JP2020530778A - カプセル封入ポリヌクレオチド及び使用方法 - Google Patents

カプセル封入ポリヌクレオチド及び使用方法 Download PDF

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Abstract

本開示は、複製可能ウイルスゲノムをコードする核酸配列を含むポリヌクレオチドであって、非ウイルス性送達ビヒクルによって細胞内に導入されたときに複製可能ウイルスを生み出すことができる、当該ポリヌクレオチドに関する。本開示はさらに、ポリヌクレオチドのカプセル封入ならびに、がんの治療及び防止のためのポリヌクレオチド及び/または粒子の使用に関する。【選択図】図1

Description

関連出願の相互参照
本願は、2017年7月14日に出願された米国仮出願第62/532,886号及び2018年3月27日に出願された第62/648,651号に基づく優先権を主張するものであり、参照によりこれらの各々の全体を本明細書に援用する。
配列表に関する記載
本願に関連する配列表は紙のコピーの代わりにテキスト形式で提供され、これをもって参照により本明細書に援用される。配列表が入ったテキストファイルの名前はONCR_005_03WO_ST25.txtである。テキストファイルは23KBであり、2018年7月13日に作成され、EFS−Webによって電子出願されている。
分野
本開示は、総じて免疫学、炎症及びがん治療学の分野に関する。より具体的には、本開示は、粒子内に封入された、複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドに関する。本開示はさらに、がんなどの増殖性疾患の治療及び防止に関する。
腫瘍溶解ウイルスは、腫瘍細胞に感染してそれを溶解させることができる溶解性の生活環を有する複製可能ウイルスである。直接的な腫瘍細胞溶解は細胞死をもたらすだけでなく、局部の抗原提示細胞によって取り込まれ提示された腫瘍抗原に対する適応免疫応答の発生ももたらす。したがって、腫瘍溶解ウイルスは、直接的な細胞溶解と、ウイルスクリアランス後に抗腫瘍応答を維持することができる抗原特異的な適応応答を促進することとの両方によって腫瘍細胞成長に対向する。
しかしながら、複製可能ウイルスの臨床での使用はいくつかの難題を突き付けている。一般に、ウイルス曝露は自然免疫経路を活性化し、結果として広範な非特異的炎症応答を招く。患者が以前にウイルスに曝露されたことがない場合、この初回の自然免疫応答は適応抗ウイルス応答の発達及び中和抗体の産生を引き起こし得る。患者が以前にウイルスに曝露されたことがある場合、既存の中和抗ウイルス抗体は、望まれる溶解作用を妨げ得る。どちらの場合にも、中和抗体の存在は、標的細胞のウイルス性溶解を妨げるだけでなく、ウイルス治療薬の再投与を非効果的なものにもする。これらの因子は転移がんの治療におけるウイルス治療薬の使用を制限する、というのも、そのようながんの治療に必要とされる繰り返される全身投与の有効性は自然発生の抗ウイルス応答によって妨害されるからである。そのような障壁が存在していない場合でさえ、非疾患細胞における後のウイルス複製は、周囲の細胞及び組織に対する疾患以外によるかなりの副次的損傷を招く可能性がある。
当技術分野では複製可能ウイルスの治療的使用に関係する組成物及び方法の必要性が長年にわたって充たされないままである。本開示は、そのような組成物及び方法ならびにそれ以上のものを提供する。
本開示は、自己複製性ポリヌクレオチドをコードするDNAポリヌクレオチドならびに関連する組成物及び方法を提供する。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、複製可能ウイルスゲノムをコードする核酸配列を含み、ポリヌクレオチドは、非ウイルス性送達ビヒクルによって細胞内に導入されたときに複製可能ウイルスを生み出すことができるものである。
一態様では、本開示は、複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含む組換えDNA分子を含む脂質ナノ粒子(LNP)であって、ポリヌクレオチド配列が、哺乳動物RNAポリメラーゼII(Pol II)に結合することができるプロモーター配列に機能可能に繋げられており、かつ3’リボザイムコード配列と5’リボザイムコード配列とに挟まれており、複製可能ウイルスゲノムをコードする当該ポリヌクレオチドの起源が非ウイルス性である、当該LNPを提供する。
一実施形態では、複製可能ウイルスゲノムは一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスである。
一実施形態では、複製可能ウイルスゲノムは、一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスであり、プラスセンス((+)センス)またはマイナスセンス((−)センス)ssRNAウイルスである。
一実施形態では、複製可能ウイルスゲノムは(+)センスssRNAウイルスであり、(+)センスssRNAウイルスがピコルナウイルスである。
一実施形態では、ピコルナウイルスはセネカバレーウイルス(SVV)またはコクサッキーウイルスである。
一実施形態では、LNPを細胞と接触させることでウイルス粒子が細胞によって産生され、ウイルス粒子は感染性及び溶解性である。
一実施形態では、組換えDNA分子はさらに、外来搭載薬タンパク質をコードするポリヌクレオチド配列を含む。
一実施形態では、外来搭載薬タンパク質は、蛍光タンパク質、酵素タンパク質、サイトカイン、ケモカイン、または細胞表面受容体に結合することができる抗原結合性分子である。
一実施形態では、サイトカインはFlt3リガンド及びIL−18から選択される。
一実施形態では、ケモカインはCXCL10及びCCL4から選択される。
一実施形態では、抗原結合性分子は、免疫チェックポイント受容体に対する結合及び阻害を行うことができる。
一実施形態では、免疫チェックポイント受容体はPD1である。
一実施形態では、複製可能ウイルスゲノムをコードする核酸配列の中にマイクロRNA(miRNA)標的配列(miR−TS)カセットが挿入されており、miR−TSカセットは1つ以上のmiRNA標的配列を含み、細胞における対応する1つ以上のmiRNAの発現は細胞における複製可能ウイルスゲノムの複製を阻害する。
一実施形態では、1つ以上のmiRNAは、miR−124、miR−1、miR−143、miR−128、miR−219、miR−219a、miR−122、miR−204、miR−217、miR−137、及びmiR−126から選択される。
一実施形態では、miR−TSカセットは、miR−124標的配列の1つ以上のコピー、miR−1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−143標的配列の1つ以上のコピーを含む。
一実施形態では、miR−TSカセットは、miR−128標的配列の1つ以上のコピー、miR−219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−122標的配列の1つ以上のコピーを含む。
一実施形態では、miR−TSカセットは、miR−128標的配列の1つ以上のコピー、miR−204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−219標的配列の1つ以上のコピーを含む。
一実施形態では、miR−TSカセットは、miR−217標的配列の1つ以上のコピー、miR−137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−126標的配列の1つ以上のコピーを含む。
一実施形態では、組換えDNA分子は、複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含むプラスミドである。
一実施形態では、LNPは、カチオン性脂質、コレステロール及び中性脂質を含む。
一実施形態では、カチオン性脂質は1,2−ジオレオイル−3−トリメチルアンモニウム−プロパン(DOTAP)であり、中性脂質は1,2−ジラウロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DLPE)または1,2−ジオレオイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DOPE)である。
一実施形態では、LNPはリン脂質−ポリマー複合体を含み、リン脂質−ポリマー複合体が、1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−ポリ(エチレングリコール)(DSPE−PEG)、または1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−N−[アミノ(ポリエチレングリコール)](DSPE−PEG−アミン)である。
