JP2022517435A - Enpp1またはenpp3の欠乏をともなう疾患の治療 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2019年1月18日(01/18/2019)に出願された米国出願第62/794,450号、2019年3月21日(03/21/2019)に出願された米国出願第62/821,692号および2019年7月22日(07/22/2019)に出願された米国出願第62/877,044号に対して優先権を主張するものであり、これらのそれぞれの内容は、参照により完全に本明細書に組み込まれる。
一態様では、本開示は、エクトヌクレオチドピロホスファターゼ/ホスホジエステラーゼ-1(ENPP1)またはエクトヌクレオチドピロホスファターゼ/ホスホジエステラーゼ-3(ENPP3)を含む組換えポリペプチドをコードする組換えポリヌクレオチドを提供する。
i.本発明のポリヌクレオチドを含む細胞を提供するステップ、
ii.ウイルスのアセンブリーに適切な条件下で細胞を維持するステップ、および
iii.細胞によって産生されたウイルスベクターを精製するステップ。
i.本明細書に記載のポリヌクレオチドを含む細胞または細胞の集団を提供するステップであって、細胞が、組換えウイルスベクターへのポリヌクレオチドのパッケージングまたはアセンブリーに必須なウイルスタンパク質を発現するステップ;および
ii.前記組換えウイルスベクターのパッケージングのアセンブリーに適切な条件下で、細胞または細胞の集団を維持するステップ。
i.ENPP1またはENPP3タンパク質の触媒ドメインを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む細胞または細胞の集団を提供するステップであって、細胞が、組換えウイルスベクターへのポリヌクレオチドのパッケージングおよび/またはアセンブリーに必須なウイルスタンパク質を発現するステップ;ならびに
ii.ポリヌクレオチドを含む前記組換えウイルスベクターのパッケージングのアセンブリーに適切な条件下で、細胞または細胞の集団を維持するステップ。
別段規定されない限り、本明細書で使用するすべての技術用語および科学用語は、この発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解されるのと同じ意味を有する。本明細書に記載のものと同様または均等ないかなる方法および材料も本発明の実施または試験において使用することができるが、例示的方法および材料を記載する。本明細書で使用する場合、以下の用語のそれぞれは、本セクションにおいてそれと関連する意味を有する。
「ヒトENPP1」:ヒトNPP1(NCBIアクセションNP_006199/Uniprot-Swissprot P22413)
「可溶性ヒトENPP1」:NCBIアクセションNP_006199の残基96~925
「ヒトENPP3」:ヒトNPP3(UniProtKB/Swiss-Prot:O14638.2)
「可溶性ヒトENPP3」:UniProtKB/Swiss-Prot:O14638.2の残基49~875
NPP1は、ATPをAMPおよびPPiに容易に加水分解する。NPP1の定常状態ミカエリス-メンテン酵素定は、基質としてATPを使用して決定される。酵素反応のHPLC分析によってNPP1がATPを切断することを示すことができ、ATP、AMPおよびADP標準を使用することによって、反応の基質と生成物の同一性が確認される。ATP基質は、酵素的生成物AMPの蓄積をともなって、NPP1の存在下で経時的に分解する。様々な濃度のATP基質を使用して、ATPの存在下でNPP1に対する初速度(initial rate velocities)を導き出し、データを曲線に適合して、酵素速度定数を導き出す。生理的pHで、NPP1の動力学的速度定数はKm=144μMおよびkcatt=7.8s-1である。
NPP3の酵素活性は、基質としてpNP-TMPまたはATPを用いて測定した。NPP3タンパク質をpH8.9の100mM Tris-HClおよび5mM pNP-TMPまたは50μM[γ-32P]ATPのいずれかの存在下で、37℃でインキュベートした。3%(w/v)トリクロロ酢酸中に10倍希釈することによって、pNP-TMPの加水分解を止めた。続いて、反応混合物を60μlの5N NaOHで中和し、形成したp-ニトロフェノール(pNP)を405nmで比色測定で定量化した。100mM EDTAを添加することによって、ATPの加水分解を停止した。ポリエチレンイミンセルロースプレート(Merck)での薄層クロマトグラフィーによって、1μlの反応混合物を分析した。pH3.0の750mM KH2PO4における上昇クロマトグラフィーによって、ヌクレオチドおよび分解産物を分離した。放射性スポットをオートラジオグラフィーによって可視化した。Blytt et al.(H.J.Blytt,J.E.Brotherton,L.Butler Anal.Biochem.147(1985),pp.517-520)に従って、若干の変更を加えて(R.Gijsbers,H.Ceulemans,W.Stalmans,M.Bollen J.Biol.Chem.,276(2001),pp.1361-1368)、50μM[α-32P]ATPの加水分解の間に形成されたヌクレオチジル化した中間体をトラップした。SDS-PAGE後に、トラップした中間体をオートラジオグラフィーによって可視化した。ビス-pNPPおよびpNPPもNPP3の基質として試験した。pH8.9の100mM Tris-HClおよび5mMのビス-pNPPまたはpNPPのいずれかの中で37℃で2.5時間、NPP3アイソフォームをインキュベートした。続いて、形成したpNPを405nmで比色測定で定量化した(Gijsbers R1,Aoki J,Arai H,Bollen M,FEBS Lett.2003 Mar 13;538(1-3):60-4.)。生理的pHで、NPP3は、ENPP1と類似した、約2.59(±0.04)s-1のkcat値およびKm(<8μM)値を有する(WO2017/087936)。
NPP1によるATP切断を測定するために、および生成物の同定のために使用するHPLCプロトコールを、文献(Stocchi et al.,1985,Anal.Biochem.146:118-124)から改変する。50mM Tris pH8.0、140mM NaCl、5mM KC1、1mM MgCl2および1mM CaCl2緩衝液中に様々な濃度のATPを含む反応を0.2~1μMのNPP1を添加することによって開始し、この反応を当量の3Mギ酸または0.5N KOHによって様々な時点でクエンチし、氷酢酸によってpH6に再酸性化する。クエンチした反応溶液を系統的に希釈し、これをHPLCシステム(Waters、Milford Mass.)にロードし、254または259nmのUV吸光度によって基質および生成物をモニターする。0%~10%(または20%)のメタノール勾配を用いて、15mM酢酸アンモニウムpH6.0溶液を使用して、C18、5um 250×4.6mm HPLCカラム(Higgins Analytical、Mountain View、Calif.)で、基質および生成物を分離する。生成物および基質をそれらの対応するピークの積分および式:
ENPP1またはENPP3ポリペプチドの欠乏を補償するために、NPP1またはNPP3配列を含むポリペプチドなどの遺伝物質を哺乳動物に挿入することができる。
AAVは、パルボウイルス科のディペンドウイルス属に属するウイルスを指す。AAVゲノムはおよそ4.7キロベースの長さであり、プラスまたはマイナスセンスのいずれかであり得る直鎖状の一本鎖デオキシリボ核酸(ssDNA)から構成される。ゲノムは、DNA鎖の両端の逆方向末端反復(ITR)ならびに2つのオープンリーディングフレーム(ORF):repおよびcapを含む。repフレームは、AAVの生活環に必要とされる非構造的複製(Rep)タンパク質をコードする4種の重複遺伝子からできてきる。capフレームは、一緒に相互作用して、正20面体の対称のカプシドを形成する、構造的VPカプシドタンパク質:VP1、VP2およびVP3の重複ヌクレオチド配列を含む。
