JP2022514728A

JP2022514728A - 修飾ヒトエリスロポエチン（ｍｏｄｉｆｉｅｄｈｕｍａｎｅｒｙｔｈｒｏｐｏｉｅｔｉｎ）

Info

Publication number: JP2022514728A
Application number: JP2021517686A
Authority: JP
Inventors: クラトヘ，リカルド; オッジェロ－エベルハルト，マルコス; デロスミラグロスブルジ－フィソロ，マリア; ドレッラ，アキレス; アイ．アパリシオ，ガブリエラ; エッチェベリガレイ，マリナ; スコルティカティ，カミラ
Original assignee: ウニベルジダッドナショナルデルリトラル; コンセホナショナルデインベスティガシオンシエンティフィカスイテクニカス（コニセット）; ウニベルジダッドナショナルデジェネラルサンマーティン
Priority date: 2018-09-27
Filing date: 2019-09-26
Publication date: 2022-02-15
Also published as: BR112021005968A2; US20220220177A1; CO2021004447A2; EP3856223A1; CN112770766A; WO2020065576A1; IL281843B2; IL281843A; IL281843B1; AR113091A1; AU2019348911A1; MX2021003614A; PE20210827A1; KR20210070325A; CA3113589A1

Abstract

【課題】赤血球生成の活性を押さえながら神経保護又は神経形成能力を維持することのできる修飾ヒトエリスロポエチンを提供する。【解決手段】本発明の修飾ヒトエリスロポエチンは、その赤血球生成促進の活性が、ヒトエリスロポエチンに比較して０．５％未満であり、糖化の為のコンセンサス・サイトの追加により、ホモ又はヘテロ二量体受容体への結合サイトの突然変異を含み、血漿の半減期を延ばし、赤血球生成の活性を押さえながら神経保護又は神経形成能力を維持することのできる。【選択図】図１

Description

本発明は、中枢神経系疾患の治療に有用な神経形成（neuroplastic）能力と神経保護（neuroprotective）能力を有する修飾ヒトエリスロポエチン（修飾されたヒト赤血球生成促進因子：以下「ｍｈＥＰＯ」とも称する）に関する。中枢神経系疾患の一例は、脳血管傷害、神経外傷、神経炎症、神経変性症がある。

エリスロポエチン（ＥＰＯ）は、重要な多面発現の活性（pleiotropic activity）により特徴付けられるＩ型サイトカイン(cytokine)スーパーファミリーの一部である（非特許文献１）。このサイトカインは、赤血球生成の主要な調節因子の一つであり、他の分子と相乗的に作用し、赤血球系列細胞前駆体（erythroid lineage cell progenitor）の増殖、分化、生存を促進し、循環する赤血球の量を維持する（非特許文献２）。

ヒトＥＰＯ（ｈＥＰＯ）は、高度にグリコシル化されたタンパク質（highly glycosylated protein）である。その分子量は、３０－３９ｋＤａの範囲である。これは、３個のコンセンサスＮ－グリコシル化サイト（consensus N-glycosylation site）と、１個のＯ－グリコシル化サイト（O-glycosylation site）とを有し、全程度の占有で発生する（非特許文献３）。糖鎖（chain of sugar）は、単糖類（monosaccharides）の可変配列と、可変量のシアリ酸（ＳＡ:sialic acid ）とから構成される（非特許文献４，５）。Ｎ－リンクされた炭水化物は、２つ、３つ、４つのいずれかの分岐（branch）を含み、それぞれの分岐は、負に帯電したＳＡ分子で終わる。その一部として、Ｏ－グリコシル化サイトに結合した炭水化物は、最大２つのＳＡ分子を含むことができる（非特許文献６）。

グリコシル化、特にＮ－グリカンのＳＡ端末は、エリスロポエチン（以下「ＥＰＯ」とも称する）のin vivo の生物学的活性の基本ではあるが、in vitro 受容体結合の基本ではない（非特許文献７，８）。これが、配糖体（glycosidic )の含有量が少ないＥＰＯ分子は、ＥＰＯ受容体（ＥＰＯＲ）に対し高い親和性を有するが、そのin vivo の生物学的活性は、血漿のクリアランス（plasma clearance）の増加により消滅する理由である（非特許文献８）。これらのサイトカインのグリコシル化の程度は、それらの産生効率、受容体への親和性、血漿の半減期、分泌とタンパク質の安定性に影響を及ぼす。
米国特許出願公開ＵＳ２０１５１１９３２５米国特許出願公開ＵＳ２００９１７０７５９米国特許出願公開ＵＳ２００３１３０１９７米国特許出願公開ＵＳ２０１１００８３６３米国特許出願公開ＵＳ２００７０２７０６８米国特許出願公開ＵＳ２０１１００３７４４ＰＣＴ出願公開ＷＯ２００４／０４３３８２ＰＣＴ出願公開ＷＯ２００５／０２５６０６（ＡＩ）ＰＣＴ出願公開ＷＯ２００６／１２７９１０ＰＣＴ出願公開ＷＯ２００５／１０３０７６メキシコ特許出願公開ＭＸＰＡ０２０１１７２７メキシコ特許出願公開ＭＸＰＡ０５００００６３スペイン特許出願公開ＥＳ２４５７３９８（Ｔ３）アルゼンチン特許出願公開ＡＲ０５５６５４ＰＣＴ出願公開ＷＯ２００９／５０５４６５ J.W. Fisher. Exp Biol Med (Maywood) 228 (2003) 1-14. C. Lacombe, P. Mayeux. Nephrol Dial Transplant 14 Suppl 2 (1999) 22-28. U. Hammerling, R. Kroon, T. Wilhelmsen, L. Sjodin, J.Pharm Biomed Anal 14 (1996) 1455-1469. H. Sasaki, B. Bothner, A. Dell, M. Fukuda. J Biol Chem 262 (1987) 12059-12076. E. Tsuda, M. Goto, A. Murakami, K. Akai, M. Ueda, G. Kawanishi, N. Takahashi, R. Sasaki, H. Chiba, H. Ishihara, et al . Biochemistry 27 (1988) 5646-5654. J.C. Egrie, J.K. Browne. Br J Cancer 84 Suppl 1 (2001)3-10. A.J. Sytkowski, L. Feldman, D.J. Zurbuch, Biochem Biophys Res Commun 176 (1991) 698-704. E. Delorme, T. Lorenzini, J. Giffin, F. Martin, F.Jacobsen, T. Boone, S. Elliott. Biochemistry 31 (1992) 9871- 9876. T. Toyoda, T. Arakawa, H. Yamaguchi. J Biochem 131(2002) 511-515. Nangaku, M. Kidney International (2013) 84, 427-429. T Ng, G Marx, T Littlewood, I Macdougall . Postgrad Med J (2003) 79: 367-376 N. Debeljak, A.J. Sytkowski, Erythropoietin: new approaches to improved molecular designs and therapeutic alternatives. Curr Pharm Des 14 (2008) 1302-1310. Noguchi, C.T., Asavaritikrai , P., Teng, R. , and Jia, Y (2007) . Role of erythropoietin in the brain. Crit Rev Oncol Hematol 64, 159-171. P.a. Konstantinopoulos , M.V. Karamouzis, A.G. Papavassiliou . Biochim. Biophys. Acta 1776 (2007) 1-9. Siren, A.L. y Ehrenreich, H. Eur. Arch. Psychiatry Clin. Neurosci. (2001) 251(4): 179-184. Neurodegenerative disorders, Public health - European commission . http : //ec . europa . eu/health/maj or chronic diseases/ diseases/brain neurological/index en.htm Policy Brief: The Global Impact of Dementia 2013-2050-The Global voice on Dementia. Alzheimer's disease International . http ://www.alz.co.uk/research/G8-policy-brief . NIH meeting advances Alzheimer's research agenda. Fogarty International Center. Advancing Science for Global Health .http : //www . fic . nih . gov/news/globalhealthmatters/march-april-2015 /pages/nih-alzheimers-research-summit . aspx Toledo Atucha, J. Alzheimer. Real Invest Demenc. (2011), 47: 16-23. Mawadda Alnaeeli, LiWang, Barbora Piknova, Heather Rogers, Xiaoxia Li, and Constance Tom Noguchi. Anatomy Research International. Volume 2012, Article ID 953264, 15 pages Masuda, S. y col. J. Biol. Chem. (1993) 268(15): 11208-11216. Wolf y col. Thromb Haemost (1997), 77:1020 1024. [23] P.J. Stohlawetz, L. Dzirlo, N. Hergovich, E. Lackner, C. Mensik, H.G. Eichler, E. Kabrna, K. Geissler, B. Jilma. Blood 95 (2000) 2983-2989. [24] Cases A y col. Kidney Internacional (1992), 42:668-672. [25] Beguin Y., Haematologica (1999), 84:541-547. [26] M. Leist, P. Ghezzi, G. Grasso, R. Bianchi, P. Villa, M. Fratelli, C. Savino, M. Bianchi, J. Nielsen, J. Gerwien, P. Kallunki, A.K. Larsen, L. Helboe, S. Christensen, L.O. Pedersen, M. Nielsen, L. Torup, T. Sager, A. Sfacteria, S. Erbayraktar, Z. Erbayraktar, N. Gokmen, O. Yilmaz, C. Cerami-Hand, Q.W. Xie, T. Coleman, A. Cerami, M. Brines. Science 305 (2004) 239-242. T. Mennini, M. De Paola, P. Bigini, C. Mastrotto, E. Fumagalli, S. Barbera, M. Mengozzi, B. Viviani, E. Corsini, M. Marinovich, L. Torup, J. Van Beek, M. Leist, M. Brines, A. Cerami, P. Ghezzi. Mol. Med. 12 (2006) 153-160. Siren, A.L. y col. Neurotherapeutics (2009), 6(1): 108- 127. [29] Erbayraktar, S. y col. Proc. Natl. Acad. Sci. (2003), USA 100: 6741-6746. [30] M. Mattio, N. Ceaglio, M. Oggero, N. Perotti, I. Amadeo, G. Orozco, G. Forno, R. Kratje, M. Etcheverrigaray . Biotechnol Prog 27 (2011) 1018-1028. [31] Dotti CG, Sullivan CA, Banker GA. 1988. J Neurosci (1988) 8:1454-1468 [32] Das KP, Freudenrich TM, Mundy WR. Neurotoxicol Teratol (2004) 26:397-406 [33] Rochefort NL, Konnerth A. EMBO Rep. (2012) Aug; 13 (8) :699-708. DOI : 10.1038/embor .2012.102. [34]Suetsugu M, Mehraein P. Acta Neuropathol.(1980) 50 (3) : 207-10. [35] Hutsler JJ1, Zhang H. Brain Res. (2010) Jan 14;1309:83-94. DOI: 10.1016/j .brainres .2009.09.120. [36] Alfonso J., Fernandez M. E., Cooper B., Flugge G. andFrasch A. C. Proc. Natl Acad. Sci. (2005) USA 102, 17196- 17201. [37 ] Ippolito, D.M. , Eroglu, C., Journal of Visualized Experiments. (2010) Exp. 45:2270. DOI: 10.3791/2270.

１９８５年のｈＥＰＯ遺伝子のクローニング以来、サイトカイン生物学に関する知識は、劇的に変わった。最初の進歩の一つは、以下に述べる分子の新たな生物学的活動の発見である。この分子は、ＥＰＯの能力を拡張し、いくつかの重要な生理学的プロセスを含む。最重要なものいくつかは、血管形成（angiogenesis）、動脈抵抗調節、更に重要なものは、細胞保護（celluar protection）である（非特許文献１０，１１）。ＥＰＯの最重要な活性は、造血（hematopoiesis）であるが、ＥＰＯと様々な組織内のその受容体と非ＥＰＯ細胞の存在は、ＥＰＯは複数の機能を有するという仮説を確認する。その機能の内最重要なものの一つは、中枢神経系、心臓、腎臓、胃腸系、生殖管、内皮（非特許文献１２）に対する細胞保護機能、細胞増殖の促進、血管形成、細胞アポトーシスの阻止である（非特許文献１３）。これらの発見は、他の病状の治療に対する臨床における使用の期待を広げた。他の病状の一例は、心臓発作、脳血管発作、神経保護に関連する病気である（非特許文献１４）。

神経保護は、脳内における細胞の相互作用の維持と回復へのアプローチとして定義でき、神経機能の最大保護となる（非特許文献１５）。神経保護の目的は、中枢神経系疾患において、病理学的に、ニューロン（以下「神経」とも称する）喪失を防ぐことである。ニューロン喪失の一例は、脳血管傷害、神経外傷、神経炎症、神経変性である。

神経変性疾患は、神経系に影響する疾患群であり、認知障害、行動障害、身体の調節系の変化を引き起こす。これらは、慢性と急性の進行で特徴付けられる。これらの疾患は、パーキンソン病、様々なタイプの認知症、アルツハイマー病、多発性硬化症、ハンチントン病等を含む。これらの疾患は、あらゆる国が直面する社会的／経済的観点から、医療、健康に関する問題を作り出す（非特許文献１６）。世界の人口が高齢化するにつれて、神経障害の影響は、先進国と発展途上国の両方で大きくなる。神経障害の負担は、６５歳以上の人の割合が増える国においては、かなり大きくなる。アルツハイマー病だけに限ってみても、統計によれば、世界中で、４４００万人が認知症を患う。この数字は、２０５０年には１億１５００万人になると予測されている。その理由は、この病気は世界的流行と考えられるからである（非特許文献１７－１９）。この為、世界中の多くの研究グループが、この種の神経変性疾患を制御する治療を提供する研究に従事している。

多くの研究グループの共同研究により、研究が進み、新規で有望な背景をこれらの問題の原因に与え、早い段階での病気の検出に望みをもたらし、疾患を攻撃する具体的な方法が発見されている。しかしこのような努力さえも、この疾患を治す生物療法を特定出来ずにいる。この意味で、医薬品市場は、これらの病気を見つけると、その進行を遅らせるとされる医薬品を提供しているだけであり、その利点は、あまり感じられない。それは、あくまでも新規な治療法を開発する必要があるからである。神経変性疾患が今日提示する健康問題点に対処する成功は、とりわけ、利点と長続きする効果を奏する治療に依存する。治療は、病因又は根底にある疾患に好ましい影響を与えること、疾患の発生を防ぐこと或いは遅らすこと、安全にかつ成功裏に効果的に病状の悪化を遅らせることである。しかし、今度は、大勢の人が入手可能な効率的な医療技術を考え出す必要もある。最近の製薬業界の主な目的は、中枢神経系の多くの疾患の発症における共通のキーポイントを攻撃できる化合物を見いだすことである。これらの疾患の一例は、アポトーシス、酸化ストレス、炎症、代謝機能障害、神経形成の低下である。

この研究分野においては、ＥＰＯは、非常に重要な役割を果たしている。これは脳内の幅広い細胞応答を発達させる能力があることに起因している。この細胞応答は、細胞の損傷の保護と修復に直接関連する（非特許文献２０）。ＥＰＯは、神経保護を行うが、これは、抗炎症、抗酸化、抗神経毒性、血管形成、神経再生及び抗アポトーシス機構を介して行われている。