一実施形態では、ヒアルロナンがLNPの表面と複合している。
一態様では、本開示は、複数の脂質ナノ粒子を含む治療用組成物であって、複数のLNPの平均粒径が約150nm〜約500nmである、当該治療用組成物を提供する。
一実施形態では、複数のLNPの平均粒径は、約200nm〜約500nm、約300nm〜約500nm、約350nm〜約500nm、約400nm〜約500nm、約425nm〜約500nm、約450nm〜約500nm、または約475nm〜約500nmである。
一実施形態では、複数のLNPの平均ゼータ電位は、約−20mV未満、約−30mV未満、約35mV未満、または約−40mV未満である。
一実施形態では、複数のLNPの平均ゼータ電位は、約−50mV〜約−20mV、約−40mV〜約−20mV、または約−30mV〜約−20mVである。
一実施形態では、複数のLNPの平均ゼータ電位は、約−30mV、約−31mV、約−32mV、約−33mV、約−34mV、約−35mV、約−36mV、約−37mV、約−38mV、約−39mV、または約−40mVである。
一実施形態では、対象への治療用組成物の投与によって組換えDNAポリヌクレオチドが対象の標的細胞に送達され、組換えDNAポリヌクレオチドが、対象の標的細胞を溶解させることができる感染性ウイルスを生み出す。
一実施形態では、組成物は静脈内または腫瘍内に送達される。
一実施形態では、標的細胞はがん細胞である。
一態様では、本開示は、がん性腫瘍の成長を阻害することを、それを必要とする対象において行う方法であって、治療用組成物を、それを必要とする対象に投与することを含み、組成物の投与が腫瘍の成長を阻害する、当該方法を提供する。
一実施形態では、投与は腫瘍内投与または静脈内投与である。
一実施形態では、がんは肺癌または肝臓癌である。
一態様では、本開示は、複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含む組換えDNA分子であって、ポリヌクレオチド配列が、哺乳動物RNAポリメラーゼII(Pol II)に結合することができるプロモーター配列に機能可能に繋げられており、かつ3’リボザイムコード配列と5’リボザイムコード配列とに挟まれており、複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドの起源が非ウイルス性である、当該組換えDNA分子を提供する。
一実施形態では、コードされるウイルスは一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスである。
一実施形態では、ssRNAウイルスはプラスセンス((+)センス)またはマイナスセンス((−)センス)ssRNAウイルスである。
一実施形態では、(+)センスssRNAウイルスはピコルナウイルスである。
一実施形態では、ピコルナウイルスはセネカバレーウイルス(SVV)またはコクサッキーウイルスである。
一実施形態では、組換えDNA分子は、非ウイルス性送達ビヒクルによって細胞内に導入されたときに感染性の溶解性ウイルスを生み出すことができる。
一実施形態では、組換えDNA分子はさらに、外来搭載薬タンパク質をコードするポリヌクレオチド配列を含む。
一実施形態では、外来搭載薬タンパク質は、蛍光タンパク質、酵素タンパク質、サイトカイン、ケモカイン、細胞表面受容体に対するリガンド、または細胞表面受容体に結合することができる抗原結合性分子である。
一実施形態では、サイトカインがIL−18である。
一実施形態では、細胞表面受容体に対するリガンドはFlt3リガンドである。
一実施形態では、ケモカインはCXCL10及びCCL4から選択される。
一実施形態では、抗原結合性分子は、免疫チェックポイント受容体に対する結合及び阻害を行うことができる。
一実施形態では、免疫チェックポイント受容体はPD1である。
一実施形態では、複製可能ウイルスゲノムをコードする核酸配列の中にマイクロRNA(miRNA)標的配列(miR−TS)カセットが挿入されており、miR−TSカセットは1つ以上のmiRNA標的配列を含み、細胞における対応する1つ以上のmiRNAの発現は、細胞におけるコードされるウイルスの複製を阻害する。
一実施形態では、1つ以上のmiRNAは、miR−124、miR−1、miR−143、miR−128、miR−219、miR−219a、miR−122、miR−204、miR−217、miR−137、及びmiR−126から選択される。
一実施形態では、miR−TSカセットは、miR−124標的配列の1つ以上のコピー、miR−1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−143標的配列の1つ以上のコピーを含む。
一実施形態では、miR−TSカセットは、miR−128標的配列の1つ以上のコピー、miR−219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−122標的配列の1つ以上のコピーを含む。
一実施形態では、miR−TSカセットは、miR−128標的配列の1つ以上のコピー、miR−204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−219標的配列の1つ以上のコピーを含む。
一実施形態では、miR−TSカセットは、miR−217標的配列の1つ以上のコピー、miR−137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−126標的配列の1つ以上のコピーを含む。
一実施形態では、組換えDNA分子は、複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含むプラスミドである。
一態様では、本開示は、複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含む組換えDNA分子であって、複製可能ウイルスをコードするポリヌクレオチド配列の起源が非ウイルス性であり、組換えDNA分子が、非ウイルス性送達ビヒクルによって細胞内に導入されたときに複製可能ウイルスを生み出すことができる、当該組換えDNA分子を提供する。
一実施形態では、複製可能ウイルスゲノムは、DNAウイルスのゲノムまたはRNAウイルスのゲノムである。
一実施形態では、DNAゲノムまたはRNAゲノムは二本鎖または一本鎖ウイルスである。
一実施形態では、一本鎖ゲノムはプラスセンス((+)センス)またはマイナスセンス((−)センス)ゲノムである。
一実施形態では、細胞は哺乳動物細胞である。
一実施形態では、細胞は、哺乳動物対象の中に存在している哺乳動物細胞である。
一実施形態では、複製可能ウイルスは、アデノウイルス、コクサッキーウイルス、ウマヘルペスウイルス、単純ヘルペスウイルス、インフルエンザウイルス、ラッサウイルス、マラバウイルス、麻疹ウイルス、マウス白血病ウイルス、粘液腫ウイルス、ニューカッスル病ウイルス、オルトミクソウイルス、パルボウイルス、ポリオウイルス(PVS−RIPOなどのキメラポリオウイルスを含む)、レオウイルス、セネカバレーウイルス(例えば、Seneca A)、シンドビスウイルス、ワクチニアウイルス及び水疱性口炎ウイルスからなる群から選択される。
一実施形態では、組換えDNAポリヌクレオチドはさらに、複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドの中に挿入された1つ以上のマイクロRNA(miRNA)標的配列(miR−TS)カセットをさらに含み、miR−TSカセットは1つ以上のmiRNA標的配列を含み、細胞における対応する1つ以上のmiRNAの発現は、細胞におけるコードされるウイルスの複製を阻害する。
一実施形態では、1つ以上のmiR−TSカセットは1つ以上の必須ウイルス遺伝子の5’非翻訳領域(UTR)または3’UTRの中に組み込まれている。
一実施形態では、1つ以上の必須ウイルス遺伝子は、UL1、UL5、UL6、UL7、UL8、UL9、UL11、UL12、UL14、UL15、UL17、UL18、UL19、UL20、UL22、UL25、UL26、UL26.5、UL27、UL28、UL29、UL30、UL31、UL32、UL33、UL34、UL35、UL36、UL37、UL38、UL39、UL40、UL42、UL48、UL49、UL50、UL52、UL53、UL54、US1、US3、US4、US5、US6、US7、US8、US12、ICP0、ICP4、ICP22、ICP27、ICP47、PB、F、B5R、SERO−1、Cap、Rev、VP1〜4、核タンパク質(N)、リンタンパク質(P)、マトリックスタンパク質(M)、糖タンパク質(G)、ポリメラーゼ(L)、E1、E2、E3、E3、VP1、VP2、VP3、VP4、2A、2B、2C、3A、3B、3C、及び3Dからなる群から選択される。