アデノウイルスは、所望の遺伝子産物(例えば、ENPP1またはENPP3)をコードおよび発現し、同時に、通常の溶解性ウイルス生活環において複製するその能力に関して不活化されるように操作され得る。さらに、アデノウイルスは、気道上皮に対して天然の指向性を有する。ウイルスは、気道で見られるように静止状態の細胞に感染することができ、レトロウイルスと比べて大きな利点を提供する。アデノウイルスの発現は、宿主細胞の染色体中へのウイルスDNAの組み込みなしで達成され、それによって、挿入変異誘発についての懸念を軽減する。さらに、アデノウイルスは、優れた安全性プロファイルをともなって、生の腸ワクチンとして長年使用されている(Schwartz,A.R.et al.(1974)Am.Rev.Respir.Dis.109:233-238)。最後に、コトンラットの肺へのアルファ-1-アンチトリプシンおよびCFTRの移行(Rosenfeld,M.A.et al.(1991)Science 252:431-434;Rosenfeld et al.,(1992)Cell 68:143-155)を含めて、アデノウイルス媒介性遺伝子移入がいくつかの例で示されている。さらに、ヒト癌における原因因子としてアデノウイルスを確立しようと試みる広範な研究は、一様に否定的であった(Green,M.et al.(1979)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 76:6606)。
単純ヘルペスベクター(HSVベースのウイルスベクター)は、多数の細胞型に核酸配列を導入するためのベクターとしての使用に適する。成熟したHSVビリオンは、152kbの直鎖状二本鎖DNA分子からなるウイルスゲノムを有する、エンベロープで覆われた正20面体カプシドからなる。別の実施形態では、HSVベースのウイルスベクターは、少なくとも1つの必須のHSV遺伝子が欠損している。いくつかの実施形態では、少なくとも1つの必須のHSV遺伝子が欠損しているHSVベースのウイルスベクターは複製欠損性である。大抵の複製欠損性HSVベクターは、複製を防止するために、1種または複数の中間-初期、初期または後期HSV遺伝子を除去するための欠失を含む。例えば、HSVベクターは、ICP4、ICP22、ICP27、ICP47およびこれらの組み合わせからなる群から選択される最初期遺伝子が欠損している可能性がある。HSVベクターの利点は、長期のDNA発現をもたらすことができる潜伏期に入るその能力、および25kbまでの外来性DNAインサートを収容することができる、その大きなウイルスDNAゲノムである。
アルファウイルス発現ベクターは、シンドビスウイルス(SIN)、セムリキ森林ウイルス(SFV)およびベネズエラウマ脳炎(VEE)ウイルスを含めた異なる型のアルファウイルスから開発された。アルファウイルスレプリコンは、ウイルスレプリカーゼ(Rep)をコードするオープンリーディングフレームをその5’末端に含み、これは、ウイルスRNAが細胞にトランスフェクトされる場合に翻訳される。Repはポリタンパク質として発現され、これは、続いてプロセッシングを受けて4つのサブユニット(nsps1~4)になる。プロセッシングを受けないRepは、RNAベクターをマイナス鎖RNAにコピーすることができ、これは、トランスフェクションまたは感染後の最初の3~4時間の間に起こるプロセスである。一旦プロセッシングを受けると、Repは、より多くのレプリコン分子を合成するための鋳型としてマイナス鎖RNAを使用する。プロセッシングを受けたRepは、マイナス鎖RNAの内部配列、またはサブゲノムのプロモーターを認識することもでき、そこから、レプリコンの3’末端に対応するサブゲノムのプラス鎖RNAを合成する。このサブゲノムRNAは翻訳されて、異種タンパク質を大量に産生する。
レンチウイルスはレトロウイルス科のウイルスの属に属し、長いインキュベーション期間を特徴とする。レンチウイルスはかなりの量のウイルスRNAを宿主細胞のDNAに送達することができ、非分裂細胞に感染することができるという、レトロウイルスの中でユニークな能力を有する。レンチウイルスベクター、特にHIV-1に由来するものは広く研究されており、頻繁に使用されるベクターである。レンチウイルスベクターのバックボーンの進化、およびウイルスが組換えDNA分子(導入遺伝子)を標的細胞に送達する能力は、遺伝子療法における機能遺伝子の修復およびインビトロでの組換えタンパク質産生におけるその使用につながった。
配列番号1-ENPP1アミノ酸配列-野生型
本発明によるAAVベクターは、従来の方法によってヒトまたは動物の体に投与することができ、これは、医薬組成物への前記ベクターの製剤化を必要とする。一実施形態では、本発明は、組換えウイルスゲノムを含むAAVベクターを含む医薬組成物(以下、「本発明による医薬組成物」と称される)に関し、前記組換えウイルスゲノムは、ENPP1またはENPP3またはそれらの機能的に同等の変異体をコードするヌクレオチド配列に作動可能に連結している転写制御領域を含む発現カセットを含む。
遺伝子療法で使用されるベクターは発現カセットを必要とする。発現カセットは、3つの重要な成分:プロモーター、治療遺伝子およびポリアデニル化シグナルからなる。プロモーターは、治療遺伝子の発現を制御するために必須である。組織特異的プロモーターは、ある特定の細胞型でのみ活性を有するプロモーターである。発現カセットにおける組織特異的プロモーターの使用は、望まれない導入遺伝子発現を制限することができ、持続的な導入遺伝子発現を容易にすることができる。遺伝子療法のために一般に使用されるプロモーターとしては、サイトメガロウイルス最初期(CMV-IE)プロモーター、ラウス肉腫ウイルスロングターミナルリピート(RSV-LTR)、モロニーマウス白血病ウイルス(MoMLV)LTRおよび他のレトロウイルスのLTRプロモーターが挙げられる。真核プロモーターを遺伝子療法のために使用することができ、真核プロモーターの一般例としては、ヒトa1-アンチトリプシン(hAAT)およびマウスRNAポリメラーゼII(大サブユニット)プロモーターが挙げられる。核内低分子RNA U1bプロモーター、EF1αプロモーターおよびPGK1プロモーターなどの非組織特異的プロモーターも遺伝子療法で使用するために利用可能である。Apo A-I、ApoEおよびa1-アンチトリプシン(hAAT)などの組織特異的プロモーターは、遺伝子療法において目的のタンパク質の組織特異的発現を可能にする。Papadakisら(Promoters and Control Elements:Designing Expression Cassettes for Gene Therapy,Current Gene Therapy,2004,4,89-113)の表Iは、遺伝子療法で真核プロモーターを使用する転写標的化の例を収載し、それらすべては、参照により完全に本明細書に組み込まれる。
AAV力価は、mlあたりのベクターまたはウイルスゲノム(vg/ml)の、またはキログラム投薬量あたりのベクターまたはウイルスゲノム(vg/kg)の「物理的」力価として示される。精製されたベクター粒子のQPCRを使用して、力価を決定することができる。AAV VG数の力価測定を行うための1つの方法は、以下の通りである:精製されたAAVベクター試料をDNaseで最初に処理して、カプシドで包まれていないAAVゲノムDNAまたは生成プロセスからの混入プラスミドDNAを除去する。DNase抵抗性粒子を次いで熱処理にかけて、カプシドからゲノムを放出させる。ウイルスゲノムの特定の領域を標的化するプライマー/プローブセットを使用して、放出されたゲノムをリアルタイムPCRで定量化する。