これに照らして、ＥＰＯの研究のもう一つの非常に重要なことは、赤血球生成の活性と細胞保護生物学的活性に関連する２つ異なる分子サイト（molecular site）を同定することである。これら２つの活性は、サイトカインを２つの異なる受容体系に結合することにより、付与される。２つの異なる受容体系とは、赤血球生成の活性に関与するホモ二量体（homodimeric）受容体（ＥＰＯＲ）２と、細胞活性に関与するヘテロ二量体（heterodimeric）受容体（ＥＰＯＲ－ｐＣＲ）である（非特許文献２１）。これらの発見は極めて重要である。その理由は、これらの発見は、ＥＰＯがその生物学的活性を発達させる経路を理解するのに必要な情報を提供するからである。その結果、この情報は、その赤血球生成促進反応と細胞保護生物学的反応の選択的調製を可能とする。しかも、選択されなかった薬剤（ＥＰＯ又はＥＰＯ同族体（analogue））の使用に関連する副作用を回避する目的を維持しながら、行われた。

この意味において、ＥＰＯは、貧血（anemia）の治療において、安全かつ十分に受け入れられた薬剤として認識されているが、ＥＰＯが、脳血管発作又は心臓発作を起こした患者に対し細胞保護剤して使用された時即ち貧血ではない患者に神経保護剤として使用された時は、その血液学的影響（haematological effect）は、副作用と見なされるべきである。その理由は、ＥＰＯは、赤血球増加症（polysythemia）、高血圧症（hypertension）、血栓生成促進現象（prothrombotic phenomena）を引き起こすからである（非特許文献２２－２５）。この理由で、その赤血球生成の役割と細胞保護の役割を選択的に調製するＥＰＯ同族体の開発は互いに非常に関連している（非特許文献１４）。この目的に従って、様々な戦略が企図され、サイトカインの赤血球生成の活性を打ち消し、その神経保護能力を維持しようとしている。これは、ＥＰＯ分子への化学修飾の適用又はグリコシド含有量の操作を介して行われる。

ＥＰＯ分子に対し化学修飾（以下単に「修飾」と称する）を採用する戦略に関し、ホモシトルリン残基（homocitrulline residue）を生成する７つのリシン残基（lysine residue）のカルバミル化（carbamylation of seven lysine residues）が評価されている（非特許文献２６）。しかし、この方法は、その機能に影響するタンパク質の配座変化（conformation change）を生成してしまう。これらの結果に基づいて、様々な作業グループが、カルバミル化により組換え（recombinant）ｈＥＰＯ（以下「ｒｈＥＰＯ」とも称する）を完全に修飾し、ＣＥＰＯと称する新たな分子を得た。この新たな分子は、細胞保護活性を維持するが、赤血球生成の活性を欠いている（非特許文献２６－２８）。同時に、所望の目的を達成しその治療効果を維持するためには、高容量かつ多数回の投与が必要である。

他方で、修飾は、ｒｈＥＰＯに対しては、シアリ酸（ＳＡ）の含有量を操作することにより行われている。２００３年に、非特許文献２９によれば、ＥＰＯグリコシド鎖の末端に存在するＳＡの残基は完全に取り除かれた。かくして、所謂アシアロ（Asialo）ＥＰＯが生成された。この新たなＥＰＯ変異種（variant）は、高いin vitro 活性を示す。しかし、そのin vivo 神経保護活性は、ｒｈＥＰＯで得られたものと同等であった。

他方で、赤血球生成－刺激性のサイトカインの循環半減期を延ばす目的で、非特許文献６によれば、赤血球生成促進を刺激するタンパク質ＮＥＳＰが開発された。ＮＥＳＰは、ｈＥＰＯに由来し、２つの追加的なＮ－グリコシル化サイトを示す。この修飾（modification）は、血漿の半減期とin vivoの赤血球生成能力を３倍に増加させた。

糖質（glucidic）含有量の操作に関し、本発明者は、脳（cerebral）ＥＰＯ（ｒｈＮＥＰＯ）に似た特性を有するｒｈＥＰＯ変異種を得た。ｒｈＮＥＰＯは、ｒｈＥＰＯの酸性度の低いアイソフォーム（isoform）の組み合わせである。このｒｈＥＰＯ変異種は、ｒｈＥＰＯと同等な神経保護活性を示し、４％未満の赤血球生成の活性を示した（非特許文献３０）。しかし、ｒｈＮＥＰＯの迅速な血漿のクリアランスは、この分子を慢性神経疾患の治療の候補として提案する時は、不都合である。その理由は、この慢性神経疾患の治療は、血漿濃度を、時間単位に渡って維持し、生物学的作用を発揮するのに十分に高い必要があるからである。更に、グリコフォルム（glycoform）の組み合わせが、in vitro 赤血球生成の活性を維持したとしても、この目的を達成する為に、高容量かつ頻繁な投与は、血液学的作用を生み出すリスクを伴い、これは好ましくない副作用と見なされるからである。

従来技術は、エリスロポエチンの分子又はそれ由来のペプチドを得る他の多くの努力を記載している。これらは、神経保護活性の存在と赤血球生成の活性の欠如を示す。この点に関し、特許文献１は、植物中に生成されるアシアロエリスロポエチン（アシアロ－ｒｈＥＰＯ）を記載している。特許文献２、３、１０は、中枢神経系に関連する疾患治療用の、ＥＰＯ受容体に結合されるペプチトを記載している。

特許文献６は、ヒトエリスロポエチン（ｈＥＰＯ）ポリペプチドの変異種を記載している。このｈＥＰＯポリペプチドは、複数の異なるＥＰＯ修飾領域にアミノ酸の違いがあるアミノ酸配列（sequence）と、強化された赤血球生成の活性を有する。本発明の目的は、複数の異なるＥＰＯ修飾領域にアミノ酸の違いがあり、その細胞保護機能に関連する程よい赤血球生成の活性を有するアミノ酸配列を含むエリスロポエチンポリペプチドのヒト変異種（human variant）である。

特許文献４は、ＥＰＯの様々な変異種を記載する。この変異種内の１－１０個のアミノ酸が、タンパク質のＣ－末端（C-terminus）で、削除されている。これらは、赤血球生成の活性を低下させ神経保護動作を保存する低分子質量の変異種である。
特許文献５は、グリコペジレート化された（glycopegylated）ＥＰＯペプチドを記載する。変異したＥＰＯペプチドの１つは、アミノ酸配列（配列番号７３）を有し、以下の組から選択された少なくとも１つの突然変異（mutation）を有する。
Ａｒｇ＜１３９＞からＡｌａ＜１３９＞、
Ａｒｇ＜１４３＞からＡｌａ＜１４３＞、
Ｌｙｓ＜１５４＞からＡｌａ＜１５４＞

特許文献１２は、ＥＰＯ変異種をコードするポリヌクレオチド（polynucleotide）に関する。
特許文献７は、オリゴ糖を組み込んだ修飾ＥＰＯを記載する。修飾ＥＰＯは、赤血球生成の活性を増加させ、細胞保護活性を維持する。

特許文献８は、赤血球細胞の産出を増やす糖鎖形成即ちグリコシル化（glycosylation）を記載する。同文献には、これは、細胞保護の機能を実行するため、神経変性疾患の治療に有効である旨の記載もある。

特許文献１３は、神経変性疾患の治療の為に、組換えＥＰＯ（ｒＥＰＯ）を記載する。同文献は、グリコシル化サイトを追加する為に修飾アミノ酸を詳述する。下記の残基の修飾が強調されている。８７．８８，９０／／３０，３２，８７，８８，９０／／２４，８７，８８，９０／／３８，８７，８８，９０／／８３，８７，８８，９０。

その目的は、グリカンを組み込んで、赤血球生成の活性を増加させ、巡回半減期（circulating half-life）を増加させることである。同様な目的は、特許文献１４に開示されている修飾にも存在する。同文献は、追加的なグリコシル化サイトを有するＥＰＯの変異種を記載する。同文献に記載されているサイトの一部は、２５，３０，５１，５７，６９，８８，８９，１３６，１３８である。加えて、以下の置換が記載されている。
Asn<30>Thr<32> EPO;
Asn<51>Thr<53> EPO;
Asn<57>Thr<59> EPO;
Asn<69>EPO;
Asn<69>Thr<71> EPO;
Ser<68>Asn<69>Thr<71> EPO;
Val<87>Asn<88>Thr<90> EPO;
Ser<87>Asn<88>Thr<90> EPO;
Ser<87>Asn<88>Gly<89>Thr<90> EPO;
Ser<87>Asn<88>Thr<90>Thr<92> EPO;
Ser<87>Asn<88>Thr<90>Ala<l 62> EPO;
Asn<69>Thr<72>Ser<87>Asn<88>Thr<90> EPO;
Asn<30>Thr<32>Val<87>Asn<88>Thr<90> EPO;
Asn<89>Ile<90>Thr<91> EPO;
Ser<87>Asn<89>Ile<90>Thr<91> EPO;
Asn<136>Thr<138> EPO;
Asn<138>Thr<140> EPO;
Thr<125> EPO;
Pro<124>Thr<125> EpO .

特許文献９は、偶数個のシステイン残基（cysteine residue）を有するＥＰＯ変異種を記載している。偶数個のシステイン残基は、好ましくは４個以下のシステイン残基、更に好ましくは２個以下のシステイン残基である。システイン残基は、７，２９，３３，１６１のポジションにあるのが好ましく、更に７と１６１のポジションにあるのが好ましい。本発明により提供される追加的な変異種は、以下のポジションのいずれかへの追加による任意の突然変異を含む。ポジション６．２９．３３，４５，４７，４８，４９，６１，６４，７４，８８，９２，１０７，１０９，１３３，１３５，１５４，１５７，１５８。

特許文献５は、ＥＰＯ形成を記載する。このＥＰＯ形成は、酵素的に修飾されたグリコシド残基を介して、ポリエチレングリコール－共役タンパク質（polyethlene glycol-conjugated protein）、又はポリエタノールアミン－共役タンパク質（poly ethanolamine-conjugated protein）を含み、赤血球生成特性を高める。

特許文献１１は、組織保護的（tissue-protective）組換えサイトカインを記載する。このサイトカインは、少なくとも骨髄に対する赤血球生成活性を欠いている。この組織保護的組換えサイトカインは、赤血球生成の活性を欠いている。好ましくは、骨髄に対するあらゆる赤血球生成活性を欠いている。この特許文献１１は、アミノ酸への変更、即ちＥＰＯの削除又はＥＰＯへの添加が１つ又は複数のアミノ酸に発生している変更を記載している。実施例においては、この組織保護組換えサイトカインは、下記の領域のいすれかで修飾を有する。
ＶＬＱＲＹ（天然ｈＥＰＯのアミノ酸１１－１５：配列番号１）、
ＴＫＶＮＦＹＡＷ（天然ｈＥＰＯのアミノ酸４４－５１：配列番号２）、
ＳＧＬＲＳＬＴＴＬ（天然ｈＥＰＯのアミノ酸１００－１０８：配列番号３）、
ＳＮＦＬＲＧ（天然ｈＥＰＯのアミノ酸１４６－１５１：配列番号４）。
他の突然変異は、配列番号１０のアミノ酸７，２０，２１，２９，３３，３８，４２，５９，６３，６７，７０，８３，９６，１２６，１４２，１４３，１５２，１５３，１５５，１５６，１６１で与えられる。

これら他の突然変異は、上記した領域の突然変異にとって独自のもの或いは追加されたものである。ある実施例においては、上記のＴＫＶＮＦＹＡＷ（天然ｈＥＰＯのアミノ酸４４－５１：配列番号２）のアミノ酸内の変化は、部分的機能（即ちｒｈＥＰＯよりも赤血球生成の活性度が低いという機能）を有する修飾ＥＰＯとなる。他の実施例では、上記のＳＧＬＲＳＬＴＴＬ（天然ｈＥＰＯのアミノ酸１００－１０８：配列番号３）のアミノ酸内の変化においては、グリカンを欠く分子又はシアル酸の修飾、酸化／還元のような炭水化物の修飾、化学修飾を伴う変位種の存在がある。化学修飾の一例は、ニトロ化（nitration）、アシル化（acylation）、スクシニル化（succinylation）、ビオチン化（biotinylation）、ヨウ素化（iodination）、カルバミル化（carbamylatio）である。それを減らす又は阻止することを目的として、赤血球生成の活性の原因となるサイトに新たなグリカンを追加することについての言及はない。

従来技術に記載された今日までの努力／成果では、神経保護活性の存在と赤血球生成の活性の不存在を示すＥＰＯを得ることに成功していない。これに対し、本発明は、神経保護効果と神経親和性効果を示す新規のｈＥＰＯムテインを提示する。本発明のｈＥＰＯムテインは、ｈＥＰＯ分子を修飾する独自の方法により得られる。この修飾は、ｈＥＰＯ分子領域に、Ｎ－グリコシル形成用の新たなコンセンサス・サイト（consensus site）を生成することにより、行われる。このｈＥＰＯ分子領域は、ホモとヘテロ二量体受容体への結合に関与している。ところが、この新たなｈＥＰＯムテインは、赤血球生成の活性は欠くが、神経保護活性と神経形成活性は、変わらない、又は改善さえしている。その結果、薬物動態特性の改善を示す。元のＥＰＯの修飾は最小であるので、天然のタンパク質の構造と類似性を保持できる。

本明細書が記載する修飾ヒトエリスロポエチン（ｈＥＰＯ）は、赤血球生成の活性が存在しないか減少しており、血漿の半減期が長い。好ましくは、この赤血球生成の活性の減少割合は、ｈＥＰＯに比較して最大０．５％である。血漿の半減期が長いことにより、神経保護能力と神経形成能力を維持できる。この修飾ヒトエリスロポエチンのホモ又はヘテロの二量体受容体のいずれかへの結合は、部分的に又は完全に無効に又は取り消される。この無効化は、Ｎ－グリコシル形成用のコンセンサス・サイトを組み込むことによるホモ又はヘテロの二量体受容体への結合サイトのいずれかの突然変異を含む。

