JP2023082018A - シヌクレイノパチーの治療のためのアルファ-シヌクレインタンパク質のc末端からのペプチド免疫原及びその製剤 - Google Patents
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Abstract
Description
1. ”Alpha-synuclein,”Wikipedia, The Free Encyclopedia, website address:en.wikipedia.org/w/index.php?title=Alpha-synuclein&oldid=781366541(2017年5月30日にアクセスされた).
2. ”Synucleinopathies,” Wikipedia, The Free Encyclopedia, website address:en.wikipedia.org/w/index.php?title=Synucleinopathies&oldid=686287116(2017年5月30日にアクセスされた).
3. ”Beta-synuclein,” Wikipedia, The Free Encyclopedia, website address:en.wikipedia.org/w/index.php?title=Beta-synuclein&oldid=763171134(2017年5月30日にアクセスされた).
4. ”Synucleinopathies,” Wikipedia, The Free Encyclopedia, website address:en.wikipedia.org/w/index.php?title=Synucleinopathies&oldid=686287116(2017年5月30日にアクセスされた).
5. LEE, J.S., et al., “Mechanism of Anti-α-synuclein Immunotherapy”,J./Mov Disord:, 9(1): 14-19(2016)
6. TRAGGIAI, E., et al.“An efficient method to make human monoclonal antibodies from memory B cells:potent neutralization of SARS coronavirus”, Nat Med:, 10(8):871-875(2004)
7. WANG, C., et al.“Versatile Structures of α-Synuclein”, Front Mol Neurosci.9:48(2016)
本開示は、アルファ-シヌクレインタンパク質(α-Syn)のペプチド免疫原コンストラクトに関する。本開示はまた、ペプチド免疫原コンストラクトを含む組成物、ペプチド免疫原コンストラクトを作製及び使用する方法、ならびにペプチド免疫原コンストラクトによって産生される抗体に関する。
本開示は、異種Tヘルパー細胞(Th)エピトープに直接または必要に応じて異種スペーサーを介して共有結合されたα-SynからのB細胞エピトープを含むペプチド免疫原コンストラクトを提供する。
(Th)m-(A)n-(α-SynのC末端フラグメント)-X
または
(α-SynのC末端フラグメント)-(A)n-(Th)m-X
で表すことができ、
式中、
Thは異種Tヘルパーエピトープであり、
Aは異種スペーサーであり、
(α-SynのC末端フラグメント)は、α-SynのC末端から約10から約25のアミノ酸残基を持つB細胞エピトープであり、
Xはアミノ酸のα-COOHまたはα-CONH2であり、
mは、1~約4であり、
nは、0~約10である。
本明細書で使用されるとき、「α-Syn」、「アルファ-シヌクレイン」、「α-シヌクレイン」などの用語は、α-Synを発現する任意の生物由来の(a)全長α-Synタンパク質及び/または(b)そのフラグメントを指す。α-Synは、膜結合、細胞質、及びアミロイド凝集の状態でのさまざまな条件に適応し、汎用性の高い機能を果たす、極端な立体構造の多様性を特徴とする。いくつかの実施形態では、α-Synタンパク質はヒト由来である。ある特定の実施形態では、全長ヒトα-Synタンパク質(受託番号NP_000336)(配列番号1)は140個のアミノ酸を有する。
(i)β-Synはα-Synに結合してその凝集を防ぐことができるため、β-Synと交差反応する抗体の生成を避けるために、ベータ-シヌクレイン(β-Syn)と大幅な配列相同性を共有しない。
(ii)アルツハイマー病の治療のためにAβ1-42を標的とするAN1792ワクチンを使用した臨床試験で以前に報告されているように、髄膜炎菌性脳炎を引き起こす脳の炎症をもたらす可能性のある自己T細胞活性化を防ぐために、α-Syn内に自己Tヘルパーエピトープを欠く。
(iii)その天然の形態からの立体構造変化の影響を受けやすいα-Synの領域内に含まれる。
(iv)自己分子であるため、それ自体は非免疫原性である。
(v)タンパク質担体または強力なTヘルパーエピトープ(複数可)によって免疫原性を付与できる。
(vi)免疫原性を付与され、宿主に投与されるとき:
(a)タンパク質担体または強力なTヘルパーエピトープ(複数可)ではなく、α-Synペプチド配列(B細胞エピトープ)に対する高力価抗体を誘発する。
(b)単量体、オリゴマー、または原線維の形態で、α-Synの変性β-シートと反応する高力価抗体を誘発し、そのような抗体がα-Synの凝集を防ぎ、あらゆるα-Synの凝集体を脱凝集させ、毒性のあるα-Synオリゴマー、凝集体、及び/または原線維の除去をもたらし、したがって、脳内に負荷されるα-Syn凝集体が軽減または防止される。
(c)天然α-Synは広い組織分布を持つ主要な細胞タンパク質であるため、高い安全性の懸念を呈する天然α-Synと反応する抗体を誘発しない。
本開示は、異種Tヘルパー細胞(Th)エピトープに直接または必要に応じて異種スペーサーを介して共有結合されたα-SynからのB細胞エピトープを含むペプチド免疫原コンストラクトを提供する。
開示されるα-Synペプチド免疫原コンストラクトは、必要に応じて、α-SynからのB細胞エピトープを異種Tヘルパー細胞(Th)エピトープに共有結合させる異種スペーサーを含む。
α-Synペプチド免疫原コンストラクトは、式:
(Th)m-(A)n-(α-SynのC末端フラグメント)-X
または
(α-SynのC末端フラグメント)-(A)n-(Th)m-X
で表すことができ、
式中、
Thは異種Tヘルパーエピトープであり、
Aは異種スペーサーであり、
(α-SynのC末端フラグメント)は、α-SynのC末端から約10から約25のアミノ酸残基を持つB細胞エピトープであり、
Xはアミノ酸のα-COOHまたはα-CONH2であり、
mは、1~約4であり、
nは、0~約10である。
本開示はまた、開示されるα-Synペプチド免疫原コンストラクトを含む組成物を提供する。
開示されるα-Synペプチド免疫原コンストラクトを含む組成物は、液体または固体の形態であり得る。液体組成物は、水、緩衝液、溶媒、塩、及び/またはα-Synペプチド免疫原コンストラクトの構造的または機能的特性を変えない他の許容可能な試薬を含むことができる。ペプチド組成物は、開示されるα-Synペプチド免疫原コンストラクトの1つ以上を含むことができる。
本開示はまた、開示されるα-Synペプチド免疫原コンストラクトを含む医薬組成物に関する。
本開示はまた、CpGオリゴヌクレオチドとの免疫刺激複合体の形態のα-Synペプチド免疫原コンストラクトを含む医薬組成物に関する。そのような免疫刺激複合体は、アジュバント及びペプチド免疫原安定剤として作用するように特に適合されている。免疫刺激複合体は微粒子の形態であり、免疫系の細胞にα-Synペプチド免疫原を効率的に提示して免疫応答を生じさせることができる。免疫刺激複合体は、非経口投与用の懸濁液として製剤化されてもよい。免疫刺激複合体は、α-Synペプチド免疫原の、非経口投与後の宿主の免疫系細胞への効率的な送達のために、無機塩またはin situゲル化ポリマーと組み合わせた懸濁液として、w/oエマルジョンの形態で製剤化することもできる。免疫刺激複合体は、保護/治療効果があるα-Synのβ-シートに対する免疫応答を生成することができる(例えば、実施例13の図8A、8B、及び8C)。
本開示はまた、α-Synペプチド免疫原コンストラクトにより誘発される抗体を提供する。
α-Synペプチド免疫原コンストラクトによって産生される抗体は、in vitro機能アッセイに使用できる。これらの機能アッセイには以下が含まれるが、これらに限定されない:
(a)組換えα-Syn凝集のin vitro阻害;予め形成された組換えα-Syn凝集体を脱凝集する(実施例8を参照されたい);
(b)細胞内のα-Syn凝集のin vitro阻害、及び細胞内での予め形成されたα-Syn凝集体の解離(実施例9を参照されたい);
(c)ミクログリアTNF-α及びIL6分泌の減少(実施例10を参照されたい);
(d)外因性α-Syn凝集体によって引き起こされる神経変性の減少(実施例11を参照されたい);
(e)α-Syn過剰発現細胞における神経変性の減少(実施例12を参照されたい);
(f)血清α-Synレベルの低下、脳のオリゴマーα-Synレベルの低下、神経病理学の低下及び運動活動の回復を示すマウスの線維性α-Syn接種及びMPP+誘発性パーキンソン病モデルでの有効性のin vivo証明(実施例15を参照されたい)。
本開示はまた、α-Synペプチド免疫原コンストラクト、組成物、及び医薬組成物を作製及び使用する方法に関する。
本開示のα-Synペプチド免疫原コンストラクトは、当業者によく知られている化学合成法により作製することができる(例えば、Fields et al., Chapter 3 in Synthetic Peptides:A User’s Guide, ed. Grant, W. H. Freeman & Co., New York, NY, 1992, p. 77を参照されたい)。α-Synペプチド免疫原コンストラクトは、例えば、Applied Biosystemsペプチドシンセサイザーモデル430Aまたは431の側鎖保護アミノ酸を使用して、t-BocまたはF-moc化学のいずれかで保護されたα-NH2によって固相合成の自動Merrifield技術を使用して合成できる。Thエピトープのコンビナトリアルライブラリーペプチドを含むα-Synペプチド免疫原コンストラクトの調製は、特定の可変位置でカップリングするための代替アミノ酸の混合物を提供することで実現できる。