調製物は緩衝塩を含むこともできる。あるいは、組成物は、使用前に適切なビヒクル(例えば、発熱物質を含有しない無菌水)と構成するために、粉末状でもよい。必要な場合、組成物は、注射部位の疼痛を和らげるために、リドカインなどの局部麻酔薬を含むこともできる。組成物が浸潤により投与される予定である場合は、これは、医薬品品質の水または生理食塩水を含む浸潤ボトルで調剤することができる。組成物が注射によって投与される場合は、投与前に成分を混合することができるように、注射または無菌食塩水用の水バイアルを提供することができる。好ましくは、医薬的に許容可能な担体は生理食塩水およびプルロニック(登録商標)などの界面活性剤である。
非限定例として、ヒトENPP1またはENPP3をコードするウイルスベクターが哺乳動物に投与され、その結果、哺乳動物において、ENPP1またはENPP3をコードするDNAの送達、およびタンパク質の発現がもたらされ、それによって軟組織の石灰化または骨化を低減させるのに必要とされるENPP1またはENPP3のレベルが回復する。
本発明は、ウイルスベクター、例えば、本発明によるAAVベクターを生成するのに有用なポリヌクレオチドにも関する。一実施形態では、本発明は、アデノ随伴ウイルスITRに隣接する発現カセットを含むポリヌクレオチド(「本発明によるポリヌクレオチド」)に関し、前記発現カセットは、ENPP1またはENPP3またはそれらの機能的に同等の変異体をコードするヌクレオチド配列に作動可能に連結している転写制御領域を含む。
本発明は、本発明によるウイルスベクター、非限定例としてAAVベクターを得るための方法にも関する。前記AAVベクターは、RepおよびCapタンパク質を構成的に発現する、またはRepおよびCapコード配列がプラスミドまたはベクター中に提供される細胞に本発明によるポリヌクレオチドを導入することによって、得ることができる。したがって、別の態様では、本発明は、以下のステップを含む、アデノ随伴ウイルスベクターを得るための方法に関する:
(i)本発明によるポリヌクレオチド、AAV Capタンパク質、AAV Repタンパク質、および場合により、AAVが複製を依存しているウイルスタンパク質を含む細胞を提供するステップ、
(ii)AAVのアセンブリーに適切な条件下で細胞を維持するステップ、ならびに
(iii)細胞によって産生されたアデノ随伴ウイルスベクターを精製するステップ。
1)本発明によるポリヌクレオチドを含むプラスミド
2)AAV repおよびcap遺伝子を含むプラスミド
3)ヘルパー機能を提供する遺伝子を含むプラスミド。
以下は、病的骨化または石灰化の進行を予防するかまたは低減させるためにENPP1またはENPP3を投与することの有効性を試験するために使用することができる非限定的な動物モデルである。
1.乳児期の全身性動脈石灰化(GACI)のEnpp1 asj/asjモデル;Li,et al.,2013,Disease Models & Mech.6(5):1227-35。
2.乳児期の全身性動脈石灰化(GACI)のEnpp1asj/asjモデル;Li,et al,2014,PloS one 9(12):el 13542。
3.弾性線維性仮性黄色腫(PXE)のABCC6-/-マウスモデル;Jiang,et al.,2007,J.Invest.Derm.127(6):1392-4102。
4.X連鎖低ホスファターゼ症(XLH)のHYPマウスモデル;Liang,et al.,2009,Calcif.Tissue Int.85(3):235-46。
5.ハッチンソン・ギルフォード・プロジェリア症候群のLmnaG609G/+マウスモデル;Villa-Bellosta,etal,2013,Circulation 127(24):2442-51。
6.後縦靱帯の骨化(OPLL)(Okawa,et al,1998,Nature Genetics 19(3):271-3;Nakamura,et al,1999,Human Genetics l04(6):492-7)および骨関節症(Bertrand,et al,2012,Annals Rheum.Diseases 71(7):1249-53)のつま先歩行(Tip toe walking)(ttw)マウスモデル。
7.アデニン食による慢性腎臓疾患(CKD)のラットモデル;Schibler,et al.,1968,Clin.Sci.35(2):363-72;O’Neill,etal,2011,Kidney Int.79(5):512-7。
8.アデニン食による慢性腎臓疾患(CKD)のマウスモデル;Jia,et al.,2013,BMC Nephrol.14:116。
9.CKDの5/6th腎摘出ラットモデル;Morrison,1962,Lab Invest.11:321-32;Shimamura & Morrison,1975,Am.J.Pathol.79(1):95-106。
10.GACIおよび骨減少症のENPP1ノックアウトマウスモデル;Mackenzie,et al,2012,PloS one 7(2):e32177。
本実施例で使用されるAAVプラスミドは、AAV2由来の2つのITRに隣接する発現カセットを含む。AAV2のゲノムはAAV8で偽型化することができる。発現カセットは、5から3’の方向に以下のエレメントを有し得る:肝臓特異的エンハンサー肝臓制御領域(HCR)、肝臓特異的プロモーターヒトアルファ抗トリプシン(hAAT)、イントロン、N末端アズロシジンシグナル配列を含むポリペプチド、NPP1 cDNA、C末端Fc配列、およびSV40ポリアデニル化シグナル。発現カセットは、AAV2由来の5’ITRおよび3’ITRに隣接する。生成されたコンストラクトを図1の概略図に示す。
CHOまたはHEK293哺乳動物細胞において安定なトランスフェクションを確立することによって、ENPP1を生成する。安定な細胞株を確立するために、ENPP1融合タンパク質(例えば、本明細書の他の個所で開示される配列)をコードする核酸配列を大規模なタンパク質産生に適したベクター中に配置する。商業的供給元から入手可能な様々なそのようなベクターが存在する。
マウスモデル、例えば、Enpp1 asj/asjマウスモデル、ABCC6-/-マウスモデル、HYPマウスモデル、ttwマウスモデル、慢性腎臓疾患(CKD)のマウスモデル、またはCKDの5/6th腎摘出ラットモデルを使用して、NPP1またはNPP3をコードし発現することができるベクターの送達の有効性を試験する。非限定例として、以下の実験は、マウスモデルとしてEnpp1 asj/asjマウスを、マウスモデルに送達されるポリヌクレオチドとしてアズロシジン-NPP1-Fcコンストラクトを使用し、送達は、インビボで、ENPP1-Fcタンパク質をコードするAAV粒子(実施例1に示すように調製した)を使用することによって、行う。
ヘパリン化したマイクロピペットを使用して動物を後眼窩出血させ、ヘパリン処理したエッペンドルフチューブ中に血液を分注し、これを氷上に置く。4℃の予め冷却した微量遠心機中で4,000r.p.mで5分間試料を回転させ、血漿を収集し、1容量の50mM Tris-酢酸pH=8.0に希釈する。収集した血漿を超遠心分離(NanoSep 300K、Pall Corp.、Ann Arbour、MI)によって300KDa膜を通して濾過し、-80℃で凍結する。ピロリン酸は、ウリジン5’ジホスホ[14C]グルコースを使用する標準的な3ステップ酵素的アッセイを使用して定量化して、反応生成物、すなわち、ウリジン5’ジホスホ[14C]グルコン酸を記録する(Analysis of inorganic pyrophosphate at the picomole level.Cheung CP, Suhadolnik RJ,Anal Biochem.1977 Nov;83(1):61-3)。手短に言えば、5mM MgCl2、90mM KCL、63mM Tris-HCL(pH7.6)、1nmol NADP+、2nmolグルコース1,6-二リン酸、400pmolウリジン5’-ジホスホグルコース、0.02μCiウリジン5’ジホスホ[14C]グルコース、0.25ユニットのウリジン5’-ジホスホグルコースピロホスホリラーゼ、0.25ユニットのホスホグルコースムターゼ、0.5ユニットのグルコース6-リン酸脱水素酵素および無機ピロリン酸(50~200pmol)を含む反応混合物(100μl)を37℃で30分間インキュベートした。水に十分に懸濁させた200μlの2%チャコールを添加することによって、反応を終了する。次いで、上清の200μlのアリコートをシンチレーション溶液中でカウントする。
