍｍｏｌ、１当量）を、無水ＥｔＯＡｃ（１２０ｍＬ）に溶解させた。氷浴中及びアルゴン下で、ＤＩＰＥＡ（１２．６５ｍＬ、７２．６１ｍｍｏｌ、３当量）を溶液に加えた後、Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルアミノシアノエチルホスホンアミド酸－Ｃｌ（６．３０ｇ、２６．６１ｍｍｏｌ、１．１当量）を加えた。得られた反応混合物を室温で一晩撹拌した。５０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサンにおけるＴＬＣは、反応の完了を示した。反応混合物を塩水でクエンチし、ＥｔＯＡｃで抽出した。有機層を分離し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、白色の油が得られるまで濃縮した。ＩＳＣＯ精製により、０～５０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサンを用いて、６５％の収率（７．７１ｇ）で化合物８を溶離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ４．５４（ｄｄｄｔ，Ｊ＝１７．４、１０．１、５．８、２．８Ｈｚ、１Ｈ）、３．８８－３．３４（ｍ，７Ｈ）、２．６６（ｑ，Ｊ＝５．７Ｈｚ、２Ｈ）、２．３３－２．１５（ｍ，３Ｈ）、２．０９（ｄｄｔ，Ｊ＝１１．９、７．８、３．９Ｈｚ、１Ｈ）、１．６２－１．５１（ｍ，２Ｈ）、１．３８－１．２５（ｍ，２０Ｈ）、１．２５－１．１３（ｍ，１３Ｈ）、０．９５－０．８７（ｍ，３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １４７．３３、１４７．１５、１４６．９７、１４６．８８．
化合物９：化合物８を合成するための上記の手順と同様の手順で化合物３及びＮ，Ｎ－ジイソプロピルアミノ－シアノエチルホスホンアミド酸－Ｃｌを用いて、化合物９が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ４．６１－４．４３（ｍ，１Ｈ）、３．８７－３．７０（ｍ，２Ｈ）、３．７０－３．３４（ｍ，６Ｈ）、２．６７（ｔ，Ｊ＝５．８Ｈｚ、２Ｈ）、２．３３－２．１４（ｍ，３Ｈ）、２．０９（ｄｄｔ，Ｊ＝１２．１、７．９、３．９Ｈｚ、１Ｈ）、１．３０（ｓ，２５Ｈ）、１．２５－１．１４（ｍ，１３Ｈ）、０．９７－０．８７（ｍ，３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ１４７．３３、１４７．１５、１４６．９７、１４６．８８．
化合物１０：化合物８を合成するための上記の手順と同様の手順で化合物４及びＮ，Ｎ－ジイソプロピルアミノ－シアノエチルホスホンアミド酸－Ｃｌを用いて、化合物１０が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ４．６６－４．４０（ｍ，１Ｈ）、３．８７－３．３４（ｍ，８Ｈ）、２．６７（ｔ，Ｊ＝５．８Ｈｚ、２Ｈ）、２．３０－２．１６（ｍ，３Ｈ）、２．１５－２．０２（ｍ，１Ｈ）、１．３０（ｓ，２７Ｈ）、１．２９－１．１６（ｍ，１５Ｈ）、０．９５－０．８７（ｍ，３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １４７．３２、１４７．１５、１４６．９７、１４６．８８．
化合物１１：化合物８を合成するための上記の手順と同様の手順で化合物５及びＮ，Ｎ－ジイソプロピルアミノ－シアノエチルホスホンアミド酸－Ｃｌを用いて、化合物１１が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ５．４３－５．３３（ｍ，２Ｈ）、４．５４（ｄｄｄｄ，Ｊ＝２０．３、９．７、４．８、２．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．８８－３．７２（ｍ，２Ｈ）、３．７２－３．３４（ｍ，６Ｈ）、２．６６（ｑ，Ｊ＝５．７Ｈｚ、２Ｈ）、２．３３－２．１６（ｍ，４Ｈ）、１．４２－１．２８（ｍ，２１Ｈ）、１．２８－１．１４（ｍ，１４Ｈ）、０．９５－０．８７（ｍ，３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １４７．３４、１４７．１７、１４７．００、１４６．９０．
化合物１２：化合物８を合成するための上記の手順と同様の手順で化合物６及びＮ，Ｎ－ジイソプロピルアミノ－シアノエチルホスホンアミド酸－Ｃｌを用いて、化合物１２が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ４．６３－４．４３（ｍ，１Ｈ）、３．８８－３．７０（ｍ，２Ｈ）、３．７０－３．３４（ｍ，６Ｈ）、２．６７（ｔ，Ｊ＝５．８Ｈｚ、２Ｈ）、２．３３－２．１５（ｍ，５Ｈ）、２．０９（ｄｄｔ，Ｊ＝１２．３、８．１、３．９Ｈｚ、１Ｈ）、１．４０－１．１３（ｍ，２９Ｈ）、０．９５－０．８７（ｍ，３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １４７．３３、１４７．１５、１４６．９７、１４６．８６．
化合物１３：化合物８を合成するための上記の手順と同様の手順で化合物７及びＮ，Ｎ－ジイソプロピルアミノ－シアノエチルホスホンアミド酸－Ｃｌを用いて、化合物１３が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ４．６４－４．３８（ｍ，１Ｈ）、３．８６－３．７０（ｍ，２Ｈ）、３．７０－３．３４（ｍ，６Ｈ）、２．６６（ｑ，Ｊ＝５．７Ｈｚ、２Ｈ）、２．３２－２．１５（ｍ，３Ｈ）、１．３０（ｓ，３７Ｈ）、１．２５－１．１２（ｍ，１３Ｈ）、０．９５－０．８７（ｍ，３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １４８．２９、１４７．３３、１４７．１９、１４７．０１、１４６．９４．
５’末端におけるプロリノール上の末端酸含有親油性コンジュゲートの合成
Figure 2023500681000056
 化合物１５：メカニカルスターラーを備えた３Ｌの三つ口丸底フラスコに、化合物１４（１５ｇ、４９．９ｍｍｏｌ、１当量）、ＨＢＴＵ（２０．８ｇ、５４．９ｍｍｏｌ）及び無水ＤＭＦ（３５０ｍＬ）を充填した。混合物を３０分間撹拌して、出発材料を溶解させ、次に、ＤＩＰＥＡ（１７．３ｍＬ、９９．８ｍｍｏｌ）を、室温で激しく撹拌しながら滴下して加えた。混合物を室温で１．５時間撹拌し、次に、０℃に冷却した。ＤＭＦ（１１０ｍＬ）中の（Ｓ）－３－ピロリジノール１（６．７８ｇ、５４．９ｍｍｏｌ）及びＤＩＰＥＡ（１７．３ｍＬ、９９．８ｍｍｏｌ）の混合物を、３０分間にわたって０℃で反応混合物に滴下して加え、次に、室温を温めた。反応混合物を室温で１２時間撹拌した。反応の進行を、ＴＬＣ（５％のＭｅＯＨ／酢酸エチル又は５０％の酢酸エチル／ヘキサン）によって監視した。反応混合物を０～５℃に冷却し、水（１．５Ｌ）で希釈し、３０分間撹拌し、次に、ろ過して、褐色の固体化合物１５を収集し、それを、カラムクロマトグラフィーによって精製して、化合物１５を淡褐色の固体（１７ｇ、９２％の収率）として得た。１Ｈ ＮＭＲ（６００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ ４．５２（ｄ，１Ｈ、Ｊ＝３０Ｈｚ）；３．６６（ｓ，３Ｈ）；３．６０－３．５１（ｍ，２Ｈ）；３．４１（ｄ，１Ｈ、１２Ｈｚ）；２．３４－２．２０（ｍ，４Ｈ）；２．０７－２．０１（ｍ，４Ｈ）；１．６８－１．５６（ｍ，４Ｈ）；１．３６－１．２０（ｍ，２０Ｈ）．
化合物１６：オーブン乾燥された５００ｍＬの一つ口丸底フラスコに、アルゴン下で、化合物１５（８ｇ、２１．６ｍｍｏｌ、１当量）及びクロロホルム（１００ｍＬ）を充填した。反応混合物を０℃に冷却し、次に、ＤＩＰＥＡを加えた後、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピル－クロロホスホラミダイト（５．３１ｍＬ、２３．８ｍｍｏｌ）を０℃で滴下して加えた。反応混合物をゆっくりと室温に温め、３時間撹拌した。反応の進行を、ＴＬＣによって監視した。反応混合物を０℃に冷却し、ＭｅＯＨ（３ｍｌ）でクエンチし、３０分間撹拌し、次に、濃縮して、粗生成物１６を得て、それを、シリカゲルカラムクロマトグラフィーによって精製した。純粋な画分を組み合わせて、濃縮して、化合物１６を高粘度のシロップ（４．３８ｇ、３６％の収率）として得た。１Ｈ ＮＭＲ（６００ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）：δ ４．５８－４．４５（ｍ，１Ｈ）；４．０８－３．９３（ｍ，２Ｈ）；３．８２－３．６８（ｍ，２Ｈ）；３．６５（ｓ，３Ｈ）；３．２７－３．２０（ｍ，１Ｈ）；２．７２－２．５９（ｍ，４Ｈ）；２．２７（ｔ，Ｊ＝６Ｈｚ、２Ｈ）；１．９４－１．９３（ｍ，４Ｈ）；１．５８－１．４８（ｍ，６Ｈ）；１．３３－１．２１（ｍ，２０Ｈ）；１．１９－１．１４（ｍ，１２Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２４３ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）：１４７．３４、１４７．１６、１４６．９９、１４６．８９．
化合物１８：メカニカルスターラーを備えた３Ｌの三つ口丸底フラスコに、化合物１７（１４ｇ、４２．６ｍｍｏｌ、１当量）、ＨＢＴＵ（１７．８ｇ、４６．９ｍｍｏｌ）、及び無水ＤＭＦ（３３０ｍＬ）を充填した。混合物を、３０分間撹拌して固体を溶解させ、次に、ＤＩＰＥＡ（１４．８ｍＬ、８５．２ｍｍｏｌ）を、室温で激しく撹拌しながら滴下して加えた。反応混合物を室温で１．５時間撹拌し、次に、０℃に冷却した。無水ＤＭＦ（１２５ｍＬ）中の（Ｓ）－３－ピロリジノール１（５．７９ｇ、４６．９ｍｍｏｌ）及びＤＩＰＥＡ（１４．８ｍＬ、８５．２ｍｍｏｌ）の混合物を、３０分間にわたって０℃で反応混合物に滴下して加えた。混合物を室温に温め、１８時間撹拌した。反応の進行を、ＴＬＣ（５％のＭｅＯＨ／酢酸エチル）によって監視した。混合物を０～５℃に冷却し、水（１．５Ｌ）でゆっくりとクエンチし、３０分間撹拌し、次に、ろ過して、褐色の固体化合物１８を収集した。粗生成物を、カラムクロマトグラフィーによって精製して、化合物１８を淡褐色の固体（１６．１ｇ、９５％の収率）として得た。１Ｈ ＮＭＲ（６００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ ４．５３（ｄ，１Ｈ、Ｊ＝３０Ｈｚ）；３．６６（ｓ，３Ｈ）；３．６０－３．４９（ｍ，２Ｈ）；３．４１（ｄ，１Ｈ、１２Ｈｚ）；２．３３－２．２１（ｍ，４Ｈ）；２．０４－２．０３（ｍ，４Ｈ）；１．６４－１．５８（ｍ，４Ｈ）；１．３３－１．２２（ｍ，２４Ｈ）．
化合物１９：オーブン乾燥された５００ｍＬの一つ口丸底フラスコに、アルゴン下で、化合物１８（１３ｇ、３２．６ｍｍｏｌ、１当量）及びクロロホルム（１３０ｍＬ）を充填した。混合物を０℃に冷却し、触媒量のＤＭＡＰ及びＤＩＰＥＡ（１７．１ｍＬ、９８．０ｍｍｏｌ、３当量）を加えた後、１５分間の期間にわたって２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（８．０２ｍＬ、３５．９ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。反応混合物を室温に温め、５時間撹拌した。反応の進行を、ＴＬＣ（５％のＭｅＯＨ／酢酸エチル）によって監視した。混合物を０℃に冷却し、ＭｅＯＨ（７ｍｌ）でクエンチし、１時間撹拌し、次に、濃縮して、粗生成物１９を得た。粗生成物を、シリカゲルカラムクロマトグラフィーによって精製した。純粋な画分を組み合わせて、濃縮し、高真空下で乾燥させて、化合物１９を高粘度のシロップ（１０．１７ｇ、５２％の収率）として得た。１Ｈ ＮＭＲ（６００ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）：δ ４．５８－４．４５（ｍ，１Ｈ）；４．０８－３．９３（ｍ，２Ｈ）；３．８２－３．６８（ｍ，２Ｈ）；３．６５（ｓ，３Ｈ）；３．２７－３．２０（ｍ，１Ｈ）；２．７２－２．５９（ｍ，４Ｈ）；２．２７（ｔ，Ｊ＝６Ｈｚ、２Ｈ）；１．９４－１．９３（ｍ，４Ｈ）；１．５８－１．４８（ｍ，６Ｈ）；１．３３－１．２１（ｍ，２０Ｈ）；１．１９－１．１４（ｍ，１２Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２４３ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）：１４７．４、１４７．３、１４７．２、１４７．０、１４６．９．
化合物２１：メカニカルスターラーを備えた３Ｌの三つ口丸底フラスコに、化合物２０（１５ｇ、３５．２ｍｍｏｌ、１当量）、ＨＢＴＵ（１４．７ｇ、３８．７ｍｍｏｌ）及びＤＭＦ（６００ｍＬ）を充填した。混合物を、３０分間撹拌して固体を溶解させ、ＤＩＰＥＡ（１２．３ｍＬ、７０．５ｍｍｏｌ）を、室温で激しく撹拌しながら滴下して加えた。反応混合物を室温で１．５時間撹拌し、次に、０℃に冷却した。無水ＤＭＦ（１１０ｍＬ）中の（Ｓ）－３－ピロリジノール１（４．７９ｇ、３８．７ｍｍｏｌ）及びＤＩＰＥＡ（１２．３ｍＬ、７０．５ｍｍｏｌ）の混合物を、３０分間にわたって０℃で反応混合物に滴下して加え、次に、室温を温めた。反応混合物を室温で１５時間撹拌した。反応の進行を、ＴＬＣ（５％のＭｅＯＨ／酢酸エチル）によって監視した。混合物を０～５℃に冷却し、水（１．５Ｌ）でゆっくりとクエンチし、１．５時間撹拌し、次に、ろ過して、褐色の固体化合物２１を収集し、それを、カラムクロマトグラフィーによって精製して、化合物２１を淡褐色の固体（１６．１ｇ、９０％の収率）として得た。１Ｈ ＮＭＲ（６００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ ４．５２（ｄ，１Ｈ、Ｊ＝３０Ｈｚ）；３．６６（ｓ，３Ｈ）；３．６２－３．５１（ｍ，２Ｈ）；３．３９（ｄ，１Ｈ、１２Ｈｚ）；２．３１－２．１９（ｍ，４Ｈ）；２．０６－２．０２（ｍ，４Ｈ）；１．６２－１．５５（ｍ，４Ｈ）；１．３１－１．２６（ｍ，２８Ｈ）．
化合物２２：オーブン乾燥された５００ｍＬの一つ口丸底フラスコに、アルゴン下で、化合物２１（１６ｇ、３７．６ｍｍｏｌ、１当量）及びクロロホルム（２００ｍＬ）を充填した。混合物を０℃に冷却し、触媒量のＤＭＡＰ及びＤＩＰＥＡ（１４．４ｍＬ、８３．０ｍｍｏｌ、３当量）を加えた後、１５分間の期間にわたって２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（６．７８ｍＬ、３０．４ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。反応混合物を室温に温め、４時間撹拌した。反応の進行を、ＴＬＣ（５％のＭｅＯＨ／酢酸エチル）によって監視した。混合物を０℃に冷却し、ＭｅＯＨ（７ｍｌ）でクエンチし、３０分間撹拌し、次に、濃縮して、粗生成物６を得て、それを、シリカゲルカラムクロマトグラフィーによって精製した。純粋な画分を組み合わせて、濃縮し、高真空下で乾燥させて、化合物２２を高粘度のシロップ（９．７ｇ、４１％の収率）として得た。１Ｈ ＮＭＲ（６００ＭＨｚ、ＣＤＣＮ）：δ ４．５８－４．５５（ｍ，１Ｈ）；４．０８－３．９３（ｍ，２Ｈ）；３．８３－３．６７（ｍ，２Ｈ）；３．６５（ｍ，４Ｈ）；２．６８－２．５９（ｍ，４Ｈ）；２．２７（ｔ，Ｊ＝６Ｈｚ、２Ｈ）；１．９７－１．９１（ｍ，４Ｈ）；１．６０－１．４９（ｍ，６Ｈ）；１．３３－１．２１（ｍ，２８Ｈ）；１．１９－１．１４（ｍ，１２Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２４３ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）：１４７．３４、１４７．１６、１４６．９９、１４６．９０．
３’末端におけるプロリノール上の親油性コンジュゲートの合成
Figure 2023500681000057
 化合物２２：化合物２２を、ＣＨ２Ｃｌ２中で、標準的なペプチドカップリング条件下で、化合物２１及びミリスチン酸を用いて合成した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ）δ ７．３５－７．２６（ｍ，６Ｈ）、７．２５－７．１５（ｍ，７Ｈ）、６．９０－６．８３（ｍ，６Ｈ）、４．９７（ｄ，Ｊ＝４．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．３９（ｄｄ，Ｊ＝８．８、４．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．２８（ｄｄ，Ｊ＝９．６、４．４Ｈｚ、１Ｈ）、４．１８－４．０８（ｍ，１Ｈ）、３．７３（ｓ，９Ｈ）、３．５７（ｄｔ，Ｊ＝１０．２、５．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．３５－３．３０（ｍ，４Ｈ）、３．２８－３．２０（ｍ，１Ｈ）、３．１７（ｄｄ，Ｊ＝８．８、５．０Ｈｚ、１Ｈ）、３．０１－２．９４（ｍ，２Ｈ）、２．６９（ｓ，９Ｈ）、２．２５－２．１６（ｍ，２Ｈ）、２．１０－２．０５（ｍ，２Ｈ）、１．８３（ｄｄｄ，Ｊ＝１２．８、８．４、４．７Ｈｚ、１Ｈ）、１．５１－１．４０（ｍ，２Ｈ）、１．２０（ｄ，Ｊ＝１８．９Ｈｚ、３０Ｈ）、０．９０－０．８１（ｍ，５Ｈ）．
化合物２３：化合物２３を、ＣＨ２Ｃｌ２中で、標準的なペプチドカップリング条件下で、化合物２１及びパルミチン酸を用いて合成した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ）δ ７．３６－７．２４（ｍ，７Ｈ）、７．２４－７．１５（ｍ，８Ｈ）、６．９１－６．８１（ｍ，７Ｈ）、４．９７（ｓ，１Ｈ）、４．３９（ｔ，Ｊ＝４．８Ｈｚ、１Ｈ）、４．２０－４．０７（ｍ，２Ｈ）、３．７１（ｄ，Ｊ＝１２．４Ｈｚ、１０Ｈ）、３．５７（ｄｔ，Ｊ＝１０．５、５．３Ｈｚ、１Ｈ）、３．３８－３．２８（ｍ，４Ｈ）、３．１８（ｄｄ，Ｊ＝８．８、５．０Ｈｚ、１Ｈ）、３．０２－２．９４（ｍ，２Ｈ）、２．７１－２．６４（ｍ，１４Ｈ）、２．２０（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．０２－１．９６（ｍ，４Ｈ）、１．４６（ｑ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、２Ｈ）、１．３０－１．２０（ｍ，３３Ｈ）、０．８４（ｔ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、５Ｈ）．
化合物２４：化合物２４を、ＣＨ２Ｃｌ２中で、標準的なペプチドカップリング条件下で、化合物２１及びステアリン酸を用いて合成した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ）δ ７．３５－７．２５（ｍ，６Ｈ）、７．２３－７．１５（ｍ，８Ｈ）、６．９０－６．８３（ｍ，６Ｈ）、４．９７（ｄ，Ｊ＝４．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．４２－４．３６（ｍ，１Ｈ）、４．１８－４．１１（ｍ，１Ｈ）、３．７２（ｓ，９Ｈ）、３．５７（ｄｔ，Ｊ＝１０．１、５．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．４５（ｄｄ，Ｊ＝１２．１、３．９Ｈｚ、１Ｈ）、３．２４（ｄｄ，Ｊ＝１２．１、５．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．１８（ｄｄ，Ｊ＝８．８、５．０Ｈｚ、１Ｈ）、３．０２－２．９５（ｍ，２Ｈ）、２．６９（ｓ，１４Ｈ）、２．２０（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．０４－１．９６（ｍ，２Ｈ）、１．５２－１．４３（ｍ，２Ｈ）、１．３０－１．１４（ｍ，４０Ｈ）、０．８４（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、４Ｈ）．
化合物２５：化合物２５を、ＣＨ２Ｃｌ２中で、標準的なペプチドカップリング条件下で、化合物２１及びオレイン酸を用いて合成した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ）δ ７．３６－７．２４（ｍ，６Ｈ）、７．２４－７．１５（ｍ，７Ｈ）、６．９０－６．８３（ｍ，６Ｈ）、５．３５－５．２６（ｍ，３Ｈ）、４．９７（ｄ，Ｊ＝３．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．３９（ｄ，Ｊ＝５．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．２０－４．０７（ｍ，２Ｈ）、３．７１（ｄ，Ｊ＝１２．７Ｈｚ、９Ｈ）、３．５７（ｄｔ，Ｊ＝８．８、４．４Ｈｚ、１Ｈ）、３．１７（ｄｄ，Ｊ＝８．９、５．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．０２－２．９４（ｍ，２Ｈ）、２．６７（ｄ，Ｊ＝１３．５Ｈｚ、１３Ｈ）、２．２２－２．１６（ｍ，２Ｈ）、２．０２－１．９２（ｍ，７Ｈ）、１．４７（ｔ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、２Ｈ）、１．２５（ｔ，Ｊ＝１１．６Ｈｚ、２６Ｈ）、０．８３（ｔｄ，Ｊ＝６．４、２．１Ｈｚ、４Ｈ）．
化合物２６：無水ジクロロメタン（８６．２６ｍＬ）中の化合物２２（５．６７ｇ、９．００ｍｍｏｌ）の溶液に、ＤＭＡＰ（１．１０ｇ、９．００ｍｍｏｌ）及び無水コハク酸（１．８０ｇ、１８．００ｍｍｏｌ）を加えた。混合物を０℃に冷却し、トリエチルアミン（３．７６ｍＬ、２７．０１ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。反応混合物を室温で１８時間撹拌し、その時点で、出発材料の存在が示されなかった（ＤＣＭ中５％のＭｅＯＨ中５％のＥｔ３Ｎ）。混合物を減圧下で濃縮した。残渣を、ＤＣＭ中０～５％のＭｅＯＨの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、４．９１ｇ（７５％の収率）のスクシネートを得た。無水ＤＭＦ（３３１．６４ｍＬ）中のスクシネート（４．９１ｇ、６．７３ｍｍｏｌ）の溶液に、ＤＩＰＥＡ（４．６９ｍＬ、２６．９１ｍｍｏｌ）を加え、次に、完全に溶解されるまで撹拌した。ＨＢＴＵ（２．６８ｇ、７．０６ｍｍｏｌ）を混合物に加え、５分間撹拌した。制御多孔性ガラス（ＣＰＧ）（１５２μｍｏｌ／ｇ、４８．６８ｇ、７．４０ｍｍｏｌ）を混合物に加えた。丸底フラスコにゴム隔膜で蓋をし、しっかりとパラフィルムをかけ、次に、メカニカルシェーカーで一晩振とうした。混合物を、減圧下でガラスフリット付き漏斗に通してろ過し、アセトニトリル、メタノール、アセトニトリル、及びジエチルエーテル（それぞれ３００ｍＬ）で並行してすすいだ。ろ液を廃棄し、ろ過された材料を、２０分間にわたってフリット上で減圧乾燥させた。ろ過された材料を、元のフラスコに戻し、一晩、高真空下で乾燥させた。固体担体上の材料の充填を、Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ分光光度計においてＵＶ－Ｖｉｓ及びベールの法則によって確認した。固体担体材料を秤量し（５３．５ｍｇ）、２５０ｍＬの容量フラスコ中で、アセトニトリル中０．１Ｍのｐ－トルエンスルホン酸に溶解させた。混合物を超音波処理し、１時間にわたって静置しておいた。機械に同じ溶媒を充填し、溶液の４１１ｎｍにおけるＵＶ吸光度を、３連で測定した。固体担体材料の残りを、１％のＥｔ３Ｎ（３２５ｍＬ）を含むピリジン中３０％の無水酢酸を用いてキャッピングした。フラスコに蓋をし、パラフィルムをかけ、次に、３時間にわたってメカニカルシェーカーで振とうした。混合物を、減圧下で、ガラスフリット漏斗でろ過し、以下の順序で洗浄した：ＴＨＦ中１０％のＨ２Ｏ、ＭｅＯＨ、ＴＨＦ中１０％のＨ２Ｏ、ＭｅＯＨ、ＡＣＮ、及びジエチルエーテル（それぞれ３００ｍＬ）。ろ液を廃棄し、固体担体材料を、減圧下で、フリット上で乾燥させた。固体担体材料を、丸底フラスコに移し、次に、一晩、高真空下で乾燥させて、化合物２６（４８．９６ｇ、１０６．９２μｍｏｌ／ｇの充填量）を得た。
化合物２７：無水ジクロロメタン（７４．２８ｍＬ）中の化合物２３（５．１０ｇ、７．７５ｍｍｏｌ）の溶液に、ＤＭＡＰ（９４７ｍｇ、７．７５ｍｍｏｌ）及び無水コハク酸（１．５５ｇ、１５．５０ｍｍｏｌ）を加えた。混合物を０℃に冷却し、トリエチルアミン（３．２４ｍＬ、２３．２６ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。反応混合物を室温で１８時間撹拌し、その時点で、出発材料の存在が示されなかった（ＤＣＭ中５％のＭｅＯＨ中５％のＥｔ３Ｎ）。混合物を減圧下で濃縮した。残渣を、ＤＣＭ中０～５％のＭｅＯＨの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、３．８５ｇ（６５％の収率）のスクシネートを得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ７．３６－７．２４（ｍ，６Ｈ）、７．２０（ｄｄｄ，Ｊ＝８．９、６．０、３．１Ｈｚ、７Ｈ）、６．８７（ｄｄｄ，Ｊ＝８．９、５．２、２．４Ｈｚ、６Ｈ）、５．３６（ｔ，Ｊ＝４．４Ｈｚ、１Ｈ）、４．２０（ｄｑ、Ｊ＝９．２、４．７、４．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．７３（ｓ，１０Ｈ）、３．５５（ｄｄ，Ｊ＝１１．４、３．０Ｈｚ、１Ｈ）、３．２４（ｄｄ，Ｊ＝９．０、４．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．０３（ｄｄｄ，Ｊ＝２０．０、９．９、３．９Ｈｚ、２Ｈ）、２．６６（ｑ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、２Ｈ）、２．４９－２．４１（ｍ，５Ｈ）、２．１９（ｄｄｐ，Ｊ＝２２．３、９．０、５．１、４．６Ｈｚ、４Ｈ）、２．０６－１．９１（ｍ，１Ｈ）、１．５０－１．４１（ｍ，２Ｈ）、１．３０－１．１４（ｍ，３２Ｈ）、１．０１（ｔ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、２Ｈ）、０．８４（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、４Ｈ）．無水ＤＭＦ（２５０．４２ｍＬ）中のスクシネート（３．８５ｇ、５．０８ｍｍｏｌ）の溶液に、ＤＩＰＥＡ（３．５４ｍＬ、２０．３２ｍｍｏｌ）を加え、次に、完全に溶解されるまで撹拌した。ＨＢＴＵ（２．０２ｇ、５．３３ｍｍｏｌ）を混合物に加え、５分間撹拌した。制御多孔性ガラス（ＣＰＧ）（１５２μｍｏｌ／ｇ、３６．７７ｇ、５．５９ｍｍｏｌ）を混合物に加えた。丸底フラスコにゴム隔膜で蓋をし、しっかりとパラフィルムをかけ、次に、メカニカルシェーカーで一晩振とうした。混合物を、減圧下でガラスフリット付き漏斗に通してろ過し、アセトニトリル、メタノール、アセトニトリル、及びジエチルエーテル（それぞれ３００ｍＬ）で並行してすすいだ。ろ液を廃棄し、ろ過された材料を、２０分間にわたってフリット上で減圧乾燥させた。ろ過された材料を、元のフラスコに戻し、一晩、高真空下で乾燥させた。固体担体上の材料の充填を、Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ分光光度計においてＵＶ－Ｖｉｓ及びベールの法則によって確認した。固体担体材料を秤量し（５９．７ｍｇ）、２５０ｍＬの容量フラスコ中で、アセトニトリル中０．１Ｍのｐ－トルエンスルホン酸に溶解させた。混合物を超音波処理し、１時間にわたって静置しておいた。機械に同じ溶媒を充填し、溶液の４１１ｎｍにおけるＵＶ吸光度を、３連で測定した。固体担体材料の残りを、１％のＥｔ３Ｎ（３２５ｍＬ）を含むピリジン中３０％の無水酢酸を用いてキャッピングした。フラスコに蓋をし、パラフィルムをかけ、次に、３時間にわたってメカニカルシェーカーで振とうした。混合物を、減圧下で、ガラスフリット漏斗でろ過し、以下の順序で洗浄した：ＴＨＦ中１０％のＨ２Ｏ、ＭｅＯＨ、ＴＨＦ中１０％のＨ２Ｏ、ＭｅＯＨ、ＡＣＮ、及びジエチルエーテル（それぞれ３００ｍＬ）。ろ液を廃棄し、固体担体材料を、減圧下で、フリット上で乾燥させた。固体担体材料を、丸底フラスコに移し、一晩、高真空下で乾燥させて、化合物２７（３８．５３ｇ、１１２．８７μｍｏｌ／ｇの充填量）を得た。
化合物２８：無水ジクロロメタン（７７．２４ｍＬ）中の化合物２４（５．５３ｇ、８．０６ｍｍｏｌ）の溶液に、ＤＭＡＰ（９８４ｍｇ、８．０６ｍｍｏｌ）及び無水コハク酸（１．６１ｇ、１６．１２ｍｍｏｌ）を加えた。混合物を０℃に冷却し、トリエチルアミン（３．３７ｍＬ、２４．１８ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。反応混合物を室温で１８時間撹拌し、その時点で、出発材料の存在が示されなかった（ＤＣＭ中５％のＭｅＯＨ中５％のＥｔ３Ｎ）。混合物を減圧下で濃縮した。残渣を、ＤＣＭ中０～５％のＭｅＯＨの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、５．１８ｇ（８１％）のスクシネートを得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ８．１３－８．０８（ｍ，１Ｈ）、７．３７－７．２４（ｍ，６Ｈ）、７．２０（ｄｄｄ，Ｊ＝９．１、６．２、３．３Ｈｚ、７Ｈ）、６．８７（ｄｄｄ，Ｊ＝８．７、５．１、２．４Ｈｚ、６Ｈ）、６．６３－６．５７（ｍ，１Ｈ）、５．３９－５．３２（ｍ，１Ｈ）、４．２４－４．１５（ｍ，２Ｈ）、３．７３（ｓ，１０Ｈ）、３．５５（ｄｄ，Ｊ＝１１．６、３．０Ｈｚ、１Ｈ）、３．２３（ｄｄ，Ｊ＝９．０、４．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．０９－２．９７（ｍ，２Ｈ）、２．９６（ｓ，４Ｈ）、２．７８（ｑ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、１Ｈ）、２．４９－２．４３（ｍ，６Ｈ）、２．２６－２．１１（ｍ，４Ｈ）、２．０９－１．９１（ｍ，１Ｈ）、１．４５（ｑ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、２Ｈ）、１．２２（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ、３６Ｈ）、１．０６（ｔ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、１Ｈ）、０．８４（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、４Ｈ）．無水ＤＭＦ（３２４．９１ｍＬ）中のスクシネート（５．１８ｇ、６．５９ｍｍｏｌ）の溶液に、ＤＩＰＥＡ（４．５９ｍＬ、２６．３６ｍｍｏｌ）を加え、完全に溶解されるまで撹拌した。ＨＢＴＵ（２．６２ｇ、６．９２ｍｍｏｌ）を混合物に加え、５分間撹拌した。制御多孔性ガラス（ＣＰＧ）（１５２μｍｏｌ／ｇ、４７．６９ｇ、７．２５ｍｍｏｌ）を混合物に加えた。丸底フラスコにゴム隔膜で蓋をし、しっかりとパラフィルムをかけ、次に、メカニカルシェーカーで一晩振とうした。混合物を、減圧下でガラスフリット付き漏斗に通してろ過し、アセトニトリル、メタノール、アセトニトリル、及びジエチルエーテル（それぞれ３００ｍＬ）で並行してすすいだ。ろ液を廃棄し、ろ過された材料を、２０分間にわたってフリット上で減圧乾燥させた。ろ過された材料を、元のフラスコに戻し、一晩、高真空下で乾燥させた。固体担体上の材料の充填を、Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ分光光度計においてＵＶ－Ｖｉｓ及びベールの法則によって確認した。固体担体材料を秤量し（５４．０ｍｇ）、２５０ｍＬの容量フラスコ中で、アセトニトリル中０．１Ｍのｐ－トルエンスルホン酸に溶解させた。混合物を超音波処理し、１時間にわたって静置しておいた。機械に同じ溶媒を充填し、溶液の４１１ｎｍにおけるＵＶ吸光度を、３連で測定した。固体担体材料の残りを、１％のＥｔ３Ｎ（３２５ｍＬ）を含むピリジン中３０％の無水酢酸を用いてキャッピングした。フラスコに蓋をし、パラフィルムをかけ、次に、３時間にわたってメカニカルシェーカーで振とうした。混合物を、減圧下で、ガラスフリット漏斗でろ過し、以下の順序で洗浄した：ＴＨＦ中１０％のＨ２Ｏ、ＭｅＯＨ、ＴＨＦ中１０％のＨ２Ｏ、ＭｅＯＨ、ＡＣＮ、及びジエチルエーテル（それぞれ３００ｍＬ）。ろ液を廃棄し、固体担体材料を、減圧下で、フリット上で乾燥させた。固体担体材料を、丸底フラスコに移し、一晩、高真空下で乾燥させて、化合物２８（５０．６０ｇ、１０８．８８μｍｏｌ／ｇの充填量）を得た。
化合物２９：無水ジクロロメタン（７２．７１ｍＬ）中の化合物２５（５．１９ｇ、７．５９ｍｍｏｌ）の溶液に、ＤＭＡＰ（９２７ｍｇ、７．５９ｍｍｏｌ）及び無水コハク酸（１．５２ｇ、１５．１８ｍｍｏｌ）を加えた。混合物を０℃に冷却し、トリエチルアミン（３．３７ｍＬ、２４．１８ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。反応混合物を室温で１８時間撹拌し、その時点で、出発材料の存在が示されなかった（ＤＣＭ中５％のＭｅＯＨ中５％のＥｔ３Ｎ）。混合物を減圧下で濃縮した。残渣を、ＤＣＭ中０～５％のＭｅＯＨの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、５．４７ｇ（９２％）の化合物３ｄ（Ｒ＝Ｃ１８Ｈ３３）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ７．３７－７．２５（ｍ，４Ｈ）、７．２５－７．１５（ｍ，５Ｈ）、６．９１－６．８１（ｍ，４Ｈ）、５．３９－５．２１（ｍ，３Ｈ）、４．２４－４．１４（ｍ，１Ｈ）、３．７３（ｓ，６Ｈ）、３．２３（ｄｄ，Ｊ＝９．１、４．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．０７－２．９７（ｍ，１Ｈ）、２．５８（ｑ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、１Ｈ）、２．４９－２．４１（ｍ，４Ｈ）、２．２６－２．１３（ｍ，２Ｈ）、１．９７（ｑ，Ｊ＝６．９、６．４Ｈｚ、４Ｈ）、１．４５（ｑ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、１Ｈ）、１．２４（ｄ，Ｊ＝９．３Ｈｚ、１９Ｈ）、０．９９（ｔ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、２Ｈ）、０．８３（ｔｄ，Ｊ＝６．９、１．９Ｈｚ、３Ｈ）．無水ＤＭＦ（３４３．９８ｍＬ）中のスクシネート（５．４７ｇ、６．９８ｍｍｏｌ）の溶液に、ＤＩＰＥＡ（４．８６ｍＬ、２７．９１ｍｍｏｌ）を加え、次に、完全に溶解されるまで撹拌した。ＨＢＴＵ（２．７８ｇ、７．３３ｍｍｏｌ）を混合物に加え、５分間撹拌した。制御多孔性ガラス（ＣＰＧ）（１５２μｍｏｌ／ｇ、５０．４６ｇ、７．６７ｍｍｏｌ）を混合物に加えた。丸底フラスコにゴム隔膜で蓋をし、しっかりとパラフィルムをかけ、次に、メカニカルシェーカーで一晩振とうした。混合物を、減圧下でガラスフリット付き漏斗に通してろ過し、アセトニトリル、メタノール、アセトニトリル、及びジエチルエーテル（それぞれ３００ｍＬ）で並行してすすいだ。ろ液を廃棄し、ろ過された材料を、２０分間にわたってフリット上で減圧乾燥させた。ろ過された材料を、元のフラスコに戻し、一晩、高真空下で乾燥させた。固体担体上の材料の充填を、Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ分光光度計においてＵＶ－Ｖｉｓ及びベールの法則によって確認した。固体担体材料を秤量し（５２．７ｍｇ）、２５０ｍＬの容量フラスコ中で、アセトニトリル中０．１Ｍのｐ－トルエンスルホン酸に溶解させた。混合物を超音波処理し、１時間にわたって静置しておいた。機械に同じ溶媒を充填し、溶液の４１１ｎｍにおけるＵＶ吸光度を、３連で測定した。固体担体材料の残りを、１％のＥｔ３Ｎ（３２５ｍＬ）を含むピリジン中３０％の無水酢酸を用いてキャッピングした。フラスコに蓋をし、パラフィルムをかけ、次に、３時間にわたってメカニカルシェーカーで振とうした。混合物を、減圧下で、ガラスフリット漏斗でろ過し、以下の順序で洗浄した：ＴＨＦ中１０％のＨ２Ｏ、ＭｅＯＨ、ＴＨＦ中１０％のＨ２Ｏ、ＭｅＯＨ、ＡＣＮ、及びジエチルエーテル（それぞれ３００ｍＬ）。ろ液を廃棄し、固体担体材料を、減圧下で、フリット上で乾燥させた。固体担体材料を、丸底フラスコに移し、一晩、高真空下で乾燥させて、化合物２９（５１．６３ｇ、１０６．２９μｍｏｌ／ｇの充填量）を得た。
化合物３１：化合物３１を、ＣＨ２Ｃｌ２中で、標準的なペプチドカップリング条件下で、化合物３０及びパルミチン酸を用いて合成した。
化合物３２：無水ジクロロメタン（６０．８９ｍＬ）中の化合物３１（４．９０ｇ、６．３５ｍｍｏｌ）の溶液に、ＤＭＡＰ（７７６ｍｇ、６．３５ｍｍｏｌ）及び無水コハク酸（１．２７ｇ、１２．７１ｍｍｏｌ）を加えた。混合物を０℃に冷却し、トリエチルアミン（２．６６ｍＬ、１９．０６ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。反応混合物を室温で１８時間撹拌し、その時点で、出発材料の存在が示されなかった（ＤＣＭ中５％のＭｅＯＨ中５％のＥｔ３Ｎ）。混合物を減圧下で濃縮した。残渣を、ＤＣＭ中０～１０％のＭｅＯＨの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、４．３４ｇ（７８％）のスクシネートを得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ７．６８（ｑ，Ｊ＝５．５Ｈｚ、２Ｈ）、７．３５－７．２５（ｍ，６Ｈ）、７．１９（ｄｄｔ，Ｊ＝８．９、６．２、２．９Ｈｚ、８Ｈ）、６．９０－６．８１（ｍ，６Ｈ）、５．３８－５．３１（ｍ，１Ｈ）、４．１８（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．７２（ｓ，９Ｈ）、３．５３（ｄｄ，Ｊ＝１１．３、３．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．２１（ｄｄ，Ｊ＝９．０、４．７Ｈｚ、１Ｈ）、３．０４－２．９０（ｍ，１２Ｈ）、２．４８－２．４２（ｍ，５Ｈ）、２．２８－２．０８（ｍ，４Ｈ）、２．０８－１．９７（ｍ，４Ｈ）、１．４０（ｄｑ、Ｊ＝３１．８、７．０Ｈｚ、７Ｈ）、１．３２－１．１６（ｍ，４２Ｈ）、１．１４（ｔ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、９Ｈ）、０．８３（ｔ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、４Ｈ）．無水ＤＭＦ（２４５．６３ｍＬ）中のスクシネート（４．３４ｇ、４．９８ｍｍｏｌ）の溶液に、ＤＩＰＥＡ（３．７４ｍＬ、１９．９３ｍｍｏｌ）を加え、次に、完全に溶解されるまで撹拌した。ＨＢＴＵ（１．９８ｇ、５．２３ｍｍｏｌ）を混合物に加え、５分間撹拌した。制御多孔性ガラス（ＣＰＧ）（１５２μｍｏｌ／ｇ、３６．０５ｇ、５．４８ｍｍｏｌ）を混合物に加えた。丸底フラスコにゴム隔膜で蓋をし、しっかりとパラフィルムをかけ、次に、メカニカルシェーカーで一晩振とうした。混合物を、減圧下でガラスフリット付き漏斗に通してろ過し、アセトニトリル、メタノール、アセトニトリル、及びジエチルエーテル（それぞれ３００ｍＬ）で並行してすすいだ。ろ液を廃棄し、ろ過された材料を、２０分間にわたってフリット上で減圧乾燥させた。ろ過された材料を、元のフラスコに戻し、一晩、高真空下で乾燥させた。固体担体上の材料の充填を、Ｂｅｃｋｍａｎ Ｃｏｕｌｔｅｒ分光光度計においてＵＶ－Ｖｉｓ及びベールの法則によって確認した。固体担体材料を秤量し（５２．６ｍｇ）、２５０ｍＬの容量フラスコ中で、アセトニトリル中０．１Ｍのｐ－トルエンスルホン酸に溶解させた。混合物を超音波処理し、１時間にわたって静置しておいた。機械に同じ溶媒を充填し、溶液の４１１ｎｍにおけるＵＶ吸光度を、３連で測定した。固体担体材料の残りを、１％のＥｔ３Ｎ（３２５ｍＬ）を含むピリジン中３０％の無水酢酸を用いてキャッピングした。フラスコに蓋をし、パラフィルムをかけ、次に、３時間にわたってメカニカルシェーカーで振とうした。混合物を、減圧下で、ガラスフリット漏斗でろ過し、以下の順序で洗浄した：ＴＨＦ中１０％のＨ２Ｏ、ＭｅＯＨ、ＴＨＦ中１０％のＨ２Ｏ、ＭｅＯＨ、ＣＡＮ、及びジエチルエーテル（それぞれ３００ｍＬ）。ろ液を廃棄し、固体担体材料を、減圧下で、フリット上で乾燥させた。固体担体材料を、丸底フラスコに移し、一晩、高真空下で乾燥させて、化合物３２（３７．５９ｇ、８０．０９μｍｏｌ／ｇの充填量）を得た。
３’末端におけるプロリノール上の末端酸含有親油性コンジュゲートの合成
Figure 2023500681000058
 化合物２３：無水ジクロロメタン中のパルミチン酸（１２．２２ｇ、４７．６７ｍｍｏｌ）及びＨＢＴＵ（１９．８９ｇ、５２．４４ｍｍｏｌ）の溶液を０℃に冷却した。ＤＩＰＥＡ（２４．９１ｍＬ、１４３．０２ｍｍｏｌ）を溶液に滴下して加えた。５分間撹拌した後、化合物２１（２０ｇ、４７．６７ｍｍｏｌ）を反応物に加えた。混合物を室温で２４時間撹拌し、その時点で、出発材料の存在が示されなかった（ヘキサン中６０％のＥｔＯＡｃ）。反応混合物をＤＣＭで希釈し、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液を用いた標準的な水性後処理を行った。有機層を組み合わせて、飽和ＮａＣｌ水溶液で洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。残渣を、ヘキサン中０～５０％のＥｔＯＡｃの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、２８．０１ｇ（８９％の収率）の化合物２３を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ７．３６－７．２６（ｍ，５Ｈ）、７．２３－７．１６（ｍ，６Ｈ）、６．９０－６．８３（ｍ，５Ｈ）、４．９６（ｄ，Ｊ＝４．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．３９（ｑ，Ｊ＝４．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．１８－４．０７（ｍ，２Ｈ）、３．７３（ｓ，８Ｈ）、３．５８（ｄｄ，Ｊ＝１０．６、５．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．１７（ｄｄ，Ｊ＝８．９、５．０Ｈｚ、１Ｈ）、３．０２－２．９４（ｍ，２Ｈ）、２．６９（ｓ，１２Ｈ）、２．２０（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．０６－１．９０（ｍ，２Ｈ）、１．８３（ｄｄｄ，Ｊ＝１２．９、８．５、４．７Ｈｚ、１Ｈ）、１．４６（ｑ，Ｊ＝７．３Ｈｚ、２Ｈ）、１．３０－１．１６（ｍ，２８Ｈ）、０．８７－０．８１（ｍ，４Ｈ）．
