JP2022023078A - Ｍｕｃ１に特異的に結合する抗体及びその用途 - Google Patents

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Abstract

【課題】Ｍｕｃｉｎ１（ＭＵＣ１）に特異的に結合する抗ＭＵＣ１抗体に薬物が接合された抗体－薬物接合体を提供する。【解決手段】特定の配列を有する抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片、該抗体又はその抗原結合断片を含む抗体－薬物接合体を開示する。ＭＵＣ１に特異的に結合する抗体又はその抗原結合断片は、ＭＵＣ１に対する優れた親和度及び結合力を示し、前記抗体又はその抗原結合断片に薬物が接合された抗体－薬物接合体は、ＭＵＣ１発現細胞に特異的に結合することによって、薬物を効果的に、且つ特異的又は選択的に伝達することができる。したがって、本発明による抗ＭＵＣ１抗体及び抗体－薬物接合体は、ＭＵＣ１関連疾病、例えば、癌の治療に有用に適用可能である。【選択図】図２３

Description

本発明は、ＭＵＣ１（Ｍｕｃｉｎ １）に特異的に結合する抗ＭＵＣ１抗体及びその用途に関し、より詳細には、抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片、該抗体又はその抗原結合断片を含む抗体－薬物接合体又は二重特異性抗体、これを含む癌の予防又は治療用医薬組成物及び前記抗体又はその抗原結合断片をコードする核酸、該核酸を含むベクター及び宿主細胞、これを用いた抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の作製方法に関する。
ムチン１（Ｍｕｃｉｎ １；ＭＵＣ１）は、多数の糖化した細胞外ドメインを含む膜貫通糖タンパク質である。ＭＵＣ１の長さは細胞表面から２００～５００ｎｍであり、ＭＵＣ１は正常上皮細胞の頂端膜に位置する。ＭＵＣ１は、乳房、胃、食道、膵臓、尿道、肺、腎臓及び胆嚢のような多くの臓器の腺上又は内腔上皮細胞で発現する。正常組織においてＭＵＣ１の負電荷炭水化物は、脱水、ｐＨ変化、花粉及び微生物から基底上皮を保護する物理的障壁を形成する。
ＭＵＣ１遺伝子は単一転写物を暗号化する。翻訳後、ＭＵＣ１はウニ精子タンパク質、エンテロキナーゼ及びアグリン（ＳＥＡ）ドメイン内に位置するＧＳＶＶＶモチーフで自己切断（ａｕｔｏｃｌｅａｖｅ）される。これらはＮ末端サブユニット（ＭＵＣ１－Ｎ）及びＣ末端サブユニット（ＭＵＣ１－Ｃ）の２個のペプチド断片で構成される。
ＭＵＣ１－Ｎ末端サブユニットは、様々な数の反復配列（Ｔａｎｄｅｍ Ｒｅｐｅａｔｓ）を有し、プロリン／トレオニン／セリンに富む（ＰＴＳ：Ｐｒｏｌｉｎｅ／Ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ／Ｓｅｒｉｎｅ－ｒｉｃｈ）ドメイン及びＳＥＡドメインで構成される。ＭＵＣ１－Ｃ末端サブユニットは、５８個のアミノ酸細胞外ドメイン（ＥＣＤ：Ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ Ｄｏｍａｉｎ）、２８個の膜貫通ドメイン（ＴＭＤ：Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ Ｄｏｍａｉｎ）及び７２個のアミノ酸細胞質ドメイン（ＣＤ：Ｃｙｔｏｐｌａｓｍｉｃ Ｄｏｍａｉｎ）で構成される。ＭＵＣ１は、細胞外ドメインに広くＯ－結合型糖化（Ｏ－ｌｉｎｋｅｄ ｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｉｏｎ）が起きる。Ｎ－糖化パターンの程度によって、ＭＵＣ１－Ｃの大きさは２３～２５ｋＤａになり、Ｎ－糖化が欠乏する場合には１７ｋＤａとなる。初めてＭＵＣ１が生成された後、ＭＵＣ１は、細胞に結合している部分と細胞外に放出（ｒｅｌｅａｓｅ）され得る部分が非共有相互作用（ｎｏｎｃｏｖａｌｅｎｔ ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ）によって結合し、この時、クリベージ（ｃｌｅａｖａｇｅ）はＳｈｅｄｄａｓｅという酵素によって起きる。ＭＵＣ１複合体は、ＩＦＮ－γ及びＴＮＦ－αのようなサイトカインの刺激によって分離される。ＭＵＣ１－Ｎ放出は、ＴＮＦ－アルファ転換酵素（ＴＡＣＥ：ＴＮＦ－α Ｃｏｎｖｅｒｔｉｎｇ Ｅｎｚｙｍｅ）及びマトリックス基質金属タンパク質分解酵素（ＭＭＰ：Ｍａｔｒｉｘ Ｍｅｔａｌｌｏ－ｐｒｏｔｅａｓｅ）を含む酵素によって起きる。これらの酵素はＭＵＣ１－ＣのＥＣＤを切断して２つの切片に分け、癌が進行するにつれて、この細胞外切片は癌細胞から離れて身体の血液内を浮遊し、細胞と結合している切片は癌細胞と共に持続的に結合した状態で存在する。ＭＵＣ１は癌細胞の成長に重要であるが、その理由は、他の癌細胞に存在する癌細胞増殖に関連している細胞膜タンパク質との結合によって持続的な細胞増殖シグナルを送り、癌細胞増殖に決定的な役割をするためである。また、この部分は癌細胞の成長から消滅時まで常にその運命を共にするため、癌検出の良いターゲットとなり、または癌を除去し得る決定的なバイオマーカーとなる。また、ＭＵＣ１の他の部分とは違い、この部分は唯一にグリコシル化（ｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｉｏｎ）されない部分として知られており、癌と正常細胞におけるＭＵＣ１を区別できる明確な違いを見せる部分として考えられた。そこで、本発明者らは、ＭＵＣ１の細胞に結合して癌と運命を共にし、正常細胞のＭＵＣ１と癌細胞のＭＵＣ１を区別できるこの切片を抗体の最適の抗原と見なし、本発明の抗体を開発した。
一方、抗体－薬物接合体（Ａｎｔｉｂｏｄｙ－ｄｒｕｇ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ；ＡＤＣ）は、リンカーを用いて抗体に細胞毒性薬物を結合させたものである。モノクローナル抗体がターゲット特異的特性を示すので、抗体－薬物接合体中の薬物は、選択的標的能を持つモノクローナル抗体によって認知される抗原／標的を発現する腫瘍に伝達され得る。理想的には、投与後に血中プロドラッグ状態の抗体－薬物接合体は毒性があってはならず、抗体が標的腫瘍抗原に結合した後に癌細胞内に内在化すると、薬物が活性形態で放出され、腫瘍細胞を殺害する。
このように抗体が結合する標的／抗原を決定することが、抗体－薬物接合体の作製に最も重要な点である。特に、抗体が結合する標的／抗原は腫瘍細胞で優勢に、理想的には癌細胞特異的発現（過発現）する細胞表面タンパク質とされてきた。
かかる技術的背景下で、本発明者らは、正常細胞で発現するＭＵＣ１とは異なる部分を認識する癌細胞－ＭＵＣ１に特異的に結合する抗体を開発し、ＡＤＣの特性上、癌細胞に結合してＡＤＣ効能を極大化し得るように癌細胞と運命を共にする“細胞に結合している部分”と結合する抗ＭＵＣ１抗体及びこれを含む抗体－薬物接合体がＭＵＣ１発現細胞に特異的に結合してＭＵＣ１発現により誘発される疾患を治療できることを確認し、本発明を完成した。
この背景技術の部分に記載された上記情報は、単に本発明の背景に関する理解を向上させるためのもので、本発明の属する技術の分野における通常の知識を有する者にとって既に知られた先行技術を形成する情報を含まなくてもよい。
本発明の目的は、ＭＵＣ１の“細胞に結合している部分”に特異的に結合する抗体又はその抗原結合断片、該抗体又はその抗原結合断片に薬物が接合された抗体－薬物接合体、及び前記抗体又はその抗原結合断片を含む二重特異性抗体を提供することにある。
本発明の他の目的は、前記抗ＭＵＣ１抗体の産生のためのハイブリドーマ（ＫＣＬＲＦＢＰ００３９５）を提供することにある。
本発明のさらに他の目的は、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片、前記抗体－薬物接合体又は二重特異性抗体を含む癌の予防又は治療用組成物及び治療方法を提供することにある。
本発明のさらに他の目的は、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を含む癌の診断用組成物及び診断方法を提供することにある。
本発明のさらに他の目的は、リポソーム内にＭＵＣ１－Ｃ末端部位、ＭＵＣ１のＳＥＡドメイン又はＭＵＣ１のＣ末端細胞外ドメイン及びＣｐＧ－ＤＮＡをカプセル化した複合体を含む免疫原性組成物を提供することにある。
本発明のさらに他の目的は、前記免疫原性組成物をマウスに接種する段階を含む抗ＭＵＣ１モノクローナル抗体の作製方法を提供することにある。
また、本発明のさらに他の目的は、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片をコードする核酸、該核酸を含むベクター及び宿主細胞、これを用いた抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の作製方法を提供することにある。
上記目的を達成するために、本発明は、ＭＵＣ１のＣ末端細胞外ドメイン内の連続する５個以上のアミノ酸を含むポリペプチドを認識する抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を提供する。
好ましくは、抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片は、６個の相補性決定部位（ＣＤＲ）を含み、該抗体又はその抗原結合断片は、配列番号１（ＧＹＴＦＴＳＹＷＭＨ）の重鎖ＣＤＲ１；配列番号２（ＹＩＮＰＧＴＧＹＩＥＹＮＱＫＦＫＤ）の重鎖ＣＤＲ２；配列番号３（ＳＴＡＰＦＤＹ）の重鎖ＣＤＲ３；配列番号４（ＫＡＳＱＤＩＫＳＹＬＳ）の軽鎖ＣＤＲ１；配列番号５（ＹＡＴＲＬＡＤ）の軽鎖ＣＤＲ２；及び配列番号６（ＬＱＹＤＥＳＰＹＴ）の軽鎖ＣＤＲ３からなる群から選ばれるいずれか一つ以上の配列を含むことを特徴とする。
本発明はまた、前記抗ＭＵＣ１抗体の産生のためのハイブリドーマ（ＫＣＬＲＦＢＰ００３９５）を提供する。
本発明はまた、抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を含む抗体－薬物接合体及び二重特異性抗体を提供する。
本発明はまた、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片、抗体－薬物接合体又は二重特異性抗体を含む癌の予防又は治療用医薬組成物及び治療方法を提供する。
本発明はまた、癌の予防又は治療のための前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の用途を提供する。
本発明はまた、癌の予防又は治療用薬剤の製造のための前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の使用を提供する。
本発明はまた、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を含む癌の診断用組成物及び診断方法を提供する。
本発明はまた、リポソーム内に、（１）ＭＵＣ１のＣ末端部位、ＭＵＣ１のＳＥＡドメイン又はＭＵＣ１のＣ末端細胞外ドメイン、及び（２）ＣｐＧ－ＤＮＡをカプセル化した複合体を含む免疫原性組成物及び該免疫原性組成物をマウスに接種する段階を含む抗ＭＵＣ１モノクローナル抗体の作製方法を提供する。
本発明はまた、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片をコードする核酸、該核酸を含むベクター及び宿主細胞、これを用いた抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の作製方法を提供する。
図１Ａは、ｒｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質で免疫化されたマウスでのＩｇＧ総量を示すグラフである。図１Ｂ～図１Ｃは、免疫化されたマウスから分離されたハイブリドーマ細胞をスクリーニングした結果を示す図であり、図１ＢはＨＡＴ培地を用いたスクリーニング結果で、図１ＣはＨＴ培地を用いたスクリーニング結果である。 図２Ａは、ハイブリドーマ細胞で（ｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローン）免疫化されたマウスの腹水に対してＥＬＩＳＡを行った結果を示すグラフであり、ｒｈＭＵＣ１－Ｃ特異的抗体の存在を示す。図２Ｂは、精製した抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体をＳＤＳ－ＰＡＧＥ及びＣｏｏｍｍａｓｓｉｅ染色によって分析した結果を示す。図２Ｃは、ＥＬＩＳＡによって抗ＭＵＣ１抗体のアイソタイプを確認した結果を示すグラフである。 図３Ａは、乳癌細胞溶解物にｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンから精製した抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体及び抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体を用いてウエスタンブロットを行った結果を示す。図３Ｂは、ＭＣＦ－７、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１細胞の細胞溶解物をマウス正常ＩｇＧ又はｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンから精製した抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体で免疫沈降し、抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体を用いて免疫ブロットした結果を示す。図３Ｃは、Ｔ４７Ｄ細胞溶解物をＰＮＧａｓｅ Ｆで処理し、ｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンから精製した抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体を用いてウエスタンブロットした結果を、他の抗体を用いた場合と比較して示す。図３Ｄは、ＰＮＧａｓｅ Ｆで処理したＴ４７Ｄ細胞溶解物をｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンから精製した抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体で免疫沈降した後、抗ＭＵＣ１－ＣＴ又は抗ＭＵＣ１－ＣＴ２抗体で免疫ブロットした結果を示す。 図４Ａは、膵癌細胞溶解物に対して抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体、ｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンから精製した抗ｈＭＵＣ１抗体、又は抗β－アクチン抗体を用いてウエスタンブロットした結果を示す。図４Ｂは、膵癌細胞溶解液に対してマウス正常ＩｇＧ又はｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンから精製した抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体で免疫沈降し、抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体及び抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体を用いて免疫ブロッキングした結果を示す。 図５Ａは、乳癌細胞にｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンから精製した抗ｈＭＵＣ１抗体を４℃で処理し（Ｓｕｒｆａｃｅ）又は０．１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００で細胞を溶解させた後に抗体を処理して（ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ）得られた蛍光イメージを示す。図５Ｂは、乳癌細胞に蛍光探針されたｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンから精製した抗ｈＭＵＣ１抗体を処理し、６時間３７℃で培養して得られた蛍光イメージを示す。 膵癌細胞にｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンから精製した抗ｈＭＵＣ１抗体を４℃で処理し（Ｓｕｒｆａｃｅ）又は０．１％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００で細胞を溶解させた後に抗体を処理して（ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ）得られた蛍光イメージを示す。 膵癌細胞に蛍光探針されたｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンから精製した抗ｈＭＵＣ１抗体を処理し、２４時間３７℃で培養して得られた蛍光イメージを示す。 図８Ａは、組換え発現プラスミドｐＦａｂＥ－ｈＭＵＣ１－１Ｈ７を模式的に示す開裂地図である。図８Ｂは、組換え発現プラスミドｐＦａｂＥ－ｈＭＵＣ１－１Ｈ７によって発現する組換えタンパク質を模式的に示す。図８Ｃは、ＭＣＦ－７、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１細胞に、ｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンに由来した抗ｈＭＵＣ１抗体のＦａｂ断片を処理して得られた蛍光イメージである。 ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１細胞に、ｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンに由来した抗ｈＭＵＣ１抗体を処理した場合の細胞増殖変化を示すグラフである。 図１０Ａ～図１０Ｈは、乳癌を有するマウスに、蛍光標識されたｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンに由来した抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体を静脈投与して得られた蛍光イメージである。 図１１Ａ～図１１Ｃは、膵癌を有するマウスに、蛍光標識されたｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンに由来した抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体を静脈投与して得られた蛍光イメージである。 図１２Ａは、異種移植マウスモデルから摘出された腫瘍組織である。図１２Ｂは、ｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンに由来した抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体が投与された異種移植マウスモデルから摘出された腫瘍のサイズ（（幅２＊長さ）／２）を示すグラフである。図１２Ｃは、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体が投与された異種移植マウスモデルから摘出された腫瘍の重さを示すグラフである。図１２Ｄは、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体が投与された異種移植マウスモデルの体重を示すグラフである。 乳癌組織におけるＭＵＣ１タンパク質発現の有無を示す結果である。 膵癌組織におけるＭＵＣ１タンパク質発現の有無を示す結果である。 乳癌細胞株におけるｈＭＵＣ１－１Ｈ７抗体－薬物接合体の細胞毒性を示す結果である。 乳癌組織におけるｈＭＵＣ１－１Ｈ７抗体－薬物接合体の癌細胞増殖抑制効果を示す結果である。 ＥＬＩＳＡによってヒト化抗体（ｈＭＵＣ１－Ｇ３）とｈＭＵＣ１－Ｃとの結合親和度を確認した結果である。 ｈＭＵＣ１－Ｇ３抗体とｈＭＵＣ１－１Ｈ７抗体が認識するｈＭＵＣ１－Ｃのエピトープ同質性の有無をＥＬＩＳＡで確認した結果である。 流細胞分析器を用いて、ｈＭＵＣ１－Ｇ３抗体が、細胞に発現したｈＭＵＣ１を特異的に認知することを示す結果である。 流細胞分析器を用いて、ｈＭＵＣ１－Ｇ３抗体とｈＭＵＣ１－１Ｈ７抗体が、ＺＲ７５－１乳癌細胞に発現したｈＭＵＣ１を濃度依存的に認知することを示す結果である。 乳癌細胞株のうち、ＭＵＣ１が発現する細胞株（ＺＲ７５－１、Ｔ４７Ｄ）とＭＵＣ１が発現しない細胞株（ＭＤＡ－ＭＢ－２３１）において、ｈＭＵＣ１－Ｇ３抗体－薬物接合体がＭＵＣ１発現によって選択的に乳癌細胞を殺すことを示す結果である。 骨髄性白血病細胞株におけるｈＭＵＣ１－Ｇ３抗体－薬物接合体の細胞毒性を示す結果である。 乳癌患者由来ＴＮＢＣ組織移植によって作製した異種移植マウスモデルにおけるｈＭＵＣ１－Ｇ３抗体－薬物接合体の癌細胞を選択的に抑制する効果を示す結果である。