様々な例示的な実施形態はまた、α-Synペプチド免疫原コンストラクト及びCpGオリゴデオキシヌクレオチド(ODN)分子を含む免疫刺激複合体を生成する方法を包含する。安定化された免疫刺激複合体(ISC)は、α-Synペプチド免疫原コンストラクトのカチオン部分とポリアニオンCpG ODN分子に由来する。自己集合システムは、電荷の静電中和によって駆動される。α-Synペプチド免疫原コンストラクトのカチオン性部分とアニオン性オリゴマーのモル電荷比の化学量論は、会合の程度を決定する。α-Synペプチド免疫原コンストラクトとCpG ODNの非共有静電的結合は、完全に再現可能なプロセスである。ペプチド/CpG ODN免疫刺激複合体の凝集体は、免疫系の「プロフェッショナル」抗原提示細胞(APC)への提示を促進し、したがって複合体の免疫原性をさらに増強する。これらの複合体は、製造中の品質管理のために容易に特徴付けられる。ペプチド/CpG ISCは、in vivoで十分に許容される。CpG ODNとα-SynG111-D135フラグメント由来ペプチド免疫原コンストラクトとを含むこの新しい微粒子システムは、CpG ODNの使用に関連する一般化されたB細胞マイトジェン性を利用しつつ、バランスのとれたTh-1/Th-2型応答を促進するように設計された。
様々な例示的な実施形態はまた、α-Synペプチド免疫原コンストラクトを含む医薬組成物を包含する。特定の実施形態では、医薬組成物は、油中水型エマルジョン及び無機塩を含む懸濁液を使用する。
本開示はまた、α-Synペプチド免疫原コンストラクトを含む医薬組成物を使用する方法を含む。
(a)宿主でのα-Syn凝集を阻害する;
(b)宿主で予め形成されたα-Syn凝集体の分解を誘発する;
(c)宿主のミクログリアTNF-α及びIL6分泌を減少させる;
(d)宿主の外因性α-Syn凝集体によって引き起こされる神経変性を減少させる;
(e)α-Syn過剰発現細胞の神経変性を減少させる;
(f)宿主の血清α-Synレベルを低減する;
(g)宿主の脳内のオリゴマーα-Synレベルを低減する;
(h)神経病理を軽減し、宿主の運動活動の回復;など。
本発明の特定の実施形態には、以下が含まれるが、これらに限定されない。
(1)α-シヌクレイン(α-Syn)ペプチド免疫原コンストラクトであって、
配列番号1のアミノ酸G111近辺からアミノ酸D135近辺までに対応するα-SynのC末端フラグメントからの約10から約25アミノ酸残基を含む、B細胞エピトープと;
配列番号70~98からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むTヘルパーエピトープと;
アミノ酸Lys-、Gly-、Lys-Lys-Lys-、(α,ε-N)Lys、及びε-N-Lys-Lys-Lys-Lys(配列番号148)からなる群から選択される必要に応じた異種スペーサーと、を含み、
前記B細胞エピトープが、前記Tヘルパー細胞エピトープに直接または前記必要に応じた異種スペーサーを介して共有結合している、前記α-Synペプチド免疫原コンストラクト。
(Th)m-(A)n-(α-SynのC末端フラグメント)-X
または
(α-SynのC末端フラグメント)-(A)n-(Th)m-X
を含み、
式中、
Thは前記Tヘルパーエピトープであり、
Aは前記異種スペーサーであり、
(α-SynのC末端フラグメント)は、前記B細胞エピトープであり、
Xはアミノ酸のα-COOHまたはα-CONH2であり、
mは、1から約4であり、
nは1から約10である、
(1)に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクト。
b.前記アジュバントが、Al(OH)3またはAIPO4からなるグループから選択されるアルミニウムの無機塩である、
(13)に記載の医薬組成物。
b.前記α-Synペプチド免疫原コンストラクトが、CpGオリゴデオキシヌクレオチド(ODN)と混合されて安定化された免疫刺激複合体を形成する、
(13)に記載の医薬組成物。
b.配列番号113の前記B細胞エピトープに特異的に結合する、単離された抗体またはそのエピトープ結合フラグメントと、
の混合物を含む、(20)に記載の組成物。
a.生体試料を、(16)に記載の抗体またはそのエピトープ結合フラグメントに、前記抗体またはそのエピトープ結合フラグメントがα-Syn凝集体に結合することを可能にする条件下で曝露することと、
b.前記生体試料中の前記α-Syn凝集体に結合した前記抗体またはそのエピトープ結合断片の量を検出することと、
を含む、前記方法。
実施例1
アルファシヌクレインの関連ペプチドの合成及びその製剤の調製
a.α-SynのC末端フラグメントの合成
α-Synペプチド免疫原コンストラクトの開発努力に含まれていたデザイナーα-SynC末端フラグメントの合成方法を説明する。ペプチドは、血清学的アッセイ、実験室でのパイロット及びフィールド研究に有用な少量で、ならびに、医薬組成物の産業/商業生産に有用な大規模(キログラム)量で合成された。有効なα-Synペプチド免疫原コンストラクトで使用するための最適なペプチドコンストラクトのスクリーニング及び選択のために、約10から40アミノ酸の長さの配列を持つα-Syn関連抗原ペプチドの大きなレパートリーが設計された。
油中水型エマルジョン及び無機塩を含む懸濁液を使用する製剤を調製した。医薬組成物を大規模な集団で使用するよう設計し、予防も投与の目標の一部とするために、安全性は考慮すべき別の重要な要素となる。臨床試験の多くの医薬組成物にヒトの油中水エマルジョンを使用しているにもかかわらず、ミョウバンはその安全性のために医薬組成物で使用するための主要な補助剤のままである。したがって、ミョウバンまたはその無機塩であるADJUPHOS(リン酸アルミニウム)は、臨床応用のための調製においてアジュバントとして頻繁に使用される。
組換えアルファシヌクレインタンパク質の調製
α-Syn遺伝子のpGEX-4T1へのクローニングは、Neurotoxicology and teratology 2004, 26 (3):397-406で、以前記載されていた。標的配列(配列番号1)をBamHIとXhoI制限部位の間でpGEX-4T1ベクターに挿入した。フラグメントは、KAPA HiFi DNAポリメラーゼ(Kapa Biosystems, Inc., Woburn, MA, USA)を使用したポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によって生成された。プライマー配列は以下の通りである:フォワードプライマー5’-cgggatccgatgtgtttatgaaaggtctgag-3’(配列番号149);リバースプライマー5’-ggaattccgatgtgtttatgaaaggtctgag-3’(配列番号150)。PCR条件は以下の通りであった:94℃で1分間の変性後、94℃で15秒間の30サイクルの変性、60℃で30秒間のアニーリング、68℃で2分間の伸長、さらに68℃で5分間の後終了。Q5 Site-Directed Mutagenesis Kit(New England BioLabs, Beverly, MA, USA)を使用して、A53Tα-Synの部位特異的変異導入を実施した。変異型α-Synのためのプライマー配列は以下のとおりである:フォワードプライマー5’-tcatggtgtgaccaccgttgcag-3’(配列番号151);リバースプライマー5’-accacgccttctttggttttg-3’(配列番号152)。
血清学的アッセイ及び試薬
合成ペプチドコンストラクト及びその製剤の機能的免疫原性を評価するための血清学的アッセイ及び試薬について、以下に詳述する。
以下の実施例に記載されている免疫血清試料を評価するためのELISAアッセイが開発され、以下に記載されている。96ウェルプレートのウェルを、10mMのNaHCO3緩衝液、pH9.5中(特に明記しない限り)、2μg/ml(特に明記しない限り)での、標的ペプチドであるα-SynフラグメントA85-A140、A91-A140、A101-A140、A111-A140、D121-A140、E126-A140、K97-D135、G101-D135、G111-D135、D121-D135、E123-D135、E126-D135、G101-132、及びG111-G132ペプチド(配列番号:4~17)の100μlで37℃において1時間、個別にコーティングした。
ペプチド(配列番号70~98)でコーティングされたウェルを、非特異的タンパク質結合部位をブロッキングするために、PBS中の3重量%のゼラチン250μLによって37℃で1時間インキュベートし、その後、0.05体積%のTWEEN(登録商標)20を含むPBSで3回洗浄して乾燥させた。分析対象の血清は、20体積%の正常ヤギ血清、1重量%のゼラチン、及び0.05体積%のTWEEN(登録商標)20を含むPBSで1:20に希釈した(特に明記しない限り)。希釈した検体(例えば、血清、血漿)100マイクロリットル(100μL)を各ウェルに添加し、37℃で60分間反応させた。次いで、結合していない抗体を除去するために、PBSの0.05体積%TWEEN(登録商標)20でウェルを6回洗浄した。ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP)結合の種(例えば、マウス、モルモット、またはヒト)に特異的なヤギ抗IgGは、陽性ウェルで形成された抗体/ペプチド抗原複合体と結合する標識トレーサーとして使用された。あらかじめ滴定された最適希釈で、PBS中0.05体積%のTWEEN(登録商標)20を含む1体積%の正常ヤギ血清中のペルオキシダーゼ標識ヤギ抗IgGの100マイクロリットルを各ウェルに添加して37℃でさらに30分間インキュベートした。ウェルをPBS中の0.05体積%のTWEEN(登録商標)20で6回洗浄して未結合抗体を除去し、0.04重量%の3’,3’,5’,5’-テトラメチルベンジジン(TMB)を含む基質混合物100μLと反応させ、クエン酸ナトリウム緩衝液中の0.12体積%の過酸化水素をさらに15分間反応させた。この基質混合物を使用して、着色生成物を形成することによりペルオキシダーゼ標識を検出した。100μLの1.0MのH2SO4を添加して反応を停止させ、450nmの吸光度(A450)を決定した。さまざまなα-Syn由来ペプチド免疫原を投与された免疫動物の抗体価の決定のために、1:100から1:10,000までの血清の10倍連続希釈が試験され、Log10として表される試験された血清の力価は、カットオフA450を0.5に設定したA450の線形回帰分析によって計算された。