化合物３３：反応前に、化合物２３（９．５７ｇ、１４．５５ｍｍｏｌ）を、アセトニトリルと２回共蒸発させ、次に、一晩、高真空下で乾燥させた。化合物２３を、無水ジクロロメタン（１６９．７５ｍＬ）に溶解させ、ＤＩＰＥＡ（７．６０ｍＬ、４３．６４ｍｍｏｌ）及び１－メチルイミダゾール（５７９．７ｕＬ、７．２７ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。混合物を０℃に冷却し、クロロ－２－シアノエトキシ－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルアミノホスフィン（３．９０ｍＬ、１７．４６ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。混合物を室温で２時間撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（ＥｔＯＡｃ中６０％のヘキサン）によって確認し、溶媒を減圧下で除去した。残渣を、ＥｔＯＡｃ中で再懸濁させ、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液を用いた水性後処理を迅速に行った。有機層を組み合わせて、飽和ＮａＣｌ水溶液で洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。残渣を、ヘキサン中０～３０％のＥｔＯＡｃの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、１０．１１ｇ（８１％の収率）の化合物３３（Ｃ１６Ｈ３１）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ７．３９（ｄｄｄ，Ｊ＝８．１、４．０、１．４Ｈｚ、３Ｈ）、７．３２－７．１８（ｍ，１１Ｈ）、６．８８－６．７９（ｍ，６Ｈ）、４．６９（ｔｄ，Ｊ＝９．１、４．７Ｈｚ、１Ｈ）、４．２０（ｄｄｑ，Ｊ＝７．６、４．９、２．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．７６（ｓ，１２Ｈ）、３．５９（ｄｄｔ，Ｊ＝１３．５、１１．３、６．８Ｈｚ、４Ｈ）、３．３３（ｄｄｄ，Ｊ＝１４．７、９．１、４．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．０２（ｔｄ，Ｊ＝８．９、３．０Ｈｚ、１Ｈ）、２．６２（ｔｑ，Ｊ＝６．０、４．１Ｈｚ、３Ｈ）、２．２９－２．１９（ｍ，３Ｈ）、１．５４（ｔ，Ｊ＝７．３Ｈｚ、２Ｈ）、１．３３－１．２１（ｍ，３５Ｈ）、１．２０－１．１１（ｍ，２０Ｈ）、０．９１－０．８４（ｍ，４Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １４８．２８、１４７．４１、１４７．３７、１４７．２３、１４７．１９、１４６．８５、１４６．８２．
化合物３５：無水ジクロロメタン中メチルエステル脂質カルボン酸３４（２．１５ｇ、７．１５ｍｍｏｌ）及びＨＢＴＵ（２．９８ｇ、７．８７ｍｍｏｌ）の溶液を、０℃に冷却した。ＤＩＰＥＡ（３．７４ｍＬ、２１．４５ｍｍｏｌ）を溶液に滴下して加えた。５分間撹拌した後、化合物２１（３ｇ、７．１５ｍｍｏｌ）を反応物に加えた。混合物を室温で２４時間撹拌し、その時点で、出発材料の存在が示されなかった（ヘキサン中６０％のＥｔＯＡｃ）。反応混合物をＤＣＭで希釈し、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液を用いた標準的な水性後処理を行った。有機層を組み合わせて、飽和ＮａＣｌ水溶液で洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。残渣を、ヘキサン中０～６２％のＥｔＯＡｃの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、４．０４ｇ（８０％の収率）の化合物３５を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ７．３５－７．２５（ｍ，７Ｈ）、７．２４－７．１５（ｍ，８Ｈ）、６．９０－６．８３（ｍ，６Ｈ）、４．９５（ｄ，Ｊ＝４．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．４２－４．３５（ｍ，１Ｈ）、４．２０－４．０７（ｍ，２Ｈ）、３．７３（ｓ，９Ｈ）、３．５７（ｓ，５Ｈ）、３．２７－３．１５（ｍ，２Ｈ）、２．９８（ｄｔ，Ｊ＝８．９、４．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．６９（ｓ，９Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、３Ｈ）、２．２３－２．１７（ｍ，２Ｈ）、２．０４－１．９６（ｍ，２Ｈ）、１．８７－１．７９（ｍ，１Ｈ）、１．５３－１．４３（ｍ，５Ｈ）、１．２２（ｄ，Ｊ＝５．９Ｈｚ、３１Ｈ）．
化合物３６：反応前に、化合物３５（４．０４ｇ、５．７６ｍｍｏｌ）を、アセトニトリルと２回共蒸発させ、次に、一晩、高真空下で乾燥させた。化合物３５を、無水ジクロロメタン（６６．９４ｍＬ）に溶解させ、ＤＩＰＥＡ（３．０１ｍＬ、１７．２７ｍｍｏｌ）及び１－メチルイミダゾール（４５８．７ｕＬ、５．７６ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。混合物を０℃に冷却し、クロロ－２－シアノエトキシ－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルアミノホスフィン（１．５４ｍＬ、６．９１ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。混合物を室温で１．５時間撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（ＥｔＯＡｃ中６０％のヘキサン）によって確認し、溶媒を減圧下で除去した。残渣を、ＥｔＯＡｃ中で再懸濁させ、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液を用いた水性後処理を迅速に行った。有機層を組み合わせて、飽和ＮａＣｌ水溶液で洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。残渣を、ヘキサン中０～３０％のＥｔＯＡｃの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、４．０９ｇ（７９％）の化合物３６を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ７．３９（ｄｄｄ，Ｊ＝８．２、４．０、１．４Ｈｚ、６Ｈ）、７．３３－７．１５（ｍ，２０Ｈ）、６．８８－６．７９（ｍ，１１Ｈ）、４．６９（ｄ，Ｊ＝４．７Ｈｚ、１Ｈ）、４．２１（ｄｐ、Ｊ＝７．８、２．４Ｈｚ、２Ｈ）、３．８５－３．６７（ｍ，２４Ｈ）、３．５９（ｓ，１６Ｈ）、３．３８－３．２７（ｍ，２Ｈ）、３．０２（ｔｄ，Ｊ＝８．９、３．０Ｈｚ、２Ｈ）、２．６２（ｔｄｄ、Ｊ＝７．５、４．５、２．９Ｈｚ、６Ｈ）、２．２６（ｑ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、９Ｈ）、１．５５（ｈ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、１１Ｈ）、１．３４－１．２０（ｍ，５８Ｈ）、１．２１－１．１０（ｍ，３７Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １４９．７０、１４８．８２、１４８．８０、１４８．６３、１４８．６０、１４８．２６、１４８．２３．
化合物３８：無水ジクロロメタン中のメチルエステル脂質カルボン酸３７（２．３５ｇ、７．１５ｍｍｏｌ）及びＨＢＴＵ（２．９８ｇ、７．８７ｍｍｏｌ）の溶液を、０℃に冷却した。ＤＩＰＥＡ（３．７４ｍＬ、２１．４５ｍｍｏｌ）を溶液に滴下して加えた。５分間撹拌した後、化合物２１（３ｇ、７．１５ｍｍｏｌ）を反応物に加えた。混合物を室温で２４時間撹拌し、その時点で、出発材料の存在が示されなかった（ヘキサン中６０％のＥｔＯＡｃ）。反応混合物をＤＣＭで希釈し、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液を用いた標準的な水性後処理を行った。有機層を組み合わせて、飽和ＮａＣｌ水溶液で洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。残渣を、ヘキサン中０～６８％のＥｔＯＡｃの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、４．４４ｇ（８５％の収率）の化合物３８を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ７．３６－７．２５（ｍ，５Ｈ）、７．２０（ｔｄ，Ｊ＝８．９、２．８Ｈｚ、６Ｈ）、６．９０－６．８３（ｍ，５Ｈ）、４．９７（ｄ，Ｊ＝４．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．３９（ｑ，Ｊ＝４．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．７３（ｄ，Ｊ＝０．７Ｈｚ、８Ｈ）、３．５７（ｓ，４Ｈ）、３．１７（ｄｄ，Ｊ＝８．９、５．０Ｈｚ、１Ｈ）、３．０１－２．９４（ｍ，２Ｈ）、２．６９（ｓ，１５Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、３Ｈ）、２．２０（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．０４－１．９６（ｍ，１Ｈ）、１．８３（ｓ，０Ｈ）、１．４９（ｑ，Ｊ＝５．６、４．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．２２（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ、３０Ｈ）．
化合物３９：反応前に、化合物３８（４．４４ｇ、６．０８ｍｍｏｌ）を、アセトニトリルと２回共蒸発させ、次に、一晩、高真空下で乾燥させた。化合物３８を、無水ジクロロメタン（７０．７４ｍＬ）に溶解させ、ＤＩＰＥＡ（３．１８ｍＬ、１８．２５ｍｍｏｌ）及び１－メチルイミダゾール（４８４．８ｕＬ、６．０８ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。混合物を０℃に冷却し、クロロ－２－シアノエトキシ－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルアミノホスフィン（１．６３ｍＬ、７．３０ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。混合物を室温で１．５時間撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（ＥｔＯＡｃ中３０％のヘキサン）によって確認し、溶媒を減圧下で除去した。残渣を、ＥｔＯＡｃ中で再懸濁させ、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液を用いた水性後処理を迅速に行った。有機層を組み合わせて、飽和ＮａＣｌ水溶液で洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。残渣を、ヘキサン中０～３０％のＥｔＯＡｃの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、４．４３ｇ（７８％の収率）の化合物３９を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ７．３９（ｄｄｄ，Ｊ＝８．１、３．９、１．４Ｈｚ、３Ｈ）、７．３２－７．１７（ｍ，１０Ｈ）、６．８７－６．８０（ｍ，５Ｈ）、４．６９（ｄｄｑ，Ｊ＝１３．６、９．３、４．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．２１（ｄｄｔ，Ｊ＝７．７、５．４、２．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．８２－３．６７（ｍ，１２Ｈ）、３．５９（ｓ，７Ｈ）、３．３３（ｄｄｄ，Ｊ＝１４．７、９．１、４．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．０２（ｔｄ，Ｊ＝８．９、２．９Ｈｚ、１Ｈ）、２．６２（ｔｑ，Ｊ＝６．０、４．２Ｈｚ、３Ｈ）、２．２５（ｄｔ，Ｊ＝１４．０、７．０Ｈｚ、４Ｈ）、２．１９－２．１３（ｍ，３Ｈ）、１．５５（ｈ，Ｊ＝７．９、７．２Ｈｚ、５Ｈ）、１．３７－１．２１（ｍ，３３Ｈ）、１．２１－１．０９（ｍ，１７Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １４９．６９、１４８．８１、１４８．７８、１４８．６２、１４８．５９、１４８．５５、１４８．２６、１４８．２２．
ヘキサデシルヒドロキシプロリノールトリホスフェートの合成
Figure 2023500681000059
 化合物４０：合成前に、出発材料、化合物２３を、ピリジンと２回共蒸発させ、一晩、高真空下で乾燥させた。出発材料（１．０１ｇ、１．５４ｍｍｏｌ）を、無水ピリジン（７．４６ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却し、塩化ベンゾイル（２１４μＬ、１．８４ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。混合物を室温で１時間撹拌し、ＴＬＣを確認した（酢酸エチル中８０％のヘキサン）。溶媒を減圧下で取り除き、残渣を、酢酸エチル中で再懸濁させた。標準的な水性後処理を、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液を用いて行った。有機層を組み合わせて、飽和ＮａＣｌ水溶液で洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。残渣を、ヘキサン中０～２０％のＥｔＯＡｃの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、８９０ｍｇ（７６％の収率）の化合物４０を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ７．９３（ｄｄｔ，Ｊ＝１２．８、７．０、１．４Ｈｚ、３Ｈ）、７．６８－７．６２（ｍ，１Ｈ）、７．５６－７．４６（ｍ，３Ｈ）、７．３５（ｄｄｔ，Ｊ＝８．１、３．２、１．８Ｈｚ、３Ｈ）、７．３０（ｑ，Ｊ＝７．９、７．５Ｈｚ、３Ｈ）、７．２７－７．１７（ｍ，７Ｈ）、６．８８（ｄｄｄ，Ｊ＝９．０、６．１、２．９Ｈｚ、６Ｈ）、５．６０（ｐ，Ｊ＝４．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．２９（ｑ，Ｊ＝５．５、５．１Ｈｚ、２Ｈ）、３．９０（ｄｄｄ，Ｊ＝２８．０、１２．４、３．９Ｈｚ、１Ｈ）、３．８０－３．７５（ｍ，１Ｈ）、３．７３（ｄ，Ｊ＝１．０Ｈｚ、９Ｈ）、３．３６（ｓ，１Ｈ）、３．２７（ｄｄ，Ｊ＝９．０、４．７Ｈｚ、１Ｈ）、３．１５－３．０４（ｍ，２Ｈ）、２．３６－２．１６（ｍ，５Ｈ）、１．４４（ｑ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．２９－１．２０（ｍ，２９Ｈ）、０．８７－０．８１（ｍ，４Ｈ）．
化合物４１：撹拌子を備えた丸底フラスコ中で、化合物４０（８９０ｍｇ、１．１７ｍｍｏｌ）を、水中８０％のＡｃＯＨ（１３ｍＬ）に溶解させた。混合物を室温で４８時間撹拌し、溶媒を減圧下で除去した。残渣を、トルエンと２回共蒸発させ、高真空下で乾燥させた。残渣を、ヘキサン中０～６０％のＥｔＯＡｃの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、３０１ｍｇ（５６％の収率）の化合物４１を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ７．９７－７．８９（ｍ，３Ｈ）、７．６６（ｔｄ，Ｊ＝６．８、６．１、１．６Ｈｚ、１Ｈ）、７．５１（ｔｄ，Ｊ＝７．７、６．０Ｈｚ、３Ｈ）、５．５１－５．４０（ｍ，１Ｈ）、４．８４（ｔ，Ｊ＝５．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．１５（ｄｐ、Ｊ＝１１．７、３．８Ｈｚ、１Ｈ）、３．７７（ｄｄ，Ｊ＝１１．８、５．０Ｈｚ、１Ｈ）、３．５９（ｄｔ，Ｊ＝１０．５、５．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．４７（ｄｄｄ，Ｊ＝１４．８、９．０、４．７Ｈｚ、２Ｈ）、２．３３－２．１１（ｍ，５Ｈ）、１．５７－１．３９（ｍ，３Ｈ）、１．３０－１．１１（ｍ，３７Ｈ）、０．８５（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、４Ｈ）．
化合物４２：合成前に、出発材料、化合物４１（２００ｍｇ、０．４３５ｍｍｏｌ）を、一晩、高真空下で乾燥させた。撹拌子を備えた丸底フラスコ中で、出発材料に、プロトンスポンジ（９３ｍｇ、０．４３５ｍｍｏｌ）及びリン酸トリメチル（１．８１ｍＬ、１５．６４ｍｍｏｌ）を室温で充填した。反応フラスコを、真空ラインを用いて排気し、次に、アルゴンでフラッシュし、３回繰り返し、次に、アルゴン下に保持した。混合物を室温で１０分間撹拌し、３０分間にわたって氷及びＮａＣｌ浴で－５～－１０℃に冷却した。冷却した後、塩化ホスホリル（２８．３０μＬ、０．３０５ｍｍｏｌ）を、密閉したガラスシリンジを介して加え、４分間撹拌し、別の分量の塩化ホスホリル（２０．２２μＬ、０．２１７ｍｍｏｌ）を、密閉したガラスシリンジを介して加えた。混合物を、１０分間にわたって－５～－１０℃で撹拌した。ピロホスフェート混合液を、無水アセトニトリル（１．７５ｍＬ）に溶解されたトリブチルアンモニウムピロホスフェート（２５５．５０ｍｇ、０．３４８ｍｍｏｌ）及びトリブチルアミン（６２１．９５μＬ、２．６１ｍｍｏｌ）を用いて調製し、ドライアイス／アセトン浴中で－２０℃に保持した。１０分間撹拌した後、ピロホスフェート混合液を、迅速であるが注意深く、冷反応混合物に滴下して加え、次に、さらに１０分間撹拌した。フラスコからアルゴンラインを除去した後、水（１２ｍＬ）を、滴下漏斗を介して加えた。混合物を分液漏斗に移し、水性層を、ジクロロメタン（それぞれ５ｍＬ）で３回洗浄した。水性層を組み合わせて、水酸化アンモニウム（シリンジを用いて３滴）を用いて、ｐＨを６．５に調整した。混合物を、４℃で一晩貯蔵した。溶媒を減圧下で取り除き、残りの残渣を、アセトン／ドライアイス浴中で、－８０℃で凍結させた。残渣を、一晩、凍結乾燥させ、Ｄ２Ｏ中での３１Ｐ ＮＭＲ分析に供した。３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、Ｄ２Ｏ）δ ３．７２、－１０．１２、－２０．９９．
２’－Ｏ－Ｃ６－アミノ－ＴＦＡウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000060
 化合物１０２：化合物１０１（５ｇ、７．７５ｍｍｏｌ）を反応フラスコに加えた。出発材料を、ジクロロメタン（５０ｍｌ）に溶解させ、トリエチルアミン（４．２３ｍｌ、３１ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。トリフルオロ酢酸エチル（２．７５ｇ、１９．３８ｍｍｏｌ）を反応物に滴下して加えた。反応混合物を室温で一晩撹拌し、ＴＬＣ（５％のＭｅＯＨ／ＤＣＭ）によって確認し、リンモリブデン酸を用いて発色させ、減圧下で濃縮した。残渣をジクロロメタンに溶解させ、分液漏斗に加え、有機層を、飽和炭酸水素ナトリウムで洗浄した。有機層を分離し、塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮し、高真空下に置いて、（４．３２ｇ、７５％）の化合物１０２を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３６（ｄ，Ｊ＝２．６Ｈｚ、２Ｈ）、９．３６（ｓ，１Ｈ）、７．７１（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、２Ｈ）、７．３６（ｄ，Ｊ＝８．４Ｈｚ、４Ｈ）、７．３１（ｔ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、４Ｈ）、７．２７－７．２０（ｍ，１０Ｈ）、６．８９（ｄ，Ｊ＝８．５Ｈｚ、８Ｈ）、５．７８（ｄ，Ｊ＝３．６Ｈｚ、２Ｈ）、５．２７（ｄｄ，Ｊ＝８．１、２．１Ｈｚ、２Ｈ）、５．１０（ｄｄ，Ｊ＝６．７、２．７Ｈｚ、２Ｈ）、４．１６（ｍ，２Ｈ）、３．９５（ｍ，２Ｈ）、３．８８（ｍ，２Ｈ）、３．７３（ｓ，１３Ｈ）、３．５５（ｍ，４Ｈ）、３．３６（ｍ，１Ｈ）、３．２８（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ、１Ｈ）、３．２２（ｄｄ，Ｊ＝１０．９、２．８Ｈｚ、２Ｈ）、３．１４（ｍ，３Ｈ）、２．１１（ｓ，２Ｈ）、１．４８（ｍ，８Ｈ）、１．３６－１．１９（ｍ，８Ｈ）．Ｃ３８Ｈ４２Ｆ３Ｎ３Ｏ９についての質量計算値：７４１．７６、実測値：７４０．２（Ｍ－Ｈ）。
化合物１０３：化合物１０２（４．３ｇ、５．８ｍｍｏｌ）を反応フラスコに加え、排気し、アルゴンでパージした。出発材料をジクロロメタン（４０ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（２．０２ｍｌ、１１．６ｍｍｏｌ）をシリンジによって加えた。２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（１．９３ｍｌ、８．７ｍｍｏｌ）を加え、反応物を室温で１～２時間撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（７５％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって確認し、減圧下で濃縮した。残留物を酢酸エチルに溶解させ、分液漏斗に加え、有機層を飽和炭酸水素ナトリウムで洗浄した。有機層を分離し、塩水溶液で洗浄した。次に、有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体を濾過して取り出し、母液を濃縮した。残留物を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（１０％～１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（４．６２ｇ、８５％）の化合物１０３を得た。
１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．０６（ｓ，１Ｈ）、７．７４（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．４９－７．３９（ｍ，２Ｈ）、７．３９－７．２１（ｍ，７Ｈ）、６．９３－６．８３（ｍ，４Ｈ）、５．８４（ｄｄ，Ｊ＝７．０、３．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．２１（ｍ，１Ｈ）、４．４５（ｍ，１Ｈ）、４．２０－３．９７（ｍ，３Ｈ）、３．９１－３．７９（ｍ，１Ｈ）、３．７７（ｄ，Ｊ＝２．４Ｈｚ、７Ｈ）、３．６３（ｍ，４Ｈ）、３．４８－３．３１（ｍ，３Ｈ）、３．２３（ｍ，１Ｈ）、２．６７（ｍ，１Ｈ）、２．５２（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、２．０８（ｄ，Ｊ＝１．９Ｈｚ、１Ｈ）、１．６４－１．４５（ｍ，４Ｈ）、１．４２－１．２８（ｍ，４Ｈ）、１．２７－１．０９（ｍ，９Ｈ）、１．０５（ｄ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １４９．５３、１４９．０６．１９Ｆ ＮＭＲ（３７６ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ －８３．４３、－８３．８９（ｄ，Ｊ＝２．４Ｈｚ）．
２’－Ｏ－Ｃ３－アミノ－ＴＦＡウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000061
 化合物１０５：化合物１０４（２．５ｇ、４．１４ｍｍｏｌ）を反応フラスコに加えた。出発材料をジクロロメタン（２０ｍｌ）に溶解させ、トリエチルアミン（２．２６ｍｌ、１６．５６ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。トリフルオロ酢酸エチル（１．４７ｇ、１０．３５ｍｍｏｌ）を反応物に滴下して加えた。反応混合物を室温で一晩撹拌し、ＴＬＣ（３％のＭｅＯＨ／ＤＣＭ）によって確認し、リンモリブデン酸を用いて発色させ、減圧下で濃縮した。残渣をジクロロメタンに溶解させ、分液漏斗に加え、有機層を、飽和炭酸水素ナトリウムで洗浄した。有機層を分離し、塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（０％～１０％のＭｅＯＨ／ＤＣＭ）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（１．８３ｇ、６３％）の化合物１０５を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ９．３９（ｍ，１Ｈ）、７．７９（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．３７（ｄ，Ｊ＝７．３Ｈｚ、３Ｈ）、７．３１（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、３Ｈ）、７．２７－７．１６（ｍ，７Ｈ）、６．９３－６．８５（ｍ，５Ｈ）、５．８１－５．７３（ｍ，２Ｈ）、５．５４（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ、１Ｈ）、５．３８（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、５．１９（ｄｄ，Ｊ＝８．６、６．４Ｈｚ、１Ｈ）、４．１５－４．０２（ｍ，２Ｈ）、４．０１－３．８７（ｍ，２Ｈ）、３．８３－３．７４（ｍ，２Ｈ）、３．７３（ｓ，８Ｈ）、３．３１－３．１４（ｍ，５Ｈ）、２．０７（ｓ，１Ｈ）、１．７４（ｄｄ，Ｊ＝１１．４、４．６Ｈｚ、３Ｈ）．１９Ｆ ＮＭＲ（３７６ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ －８１．２４（ｄ，Ｊ＝４３．２Ｈｚ）．Ｃ３５Ｈ３６Ｆ３Ｎ３Ｏ９についての質量計算値：６９９．６８、実測値：６９８．２（Ｍ－Ｈ）。
化合物１０６：化合物１０５（１．７０ｇ、２．４３ｍｍｏｌ）を反応フラスコに加え、排気し、アルゴンでパージした。出発材料をジクロロメタン（２ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（０．８４６ｍｌ、４．８６ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（０．６４９ｍｌ、２．９２ｍｍｏｌ）を加え、反応物を室温で１～２時間撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（５０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって確認し、減圧下で濃縮した。残渣を酢酸エチルに溶解させ、分液漏斗に加え、有機層を、飽和炭酸水素ナトリウムで洗浄した。有機層を分離し、塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（１０％～１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（０．７８７ｇ、３６％）の化合物１０６を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ７．８９－７．６３（ｍ，２Ｈ）、７．４９－７．３９（ｍ，２Ｈ）、７．３８－７．２０（ｍ，７Ｈ）、６．８８（ｍ，４Ｈ）、６．１３－５．９７（ｍ，１Ｈ）、５．５３－５．３４（ｍ，１Ｈ）、４．５２－４．３２（ｍ，２Ｈ）、４．２４（ｍ，１Ｈ）、３．９４－３．８０（ｍ，４Ｈ）、３．８０－３．７４（ｍ，７Ｈ）、３．７１－３．５３（ｍ，５Ｈ）、３．５２－３．２９（ｍ，３Ｈ）、３．２５（ｍ，２Ｈ）、２．６４（ｍ，３Ｈ）、１．８６－１．７５（ｍ，２Ｈ）、１．３６－０．９６（ｍ，２５Ｈ）．１９Ｆ ＮＭＲ（３７６ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ －７７．２６、－１４３．５１．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５２．０３（ｄ，Ｊ＝６．２Ｈｚ）、１５１．４７－１５０．５０（ｍ）．
２’－Ｏ－Ｃ６－アミド－Ｃ１６コンジュゲートウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000062
 化合物１０７：化合物１０１（５．７ｇ、８．８３ｍｍｏｌ）を、パルミチン酸（２．５１ｇ、９．８ｍｍｏｌ）及びＨＢＴＵ（４．０８ｇ、１０．７７ｍｍｏｌ）と共に、反応フラスコに加えた。固体をＤＭＦ（２５ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（４．６１ｍｌ、２６．５ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応混合物を室温で一晩撹拌した。反応混合物を、ＭＳによって確認した。反応混合物を、ジエチルエーテル及び希薄炭酸水素ナトリウム溶液で希釈し、分液漏斗に加えた。有機層を、希薄炭酸水素ナトリウム溶液、飽和炭酸水素ナトリウム、及び次に、飽和塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（０％～１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（６．３３ｇ、８１％）の化合物１０７を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．４０（ｄｄ，Ｊ＝２７．８、２．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．７６－７．６３（ｍ，２Ｈ）、７．３３（ｍ，４Ｈ）、７．２３（ｍ，５Ｈ）、６．８９（ｄｄ，Ｊ＝９．３、３．０Ｈｚ、４Ｈ）、５．７８（ｄ，Ｊ＝３．５Ｈｚ、１Ｈ）、５．２７（ｄｄ，Ｊ＝８．１、２．１Ｈｚ、１Ｈ）、５．２１－５．０７（ｍ，１Ｈ）、４．２６－４．０６（ｍ，１Ｈ）、３．９１（ｍ，２Ｈ）、３．７３（ｓ，６Ｈ）、３．６３－３．４３（ｍ，２Ｈ）、３．２９－３．１８（ｍ，２Ｈ）、２．９８（ｑ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、２Ｈ）、２．００（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．４７（ｍ，４Ｈ）、１．３４（ｔ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、２Ｈ）、１．２１（ｓ，２３Ｈ）、０．８３（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．Ｃ５２Ｈ７３Ｎ３Ｏ９についての質量計算値：８８４．１７、実測値：８８２．５（Ｍ－Ｈ）。
化合物１０８：化合物１０７（５．８３ｇ、６．５９ｍｍｏｌ）を反応フラスコに加え、排気し、アルゴンでパージした。出発材料をジクロロメタン（６０ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（３．４５ｍｌ、１９．７８ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応混合物を、氷浴によって０℃に冷却した。２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（１．９１ｍｌ、８．５７ｍｍｏｌ）及び１－メチルイミダゾール（０．５２５ｍｌ、６．６ｍｍｏｌ）を反応混合物に加え、反応混合物を室温に温め、１時間撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって確認し、減圧下で濃縮した。残渣をジクロロメタンに溶解させ、分液漏斗に加え、有機層を、飽和炭酸水素ナトリウムで洗浄した。有機層を分離し、塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（１０％～８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（４．６ｇ、６４％）の化合物１０８を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．１６（ｓ，１Ｈ）、７．７１（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．５２－７．３９（ｍ，２Ｈ）、７．３７－７．２２（ｍ，７Ｈ）、６．９２－６．８４（ｍ，４Ｈ）、６．２８（ｄ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．８６（ｄｄ，Ｊ＝９．１、３．７Ｈｚ、１Ｈ）、５．２３（ｔ，Ｊ＝８．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．５４－４．３２（ｍ，１Ｈ）、４．２０－４．０９（ｍ，１Ｈ）、４．０７－３．９７（ｍ，１Ｈ）、３．７７（ｄ，Ｊ＝２．８Ｈｚ、７Ｈ）、３．６２（ｍ，４Ｈ）、３．５５－３．３３（ｍ，３Ｈ）、３．０９（ｍ，２Ｈ）、２．７５（ｓ，１Ｈ）、２．６７（ｍ，１Ｈ）、２．５２（ｓ，１Ｈ）、２．０６（ｍ，２Ｈ）、１．６２－１．４９（ｍ，４Ｈ）、１．４５－１．３９（ｍ，２Ｈ）、１．３４（ｍ，３Ｈ）、１．２５（ｄ，Ｊ＝１６．３Ｈｚ、２７Ｈ）、１．１６（ｄｄ，Ｊ＝１０．８、６．８Ｈｚ、８Ｈ）、１．０５（ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５１．０６、１５０．６０．
２’－Ｏ－Ｃ３－アミド－Ｃ１６コンジュゲートウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000063
 化合物１０９：化合物１０４（５．３ｇ、８．７８ｍｍｏｌ）を、パルミチン酸（２．５０ｇ、９．７５ｍｍｏｌ）及びＨＢＴＵ（４．０６ｇ、１０．７１ｍｍｏｌ）と共に反応フラスコに加えた。固体をＤＭＦ（２５ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（４．５９ｍｌ、２６．３４ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応混合物を室温で一晩撹拌した。反応混合物を、ＭＳによって確認した。反応混合物を、ジエチルエーテル及び希薄炭酸水素ナトリウム溶液で希釈し、分液漏斗に加えた。有機層を、希薄炭酸水素ナトリウム溶液、飽和炭酸水素ナトリウム、及び次に、飽和塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（０％～１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（４．６６ｇ、６３％）の化合物１０９を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３７（ｓ，１Ｈ）、７．７５－７．６７（ｍ，２Ｈ）、７．３４（ｄｄ，Ｊ＝１９．６、７．３Ｈｚ、４Ｈ）、７．２９－７．１４（ｍ，６Ｈ）、６．８９（ｄ，Ｊ＝８．５Ｈｚ、４Ｈ）、５．７８（ｄ，Ｊ＝３．４Ｈｚ、１Ｈ）、５．２７（ｄ，Ｊ＝８．０Ｈｚ、１Ｈ）、５．１９（ｄ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、１Ｈ）、４．１８（ｑ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．９２（ｍ，２Ｈ）、３．７３（ｓ，６Ｈ）、３．５７（ｑ，Ｊ＝５．７、５．０Ｈｚ、２Ｈ）、３．３０－３．１８（ｍ，２Ｈ）、３．０９（ｍ，２Ｈ）、２．０１（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．６３（ｍ，２Ｈ）、１．４５（ｔ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、２Ｈ）、１．２１（ｄ，Ｊ＝５．１Ｈｚ、２３Ｈ）、０．８３（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．Ｃ４９Ｈ６７Ｎ３Ｏ９についての質量計算値：８４２．０９、実測値：８４０．５（Ｍ－Ｈ）。
化合物１１０：化合物１０９（４．６６ｇ、５．５３ｍｍｏｌ）を反応フラスコに加え、排気し、アルゴンでパージした。出発材料をジクロロメタン（４０ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（２．８９ｍｌ、１６．６ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応混合物を、氷浴によって０℃に冷却した。２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（１．６１ｍｌ、７．１９ｍｍｏｌ）及び１－メチルイミダゾール（０．４４１ｍｌ、５．５３ｍｍｏｌ）を反応混合物に加え、反応混合物を室温に温め、２時間撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって確認し、減圧下で濃縮した。残渣をジクロロメタンに溶解させ、分液漏斗に加え、有機層を、飽和炭酸水素ナトリウムで洗浄した。有機層を分離し、塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（１０％～８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（３．８６ｇ、６７％）の化合物１１０を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．０１（ｓ，１Ｈ）、７．７４（ｄ，Ｊ＝８．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．５２－７．４０（ｍ，３Ｈ）、７．３６－７．２１（ｍ，７Ｈ）、６．９２－６．８５（ｍ，４Ｈ）、６．４０（ｄ，Ｊ＝５．４Ｈｚ、１Ｈ）、５．８５（ｄｄ，Ｊ＝７．６、２．９Ｈｚ、１Ｈ）、５．２１（ｔ，Ｊ＝８．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．４６（ｍ，１Ｈ）、４．２２－４．０９（ｍ，２Ｈ）、４．０９－３．９８（ｍ，２Ｈ）、３．９１－３．８０（ｍ，１Ｈ）、３．８０－３．６９（ｍ，９Ｈ）、３．６８－３．５５（ｍ，３Ｈ）、３．５５－３．３４（ｍ，３Ｈ）、３．２２（ｍ，２Ｈ）、２．７５（ｔ，Ｊ＝５．９Ｈｚ、１Ｈ）、２．６８（ｍ，１Ｈ）、２．５２（ｔ，Ｊ＝５．９Ｈｚ、１Ｈ）、２．０６（ｍ，２Ｈ）、１．７１（ｍ，２Ｈ）、１．５４－１．４９（ｍ，２Ｈ）、１．２５（ｄｄ，Ｊ＝９．５、６．５Ｈｚ、２８Ｈ）、１．２２－１．１０（ｍ，１０Ｈ）、１．０５（ｄ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５１．０１、１５０．５６．
２’－Ｏ－Ｃ６－アミド－Ｃ１４コンジュゲートウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000064
 化合物１１１：化合物１０１（５．０ｇ、７．７４ｍｍｏｌ）を、ミリスチン酸（１．９６ｇ、８．６ｍｍｏｌ）及びＨＢＴＵ（３．５８ｇ、９．４５ｍｍｏｌ）と共に、反応フラスコに加えた。固体をＤＭＦ（２５ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（４．０５ｍｌ、２３．２３ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応混合物を室温で一晩撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって確認した。反応混合物を、ジエチルエーテル及び希薄炭酸水素ナトリウム溶液で希釈し、分液漏斗に加えた。有機層を、希薄炭酸水素ナトリウム溶液、飽和炭酸水素ナトリウム、及び次に、飽和塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（０％～１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（３．７８ｇ、５７％）の化合物１１１を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３７（ｄ，Ｊ＝２．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．７２（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．６７（ｔ，Ｊ＝５．６Ｈｚ、１Ｈ）、７．４１－７．２８（ｍ，４Ｈ）、７．２３（ｍ，５Ｈ）、６．８９（ｄ，Ｊ＝８．６Ｈｚ、４Ｈ）、５．７８（ｄ，Ｊ＝３．６Ｈｚ、１Ｈ）、５．２７（ｄｄ，Ｊ＝８．０、２．１Ｈｚ、１Ｈ）、５．１１（ｄ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、１Ｈ）、４．１６（ｑ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．９５（ｍ，１Ｈ）、３．７３（ｓ，６Ｈ）、３．６３－３．４７（ｍ，２Ｈ）、３．３１－３．１８（ｍ，３Ｈ）、２．９８（ｑ，Ｊ＝６．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．００（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．４７（ｍ，４Ｈ）、１．３４（ｍ，３Ｈ）、１．２１（ｓ，２３Ｈ）、０．８３（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．