必要に応じて、骨イメージングを行うことができる。骨イメージング剤99mTc-ピロリン酸Pharmalucence,Inc)を、二重の1mmピンホールコリメータ(X-SPECT、Gamma Medica-Ideas)38を用いる前臨床マイクロSPECT/CTハイブリッドイメージングシステムを使用した動物のコホートで評価する。2~5mCiの放射標識されたトレーサーを各動物に腹腔内注射し、注射から1~1.5時間後にこの動物をイメージングする。SPECT画像との解剖学的共存のために、CTスキャン(50kVp、800uAおよび1.25の拡大係数で512投影)を得る。反時計回りでコリメータヘッドあたり180°、32投影、7.0cmのROR、8.95cmのFOVおよび140keV±20のエネルギーウィンドウでの投影あたり60秒で、SPECTイメージングを得る。CT画像は、フィルター処理された逆投影を使用してFLEX X-O CTソフトウェア(Gamma Medica-Ideas)で再構成するものとする。SPECT画像は、FLEX SPECTソフトウェア(5回の繰り返し、4つのサブセット)を使用して再構成するものとし、続いて、CT画像と融合させ、AMIRAソフトウェアを使用して分析する。
99mPYPのマウスのスキャンのために、注射の7日以内に動物をイメージングする。得られたSPECTスキャンをNIHのImageJ画像処理ソフトウェアにインポートし、各動物の頭(標的臓器)および全身を囲んで目的の領域を描く。「注射用量パーセント(per cent injected dose)」と称されることが多い注射放射能パーセント(Per cent injected activity)(PIA)は、頭のカウント対全身のカウントの比を比較することによって計算し、注射用量パーセントとして表して、目的の領域(頭)によって放射性トレーサーが取り込まれる親和性の尺度を得る。各スキャンの全カウントを注射用量の全身尺度と見なす。
生化学的分析はまた、午前10時から午後2時の間の同じ時刻に同時に、一晩の絶食の後に収集された(眼窩採血によって得られた)血液試料およびスポット尿を使用して行うことができる。濾過(NanoSep 300 K、Pall Corp.、Ann Arbor、MI)による、ヘパリン処理した血漿の除タンパクに続いて、蛍光プローブ(AB112155、ABCAM、Cambridge、MA)を使用して、血漿および尿の全ピロリン酸(PPi)濃度を決定する。LC-MS/MSによって、またはアッセイ間の変動性を調整するための適切な対照を使用するELISAによって測定された尿クレアチニンに対して、尿PPiを補正する。
左側の腎臓を4%ホルマリン/PBS中で4℃で12時間固定し、次いで、エタノールおよびキシレンの濃度を増大させて脱水し、続いて、パラフィン包埋する。1%メチルグリーンで対比染色された10umのフォンコッサ染色切片でミネラルの沈着を測定する。形態的評価として、ヘマトキシリン/エオシンを対比染色として使用する。皮質、髄質および腎盂(pelvis)を含む矢状腎臓切片の組織形態計測的評価は、オステオメジャー(Osteomeasure)システム(Osteometrics、Atlanta、GA)を使用して、2人の独立した観察者によって盲検化して行う。石灰化面積パーセントは、式:%計算面積=100*石灰化面積/全面積(皮質、髄質および腎盂(pelvic)管腔を含む)を使用して決定し、切片あたりの観察された領域の数に依存する。ミネラル化のサイズは、式:計算サイズ=石灰化面積/切片あたりの観察された石灰化の数を使用して決定する。
マウスの脛骨および大腿骨は、軟組織をはぎとり、70%エタノール中で固定し、脱水し、メタクリル酸メチル中に包埋してから、切片を作り、トルイジンブルーで染色する(C.B.Ware et al.,Targeted disruption of the low-affinity leukemia inhibitory factor receptor gene causes placental,skeletal,neural and metabolic defects and results in perinatal death.Development 121,1283-1299(1995))。組織形態計測的な測定は、一次海綿質に対応する成長板の直下の固定された領域で行い(A.M.Parfitt et al.,Bone histomorphometry:standardization of nomenclature,symbols,and units.Report of the ASBMR Histomorphometry Nomenclature Committee.J Bone Miner Res 2,595-610(1987))、オステオメジャーソフトウェア(Osteometrics、Atlanta、GA)によって分析する。骨は、Scanco μCT-35(Scanco、Brutissellen、Switzerland)を使用してスキャンし、成長板直下の近位脛骨および遠位大腿骨(骨梁骨)と脛骨または大腿骨の中央骨幹(皮質骨)の両方で多数の構造パラメーターを分析する。
促進食をとっているマウスの大腿骨は、三点曲げで破壊するまで荷重し、通常の固形飼料をとっているマウスの大腿骨は、4点曲げで破壊するまで荷重する。すべての全骨試験は、前方の4分の1区が引張荷重を受けるように、後方から前方の方向へ大腿骨に荷重することによって行う。4点曲げ装置の下部支持物および上部支持物の幅は、それぞれ7mmおよび3mmである。試験は、サーボ油圧試験機(Instronモデル8874;Instron Corp.、Norwood、MA、USA)を使用して、0.05mm/秒のたわみ速度で行う。荷重およびミッドスパンのたわみは、200Hzのサンプリング周波数で直接得る。荷重-たわみ曲線を剛性、最大荷重および破断までの仕事量について分析する。降伏は、初期の接線剛性と比較して、割線剛性(たわみ範囲に対して正規化された荷重範囲)の10%の低減と定義される。大腿骨は室温で試験し、リン酸緩衝食塩水(PBS)で湿潤に保つ。破壊時のたわみから降伏時のたわみを引いたものと定義される降伏後のたわみも同様に測定する。
以下の実施例は、CKDと関連する血管石灰化および症状の治療に有効であることが予想されるENPP1またはENPP3を発現するAAVを提供する。例示を目的としてENPP1-FcおよびENPP3-Fcを本実施例で使用し、本発明の他のENPP1またはENPP3融合体を使用して同様の結果を得ることができる。
ENPP1またはENPP3を送達および発現させることができる、対象あたり、pH7.4の1×PBS中におよそ5×1011~5×1015 vg/kg、いくつかの実施形態ではpH7.4の1×PBS中におよそ1×1012~1×1015 vg/kgを含む静脈内(intravenal)注射をすることによって、CKDを罹患するヒト患者を治療する。CKDの治療の成功は、マウスモデルについて述べたような定期的な血液および尿検査を通して1種または複数の前述のパラメーターモニターすることによって観察される。生きている患者で実施することが可能ではない、腎臓スライスまたは動脈組織の染色を必要とする組織学的解析ではなくて、代わりに、CTスキャン、超音波または静脈性腎盂造影のような、技術分野で一般に知られている非侵襲的可視化技法を使用して、CKDを罹患する患者において石灰化の存在ならびにベクターベースのENPP1またはENPP3の送達および発現に応じた石灰化の低減を可視化する。静脈性腎盂造影は、尿路を可視化し、腎石灰化の存在を検出するのを支援するための色素として機能する造影剤を使用するX線検査である。コンピュータ断層撮影は、尿路などの体の内部構造を描写するためにX線技術を使用する非侵襲的イメージング技法である。腎石灰化はCTスキャンで可視化される。CTスキャンは、体の周りの様々な角度からX線画像を収集して、詳細な断面画像ならびに体の内部構造および臓器の3次元画像を生成する。CTスキャンは、動脈で使用して、治療後の石灰化の存在およびその後の石灰化の低減を検出することもできる。コンピュータは、体を通って透過した放射線を分析して、内部構造および臓器の画像を再構築する。