免疫された宿主における抗α-Syn抗体の詳細な特異性分析は、エピトープマッピングによって決定された。簡潔に述べると、96ウェルプレートのウェルは、ウェルあたり0.1mLあたり0.5μgで個々のα-Synの10merペプチド(配列番号18~69)でコーティングされ、その後、100μLの血清試料(PBS中1:100希釈)を、上記の抗体ELISA法のステップに従って、10merプレートウェルで二重化してインキュベートした。α-Synペプチド免疫原コンストラクトのB細胞エピトープと、免疫された宿主における免疫血清の抗α-Syn抗体の関連する詳細な特異性分析は、対応するα-Synペプチド(配列番号99、102、108、110、112、113)もしくはスペーサー及びTh配列なしのそのフラグメント、または追加の反応性と特異性の確認のためのβ-Syn(配列番号153)についても試験された。
動物から免疫前及び免疫血清試料を実験的免疫プロトコールに従って収集し、56℃で30分間加熱して血清補体因子を不活性化した。医薬組成物の投与後、プロトコールに従って血液試料が得られ、特定の標的部位(複数可)に対するそれらの免疫原性が評価された。連続希釈した血清を試験し、正の力価を相互希釈のLog10として表した。特定の医薬組成物の免疫原性は、標的抗原内の所望のエピトープ特異性に対する高い力価のB細胞抗体応答を誘発する一方で、利用される「ヘルパーT細胞エピトープ」に対する抗体反応性を低いものから無視できるものに維持し、所望のB細胞応答の増強をもたらす能力によって評価される。
α-Syn由来ペプチド免疫原を投与されたマウスの血清α-Synレベルは、捕捉抗体として抗α-Syn抗体及び検出抗体としてビオチン標識抗α-Syn抗体を使用して、サンドイッチELISA(Cloud-clon、SEB222Mu)によって測定された。簡潔に述べると、抗体を96ウェルプレートにコーティング緩衝液(15mMのNa2CO3、35mMのNaHCO3、pH9.6)中100ng/ウェルで固定し、4℃で一晩インキュベートした。コーティングされたウェルは、200μL/ウェルのアッセイ希釈液(PBS中、0.5%BSA、0.05%TWEEN(登録商標)-20、0.02%ProClin 300)により室温で1時間ブロッキングされた。プレートを200μL/ウェルの洗浄緩衝液(0.05%TWEEN(登録商標)-20を含むPBS)で3回洗浄した。精製組換えα-Synを使用して、5%マウス血清を含むアッセイ希釈液で標準曲線(2倍連続希釈で156~1250ng/mLの範囲)を作成した。50μLの希釈血清(1:20)と標準液をコーティングしたウェルに添加した。インキュベーションは室温で1時間行った。すべてのウェルを吸引し、200μL/ウェルの洗浄緩衝液で6回洗浄した。捕捉されたヒトα-Synを、室温で1時間、100μLの検出抗体溶液(アッセイ希釈液中の50ng/mlのビオチン標識HP6029)とインキュベートした。次いで、ストレプトアビジンpoly-HRP(1:10,000希釈、Thermo Pierce)を1時間(100μL/ウェル)使用して、結合したビオチン-HP6029を検出した。すべてのウェルを吸引し、200μL/ウェルの洗浄緩衝液で6回洗浄し、100μL/ウェルの1MのH2SO4の添加により反応を停止させた。標準曲線は、SoftMax Proソフトウェア(Molecular Devices)を使用して作成され、4つのパラメーターロジスティック曲線適合を生成し、試験されたすべての試料のα-Synの濃度を計算するために使用された。Prismソフトウェアを使用することにより、スチューデントt検定を使用してデータを比較した。
凝集したα-Synを調製するために、精製した野生型またはA53T変異型α-Syn[100μLのPBS/KCl凝集緩衝液(1×PBS、pH7.4中、2.5mMのMgCl2、50mMのHEPES、及び150mMのKCl)中、0.1μg/μl]を振とうせずに、サーモミキサー(Eppendorf)で7日間、1.5mLエッペンドルフチューブ中で、37℃でインキュベートした。凝集したα-Synは、後で使用するためにすぐに-80℃で凍結した。
抗α-Syn抗体は、アフィニティーカラム(Thermo Scientific、Rockford)を使用することによって、異なる配列のペプチド(配列番号99~121)を含むα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化したモルモットの注射後3~15週間(WPI)に収集した血清から精製した。簡潔に述べると、緩衝液(0.1Mリン酸及び0.15M塩化ナトリウム、pH 7.2)平衡化後、400μLの血清をNabプロテインGスピンカラムに添加し、10分間の転倒混和と5,800×gで1分間の遠心分離を行った。カラムを結合緩衝液(400μL)で3回洗浄した。続いて、溶離緩衝液(400μL、0.1MグリシンpH 2.0)をスピンカラムに添加し、5,800×gで1分間遠心分離した後、抗体を溶離した。溶離した抗体を中和緩衝液(400μL、0.1M Tris pH 8.0)と混合し、これらの精製抗体の濃度を、BSA(ウシ血清アルブミン)を標準として、OD280でNan-Dropを使用して測定した。
ウエスタンブロットを使用して、異なるサイズのα-Syn分子複合体への結合特異性について、異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化したモルモット抗血清から精製した抗α-Syn抗体をスクリーニングした。20μMのα-Synを12%Tris-グリシンSDS-PAGEで分離し、光誘起架橋(PICUP)処理の前にニトロセルロース(NC)膜に転写した。膜を、モルモット抗血清から精製した1μg/mLでの抗α-Syn抗体とともにインキュベートし、次いで、HRP(706-035-148、Jackson)と結合したロバ抗モルモット抗体とともにインキュベートした。ブロットは化学発光試薬Western Lightning ECL Pro(PerkinElmer)で視覚化された。その結果、単量体α-Syn(Mw14,460Da)は14kDaのサイズ付近でブロットされたが、二量体、三量体、またはオリゴマーの分子量は14kDaの単量体α-Synのサイズよりも数倍大きくなった。二量体、三量体、及びより大きなオリゴマーなどのさまざまなオリゴマー種を検出できる市販の抗体、Syn211(Abeam)を陽性対照として使用した。
Aβ1-42、Tau、及びα-Synのα-ヘリックス単量体、β-シート単量体、β-シートオリゴマー、及びβ-シート原線維の調製は以下のとおりである。
1.Aβ1-42α-ヘリックス単量体:20μgのAP1-42β-シート単量体(50μL)を20%トリフルオロ酢酸及び20%ヘキサフルオロイソプロパノール(10μL)を含む1×PBSに添加し、4℃で24時間インキュベートしてα-ヘリックス単量体を形成した。
2.Aβ1-42β-シート単量体:37℃で24時間凝集した5%TFAを含む120μLのl×PBS中の60μgのAβ1-42を10kDaカットオフフィルター(Millipore)に移し、β-シート単量体を回収した。
3.Aβ1-42β-シートオリゴマー:37℃で3日間凝集した120μLの1×PBS中の60μgのAβ1-42を氷上で超音波処理し、10及び30kDaカットオフフィルター(Millipore)に移して35kDa未満のβシートオリゴマー原線維を回収した。
4.Aβ1-42β-シート原線維:37℃で3日間凝集した120μLの1×PBS中の60μgのAβ1-42を氷上で超音波処理し、30kDaカットオフフィルター(Millipore)に移してβシート原線維を単離した。
5.α-Synα-ヘリックス単量体:新たに調製した40μgのα-Synを4℃の100μLの冷1×PBSに溶解し、直ちに10kDaカットオフフィルター(Millipore)に移してα-ヘリックス単量体を回収した。
6.α-Synβ-シート単量体:100μLのPBS/KCl緩衝液で37℃、24時間インキュベートした40μgのα-Synを10kDaカットオフフィルター(Millpore)に移し、β-シート単量体を回収した。
7.α-Synβ-シートオリゴマー:100μLのPBS/KCl緩衝液で37℃、8日間凝集した40μgのα-Synを氷上で超音波処理した後、30及び100kDaカットオフフィルターに移してβシートオリゴマーを回収した。
8.α-Synβ-シート原線維:100μLのPBS/KCl緩衝液で37℃、8日間凝集した40μgのα-Synを氷上で超音波処理した後、30及び100kDaカットオフフィルターに移してβシート原線維を単離した。Tau441α-ヘリックス単量体: 4℃で100μLのl×PBSで調製した60μgのTauを100kDaカットオフに移し、αヘリックス単量体を回収した。
9.Tau441β-シート単量体:25℃で48時間、10ユニット/mLヘパリンを含む100μLの1×PBSで凝集した60μgのTauを4℃で100kDaカットオフフィルターに移し、βシート単量体を回収した。
10.Tau441β-シートオリゴマー:37℃で48時間、10ユニット/mLヘパリンを含む100μLのl×PBSで凝集した60μgのTauを、4℃で100及び300kDaカットオフフィルター(Pall)に移してβシートオリゴマーを回収した。
11.Tau441β-シート原線維:37℃で6日間、10ユニット/mLヘパリンを含む100μLのl×PBSで凝集した60μgのTauを、4℃で300kDaカットオフフィルター(Pall)に移し、βシート原線維を単離した。
NGF処理後の親PC12、モック対照PC12、及びα-Syn過剰発現PC12細胞で、8または9WPIで収集したモルモット抗血清から精製した抗α-Syn抗体を用いた免疫細胞化学(ICC)を行って、免疫後に誘発された抗体の結合親和性を評価した。細胞核をDAPI(4’,6-ジアミジノ-2-フェニルインドール)で対比染色した。蛍光顕微鏡で写真を撮影し、細胞の総数に対する陽性染色された細胞の数の比率を、1%未満、1~15%、16~50%、50%を超えるものを表す、-、+、++、及び+++で分類してスコア化した。