化合物１１２：化合物１１１（３．７８ｇ、４．４２ｍｍｏｌ）を反応フラスコに加え、排気し、アルゴンでパージした。出発材料をジクロロメタン（４０ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（２．３１ｍｌ、１３．２５ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応混合物を、氷浴によって０℃に冷却した。２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（１．２８ｍｌ、５．７４ｍｍｏｌ）及び１－メチルイミダゾール（０．３５２ｍｌ、４．４２ｍｍｏｌ）を加え、反応混合物を室温に温め、１時間撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって確認し、減圧下で濃縮した。残渣をジクロロメタンに溶解させ、分液漏斗に加え、有機層を、飽和炭酸水素ナトリウムで洗浄した。有機層を分離し、塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（１０％～８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（４．０４ｇ、８７％）の化合物１１２を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．１８（ｓ，１Ｈ）、７．４４（ｍ，２Ｈ）、７．３８－７．２１（ｍ，７Ｈ）、６．９３－６．８３（ｍ，４Ｈ）、６．２９（ｄ，Ｊ＝５．９Ｈｚ、１Ｈ）、５．８６（ｄｄ，Ｊ＝７．４、３．７Ｈｚ、１Ｈ）、５．２３（ｄｄ，Ｊ＝８．１、６．７Ｈｚ、１Ｈ）、４．５３－４．３３（ｍ，１Ｈ）、４．１５（ｍ，１Ｈ）、４．０８－３．９７（ｍ，１Ｈ）、３．８６（ｍ，１Ｈ）、３．７７（ｄ，Ｊ＝２．３Ｈｚ、６Ｈ）、３．６２（ｍ，４Ｈ）、３．４８－３．３２（ｍ，２Ｈ）、３．０９（ｍ，２Ｈ）、２．６７（ｍ，１Ｈ）、２．５２（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、２．０６（ｍ，２Ｈ）、１．５４（ｍ，４Ｈ）、１．４１（ｍ，２Ｈ）、１．２６（ｓ，２５Ｈ）、１．１６（ｄｄ，Ｊ＝８．７、６．８Ｈｚ、１０Ｈ）、１．０５（ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）、０．９２－０．８３（ｍ，３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５１．０６、１５０．６０．
２’－Ｏ－Ｃ６－アミド－Ｃ１８コンジュゲートウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000065
 化合物１１３：化合物１０１（５．０ｇ、７．７４ｍｍｏｌ）を、ステアリン酸（２．４５ｇ、８．６ｍｍｏｌ）及びＨＢＴＵ（３．５８ｇ、９．４５ｍｍｏｌ）と共に反応フラスコに加えた。固体をＤＭＦ（２５ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（４．０５ｍｌ、２３．２３ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応混合物を室温で一晩撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって確認した。反応混合物を、ジエチルエーテル及び希薄炭酸水素ナトリウム溶液で希釈し、分液漏斗に加えた。有機層を、希薄炭酸水素ナトリウム溶液、飽和炭酸水素ナトリウム、及び次に、飽和塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（０％～１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（３．５６ｇ、５０％）の化合物１１３を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３６（ｄ，Ｊ＝２．０Ｈｚ、１Ｈ）、７．７２（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．６７（ｔ，Ｊ＝５．６Ｈｚ、１Ｈ）、７．４２－７．２７（ｍ，４Ｈ）、７．２７－７．１８（ｍ，５Ｈ）、６．８９（ｄ，Ｊ＝８．６Ｈｚ、４Ｈ）、５．７８（ｄ，Ｊ＝３．６Ｈｚ、１Ｈ）、５．２７（ｍ，１Ｈ）、５．１１（ｄ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、１Ｈ）、４．１６（ｑ，Ｊ＝６．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．０２（ｑ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．９５（ｍ，１Ｈ）、３．８７（ｍ，１Ｈ）、３．７３（ｓ，６Ｈ）、３．６３－３．４７（ｍ，２Ｈ）、３．３１－３．１８（ｍ，２Ｈ）、２．９８（ｑ，Ｊ＝６．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．０４－１．９５（ｍ，２Ｈ）、１．４８（ｍ，４Ｈ）、１．３４（ｍ，３Ｈ）、１．３０－１．１５（ｍ，３１Ｈ）、０．８３（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．
化合物１１４：化合物１１３（５．８６ｇ、６．４４ｍｍｏｌ）を反応フラスコに加え、排気し、アルゴンでパージした。出発材料をジクロロメタン（６０ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（３．３６ｍｌ、１９．３１ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応混合物を、氷浴によって０℃に冷却した。２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（１．８７ｍｌ、１．９８ｍｍｏｌ）及び１－メチルイミダゾール（０．５１３ｍｌ、６．４４ｍｍｏｌ）を反応混合物に加え、反応混合物を室温に温め、１時間撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって確認し、減圧下で濃縮した。残渣をジクロロメタンに溶解させ、分液漏斗に加え、有機層を、飽和炭酸水素ナトリウムで洗浄した。有機層を分離し、塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（０％～５０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（４．６７ｇ、６５％）の化合物１１４を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．１７（ｓ，１Ｈ）、７．４９－７．３９（ｍ，２Ｈ）、７．３７－７．２１（ｍ，７Ｈ）、６．９３－６．８３（ｍ，４Ｈ）、６．２９（ｄ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、５．８６（ｄｄ，Ｊ＝７．４、３．７Ｈｚ、１Ｈ）、５．２３（ｄｄ，Ｊ＝８．１、６．６Ｈｚ、１Ｈ）、４．４３（ｍ，１Ｈ）、４．２１－４．０９（ｍ，１Ｈ）、４．０９－３．９６（ｍ，２Ｈ）、３．８７（ｍ，１Ｈ）、３．７７（ｄ，Ｊ＝２．３Ｈｚ、６Ｈ）、３．６１（ｍ，４Ｈ）、３．４６－３．３２（ｍ，２Ｈ）、３．０９（ｍ，２Ｈ）、２．７３（ｓ，１Ｈ）、２．６７（ｍ，１Ｈ）、２．５２（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、２．０６（ｍ，２Ｈ）、１．５４（ｍ，４Ｈ）、１．４１（ｍ，２Ｈ）、１．２６（ｓ，３１Ｈ）、１．１６（ｄｄ，Ｊ＝８．８、６．８Ｈｚ、１１Ｈ）、１．０５（ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５１．０６、１５０．６０．
２’－Ｏ－Ｃ６－アミド－オレイルコンジュゲートウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000066
 化合物１１５：化合物１０１（５．０ｇ、７．７４ｍｍｏｌ）を、オレイル酸（２．４３ｇ、８．６ｍｍｏｌ）及びＨＢＴＵ（３．５８ｇ、９．４５ｍｍｏｌ）と共に反応フラスコに加えた。固体をＤＭＦ（７５ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（４．０５ｍｌ、２３．２３ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応混合物を室温で一晩撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって確認した。反応混合物を、ジエチルエーテル及び希薄炭酸水素ナトリウム溶液で希釈し、分液漏斗に加えた。有機層を、希薄炭酸水素ナトリウム溶液、飽和炭酸水素ナトリウム、及び次に、飽和塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（０％～１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（５．８６ｇ、８４％）の化合物１１５を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３７（ｄ，Ｊ＝２．０Ｈｚ、１Ｈ）、７．７３（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．６７（ｔ，Ｊ＝５．６Ｈｚ、１Ｈ）、７．４１－７．２８（ｍ，４Ｈ）、７．２８－７．１９（ｍ，５Ｈ）、６．８９（ｄ，Ｊ＝８．７Ｈｚ、４Ｈ）、５．７８（ｄ，Ｊ＝３．６Ｈｚ、１Ｈ）、５．３５－５．２３（ｍ，３Ｈ）、５．１１（ｄ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、１Ｈ）、４．１６（ｑ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．９５（ｍ，１Ｈ）、３．８８（ｍ，１Ｈ）、３．７３（ｓ，６Ｈ）、３．６３－３．４７（ｍ，２Ｈ）、３．３０－３．１７（ｍ，２Ｈ）、２．９９（ｑ，Ｊ＝６．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．９８（ｍ，６Ｈ）、１．４７（ｍ，４Ｈ）、１．３５（ｑ，Ｊ＝７．０Ｈｚ、２Ｈ）、１．２３（ｄ，Ｊ＝１２．７Ｈｚ、２２Ｈ）、０．８３（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．Ｃ５４Ｈ７５Ｎ３Ｏ９についての質量計算値：９１０．２１、実測値：９０８．５（Ｍ－Ｈ）
化合物１１６：化合物１１５（３．５６ｇ、３．９０ｍｍｏｌ）を反応フラスコに加え、排気し、アルゴンでパージした。出発材料をジクロロメタン（３５ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（２．０４ｍｌ、１１．７１ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応混合物を、氷浴によって０℃に冷却した。２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（１．１３ｍｌ、５．０７ｍｍｏｌ）及び１－メチルイミダゾール（０．３１１ｍｌ、３．９ｍｍｏｌ）を反応混合物に加え、反応混合物を室温に温め、１時間撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって確認し、減圧下で濃縮した。残渣をジクロロメタンに溶解させ、分液漏斗に加え、有機層を、飽和炭酸水素ナトリウムで洗浄した。有機層を分離し、塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（０％～１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（３．５ｇ、８０％）の化合物１１６を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．１６（ｓ，１Ｈ）、７．４８－７．４０（ｍ，２Ｈ）、７．３８－７．２２（ｍ，７Ｈ）、６．９２－６．８４（ｍ，４Ｈ）、６．２８（ｄ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、１Ｈ）、５．８６（ｄｄ，Ｊ＝９．２、３．７Ｈｚ、１Ｈ）、５．３４（ｍ，２Ｈ）、５．２３（ｔ，Ｊ＝８．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．５１－４．３６（ｍ，１Ｈ）、４．１５（ｍ，１Ｈ）、４．０７－３．９７（ｍ，１Ｈ）、３．９３－３．８１（ｍ，１Ｈ）、３．７７（ｄ，Ｊ＝２．９Ｈｚ、７Ｈ）、３．６１（ｍ，４Ｈ）、３．４５－３．３３（ｍ，２Ｈ）、３．０９（ｍ，２Ｈ）、２．８１－２．６９（ｍ，１Ｈ）、２．６９－２．５８（ｍ，１Ｈ）、２．５２（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、２．１０－１．９７（ｍ，６Ｈ）、１．５４（ｍ，４Ｈ）、１．４７－１．３９（ｍ，２Ｈ）、１．３９－１．１９（ｍ，２５Ｈ）、１．１６（ｄｄ，Ｊ＝１０．８、６．８Ｈｚ、９Ｈ）、１．０５（ｄ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５１．０６、１５０．６０．
２’－Ｏ－Ｃ３－アミド－オレイルコンジュゲートウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000067
 化合物１１７：化合物１０４（５．０ｇ、８．２８ｍｍｏｌ）を、オレイル酸（２．６ｇ、９．１９ｍｍｏｌ）及びＨＢＴＵ（３．８３ｇ、１０．１１ｍｍｏｌ）と共に反応フラスコに加えた。固体をＤＭＦ（７０ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（４．３３ｍｌ、２４．８５ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応混合物を室温で一晩撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって確認した。反応混合物を、ジエチルエーテル及び希薄炭酸水素ナトリウム溶液で希釈し、分液漏斗に加えた。有機層を、希薄炭酸水素ナトリウム溶液、飽和炭酸水素ナトリウム、及び次に、飽和塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（０％～１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（４．６ｇ、６４％）の化合物１１７を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３７（ｄ，Ｊ＝２．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．７５－７．６７（ｍ，２Ｈ）、７．４１－７．２６（ｍ，４Ｈ）、７．２３（ｍ，５Ｈ）、６．８９（ｄ，Ｊ＝８．５Ｈｚ、４Ｈ）、５．７８（ｄ，Ｊ＝３．４Ｈｚ、１Ｈ）、５．３３－５．２３（ｍ，３Ｈ）、５．１８（ｄ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、１Ｈ）、４．１８（ｑ，Ｊ＝６．３Ｈｚ、１Ｈ）、３．９５（ｍ，１Ｈ）、３．８９（ｄｄ，Ｊ＝５．２、３．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．７３（ｓ，６Ｈ）、３．５７（ｑ，Ｊ＝５．６、４．９Ｈｚ、２Ｈ）、３．３１－３．１８（ｍ，２Ｈ）、３．０９（ｍ，２Ｈ）、２．０５－１．９０（ｍ，６Ｈ）、１．６３（ｍ，２Ｈ）、１．４５（ｑ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、２Ｈ）、１．２３（ｍ，２０Ｈ）、０．８３（ｔ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、３Ｈ）．Ｃ５１Ｈ６９Ｎ３Ｏ９についての質量計算値：８６８．１３、実測値：８６７．５（Ｍ－Ｈ）。
化合物１１８：化合物１１７（４．６ｇ、５．３ｍｍｏｌ）を反応フラスコに加え、排気し、アルゴンでパージした。出発材料をジクロロメタン（４５ｍｌ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（２．７７ｍｌ、１５．９ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応混合物を、氷浴によって０℃に冷却した。２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（１．５４ｍｌ、６．８９ｍｍｏｌ）及び１－メチルイミダゾール（０．４２２ｍｌ、５．３ｍｍｏｌ）を反応混合物に加え、反応混合物を室温に温め、１時間撹拌した。反応混合物を、ＴＬＣ（８０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって確認し、減圧下で濃縮した。残渣をジクロロメタンに溶解させ、分液漏斗に加え、有機層を、飽和炭酸水素ナトリウムで洗浄した。有機層を分離し、塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（０％～６０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（４．６４ｇ、８２％）の化合物１１８を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．１２（ｓ，１Ｈ）、７．５２－７．４２（ｍ，２Ｈ）、７．４２－７．２４（ｍ，７Ｈ）、６．９６－６．８６（ｍ，４Ｈ）、６．４５（ｄ，Ｊ＝４．９Ｈｚ、１Ｈ）、５．８８（ｄｄ，Ｊ＝６．６、２．８Ｈｚ、１Ｈ）、５．４１－５．３２（ｍ，２Ｈ）、５．２４（ｄｄ，Ｊ＝８．２、７．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．４９（ｍ，１Ｈ）、４．１６（ｍ，１Ｈ）、４．１２－４．０２（ｍ，１Ｈ）、３．８４－３．７２（ｍ，９Ｈ）、３．７２－３．５６（ｍ，３Ｈ）、３．５６－３．３６（ｍ，３Ｈ）、３．２５（ｍ，２Ｈ）、２．７８（ｔ，Ｊ＝５．９Ｈｚ、１Ｈ）、２．７１（ｍ，１Ｈ）、２．５５（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、２．１５－２．０７（ｍ，２Ｈ）、２．０４（ｍ，４Ｈ）、１．７４（ｍ，Ｆ２Ｈ）、１．５５（ｄ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、２Ｈ）、１．４０－１．２３（ｍ，２６Ｈ）、１．２３－１．１２（ｍ，９Ｈ）、１．０７（ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）、０．９４－０．８６（ｍ，３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １４９．５９（ｄ，Ｊ＝２．２Ｈｚ）、１４９．１１（ｄ，Ｊ＝２．６Ｈｚ）．
Ａ、Ｇ、Ｃ及びＵの２’－Ｏ－Ｃ３及び２’－Ｏ－Ｃ６ホスホラミダイトの合成
Figure 2023500681000068
 ２’－Ｏ－Ｃ３ウリジンホスホラミダイト８０４ａの合成：合成前に、出発材料、化合物８０３ａ（４．００ｇ、６．８０ｍｍｏｌ）を、アセトニトリルと２回共蒸発させ、一晩、高真空下で乾燥させた。無水ジクロロメタン（７９．０３ｍＬ）中の化合物８０３ａの溶液に、ＤＩＰＥＡ（４．１４ｍＬ、２３．７８ｍｍｏｌ）を加えた。混合物を、氷浴上で０℃に冷却し、２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（２．７３ｍＬ、１２．２３ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。混合物を室温に温め、４時間撹拌し、ＴＬＣを確認した（ヘキサン中６０％のＥｔＯＡｃ）。溶媒を減圧下で取り除き、残渣を、１時間にわたって高真空下で乾燥させた。残渣を、ＥｔＯＡｃ中で再懸濁させ、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液を用いた標準的な水性後処理を迅速に行った。有機層を組み合わせて、飽和ＮａＣｌ水溶液で洗浄し、無水硫酸ナトリウム上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。残渣を、ヘキサン中０～６０％のＥｔＯＡｃの勾配を用いたシリカゲル（Ｅｔ３Ｎで前処理された）上でのフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、４．５３ｇ（８４％の収率）の化合物８０４ａを得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．０９（ｓ，１Ｈ）、７．７９（ｄｄ，Ｊ＝３５．３、８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．４５（ｄｄｔ，Ｊ＝１０．６、８．２、１．３Ｈｚ、２Ｈ）、７．３８－７．２１（ｍ，７Ｈ）、６．９２－６．８３（ｍ，４Ｈ）、５．８５（ｄｄ，Ｊ＝６．０、３．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．２２（ｄｄ，Ｊ＝８．２、５．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．４６（ｄｄｄｄ，Ｊ＝３１．１、１０．０、６．６、４．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．１５（ｄｄｔ，Ｊ＝１３．４、６．３、２．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．０４（ｄｄｄ，Ｊ＝１３．８、４．９、３．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．８０－３．７３（ｍ，７Ｈ）、３．６８－３．５４（ｍ，３Ｈ）、３．４５－３．３７（ｍ，２Ｈ）、２．７０－２．６３（ｍ，１Ｈ）、２．１５（ｓ，１Ｈ）、１．６４－１．５２（ｍ，２Ｈ）、１．１６（ｄｄ，Ｊ＝９．９、６．８Ｈｚ、９Ｈ）、１．０５（ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）、０．９１（ｔｄ，Ｊ＝７．４、５．２Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １５０．１５、１５０．１０、１４９．７４、１４９．６９、１４．２４、６．０８．
２’－Ｏ－Ｃ６ウリジンホスホラミダイト８０４ｂの合成：化合物８０３ｂ（４．０ｇ、６．３５ｍｍｏｌ）を反応フラスコに加え、排気し、アルゴンでパージした。出発材料をジクロロメタンに溶解させ、ジイソプロピルアミン（２．２１ｍｌ、１２．７ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（２．１２ｍｌ、９．５３ｍｍｏｌ）を加え、室温で３時間撹拌した。反応物を、ＴＬＣ（ヘキサン中７０％のＥｔＯＡｃ）によって確認し、反応物を減圧下で濃縮した。残渣をジクロロメタンに溶解させ、分液漏斗に加え、有機層を、飽和炭酸水素ナトリウム溶液で洗浄した。有機層を分離し、塩水溶液で洗浄した。有機層を分離し、硫酸ナトリウムで乾燥させた。固体をろ過して取り出し、母液を濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（ヘキサン中３０％～１００％のＥｔＯＡｃ）によって精製し、生成物画分を組み合わせて、減圧下で濃縮して、（３．４２ｇ、６５％）の８０４ｂを得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ８．９８（ｓ，１Ｈ）、７．８６－７．６６（ｍ，１Ｈ）、７．４９－７．３９（ｍ，２Ｈ）、７．３９－７．２１（ｍ，７Ｈ）、６．９３－６．８３（ｍ，４Ｈ）、５．８５（ｄｄ，Ｊ＝６．２、３．５Ｈｚ、１Ｈ）、５．２２（ｄｄ，Ｊ＝８．２、６．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．４４（ｍ，１Ｈ）、４．２０－３．９８（ｍ，２Ｈ）、３．９３－３．８２（ｍ，１Ｈ）、３．７７（ｄ，Ｊ＝２．４Ｈｚ、７Ｈ）、３．７１－３．５５（ｍ，５Ｈ）、３．４７－３．３２（ｍ，２Ｈ）、２．７２－２．６１（ｍ，１Ｈ）、２．５２（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、１．６２－１．４９（ｍ，２Ｈ）、１．４１－１．２３（ｍ，６Ｈ）、１．１７（ｄｄ，Ｊ＝８．８、６．８Ｈｚ、９Ｈ）、１．０５（ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）、０．８８（ｍ，３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １４９．６３、１４９．２６．
２’－Ｏ－Ｃ６及び２’－Ｏ－Ｃ３アデノシンホスホラミダイトの合成
Figure 2023500681000069
 化合物８１３ａ及び８１３ｂの合成：上記の合成スキーム１８に示される手順及び化合物８０４ｂの合成について記載されるホスフィチル化プロセスと同様の手順を用いることによって、化合物８１３ａ及び８１３ｂを合成し、特性評価した。
２’－Ｏ－Ｃ６及び２’－Ｏ－Ｃ３グアノシンホスホラミダイトの合成
Figure 2023500681000070
 化合物８２２ａ及び８２２ｂの合成：上記の合成スキーム１９に示される手順及び化合物８０４ｂの合成について記載されるホスフィチル化プロセスと同様の手順を用いることによって、化合物８２２ａ及び８２２ｂを合成し、特性評価した。
２’－Ｏ－Ｃ６－アミド－Ｃ１６エステルコンジュゲートウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000071
 化合物１２２：加熱オーブン乾燥された１００ｍＬの丸底フラスコに、無水ＤＣＭ（１２０ｍＬ）中の化合物１０１、（４ｇ、６．１９ｍｍｏｌ、１．０当量）の溶液を加えた。１６－メトキシ－１６－オキソヘキサデカン酸、化合物１２１（２．０５ｇ、６．８１ｍｍｏｌ、１．１当量）を、溶液に加えた後、ＨＢＴＵ（２．５８ｇ、６．８１ｍｍｏｌ、１．１当量）及びＤＩＰＥＡ（３．２４ｍＬ、１８．５８ｍｍｏｌ、３当量）を加えた。得られた溶液を、一晩、アルゴン下で、室温で撹拌した。１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサンを用いたＴＬＣは、生成物の形成を示した。反応混合物を塩水溶液でクエンチし、ＤＣＭで抽出した。組み合わされた有機溶液を無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、油が得られるまで濃縮した。０～１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサンで溶離される、８０ｇのシリカゲルカラムを用いたＩＳＣＯカラムクロマトグラフィーによる精製により、化合物１２２が得られた。高粘度の油生成物が得られた（４．８１ｇ、８４％）。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．４１（ｓ，１Ｈ）、８．００（ｄ，Ｊ＝８．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．４１－７．３５（ｍ，２Ｈ）、７．３４－７．２０（ｍ，１０Ｈ）、６．８８－６．８１（ｍ，４Ｈ）、５．９４（ｄ，Ｊ＝１．９Ｈｚ、１Ｈ）、５．４８（ｔ，Ｊ＝５．６Ｈｚ、１Ｈ）、５．３２－５．２３（ｍ，１Ｈ）、４．４９－４．４１（ｍ，１Ｈ）、４．０３（ｄｔ，Ｊ＝７．６、２．４Ｈｚ、１Ｈ）、３．９３－３．８４（ｍ，２Ｈ）、３．８０（ｄ，Ｊ＝１．１Ｈｚ、６Ｈ）、３．６６（ｓ，４Ｈ）、３．５４（ｑｄ，Ｊ＝１１．１、２．４Ｈｚ、２Ｈ）、３．２４（ｔｄ，Ｊ＝７．２、５．９Ｈｚ、２Ｈ）、２．８０（ｓ，１０Ｈ）、２．７５（ｄ，Ｊ＝８．７Ｈｚ、１Ｈ）、２．３０（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．１８－２．１１（ｍ，２Ｈ）、１．４９（ｑ，Ｊ＝７．３Ｈｚ、２Ｈ）、１．２９－１．２３（ｍ，１７Ｈ）．
化合物１２３：化合物１２２（４．８１ｇ、５．１８ｍｍｏｌ、１当量）を、無水ＥｔＯＡｃ（１２０ｍＬ）に溶解させた。アルゴン下で、及び氷浴中で冷却し、ＤＩＰＥＡ（２．７１ｍｌ、１５．５５ｍｍｏｌ、３当量）、続いてＮ，Ｎ－ジイソプロピルアミノシアノエチルホスホンアミド酸－Ｃｌ（１．３５ｇ、５．７０ｍｍｏｌ、１．１当量）を加えた。反応混合物を室温で一晩撹拌した。１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサンにおけるＴＬＣは、反応の完了を示した。反応混合物を塩水でクエンチし、ＥｔＯＡｃで抽出した。有機層を分離し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、白色の油が得られるまで濃縮した。０～１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサンで溶離されるＩＳＣＯ精製により、７８．３％の収率（４．５８ｇ）で化合物１２３が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．４１（ｓ，１Ｈ）、７．９０（ｓ，１Ｈ）、７．７８（ｄｄ，Ｊ＝４２．９、８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．４８－７．４０（ｍ，２Ｈ）、７．３８－７．２１（ｍ，７Ｈ）、６．９２－６．８４（ｍ，４Ｈ）、６．３９－６．３２（ｍ，１Ｈ）、５．８６（ｄｄ，Ｊ＝９．１、３．６Ｈｚ、１Ｈ）、５．４５（ｓ，３Ｈ）、５．２４（ｔ，Ｊ＝７．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．１５（ｄｄｔ，Ｊ＝１７．６、６．１、２．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．０７－３．９８（ｍ，１Ｈ）、３．７７（ｄ，Ｊ＝３．１Ｈｚ、８Ｈ）、３．６６－３．５６（ｍ，７Ｈ）、３．４７－３．３４（ｍ，２Ｈ）、３．１３－３．０５（ｍ，２Ｈ）、２．７３（ｓ，８Ｈ）、２．７１－２．６２（ｍ，１Ｈ）、２．２６（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．０６（ｔｄ，Ｊ＝７．５、２．２Ｈｚ、２Ｈ）、１．５４（ｄｔｄ，Ｊ＝１３．４、６．３、３．４Ｈｚ、６Ｈ）、１．４７－１．３８（ｍ，２Ｈ）、１．３４（ｔ，Ｊ＝７．３Ｈｚ、２Ｈ）、１．２６（ｄ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、２２Ｈ）、１．０５（ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５１．５９、１５１．１１．
２’－Ｏ－Ｃ６－アミド－Ｃ１８エステルコンジュゲートウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000072
 化合物１２５：化合物１２２を合成するための上記の手順と同様の手順で化合物１０１及び１８－メトキシ－１８－オキソオクタデカン酸１２４を使用することによって、化合物１２５が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．５７（ｓ，１Ｈ）、８．００（ｄ，Ｊ＝８．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．４１－７．３５（ｍ，２Ｈ）、７．３３－７．２０（ｍ，９Ｈ）、６．８８－６．８１（ｍ，４Ｈ）、５．５１（ｔ，Ｊ＝５．８Ｈｚ、１Ｈ）、５．３１－５．２４（ｍ，１Ｈ）、４．４５（ｔｄ，Ｊ＝８．１、５．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．０３（ｄｔ，Ｊ＝７．６、２．４Ｈｚ、１Ｈ）、３．８８（ｔｄ，Ｊ＝６．６、６．０、４．５Ｈｚ、２Ｈ）、３．７９（ｄ，Ｊ＝１．１Ｈｚ、６Ｈ）、３．６６（ｓ，４Ｈ）、３．５４（ｑｄ，Ｊ＝１１．２、２．４Ｈｚ、２Ｈ）、３．２４（ｔｄ，Ｊ＝７．２、５．９Ｈｚ、２Ｈ）、２．８０（ｓ，１１Ｈ）、２．７６（ｄ，Ｊ＝８．７Ｈｚ、２Ｈ）、２．３０（ｔ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、２Ｈ）、２．１８－２．０７（ｍ，２Ｈ）、１．４８（ｑ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、２Ｈ）、１．２９－１．２３（ｍ，２１Ｈ）．
化合物１２６：化合物１２３を合成するための上記の手順と同様の手順でＮ，Ｎ－ジイソプロピルアミノシアノエチルホスホンアミド酸－Ｃｌと共に化合物１２５を使用することによって、化合物１２６が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．４４（ｓ，１Ｈ）、７．７８（ｄｄ，Ｊ＝４２．６、８．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．４８－７．４０（ｍ，２Ｈ）、７．３８－７．２１（ｍ，７Ｈ）、６．９２－６．８３（ｍ，４Ｈ）、６．３７（ｑ，Ｊ＝５．６Ｈｚ、１Ｈ）、５．８６（ｄｄ，Ｊ＝９．１、３．５Ｈｚ、１Ｈ）、５．２４（ｄｄ，Ｊ＝８．１、７．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．１５（ｄｄｔ，Ｊ＝１７．５、６．２、２．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．１０－３．９８（ｍ，２Ｈ）、３．８２－３．５４（ｍ，１５Ｈ）、３．４６－３．３４（ｍ，２Ｈ）、３．０９（ｔｄｄ、Ｊ＝７．０、５．８、３．３Ｈｚ、２Ｈ）、２．７１－２．６２（ｍ，１Ｈ）、２．５５－２．４９（ｍ，１Ｈ）、２．２６（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．０６（ｔｄ，Ｊ＝７．４、２．２Ｈｚ、２Ｈ）、１．６１－１．４９（ｍ，６Ｈ）、１．４１（ｄｔｄ，Ｊ＝１２．２、７．２、６．３、３．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．３７－１．２０（ｍ，３０Ｈ）、１．１７－１．１３（ｍ，７Ｈ）、１．０５（ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５１．３６．
２’－Ｏ－Ｃ６－アミド－Ｃ２０エステルコンジュゲートウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000073
 化合物１２８：化合物１２８を合成するための上記の手順と同様の手順で化合物１０１及び２０－メトキシ－２０－オキソイコサン酸１２７を使用することによって、化合物１２８が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．００（ｄ，Ｊ＝８．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．４１－７．３５（ｍ，２Ｈ）、７．３４－７．２１（ｍ，１０Ｈ）、６．８８－６．８１（ｍ，４Ｈ）、５．９４（ｄ，Ｊ＝１．８Ｈｚ、１Ｈ）、５．２７（ｄ，Ｊ＝８．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．４５（ｔｄ，Ｊ＝８．１、５．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．０３（ｄｔ，Ｊ＝７．６、２．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．９３－３．８５（ｍ，２Ｈ）、３．８０（ｄ，Ｊ＝１．０Ｈｚ、６Ｈ）、３．６６（ｓ，４Ｈ）、３．５９－３．４９（ｍ，２Ｈ）、３．２４（ｑ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、２Ｈ）、２．８０（ｓ，１１Ｈ）、２．７５（ｄ，Ｊ＝８．６Ｈｚ、１Ｈ）、２．３０（ｔ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、２Ｈ）、２．１８－２．１１（ｍ，２Ｈ）、１．４９（ｑ，Ｊ＝７．３Ｈｚ、２Ｈ）、１．２５（ｄ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、２５Ｈ）．
化合物１２９：化合物１２３を合成するための上記の手順と同様の手順でＮ，Ｎ－ジイソプロピルアミノシアノエチルホスホンアミド酸－Ｃｌと共に化合物１２８を使用することによって、化合物１２９が得られた。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．２７（ｓ，１Ｈ）、７．７６（ｄｄ，Ｊ＝３４．６、８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．４９－７．３９（ｍ，２Ｈ）、７．３８－７．２１（ｍ，７Ｈ）、６．９３－６．８３（ｍ，４Ｈ）、６．３３（ｄ，Ｊ＝５．９Ｈｚ、１Ｈ）、５．８６（ｄｄ，Ｊ＝７．４、３．６Ｈｚ、１Ｈ）、５．２３（ｄｄ，Ｊ＝８．１、６．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．１５（ｄｄｔ，Ｊ＝１３．６、６．１、２．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．０８－３．９７（ｍ，１Ｈ）、３．７７（ｄ，Ｊ＝２．３Ｈｚ、７Ｈ）、３．７１－３．５４（ｍ，７Ｈ）、３．４６－３．３３（ｍ，２Ｈ）、３．０９（ｑｄ，Ｊ＝７．１、２．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．１７（ｓ，６Ｈ）、２．０６（ｔｄ，Ｊ＝７．４、１．９Ｈｚ、２Ｈ）、１．６１－１．４７（ｍ，６Ｈ）、１．４７－１．３７（ｍ，３Ｈ）、１．２６（ｓ，３２Ｈ）、１．１８－１．１２（ｍ，７Ｈ）、１．０５（ｄ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５１．０８、１５０．６０（ｄ，Ｊ＝７．１Ｈｚ）．
２’，３’－Ｏ－ペンタデシルωカルボキシメチルエステルウリジンホスホラミダイトの合成
Figure 2023500681000074
 化合物１３１及び１３２：ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）（６０ｍＬ）中の化合物１３０（３．３ｇ、６．９５ｍｍｏｌ）の溶液に、１６－ブロモヘキサデカン酸メチル（５．００ｇ、１３．８９ｍｍｏｌ）及びテトラブチルアンモニウムヨージド（５．２４ｇ、１３．８９ｍｍｏｌ）を一度に加えた。得られた混合物を、１２時間にわたって１３０℃で加熱還流させた。得られた赤色の溶液のＤＭＦを、高真空下で除去して、粘着性の褐色の塊を得て、それを、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ＤＣＭ中０～１０％のＭｅＯＨ）によって精製して、化合物１３１及び１３２の混合物（１．４５ｇ、４１％の収率）を黄褐色の固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３２（ｄｄ，Ｊ＝５．１、２．３Ｈｚ、２Ｈ）、７．９３（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．８８（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、５．８３（ｄ，Ｊ＝５．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．７４（ｄ，Ｊ＝５．３Ｈｚ、１Ｈ）、５．６４（ｄｔ，Ｊ＝８．１、２．６Ｈｚ、２Ｈ）、５．３１（ｄ，Ｊ＝６．１Ｈｚ、１Ｈ）、５．１３（ｔｄ，Ｊ＝５．１、１．９Ｈｚ、２Ｈ）、５．０４（ｄ，Ｊ＝５．８Ｈｚ、１Ｈ）、４．１６（ｑ，Ｊ＝５．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．０８（ｑ，Ｊ＝５．０Ｈｚ、１Ｈ）、３．９９（ｔ，Ｊ＝６．４Ｈｚ、１Ｈ）、３．９１（ｑ，Ｊ＝３．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．８７－３．８０（ｍ，２Ｈ）、３．７５（ｔ，Ｊ＝４．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．６８－３．４９（ｍ，１０Ｈ）、３．４３（ｔｔ，Ｊ＝９．６、６．７Ｈｚ、２Ｈ）、３．２２－３．０６（ｍ，８Ｈ）、２．２８（ｄｄ，Ｊ＝８．３、６．６Ｈｚ、４Ｈ）、１．６６－１．４３（ｍ，１７Ｈ）、１．３１－１．１５（ｍ，５８Ｈ）、０．９３（ｔ，Ｊ＝７．３Ｈｚ、１１Ｈ）ｐｐｍ．１３Ｃ ＮＭＲ（１２６ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １７３．３０、１７２．８４、１６３．０５、１６３．００、１５０．６９、１５０．４９、１４０．５２、１４０．３４、１０１．７６、１０１．６５、８７．９９、８６．０６、８５．１２、８２．７７、８１．０４、７９．１６、７７．４４、７２．６１、６９．７４、６９．６０、６８．３３、６３．５４、６０．７５、６０．５０、５７．５５、５７．５３、５７．５０、５１．１１、３３．５６、３３．２４、２９．３３、２９．０５、２９．０２、２９．００、２８．９４、２８．９１、２８．８８、２８．８４、２８．７９、２８．６３、２８．５５、２８．４２、２８．３８、２８．０９、２５．５３、２５．３６、２４．５１、２４．４０、２３．０６、１９．２０、１９．１８、１３．４６ｐｐｍ．