以下の実施例は、GACIと関連する血管石灰化および症状の治療に有効であることが予想されるENPP1またはENPP3を発現するAAVを提供する。例示を目的としてENPP1-FcおよびENPP3-Fcを本実施例で使用し、本発明の他のENPP1またはENPP3融合体を使用して同様の結果を得ることができる。
hENPP1またはhENPP3を送達および発現させることができる、対象あたり、pH7.4の1×PBS中におよそ5×1011~5×1015 vg/kg、いくつかの実施形態では、pH7.4の1×PBS中におよそ1×1012~1×1015 vg/kgを含む注射をすることによって、GACIを罹患するヒト患者を治療する。GACIの治療の成功は、マウスモデルについて述べたような定期的な血液および尿検査を通して1種または複数の前述のパラメーターをモニターすることによって観察される。生きている患者で実施することが可能ではない、腎臓スライスまたは動脈組織の染色を必要とする組織学的解析ではなくて、代わりに、実施例4で述べたような非侵襲的可視化技法を使用する。
以下の実施例は、PXEと関連する血管石灰化および症状の治療に有効であることが予想されるENPP1またはENPP3を発現するAAVを提供する。例示を目的としてENPP1-FcおよびENPP3-Fcを本実施例で使用し、本発明の他のENPP1またはENPP3融合体を使用して同様の結果を得ることができる。
ENPP1またはENPP3を送達および発現させることができる、対象あたり、pH7.4の1×PBS中におよそ5×1011~5×1015 vg/kg、いくつかの実施形態では、pH7.4の1×PBS中におよそ1×1012~1×1015 vg/kgを含む静脈内注射をすることによって、PXEを罹患するヒト患者を治療する。PXEの治療の成功は、マウスモデルについて述べたような定期的な血液および尿検査を通して1種または複数の前述のパラメーターをモニターすることによって観察される。生きている患者で実施することが可能ではない、腎臓スライスまたは動脈組織の染色を必要とする組織学的解析ではなくて、代わりに、実施例4で述べたような非侵襲的可視化技法を使用する。
以下の実施例は、PXEと関連する血管石灰化および症状の治療に有効であることが予想される、ヒトENPP1またはENPP3を発現するAAVを提供する。例示を目的としてENPP1-FcおよびENPP3-Fc融合体を本実施例で使用し、本発明の他のENPP1またはENPP3融合体を使用して同様の結果を得ることができる。
hENPP1またはhENPP3を送達および発現させることができる、対象あたり、pH7.4の1×PBS中におよそ5×1011~5×1015 vg/kg、いくつかの実施形態では、pH7.4の1×PBS中におよそ1×1012~1×1015 vg/kgを含む静脈内注射をすることによって、OPLLを罹患するヒト患者を治療する。OPLLの治療の成功は、マウスモデルについて述べたような定期的な血液および尿検査を通して1種または複数の前述のパラメーターをモニターすることによって観察される。生きている患者で実施することが可能ではない、腎臓スライスまたは動脈組織の染色を必要とする組織学的解析ではなくて、代わりに、実施例4で述べたような非侵襲的可視化技法を使用する。
以下の実施例は、骨減少症および/または骨軟化症と関連する症状の治療に有効であることが予想されるENPP1またはENPP3を発現するAAVを提供する。例示を目的としてENPP1-FcおよびENPP3-Fcを本実施例で使用し、本発明の他のENPP1またはENPP3融合体を使用して同様の結果を得ることができる。
hENPP1またはhENPP3を送達および発現させることができる、対象あたり、pH7.4の1×PBS中におよそ5×1011~5×1015 vg/kg、いくつかの実施形態では、pH7.4の1×PBS中におよそ1×1012~1×1015 vg/kgを含む静脈内注射をすることによって、骨減少症または骨軟化症または骨関節症を罹患するヒト患者を治療する。骨減少症または骨軟化症または骨関節症の治療の成功は、マウスモデルについて述べたような定期的な骨強度、骨密度の血液および尿検査を通して、1種または複数の前述のパラメーターをモニターすることによって観察される。生きている患者で実施することが可能ではない、腎臓スライスまたは動脈組織の染色を必要とする組織学的解析ではなくて、代わりに、実施例4で述べたような非侵襲的可視化技法を使用する。
以下の実施例は、ADHR-2またはARHR-2またはXLHと関連する症状の治療に有効であることが予想されるENPP1またはENPP3を発現するAAVを提供する。例示を目的としてENPP1-FcおよびENPP3-Fcを本実施例で使用し、本発明の他のENPP1またはENPP3融合体を使用して同様の結果を得ることができる。
hENPP1またはhENPP3を送達および発現させることができる、対象あたり、pH7.4の1×PBS中におよそ5×1011~5×1015 vg/kg、いくつかの実施形態では、pH7.4の1×PBS中におよそ1×1012~1×1015vg/kgを含む静脈内注射をすることによって、ADHR-2またはARHR-2またはXLHを罹患するヒト患者を治療する。ADHR-2またはARHR-2またはXLHの治療の成功は、マウスモデルについて述べたような定期的な骨強度、骨密度の血液および尿検査を通して、1種または複数の前述のパラメーターをモニターすることによって観察される。生きている患者で実施することが可能ではない、腎臓スライスまたは動脈組織の染色を必要とする組織学的解析ではなくて、代わりに、実施例4で述べたような非侵襲的可視化技法を使用する。
正常なマウスの3つのコホートを本実験に使用した。各コホートは5匹の成体マウスを含む。第1のコホートは「対照群」として使用し、生理食塩水を対照群に注射した。第2のコホートは「低用量群」として使用し、1e13 vg/kg濃度のAAVベクターを低用量群に注射した。第3のコホートは「高用量群」を使用し、1e14 vg/kg濃度のAAVベクターを高用量群に注射した。AAVコンストラクトからウイルス粒子を生成し、ENPP1融合タンパク質を含む組換えAAVウイルス粒子を正常なマウスに注射するプロセスを概略的に図4に示す。注射後7、28および56日目にすべてのコホートのマウスから採血して、血漿および血清を収集した。
**較正標準4-ニトロフェノール(Sigma-Aldrich、カタログ番号241326)を使用して得られる
正常なマウスの3つのコホートを本実験に使用した。各コホートは5匹の成体マウスを含む。第1のコホートは「対照群」として使用し、生理食塩水を対照群に注射した。第2のコホートは「低用量群」として使用し、1e13 vg/kg濃度のAAVベクターを低用量群に注射した。第3のコホートは「高用量群」を使用し、1e14 vg/kg濃度のAAVベクターを高用量群に注射した。AAVコンストラクトからウイルス粒子を生成し、ENPP1融合タンパク質を含む組換えAAVウイルス粒子を正常なマウスに注射するプロセスを概略的に図4に示す。注射後7、28、56および112日目にすべてのコホートのマウスから採血して、血漿および血清を収集した。
前述の記載から、病的石灰化または骨化の存在によって特徴づけられる任意の疾患を治療するために、技術分野で既知の、異なるプロモーターもしくはエンハンサーを有する異なるウイルスベクターまたは異なる細胞型でENPP1もしくはENPP3の機能変異体またはそれらの組み合わせを発現させるための異なるシグナル配列の使用を含めた、様々な使用法および条件に採用するために、本明細書に記載の本発明に対して変形および修正を行うことができることは、本発明による範囲であることは明らかであろう。本発明による他の実施形態は以下の特許請求の範囲内である。