本発明の一実施例によれば、修飾ヒトエリスロポエチンは、
Ｔｙｒ１５ＡｓｎとＬｅｕｌ７Ｔｈｒの突然変異を有し、配列番号（SEQ ID）２を含む。
本発明の一実施例によれば、修飾ヒトエリスロポエチンは、
Ｌｙｓ４５ＡｓｎとＡｓｎ４７Ｔｈｒの突然変異を有し、配列番号４を含む。
本発明の一実施例によれば、修飾ヒトエリスロポエチンは、
Ｇｌｕ６２ＡｓｎとＴｒｐ６４Ｔｈｒの突然変異を有し、配列番号８を含む。
本発明の一実施例によれば、修飾ヒトエリスロポエチンは、
Ｇｌｎ６５ＡｓｎとＬｅｕ６７Ｔｈｒの突然変異を有し、配列番号１０を含む。
本発明の一実施例によれば、修飾ヒトエリスロポエチンは、
Ｇｌｕ７２ＡｓｎとＶａｌ７４Ｔｈｒの突然変異を有し、配列番号１２を含む。
本発明の一実施例によれば、修飾ヒトエリスロポエチンは、
Ａｒｇ７６ＡｓｎとＧｌｎ７８Ｔｈｒの突然変異を有し、配列番号１４を含む。
本発明の一実施例によれば、修飾ヒトエリスロポエチンは、
Ａｌａ９８ＡｓｎとＳｅｒ１００Ｔｈｒの突然変異を有し、配列番号１６を含む。
本発明の一実施例によれば、修飾ヒトエリスロポエチンは、
Ｓｅｒｌ０４Ａｓｎの突然変異を有し、配列番号１８を含む。
本発明の一実施例によれば、修飾ヒトエリスロポエチンは、
Ｔｈｒｌ０６ＡｓｎとＬｅｕ１０８Ｔｈｒの突然変異を有し、配列番号２０を含む。
本発明の一実施例によれば、修飾ヒトエリスロポエチンは、
Ｌｅｕｌ４９Ｔｈｒの突然変異を有し、配列番号２２を含む。
本発明の一実施例によれば、修飾ヒトエリスロポエチンは、
Ｇｌｙｌ５１ＡｓｎとＬｅｕｌ５３Ｔｈｒの突然変異を有し、配列番号２４を含む。

本発明の修飾ヒトエリスロポエチンは、赤血球生成の活性をヒトエリスロポエチンと比較して最大１％しか有さない。好ましくは、赤血球生成の活性をヒトエリスロポエチンと比較して最大０．５％しか有さない。更に好ましくは、赤血球生成の活性をｈＥＰＯの比較して最大０．２％しか有さない。

他方、本発明は、本発明のエリスロポエチンのヌクレオチド配列を含む核酸を記載する。記載され生成されたムテインのそれぞれをコードするＤＮＡ配列の概要を説明する。これらのＤＮＡ配列は、以下のいずれかである。配列番号１、配列番号３、配列番号７、配列番号９、配列番号１１、配列番号１３、配列番号１５、配列番号１７、配列番号１９、配列番号２１、配列番号２３。本発明の他の実施例によれば、これらの核酸は、細胞を形質変換するベクター、発現ベクター、レンチウイルス・ベクターのいずれかである。

本発明の一実施例によれば、修飾ヒトエリスロポエチンをコードする核酸配列は、以下のいずれかである。
配列番号１、配列番号３、配列番号７、配列番号９、配列番号１１、配列番号１３、配列番号１５、配列番号１７、配列番号１９、配列番号２１、配列番号２３。

本発明は、以下の組から選択された任意のＤＮＡ配列を有する遺伝子修飾細胞を記載する。配列番号１、配列番号３、配列番号７、配列番号９、配列番号１１、配列番号１３、配列番号１５、配列番号１７、配列番号１９、配列番号２１、配列番号２３。この遺伝子修飾細胞は、本発明の修飾ヒトエリスロポエチンを発現できる。一実施例によれば、この遺伝子修飾細胞は、植物細胞、動物細胞、Ｎ－グリカンの追加ができる細胞宿主のいずれかである。好ましくは、この細胞は、動物細胞株に由来する。好ましくは、この細胞株は、下記を含む組から選択される。ＣＨＯＫ１、ＨＥＫ２９３，ＮＳＯ，ＢＨＫ－２１、ＨｅＬａ。

他方、本発明は、修飾ヒトエリスロポエチン（ｍｈＥＰＯ）を得る方法を記載する。
本発明のｍｈＥＰＯを製造する方法は、以下のステップ（Ａ）～（Ｈ）を有する。
（Ａ）前記ｍｈＥＰＯをコードする核酸配列を提供するステップと、
（Ｂ）パッケージング細胞のコトランスフェクション・ベクターを構築するステップと、
（Ｃ）前記パッケージング細胞をコトランスフェクトするステップと、
これにより、前記ｍｈＥＰＯをコードする核酸配列を含むレンチウイルス粒子（以下「ｌｖｐ」と称する）を生成し、
（Ｄ）前記ステップ（Ｃ）のパッケージング細胞により生成された前記ｌｖｐを収穫するステップと、
（Ｅ）前記ｍｈＥＰＯを発現する細胞を、前記ステップ（Ｄ）からの前記ｌｖｐで、形質導入するステップと、
（Ｆ）前記ｍｈＥＰＯをコードする核酸配列を含む前記ステップ（Ｅ）の細胞を選択するステップと、
（Ｇ）前記ステップ（Ｆ）で選択された細胞を培養するステップと、
その結果それらは前記ｍｈＥＰＯを発現させ、
（Ｈ）前記ｍｈＥＰＯを単離し精製するステップと

前記ステップ（Ａ）において、前記核酸配列は、以下の組から選択される。
配列番号１，配列番号３，配列番号７，配列番号９，配列番号１１，配列番号１３，配列番号１５，配列番号１７，配列番号１９，配列番号２１，配列番号２３。

前記ステップ（Ｂ）のベクターは、以下のベクター（１）～（４）のいずれかを含む。
（１）前記転移ベクターの核外輸送を誘導するベクター、
（２）前記ｌｖｐが細胞内へ侵入するのを許すベクター、
（３）マトリックスタンパク質、キャプシド、プロテーゼ、逆転写酵素とインテグラ－ゼをコードするベクター、
（４）前記ｍｈＥＰＯ配列を含む転移ベクター、
前記ステップ（Ｅ）において、前記細胞は、以下の（１）～（５）からなる組から選択される。
（１）ＣＨＯ．Ｋ１，（２）ＨＥＫ２９３，（３）ＮＳＯ，（４）ＢＨＫ－２１，（５）ＨｅＬａ。

前記溶離剤（eluent）は、以下を含む組から選択される。グリシン、酢酸－ＮａＣｌ、酢酸塩、クエン酸、リン酸塩、エタノール、イソプロピルアルコール、ジオキサン、エチレンプリコール、Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、それらの混合物。
更に、前記溶離剤は、グリシン、酢酸－ＮａＣｌを含む組から選択される。
前記溶離剤は、以下を含む組から選択される。０．１Ｍグリシン（ｐＨ＝２）、０．１５Ｍグリシン（ｐＨ＝２。５）と、０．２Ｍ酢酸、０．１５ＭＮａＣｌ（ｐＨ＝３）。

サイト特異的突然変異誘発（site-directed mutagenesis）を介して１２個のｈＥＰＯムテインを得る一連のステップのスキームを表す図。アガローズゲル（agarose gel）を使用したＰＣＲ１で得られたフラグメントの解析を表す図。ＰＣＲ１：ポイント突然変異を導入する。アガローズゲル（agarose gel）を使用したＰＣＲ２で得られたフラグメントの解析を表す図。ＰＣＲ２：ｈＥＰＯムテイン配列の合成ＩＥＤＢデータベースを利用して、ｈＥＰＯムテインと不修飾（unmodified）の分子の潜在的な抗原性のin silico 分析を表す図。潜在的に弱い／少ない抗原性、潜在的に強い／多い抗原性、抗原性（in silico）新規なＮ－グリコシル化サイトの挿入を確認するWestern Blot.を表す図。ＥＬＩＳＡサンドウイッチ技術によりｒｈＥＰＯ分子とそのムテインの溶出能力（elution capacity）を表す図。縦軸：タンパク質の結合、横軸：溶離溶液■：プロトコルＡ（錯体Ａｇ－Ａｃの形成後の溶出能力）■：プロトコルＢ（ｍＡｂを様々な溶離剤で処理した後の目的の分子への結合能力の保存の程度）ｍＡｂ２Ｂ２を用いた免疫親和性クロマトグラフィー（ＩＡＣ）を介したｈＥＰＯムテインＭｕｔ１０４の精製を示す図。Ａ－ｈＥＰＯムテインＭｕｔ１０４の精製中に得られた完全なクロマトグラムＢ－クロマトグラムＡ溶離剤のスケール－アップ免疫親和性クロマトグラフィー（ＩＡＣ）を介したムテインＭｕｔ１０４精製の評価を表す図。ただし０．１５Ｍグリシン（ｐＨ２．５）を溶離液として使用した。サンプル：１－接種、２－フロウスロウ（flowthrough）、３－第１回洗浄、４－第２回洗浄、５－第３回洗浄、６－溶出フラグメントの混合、７－ｒｈＥＰＯ標準（Zellitek S.A.社製）ｈＥＰＯムテインを免疫親和性クロマトグラフィー（ＩＡＣ）を通過させた後に得た溶離剤の純度分析を示す図。サンプル：１－分子量マーカー，２－ｒｈＥＰＯ標準（Zellitek S.A.社製）３－溶出液Ｍｕｔ４５４７、４－溶出液Ｍｕｔ１０４，５－溶出液Ｍｕｔ１５１１５３ｈＥＰＯムテインの見かけの分子量の決定を示す図。ＭＭ：分子量マーカー免疫親和性クロマトグラフィー（ＩＡＣ）により精製されたｈＥＰＯムテインのＩＥＦを表す図。サンプル：１－Ｍｕｔ４５，４７、２－Ｍｕｔ１０４，３－ｒｈＥＰＯ標準（Zellitek S.A.社製）ｒｈＥＰＯとそのムテインに対し得られたＥＣＺ電気泳動図（electropherogram）。Ａ：Ｍｕｔ４５４７、Ｂ：－Ｍｕｔ１０４，Ｃ：ｒｈＥＰＯ。用語「ピーク」とは、ＥＣＺ電気泳動図に割り当てられた各ピークに対応する。用語「面積（％）」とは、各ピークの曲線下の領域を積分して計算された各アイソフォームの割合（％）で表示される。ｈＥＰＯムテインのin vitroで評価された特定の赤血球生成の生物学的活性の比較。ｈＥＰＯムテインのin vivoでの赤血球生成の生物学的活性の評価。ｈＥＰＯムテインのin vivoは、血液正常状態（normocytemic）のマウス（ｎ＝４）で評価された。このマウスは、ｒｈＥＰＯ質量又はｈＥＰＯｍｕｔで処理した（アプロプリエイト）、或いはＰＢＳで処理した（対照）。処理後の網状赤血球（reticulocyte）の割合（％）を各処理について定量化した。＊＊＊ｐ＜０．００１とｎｓ（有意ではない）は、ＡＮＯＶＡ検定とポストＡＮＯＶＡTukey 検定（ｎ＝４）の後の統計的有意性の程度を表す。ｒｈＥＰＯとＭｕｔ１０４の細胞／神経保護活性を表す。これは、神経起源のＳＨ－ＳＹ５Ｙの細胞培養物を用いて行った。縦軸：細胞毒性（ＣＳＴＰに比較した％）ＣＳＴＰ：スタウロスポリン（staurosporine STP）を添加した対照、Ｃｃｅｌ：細胞対照（ＳＴＰ又はムテインの添加なし）、＊ｐ＜０．０５と＊＊ｐ＜０．０１は、ＡＮＯＶＡ検定とポストＡＮＯＶＡDunnet 検定（ｎ＝３）の後の統計的有意性の程度を表す。海馬ニューロンの一次培養におけるニューロン発達の代表的な図。ネズミのＮ２ａ細胞を介しての神経細胞突起形成の評価。分析されたグループの各々の代表的画像を表す図。、ネズミのＮ２ａ細胞を介しての神経細胞突起形成の評価。神経細胞突起のパラメーター（平均長さ、最長の神経細胞突起の伸長、ニューロン（神経単位）当たりの神経細胞突起の平均数）の評価から得られたグラフ表示。＊ｐ＜０．０５と＊＊ｐ＜０．０１は、ＡＮＯＶＡ検定とポストＡＮＯＶＡBonferroni検定（ｎ＝３）の後の統計的有意性の程度を表す。ラット胚（rat embryo）からの海馬ニューロンの一次培養物を用いた糸足（filopodia）密度の評価。＊ｐ＜０．０５と＊＊ｐ＜０．０１は、ＡＮＯＶＡ検定とポストＡＮＯＶＡBonferroni検定（ｎ＝３）の後の統計的有意性の程度を表す。ラット胚からの海馬ニューロンの一次培養物を用いたシナプス（synapse）形成の評価。＊ｐ＜０．０５と＊＊＊ｐ＜０．００１は、ＡＮＯＶＡ検定とポストＡＮＯＶＡBonferroni検定（ｎ＝３）の後の統計的有意性の程度を表す。 in vitro (DIV)の培養物の１１日間の一次天然培養に対する、ｈＥＰＯムテインの赤血球生成の生物学的活性の評価。縦軸：アポトーシス（％）ｈＥＰＯムテイン（Ｍｕｔ）のin vitroの神経保護活性は、１１日（ＤＩＶ）のSprague-Dawlet ラットの海馬ニューロンの一次培養物で評価された。培養物は、等量のｒｈＥＰＯ又はムテインをアプロプリエットとして、ｐＢＳを対照として、処理された。その後、アポトーシス（apotosis）が、ＳＴＰによる培養（incubation）により導入された。免疫蛍光法（immunofluorescene）が、Hoescht and Phalloidin-FITC 試薬で実行され、アポトーシス核の割合（％）が分析された。＊＊＊ｐ＜０．００１と＊＊ｐ＜０．０１とｎｓ（有意ではない）は、ＡＮＯＶＡ検定とポストＡＮＯＶＡBonferroni検定（ｎ＝３）の後の統計的有意性の程度を表す。表Ｉを表す。表ＩＩを表す。表ＩＩＩを表す。表ＩＶを表す。

従来技術で説明したように、本発明の目的は、様々な戦略を立て、サイトカインの赤血球生成の活性を減少させるが、その神経保護能力と神経形成能力を維持することである。このことは、化学修飾の分子への応用又はそのグリコシド含有量の操作に基づく。しかし、従来技術の文献は、グリコシル化（「グリコシル形成」とも称する）の使用を、ＥＰＯの原因となる相互作用に関与する分子部分の阻止機構として、記載していない。

その為、本発明は、以下のことを同時に達成しながら、従来技術の問題点を解決する新たな修飾ＥＰＯを提供することである。
＊神経保護に関連する治療を必要とする患者に対しｈＥＰＯの赤血球生成の機能の停止／阻害。この治療では、ＥＰＯは有害な影響を及ぼす。
＊ｈＥＰＯの半減期の延長。これにより、in vivo 生物学的活性を改善し、投与回数の減少をもたらす。

従って、本発明は、ｈＥＰＯ由来の高グリコシル化（hyperglycosylated）されたムテインの使用を含む。この使用は、疾患の予防又は治療、或いはこのような疾患を患う遺伝子の疾病素因の予防に用いられる医薬組成物の調製を目的とする。この治療では、神経形成又は神経保護は有益な利点を有する。本発明の薬剤は、（１）神経変性病、（２）運動神経疾患、（３）能力傷害、（４）発達障害、（５）神経障害の患者に投与できる。
神経変性病（１）の一例には、アルツハイマー病（ＡＤ）、パーキンソン病（ＰＤ）、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）がある。運動神経疾患（２）の一例には、ハンチントン病、脊髄小脳萎縮症、クロイツ－ヤコブ病がある。能力傷害の（３）一例には、うつ病、精神分裂症がある。発達障害（４）の一例には、ダウン症がある。神経障害（５）の一例には、脳欠陥事故、頭蓋脳外傷がある。