化合物１３３及び１３４：乾燥ピリジン（３０ｍＬ）中の化合物１３１及び１３２（１．５ｇ、２．９２ｍｍｏｌ）の透明な溶液に、４，４’－ジメトキシトリチルクロリド（１．２５ｇ、３．５１ｍｍｏｌ）を３回に分けて加えた。反応混合物を２２℃で１２時間撹拌し、次に、飽和ＮａＨＣＯ３溶液（３０ｍＬ）でクエンチした。得られた混合物をＤＣＭ（２×４０ｍＬ）で抽出した。組み合わされた有機層を分離し、塩水（４０ｍＬ）で洗浄し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。粗化合物を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ヘキサン中１０～５０％の酢酸エチル）によって精製して、化合物１３３を白色の発泡体（０．３２ｇ、１３％）として及び化合物１３４を黄白色の発泡体（０．８１ｇ、３４％）として得た。化合物１３３についてのスペクトルデータ：１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３４（ｄ，Ｊ＝２．３Ｈｚ、１Ｈ）、７．７７（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．４６－７．１３（ｍ，９Ｈ）、６．８９（ｄｄ，Ｊ＝９．０、１．８Ｈｚ、４Ｈ）、５．７０（ｄ，Ｊ＝３．６Ｈｚ、１Ｈ）、５．４０（ｓ，１Ｈ）、５．３０（ｄｄ，Ｊ＝８．１、２．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．２４（ｔ，Ｊ＝４．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．０３－３．９４（ｍ，１Ｈ）、３．９２（ｄｄ，Ｊ＝６．５、４．９Ｈｚ、１Ｈ）、３．７４（ｓ，６Ｈ）、３．５７（ｓ，４Ｈ）、３．４３－３．３３（ｍ，１Ｈ）、３．２７（ｄｄｄ，Ｊ＝３１．４、１０．８、３．６Ｈｚ、２Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．６０－１．４１（ｍ，４Ｈ）、１．２２（ｄ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、２３Ｈ）ｐｐｍ．１３Ｃ ＮＭＲ（１２６ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １７３．６６、１６３．２５、１５８．３４、１５０．５２、１４４．７５、１４０．７３、１３５．４６、１３５．３５、１２９．９２、１２９．８９、１２９．０９、１２８．０８、１２７．８５、１２７．７９、１２７．６２、１２７．０２、１１３．４０、１１２．９６、１０１．５４、８９．６２、８６．１５、８０．５８、７６．８５、７２．０８、６９．８６、６２．４９、５５．２２、５１．３５、３３．４５、２９．３２、２９．１５、２９．１３、２９．１０、２９．００、２８．８１、２８．６０、２５．６３、２４．５９ｐｐｍ．化合物１３４についてのスペクトルデータ：１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３６（ｄ，Ｊ＝２．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．７２（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．４７－７．１４（ｍ，９Ｈ）、６．９０（ｄ，Ｊ＝８．９Ｈｚ、４Ｈ）、５．８０（ｄ，Ｊ＝３．９Ｈｚ、１Ｈ）、５．２９（ｄｄ，Ｊ＝８．０、２．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．１０（ｓ，１Ｈ）、４．１７（ｔ，Ｊ＝５．７Ｈｚ、１Ｈ）、３．９６（ｄｄｄ，Ｊ＝６．４、４．４、２．８Ｈｚ、１Ｈ）、３．９０（ｄｄ，Ｊ＝５．２、４．０Ｈｚ、１Ｈ）、３．７４（ｓ，６Ｈ）、３．５７（ｓ，４Ｈ）、３．５５－３．５０（ｍ，１Ｈ）、３．３４－３．２８（ｍ，２Ｈ）、３．２３（ｄｄ，Ｊ＝１０．７、２．８Ｈｚ、１Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．５０（ｔｄ，Ｊ＝７．５、７．０、３．３Ｈｚ、４Ｈ）、１．２２（ｓ，２４Ｈ）ｐｐｍ．１３Ｃ ＮＭＲ（１２６ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １７３．３２、１６２．９２、１５８．１３、１５０．２７、１４４．６０、１４０．１５、１３５．３３、１３５．０５、１２９．７５、１２７．８８、１２７．６９、１２６．７８、１１３．２５、１１３．２３、１０１．４８、８６．９７、８５．９０、８２．７２、８０．８０、６９．７７、６８．４９、６２．６９、５５．０３、５１．１１、３３．２４、２９．０２、２９．００、２８．９４、２８．８４、２８．７９、２８．６３、２８．４２、２５．３７、２４．４０ｐｐｍ．
化合物１３５：２２℃で乾燥ジクロロメタン（３０ｍＬ）中の化合物１３３（１．０ｇ、１．２３ｍｍｏｌ）の透明な溶液に、ジイソプロピルエチルアミン（８００．８９ｍｇ、６．１３ｍｍｏｌ、１．０８ｍＬ）及びＮ－メチルイミダゾール（１５２．６３ｍｇ、１．８４ｍｍｏｌ、１４８．１９μＬ）をゆっくりと加えた。得られた溶液を５分間撹拌し、その後、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（６１１．３８ｍｇ、２．４５ｍｍｏｌ、５７６．７７μＬ）を一度に加えた。反応混合物を、２２℃で撹拌しながら１時間にわたって保持し、ＴＬＣを確認した。反応混合物を、ジクロロメタン（５０ｍＬ）で希釈し、１０％の炭酸水素ナトリウム溶液（２×５０ｍＬ）で洗浄した。有機層を分離し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。得られた粗生成物の塊を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ヘキサン中２０～５０％の酢酸エチル）によって精製して、化合物１３５（１．０１ｇ、８１％の収率）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ８．９２（ｓ，１Ｈ）、７．７５（ｄｄ，Ｊ＝１２．７、８．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．４３（ｄｔ，Ｊ＝８．３、１．２Ｈｚ、２Ｈ）、７．３５－７．２５（ｍ，７Ｈ）、６．９８－６．７４（ｍ，４Ｈ）、６．１６－５．６６（ｍ，１Ｈ）、５．３０（ｄｄ，Ｊ＝１８．４、８．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．６１－４．３５（ｍ，１Ｈ）、４．０６（ｄｄｔ，Ｊ＝１５．５、６．４、３．６Ｈｚ、２Ｈ）、３．８９－３．７２（ｍ，８Ｈ）、３．６０（ｓ，６Ｈ）、３．４８－３．２７（ｍ，３Ｈ）、２．７３－２．５７（ｍ，２Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．５４（ｑ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、４Ｈ）、１．２６（ｑ，Ｊ＝３．７、２．５Ｈｚ、１９Ｈ）、１．１６（ｄｄ，Ｊ＝１０．７、６．８Ｈｚ、１２Ｈ）ｐｐｍ．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １５０．９１、１５０．１８ｐｐｍ．
化合物１３６：２２℃で乾燥ジクロロメタン（４０ｍＬ）中の１３５（０．９５ｇ、１．１７ｍｍｏｌ）の透明な溶液に、ジイソプロピルエチルアミン（７６０．８５ｍｇ、５．８３ｍｍｏｌ、１．０３ｍＬ）及びＮ－メチルイミダゾール（１９３．３３ｍｇ、２．３３ｍｍｏｌ、１８７．７０μＬ）をゆっくりと加えた。得られた溶液を５分間撹拌し、その後、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（５８０．８１ｍｇ、２．３３ｍｍｏｌ、５４７．９３μＬ）を一度に加えた。反応混合物を、２２℃で撹拌しながら１時間にわたって保持し、ＴＬＣを確認した。反応混合物を、ジクロロメタン（５０ｍＬ）で希釈し、１０％の炭酸水素ナトリウム溶液（２×５０ｍＬ）で洗浄した。有機層を分離し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。得られた粗生成物の塊を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ヘキサン中２０～５０％の酢酸エチル）によって精製して、１３６（０．９７ｇ、８２％の収率）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ ８．９１（ｓ，１Ｈ）、７．７６（ｄｄ，Ｊ＝３４．７、８．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．４４（ｄｄｔ，Ｊ＝９．９、８．１、１．３Ｈｚ、２Ｈ）、７．３８－７．２０（ｍ，７Ｈ）、６．９５－６．７８（ｍ，４Ｈ）、５．８５（ｄｄ，Ｊ＝６．０、３．５Ｈｚ、１Ｈ）、５．２２（ｄｄ，Ｊ＝８．１、５．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．６８－４．３１（ｍ，１Ｈ）、４．２１－４．０９（ｍ，１Ｈ）、４．０３（ｄｄｄ，Ｊ＝１１．５、４．９、３．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．７７（ｄ，Ｊ＝２．４Ｈｚ、７Ｈ）、３．６９－３．５４（ｍ，７Ｈ）、３．４５－３．３０（ｍ，２Ｈ）、２．６６（ｄｄｄ，Ｊ＝６．５、５．４、３．７Ｈｚ、１Ｈ）、２．５２（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．５４（ｄ，Ｊ＝１０．２Ｈｚ、４Ｈ）、１．２７（ｄ，Ｊ＝５．４Ｈｚ、２１Ｈ）、１．１６（ｄｄ，Ｊ＝８．９、６．８Ｈｚ、９Ｈ）、１．０５（ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、２Ｈ）ｐｐｍ．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １４９．９６、１４９．５８ｐｐｍ．
２’，３’－Ｏ－ペンタデシルωカルボキシメチルエステルアデノシンホスホラミダイトの合成
Figure 2023500681000075
 化合物２０２及び２０３：乾燥ジメチルホルムアミド（５０ｍＬ）中の化合物２０１（５．０ｇ、１８．７１ｍｍｏｌ）の懸濁液に、水素化ナトリウム（鉱油中６０％の分散体）（７４８．３２ｍｇ、１８．７１ｍｍｏｌ）を０℃で加え、３０分間撹拌した。氷浴を除去し、反応混合物を４５℃に温め、５時間撹拌し、その後、溶媒を、高真空ポンプ中で蒸発させ、固体塊を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ＤＣＭ中０～１０％のＭｅＯＨ）によって精製して、化合物２０２及び２０３の混合物（４．２ｇ、４２％の収率）を白色の固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ８．３７（ｓ，１Ｈ）、８．３５（ｓ，０．２Ｈ）、８．１３（ｓ，１Ｈ）、７．３３（ｓ，３Ｈ）、５．９８（ｄ，Ｊ＝６．４Ｈｚ、０．８Ｈ）、５．８８（ｄ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、０．２Ｈ）、５．５１－５．４０（ｍ，１Ｈ）、５．３８（ｄ，Ｊ＝６．４Ｈｚ、０．２Ｈ）、５．１４（ｄ，Ｊ＝５．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．４７（ｄｄ，Ｊ＝６．４、４．８Ｈｚ、１Ｈ）、４．２９（ｔｄ，Ｊ＝４．９、２．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．０６－３．８６（ｍ，１Ｈ）、３．６７（ｔｔ，Ｊ＝１５．５、５．０Ｈｚ、２Ｈ）、３．５７（ｓ，５Ｈ）、３．３３（ｄｔ，Ｊ＝９．５、６．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．５７－１．００（ｍ，２７Ｈ）ｐｐｍ．１３Ｃ ＮＭＲ（１２６ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １７３．３０、１５６．１６、１５６．１４、１５２．３８、１４８．９６、１３９．７３、１１９．３４、８６．４８、８６．１１、８０．７６、６９．６２、６９．０２、６１．５３、５１．１１、３３．２５、２９．０７、２９．０５、２９．０２、２８．９９、２８．９７、２８．９４、２８．８６、２８．７２、２８．６６、２８．４４、２５．２５、２４．４２ｐｐｍ．
化合物２０４及び２０５：乾燥ピリジン（２５ｍＬ）中の化合物２及び３の混合物（３．６ｇ、６．７２ｍｍｏｌ）の透明な溶液に、４，４’－ジメトキシトリチルクロリド（２．８８ｇ、８．０６ｍｍｏｌ）を３回に分けて加えた。反応混合物を２２℃で２４時間撹拌し、次に、飽和ＮａＨＣＯ３溶液（３０ｍＬ）でクエンチした。得られた混合物をＤＣＭ（２×４０ｍＬ）で抽出した。組み合わされた有機層を分離し、塩水（４０ｍＬ）で洗浄し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。粗化合物を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ヘキサン中１０～９０％の酢酸エチル）によって精製して、化合物２０４（０．３６ｇ、６％）及び２０５（３．８ｇ、６７％）を白色の発泡体として得た。化合物２０４についてのスペクトルデータ：１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ８．２７（ｓ，１Ｈ）、８．１０（ｓ，１Ｈ）、７．４２－７．０６（ｍ，１０Ｈ）、６．８２（ｄｄ，Ｊ＝９．１、２．７Ｈｚ、４Ｈ）、５．９０（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ、１Ｈ）、５．４６（ｄ，Ｊ＝５．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．８６（ｑ，Ｊ＝５．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．１８（ｔ，Ｊ＝５．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．０７（ｑ，Ｊ＝４．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．７２（ｓ，６Ｈ）、３．６２（ｄｔ，Ｊ＝９．５、６．４Ｈｚ、１Ｈ）、３．４３（ｄｔ，Ｊ＝９．５、６．７Ｈｚ、１Ｈ）、３．３２（ｓ，５Ｈ）、３．１７（ｄｄ，Ｊ＝１０．５、４．８Ｈｚ、１Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．５０（ｔｄ，Ｊ＝７．７、７．３、４．１Ｈｚ、４Ｈ）、１．２２（ｓ，２４Ｈ）ｐｐｍ．１３Ｃ ＮＭＲ（１２６ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １７３．３２、１５８．０２、１５６．０４、１５２．５４、１４９．２３、１４４．７７、１３９．５７、１３５．５０、１３５．４８、１２９．６２、１２９．５９、１２７．７２、１２７．６３、１２６．６０、１１９．１６、１１３．０７、８８．２１、８５．４８、８０．８４、７７．６３、７１．６９、６９．６６、６３．０７、５４．９７、５１．１１、３３．２４、２９．１９、２９．００、２８．９９、２８．９３、２８．８３、２８．６３、２８．４２、２５．４７、２４．４０ｐｐｍ．化合物２０５についてのスペクトルデータ：１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ８．２５（ｓ，１Ｈ）、８．０８（ｓ，１Ｈ）、７．４８－７．０４（ｍ，１０Ｈ）、６．８３（ｄｄ，Ｊ＝８．８、６．０Ｈｚ、４Ｈ）、６．００（ｄ，Ｊ＝５．１Ｈｚ、１Ｈ）、５．１６（ｄ，Ｊ＝５．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．５８（ｔ，Ｊ＝５．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．３７（ｑ，Ｊ＝５．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．０６（ｑ，Ｊ＝４．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．７２（ｓ，６Ｈ）、３．５７（ｓ，４Ｈ）、３．４７－３．４０（ｍ，１Ｈ）、３．２４（ｄ，Ｊ＝４．７Ｈｚ、２Ｈ）、２．２６（ｄ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．４６（ｄｔ，Ｊ＝３１．８、７．０Ｈｚ、４Ｈ）、１．２７－１．０８（ｍ，２３Ｈ）ｐｐｍ．１３Ｃ ＮＭＲ（１２６ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １７３．３２、１５８．０３、１５８．０１、１５６．０６、１５２．５７、１４９．２２、１４４．８１、１３９．５４、１３５．５４、１３５．４３、１２９．６８、１２７．７２、１２７．６７、１２６．６０、１１９．１９、１１３．０８、８５．８９、８５．５０、８３．５６、８０．０４、６９．７９、６９．１１、６３．５５、５４．９８、５１．１１、３３．２４、２９．００、２８．９８、２８．９４、２８．８４、２８．７１、２８．６３、２８．４２、２５．３０、２４．４０ｐｐｍ．
化合物２０６：ジメチルホルムアミド（３０ｍＬ）中の化合物２０４（１．２７ｇ、１．５２ｍｍｏｌ）の透明な溶液に、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミドジメチルアセタール（２８８．１６ｍｇ、２．２７ｍｍｏｌ、３２３．７７μＬ）を一度に加え、反応混合物を６０℃で４時間撹拌した。ＴＬＣを確認し、揮発性物質を、高真空ポンプ下で除去した。残渣をＤＣＭ（１００ｍＬ）に溶解させ、有機層を塩水（３×５０ｍＬ）で洗浄した。次に、ＤＣＭ層を、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。このように得られた粗生成物の塊を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ＤＣＭ中０～５％のＭｅＯＨ）によって精製して、２０６（０．８７ｇ、６４％の収率）を白色の吸湿性固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ ８．９５（ｓ，１Ｈ）、８．５０（ｓ，１Ｈ）、８．０９（ｓ，１Ｈ）、７．４７－７．３６（ｍ，２Ｈ）、７．３１－７．１５（ｍ，８Ｈ）、６．８３－６．７４（ｍ，４Ｈ）、６．０２（ｄ，Ｊ＝５．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．８２（ｄ，Ｊ＝５．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．２７（ｑ，Ｊ＝４．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．１９（ｄｄ，Ｊ＝５．５、３．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．７８（ｄ，Ｊ＝０．８Ｈｚ、６Ｈ）、３．６９（ｄ，Ｊ＝６．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．６６（ｓ，３Ｈ）、３．５６（ｔｄｄ、Ｊ＝９．３、６．７、２．６Ｈｚ、２Ｈ）、３．４６（ｄｄ，Ｊ＝１０．４、４．４Ｈｚ、１Ｈ）、３．３１（ｄｄ，Ｊ＝１０．５、３．９Ｈｚ、１Ｈ）、３．２６（ｓ，３Ｈ）、３．２０（ｓ，３Ｈ）、２．３０（ｔ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、２Ｈ）、１．６０（ｐ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、５Ｈ）、１．２７（ｄ，Ｊ＝８．３Ｈｚ、２５Ｈ）ｐｐｍ．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ １７４．４９、１５９．８７、１５８．６６、１５８．３３、１５２．７６、１５１．６２、１４４．６２、１４０．３０、１３５．８２、１３５．７９、１３０．１３、１３０．１０、１２８．２２、１２８．０２、１２７．０３、１２６．６０、１１３．３１、８９．２７、８６．６６、８２．３９、７８．６８、７４．０７、７１．１４、６３．４２、５５．３５、５１．５８、４１．４２、３５．３０、３４．２６、２９．８８、２９．８０、２９．７７、２９．７４、２９．７２、２９．６０、２９．４０、２９．２９、２６．２２、２５．１０ｐｐｍ．
化合物２０７：ジメチルホルムアミド（３０ｍＬ）中の２０５（２．０ｇ、２．３９ｍｍｏｌ）の透明な溶液に、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミドジメチルアセタール（４５３．７９ｍｇ、３．５８ｍｍｏｌ、５０５．９０μＬ）を一度に加え、反応混合物を６０℃で４時間撹拌した。ＴＬＣを確認し、揮発性材料を、高真空ポンプ下で除去した。残渣をＤＣＭ（１００ｍＬ）に溶解させ、有機層を塩水（３×５０ｍＬ）で洗浄した。次に、ＤＣＭ層を無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。このように得られた粗生成物の塊を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ＤＣＭ中０～５％のＭｅＯＨ）によって精製して、化合物２０７（１．８５ｇ、８７％の収率）を白色の吸湿性固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ ８．９５（ｓ，１Ｈ）、８．４９（ｓ，１Ｈ）、８．１０（ｓ，１Ｈ）、７．４７－７．４１（ｍ，２Ｈ）、７．３６－７．３０（ｍ，４Ｈ）、７．２８－７．１７（ｍ，３Ｈ）、６．８９－６．６７（ｍ，４Ｈ）、６．１７（ｄ，Ｊ＝４．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．５２（ｄｄ，Ｊ＝５．３、４．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．４５（ｑ，Ｊ＝５．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．２１（ｔｄ，Ｊ＝４．６、３．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．７８（ｄ，Ｊ＝１．０Ｈｚ、６Ｈ）、３．７４－３．６７（ｍ，１Ｈ）、３．６６（ｓ，３Ｈ）、３．６０－３．５４（ｍ，１Ｈ）、３．５１（ｄｄ，Ｊ＝１０．６、３．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．４１（ｄｄ，Ｊ＝１０．６、４．４Ｈｚ、１Ｈ）、３．２６（ｓ，３Ｈ）、３．２０（ｓ，３Ｈ）、２．７３（ｄ，Ｊ＝５．９Ｈｚ、１Ｈ）、２．３０（ｔ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、２Ｈ）、１．６７－１．５２（ｍ，４Ｈ）、１．３７－１．０４（ｍ，２５Ｈ）ｐｐｍ．１３Ｃ ＮＭＲ（１２６ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ １７４．４７、１５９．７３、１５８．６６、１５８．２４、１５２．８９、１５１．４６、１４４．７０、１４０．２０、１３５．９３、１３５．８３、１３０．２３、１３０．２０、１２８．３２、１２８．００、１２７．０１、１２６．６０、１１３．３２、８６．８９、８６．６９、８４．０４、８１．７５、７１．６０、７０．２３、６３．３９、５５．３４、５１．５６、４１．４０、３５．３０、３４．２５、２９．７７、２９．７４、２９．７２、２９．６５、２９．５８、２９．４８、２９．３９、２９．２８、２６．０４、２５．０９ｐｐｍ．
化合物２０８：２２℃で乾燥ジクロロメタン（２０ｍＬ）中の化合物２０６（０．６８ｇ、７６１．３８μｍｏｌ）の透明な溶液に、ジイソプロピルエチルアミン（４９６．９７ｍｇ、３．８１ｍｍｏｌ、６６９．７７μＬ）及びＮ－メチルイミダゾール（９４．７１ｍｇ、１．１４ｍｍｏｌ、９１．９５μＬ）をゆっくりと加えた。得られた溶液を５分間撹拌し、その後、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（３７９．３７ｍｇ、１．５２ｍｍｏｌ、３５７．９０μＬ）を一度に加えた。反応混合物を、２２℃で撹拌しながら１時間にわたって保持し、ＴＬＣを確認した。反応混合物を、ジクロロメタン（５０ｍＬ）で希釈し、１０％の炭酸水素ナトリウム溶液（２×５０ｍＬ）で洗浄した。有機層を分離し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。得られた粗生成物の塊を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ヘキサン中４０～７０％の酢酸エチル）によって精製して、化合物２０８（０．６１ｇ、７３％の収率）を白色の吸湿性固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ ８．８９（ｄ，Ｊ＝２．３Ｈｚ、１Ｈ）、８．３４（ｄ，Ｊ＝１０．８Ｈｚ、１Ｈ）、８．０８（ｄ，Ｊ＝１１．５Ｈｚ、１Ｈ）、７．４６－７．３８（ｍ，２Ｈ）、７．３４－７．１５（ｍ，７Ｈ）、６．８８－６．７３（ｍ，４Ｈ）、６．０４（ｄｄ，Ｊ＝５．２、３．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．９５－４．６０（ｍ，２Ｈ）、４．２８（ｄｑ、Ｊ＝２１．０、４．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．１４－３．８４（ｍ，１Ｈ）、３．７７－３．７０（ｍ，７Ｈ）、３．６７－３．５８（ｍ，５Ｈ）、３．３０（ｄｄ，Ｊ＝１５．２、４．７Ｈｚ、１Ｈ）、３．１９－３．１０（ｍ，７Ｈ）、２．５０（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．５１（ｄｔ，Ｊ＝４５．３、７．０Ｈｚ、４Ｈ）、１．３２－１．０７（ｍ，４０Ｈ）ｐｐｍ．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １５１．０７、１５０．６４ｐｐｍ．
化合物２０９：２２℃で乾燥ジクロロメタン（３５ｍＬ）中の化合物２０７（０．２ｇ、２２３．９３μｍｏｌ）の透明な溶液に、ジイソプロピルエチルアミン（１４６．１７ｍｇ、１．１２ｍｍｏｌ、１９６．９９μＬ）及びＮ－メチルイミダゾール（２７．８６ｍｇ、３３５．９０μｍｏｌ、２７．０４μＬ）をゆっくりと加えた。得られた溶液を５分間撹拌し、その後、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（１１１．５８ｍｇ、４４７．８７μｍｏｌ、１０５．２６μＬ）を一度に加えた。反応混合物を、２２℃で撹拌しながら１時間にわたって保持し、ＴＬＣを確認した。反応混合物を、ジクロロメタン（５０ｍＬ）で希釈し、１０％の炭酸水素ナトリウム溶液（２×５０ｍＬ）で洗浄した。有機層を分離し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。得られた粗生成物の塊を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ヘキサン中２０～５０％の酢酸エチル）によって精製して、化合物２０９（０．１７３ｇ、７１％の収率）を吸湿性固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ ８．８９（ｄ，Ｊ＝１．８Ｈｚ、１Ｈ）、８．３４（ｄ，Ｊ＝９．０Ｈｚ、１Ｈ）、８．０８（ｄ，Ｊ＝９．６Ｈｚ、１Ｈ）、７．５０－７．３７（ｍ，２Ｈ）、７．３５－７．１４（ｍ，６Ｈ）、６．８１（ｄｄｄ，Ｊ＝９．１、６．０、３．２Ｈｚ、４Ｈ）、６．０３（ｄｄ，Ｊ＝５．２、３．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．７９（ｄｔ，Ｊ＝１５．９、５．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．６８（ｔｔ，Ｊ＝９．４、４．６Ｈｚ、１Ｈ）、４．３４－４．２０（ｍ，１Ｈ）、３．９５－３．７８（ｍ，１Ｈ）、３．７６－３．７３（ｍ，５Ｈ）、３．５９（ｓ，６Ｈ）、３．５１－３．３７（ｍ，２Ｈ）、３．２９（ｄｄｄ，Ｊ＝１２．６、１０．７、４．７Ｈｚ、１Ｈ）、３．１６（ｄ，Ｊ＝８．３Ｈｚ、５Ｈ）、２．７１－２．６２（ｍ，１Ｈ）、２．５０（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．５０（ｄｔ，Ｊ＝３６．２、７．１Ｈｚ、４Ｈ）、１．３５－１．０４（ｍ，３１Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １４９．８６、１４９．４２ｐｐｍ．
２’，３’－Ｏ－ペンタデシルωカルボキシメチルエステルグアノシンホスホラミダイトの合成
Figure 2023500681000076
 化合物２１９及び２２０：乾燥ジメチルホルムアミド中の化合物２１８の懸濁液に、水素化ナトリウム（鉱油中６０％の分散体）を０℃で加え、３０分間撹拌する。氷浴を除去し、反応混合物を４５℃に温め、５時間撹拌し、その後、溶媒を、高真空ポンプ中で蒸発させ、固体塊を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、化合物２１９及び２２０の混合物を得る。
化合物２２１及び２２２：化合物２１９及び２２０を、Ｒｏｂｉｎｓ ｅｔ．ａｌ．（Ｃａｎ．Ｊ．Ｃｈｅｍ．１９９７，７５，７６２－７６７）に記載されるように、アデノシンデアミナーゼ（ＡＤＡ）を用いてそれぞれ化合物２２１及び２２２に転化する。
化合物２２３及び２２４：乾燥ピリジン中の化合物２２１及び２２２の混合物の透明な溶液に、４，４’－ジメトキシトリチルクロリドを３回に分けて加える。反応混合物を２２℃で２４時間撹拌し、次に、飽和ＮａＨＣＯ３溶液でクエンチする。得られた混合物をＤＣＭで抽出する。組み合わされた有機層を分離し、塩水で洗浄し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させる。粗化合物を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、化合物２２３及び２２４を得る。
化合物２２５：ジメチルホルムアミド中の化合物２２３の透明な溶液に、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミドジメチルアセタールを一度に加え、反応混合物を６０℃で４時間撹拌する。ＴＬＣを確認し、揮発性材料を、高真空ポンプ下で除去する。残渣をＤＣＭ（１００ｍＬ）に溶解させ、有機層を塩水で洗浄する。次に、ＤＣＭ層を無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させる。このように得られた粗生成物の塊を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、化合物２２５を得る。
化合物２２６：ジメチルホルムアミド中の化合物２２４の透明な溶液に、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミドジメチルアセタールを一度に加え、反応混合物を６０℃で４時間撹拌する。ＴＬＣを確認し、揮発性材料を、高真空ポンプ下で除去する。残渣をＤＣＭに溶解させ、有機層を塩水で洗浄する。次に、ＤＣＭ層を無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させる。このように得られた粗生成物の塊を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、化合物２２６を得る。
化合物２２７：２２℃で乾燥ジクロロメタン中の化合物２２５の透明な溶液に、ジイソプロピルエチルアミン及びＮ－メチルイミダゾールをゆっくりと加える。得られた溶液を５分間撹拌し、その後、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイトを一度に加える。反応混合物を、２２℃で撹拌しながら１時間にわたって保持し、ＴＬＣを確認する。反応混合物を、１０％の炭酸水素ナトリウム溶液を加えながらジクロロメタンで希釈する。有機層を分離し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させる。得られた粗生成物の塊を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、化合物２２７を得る。
化合物２２８：２２℃で乾燥ジクロロメタン中の化合物２２６の透明な溶液に、ジイソプロピルエチルアミン及びＮ－メチルイミダゾールをゆっくりと加える。得られた溶液を５分間撹拌し、その後、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイトを一度に加える。反応混合物を、２２℃で撹拌しながら１時間にわたって保持し、ＴＬＣを確認する。反応混合物を、１０％の炭酸水素ナトリウム溶液を加えながらジクロロメタンで希釈する。有機層を分離し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させる。得られた粗生成物の塊を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィーによって精製して、化合物２２８を得る。
２’，３’－Ｏ－ペンタデシルωカルボキシメチルエステルシチジンホスホラミダイトの合成
Figure 2023500681000077
 化合物２１０：ジメチルホルムアミド（１５ｍＬ）中の化合物１３４（１．２ｇ、１．４７ｍｍｏｌ）の透明な溶液に、イミダゾール（２０２．５１ｍｇ、２．９４ｍｍｏｌ）を加え、５分間撹拌した。得られた溶液に、ｔｅｒｔ－ブチルジメチルシリルクロリド（３４３．１７ｍｇ、２．２１ｍｍｏｌ）を一度に加え、２２℃で１２時間撹拌した。次に、反応混合物を、酢酸エチル（５０ｍＬ）及び塩水（５０ｍＬ）で希釈した。有機層を分離し、塩水（２×５０ｍＬ）及び水（５０ｍＬ）でさらに洗浄した。次に、有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。このように得られた粗化合物を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ヘキサン中０～５０％の酢酸エチル）によって精製して、化合物２１０（１．１２ｇ、８２％の収率）を白色の発泡体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ ８．３８（ｓ，１Ｈ）、８．１４（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．４２－７．１５（ｍ，１０Ｈ）、６．８４（ｄｄ，Ｊ＝８．９、３．８Ｈｚ、３Ｈ）、５．９２（ｄ，Ｊ＝１．６Ｈｚ、１Ｈ）、５．２４（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．３５（ｄｄ，Ｊ＝７．９、４．８Ｈｚ、１Ｈ）、４．１１（ｄ，Ｊ＝７．９Ｈｚ、１Ｈ）、３．８０（ｄ，Ｊ＝１．２Ｈｚ、７Ｈ）、３．７２（ｄｄ，Ｊ＝４．９、１．７Ｈｚ、１Ｈ）、３．６６（ｓ，４Ｈ）、３．５２（ｄｔ，Ｊ＝９．２、６．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．３６（ｄｄ，Ｊ＝１１．１、２．３Ｈｚ、１Ｈ）、２．３０（ｔ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、２Ｈ）、１．６９－１．５０（ｍ，８Ｈ）、１．３７－１．２２（ｍ，２４Ｈ）、０．８１（ｓ，９Ｈ）、０．０５（ｓ，３Ｈ）、－０．０４（ｓ，３Ｈ）ｐｐｍ．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ １７４．５１、１６３．１０、１５８．９０、１４９．９７、１４４．２２、１４０．４１、１３５．２６、１３５．１０、１３０．４０、１２８．４７、１２８．０９、１２７．３８、１１３．３８、１１３．３４、１０２．０４、８８．３５、８７．１６、８２．８９、８２．７９、７１．０１、６９．５１、６０．９０、５５．４１、５１．５９、３４．２８、３０．００、２９．８１、２９．７９、２９．７６、２９．７４、２９．６４、２９．６０、２９．４１、２９．３０、２６．２７、２５．７６、２５．１１、１８．１９、－４．３７、－４．８７ｐｐｍ．
化合物２１１：アセトニトリル（３０ｍＬ）中の化合物２１０（１．２ｇ、１．２９ｍｍｏｌ）の透明な溶液に、１，２，４－トリアゾール（２．００ｇ、２８．４１ｍｍｏｌ）及びトリエチルアミン（２．８９ｇ、２８．４１ｍｍｏｌ、３．９８ｍＬ）を加えた。反応混合物を０℃に冷却し、次に、オキシ塩化リン（Ｖ）（５９４．０２ｍｇ、３．８７ｍｍｏｌ、３６２．２１μＬ）をゆっくりと加えた。氷浴を１５分後に除去し、撹拌を、２２℃で８時間続けた。揮発性材料を高真空下で除去し、残渣を、ＤＣＭ（５０ｍＬ）で希釈し、有機層を、水（３０ｍＬ）及び塩水（５０ｍＬ）で洗浄した。ＤＣＭ層を分離し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。粗化合物を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ヘキサン中２０～６０％の酢酸エチル）によって精製して、化合物２１１（０．９９ｇ、７８％の収率）を白色の固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ９．４４（ｓ，１Ｈ）、８．７８（ｄ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、１Ｈ）、８．３９（ｓ，１Ｈ）、７．４０－７．１２（ｍ，２３Ｈ）、７．０６（ｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ、５Ｈ）、６．４７（ｄ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、１Ｈ）、６．１９（ｓ，２Ｈ）、５．８５（ｓ，１Ｈ）、４．３９（ｄｄ，Ｊ＝９．１、４．７Ｈｚ、１Ｈ）、４．０８（ｄ，Ｊ＝９．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．９４（ｄ，Ｊ＝４．８Ｈｚ、１Ｈ）、３．８４（ｓ，０Ｈ）、３．７５（ｄ，Ｊ＝６．１Ｈｚ、７Ｈ）、３．５５（ｓ，５Ｈ）、３．３１－３．２８（ｍ，１Ｈ）、２．２５（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．５０（ｄｔ，Ｊ＝２４．９、６．９Ｈｚ、４Ｈ）、１．２１（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、２６Ｈ）、０．７２（ｓ，１０Ｈ）、０．０１（ｓ，３Ｈ）、－０．１０（ｓ，３Ｈ）ｐｐｍ．
化合物２１２：２２℃でＴＨＦ（２０ｍＬ）中の化合物２１１（０．９９ｇ、１．０１ｍｍｏｌ）の溶液に、ＴＨＦ中１Ｍのフッ化テトラブチルアンモニウム（３４６．７２ｍｇ、１．３１ｍｍｏｌ、３８３．９７μＬ）を、一度にゆっくりと加え、次に、３時間撹拌した。揮発性材料を、高真空ポンプ中で除去し、このように得られた粗残渣を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ＤＣＭ中０～５％のメタノール）によって精製して、化合物２１２（０．６９ｇ、７９％の収率）を白色の固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ ９．２４（ｓ，１Ｈ）、８．８６（ｄ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、１Ｈ）、８．１０（ｓ，１Ｈ）、７．４４－７．２７（ｍ，９Ｈ）、６．８７（ｄｄ，Ｊ＝９．０、０．９Ｈｚ、４Ｈ）、６．５６（ｄ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、１Ｈ）、６．０１（ｓ，１Ｈ）、４．４９（ｄｄｄ，Ｊ＝１０．７、９．２、５．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．２４－４．０４（ｍ，２Ｈ）、３．９４（ｄ，Ｊ＝５．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．８２（ｄ，Ｊ＝０．８Ｈｚ、６Ｈ）、３．７８－３．７３（ｍ，１Ｈ）、３．６６（ｓ，３Ｈ）、３．６３（ｔ，Ｊ＝２．６Ｈｚ、２Ｈ）、２．６１（ｄ，Ｊ＝１０．７Ｈｚ、１Ｈ）、２．３０（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．７９－１．６１（ｍ，４Ｈ）、１．４２－１．０８（ｍ，２４Ｈ）ｐｐｍ．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ １７４．５１、１５９．４９、１５８．９１、１５４．４１、１５４．０８、１４７．４４、１４４．１７、１４３．３４、１３５．６２、１３５．２５、１３０．３４、１３０．２８、１２８．４３、１２８．２３、１２７．４０、１１３．５１、９４．８２、８９．３８、８７．３６、８３．６９、８２．２０、７１．４４、６７．６２、６０．６６、５３．５７、５１．５９、３４．２７、２９．７９、２９．７４、２９．６０、２９．４０、２９．３０、２６．１８、２５．１１ｐｐｍ．