特に定義しない限り、本明細書で使われた全ての技術的及び科学的用語は、本発明の属する技術の分野における熟練した専門家によって通常理解される意味を有する。一般に、本明細書で使われた命名法は、本技術の分野で周知であり、通常使われているものである。
ＭＵＣ１（Ｍｕｃｉｎ１；ムチン１）は一般に、正常上皮細胞の一面（頂端膜：ａｐｉｃａｌ ｍｅｍｂｒａｎｅ）で発現し、基底上皮を乾燥、ｐＨ変化、汚染、及び微生物から保護する。しかし、ＭＵＣ１は、様々なヒト癌腫で高いレベルで異常発現し、糖化程度が減少し、細胞の全表面で均一に発現し、癌細胞の増殖、侵襲、転移及び血管形成を促進させることに関与する。ＭＵＣ１は癌特異性治療のためのターゲットとなる。
ＭＵＣ１は、Ｎ末端サブユニット（ＭＵＣ１－Ｎ）及びＣ末端サブユニット（ＭＵＣ１－Ｃ）を含み、該ＭＵＣ１－ＮとＭＵＣ１－ＣはＳＥＡドメイン（Ｓｅａ ｕｒｃｈｉｎ ｓｐｅｒｍ ｐｒｏｔｅｉｎ ｅｎｔｅｒｏｋｉｎａｓｅ ａｎｄ ａｇｒｉｎ ｄｏｍａｉｎ）内の切断部位で自己切断して形成される。ＳＥＡドメインは安定した異型二量体複合体を形成することに寄与する。ＭＵＣ１切断が起きると、細胞外ＭＵＣ１－Ｎ（ＭＵＣ１のＮ末端サブユニット）が放出され、多くの抗ＭＵＣ１－ＳＥＡ抗体を隔離させることができる。今まで知られた大部分の抗ＭＵＣ１－ＳＥＡ抗体は、ＭＵＣ１－Ｎ反復配列ドメインをターゲットとするものと知られている（Ｐｒｉｎｓｓｅｎ ｅｔ ａｌ．１９９８； Ｇｉｌｌｅｓｐｉｅ ｅｔ ａｌ．２０００）。ＭＵＣ１－Ｎは、細胞表面から直接発見されず、末梢循環から観察されるので、制限された循環抗ＭＵＣ１－Ｎ抗体しかＭＵＣ１－陽性腫瘍細胞で使用できないという限界がある。また、ＭＵＣ１－Ｃ（ＭＵＣ１のＣ末端サブユニット）のエピトープを選択することも困難であるが、大部分の場合において、ＭＵＣ１－Ｃドメインが膜貫通であるか細胞質に位置するためである。このような問題を克服するために、本発明は、ＭＵＣ１切断後に細胞表面に残るＭＵＣ１－Ｃ末端部位（細胞外ドメイン）をターゲットとする新規なＭＵＣ１に特異的に結合する抗体を提供する。
本発明は一観点において、ＭＵＣ１に特異的に結合する抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片に関する。より詳細には、ＭＵＣ１のＣ末端細胞外ドメイン内の連続する５個以上のアミノ酸を含むポリペプチドを認識する抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片に関する。
特に、本発明では、ＰＣＴ／ＫＲ２０１０／００３８７９特許“リポソームに捕集されたオリゴヌクレオチド及びエピトープを含む免疫増強用組成物”の技術を用いて、ヒトＭｕｃｉｎ１（ＣＤ２２７）の全体タンパク質の１１３４個アミノ酸のうち、ＳＥＡドメインを含む９６１アミノ酸から１１５２アミノ酸までの１９２個のアミノ酸が発現した抗原を用いた。Ｍｕｃｉｎ１は様々なヒトアデノカルチノーマの様々な癌腫で約１００倍程度高い発現（Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，２０１８，２２５－２４０）を示しており、特異にも細胞で合成された後ＳＥＡドメイン内で切断が起き、ＳＥＡドメインを含む細胞に結合している部分とその残りの部分とに分けられるようになり、２つのサブユニットは非共有結合的（ｎｏｎｃｏｖａｌｅｎｔ）に結合している。正常細胞の場合、ＭＵＣ１は非常にグリコシル化（ｈｅａｖｉｌｙ ｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｅｄ）されているが、この部分切断された部分で主に起き、細胞と結合している部分では相対的にグリコシル化されていない。本発明ではこの事実を認知し、クリベージされてから細胞と結合している１９０個のアミノ酸を抗原として用いて、グリコシル化が起きなかった大腸菌で発現をした。
本発明による抗体は、大腸菌で発現した抗原で作られたので、グリコシル化されない抗原を認知する。本発明ではマウスハイブリドーマ技術を用いて抗体を開発し、開発された抗体は特異にもアミノ酸配列の一次的構造を認識せず、３次構造を認識することを確認した。
本発明の一実施例において、乳癌細胞株であるＴ４７ＤとＺＲ７５－１を用いてＦＡＣＳをした時、ＭＵＣ－１特異に認知することを確認したが、細胞を破砕して得た破砕液では一次構造を認識するウエスタンブロットでは認知されなかった。３次構造を認識することを検証するために、細胞破砕液と本発明による抗体を用いて免疫沈降（Ｉｍｍｕｎｏｐｒｅｃｉｐｉｔａｉｏｎ）方法で沈殿後にウエスタンブロットをしたとき、抗原を検出（ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ）し、よって、本発明による抗体は特異的に３次構造を認識する抗体であることを立証した。
本発明において、前記ＭＵＣ１のＣ末端細胞外ドメインは、配列番号１０（ＳＶＶ ＶＱＬＴＬＡＦＲＥＧ ＴＩＮＶＨＤＶＥＴＱ ＦＮＱＹＫＴＥＡＡＳ ＲＹＮＬＴＩＳＤＶＳ ＶＳＤＶＰＦＰＦＳＡ ＱＳ）のアミノ酸配列からなることを特徴とし得る。
本明細書でいう“抗体”とは、免疫系内で抗原の刺激によって作られる物質を総称し、その種類は特に制限されない。前記抗体は、特定抗原と免疫学的に反応性である免疫グロブリン分子で、抗原を特異的に認識する受容体の役目をするタンパク質分子を意味し、多クローン抗体（ｐｏｌｙｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ）及びモノクローナル抗体（ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ）と全抗体及び抗体断片のいずれをも含むことができる。前記抗体は、非自然的に生成されたもの、例えば、組換え的に又は合成的に生成されたものであり得る。前記抗体は、動物抗体（例えば、マウス抗体など）、キメラ抗体、ヒト化抗体又はヒト抗体であり得る。前記抗体はモノクローナル抗体であり得る。また、抗体は、特別な言及がない限り、抗原結合能を保有した抗体の抗原結合断片も含むものと理解できよう。
本明細書でいう“相補性決定部位（Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ－ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎｓ；ＣＤＲ）”とは、抗体の可変部位のうち、抗原との結合特異性を付与する部位を意味する。先に説明した抗体の抗原結合断片は、前記相補性決定部位を一つ以上含む抗体断片であり得る。
本発明において、前記抗ＭＵＣ１抗体は、ハイブリドーマｈＭＵＣ１－１Ｈ７（ＫＣＬＲＦ－ＢＰ－００３９５）から産生されたものであり得る。また、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片は、前記ハイブリドーマｈＭＵＣ１－１Ｈ７（ＫＣＬＲＦ－ＢＰ－００３９５）から産生された抗体の相補性決定部位（ＣＤＲ－Ｈ１、ＣＤＲ－Ｈ２、ＣＤＲ－Ｈ３、ＣＤＲ－Ｌ１、ＣＤＲ－Ｌ２及びＣＤＲ－Ｌ３）又は重鎖可変領域及び軽鎖可変領域を含むことを特徴とし得る。
一側面において、本発明による抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片は、６個の相補性決定部位（ＣＤＲ）を含む。前記抗体又はその抗原結合断片は、配列番号１（ＧＹＴＦＴＳＹＷＭＨ）の重鎖ＣＤＲ１；配列番号２（ＹＩＮＰＧＴＧＹＩＥＹＮＱＫＦＫＤ）の重鎖ＣＤＲ２；配列番号３（ＳＴＡＰＦＤＹ）の重鎖ＣＤＲ３；配列番号４（ＫＡＳＱＤＩＫＳＹＬＳ）の軽鎖ＣＤＲ１；配列番号５（ＹＡＴＲＬＡＤ）の軽鎖ＣＤＲ２；及び配列番号６（ＬＱＹＤＥＳＰＹＴ）の軽鎖ＣＤＲ３からなる群から選ばれるいずれか一つ以上の配列を含むことを特徴とし得る。
本発明において、前記抗体又はその抗原結合断片は、配列番号１の重鎖ＣＤＲ１；配列番号２の重鎖ＣＤＲ２；配列番号３の重鎖ＣＤＲ３；配列番号４の軽鎖ＣＤＲ１；配列番号５の軽鎖ＣＤＲ２；及び配列番号６の軽鎖ＣＤＲ３を全て含むことができる。
本発明において、前記抗体又はその抗原結合断片は、配列番号２２又は２４の重鎖可変領域及び配列番号２３又は２５の軽鎖可変領域を含むことを特徴とし得る。より具体的に、前記抗体又はその抗原結合断片は、配列番号２２の重鎖可変領域及び配列番号２３の軽鎖可変領域；又は配列番号２４の重鎖可変領域及び配列番号２５の軽鎖可変領域を含むことを特徴とし得る。
本発明において、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片は、ＭＵＣ１に対する阻害効果を有する。
ＭＵＣ１遺伝子は一つの転写体を暗号化し、翻訳後に、ＭＵＣ１タンパク質はＳＥＡドメイン内に位置するＧＳＶＶＶモチーフのうち“Ｇ”で自己切断される。本発明において、ＭＵＣ１タンパク質はヒトＭＵＣ１タンパク質であり得、例えば、ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．Ｐ１５９４１のアミノ酸配列（配列番号７）を含むか、或いはこれと８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、又は９９％以上の配列相同性を有するものであり得る。前記ＭＵＣ１タンパク質の細胞外ドメインはヒトＭＵＣ１タンパク質の細胞外ドメインであり得、例えば、ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．Ｐ１５９４１のアミノ酸配列（配列番号７）のうち、９６１番目から１１５２番目までの１９２個のアミノ酸を含むタンパク質断片（配列番号８）であり得る。前記ＭＵＣ１タンパク質の細胞外ドメインはＳＥＡドメインを含み、一例において、前記ＳＥＡドメインはＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．Ｐ１５９４１のアミノ酸配列（配列番号７）のうち１０３４番目から１１５２番目までの１１９個のアミノ酸を含むタンパク質断片（配列番号９）であり得る。前記ＳＥＡドメインに存在するＧＳＶＶＶモチーフのうち“Ｇ”が切断部位であり、ここで切断が発生した場合、前記“Ｇ”以降（Ｃ末端方向に）の部位はＭＵＣ１タンパク質のＣ末端細胞外ドメイン（或いは、‘ＭＵＣ１－Ｃ末端（部位）細胞外ドメイン’又は‘ＭＵＣ１－Ｃサブユニット’と称する。）（配列番号１０）となる（表１）。
Figure 2022023078000002
Figure 2022023078000003
本発明において、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片は、ＭＵＣ１タンパク質（例えば、配列番号７）、具体的に、ＭＵＣ１タンパク質のＣ末端細胞外ドメイン（例えば、配列番号１０）内の５個、７個、１０個、１２個以上、又は好ましくは１５個以上のアミノ酸を含むポリペプチド（エピトープ）を認識するか或いは特異的に結合することを特徴とし得る。前記抗体又はその抗原結合断片は、ＭＵＣ１タンパク質の細胞外ドメイン（例えば、配列番号８）、ＭＵＣ１タンパク質のＳＥＡドメイン（例えば、配列番号９）又はＭＵＣ１タンパク質のＣ末端細胞外ドメイン（例えば、配列番号１０）を認識する、及び／又はここに特異的に結合することを特徴とし得る。
本明細書でいう用語“ＭＵＣ１特異的抗体”又は“ＭＵＣ１に特異的に結合する抗体”は、ＭＵＣ１に結合してＭＵＣ１の生物学的活性の抑制を招く抗体を意味し、“抗ＭＵＣ１抗体”と同じ意味で使われる。
本発明でいう“抗ＭＵＣ１抗体”は、動物抗体（例えば、マウス抗体）、キメラ抗体（例えば、マウス－ヒトキメラ抗体）又はヒト化抗体であり得、モノクローナル抗体又は多クローン抗体でよく、例えばモノクローナル抗体でよい。多クローン抗体（ｐｏｌｙｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ）及びモノクローナル抗体（ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ）を全て含む概念であって、好ましくはモノクローナル抗体であり、正常の全抗体（ｗｈｏｌｅ ａｎｔｉｂｏｄｙ）形態を有することができる。全抗体は２個の全長の軽鎖及び２個の全長の重鎖を有する構造であって、不変領域を含む構造であり、それぞれの軽鎖は重鎖とジスルフィド結合で連結されている。
本発明による抗ＭＵＣ１抗体の全抗体は、ＩｇＡ、ＩｇＤ、ＩｇＥ、ＩｇＭ及びＩｇＧ形態を含む概念であり、ＩｇＧは亜型（ｓｕｂｔｙｐｅ）としてＩｇＧ１、ＩｇＧ２、ＩｇＧ３及びＩｇＧ４を含む。
完全なＩｇＧ形態の抗体は２個の全長（ｆｕｌｌ ｌｅｎｇｔｈ）軽鎖及び２個の全長重鎖を有する構造であり、それぞれの軽鎖は重鎖と二硫化結合で連結されている。抗体の不変領域は重鎖不変領域と軽鎖不変領域とに分けられ、重鎖不変領域は、ガンマ（γ）、ミュー（μ）、アルファ（α）、デルタ（δ）及びエプシロン（ε）タイプを有し、サブクラスとしてガンマ１（γ１）、ガンマ２（γ２）、ガンマ３（γ３）、ガンマ４（γ４）、アルファ１（α１）及びアルファ２（α２）を有する。軽鎖の不変領域はキャパ（κ）及びラムダ（λ）タイプを有する。
本発明において、用語“重鎖（ｈｅａｖｙ ｃｈａｉｎ）”は、抗原に特異性を付与するために十分の可変領域配列を持つアミノ酸配列を含む可変領域ドメインＶＨ及び３個の不変領域ドメインＣＨ１、ＣＨ２及びＣＨ３とヒンジ（ｈｉｎｇｅ）を含む全長重鎖及びその断片を全て含む意味として解釈される。また、用語“軽鎖（ｌｉｇｈｔ ｃｈａｉｎ）”は、抗原に特異性を付与するための十分の可変領域配列を持つアミノ酸配列を含む可変領域ドメインＶＬ及び不変領域ドメインＣＬを含む全長軽鎖及びその断片を全て含む意味として解釈される。
本発明において、“ＣＤＲ（ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｉｔｙ ｄｅｔｅｒｍｉｎｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎ）”は、免疫グロブリンの重鎖及び軽鎖の高可変領域（ｈｙｐｅｒｖａｒｉａｂｌｅ ｒｅｇｉｏｎ）のアミノ酸配列を意味する。重鎖及び軽鎖はそれぞれ３個のＣＤＲを含むことができる（ＣＤＲＨ１、ＣＤＲＨ２、ＣＤＲＨ３、及びＣＤＲＬ１、ＣＤＲＬ２、ＣＤＲＬ３）。前記ＣＤＲは、抗体が抗原又はエピトープに結合する上で主要な接触残基を提供することができる。
一方、用語“特異的に結合”又は“特異的に認識”は、当業者に通常公知されている意味であり、抗原及び抗体が特異的に相互作用して免疫学的反応をすることを意味する。
本発明による抗ＭＵＣ１抗体の“抗原結合断片”は、抗ＭＵＣ１抗体の抗原、すなわちＭＵＣ１と結合できる機能を保有している断片を意味し、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）２、ｓｃＦｖ（ｓｃＦｖ）２、ｓｃＦｖ－Ｆｃ、及びＦｖなどを含む概念であり、本明細書では“抗体断片”と同じ意味で使われる。抗原結合断片は例えば、ｓｃＦｖ、（ｓｃＦｖ）２、Ｆａｂ、Ｆａｂ’又はＦ（ａｂ’）２であり得るが、これに限定されるものではない。前記抗原結合断片のうちＦａｂは、軽鎖及び重鎖の可変領域と軽鎖の不変領域及び重鎖の最初の不変領域（ＣＨ１）を有する構造であり、１個の抗原結合部位を有する。Ｆａｂ’は、重鎖ＣＨ１ドメインのＣ末端に一つ以上のシステイン残基を含むヒンジ領域（ｈｉｎｇｅ ｒｅｇｉｏｎ）を有するという点でＦａｂと異なる。Ｆ（ａｂ’）２抗体は、Ｆａｂ’のヒンジ領域のシステイン残基がジスルフィド結合をなしながら生成される。Ｆｖは重鎖可変部位及び軽鎖可変部位だけを持っている最小の抗体断片であり、Ｆｖ断片を生成する組換え技術は当業界に公知である。二重鎖Ｆｖ（ｔｗｏ－ｃｈａｉｎ Ｆｖ）は、非共有結合で重鎖可変部位と軽鎖可変部位とが連結されており、単鎖Ｆｖ（ｓｉｎｇｌｅ－ｃｈａｉｎ Ｆｖ）は一般的にペプチドリンカーによって重鎖の可変領域と単鎖の可変領域とが共有結合で連結されるか或いはＣ末端で直接連結されているので、二重鎖Ｆｖのように二量体のような構造をなすことができる。前記抗原結合断片は、タンパク質加水分解酵素を用いて得ることができ（例えば、全抗体をパパインで制限切断すればＦａｂが得られ、ペブシンで切断すればＦ（ａｂ’）２断片が得られる。）、遺伝子組換え技術で作製することができる。
本発明において、用語“ヒンジ領域（ｈｉｎｇｅ ｒｅｇｉｏｎ）”は、抗体の重鎖に含まれている領域であり、ＣＨ１及びＣＨ２領域の間に存在し、抗体内抗原結合部位の柔軟性（ｆｌｅｘｉｂｉｌｉｔｙ）を提供する機能を果たす領域を意味する。
前記抗ＭＵＣ１抗体はモノクローナル抗体であり得る。モノクローナル抗体は、当業界に周知の方法で製造することができる。例えば、ファージディスプレイ手法を用いて製造することができる。または、抗ＭＵＣ１抗体を用いて通常の方法によってマウス由来のモノクローナル抗体として製造することもできる。
一方、典型的なＥＬＩＳＡ（Ｅｎｚｙｍｅ－Ｌｉｎｋｅｄ ＩｍｍｕｎｏＳｏｒｂｅｎｔ Ａｓｓａｙ）フォーマットを用いてＭＵＣ１との結合能に基づいて個別のモノクローナル抗体をスクリーニングすることができる。結合体に対して分子的相互作用を検定するための競合的ＥＬＩＳＡ（Ｃｏｍｐｅｔｉｔｉｖｅ ＥＬＩＳＡ）のような機能性分析又は細胞ベース分析（ｃｅｌｌ－ｂａｓｅｄ ａｓｓａｙ）のような機能性分析によって阻害活性に対して検定することができる。その後、強い阻害活性に基づいて選択されたモノクローナル抗体メンバーに対してＭＵＣ１に対するそれぞれの親和度（Ｋｄ ｖａｌｕｅｓ）を検定する。
本発明による抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の権利範囲には、本発明による抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片に含まれた軽鎖及び重鎖のＣＤＲ１～ＣＤＲ３のいずれか一つ以上を有する上に、実質的に同じＭＵＣ１抗原に対する結合能及び特異性を有するペプチド（ｐｅｐｔｉｄｅ）及びアプタマー（ａｐｔａｍｅｒ）も含まれる。
本発明は他の観点において、前記抗ＭＵＣ１抗体を産生するハイブリドーマに関する。本発明において、前記ハイブリドーマは受託番号ＫＣＬＲＦ－ＢＰ－００３９５である。
本発明は、前記ハイブリドーマが産生する抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を提供する。他の例は、前記ハイブリドーマが産生する抗ＭＵＣ１抗体の重鎖相補性決定部位（ＣＤＲ－Ｈ１、ＣＤＲ－Ｈ２、ＣＤＲ－Ｈ３、又はそれらの組合せ）、軽鎖相補性決定部位（ＣＤＲ－Ｌ１、ＣＤＲ－Ｌ２、ＣＤＲ－Ｌ３、又はそれらの組合せ）、又はそれらの組合せ；又は前記ハイブリドーマが産生する抗ＭＵＣ１抗体の重鎖可変領域、軽鎖可変領域、又はそれらの組合せを含む抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を提供する。この時、前記相補性決定部位は通常のいずれの方法によって決定されてもよく、例えば、ＩＭＧＴの定義（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｉｍｇｔ．ｏｒｇ／ＩＭＧＴ＿ｖｑｕｅｓｔ／ｓｈａｒｅ／ｔｅｘｔｅｓ／）又はＫａｂａｔの定義（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｂｉｏｉｎｆ．ｏｒｇ．ｕｋ／ａｂｓ／）によって決定され得るが、これに制限されない。
本発明において、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片は、ＭＵＣ１－Ｃ末端細胞外ドメインを特異的に認識することによって、ＭＵＣ１－Ｃ末端細胞外ドメインが正常細胞に比べて高いレベルで発現し、少なく糖化された癌又は腫瘍細胞で特異的に作用でき、かつ細胞の一面だけでなく全表面に発現したＭＵＣ１タンパク質を認識／結合させることができる。また、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片は、ＭＵＣ１タンパク質、特にＭＵＣ１－Ｃ末端細胞外ドメインと結合するだけでなく、細胞内に内在化（ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ）されることによって（実施例９－８、実施例１８参照）ＭＵＣ１媒介の伝達経路（ｐａｔｈｗａｙ）を効果的に阻害して薬理的効果を極大化させることができる。また、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の内在化特性は、抗体－薬物接合体（ＡＤＣ）として適用される場合に、接合された薬物を効果的に細胞内に伝達させることができるという利点を有する。