Claims (94)
- エクトヌクレオチドピロホスファターゼ/ホスホジエステラーゼ-1(ENPP1)またはエクトヌクレオチドピロホスファターゼ/ホスホジエステラーゼ-3(ENPP3)に融合したアズロシジンシグナルペプチドを含む前駆体ポリペプチドをコードする組換えポリヌクレオチドであって、哺乳動物細胞における前記ポリヌクレオチドの発現の際に、前記前駆体ポリペプチドがタンパク分解的に切断されて、軟組織の異所性石灰化を低減させる活性がある可溶性ENPP1または可溶性ENPP3を生成する、組換えポリヌクレオチド。
- ベクターまたはプラスミドを含む、請求項1に記載の組換えポリヌクレオチド。
- 前記ベクターまたは前記プラスミドが前記コードされるポリペプチドを発現することができる、請求項1に記載の組換えポリヌクレオチド。
- 前記ベクターがウイルスベクターである、請求項3に記載の組換えポリヌクレオチド。
- 前記ウイルスベクターがアデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターである、請求項4に記載の組換えポリヌクレオチド。
- 前記ポリヌクレオチドが、前記ENPP1に融合した前記アズロシジンシグナルペプチドまたは前記ENPP3に融合した前記アズロシジンシグナルペプチドおよびFcポリペプチドに融合した前記ENPP1または前記ENPP3をコードして、それぞれ、アミノ末端からカルボキシ末端の順で、アズロシジンシグナルペプチド-ENPP1-Fcまたはアズロシジンシグナルペプチド-ENPP3-Fcを形成する、請求項1~5のいずれか一項に記載の組換えポリヌクレオチド。
- 前記ポリヌクレオチドが、前記ENPP1に融合した前記アズロシジンシグナルペプチドまたは前記ENPP3に融合した前記アズロシジンシグナルペプチドおよびヒト血清アルブミンに融合した前記ENPP1または前記ENPP3をコードして、それぞれ、アミノ末端からカルボキシ末端の順で、アズロシジンシグナルペプチド-ENPP1-アルブミンまたはアズロシジンシグナルペプチド-ENPP3-アルブミンを形成する、請求項1~5のいずれか一項に記載の組換えポリヌクレオチド。
- ENPP1またはENPP3のN末端に融合したシグナルペプチドをコードする核酸配列を含み、それを発現することができる、ウイルスベクター。
- プロモーターを含む、請求項8に記載のウイルスベクター。
- 前記プロモーターが肝臓特異的プロモーターである、請求項9に記載のウイルスベクター。
- 前記肝臓特異的プロモーターが、アルブミンプロモーター、ホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)プロモーターおよびアルファ-1-アンチトリプシンプロモーターからなる群から選択される、請求項10に記載のウイルスベクター。
- ポリアデニル化シグナルをコードする配列を含む、請求項8~11のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記シグナルペプチドがアズロシジンシグナルペプチドである、請求項8~12のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターである、請求項8~13のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記AAVベクターが、AAV1、AAV2、AAV3、AAV4、AAV5、AAV6、AAV7、AAV8、AAV9およびAAV-rh74からなる群から選択される血清型を有する、請求項14に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリヌクレオチドが、前記ENPP1に融合した前記アズロシジンシグナルペプチドまたは前記ENPP3に融合した前記アズロシジンシグナルペプチドおよびFcポリペプチドに融合した前記ENPP1または前記ENPP3をコードして、それぞれ、アミノ末端からカルボキシ末端の順で、アズロシジンシグナルペプチド-ENPP1-Fcまたはアズロシジンシグナルペプチド-ENPP3-Fcを形成する、請求項13~15のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリヌクレオチドが、前記ENPP1に融合した前記アズロシジンシグナルペプチドまたは前記ENPP3に融合した前記アズロシジンシグナルペプチドおよびヒト血清アルブミンに融合した前記ENPP1または前記ENPP3をコードして、それぞれ、アミノ末端からカルボキシ末端の順で、アズロシジンシグナルペプチド-ENPP1-アルブミンまたはアズロシジンシグナルペプチド-ENPP3-アルブミンを形成する、請求項13~15のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 請求項8~17のいずれか一項に記載の組換えウイルスベクターを得る方法であって、
i.請求項1~7のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを含む細胞を提供するステップ、
ii.ウイルスのアセンブリーに適切な条件下で前記細胞を維持するステップ、および
iii.前記細胞によって産生された前記ウイルスベクターを精製するステップ
を含む、方法。 - ENPP1またはENPP3タンパク質を哺乳動物に提供する方法であって、
請求項8~17のいずれか一項に記載のウイルスベクターを前記哺乳動物に投与することを含む、方法。 - 請求項8~17のいずれか一項に記載のウイルスベクターおよび生理学的に適合する担体を含む、医薬組成物。
- 疾患の進行を予防するかまたは低減させることを必要とする哺乳動物において疾患の進行を予防するかまたは低減させる方法であって、治療有効量の請求項20に記載の医薬組成物を前記哺乳動物に投与することを含み、前記疾患が、X連鎖性低リン酸血症(XLH)、慢性腎臓疾患(CKD)、ミネラル骨障害(MBD)、血管石灰化、軟組織の病的石灰化、軟組織の病的骨化、乳児の全身性動脈石灰化(GACI)および後縦靱帯骨化症(OPLL)からなる群から選択され、それによって、前記哺乳動物の前記疾患が予防されるか、またはその進行が低減させられる、方法。
- 請求項1~7のいずれか一項に記載のポリヌクレオチドを含む、細胞。
- 病的石灰化または病的骨化の疾患または障害を治療または予防することを必要とする対象において病的石灰化または病的骨化の疾患または障害を治療または予防する方法であって、組換えENPP1またはENPP3ポリペプチドをコードする治療有効量のウイルスベクターを前記対象に投与し、それによって、前記疾患または障害を治療または予防することを含む、方法。
- ENPP1タンパク質の欠乏を有する対象を治療する方法であって、組換えENPP1またはENPP3ポリペプチドをコードする治療有効量のウイルスベクターを前記対象に投与し、それによって、前記対象を治療することを含む、方法。
- 前記疾患もしくは障害または前記ENPP1タンパク質の欠乏が、前記対象におけるNPP1遺伝子の機能欠損型突然変異またはABCC6遺伝子の機能欠損型突然変異と関連する、請求項23または24に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターが組換えENPP1ポリペプチドをコードする、請求項23~25に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターが組換えENPP3ポリペプチドをコードする、請求項23~25に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターが組換えENPP1-Fc融合ポリペプチドまたは組換えENPP1-アルブミン融合ポリペプチドをコードする、請求項23~26に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターが組換えENPP3-Fc融合ポリペプチドまたは組換えENPP3-アルブミン融合ポリペプチドをコードする、請求項27に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターがENPP1またはENPP3に融合したシグナルペプチドを含む組換えポリペプチドをコードする、請求項23~29に記載の方法。