化合物２１３：２２℃で乾燥ＤＣＭ（１０ｍＬ）中の化合物２１２（０．２３ｇ、２６５．５７μｍｏｌ）の透明な溶液に、ジイソプロピルエチルアミン（１７３．３５ｍｇ、１．３３ｍｍｏｌ、２３３．６２μＬ）及びＮ－メチルイミダゾール（３３．０４ｍｇ、３９８．３６μｍｏｌ、３２．０７μＬ）をゆっくりと加えた。得られた溶液を５分間撹拌し、その後、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（１３２．３３ｍｇ、５３１．１５μｍｏｌ、１２４．８４μＬ）を一度に加えた。反応混合物を、２２℃で撹拌しながら１時間にわたって保持し、ＴＬＣを確認した。反応混合物を、ＤＣＭ（５０ｍＬ）で希釈し、１０％の炭酸水素ナトリウム溶液（２×５０ｍＬ）で洗浄した。有機層を分離し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。得られた粗生成物の塊を、Ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ヘキサン中３０～６０％の酢酸エチル）によって精製して、化合物２１３（０．２３ｇ、８１％の収率）を白色の固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ ９．１７（ｓ，１Ｈ）、８．７２（ｄｄ，Ｊ＝３５．４、７．２Ｈｚ、１Ｈ）、８．１３（ｓ，１Ｈ）、７．６４－７．１７（ｍ，９Ｈ）、６．８９（ｄｄｔ，Ｊ＝６．８、５．４、１．４Ｈｚ、４Ｈ）、６．４４（ｄｄ，Ｊ＝２４．２、７．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．８８（ｓ，１Ｈ）、４．７９－４．４１（ｍ，１Ｈ）、４．３１－４．０１（ｍ，２Ｈ）、３．９７－３．４５（ｍ，１８Ｈ）、２．７３－２．４５（ｍ，２Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．７３－１．５０（ｍ，４Ｈ）、１．４０－１．０５（ｍ，３５Ｈ）ｐｐｍ．１３Ｃ ＮＭＲ（１２６ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １７４．８２、１６０．２２、１５９．８６、１５９．８４、１５４．９６、１５４．８８、１４８．５５、１４５．４１、１４４．０７、１３６．７０、１３６．５４、１３６．３５、１３６．２９、１３１．３２、１３１．２８、１３１．２２、１３１．１７、１２９．３２、１２９．０２、１２８．１４、１１４．２１、１００．９８、９５．０４、９４．９３、９１．５４、９１．３０、８７．８５、８７．７６、８３．１０、８２．８６、８１．６５、８１．６３、７１．８３、７１．６０、７０．６７、６９．９４、６９．８６、６１．５７、６１．２８、５９．３１、５９．２４、５９．１４、５９．０８、５５．９７、５５．９５、５１．８３、４４．１３、４４．０６、４３．９６、３４．５１、３０．６４、３０．６１、３０．３５、３０．３４、３０．３０、３０．２８、３０．２５、３０．１８、２９．９７、２９．７８、２６．８７、２５．７０、２５．１４、２５．０８、２５．０４、２４．９９、２４．８８、２４．８２、２１．１９、２１．１３ｐｐｍ．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １５１．２３、１４９．９１ｐｐｍ．
化合物２１４：ジメチルホルムアミド（１５ｍＬ）中の化合物１３３（１．３ｇ、１．６０ｍｍｏｌ）の透明な溶液に、イミダゾール（２１９．３８ｍｇ、３．１９ｍｍｏｌ）を加え、５分間撹拌した。得られた溶液に、ｔｅｒｔ－ブチルジメチルシリルクロリド（３７１．７７ｍｇ、２．３９ｍｍｏｌ）を一度に加え、２２℃で１６時間撹拌した。次に、反応混合物を、酢酸エチル（５０ｍＬ）及び塩水（５０ｍＬ）で希釈した。有機層を分離し、塩水（２×５０ｍＬ）及び水（５０ｍＬ）でさらに洗浄した。次に、有機層を無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。このように得られた粗化合物を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ヘキサン中０～５０％の酢酸エチル）によって精製して、化合物２１４（１．２９ｇ、１．３９ｍｍｏｌ、８７．０３％の収率）を白色の発泡体として得た。
化合物２１５：アセトニトリル（３０ｍＬ）中の化合物２１４（１．２９ｍｍｏｌ）の透明な溶液に、１，２，４－トリアゾール（２８．４１ｍｍｏｌ）及びトリエチルアミン（２８．４１ｍｍｏｌ、３．９８ｍＬ）を加えた。反応混合物を０℃に冷却し、次に、オキシ塩化リン（Ｖ）（３．８７ｍｍｏｌ、３６２．２１μＬ）をゆっくりと加えた。氷浴を１５分後に除去し、撹拌を、２２℃で９時間続けた。揮発性材料を高真空下で除去し、残渣を、ＤＣＭ（６０ｍＬ）中で希釈し、有機層を、水（３０ｍＬ）及び塩水（２×５０ｍＬ）で洗浄した。ＤＣＭ層を分離し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。粗化合物を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ヘキサン中２０～７０％の酢酸エチル）によって精製して、２１５（０．９２ｇ、７２％の収率）を白色の固体として得た。
化合物２１６：２２℃でＴＨＦ（２０ｍＬ）中の化合物２１５（０．９２ｇ）の溶液に、フッ化テトラブチルアンモニウム、ＴＨＦ中１Ｍ（１．３１ｍｍｏｌ、３８３．９７μＬ）を、ゆっくりと一度に加え、次に、３時間撹拌した。揮発性材料を、高真空ポンプ中で除去し、このように得られた粗残渣を、ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ＤＣＭ中０～５％のメタノール）によって精製して、化合物２１６（０．７０ｇ、７９％の収率）を白色の固体として得た。
化合物２１７：２２℃で乾燥ＤＣＭ（１０ｍＬ）中の化合物２１６（０．２５ｇ）の透明な溶液に、ジイソプロピルエチルアミン（１．３３ｍｍｏｌ、２３３．６２μＬ）及びＮ－メチルイミダゾール（３９８．３６μｍｏｌ、３２．０７μＬ）をゆっくりと加えた。得られた溶液を５分間撹拌し、その後、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（５３１．１５μｍｏｌ、１２４．８４μＬ）を一度に加えた。反応混合物を、２２℃で撹拌しながら１時間にわたって保持し、ＴＬＣを確認した。反応混合物を、ＤＣＭ（５０ｍＬ）で希釈し、１０％の炭酸水素ナトリウム溶液（２×５０ｍＬ）で洗浄した。有機層を分離し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、ろ液を蒸発乾固させた。得られた粗生成物の塊を、Ｃｏｍｂｉフラッシュクロマトグラフィー（勾配：ヘキサン中３０～８０％の酢酸エチル）によって精製して、化合物２１７（０．２４ｇ、８２％の収率）を白色の発泡体として得た。
２’－Ｏ－トリ、ヘプタ及びノナ－デシルωカルボキシメチルエステルウリジンホスホラミダイトの合成
Figure 2023500681000078
 化合物７０１：ヘプタン中のトリメチルアルミニウム（３５．２ｍＬ、７０．３ｍｍｏｌ）の２Ｍ溶液を、デカ－９－エン－１－オール（４１．０５ｍＬ、２３０．１４ｍｍｏｌ）及び無水ジグリム（２４ｍＬ）の混合物に滴下して加えた。得られた混合物を、１時間にわたって１００℃に加熱し、室温に冷却した後、５’－ＯＴＢＤＰＳ無水ウリジン７００（１４．８５ｇ、３１．９６ｍｍｏｌ）を一度に加えた。反応混合物を１２５℃で一晩加熱した。混合物を室温に冷却し、１０％のＨ３ＰＯ４（４００ｍＬ）と酢酸エチル（５００ｍＬ）とに分けた。有機層を分離し、塩水で洗浄し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過した。揮発性物質を減圧下で除去し、残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～４０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物７０１（１０．５ｇ、５２％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３７（ｄ，Ｊ＝２．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．７１（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．６６－７．６０（ｍ，５Ｈ）、７．５１－７．４０（ｍ，７Ｈ）、５．８５（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ、１Ｈ）、５．７８（ｄｄｔ，Ｊ＝１７．０、１０．２、６．７Ｈｚ、１Ｈ）、５．２６（ｄｄ，Ｊ＝８．１、２．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．１５（ｓ，１Ｈ）、５．０１－４．９０（ｍ，２Ｈ）、４．１８（ｔ，Ｊ＝５．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．０１－３．８６（ｍ，３Ｈ）、３．８５－３．７６（ｍ，１Ｈ）、３．５９（ｄｔ，Ｊ＝９．７、６．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．４８（ｄｔ，Ｊ＝９．７、６．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．３３（ｓ，２Ｈ）、２．０３－１．９５（ｍ，２Ｈ）、１．５３－１．４５（ｍ，２Ｈ）、１．３７－１．１７（ｍ，１２Ｈ）、１．０３（ｓ，９Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１２６ＭＨｚ、ＤＭＳＯ）δ １６２．８４、１５０．３０、１３９．８２、１３８．７９、１３５．１３、１３４．９６、１３２．６８、１３２．１７、１３０．０５、１３０．００、１２７．９７、１１４．５６、１０１．５５、８６．４５、８４．０２、８０．９０、６９．７３、６８．０８、６３．２７、３９．５２、３３．１４、２８．９８、２８．８３、２８．７２、２８．４６、２８．２３、２６．６７、２５．３３、１８．８２．Ｃ３５Ｈ４９Ｎ２Ｏ６Ｓｉについて計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ＋Ｈ］＋ ｍ／ｚ＝６２１．３３、実測値６２１．４。
Figure 2023500681000079
 化合物７０３：ＭｅＯＨ（１０５ｍＬ）中の９－ブロモノナ－１－エン７０２（１３．３ｇ、６２．２４ｍｍｏｌ）の溶液を、Ｈ２Ｏ（２５ｍＬ）中のシアン化カリウム（５．２７ｇ、８０．９ｍｍｏｌ）の溶液と組み合わせた。得られた混合物を、２４時間にわたって加熱還流させた。有機溶媒を減圧下で除去し、水性残渣を酢酸エチルで抽出し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、濃縮して、粗製ニトリルを得た。１００ｍＬのエタノール及び１００ｍＬの水）中の水酸化カリウム（３１．４３ｇ、５６０．１８ｍｍｏｌ）の溶液に、予め合成されたニトリルを加え、得られた混合物を、２４時間にわたって加熱還流させた。混合物の全体積を、減圧下で半分になるまで減少させ、次に、Ｅｔ２Ｏ（１００ｍＬ）で抽出した。濃ＨＣｌを、得られた水性層に、それが酸性ｐＨ（１～２）に達するまで滴下して加えた後、Ｅｔ２Ｏ（２×１００ｍＬ）で抽出した。有機抽出物を無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、蒸発乾固させて、粗製カルボン酸（９．８１ｇ）を得た。粗製カルボン酸を無水ＭｅＯＨ（１３０ｍＬ）に溶解させ、塩化チオニル（６．７７ｍＬ、９３．３６ｍｍｏｌ）を０℃で滴下して加えた。氷浴を除去し、得られた混合物を３時間撹拌した。揮発性物質を減圧下で除去し、残渣を、溶離剤としてＥｔＯＡｃ／ヘキサン２：８を用いて、シリカパッド（５ｃｍ）に通してろ過して、化合物７０３（１０．５ｇ、３工程で９１％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ５．８０（ｄｄｔ，Ｊ＝１６．９、１０．１、６．７Ｈｚ、１Ｈ）、５．０４－４．８９（ｍ，２Ｈ）、３．６６（ｓ，３Ｈ）、２．３０（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．０９－１．９９（ｍ，２Ｈ）、１．６８－１．５３（ｍ，３Ｈ）、１．４５－１．２５（ｍ，９Ｈ）．Ｃ１１Ｈ２１Ｏ２について計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ＋Ｈ］＋ ｍ／ｚ＝１８５．１５、実測値１８５．１。
Figure 2023500681000080
 化合物７０４：化合物７０１（５．４２ｇ、８．７３ｍｍｏｌ）を、無水ＤＣＭ（１７５ｍＬ）に溶解させた後、メチルデカ－９－エノエート７０３（１０．４６ｇ、５６．７４ｍｍｏｌ）、ベンゾキノン（１４１．５６ｍｇ、１．３１ｍｍｏｌ）及び第２世代Ｈｏｖｅｙｄａ－Ｇｒｕｂｂｓ触媒（５４７．０４ｍｇ、８７３．０μｍｏｌ）を加えた。得られた混合物を、３．５時間にわたって還流状態で撹拌し、室温に冷却し、反応混合物の全体積を、減圧下で半分になるまで減少させた。得られた溶液を、１２０ｇのシリカカラムカートリッジ中に充填し、溶離剤としてヘキサン中０～６０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物７０４（５．３７ｇ、７９％）を緑がかった油として得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３７（ｄ，Ｊ＝２．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．７１（ｄ，Ｊ＝７．９Ｈｚ、１Ｈ）、７．６７－７．５８（ｍ，５Ｈ）、７．５２－７．３８（ｍ，７Ｈ）、５．８５（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ、１Ｈ）、５．３９－５．２９（ｍ，２Ｈ）、５．２５（ｄｄｄ，Ｊ＝８．１、２．３、１．０Ｈｚ、１Ｈ）、５．１７－５．１２（ｍ，１Ｈ）、４．１８（ｑ，Ｊ＝５．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．９７－３．８６（ｍ，３Ｈ）、３．８３－３．７６（ｍ，１Ｈ）、３．６１－３．５５（ｍ，４Ｈ）、３．５２－３．４０（ｍ，２Ｈ）、３．３１（ｓ，２Ｈ）、２．２７（ｔｄ，Ｊ＝７．４、４．１Ｈｚ、２Ｈ）、１．９５－１．８７（ｍ，４Ｈ）、１．５４－１．４４（ｍ，４Ｈ）、１．３４－１．１９（ｍ，２０Ｈ）、１．０８－０．９５（ｍ，１１Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、ＤＭＳＯ）δ １７３．３３、１７０．３２、１６２．８６、１５０．３１、１３９．８１、１３５．１５、１３４．９８、１３２．６６、１３２．１５、１３０．０８、１３０．０６、１３０．０２、１３０．００、１２８．００、１１５．６２、１０１．５５、８６．４４、８４．０２、８０．９３、７１．２８、６９．７２、６９．５７、６８．０８、６３．２７、５９．７５、５８．０５、５１．１４、３９．５２、３３．２５、３１．９５、３１．９１、２８．９９、２８．９１、２８．８７、２８．７６、２８．４８、２８．４３、２８．３０、２６．６８、２５．３５、２４．４０、２０．７６、１８．８４、１４．０９．Ｃ４４Ｈ６５Ｎ２Ｏ８Ｓｉについて計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ＋Ｈ］＋ ｍ／ｚ＝７７７．４４、実測値７７７．５。
Figure 2023500681000081
 化合物７０５：１０％のＰｄ／炭素（７３５．４２ｍｇ、０．６９ｍｍｏｌ）を、ＥｔＯＨ（１７０ｍＬ）中のヌクレオシド７０４（５．３７ｇ、６．９１ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。フラスコに、水素を充填されたバルーンに接続された三又アダプタを装着した。フラスコを、一連の減圧－Ｈ２補充（×３）に供して、溶液を飽和させた。０．５時間後、混合物をＭｅＯＨで希釈し、さらなるメタノールですすぎながら、セライトパッドに通してろ過した。ろ液を減圧下で蒸発させて、粗製化合物７０５（５．０１ｇ、９３％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３７（ｄ，Ｊ＝２．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．７１（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．６７－７．５９（ｍ，５Ｈ）、７．５２－７．３９（ｍ，７Ｈ）、５．８５（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ、１Ｈ）、５．２５（ｄｄ，Ｊ＝８．１、２．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．１６（ｄ，Ｊ＝６．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．１８（ｑ，Ｊ＝５．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．９７－３．８６（ｍ，３Ｈ）、３．８３－３．７６（ｍ，１Ｈ）、３．６２－３．５４（ｍ，４Ｈ）、３．５２－３．４０（ｍ，２Ｈ）、２．２７（ｔｄ，Ｊ＝７．４、２．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．５３－１．４４（ｍ，４Ｈ）、１．３０－１．１５（ｍ，２８Ｈ）、１．０３（ｄ，Ｊ＝１．３Ｈｚ、９Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、ＤＭＳＯ）δ １７３．３５、１６２．８５、１５０．３２、１３９．８２、１３５．１６、１３４．９８、１３２．６６、１３２．１５、１３０．０９、１３０．０３、１２８．０１、１０１．５５、８６．４４、８４．０３、８０．９３、６９．７１、６８．０８、６３．２８、５６．０２、５１．１５、３９．５２、３３．２６、２９．０４、２９．０２、２９．００、２８．９６、２８．８６、２８．７６、２８．６６、２８．４４、２６．６９、２５．３６、２４．４３、１８．８４、１８．５６．Ｃ４４Ｈ６７Ｎ２Ｏ８Ｓｉについて計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ＋Ｈ］＋ ｍ／ｚ＝７７９．４６、実測値７７９．４。
Figure 2023500681000082
 化合物７０６：トリエチルアミン（３．５９ｍＬ、２５．７２ｍｍｏｌ）及びトリエチルアミン三フッ化水素酸塩（３．１４ｍＬ、１９．３ｍｍｏｌ）を、ＴＨＦ（５０ｍＬ）中の化合物７０５（５．０１ｇ、６．４３ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に連続して加えた。得られた混合物を４５℃で４時間加熱した後、揮発性物質を減圧下で除去した。粗残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～１００％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物７０６（１．４６ｇ、４２％）を得た。
Figure 2023500681000083
 化合物７０７：４，４’－ジメトキシトリチルクロリド（１．１０ｇ、３．２４ｍｍｏｌ）及びトリエチルアミン（０．４５ｍＬ、３．２４ｍｍｏｌ）を、ピリジン（２０ｍＬ）中のヌクレオシド７０６（１．４６ｇ、２．７０ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。３時間後、溶媒を減圧下で除去し、残渣をＥｔＯＡｃに溶解させ、水、塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、蒸発乾固させた。残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～５０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物７０７（１．３２５ｇ、５８％）を得た。
Figure 2023500681000084
 化合物７０８：ＤＩＰＥＡ、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト、及びＮ－メチルイミダゾールを、０℃で無水ＥｔＯＡｃ中の化合物７０７の撹拌溶液に連続して加えた。冷浴を除去し、反応混合物を１時間撹拌した。反応物を、ＭｅＣＮ／トルエン中のトリエタノールアミン（２．７Ｍ、５０ｍＬ）の溶液でクエンチし、５分間撹拌した。混合物を酢酸エチルで希釈し、分液漏斗に移し、層を分離し、有機層を、５％のＮａＣｌ溶液、及び塩水で連続して洗浄した。有機層をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、蒸発乾固させた。残渣を、トリエチルアミンで前処理されたシリカゲル上に予め吸着させた。カラムを、１％のＮＥｔ３を含有するヘキサンで平衡化した。残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～４０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物７０８を得た。
Figure 2023500681000085
 化合物７１０：ＭｅＯＨ（１８０ｍＬ）中の１１－ブロモウンデカ－１－エン（２５．０８ｇ、１０３．２５ｍｍｏｌ）の溶液を、Ｈ２Ｏ（４５ｍＬ）中のシアン化カリウム（８．７４ｇ、１３４．２ｍｍｏｌ）の溶液と組み合わせた。得られた混合物を、２４時間にわたって加熱還流させた。有機溶媒を減圧下で除去し、水性残渣を酢酸エチルで抽出し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、濃縮して、粗製ニトリルを得た。１５０ｍＬのエタノール及び１５０ｍＬの水中の水酸化カリウム（５２．１４ｇ、９２９．３ｍｍｏｌ）の溶液に、予め合成されたニトリルを加え、得られた混合物を、２４時間にわたって加熱還流させた。混合物の全体積を、減圧下で半分になるまで減少させ、次に、Ｅｔ２Ｏ（２００ｍＬ）で抽出した。濃ＨＣｌを、得られた水性層に、それが酸性ｐＨ（１～２）に達するまで滴下して加えた後、Ｅｔ２Ｏ（２×２００ｍＬ）で抽出した。有機抽出物を無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、蒸発乾固させて、粗製カルボン酸（１６．６ｇ）を得た。粗製カルボン酸を無水ＭｅＯＨ（１５０ｍＬ）に溶解させ、塩化チオニル（８．２４ｍＬ、１１３．６ｍｍｏｌ）を０℃で滴下して加えた。氷浴を除去し、得られた混合物を３時間撹拌した。揮発性物質を減圧下で除去し、残渣を、溶離剤としてＥｔＯＡｃ／ヘキサン２：８を用いて、シリカパッド（５ｃｍ）に通してろ過して、化合物７１０（１７．５ｇ、３工程で７９％）。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ５．７９（ｄｄｔ，Ｊ＝１６．９、１０．２、６．７Ｈｚ、１Ｈ）、５．０３－４．９０（ｍ，２Ｈ）、３．５７（ｓ，３Ｈ）、２．２８（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．０４－１．９６（ｍ，２Ｈ）、１．５５－１．４６（ｍ，２Ｈ）、１．３７－１．２１（ｍ，１３Ｈ）．
Figure 2023500681000086
 化合物７１１：化合物７０１（４．４４ｇ、７．１５ｍｍｏｌ）を無水ＤＣＭ（１４５ｍＬ）に溶解させた後、メチルデカ－９－エノエート７１０（１５．１８ｇ、７１．５ｍｍｏｌ）、ベンゾキノン（１１６ｍｇ、１．０７ｍｍｏｌ）及び第２世代Ｈｏｖｅｙｄａ－Ｇｒｕｂｂｓ触媒（４４８ｍｇ、０．７１５ｍｍｏｌ）を加えた。得られた混合物を、３．５時間にわたって還流状態で撹拌し、室温に冷却し、反応混合物の全体積を、減圧下で半分になるまで減少させた。得られた溶液を、１２０ｇのシリカカラムカートリッジ中に充填し、溶離剤としてヘキサン中０～６０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物７１１（４．６３ｇ、８０％）を緑がかった油として得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３９（ｄ，Ｊ＝２．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．７１（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．６７－７．５９（ｍ，４Ｈ）、７．５０－７．４０（ｍ，６Ｈ）、５．８４（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ、１Ｈ）、５．４０－５．２９（ｍ，２Ｈ）、５．２４（ｄｄ，Ｊ＝８．０、２．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．１７（ｄ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．１８（ｑ，Ｊ＝５．５Ｈｚ、１Ｈ）、３．９７－３．８６（ｍ，３Ｈ）、３．８３－３．７５（ｍ，１Ｈ）、３．６２－３．５３（ｍ，４Ｈ）、３．５２－３．４０（ｍ，１Ｈ）、１．９２（ｑ，Ｊ＝６．４Ｈｚ、４Ｈ）、１．５４－１．４２（ｍ，４Ｈ）、１．３２－１．１９（ｍ，２２Ｈ）、１．０３（ｓ，１０Ｈ）．
Figure 2023500681000087
 化合物７１２：１０％のＰｄ／炭素（６１２ｍｇ、０．５７５ｍｍｏｌ）を、ＥｔＯＨ（１５０ｍＬ）中のヌクレオシド７１１（４．６３ｇ、５．７５ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。フラスコに、水素を充填されたバルーンに接続された三又アダプタを装着した。フラスコを、一連の減圧－Ｈ２補充（×３）に供して、溶液を飽和させた。０．５時間後、混合物をＭｅＯＨで希釈し、さらなるメタノールですすぎながら、セライトパッドに通してろ過した。ろ液を減圧下で蒸発させて、粗生成物７１２（４．５２ｇ、９７％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．４０－１１．３７（ｍ，１Ｈ）、７．７１（ｄ，Ｊ＝８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．６７－７．５９（ｍ，４Ｈ）、７．５２－７．３９（ｍ，７Ｈ）、５．８５（ｄ，Ｊ＝４．４Ｈｚ、１Ｈ）、５．２４（ｄｄ，Ｊ＝８．１、２．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．１７（ｄ，Ｊ＝６．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．１８（ｑ，Ｊ＝５．４Ｈｚ、１Ｈ）、３．９９－３．８７（ｍ，３Ｈ）、３．８３－３．７５（ｍ，１Ｈ）、３．５６（ｓ，４Ｈ）、３．４６（ｄｄｔ，Ｊ＝１４．０、９．０、６．６Ｈｚ、２Ｈ）、２．２７（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．５４－１．４３（ｍ，４Ｈ）、１．３０－１．１３（ｍ，３１Ｈ）、１．０５－１．００（ｍ，１０Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、ＤＭＳＯ）δ １７３．３２、１６２．８５、１５０．３１、１３９．８０、１３５．１５、１３４．９７、１３２．６６、１３２．１４、１３０．０８、１３０．０２、１２８．００、１０１．５５、８６．４４、８４．０２、８０．９５、６９．７１、６８．０８、６３．２７、５６．０２、５４．９１、５１．１３、３９．５２、３３．２６、２９．０４、２９．０１、２８．９６、２８．８６、２８．７６、２８．６７、２８．４５、２６．６８、２５．３６、２４．４３、１８．８４、１８．５６．Ｃ４６Ｈ７１Ｎ２Ｏ８Ｓｉについて計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ＋Ｈ］＋ ｍ／ｚ＝８０７．４９、実測値８０７．５。
Figure 2023500681000088
 化合物７１３：フッ化テトラブチルアンモニウム（ＴＨＦ中１Ｍ）を、ＴＨＦ中の化合物７１２の撹拌溶液に加えた。混合物を室温で３時間撹拌してから、揮発性物質を減圧下で除去した。残渣を、ＣＨ２Ｃｌ２中で再構成し、水と分けた。層を分離し、水性部分をＣＨ２Ｃｌ２（３×２０ｍＬ）で抽出した。組み合わされた有機抽出物をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュカラムクロマトグラフィー（２：８のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製して、化合物７１３を得た。
Figure 2023500681000089
 化合物７１４：４，４’－ジメトキシトリチルクロリド（ｘｇ、ｘｍｍｏｌ）及びトリエチルアミン（ｘｍＬ、ｘｍｍｏｌ）を、ピリジン（ｘｍＬ）中のヌクレオシド７１３（ｘｇ、ｘｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。３時間後、溶媒を減圧下で除去し、残渣をＥｔＯＡｃに溶解させ、水、塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、蒸発乾固させた。残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～５０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物７１４を得た。
Figure 2023500681000090
 化合物７１５：ＤＩＰＥＡ、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト、及びＮ－メチルイミダゾールを、０℃で無水ＥｔＯＡｃ中の化合物７１４の撹拌溶液に連続して加えた。冷浴を除去し、反応混合物を１時間撹拌した。反応物を、ＭｅＣＮ／トルエン中のトリエタノールアミン（２．７Ｍ、５０ｍＬ）の溶液でクエンチし、５分間撹拌した。混合物を酢酸エチルで希釈し、分液漏斗に移し、層を分離し、有機層を、５％のＮａＣｌ溶液、及び塩水で連続して洗浄した。有機層をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、蒸発乾固させた。残渣を、トリエチルアミンで前処理されたシリカゲル上に予め吸着させた。カラムを、１％のＮＥｔ３を含有するヘキサンで平衡化した。残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～４０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物７１５を得た。
Figure 2023500681000091
 化合物７１７：化合物７０１を無水ＤＣＭに溶解させた後、メチルヘキサ－５－エノエート、ベンゾキノン及び第２世代Ｈｏｖｅｙｄａ－Ｇｒｕｂｂｓ触媒を加えた。得られた混合物を、３．５時間にわたって還流状態で撹拌し、室温に冷却し、反応混合物の全体積を、減圧下で半分になるまで減少させた。得られた溶液を、１２０ｇのシリカカラムカートリッジ中に充填し、溶離剤としてヘキサン中０～６０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物７１６を緑がかった油として得た。
Figure 2023500681000092
 化合物７１７：１０％のＰｄ／炭素を、ＥｔＯＨ中のヌクレオシド７１６の撹拌溶液に加えた。フラスコに、水素を充填されたバルーンに接続された三又アダプタを装着した。フラスコを、一連の減圧－Ｈ２補充（×３）に供して、溶液を飽和させた。０．５時間後、混合物をＭｅＯＨで希釈し、さらなるメタノールですすぎながら、セライトパッドに通してろ過した。ろ液を減圧下で蒸発させて、粗生成物７１７を得た。
Figure 2023500681000093
 化合物７１８：フッ化テトラブチルアンモニウム（ＴＨＦ中１Ｍ）を、ＴＨＦ中の化合物７１７の撹拌溶液に加えた。混合物を室温で３時間撹拌してから、揮発性物質を減圧下で除去した。残渣を、ＣＨ２Ｃｌ２中で再構成し、水と分けた。層を分離し、水性部分をＣＨ２Ｃｌ２（３×２０ｍＬ）で抽出した。組み合わされた有機抽出物をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、減圧下で濃縮した。残渣を、シリカゲル上でのフラッシュカラムクロマトグラフィー（２：８のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製して、化合物７１８を得た。
Figure 2023500681000094
 化合物７１９：４，４’－ジメトキシトリチルクロリド及びトリエチルアミンを、ピリジン中のヌクレオシド７１８の撹拌溶液に加えた。３時間後、溶媒を減圧下で除去し、残渣をＥｔＯＡｃに溶解させ、水、塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、蒸発乾固させた。残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～５０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物７１９を得た。
Figure 2023500681000095
 化合物７２０：ＤＩＰＥＡ、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト、及びＮ－メチルイミダゾールを、０℃で無水ＥｔＯＡｃ中の化合物７１９の撹拌溶液に連続して加えた。冷浴を除去し、反応混合物を１時間撹拌した。反応物を、ＭｅＣＮ／トルエン中のトリエタノールアミン（２．７Ｍ、５０ｍＬ）の溶液でクエンチし、５分間撹拌した。混合物を酢酸エチルで希釈し、分液漏斗に移し、層を分離し、有機層を、５％のＮａＣｌ溶液、及び塩水で連続して洗浄した。有機層をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、蒸発乾固させた。残渣を、トリエチルアミンで前処理されたシリカゲル上に予め吸着させた。カラムを、１％のＮＥｔ３を含有するヘキサンで平衡化した。残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～４０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物７２０を得た。
２’，３’－Ｏ－ヘキサデシルウリジンホスホラミダイトの合成
Figure 2023500681000096
 化合物１４５及び１４６：ＤＭＦ（１５０ｍＬ）中の２，３’－Ｏ－ジブチルスタンニレンウリジン１３０（６．６ｇ、１３．８９ｍｍｏｌ）の溶液に、１－ブロモヘキサデカン（８．４８ｇ、２７．７８ｍｍｏｌ）及びテトラブチルアンモニウムヨージド（１０．２６ｇ、２７．７８ｍｍｏｌ）を加えた。混合物を、還流装置で、１３０℃で一晩撹拌し、暗褐色の溶液を形成した。溶液を、シリカ（３０％のＭｅＯＨ／ＤＣＭ）上で溶離し、全てのＵＶ活性画分を収集した。画分を減圧下で濃縮し、生成物残渣を、シリカ（５％のＭｅＯＨ／ＤＣＭ）上で溶離して、化合物１４５及び化合物１４６の粗混合物（３．３８ｇ）を得た。
化合物１４７及び１４８：ピリジン（１０ｍＬ）を、化合物１４５及び化合物１４６の粗混合物（２．３４ｇ、４．９９ｍｍｏｌ）に加え、減圧下で濃縮して、微量の水を除去した。混合物残渣を高真空下に置き、アルゴンで３回バックフィルした。ピリジン（４２ｍＬ）中の化合物１４５及び化合物１４６の溶液を、４，４’－ジメトキシトリチルクロリド（１．８６ｇ、５．４９ｍｍｏｌ）で処理し、アルゴン下で、室温で一晩撹拌した。反応物を、ＭｅＯＨ（５ｍＬ）でクエンチし、減圧下で濃縮した。生成物残渣を３％のＴＥＡ／ＤＣＭに溶解させ、飽和ＮａＨＣＯ３（水溶液）及び塩水で洗浄した。有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥させ、減圧下で濃縮した。シリカカラムを、３％のＴＥＡ／ＤＣＭを３回溶離することによって中和してから、生成物残渣を充填した。生成物をシリカ上で精製した（３％のＴＥＡ／ヘキサン中４０～６０％の酢酸エチル）。化合物１４７（１．３２ｇ、３４％）及び化合物１４８（６６０ｍｇ、１７％）を分離し、白色の固体として得た。１４７：１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．３（ｂｒｓ，１Ｈ）、７．７４（ｄ，１Ｈ）、７．３３（ｄ，２Ｈ）、７．２８（ｔ，２Ｈ）、７．２０－７．２２（ｍ，５Ｈ）、６．８５－６．８７（ｍ，４Ｈ）、５．６６（ｄ，１Ｈ）、５．３８（ｄ，１Ｈ）、５．３０（ｄ，１Ｈ）、４．１９－４．２２（ｍ，１Ｈ）、３．８８－３．９６（ｍ，２Ｈ）、３．７０（ｓ，６Ｈ）、３．５３－３．５７（ｍ，１Ｈ）、３．３４－３．３８（ｍ，１Ｈ）、３．２２－３．３１（ｍ，２Ｈ）、１．４５－１．４８（ｍ，２Ｈ）、１．２１－１．２７（ｍ，２６Ｈ）、０．８４（ｔ，３Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１２６ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １６３．０、１５８．１、１５０．４、１４４．６、１４０．４、１３５．３、１３５．１、１２９．７、１２７．９、１２７．７、１２６．８、１１３．２、１０１．３、８９．４、８５．９、８０．４、７６．７、７２．０、６９．７、６２．３、５５．０、５２．０、３１．３、２９．２、２９．０、２９．０、２９．０、２８．９、２８．７、２５．５、２２．１、１３．９、７．２．
化合物１４９：ピリジン（８ｍＬ）を、化合物１４７（６６０ｍｇ、０．８５６ｍｍｏｌ）に加え、減圧下で濃縮して、微量の水を３回除去した。残渣を、高真空下に置き、アルゴンで３回バックフィルした。ＤＣＭ（１２ｍＬ）を加えて、溶液を形成し、撹拌しながら氷浴に入れた。Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルエチルアミン（４４７μＬ、２．５７ｍｍｏｌ）及び１－メチルイミダゾール（１３．７μＬ、０．１７１ｍｍｏｌ）を加え、０℃で２０分間撹拌した。２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロ－ホスホラミダイト（３８２μＬ、１．７１ｍｍｏｌ）を加え、溶液を氷浴から取り出し、室温で２時間撹拌した。生成物混合物を、飽和ＮａＨＣＯ３（水溶液）で洗浄し、３％のＴＥＡ／ＤＣＭで抽出した。有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥させ、減圧下で濃縮した。シリカカラムを、３％のＴＥＡ／ＤＣＭを３回溶離することによって中和してから、生成物残渣を充填した。生成物をシリカ上で精製した（３％のＴＥＡ／ヘキサン中５０％の酢酸エチル）。化合物１４９（７９０ｍｇ、９５％）を白色の固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ ８．８４（ｂｒｓ，１Ｈ）、７．７７（ｄ，０．５Ｈ）、７．７４（ｄ，０．５Ｈ）、７．４４（ｄ，２Ｈ）、７．２５－７．３５（ｍ，７Ｈ）、６．８４－６．９４（ｍ，４Ｈ）、５．９１（ｄ，０．５Ｈ）、５．８６（ｄ，０．５Ｈ）、４．４８－４．５１（ｍ，１Ｈ）、４．０４－４．１２（ｍ，２Ｈ）、３．８０－３．９０（ｍ，２Ｈ）、３．７８（ｓ，６Ｈ）、３．５８－３．７６（ｍ，４Ｈ）、３．３４－３．３６（ｍ，１Ｈ）、２．５９－２．６９（ｍ，２Ｈ）、１．４８－１．５８（ｍ，２Ｈ）、１．２４－１．３１（ｍ，２８Ｈ）、１．１８（ｄ，９Ｈ）、１．１５（ｄ，３Ｈ）、０．８９（ｔ，３Ｈ）３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １５０．６９（ｓ）、１５１．３８（ｓ）．
化合物１５０：ピリジン（６ｍＬ）を、化合物１４８（１．３２ｇ、１．７１ｍｍｏｌ）に加え、減圧下で濃縮して、微量の水を３回除去した。残渣を、高真空下に置き、アルゴンで３回バックフィルした。ＤＣＭ（１２ｍＬ）を加えて、溶液を形成し、撹拌しながら氷浴に入れた。Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルエチルアミン（８９４μＬ、５．１４ｍｍｏｌ）及び１－メチルイミダゾール（２８μＬ、０．３４２ｍｍｏｌ）を加え、０℃で２０分間撹拌した。２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロ－ホスホラミダイト（７６５μＬ、３．４２ｍｍｏｌ）を加え、溶液を氷浴から取り出し、室温で２時間撹拌した。生成物混合物を飽和ＮａＨＣＯ３（水溶液）で洗浄し、３％のＴＥＡ／ＤＣＭで抽出した。有機層をＮａ２ＳＯ４で乾燥させ、減圧下で濃縮した。シリカカラムを、３％のＴＥＡ／ＤＣＭを３回溶離することによって中和してから、生成物残渣を充填した。生成物をシリカ上で精製した（３％のＴＥＡ／ヘキサン中５０％の酢酸エチル）。化合物１５０（１．４３ｇ、８６％）を白色の固体として得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ ８．９２（ｂｒｓ，１Ｈ）、７．８１（ｄ，０．６Ｈ）、７．７２（ｄ，０．４Ｈ）、７．４３－７．４７（ｍ，２Ｈ）、７．２３－７．３６（ｍ，８Ｈ）、６．８６－６．９３（ｍ，３Ｈ）、５．８６（ｄ，０．５Ｈ）、５．８５（ｄ，０．６Ｈ）、５．１８－５．２７（ｍ，１Ｈ）、４．４６－４．５０（ｍ，０．６Ｈ）、４．４０－４．４４（ｍ，０．４Ｈ）、４．０５（ｔ，０．６Ｈ）、４．０２（ｔ，０．４Ｈ）、３．８２－３．９３（ｍ，１Ｈ）、３．７７－３．７９（ｍ，６Ｈ）、３．５８－３．７１（ｍ，４Ｈ）、３．３３－３．３９（ｍ，１Ｈ）、２．６４－２．６９（ｍ，１Ｈ）、２．５３（ｔ，１Ｈ）、１．４９－１．６０（ｍ，２Ｈ）、１．２３－１．３７（ｍ，２８Ｈ）、１．１７（ｄｄ，９Ｈ）、１．０６（ｄ，３Ｈ）、０．８９（ｔ，３Ｈ）３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １５０．６９（ｓ）、１５１．３８（ｓ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １５０．６９（ｓ）、１５１．０６（ｓ）．