本明細書において、「ムテイン」とは、サイト特異的突然変異（site directed mutation）による修飾タンパク質を意味する。このサイト特異的突然変異は、アミノ酸残基の１つ又は２つの置換を含み、コンセンサス・サイトと潜在的サイト（potential site）を導入してＮ－グリコシル化する。

Ｎ－グリコシル形成用のコンセンサス・サイトの形成又は追加は、問題の分子のサイト（site）又は領域（region）におけるアミノ酸の突然変異を含む。グリカンの添加を行う細胞にとって、Ａｓｎ－Ｘａａ－Ｓｅｒ／Ｔｈｒサイトが存在することが必要である。ここでＸａａは、Ｐｒｏ以外の任意のアミノ酸である。この為、Ａｓｎ残基がこのサイト（Ｎ－グリコシル化サイトを添加したいサイト）に存在すると、Ａｓｎに対し＋２のポジションにあるアミノ酸は、Ｔｈｒに突然変異する。これは、Ｓｅｒと比較すると、遙かに効率的である。その結果、Ａｓｎ残基はグリカンに占有される。別の方法により、修飾されるべきサイトが、＋２のポジションにアミノ酸を有すると、Ｓｅｒ又はＴｈｒの存在の証明になるが、このアミノ酸はＡｓｎに突然変異する。即ち保守的な変化（conservative change）が常にある。

本発明は、以下の（ｉ）－（ｉｉｉ）が達成できるアミノ酸構造の修飾を有するｈＥＰＯを開示する。
（ｉ）分子コンフォメーション（立体配座）用に或いは神経保護／神経形成の活性の発達の為に必須のサイトを構成するアミノ酸残基の保存。
（ｉｉ）赤血球生成の活性の無効又は停止で提案されたアミノ酸の修飾。
（ｉｉｉ）Ｎ－グリコシル形成用のコンセンサス・サイトの生成。

１２個のｈＥＰＯムテインが構築された。これらのムテインには、１又は２つのアミノ酸の修飾が実行され、Ｎ－グリコシル形成用のコンセンサス・サイトが組み込まれ、赤血球生成（造血）活性が無効され、神経保護／神経形成の活性が保存され、優れた血漿の半減期を持つ突然変異体（mutant）が得られる。

本発明の分子を得るために実行されたアッセイを以下に記載する。これらのアッセイは、本発明の一実施例である。

１．赤血球生成促進活性を無効にし神経保護／神経形成の活性動作を保存するｈＥＰＯ由来のムテインの設計と入手。
２６個のオリゴヌクレオチド（origonucleotide）を設計した。その内２個は、新たな完全なＥＰＯ配列を増幅し、残りの２４個（順方向と逆方向のオリゴヌクレオチド）は、１２個のポイント突然変異を導入する。

本発明によれば、修飾は、所定の位置（position：以下「ポジション」とも称する）のアミノ酸を、同位置にある別のアミノ酸で置換することと解釈される。そのため、下記の突然変異１を例にとると、位置４５のリジン残基（lysine residue）が同位置のアスパラギン残基へ変化するものと解釈され、位置４７のアスパラギンが同位置のスレオニン（threonine）へ変化するものと解釈される。
突然変異１： (Lys45 -^Asn45) + (Asn47 -^Thr47)
サイト特異的突然変異誘発（site-directed mutagenesis）によるｈＥＰＯムテインの生成の方法の概要を、図１に示す。

ｈＥＰＯＤＮＡをテンプレートとして、各突然変異体のオリゴヌクレオチド、オリゴヌクレオチドｐＭＡＴＥＰＯＦ（ＧＣＣＧＴＧＡＡＧＧＣＣＡＣＧＴＧＴＣＴＴＧＴＣＣＡ）、オリゴヌクレオチドＰＭＡＴＥＰＯＲ（ＡＧＧＣＣＡＧＴＣＴＴＧＴＧＣＴＣＣＡＧＧＴＡＣＣＧ）を用いて、これらのオリゴヌクレオチドはｈＥＰＯ配列の末端に相補的に結合するが、１回目のＰＣＲを実行して、前記突然変異の各々を導入し、２４個のフラグメントが得られた。これは１２個のｈＥＰＯムテインに対応する。１２個の合成されたｈＥＰＯムテインのヌクレオチド配列とアミノ酸配列を段落０１１５に示す。

これらを図２ａに示す。これらのフラグメントをテンプレートとして用いて、２回目のＰＣＲを実行する。この２回目のＰＣＲは、１２個の突然変異体の配列を得るために、ｈＥＰＯの端末に結合するオリゴヌクレオチドのみを使用する（図２ｂ）。このＰＣＲ後、１２個のｈＥＰＯムテインに対応する産物を、制限酵素Ｘｂａｌ／Ｓａｌｌ（ｈＥＰＯ分子をフランク（flank）する）で消化し、ｐＬＶ－ＰＬＫベクター内でクローニングされ、同じ制限酵素で消化した。上位１０個の細菌は、アンピシリン（ampicillin）により形質転換され選択された。各ｈＥＰＯムテインの３－４個のコロニーは、培養液で増幅され、プラスミドＤＮＡのミニ調製を行った。その後、ｈＥＰＯ配列内に存在するがベクター配列内には存在しないサイトの制限酵素消化により、挿入（insert）の存在を確認した。最後に、プラスミドＤＮＡのミニ調製物の配列を決定し、ｈＥＰＯ分子上で行われる突然変異の挿入を確認した。

２． ^2__^^i2ico__^^nal^sis__o^_^2EPO_^rvuteins_J3otential antigenicity
ＩＥＤＢデータベース（Immune Epitope Database and Analysis Resources）を用いて、シリコ分析（silico analysis）を実行し、ｈＥＰＯムテインの潜在的な抗原性と不修飾分子のそれとを比較した。それら全てについて、Ｔエピトープの予測を、Class II Major Histocompatibility Complex (MHCII)で認識されたものだが、世界で最も代表的な８個の対立遺伝子（allele）（下に示す）を分析することにより、実行した。
(HUMAN, HLA-DR: DRB1*01.01, DRB1*03.01, DRB1*04.01, DRB1*07.01, DRB1*08.01, DRB1*11.01 , DRB1*13.01, DRB1*15.01).
抗原性スコアが、各ｈＥＰＯ変異種に対し得られ、それぞれがｈＥＰＯに対し得られたスコアと比較された。それらの潜在的な抗原性の程度を図３に示す。ｈＥＰＯと同レベルの２つのムテイン（Ｍｕｔ９８１００と、Ｍｕｔ１５１１５３）が観測された。より大きな潜在的な抗原性を持つ２つのムテイン（Ｍｕｔ７２７４と、Ｍｕｔ６２６４）が観測された。最後に、より小さな潜在的な抗原性を持つ８つのムテイン（Ｍｕｔ４５４７と、Ｍｕｔ４９と、Ｍｕｔ１５１７と、Ｍｕｔ６５６７と、Ｍｕｔ４９と、Ｍｕｔ７６７８と、Ｍｕｔ１０４と、Ｍｕｔ１０６１０８）が観測された。これら最後の２つは、抗原性が低いものである。

３. Qbtaininc^_cel^__^lines__^tha^_joroduce__^the_^rientioned muteins
レンチウイルス粒子を組み立てて、その後ＣＨＯ．Ｋ１細胞を形質導入（transduce）した。このため、ＨＥＫ２９３Ｔ／１７細胞（パッケージング細胞）を４つのベクターでコトランスフェクト（co-transfect）し、１２個のムテインの各々に対し、対応するレンチウイルス粒子を生成した。これらの４つのベクターは、（１）ｐＲＥＶ，（２）ｐＶＳＶＧ、（３）ｐＭＤＬ，（４）転移ベクター（transfer vector）ｐＬＶ－ＰＬＫ－ＭｕｔＸである。
（１）ｐＲＥＶは、転移ベクターの核外輸送とそのパッケージングを誘導する。
（２）ｐＶＳＶＧは、ＶＳＶエンベロープＧタンパク質（ウイルス粒子の細胞内への移送に必要なもの）をコードする。このＧタンパク質は広い親和性（tropism）を有する。
（３）ｐＭＤＬは、以下のいずれかをコードする。発現ベクターをパッケージ化できるマトリックスとキャプシドタンパク質（capside protein）、プロテーゼ、逆転写酵素（reverse transcriptase）、組み込み酵素（integrase）（構造要素の分解の為と細胞ゲノム内に組み込む為に必要な酵素）
（４）転移ベクターｐＬＶ－ＰＫＬ－ＭｕｔＸ内では全てのウイルス遺伝子は除去され、本発明のｈＥＰＯムテインに対応する目的の遺伝子で置換される。
ＨＥＫ２９３Ｔ／１７細胞のトランスフェクション後の２日目に、ｍｕｔＸレンチウイルス粒子を含む各細胞の上清を収穫した。これは、ＣＨＯ．Ｋ１細胞を形質導入するのに使用された。かくして、１２個のＣＨＯ．Ｋ１ｍｕｔＸｈＥＰＯラインが得られた。７２時間後、この上清を収穫し、保存し、後で特徴付けをした。同様に、安定した組換え細胞ラインを生成するために、それらは、ピューロマイシン抗生物質（puromycin antibiotic）を増量して圧縮し、導入遺伝子（transgene）を組み込む細胞を選択した。圧縮された細胞ラインは、増殖され、極低温混合物（９０％（ｖ／ｖ）ＦＢＳ，１０％（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ）内に凍結保存され、液体窒素タンク内に保存された。

最初に、サンドイッチＥＬＩＳＡ技術とｈＥＰＯ分子に特異な抗体を介して、濃度を決定したが、これは形質導入により得られた細胞ラインの培養を利用した。モノクロナール（monoclonal）抗体を捕捉（capture）として用い、ウサギポリクロナール抗体を用いて検出した。どちらのタイプの抗体も本出願人の研究所で開発した。得られた濃度（表Ｉ）は、研究を継続するのに十分であると考えられた。

更に、培養上清を、Western Blot 技術で、ポリクロナール（polyclonal）抗体を用いて、分析し、全てのｈＥＰＯムテインを検出した。この方法により、このムテインは、不修飾のｈＥＰＯと比較すると、より大きな分子量を示すことが視覚化できた。このことは、分子構造内への新たなＮ－グリコシル化サイトの挿入に一致する（図４）。

同様に、等電気収束法（isoelectric focusing method）を実行し、その後にWestern Blot 分析を実行して、ＣＨＯ．Ｋ１細胞培養上清内で発現したｈＥＰＯムテインの各々内のグリコアイソフォーム（glycoisoform）の数を調べた。調べた１２個のムテイン中１１個で得られたアイソフォームの数は、不修飾のｈＥＰＯのそれより多かった。即ち、このアイソフォームの数は８－１６個であり、これに対し、不修飾のｈＥＰＯの培養上清には７個のアイソフォームが観測された。

本発明のｈＥＰＯは、赤血球生成の活性が低いかほぼ無く、神経保護／神経形成の潜在的な候補として使用された時は、サイトカインによる副作用を回避できる。この為、前記のin vitro 活性が、ＴＦ－１細胞（その繁殖又は増殖がｈＥＰＯの存在に依存する）を用いて研究された。赤血球生成の活性を測定する為に、これらの細胞の増殖を、公知の生物学的活性を有するｈＥＰＯ標準で９６時間刺激した後、評価した。開発されたｈＥＰＯムテインの全て（ただし赤血球生成の活性を維持するＭｕｔ４９は除く）は、市販されているｈＥＰＯ標準と不修飾ＥＰＯ分子と比較すると、赤血球生成の活性はほぼ無いか少なくなっていることを、明らかに示していた。結果を表Ｉにまとめてある。
ＮＤＡ：活性は検出不可能；
ｒｈＥＰＯ：組換えヒトＥＰＯ；
Ｍｕｔ：ムテイン；
表Ｉ：ｈＥＰＯムテインの特徴、サンドイッチＥＬＩＳＡによる培養上清内の濃度の定量化、等電気収束法で測定されたアイソフォームの数の評価、不修飾分子と比較した割合（％）で表されたin vitro 生物学的活性の決定

本発明は、所定位置にＮ－グリコシル化に感受性のあるサイトを含むｈＥＰＯムテインを提供する。前記の所定位置とは、細胞保護の生物学的活性を無効にはしないが、造血の活性（hematopoietic activity）を無効にする。それらは、ＣＨＯ．Ｋ１細胞培養上清で発現しその後特徴付けられた。それらの全ては、より高程度のグリコシル化を示し、血漿の半減期を伸ばすＮ－グリコシル化の追加的サイトを含める目的を達成する。同様に、その分子になされた修飾は、造血の生物学的活性に対する影響を有し、この影響を大部分のムテインで無くすか、或いは残りでそれを劇的に減少させることが、確認された。

4 . Purificatio ^_o^j2EPO^derive^j vuteins_Jo^^ r] rvunoaffinit^ chromatography
本発明のムテインの精製プロセスを次に示す。このプロセスを理解しやすくする為に、次のムテイン（Ｍｕｔ４５４７，Ｍｕｔ１０４，Ｍｕｔ１５１１５３）を実施例として示す。このプロセスは、免疫親和性（ＩＡ）精製のスキームによる。最初に、ＩＡマトリックスで行われたプロセスと等価なプロセスを模擬した（プロトコルＡ）。この目的は、本出願人の研究所で開発された抗ｒｈＥＰＯモノクロナール抗体で捕獲された高グリコシル化されたＥＰＯムテインの各々を溶離する最も好ましい条件を確立することである。上記に基づいて、サンドイッチＥＬＩＳＡアッセイが実施され、ｈＥＰＯ誘導体の比率を定量化した。このｈＥＰＯ誘導体とは、抗原－抗体複合体（antigen-antibody complex）を各溶離条件（elution condition）に曝した後でもｍＡｂ２Ｂ２に結合を維持しているものである。同様に、ＩＡマトリックスの将来の再使用の手順の観点から、溶離溶液の抗体に対する影響／効果を評価した（プロトコルＢ）。これは、溶離溶液がｈＥＰＯムテインへの結合能力に影響するかを決定するためにである。
以下の溶液１～２２の溶離用量を評価した。
１．グリシン０．１ＭｐＨ２，
２．グリシン０．１５ＭｐＨ２．５，
３．酢酸０．２Ｍ、ＮａＣｌ０．１５ＭｐＨ２．５，
４．グリシン０．１５ＭｐＨ３，
５．クエン酸０．１ＭｐＨ３，
６．酢酸０．２Ｍ、ＮａＣｌ０．１５ＭｐＨ３，
７．グリシン０．１５ＭｐＨ３．５，
８．酢酸ナトリウム０．１ＭｐＨ４，
９．酢酸ナトリウム０．１Ｍ／ジオキサン１０％（ｖ／ｖ）ｐＨ４，
１０．酢酸ナトリウム０．１ＭｐＨ５，
１１．リン酸ナトリウム０．１ＭｐＨ６，
１２．リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）ｐＨ７中のイソプロピルアルコール４０％（ｖ／ｖ）
１３．ＰＢＳｐＨ７，
１４．ＰＢＳｐＨ７中のエタノール４０％（ｖ／ｖ）、
１５．ＰＢＳｐＨ７中のジオキサン１０％（ｖ／ｖ）、
１６．ＰＢＳｐＨ７中のエチレングリコール４０％（ｖ／ｖ）、
１７．トリス／ＨＣｌ０．１ＭｐＨ８，
１８．グリシン０．１ＭｐＨ９，
１９．グリシン０．１ＭｐＨ１０，
２０．グリシン０．１ＭｐＨ１１，
２１．リン酸ナトリウム０．１ＭｐＨ１１，
２２．リン酸ナトリウム０．１ＭｐＨ１１．７