免疫原性及び有効性の研究に使用される細胞及び動物
a.α-Syn過剰発現PC12細胞:
全長ヒト野生型α-SynまたはA53T変異型α-SynをコードするcDNA配列を、CMVプロモーターを持つpZD/XOL-Lベクターに挿入することにより、pZD/XOL-L-α-Synプラスミドを構築した。製造業者の手順に従って、リポフェクタミンLTXトランスフェクション試薬(Invitrogen、Carlsbad、CA、USA)を使用して、コンストラクトをPC12細胞にトランスフェクトした。2.5μLのトランスフェクション混合物、500μLのOpti-MEM培地、2.5μLのPLUS試薬、及び8.75μLのリポフェクタミンLTXを混合し、室温で25分間インキュベートした。培地を1.5mLのRPMI1640増殖培地に交換した後、500μLのトランスフェクション混合物を各ウェルに直接添加し、37℃で1日間インキュベートした。トランスフェクション効率は、PCR及びウエスタンブロッティングで確認された。
免疫原性の研究は、成熟した、ナイーブな、成体のオス及びメスのダンカン・ハートレー・モルモット(300~350g/BW)で実施された。実験では、群ごとに少なくとも3匹のモルモットを使用した。ダンカン・ハートレー・モルモット(8~12週齢;Covance Research Laboratories、Denver、PA、USA)を含むプロトコールは、承認されたIACUC申請の下で、契約動物施設、及びスポンサーとしてUBIで実行された。
FVBメスマウス(体重25~30g)は、12時間の明期:12時間の暗期のサイクルで飼育され、動物のケアはAAALACが承認したガイドラインに従った。繊維性α-Synは、α-Synペプチド(5mg/mL)を0.1%NaN3含有PBS/高KCl緩衝液中で、37℃で振とうせずに7日間インキュベートすることにより調製した。ThT蛍光を測定することによって線維化をモニターし、シグナルが元のα-Syn単量体の3倍を超えて増加したときに確認した。ウエスタンブロット法はまた、イソフルラン麻酔動物の片側黒質(前-後;-3.0mm;内側-外側:-1.3mm;背-腹:ブレグマ及び硬膜から-4.7mm)、ならびに背部新線条体(前-後;+0.2mm、内側-外側;-2mm、背-腹:ブレグマ及び硬膜から-3.2mm)への接種の前にα-Synの凝集を検証するために使用された。
Balb/cメスマウス(体重18~20g)は、12時間の明期:12時間の暗期のサイクルで飼育され、動物のケアはAAALACが承認したガイドラインに従った。MPP+ヨージド(Sigma、St. Luis、MO)を生理食塩水に溶解し、18μgのMPP+ヨージド(0.8mg/kg)を含む10μlの溶液を麻酔動物の片側脳室に注射した。注射部位の定位座標は、ブレグマ-1.0mm、横1.0mm、深さ2.0mmであった。
アルファシヌクレインペプチド免疫原コンストラクトを組み込んだ多成分医薬組成物の設計原理、スクリーニング、同定、及び最適化
a.設計の歴史
各α-Synペプチド免疫原コンストラクトまたは免疫療法製品には、特定の疾患メカニズムと介入に必要な標的タンパク質(複数可)に基づいた独自の設計フォーカスとアプローチが必要である。設計の対象となる標的には、病気の経路に関与する細胞タンパク質、または病原体由来のいくつかのタンパク質が関与する可能性のある感染因子が含まれ得る。研究から商品化までのプロセスは非常に長く、典型的には、達成するまでに10年以上必要とする。
医薬品組成物に組み込むための最も強力なペプチドコンストラクトを生成するために、麻疹ウイルス融合(MVF)タンパク質配列またはB型肝炎表面抗原(HBsAg)タンパク質からさらに設計された、さまざまな病原体または人工Tヘルパーエピトープに由来する無差別Tヘルパーエピトープの大きなレパートリーは、モルモットの免疫原性研究に組み込まれた。α-Syn126-140、α-Syn121-140、α-Syn111-140、α-Syn101-140、α-Syn91-140、α-Syn85-140、α-Syn121-135、α-Syn111-135、α-Syn101-135、α-Syn97-135、α-Syn123-135、α-Syn126-135、α-Syn111-132、及びα-Syn101-132由来のペプチドコンストラクトの代表的な研究は、表3(配列番号99~121)に示され、α-Synペプチドは、スペーサー(複数可)としてεK及び/またはKKKを介して、個々の無差別Tヘルパーエピトープと結合していた。
α-Synは天然変性タンパク質である。それは、140個のアミノ酸で構成され、3つの領域に分かれている。N末端領域(残基1~60)は、膜の認識と結合の典型的な立体構造である両親媒性ヘリックスを形成できる。残基61~95を含む中央領域は、AD老人斑で最初に同定された非アミロイドβ成分(NAC)としてよく知られている。この領域は、βに富む立体配座を形成する傾向が高く、凝集しやすい傾向がある。この領域内の異なるタイプの翻訳後修飾は、α-Syn凝集の調節に明確に異なる効果を示す。残基96~140のC末端領域は、プロリンと負に帯電した残基に富み、これは、溶解性を維持する天然変性タンパク質に見られる一般的な特性である。このC末端ドメインは、疎水性が低く、正味の負電荷が大きいため、一般的にランダムコイル構造で存在する。in vitroの研究により、これらの負電荷を中和するpHの低下によってα-Syn凝集が誘発できることが明らかになっている。α-Synは、膜結合、細胞質、及びアミロイド凝集の状態でのさまざまな条件に適応し、汎用性の高い機能を果たす、極端な立体構造の多様性を特徴とする。タンパク質が溶解性を維持するために重要なC末端のランダムコイルと天然変性領域は、ペプチド免疫原設計の標的として選択されたが、この領域がN末端両親媒性ヘリックスと中央のβに富む立体配座領域と比べて抗体または他の物理的要因による調節に最も影響を受けやすいと考えられたからである。
予備的な免疫原性分析により、α-Syn配列のN末端からのペプチド配列の削除により、α-Syn126-140(配列番号9)、α-Syn121-140(配列番号8)、α-Syn111-140(配列番号7)ペプチドを完全に非免疫原性にするが、いくつかの中程度の免疫原性が、α-Syn101-140(配列番号6)、α-Syn91-140(配列番号5)、及びα-Syn85-140(配列番号4)ペプチド(表4)で観察され、C末端配列内に潜在的な自己Th様構造の存在を示し、α-SynのC末端にヘルパーT細胞エピトープ(複数可)構造の存在が確認された。Bエピトープ(複数可)設計にこのような配列を含めると、先立つアルツハイマー病ワクチンのAN1792のように、自己T細胞の活性化による追加免疫での脳の炎症を引き起こす可能性がある。したがって、この発見では、Bエピトープ設計に自己T細胞エピトープ(複数可)が含まれる可能性を避けるために、アミノ酸残基G111から始まるB細胞エピトープ(複数可)でα-Synペプチド免疫原コンストラクトを設計する必要がある。
表2には、B細胞エピトープ免疫原性を強化するために、マウス、ラット、モルモット、ヒヒ、マカクなどから得られた多種の相対効力について群内で試験された合計29の異種Thエピトープ(配列番号70~98)が列挙される。表5に示すように、MvFタンパク質に由来するUBITh1(配列番号83)及びUBITh2(配列番号84)T細胞エピトープは、両方とも非免疫原性α-Syn101-140(配列番号6)ペプチドをそれぞれ強力及び中程度の免疫原性に増強することができる。複数のα-Syn由来のペプチド免疫原コンストラクトの広範な試験が実行され、これらの免疫原コンストラクト間の相対的な免疫原性のランキングが可能になった。UBITh3(配列番号81)でも、長いα-SynペプチドA91-A140(配列番号5)でコーティングしたプレートで、ELISAで試験するとき、表6に示すように、スペーサーを介してさまざまなC末端α-Synペプチド(配列番号4~9)に共有結合するとき、同様の免疫増強活性が見られる。
シヌクレインファミリーには、3つの既知のタンパク質、α-Syn、β-Syn、及びガンマ-シヌクレインが含まれる。すべてのシヌクレインは、交換可能なアポリポタンパク質のクラスA2脂質結合ドメインと類似性のある、高度に保存されたアルファヘリックス脂質結合モチーフを共有している。β-Synは、α-Synと非常に相同である。β-Synは、パーキンソン病などの神経変性疾患で起こるα-Syn凝集の阻害剤であることが示唆されている。したがって、β-Synは、α-Synの神経毒性作用から中枢神経系を保護する可能性がある。したがって、対応する凝集保護β-Synではなく、α-シヌクレインと優先的に反応する抗体を誘発するために、α-Synペプチド免疫原コンストラクトを有することが好ましい。C末端がA140で終わる6つのペプチド免疫原コンストラクトを試験するとき、これらのコンストラクトの免疫血清に由来するすべての抗体は、表6に示すように、対応するサイズのβ-Synと大幅な交差反応性を示した。α-Synとβ-Syn(配列番号1及び2)の間の配列相同性を綿密に調べると、C末端の5個のアミノ酸YEPEAに対応する配列が2つのタンパク質間で同一であることが示された。したがって、これらのYEPEAの5個のアミノ酸を含む配列を除くBエピトープ(複数可)を設計することが望ましい。したがって、表6に示す免疫原性研究からの発見は、Bエピトープ(複数可)設計におけるYEPEA(Y136~A140)の削除をもたらす。スペーサー配列、及び、例えば人工TヘルパーペプチドUBITh1(配列番号83)のα-Synペプチド免疫原コンストラクトへの組み込みの際、表7のα-Synペプチド免疫原(配列番号107~114)で示されるYEPEAテールを除くB細胞エピトープ配列を使用する設計は、長いα-SynペプチドK97-A140(配列番号110)で評価すると、すべて高い免疫原性となった。どの免疫血清もβ-Synと反応しなかった。したがって、表6及び表7から得られたデータから、ペプチド免疫原コンストラクトのBエピトープ設計は、α-SynG111からD135及びそのフラグメントに限定される。