２’－Ｏ－Ｃ３－アミド－Ｃ１８コンジュゲートウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000097
 化合物１５１：化合物１０４（６．０ｇ、９．９４ｍｍｏｌ）、ステアリン酸（３．３９ｇ、１１．９ｍｍｏｌ）、及びＨＢＴＵ（４．６ｇ、１２．１３ｍｍｏｌ）を、マグネチックスターラーバーを備えた空のフラスコ中で組み合わせた。フラスコの中身を、５分間にわたってアルゴンでフラッシュした後、ＤＭＦ（２５ｍＬ）及びＤＩＰＥＡ（５．２ｍＬ、２９．８ｍｍｏｌ）を加えた。２０時間撹拌した後、反応混合物を、ＮａＨＣＯ３の飽和溶液及びジエチルエーテルで希釈した。層を分離し、有機層を、ＮａＨＣＯ３の飽和溶液及び塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させた。揮発性物質を減圧下で除去し、残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～６％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物１５１（５．５ｇ、６４％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．３９（ｓ，１Ｈ）、８．０４（ｄ，Ｊ＝８．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．４１－７．３６（ｍ，２Ｈ）、７．３２－７．２７（ｍ，６Ｈ）、６．８６－６．８１（ｍ，４Ｈ）、５．８９（ｄ，Ｊ＝１．６Ｈｚ、１Ｈ）、５．８１（ｔ，Ｊ＝６．３Ｈｚ、１Ｈ）、５．２６（ｄｄ，Ｊ＝８．１、１．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．５１－４．４２（ｍ，１Ｈ）、４．０８（ｄｔ，Ｊ＝７．９、２．４Ｈｚ、１Ｈ）、３．９１（ｄｄｄ，Ｊ＝１０．３、６．１、４．７Ｈｚ、１Ｈ）、３．８６（ｄｄ，Ｊ＝５．２、１．７Ｈｚ、１Ｈ）、３．８０（ｄ，Ｊ＝１．３Ｈｚ、６Ｈ）、３．７２－３．６４（ｍ，２Ｈ）、３．６２（ｄ，Ｊ＝８．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．５５（ｄ，Ｊ＝２．４Ｈｚ、２Ｈ）、３．２６－３．１７（ｍ，１Ｈ）、２．２１－２．１３（ｍ，２Ｈ）、１．９１－１．７０（ｍ，２Ｈ）、１．６７－１．５９（ｍ，２Ｈ）、１．３１－１．２１（ｍ，２８Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、３Ｈ）．
化合物１５２：化合物１５１（５．５ｇ、６．３２ｍｍｏｌ）を、アセトニトリルと（２回）共蒸発させ、２時間にわたって高真空ラインに接続した。残渣を酢酸エチル（１２５ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。前の溶液に、ＤＩＰＥＡ（２．７５ｍＬ、１５．８０ｍｍｏｌ）、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（３．５３ｍＬ、１５．８０ｍｍｏｌ）、及び１－メチルイミダゾール（０．５０ｍＬ、６．３ｍｍｏｌ）を連続して加えた。冷浴を除去し、反応混合物を３０分間撹拌した。反応物を、ＭｅＣＮ／トルエン中のトリエタノールアミン（２．７Ｍ、１７．５ｍＬ）の溶液でクエンチし、５分間撹拌した。混合物を酢酸エチルで希釈し、分液漏斗に移し、層を分離し、有機層を、５％のＮａＣｌ溶液（５０ｍＬ）及び塩水で連続して洗浄した。有機層をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、蒸発乾固させた。残渣を、トリエチルアミンで前処理されたシリカゲル上に予め吸着させた。カラムを、１％のＮＥｔ３を含有するヘキサンで平衡化した。残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～６０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物１５２（４．５ｇ、６７％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ８．９５（ｓ，１Ｈ）、７．７７（ｄｄ，Ｊ＝４８．２、８．１Ｈｚ、１Ｈ）、７．４６－７．４０（ｍ，２Ｈ）、７．３５－７．２７（ｍ，６Ｈ）、６．９０－６．８４（ｍ，４Ｈ）、６．３９（ｄ，Ｊ＝５．４Ｈｚ、１Ｈ）、５．８４（ｄｄ，Ｊ＝７．６、２．９Ｈｚ、１Ｈ）、５．２０（ｔ，Ｊ＝８．４Ｈｚ、１Ｈ）、４．４５（ｄｄｄｄ，Ｊ＝４１．９、１０．０、６．９、５．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．１８－４．１１（ｍ，１Ｈ）、４．０４－３．９９（ｍ，１Ｈ）、３．７６（ｄ，Ｊ＝３．１Ｈｚ、６Ｈ）、３．７４－３．６５（ｍ，４Ｈ）、３．６５－３．５４（ｍ，３Ｈ）、３．５３－３．３５（ｍ，３Ｈ）、３．２５－３．１６（ｍ，３Ｈ）、２．７４（ｔ，Ｊ＝５．９Ｈｚ、１Ｈ）、２．６７（ｔｄ，Ｊ＝５．９、２．１Ｈｚ、１Ｈ）、２．５４－２．５０（ｍ，２Ｈ）、２．０８－２．０２（ｍ，２Ｈ）、１．７０（ｈ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、２Ｈ）、１．５４－１．４７（ｍ，２Ｈ）、１．２９－１．２２（ｍ，２８Ｈ）、１．１８－１．０１（ｍ，１２Ｈ）、０．８７（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、ＣＤ３ＣＮ）δ １４９．５９、１４９．１５．
２’－Ｏ－Ｃ３－アミド－Ｃ１４コンジュゲートウリジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000098
 化合物１５３：化合物１０４（５．０ｇ、８．３ｍｍｏｌ）、テトラデカン酸（２．１０ｇ、９．１９ｍｍｏｌ）、及びＨＢＴＵ（３．８３ｇ、１０．１ｍｍｏｌ）を、マグネチックスターラーバーを備えた空のフラスコ中で組み合わせた。フラスコの中身を、５分間にわたってアルゴンでフラッシュした後、ＤＭＦ（２５ｍＬ）及びＤＩＰＥＡ（４．３ｍＬ、２４．８ｍｍｏｌ）を加えた。２０時間撹拌した後、反応混合物を、ＮａＨＣＯ３の飽和溶液及びジエチルエーテルで希釈した。層を分離し、有機層を、ＮａＨＣＯ３の飽和溶液及び塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させた。揮発性物質を減圧下で除去し、残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～６％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物１５３（３．９３ｇ、５８％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．９４（ｓ，１Ｈ）、７．４４－７．２３（ｍ，９Ｈ）、６．９１－６．７８（ｍ，４Ｈ）、５．９５－５．８５（ｍ，２Ｈ）、５．３２－５．２２（ｍ，１Ｈ）、４．４６（ｑ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、１Ｈ）、４．０８（ｄｔ，Ｊ＝８．０、２．４Ｈｚ、１Ｈ）、３．９８－３．８９（ｍ，１Ｈ）、３．８６（ｄｄ，Ｊ＝５．２、１．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．８０（ｄ，Ｊ＝１．０Ｈｚ、６Ｈ）、３．７２－３．５２（ｍ，４Ｈ）、２．２０－２．１３（ｍ，２Ｈ）、１．８９－１．５３（ｍ，５Ｈ）、１．３１－１．１９（ｍ，２０Ｈ）、０．８７（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．
化合物１５４：化合物１５３（３．９３ｇ、４．８３ｍｍｏｌ）を、アセトニトリルと（２回）共蒸発させ、２時間にわたって高真空ラインに接続した。残渣を酢酸エチル（１００ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。前の溶液に、ＤＩＰＥＡ（２．１ｍＬ、１２．１ｍｍｏｌ）、２－シアノエチル－Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（２．６９ｍＬ、１２．１ｍｍｏｌ）、及び１－メチルイミダゾール（０．３８ｍＬ、４．８３ｍｍｏｌ）を連続して加えた。冷浴を除去し、反応混合物を３０分間撹拌した。反応物を、ＭｅＣＮ／トルエン中のトリエタノールアミン（２．７Ｍ、１４ｍＬ）の溶液でクエンチし、５分間撹拌した。混合物を酢酸エチルで希釈し、分液漏斗に移し、層を分離し、有機層を、５％のＮａＣｌ溶液（５０ｍＬ）及び塩水で連続して洗浄した。有機層をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、蒸発乾固させた。残渣を、トリエチルアミンで前処理されたシリカゲル上に予め吸着させた。カラムを、１％のＮＥｔ３を含有するヘキサンで平衡化した。残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～６０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物１５４（４．３８ｇ、８９％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．０３（ｄｄ，Ｊ＝２９．４、８．２Ｈｚ、１Ｈ）、７．４４－７．３５（ｍ，２Ｈ）、７．３４－７．２１（ｍ，１０Ｈ）、６．８４（ｄｄｄ，Ｊ＝８．９、７．１、３．１Ｈｚ、４Ｈ）、６．２０（ｑ，Ｊ＝６．３Ｈｚ、１Ｈ）、５．９１（ｄｄ，Ｊ＝７．１、２．０Ｈｚ、１Ｈ）、５．２３（ｄｄ，Ｊ＝１９．９、８．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．６６－４．４３（ｍ，１Ｈ）、４．２６－４．１８（ｍ，１Ｈ）、４．０１（ｄｄｄ，Ｊ＝１１．６、４．９、２．０Ｈｚ、１Ｈ）、３．９４－３．６７（ｍ，１１Ｈ）、３．６７－３．３９（ｍ，７Ｈ）、３．３２（ｔｑ，Ｊ＝１３．０、６．１Ｈｚ、１Ｈ）、２．６８－２．５６（ｍ，２Ｈ）、２．４９－２．３９（ｍ，１Ｈ）、２．１３（ｑ，Ｊ＝７．９Ｈｚ、２Ｈ）、１．８６－１．７６（ｍ，２Ｈ）、１．５９（ｓ，５Ｈ）、１．２８－１．２２（ｍ，２１Ｈ）、１．２１－１．１２（ｍ，１０Ｈ）、１．０４（ｄ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ １５０．２１、１４９．８６．
５’－アミド－親油性コンジュゲート２’－ＯＭｅ－シチジンアミダイトの合成
Figure 2023500681000099
 化合物１５６：ｐ－トルエンスルホニルクロリド（２０．７ｇ、０．１０８ｍｏｌ）を、無水ＣＨ２Ｃｌ２（２２０ｍＬ）中の化合物１５５（３０．０ｇ、７２．５ｍｍｏｌ）及びピリジン（２９．３ｍＬ、０．３６３ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。反応混合物を、４８時間にわたって加熱還流させた。冷却した後、ＣＨ２Ｃｌ２（２００ｍＬ）及びＮａＨＣＯ３の飽和水溶液（５００ｍＬ）をゆっくりと加え、１時間にわたって激しく撹拌した。混合物を分液漏斗に移し、層を分離し、有機層を、１ＭのＨＣｌ及び塩水で洗浄した。有機層をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、蒸発乾固させて、粗製のトシレート化合物１５６（４１．２ｇ）を得た。粗製のトシレートを、さらに精製せずに次の反応に使用した。
化合物１５７：アジ化ナトリウム（１４．１５ｇ、０．２１７ｍｏｌ）を、ＤＭＦ（３６０ｍＬ）中の化合物１５６（４１．２ｇ、７２．６ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。得られた混合物を９０℃で８時間加熱し、室温に冷却し、水（３００ｍＬ）及びジエチルエーテル（２００ｍＬ）と組み合わせた。混合物を分液漏斗に移し、層を分離し、水性層をジエチルエーテルで２回抽出した。有機層を組み合わせて、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、蒸発乾固させた。残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～６０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物１５７（２７．５ｇ、２工程で８６％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ９．０６（ｓ，１Ｈ）、８．２４（ｄ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、１Ｈ）、７．４６（ｄ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、１Ｈ）、５．８９（ｓ，１Ｈ）、４．１７（ｄｔ，Ｊ＝８．９、２．８Ｈｚ、１Ｈ）、４．０１（ｄｄ，Ｊ＝８．９、４．８Ｈｚ、１Ｈ）、３．９４（ｄｄ，Ｊ＝１３．５、２．８Ｈｚ、１Ｈ）、３．６９－３．６０（ｍ，６Ｈ）、２．２６（ｓ，３Ｈ）、０．９０（ｓ，９Ｈ）、０．０８（ｓ，６Ｈ）．
化合物１５８：メタノール（３００ｍＬ）中の化合物１５７（１７．０ｇ、３８．８ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に、１０％のＰｄ／Ｃ Ｄｅｇｕｓｓａタイプ（４．１３ｇ、３．８８ｍｍｏｌ）を加えた。フラスコに、水素を充填されたバルーン、及び真空ラインに接続された三又アダプタを装着した。フラスコの中身を、一連の減圧／水素の補充に供した（３回）。４０分後、ＴＦＡ（３ｍｌ）を加え、得られた混合物を、セライトパッドに通してろ過し、揮発性物質を蒸発乾固させた。残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～１０％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物１５８（１２．５ｇ、７７％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １０．９８（ｓ，１Ｈ）、８．１５（ｄ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、１Ｈ）、８．０３（ｓ，３Ｈ）、７．２５（ｄ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、１Ｈ）、５．８７（ｄ，Ｊ＝３．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．２１（ｔ，Ｊ＝５．７Ｈｚ、１Ｈ）、４．１２－４．０６（ｍ，１Ｈ）、４．０３－３．９３（ｍ，１Ｈ）、３．４０（ｓ，３Ｈ）、３．３０－３．１７（ｍ，１Ｈ）、３．１５－３．０３（ｍ，１Ｈ）、２．１１（ｓ，３Ｈ）、０．８８（ｓ，９Ｈ）、０．０９（ｄ，Ｊ＝２．０Ｈｚ、６Ｈ）．１９Ｆ ＮＭＲ（３７６ＭＨｚ、ＤＭＳＯ）δ －７３．７５．
化合物１５９：化合物１５８（５．１ｇ、９．７ｍｍｏｌ）、パルミチン酸（２．７４ｇ、１０．７ｍｍｏｌ）、及びＨＢＴＵ（４．４１ｇ、１１．６ｍｍｏｌ）を、マグネチックスターラーバーを備えた空のフラスコ中で組み合わせた。フラスコの中身を、５分間にわたってアルゴンでフラッシュした後、ＤＭＦ（３２ｍＬ）及びＤＩＰＥＡ（６．７６ｍＬ、３８．８ｍｍｏｌ）を加えた。４時間撹拌した後、反応混合物を、ＮａＨＣＯ３の飽和溶液及びジエチルエーテルで希釈した。層を分離し、有機層を、ＮａＨＣＯ３の飽和溶液及び塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させた。揮発性物質を減圧下で除去し、残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～６％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物１５９（４．９７ｇ、７８％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．６４（ｓ，１Ｈ）、７．７８（ｄ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、１Ｈ）、７．４６（ｄ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、１Ｈ）、５．４７（ｄ，Ｊ＝３．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．２３－４．１９（ｍ，１Ｈ）、４．１８－４．０９（ｍ，２Ｈ）、３．８４－３．７５（ｍ，１Ｈ）、３．４６（ｓ，３Ｈ）、３．４４－３．３６（ｍ，１Ｈ）、２．２８－２．２０（ｍ，５Ｈ）、１．６４－１．５９（ｍ，２Ｈ）、１．３１－１．２３（ｍ，２４Ｈ）、０．９４－０．８６（ｍ，１２Ｈ）、０．０９（ｓ，６Ｈ）．
化合物１６０：化合物１５８（５．８５ｇ、１１．１ｍｍｏｌ）、ステアリン酸（３．４７ｇ、１２．２ｍｍｏｌ）、及びＨＢＴＵ（５．０５ｇ、１３．３ｍｍｏｌ）を、マグネチックスターラーバーを備えた空のフラスコ中で組み合わせた。フラスコの中身を、５分間にわたってアルゴンでフラッシュした後、ＤＭＦ（３７ｍＬ）及びＤＩＰＥＡ（７．７４ｍＬ、４４．４ｍｍｏｌ）を加えた。４時間撹拌した後、反応混合物を、ＮａＨＣＯ３の飽和溶液及びジエチルエーテルで希釈した。層を分離し、有機層を、ＮａＨＣＯ３の飽和溶液及び塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させた。揮発性物質を減圧下で除去し、残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～６％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物１６０（３．８７ｇ、５１％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．４４（ｓ，１Ｈ）、７．７７（ｄ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、１Ｈ）、７．４５（ｄ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、１Ｈ）、５．４６（ｄ，Ｊ＝３．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．２４－４．１９（ｍ，１Ｈ）、４．１７－４．１０（ｍ，２Ｈ）、３．４６（ｓ，３Ｈ）、３．４１－３．３６（ｍ，１Ｈ）、２．２７－２．２４（ｍ，２Ｈ）、１．２９－１．２３（ｍ，２８Ｈ）、０．９２－０．８６（ｍ，１２Ｈ）、０．１０－０．０８（ｍ，６Ｈ）．
化合物１６１：トリエチルアミン三フッ化水素酸塩（３．５ｍＬ、２１．７ｍｍｏｌ）を、０℃でＴＨＦ（５０ｍＬ）中の化合物１５９（４．７ｇ、７．２ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。室温で２４時間撹拌した後、揮発性物質を減圧下で除去し、残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～６％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物１６１（３．４９ｇ、９０％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １０．９４（ｓ，１Ｈ）、８．１２（ｄ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、１Ｈ）、８．０１（ｔ，Ｊ＝５．９Ｈｚ、１Ｈ）、７．２４（ｄ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、１Ｈ）、５．８２（ｄ，Ｊ＝３．３Ｈｚ、１Ｈ）、５．１９（ｄ，Ｊ＝５．７Ｈｚ、１Ｈ）、３．９３－３．８４（ｍ，２Ｈ）、３．７８（ｔ，Ｊ＝３．９Ｈｚ、１Ｈ）、３．４２（ｓ，３Ｈ）、２．１３－２．０５（ｍ，５Ｈ）、１．４８（ｓ，２Ｈ）、１．３４－１．１６（ｍ，２５Ｈ）、０．８６（ｔ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、３Ｈ）．
化合物１６２：トリエチルアミン三フッ化水素酸塩（２．６６ｍＬ、１６．５ｍｍｏｌ）を、０℃でＴＨＦ（５０ｍＬ）中の化合物１６０（３．７４ｇ、５．５１ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。室温で２４時間撹拌した後、揮発性物質を減圧下で除去し、残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～６％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物１６２を得た。
化合物１６３／１６４：化合物１６１及び１６２の標準的なホスフィチル化により、それぞれ化合物１６３及び１６４が得られる。
５’－アミド－親油性コンジュゲート２’－ＯＭｅ－アデノシンアミダイトの合成
Figure 2023500681000100
 化合物１６６：ｐ－トルエンスルホニルクロリド（３４．３ｇ、０．１８０ｍｍｏｌ）を、無水ＣＨ２Ｃｌ２（１８０ｍＬ）中の化合物１６５（３０．０ｇ、６０．０ｍｍｏｌ）及びピリジン（２４．３ｍＬ、３００ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。反応混合物を、４８時間にわたって加熱還流させた。冷却した後、ＣＨ２Ｃｌ２（２００ｍＬ）及びＮａＨＣＯ３の飽和水溶液（５００ｍＬ）をゆっくりと加え、１時間にわたって激しく撹拌した。混合物を分液漏斗に移し、層を分離し、有機層を、１ＭのＨＣｌ及び塩水で洗浄した。有機層をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、蒸発乾固させて、粗製のトシレート化合物１６６を得た。粗製のトシレートを、さらに精製せずに次の反応に使用した。
化合物１６７：アジ化ナトリウム（１１．９３ｇ、１８３．５ｍｍｏｌ）を、ＤＭＦ（３００ｍＬ）中の粗化合物１６６（４０．０ｇ、６１．２ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。得られた混合物を９０℃で８時間加熱し、室温に冷却し、水（３００ｍＬ）及びジエチルエーテル（２００ｍＬ）と組み合わせた。混合物を分液漏斗に移し、層を分離し、水性層をジエチルエーテルで２回抽出した。有機層を組み合わせて、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、蒸発乾固させた。残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～８％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物１６７（２９．８ｇ、９２％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ、回転異性体の混合物）δ ８．９７（ｓ，１Ｈ）、８．８３－８．７８（ｍ，１Ｈ）、８．３２－８．２８（ｍ，１Ｈ）、８．０６－８．００（ｍ，２Ｈ）、７．６５－７．６０（ｍ，１Ｈ）、７．５３（ｄｄ，Ｊ＝８．４、７．０Ｈｚ、２Ｈ）、６．１３（ｄ，Ｊ＝３．４Ｈｚ、１Ｈ）、４．５７－４．５０（ｍ，１Ｈ）、４．３８（ｄｄ，Ｊ＝４．９、３．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．２１（ｄｔ，Ｊ＝６．０、４．０Ｈｚ、１Ｈ）、３．７８（ｄｄ，Ｊ＝１３．４、３．９Ｈｚ、１Ｈ）、３．６１（ｄｄ，Ｊ＝１３．３、４．３Ｈｚ、１Ｈ）、３．５５－３．４９（ｍ，３Ｈ）、０．９８－０．９０（ｍ，９Ｈ）、０．２０－０．０９（ｍ，６Ｈ）．
化合物１６８：メタノール（１３０ｍＬ）中の化合物１６７（１３．５８ｇ、２５．８８ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に、１０％のＰｄ／Ｃ Ｄｅｇｕｓｓａタイプ（２．７５ｇ、２．５９ｍｍｏｌ）を加えた。フラスコに、水素を充填されたバルーン、及び真空ラインに接続された三又アダプタを装着した。フラスコの中身を、一連の減圧／水素の補充に供した（３回）。４０分後、反応混合物を、セライトパッドに通してろ過し、揮発性物質を蒸発乾固させた。残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～１０％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物１６８（９．４ｇ、７２％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．９９（ｓ，１Ｈ）、８．７９（ｓ，１Ｈ）、８．２８（ｓ，１Ｈ）、８．０３（ｄ，Ｊ＝７．２Ｈｚ、２Ｈ）、７．６５－７．５９（ｍ，１Ｈ）、７．５７－７．５０（ｍ，２Ｈ）、６．０７（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ、１Ｈ）、４．５６－４．４５（ｍ，２Ｈ）、４．１５－４．０８（ｍ，１Ｈ）、３．４３（ｓ，３Ｈ）、３．１４（ｄｄ，Ｊ＝１３．６、３．５Ｈｚ、１Ｈ）、２．９６（ｄｄ，Ｊ＝１３．６、５．２Ｈｚ、１Ｈ）、０．９５（ｓ，９Ｈ）、０．１４（ｄ，Ｊ＝４．０Ｈｚ、６Ｈ）．
化合物１６８及びＲＣＯＯＨとして示される脂肪酸の標準的なアミドカップリングにより、２’－ＯＭｅ－アデノシンの様々な５’－親油性コンジュゲートが得られる。これらの化合物は、上記のスキーム４９に示されるように、ホスホラミダイト構成単位に転化され得る。
５’－アミノアデノシン脂質アミダイトの合成
Figure 2023500681000101
 化合物５１１：化合物５０１（１．２６ｇ、５．５ｍｍｏｌ）及びＨＯＢＴ水和物（１．２７ｇ、８．３ｍｍｏｌ）を、アルゴン雰囲気下で無水ＤＭＦ（３０ｍＬ）及びＴＨＦ（１０ｍｌ）に溶解させ、水／氷浴中で０～５℃に冷却した。ＨＢＴＵ（２．４５ｇ、６．５ｍｍｏｌ）及びＮ，Ｎ－ジイソプロピルエチルアミン（３．０ｍＬ、１７．１ｍｍｏｌ）を加え、溶液を１０分間撹拌した。化合物５００（２．３ｇ、４．６ｍｍｏｌ）を加え、反応物を０～５℃で２時間撹拌した。反応混合物を、酢酸エチル（５０ｍｌ）及び５％のＮａＣｌ（２００ｍＬ）で希釈し、５分間撹拌した。有機層を単離し、１０％のＨ３ＰＯ４（１×２００ｍＬ）、５％のＮａＣｌ（１×２００ｍＬ）、４％のＮａＨＣＯ３（１×２００ｍＬ）、及び飽和ＮａＣｌ（１×２００ｍＬ）で洗浄した。有機層をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、２５℃で、減圧下で発泡体が得られるまで濃縮した。精製を、シリカゲルフラッシュクロマトグラフィー、８０ｇのシリカカラム、及び酢酸エチル：ヘキサン（１：１～１０：１の勾配）によって行った。画分を減圧下で濃縮し、アセトニトリルを（２回）充填した。画分を、一晩、高真空下で乾燥させた。化合物５１１を、８７％の収率（２．８６ｇ）で、白色の発泡体として単離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．２３（ｓ，１Ｈ）、８．７７（ｄ，Ｊ＝８．６Ｈｚ、２Ｈ）、８．１３－７．９６（ｍ，３Ｈ）、７．６４（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、１Ｈ）、７．５４（ｔ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、２Ｈ）、６．１１（ｄ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．７２（ｄｄ，Ｊ＝６．９、４．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．５４（ｄｄ，Ｊ＝４．６、２．２Ｈｚ、１Ｈ）、４．０１－３．８８（ｍ，１Ｈ）、３．５５－３．４２（ｍ，１Ｈ）、３．３９－３．２９（ｍ，１Ｈ）、３．２７（ｓ，３Ｈ）、２．０８（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．４８（ｔ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、２Ｈ）、１．２０（ｓ，２０Ｈ）、０．９１（ｓ，９Ｈ）、０．８３（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）、０．１２（ｓ，６Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １７２．４２、１６５．５７、１５２．１２、１５１．６８、１５０．５８、１４３．７９、１３２．４３、１２８．４７、１２８．４１、８５．３７、８４．６９、８０．６６、７０．９６、５７．５０、４０．５４、３５．３１、３１．２８、２９．０３、２９．００、２８．９８、２８．８７、２８．７９、２８．７０、２８．６８、２５．６０、２５．１１、２２．０８、１７．７９、１３．９０、－４．８９．
化合物５１２：化合物５１２を、化合物５１１と類似の方法で化合物５００及び化合物５０２から合成した。化合物５１２を、９０％の収率（３．０５ｇ）で、ガラス質の固体として単離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．２３（ｓ，１Ｈ）、８．７７（ｄ，Ｊ＝８．８Ｈｚ、２Ｈ）、８．０５（ｄ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、３Ｈ）、７．６４（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、１Ｈ）、７．５４（ｔ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、２Ｈ）、６．１１（ｄ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．７２（ｄｄ，Ｊ＝７．０、４．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．５３（ｄｄ，Ｊ＝４．５、２．２Ｈｚ、１Ｈ）、３．９９－３．９２（ｍ，１Ｈ）、３．５５－３．４２（ｍ，１Ｈ）、３．３６－３．２７（ｍ，１Ｈ）、３．２６（ｓ，３Ｈ）２．０８（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．５３－１．４１（ｍ，２Ｈ）、１．３０－１．１５（ｍ，２４Ｈ）、０．９１（ｓ，９Ｈ）、０．８７－０．７８（ｍ，３Ｈ）、０．１２（ｓ，６Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １７２．４１、１５２．１１、１５１．６８、１５０．５８、１４３．７９、１３２．４３、１２８．４７、１２８．４２、１２６．０５、８５．３７、８４．７０、８０．６６、７０．９６、５７．５０、４０．５４、３５．３０、３１．２７、２９．０３、２９．０１、２８．９９、２８．９６、２８．８６、２８．７８、２８．６９、２８．６７、２５．６０、２５．１１、２２．０７、１７．７９、１３．９０、－４．８９ ．
化合物５１３：化合物５１３を、化合物５１１と類似の方法で化合物５００及び化合物５０３から合成した。化合物５１３を、８７％の収率（３．０５ｇ）で単離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．２４（ｓ，１Ｈ）、８．７７（ｄ，Ｊ＝１１．１Ｈｚ、２Ｈ）、８．０９－７．９９（ｍ，３Ｈ）、７．６７－７．５９（ｍ，１Ｈ）、７．５９－７．４９（ｍ，２Ｈ）、６．１１（ｄ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．７３（ｄｄ，Ｊ＝７．０、４．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．５３（ｄｄ，Ｊ＝４．５、２．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．９９－３．９１（ｍ，１Ｈ）、３．５５－３．４３（ｍ，１Ｈ）、３．３８－３．２２（ｍ，４Ｈ）、２．０８（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．５４－１．４２（ｍ，２Ｈ）、１．３０－１．１２（ｍ，２８Ｈ）、０．９１（ｓ，９Ｈ）、０．８６－０．７８（ｍ，３Ｈ）、０．１１（ｓ，６Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １７２．４０、１６５．５７、１５１．６８、１５０．５９、１４３．８０、１３３．２６、１３２．４４、１２８．４８、１２８．４２、８５．３７、８４．７１、８０．６４、７０．９６、５７．５０、４０．５４、３５．３１、３１．３０、２９．０４、２９．０１、２８．９９、２８．８９、２８．８１、２８．７２、２５．６０、２５．１２、２２．０９、１７．７９、１３．９０、－４．８９、－４．９１．
化合物５１４：化合物５１４を、化合物５１１と類似の方法で化合物５００及び化合物５０４から合成した。化合物５１４を、７７％の収率（２．０８ｇ）で、白色の発泡体として単離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．２３（ｓ，１Ｈ）、８．７７（ｄ，Ｊ＝９．７Ｈｚ、２Ｈ）、８．０５（ｄ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、３Ｈ）、７．６４（ｔ，Ｊ＝７．３Ｈｚ、１Ｈ）、７．５４（ｔ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、２Ｈ）、６．１１（ｄ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、１Ｈ）、５．３５－５．２２（ｍ，２Ｈ）、４．７３（ｄｄ，Ｊ＝７．０、４．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．５４（ｄｄ，Ｊ＝４．６、２．１Ｈｚ、１Ｈ）、４．００－３．９０（ｍ，１Ｈ）、３．５５－３．４２（ｍ，１Ｈ）、３．３９－３．２０（ｍ，４Ｈ）、２．０８（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．０１－１．８５（ｍ，４Ｈ）、１．５５－１．４１（ｍ，２Ｈ）、１．４１－１．０９（ｍ，２０Ｈ）、０．９１（ｓ，９Ｈ）、０．８７－０．７７（ｍ，３Ｈ）、０．１２（ｓ，６Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １７２．３７、１６５．５６、１５２．１０、１５１．６６、１４３．７７、１３２．４１、１２９．５４、１２９．５２、１２８．４６、１２８．４０、１２６．０４、８５．３７、８４．６９、８０．６４、７０．９６、５７．４９、４０．５４、３５．２９、３１．２５、２９．０６、２８．８０、２８．６９、２８．６６、２８．５６、２８．４７、２６．５７、２６．５３、２５．５８、２５．１１、２２．０６、１７．７８、１３．８７、－４．９１．
化合物５２１：化合物５１１（２．９９ｇ、３．９ｍｍｏｌ）を、アルゴン雰囲気下で無水ＴＨＦ（１２ｍＬ）に溶解させた。トリエチルアミン三フッ化水素酸塩（２．６ｍＬ、１５．７ｍｍｏｌ）を加え、反応物を室温で１９時間撹拌し、次に、３時間にわたって４５℃に加熱した。反応混合物を室温に冷却し、減圧下で油が得られるまで濃縮した。油を酢酸エチル（５０ｍＬ）で希釈し、５％のＮａＣｌ（２×１５０ｍＬ）及び飽和ＮａＣｌ（１×１５０ｍＬ）で洗浄した。有機層をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、２５℃で、減圧下で濃縮し、一晩、高真空下で乾燥させた。化合物５２１を、９７％の収率（２．２８ｇ）で、白色の発泡体として単離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．２２（ｓ，１Ｈ）、８．７４（ｄ，Ｊ＝１５．４Ｈｚ、２Ｈ）、８．１１－７．９４（ｍ，３Ｈ）、７．６４（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、１Ｈ）、７．５４（ｔ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、２Ｈ）、６．１２（ｄ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．３８（ｓ，１Ｈ）、４．５３（ｔ，Ｊ＝５．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．３０（ｔ，Ｊ＝４．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．０２－３．９２（ｍ，１Ｈ）、３．５５－３．２１（ｍ，５Ｈ）、２．０８（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．５５－１．４０（ｍ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、２Ｈ）、１．２０（ｄ，Ｊ＝４．７Ｈｚ、２０Ｈ）、０．８３（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．
化合物５２２：化合物５２２を、化合物５２１と類似の方法で化合物５１２から合成した。化合物５２２を、９６％の収率（２．４２ｇ）で単離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．２２（ｓ，１Ｈ）、８．７４（ｄ，Ｊ＝１５．８Ｈｚ、２Ｈ）、８．１０－７．９４（ｍ，３Ｈ）、７．６４（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、１Ｈ）、７．５４（ｔ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、２Ｈ）、６．１２（ｄ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．３８（ｄ，Ｊ＝５．４Ｈｚ、１Ｈ）、４．５３（ｔ，Ｊ＝５．６Ｈｚ、１Ｈ）、４．３２－４．２７（ｍ，１Ｈ）、４．０２－３．９４（ｍ，１Ｈ）、３．５２－３．２４（ｍ，５Ｈ）、２．１２－２．０２（ｍ，２Ｈ）、１．５３－１．４０（ｍ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、２Ｈ）、１．２０（ｄ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、２４Ｈ）、０．８３（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．
化合物５２３：化合物５２３を、化合物５２１と類似の方法で化合物５１３から合成した。化合物５２３を、１００％の収率（２．５７ｇ）で単離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １１．２４（ｓ，１Ｈ）、８．７４（ｄ，Ｊ＝１２．６Ｈｚ、２Ｈ）、８．０８－７．９７（ｍ，３Ｈ）、７．６７－７．５９（ｍ，１Ｈ）、７．５９－７．４９（ｍ，２Ｈ）、６．１２（ｄ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．４０（ｓ，１Ｈ）、４．５３（ｄｄ，Ｊ＝６．３、４．９Ｈｚ、１Ｈ）、４．３０（ｄｄ，Ｊ＝４．９、３．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．０１－３．９３（ｍ，１Ｈ）、３．５１－３．２３（ｍ，５Ｈ）、２．０８（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．５１－１．４１（ｍ，２Ｈ）、１．１９（ｄ，Ｊ＝７．９Ｈｚ、２８Ｈ）、０．８６－０．７８（ｍ，３Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １７２．４５、１６５．５８、１５１．６８、１５０．５５、１４３．５３、１３３．２７、１３２．４４、１２８．４８、１２８．４２、８５．６２、８４．２０、８１．５８、６９．４６、５７．５１、４０．８２、３５．３３、３１．２８、２９．０４、２９．００、２８．９４、２８．８１、２８．７０、２８．６８、２５．２４、２２．０８、１３．９２．
化合物５２４：化合物５２４を、化合物５２１と類似の方法で化合物５１４から合成した。化合物５２４を、９８％の収率（１．６７ｇ）で、白色の固体として単離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ９．５８（ｓ，１Ｈ）、８．７０（ｄ，Ｊ＝１．４Ｈｚ、１Ｈ）、８．３３（ｄ，Ｊ＝１．７Ｈｚ、１Ｈ）、８．０８－７．９９（ｍ，２Ｈ）、７．６９－７．６２（ｍ，１Ｈ）、７．５８－７．５２（ｍ，２Ｈ）、７．４７－７．３８（ｍ，１Ｈ）、６．０４（ｔ，Ｊ＝６．４Ｈｚ、１Ｈ）、４．７１－４．５４（ｍ，２Ｈ）、４．４１－４．２６（ｍ，１Ｈ）、３．９９－３．６３（ｍ，５Ｈ）、３．４４－３．２９（ｍ，４Ｈ）、２．８３－２．６７（ｍ，２Ｈ）、２．３４－２．１６（ｍ，３Ｈ）、１．６７－１．５２（ｍ，２Ｈ）、１．３５－１．１７（ｍ，３６Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）．