ＰＢＳで処理した抗原－抗体複合体に対し得られた吸光値を、対照とした。これは、抗原－抗体複合体の１００％の形成を仮定した、即ちｒｈＥＰＯ又はそのムテインの吸収は無いものと仮定した。プロトコルＢでは、ＰＢＳで処理した（即ち、Ａｇ－Ａｃ錯体（Ag-Ac complex）の形成前の）抗体に対し得られた吸光値は、研究中の分子への抗体の結合能力の保存の対照とした。その結果、テストされた溶液の残りに対し得られた結果は、ＰＢＳで評価された対照と比較して表された（図５）。

全ての場合において、グリシン０．１ＭｐＨ２（溶液１）の条件が、他の溶液と比べて、抗原に対する脱着能力が、最も高いことが観測された。しかし、前記複合体の形成能力は、それによる前記処理の後、大幅に減少した。そのため、免疫親和性クロマトグラフィ（ＩＡＣ）でのこの溶離剤の使用は、都合が悪い。その理由は、それは、クロマトグラフィ・マトリックスの再使用に影響を及ぼすからである。

他方で、このアッセイにより、ＩＡＣで使用する候補として２種類の溶離剤溶液（グリシン０．１５ＭｐＨ２．５（溶液２）と、酢酸０．２Ｍ、ＮａＣｌ０．１５ＭｐＨ３（溶液６））の選択が可能となる。両方の溶液は、Ａｇ－Ａｃ錯体を解離し、目的のタンパク質を除去することができ（表ＩＩ）、更に、それらによる前の処理の後、抗原に結合する抗体の能力に影響を与えることはない。
表ＩＩ：選択された溶離剤溶液を考慮したｈＥＰＯムテインの溶出
（１）グリシン０．１５ＭｐＨ２．５
（６）酢酸０．２Ｍ、ＮａＣｌ０．１５ＭｐＨ３

ＩＡ（免疫親和性）樹脂で使用される２Ｂ２ｍＡｂは、タンパク質Ａ親和性クロマトグラフィで予め精製され、炭酸塩溶液（carbonate solution）に対し透析された。その後、樹脂ＣＮＢｒ－活性化されたセファローズ（Sepharose)４Ｂがカップリングされた。このカップリングの程度は、溶液内の免疫グロブリン（immunoglobulin）の濃度を測定することにより、計算された。この測定実施時は固定化反応の前後を問わない。その結果、９６％になった。かくして、理論的用量は、ゲルｍｌ当たりｒｈＥＰＯ４８１μｇであった。

図６は、ムテインＭｕｔ１０４の精製のクロマトグラフィ・プロファイルの一例を示す。これは、グリシン溶離剤溶液０．１５ＭｐＨ２．５を用いた、

サンドイッチＥＬＩＳＡ技術を用いて、それぞれのクロマトグラフィ・プロセスで、様々なフラクション（fraction）（フロースルー、洗浄、溶出）において、ｈＥＰＯの変異種（variant）の存在を評価し、プロセスの性能を分析するパラメーターを計算した。

精製に対し得られた結果を表ＩＩＩに示す。動的条件下では、プレート上で評価された静的条件下に比較して、いくらかの差が、目的とするタンパク質の回収効率について、見られた。ｐＨ２．５溶液での溶出は、ムテインＭｕｔ１０４とＭｕｔ１５１１５３に対しては、ｐＨ３の溶液と比較すると、回収効率が上がっていた（それぞれ、５４％対１９％と５５％対２１％）。他方、ムテインＭｕｔ４５４７変異種に対しては、より良好な回収率（４９％対３４％）が、ｐＨ３の溶液で得られた。
ＳｏｌＩ：酢酸０．２Ｍ、ＮａＣｌ０．１５ＭｐＨ３：溶液６
ＳｏｌＩＩ：グリシン０．１５ＭｐＨ２．５：溶液２
表ＩＩＩ：ｈＥＰＯムテインのＩＡＣを介した精製パラメーター

ムテインＭｕｔ１０４のクロマトグラフィ・プロセスの様々なステップをＳＤＳ－ＰＡＧＥで分析し、その後Coomassie Brilliant blue dyeで着色した（図７）場合、サンプル中に存在する大部分の汚染物質は、残っておらず、フロースルー、洗浄の一部であったことが観測された。その為、高純度のものが得られた。これは図７のレーン６で観測される。

ＩＡＣは、目的のタンパク質を高い効率で回収できなかったが、ｈＥＰＯムテインの精製にとっては最適であった。その理由は、出発時のサンプルに対し３７－９０倍の精製を可能にし、高純度となり、一回のクロマトグラフィ・ステップで可能だからである。

ｈＥＰＯムテインのそれぞれに対応する溶出液の純度評価は、バンド・デンシトメオリ（band densitometry）により、行われた（図８）。

電子泳動操作（electrophoretic run）の前に、サンプルを７５－８０倍に濃縮した。これは、１０ｋＤａカットオフ点を有する透析濾過カートリッジ（diafiltration cartridge）を用いて行った。得られた純度は、全てのムテインに対し８９％以上であった（表ＩＶ）。これは、ＩＡ精製手順にとって、特徴的な値である。
表ＩＶ：各ＩＡＣから得られた溶離剤の純度

このＩＡＣの結果は、ｈＥＰＯムテインの高純度を示し。これは、以下のテストで使用するに適したものと考えられる。かくして、このＩＡＣは、本発明のｈＥＰＯムテインの適切で簡単で実際的な精製方法として確立された。
Ph^sicochemica^_characterizatioi^_o^j2EPO_jivuteins

５．１様々なｈＥＰＯムテイン見かけ上の分子量の決定
図９は、ＩＡＣで精製したムテインのWestern Blot を示す。これを用いて、既知の分子量マーカーを用いて、このムテインの分子量を計算した。
ｈＥＰＯの高グリコシル化されたムテインの見かけの分子量の決定は、各マーカーが移動する距離の変動曲線上の各変異種に応じたバンドの前フロントと後フロントの移動距離を、分子量の対数に応じて、補間することにより、実行した。
各変異種に対し計算された見かけ上の分子量は以下である。
＊Ｍｕｔ４５＿４７：３４－６６ｋＤａ
＊Ｍｕｔ１０４：２９－６６ｋＤａ
＊Ｍｕｔ１５１＿１５３：３５－４５ｋＤａ
＊ｒｈＥＰＯ：３１＿４３ｋＤａ
この決定は、追加的なＮ－グリコシル化サイトをｈＥＰＯ分子に組み込むことに成功したことを確認するものである。その理由は、ムテインは、平均で、不修飾のｈＥＰＯの分子量より大きい分離量を表すからである。

５．２ＩＥＦによるアイソフォーム・プロファルの決定
グリコシル化によるｈＥＰＯの不均一性特にシアル酸残基の量を評価する為に、サンプルはＩＥＦにより評価され、ｈＥＰＯの高グリコシル化された変異種を作り出す様々なＰＩを有するアイソフォームを決定した。

図１０は、Ｍｕｔ４５４７変異種を作り出す１３個のアイソフォームと、Ｍｕｔ１０４変異種の１４個のアイソフォームと、ｒｈＥＰＯ標準用の６個のアイソフォームを示す。このｒｈＥＰＯ標準は、赤血球形成（erythropoiesis）に好ましい生物学的治療剤として生成されるホルモンである。そこには、ｈＥＰＯ分子の最も強い酸性のアイソフォームが多く存在する。このアイソフォームは、４つのクロマトグラフィのステップで展開された精製プロセスの後得られたものである。更に、Ｍｕｔ４５４７とＭｕｔ１０４のムテインは、ｒｈＥＰＯアイソフォームより、５－７個多い酸性アイソフォームが見られ、前記分子中ではシアル酸のより多い含有量を表している。

見かけ上の分子量の決定で得られたデータは、ＩＥＦからのデータと共に、以下を確認する。生成されたムテインは、ｒｈＥＰＯと比較すると、グリコシル化のより高いレベルを有する。

５．３ＩＡＣ－精製されたｈＥＰＯムテインの毛細領域電気泳動法（ＣＺＥ：Capillary Zone Electrophoresis）の手段によるアイソフォーム・プロファイルの分析：

ＣＺＥを用いて、本出願の実施例と見なされる各ｈＥＰＯ変異種のアイソフォームを決定した。このプロセスは、ｈＥＰＯムテインのＩＡＣ精製から得られたサンプルに対し、実行された。このサンプルは、水でダイアフィルターされ（diafiltered ）、約１ｍｇ／ｍｌに濃縮された。

ＣＺＥは、観測された様々なアイソフォームに関する定量的データを提供する。かくして、ＣＺＥのデータを用いて、アイソフォームは、各ｈＥＰＯ変異種で観測されたピークに割り当てられた。ムテインＭｕｔ４５４７とＭｕｔ１０４は１－１１が割り当てられ、ｒｈＥＰＯは１－７が割り当てられた。アイソフォーム１は、毛細領域の大部分に沿って移動するアイソフォームであった（図１１）。次に各アイソフォームの割合（％）は、各ピークの下の領域を積分することにより、計算された。

各変異種のアイソフォームの電気泳動による移動度をｒｈＥＰＯと比較すると、後者のアイソフォームは、Ｍｕｔ４５４７のアイソフォーム１－７と、Ｍｕｔ１０４のアイソフォーム３－９と一致する。このことは、Ｍｕｔ４５４７は、ｒｈＥＰＯと比較すると、より強い酸性アイソフォーム４個があり、Ｍｕｔ１０４は、ｒｈＥＰＯと比較すると、よい弱い酸性アイソフォーム２個とより強い酸性アイソフォーム２個がある。

各アイソフォームの比率を評価すると、ｒｈＥＰＯはアイソフォーム３，４，５の比率が高く、Ｍｕｔ４５４７はアイソフォーム６，７，８，９の比率が高く、Ｍｕｔ１０４はアイソフォーム４，５，６，７の比率が高い。このことは以下を再確認する。ｒｈＥＰＯのグリコシル化の程度に対し各ｈＥＰＯ変異種の不均一性／異質性は、より強い酸性のアイソフォームの含有量が多いこととその比率が高いことに起因する。

各ｈＥＰＯ変異種の電気泳動を観察すると、２つの追加ピーク（更に２個のアイソフォーム）の存在が、両ケースで可視化された。一方はピーク１のフロントで、他方はピーク１１のフロントである。それらは正確には解らなかったが、この原因は、サンプル中のこのアイソフォームの比率が小さい（これはシステムの検出限界以下である）からであろう。このことは、ＩＥＦとＣＺＥで検出できるアイソフォームの数に差があることを説明している。

５．４ａムテインのin vitro 赤血球生成の生物学的活性の特徴付け
精製され設計されたｈＥＰＯムテインの生物学的特徴付けが実施された。この為に、in vitro 増殖アッセイが、ＵＴ－７細胞ライン培養を用いて、行われ、本発明の実施例を示す例として採用されたムテインの赤血球生成の生物学的活性の評価（Ａ－Ｆ）を実施した。その理由は、これらの細胞系列の生存と繁殖が、成長媒体（growth medium）中のｈＥＰＯの存在に依存しているからである。ＴＦ－１細胞ラインを使用するアッセイとは異なり、ＵＴ－７細胞ラインを使用するアッセイは、高い感受性応答で特徴付けられ、そのため、工程のこの段階用に選択された。

それぞれの産生細胞ラインから発現した全てのムテインと３つのＩＡＣ精製されたムテインの培養上清が、例として分析された。これらの分子により展開された繁殖とｒｈＥＰＯ標準による繁殖とを比較した。

例として考えられるｈＥＰＯムテイン（Ｍｕｔ４９は除く）は、ｒｈＥＰＯ標準と同濃度でテストした時は、細胞繁殖を刺激する能力は低いか全くないことを示した（図１２ａ）。in vitro で評価された特定の赤血球生成の活性（ＳＥＡ；specific erythropoietic activity）を計算するために、より高濃度のムテイン（即ち純粋な培養上清に存在するムテイン）で作業した。かくして、ムテインＭｕｔ１０４とＭｕｔ１５１１５３は、赤血球生成の生物学的活性の完全な喪失を示した、同時に、ムテインＭｕｔ４５４７，Ｍｕｔ６２６４、Ｍｕｔ９８１００は、極めて小さい赤血球生成の生物学的活性を示した。（Ｍｕｔ４５４７のＳＥＡ＝０．２Ｕｌ／μｇ、Ｍｕｔ６２６４のＳＥＡ＝０．２Ｕｌ／μｇ、Ｍｕｔ９８１００のＳＥＡ＝０．１Ｕｌ／μｇであるのに対し、ｒｈＥＰＯのＳＥＡ＝１２０Ｕｌ／μｇ）、これに対し、Ｍｕｔ４９は、このような活性度（ＳＥＡ＝２６１Ｕｌ／μｇ）を維持していると考えられた。Ｍｕｔ４９のＳＥＡは増加するが、これは、このパラメーターを決定するのに使用された曲線のゾーンに起因する。ただし、Ｍｕｔ４９の曲線の線形応答ゾーンの傾斜は、標準のそれとは著しく異なるとした場合である。かくして、このようなムテインを得るためになされた修飾は、赤血球生成の活性を阻止するのに有効とは見なされない。

更に、精製したｒｈＥＰＯムテインのin vitro 赤血球生成の生物学的活性を、本発明の実施例として分析した。評価は、血液／細胞保護活性とｒｈＥＰＯとそのムテインの保護能力を研究するために、行われた。この保護能力とは、ＳＨ－ＳＹ５Ｙ神経細胞を、スタウロスポリン（staurosporine:STP)）により生成されるアポトーシス／細胞傷害性の影響から保護する能力である。かくして、細胞／神経保護アッセイは、神経細胞を保護することからなる。この保護は、ＳＴＰに引き起こされる細胞損傷を誘発する前の１２時間に、ｒｈＥＰＯ又はそのムテインを添加することにより行われる。細胞損傷誘発時の後に、培養物の生存率は、代謝的に活性な細胞を決定することにより、評価された。