- 前記ベクターがENPP1-FcまたはENPP1-アルブミンをコードする、請求項23~30に記載の方法。
- 前記シグナルペプチドがアズロシジンシグナルペプチド、NPP2シグナルペプチドまたはNPP7シグナルペプチドである、請求項23~30に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターが、アデノ随伴ウイルスベクターまたは単純ヘルペスベクターまたはアルファウイルスベクターまたはレンチウイルスベクターである、請求項23~30に記載の方法。
- アデノ随伴ウイルスベクター(AAV)の血清型が、AAV1またはAAV2またはAAV3またはAAV4またはAAV5またはAAV6またはAAV7またはAAV8またはAAV9またはAAV-rh74である、請求項33に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターが、ENPP1-Fc融合ポリペプチドに融合したアズロシジンシグナルペプチドを含む組換えポリペプチドをコードするアデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターである、請求項23~32に記載の方法。
- 前記ENPP1-Fc融合ポリペプチドをコードする前記AAVベクターが、1×1012~1×1015 vg/kgの投薬量で対象に投与される、請求項35に記載の方法。
- 前記投薬量が1×1013~1×1014 vg/kgである、請求項35に記載の方法。
- 前記AAVベクターが5×1011~5×1015 vg/kgの投薬量で対象に投与される、請求項35に記載の方法。
- 前記ベクターが、ENPP1-FcをコードするAAVベクターであり、1×1012~1×1015 vg/kgの投薬量で対象に投与される、請求項35に記載の方法。
- ENPP1-Fcポリペプチドをコードする前記AAVベクターの対象への投与が、前記対象において、血漿ピロリン酸(PPi)の用量依存的増加および血漿ENPP1濃度の用量依存的増加をもたらす、請求項35に記載の方法。
- ENPP1またはENPP3タンパク質の触媒ドメインを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列を含む、ウイルスベクター。
- ポリペプチド配列が、ENPP1またはENPP3タンパク質の細胞外ドメインを含む、請求項41に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリペプチドがENPP1またはENPP3タンパク質の膜貫通ドメインを含む、請求項41または42に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリペプチドがENPP1またはENPP3タンパク質のヌクレアーゼドメインを含む、請求項41~43のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリペプチドが配列番号1の残基99~925(Pro Ser Cys~Gln Glu Asp)を含む、請求項41~44のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリペプチドが配列番号7の残基31~875(Leu Leu Val~Thr Thr Ile)を含む、請求項41~44のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリペプチドが配列番号1の残基191~591(Val Glu Glu~Gly Ser Leu)を含む、請求項41~44のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリペプチドが配列番号7の残基140~510(Leu Glu Glu~Glu Val Glu)を含む、請求項41~44のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリペプチドが配列番号92の残基1~827(Pro Ser Cys~Gln Glu Asp)を含む、請求項41~44のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリペプチドが配列番号89の残基1~833(Phe Thr Ala~Gln Glu Asp)または配列番号91の残基1~830(Gly Leu Lys~Gln Glu Asp)を含む、請求項41~44のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 昆虫ウイルスベクターではない、請求項41~50のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 哺乳動物細胞に感染する、請求項41~51のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリヌクレオチド配列がプロモーター配列をコードする、請求項41~52のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記プロモーターが肝臓特異的プロモーターである、請求項53に記載のウイルスベクター。
- 前記肝臓特異的プロモーターが、アルブミンプロモーター、ホスホエノールピルビン酸カルボキシキナーゼ(PEPCK)プロモーターおよびアルファ-1-アンチトリプシンプロモーターからなる群から選択される、請求項54に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、ポリアデニル化シグナルをコードするヌクレオチド配列を含む、請求項41~55のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリヌクレオチドが、ENPP1またはENPP3タンパク質をコードするヌクレオチド配列に対してアミノ末端にあるシグナルペプチドをコードする、請求項41~55のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記シグナルペプチドがアズロシジンシグナルペプチドである、請求項57に記載のウイルスベクター。
- アデノ随伴ウイルス(AAV)ベクターである、請求項41~58のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記AAVベクターが、AAV1、AAV2、AAV3、AAV4、AAV5、AAV6、AAV7、AAV8、AAV9およびAAV-rh74からなる群から選択される血清型を有する、請求項59に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、前記ENPP1に融合した前記アズロシジンシグナルペプチドまたは前記ENPP3に融合した前記アズロシジンシグナルペプチドおよびFcポリペプチドに融合した前記ENPP1または前記ENPP3をコードして、それぞれ、アミノ末端からカルボキシ末端の順で、アズロシジンシグナルペプチド-ENPP1-Fcまたはアズロシジンシグナルペプチド-ENPP3-Fcを形成する、請求項41~60のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、前記ENPP1に融合した前記アズロシジンシグナルペプチドまたは前記ENPP3に融合した前記アズロシジンシグナルペプチドおよびヒト血清アルブミンに融合した前記ENPP1または前記ENPP3をコードして、それぞれ、アミノ末端からカルボキシ末端の順で、アズロシジンシグナルペプチド-ENPP1-アルブミンまたはアズロシジンシグナルペプチド-ENPP3-アルブミンを形成する、請求項41~60のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリペプチドが、(i)ENPP1タンパク質またはENPP3タンパク質および(ii)半減期延長ドメインを含む融合タンパク質である、請求項41~62のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記半減期延長ドメインが、IgG Fcドメインまたはその機能的フラグメントが存在しない場合の前記ポリペプチドの半減期と比較して、哺乳動物において前記ポリペプチドの半減期を延ばすことができる、前記IgG Fcドメインまたは前記IgG Fcドメインの機能的フラグメントである、請求項63に記載のウイルスベクター。