α-Synペプチド免疫原の設計に適切な原理を使用したが、設計されたα-Synペプチド免疫原コンストラクトから生成された抗体が、G111で始まりD135で終わる配列またはそのフラグメントを持つBエピトープを持つことが驚くべきことに見出され、誘発された抗体は、β-シートα-Syn単量体、オリゴマー、及び原線維と特異的に反応するが、β-シートAβ1-42またはTau1-441と反応しないため、図8のα-Synペプチド免疫原コンストラクト(配列番号112及び113)で代表的に示されるように、理想的なα-Synペプチド免疫原コンストラクトの候補を提供する。
多様な遺伝的背景を持つ患者を治療するための医薬組成物を設計するとき、設計を多様な遺伝的背景を持つ最大人口をカバーできるようにすることが重要である。したがって、このような組み合わせに対するα-Syn由来ペプチド免疫原コンストラクトの相乗的免疫原性効果について調査された。MVFまたはHBsAgに由来する無差別Tヘルパーエピトープは、このような免疫原性の強化を提供する最も強力なものの1つであるため、ヘルパーTエピトープを含むペプチドコンストラクトの組み合わせは、そのような探索のために設計された。同じBエピトープを持つ2つのペプチド免疫原コンストラクトの混合物は、それぞれの個々のペプチドコンストラクトによって誘発される免疫応答と比較したときに、かなりの免疫応答を誘発することが見出された。
α-Synペプチド免疫原コンストラクトにより標的化B細胞エピトープのみに対して誘発される焦点化抗体応答
標的化B細胞エピトープペプチドに対する免疫応答を、そのようなB細胞エピトープペプチドのそれぞれの担体タンパク質への化学的コンジュゲーションによって増強するために使用されるすべての担体タンパク質(例えば、キーホールリンペットヘモシアニン(KLH)、またはジフテリアトキソイド(DT)及び破傷風トキソイド(TT)タンパク質などの他の担体タンパク質)は、免疫された宿主において、90%を超える強化担体タンパク質に対する抗体、及び10%未満の標的化B細胞エピトープに対する抗体が誘発される。したがって、本発明のα-Synペプチド免疫原コンストラクトの特異性を評価することは興味深い。免疫原性評価のために、スペーサー配列を介して異種T細胞エピトープUBITh1(配列番号83)に結合されたさまざまな長さのB細胞エピトープを持つ、一連の8つのα-Synペプチド免疫原コンストラクト(配列番号107から114)を調製した。UBITh1(Bエピトープ免疫増強に使用されるTヘルパーペプチド)をプレートにコーティングし、モルモット免疫血清を使用して、免疫増強に使用したUBITh1ペプチドとの交差反応性を試験した。表6及び表7に示すように、Bエピトープ(複数可)に対して生成された高力価の抗体によって示されるように、対応する標的化Bエピトープに対するこれらのコンストラクトの高い免疫原性とは対照的に、表8に示すように、すべてではないが、免疫血清の多くは、UBITh1ペプチドに対して非反応性であることが見出された。
さまざまなアルファ-シヌクレインペプチド免疫原コンストラクトに対する免疫血清(9 WPI)による詳細な特異性分析のためのエピトープマッピング
α-SynのC末端領域内の特定の残基への抗体結合部位(複数可)を決定する詳細なエピトープマッピング研究(表9)では、(K80-A140)のα-Synアミノ酸配列を包含する、52の重複する10mer(配列番号18~69)が合成された。(97-135、配列番号10)及び(111-132、配列番号17)の2つのより長いペプチドを陽性対照として使用した。これらの10merペプチドと2つのより長いペプチドを、固相免疫吸着剤としての96ウェルマイクロタイタープレートウェルに個別にコーティングした。プールしたモルモット抗血清を、試料希釈緩衝液で1:100希釈して、2.0μg/mLの10merペプチドでコーティングしたプレートウェルに添加し、次いで、37℃で1時間インキュベートした。プレートウェルを洗浄緩衝液で洗浄した後、西洋ワサビペルオキシダーゼ結合プロテインA/Gを添加し、30分間インキュベートする。PBSで再度洗浄した後、ELISAプレートリーダーで450nmの吸光度を測定するために基質をウェルに添加し、試料を二重化して分析した。抗血清とBエピトープ免疫原コンストラクトの対応する長いα-Synペプチドとの結合は、最大の結合を表す。
α-Synペプチド免疫原コンストラクトによって誘発される抗体とその製剤:組換えアルファシヌクレインタンパク質に対する、抗凝集及び脱凝集効果
組換えα-Synに対するモルモット抗血清から精製した抗α-Syn抗体を使用して、in vitro抗凝集アッセイ及び脱凝集アッセイにおけるα-Synペプチド免疫原コンストラクトの効果を評価した。
潜在的な抗凝集能について、異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化したモルモットから精製した異なる抗α-Syn抗体の初期スクリーニングアッセイを、実施例3に記載されるように、チオファビンT測定によりα-Syn凝集の変化のレベルを定量化することにより実施した。PBSで100μMに調製した組換えα-Synを、384ウェルプレートで5μMの濃度で、40μLのPBS/KCl緩衝液(1×PBS、pH7.4中2.5mMのMgCl2、50mMのHEPES、及び150mMのKCl)でさらに6日間インキュベートして凝集を引き起こした。異なる時点で収集された異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化されたモルモット抗血清から精製された抗α-Syn抗体の異なる濃度(0.05、0.5、または5μg/mL)をインキュベーション混合物に添加し、α-Synの凝集を阻害するそれぞれの効果を評価した。インキュベーションの終わりまでに、ThTアッセイを使用して凝集レベルを決定した。各試験実施から得られた測定値は、媒体対照の凝集レベルを100%とし、α-Synの非存在下で得られた測定値を0%として標準化された。
上記の研究から、特定のα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化されたモルモット抗血清から精製された抗α-Syn抗体が、α-Syn凝集の阻害に効果があることが認められた。α-Synペプチド免疫原コンストラクトによって誘発された抗体が、予め形成されたα-Syn凝集体の解離に有効であるかどうかをさらに評価するために、モルモット抗血清から精製された抗α-Syn抗体を使用したin vitro脱凝集アッセイを実施した。
α-Synペプチド免疫原コンストラクトによって誘発される抗体とその製剤:α-Syn過剰発現細胞におけるα-Syn凝集速度論に対する抗凝集効果及び脱凝集効果
α-Syn凝集は神経分化中に加速することが知られている。α-Synペプチド免疫原コンストラクトが細胞ベースの条件でα-Syn凝集を阻害すること、または予め形成されたα-Syn凝集体を解離することのいずれかに対するα-Synペプチド免疫原コンストラクトの効果を評価するために、異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトによって免疫化したモルモット抗血清から生成された抗α-Syn抗体を、NGF処理、神経分化α-Syn過剰発現PC12細胞ベースの抗凝集アッセイ及び脱凝集アッセイで評価した。
α-Syn過剰発現PC12細胞をポリ-D-リジンプレコート96ウェルプレートに播種し、次いで、異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化したモルモットから精製した抗α-Syn抗体(0または0.5μg/mL)とともに神経成長因子(NGF)(100ng/mL)で4日間処理し、抗凝集活性を検証した。
予め形成されたα-Syn凝集体の脱凝集活性を検証するために、α-Syn過剰発現PC12細胞を神経分化してα-Synの凝集を開始するためにNGF(100ng/mL)で3日間処理し、異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化したモルモットから精製した抗α-Syn抗体(0または0.5μg/mL)で追加の4日間さらに処理した。
α-Synペプチド免疫原コンストラクトによって誘発される抗体とその製剤:ミクログリアTNF-α及びIL-6分泌の減少に対する影響
黒質のニューロン損傷は、凝集したα-Synを黒質に放出し、炎症誘発性メディエーターの産生によりミクログリアを活性化し、それによりPDの持続的かつ進行性の黒質神経変性をもたらすと考えられている。異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化したモルモットから精製した抗α-Syn抗体によるミクログリア活性化の低減効果を評価するために、異なる抗α-Syn抗体の存在下または非存在下においてα-Syn凝集体で処理する際にミクログリアによって放出される炎症誘発性メディエーター、TNF-α(腫瘍壊死因子アルファ)及びIL-6(インターロイキン-6)の量を測定した。
α-Synペプチド免疫原コンストラクトによって誘発される抗体とその製剤:外因性アルファシヌクレインによって誘発される神経変性の減少に対する影響
異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化されたモルモット抗血清から精製された抗α-Syn抗体の神経保護効果を評価するために、NGF処理された神経分化PC12細胞での外因性の予め形成されたα-Syn凝集体を持つin vitro神経変性モデルが採用された。
α-Synペプチド免疫原コンストラクトによって誘発される抗体とその製剤:α-Syn過剰発現細胞の神経変性の減少に対する効果
異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化されたモルモット抗血清から精製された抗α-Syn抗体の神経保護効果を評価するために、野生型α-Syn過剰発現PC12細胞及びA53T変異型α-Syn過剰発現PC12細胞によるin vitro神経変性モデルが採用された。
α-Synペプチド免疫原コンストラクトによって誘発される抗体とその製剤:ベータシートオリゴマー及び線維性アルファシヌクレインタンパク質に対する特異性
異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化したモルモット抗血清から精製した抗α-Syn抗体の特異性をよりよく特徴付けるために、一連のin vitroアッセイを、異なるサイズのα-Syn分子複合体、α-Syn、Aβ、及びtauタンパク質を含む異なるアミロイド形成タンパク質、ならびにNGF処理時のα-Syn過剰発現PC12細胞で凝集したα-Synで実施した。