化合物５３１：化合物５２１（２．２４ｇ、３．７ｍｍｏｌ）を、アルゴン雰囲気下で無水ＴＨＦ（２０ｍＬ）に溶解させた。Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルエチルアミン（０．８６ｍＬ、４．９ｍｍｏｌ）及び２－シアノエチルＮ，Ｎ－ジイソプロピルクロロホスホラミダイト（１．１ｍＬ、４．９ｍｍｏｌ）を加え、室温で３時間撹拌した。トリエタノールアミン（３．７ｍＬ、１０ｍｍｏｌ、アセトニトリル：トルエン（４：９）中の２．７Ｍ溶液）を反応混合物に加え、５分間撹拌した。反応混合物を、酢酸エチル（８０ｍＬ）で希釈し、減圧下で３０ｍＬになるまで濃縮し、酢酸エチル（５０ｍＬ）で希釈し、次に、５％のＮａＣｌ（３×１００ｍＬ）及び飽和ＮａＣｌ（１×１００ｍＬ）で洗浄した。有機層をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、減圧下で発泡体が得られるまで濃縮した。精製を、シリカゲルフラッシュクロマトグラフィー、８０ｇのシリカカラム、及び酢酸エチル（＋０．５％のトリエチルアミン）：ヘキサン（１：１～１００％の酢酸エチルの勾配）によって行った。画分を減圧下で濃縮し、アセトニトリルを（２回）充填した。画分を、一晩、高真空下で乾燥させた。化合物５３１を、６７％の収率（２．００ｇ）で、白色の発泡体として単離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ８．７０（ｄ，Ｊ＝１．４Ｈｚ、１Ｈ）、８．３３（ｄ，Ｊ＝１．７Ｈｚ、１Ｈ）、８．０８－７．９９（ｍ，２Ｈ）、７．６９－７．６２（ｍ，１Ｈ）、７．５５（ｔ，Ｊ＝７．７Ｈｚ、２Ｈ）、７．４８－７．４０（ｍ，１Ｈ）、６．０４（ｔ，Ｊ＝６．４Ｈｚ、１Ｈ）、４．７１－４．５４（ｍ，２Ｈ）、４．４１－４．２６（ｍ，１Ｈ）、３．９９－３．６３（ｍ，５Ｈ）、３．４４－３．２９（ｍ，４Ｈ）、２．８３－２．６７（ｍ，２Ｈ）、２．３４－２．１６（ｍ，３Ｈ）、１．６７－１．５２（ｍ，２Ｈ）、１．３５－１．１７（ｍ，３２Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １７４．２１、１７４．１５、１５２．７０、１５１．４０、１４４．５７、１４４．４８、１３４．８９、１３３．６６、１２９．７０、１２９．２１、１２６．３３、１１９．７３、１１９．６６、８８．５７、８５．５９、８２．４８、７２．１９、６０．２４、６０．０７、５９．４３、５９．２３、５９．１２、５９．０７、５８．６４、４４．３５、４４．２３、４４．１８、４４．０５、４１．６１、４１．４６、３７．０７、３７．０２、３２．７０、３０．４５、３０．４３、３０．４１、３０．３０、３０．１９、３０．１４、３０．１０、３０．０７、２６．５６、２６．５１、２５．１２、２５．０４、２４．９９、２４．９６、２４．９３、２３．４６、２１．１５、２１．１２、２１．０８、２１．０５、１４．４７．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５０．８７、１４９．７９．
化合物５３２：化合物５３２を、化合物５３１と類似の方法で化合物５２２から合成した。化合物５３２を、８１％の収率（２．５６ｇ）で、白色の発泡体として単離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．５６（ｓ，１Ｈ）、８．７１（ｄ，Ｊ＝１．３Ｈｚ、１Ｈ）、８．３３（ｄ，Ｊ＝１．６Ｈｚ、１Ｈ）、８．０７－７．９６（ｍ，２Ｈ）、７．６６（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、１Ｈ）、７．５６（ｔ，Ｊ＝７．６Ｈｚ、２Ｈ）、７．４６－７．３８（ｍ，１Ｈ）、６．０４（ｔ，Ｊ＝６．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．７１－４．５３（ｍ，２Ｈ）、４．４１－４．２５（ｍ，１Ｈ）、３．９９－３．６３（ｍ，５Ｈ）、３．４４－３．３０（ｍ，４Ｈ）、２．８２－２．６７（ｍ，２Ｈ）、２．３１－２．１８（ｍ，３Ｈ）、１．６５－１．５２（ｍ，２Ｈ）、１．３５－１．１８（ｍ，３５Ｈ）、０．８９（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １７４．２１、１７４．１４、１５２．７０、１５１．４１、１４４．５７、１４４．４８、１３４．９０、１３３．６７、１２９．７２、１２９．２１、１２６．３４、１２６．２９、１１９．６６、８８．５８、８５．５９、８５．４９、８５．４６、７２．０２、６０．２５、６０．０７、５９．４３、５９．２４、５９．１２、５９．０８、５８．６４、４４．３６、４４．２４、４４．１８、４４．０６、４１．６０、４１．４６、３７．０８、３７．０２、３２．７１、３０．４６、３０．４４、３０．４３、３０．４０、３０．３０、３０．１８、３０．１５、３０．１０、３０．０７、２６．５６、２６．５１、２５．１３、２５．０５、２５．００、２４．９６、２４．９３、２３．４６、２１．１５、２１．１２、２１．０９、２１．０５、１４．４８．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５０．８７、１４９．８０．
化合物５３３：化合物５３３を、化合物５３１と類似の方法で化合物５２３から合成した。化合物５３３を、８９％の収率（２．９５ｇ）で単離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．６３（ｓ，１Ｈ）、８．６９（ｄ，Ｊ＝１．４Ｈｚ、１Ｈ）、８．３３（ｄ，Ｊ＝１．５Ｈｚ、１Ｈ）、８．０７－７．９７（ｍ，２Ｈ）、７．７０－７．６０（ｍ，１Ｈ）、７．５８－７．５１（ｍ，２Ｈ）、７．４８－７．４０（ｍ，１Ｈ）、６．０４（ｔ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、１Ｈ）、４．７１－４．５２（ｍ，２Ｈ）、４．４１－４．２５（ｍ，１Ｈ）、３．９９－３．６４（ｍ，５Ｈ）、３．４４－３．２９（ｍ，４Ｈ）、２．８２－２．６９（ｍ，２Ｈ）、２．３７－２．１５（ｍ，３Ｈ）、１．６５－１．５２（ｍ，２Ｈ）、１．４５－１．１６（ｍ，３９Ｈ）、０．９４－０．８４（ｍ，３Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １７４．２０、１７４．１３、１６６．４６、１５２．６８、１５１．４１、１５１．３９、１４４．５７、１４４．４７、１３４．８９、１３３．６５、１２９．６９、１２９．２１、１２６．３３、１２６．２８、１１９．７１、１１９．６４、８８．５７、８５．５８、８５．４９、８５．４５、８２．５１、８２．４８、７２．１９、６０．２４、６０．０７、５９．４３、５９．２３、５９．１２、５９．０７、５８．６４、４４．３５、４４．２３、４４．１８、４４．０５、４１．６２、４１．４７、３７．０８、３７．０２、３２．７１、３０．４８、３０．４６、３０．４４、３０．４３、３０．４１、３０．３０、３０．１９、３０．１５、３０．１１、３０．０８、２６．５６、２６．５１、２５．１３、２５．０５、２５．００、２４．９７、２４．９４、２３．４６、２１．１５、２１．１２、２１．０８、２１．０５、１４．４９ ．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５０．８７、１４９．７９．
化合物５３４：化合物５３４を、化合物５３１と類似の方法で化合物５２４から合成した。化合物５３４を、７７％の収率（１．６５ｇ）で、白色の発泡体として単離した。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ９．５６（ｓ，１Ｈ）、８．７１（ｄ，Ｊ＝１．４Ｈｚ、１Ｈ）、８．３３（ｄ，Ｊ＝１．７Ｈｚ、１Ｈ）、８．０７－７．９８（ｍ，２Ｈ）、７．６９－７．６２（ｍ，１Ｈ）、７．６０－７．５１（ｍ，２Ｈ）、７．４８－７．３３（ｍ，１Ｈ）、６．０４（ｔ，Ｊ＝６．４Ｈｚ、１Ｈ）、５．３８－５．２７（ｍ，２Ｈ）、４．７１－４．５４（ｍ，２Ｈ）、４．４１－４．２６（ｍ，１Ｈ）、３．９９－３．６３（ｍ，５Ｈ）、３．４５－３．２９（ｍ，４Ｈ）、２．８４－２．６７（ｍ，２Ｈ）、２．３４－２．１７（ｍ，３Ｈ）、２．０９－１．９２（ｍ，３Ｈ）、１．６６－１．５２（ｍ，２Ｈ）、１．３９－１．１８（ｍ，３２Ｈ）、０．９４－０．８３（ｍ，３Ｈ）．１３Ｃ ＮＭＲ（１０１ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １７４．１１、１５２．７０、１５１．４０、１４４．５６、１３４．９０、１３３．６７、１３０．８３、１３０．７６、１２９．７１、１２９．２１、１１８．３４、８８．５７、４４．３６、４４．２３、４４．１８、４４．０５、４１．６２、４１．４７、３７．０７、３７．０１、３２．６９、３０．５２、３０．５０、３０．２５、３０．１０、３０．０７、３０．０４、２９．９１、２７．８６、２６．５６、２６．５１、２５．１３、２５．０５、２５．００、２４．９７、２４．９３、２３．４５、１４．４８、２．０１、１．１９．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５０．８６、１４９．７９．
立体障害エステル含有脂質の合成
Figure 2023500681000102
 化合物６０３：パルミチン酸６０１（３．５３ｇ、１３．１ｍｍｏｌ）及び炭酸カリウム（３．７１ｇ、２６．８５ｍｍｏｌ）を、アセトン（２５０ｍＬ）中の２－ブロモ酢酸ベンジル（３．０ｇ、１３．１ｍｍｏｌ、２．０５ｍＬ）の撹拌溶液に加えた。２４時間にわたって還流状態で加熱した後、反応混合物を室温に冷却し、ろ過して、過剰なＫ２ＣＯ３を除去した。ろ液を減圧下で蒸発させ、残渣を、ジエチルエーテル（５０ｍＬ）と水（５０ｍＬ）とに分けた。有機画分をＭｇＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、減圧下で蒸発させて、粗製ベンジルエステル６０２（５．２ｇ）を得た。残渣を、酢酸エチル／メタノールの４：１混合物（１００ｍＬ）に溶解させた後、１０％のＰｄ／Ｃ（０．７５ｇ、０．７１ｍｍｏｌ）を加えた。フラスコに、水素を充填されたゴムバルーン、及び真空ラインに接続された三又アダプタを装着した。フラスコを、２０秒間にわたって減圧下に置いた後、水素を補充した。このシーケンスをあと２回繰り返した。４時間後、反応混合物を、セライトパッドに通してろ過し、ろ液を、酢酸エチル（×３）及びメタノール（×２）ですすいだ。組み合わされたろ液を減圧下で蒸発させた。残渣を、溶離剤としてヘキサン（ヘキサンは、１％の酢酸を含有していた）中０～２０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６０３（２．２２ｇ、５１％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）δ ４．６７（ｓ，２Ｈ）、２．４２（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．６６（ｐ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．３８－１．２３（ｍ，２３Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、３Ｈ）．
Figure 2023500681000103
 化合物６０６：ステアリン酸６０４（２．０ｇ、７．０３ｍｍｏｌ）及び炭酸カリウム（１．９９ｇ、１４．４１ｍｍｏｌ）を、アセトン（２５０ｍＬ）中の２－ブロモ酢酸ベンジル（１．６１ｇ、７．０３ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。２４時間にわたって還流状態で加熱した後、反応混合物を室温に冷却し、ろ過して、過剰なＫ２ＣＯ３を除去した。ろ液を減圧下で蒸発させ、残渣を、ジエチルエーテルと水（５０ｍＬ）とに分けた。有機画分をＭｇＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、減圧下で蒸発させて、粗製ベンジルエステル６０５（３．０ｇ）を得た。残渣を、酢酸エチル／メタノールの１：１混合物（１００ｍＬ）に溶解させた後、１０％のＰｄ／Ｃ（７３８ｍｇ、０．６９３ｍｍｏｌ）を加えた。フラスコに、水素を充填されたゴムバルーン、及び真空ラインに接続された三又アダプタを装着した。フラスコを、２０秒間にわたって減圧下に置いた後、水素を補充した。このシーケンスをあと２回繰り返した。４時間後、反応混合物を、セライトパッドに通してろ過し、ろ液を、酢酸エチル（×３）及びメタノール（×２）ですすいだ。組み合わされたろ液を減圧下で蒸発させた。残渣を、溶離剤としてヘキサン（ヘキサンは、１％の酢酸を含有していた）中０～２０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６０６（１．５ｇ、２工程で６２％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ ４．５３（ｓ，２Ｈ）、２．３５（ｔ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．５９－１．４９（ｍ，２Ｈ）、１．２３（ｓ，２８Ｈ）、０．８５（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．
Figure 2023500681000104
 化合物６０８：パルミチン酸６０１（２．６６ｇ、１０．３７ｍｍｏｌ）を、アルゴン下で乾燥ＤＣＭ（１００ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。塩化オキサリル（２Ｍ、１０．３７ｍＬ、２０．７３ｍｍｏｌ）を加えた後、ＤＭＦ（１滴）を加えた。氷浴を除去し、反応混合物を室温で撹拌した。ガスの発生が停止したとき（約２時間）、混合物を減圧下で濃縮して、粗製塩化パルミトイルを得た。別のフラスコ中で、２－ヒドロキシプロパン酸メチル（０．９ｍＬ、９．４２ｍｍｏｌ）を、乾燥ＤＣＭ（６０ｍＬ）に溶解させた後、ピリジン（３．８１ｍＬ、４７．１ｍｍｏｌ）を加えた。反応混合物を０℃に冷却した後、ＤＣＭ（１０ｍＬ）中の塩化パルミトイルの溶液を、カニューレを介して滴下して加えた。氷浴を除去し、反応物を一晩撹拌した。反応物を、脱イオン水（５０ｍＬ）でクエンチし、３０分間激しく撹拌した。二相混合物を分液漏斗に移した。層を分け、分離した。有機層を残した一方、水性層をジクロロメタン（１５０ｍＬ×２）で抽出した。有機物を組み合わせて、１Ｍの塩酸水溶液、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、塩水で洗浄し、乾燥させ（硫酸ナトリウム）、ろ過し、濃縮した。粗残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～１０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６０７（２．２８ｇ、７０％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ５．１０（ｑ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．７４（ｓ，３Ｈ）、２．３７（ｈｅｐｔ，Ｊ＝７．７Ｈｚ、２Ｈ）、１．６４（ｈ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、２Ｈ）、１．４８（ｄ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、３Ｈ）、１．３６－１．２３（ｍ，２４Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．８Ｈｚ、３Ｈ）．ヨウ化リチウム（３．８９ｇ、２９．０５ｍｍｏｌ）を、無水ピリジン（３０ｍＬ）中の化合物６０７（２ｇ、５．８４ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。２４時間にわたって還流状態で撹拌した後、混合物を蒸発させた。残留油を、１ＭのＨＣｌ及びＥｔＯＡｃの混合物中で懸濁させた。層を分離し、水性層をＥｔＯＡｃ（×３）で抽出した。有機抽出物を組み合わせて、チオ硫酸ナトリウムの飽和水溶液、塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、シリカゲルに予め吸着させた。残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～２０％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６０８（１．０１ｇ、５２％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １２．９４（ｓ，１Ｈ）、４．８８（ｑ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、１Ｈ）、２．３２（ｔ，Ｊ＝７．３Ｈｚ、２Ｈ）、１．５７－１．４７（ｍ，２Ｈ）、１．３７（ｄ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、３Ｈ）、１．２４（ｓ，２４Ｈ）、０．８８－０．８３（ｍ，３Ｈ）．
Figure 2023500681000105
 化合物６１０：ステアリン酸６０４（２．９５ｇ、１０．３７ｍｍｏｌ）を、アルゴン下で乾燥ＤＣＭ（１００ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。塩化オキサリル（２Ｍ、１０．３７ｍＬ、２０．７３ｍｍｏｌ）を加えた後、ＤＭＦ（１滴）を加えた。氷浴を除去し、反応混合物を室温で撹拌した。ガスの発生が停止したとき（約２時間）、混合物を減圧下で濃縮して、粗製塩化ステアリルを得た。別のフラスコ中で、２－ヒドロキシプロパン酸メチル（０．９８１ｇ、９．４２ｍｍｏｌ、０．９ｍＬ）を、乾燥ＤＣＭ（６０ｍＬ）に溶解させた後、ピリジン（３．８１ｍＬ、４７．１２ｍｍｏｌ）を加えた。反応混合物を０℃に冷却した後、ＤＣＭ（１０ｍＬ）中の塩化ステアリルの溶液を、カニューレを介して滴下して加えた。氷浴を除去し、反応物を一晩撹拌した。反応物を、脱イオン水（５０ｍＬ）でクエンチし、３０分間激しく撹拌した。二相混合物を分液漏斗に移した。層を分け、分離した。有機層を残した一方、水性層をジクロロメタン（１５０ｍＬ×２）で抽出した。有機物を組み合わせて、１Ｍの塩酸水溶液、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、塩水で洗浄し、乾燥させ（硫酸ナトリウム）、ろ過し、濃縮した。粗残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～１０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６０９（３．０９ｇ、８８％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ５．１０（ｑ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．７５（ｓ，３Ｈ）、２．３８（ｔｄ，Ｊ＝７．６、６．２Ｈｚ、２Ｈ）、１．６４（ｑ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．４８（ｄ，Ｊ＝７．０Ｈｚ、３Ｈ）、１．３２－１．２３（ｍ，２８Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、３Ｈ）．ヨウ化リチウム（５．５８ｇ、４１．７ｍｍｏｌ）を、無水ピリジン（４０ｍＬ）中の化合物６０９（３．０９ｇ、８．３４ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。２４時間にわたって還流状態で撹拌した後、混合物を蒸発させた。残留油を、１ＭのＨＣｌ及びＥｔＯＡｃの混合物中で懸濁させた。層を分離し、水性層をＥｔＯＡｃ（×３）で抽出した。有機抽出物を組み合わせて、チオ硫酸ナトリウムの飽和水溶液、塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、シリカゲルに予め吸着させた。残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～２０％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６１０（１．２９ｇ、４３％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ－ｄ６）δ １２．９４（ｓ，１Ｈ）、２．３２（ｔ，Ｊ＝７．３Ｈｚ、２Ｈ）、１．５９－１．４７（ｍ，２Ｈ）、１．３７（ｄ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、３Ｈ）、１．２３（ｓ，２８Ｈ）、０．８５（ｔ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、３Ｈ）．
Figure 2023500681000106
 化合物６１２：パルミチン酸６０１（２．６６ｇ、１０．３７ｍｍｏｌ）を、アルゴン下で乾燥ＤＣＭ（１００ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。塩化オキサリル（１．７９ｍＬ、２０．７３ｍｍｏｌ）を加えた後、ＤＭＦ（１滴）を加えた。氷浴を除去し、反応混合物を室温で撹拌した。ガスの発生が停止したとき（約２時間）、混合物を減圧下で濃縮して、粗製塩化パルミトイルを得た。別のフラスコ中で、（Ｒ）－乳酸メチル（０．９ｍＬ、９．４２ｍｍｏｌ）を、乾燥ＤＣＭ（６０ｍＬ）に溶解させた後、ピリジン（３．８１ｍＬ、４７．１ｍｍｏｌ）を加えた。反応混合物を０℃に冷却した後、ＤＣＭ（１０ｍＬ）中の塩化パルミトイルの溶液を、カニューレを介して滴下して加えた。氷浴を除去し、反応物を一晩撹拌した。反応物を、脱イオン水（５０ｍＬ）でクエンチし、３０分間激しく撹拌した。二相混合物を分液漏斗に移した。層を分け、分離した。有機層を残した一方、水性層をジクロロメタン（１５０ｍＬ×２）で抽出した。有機物を組み合わせて、１Ｍの塩酸水溶液、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、塩水で洗浄し、乾燥させ（硫酸ナトリウム）、ろ過し、濃縮した。粗残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～１０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６１１（３．０２ｇ、９３％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ５．１０（ｑ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．７５（ｓ，３Ｈ）、２．３８（ｔｄ，Ｊ＝７．５、４．３Ｈｚ、２Ｈ）、１．７０－１．６０（ｍ，２Ｈ）、１．４８（ｄ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、３Ｈ）、１．３８－１．２２（ｍ，２６Ｈ）、０．９１－０．８５（ｍ，３Ｈ）．ヨウ化リチウム（５．９０ｇ、４４．１ｍｍｏｌ）を、無水ピリジン（４７ｍＬ）中の化合物６１１（３．０２ｇ、８．８２ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。２４時間にわたって還流状態で撹拌した後、混合物を蒸発させた。残留油を、１ＭのＨＣｌ及びＥｔＯＡｃの混合物中で懸濁させた。層を分離し、水性層をＥｔＯＡｃ（×３）で抽出した。有機抽出物を組み合わせて、チオ硫酸ナトリウムの飽和水溶液、塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、シリカゲルに予め吸着させた。残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～２０％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６１２（１．２ｇ、４１％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ５．１１（ｑ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、１Ｈ）、２．３８（ｔｄ，Ｊ＝７．５、３．０Ｈｚ、２Ｈ）、１．６９－１．６０（ｍ，２Ｈ）、１．５３（ｄ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、３Ｈ）、１．３５－１．２３（ｍ，２４Ｈ）、０．９４－０．８４（ｍ，３Ｈ）．Ｃ１９Ｈ３５Ｏ４について計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ－Ｈ］－ ｍ／ｚ＝３２７．２６、実測値３２７．２。鏡像体過剰率：１００％。
Figure 2023500681000107
 化合物６１４：パルミチン酸６０１（２．６６ｇ、１０．３７ｍｍｏｌ）を、アルゴン下で乾燥ＤＣＭ（１００ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。塩化オキサリル（１．７９ｍＬ、２０．７３ｍｍｏｌ）を加えた後、ＤＭＦ（１滴）を加えた。氷浴を除去し、反応混合物を室温で撹拌した。ガスの発生が停止したとき（約２時間）、混合物を減圧下で濃縮して、粗製塩化パルミトイルを得た。別のフラスコ中で、（Ｓ）－乳酸メチル（０．９ｍＬ、９．４２ｍｍｏｌ）を、乾燥ＤＣＭ（６０ｍＬ）に溶解させた後、ピリジン（３．８１ｍＬ、４７．１ｍｍｏｌ）を加えた。反応混合物を０℃に冷却した後、ＤＣＭ（１０ｍＬ）中の塩化パルミトイルの溶液を、カニューレを介して滴下して加えた。氷浴を除去し、反応物を一晩撹拌した。反応物を、脱イオン水（５０ｍＬ）でクエンチし、３０分間激しく撹拌した。二相混合物を分液漏斗に移した。層を分け、分離した。有機層を残した一方、水性層をジクロロメタン（１５０ｍＬ×２）で抽出した。有機物を組み合わせて、１Ｍの塩酸水溶液、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、塩水で洗浄し、乾燥させ（硫酸ナトリウム）、ろ過し、濃縮した。粗残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～７０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６１３（３．２ｇ、９９％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ５．１０（ｑ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、１Ｈ）、３．７４（ｓ，３Ｈ）、２．４６－２．３１（ｍ，２Ｈ）、１．７０－１．５９（ｍ，２Ｈ）、１．４８（ｄ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、３Ｈ）、１．３４－１．２２（ｍ，２４Ｈ）、０．９１－０．８５（ｍ，３Ｈ）．ヨウ化リチウム（６．２５ｇ、４６．７ｍｍｏｌ）を、無水ピリジン（３０ｍＬ）中の化合物６１３（３．２ｇ、９．３４ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。２４時間にわたって還流状態で撹拌した後、混合物を蒸発させた。残留油を、１ＭのＨＣｌ及びＥｔＯＡｃの混合物中で懸濁させた。層を分離し、水性層をＥｔＯＡｃ（×３）で抽出した。有機抽出物を組み合わせて、チオ硫酸ナトリウムの飽和水溶液、塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、シリカゲルに予め吸着させた。残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～２０％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６１４（１．８１ｇ、５９％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ５．１２（ｑ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、１Ｈ）、２．４２－２．３５（ｍ，２Ｈ）、１．７０－１．６０（ｍ，２Ｈ）、１．５３（ｄ，Ｊ＝７．１Ｈｚ、３Ｈ）、１．３２－１．２４（ｍ，２４Ｈ）、０．９０－０．８５（ｍ，３Ｈ）．Ｃ１９Ｈ３５Ｏ４について計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ－Ｈ］－ ｍ／ｚ＝３２７．２６、実測値３２７．３。鏡像体過剰率：１００％。
Figure 2023500681000108
 化合物６１６：パルミチン酸６０１（２．４６ｇ、９．５９ｍｍｏｌ）を、乾燥ＤＣＭ（１００ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。塩化オキサリル（１．６６ｍＬ、２０．３ｍｍｏｌ）を加えた後、ＤＭＦ（１滴）を加えた。氷浴を除去し、反応混合物を室温で撹拌した。ガスの発生が停止したとき（約２時間）、混合物を減圧下で濃縮して、粗製塩化パルミトイルを得た。別のフラスコ中で、メチル２－ヒドロキシ－２－メチル－プロパノエート（１．０３ｇ、８．７２ｍｍｏｌ）を、乾燥ＤＣＭ（６０ｍＬ）に溶解させた後、ピリジン（３．５ｍＬ、４３．６ｍｍｏｌ）を加えた。反応混合物を０℃に冷却した後、ＤＣＭ（２０ｍＬ）中の塩化パルミトイルの溶液を、カニューレを介して滴下して加えた。氷浴を除去し、反応物を一晩撹拌した。反応物を、ＮＨ４Ｃｌの飽和水溶液でクエンチした。二相混合物を分液漏斗に移し、層を分離した。水性層をジクロロメタン（１５０ｍＬ×２）で抽出した。組み合わされた有機層を組み合わせて、１Ｍの塩酸水溶液、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、濃縮した。粗残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～１０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６１５（１．７８ｇ、５７％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ３．７２（ｓ，３Ｈ）、２．３０（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．６１（ｐ，Ｊ＝７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．５４（ｓ，７Ｈ）、１．３３－１．２４（ｍ，２４Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、３Ｈ）．Ｃ２１Ｈ４１Ｏ４について計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ＋Ｈ］＋ ｍ／ｚ＝３５７．２９、実測値３５７．３。ヨウ化リチウム（３．３４ｇ、２４．９ｍｍｏｌ）を、無水ピリジン（２５ｍＬ）中の化合物６１５（１．７８ｇ、４．９９ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。２４時間にわたって還流状態で撹拌した後、揮発性物質を減圧下で除去した。残留油を、１ＭのＨＣｌ及びＥｔＯＡｃの混合物中で懸濁させた。層を分離し、水性層をＥｔＯＡｃ（×３）で抽出した。有機抽出物を組み合わせて、チオ硫酸ナトリウムの飽和水溶液、塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、シリカゲルに予め吸着させた。残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～２０％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６１６（１．２３ｇ、７２％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ２．３１（ｔ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．６６－１．５５（ｍ，８Ｈ）、１．３７－１．２０（ｍ，２５Ｈ）、０．９１－０．８４（ｍ，３Ｈ）．Ｃ２０Ｈ３７Ｏ４について計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ－Ｈ］－ ｍ／ｚ＝３４１．２８、実測値３４１．３。
Figure 2023500681000109
 化合物６１８：パルミチン酸６０１（２．１９ｇ、８．５４ｍｍｏｌ）を、乾燥ＤＣＭ（１００ｍＬ）に溶解させ、０℃に冷却した。塩化オキサリル（１．４７ｍＬ、１７．１ｍｍｏｌ）を加えた後、ＤＭＦ（１滴）を加えた。氷浴を除去し、反応混合物を室温で撹拌した。ガスの発生が停止したとき（約２時間）、混合物を減圧下で濃縮して、粗製塩化パルミトイルを得た。別のフラスコ中で、メチル２－ヒドロキシ－３－メチル－ブタノエート（１．０８ｇ、７．７６ｍｍｏｌ）を、乾燥ＤＣＭ（６０ｍＬ）に溶解させた後、ピリジン（３．１４ｍＬ、３８．８ｍｍｏｌ）を加えた。反応混合物を０℃に冷却した後、ＤＣＭ（１０ｍＬ）中の塩化パルミトイルの溶液を、カニューレを介して滴下して加えた。氷浴を除去し、反応物を一晩撹拌した。反応物を、ＮＨ４Ｃｌの飽和水溶液でクエンチした。二相混合物を分液漏斗に移し、層を分離した。水性層をジクロロメタン（１５０ｍＬ×２）で抽出した。組み合わされた有機層を組み合わせて、１Ｍの塩酸水溶液、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液、塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、ろ過し、濃縮した。粗残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～１０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６１７（２．１８ｇ、７５％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ４．８４（ｄ，Ｊ＝４．６Ｈｚ、１Ｈ）、３．７４（ｓ，３Ｈ）、２．４０（ｔｄ，Ｊ＝７．５、２．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．２２（六重線、Ｊ＝６．９、４．６Ｈｚ、１Ｈ）、１．６５（ｐ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．３５－１．２４（ｍ，２４Ｈ）、０．９８（ｄｄ，Ｊ＝９．７、６．９Ｈｚ、６Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、３Ｈ）．Ｃ２２Ｈ４３Ｏ４について計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ＋Ｈ］＋ ｍ／ｚ＝３７１．３１、実測値３７１．３。ヨウ化リチウム（３．９４ｇ、２９．４ｍｍｏｌ）を、無水ピリジン（２５ｍＬ）中の化合物６１７（２．１８ｇ、５．８８ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。２４時間にわたって還流状態で撹拌した後、揮発性物質を減圧下で除去した。残留油を、１ＭのＨＣｌ及びＥｔＯＡｃの混合物中で懸濁させた。層を分離し、水性層をＥｔＯＡｃ（×３）で抽出した。有機抽出物を組み合わせて、チオ硫酸ナトリウムの飽和水溶液、塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、シリカゲルに予め吸着させた。残渣を、溶離剤としてＣＨ２Ｃｌ２中０～２０％のＭｅＯＨを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６１８（１．５９ｇ、７５％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ４．９０（ｄ，Ｊ＝４．３Ｈｚ、１Ｈ）、２．４５－２．３７（ｍ，２Ｈ）、２．２８（ｐｄ、Ｊ＝６．９、４．３Ｈｚ、１Ｈ）、１．６６（ｐ，Ｊ＝７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．３６－１．２２（ｍ，２４Ｈ）、１．０３（ｄｄ，Ｊ＝６．９、５．９Ｈｚ、６Ｈ）、０．９２－０．８４（ｍ，２Ｈ）．Ｃ２１Ｈ３９Ｏ４について計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ－Ｈ］－ ｍ／ｚ＝３５５．２９、実測値３５５．３。
Figure 2023500681000110
 化合物６２０：２－メチルヘキサデカン酸６１８（２．４２ｇ、８．９５ｍｍｏｌ）、及び炭酸カリウム（２．５４ｇ、１８．３４ｍｍｏｌ）を、アセトン（２５０ｍＬ）中のブロモ酢酸ベンジル（１．４８ｍＬ、９．４０ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。２４時間にわたって還流させた後、反応混合物を室温に冷却し、ろ過して、過剰なＫ２ＣＯ３を除去した。ろ液を減圧下で蒸発させた。残渣は白色の固体であり、それを、ジエチルエーテル（５０ｍＬ）と水（５０ｍＬ）とに分けた。有機画分を硫酸マグネシウム上で乾燥させ、ろ過し、減圧下で蒸発させて、粗製ベンジルエステルを得た。残渣を、シリカゲルに予め吸着させ、０％～８％のＥｔＯＡｃ／ヘキサンの勾配を用いて精製して、化合物６１９（２．０３ｇ、５４％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ７．４１－７．３１（ｍ，５Ｈ）、５．１９（ｓ，２Ｈ）、４．６５（ｓ，２Ｈ）、２．５３（ｈ，Ｊ＝７．０Ｈｚ、１Ｈ）、１．７６－１．６４（ｍ，１Ｈ）、１．５５（ｓ，１Ｈ）、１．４６－１．３７（ｍ，１Ｈ）、１．３５－１．２１（ｍ，２５Ｈ）、１．１８（ｄ，Ｊ＝７．０Ｈｚ、３Ｈ）、０．９１－０．８５（ｍ，３Ｈ）．Ｃ２６Ｈ４２Ｏ４Ｎａについて計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ＋Ｎａ］＋ ｍ／ｚ＝４４１．３１、実測値４４１．３。化合物６１８（２．０３ｇ、４．８５ｍｍｏｌ）を、酢酸エチル／メタノールの４：１混合物（８０ｍＬ）に溶解させた後、１０％のＰｄ／Ｃ（５１６ｍｇ、０．４８４ｍｍｏｌ）を加えた。フラスコに、水素を充填されたゴムバルーン、及び真空ラインに接続された三又アダプタを装着した。フラスコを、２０秒間にわたって減圧下に置いた後、水素を補充した。このシーケンスをあと２回繰り返した。４時間後、反応混合物を、セライトパッドに通してろ過し、ろ液を、酢酸エチル（×３）及びメタノール（×２）ですすいだ。組み合わされたろ液を減圧下で蒸発させた。残渣を、溶離剤としてヘキサン（ヘキサンは、１％の酢酸を含有していた）中０～６０％のＥｔＯＡｃを用いたＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物６２０（１．１３ｇ、７０％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ４．６６（ｄ，Ｊ＝１．０Ｈｚ、２Ｈ）、２．５４（ｈ，Ｊ＝７．０Ｈｚ、１Ｈ）、１．７６－１．６４（ｍ，１Ｈ）、１．５１－１．３９（ｍ，１Ｈ）、１．３６－１．１７（ｍ，２８Ｈ）、０．９２－０．８４（ｍ，２Ｈ）．）．Ｃ１９Ｈ３５Ｏ４について計算されるＬＲＭＳ（ＥＳＩ）［Ｍ－Ｈ］－ ｍ／ｚ＝３２７．２６、実測値３２７．２。
切断可能セラミド型リンカー
セラミダーゼ（ＣＤａｓｅ）は、セラミドの形成及び分解を調節するスフィンゴ脂質代謝の重要な酵素である。セラミドは、図１に示されるように、スフィンゴシン骨格及び脂肪酸残基から構成される。アミド結合の切断によるセラミドの酵素分解は、それらの至適ｐＨ、細胞内位置、一次構造、機構、及び機能によって区別されるＣＤａｓｅの３つのファミリー（酸性、中性、及びアルカリ性）によって制御される。
２’－Ｏ－セラミド型ヌクレオシドホスホラミデートは、ヒト中性ＣＤａｓｅの機構及び構造要件に基づいた手法を用いて合成され得る。合成されたモノマーヌクレオシドは、ｓｉＲＮＡ中に戦略的に導入され、体内に入ると、ＣＤａｓｅによって選択的に切断されて、脂肪酸及びオリゴヌクレオチド鎖を放出する。
２’－Ｏ－セラミド型ヌクレオシドホスホラミデートのための合成手順は、スキーム６０に示されるとおりであり得る。化合物９０１は、市販されているか、又はウリジンから２工程で調製され得る。（Ｓ）－アリルグリシンの誘導体との、ヌクレオシドの２’位における末端アルケンの交差メタセシスにより、化合物９０２が得られた。内部アルケンの水素化、続いてホスホラミデートの形成により、化合物９０３が得られた。
Figure 2023500681000111
実施例２．ｓｉＲＮＡに対する親油性部分の合成後コンジュゲーション
Figure 2023500681000112
Figure 2023500681000113
 様々な親油性部分を含む様々なリガンドを、スキーム６１及び６２に示されるように、合成後コンジュゲーション方法によってｓｉＲＮＡ剤にコンジュゲートした。ｓｉＲＮＡのセンス鎖又はアンチセンス鎖のアミノ誘導体を、ペプチドカップリング条件下で親油性リガンド又はカルボン酸のＮＨＳエステルのいずれかと反応させた。次に、これらの一本鎖を精製し、他の鎖と組み合わせて、ｓｉＲＮＡ二重鎖を作製した。
実施例３．末端酸性官能基を有するｓｉＲＮＡコンジュゲートの合成
Figure 2023500681000114
 カルボン酸部分を有する様々な親油性を含む様々なリガンドを、スキーム６２に示されるように、オンカラム又は合成後コンジュゲーションによって、末端及び内部位置においてｓｉＲＮＡ剤にコンジュゲートした。
末端エステルを有する親油性部分を含有する固体担持一本鎖を、まず、水中２０％のピペリジンで一晩、続いて、室温で１５時間にわたってエタノール中２：１のＮＨ４ＯＨで処理して、末端カルボン酸を有する一本鎖を生成した。これらの一本鎖を、対応するアンチセンス鎖と組み合わせて、様々なアッセイのためにｓｉＲＮＡ二重鎖を生成した（例えば、表１１、１２、１８、及び１９を参照）。
実施例４．ホスフェート骨格に結合された親油性基を有するｓｉＲＮＡコンジュゲートの合成。
Figure 2023500681000115
 化合物８６１：アジ化ナトリウム（２．５７ｇ、３９．５３ｍｍｏｌ）を、ＭｅＣＮ（１００ｍＬ）中のヘキサデカン－１－スルホニルクロリド（１０．０８ｇ、３０．４ｍｍｏｌ）の撹拌溶液に加えた。室温で１０時間撹拌した後、反応混合物をＥｔＯＡｃ（２００ｍＬ）で希釈し、水（５０ｍＬ）で洗浄した。有機相をＮａ２ＳＯ４上で乾燥させ、蒸発乾固させた。残渣を、溶離剤としてヘキサン中０～５％のＥｔＯＡｃを用いてＩＳＣＯ自動化カラムによって精製して、化合物８６１（７．７１ｇ、７６％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ３．３３－３．２８（ｍ，２Ｈ）、１．９６－１．８７（ｍ，２Ｈ）、１．５１－１．４１（ｍ，２Ｈ）、１．３３－１．２３（ｍ，２４Ｈ）、０．９２－０．８６（ｍ，３Ｈ）．