- 前記半減期延長ドメインが、アルブミンドメインまたはその機能的フラグメントが存在しない場合の前記ポリペプチドの半減期と比較して、哺乳動物において前記ポリペプチドの半減期を延ばすことができる、前記アルブミンドメインまたは前記アルブミンドメインの機能的フラグメントである、請求項63に記載のウイルスベクター。
- 前記半減期延長ドメインが、前記融合タンパク質において、前記ENPP1またはENPP3タンパク質に対してカルボキシ末端にある、請求項63~65のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記IgG Fcドメインが配列番号34に示されるアミノ酸配列を含む、請求項64または66に記載のウイルスベクター。
- 前記アルブミンドメインが配列番号35に示されるアミノ酸配列を含む、請求項65または66に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリヌクレオチドがリンカー配列をコードする、請求項41~68のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記リンカー配列が配列番号57~88および94からなる群から選択される、請求項69に記載のウイルスベクター。
- 前記リンカー配列が、前記融合タンパク質の前記ENPP1またはENPP3タンパク質と前記半減期延長ドメインを接続する、請求項63~70のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 前記ポリペプチドが配列番号89、91、92および93に示されるアミノ酸配列を含む、請求項41~64、66または67のいずれか一項に記載のウイルスベクター。
- 組換えウイルスベクターを産生するための方法であって、
i.ENPP1またはENPP3タンパク質の触媒ドメインを含むポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む細胞または細胞の集団を提供するステップであって、前記細胞が、組換えウイルスベクターへの前記ポリヌクレオチドのパッケージングおよび/またはアセンブリーに必須なウイルスタンパク質を発現するステップ;ならびに
ii.前記ポリヌクレオチドを含む前記組換えウイルスベクターのパッケージングの前記アセンブリーに適切な条件下で、前記細胞または細胞の集団を維持するステップ
を含む、方法。 - 前記細胞が哺乳動物細胞である、請求項73に記載の方法。
- 前記哺乳動物細胞がげっ歯類細胞またはヒト細胞である、請求項74に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターが請求項41~72のいずれか一項に記載のベクターである、請求項73~75のいずれか一項に記載の方法。
- 前記細胞もしくは細胞の集団から、または前記細胞もしくは細胞の集団が維持されていた培地から前記組換えウイルスベクターを精製することをさらに含む、請求項73~76のいずれか一項に記載の方法。
- 請求項77に記載の方法から精製された組換えウイルスベクター。
- 請求項41~72のいずれか一項に記載のウイルスベクターまたは請求項78に記載の組換えウイルスベクターおよび医薬的に許容可能な担体を含む、医薬組成物。
- 疾患の進行を予防するかまたは低減させることを必要とする哺乳動物において疾患の進行を予防するかまたは低減させる方法であって、治療有効量の請求項79に記載の医薬組成物を前記哺乳動物に投与し、それによって、前記疾患または障害の進行を予防するかまたは低減させることを含む、方法。
- 前記哺乳動物がヒトである、請求項80に記載の方法。
- 前記疾患が、X連鎖性低リン酸血症(XLH)、慢性腎臓疾患(CKD)、ミネラル骨障害(MBD)、血管石灰化、軟組織の病的石灰化、軟組織の病的骨化、PXE、乳児の全身性動脈石灰化(GACI)および後縦靱帯骨化症(OPLL)からなる群から選択される、請求項81または82記載の方法。
- 病的石灰化または病的骨化の疾患または障害を治療または予防することを必要とする対象において病的石灰化または病的骨化の疾患または障害を治療または予防する方法であって、治療有効量の、請求項41~72のいずれか一項に記載のウイルスベクターまたは請求項79に記載の医薬組成物を前記対象に投与して、それによって、前記疾患または障害を治療または予防することを含む、方法。
- ENPP1タンパク質の欠乏を有する対象を治療する方法であって、治療有効量の、請求項41~72のいずれか一項に記載のウイルスベクターまたは請求項79に記載の医薬組成物を前記対象に投与して、それによって、前記対象を治療することを含む、方法。
- 前記疾患もしくは障害または前記ENPP1タンパク質の欠乏が、前記対象におけるNPP1遺伝子の機能欠損型突然変異またはABCC6遺伝子の機能欠損型突然変異と関連する、請求項84に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターまたは医薬組成物が、1×1012~1×1015 vg/対象または哺乳動物のkgの投薬量で投与される、請求項80~85のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターまたは医薬組成物が、1×1013~1×1014 vg/対象または哺乳動物のkgの投薬量で投与される、請求項80~85のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターまたは医薬組成物が、5×1011~5×1015 vg/対象または哺乳動物のkgの投薬量で投与される、請求項80~85のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターまたは医薬組成物が、1×1012~1×1015 vg/対象または哺乳動物のkgの投薬量で投与される、請求項80~85のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ウイルスベクターまたは医薬組成物の前記対象または哺乳動物への投与が、前記対象または哺乳動物において、血漿ピロリン酸(PPi)および/または血漿ENPP1もしくはENPP3濃度を高める、請求項80~89のいずれか一項に記載の方法。
- 前記対象または哺乳動物から得られた生物試料において、以下のパラメーター:(i)ピロリン酸の濃度、(ii)ENPP1またはENPP3の発現レベル、および(iii)ENPP1またはENPP3の酵素活性のうちの1つまたは複数を検出または測定することをさらに含む、請求項80~89のいずれか一項に記載の方法。
- 前記検出または測定が、前記ウイルスベクターまたは医薬組成物を投与する前に行われる、請求項91に記載の方法。
- 前記検出または測定が、前記ウイルスベクターまたは医薬組成物の投与と同時またはほぼ同時に行われる、請求項91または92に記載の方法。
- 前記検出または測定が、前記ウイルスベクターまたは医薬組成物の投与の後に行われる、請求項91~93のいずれか一項に記載の方法。
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