一実施形態では、1つ以上のmiR−TSカセットは1つ以上の非必須遺伝子の5’非翻訳領域(UTR)または3’UTRの中に組み込まれている。
一実施形態では、ポリヌクレオチドは、レプリコン、プラスミド、コスミド、ファージミド、トランスポゾン、細菌人工染色体、酵母人工染色体、または末端閉鎖型線形二本鎖腫瘍溶解性ウイルス(Ov)DNA分子から選択される核酸ベクターの中に挿入されている。
一実施形態では、ポリヌクレオチドは、DNAポリヌクレオチドであり、さらに、複製可能ウイルスゲノムをコードする核酸配列の5’末端に第1AAV由来末端逆位反復配列(ITR)、及び複製可能ウイルスゲノムをコードする核酸配列の3’末端に第2AAV由来ITRを含む。
一実施形態では、ポリヌクレオチドは、DNAポリヌクレオチドであり、さらに、複製可能ウイルスゲノムをコードする核酸配列のすぐ3’側の第1リボザイムコード配列、及び複製可能ウイルスゲノムをコードする核酸配列のすぐ5’側の第2リボザイムコード配列を含む。
一実施形態では、第1及び第2リボザイムコード配列は、ハンマーヘッド型リボザイムまたはデルタ肝炎ウイルスリボザイムをコードする。
一実施形態では、プロモーター配列は、真核生物RNAポリメラーゼに結合することができる。
一実施形態では、プロモーター配列は、哺乳動物RNAポリメラーゼに結合することができる。
一実施形態では、ポリヌクレオチドはDNAポリヌクレオチドであり、哺乳動物ポリメラーゼが感染性複製可能RNAウイルスの転写を促す。
一実施形態では、ポリヌクレオチドはDNAポリヌクレオチドであり、哺乳動物ポリメラーゼが感染性複製可能DNAウイルスの転写を促す。
一実施形態では、プロモーター配列は選択的にがん細胞におけるポリヌクレオチドの転写を促す。
一実施形態では、プロモーター配列は、hTERT、HE4、CEA、OC、ARF、CgA、GRP78、CXCR4、HMGB2、INSM1、メソテリン、OPN、RAD51、TETP、H19、uPAR、ERBB2、MUC1、Frz1、またはIGF2−P4からなる群から選択される遺伝子に由来する。
一実施形態では、組換えDNAポリヌクレオチドはさらに、細胞毒性ポリペプチド、サイトカイン、ケモカイン、抗原結合性分子、細胞表面受容体に対するリガンド、可溶性受容体、酵素、サソリポリペプチド、ヘビポリペプチド、クモポリペプチド、ハチポリペプチド、カエルポリペプチド及び治療用核酸からなる群から選択される搭載薬分子をコードする核酸配列を含む。
一実施形態では、1つ以上のmiR−TSカセットは、搭載薬分子をコードする核酸配列の5’非翻訳領域(UTR)または3’UTR配列の中に組み込まれている。
一実施形態では、細胞毒性ポリペプチドは、p53、ジフテリア毒素(DT)、シュードモナス外毒素A(PEA)、I型リボソーム不活性化タンパク質(RIP)、II型RIP、または志賀様毒素1(Slt1)から選択される。
一実施形態では、酵素は、メタロプロテアーゼ、コラゲナーゼ、エラスターゼ、ヒアルロニダーゼ、カスパーゼ、ゼラチナーゼ、または遺伝子指向性酵素プロドラッグ療法(GDEPT)システムの一部であり単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ、シトシンデアミナーゼ、ニトロレダクターゼ、カルボキシペプチダーゼG2、プリンヌクレオシドホスホリラーゼもしくはシトクロムP450から選択される酵素から選択される。
一実施形態では、ゼラチナーゼは線維芽細胞活性化タンパク質(FAP)である。
一実施形態では、メタロプロテアーゼはマトリックスメタロプロテアーゼ(例えばMMP9)またはADAM17である。
一実施形態では、サイトカインは、オステオポンチン、IL−13、TGFβ、IL−35、IL−18、IL−15、IL−2、IL−12、IFNα、IFNβ、IFNγからなる群から選択される。
一実施形態では、ケモカインは、CXCL10、CCL4、CCL5、CXCL9及びCCL21から選択される。
一実施形態では、細胞表面受容体に対するリガンドは、NKG2Dリガンド、ニューロピリンリガンド、Flt3リガンド、CD47リガンドである。
一実施形態では、抗原結合性分子は、PD−1、PDL−1、CTLA4、CCR4、OX40、CD200R、CD47、CSF1R、EphA2、CD19、EpCAM、CEA、PSMA、CD33、EGFR、CCR4、CD200、CD40、CD47、HER2、DLL3、4−1BB、17−1A、GD2、及び表7中に列挙されている腫瘍抗原のうちの任意の1つ以上からなる群から選択される細胞表面抗原に結合する。
一実施形態では、サソリポリペプチドは、クロロトキシン、BmKn−2、ネオプラジン1、ネオプラジン2及びマウリポリン(mauriporin)からなる群から選択される。
一実施形態では、ヘビポリペプチドは、コントルトロスタチン、アポキシンI、ボトロプストキシンI、BJcuL、OHAP−1、ロドストミン(rhodostomin)、drCT−I、CTX−III、B1L、及びACTX−6からなる群から選択される。
一実施形態では、クモポリペプチドは、ラタルシン及びヒアルロニダーゼからなる群から選択される。
一実施形態では、ハチポリペプチドは、メリチン及びアパミンからなる群から選択される。
一実施形態では、カエルポリペプチドは、PsT−1、PdT−1、及びPdT−2からなる群から選択される。
一実施形態では、搭載薬タンパク質は免疫細胞に対して作用する。
一実施形態では、免疫細胞は、T細胞、B細胞、ナチュラルキラー(NK)細胞、NKT細胞、マクロファージ、及び/または樹状細胞からなる群から選択される。
一実施形態では、搭載薬ポリペプチドは、ヒト細胞表面抗原に結合することができる第1ドメインと、ヒト腫瘍細胞抗原に結合することができる第2ドメインとを含む二分ポリペプチドである。
一実施形態では、二分ポリペプチドの片方または両方のドメインは、抗体、一本鎖可変断片(scFv)、F(ab)、免疫グロブリン重鎖可変ドメイン、ダイアボディ、フレキシボディ、DOCK−AND−LOCKTM抗体、及びモノクローナル抗イディオタイプ抗体(mAb2)からなる群から選択される抗原結合性分子である。
一実施形態では、二分ポリペプチドは、二重可変ドメイン抗体(DVD−IgTM)、二重特異性T細胞係合子(BiTETM)、DuoBody(登録商標)、二重親和性再指向性(DART)ポリペプチドまたはTandab(登録商標)である。
一実施形態では、抗体は、操作されたFcドメインを有するIgG抗体である。
一実施形態では、治療用核酸は、アンタゴミール、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、リボザイムまたはアプタマーである。
一実施形態では、miR−TSカセット中に含まれたmiRNA標的配列に結合するmiRNAが発現している細胞においてポリヌクレオチドは複製されない、または最小限に複製される。
一実施形態では、miRNAは表3から選択される。
一実施形態では、1つ以上のmiRNAは、miR−124、miR−1、miR−143、miR−128、miR−219、miR−219a、miR−122、miR−204、miR−217、miR−137、及びmiR−126から選択される。
一実施形態では、miR−TSカセットは、miR−124標的配列の1つ以上のコピー、miR−1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−143標的配列の1つ以上のコピーを含む。
一実施形態では、miR−TSカセットは、miR−128標的配列の1つ以上のコピー、miR−219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−122標的配列の1つ以上のコピーを含む。
一実施形態では、miR−TSカセットは、miR−128標的配列の1つ以上のコピー、miR−204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−219標的配列の1つ以上のコピーを含む。
一実施形態では、miR−TSカセットは、miR−217標的配列の1つ以上のコピー、miR−137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−126標的配列の1つ以上のコピーを含む。
一実施形態では、組換えDNA分子は、自己複製性ポリヌクレオチドを含むプラスミドである。