本発明は更に他の観点において、本発明による抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を含むＣＡＲ（Ｃｈｉｍｅｒｉｃ ａｎｔｉｇｅｎ ｒｅｃｅｐｔｏｒ）－Ｔ細胞治療剤及び／又はＣＡＲ（Ｃｈｉｍｅｒｉｃ ａｎｔｉｇｅｎ ｒｅｃｅｐｔｏｒ）－ＮＫ（ｎａｔｕｒａｌ ｋｉｌｌｅｒ ｃｅｌｌ）に関する。前記ＣＡＲ－Ｔ又はＣＡＲ－ＮＫに含まれる抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の形態はｓｃＦｖが好ましいが、これに限定されるものではない。
本発明はさらに他の観点において、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片に薬物が接合された抗体－薬物接合体（Ａｎｔｉｂｏｄｙ－ｄｒｕｇ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ；ＡＤＣ）に関する。
本発明の一実施例において、前記抗体－薬物接合体の薬物は、モノメチルアウリスタチンＥ（ｍｏｎｏｍｅｔｈｙｌ ａｕｒｉｓｔａｔｉｎ Ｅ；ＭＭＡＥ）である。前記抗体－薬物接合体はＭＵＣ１発現細胞に結合した後、ＭＵＣ１発現腫瘍細胞に内在化し、タンパク質分解性切断（ｐｒｏｔｅｏｌｙｔｉｃ ｃｌｅａｖａｇｅ）によってＭＭＡＥが標的ＭＵＣ１細胞に選択的に放出される。放出されたＭＭＡＥがチューブリン（Ｔｕｂｕｌｉｎ）に結合すると、細胞内微細管網を分裂させ、細胞周期停止を誘導し、微細管分裂が発生しながら細胞死滅が進行する。
抗体－薬物接合体（Ａｎｔｉｂｏｄｙ－ｄｒｕｇ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ；ＡＤＣ）は、ターゲット癌細胞に坑癌薬物を伝達するまで坑癌薬物が抗体に安定的に結合している必要がある。ターゲットに伝達された薬物は抗体から遊離してターゲット細胞の死滅を誘導しなければならない。そのためには、薬物が抗体に安定的に結合すると同時に、ターゲット細胞で遊離する時はターゲット細胞の死滅を誘導するような十分の細胞毒性を有する必要がある。
本発明において、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片と抗癌剤などの薬物を含む細胞毒性物質とが互いに結合（例えば、共有結合、ペプチド結合などによる）して接合体（ｃｏｎｊｕｇａｔｅ）又は融合タンパク質（細胞毒性物質及び／又は標識物質がタンパク質である場合）の形態で使用され得る。前記細胞毒性物質は、癌細胞、特に固形癌細胞に対して毒性を有するいかなる物質であってもよく、放射性同位元素、細胞毒素化合物（ｓｍａｌｌ ｍｏｌｅｃｕｌｅ）、細胞毒性タンパク質、抗癌剤などからなる群から選ばれる１種以上であり得るが、これに制限されない。前記細胞毒素タンパク質は、リシン（ｒｉｃｉｎ）、サポリン（ｓａｐｏｒｉｎ）、ゲロニン（ｇｅｌｏｎｉｎ）、モモルジン（ｍｏｍｏｒｄｉｎ）、デボウガニン（ｄｅｂｏｕｇａｎｉｎ）、ジフテリア毒素、緑膿菌毒素（ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｔｏｘｉｎ）などからなる群から選ばれる１種以上であり得るが、これに制限されない。前記放射性同位元素として１３１Ｉ、１８８Ｒｈ、９０Ｙなどからなる群から選ばれる１種以上を挙げることができるが、これに制限されない。前記細胞毒素化合物は、デュオカルマイシン（ｄｕｏｃａｒｍｙｃｉｎ）、モノメチルアウリスタチンＥ（ｍｏｎｏｍｅｔｈｙｌ ａｕｒｉｓｔａｔｉｎ Ｅ；ＭＭＡＥ）、モノメチルアウリスタチンＦ（ｍｏｎｏｍｅｔｈｙｌ ａｕｒｉｓｔａｔｉｎ Ｆ；ＭＭＡＦ）、Ｎ２’－ジアセチル－Ｎ２’－（３－メルカプト－１－オキソプロピル）メイタンシン（Ｎ２’－ｄｅａｃｅｔｙｌ－Ｎ２‘－（３－ｍｅｒｃａｐｔｏ－１－ｏｘｏｐｒｏｐｙｌ）ｍａｙｔａｎｓｉｎｅ；ＤＭ１）、ＰＢＤ（Ｐｙｒｒｏｌｏｂｅｎｚｏｄｉａｚｅｐｉｎｅ）二量体などからなる群から選ばれる１種以上であり得るが、これに制限されない。
本発明において、前記抗体－薬物接合体は、本発明の属する技術分野における周知の技術によるものであり得る。
本発明において、前記抗体－薬物接合体は、前記抗体又はその抗原結合断片がリンカーによって薬物と結合することを特徴とし得る。
本発明において、前記リンカーは切断性リンカー又は非切断性リンカーであることを特徴とし得る。
前記リンカーは抗ＭＵＣ１抗体と薬物とを連結する部位であり、例えば、前記リンカーは、細胞内条件で切断可能な形態、すなわち、細胞内環境で抗体から薬物がリンカーの切断によって放出され得るようにする。
前記リンカーは、細胞内環境、例えば、リソソーム又はエンドソームに存在する切断剤により切断可能であり、細胞内ペプチダーゼ又はプロテアーゼ酵素、例えば、リソソーム又はエンドソームプロテアーゼによって切断可能なペプチドリンカーであり得る。一般に、ペプチドリンカーは少なくとも２個のアミノ酸長を有する。前記切断剤は、カテプシンＢ及びカテプシンＤ、プラスミンを含むことができ、ペプチドを加水分解して薬物を標的細胞内に放出させ得る。前記ペプチドリンカーは、チオール依存性プロテアーゼカテプシン－Ｂによって切断可能であり、これは癌組織で高発現し、例えばＰｈｅ－Ｌｅｕ又はＧｌｙ－Ｐｈｅ－Ｌｅｕ－Ｇｌｙリンカーが使用され得る。また、前記ペプチドリンカーは、例えば、細胞内プロテアーゼによって切断可能なものであり、Ｖａｌ－Ｃｉｔリンカー又はＰｈｅ－Ｌｙｓリンカーであり得る。
本発明において、前記切断性リンカーはｐＨ敏感性であり、特定ｐＨ値で加水分解に敏感であり得る。一般に、ｐＨ敏感性リンカーは、酸性条件で加水分解され得るものを指す。例えば、リソソームで加水分解され得る酸性不安定リンカー、例えば、ヒドラゾン、セミカルバゾン、チオセミカルバゾン、ｃｉｓ－アコニットアミド（ｃｉｓ－ａｃｏｎｉｔｉｃ ａｍｉｄｅ）、オルトエステル、アセタール、ケタールなどであり得る。
前記リンカーは還元条件で切断されてもよく、例えば二硫化リンカーがこれに当たる。ＳＡＴＡ（Ｎ－ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ－Ｓ－ａｃｅｔｙｌｔｈｉｏａｃｅｔａｔｅ）、ＳＰＤＰ（Ｎ－ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ－３－（２－ｐｙｒｉｄｙｌｄｉｔｈｉｏ）ｐｒｏｐｉｏｎａｔｅ）、ＳＰＤＢ（Ｎ－ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ－３－（２－ｐｙｒｉｄｙｌｄｉｔｈｉｏ）ｂｕｔｙｒａｔｅ）及びＳＭＰＴ（Ｎ－ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｙｌ－ｏｘｙｃａｒｂｏｎｙｌ－ａｌｐｈａ－ｍｅｔｈｙｌ－ａｌｐｈａ－（２－ｐｙｒｉｄｙｌ－ｄｉｔｈｉｏ）ｔｏｌｕｅｎｅ）によって様々な二硫化結合が形成され得る。
本発明において、前記薬物及び／又は薬物－リンカーは、抗体のリシンで無作為に接合されるか、或いは二硫化結合鎖を還元した時に露出されるシステインで接合され得る。場合によって、遺伝工学的に作製されたタグ、例えば、ペプチド又はタンパク質に存在するシステインによってリンカー－薬物が結合し得る。前記遺伝工学的に作製されたタグ、例えば、ペプチド又はタンパク質は、例えば、イソプレノイドトランスフェラーゼによって認識され得るアミノ酸モチーフを含むことができる。前記ペプチド又はタンパク質は、ペプチド又はタンパク質のカルボキシ末端で欠失（ｄｅｌｅｔｉｏｎ）を有するか、ペプチド又はタンパク質のカルボキシ（Ｃ）末端にスぺーサユニットの共有結合による付加を有する。前記ペプチド又はタンパク質は、アミノ酸モチーフと直接に共有結合するか或いはスぺーサユニットと共有結合してアミノ酸モチーフと連結され得る。前記アミノ酸スぺーサユニットは１～２０個のアミノ酸で構成され、中でもグリシン（ｇｌｙｃｉｎｅ）ユニットが好ましい。
前記リンカーはリソソームで多数存在するか、或いはいくつかの腫瘍細胞で過発現するβ－グルクロニダーゼ（β－ｇｌｕｃｕｒｏｎｉｄａｓｅ）によって認識されて加水分解されるβ－グルクロニドリンカーを含むことができる。ペプチドリンカーとは違い、親水性（ｈｙｄｒｏｐｈｉｌｉｃｉｔｙ）が大きいので、疎水性の性質が高い薬物と結合時に抗体－薬物複合体の溶解度を増加させることができるという長所をもつ。
これと関連して、本発明では大韓民国特許公開公報第２０１５－０１３７０１５号に開示されているβ－グルクロニドリンカー、例えば自己犠牲基（ｓｅｌｆ－ｉｍｍｏｌａｔｉｖｅ ｇｒｏｕｐ）を含むβ－グルクロニドリンカーを使用することができる。
また、前記リンカーは、例えば非切断性リンカーでよく、抗体加水分解した段階のみによって薬物が放出され、例えばアミノ酸－リンカー－薬物複合体を産生する。このような類型のリンカーはチオエーテル基又はマレイミドカプロイル（ｍａｌｅｉｍｉｄｏｃａｐｒｏｙｌ）基でよく、血液内安定性を維持することができる。
本発明において、前記薬物は、化学療法剤、毒素、マイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ又は放射性同位元素であることを特徴とし得る。前記薬物は薬理学的効果を表す製剤であり、抗体に結合し得る。
前記化学療法剤は細胞毒性製剤又は免疫抑制剤であり得る。具体的に、マイクロチューブリン抑制剤、有糸分裂抑制剤、トポイソメラーゼ抑制剤、又はＤＮＡインターカレータとして機能し得る化学療法剤を含むことができる。また、免疫調節化合物、抗癌剤、抗ウイルス剤、抗バクテリア剤、抗真菌剤、駆虫剤又はそれらの組合せを含むことができる。
前記薬物は、例えば、メイタンシノイド、オーリスタチン、アミノプテリン、アクチノマイシン、ブレオマイシン、タリソマイシン、カンプトテシン、Ｎ８－アセチルスペルミジン、１－（２クロロエチル）－１，２－ジメチルスルホニルヒドラジド、エスペラミシン、エトポシド、６－メルカプトプリン、ドラスタチン、トリコテセン、カリケアミシン、タキソール（ｔａｘｏｌ）、タキサン、パクリタキセル（ｐａｃｌｉｔａｘｅｌ）、ドセタキセル（ｄｏｃｅｔａｘｅｌ）、メトトレキサート、ビンクリスチン、ビンブラスチン、ドキソルビシン、メルファラン、マイトマイシンＡ、マイトマイシンＣ、クロラムブシル、デュオカルマイシン、Ｌ－アスパラギナーゼ（Ｌ－ａｓｐａｒａｇｉｎａｓｅ）、メルカプトプリン（ｍｅｒｃａｐｔｏｐｕｒｉｎｅ）、チオグアニン（ｔｈｉｏｇｕａｎｉｎｅ）、ヒドロキシウレア（ｈｙｄｒｏｘｙｕｒｅａ）、シタラビン（ｃｙｔａｒａｂｉｎｅ）、シクロホスファミド（ｃｙｃｌｏｐｈｏｓｐｈａｍｉｄｅ）、イホスファミド（ｉｆｏｓｆａｍｉｄｅ）、ニトロソウレア（ｎｉｔｒｏｓｏｕｒｅａ）、シスプラチン（ｃｉｓｐｌａｔｉｎ）、カルボプラチン（ｃａｒｂｏｐｌａｔｉｎ）、マイトマイシン（ｍｉｔｏｍｙｃｉｎ）、ダカルバジン（ｄａｃａｒｂａｚｉｎｅ）、プロカルバジン（ｐｒｏｃａｒｂａｚｉｎｅ）、トポテカン（ｔｏｐｏｔｅｃａｎ）、窒素マスタード（ｎｉｔｒｏｇｅｎ ｍｕｓｔａｒｄ）、シトキサン（ｃｙｔｏｘａｎ）、エトポシド（ｅｔｏｐｏｓｉｄｅ）、５－フルオロウラシル（５－ｆｌｕｏｒｏｕｒａｃｉｌ）、ＣＮＵ（ｂｉｓｃｈｌｏｒｏｅｔｈｙｌｎｉｔｒｏｓｏｕｒｅａ）、イリノテカン（ｉｒｉｎｏｔｅｃａｎ）、カンプトテシン（ｃａｍｐｔｏｔｈｅｃｉｎ）、ブレオマイシン（ｂｌｅｏｍｙｃｉｎ）、イダルビシン（ｉｄａｒｕｂｉｃｉｎ）、ダウノルビシン（ｄａｕｎｏｒｕｂｉｃｉｎ）、ダクチノマイシン（ｄａｃｔｉｎｏｍｙｃｉｎ）、プリカマイシン（ｐｌｉｃａｍｙｃｉｎ）、ミトキサントロン（ｍｉｔｏｘａｎｔｒｏｎｅ）、アスパラギナーゼ（ａｓｐａｒａｇｉｎａｓｅ）、ビノレルビン（ｖｉｎｏｒｅｌｂｉｎｅ）、クロラムブシル（ｃｈｌｏｒａｍｂｕｃｉｌ）、メルファラン（ｍｅｌｐｈａｌａｎ）、カルムスチン（ｃａｒｍｕｓｔｉｎｅ）、ロムスチン（ｌｏｍｕｓｔｉｎｅ）、ブスルファン（ｂｕｓｕＬｆａｎ）、トレオサルファン（ｔｒｅｏｓｕｌｆａｎ）、デカルバジン（ｄｅｃａｒｂａｚｉｎｅ）、エトポシド（ｅｔｏｐｏｓｉｄｅ）、テニポシド（ｔｅｎｉｐｏｓｉｄｅ）、トポテカン（ｔｏｐｏｔｅｃａｎ）、９－アミノカンプトテシン（９－ａｍｉｎｏｃａｍｐｔｏｔｈｅｃｉｎ）、クリスナトール（ｃｒｉｓｎａｔｏｌ）、マイトマイシンＣ（ｍｉｔｏｍｙｃｉｎ Ｃ）、トリメトレキサート（ｔｒｉｍｅｔｒｅｘａｔｅ）、ミコフェノール酸（ｍｙｃｏｐｈｅｎｏｌｉｃ ａｃｉｄ）、チアゾフリン（ｔｉａｚｏｆｕｒｉｎ）、リバビリン（ｒｉｂａｖｉｒｉｎ）、ＥＩＣＡＲ（５－ｅｔｈｙｎｙｌ－１－ｂｅｔａ－Ｄｒｉｂｏｆｕｒａｎｏｓｙｌｉｍｉｄａｚｏｌｅ－４－ｃａｒｂｏｘａｍｉｄｅ）、ヒドロキシウレア（ｈｙｄｒｏｘｙｕｒｅａ）、デフェロキサミン（ｄｅｆｅｒｏｘａｍｉｎｅ）、フロキシウリジン（ｆｌｏｘｕｒｉｄｉｎｅ）、ドキシフルリジン（ｄｏｘｉｆｌｕｒｉｄｉｎｅ）、ラルチトレキセド（ｒａｌｔｉｔｒｅｘｅｄ）、シタラビン（ｃｙｔａｒａｂｉｎｅ（ａｒａ Ｃ））、シトシンアラビノシド（ｃｙｔｏｓｉｎｅ ａｒａｂｉｎｏｓｉｄｅ）、フルダラビン（ｆｌｕｄａｒａｂｉｎｅ）、タモキシフェン（ｔａｍｏｘｉｆｅｎ）、ラロキシフェン（ｒａｌｏｘｉｆｅｎｅ）、メゲストロール（ｍｅｇｅｓｔｒｏｌ）、ゴセレリン（ｇｏｓｅｒｅｌｉｎ）、酢酸ロイプロリド（ｌｅｕｐｒｏｌｉｄｅ ａｃｅｔａｔｅ）、フルタミド（ｆｌｕｔａｍｉｄｅ）、ビカルタミド（ｂｉｃａｌｕｔａｍｉｄｅ）、ＥＢ１０８９、ＣＢ１０９３、ＫＨ１０６０、ベルテポルフィン（ｖｅｒｔｅｐｏｒｆｉｎ）、フタロシアニン（ｐｈｔｈａｌｏｃｙａｎｉｎｅ）、光感作剤Ｐｅ４（ｐｈｏｔｏｓｅｎｓｉｔｉｚｅｒ Ｐｅ４）、デメトキシ－ハイポクレリンＡ（ｄｅｍｅｔｈｏｘｙ－ｈｙｐｏｃｒｅｌｌｉｎ Ａ）、インターフェロン－α（Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ－α）、インターフェロン－γ（Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ－γ）、腫瘍壊死因子（ｔｕｍｏｒ ｎｅｃｒｏｓｉｓ ｆａｃｔｏｒ）、ゲムシタビン（Ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）、ベルケイド（ｖｅｌｃａｄｅ）、レブリミド（ｒｅｖａｍｉｄ）、タルアミド（ｔｈａｌａｍｉｄ）、ロバスタチン（ｌｏｖａｓｔａｔｉｎ）、１－メチル－４－フェニルピリジニウムイオン（１－ｍｅｔｈｙｌ－４－ｐｈｅｎｙｌｐｙｒｉｄｉｎｉｕｍ ｉｏｎ）、スタウロスポリン（ｓｔａｕｒｏｓｐｏｒｉｎｅ）、アクチノマイシンＤ（ａｃｔｉｎｏｍｙｃｉｎ Ｄ）、ダクチノマイシン（ｄａｃｔｉｎｏｍｙｃｉｎ）、ブレオマイシンＡ２（ｂｌｅｏｍｙｃｉｎ Ａ２）、ブレオマイシンＢ２（ｂｌｅｏｍｙｃｉｎＢ２）、ペプロマイシン（ｐｅｐｌｏｍｙｃｉｎ）、エピルビシン（ｅｐｉｒｕｂｉｃｉｎ）、ピラルビシン（ｐｉｒａｒｕｂｉｃｉｎ）、ゾルビシン（ｚｏｒｕｂｉｃｉｎ）、ミトキサントロン（ｍｉｔｏｘａｎｔｒｏｎｅ）、ベラパミル（ｖｅｒａｐａｍｉｌ）及びタプシガルギン（ｔｈａｐｓｉｇａｒｇｉｎ）、核酸分解酵素及び細菌や動植物由来の毒素からなる群から選ばれる一つ以上であるが、これに限定されるものではない。
本発明において、前記薬物は、リンカー及びリンカー試薬上の親電子性基と共有結合を形成するために反応できるアミン、チオール、ヒドロキシル、ヒドラジド、オキシム、ヒドラジン、チオセミカルバゾン、ヒドラジンカルボキシレート、及びアリールヒドラジド基から構成された群から選ばれる一つ以上の親核基を含むことができる。
本発明はさらに他の観点において、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を含む二重特異性抗体（Ｂｉｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｎｔｉｂｏｄｙ）に関する。
前記二重特異性抗体は、抗体の２個のアーム（ａｒｍ）のうち、一つのアームは、本発明による抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を含み、他のアームはＭＵＣ１以外の抗原、好ましくは癌関連抗原又は免疫関門タンパク質抗原に特異的な抗体又は免疫エフェクター細胞関連抗原に特異的に結合する抗体又はその抗原結合断片を含む形態を意味する。
本発明による二重抗体に含まれる抗ＭＵＣ１抗体以外の抗体が結合する抗原は、好ましくは癌関連抗原又は免疫関門タンパク質抗原であり、Ｈｅｒ２、ＥＧＦＲ、ＶＥＧＦ、ＶＥＧＦ－Ｒ、ＣＤ－２０、ＭＵＣ１６、ＣＤ３０、ＣＤ３３、ＣＤ５２、ＰＤ－１、ＰＤ－Ｌ１、ＣＴＬＡ４、ＢＴＬＡ４、ＥｐｈＢ２、Ｅ－セレクチン（ｓｅｌｅｃｔｉｎ）、ＥｐＣａｍ、ＣＥＡ、ＰＳＭＡ、ＰＳＡ、ＥＲＢ３、ｃ－ＭＥＴなどから選択でき、免疫エフェクター細胞関連抗原としてはＴＣＲ／ＣＤ３、ＣＤ１６（ＦｃγＲＩＩＩａ）ＣＤ４４、ＣＤ５６、ＣＤ６９、ＣＤ６４（ＦｃγＲＩ）、ＣＤ８９及びＣＤ１１ｂ／ＣＤ１８（ＣＲ３）などを選択できるが、これに限定されるものではない。
本発明はさらに他の観点において、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片、前記抗体－薬物接合体又は前記二重特異性抗体を含むＭＵＣ１関連疾病の予防及び／又は治療用医薬組成物に関する。
前記ＭＵＣ１関連疾病は、ＭＵＣ１の発現又は過発現、ＭＵＣ１の細胞の全表面への発現、及び／又は正常細胞に比べてＭＵＣ１タンパク質の糖化減少と関連した疾病であり、例えば癌であり得る。前記正常細胞は非腫瘍細胞であり得る。これによって、前記ＭＵＣ１関連疾病は好ましくは癌又は腫瘍であるが、これに限定されない。
用語“癌”又は“腫瘍”は典型的に調節されない細胞成長／増殖を特徴とする哺乳動物の生理学的状態を指したり意味する。
本発明の組成物で治療可能な癌又は癌腫は特に制限されず、固形癌及び血液癌を全て含む。このような癌の例には、黒色腫などの皮膚癌、肝癌、肝細胞癌（ｈｅｐａｔｏｃｅｌｌｕｌａｒ ｃａｒｃｉｎｏｍａ）、肝細胞性癌、胃癌、乳癌、肺癌、卵巣癌、気管支癌、鼻咽頭癌、喉頭癌、膵癌、膀胱癌、大腸癌、結腸癌、胆嚢癌、子宮頸癌、脳癌、前立腺癌、骨癌、皮膚癌、甲状腺癌、副甲状腺癌、腎臓癌、食道癌、胆道癌、精巣癌、直膓癌、頭頸部癌、頸椎癌、尿管癌、骨肉腫、神経芽細胞腫、線維肉腫、横紋筋肉腫、星状細胞腫、神経母細胞腫及び神経膠腫からなる群から選ばれるものを挙げることができるが、これに限定されるものではない。
より好ましくは、前記癌はＭＵＣ１タンパク質が発現したことを特徴とし、乳癌、膵癌、前立腺癌、肺癌、甲状腺癌、胃癌、卵巣癌、大腸癌、肝癌、胆嚢癌、腎臓癌、子宮頸癌、又は膀胱癌であり得るが、これに制限されない。前記癌は原発性癌又は転移性癌であり得る。
前記ＭＵＣ１関連疾病は、ＮＡＳＨ（Ｎｏｎ－Ａｌｃｏｈｏｌｉｃ ＳｔｅａｔｏＨｅｐａｔｉｔｉｓ）又はＴＧＦ－β－媒介免疫疾患（ＴＧＦ－β－ｍｅｄｉａｔｅｄ ｉｍｍｕｎｅ ｄｉｓｅａｓｅ）であるが、これに制限されない。
本発明の一実施例において、前記癌の予防及び／又は治療用医薬組成物、方法及び用途において、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片は単独有効成分として提供されるか、抗癌剤などの細胞毒性物質と併用投与されるか、或いは抗癌剤などの細胞毒性物質と接合された接合体（ａｎｔｉｂｏｄｙ－ｄｒｕｇ ｃｏｎｊｕｇａｔｅ；ＡＤＣ）形態で提供され得る。
また、本発明による抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片、及びこれを含む医薬組成物は、従来の治療剤と併用する用途に用いることができる。すなわち、本発明による抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片、及びこれを含む医薬組成物は、既存の抗癌剤などの治療剤と同時に投与されるか、或いは順次に投与される用途に用いることができる。
本発明はさらに他の観点において、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片又は前記抗体－薬物接合体の治療的有効量を、ＭＵＣ１関連疾病の予防及び／又は治療を必要とする患者に投与する段階を含む、ＭＵＣ１関連疾病の予防及び／又は治療方法に関する。前記予防及び／又は治療方法は、前記投与段階前に前記疾病の予防及び／又は治療を必要とする患者を確認する段階をさらに含むことができる。