a.大きなα-Syn分子複合体に対する特異性
異なるサイズのα-Syn分子複合体のウエスタンブロットは、一次抗体として異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化されたモルモット抗血清から精製された抗α-Syn抗体を使用して実施された。結果は、すべての抗α-Syn抗体が、より小さなサイズの単量体α-Synに加えて、二量体、三量体、四量体、及びオリゴマーを含むより大きなサイズのα-Syn分子複合体と強く反応することを示した。市販の抗α-Syn抗体、Syn211(Abcam)と比較するとき、α-Syn111-132(配列番号113)、α-Syn121-135(配列番号107)、α-Syn123-135(配列番号111)、及びα-Syn126-135(配列番号112)によって誘発される抗α-Syn抗体は、より大きなサイズのα-Syn分子複合体(二量体、三量体、四量体、及びオリゴマーを含む)のシグナルの、より小さなサイズの単量体α-Synのシグナルに対する比率が高いことを示し(図7A及び図7B)、抗α-Syn抗体がより大きなα-Syn分子複合体に対する特異性を有していることを示唆している。
実施例3に記載されているように調製された異なるアミロイド生成タンパク質(すなわち、α-Syn、Aβ1-42及びTau441)の異なる種(すなわち、α-ヘリックス単量体、β-シート単量体、β-シートオリゴマー、及びβ-シート原線維)によるドットブロットアッセイは、異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化したモルモット抗血清から精製した抗α-Syn抗体を一次抗体として使用して実施した。その結果、α-Syn126-135(配列番号112)及びα-Syn111-132(配列番号113)によって誘発された抗α-Syn抗体は、α-Synのすべてのβ-シート型(単量体、オリゴマー、原線維種)に特異的に反応することが示されたが、α-ヘリックス単量体には反応しなかった(図8A、図8B、及び図8C)。さらに、α-Syn126-135(配列番号112)及びα-Syn111-132(配列番号113)によって誘発された抗α-Syn抗体は、β-シートの-シート単量体よりも、α-Synのβ-シート原線維及びα-Synのβ-シートオリゴマーにより強く反応した。対照的に、α-Syn126-135(配列番号112)及びα-Syn111-132(配列番号113)によって誘発された抗α-Syn抗体は、β-Synまたはアミロイド形成タンパク質Aβ1-42及びTau441の異なる種(すなわち、αヘリックス単量体、βシート単量体、βシートオリゴマー及びβシート原線維)に対して、検出される反応性をまったく示さなかった(図8A、図8B、及び図8C)。この発見は、α-Syn126-135(配列番号112)及びα-Syn111-132(配列番号113)によって誘発される抗α-Syn抗体が、β-シート単量体、β-シートオリゴマー、及びβ-シート繊維状形態のα-Synに対する特異性を有することを示唆した。
異なるα-Synペプチド免疫原コンストラクトで免疫化したモルモット抗血清から精製した抗α-Syn抗体を用いた免疫細胞化学(ICC)は、親PC12細胞、モック対照PC12細胞、野生型α-Syn過剰発現PC12細胞、及びA53T変異型α-Syn過剰発現PC12細胞で実施され、実施例3に記載されるように、NGF処理時に凝集したα-Synに対する抗体の結合親和性を評価した。図9に示すように、α-Syn111-132(配列番号113)、α-Syn121-135(配列番号107)、またはα-Syn126-135(配列番号112)によって誘発される抗α-Syn抗体は、NGF処理時の、親PC12細胞またはモック対照PC12細胞よりも野生型α-Syn過剰発現PC12細胞及びA53T変異型α-Syn過剰発現PC12細胞でより強い反応性が実証された。過剰発現α-Syn凝集がNGF処理により誘導されたため、この発見は、α-Syn111-132(配列番号113)、α-Syn121-135(配列番号107)、またはα-Syn126-135(配列番号112)によって誘発された抗α-Syn抗体が、NGF処理時の、野生型α-Syn過剰発現PC12細胞及びA53T変異型α-Syn過剰発現PC12細胞において凝集したα-Synに対する特異性を有していたことを示唆した。
α-Synペプチド免疫原コンストラクト及びその製剤の組織特異性の評価のためのパーキンソン病によるヒト脳の免疫組織化学的染色
免疫前、α-Syn126-135(配列番号112)またはα-Syn111-132(配列番号113)によって誘発される抗α-Syn抗体、及び両方の抗α-Syn抗体の1:1の組み合わせを用いる免疫組織病理学研究は、特異性及び望ましくない抗体の自己反応性をモニターするために、正常なヒト組織で実施された。ヒト組織パネル(Pantomics)をキシレンで脱パラフィン化し、エタノールで再水和し、次いでPBS中に0.5%CaCl2を含む0.25%トリプシン溶液で30分間処理し、メタノール中の1%過酸化水素でインキュベートして内因性ペルオキシダーゼ活性をブロックし、その後、PBS中の10%Block Ace(Sigma)とのインキュベーションをし、α-Syn126-135(配列番号112)またはα-Syn111-132(配列番号113)によって免疫化されたモルモットからの抗α-Syn抗体、及び両方の抗体の1:1の組み合わせ(1:300希釈)を適用した。切片は3-3’ジアミノベンジジン(DAB)で発色し、顕微鏡で検査される前にヘマトキシリンで対比染色された。市販の抗α-Syn抗体(BD、610708)の陽性反応とは対照的に、α-Syn126-135(配列番号112)またはα-Syn111-132(配列番号113)で免疫化したモルモットから精製した抗α-Syn抗体、及び両方の抗体の1:1の組み合わせは、正常なヒト組織に対して負の反応性を示したが、これは、ナイーブモルモットの免疫前抗体のパターンに適合した(図10A)。
動物モデルにおけるα-Synペプチド免疫原コンストラクト及びその製剤の有効性の証明
a.免疫化と血液/脳組織の収集
パーキンソン病(PD)マウスモデルは、実施例4で記載されたように確立された。MPP+注射の2週間後、または線維性α-Syn接種の7週間後、マウスを、アジュバント群(組成物の調製に使用されるアジュバント及び溶媒で免疫化された(ISA 51 VG、CpG3、0.2%TWEEN(登録商標)-80))に加えて、UBITh1結合α-Syn111-132(配列番号113)ペプチド、UBITh1結合α-Syn126-135(配列番号112)ペプチド、及び両方のペプチドの組み合わせを含む3つの群にランダムに分けた。筋肉内(IM)免疫を40μgの用量で3週間の間隔で3回投与した。投与及び採血のスケジュールは、表13に従って実施された。
各処理群のプールされた血清試料を1%BSA(PBST中)で希釈し、次いで、0.1M炭酸水素ナトリウム(α-Syn濃度4.4μg/μl、pH 9.6)中の200μLのα-Syn全長ペプチド(Cloud-clone)でコーティングしたELISAプレートに適用した。室温で2時間インキュベートし、PBSTで3回洗浄した後、1%BSAで1:3000に希釈したHRP結合抗マウスIgG抗体100μlを添加して、室温で2時間反応させた。その後、プレートをPBSTで3回洗浄し、100μlの3,3,5,5-テトラメチルベンジジン(TMB)とともに暗所で10分間インキュベートした。次いで、100μLの2MのH2SO4を添加し、15~30分間インキュベートした後、SpectraMax i3xマルチモード検出(Molecular Devices)で450nmの光学濃度(OD)値を測定した。
各群の動物からプールされた血清のα-Synレベルは、実施例3に記載されるように、アルファヘリックスとβ-シートのα-Synの両方を検出できるELISAキット(SEB222Mu、USCN)を使用してアッセイされた。
動物を犠牲にした後、脳組織試料をウエスタンブロッティングのために収集した。MPP+誘導マウスでは、脳を摘出し、ホモジナイズしたが、一方、線維性α-Synを接種したマウスでは、線条体及び黒質領域を最初に分離してからホモジナイズした。溶解緩衝液(Amresco)及び1×プロテイナーゼ阻害剤(Roche)をホモジネートに添加することにより、脳組織溶解物を調製した。次いで、溶解物を10%SDS-PAGE(ドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリルアミドゲル電気泳動)で分離し、フッ化ポリビニリデン(PVDF)膜に転写し、PBS中の5%ミルクで一晩インキュベートした。ドーパミン作動性ニューロンの存在量を検出するために、膜を抗チロシンヒドロキシラーゼ抗体(1:1000希釈、Abcam)とインキュベートし、続いてヤギ抗ウサギIgG(H+L)HRP結合二次抗体(1:5000希釈、Jackson Immunoresearch)でハイブリダイズした。視覚化には、Luminata Western HRP Substratesを使用し、結果のシグナルをChemiDoc-It 810デジタル画像システムでキャプチャした。オリゴマーα-Synレベルの定量化は、GAPDHレベルで標準化することにより行われ、非病変溶解物の比率は、比較のために100%にさらに標準化された。
線維性α-Synを接種したマウスの場合、黒質領域を最初に単離し、次いでホモジナイズした。溶解緩衝液(Amresco)及び1×プロテイナーゼ阻害剤(Roche)をホモジネートに添加することにより、組織溶解物を調製した。次いで、溶解物を10%SDS-PAGE(ドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリルアミドゲル電気泳動)で分離し、フッ化ポリビニリデン(PVDF)膜に転写し、PBS中の5%ミルクで一晩インキュベートした。ドーパミン作動性ニューロンの存在量を検出するために、膜を抗チロシンヒドロキシラーゼ抗体(1:1000希釈、Abcam)とインキュベートし、続いてヤギ抗ウサギIgG(H+L)HRP結合二次抗体(1:5000希釈、Jackson Immunoresearch)でハイブリダイズした。視覚化には、Luminata Western HRP Substratesを使用し、結果のシグナルをChemiDoc-It 810デジタル画像システムでキャプチャした。α-Synの発現レベルは、タンパク質ローディング対照として使用されるGAPDH(グリセルアルデヒド3-リン酸デヒドロゲナーゼ)に対して標準化された。