一態様では、本開示は、組換えDNA分子であって、ウイルスゲノムのセンス配列を含む第1一本鎖DNA(ssDNA)分子、及びウイルスゲノムのアンチセンス配列を含む第2ssDNA分子を含み、第1及び第2ssDNA分子の各々が3’末端逆位反復配列及び5’末端逆位反復配列を含むものであり、センスssDNA分子の3’末端がアンチセンスssDNA分子の5’末端に共有結合で繋げられかつセンスssDNA分子の5’末端がアンチセンスssDNA分子の3’末端に共有結合で繋げられて末端閉鎖型線形二本鎖腫瘍溶解性ウイルス(Ov)DNA分子を形成している、当該組換えDNA分子を提供する。
一実施形態では、コードされるウイルスはマイナスセンスまたはプラスセンス一本鎖(ss)RNAウイルスである。
一実施形態では、プラスセンスssRNAウイルスはポリオウイルス(PV)である。
一実施形態では、マイナスセンスssRNAウイルスは水疱性口炎ウイルス(VSV)ゲノムである。
一実施形態では、第1及び第2ssDNA分子の各々はさらに、ウイルスゲノム配列のすぐ5’側のリボザイムコード配列、及びウイルスゲノム配列のすぐ3’側のリボザイムコード配列を含む。
一実施形態では、ウイルスゲノムは、1つ以上の必須ウイルス遺伝子の中に挿入された1つ以上のマイクロRNA(miRNA)標的配列を含む。
一実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、1つ以上の必須ウイルス遺伝子の3’非翻訳領域(UTR)及び/または5’UTRの中に挿入されている。
一実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つまたはそれより多くの必須ウイルス遺伝子の中に挿入されている。
一実施形態では、少なくとも2つ、少なくとも3つまたは少なくとも4つのmiRNA標的配列が1つ以上の必須ウイルス遺伝子の中に挿入されている。
一実施形態では、少なくとも2つ、少なくとも3つまたは少なくとも4つのmiRNA標的配列は、1つのmiRNAの標的配列を含む。
一実施形態では、少なくとも2つ、少なくとも3つまたは少なくとも4つのmiRNA標的配列は、少なくとも2つ、少なくとも3つまたは少なくとも4つの異なるmiRNAの標的配列を含む。
一実施形態では、ウイルスゲノムはVSVゲノムであり、1つ以上のmiRNA標的配列は、核タンパク質(N)、リンタンパク質(P)、マトリックスタンパク質(M)、糖タンパク質(G)及び/またはポリメラーゼ(L)タンパク質をコードする遺伝子の1つ以上の中に挿入されている
一実施形態では、ウイルスゲノムはPVゲノムであり、1つ以上のmiRNA標的配列は、VP1、VP2、VP3、VP4、2A、2B、2C、3A、3B(VPg)、3Cまたは3Dタンパク質をコードする遺伝子の1つ以上の中に挿入されている。
一実施形態では、3’及び5’ITRはAAVに由来する。
一実施形態では、AAVはAAV2である。
一態様では、本開示は、有効量の組換えDNA分子と、哺乳動物対象への投与に適した担体とを含む組成物を提供する。
一態様では、本開示は、任意の本開示の組換えDNA分子を含む粒子を提供する。
一実施形態では、粒子は生分解性である。
一実施形態では、粒子は、ナノ粒子、エクソソーム、リポソーム及びリポプレックスからなる群から選択される。
一実施形態では、エクソソームは、完全エクソソームまたは空エクソソームに由来する改変型エクソソームである。
一実施形態では、ナノ粒子は、カチオン性脂質、コレステロール及び中性脂質を含む脂質ナノ粒子(LNP)である。
一実施形態では、カチオン性脂質は1,2−ジオレオイル−3−トリメチルアンモニウム−プロパン(DOTAP)であり、中性脂質は1,2−ジラウロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DLPE)または1,2−ジオレオイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DOPE)である。
一実施形態では、LNPはさらにリン脂質−ポリマー複合体を含み、リン脂質−ポリマー複合体は、1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−ポリ(エチレングリコール)(DSPE−PEG)、または1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−N−[アミノ(ポリエチレングリコール)](DSPE−PEG−アミン)である。
一実施形態では、ヒアルロナンはLNPの表面と複合している。
一態様では、本開示は、複数の脂質ナノ粒子を含む治療用組成物であって、複数のLNPの平均粒径が約150nm〜約500nmである、当該治療用組成物を提供する。
一実施形態では、複数のLNPの平均粒径は、約200nm〜約500nm、約300nm〜約500nm、約350nm〜約500nm、約400nm〜約500nm、約425nm〜約500nm、約450nm〜約500nm、または約475nm〜約500nmである。
一実施形態では、複数のLNPの平均ゼータ電位は、約−20mV未満、約−30mV未満、約35mV未満、または約−40mV未満である。
一実施形態では、複数のLNPの平均ゼータ電位は、約−50mV〜約−20mV、約−40mV〜約−20mV、または約−30mV〜約−20mVである。
一実施形態では、複数のLNPの平均ゼータ電位は、約−30mV、約−31mV、約−32mV、約−33mV、約−34mV、約−35mV、約−36mV、約−37mV、約−38mV、約−39mV、または約−40mVである。
一実施形態では、対象への組成物の送達によってカプセル封入DNA発現カセットが標的細胞に送達され、カプセル封入DNA発現カセットは、標的細胞を溶解させることができる感染性ウイルスを生み出す。
一実施形態では、組成物は静脈内または腫瘍内に送達される。
一実施形態では、標的細胞はがん細胞である。
一態様では、本開示は、任意の本開示のポリヌクレオチドを含む無機粒子を提供する。
一実施形態では、無機粒子は、金ナノ粒子(GNP)、金ナノロッド(GNR)、磁気ナノ粒子(MNP)、磁気ナノチューブ(MNT)、カーボンナノホーン(CNH)、カーボンフラーレン、カーボンナノチューブ(CNT)、リン酸カルシウムナノ粒子(CPNP)、メソポーラスシリカナノ粒子(MSN)、シリカナノチューブ(SNT)、または星状中空シリカナノ粒子(SHSN)からなる群から選択される。
一実施形態では、粒子の平均直径は、約500nm未満である、約250nm〜約500nmである、または約350nmである。
一態様では、本開示は、がん細胞を死滅させる方法であって、粒子を上記がん細胞に細胞内送達するのに十分な条件の下で、がん細胞を、請求項122〜140のいずれか1項に記載の粒子もしくは組成物、またはその組成物に曝露することを含み、カプセル封入ポリヌクレオチドによって生み出される複製可能ウイルスががん細胞の死滅をもたらす、当該方法を提供する。
一実施形態では、複製可能ウイルスは非がん性細胞では生み出されない。
一実施形態では、方法は、生体内、試験管内または生体外で実施される。
一態様では、本開示は、対象のがんを治療する方法であって、がんに罹患している対象に有効量の、請求項122〜140のいずれか1項に記載の粒子もしくは組成物、またはその組成物を投与することを含む、当該方法を提供する。
一実施形態では、粒子またはその組成物は、静脈内に投与される、鼻腔内に投与される、吸入剤として投与される、または腫瘍中に直接注射される。
一実施形態では、粒子またはその組成物が対象に繰り返し投与される。
一実施形態では、対象は、マウス、ラット、ウサギ、ネコ、イヌ、ウマ、非ヒト霊長類またはヒトである。
一実施形態では、がんは、肺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌、前立腺癌、精巣癌、大腸癌、結腸癌、膵臓癌、肝臓癌、胃癌、頭頸部癌、甲状腺癌、悪性神経膠腫、神経膠芽腫、メラノーマ、B細胞慢性リンパ球性白血病、びまん性大細胞型B細胞リンパ腫(DLBCL)、及び辺縁帯リンパ腫(MZL)から選択される。
一実施形態では、肺癌は小細胞肺癌または非小細胞肺癌である。
一実施形態では、肝臓癌が肝細胞癌腫(HCC)である。
一態様では、本開示は、先行請求項のいずれかに記載の組換えDNA分子を製造する方法であって、組換えDNA分子を第1ウイルス発現ベクターの中に挿入することを含み、組換えDNA分子がポリヌクレオチドの5’アデノ随伴ウイルス(AAV)由来末端逆位反復配列(ITR)及び3’AAV由来ITR末端を含むものであり、ITRによって媒介される複製に必要とされるAAVタンパク質をコードするポリヌクレオチドを第2ウイルス発現ベクターの中に挿入すること、ならびに第1及び第2ウイルス発現ベクターを細胞に細胞内送達することを含み、組換えDNA分子がゲノムの中に安定的に組み込まれ、細胞が、ITRに挟まれたポリヌクレオチドを、ITRの非存在下で生み出される場合よりも多い量で産生する、当該方法を提供する。