前記組成物において薬物の局所的伝達のための抗体接合体の使用により、薬物を抗ＭＵＣ１抗体で標的化された抗原を表す細胞に伝達することができる。
前記医薬組成物は、薬学的に許容可能な担体をさらに含むことができる。前記薬学的に許容可能な担体は、薬物の製剤化に通常用いられるもので、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、澱粉、アカシアゴム、リン酸カルシウム、アルジネート、ゼラチン、ケイ酸カルシウム、微結晶性セルロース、ポリビニルピロリドン、セルロース、水、シロップ、メチルセルロース、ヒドロキシ安息香酸メチル、ヒドロキシ安息香酸プロピル、滑石、ステアリン酸マグネシウム、ミネラルオイルなどからなる群から選ばれる１種以上であり得るが、これに限定されるものではない。前記医薬組成物はまた、医薬組成物の製造に通常用いられる希釈剤、賦形剤、潤滑剤、湿潤剤、甘味剤、香味剤、乳化剤、懸濁剤、保存剤などからなる群から選ばれる１種以上をさらに含むことができる。
前記医薬組成物は、経口又は非経口で投与することができる。非経口投与の場合は、静脈内注入、皮下注入、筋肉注入、腹腔注入、内皮投与、鼻内投与、肺内投与、直腸内投与、又は病変部位局所投与などで投与できる。経口投与時、タンパク質又はペプチドは消化されるため、経口用組成物は、活性薬剤をコートするか、或いは胃での分解から保護されるように剤形化することができる。また、前記組成物は、活性物質が標的細胞に移動し得る任意の装置で投与できる。
前記医薬組成物内の抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の含有量又は投与量は、製剤化方法、投与方式、患者の年齢、体重、性別、病的状態、食餌、投与時間、投与間隔、投与経路、排泄速度及び反応感応性のような要因によって様々に処方できる。例えば、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の１日投与量は０．００１～１０００ｍｇ／ｋｇ、具体的に０．０１～１００ｍｇ／ｋｇ、より具体的に０．１～５０ｍｇ／ｋｇ、さらに具体的に０．１～２０ｍｇ／ｋｇ範囲であり得るが、これに制限されない。前記１日投与量は、単位容量の形態で一つの製剤として製剤化されるか、適度に分量して製剤化されるか、或いは多用量容器内に内入させて製造可能である。
前記医薬組成物は、オイル又は水性媒質中の溶液、懸濁液、シロップ剤又は乳化液の形態であるか、エキス剤、散剤、粉末剤、顆粒剤、錠剤又はカプセル剤などの形態で剤形化でき、剤形化のために分散剤又は安定化剤をさらに含むことができる。
前記医薬組成物の投与対象患者は、ヒト、サルなどを含む霊長類、マウス、ラットなどを含む齧歯類などを含む哺乳類であり得る。
本明細書において癌の治療は、癌細胞の増殖阻害、癌細胞死滅、転移抑制などのように癌の症状の悪化を防止したり、緩和又は好転させたり、癌を部分的又は全部消滅させたりする全ての坑癌作用を意味できる。
本発明はさらに他の観点において、癌の予防又は治療のための前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の用途に関する。
本発明はさらに他の観点において、癌の予防又は治療用薬剤の製造のための前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の使用に関する。
前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片は、ＭＵＣ１タンパク質、特に、ＭＵＣ１－Ｃ末端細胞外ドメインに特異的に結合するので、これを用いてＭＵＣ１タンパク質又はＭＵＣ１－Ｃ末端細胞外ドメインを検出又は確認することができる。したがって、本発明はさらに他の観点において、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を含むＭＵＣ１タンパク質、例えばＭＵＣ１－Ｃ末端細胞外ドメインの検出用組成物及び生物試料に前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を処理する段階を含むＭＵＣ１の検出方法に関する。
前記検出方法は、前記処理する段階後に、抗原－抗体反応の有無を確認する段階をさらに含むことができる。前記検出方法において、抗原－抗体反応が探知される場合、前記生物試料にＭＵＣ１、例えばＭＵＣ１－Ｃ末端細胞外ドメインが存在すると決定（判断）できる。したがって、前記検出方法は、前記確認する段階後に、抗原－抗体反応が探知される場合、前記生物試料にＭＵＣ１が存在すると決定する段階をさらに含むことができる。前記生物試料は、哺乳類、例えばヒト（例えば癌患者）から得た（分離された）細胞、組織、体液、それらの培養物などからなる群から選ぶことができる。
ＭＵＣ１タンパク質、例えばＭＵＣ１タンパク質のＣ末端部位（又は、ＭＵＣ１タンパク質のＳＥＡドメイン又はＭＵＣ１－Ｃ末端細胞外ドメイン）の発現は、いろいろな疾病、例えば癌と関連しているので、本発明はさらに他の観点において、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を含むＭＵＣ１タンパク質関連疾病、例えば、癌の検出、又は診断用組成物及び対象から分離された生物試料に前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を処理（投与）する段階を含む、癌の検出又は診断方法、若しくは検出又は診断に情報を提供する方法に関する。
前記検出又は診断方法は、前記処理する段階後に、抗原－抗体反応の有無を確認する段階をさらに含むことができる。前記方法において、抗原－抗体反応が探知される場合、前記生物試料又は前記生物試料が由来した患者に、ＭＵＣ１関連疾病、例えば癌が存在すると決定（判断）することができる。したがって、前記方法は、前記確認する段階後に、抗原－抗体反応が探知される場合、前記生物試料又は前記患者をＭＵＣ１関連疾病患者、例えば癌患者として決定する段階をさらに含むことができる。前記生物試料は、哺乳類、例えばヒト（例えば癌患者）から得た（分離された）細胞、組織、体液、それらの培養物などからなる群から選ばれるものであり得る。
前記抗原－抗体反応の有無を確認する段階は、当業界に公知された様々な方法で行うことができる。例えば、通常の酵素反応、蛍光、発光及び／又は放射線検出によって測定することができ、具体的に、免疫クロマトグラフィー（Ｉｍｍｕｎｏｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）、免疫組織化学染色（Ｉｍｍｕｎｏｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ）、酵素結合免疫吸着分析（ｅｎｚｙｍｅ ｌｉｎｋｅｄ ｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔ ａｓｓａｙ：ＥＬＩＳＡ）、放射線免疫測定法（ｒａｄｉｏｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ：ＲＩＡ）、酵素免疫分析（ｅｎｚｙｍｅ ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ：ＥＩＡ）、蛍光免疫分析（Ｆｌｏｒｅｓｅｎｃｅ ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ：ＦＩＡ）、発光免疫分析（ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙ：ＬＩＡ）、ウエスタンブロット（Ｗｅｓｔｅｒｎ ｂｌｏｔｔｉｎｇ）、マイクロアレイ、免疫沈降分析などからなる群から選ばれる方法によって測定することができるが、これに制限されない。
このとき、前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片は、標識物質をさらに含むことができる。前記標識物質は、放射性同位元素、蛍光物質、クロモーゲン（ｃｈｒｏｍｏｇｅｎ）、染色物質などからなる群から選ばれる１種以上であり得る。前記標識物質は、前記抗体又は抗原結合断片に通常の方法（例えば、共有結合、配位結合、イオン結合などの化学結合）で結合（連結）され得る。前記抗体（又は抗原結合断片）と標識物質との結合は、本発明の属する技術分野によく知られた技術によって行われ得る。
本発明の一実施例において、ＭＵＣ１のＣ末端部位を乳癌細胞株からクローニングし、Ｒｏｓｅｔｔａコンピテント細胞で発現させてＭＵＣ１に対するモノクローナル抗体を製造した。ＭＵＣ１のＣ末端部位をＣｐＧ－ＤＮＡ（例えば、ＭＢ－ＯＤＮ ４５３１（Ｏ））と剤形化してＤＯＰＥ：ＣＨＥＭＳ複合体内にカプセル化し、マウス免疫化に使用した。マウスを［ＭＵＣ１のＣ末端部位］－［ＭＢ－ＯＤＮ ４５３１（Ｏ）］－［ＤＯＰＥ：ＣＨＥＭＳ］複合体で免疫すれば、ＭＵＣ１－特異的モノクローナル抗体の生成が著しく増加することを確認した。また、抗－ｈＭＵＣ１－ＳＥＡモノクローナル抗体は、［ｈＭＵＣ１－ＳＥＡ］－［ＭＢ－ＯＤＮ４５３１（Ｏ）］－［ＤＯＰＥ：ＣＨＥＭＳ］複合体で免疫化されたマウスから得られた脾臓細胞をＳＰ２／０細胞と融合して得ることができる。
したがって、本発明はさらに他の観点において、ＭＵＣ１のＣ末端部位、ＭＵＣ１のＳＥＡドメイン、又はＭＵＣ１のＣ末端細胞外ドメインを含む免疫原性組成物に関する。他の例は、リポソーム内に、（１）ＭＵＣ１のＣ末端部位、ＭＵＣ１のＳＥＡドメイン、又はＭＵＣ１のＣ末端細胞外ドメイン、及び（２）ＣｐＧ－ＤＮＡをカプセル化した複合体、を含む免疫原性組成物を提供する。前記免疫原性組成物は、生きている有機体生体内に注入（接種）時に免疫反応を誘発して抗体を生成させる能力を有する組成物を意味する。
本発明において、前記リポソームは、陽イオン性リポソーム、例えば、ＤＯＰＥ（ｄｉｏｌｅｏｙｌｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｅｔｈａｎｏｌａｍｉｎｅ）及びＣＨＥＭＳ（ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｙｌ ｈｅｍｉｓｕｃｃｉｎａｔｅ）が１：０．５～１：２、より具体的に１：０．６７～１：１．５（ＤＯＰＥ：ＣＨＥＭＳ）のモル比、例えば約１：１のモル比で混合された混合物又はこれから得られたもの（例えば、無溶媒リピッドフィルムなど）であるが、これに制限されない。
本発明において、前記ＣｐＧ－ＤＮＡは、ＣｐＧモチーフを一つ以上、例えば１～３個含む総１０～２０個のヌクレオチドを含むオリゴデオキシヌクレオチド（ＯＤＮ：Ｏｌｉｇｏｄｅｏｘｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）を意味する。本発明の一実施例において、前記ＣｐＧ－ＤＮＡは、‘ＡＧＣＡＧＣＧＴＴＣＧＴＧＴＣＧＧＣＣＴ’（配列番号１１）の核酸配列を含むものであり得るが、これに制限されない。
前記リポソームとオリゴデオキシヌクレオチドは、アジュバントとして働くことができる。アジュバント（Ａｄｊｕｖａｎｔ）は、免疫システムと共に抗原をより容易に認識するように助け、免疫反応を向上させる。合成オリゴデオキシヌクレオチド（ＯＤＮ：Ｏｌｉｇｏｄｅｏｘｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）及び特定塩基配列によってフランクされた非メチル化したＣｐＧジヌクレオチドを含有するバクテリアＤＮＡは、Ｂリンパ球、自然殺細胞、大食細胞、及び樹枝状細胞において重要な免疫調節効果を有する。
陽イオン性リポソーム（例えば、リポフェクトアミン、ホスファチジル－ベータ－オレオイル－パルミトイルエタノールアミン（ＤＯＰＥ）：コレステロールヘミスクシネート（ＣＨＥＭＳ））が抗体生成を増加させ、抗体運搬及びＣＴＬ反応を増加させる。したがって、ＤＯＰＥ：ＣＨＥＭＳ（１：１比率）複合体内にカプセル化されたＣｐＧ－ＤＮＡ（Ｌｉｐｏｐｌｅｘ（Ｏ））は、ヒト及びマウス細胞内で効果的な免疫反応を促進させることができる。
本発明はさらに他の観点において、ＭＵＣ１のＣ末端部位、ＭＵＣ１のＳＥＡドメイン、又はＭＵＣ１のＣ末端細胞外ドメイン又はリポソーム内に（１）ＭＵＣ１のＣ末端部位、ＭＵＣ１のＳＥＡドメイン、又はＭＵＣ１のＣ末端細胞外ドメイン、及び（２）ＣｐＧ－ＤＮＡをカプセル化した複合体を、哺乳類、例えばマウスに接種する段階を含む抗ＭＵＣ１－ＳＥＡモノクローナル抗体の作製方法に関する。該抗体の作製方法は、前記接種する段階後に、前記マウスの血清から抗体を通常の方法で分離及び／又は精製する段階をさらに含むことができる。
本発明はさらに他の観点において、本発明による抗ＭＵＣ１抗体をコードする核酸に関する。本明細書で使われる核酸は、細胞、細胞溶解物（ｌｙｓａｔｅ）中に存在するか、或いは部分的に精製された形態又は実質的に純粋な形態で存在し得る。核酸はアルカリ／ＳＤＳ処理、ＣｓＣｌバンド化（ｂａｎｄｉｎｇ）、カラムクロマトグラフィー、アガロースゲル電気泳動及び当該技術分野によく知られたその他を含む標準技術によって他の細胞成分又はその他汚染物質、例えば他の細胞の核酸又はタンパク質から精製して出て場合に“単離”されたり“実質的に純粋になった”ものである。本発明の核酸は、例えばＤＮＡ又はＲＮＡでよく、イントロン配列を含んでも含まなくてもよい。
本発明において、前記抗ＭＵＣ１抗体をコードする核酸は、配列番号３４～配列番号４５からなる群から選ばれるいずれか一つ以上の配列を含むことを特徴とし得る。具体的に、本発明による抗体の重鎖をコードするポリヌクレオチド配列は配列番号３４～３９、及び／又は本発明による抗体の軽鎖をコードするポリヌクレオチド配列は配列番号４０～４５である。
本発明はさらに他の観点において、前記核酸を含む組換え発現ベクターに関する。本発明による抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の発現のために、部分的又は全長の軽鎖及び重鎖をコードするＤＮＡを標準分子生物学技術（例えば、ＰＣＲ増幅又は目的抗体を発現するハイブリドーマを用いたｃＤＮＡクローニング）により得ることができ、ＤＮＡが転写及び翻訳制御配列に“作動するように結合”して発現ベクター内に挿入され得る。
本明細書で使われる用語“作動するように結合”は、ベクター内の転写及び翻訳制御配列が抗体遺伝子の転写及び翻訳を調節する意図した機能をするように抗体をコードする遺伝子がベクター内にライゲーションされることを意味できる。発現ベクター及び発現制御配列は、用いられる発現用宿主細胞と相溶性を持つように選択される。抗体の軽鎖遺伝子及び抗体の重鎖遺伝子は、別個のベクター内に挿入されるか、或いは両遺伝子とも同じ発現ベクター内に挿入される。抗体は、標準方法（例えば、抗体遺伝子断片及びベクター上の相補性制限酵素部位のライゲーション、又は制限酵素部位が全く存在しない場合に、鈍端（ｂｌｕｎｔ ｅｎｄ）ライゲーション）で発現ベクター内に挿入される。場合によって、前記組換え発現ベクターは、宿主細胞からの抗体鎖の分泌を容易にする信号ペプチドをコードすることができる。抗体鎖遺伝子は、信号ペプチドがフレームに対応して抗体鎖遺伝子のアミノ末端に結合するようにベクター内にクローニングされ得る。信号ペプチドは、免疫グロブリン信号ペプチド又は異種性信号ペプチド（すなわち、免疫グロブリン以外のタンパク質由来の信号ペプチド）であり得る。また、前記組換え発現ベクターは、宿主細胞において抗体鎖遺伝子の発現を制御する調節配列を有する。“調節配列”は、抗体鎖遺伝子の転写又は翻訳を制御するプロモーター、エンハンサー及びその他発現制御要素（例えば、ポリアデニル化信号）を含むことができる。通常の技術者は、形質転換させる宿主細胞の選択、タンパク質の発現レベルなどのような因子にしたがって異なる調節配列を選択することにより、発現ベクターのデザインが変わり得ることが認識できる。
本発明はさらに他の観点において、前記核酸又は前記ベクターを含む宿主細胞に関する。本発明による宿主細胞は、動物細胞、植物細胞、酵母、大腸菌及び昆虫細胞からなる群から選ばれることが好ましいが、これに限定されない。
具体的には、本発明による宿主細胞は、大腸菌、バチルス・サブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ）、ストレプトマイセス属（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ ｓｐ．）、シュードモナス属（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｐ．）、プロテウス・ミラビリス（Ｐｒｏｔｅｕｓ ｍｉｒａｂｉｌｉｓ）又はスタフィロコカス属（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ｓｐ．）のような原核細胞であり得る。また、アスペルギルス属（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｐ．）のような真菌、ピチアパストリス（Ｐｉｃｈｉａ ｐａｓｔｏｒｉｓ）、サッカロマイセス・セレビシアエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、シゾサッカロミケス属（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｓｐ．）及びノイロスポラ・クラサ（Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ ｃｒａｓｓａ）のような酵母、その他下等真核細胞、及び昆虫からの細胞のような高等真核生物の細胞のような真核細胞であり得る。
また、植物や哺乳動物から由来してもよい。好ましくは、サル腎臓細胞７（ＣＯＳ７：ｍｏｎｋｅｙ ｋｉｄｎｅｙ ｃｅｌｌｓ）細胞、ＮＳＯ細胞、ＳＰ２／０、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ：Ｃｈｉｎｅｓｅ ｈａｍｓｔｅｒ ｏｖａｒｙ）細胞、Ｗ１３８、べービハムスター腎臓（ＢＨＫ：ｂａｂｙ ｈａｍｓｔｅｒ ｋｉｄｎｅｙ）細胞、ＭＤＣＫ、骨髄腫細胞株、ＨｕＴ７８細胞及びＨＥＫ２９３細胞などを用いることができるが、これに限定されない。特に好ましくは、ＣＨＯ細胞を用いることができる。
前記核酸又は前記ベクターは宿主細胞に形質注入又はトランスフェクション（ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ）される。“形質注入”又は“トランスフェクション”させるために原核又は真核宿主細胞内に外因性核酸（ＤＮＡ又はＲＮＡ）を導入することに通常用いられる種々の技術、例えば電気泳動法、リン酸カルシウム沈殿法、ＤＥＡＥ－デキストラントランスフェクション又はリポフェクション（ｌｉｐｏｆｅｃｔｉｏｎ）などを用いることができる。本発明による抗グリピカン３抗体を発現させるために様々な発現宿主／ベクター組合せを用いることができる。真核宿主に適した発現ベクターには、これらに限定されるものではないが、ＳＶ４０、ウシ乳頭腫ウイルス、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス（ａｄｅｎｏ－ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｖｉｒｕｓ）、サイトメガロウイルス及びレトロウイルスから由来した発現調節配列が含まれる。細菌宿主に使用可能な発現ベクターには、ｐＥＴ、ｐＲＳＥＴ、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ、ｐＧＥＸ２Ｔ、ｐＵＣベクター、ｃｏｌ Ｅ１、ｐＣＲ１、ｐＢＲ３２２、ｐＭＢ９及びそれらの誘導体のように、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）から得られる細菌性プラスミド、ＲＰ４のようにより広い宿主範囲を有するプラスミド、λｇｔ１０とλｇｔ１１、ＮＭ９８９といった非常に様々なファージラムダ（ｐｈａｇｅ ｌａｍｂｄａ）誘導体のようなファージＤＮＡ、及びＭ１３とフィラメント性一本鎖のＤＮＡファージのようなその他ＤＮＡファージが含まれる。酵母細胞に有用な発現ベクターは２μプラスミド及びその誘導体である。昆虫細胞に有用なベクターはｐＶＬ９４１である。
本発明はさらに他の観点において、宿主細胞を培養して本発明による抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を発現させる段階を含む、本発明による抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の作製方法に関する。