このアッセイにおいて、ｒｈＥＰＯと精製されたＭｕｔ１０４の両方とも、本発明の実施例であるが、同じ濃度で使用した（図１３）。

得られた結果を統計的に分析して各サンプルとＣＳＴＰを比較した。これには、ＡＮＯＶＡテストとその後のＤｕｎｎｅｔテストが用いられた。ＣＳＴＰに対し得られた細胞毒性の割合（％）は１００％の細胞毒性と見なした。従って、各サンプルに対し決定された細胞毒性値は、ＣＳＴＰに関連して決定されたものである。

図１３に示すように、ｒｈＥＰＯは、ＳＴＰにより誘発される細胞毒性を４５％（ｐ＜０．０５）減少させた。ところが、Ｍｕｔ１０４は、ＳＴＰにより誘発される細胞毒性を６５％も大幅に減少させた。９９％（ｐ＜０．０１）の有意性がある。

５．４ｂムテインのin vivo 赤血球生成の生物学的活性の特徴付け

本発明の実施例として用いられたムテインは、in vivo 生物学的活性が低いかほぼ無い。これに対し。広範囲のグリコシル化（extensive glycosylation）は、血液中の滞在時間を延ばすのに必要な薬剤動態特性を付与する。これらの特徴により、分子は受容体との低い相互作用能力を改善し赤血球生成の活性を示す。

このようなin vivo活性を評価するために、ノルモシマ・ネズミ（正赤血球症（normocytemic） mice）に、標準としてｒｈＥＰＯを、又は前の実施例で使用された３つのムテインの各々を、又はＰＢＳを陰性対照（negative control）として注射した。タンパク質接種に対応する全ての場合において、ｒｈＥＰＯの８０ＩＵに相当する質量のタンパク質を使用した。接種後９６時間後に血液を採取し、流動細胞測光法（flow cytometry）を用いて、チオゾール・オレンジ標識の付された網状赤血球（thiazole orange-labeled reticulocytes）の割合（％）を決定した。

図１２ｂは、ｒｈＥＰＯに関して、各ムテインと陰性対照の大幅に異なる応答（ｐ＜０．００１）を示す。有意差は、各ムテインにより生成された網状赤血球応答を陰性対照と比較しても、見られなかった。両方の分析によれば、高グリコシ化のアプローチによるＮ－グリコ・エンジニアリングの結果としての、ムテインの赤血球生成の活性の予想した喪失が確認された。

５．５構造的神経形成におけるｈＥＰＯ高グリコシル化されたムテインの影響
５．５．１神経発達（分化）と構造的形成
構造的神経形成性は、神経発達又は分化を刺激するか促すプロセスを含む。この意味において、以下の機能を促進する化学剤又は化合物は、神経親和性化合物（neurotorophic compound）と見なされる。以下の機能の一例は、神経細胞突起の形成又は軸索成長、線維性／樹状脊椎の発達、シナプス数の増加である。神経と神経細胞ラインの一次培養は、このようなプロセスのin vitro 研究で広く用いられている。

図１４に、海馬ニューロン（hippocampal neuron）の一次培養の神経の発達段階を示す。これらの段階は、Dotti etal (1998)の論文（非特許文献３１）で適切に特徴付けられている。同文献には、接種された後、ニューロン（神経）は、層板（lamellae）を発達させることが記載されてる。これで、ニューロンは基質（substrate）に接着している（in vitro 培養から０日目（０ＤＩＶ）。その後、最初の１－２日間（１－２ＤＩＶ）に未成熟のニューロン突起（neurite）が血漿膜の延長として成長する。２－３日間（２－３ＤＩＶ）に、これらの神経細胞突起の１つは、残りのものを超えて延び分化して、軸索（axon）を形成する。この軸索は、その末端に、三角形の構造物を有し、これは軸索成長円錐（axonal growth cone）として知られている。その後、神経細胞突起は、枝分かれして、第２の神経細胞突起を形成する（３－４ＤＩＶ）。薄い神経質突出（cytoplamic projection）は、糸状足（フィロポディア（filopodia））として知られる架橋アクチンフィラメント（cross-linked actin filament）を含むこれらの神経細胞突起の上に成長する（４－５ＤＩＶ）。糸状足は、その後、樹状突起的な脊椎（dendritic spine）になる（７－２１ＤＩＶ）。この脊椎はシナプスが発生する優先サイトである。
この研究の一部は、神経の様々な発達段階における、本発明の様々なｈＥＰＯ高グリコシル化されたムテインの神経親和性活動を評価した。

５．５．２神経細胞突起の形成
本発明のムテインが、神経原生効果（neuritogenic effect）を奏する（ニューロン当たりの神経細胞突起の長さと数が増加する）か否かを決定するために、Ｎ２ａ神経細胞ライン（神経芽のマウス）を用いた。細胞（５００００個）が、培養プレート（２４ウエル）のガラス上に接種され、ＤＭＥＭ完全媒体内に維持され、神経分化を阻止する２０％のウシ胎児漿液（ＦＢＳ：fetal bovine serum）と、抗生物質としてのゲンタマイシン（gentamicin）を補充した。次いで、培養媒体を、ＦＢＳを含まない媒体で置き換え、異なる濃度（５０と３００ｎｇ／ｍｌ）のｒｈＥＰＯ又はムテインで３時間補充し、神経細胞突起形成を誘発した（非特許文献３２）。この後、細胞を、４％パラホルムアルデヒド（ＰＦＡ：paraformaldehyde）で、またリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）中でスクロース（sucrose）４％で、４℃で１０分間固定し、ＰＢＳ中の０．１％（ｖ／ｖ）のトリトン（Triton）Ｘ－１００で２分間透過処理した。この固定された細胞は、その後、ＰＢＳ中の３％（ｗ／ｖ）のウシ漿液アルブミン（ＢＳＡ：bovine serum albumin）で１－２時間、ブロックされた。これには、１％（ｗ／ｖ）ＢＳＡ内でマウス・アンティ－アルファ－ツブリン（mouse anti-alpha-tubulin）ＩｇＧモノクロナール抗体（１：１０００，シグマ）を用いて、４℃で１６時間神経細胞突起を標識した。翌日、ＰＢＳで３回の洗浄後、それを、アクチンフィラメント（actin filament）（１：１０００，インビトロゲン（invitrogen））を標識するローダミン－共役されたファロイディン（rhodamine conjugated phalloidin）と、Ａｌｅｘ４８８（１：１０００，インビトロゲン）に共役されたヒツジ抗マウス抗体（goat anti-mouse antibody）で、室温で１時間インキュベート（培養）した。冷たいＰＢＳで５分間３回洗浄した後、ガラスは蛍光保存（Fluorsave）（Calbiochem）装置に搭載された。

神経細胞突起生成を定量化するために、画像を、ニコン社製のＴＥ２０００エピ蛍光顕微鏡で、撮った。定量化は、条件当たり、少なくとも３０本の神経内の、画像当たりの神経細胞突起の数、その平均長さ（神経細胞突起の延長）、最長の神経細胞突起の長さ（軸索成長）を数えることにより、行われた。これは、画像Ｊ（ＮＩＨ）ソフトのＮｅｕｒｔｏＪプラグーインを用いて、行った。代表的な画像は、その後、AdobePhotoshopで処理され、統計的分析が、ソフトGraphPadPrism 5で行われた。

図１５ａは、研究された各グループの代表的な画像を示す。各測定の統計分析は、右側に詳述する。本発明のムテインは、有意の投与量依存性のある神経性効果（neurogenic effect）を有する。これは、ニューロン当たりの神経細胞突起の数の増加、神経細胞突起の長さの増加、軸索成長により表れる。これらの影響／効果は、同等であり、ｒｈＥＰＯの対し得られたものと類似の値を与える。言い換えると、本発明のムテインは、Ｎ２ａ細胞ライン内のｒｈＥＰＯで観測された値に類似する神経親和性効果（neurotrophic effect）を示した。

５．５．３糸状足密度（filopodia density）
糸状足（線維芽）と樹状突起脊椎は、アクチン・フィラメントでエンリッチした膜突起である。この膜突起では、神経細胞突起／樹状突起から出現し、ポスト－シナプス区画（post -synaptic compartment ）として作用する。このポスト－シナプス区画は、中枢神経の興奮シナプス（excitatoril synapses）内に豊富に存在する。この脊椎の形態は，可変であり、その差分構造（differential structure）に応じて分類される。樹状突起脊椎は、神経形成に好ましい神経発達の間、その形状／構造を変えることがある（非特許文献３３）。この意味において、ある神経変性疾患は、樹状突起脊椎の形状と数量の変化（増加と減少の両方）に関連している。例えば、ダウン症においては、脊椎の量は著しく減少していると決定されている（非特許文献３４）。これに対し、自閉症スペクトラム傷害では、より多い量の脊椎が、見つかっている（非特許文献３５）。

そのため、神経形成（neuronal plasticity）の能力は、本発明の高グリコシル化されたムテインの糸状足（線維芽）の形成を促進することにより、決定される。海馬ニューロンの一次培養物を、様々な濃度（５０と３００ｎｇ／ｍｌ）のｒｈＥＰＯと、ムテインＭｕｔ１０４，Ｍｕｔ４５－４７と、Ｍｕｒ１５１－１５３に４日間（４ＤＩＶ）さらした。

神経培養は、ラット胚海馬（rat embryos hippocampus ）（Ｅ１９）から準備した。これは非特許文献３６に記載されている。簡単に説明すると、組織を、３７℃のトリプシン（trypsin）－ＥＤＴＡ（０．２５％（ｗ／ｖ））で、１５分間処理した。完全に分散した細胞の溶液を、Neurobasal Medium （ＮＢ、インビトロン）内で用意し、２ｍＭグルタミン、１００ユニット／ｍｌペニシリン（ＰＥＮ）、１００μｇ／ｍｌのストレプトマイシン（Ｓｔｒｐ）、１０％ウマ血清を補充した。２万－３万個の細胞を、２４ウエルの培養プレートで接種した。この培養プレートは、０．１ｍｇ／ｍｌのポリ-Ｌ-リシン・ハイドロブロマイド（hydrobromide）（シグマ）と、２０ｍｇ／ｍｌのラミニン（laminin）（インビトロゲン）で予め処理したものである。２時間後、この媒体を所定の媒体に変えた。所定の媒体とは、１ｇ／ｌオバルブミン（ovalbumin）を含有したＮＢ：Ｎ２とＢ２７（これらはインビトロゲンからの無漿液の補充物）である。そして、異なる濃度（５０と３００ｎｇ／ｍｌ）の本発明のｒｈＥＰＯ又はムテインを添加し、４ＤＩＶの間保持した。細胞を、ＰＢＳ内の４％（ｗ／ｖ）ＰＦＡと４％（ｗ／ｖ）スクロースで、４℃で１０分間固定した。その後、細胞は、ＰＢＳ内の０．１％（ｖ／ｖ）のトリトン（Triton）Ｘ－１００で、２分間透過処理した。この固定された細胞は、その後、ＰＢＳ内の３％（ｖ／ｖ）のウシ血清アルブミン（ＢＳＡ：bovine serum albumin）で。１－２時間ブロックされ、１％（ｗ／ｖ）ＢＳＡ（１：１０００，シグマ）内でマウス抗アルファ－ツブリン（mouse anti-alpha-tubulin）ＩｇＧモノクロナール抗体を用いて、４℃で１６時間インキュベート（培養）された。翌日、ＰＢＳで３回洗浄後、それは、アクチン・フィラメント（actin filament）（１：１０００，インビトロゲン（invitrogen））を標識するローダミン－共役されたファロイディンと、Ａｌｅｘ４８８に共役された第２のヒツジ抗マウス抗体（goat anti-mouse antibody）（１：１０００，インビトロゲン）で、室温で１時間インキュベート（培養）した。冷たいＰＢＳで５分間３回洗浄した後、ガラスは蛍光保存（Fluorsave）（Calbiochem）装置に搭載された。

糸状足（線維芽）生成を定量化するために、画像を、ニコン社製のＥ６００エピ蛍光顕微鏡で、撮った。定量化は、２０μｍの神経細胞突起内に存在する線維芽の数量を、神経細胞体（neuronal soma）から５０μｍ以下の距離で、数えることにより、行われた。ただし、糸状足（線維芽）とは、神経細胞突起の膜から伸びるアクチン－リッチの突起である。神経細胞体とは、少なくとも３０本の神経内の３個の神経細胞突起起／ニューロンである。代表的な画像は、その後、Adobe Photoshopで処理され、統計的分析は、ソフトGraphPadPrism 5で行われた。

図１６の左側のパネルは、線維芽の密度の代表的な画像を示す。これに対し、右側のパネルは、各グループの統計的分析を詳述する。本発明のムテインは、投与量にもよるが、対照神経（ＰＢＳ）と比較すると、線維芽の形成を、大幅に誘発する。意外なことに、本発明のムテインは、ｒｈＥＰＯで観測されたよりも優れた海馬ニューロンの一次培養に対し、神経親和性効果を示した。

５．５．４シナプス
シナプスは、２つのニューロンの間の膜の特殊な隣接関係（specialized contiguity relation）（ユニオン）として定義される。このユニオンは、シナプス・クレフト（synaptic cleft）として知られているが、電気インパルスの伝導と、あるシナプス（プレ－シナプス）から別のシナプス（ポスト－シナプス）への物質の通過を容易にする。様々な技術が開発され、シナプスの数を定量化している。シナプスの現在受け入れられている定義は、プレ－シナプス区画からの排他的なタンパク質クラスターと、ポスト－シナプス区画からの排他的なタンパク質クラスターが、同時に発生することである。

本発明のムテインの神経親和性効果の研究に続いて、神経シナプスを誘発する本発明のムテインの能力を評価した。
この為、免疫検出アッセイを、１５日（１５ＤＩＶ）の一次ニューロン培養で実行した。この一次ニューロン培養においては、シナプス形成は、プレ－シナプスとポスト－シナプスのマーカーを重ね合わせることにより、検出された。