一実施形態では、ウイルス発現ベクターはヘルペスウイルスまたはバキュロウイルスである。
ポリヌクレオチドゲノムの由来となり得る多種多様なDNAまたはRNAウイルスの例を示す。 自己複製性ポリヌクレオチドを中に封入しておりグリコサミノグリカン(CAG)ヒアルロナン(HA)で被覆されている脂質系ナノ粒子の例を示す(http://www.quietx.com)。 腫瘍を標的とするナノ粒子の中に封入された自己複製性ポリヌクレオチドによるがんの治療の例を示す。 A〜Bは、トランスで発現するRep52及びRep78を使用して5’及び3’ITRを含む自己複製性ウイルスゲノムを増殖させるため(A)ならびに、内在Repカセットを使用して5’及び3’ITRを含む自己複製性ウイルスゲノムを増幅させるため(B)の複製性HSVベクターの例を示す。gB:NT=gB遺伝子におけるウイルス進入増進性の二重突然変異;BAC=loxPに挟まれたクロラムフェニコール耐性及びlacZ配列;Δ接合部=ICP4遺伝子の1つのコピーを含めた全ての内在反復領域の欠失;ITR=AAVに由来する末端逆位反復配列;Pol IIp=恒常的Pol IIプロモーター;Repカセット=ITRに挟まれたウイルスゲノムDNAの複製のためのAAV Rep52及びRep78をコードするカセット;任意選択のmiRNA転写減衰は斜線縞模様の四角で示されている。 A〜Bは、トランスで発現するRep52及びRep78を使用して5’及び3’ITRを含む自己複製性ポリヌクレオチドを増殖させるため(A)ならびに、内在Repカセットを使用して5’及び3’ITRを含む自己複製性ウイルスゲノムを増幅させるため(B)の非複製性HSVベクターの例の例を示す。gB:NT=gB遺伝子におけるウイルス進入増進性の二重突然変異;BAC=loxPに挟まれたクロラムフェニコール耐性及びlacZ配列;Δ接合部=ICP4遺伝子の1つのコピーを含めた全ての内在反復領域の欠失;ITR=AAVに由来する末端逆位反復配列;Pol IIp=恒常的Pol IIプロモーター;Repカセット=ITRに挟まれたウイルスゲノムDNAの複製のためのAAV Rep52及びRep78をコードするカセット;任意選択のmiRNA転写減衰は斜線縞模様の四角で示されている。 A〜Bは、プラス鎖RNAポリオウイルスI型ゲノムをコードするポリヌクレオチドの図を示す。ポリヌクレオチドは場合によって5’及び3’末端においてAAV由来ITRと隣接し得る(A及びB)。ポリヌクレオチドは場合によって、miRNA転写減衰のための1つ以上のmiRNA標的配列カセット(miR TSカセット)を含み得る(B)。 A〜Bは、ポリオウイルスI型ゲノムをコードする自己複製性ポリヌクレオチドを生み出すための、複製性HSVベクターの例を示す。ポリオウイルスゲノムは、場合によって、miRNA転写減衰のためのmiRNA標的部位を含み得る(斜線縞模様の四角で示されている)。Bは、5’及び3’末端においてAAV由来ITRと隣接しているポリオウイルスI型ゲノムをコードする自己複製性ポリヌクレオチドを生み出すための複製性HSVベクターを示す。gB:NT=gB遺伝子におけるウイルス進入増進性の二重突然変異;BAC=loxPに挟まれたクロラムフェニコール耐性及びlacZ配列;ΔUL19=主要カプシドタンパク質VP5をコードするUL19遺伝子の欠失;Δ接合部=ICP4遺伝子の1つのコピーを含めた全ての内在反復領域の欠失;Pol IIp=恒常的RNA Pol IIプロモーター;Repカセット=ITRに挟まれたウイルスゲノムDNAの複製のためのAAV Rep52及びRep78をコードするカセット;ポリオウイルスゲノムカセット=HSVゲノムの遺伝子間遺伝子座に挿入されている、転写によって生み出されるプラス鎖ゲノム;任意選択のmiRNA転写減衰は斜線縞模様の四角で示されている。 A〜Cは、非小細胞肺癌(A)、肝細胞癌腫(B)及び前立腺癌(C)などの特定のがんを治療するためのポリオウイルスI型ポリヌクレオチドゲノムの例を示す。 同上。 A〜Bは、水疱性口炎ウイルス(VSV)ゲノムをコードする自己複製性ポリヌクレオチドの例を示す。ポリヌクレオチドは場合によって5’及び3’末端においてAAV由来ITRと隣接し得る(B)。ポリヌクレオチドは場合によって、斜線縞模様の四角で示されているmiRNA転写減衰のための1つ以上のmiRNA標的配列を含み得る(B)。 A〜Bは、VSVゲノムポリヌクレオチドゲノムを生み出すための複製性HSVベクターの例を示す。VSVゲノムは場合によって、miRNA転写減衰のためのmiRNA標的部位を含み得る(A及びB)。Bは、5’及び3’末端においてAAV由来ITRと隣接しているVSVゲノムを生み出すための複製性HSVベクターを示す。gB:NT=gB遺伝子におけるウイルス進入増進性の二重突然変異;BAC=loxPに挟まれたクロラムフェニコール耐性及びlacZ配列;Δ接合部=ICP4遺伝子の1つのコピーを含めた全ての内在反復領域の欠失;ΔUL19=主要カプシドタンパク質VP5をコードするUL19遺伝子の欠失;VSVゲノムカセット=アンチゲノム(マイナス鎖)VSVゲノムと、必須VSV遺伝子N、P及びLをコードする哺乳動物発現カセットとがマイナス鎖VSVゲノム及び必須VSV遺伝子の転写のための双方向性Pol IIプロモーター(BD Pol IIp)を伴ってHSVゲノムの遺伝子間遺伝子座に挿入されたもの;任意選択のmiRNA転写減衰は斜線縞模様の四角で示されている;Repカセット=ITRに挟まれたウイルスゲノムDNAの複製のためのAAV Rep52及びRep78をコードするカセット;Pol IIp=恒常的Pol IIプロモーター。 A〜Cは、肝細胞癌腫(A)、前立腺癌(B)及び非小細胞肺癌(C)などの特定のがんを治療するためのVSVポリヌクレオチドゲノムの例を示す。 同上。 A〜Bは、アデノウイルスポリヌクレオチドゲノムの例を示す。AAVゲノムは場合によって、斜線縞模様の四角で示されているmiRNA転写減衰のためのmiRNA標的部位を含み得る(B)。 A〜Cは、肝細胞癌腫(A)、前立腺癌(B)及び非小細胞肺癌(C)などの特定のがんを治療するためのAAVポリヌクレオチドゲノムの例を示す。 CVBウイルスゲノムの模式図を示す。CVB3は、約7.4kbのゲノムサイズを有する+センスのssRNAピコルナウイルスである。 コクサッキーウイルスA21構築物の模式図を示す。 セネカバレーウイルス(SVV)構築物の模式図を示す。 ITRに挟まれた腫瘍溶解性ウイルス(OV)DNAカセットと、Repカセットとを含む組換えHSV−1細菌人工染色体(BAC)ベクターを示す。 Repカセット及びA/Cヘテロ二量体AP21967によるRep発現の対照を示す。 A〜Dは、図17に示すシステムによって生み出されるNanoV構築物の単量体及び二量体を示す。Aは、NanoV単量体及び二量体の構造及び大きさを示す。Bは、制限酵素消化後の予測される単量体及び二量体のゲル分析を示す。Cは、NanoV構築物の模式図を内在PCRプライマーの場所と共に示す。Dは、内在プライマーを使用したNanoVのPCR増幅を示す。 同上。 A〜Cは、予測される配向でのNanoVコンカテマーの生成を示す。Aは、NanoV単量体中のAflII切断部位の場所を示す。Bは、あり得るコンカテマー配向、及び予測されるAflII切断産物の大きさを示す。Cは、AflII消化されたNanoV DNAのゲル分析を示す。 同上。 NanoV DNA構築物からのmCherryの発現を示す。 3’及び5’リボザイム配列を含むピコルナウイルス構築物の模式図を示す。 A〜Bは、複製可能セネカバレーウイルス(SVV)をコードするポリヌクレオチドの設計及び培養プロトコールの図式を描写する。Aは、哺乳動物5’及び3’UTR配列とハンマーヘッド型リボザイムとデルタ肝炎リボザイムとを含むキャップ形成されポリアデニル化された転写産物を示す。Bは、感染性SVVを生み出すための培養プロトコールの模式図を示す。 SVVリボザイム(WT)及びSVV−mCherryリボザイムをコードするdsDNAでトランスフェクトされた293T細胞から産生されたウイルスによる単層の溶解を実証するクリスタルバイオレット染色を示す。 A〜Cは、図23に示すSVV転写産物からの3つの異なる外来搭載薬の発現を示す。図20Aは、mCherryの明視野及び蛍光顕微鏡観察を示す。図20Bは、ナノルシフェラーゼ(nanoluciferase)アッセイの結果を示す。図25Cは、CXCL10発現を示す。 SVVコードプラスミド構築物のmiRNA転写減衰を示す。 A〜Bは、生体内での感染性ウイルスの産生、及び腫瘍内に送達されたSVVコードDNAプラスミドによる腫瘍成長の阻害を示す。Aは、SVVコードプラスミドを腫瘍内に投与した後の腫瘍成長の阻害を示す。 A〜Bは、生体内での感染性ウイルスの産生、及び腫瘍内に送達されたSVVコードDNAプラスミドによる腫瘍成長の阻害を示す。Bは、Aに示す実験から採取された粉砕腫瘍からの生ウイルスの単離を示す。 A〜Bは、腫瘍内に送達されたSVVコードDNAプラスミドによる外来搭載薬の生体内での発現を示す。図22Aは、プラスミドDNAを腫瘍内に注射した後に腫瘍溶解物において検出された平均放射輝度を示す。図22Bは、プラスミドDNAを腫瘍内に注射した後に腫瘍溶解物において検出されたCXCL10レベルを示す。 静脈内送達後の腫瘍部位へのSVVコードプラスミドの送達を示す。 LNP内に封入されたSVVコードプラスミドDNAを静脈内に送達した後の腫瘍成長の阻害を示す。 SVVコードプラスミドのマップを示す。 CVA21コードプラスミドのマップを示す。 別個の3’及び5’天然末端を有する+センスssRNAウイルスゲノムを生み出すためのシステムを示す。 別個の3’及び5’天然末端を有する+センスssRNAウイルスゲノムを生み出すためのシステムを示す。