前記抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を発現させ得る組換え発現ベクターが哺乳類宿主細胞内に導入される場合、抗体は、宿主細胞で抗体が発現するに十分な期間、又はより好ましくは宿主細胞が培養される培養培地内に抗体を分泌させるに十分な期間にわたって宿主細胞を培養することによって製造することができる。
場合によって、発現した抗体は宿主細胞から分離して均一に精製することができる。前記抗体の分離又は精製は、通常のタンパク質で用いられている分離、精製方法、例えばクロマトグラフィーによって行うことができる。前記クロマトグラフィーは、例えば、プロテインＡカラム、プロテインＧカラムを含む親和性クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー又は疎水性クロマトグラフィーを含むことができる。前記クロマトグラフィーに加えて、濾過、超濾過、塩析、透析などを組み合わせることによって抗体を分離、精製することができる。
以下、実施例を挙げて本発明をより詳細に説明する。これらの実施例は単に本発明を例示するためのものであり、本発明の範囲がこれらの実施例によって制限されるものとして解釈されないことは、当業界で通常の知識を有する者にとって明らかであろう。
実施例１：組換えｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質の作製
ＭＣＦ７細胞からＭＵＣ１－Ｃ末端（以下、“ｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質”と称する；Ｐ１５９４１の９６１番目から１１５２番目までの１９２個アミノ酸を含むタンパク質、この中で１０３４－１１５２ａａはＭＵＣ－ＳＥＡドメインである。）を暗号化するヒトｃＤＮＡを得、次のプライマーセットを用いてＲＴ－ＰＣＲして増幅した。
センスプライマー：ｈＭＵＣ１Ｃ－Ｎｃｏ Ｉ－Ｓ３５’－ＣＣ ＡＴＧ ＧＣＣ ＴＣＡ ＧＧＣ ＴＣＴ ＧＣＡ ＴＣ－３’（配列番号１２）；
アンチセンスプライマー：ｈＭＵＣ１Ｃ－Ｘｈｏ Ｉ－ＡＳ４５’－ＣＴＣ ＧＡＧ ＡＧＡ ＣＴＧ ＧＧＣ ＡＧＡ ＧＡＡ ＡＧＧ ＡＡＡ Ｔ－３’（配列番号１３）。
得られたｈＭＵＣ１－Ｃ末端タンパク質暗号化配列はＤＮＡシーケンシングで確認し、ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ Ｎｏ．Ｊ０５５８２．１の２９５４番目から３５２９までの５７６個のヌクレオチドを含む核酸配列と同じ配列を有することを確認した（配列番号２６）。
実施例２：組換えｈＭＵＣ１－Ｃ（ｒｈＭＵＣ１－Ｃ）タンパク質の発現及び精製
前記増幅されたｃＤＮＡ断片を、Ｃ末端Ｈｉｓ－ｔａｇを含む発現ベクターｐＥＴ－２２ｂ（Ｎｏｖａｇｅｎ，Ｄａｒｍｓｔａｄｔ，Ｇｅｒｍａｎｙ）にクローニングした。前記得られたプラスミドをＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ ＲｏｓｅｔｔａＴＭ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｃａｒｌｓｂａｄ，ＣＡ）受容細胞（ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ ｃｅｌｌｓ）に形質転換させ、１ｍＭイソプロピル－Ｄ－１－チオガラクトピラノシド（ｉｓｏｐｒｏｐｙｌ－Ｄ－１－ｔｈｉｏｇａｌａｃｔｏｐｙｒａｎｏｓｉｄｅ）（ＩＰＴＧ，Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ，Ｓａｉｎｔ Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ）を用いて３７℃で８時間誘導させた。前記得られた細胞を氷上の溶解バッファー（５０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、１００ｍＭ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＥＤＴＡ、０．５％ Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ１００、１ｇ／ｍｌ ｌｙｓｏｚｙｍｅ、ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ ｃｏｃｋｔａｉｌ）でソニケーションによって溶解させた。遠心分離後、封入体（ｉｎｃｌｕｓｉｏｎ ｂｏｄｙ）分画をバッファーＢ（１００ｍＭ ＮａＨ２ＰＯ４、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、８Ｍウレア、ｐＨ８．０）と混合し、Ｎｉ－ＮＴＡアガロ－ス（Ｑｉａｇｅｎ，Ｖａｌｅｎｃｉａ，ＣＡ）システムを用いて精製した。該得られた混合物をＮｉ－ＮＴＡカラム上にロードし、洗浄バッファーＣ（１００ｍＭ ＮａＨ２ＰＯ４、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、８Ｍウレア、ｐＨ６．３）で洗浄した。結合したタンパク質を溶出（ｅｌｕｔｉｏｎ）バッファー（１００ｍＭ ＮａＨ２ＰＯ４、１０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、８Ｍウレア、ｐＨ４．５）で溶出させ、ＳＤＳ－ＰＡＧＥ及びウエスタンブロットで分析した。ウェスタンブロットは抗－Ｈｉｓ－ｔａｇ抗体（Ｓａｎｔａ Ｃｒｕｚ）を用いて行った。
実施例３：Ｌｉｐｏｐｌｅｘ（Ｏ）複合体の製造
ＭＢ－ＯＤＮ４５３１は３個のＣｐＧモチーフ（下線で表示）を含む２０個の塩基で構成されている（ＡＧＣＡＧＣＧＴＴＣＧＴＧＴＣＧＧＣＣＴ：配列番号１１）。前記ＣｐＧ ＯＤＮ（ｏｌｉｇｏｄｅｏｘｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）（以下、“ＣｐＧ－ＤＮＡ４５３１（Ｏ）”と称する。）は、Ｓａｍｃｈｕｌｌｙ Ｐｈａｒｍ（韓国、ソウル）及びＧｅｎｏＴｅｃｈ（韓国、大田）から購入した。ホスファチジル－ベータ－オレオイル－ガンマ－マルミトイルエタノールアミン（ＤＯＰＥ）及びコレステロールヘミスクシネート（ＣＨＥＭＳ）をエタノールで１：１モル比で混合した後、窒素ガスで蒸発させて無溶媒リピッドフィルム（ｓｏｌｖｅｎｔ－ｆｒｅｅ ｌｉｐｉｄ ｆｉｌｍ）を製造した。無溶媒リピッドフィルムを、同一体積の水溶性ＣｐＧ－ＤＮＡ４５３１（Ｏ）５０μｇ及びｒｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質（実施例２）５０μｇを含む混合物に再懸濁し、室温で３０分間激しく撹拌し、ＤＯＰＥ及びＣＨＥＭＳ複合体内に共同カプセル化（ｃｏｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄ）されたＣｐＧ－ＤＮＡ４５３１（Ｏ）及びｒｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質を製造した。“Ｌｉｐｏｐｌｅｘ（Ｏ）複合体”は、ＣｐＧ－ＤＮＡ４５３１（Ｏ）がＤＯＰＥ及びＣＨＥＭＳ複合体内にカプセル化されたものを指す。ｐＨを７．０にした後、ｒｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質及びＬｉｐｏｐｌｅｘ（Ｏ）複合体を超音波発生装置で３０秒間超音波処理し、溶液を０．２２μｇフィルターを用いて濾過した後に液体窒素で３回凍結－融解し、下記試験に使用した。
実施例４：動物の準備
４週齢雌ＢＡＬＢ／ｃマウス（ＯｒｉｅｎｔＢｉｏ，Ｉｎｃ．（韓国、ソウル））及びＢＡＬＢ／ｃＡｎＮＣｒｉ－ｎｕ／ｎｕマウス（ｆｏｕｒ－ｗｅｅｋ－ｏｌｄ）をＮａｒａ Ｂｉｏｔｅｃｈ，Ｉｎｃ（Ｓｅｏｕｌ，Ｋｏｒｅａ）から購入した。該マウスを、特定病源体のない条件の無菌条件で２０～２５℃及び３２～３７％湿度下に保存した。全ての動物試験過程はハンリム大学校実験動物運営委員会（Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ａｎｉｍａｌ Ｃａｒｅ ａｎｄ Ｕｓｅ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ）の承認を受けて“Ｇｕｉｄｅ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｃａｒｅ ａｎｄ Ｕｓｅ ｏｆ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ａｎｉｍａｌｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｙ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ＆ Ｑｕａｒａｎｔｉｎｅ Ｓｅｒｖｉｃｅ ｏｆ Ｋｏｒｅａ”にしたがって行った。前記マウスをイソフルラン吸入によって犠牲させ、苦痛を最小化するためのあらゆる努力を払った。
実施例５：マウスの免疫化
５０μｇのｒｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質及び５０μｇのＣｐＧ－ＤＮＡ４５３１がホスファチジル－ベータ－オレオイル－ガンマ－マルミトイルエタノールアミン：コレステロールヘミスクシネート（ＤＯＰＥ：ＣＨＥＭＳ複合体）に共同カプセル化された複合体を含むリポソーム複合体を、ＢＡＬＢ／ｃマウスに１０日間隔で４回腹腔内注入して免疫化した。
実施例６：抗原－特異的Ｉｇ ＥＬＩＳＡ
ｒｈＭＵＣ１－Ｃ特異的ＩｇＧ総量をＥＬＩＳＡによって測定した。９６－ウェル免疫プレートを１０μｇ／ｍｌのｒｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質（実施例２）でコートし、ＰＢＳ－Ｔ（０．１％（ｖ／ｖ）Ｔｗｅｅｎ－２０を含むＰＢＳ）内の１％（ｗ／ｖ）ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）で遮断させた。前記実施例５で免疫化されたマウス血清、ハイブリドーマ細胞培養上澄み液、又は精製された抗体をＰＢＳ－Ｔで希釈し、室温で２時間培養した。プレートをＰＢＳ－Ｔで３回洗浄し、ヤギ抗－マウスＩｇＧ ＨＲＰ－接合された２次抗体と共に１時間培養した。ＴＭＢ基質溶液Ａ及びＢ（１：１比率）（Ｋｉｒｋｅｇａａｒｄ ａｎｄ Ｐｅｒｒｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、米国メリーランド州ゲイサーズバーグ）を用いて展開させ、Ｓｐｅｃｔｒａ Ｍａｘ２５０マイクロプレートリーダー（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ，Ｓｕｎｎｙｖａｌｅ，ＵＳＡ）を用いて４５０ｎｍにおける吸光度を測定し、比色分析（ｃｏｌｏｒｉｍｅｔｒｉｃ ａｓｓａｙ）を行った。
実施例７：抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の作製及び精製
前記実施例５でｒｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質で免疫化されたマウスの脾臓細胞を、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ，Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）を用いてＳＰ２／０骨髄腫細胞（ＡＴＣＣ）と融合させた。融合した細胞を培養し、ＨＡＴ（ｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎｅ－ａｍｉｎｏｐｔｅｒｉｎ－ｔｈｙｍｉｄｉｎｅ）（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）培地として選択した。前記選択されたハイブリドーマ細胞の培養上澄み液をＥＬＩＳＡによってｒｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質に対する結合を試験し、結合陽性を示す、すなわちｒｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質特異的な抗体を生成するハイブリドーマ細胞をスクリーニングした。ハイブリドーマクローンは標準ハイブリドーマ技術によって選別された（Ｙｏｋｏｙａｍａ ｅｔ ａｌ．２００６）。該得られたハイブリドーマクローン（ＫＣＬＲＦ－ＢＰ－００３９５；以下、前記ハイブリドーマ細胞及びこれから産生される抗体を“ｈＭＵＣ１－１Ｈ７”と命名する。）をＨＴ（ｈｙｐｏｘａｎｔｈｉｎｅ－ｔｈｙｍｉｄｉｎｅ）培地で培養した。ＥＬＩＳＡ－陽性ハイブリドーマ細胞集団をサブクローニングした。モノクローナル抗体産生のために、初期及び１０日後、マウスにハイブリドーマ細胞（ｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローン）をｉ．ｐ．接種した。１０日後に腹腔液を採取し、３，０００ｒｐｍで３０分間遠心分離した。上澄み液をＰｒｏｔｅｉｎ－Ａクロマトグラフィー（Ｒｅｐｌｉｇｅｎ，Ｗａｌｔｈａｍ，ＭＡ）を用いてｒｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質に結合する抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体を精製した。
実施例８：抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体のＩｇＧアイソタイプ（Ｉｓｏｔｙｐｅ）確認
前記実施例７で得られた抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体のＩｇＧアイソタイプを測定するために、９６－ウェル免疫プレート（Ｎａｌｇｅｎｅ Ｎｕｎｃ Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ、米国ペンフィールド）を１μｇ／ｍｌのｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質でコートし、１％ ＢＳＡを含有するＰＢＳ中の０．０５％Ｔｗｅｅｎ－２０（ＰＢＳＴ）で遮断した。抗－ｈＭＵＣ１－Ｃモノクローナル抗体を各プレートの上部列に添加し、一連のＰＢＳＴ内１：４希釈は次の列に位置させた。プレートを室温で２時間培養し、ＰＢＳＴで洗浄した。次に、ホースラディッシュペルオキシダーゼ（ＨＲＰ：Ｈｏｒｓｅｒａｄｉｓｈ Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ）（ＢＤ Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ）と結合した抗－マウス総ＩｇＧ、ＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａ、ＩｇＧ３ｂ、ＩｇＧ３抗体を各ウェルに添加し（１：５００希釈）、室温で１時間培養した。ＴＭＢ基質溶液Ａ及びＢ（１：１比率）（Ｋｉｒｋｅｇａａｒｄ ａｎｄ Ｐｅｒｒｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ、米国メリーランド州ゲイサーズバーグ）を用いて全量分析し、Ｓｐｅｃｔｒａ Ｍａｘ２５０マイクロプレートリーダ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ、米国カリフォルニア州サニーデール）を用いて４５０ｎｍ吸光度で測定した。
実施例９：抗－ｈＭＵＣ１－ＳＥＡモノクローナル抗体の反応性試験
実施例９－１：細胞培養
ヒト乳癌細胞株（ＭＣＦ－７，ＭＤＡ－ＭＢ－２３１）及び膵癌細胞株（Ｃａｐａｎ－２，ＣＦＰＡＣ－１）はＡｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ，Ｍａｎａｓｓａｓ，ＶＡ）から購入し、ヒト乳癌細胞株（Ｔ４７Ｄ，ＺＲ７５－１）及び膵癌細胞株Ｃａｐａｎ－１，ＰＡＮＣ－１）はＫｏｒｅａｎ Ｃｅｌｌ Ｌｉｎｅ Ｂａｎｋ（ＫＣＬＢ，Ｓｅｏｕｌ，Ｋｏｒｅａ）から購入した。
ＭＣＦ－７細胞は、０．０１ｍｇ／ｍｌのヒト組換えインスリンが補充されたイーグル最小必須培地（Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｉｎｉｍｕｍ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ）で培養し；ＭＤＡ－ＭＢ－２３１細胞はＬｅｉｂｏｖｉｔｚ’ｓ Ｌ－１５培地（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で培養し；Ｔ４７Ｄ、ＺＲ７５－１、及びＣａｐａｎ－１細胞はＲＰＭＩ－１６４０培地（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で培養した。Ｃａｐａｎ－２細胞はＭｃＭｃｏｙ’ｓ ５Ａ培地（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で、ＣＦＰＡＣ－１細胞はイスコフ改変ダルベッコ培地（Ｉｓｃｏｖｅ’ｓ ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ ｍｅｄｉｕｍ；ＩＭＤＭ）（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で、ＰＡＮＣ－１細胞はダルベッコ改変イーグル培地（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ ｍｅｄｉｕｍ；ＤＭＥＭ）（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）でそれぞれ培養した。いずれの培地も１０％（ｗ／ｖ）ウシ胎児血清（ＦＢＳ）（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）、１００Ｕ／ｍｌペニシリン、及び１００ｍｇ／ｍｌストレプトマイシンを補充して使用した。ＭＣＦ－７、Ｔ４７Ｄ、ＺＲ７５－１Ｃａｐａｎ－１、Ｃａｐａｎ－２、ＣＦＰＡＣ－１、及びＰＡＮＣ－１細胞は３７℃及び５％ＣＯ２条件で培養し、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１細胞は３７℃の無ＣＯ２条件で培養した。
実施例９－２：試験のための抗体の準備
ウエスタンブロット及び免疫沈降によって細胞からＭＵＣ１を検出するために、商業的に入手可能な抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体及び抗ＭＵＣ１－ＣＴ２抗体をＡｂｃａｍ（Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＵＫ）から入手した。抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体及び抗ＭＵＣ１－ＣＴ２抗体はＭＵＣ１の細胞質尾部領域を認識する。抗β－アクチン抗体はＳｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈから購入した。
実施例９－３：ウエスタンブロット分析
前記細胞を溶解緩衝液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ８．０、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＥＤＴＡ、１００ｍＭ ＮａＦ、２ｍＭ Ｎａ３Ｖｏ４、プロテアーゼ阻害剤カクテル、１％（ｗ／ｖ）ＮＰ－４０）で溶解させ、４℃で１４，０００ｒｐｍで２０分間遠心分離した。４～１２％Ｂｉｓ－Ｔｒｉｓ勾配ゲル（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）で同じ量のタンパク質を分離し、室温で１時間ＰＢＳ－Ｔ中の３％（ｗ／ｖ）ＢＳＡで遮断されたニトロセルロースメンブレインに移した。このニトロセルロースメンブレインを４℃で一晩、抗ｈＭＵＣ１抗体（ｈＭＵＣ１－１Ｈ７；実施例７）、抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体（Ａｂａｃａｍ，ＥＰＲ１０２３）、抗ＭＵＣ１－ＣＴ２抗体（Ａｂｃａｍ，ａｂ８０９５２）、又は抗β－アクチン抗体（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）と恒温培養した。免疫反応性タンパク質は、ホースラディッシュペルオキシダーゼが結合している２次抗体と向上した化学発光試薬（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて測定した。