直ちに、ニューロン（１５０００個／ウエル）は、異なる濃度（５０と３００ｎｇ／ｍｌ）のｈＥＰＯ又はｒｈＥＰＯ又はＰＢＡで、１５日（ＤＩＶ）の間処理した。その後、ニューロンを、所定の溶液で４℃で１０分間固定した。所定の溶液とは、９０％（Ｖ／Ｖ）のメタノールと１０％（Ｖ／Ｖ）のＭＥＳ（１００ｍＭＭＥＳｐＨ６．９と、１ｍＭＥＧＴＡと１ｍＭＭｇＣ１２）である。その後、ニューロンは、Ｔｗｅｅｎ２０（０．１％（Ｖ／Ｖ）で濾過されたＰＢＳで、３回５分間洗浄された。ブロッキングは、トリトン（Triton）Ｘ－１００（１０％（Ｖ／Ｖ）ＦＢＳと、ＰＢＳ内の０．１％（Ｖ／Ｖ）トリトンＸ－１００）を含有するＦＢＳの溶液で、室温で１時間行った。その後、ニューロンは、ＰＢＳ内の３％（ｗ／ｖ）ＢＳＡの溶液で、室温で１５分間インキュベートした。両方のブロッキング溶液は、最大速度で１０分間予め遠心分離したものである。その後、ニューロンは、マウス抗－ＮＭＤＡ－ＲＩ抗体と、ウサギ抗－シナプトフィシン（synaptophysin）－抗体で、４℃で１２－１６時間インキュベートした。前者はSynaptic System社から市販されているポスト－シナプス・マーカーである。後者は、同社から市販されているプレ－シナプス・マーカーである。両抗体とも、１％（ｗ／ｖ）ＰＢＳ－ＢＳＡ溶液で用意され、最大速度で１０分間遠心分離された。ＰＢＳでの３回の洗浄後、ニューロンは、１０分間遠心分離された３％（ｗ／ｖ）ＢＳＡ、１０％（ｗ／ｖ）ＦＢＳ溶液、トリトンＸ－１００（０．１％（Ｖ／Ｖ）ＰＢＳで、室温で１時間再度ブロックされた。その後、ニューロンは、１％（ｗ／ｖ）ＢＳＡで用意されたＡｌｅｘ６４７に共役された第２の抗マウス抗体とＡｌｅｘ５６８に共役された抗ウサギ抗体で、インキュベートされ、最大速度で１０分間遠心分離された。その後ニューロンは、蛍光保存で搭載された。

写真を、Olympus 社製のFv1000 共焦点顕微鏡を用いて、撮った。この共焦点顕微鏡は、Olympus社製の１ｘ８１倒立顕微鏡に関連する。この画像を、ソフトFluoview（version 3.3 Olympus社製の 60X対物レンズ；AN 1.42: 0.066 μｍ/Pixel の解像度）で順次処理した。これは、ナイキスト基準に適合している。

シナプス形成は、プレ－シナプス・マーカーとポスト－シナプス・マーカーとの間の２５μｍの神経細胞樹状突起内の共局在化点として、ニューロン当たり３つのセグメントを使用した条件当たり約１０－２０個のニューロンの状態で、測定された。共局在化点は、Puncta 分析器と、画像Ｊプラグイン（version 1.28U）を用いて決定された（非特許文献３７）。

図１７は、テストされた各条件と対応する定量化の代表的な画像を示す。神経生成と線維芽誘発の場合と同様に、ムテインが、神経培養において、新たなシナプスの形成を、大きく誘発したことが観測された。この効果は、ｒｈＥＰＯで観測されたのと同じである。

上記のことを考慮すると、次に述べる強い実験的証拠がある。本発明の高グリコシル化された新たなｈＥＰＯムテインは、神経発達／分化の様々な段階（神経細胞突起からシナプス形成への段階）において、神経形成を容易にする効果を有する。これらの効果は、ＥＰＯで観測されたものに匹敵するものであり、ある場合においては、これらの効果（線維芽形成効果）は更に大きくさえなっている。本発明のこれらの驚くべき新規で革新的な技術的特徴により、本発明のムテインは、神経形成が減少している疾患の治療、又はこの種の疾患に対し遺伝子的素因がある場合に際しての使用において、理想的である。

５．６ｂラット海馬ニューロンの一次培養におけるｒｈＥＰＯの神経保護生物学的活性の研究
海馬ニューロンの一次培養に対するｈＥＰＯムテインの抗アポトーシスの効果の評価は、これらの化合物が、細胞（その代謝が、確立した細胞ライン内のようには変わらない）内に有する効果を研究することである。それは、興味深いモデルを構成する。その理由は、それは、脳内でin vivoで起こることにより現実的に似ているからである。

本発明のｈＥＰＯと修飾ＥＰＯの神経保護活性の評価基準は、このような分子が、神経細胞をスタウロスポリン（staurosporine）での治療により誘発されるアポトーシス刺激から保護する能力である。

このようなin vitro 活性を評価する為に、Sprague-Dawley ラットからの海馬ニューロンの一次培培養物が得られた。１１日（１１ＤＩＶ）の培養物は、２４時間、本発明のｈＥＰＯムテイン４００ｎｇ／ｍｌで、又は造血回復治療に使用されるｒｈＥＰＯ４００ｎｇ／ｍｌで、前処理された。この後、細胞を、この分子の存在の元で２４時間３０ｎＭのＳＴＰに曝し、最後に、固定され、Hoechst 社製のフルオロクロムとPhalloidin-FITCで着色した。

図１８は、様々な分子による治療は、ＳＴＰのみで処理した細胞死対照と比較した時は、アポトーシスを大幅に減らす（＊＊ｐ＜０．０１，＊＊＊Ｐ＜０．００１）が、ＳＴＰ処理をしない細胞対照に類似するアポトーシス値に達する。更に、本発明の大部分の分子は、ｒｈＥＰＯのそれより優れた効果を示す。これは、ＳＴＰの効果／影響から海馬ニューロンの一次培養を保護する観点から見た場合である。

これらの結果も、ＳＨ－ＳＹ５ニューロン培養に対するムテインの神経保護活性の研究で得られた結果に対応する。そのため、本発明のムテインを得る為に付加的なグリコシル化サイトの添加は、神経保護に関連するものを修飾することなく、造血生物学的活性を遮断することを可能にする。

以上の説明は、本発明の一実施例に関するもので、この技術分野の当業者であれば、本発明の種々の変形例を考え得るが、それらはいずれも本発明の技術的範囲に包含される。特許請求の範囲の構成要素の後に記載した括弧内の番号は、図面の部品番号に対応し、発明の容易なる理解の為に付したものであり、発明を限定的に解釈するために用いてはならない。また、同一番号でも明細書と特許請求の範囲の部品名は必ずしも同一ではない。これは上記した理由による。用語「又は」に関して、例えば「Ａ又はＢ」は、「Ａのみ」、「Ｂのみ」ならず、「ＡとＢの両方」を選択することも含む。特に記載のない限り、装置又は手段の数は、単数か複数かを問わない。

MUTEIN 15-17(Tyr15->Asn15)+(Leu17->Thr17)
プライマーは以下であった。:
Mut15_17F : GTGCTGGAAAGAAACCTGACGGAAGCCAAA
MUT15_17R : TTTGGCTTCCGTCAGGTTTCTTTCCAGCAC
MUTEIN 15-17 (SEQ ID No. 1)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC
TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG
AAACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC
CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAAAGTGAACTTCTACGCCTGGAAGCGGATGG
AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGGAAGTGTGGCAGGGACTGGCTCTGCTGAGCGAGGCTGTGCT
GAGAGGACAGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG
GACAAGGCTGTGTCCGGCCTGAGATCCCTGACCACCCTGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA
AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA
CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCCTGCGGGGCAAGCTGAAGCTGTAC
ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA
MUTEIN 15-17 (SEQ ID No . 2)のアミノ酸配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERNLLEAKEAENITTGCAEHCS LNENITVPDTKVNFYAWKRMEVGQQAVEVWQGLALLSEAVLRGQALLVNSSQPWEPLQLHV DKAVSGLRSLTTLLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFLRGKLKLY TGEACRTGDR

MUTEIN 45-47(Lys45->Thr45)+(Asn47->Thr47)
プライマーは以下であった。:
Mut45_47F : CCCGACACCAACGTGACCTTCTACGCC
Mut45_47R: GGCGTGAAGGTCACGTTGGTGTCGGG
MUTEIN 45-47 (SEQ ID No. 3)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC
TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG
ATACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC
CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAACGTGACCTTCTACGCCTGGAAGCGGATGG
AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGGAAGTGTGGCAGGGACTGGCTCTGCTGAGCGAGGCTGTGCT
GAGAGGACAGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG
GACAAGGCTGTGTCCGGCCTGAGATCCCTGACCACCCTGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA
AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA
CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCCTGCGGGGCAAGCTGAAGCTGTAC
ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA
MUTEIN 45-47 (SEQ ID No. 4)のヌクレオチド配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERYLLEAKEAENITTGCAEHCS LNENITVPDTNVTFYAWKRMEVGQQAVEVWQGLALLSEAVLRGQALLVNSSQPWEPLQLHV DKAVSGLRSLTTLLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFLRGKLKLY TGEACRTGDR

MUTEIN 49(Tyr49->Thr49)
プライマーは以下であった。:
Mut49F: AAAGTGAACTTCACCGCCTGGAAGCGG
Mut49R : CCGCTTCCAGGCGGTGAAGTTCACTTT
MUTEIN 49 (SEQ ID No. 5)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC
TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG
ATACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAAAGTGAACTTCACCGCCTGGAAGCGGATGG
AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGGAAGTGTGGCAGGGACTGGCTCTGCTGAGCGAGGCTGTGCT
GAGAGGACAGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG
GACAAGGCTGTGTCCGGCCTGAGATCCCTGACCACCCTGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA
AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA
CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCCTGCGGGGCAAGCTGAAGCTGTAC
ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA
MUTEIN 49 (SEQ ID No. 6)のアミノ酸配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERYLLEAKEAENITTGCAEHCS LNENITVPDTKVNFTAWKRMEVGQQAVEVWQGLALLSEAVLRGQALLVNSSQPWEPLQLHV DKAVSGLRSLTTLLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFLRGKLKLY TGEACRTGDR

MUTEIN 62-64(Glu62->Asn62)+(Trp64->Thr64)
プライマーは以下であった。:
Mut62_64F : CAGGCTGTGAACGTGACGCAGGGACTG
MUT62_64R : CAGTCCCTGCGTCACGTTCACAGCCTG
MUTEIN 62-64 (SEQ ID No. 7)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC
TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG
ATACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC
CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAAAGTGAACTTCTACGCCTGGAAGCGGATGG
AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGAACGTGACGCAGGGACTGGCTCTGCTGAGCGAGGCTGTGCT
GAGAGGACAGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG
GACAAGGCTGTGTCCGGCCTGAGATCCCTGACCACCCTGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA
AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA
CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCCTGCGGGGCAAGCTGAAGCTGTAC
ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA
MUTEIN 62-64 (SEQ ID No. 8)のアミノ酸配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERYLLEAKEAENITTGCAEHCS
LNENITVPDTKVNFYAWKRMEVGQQAVNVTQGLALLSEAVLRGQALLVNSSQPWEPLQLHV DKAVSGLRSLTTLLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFLRGKLKLY TGEACRTGDR

MUTEIN 65-67(Gln65->Asn65)+(Leu67->Thr67)
プライマーは以下であった。:
Mut65_67F : GAAGTGTGGAACGGAACGGCTCTGCTG
MUT65_67R : CAGCAGAGCCGTTCCGTTCCACACTTC
MUTEIN 65-67 (SEQ ID No. 9)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC
TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG
ATACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC
CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAAAGTGAACTTCTACGCCTGGAAGCGGATGG
AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGGAAGTGTGGAACGGAACGGCTCTGCTGAGCGAGGCTGTGCT
GAGAGGACAGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG
GACAAGGCTGTGTCCGGCCTGAGATCCCTGACCACCCTGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA
AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA
CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCCTGCGGGGCAAGCTGAAGCTGTAC
ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA
MUTEIN 65-67 (SEQ ID No. 10)のアミノ酸配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERYLLEAKEAENITTGCAEHCS LNENITVPDTKVNFYAWKRMEVGQQAVEVWNGTALLSEAVLRGQALLVNSSQPWEPLQLHV DKAVSGLRSLTTLLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFLRGKLKLY TGEACRTGDR

MUTEIN 72-74(Glu72->Asn72)+(Val74->Thr74)
プライマーは以下であった。:
Mut72_74F : CTGCTGAGCAACGCTACGCTGAGAGGA
MUT72_74R : TCCTCTCAGCGTAGCGTTGCTCAGCAG
MUTEIN 72-74 (SEQ ID No. 11)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC
TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG
ATACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAAAGTGAACTTCTACGCCTGGAAGCGGATGG
AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGGAAGTGTGGCAGGGACTGGCTCTGCTGAGCAACGCTACGCT
GAGAGGACAGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG
GACAAGGCTGTGTCCGGCCTGAGATCCCTGACCACCCTGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA
AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA
CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCCTGCGGGGCAAGCTGAAGCTGTAC
ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA
MUTEIN 72-74 (SEQ ID No. 12)のアミノ酸配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERYLLEAKEAENITTGCAEHCS LNENITVPDTKVNFYAWKRMEVGQQAVEVWQGLALLSNATLRGQALLVNSSQPWEPLQLHV DKAVSGLRSLTTLLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFLRGKLKLY TGEACRTGDR

MUTEIN 76-78(Arg76->Asn76)+(Gln78->Thr78)
プライマーは以下であった。:
Mut76_78F : GCTGTGCTGAACGGAACGGCCCTGCTC
MUT76 78R : GAGCAGGGCCGTTCCGTTCAGCACAGC
MUTEIN 76-78 (SEQ ID No. 13)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC
TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG
ATACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC
CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAAAGTGAACTTCTACGCCTGGAAGCGGATGG
AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGGAAGTGTGGCAGGGACTGGCTCTGCTGAGCGAGGCTGTGCT
GAACGGAACGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG
GACAAGGCTGTGTCCGGCCTGAGATCCCTGACCACCCTGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA
AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA
CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCCTGCGGGGCAAGCTGAAGCTGTAC
ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA
MUTEIN 76-78 (SEQ ID No. 14)のアミノ酸配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERYLLEAKEAENITTGCAEHCS LNENITVPDTKVNFYAWKRMEVGQQAVEVWQGLALLSEAVLNGTALLVNSSQPWEPLQLHV DKAVSGLRSLTTLLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFLRGKLKLY TGEACRTGDR

MUTEIN 98-100(Ala98->Asn98)+(Ser100->Thr100)
プライマーは以下であった。:
Mut98_100F : GTGGACAAGAATGTGACCGGCCTGAGATCC
MUT98_100R: GGATCTCAGGCCGGTCACATTCTTGTCCAC
MUTEIN 98-100 (SEQ ID No. 15)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG ATACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAAAGTGAACTTCTACGCCTGGAAGCGGATGG AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGGAAGTGTGGCAGGGACTGGCTCTGCTGAGCGAGGCTGTGCT GAGAGGACAGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG GACAAGAATGTGACCGGCCTGAGATCCCTGACCACCCTGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCCTGCGGGGCAAGCTGAAGCTGTAC ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA
MUTEIN 98-100 (SEQ ID No. 16)のアミノ酸配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERYLLEAKEAENITTGCAEHCS
LNENITVPDTKVNFYAWKRMEVGQQAVEVWQGLALLSEAVLRGQALLVNSSQPWEPLQLHV
DKNVTGLRSLTTLLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFLRGKLKLY
TGEACRTGDR