当技術分野では、中和抗体の存在下で有効であり、繰り返し全身投与されることができ、複製が疾患細胞に限られ、それゆえ正常な非がん性細胞に対する副次的損傷を最小限に抑えながら治療有効性を最大化させる、自己複製性ウイルス療法が必要とされている。本開示は、これらの障壁を克服し、脂質ナノ粒子、ポリマーナノ粒子またはエクソソームなどの非免疫原性粒子の中に封入され得る複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドを提供する。いくつかの実施形態では、本開示は、複製可能ウイルスをコードする組換えDNA分子、ならびに増殖性疾患及び障害(例えばがん)の治療及び防止のための使用方法を提供する。特定の実施形態では、組換えDNA分子はさらに、治療用分子をコードするポリヌクレオチド配列を含む。本開示は、多様な増殖性障害(例えばがん)を治療するのに適した安全で有効な組換えポリヌクレオチドベクターの全身送達を可能にする。
本明細書中で使用する節の見出しは構成上の目的のためのものであるにすぎず、記載される主題を限定しているとみなされるべきでない。本明細書中で引用される全ての文書または文書の一部は、限定されないが特許、特許出願、論文、書籍及び論説を含めて、これをもって参照によりそれらの全体をあらゆる目的のために明示的に援用される。援用される文書または文書の一部の1つ以上が本願における用語の定義に矛盾した用語を定義している場合には、本願の中で出現する定義が優先される。しかしながら、本明細書中で引用されるいかなる参考文献、論文、刊行物、特許、特許公報及び特許出願に関する言及も、それらが正当な先行技術を構成するかまたは世界のいずれかの国での一般的常識の一部を形成するということの承認または何らかのかたちでの示唆としてみなされず、また、みなされるべきでない。
I.定義
本記載において、いかなる濃度範囲、百分率範囲、比率範囲または整数範囲も、別段の指示がない限り列挙された範囲の中に入る任意の整数の値、適切な場合にはその小数(例えば整数の10分の1及び100分の1)を含んでいると理解されるべきである。本明細書中で使用する「a」及び「an」という用語は、別段の指定がない限り列挙される構成要素の「1つ以上」を指すと理解されるべきである。選択肢(例えば、「または」)の使用は、選択肢の1つ、両方またはその任意の組合せを意味すると理解されるべきである。本明細書中で使用する場合、「含む(include)」及び「含む(comprise)」という用語は同義的に使用される。本明細書中で使用する場合、「複数」は1つ以上の構成要素(例えば1つ以上のmiRNA標的配列)を指し得る。本願において、「または」の使用は、特段の定めがない限り、「及び/または」を意味する。
本願の中で使用する場合、「約」及び「およそ」という用語は同義語として使用される。本願の中で使用される、約/およそが付いているかまたは付いていないいかなる数字も、関連技術分野で通常の技能を有する者によって認識される任意の通常の変動を包含することが意図される。特定の実施形態では、「およそ」または「約」という用語は、特段の定めがない限り、または文脈から明らかでない限り、指定された基準値の両方向(上下)に25%、20%、19%、18%、17%、16%、15%、14%、13%、12%、11%、10%、9%、8%、7%、6%、5%、4%、3%、2%、1%またはそれ未満のうちに入る値の範囲を指す(但し、そのような数が可能な値の100%を超えることになる場合は除く)。
「減少する」または「低下させる」は、特定の値が基準値に比べて少なくとも5%、例えば、5、6、7、8、9、10、15、20、25、30、35、40、45、50、55、60、65、70、75、80、85、90、95、99または100%減少または低下することを指す。特定の値の減少または低下はまた、基準値と比べたときの値の変化倍率、例えば、基準値に比べて少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、30、40、50、60、70、80、90、100、200、500、1000倍またはそれ以上の減少としても表され得る。
「増加」は、特定の値が基準値に比べて少なくとも5%、例えば、5、6、7、8、9、10、15、20、25、30、35、40、45、50、55、60、65、70、75、80、85、90、95、99、100、200、300、400、500%またはそれ以上増加することを指す。特定の値の増加はまた、基準値と比べたときの値の変化倍率、例えば、基準値のレベルに比べて少なくとも1倍、2、3、4、5、6、7、8、9、10、15、20、30、40、50、60、70、80、90、100、200、500、1000倍またはそれ以上の増加としても表され得る。
「配列同一性」という用語は、2つのポリヌクレオチドまたはポリペプチド配列の間で同一でありかつ同じ相対位置にある塩基またはアミノ酸の百分率を指す。したがって、あるポリヌクレオチドまたはポリペプチド配列は、別のポリヌクレオチドまたはポリペプチドと比較して特定の配列同一性百分率を有する。配列比較のためには、典型的には1つの配列が、試験配列との比較に供される基準配列としての役割を果たす。「基準配列」という用語は、試験配列との比較に供される分子を指す。
「相補的」は、天然または非天然の(例えば上記のように改変された)塩基(ヌクレオシド)またはその類縁体を含む2つの配列の間での塩基スタッキング及び特異的水素結合によって対合する能力を指す。例えば、核酸のある位置の塩基が、標的の対応する位置の塩基と水素結合することができる場合には、塩基は互いにその位置で相補的であるとみなされる。核酸は、ユニバーサル塩基、または水素結合に正または負の寄与を何ら提供しない不活性な非塩基性スペーサーを含むことがある。塩基対合には、規範的なワトソン・クリック型塩基対合も、非ワトソン・クリック型の塩基対合(例えば、ゆらぎ(Wobble)塩基対合及びフーグスティーン型塩基対合)も含まれ得る。相補的塩基対合ではアデノシン型塩基(A)がチミジン型塩基(T)またはウラシル型塩基(U)に対して相補的であり、シトシン型塩基(C)がグアノシン型塩基(G)に対して相補的であり、ユニバーサル塩基、例えば3−ニトロピロールまたは5−ニトロインドールが任意のA、C、UまたはTとハイブリダイズすることができ相補的であるとみなされることは理解される。Nichols et al.Nature,1994;369:492−493、及びLoakes et al.Nucleic Acids Res.,1994;22:4039−4043。イノシン(I)も当技術分野ではユニバーサル塩基であるとみなされており、任意のA、C、UまたはTと相補的であるとみなされる。Watkins and SantaLucia,Nucl.Acids Research,2005;33(19):6258−6267を参照されたい。
「発現カセット」または「発現構築物」は、プロモーターに機能可能に繋げられたDNAポリヌクレオチド配列を指す。「機能可能に繋げられる」は、そう記載されている構成要素が、それらの意図される様式でそれらが機能することを可能にする関係性にある状態で並んで配置されていることを指す。例えば、プロモーターがポリヌクレオチド配列の転写または発現に影響を及ぼす場合、プロモーターはポリヌクレオチド配列に機能可能に繋げられている。
「対象」という用語には、動物、例えば哺乳動物などが含まれる。いくつかの実施形態では、哺乳動物は霊長類である。いくつかの実施形態では、哺乳動物はヒトである。いくつかの実施形態では、対象は、ウシ、ヒツジ、ヤギ、乳牛、ブタなどの家畜;または、イヌ及びネコなどの飼育動物である。いくつかの実施形態(例えば、特に研究との関連)では、対象は、齧歯動物(例えば、マウス、ラット、ハムスター)、ウサギ、霊長類またはブタ、例えば近交系ブタなどである。「対象」及び「患者」という用語は本明細書において交換可能に使用される。