実施例９－４：免疫沈降分析
細胞溶解緩衝液（２０ｍＭ Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ８．０、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＥＤＴＡ、１００ｍＭ ＮａＦ、２ｍＭ Ｎａ３Ｖｏ４、プロテアーゼ阻害剤カクテル、１％（ｗ／ｖ）ＮＰ－４０）を抗ｈＭＵＣ１抗体と４℃で一晩恒温培養した。タンパク質Ａビーズを混合物に添加し、４℃で１時間培養した。遠心分離によって収集された免疫複合体を洗浄し、ウエスタンブロットで分析した。メンブレインを抗ｈＭＵＣ１抗体（ｈＭＵＣ１－１Ｈ７）、抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体（Ａｂａｃａｍ，ＥＰＲ１０２３）、抗ＭＵＣ１－ＣＴ２抗体（Ａｂｃａｍ，ａｂ８０９５２）、又は抗β－アクチン抗体（Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）抗体と培養した。
実施例９－５：脱グリコシル化分析（Ｄｅｇｌｙｃｏｓｙｌａｔｉｏｎ ａｓｓａｙ）
Ｔ４７Ｄ細胞の細胞溶解物を溶解緩衝液（０．５％（ｗ／ｖ）ＳＤＳ、１％（ｗ／ｖ）ベータ－メルカプトエタノール）で抽出し、１００℃で１０分間沸かした。その後、試料を３７℃で２時間ＰＮＧａｓｅ Ｆ（Ｅｌｐｉｓ－Ｂｉｏｔｅｃｈ，Ｄａｅｊｅｏｎ，Ｋｏｒｅａ）と共に培養し、１００℃で１０分間沸かした。得られた試料を溶解緩衝液で希釈し、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体で免疫沈降した。生成された免疫複合体を抗ＭＵＣ－ＣＴ抗体又は抗ＭＵＣ１－ＣＴ２抗体でウエスタンブロットして分析した。
実施例９－６：共焦点顕微鏡分析（Ｃｏｎｆｏｃａｌ ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ）
細胞を１２－ウェル培養板のポリ－Ｌ－リシンでコートされたガラスカバースリップ上で培養した。細胞表面染色のために、細胞を４％（ｗ／ｖ）パラホルムアルデヒドで固定させ、３％（ｗ／ｖ）ＢＳＡで遮断させ、氷上で２時間抗ｈＭＵＣ１抗体で染色した。細胞内部染色のために、細胞を４％（ｗ／ｖ）パラホルムアルデヒドで固定させ、０．１％（ｗ／ｖ）Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００で透過性化させ、３％（ｗ／ｖ）ＢＳＡで遮断させ、室温で２時間抗ｈＭＵＣ１抗体で染色させた。ＰＢＳ－Ｔで洗浄した後、得られた細胞試料をＡｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ４８８接合２次抗体（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ，Ｅｕｇｅｎｅ，ＯＲ）と共に１時間培養した。細胞核はＨｏｅｃｈｓｔ ３３２５８で染色した。全細胞試料を共焦点レーザー走査顕微鏡システム（ＣＬＳＭ）（ＬＳＭ７１０、Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ，Ｊｅｎａ，Ｇｅｒｍａｎｙ）に装着して観察した。
実施例９－７：細胞内在化分析（Ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ ａｓｓａｙ）
抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体をＤｙＬｉｇｈｔ４８８で製造者の指示（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）にしたがって標識した。乳癌細胞及び膵癌細胞をＤｙＬｉｇｈｔ４８８標識抗ｈＭＵＣ１抗体で処理し、３７℃で指示時間培養した。抗体が内在化された細胞から発生する蛍光信号はＣＬＳＭ（ＬＳＭ７１０，Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ）で検出した。
実施例１０：抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の可変部位のクローニング
抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体（ｈＭＵＣ１－１Ｈ７；実施例７）をマウスモノクローナル抗体アイソタイプタイピングキット（Ｄｉｐｓｔｉｃｋ ｆｏｒｍａｔ，Ｂｉｂｃｏ ＢＲＬ又はＲｏｃｈｅ，Ｍａｎｎｈｅｉｍ，Ｇｅｒｍａｎｙ）を用いて培養した。ＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いて前記ハイブリドーマ細胞からｔｏｔａｌ ＲＮＡを抽出してｃＤＮＡを生成した。ｈＭＵＣ１－１Ｈ７から生成された抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の重鎖可変部位及び軽鎖可変部位（ＶＨ及びＶＬ）をクローニングするために、前記生成されたｃＤＮＡを下記プライマーセットを有するベントポリメラーゼ（Ｖｅｎｔ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ；ＮＥＢ）を用いて増幅した。
重鎖用プライマー：ＩＧＧ１（５’－ＧＧＡ ＡＧＡ ＴＣＴ ＡＴＡ ＧＡＣ ＡＧＡ ＴＧＧ ＧＧＧ ＴＧＴ ＣＧＴ ＴＴＴ ＧＧＣ－３’；配列番号１４）及び５’ＭＨ２（５’－ＣＴＴ ＣＣＧ ＧＡＡ ＴＴＣ ＳＡＲ ＧＴＮ ＭＡＧ ＣＴＧ ＳＡＧ ＳＡＧ ＴＣＷ ＧＧ－３’；配列番号１５）
軽鎖（ｋａｐｐａ ｃｈａｉｎ）用プライマー：３’Ｋｃ（５’－ＧＧＴ ＧＣＡ ＴＧＣ ＧＧＡ ＴＡＣ ＡＧＴ ＴＧＧ ＴＧＣ ＡＧＣ ＡＴＣ－３’；配列番号１６）及び５’Ｍｋ（５’－ＧＧ ＧＡＧ ＣＴＣ ＧＡＹ ＡＴＴ ＧＴＧ ＭＴＳ ＡＣＭ ＣＡＲ ＷＣＴ ＭＣＡ－３’；配列番号１７）。
標準ＰＣＲ反応を２５サイクル行った。得られたＰＣＲ産物をｐＧＥＭ－Ｔイージーベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）に直接ライゲーションした。クローニングされたマウスＩｇ挿入物をＤＮＡシーケンシングで分析した。
実施例１１：抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の抗原結合断片（Ｆａｂ）の発現
抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体（ｈＭＵＣ１－１Ｈ７；実施例７）の軽鎖可変部位及び重鎖可変部位（ＶＨ及びＶＬ）を暗号化する配列を増幅し、それぞれＳｆｉ Ｉ及びＢｓｔＸ Ｉを用いて細菌発現ベクターＦａｂＥでサブクローニングし（Ｊｅｏｎ等、Ｍｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．４４：８２７－８３６（２００７）、Ｋｗｏｎ等、Ｏｎｃｏｌ．Ｒｅｐ．１８：５１３－５１７（２００７））、得られた組換え発現プラスミドをｐＦａｂＥ－ｈＭＵＣ１－１Ｈ７（図８Ａ）と命名した。
この時に用いられたプライマーは、次の通りである。
重鎖可変部位暗号化配列（３９３ｂｐ）増幅用プライマー
Ｆｏｒｗａｒｄ ｐｒｉｍｅｒ：５’－ｇｇｃ ｃｃａ ｇｃｃ ｇｇｃ ｃａｔ ｇｇｃ ｃＳＡ ＲＧＴ ＮＭＡ ＧＣＴ ＧＳＡ ＧＳＡ ＧＴＣ ＷＧＧ－３’（配列番号１８）；
Ｒｅｖｅｒｓｅ ｐｒｉｍｅｒ：５’－ＧＧＣ ＣＧＴ ＧＣＴ ＧＧＣ ＣＣＣ ＧＡＣ ＡＧＡ ＴＧＧ ＧＧＧ ＴＧＴ ＣＧＴ ＴＴＴ ＧＧＣ－３’（配列番号１９）、
軽鎖可変部位暗号化配列（３９６ｂｐ）増幅用プライマー
Ｆｏｒｗａｒｄ ｐｒｉｍｅｒ：５’－ＣＣＡ ＴＴＧ ＣＡＧ ＴＧＧ ＣＡＣ ＴＧＧ ＣＴＧ ＧＴＴ ＴＣＧ ＣＴＡ ＣＣＧ ＴＡＧ ＣＡＣ ＡＧＧ ＣＡＧ ＣＣＧ ＡＹＡ ＴＴＧ ＴＧＭ ＴＳＡ ＣＭＣ ＡＲＷ ＣＴＭ ＣＡ－３’（配列番号２０）；
Ｒｅｖｅｒｓｅ ｐｒｉｍｅｒ：５’－ＣＣＡ ＣＣＧ ＴＡＣ ＴＧＧ ＣＧＧ ＡＴＡ ＣＡＧ ＴＴＧ ＧＴＧ ＣＡＧ ＣＡＴ Ｃ－３’（配列番号２１）。
組換え発現プラスミドｐＦａｂＥ－ｈＭＵＣ１－１Ｈ７を制限分析（ｒｅｓｔｒｉｃｔｉｏｎ ａｎａｌｙｓｉｓ）及びＤＮＡシーケンシングで確認した。ｐＦａｂＥ－ｈＭＵＣ１－１Ｈ７をＴＧ１大腸菌細胞に形質転換させ、組換えタンパク質の発現を最適化し、抗－Ｈｉｓ抗体を用いてウエスタンブロットして確認した。
組換えＦａｂ（ｐＦａｂＥ－ｈＭＵＣ１－１Ｈ７）の大規模の産生及び精製のために、ハイブリドーマｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンの培養液５００ｍｌを０．５ｍＭ ＩＰＴＧで処理し、１８℃で１６時間培養した。この培養物を遠心分離して培養上澄み液を収穫し、Ｎｉ－ＮＴＡ親和性カラム（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ）に入れ、ＶＨ－ＣＨ融合タンパク質におけるＨｉｓタグを用いて適切に折り畳まれ且つ組み立てられたＦａｂタンパク質を分離した。
カラムに結合した組換えＦａｂを１０ｍＭイミダゾール（ｐＨ８．０）で溶出させ、タンパク質溶液を４℃で遠心分離（３，５００ｘｇ）し、ｃｅｎｔｒｉｃｏｎを用いて透析し濃縮させた。
実施例１２：ＭＴＴ分析
５日間抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体（１０μｇ／ｍｌ）で処理された癌細胞の成長は３－（４，５－ジメチルチアゾール－２－イル）－２，５－ジフェニルテトラゾリウムブロミド（ＭＴＴ，Ｓｉｇｍａ－Ａｌｄｒｉｃｈ）溶液を用いて測定した。指示された時間にＭＴＴ溶液を各ウェルに添加し、プレートを３７℃でさらに４時間培養した。培地を除去した後、ホルマザン結晶（ｆｏｒｍａｚａｎ ｃｒｙｓｔａｌｓ）をＤＭＳＯに溶解させた。発色は、６５０ｎｍの基準波長を持つ５９５ｎｍの分光光度計を用いてモニターした。
実施例１３：生体内分布イメージング（Ｂｉｏｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｉｍａｇｉｎｇ ｉｎ ｖｉｖｏ）
５０％（ｗ／ｖ）Ｍａｔｒｉｇｅｌ中の５×１０６Ｃａｐａｎ－２細胞を４週齢の雄ＢＡＬＢ／ｃＡｎＣｒｊ－ｎｕ／ｎｕマウスの背中側の右脇腹に皮下接種した。乳癌細胞株注入のために、１７βエストラジオールペレット（米国、ＦＬ，Ｓａｒａｓｏｔａ，Ｉｎｎｏｖａｔｉｖｅ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａ、ペレット、６０日放出）をマウスに皮下移植した。翌日、５０％（ｗ／ｖ）Ｍａｔｒｉｇｅｌ中の５×１０６細胞（Ｔ４７Ｄ，ＺＲ７５－１）を前記マウスの背中側の右脇腹に皮下接種した。
腫瘍体積が平均約１００ｍｍ３に達すると、前記マウスに正常マウスＩｇＧ－ＤｙＬｉｇｈｔ７５５（５ｍｇ／ｋｇ）又は抗ｈＭＵＣ１抗体－ＤｙＬｉｇｈｔ７５５（５ｍｇ／ｋｇ）を静脈注射した。次に、０時間、２４時間、４８時間で生体内映像システム（ＩＶＩＳ２００，Ｘｅｎｏｇｅｎ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，ＭＡ）を用いて抗体標的イメージをモニターした。生体内で抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の細胞内局所位置化を検出するために、ＤｙＬｉｇｈｔ４８８－標識された抗ｈＭＵＣ１抗体（５ｍｇ／ｋｇ）を静脈内に注射した。２日後、腫瘍組織を採取し、凍結切片を作製した。抗体の内在化はＣＬＳＭ（ＬＳＭ７１０，Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ）で腫瘍切片から検出された。
実施例１４：膵癌マウスモデルの作製
異種移植（ｘｅｎｏｇｒａｆｔ）分析のために、５０％ Ｍａｔｒｉｇｅｌ中の５×１０６Ｃａｐａｎ－２細胞を１６匹のＢＡＬＢ／ｃＡｎＣｒｊ－ｎｕ／ｎｕマウスの背中側の右脇腹に皮下接種した（ｎ＝８）。腫瘍体積が７５ｍｍ３になった時、前記マウスを無作為に２個の処理群に分けた（ｅｉｇｈｔ ｍｉｃｅ／ｇｒｏｕｐ）：ＰＢＳ処理群及び抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体処理群。前記抗体は１０ｍｇ／ｋｇの量で１週に２回静脈内投与した。カリパスを用いて７日間隔で腫瘍径を測定し、次の数式によって腫瘍体積を計算した：（幅２＊長さ）／２。抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体処理して１１週後にマウスを犠牲させ、腫瘍の重さを測定した。
実施例１５：組織アレイ及び免疫組織化学（ｉｍｍｕｎｏｈｉｓｔｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ）
パラフィン埋め込みヒト乳癌組織切片をＩＳＵ ＡＢＸＩＳ（Ｓｅｏｕｌ，Ｋｏｒｅａ）から購入した。該組織切片にキシレンを３０分間処理してパラフィンを除去し、エタノールで再び水和させた後、３％過酸化水素溶液と共に１０分間インキュベートした。クエン酸溶液（ｐＨ６．０）で抗原回復（Ａｎｔｉｇｅｎ ｒｅｔｒｉｅｖａｌ）を行った。前記切片を正常ウマ血清を用いて３０分間ブロッキングし、室温で２時間抗ｈＭＵＣ１抗体（１μｇ／ｓｌｉｄｅ）と共にインキュベートした。この切片を洗浄し、ビオチン化された抗－マウスＩｇＧ抗体（Ｖｅｃｔｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｂｕｒｌｉｎｇａｍｅ，ＣＡ）と共に１時間インキュベートした。その後、洗浄し、ＨＲＰ－ストレプタビジンと共に３０分間インキュベートした。３，３－ｄｉａｍｉｎｏｂｅｎｚｉｄｉｎｅ（ＤＡＢ）（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いて免疫反応性を検出し、ヘマトキシリン（Ｍｕｔｏ Ｐｕｒｅ Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ，Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）で対照染色した。顕微鏡（Ｅｃｌｉｐｓｅ Ｅ－２００，Ｎｉｋｏｎ，ａｎｄ
Ｔｏｋｙｏ，Ｊａｐａｎ）を用いて全てのイメージを試験した。
実施例１６：抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の特性確認
ＰＢＳ（ｃｏｎｔｒｏｌ）又はｒｈＭＵＣ１－ＣとＬｉｐｏｐｌｅｘ（Ｏ）複合体でマウス（ｎ＝４）を免疫化させた後（実施例５参照）、３次免疫接種後、マウス血清を収集し、ＥＬＩＳＡを用いてｒｈＭＵＣ１－Ｃ特異的ＩｇＧ総量を測定して（実施例６参照）、ｒｈＭＵＣ１－Ｃに対する抗体形成を確認した。その結果を図１Ａに示した。図１ＡでｃｏｎｔｒｏｌはＰＢＳ接種群であり、ｒｈＭＵＣ１－Ｃ－１、－２、－３、及び－４はマウスの各個体を意味する。図１Ａに見られるように、ｒｈＭＵＣ１－Ｃ特異的ＩｇＧが有意に誘導されたことが確認できる。
次に、前記免疫化されたマウスから分離されたハイブリドーマ細胞を実施例７によってスクリーニングした結果を、図１Ｂ及び図１Ｃに示した。図１ＢはＨＡＴ培地を用いたスクリーニング結果であり、図１ＣはＨＴ培地を用いたスクリーニング結果である。図１Ｂ及び図１Ｃで、＃は、９６－ウェルプレートの個数であり、Ａ～Ｈは、プレートの横区画を命名したものである。図１Ｂ及び図１Ｃの結果から、ｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンをｒｈＭＵＣ１－Ｃ特異的モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマとして選定した。
前記選ばれたハイブリドーマｈＭＵＣ１－１Ｈ７細胞を２０１７年３月８日付に韓国細胞株研究財団（ＫＣＬＲＦ）（大韓民国ソウル、ゾンロ－ク、ヨンコン－ドン）に寄託し、受託番号ＫＣＬＲＦ－ＢＰ－００３９５を受けた。
次に、前記分離されたハイブリドーマｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンから抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体を精製し、ＳＤＳ－ＰＡＧＥ及びＣｏｏｍｍａｓｓｉｅ染色を用いて精製された抗体を分析した。図２Ａは、ハイブリドーマｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンをマウスの腹腔に注射した後、腹水を回収し、ＥＬＩＳＡによってｒｈＭＵＣ１－Ｃ特異的抗体の存在を分析した結果であり、ｃｏｎｔｒｏｌ ｓｅｒｕｍはＰＢＳ接種群の結果を意味する。その結果、ｈＭＵＣ１－１Ｈ７クローンが注入されたマウスの腹水にｒｈＭＵＣ１－Ｃ特異的抗体が存在することを確認し、これを分離、精製した。前記分離、精製された抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体をＳＤＳ－ＰＡＧＥ及びＣｏｏｍｍａｓｓｉｅ染色によって分析し、その結果を図２Ｂに示した。図２Ｂで、ＨＣは重鎖、ＬＣは軽鎖、をそれぞれ表す。
いくつかのＩｇＧアイソタイプに対するＥＬＩＳＡを行って、前記得られた抗ＭＵＣ１抗体のアイソタイプを確認し（実施例８参照）、その結果を図２Ｃに示した。図２Ｃから、前記精製された抗ＭＵＣ１抗体はＩｇＧ１タイプであることを確認した。
実施例１７：乳癌細胞及び膵癌細胞における抗ＭＵＣ１抗体特異性試験
前記得られた抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体が乳癌細胞でＭＵＣ１タンパク質（正常細胞でＭＵＣ１タンパク質がＭＵＣ１－ＮサブユニットドメインとＭＵＣ１－Ｃサブユニットドメインの二量体で構成されており、高グリコシル化されているのと違い、癌細胞株では主にＭＵＣ１－Ｃサブユニットドメインが存在し、低グリコシル化されている。）を認識するかどうかを評価するために、乳癌細胞（ＭＣＦ－７、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１）の細胞溶解物をＳＤＳ－ＰＡＧＥによって分離し、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体及び抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体を用いてウエスタンブロットを行った（実施例９．４参照）。この得られた結果を、図３Ａに示した。その結果、抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体はＭＣＦ－７、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１からＭＵＣ１タンパク質を検出したが、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１からは検出できなかった。反面、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体は全ての細胞試料でＭＵＣ１タンパク質を認識できなかった。ＭＤＡ－ＭＢ－２３１細胞からＭＵＣ－１タンパク質が検出されなかったため、この細胞株を全ての試験で陰性対照群として用いた。
抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体が内在（ｅｎｄｏｇｅｎｏｕｓ）ＭＵＣ１タンパク質を固有の状態で認知できるかどうか調べるために、ＭＣＦ－７、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１細胞の細胞溶解物をマウス正常ＩｇＧ又は抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体で免疫沈降させ、抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体を用いて免疫ブロットして（実施例９．５参照）、その結果を図３Ｂに示した。図３Ｂに見られるように、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体がＭＣＦ－７、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１細胞において自然状態のＭＵＣ１タンパク質を効率的に免疫沈降させることが分かる。