CatWalk(商標)XT(Noldus information Technology、Wageningen、Netherlands)は、ビデオベースの分析システムであり、各フットフォールの位置、圧力、表面積に基づいて、フットフォールのさまざまな側面を動的に客観的に測定する。すべてのマウスは、実験前に少なくとも1日3回、一貫した方法でランウェイを横断するように訓練された。成功した実行とは、動物が中断またはためらうことなくランウェイを走り抜けたと定義され、訓練に失敗したマウスは研究から除外された。
神経変性疾患で見出された異なるα-Syn系統を有するα-Synペプチド免疫原コンストラクトにより生成される抗体の反応性
a.α-Synの原線維とリボンへのアセンブリ
原線維形成のために、可溶性WTα-Synを緩衝液A(50mMのTris-HCl、pH7.5、150mMのKCl)で、600r.p.mに設定したEppendorf Thermomixerで連続的に振盪しながら37℃でインキュベートした。磁気攪拌棒(6×3mm)を使用して、攪拌(100r.p.m.)下で1×1cmキュベット中のチオフラビンT(15μM)の存在下で、440nmに設定された励起波長と440nm及び480nmに設定された発光波長、ならびに1秒の平均時間で、Cary Eclipse分光蛍光光度計(Varian Inc.、Palo Alto、CA、USA)によって、アセンブリを連続的にモニターした。リボン形成のために、WTα-Synを4℃で1,000倍の緩衝液B(5mMのTris-HCl pH7.5)に対して16時間透析し、次いで、600r.p.mに設定したEppendorf Thermomixerで連続的に振盪しながら37℃でインキュベートした。440nmの散乱光の測定により、アセンブリをモニターした。代替的に、35,000×gでの沈降後に上清に残っているタンパク質の量を、Hewlett Packard8453ダイオードアレイ分光光度計で280nmの吸光度を測定することにより決定した。オリゴマー種の性質は、Jeol1400(Jeol Ltd.)TEMを使用して、炭素コーティング200メッシュグリッドへの試料の吸着と1%酢酸ウラニルによるネガティブ染色を使用して評価した。画像はGatan Orius CCDカメラ(Gatan)で記録された。α-Synアセンブリのコンゴレッドへの結合能を次のように評価した:α-Syn原線維及びリボンを、20mMのTris緩衝液(pH7.5)中の100μMのCongo Red(Sigma-Aldrich、St Louis、MO、USA)とともに1時間インキュベートした。次いで、ポリマーをTL100卓上Beckman超遠心分離機(Beckman Instruments、Inc.、Fullerton、CA、USA)で、20℃で、25,000gで30分間沈殿させた。等量の水を使用してペレットを4回洗浄した。ペレットの再懸濁後、アリコートをカバーガラス上に置き、すぐに画像化するか、または乾燥させた。試料は、交差偏光子を装備したライカ(MZ12.5)顕微鏡(Leica Microsystems、Ltd.、Heerbrugg、Switzerland)を使用した偏光顕微鏡により、明視野及び交差偏光で観察された。
α-Syn原線維とリボンの長さの不均一性は、75%振幅、0.5秒パルスに設定された超音波プロセッサーUIS250v(250W、2.4kHz、Hielscher Ultrasonic、Teltow、Germany)を搭載したVialTweeterの2mlEppendorfチューブで、氷上で20分間超音波処理することにより減少させた。α-Syn原線維とリボンの沈降速度を測定した。沈降境界は、大きな粒子の不均一混合物に最適な最小二乗境界モデリング1s-g*(s)を使用して、Sedfitソフトウェアで分析された。これにより、α-Synリボンでは50~150S、α-Syn原線維では100~1,000Sの沈降係数の範囲の粒子の分布が得られ、α-Synリボン及び原線維では、それぞれ沈降係数が約90S及び375Sの種を中心とし、α-Synリボンの場合、約11,500kDaの分子量を有する粒子に対応し、例えば、約800個のα-Syn分子(12,000kDa/14.5kDa)で構成され、α-Syn原線維の場合、約102,000kDaの分子量を有する粒子に対応し、例えば、約7,000個のα-Syn分子(10,2000kDa/14.5kDa)で構成される。したがって、試料の遠心分離によりペレット画分においてタンパク質の100%が見つかるため、α-Synの100%は定常状態でリボンまたは原線維にアセンブリすると仮定すれば、20μMの使用濃度では、α-Synリボン及び原線維の粒子全体の濃度は、α-Synリボン及び原線維の場合、それぞれ20μM/約800=約0.02μM、20μM/約7,000=約0.003μMである。
本明細書に開示されるα-Synペプチド免疫原コンストラクトにより生成された抗体の親和性は、抗体を参照として用いるフィルタートラップアッセイを使用して、別個のα-Synアセンブリについて評価された。α-Synアセンブリ(原線維、リボン、原線維65、原線維91、原線維110、原線維アセンブリ経路α-Synオリゴマー(O550)、ドーパミン安定化(ODA)及びグルタルアルデヒド安定化(OGA)オリゴマー)は、Bousset L. et al., 2013 Nat Commun 4:2575; Makky A. et al., 2016 Sci Rep 6:37970; 及びPieri L. et al, 2016 Sci. Rep 6:24526に記載されている。対照の単量体α-Synも使用された。
免疫化したGPからのモルモット(GP)抗体PD-021514(α-Syn85-140、wpi 08)、PD-021522(α-Syn85-140、wpi 13)、PD-100806(α-Syn126-135、wpi 09)、PRX002及び市販の抗体Syn1(クローン42)の親和性を、フィルタートラップアッセイを使用して、異なるα-Synアセンブリについて比較した。使用されたα-Synアセンブリには、対照単量体α-Synとともに、原線維、リボン、原線維65、原線維91、原線維110、原線維アセンブリ経路α-Synオリゴマー上(O550)、ドーパミン安定化(ODA)、及びグルタルアルデヒド安定化(OGA)オリゴマーが含まれる。
パーキンソン病(PD)、多系統萎縮症(MSA)、及びレビー小体型認知症(DLB)を患う患者の脳切片にα-Synペプチド免疫原コンストラクト由来の抗体の免疫組織化学的研究
本発明の代表的なα-Syn126-135ペプチド免疫原コンストラクトによるモルモットの免疫から得られた抗体は、免疫化学的研究で使用され、α-シヌクレイノパチー患者の脳切片に存在するα-Synに結合する能力を特徴付けた。この研究は、Roxana Carare教授と共同で実施された。PD、LBD、及びMSA患者から得られた脳切片に存在するα-Synに結合する抗体の能力を評価した。健康な組織は、陰性対照として研究に含まれていた。NCL-L-ASYNは、α-シヌクレイノパチーの死後診断に使用される市販のモノクローナル抗体であり、陽性対照として含まれていた。この調査は、ヒトPD、LBD、及びMSA患者の脳の組織切片上のα-Syn126-135ペプチド免疫原コンストラクトに対する抗体の陽性免疫反応性の証拠を提供する。結合は、シヌクレオパチー患者の脳で特に見られたが、非患者の脳では見られず、市販の診断抗体よりも試験抗体の方が、結合が顕著であった。
a.使用する試薬とその供給者の説明
代表的なα-Syn126-135ペプチド免疫原コンストラクトによるモルモットの免疫から得られた抗体を1:100希釈で使用した。PD062220-09-1-2-Syn;PD062205-09-1-2-Syn;PD100806-09-1-2-SynはUnited NeuroScience(UNS)によって提供され、NCL-L-ASYN(1:100希釈で使用されるマウスモノクローナル抗体)はLeica Biosystemsにより提供され、HuD(E-I)(1:100希釈でのマウスモノクローナル抗体)はSanta Cruz Biotechnologyにより提供され、Olig2(1:100希釈でのウサギ抗体)はMilliporeにより提供され、Alexa Flour 594(1:200希釈でのヤギ抗モルモット)及びAlexa Flour 488(1:200希釈でのヤギ抗マウス)ならびにAlexa Flour 488(1:200希釈でのヤギ-ウサギ)は、Molecular Probes life technologiesにより提供された。
この研究では、μm厚さの切片をUCL脳バンクから入手した。すべての試料は、National Research Ethics Service承認の手続きに従って収集及び準備された。
United Neuroscience(UNS)が製造した3つの抗体のα-Syn凝集体に対する特異性を定量的に比較するために、3つの異なるシヌクレイノパチー(MSA、DLB、及びPD)のヒト対象の免疫組織化学(IHC)を実施した。α-Syn凝集体に対するUNS抗体(PD062220、PD062205、及びPD100806)の特異性を、市販の診断抗体(NCL-L-ASYN)の特異性と比較した。抗体の特異性は、各患者の対象と疾患の種類の次の4つの脳領域で分析された。(1)被殻、内包、及び島皮質;(2)中脳:黒質;(3)側頭皮質:皮質灰色物質;(4)小脳:皮質下白質;小脳白質。
OlympusVS110高スループットVirtual Microscopy SystemまたはOlympus dot Slide Virtual Microscopy Systemを使用して、20倍対物レンズでの分析のためにスライドをスキャンした。各対象の各領域の同等エリアからOlympus VSソフトウェアを使用して、スキャンした画像から30枚の画像(各500μm2)をキャプチャした(図17A~図17D、図18A~図18D、図19A~図19C、図20A~図20E、図21A~図21F、図22A~図22C、図24A~図24D、及び図25A~図25Dを参照されたい)。これにより、各脳領域の総面積7.5mm2の分析が可能になった。ImageJバージョンFiji windows-64ソフトウェアは、各画像のα-Syn免疫反応性の定量分析に使用された。