MUTEIN 104 (Ser104 -^Asn104)
プライマーは以下であった。:
Mut104F : TCCGGCCTGAGAAACCTGACCACCCTG
MUT104R: CAGGGTGGTCAGGTTTCTCAGGCCGGA
MUTEIN 104 (SEQ ID No. 17)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC
TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG ATACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC
CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAAAGTGAACTTCTACGCCTGGAAGCGGATGG
AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGGAAGTGTGGCAGGGACTGGCTCTGCTGAGCGAGGCTGTGCT
GAGAGGACAGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG
GACAAGGCTGTGTCCGGCCTGAGAAACCTGACCACCCTGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA
AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA
CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCCTGCGGGGCAAGCTGAAGCTGTAC
ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA
MUTEIN 104 (SEQ ID No. 18)のアミノ酸配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERYLLEAKEAENITTGCAEHCS LNENITVPDTKVNFYAWKRMEVGQQAVEVWQGLALLSEAVLRGQALLVNSSQPWEPLQLHV DKAVSGLRNLTTLLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFLRGKLKLY TGEACRTGDR

MUTEIN 106-108 (Thr106 ->Asn106)+(Leu108->Thr108)?
プライマーは以下であった。:
Mut106 108F : AGATCCCTGAACACCACGCTGAGAGCA
MUT106 108R : TGCTCTCAGCGTGGTGTTCAGGGATCT
MUTEIN 106-108 (SEQ ID No. 19)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC
TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG
ATACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC
CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAAAGTGAACTTCTACGCCTGGAAGCGGATGG
AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGGAAGTGTGGCAGGGACTGGCTCTGCTGAGCGAGGCTGTGCT
GAGAGGACAGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG
GACAAGGCTGTGTCCGGCCTGAGATCCCTGAACACCACGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA
AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA
CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCCTGCGGGGCAAGCTGAAGCTGTAC
ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA
MUTEIN 106-108 (SEQ ID No. 20)のアミノ酸配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERYLLEAKEAENITTGCAEHCS LNENITVPDTKVNFYAWKRMEVGQQAVEVWQGLALLSEAVLRGQALLVNSSQPWEPLQLHV DKAVSGLRSLNTTLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFLRGKLKLY TGEACRTGDR

MUTEIN 149 (Leu149 -^Thr149)
プライマーは以下であった。:
Mut149F: TACTCCAACTTCACGCGGGGCAAGCTG
MUT149R: CAGCTTGCCCCGCGTGAAGTTGGAGTA
MUTEIN 149 (SEQ ID No. 21)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC
TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG
ATACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC
CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAAAGTGAACTTCTACGCCTGGAAGCGGATGG
AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGGAAGTGTGGCAGGGACTGGCTCTGCTGAGCGAGGCTGTGCT
GAGAGGACAGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG
GACAAGGCTGTGTCCGGCCTGAGATCCCTGACCACCCTGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA
AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA
CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCACGCGGGGCAAGCTGAAGCTGTAC
ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA
MUTEIN 149 (SEQ ID No. 22)のアミノ酸配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERYLLEAKEAENITTGCAEHCS LNENITVPDTKVNFYAWKRMEVGQQAVEVWQGLALLSEAVLRGQALLVNSSQPWEPLQLHV DKAVSGLRSLTTLLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFTRGKLKLY TGEACRTGDR

MUTEIN 151-153 (Gly151 - Asn151) + (Leu153 -^Thr153)
プライマーは以下であった。:
Mut151_153F : AACTTCCTGCGGAACAAGACGAAGCTGTAC
MUT151_153R : GTACAGCTTCGTCTTGTTCCGCAGGAAGTT
MUTEIN 151-153 (SEQ ID No. 23)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC
TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG
ATACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC
CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAAAGTGAACTTCTACGCCTGGAAGCGGATGG
AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGGAAGTGTGGCAGGGACTGGCTCTGCTGAGCGAGGCTGTGCT
GAGAGGACAGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG
GACAAGGCTGTGTCCGGCCTGAGATCCCTGACCACCCTGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA
CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCCTGCGGAACAAGACGAAGCTGTAC
ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA
MUTEIN 151-153 (SEQ ID No. 24)のアミノ酸配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERYLLEAKEAENITTGCAEHCS LNENITVPDTKVNFYAWKRMEVGQQAVEVWQGLALLSEAVLRGQALLVNSSQPWEPLQLHV DKAVSGLRSLTTLLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFLRNKTKLY
TGEACRTGDR
HUMAN EPO SEQUENCE
HUMAN EPO (SEQ ID No. 25)のヌクレオチド配列
ATGGGCGTGCACGAATGTCCTGCTTGGCTGTGGCTGCTGCTGTCCCTGCTGTCTCTGCCTC
TGGGACTGCCTGTGCTGGGCGCTCCTCCTAGACTGATCTGCGACTCCCGGGTGCTGGAAAG
ATACCTGCTGGAAGCCAAAGAGGCCGAGAACATCACCACCGGCTGCGCCGAGCACTGCTCC
CTGAACGAGAATATCACCGTGCCCGACACCAAAGTGAACTTCTACGCCTGGAAGCGGATGG
AAGTGGGCCAGCAGGCTGTGGAAGTGTGGCAGGGACTGGCTCTGCTGAGCGAGGCTGTGCT
GAGAGGACAGGCCCTGCTCGTGAACTCCTCCCAGCCTTGGGAACCCCTGCAGCTGCACGTG
GACAAGGCTGTGTCCGGCCTGAGATCCCTGACCACCCTGCTGAGAGCACTGGGAGCCCAGA
AAGAGGCCATCTCTCCACCTGACGCCGCCTCTGCTGCTCCTCTGAGAACCATCACCGCCGA
CACCTTCAGAAAGCTGTTCCGGGTGTACTCCAACTTCCTGCGGGGCAAGCTGAAGCTGTAC
ACCGGCGAGGCTTGCCGGACCGGCGACAGA

hEPO(配列番号２６）のアミノ酸配列
MGVHECPAWLWLLLSLLSLPLGLPVLGAPPRLICDSRVLERYLLEAKEAENITTGCAEHCS LNENITVPDTKVNFYAWKRMEVGQQAVEVWQGLALLSEAVLRGQALLVNSSQPWEPLQLHV DKAVSGLRSLTTLLRALGAQKEAISPPDAASAAPLRTITADTFRKLFRVYSNFLRGKLKLY TGEACRTGDR

Claims

修飾ヒトエリスロポエチン（以下「ｍｈＥＰＯ」と称する）において、
その赤血球生成促進の活性が、ヒトエリスロポエチン（以下「ｈＥＰＯ」と称する）のそれに比較して０．５％未満であり、グリコシル化用のコンセンサス・サイトの追加により、ホモ二量体又はヘテロ二量体の受容体への結合サイトの突然変異を含み、神経保護又は神経形成の能力を維持する
ことを特徴とする修飾ヒトエリスロポエチン。
前記受容体への結合サイトは以下のいずれかのポジションに含まれるアミノ酸の組から選択される
４５－４７、１５－１７，１０４，９８－１００，１０６－１０８，１４９，１５１－１５３，７６－７８，７２－７４，６２－６４，６５－６７又はこれらの組み合わせ
ことを特徴とする請求項１記載の修飾ヒトエリスロポエチン。
前記突然変異は、以下（ａ）～（ｋ）を含む組から選択される
（a.） Lys45Asn と Asn47Thr;（b） Tyr15Asn と Leu17Thr;（c）. Ser104Asn;（d） Ala98Asn と Ser100Thr;（e） Thr106Asn と Leu108Thr;（f） Leu149Thr;（g） Gly151Asn と Leu153Thr;（h） Arg76Asn と Gln78Thr;（i） Glu72Asn と Val74Thr;（j）・ Glu62Asn と Trp64Thr; （k）. Gln65Asn と Leu67Thr.
ことを特徴とする請求項１記載の修飾ヒトエリスロポエチン。
前記ｍｈＥＰＯの赤血球生成促進の活性は、前記ｈＥＰＯのそれに比較して、最大０．２％である
ことを特徴とする請求項１記載の修飾ヒトエリスロポエチン。
前記ｍｈＥＰＯの赤血球生成促進の活性は、存在しない
ことを特徴とする請求項１記載の修飾ヒトエリスロポエチン。
以下の配列番号を含む組から選択されたヌクレオチド配列を含むＤＮＡ配列によりコードされている
配列番号１，配列番号３，配列番号７，配列番号９，配列番号１１，配列番号１３，配列番号１５，配列番号１７，配列番号１９，配列番号２１，配列番号２３
ことを特徴とする請求項１記載の修飾ヒトエリスロポエチン。
以下の配列番号を含む組から選択されたアミノ酸配列を含むＤＮＡ配列によりコードされている
配列番号２，配列番号４，配列番号８，配列番号１０，配列番号１２，配列番号１４，配列番号１６，配列番号１８，配列番号２０，配列番号２２，配列番号２４
ことを特徴とする請求項１記載の修飾ヒトエリスロポエチン。
以下の配列番号を含む組から選択されたヌクレオチド配列を含む
配列番号１，配列番号３，配列番号７，配列番号９，配列番号１１，配列番号１３，配列番号１５，配列番号１７，配列番号１９，配列番号２１，配列番号２３
ことを特徴とする核酸。
以下の配列番号を含む組から選択されたヌクレオチド配列を含む
配列番号１，配列番号３，配列番号７，配列番号９，配列番号１１，配列番号１３，配列番号１５，配列番号１７，配列番号１９，配列番号２１，配列番号２３
ことを特徴とする形質変換ベクター。
以下の配列番号を含む組から選択されたヌクレオチド配列を含む
配列番号１，配列番号３，配列番号７，配列番号９，配列番号１１，配列番号１３，配列番号１５，配列番号１７，配列番号１９，配列番号２１，配列番号２３
ことを特徴とする発現ベクター。
以下の配列番号を含む組から選択されたヌクレオチド配列を含む
配列番号１，配列番号３，配列番号７，配列番号９，配列番号１１，配列番号１３，配列番号１５，配列番号１７，配列番号１９，配列番号２１，配列番号２３
ことを特徴とするレンチウイルス・ベクター。
以下の配列番号を含む組から選択された核酸分子を含む
配列番号１，配列番号３，配列番号７，配列番号９，配列番号１１，配列番号１３，配列番号１５，配列番号１７，配列番号１９，配列番号２１，配列番号２３
ことを特徴とする遺伝子修飾細胞。
動物細胞ライン、植物細胞ライン、Ｎ－グリカンの添加を可能にする細胞宿主の内のいずれかを含む
ことを特徴とする請求項１２記載の遺伝子修飾細胞。
動物細胞ラインを含む
ことを特徴とする請求項１２記載の遺伝子修飾細胞。
以下の（１）～（５）を含む組のいずれかから選択される
（１）ＣＨＯ．Ｋ１，（２）ＨＥＫ２９３，（３）ＮＳＯ，（４）ＢＨＫ－２１，（５）ＨｅＬａ
ことを特徴とする請求項１２記載の遺伝子修飾細胞。
請求項１記載の修飾ヒトエリスロポエチンを、治療的に有効な量含む
ことを特徴とする医薬組成物。
請求項１記載の修飾ヒトエリスロポエチンを治療的に有効な量含み、以下から選択される病状の治療に使われる
アルツハイマー病、パーキンソン病、筋萎縮性側索硬化症、運動神経病、ハンチントン病、脊髄小脳萎縮症、クロイツフェルト・ヤコブ病、うつ病と統合失調病を含む障害性疾患、ダウン症を含む発達性障害障害、脳血管障害による神経組織障害、頭蓋脳外傷
ことを特徴とする医薬組成物。
請求項１記載の修飾ヒトエリスロポエチンを、アルツハイマー病、パーキンソン病、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、運動神経病、ハンチントン病、脊髄小脳萎縮症、クロイツフェルト・ヤコブ病、うつ病と統合失調病を含む障害性疾患、ダウン症を含む発達性障害障害、脳血管障害による神経組織障害、頭蓋脳外傷から選択される病状の治療に使う
ことを特徴とする請求項１記載の修飾ヒトエリスロポエチンの使用。
請求項１記載の修飾ヒトエリスロポエチン（以下「ｍｈＥＰＯ」と称する）を製造する方法において、
（Ａ）前記ｍｈＥＰＯをコードする核酸配列を提供するステップと、
（Ｂ）パッケージング細胞のコトランスフェクション・ベクターを構築するステップと、
（Ｃ）前記パッケージング細胞をコトランスフェクトするステップと、
これにより、前記ｍｈＥＰＯをコードする核酸配列を含むレンチウイルス粒子（以下「ｌｖｐ」と称する）を生成し、
（Ｄ）前記ステップ（Ｃ）のパッケージング細胞により生成された前記ｌｖｐを収穫するステップと、
（Ｅ）前記ｍｈＥＰＯを発現する細胞を、前記ステップ（Ｄ）からの前記ｌｖｐで、形質導入するステップと、
（Ｆ）前記ｍｈＥＰＯをコードする核酸配列を含む前記ステップ（Ｅ）の細胞を選択するステップと、
（Ｇ）前記ステップ（Ｆ）で選択された細胞を培養するステップと、
その結果それらは前記ｍｈＥＰＯを発現させ、
（Ｈ）前記ｍｈＥＰＯを単離し精製するステップと
を有する
ことを特徴とする請求項１記載の修飾ヒトエリスロポエチンを製造する方法。
前記ステップ（Ａ）において、前記核酸配列は、以下を含む組から選択される
配列番号１，配列番号３，配列番号７，配列番号９，配列番号１１，配列番号１３，配列番号１５，配列番号１７，配列番号１９，配列番号２１，配列番号２３
ことを特徴とする請求項１９記載の方法。
前記ステップ（Ｂ）のコトランスフェクション・ベクターは、以下のベクター（１）～（４）のいずれかを含む
（１）前記転移ベクターの核外輸送を誘導するベクター、
（２）前記ｌｖｐが細胞内へ侵入するのを許すベクター、
（３）マトリックスタンパク質、キャプシド、プロテーゼ、逆転写酵素とインテグラ－ゼをコードするベクター、
（４）前記ｍｈＥＰＯ配列を含む転移ベクター、
ことを特徴とする請求項１９記載の方法。
前記ステップ（Ｅ）において、前記細胞は、以下の（１）～（５）の組から選択される
（１）ＣＨＯ．Ｋ１，（２）ＨＥＫ２９３，（３）ＮＳＯ，（４）ＢＨＫ－２１，（５）ＨｅＬａ
ことを特徴とする請求項１９記載の方法。
前記ステップ（Ｈ）は、アンチ－ｒｈＥＰＯ抗体と溶離剤を含む免疫親和性による精製である
ことを特徴とする請求項１９記載の方法。
前記溶離剤は、以下を含む組から選択される
グリシン、酢酸－ＮａＣｌ、酢酸塩、クエン酸、リン酸塩、エタノール、イソプロピルアルコール、ジオキサン、エチレンプリコール、Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、それらの混合物、
ことを特徴とする請求項２３記載の方法。
前記溶離剤は、グリシン、酢酸－ＮａＣｌを含む組から選択される
ことを特徴とする請求項２３記載の方法。
前記溶離剤は、以下（１）～（４）を含む組から選択される
（１）０．１Ｍグリシン（ｐＨ＝２）、
（２）０．１５Ｍグリシン（ｐＨ＝２．５）、
（３）０．２Ｍ酢酸、０．５ＭＮａＣｌ（ｐＨ＝３）
ことを特徴とする請求項２３記載の方法。