上述した図３Ａの結果は、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体がウエスタンブロットで使用された変性（ｄｅｎａｔｕｒｅ）ＭＵＣ１タンパク質は認識できないことを示すのに対し、図３Ｂの結果は、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体が免疫沈降によって癌において固有の形態のＭＵＣ１タンパク質を認識できることを示し、これは、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体がＭＵＣ１タンパク質固有の３次構造を認識することを立証するといえる。
ＭＵＣ１の細胞外ドメインは細胞表面から２００～５００ｎｍまで稠密に糖化されている。したがって、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体が脱グリコシル化されたタンパク質コアを認識できるか否かを調べた（実施例９．６参照）。Ｔ４７Ｄ細胞溶解物をＰＮＧａｓｅ Ｆで処理し、抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体、抗ＭＵＣ１－ＣＴ２抗体、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体（実施例７）、又は抗β－アクチン抗体を用いてウエスタンブロットした結果を、図３Ｃに示した。図３Ｃに見られるように、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体はＭＵＣ１タンパク質を検出しないことが分かる。一方、ＰＮＧａｓｅ Ｆで処理したＴ４７Ｄ細胞溶解物を抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体で免疫沈降した後、抗ＭＵＣ１－ＣＴ又は抗ＭＵＣ１－ＣＴ２抗体で免疫ブロットした結果を、図３Ｄに示した。図３Ｄに示すように、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体はＴ４７Ｄ細胞において脱グリコシル化されたＭＵＣ１タンパク質を免疫沈降させ得ることを確認した。このような結果は、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体がグリコシル化状態と関係なく天然状態のＭＵＣ１タンパク質を成功的に認識できることを立証する。
抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体が膵癌細胞で損傷されなかった（ｉｎｔａｃｔ）ＭＵＣ１タンパク質を認識するか否かを試験するために、膵癌細胞（Ｃａｐａｎ－１、Ｃａｐａｎ－２、ＣＦＰＡＣ－１、及びＰＡＮＣ－１）の細胞溶解物をＳＤＳ－ＰＡＧＥによって分離させ、抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体、抗ｈＭＵＣ１抗体、又は抗β－アクチン抗体を用いてウエスタンブロットを行い、その結果を図４Ａに示した。図４Ａに見られるように、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体は試験された全ての細胞試料でＭＵＣ１タンパク質を認識できなかった。
一方、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体が内因性ＭＵＣ１タンパク質を固有の状態で認知できるか否かを調べるために、様々な膵癌細胞（Ｃａｐａｎ－１、Ｃａｐａｎ－２、ＣＦＰＡＣ－１、及びＰＡＮＣ－１）の細胞溶解液に対して免疫沈降を行い、抗ＭＵＣ１－ＣＴ抗体及び抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体を用いて免疫ブロッキングした。前記得られた結果を図４Ｂに示した。図４Ｂに示すように、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体は膵癌細胞（Ｃａｐａｎ－２及びＣＦＰＡＣ－１）で自然状態のＭＵＣ１タンパク質を効率的に免疫沈降できることが確認される。
実施例１８：抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の細胞表面及び細胞内ＭＵＣ１タンパク質の認知及び細胞内在化（ｉｎｔｅｒｎａｌｉｚａｔｉｏｎ）確認
抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体が損傷されなかった細胞でＭＵＣ１タンパク質を認識し結合できるか否かを確認するために、乳癌細胞（ＭＣＦ－７、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１）及び膵癌細胞（Ｃａｐａｎ－１、Ｃａｐａｎ－２、ＣＦＰＡＣ－１、ＰＡＮＣ－１）に対して免疫蛍光染色し、その結果を共焦点顕微鏡で分析した（実施例９－７参照）。
より具体的に、ＭＣＦ－７、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１細胞を抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体又はマウス正常ＩｇＧと共に４℃（細胞表面ＭＵＣ１タンパク質の場合）又は室温（細胞内ＭＵＣ１タンパク質の場合）で恒温培養した後、Ａｌｅｘａ４８８（緑色）－接合された２次抗体と共に１時間培養し、細胞核はＨｏｅｃｈｓｔ３３２５８（青色）で染色した。得られた蛍光イメージは共焦点顕微鏡（ＣＬＳＭ，ＬＳＭ７１０，Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ，Ｊｅｎａ，Ｇｅｒｍａｎｙ）で観察し、これを図５のＡに示した（ｓｃａｌｅ ｂａｒ：１０μｍ）。また、乳癌細胞での抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の内在化を確認するために、ＭＣＦ－７、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１細胞をＤｙＬｉｇｈｔ４８８（緑色）－標識された抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体で処理し、３７℃で６時間培養し、核はＨｏｅｃｈｓｔ ３３２５８で染色した後、得られた蛍光イメージを共焦点顕微鏡（ＣＬＳＭ）（ＬＳＭ７１０，Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ，Ｊｅｎａ，Ｇｅｒｍａｎｙ）で観察し、図５のＢに示した（ｓｃａｌｅ ｂａｒ：１０μｍ）。
また、膵癌細胞での細胞表面及び細胞内領域に位置しているＭＵＣ１タンパク質に対する抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の結合を試験した。膵癌細胞株Ｃａｐａｎ－１、Ｃａｐａｎ－２、ＣＦＰＡＣ－１及びＰＡＮＣ－１細胞を抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体又はマウス正常ＩｇＧと共に４℃（表面）又は室内温度（細胞内）で培養した後、Ａｌｅｘａ４８８接合２次抗体と共に１時間培養した。核はＨｏｅｃｈｓｔ３３２５８で染色した。得られた蛍光イメージは共焦点顕微鏡（ＣＬＳＭ）（ＬＳＭ７１０，Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ，Ｊｅｎａ，Ｇｅｒｍａｎｙ）で観察し、図６に示した（ｓｃａｌｅ ｂａｒ：１０μｍ）。
前記図５及び図６の結果から、抗ｈＭＵＣ１抗体が乳癌細胞（ＭＣＦ－７、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１）と膵癌細胞（Ｃａｐａｎ－２及びＣＦＰＡＣ－１）においてＭＵＣ１を明確に染色することが分かり、それらは細胞表面及び細胞内に位置することが分かる。
このような結果は、抗体がＭＵＣ１Ｃ末端のサブユニットの細胞外領域を認識するということを示唆する。抗体の治療剤としての効能は細胞内在化にさらに依存するといえる。したがって、抗ｈＭＵＣ１抗体をＤｙＬｉｇｈｔ４８８と結合させ、これを乳癌細胞と膵癌細胞に６時間処理した後、抗体の細胞内在化の有無を蛍光イメージから確認した。膵癌細胞（Ｃａｐａｎ－１、Ｃａｐａｎ－２、ＣＦＰＡＣ－１及びＰＡＮＣ－１）をＤｙＬｉｇｈｔ４８８－標識された抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体で処理し、０、３０分、１時間、３時間、６時間、１２時間及び２４時間３７℃で培養した。核はＨｏｅｃｈｓｔ３３２５８で染色した。得られた蛍光イメージは共焦点顕微鏡（ＣＬＳＭ）（ＬＳＭ７１０，Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ，Ｊｅｎａ，Ｇｅｒｍａｎｙ）で観察し、図７に示した（ｓｃａｌｅ ｂａｒ：１０μｍ）。乳癌での細胞内在化は図５のＢで確認することができる。
すなわち、これらの結果から、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体が生きている細胞においてＭＵＣ１タンパク質を標的し内在化できることが確認できる。
実施例１９：抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の可変部位クローニング結果
抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ細胞（ｈＭＵＣ１－１Ｈ７）から抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の重鎖及び軽鎖の可変部位をクローニングし、ＤＮＡシーケンシングした（実施例１０）。前記ＤＮＡシーケンシングによって確認された配列をＢＬＡＳＴプログラム（ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ）によって分析し、公知の配列との相同性を分析した。ｈＭＵＣ１－１Ｈ７抗体の重鎖及び軽鎖の可変部位をコードするｃＤＮＡ（重鎖可変部位コーディングｃＤＮＡ：３９３ｂｐ；軽鎖可変部位コーディングｃＤＮＡ：３９６ｂｐ）は、公知のマウス免疫グロブリン（ＩｇＧ１）の重鎖及び軽鎖の可変部位の暗号化配列とそれぞれ約８０～９５％及び９３～９８％の配列相同性を示した。
前記得られたＤＮＡ配列に基づいて重鎖及び軽鎖のＣＤＲを公知の方法（ｋａｂａｔ ＣＤＲ ｄｅｆｉｎｉｔｉｏｎ）で確認した（表２）。重鎖及び軽鎖の可変領域配列は下記表３に示した。
Figure 2022023078000004
Figure 2022023078000005
実施例２０：抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体から誘導された組換えＦａｂ断片の発現確認及び該組換えＦａｂ断片の癌細胞のＭＵＣ１タンパク質認識試験
発現ベクターｐＦａｂＥを用いて大腸菌で組換えＦａｂを発現させた（実施例１１）。
ベクターｐＦａｂＥは、軽鎖の不変部位（ＣＬ）、重鎖の不変部位（ＣＨ１）、軽鎖の可変部位（ＶＬ）、及び重鎖の可変部位（ＶＨ）が挿入され得る２個のクローニングサイトＢｓｔＸ Ｉ及びＳｆｉ Ｉをそれぞれ含む。ｈＭＵＣ１－１Ｈ７のＶＬ及びＶＨ配列を順次にサブクローニングすることによって組換え発現プラスミドｐＦａｂＥ－ｈＭＵＣ１－１Ｈ７を構築した（図８Ａ）。前記組換えプラスミドは大腸菌でＬａｃＺプロモーターの制御下でＶＬ－ＣＬ融合タンパク質及びＶＨ－ＣＨ１融合タンパク質を二重シストロン発現（ｂｉ－ｃｉｓｔｒｏｎｉｃ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）させる。ＶＬ－ＣＬ融合タンパク質はＮ末端ＯｍｐＡタグ及びＣ末端Ｐｒｅ－Ｓ１タグを含むが、ＶＨ－ＣＨ１融合タンパク質はＮ末端ｐｅｌＢタグ及びＣ末端Ｈｉｓタグを含む（図８Ｂ）。組換えＶＨ－ＣＨ１融合タンパク質がＨｉｓタグを含むので、Ｎｉ－ＮＴＡ親和性カラムクロマトグラフィーを用いて大腸菌の大規模培養と培養上澄み液からｈＭＵＣ１－１Ｈ７の組換えＦａｂ精製を行った。
該精製された組換えＦａｂ（以下、“組換えＦａｂ－ｈＭＵＣ１－１Ｈ７”）が癌細胞のＭＵＣ１を認識（結合）できる否かを試験するために、乳癌細胞（ＭＣＦ－７、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１）に対して免疫蛍光染色試験を行った。乳癌細胞ＭＣＦ－７、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１細胞をそれぞれ組換えＦａｂ－ｈＭＵＣ１－１Ｈ７と共に培養した後、Ａｌｅｘａ４８８－接合２次抗体と共に培養した。核は、Ｈｏｅｃｈｓｔ３３２５８で染色した。得られた蛍光イメージは共焦点顕微鏡（ＣＬＳＭ）（ＬＳＭ７１０，Ｃａｒｌ Ｚｅｉｓｓ，Ｊｅｎａ，Ｇｅｒｍａｎｙ）で観察し、図８Ｃに示した（ｓｃａｌｅ ｂａｒ：１０μｍ）。
図８Ｃに見られるように、共焦点映像は、組換えＦａｂ－ｈＭＵＣ１－１Ｈ７が乳癌細胞（ＭＣＦ－７、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１）でＭＵＣ１を明確に染色し、これは、前記組換えＦａｂ－ｈＭＵＣ１－１Ｈ７が乳癌細胞のＭＵＣ１を認識することを意味する。
実施例２１：抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の乳癌細胞の増殖抑制効果
ＭＵＣ１は様々な類型の癌組織で過発現して細胞の増殖を促進する。抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の癌治療剤としての有効性を確認するために、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体が乳癌細胞増殖に及ぼす影響を試験した。
ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１細胞を抗ｈＭＵＣ１抗体（１０μｇ／ｍｌ；実施例７）又は正常マウスＩｇＧ１（１０μｇ／ｍｌ）で処理し、図９に表示された時間間隔でＭＴＴ分析（実施例１２）によって細胞増殖に及ぼす影響を試験した。
この得られた結果を図９に示した。図９で、ｃｏｎｔｒｏｌは抗体を処理していない群である。図９に見られるように、抗ｈＭＵＣ１抗体の処理によって、対照群ＩｇＧ処理と比較して、Ｔ４７Ｄ及びＺＲ７５－１細胞の増殖が著しく遅延されることが確認された。対照的に、抗ｈＭＵＣ１抗体はＭＤＡ－ＭＢ－２３１細胞の増殖を変化させなかった。このような結果は、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体は、ＭＵＣ１を発現する癌細胞に選択的に坑癌効果を示すことを意味する。
実施例２２：乳癌及び膵癌に注入された抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の生体内位置化確認
生体内抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の効果を立証するために、Ｔ４７Ｄ、ＺＲ７５－１、又はＣａｐａｎ－２腫瘍を持つＢＡＬＢ／Ｃ ｎｕ／ｎｕマウスに、ＤｙＬｉｇｈｔ７５５－標識された正常ＩｇＧ（５ｍｇ／ｋｇ）又はＤｙＬｉｇｈｔ７５５－標識された抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体（５ｍｇ／ｋｇ）を静脈投与し、全身蛍光イメージングを行った（実施例１３）。標識された抗体の分布は、０時間、２４時間及び４８時間で蛍光
の総フラックス（ｐｈｏｔｏｎ／ｓｅｃ）を測定することによって定量化した。
この得られた結果を、図１０Ａ～図１０Ｈ（乳癌）、及び図１１Ａ～図１１Ｃ（膵癌）に示した。
図１０Ａ～図１０Ｄは、乳癌細胞であるＴ４７Ｄ細胞が皮下注入されて腫瘍が誘導されたマウスにおける結果であり、図１０Ｅ～図１０Ｈは、乳癌細胞であるＺＲ７５－１細胞が皮下注入されて腫瘍が誘導されたマウスにおける結果である。図１０Ｂ及び図１０Ｆで、解剖マウスのイメージングは、実時間ＩＶＩＳイメージングシステム２００を用いて行った。図１０Ｃ及び図１０Ｇでは、いろいろな機関と腫瘍を分離して抗体分布した結果を示す。図１０Ｄ及び図１０Ｈは、腫瘍切片を核に対してＤＡＰＩで染色し、共焦点顕微鏡で評価した結果を示している（ｓｃａｌｅ ｂａｒ：１０μｍ）。
図１０Ａ、図１０Ｂ、図１０Ｅ、図１０Ｆ、図１１Ａ、及び図１１Ｂの結果から、前記抗ｈＭＵＣ１抗体が腫瘍領域に特異的に限定して位置することが分かる。また、図１０Ｃ及び図１０Ｇの結果から、腫瘍及びその他臓器が分離された時、抗ｈＭＵＣ１抗体は他の重要な機関に影響を及ぼさず、腫瘍組織にのみ位置することが確認された。
また、前記結果から、ＤｙＬｉｇｈｔで標識された抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体は腫瘍切片で明確な染色結果を示すのに対し、ＤｙＬｉｇｈｔで標識された正常ＩｇＧは、このような効果を示さないことが確認できる。また、図１０Ｄ、図１０Ｈ及び図１１Ｃの共焦点映像から、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の腫瘍特異的細胞内位置化がさらに確認された。
前記結果は、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体を動物モデルにおいて乳癌と膵癌を特異的に標的化するのに使用できることを示唆する。
実施例２３：抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体の異種移植マウスモデルでの坑癌効果試験
異種移植マウスモデルを用いてｉｎ ｖｉｖｏで膵癌細胞の成長に対するＭＵＣ１標的モノクローナル抗体の効果を試験した。まず、Ｃａｐａｎ－２細胞を用いてｎｏｒｓマウス（ｎ＝８）を背中側の右脇腹に皮下注射して腫瘍成長を許容した。腫瘍サイズが７５ｍｍ３に到達すると、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体を１週に２回静脈内投与し、１１週間腫瘍サイズをモニターした。前記異種移植マウスモデルの準備及び腫瘍サイズ試験は実施例１４にしたがって行った。
異種移植マウスモデル実験の間に、ＰＢＳ投与グループにおいて８匹のマウスのうち２匹が死亡し、８匹のマウスのうち１匹が抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体投与グループで死亡した。
前記異種移植マウスモデルから摘出された腫瘍組織の様子を図１２Ａに示し、腫瘍のサイズ（（幅２＊長さ）／２）、重さ、及びマウスの体重をそれぞれ、図１２Ｂ、図１２Ｃ、及び図１２Ｄにそれぞれ示した。図１２Ａ～図１２Ｄに示すように、抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体投与によって膵臓腫瘍の進行が弱化すること、及び前記抗体治療が試験体の体重に不利な影響を及ぼさないこと、が確認できた。
実施例２４：ヒト乳癌及び膵癌組織におけるＭＵＣ１タンパク質の発現試験
免疫染色によって乳癌及び膵癌組織におけるＭＵＣ１タンパク質の発現の有無を調べた。正常組織を対照群として乳癌組織及び膵癌組織を試験した。その結果を、図１３（乳癌）及び図１４（膵癌）に示した。図１３及び図１４から、大部分の乳癌組織及び膵癌組織でＭＵＣ１が発現するのに対し、正常乳房組織ではＭＵＣ１が発現しないことを確認した。
乳癌組織及び膵癌組織におけるＭＵＣ１発現を確認した免疫組織化学分析結果を、表４（乳癌組織）及び表５（膵癌組織）にそれぞれ示した。
Figure 2022023078000006
Figure 2022023078000007
表４に示したように、５１個の乳癌試料を分析した結果、全試料のうち１８％が腫瘍細胞の７５％以上でＭＵＣ１陽性反応を示した。癌細胞試料の１４％と２５％は、腫瘍細胞の５０～７４％と１１～４９％でＭＵＣ１発現が陽性だった。しかし、乳癌標本の１２％はＭＵＣ１の発現を示さなかった。
また、表５に示したように、３３個の膵癌標本の場合、３％の試料が腫瘍細胞の７５％以上でＭＵＣ１陽性反応を示した。癌試料の９．１％と４８．５％は腫瘍細胞の５０～７４％と１１～４９％でＭＵＣ１発現に陽性だった。
このような結果は、ＭＵＣ１の発現が乳癌診断及び治療標的に有用であることを示唆する。
実施例２５：抗－ｈＭＵＣ１マウス抗体（１Ｈ７）ＡＤＣの細胞毒性（ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ）確認