「投与」は、本明細書において、薬剤または組成物を対象の中に導入することを指す。
「治療すること」は、本明細書中で使用される場合、薬剤または組成物を対象に送達して生理学的転帰に影響を及ぼすことを指す。いくつかの実施形態では、治療は、細胞の集団(例えば、改変型免疫エフェクター細胞の集団)を対象に送達することを含む。いくつかの実施形態では、治療することは、哺乳動物、例えばヒトの疾患の治療を指し、(a)疾患を阻害すること、つまり疾患の進展を阻止するかまたは疾患の進行を防止すること;(b)疾患を緩和すること、つまり疾患状態の退縮を引き起こすこと;(c)疾患を治癒させることを含む。
「有効量」という用語は、特定の生理作用をもたらすために必要とされる薬剤または組成物の最小量(例えば、特定の生理作用を増大させる、活性化させる、及び/または強化するのに必要な量)を指す。特定の薬剤の有効量は、薬剤の性質に基づいて様々な方法、例えば、質量/体積、細胞数/体積、粒子/体積、(薬剤の質量)/(対象の体重)、細胞数/(対象の体重)、または粒子/(対象の体重)で表され得る。特定の薬剤の有効量は、半数効果濃度(EC50)としても表されることもあり、これは、基準レベルと最大応答レベルとの間の半分の大きさの特定の生理応答をもたらす薬剤の濃度を指す。
細胞の「集団」は、1より多い任意の数の細胞を指すが、好ましくは、少なくとも1×10細胞、少なくとも1×10細胞、少なくとも少なくとも1×10細胞、少なくとも1×10細胞、少なくとも1×10細胞、少なくとも1×10細胞、少なくとも1×10細胞、少なくとも1×1010細胞またはそれより多くの細胞を指す。細胞の集団は、試験管内での集団(例えば、培養中の細胞の集団)または生体内での集団(例えば、特定組織に存在する細胞の集団)を指す場合がある。
「エフェクター機能」は、標的細胞または標的抗原に対する免疫応答の発生、維持及び/または増強に関係する免疫細胞の機能を指す。
「マイクロRNA」、「miRNA」及び「miR」という用語は、本明細書において交換可能に使用され、それらの標的となる伝令RNA(mRNA)を分解または翻訳抑制へと向かわせることによって遺伝子発現を調節する長さ約21〜25ヌクレオチドの小さな内因性非コードRNAを指す。
本明細書中で使用する場合、「組成物」という用語は、対象または細胞に投与または送達されることができる本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドまたは粒子内に封入された自己複製性ポリヌクレオチドの配合物を指す。
「薬学的に許容される」という語句は、健全な医学的判断の範囲内で過度の毒性、炎症、アレルギー反応または他の問題もしくは合併症を伴わずにヒト及び動物の組織に接触させて使用するのに適する、合理的なベネフィット/リスク比に見合った化合物、材料、組成物及び/または剤形を指すために本明細書中で使用される。
本明細書中で使用する場合、「薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤」には、ヒト及び/または飼育動物における使用が許容されることが米国食品医薬品局によって承認されている任意の佐剤、担体、賦形剤、滑剤、甘味剤、希釈剤、保存剤、色素/着色剤、香味増強剤、界面活性剤、湿潤剤、分散剤、懸濁化剤、安定化剤、等張化剤、溶媒、界面活性剤及び/または乳化剤が含まれるが、これらに限定されない。
「自己複製性ポリヌクレオチド」という用語は、さらなる外来ポリヌクレオチドまたは外来ベクターの非存在下で宿主細胞内で複製することができる外来ポリヌクレオチドを指す。
「複製可能ウイルスゲノム」という用語は、感染性ウイルス粒子のウイルス複製及び産生に必要なウイルス遺伝子を全てコードするものである本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドにコードされるウイルスゲノムを指す。
「腫瘍溶解性ウイルス」という用語は、がん細胞への優先的な感染をするように改変されているかまたは元来それをするものであるウイルスを指す。
「ベクター」という用語は、本明細書では、別の核酸分子を移動させるかまたは輸送することができる核酸分子を指して使用される。
分子細胞生物学において一般的な方法は、Molecular Cloning:A Laboratory Manual,3rd Ed.(Sambrook et al.,HaRBor Laboratory Press 2001)、Short Protocols in Molecular Biology,4th Ed.(Ausubel et al.eds.,John Wiley &Sons 1999)、Protein Methods(Bollag et al.,John Wiley &Sons 1996)、Nonviral Vectors for Gene Therapy(Wagner et al.eds.,Academic Press 1999)、Viral Vectors(Kaplift &Loewy eds.,Academic Press 1995)、Immunology Methods Manual(I.Lefkovits ed.,Academic Press 1997)、及びCell and Tissue Culture:Laboratory Procedures in Biotechnology(Doyle &Griffiths,John Wiley & Sons 1998)などのような標準的な教材の中に見出すことができ、参照によりこれらの開示内容を援用する。
II.自己複製性ポリヌクレオチド
いくつかの実施形態では、本開示は、非ウイルス性送達ビヒクルによって細胞内に導入されたときに感染性の溶解性ウイルスを生み出すことができる複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドを含む組換え核酸分子を提供する。本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドは、感染性ウイルスを複製及び産生するために追加の外来遺伝子またはタンパク質を細胞内に存在させることを必要としない。もっと正確に言えば、宿主細胞内の内因性転写機構は自己複製性ポリヌクレオチドの最初の第1回目の転写または翻訳を媒介して複製可能ウイルスゲノムを産生する。自己複製性ポリヌクレオチドにコードされるウイルスゲノムは、ウイルスゲノムの複製継続、及び複製可能ウイルスゲノムを含む感染性ウイルス粒子(これはカプシドタンパク質、エンベロープタンパク質及び/または膜タンパク質を含み得る)への組立てに必要なウイルスタンパク質を発現させることができる。かくして、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドにコードされる複製可能ウイルスゲノムは、宿主細胞に感染することができるウイルスを生み出すことができる。
いくつかの実施形態では、組換え核酸分子は、複製可能ウイルスゲノムをコードするDNAポリヌクレオチドを含む組換えDNA分子である。いくつかの実施形態では、組換えDNA分子は、レプリコン、プラスミド、コスミド、ファージミド、トランスポゾン、細菌人工染色体、または酵母人工染色体である。いくつかの実施形態では、組換えDNA分子は、自己複製性ポリヌクレオチドを含むプラスミドである。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、自己複製性ポリヌクレオチドの転写を促すかまたは調節するプロモーターなどの転写制御エレメントに機能可能に繋げられた自己複製性ポリヌクレオチド(例えば、複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド)を含む。いくつかの実施形態では、転写制御エレメントは、哺乳動物プロモーター配列である。いくつかの実施形態では、哺乳動物プロモーター配列は、哺乳動物RNAポリメラーゼに結合することができる。例えば、いくつかの実施形態では、哺乳動物プロモーター配列は、RNAポリメラーゼII(Pol II)プロモーターである。いくつかの実施形態では、哺乳動物プロモーターは、恒常的プロモーター、例えば、CAG、UbC、EF1aまたはPGKプロモーターである。いくつかの実施形態では、転写制御エレメントはファージ由来プロモーター配列、例えばT7プロモーターである。そのような実施形態では、T7プロモーターの制御下にあるポリヌクレオチドは、細胞のサイトゾルの中で転写される。