α-Syn凝集体の細胞型と細胞内局在は、異なるシヌクレイノパチーの間で異なる。MSAはグリア細胞質内封入体(GCI)によって特徴付けられるが、DLB及びPDでは、ニューロン細胞体(LB)及び軸索突起(LN)内でα-Syn凝集が発生する。染色された面積のパーセンテージの分析により、各抗体によって検出された総α-Syn凝集体の定量化が可能になった。しかしながら、これは、検出された凝集体のタイプまたは細胞内位置の相違を考慮しなかった。PD及びDLBの場合の細胞体及び神経突起内のα-Syn凝集体の明確に異なるパターンにより、これらの異なるタイプのα-Syn凝集体に対する本開示のUNS抗体の相対的感度を定量化することができた。
α-Syn含有凝集体は、MSA、DLB、及びPDを含むシヌクレイノパチーの特徴的な病原性の特徴である。α-Syn凝集はシヌクレイノパチーの主な原因タンパク質であるが、凝集のパターンと凝集形成を起こしやすい細胞型は特定の疾患サブタイプ間で異なる。MSA、DLB、及びPDの臨床的特徴は、DLBとPDの両方における細胞体及びニューロンの浅海神経突起内へのα-Synの蓄積を説明するが、MSAでは主にグリア細胞及び希突起膠細胞内に見出される。
a.免疫療法用の代表的なα-Syn126-135ペプチド免疫原コンストラクトを用いたモルモットの免疫に由来する抗体の定量分析
免疫療法のための新規抗α-Syn抗体の使用を調査するために、α-Synに対する各抗体の関連特異性の定量分析を3つのシヌクレイノパチー(MSA、DLB、及びPD)のヒトの症例における免疫組織化学(IHC)によって実施した。
開示されるα-Syn126-135抗体の相対的抗原性を調べるために、各抗体で検出されたα-Syn負荷を、シヌクレイノパチーの市販の診断抗体(NCL-L-ASYN)と比較した。最初に図17A~図Dから図22A~図22Cに示された結果の全体的なパターンを調べることにより、NCL-L-ASYNと比較して、α-Syn126-135抗体によって検出されたα-Synの平均パーセンテージ面積における顕著な増加があることを見出すことができる。この傾向は、各脳領域及び疾患タイプ全体で一貫しており、開示されるα-Syn126-135抗体は、NCL-L-ASYNよりも凝集したα-Synへの結合においてより高感度または選択的であることを示唆している。この研究では、試料サイズは比較的小さかった(n=3)が、データには明確な傾向がなおも見られる。α-Synに対する開示されるα-Syn126-135抗体の特異性は、非罹患対照患者の脳の同じ脳領域で確認された。図23A~図23Bに示すこれらの結果は、NCL-L-ASYNを含む各抗体による免疫陽性染色がまったくないことを示している。これらのデータは、開示されるα-Syn126-135抗体がα-Synの病的形態に特異的であることを示している。
本開示のα-Syn126-135抗体は、NCL-L-ASYNと比較してより多くのα-Synを検出し、これは、開示される抗体がこれらのα-Syn凝集体のクリアランスを促進する免疫療法での使用により好ましいことを示す。
開示されるα-Syn126-135抗体によるα-Synの検出は、臨床神経病理学に記載されているのと同じ細胞型特異性で達成された(図27A~図27B及び図28A~図28B)。重要なことに、開示されるα-Syn126-135抗体は、すべての形態のヒトα-Synに対して同等の抗原性を示さなかった。
Claims (25)
- アルファ-シヌクレイン(α-Syn)ペプチド免疫原コンストラクトであって、
配列番号1のアミノ酸G111近辺からアミノ酸D135近辺までに対応するα-SynのC末端フラグメントからの約10から約25アミノ酸残基を含む、B細胞エピトープと;
配列番号70~98からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むTヘルパーエピトープと;
アミノ酸Lys-、Gly-、Lys-Lys-Lys-、(α,ε-N)Lys、及びε-N-Lys-Lys-Lys-Lys(配列番号148)からなる群から選択される必要に応じた異種スペーサーと、を含み、
前記B細胞エピトープが、前記Tヘルパー細胞エピトープに直接または前記必要に応じた異種スペーサーを介して共有結合している、前記α-Synペプチド免疫原コンストラクト。 - 前記B細胞エピトープが、配列番号12~15、17、及び49~63からなる群から選択される、請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクト。
- 前記Tヘルパーエピトープが、配列番号81、83、及び84からなる群から選択される、請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクト。
- 前記必要に応じた異種スペーサーが、(α,ε-N)Lysまたはε-N-Lys-Lys-Lys-Lys(配列番号148)である、請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクト。
- 前記Tヘルパーエピトープが、前記B細胞エピトープのアミノ末端に共有結合している、請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクト。
- 前記Tヘルパーエピトープが、前記B細胞エピトープのアミノ末端に前記必要に応じた異種スペーサーを介して共有結合している、請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクト。
- 以下の式:
(Th)m-(A)n-(α-SynのC末端フラグメント)-X
または
(α-SynのC末端フラグメント)-(A)n-(Th)m-X
を含み、
式中、
Thは前記Tヘルパーエピトープであり、
Aは前記異種スペーサーであり、
(α-SynのC末端フラグメント)は、前記B細胞エピトープであり、
Xはアミノ酸のα-COOHまたはα-CONH2であり、
mは、1から約4であり、
nは1から約10である、
請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクト。 - 配列番号107、108、111~113、及び115~147からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクト。
- 配列番号107、108、及び111~113からなる群から選択されるアミノ酸配列を含む、請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクト。
- 請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクトを含む、組成物。
- 1を超える請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクトを含む、組成物。
- 前記α-Synペプチド免疫原コンストラクトが配列番号112及び113のアミノ酸配列を有する、請求項11に記載の組成物。
- 請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクト及び薬学的に許容される送達媒体及び/またはアジュバントを含む医薬組成物。
- a.前記α-Synペプチド免疫原コンストラクトが、配列番号107、108、111~113、及び115~147からなる群から選択され、
b.前記アジュバントが、Al(OH)3またはAlPO4からなる群から選択されるアルミニウムの無機塩である、
請求項13に記載の医薬組成物。 - a.前記α-Synペプチド免疫原コンストラクトが、配列番号107、108、111~113、及び115~147からなる群から選択され、
b.前記α-Synペプチド免疫原コンストラクトがCpGオリゴデオキシヌクレオチド(ODN)と混合されて、安定化された免疫刺激複合体を形成する、
請求項13に記載の医薬組成物。 - 請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクトの前記B細胞エピトープに特異的に結合する、単離された抗体またはそのエピトープ結合フラグメント。
- 前記α-Synペプチド免疫原コンストラクトに結合した、請求項16に記載の単離された抗体またはそのエピトープ結合フラグメント。
- 請求項9に記載のα-Synペプチド免疫原コンストラクトの前記B細胞エピトープに特異的に結合する、単離された抗体またはそのエピトープ結合フラグメント。
- 請求項16に記載の単離された抗体またはそのエピトープ結合フラグメントを含む組成物。
- 請求項18に記載の単離された抗体またはそのエピトープ結合フラグメントを含む組成物。
- a.配列番号112のB細胞エピトープに特異的に結合する、単離された抗体またはそのエピトープ結合フラグメントと、
b.配列番号113のB細胞エピトープに特異的に結合する、単離された抗体またはそのエピトープ結合フラグメントと、
の混合物を含む、請求項20に記載の組成物。 - 宿主においてα-Synを認識する抗体を産生する方法であって、請求項1に記載のα-Synペプチド免疫原と送達媒体及び/またはアジュバントとを含む組成物を前記宿主に投与することを含む、前記方法。
- 動物のα-Syn凝集を阻害する方法であって、薬理学的に有効な量の請求項1のα-Synペプチド免疫原を前記動物に投与することを含む、前記方法。
- 動物のα-Syn凝集体の量を低減する方法であって、薬理学的に有効な量の請求項1のα-Synペプチド免疫原を前記動物に投与することを含む、前記方法。
- 生体試料中の異なるサイズのα-Syn凝集体を同定する方法であって、
a.生体試料を、請求項16に記載の抗体またはそのエピトープ結合フラグメントに、前記抗体またはそのエピトープ結合フラグメントが前記α-Syn凝集体に結合することを可能にする条件下で曝露することと、
b.前記生体試料中の前記α-Syn凝集体に結合した前記抗体またはそのエピトープ結合断片の量を検出することと、
を含む、前記方法。
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