Ｌｅｖｅｎａ Ｂｉｏｐｈａｒｍａ（ＵＳＡ）でＭＭＡＥを１Ｈ７抗体に結合させてＡＤＣを作製した。作製されたＡＤＣの抗体に対するＭＭＡＥの比率（ＤＡＲ）は５．８０だった。１Ｈ７－ＡＤＣの細胞毒性確認のために、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１、Ｔ４７Ｄ、ＺＲ７５－１３種の細胞株を使用した。各細胞株は９６－ウェルプレートで培養し、培養開始２４時間後、図１５のように設定された濃度の１Ｈ７－ＡＤＣを処理した。１Ｈ７－ＡＤＣ処理して７２時間後に、ＣＣＫ－８キット（Ｄｏｊｉｎｄｏ，ＵＳＡ）を用いて細胞生存率を比較した。ＣＣＫ－８の処理方法は、提供されたマニュアルにしたがって行い、吸光値はＩ３Ｘマイクロプレートリーダ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ，ＵＳＡ）を用いて測定した。１Ｈ７－ＡＤＣを処理したＴ４７Ｄ及びＺＲ７５－１細胞の生存率は、１Ｈ７－ＡＤＣを処理しなかった対照群に比べて著しく低くなることを確認した。対照的に、１Ｈ７－ＡＤＣを処理したＭＤＡ－ＭＢ－２３１細胞の生存は、対照群と有意の差を示さなかった。このような結果は、１Ｈ７－ＡＤＣはＭＵＣ１が発現する癌細胞に選択的に坑癌効果を示すことを意味する。
実施例２６：患者由来乳癌組織における抗－ｈＭＵＣ１モノクローナル抗体（１Ｈ７）－ＡＤＣの癌増殖抑制効果
前記実施例２５で言及された１Ｈ７－ＡＤＣの癌増殖抑制効果を動物モデルから確認しようとした。ジュンアバイオ（ソウル、韓国）から購入したＭＵＣ１が過発現する患者由来乳癌組織（ＴＮＢＣ）をＮＲＧＡマウスに移植し、マウスに移植した乳癌組織が一定サイズ以上に育った時（１００～２００ｍｍ３）、１Ｈ７－ＡＤＣを血管注射で投与した。図１６に示すように、１Ｈ７－ＡＤＣを投与したマウスの癌組織のサイズは時間の経過と共に減少したが、１Ｈ７－ＡＤＣを投与しなかった対照群マウスの癌組織は時間の経過に比例してサイズが大きくなることを確認した。この結果は、ＭＵＣ１が発現した患者由来の癌組織において１Ｈ７－ＡＤＣが組織レベルで癌細胞の成長を抑制する効果を持つことを意味する。
実施例２７：１Ｈ７に基づくヒト化抗体の作製
ＡＤＣ製造によって細胞毒性及び動物モデルでの坑癌効果を確認した１Ｈ７抗体に基づいてヒト化抗体を作製した。ヒト化抗体は、オソン先端医療産業振興財団の新薬開発支援センター（オソン、韓国）とフュージョンアンチボディース（Ｆｕｓｉｏｎ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ、英国）に依頼して作製した。１Ｈ７抗体の抗原認識部位を同一視し、抗原認識部位を除く可変部位配列に変化を与えて、重鎖配列６種、軽鎖配列６種を作製した。それぞれのアミノ酸配列は、表６に示した。
Figure 2022023078000008
実施例２８：ヒト化抗体とｈＭＵＣ１－Ｃの結合親和度（Ｂｉｎｄｉｎｇ ａｆｆｉｎｉｔｙ）測定
前記実施例２７で作製された抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体とｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質の結合に関する親和度測定は、ＥＬＩＳＡ方法を用いて測定した。ＥＬＩＳＡによる親和度分析は、作製された抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体を同一濃度で９６－ウェル免疫プレートにコートし、、ｓｕｐｅｒ ｂｌｏｃｋ溶液で遮断させた。この後、ＭＢＰ－ｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質を希釈し、これを抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体がコートされた免疫プレートに入れ、３７℃インキュベータで静置して結合させた。プレートを洗浄溶液で３回洗浄し、ＨＲＰの接合された抗－ＭＢＰ抗体と共に反応させた。ＴＭＢ基質溶液を用いて反応を展開させ、２Ｎ ＨＣｌを用いて反応を終了した。その後、抗原－抗体結合反応によって表された吸光値はＩ３Ｘマイクロプレートリーダ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ，ＵＳＡ）で測定し、比色分析（ｃｏｌｏｒｉｍｅｔｒｉｃ ａｓｓａｙ）を行った。図１７は、コートされたヒト化抗体によるＭＢＰ－ｈＭＵＣ１－Ｃに対する結合親和度の差を示す。
実施例２９：抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体と抗－ｈＭＵＣ１－Ｃマウス抗体（１Ｈ７）のエピトープ同質性確認
作製された抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体と抗－ｈＭＵＣ１－Ｃマウス抗体のエピトープ同質性確認は、競合的ＥＬＩＳＡ（Ｃｏｍｐｅｔｉｔｉｖｅ ＥＬＩＳＡ）によって確認した。ＭＢＰ－ｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質を希釈し、様々な濃度で９６－ウェル免疫プレートにコートした。その後、ビオチンが標識された５０ｎＭ抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体と抗－ｈＭＵＣ１－Ｃマウス抗体を５ｕＭから始めて連続的希釈し、ＭＢＰ－ｈＭＵＣ１－Ｃタンパク質のコートされたプレートに同時に入れて静置状態で反応させた。ＨＲＰ標識されたストレプトアビジンを一定濃度で処理し、抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体に標識されたビオチンを感知した。比色分析のために、親和性確認のために用いたＴＭＢ基質溶液を使用した。反応による吸光値はＩ３Ｘマイクロプレートリーダ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ，ＵＳＡ）で測定して分析した。図１８にその結果を示した。ビオチンが標識されなかった抗－ｈＭＵＣ１－Ｃマウス抗体の濃度増加による吸光値の減少は、抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体と抗－ｈＭＵＣ１－Ｃマウス抗体が同一のエピトープを認知することを示す。
実施例３０：抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体のｈＭＵＣ１－Ｃに対する細胞結合様相の分析（ＦＡＣＳ ａｎａｌｙｓｉｓ）
ｈＭＵＣ１の発現が知られた細胞株における抗－ｈＭＵＣ１ヒト化抗体のｈＭＵＣ１－Ｃに対する細胞結合様相を分析するためにＦＡＣＳ分析を行った。各細胞株は、培養培地で培養後、一定数の細胞を各チューブに分けて準備した。その後、４％パラホルムアルデヒドで）固定させ、遠心分離後にＦＡＣＳ分析溶液で１回洗浄した。準備した細胞株に抗－ｈＭＵＣ１ヒト化抗体を処理し、４℃で培養によって細胞に当該ヒト化抗体が結合するように処置した。その後、ＦＩＴＣ標識された抗－ヒトＩｇＧ抗体を処理し、ＦＡＣＳ分析はＢＤ ＦＡＣＳ Ｃａｎｔｏ（ＢＤ，ＵＳＡ）を用いて実施した。分析結果は、図１９に示し、対照物質としてヒトＩｇＧを用いて比較した。ｈＭＵＣ１の発現が知られた３種の細胞株では抗－ｈＭＵＣ１ヒト化抗体とｈＭＵＣ１－Ｃの結合によって蛍光値が増加し、ｈＭＵＣ１を発現しないＭＤＡ－ＭＢ－２３１細胞株では蛍光値の変化がなかった。これは、作製された抗－ｈＭＵＣ１ヒト化抗体が細胞に発現したｈＭＵＣ１を特異的に認知することを意味する。
ｈＭＵＣ１の発現が確認されたＺＲ７５－１細胞株で抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体（Ｇ３）と抗－ｈＭＵＣ１－Ｃマウス抗体（１Ｈ７）を様々な濃度で処理し、抗体の濃度依存的に蛍光値が増加することをＦＡＣＳ分析によって確認した。分析結果は、図２０に示した。
実施例３１：抗－ｈＭＵＣ１ヒト化抗体ＡＤＣ（Ｇ３－ＡＤＣ）の細胞毒性（ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ）の確認
実施例３１－１：乳癌細胞株における細胞毒性の確認
Ａｌｔｅｏｇｅｎ（デジョン、Ｋｏｒｅａ）でＭＭＡＥを抗－ｈＭＵＣ１ヒト化抗体に結合させてＡＤＣを作製した。作製されたＡＤＣの抗体に対するＭＭＡＥの比率（ＤＡＲ）は４．８だった。作製されたＡＤＣの細胞毒性確認のために、ＭＤＡ－ＭＢ－２３１（ＭＵＣ１－、ＨＥＲ２－）、Ｔ４７Ｄ（ＭＵＣ１＋、ＨＥＲ２＋）、ＺＲ７５－１（ＭＵＣ１＋、ＨＥＲ２＋）の３種の細胞株を使用した。各細胞株は９６－ウェルプレートで培養し、培養開始２４時間後に、ＭＵＣ１－ＡＤＣ（Ｇ３－ＡＤＣ）と対照群として用いたＫａｄｃｙｌａ（ＨＥＲ２－ＡＤＣ）を該当の濃度で処理した。ＡＤＣ処理して７２時間後、ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏキット（Ｐｒｏｍｅｇａ，ＵＳＡ）を用いて細胞生存率を比較した。ＣｅｌｌＴｉｔｅｒＧｌｏ処理方法はマニュアルに従って行い、発光値はＩ３Ｘマイクロプレートリーダ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｄｅｖｉｃｅｓ，ＵＳＡ）を用いて測定した。Ｇ３－ＡＤＣを処理したＴ４７Ｄ及びＺＲ７５－１細胞の成長率は、Ｇ３－ＡＤＣを処理しなかった対照群に比べて著しく低くなることを確認した（図２１）。対照的に、ＡＤＣを処理したＭＤＡ－ＭＢ－２３１細胞の生存は、対照群と有意の差を示さなかった。このような結果は、Ｇ３－ＡＤＣはＭＵＣ１が発現する癌細胞に選択的に坑癌効果を示すことを意味する。対照群として用いたＫａｄｃｙｌａの場合、Ｇ３－ＡＤＣに比べて低い細胞毒性を示したが、これは、Ｈｅｒ２の発現レベルが実験の細胞で低く発現するためと考えられる。
実施例３１－２：骨髄性白血病細胞株における細胞毒性の確認
実施例３１－１で使った同一の抗－ｈＭＵＣ１ヒト化抗体ＡＤＣを用いて、骨髄性白血病細胞株における細胞毒性を確認した。骨髄性白血病細胞株は、Ｋ５６２（ＭＵＣ１＋）、ＫＧ－１（ＭＵＣ１－）２種を使用した。各細胞株は９６－ウェルプレートで培養し、培養開始２４時間後に、抗－ｈＭＵＣ１ヒト化抗体ＡＤＣを該当の濃度で処理した。抗－ｈＭＵＣ１ヒト化抗体ＡＤＣ処理して７２時間後に、ＭＴＴアッセイを用いて細胞生存率を比較した。抗－ｈＭＵＣ１ヒト化抗体ＡＤＣを処理した細胞の生存率は、処理しなかった対照群に比べて著しく低くなることを確認した。これは図２２に示した。２種の細胞株のうち、ＭＵＣ１発現が確認されたＫ５６２細胞株のみから細胞毒性が確認された。
実施例３２：患者由来乳癌組織における抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体－ＡＤＣの癌増殖抑制効果
前記実施例３１で言及された抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体－薬物接合体の癌増殖抑制効果を、動物モデルから確認した。ジュンアバイオ（ソウル、Ｋｏｒｅａ）から購入したＭＵＣ１が過発現している患者由来乳癌組織（ＴＮＢＣ）をＮＲＧＡマウス総２４匹に移植し、マウスに移植した乳癌組織が一定サイズ以上育った時（１００～２００ｍｍ３）、無作為的に選択して４つのグループ（ｎ＝５）に分けた。各グループは、陰性対照群、Ｋａｄｃｙｌａ（５ｍｇ／ｋｇ）、抗－ｈＭＵＣ１－Ｇ３－ＡＤＣ（５ｍｇ／ｋｇ及び１０ｍｇ／ｋｇ）であり、１週に１回、総３回を血管注射で投与した。図２３に示すように、抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体－薬物接合体を投与したマウスの癌組織の大きさは減少したが、抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体－薬物接合体を投与しなかった対照群マウスの癌組織の大きさは統計的に有意の差を示さなかった。この結果は、ＭＵＣ１の発現した癌組織に対して抗－ｈＭＵＣ１－Ｃヒト化抗体－薬物接合体がＴＮＢＣ乳癌組織の成長を阻害する効果があることを意味する。実験された全ての動物個体において統計的に有意の体重変化は観察されず、濃度依存的に癌細胞成長を効果的に抑制することを確認した。統計的分析は２元配置分散分析（Ｔｗｏ－ｗａｙ ＡＮＯＶＡ）で行った。
寄託機関名：韓国細胞株研究財団
受託番号：ＫＣＬＲＦＢＰ００３９５
受託日：２０１７０３０８
本発明によれば、ＭＵＣ１に特異的に結合する抗体又はその抗原結合断片は、ＭＵＣ１に対する優れた親和度及び結合力を示し、前記抗体又はその抗原結合断片に薬物が接合された抗体－薬物接合体は、ＭＵＣ１発現細胞に特異的に結合することによって、薬物を効果的に、且つ特異的又は選択的に伝達することができる。したがって、本発明による抗ＭＵＣ１抗体及び抗体－薬物接合体はＭＵＣ１関連疾病、例えば、癌の治療に有用に適用可能である。
以上、本発明内容の特定の部分を詳細に記述したが、当業界の通常の知識を有する者にとってこのような具体的技術は単に好ましい実施様態であり、それらによって本発明の範囲が制限されない点は明白であろう。したがって、本発明の実質的な範囲は、添付する請求項とそれらの等価物によって定義されるといえよう。

Claims (27)

  1. ＭＵＣ１のＣ末端細胞外ドメイン内の連続する５個以上のアミノ酸を含むポリペプチドを認識する、抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片。
  2. 前記ＭＵＣ１のＣ末端細胞外ドメインは、配列番号１０のアミノ酸配列からなることを特徴とする、請求項１に記載の抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片。
  3. 配列番号１の重鎖ＣＤＲ１；配列番号２の重鎖ＣＤＲ２；配列番号３の重鎖ＣＤＲ３；及び
    配列番号４の軽鎖ＣＤＲ１；配列番号５の軽鎖ＣＤＲ２；配列番号６の軽鎖ＣＤＲ３を含むことを特徴とする、請求項１に記載の抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片。
  4. 配列番号２２又は２４の重鎖可変領域、及び配列番号２３又は２５の軽鎖可変領域を含む、請求項３に記載の抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片。
  5. 配列番号２２の重鎖可変領域及び配列番号２３の軽鎖可変領域；又は
    配列番号２４の重鎖可変領域及び配列番号２５の軽鎖可変領域を含む、請求項４に記載の抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片。
  6. 受託番号ＫＣＬＲＦ－ＢＰ－００３９５の抗ＭＵＣ１抗体の産生のためのハイブリドーマ。
  7. 請求項１に記載の抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片に薬物が接合された抗体－薬物接合体。
  8. 前記抗体又はその抗原結合断片はリンカーを介して薬物と結合することを特徴とする、請求項７に記載の抗体－薬物接合体。
  9. 前記リンカーは、切断性リンカー又は非切断性リンカーであることを特徴とする、請求項８に記載の抗体－薬物接合体。
  10. 前記薬物は、化学療法剤、毒素、マイクロＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡ又は放射性同位元素であることを特徴とする、請求項７に記載の抗体－薬物接合体。
  11. 請求項１に記載の抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を含む二重特異性抗体（ｂｉｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｎｔｉｂｏｄｙ）。
  12. 前記二重特異性抗体は、抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片と、癌関連抗原又は免疫関門タンパク質抗原又は免疫エフェクター細胞特異的標的分子に対する結合能を有する抗体とからなることを特徴とする、請求項１１に記載の二重特異性抗体。
  13. 請求項１～５のいずれか一項に記載の抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片、請求項７～１０のいずれか一項に記載の抗体－薬物接合体、若しくは請求項１１又は１２に記載の二重特異性抗体を含む、癌の予防又は治療用医薬組成物。
  14. 前記癌は、ＭＵＣ１タンパク質が発現したことを特徴とする、請求項１３に記載の癌の予防又は治療用医薬組成物。
  15. 前記癌は、乳癌、膵癌、前立腺癌、肺癌、甲状腺癌、胃癌、卵巣癌、大腸癌、肝癌、甲状腺癌、腎臓癌、卵巣癌、大腸癌、肝臓癌、胆嚢癌、腎臓癌、子宮頸癌、又は膀胱癌である、請求項１４に記載の癌の予防又は治療用医薬組成物。
  16. 請求項１～５のいずれか一項に記載の抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片を含む、癌の診断用組成物。
  17. 前記癌は、ＭＵＣ１タンパク質が発現したことを特徴とする、請求項１６に記載の癌の診断用組成物。
  18. リポソーム内に（１）ＭＵＣ１のＣ末端部位、ＭＵＣ１のＳＥＡドメイン、又はＭＵＣ１のＣ末端細胞外ドメイン、及び（２）ＣｐＧ－ＤＮＡをカプセル化した複合体を含む、免疫原性組成物。
  19. 前記リポソームは、ジオレオイルホスファチジルエタノールアミン（ｄｉｏｌｅｏｙｌｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｅｔｈａｎｏｌａｍｉｎｅ；ＤＯＰＥ）及びコレステリルヘミスクシナート（ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｙｌ ｈｅｍｉｓｕｃｃｉｎａｔｅ；ＣＨＥＭＳ）が１：０．５～１：２のモル比で混合された混合物であることを特徴とする、請求項１８に記載の免疫原性組成物。
  20. 前記ＣｐＧ－ＤＮＡは、１～３個のＣｐＧモチーフを含む総１０～２０個のヌクレオチドを含むオリゴデオキシヌクレオチドであることを特徴とする、請求項１８に記載の免疫原性組成物。
  21. 請求項１８～２０のいずれか一項に記載の免疫原性組成物をマウスに接種する段階を含む、抗ＭＵＣ１－ＳＥＡモノクローナル抗体の作製方法。
  22. 請求項１～５のいずれか一項に記載の抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片をコードする核酸。
  23. 請求項２２に記載の核酸を含む組換え発現ベクター。
  24. 請求項２３に記載の組換え発現ベクターで形質転換された宿主細胞。
  25. 動物細胞、植物細胞、酵母、大腸菌及び昆虫細胞からなる群から選ばれることを特徴とする、請求項２４に記載の宿主細胞。
  26. サル腎臓細胞（ＣＯＳ７細胞：ｍｏｎｋｅｙ ｋｉｄｎｅｙ ｃｅｌｌｓ）、ＮＳＯ細胞、ＳＰ２／０細胞、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ：Ｃｈｉｎｅｓｅ ｈａｍｓｔｅｒ ｏｖａｒｙ）細胞、Ｗ１３８、ベビーハムスター腎臓（ＢＨＫ：ｂａｂｙ ｈａｍｓｔｅｒ ｋｉｄｎｅｙ）細胞、ＭＤＣＫ、骨髄腫細胞株、ＨｕＴ７８細胞及びＨＥＫ２９３細胞、大腸菌、バチルス・サブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ）、ストレプトマイセス属（Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓ ｓｐ．）、シュードモナス属（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ｓｐ．）、プロテウス・ミラビリス（Ｐｒｏｔｅｕｓ ｍｉｒａｂｉｌｉｓ）又はスタフィロコッカス属（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ｓｐ．）、アスペルギルス属（Ａｓｐｅｒｇｉｌｌｕｓ ｓｐ．）、ピチアパストリス（Ｐｉｃｈｉａｐａｓｔｏｒｉｓ）、サッカロマイセス・セレビシアエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、シゾサッカロミケス属（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｓｐ．）及びノイロスポラ・クラサ（Ｎｅｕｒｏｓｐｏｒａ ｃｒａｓｓａ）からなる群から選ばれることを特徴とする、請求項２５に記載の宿主細胞。
  27. 請求項２４～２６のいずれか一項に記載の宿主細胞を培養する段階を含む、抗ＭＵＣ１抗体又はその抗原結合断片の作製方法。
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