化合物８６１とオリゴヌクレオチド（センス鎖又はアンチセンス鎖）との間の反応。オリゴヌクレオチドの固相合成（スキーム６４）中、化合物８６１の溶液（アセトニトリル中０．５Ｍ）を用いて、Ｐ（ＩＩＩ）亜リン酸エステル中間体８６２を酸化して、スルホニルホスホラミダイト化合物８６３を生成した。この酸化工程は、一般的な酸化試薬（Ｉ２又は浸硫試薬）の代わりに使用され、亜リン酸Ｐ（ＩＩＩ）の酸化を含むオリゴヌクレオチド合成の任意の段階で行われ得る。合成の終わりに、オリゴが、標準的な条件を用いて完全に脱保護され、固体担体から切断されて、スルホニルホスホラミデートを含有するオリゴヌクレオチド８６４が得られる。
Figure 2023500681000116
Figure 2023500681000117
実施例５：核酸塩基修飾親油性コンジュゲートのためのモノマーの合成
様々な脂質が、以下に示されるようにピリミジンのＣ５位においてアミノリンカーとコンジュゲートされ得、構成単位ホスホラミダイトが、ｓｉＲＮＡ中に組み込まれ得る。
Ｃ５－脂質コンジュゲートウリジンホスホラミダイトの合成
Figure 2023500681000118
 化合物８３１：１，３－ジアミノプロパン（８１．０ｇ、１．０９ｍｏｌ）を、室温でＭｅＯＨ（１２０ｍＬ）中の化合物８３０（１５．０ｇ、２１．９ｍｍｏｌ）の溶液に加えた。反応混合物を室温で１５時間撹拌した。反応混合物をＤＣＭで希釈し、この溶液をＨ２Ｏ及び塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、減圧下で濃縮して、粗材料（１４．５ｇ）を得た。この粗材料を、次のカップリング反応に直接使用した。ＥＳＩ－ＭＳ；６６１．３（Ｍ＋Ｈ）。
化合物８３２：化合物８３１（５．０ｇ、７．５７ｍｍｏｌ）を、ミリスチン酸（３．４６ｇ、１５．１ｍｍｏｌ）及びＨＢＴＵ（３．４４ｇ、９．０８ｍｍｏｌ）と共に、反応フラスコに加えた。固体をＣＨ２Ｃｌ２（１５０ｍＬ）に溶解させ、ジイソプロピルエチルアミン（２．９３ｇ、２２．７ｍｍｏｌ）を、シリンジを介して加えた。反応物を室温で一晩撹拌した。反応を、ＴＬＣ（ＥｔＯＡｃ）によって確認して、出発材料の消費を確認した。反応物を、ＣＨ２Ｃｌ２で希釈し、次に、飽和ＮａＨＣＯ３溶液によって洗浄した。有機層を分離し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、濃縮した。粗残渣を、シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（０％～１００％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン）によって精製して、化合物８３２（４．９８ｇ、５．７２ｍｍｏｌ、７６％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．６８（ｓ，１Ｈ）、７．５２－７．４２（ｍ，２Ｈ）、７．４２－７．３３（ｍ，５Ｈ）、７．１９（ｄ，Ｊ＝７．３Ｈｚ、１Ｈ）、６．８６－６．７７（ｍ，５Ｈ）、６．３１（ｔ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．９１（ｄ，Ｊ＝３．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．２０（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．０５（ｄｄｄ，Ｊ＝６．８、４．７、２．８Ｈｚ、１Ｈ）、３．９４（ｄｄ，Ｊ＝５．６、３．３Ｈｚ、１Ｈ）、３．７７（ｓ，６Ｈ）、３．７１（ｈｅｐｔ，Ｊ＝６．６Ｈｚ、３Ｈ）、３．５６（ｓ，３Ｈ）、３．５０（ｄｄ，Ｊ＝１１．０、２．９Ｈｚ、１Ｈ）、３．４６－３．２９（ｍ，４Ｈ）、１．２５－１．２３（ｍ，２４Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、３Ｈ）．
化合物８３３：化合物８３２の合成について上述されるのと同様の方法でパルミチン酸を使用することによって、化合物８３３が得られた（３．６２ｇ、５３．２％）。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．６７（ｓ，１Ｈ）、８．６２（ｔ，Ｊ＝６．４Ｈｚ、１Ｈ）、７．５２－７．４３（ｍ，２Ｈ）、７．４３－７．３３（ｍ，５Ｈ）、７．２７－７．１５（ｍ，２Ｈ）、６．８４－６．７９（ｍ，４Ｈ）、６．３２（ｔ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、１Ｈ）、５．９１（ｄ，Ｊ＝３．４Ｈｚ、１Ｈ）、４．２１（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、４．０５（ｄｄｄ，Ｊ＝６．８、４．７、２．８Ｈｚ、１Ｈ）、３．９４（ｄｄ，Ｊ＝５．６、３．３Ｈｚ、１Ｈ）、３．７７（ｓ，６Ｈ）、３．７１（ｐ，Ｊ＝６．７Ｈｚ、１Ｈ）、３．５６（ｓ，３Ｈ）、３．５０（ｄｄ，Ｊ＝１１．０、２．９Ｈｚ、１Ｈ）、３．４５－３．３２（ｍ，３Ｈ）、１．２４（ｄ，Ｊ＝９．７Ｈｚ、２８Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、３Ｈ）．
化合物８３４：化合物８３２の合成について上述されるのと同様の方法でオレイン酸を使用することによって、化合物８３４が得られた（５．２９ｇ、７９．５％）。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、クロロホルム－ｄ）δ ８．６６（ｄ，Ｊ＝９．４Ｈｚ、２Ｈ）、７．４６（ｔｔ，Ｊ＝６．１、１．３Ｈｚ、２Ｈ）、７．３７（ｄｄｄ，Ｊ＝９．０、４．７、２．２Ｈｚ、４Ｈ）、７．３０－７．２３（ｍ，３Ｈ）、７．２２－７．１４（ｍ，１Ｈ）、６．８２（ｄｔ，Ｊ＝８．９、１．６Ｈｚ、４Ｈ）、６．３７（ｄｔ，Ｊ＝２０．２、６．０Ｈｚ、１Ｈ）、５．９２（ｄ，Ｊ＝３．３Ｈｚ、１Ｈ）、５．３４（ｔｄ，Ｊ＝３．７、２．０Ｈｚ、４Ｈ）、４．２０（ｄｄ，Ｊ＝７．５、４．７Ｈｚ、１Ｈ）、４．０５（ｄｄｄ，Ｊ＝７．０、４．７、２．９Ｈｚ、１Ｈ）、３．９５（ｄｄ，Ｊ＝５．６、３．３Ｈｚ、１Ｈ）、３．７７（ｓ，６Ｈ）、３．５６（ｓ，３Ｈ）、３．５３－３．４５（ｍ，１Ｈ）、２．０１（ｄ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、４Ｈ）、１．３４－１．１１（ｍ，２４Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝７．０、２．４Ｈｚ、３Ｈ）．
化合物８３５：２００ｍＬの丸底フラスコに、アルゴン下で無水ＥｔＯＡｃ（８０ｍＬ）中の化合物８３２（４．９８ｇ、５．７２ｍｍｏｌ）を加え、氷浴中で冷却した。次に、Ｎ，Ｎ－ジイソプロピルアミノシアノエチルホスホンアミド酸クロリド（１．４９ｇ、６．２９ｍｍｏｌ）を加えた後、ＤＩＰＥＡ（２．２２ｇ、１７．２ｍｍｏｌ）を加えた。反応混合物を室温で一晩撹拌した。次に、反応混合物を塩水でクエンチし、ＥｔＯＡｃで抽出した。有機層を分離し、無水Ｎａ２ＳＯ４上で乾燥させ、粗製油が得られるまで濃縮した。シリカゲル上でのフラッシュクロマトグラフィー（ヘキサン中０％～６０％のＥｔＯＡｃ）により、化合物８３５（２．２２ｇ、２．０７ｍｍｏｌ、３６．２５％）を得た。１Ｈ ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ８．６５（ｔ，Ｊ＝６．２Ｈｚ、１Ｈ）、８．４９（ｓ，１Ｈ）、７．５３－７．４４（ｍ，２Ｈ）、７．４４－７．３３（ｍ，４Ｈ）、７．３３－７．２６（ｍ，２Ｈ）、７．２０（ｔｄ，Ｊ＝７．１、１．３Ｈｚ、１Ｈ）、６．９１－６．８１（ｍ，４Ｈ）、６．４９（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、５．９１（ｄ，Ｊ＝４．５Ｈｚ、１Ｈ）、４．２８－４．１４（ｍ，２Ｈ）、３．９８（ｔ，Ｊ＝４．７Ｈｚ、１Ｈ）、３．８８－３．７７（ｍ，１Ｈ）、３．７５（ｓ，６Ｈ）、３．６３－３．４９（ｍ，２Ｈ）、３．４５（ｓ，３Ｈ）、３．４０－３．２１（ｍ，４Ｈ）、３．１２（ｑｄ，Ｊ＝６．４、３．７Ｈｚ、２Ｈ）、２．６５（ｄｔ，Ｊ＝６．４、５．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．６２－０．９６（ｍ，３６Ｈ）、０．８８（ｔ，Ｊ＝６．９Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５０．３７、１５０．２６
化合物８３６：化合物８３６の合成について上述されるのと同様の方法で、化合物８３３が得られた（２．１６ｇ、４８．８％）。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ８．６５（ｔ，Ｊ＝６．３Ｈｚ、１Ｈ）、８．５９（ｓ，１Ｈ）、７．５４－７．４４（ｍ，２Ｈ）、７．４５－７．３２（ｍ，４Ｈ）、７．２８（ｄｄ，Ｊ＝８．３、６．９Ｈｚ、２Ｈ）、７．２５－７．１２（ｍ，１Ｈ）、６．８６（ｄｔ，Ｊ＝８．２、１．５Ｈｚ、４Ｈ）、６．５０（ｔ，Ｊ＝６．１Ｈｚ、１Ｈ）、５．８９（ｄｄ，Ｊ＝１９．７、４．４Ｈｚ、１Ｈ）、４．３１（ｄｔ，Ｊ＝９．１、５．４Ｈｚ、１Ｈ）、４．１９（ｄｄｄ，Ｊ＝６．７、４．５、２．３Ｈｚ、１Ｈ）、４．１１－４．０２（ｍ，１Ｈ）、３．７５（ｄ，Ｊ＝１．９Ｈｚ、６Ｈ）、３．７２－３．４７（ｍ，４Ｈ）、３．５０－３．３７（ｍ，４Ｈ）、３．３９－３．００（ｍ，６Ｈ）、２．８１－２．７０（ｍ，１Ｈ）、２．４５（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、２Ｈ）、１．６６－１．０９（ｍ，４０Ｈ）、０．９２－０．８１（ｍ，３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（２０２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５０．３７、１５０．２５
化合物８３７：化合物８３７の合成について上述されるのと同様の方法で、化合物８３４が得られた（１．４２ｇ、２２．１％）。１Ｈ ＮＭＲ（４００ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ ８．６６（ｑ，Ｊ＝６．５Ｈｚ、１Ｈ）、８．６１－８．４５（ｍ，１Ｈ）、７．５９－７．１４（ｍ，１０Ｈ）、６．８５（ｄｔ，Ｊ＝８．８、２．１Ｈｚ、４Ｈ）、６．５０（ｔ，Ｊ＝６．１Ｈｚ、１Ｈ）、５．８９（ｄｄ，Ｊ＝１９．７、４．４Ｈｚ、１Ｈ）、５．３４（ｔ，Ｊ＝５．０Ｈｚ、３Ｈ）、４．３９－３．９６（ｍ，４Ｈ）、３．７５（ｄ，Ｊ＝１．９Ｈｚ、６Ｈ）、３．６８－３．０２（ｍ，１３Ｈ）、２．７６（ｔ，Ｊ＝６．０Ｈｚ、１Ｈ）、２．５４－２．２４（ｍ，２Ｈ）、１．９９（ｄｄ，Ｊ＝１１．０、５．０Ｈｚ、４Ｈ）、１．６９－０．９６（ｍ，３４Ｈ）、０．８７（ｔ，Ｊ＝６．５Ｈｚ、３Ｈ）．３１Ｐ ＮＭＲ（１６２ＭＨｚ、アセトニトリル－ｄ３）δ １５０．４６、１５０．３４．
Figure 2023500681000119
 スキーム６６に示されるように、保護された無水ヌクレオシド８００は、任意の分岐鎖アルキルアルコールによって開環されて、化合物８２０が得られる。５’位における保護基の除去により、化合物８２２が得られる。遊離ヌクレオシド８２２の５’位が、ＤＭＴｒ基によって保護されて、化合物８２３が得られ、３’位における第２級ヒドロキシル基が、ホスフィチル化されて、化合物８２４が得られる。化合物８２５は、標準的なトリアゾール条件を用いてシトシン誘導体に転化されて、化合物８２６が得られる。環外アミノ基は、ベンゾイル基によって保護されて、化合物８２６が得られ、その後のホスフィチル化により、化合物８２７が得られる。２’位における分岐鎖アルキルヌクレオシドのいくつかの例としては、限定されるものではないが、以下に示されるものが挙げられる：
Figure 2023500681000120
実施例６．様々な基質中のｓｉＲＮＡコンジュゲートの代謝的安定性の決定
脳脊髄液（ＣＳＦ）中のリガンドの安定性：リガンドの安定性を、５０μＬのラット由来ＣＳＦ（ＢｉｏＩＶＴ、Ｃａｔ．ＲＡＴ００ＣＳＦＸＺＮ）を、穏やかに振とうしながら、３７℃で２４時間にわたって９６ウェルプレート中で、１２．５μＬのｓｉＲＮＡ（０．１ｍｇ／ｍＬ）と共にインキュベートすることによって評価した。その後、４．１％のＴｗｅｅｎ ２０、０．３％のＴｒｉｔｏｎ Ｘ－１００、２４．７ｍＭのＴｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ８．０中の０．０８７５ｍｇのプロテイナーゼＫを含有する２５μＬのプロテイナーゼＫ溶液を加え、穏やかに振とうしながら、５０℃で１時間インキュベートすることによって、タンパク質を消化した。次に、サンプルを、固相抽出のために調製において水酸化アンモニウムを用いてｐＨ５．５に調整された４５０μＬの溶解緩衝液（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｃａｔ．ＡＬ０－８５７９）で希釈した。
脳ホモジネート中のリガンドの安定性：リガンドの安定性を、５０μＬのラット脳ホモジネート（ＢｉｏＩＶＴ、Ｃａｔ．Ｓ０５９６６）を、穏やかに振とうしながら、３７℃で２４時間にわたって９６ウェルプレート中で、１２．５μＬのｓｉＲＮＡ（０．１ｍｇ／ｍＬ）と共にインキュベートすることによって評価した。その後、４．１％のＴｗｅｅｎ ２０、０．３％のＴｒｉｔｏｎ Ｘ－１００、２４．７ｍＭのＴｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ８．０中の０．０８７５ｍｇのプロテイナーゼＫを含有する２５μＬのプロテイナーゼＫ溶液を加え、穏やかに振とうしながら、５０℃で１時間インキュベートすることによって、タンパク質を消化した。次に、サンプルを、固相抽出のために調製において水酸化アンモニウムを用いてｐＨ５．５に調整された４５０μＬの溶解緩衝液（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｃａｔ．ＡＬ０－８５７９）で希釈した。
硝子体液中のリガンドの安定性：リガンドの安定性を、５０μＬのウサギ由来（ＢｉｏＩＶＴ、Ｃａｔ．ＲＡＢ００ＶＩＴＨＵＭＰＺＮ）又はカニクイザル由来（ＢｉｏＩＶＴ、Ｃａｔ．ＮＨＰ０１ＨＵＭＰＺＮ）硝子体液を、穏やかに振とうしながら、３７℃で２４時間にわたって９６ウェルプレート中で、１２．５μＬのｓｉＲＮＡ（０．１ｍｇ／ｍＬ）と共にインキュベートすることによって評価した。その後、４．１％のＴｗｅｅｎ ２０、０．３％のＴｒｉｔｏｎ Ｘ－１００、２４．７ｍＭのＴｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ８．０中の０．０８７５ｍｇのプロテイナーゼＫを含有する２５μＬのプロテイナーゼＫ溶液を加え、穏やかに振とうしながら、５０℃で１時間インキュベートすることによって、タンパク質を消化した。次に、サンプルを、固相抽出のために調製において水酸化アンモニウムを用いてｐＨ５．５に調整された４５０μＬの溶解緩衝液（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｃａｔ．ＡＬ０－８５７９）で希釈した。
固相抽出：次に、固相抽出を、Ｃｌａｒｉｔｙ ＯＴＸ固相抽出プレート（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ、Ｃａｔ．８Ｅ－Ｓ１０３－ＥＧＡ）を用いて行った。プレートを、１ｍＬのメタノールを、正圧マニホールドを用いてそれに通し、続いて１．９ｍＬの平衡化緩衝液（２ｍＭのアジ化ナトリウムと共に５０ｍＭの酢酸アンモニウム、ｐＨ５．５）を通すことによってまず調整し、次に、サンプルをカラムに充填した。次に、カラムを、１．５ｍＬの洗浄緩衝液（５０％のアセトニトリル中の５０ｍＭの酢酸アンモニウム、ｐＨ５．５）で５回洗浄した。サンプルを、０．６ｍＬの溶離緩衝液（４０％のアセトニトリル及び１０％のＴＨＦ中、１０ｍＭのＥＤＴＡ、１００ｍＭの重炭酸アンモニウム、１０ｍＭのＤＴＴ、ｐＨ８．８）で溶離し、窒素流（ＴｕｒｂｏＶａｐ、４０℃で６５ｐｓｉのＮ２）を用いて乾燥させた。
分析方法：ＳＰＥの後、サンプルを、１２０μＬの水中で再構成し、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）によるＴｈｅｒｍｏ ＱＥｘａｃｔｉｖｅにおける質量分析検出と組み合わされた液体クロマトグラフィーを用いて分析した。サンプルを注入し（３０μＬ）、８０℃に維持されたＸＢｒｉｄｇｅ ＢＥＨ Ｃ８ ＸＰ Ｃｏｌｕｍｎ １３０Å、２．５μｍ、２．１×３０ｍｍ（Ｗａｔｅｒｓ、Ｃａｔ．１７６００２５５４）を用いて分離した。移動相Ａは、１６ｍＭのトリエチルアミン及び２００ｍＭのヘキサフルオロイソプロパノールであり、移動相Ｂは、メタノールであり、６．２分間にわたって０～６５％の移動相Ｂの勾配を、１ｍＬ／分で用いた。ＥＳＩ源を、スプレー電圧＝２８００Ｖ、シースガス流＝６５単位、補助ガス流＝２０単位、スウィープガス流＝４単位、キャピラリー温度＝３００℃、及び３００℃に加熱された補助ガスを用いて、フルスキャンで、負イオンモードで操作した。Ｐｒｏｍａｓｓソフトウェアを用いて、シグナルをデコンボリューションした。
ＣＳＦにおけるｓｉＲＮＡコンジュゲートの安定性試験
Figure 2023500681000121
図２は、２４時間にわたってラットＣＳＦと共にｓｉＲＮＡ二重鎖をインキュベートした後の、ラットＣＳＦにおける様々な親油性モノマー（上記の表２に列挙される）とコンジュゲートされたｓｉＲＮＡの安定性を示す。
硝子体液におけるｓｉＲＮＡコンジュゲートの安定性試験
Figure 2023500681000122
図３は、２４時間にわたるウサギ及びカニクイザル（ＮＨＰ）のそれぞれの硝子体液中の様々な親油性モノマー（上記の表３中に列挙される）とコンジュゲートされたｓｉＲＮＡの安定性を示す。リガンドコンジュゲートｓｉＲＮＡ二重鎖の残りの量を、図中にプロットした。
Figure 2023500681000123
Figure 2023500681000124
図４は、２４時間にわたるウサギ及びカニクイザル（ＮＨＰ）の硝子体液中の様々な親油性モノマー（上記の表４に列挙される）とコンジュゲートされたｓｉＲＮＡの安定性を示す。リガンドコンジュゲートｓｉＲＮＡ二重鎖の残りの量を、図中にプロットした。
Figure 2023500681000125
Figure 2023500681000126
図５Ａ及び５Ｂは、４時間及び２４時間それぞれにわたるラット脳ホモジネート中の様々な親油性モノマー（上記の表５に列挙される）とコンジュゲートされたｓｉＲＮＡの安定性を示す。リガンドコンジュゲートｓｉＲＮＡ二重鎖の残りの量を、図５Ａ中にプロットした。図５Ｂは、ＰＳ結合の安定性を示す。
Figure 2023500681000127
Figure 2023500681000128
図６は、２４時間にわたるウサギ及びカニクイザル（ＮＨＰ）の硝子体液中のエステラーゼ切断可能コンジュゲート（上記の表６に列挙される）を有するｓｉＲＮＡコンジュゲートの安定性を示す。加水分解されたリガンドコンジュゲートｓｉＲＮＡ二重鎖のパーセンテージを、図中にプロットした。
Figure 2023500681000129
Figure 2023500681000130
Figure 2023500681000131
図７は、２４時間にわたるラット血漿、ＣＳＦ及び脳ホモジネート中のエステラーゼ切断可能コンジュゲート（上記の表７に列挙される）を有するｓｉＲＮＡコンジュゲートの安定性を示す。加水分解されたリガンドコンジュゲートｓｉＲＮＡ二重鎖のパーセンテージをプロットした。
実施例７．中枢神経系組織中の疎水性及び活性の相関関係
中枢神経系組織中の脂質コンジュゲートの取り込み及び活性における疎水性の役割を評価するために、いくつかの短鎖脂質を、単一の長鎖脂質鎖の代わりに、センス鎖又はアンチセンス鎖（表８）中に導入した。ＥＭＳＡアッセイによる疎水性測定に基づいて、いくつかの短鎖脂質鎖が導入されたｓｉＲＮＡコンジュゲートについて、単一の長鎖を有するｓｉＲＮＡコンジュゲートの疎水性と同様の疎水性が達成され得ることが分かった。ｓｉＲＮＡコンジュゲートのタンパク質結合特性を、以下に示されるＥＭＳＡアッセイによって測定した。
Ｋｄ決定のためのＥＭＳＡアッセイプロトコル：Ｂｉｏ Ｒａｄ製の１０％のＣｒｉｔｅｒｉｏｎ ＴＢＥポリアクリルアミドゲルを、Ｃｒｉｔｅｒｉｏｎゲル電気泳動タンク中で、２０分間にわたって１００Ｖで、１×ＴＢＥ中でのプレランにより平衡化した。各サンプルウェルを、プレランの前及び後に、２０μＬの１×ＴＢＥ電気泳動緩衝液（Ｂｉｏ Ｒａｄ）でフラッシュした。サンプルを、ｓｉＲＮＡ二重鎖当たり２つのゲルについて２連（合計で４連）で調製した。１×ＰＢＳ中１０μＭのストック濃度における二重鎖を、１×ＰＢＳ及び増加する濃度の非変性ヒト血清アルブミン（ＨＳＡ）溶液（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ）を含有する０．５μＭ（２０μＬの全体積）の最終濃度に希釈した。ヒト血清アルブミン濃度は、最大１ｍＭの場合、１００の増分で０μＭ～１０００μＭの範囲であり、最大２ｍＭの場合、様々な増分で０μＭ～２０００μＭの範囲であった。サンプルを混合し、３０００ＲＰＭで３０秒間遠心分離し、続いて、室温で１０分間インキュベートした。
インキュベーションが完了した後、４μＬの６×ＥＭＳＡゲルローディング溶液（ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を、各サンプルに加え、３０００ＲＰＭで３０秒間遠心分離し、１２μＬの各サンプルをゲルに充填した。ゲル電気泳動を、まず、５０Ｖで２０分間にわたって実行して、全サンプルを、ゲルに完全に充填させた。次に、ゲル電気泳動を、１００Ｖで１時間にわたって実行した。電気泳動の完了時に、ゲルを、ケーシングから取り出し、５０ｍＬの１×ＴＢＥに入れた。染色するために、５μＬのＳＹＢＲ Ｇｏｌｄ（ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を容器に加え、ゲルを、プラットフォームロッカーにおいて、室温で１０分間インキュベートした。ゲルを、５０ｍＬの１×ＴＢＥですすぎ、さらなる５０ｍＬの緩衝液に入れた。
Ｂｉｏ Ｒａｄ ＣｈｅｍｉＤｏｃ ＭＰ Ｉｍａｇｉｎｇ Ｓｙｓｔｅｍを用いて、以下のパラメータを用いてゲルをイメージングした：イメージング適用を、ＳＹＢＲ Ｇｏｌｄに設定し、サイズを、Ｂｉｏ－Ｒａｄ ｃｒｉｔｅｒｉｏｎゲルに設定し、露光を、強いバンドのために自動に設定し、ハイライトされた飽和したピクセルを１にし、色を灰色に設定した。検出、分子量分析、及び出力は全て無効であった。ゲルのきれいな写真が得られたら、Ｉｍａｇｅ Ｌａｂ ５．２（Ｂｉｏ Ｒａｄ）を用いて、画像を処理した。レーン及びバンドを、バンド強度を測定するように手動で設定した。各サンプルのバンド強度を、ヒト血清アルブミンなし（０μＭの対照）の二重鎖のものに対して正規化して、ＨＳＡの濃度と比べた結合ｓｉＲＮＡの割合を得た。結合親和性解離定数を、ヒル勾配式を用いた１つの部位特異的結合による非線形回帰曲線あてはめを用いて、ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ ７において計算した。
同様のｉｎ ｖｉｖｏ活性が、単一の脂質鎖をｓｉＲＮＡコンジュゲート中に導入する代わりに、複数の短鎖脂質を二重鎖構造中に導入することによって得られた。ｓｉＲＮＡコンジュゲートの活性は、配列中の異なる短鎖脂質の位置に依存する。これらの設計を用いることによって、肝臓、腎臓及び心臓に対する全身暴露ｓｉＲＮＡコンジュゲートが制限され得る（図２１Ｂ）。
Figure 2023500681000132
ｓｉＲＮＡコンジュゲートの疎水性は、活性及び様々な中枢神経系組織へのｓｉＲＮＡの分布のために重要であり、くも膜下投与後のｓｉＲＮＡコンジュゲートの全身暴露において大きな役割も果たす。いくつかのコンジュゲートのタンパク質結合特性を調べることによって、露出されたカルボン酸（ｃａｒｂｏｘｙｌｉｃ）を有するアルキル鎖を有するコンジュゲートが、中枢神経系組織において活性であったが、心臓において活性が低かったことが分かった（表８～９及び図８～９を参照）。
Figure 2023500681000133
実施例８．親油性コンジュゲートｓｉＲＮＡを用いたマウスの眼におけるｍＲＮＡノックダウン
ＴＴＲ遺伝子サイレンシングを、単回の７．５μｇ又は１μｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖の硝子体内投与後に、マウスの眼におけるｑＰＣＲによって、表１０中に列挙されたｓｉＲＮＡコンジュゲートについて試験し、マウスを１４日目に殺処分し、結果を、ＰＢＳ対照と比較した。結果が、図１０～１１に示される。
Figure 2023500681000134
Figure 2023500681000135
また、ＴＴＲ遺伝子サイレンシングを、単回の７．５μｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖の硝子体内投与後に、マウスの眼におけるｑＰＣＲによって、表１１中に列挙されたｓｉＲＮＡコンジュゲートについて試験し、マウスを１４日目に殺処分し、結果を、ＰＢＳ対照と比較した。結果が、図１２に示される。以下に列挙されるｓｉＲＮＡ二重鎖を、エステラーゼ切断可能コンジュゲートとコンジュゲートした。
Figure 2023500681000136
Figure 2023500681000137
また、ＴＴＲ遺伝子サイレンシングを、単回の１μｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖の硝子体内投与後に、ラットの眼におけるｑＰＣＲによって、表１２中に列挙されたｓｉＲＮＡコンジュゲートについて試験し、ラットを１４日目に殺処分し、結果を、ＰＢＳ対照と比較した。結果が、図１３に示される。
Figure 2023500681000138
Figure 2023500681000139
Figure 2023500681000140
また、ＴＴＲ遺伝子サイレンシングを、単回の７．５μｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖の硝子体内投与後に、マウスの眼におけるｑＰＣＲによって、表１３中に列挙されたｓｉＲＮＡコンジュゲートについて試験し、マウスを１４日目に殺処分し、結果を、ＰＢＳ対照と比較した。結果が、図１４に示される。以下に列挙されるｓｉＲＮＡ二重鎖を、複数の短鎖脂質分子とコンジュゲートした。
Figure 2023500681000141
Figure 2023500681000142
また、ＴＴＲ遺伝子サイレンシングを、単回の１μｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖の硝子体内投与後に、ラットの眼におけるｑＰＣＲによって、表１４中に列挙されたｓｉＲＮＡコンジュゲートについて試験し、ラットを１４日目に殺処分し、結果を、ＰＢＳ対照と比較した。結果が、図１５に示される。以下に列挙されるｓｉＲＮＡ二重鎖を、エステラーゼ切断可能コンジュゲートとコンジュゲートした。
Figure 2023500681000143
Figure 2023500681000144
実施例９．ｓｉＲＮＡ配列にわたる脱塩基親油性修飾（Ｑ３６７）の位置的影響
センス鎖上の全ｓｉＲＮＡ配列にわたる親油性修飾の位置の影響を、対照二重鎖ＡＤ－９００９５４（表１５に示される）と比較して、Ｑ３６７リガンドによって修飾されたｓｉＲＮＡコンジュゲートを用いて、初代マウス肝細胞において評価した。細胞を、自然取り込みトランスフェクション剤を用いない）のために０．１、１、及び１０ｎＭの濃度の各ｓｉＲＮＡコンジュゲートと共にインキュベートし、ＴＴＲ ｍＲＮＡを、２４時間後に測定した。値が、非処理の対照細胞における割合としてプロットされる。結果が、図１６に示される。
Figure 2023500681000145
Figure 2023500681000146
Figure 2023500681000147
また、センス鎖上の全ＳＯＤ１ ｓｉＲＮＡ配列にわたる親油性修飾の位置の影響を、対照二重鎖ＡＤ－４６３７９１（表１６に示される）と比較して、Ｑ３６７リガンドによって修飾されたｓｉＲＮＡコンジュゲートを用いて、初代マウス肝細胞において評価した。細胞を、自然取り込み（トランスフェクション剤を用いない）のための０．１、１、及び１０ｎＭの濃度の各ｓｉＲＮＡコンジュゲートと共にインキュベートし、ＳＯＤ１ ｍＲＮＡを、２４時間後に測定した。値が、非処理の対照細胞における割合としてプロットされる。結果が、図１７に示される。
Figure 2023500681000148
Figure 2023500681000149
Figure 2023500681000150
実施例１０．親油性コンジュゲートｓｉＲＮＡを用いた中枢神経系におけるｍＲＮＡノックダウン
ＳＯＤ１遺伝子サイレンシングを、単回の０．９ｍｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖のくも膜下投与後に、ラット脳（小脳及び前頭葉）、脊髄（胸髄）、及び心臓におけるｑＰＣＲによって、表１７中に列挙されたｓｉＲＮＡコンジュゲートについて試験し、ラットを１４日目に殺処分し、結果を、人工ＣＳＦ投与対照と比較した。結果が、図１８に示される。
Figure 2023500681000151
Figure 2023500681000152
また、ＳＯＤ１遺伝子サイレンシングを、単回の０．９ｍｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖のくも膜下投与後に、ラット脳（脳幹、小脳及び前頭葉）、脊髄（胸髄）、及び心臓におけるｑＰＣＲによって、表１８中に列挙されたｓｉＲＮＡコンジュゲートについて試験し、ラットを１４日目に殺処分し、結果を、人工ＣＳＦ投与対照と比較した。結果が、図１９に示される。
Figure 2023500681000153
Figure 2023500681000154
Figure 2023500681000155
Figure 2023500681000156
また、ＳＯＤ１遺伝子サイレンシングを、単回の０．９ｍｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖のくも膜下投与後に、ラット脳（小脳及び前頭葉）、脊髄（胸髄）、及び心臓におけるｑＰＣＲによって、表１９中に列挙されたｓｉＲＮＡコンジュゲートについて試験し、ラットを７日目に殺処分し、結果を、人工ＣＳＦ投与対照と比較した。結果が、図２０に示される。
Figure 2023500681000157
Figure 2023500681000158
また、ＳＯＤ１遺伝子サイレンシングを、単回の５０又は１５０ｕｇの用量のｓｉＲＮＡ二重鎖のＩＣＶ投与後に、マウス脳及び心臓におけるｑＰＣＲによって、表２０中に列挙されたｓｉＲＮＡコンジュゲートについて試験し、マウスを１４日目又は７日目に殺処分し、結果を、人工ＣＳＦ投与対照と比較した。結果が、図２１に示される。
Figure 2023500681000159
Figure 2023500681000160

Claims (39)

  1. 標的遺伝子に相補的なアンチセンス鎖；
    前記アンチセンス鎖に相補的なセンス鎖；及び
    １つ以上の親油性モノマー
    を含む化合物であって、前記親油性モノマーが、
    Figure 2023500681000161
    Figure 2023500681000162
     （式中：
    ｍは、０～８の整数であり；
    ｎは、１～２１の整数であり；
    Ｒ２’は、Ｈ、ＯＨ、Ｆ、ＯＭｅ、Ｏ－メトキシアルキル、Ｏ－アリル、Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド、Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル、又はＯ－アミノプロピルであり；
    Ｂは、修飾又は非修飾核酸塩基であり；
    Ｗは、アルキル基であり；
    Ｒ、Ｒ’、及びＲ”は、それぞれ独立に、Ｈ又はアルキル基である）
    からなる群から選択される、化合物。
  2. 前記センス鎖及びアンチセンス鎖がそれぞれ、１５～３０ヌクレオチド長である、請求項１に記載の化合物。
  3. 前記センス鎖及びアンチセンス鎖がそれぞれ、１９～２５ヌクレオチド長である、請求項１に記載の化合物。
  4. 前記センス鎖及びアンチセンス鎖がそれぞれ、２１～２３ヌクレオチド長である、請求項１に記載の化合物。
  5. 前記センス鎖が、２１ヌクレオチド長であり、前記アンチセンス鎖が、２３ヌクレオチド長であり、ここで、前記鎖が、３’末端に２ヌクレオチド長の一本鎖オーバーハングを有する２１の連続した塩基対の二本鎖領域を形成する、請求項４に記載の化合物。
  6. 前記化合物が、末端の少なくとも１つに一本鎖オーバーハングを含む、請求項１に記載の化合物。
  7. 前記一本鎖オーバーハングが、１、２又は３ヌクレオチド長である、請求項６に記載の化合物。
  8. 前記センス鎖及び前記アンチセンス鎖が、１０未満の２’－フルオロ修飾ヌクレオチドを含む、請求項１～７のいずれか一項に記載の化合物。
  9. 前記センス鎖及びアンチセンス鎖が、少なくとも５０％、少なくとも６０％、又は少なくとも７０％の２’－ＯＭｅ修飾ヌクレオチドを含む、請求項１～７のいずれか一項に記載の化合物。
  10. 前記親油性モノマーが、
    Figure 2023500681000163
    Figure 2023500681000164
    Figure 2023500681000165
     （式中、Ｒ及びＲ’は、それぞれ独立に、Ｈ、メチル、エチル、イソプロピル、又はｔ－ブチルである）
    からなる群から選択される、請求項１に記載の化合物。
  11. 前記センス鎖が、３’末端に少なくとも１つのホスホロチオエート結合を含む、請求項１～１０のいずれか一項に記載の化合物。
  12. 前記センス鎖が、３’末端に少なくとも２つのホスホロチオエート結合を含む、請求項１～１０のいずれか一項に記載の化合物。
  13. 前記ホスホロチオエート結合の１つが、前記親油性モノマーと、前記センス鎖の３’末端から１つ目のヌクレオチドとの間に位置する、請求項１１又は１２に記載の化合物。
  14. 前記アンチセンス鎖の５’末端にリン酸塩又はリン酸塩模倣体をさらに含む、請求項１～１３のいずれか一項に記載の化合物。
  15. 前記リン酸塩模倣体が、５’－ビニルホスホネート（ＶＰ）である、請求項１４に記載の化合物。
  16. 前記アンチセンス鎖が、シード領域における少なくとも１つのＧＮＡを含む、請求項１～１５のいずれか一項に記載の化合物。
  17. 前記シード領域が、前記アンチセンス鎖の５’末端から５～７位にある、請求項１６に記載の化合物。
  18. 中枢神経系組織への送達を媒介する受容体を標的とする標的化リガンドをさらに含む、請求項１～１７のいずれか一項に記載の化合物。
  19. 前記標的化リガンドが、Ａｎｇｉｏｐｅｐ－２、リポタンパク質受容体関連タンパク質（ＬＲＰ）リガンド、ｂＥｎｄ．３細胞結合リガンド、トランスフェリン受容体（ＴｆＲ）リガンド、マンノース受容体リガンド、グルコーストランスポータータンパク質、及びＬＤＬ受容体リガンドからなる群から選択される、請求項１８に記載の化合物。
  20. 眼組織への送達を媒介する受容体を標的とする標的化リガンドをさらに含む、請求項１～１７のいずれか一項に記載の化合物。
  21. 前記標的化リガンドが、トランス－レチノール、ＲＧＤペプチド、ＬＤＬ受容体リガンド、及び糖質系リガンドからなる群から選択される、請求項２０に記載の化合物。
  22. 前記標的化リガンドが、ＲＧＤペプチドであり、前記ＲＧＤペプチドが、Ｈ－Ｇｌｙ－Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｓｅｒ－Ｐｒｏ－Ｌｙｓ－Ｃｙｓ－ＯＨ又はＣｙｃｌｏ（－Ａｒｇ－Ｇｌｙ－Ａｓｐ－Ｄ－Ｐｈｅ－Ｃｙｓ）である、請求項２１に記載の化合物。
  23. 細胞内での標的遺伝子の発現を低下させる方法であって、前記細胞を、
    標的遺伝子に相補的なアンチセンス鎖；
    前記アンチセンス鎖に相補的なセンス鎖；及び
    １つ以上の親油性モノマー
    を含む化合物と接触させることを含み、前記親油性モノマーが、
    Figure 2023500681000166
    Figure 2023500681000167
     （式中：
    ｍは、０～８の整数であり；
    ｎは、１～２１の整数であり；
    Ｒ２’は、Ｈ、ＯＨ、Ｆ、ＯＭｅ、Ｏ－メトキシアルキル、Ｏ－アリル、Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド、Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル、又はＯ－アミノプロピルであり；
    Ｗは、アルキル基であり；
    Ｒ、Ｒ’、及びＲ”は、それぞれ独立に、Ｈ又はアルキル基である）
    からなる群から選択される、方法。
  24. 前記細胞が、肝細胞でない、請求項２３に記載の方法。
  25. ｌｏｇＫｏｗによって測定される前記親油性モノマーの親油性が、０を超える、請求項２３に記載の方法。
  26. 前記二本鎖ｉＲＮＡ剤の血漿タンパク質結合アッセイにおいて非結合分画によって測定される、前記化合物の疎水性が、０．２を超える、請求項２５に記載の方法。
  27. 前記血漿タンパク質結合アッセイが、ヒト血清アルブミンタンパク質を用いた電気泳動移動度シフトアッセイである、請求項２６に記載の方法。
  28. 対象における標的遺伝子の発現を低下させる方法であって、
    標的遺伝子に相補的なアンチセンス鎖；
    前記アンチセンス鎖に相補的なセンス鎖；及び
    １つ以上の親油性モノマー
    を含む化合物を、前記対象に投与することを含み、前記親油性モノマーが、
    Figure 2023500681000168
    Figure 2023500681000169
    Figure 2023500681000170
     （式中：
    ｍは、０～８の整数であり；
    ｎは、１～２１の整数であり；
    Ｒ２’は、Ｈ、ＯＨ、Ｆ、ＯＭｅ、Ｏ－メトキシアルキル、Ｏ－アリル、Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド、Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル、又はＯ－アミノプロピルであり；
    Ｗは、アルキル基であり；
    Ｒ、Ｒ’、及びＲ”は、それぞれ独立に、Ｈ又はアルキル基である）
    からなる群から選択される、方法。
  29. 前記化合物が、肝臓外で投与される、請求項２８に記載の方法。
  30. 前記化合物が、髄腔内又は脳室内に投与される、請求項２９に記載の方法。
  31. 脳又は脊椎組織における標的遺伝子の発現を低下させる、請求項２８に記載の方法。
  32. 前記脳又は脊椎組織が、大脳皮質、小脳、頚椎、腰椎、及び胸椎からなる群から選択される、請求項３１に記載の方法。
  33. 前記標的遺伝子が、ＡＰＰ、ＡＴＸＮ２、Ｃ９ｏｒｆ７２、ＴＡＲＤＢＰ、ＭＡＰＴ（タウ）、ＨＴＴ、ＳＮＣＡ、ＦＵＳ、ＡＴＸＮ３、ＡＴＸＮ１、ＳＣＡ１、ＳＣＡ７、ＳＣＡ８、ＭｅＣＰ２、ＰＲＮＰ、ＳＯＤ１、ＤＭＰＫ、及びＴＴＲからなる群から選択される、請求項３１に記載の方法。
  34. 前記化合物が、前記対象の眼に直接投与される、請求項２８に記載の方法。
  35. 眼組織内での標的遺伝子の発現を低下させる、請求項２８に記載の方法。
  36. 中枢神経系疾患に罹患している対象を治療する方法であって、
    治療有効量の請求項１～２２のいずれか一項に記載の化合物を前記対象に投与し、それによって前記対象を治療するステップを含む、方法。
  37. 前記中枢神経系疾患が、アルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、前頭側頭認知症、ハンチントン病、パーキンソン病、脊髄小脳失調、プリオン病、及びラフォラ病の群から選択される、請求項３６に記載の方法。
  38. 標的遺伝子に相補的なアンチセンス鎖と；
    前記アンチセンス鎖に相補的なセンス鎖と；
    以下のもの：
    Figure 2023500681000171
     （式中：
    Ｒは、親油性部分であり、
    Ｒ２’は、Ｈ、ＯＨ、Ｆ、ＯＭｅ、Ｏ－メトキシアルキル、Ｏ－アリル、Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド、Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル、又はＯ－アミノプロピルであり；
    Ｂは、修飾又は非修飾核酸塩基である）
    からなる群から選択される、担体を介して前記センス鎖及び／又はアンチセンス鎖にコンジュゲートされた親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーと
    を含む化合物。
  39. 標的遺伝子に相補的なアンチセンス鎖と；
    前記アンチセンス鎖に相補的なセンス鎖と；
    以下のもの：
    Figure 2023500681000172
     （式中：
    Ｒは、親油性部分であり；
    ｎは、１～２１の整数であり；
    Ｒ２’は、Ｈ、ＯＨ、Ｆ、ＯＭｅ、Ｏ－メトキシアルキル、Ｏ－アリル、Ｏ－Ｎ－メチルアセトアミド、Ｏ－ジメチルアミノエトキシエチル、又はＯ－アミノプロピルであり；
    Ｂは、修飾又は非修飾核酸塩基である）
    からなる群から選択される、担体を介して前記センス鎖及び／又はアンチセンス鎖の内部位置にコンジュゲートされた親油性部分を含有する１つ以上の親油性モノマーと
    を含む化合物。
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