いくつかの実施形態では、プロモーターは誘導性プロモーター、例えば、テトラサイクリン誘導性プロモーター(例えば、TRE−Tight)、ドキシサイクリン(doxycline)誘導性プロモーター、温度誘導性プロモーター(例えば、Hsp70またはHsp90由来プロモーター)、ラクトース誘導性プロモーター(例えば、pLacプロモーター)である。いくつかの実施形態では、プロモーター配列は、転写を調節する1つ以上の転写エンハンサーエレメントを含む。例えば、いくつかの実施形態では、プロモーターは、1つ以上の低酸素応答エレメントまたは1つ以上の放射線応答エレメントを含む。いくつかの実施形態では、プロモーターは、がん細胞において優位に自己複製性ポリヌクレオチドの転写を促す。例えば、いくつかの実施形態では、転写制御エレメントは、がん細胞において発現が増加する遺伝子、例えば、hTERT、HE4、CEA、OC、ARF、CgA、GRP78、CXCR4、HMGB2、INSM1、メソテリン、OPN、RAD51、TETP、H19、uPAR、ERBB2、MUC1、Frz1、IGF2−P4、MycまたはE2Fに由来するプロモーターである。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチドを含み、ポリヌクレオチドは5’及び3’末端において末端逆位反復(ITR)配列と隣接している。本明細書において、「末端逆位反復配列」または「ITR」という用語は、異種ポリヌクレオチド配列(例えば、複製可能ウイルスゲノムをコードする核酸)の3’及び/または5’末端に位置する、1つ以上のストレッチの非パリンドローム配列によって隔てられたパリンドローム配列を含むポリヌクレオチド配列を指す。「パリンドローム」配列は、5’から3’への方向に読まれた場合にその相補鎖と等しい、核酸配列を指す。ITRのポリヌクレオチド配列は、パリンドローム配列間の相補的塩基対合によってステム−ループ構造(例えばヘアピンループ)を形成することになる。ITRポリヌクレオチド配列は、配列がステム−ループ構造を形成することができる限り、任意の長さであり得る。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは以下の構造を含む:
5’−ITR−センスウイルスゲノム−ITR−3’、または
3’−ITR−アンチセンスウイルスゲノム−ITR−5’。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のITR配列は、ステム−ループ構造を形成することができるパリンドローム配列、Rep結合部位及び末端分解部位を最小限に含む。いくつかの実施形態では、本明細書に記載のITRは、アデノ随伴ウイルス(AAV)に由来する。そのような実施形態では、ITRは、AAVの任意の既知の血清型(例えば、AAV1、2、3、4、5、6、7、8、9、10または11)に由来し得る(例えば米国特許第9,598,703号を参照のこと)。いくつかの実施形態では、本明細書に記載のITRは、パルボウイルスに由来し得る(例えば米国特許第5,585,254号を参照のこと)。本開示における使用に適するさらなる末端逆位反復配列は、国際PCT公開第WO2017/152149号及び第WO2016/172008号、ならびに米国特許出願公開第US2017−0362608号に記載されている。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、ITRに挟まれたポリヌクレオチド分子を2つ含み、第1分子の5’ITRは第2分子の3’ITRに共有結合で繋げられており、第1分子の3’ITRは第2分子の5’ITRに共有結合で繋げられている。そのような実施形態では、共有結合で繋げられたITRに挟まれたポリヌクレオチドは末端閉鎖型線形二本鎖腫瘍溶解性ウイルス核酸分子を形成している。いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、(i)ウイルスゲノムのセンス配列をコードするポリヌクレオチドを含む第1一本鎖DNA(ssDNA)分子、及び(ii)ウイルスゲノムのアンチセンス配列をコードするポリヌクレオチドを含む第2ssDNA分子を含み、第1及び第2ssDNA分子の各々は3’ITR及び5’ITRを含むものであり、第1ssDNA分子の3’末端が第2ssDNA分子の5’末端に共有結合で繋げられかつ第1ssDNA分子の5’末端が第2ssDNA分子の3’末端に共有結合で繋げられて本明細書中で「NanoV分子」と呼称される末端閉鎖型線形二本鎖腫瘍溶解性ウイルス(Ov)DNA分子を形成している。
いくつかの実施形態では、自己複製性ポリヌクレオチドは、複製可能なDNAまたはRNAウイルスゲノムをコードする。いくつかの実施形態では、複製可能ウイルスゲノムは一本鎖ゲノム(例えばssRNAゲノムまたはssDNAゲノム)である。そのような実施形態では、一本鎖ゲノムはプラスセンスまたはマイナスセンスゲノムであり得る。いくつかの実施形態では、複製可能ウイルスゲノムは、二本鎖ゲノム(例えばdsRNAゲノムまたはdsDNAゲノム)である。いくつかの実施形態では、自己複製性ポリヌクレオチドは、複製可能腫瘍溶解性ウイルスをコードする。本明細書中で使用する場合、「腫瘍溶解性ウイルス」という用語は、がん細胞への優先的な感染をするように改変されているかまたは元来それをするものであるウイルスを指す。腫瘍溶解性ウイルスの例は、当技術分野で既知であり、単純ヘルペスウイルス、アデノウイルス、ポリオウイルス、ワクチニアウイルス、麻疹ウイルス、水疱性口炎ウイルス、オルトミクソウイルス、パルボウイルス、マラバウイルスまたはコクサッキーウイルスを含むがこれらに限定されない。
いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドによって生み出される複製可能ウイルスは、アデノウイルス科の任意のウイルス、例えばアデノウイルス、ピコルナウイルス科の任意のウイルス、例えばコクサッキーウイルス、ポリオウイルスもしくはセネカバレーウイルス、ヘルペスウイルス科の任意のウイルス、例えばウマヘルペスウイルスもしくは単純ヘルペスウイルス1型(HSV−1)、アレナウイルス科の任意のウイルス、例えばラッサウイルス、レトロウイルス科の任意のウイルス、例えばマウス白血病ウイルス、オルトミクソウイルス科の任意のウイルス、例えばA型インフルエンザウイルス、パラミクソウイルス科の任意のウイルス、例えばニューカッスル病ウイルスもしくは麻疹ウイルス、パルボウイルス科の任意のウイルス、レオウイルス科の任意のウイルス、例えば哺乳動物オルソレオウイルス、トガウイルス科の任意のウイルス、例えばシンドビスウイルス、ポックスウイルス科の任意のウイルス、例えばワクチニアウイルスもしくは粘液腫ウイルス、またはラブドウイルス科の任意のウイルス、例えば水疱性口炎ウイルス(VSV)もしくはマラバウイルスであり、その例は図1に示される。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドによって生み出される複製可能ウイルスは、キメラウイルス、例えば改変型ポリオウイルス(例えば、PVS−RIPO)である。
いくつかの実施形態では、本明細書において開示される組換え核酸分子は、組換え核酸分子が細胞内に導入される場合、細胞の内因性ポリメラーゼ(複数可)によって転写されて、感染性ウイルスに組立てられることができるウイルスゲノムを生み出す。生み出された感染性ウイルスの量は、培養物中で成長させた細胞の上清または対象の組織において標的細胞内または標的細胞の集団の中に存在するウイルスRNAまたはウイルスDNAの量を定量することを含むがこれに限定されない当技術分野で知られている方法によって測定され得る。そのような実施形態では、総DNAまたはRNAを標的細胞から単離することができ、ウイルスゲノム中に存在するRNAまたはDNA配列に対する特異的プライマーを使用してqPCRを実施することができる。いくつかの実施形態では、標的細胞の集団(例えば、試験管内の試料、または生体内の腫瘍から単離された試料)に組換え核酸が導入されている細胞の集団から産生されたウイルス粒子の数を、当技術分野で知られている方法によって定量することができる。いくつかの実施形態では、本開示の製剤は、少なくとも約10〜10TCID50/mL、例えば、少なくとも約10TCID50/mL、約10TCID50/mL、約10TCID50/mL、約10TCID50/mL、約10TCID50/mL、約10TCID50/mL、または約10TCID50/mLの50%組織培養感染量(TCID50)を含む。いくつかの実施形態では、本開示の製剤は生体内での腫瘍成長を著しく阻害する。
いくつかの実施形態では、本明細書において開示される組換え核酸分子は、配列番号1〜2と少なくとも約75%、約76%、約77%、約78%、約79%、約80%、約81%、約82%、約83%、約84%、約85%、約86%、約87%、約88%、約89%、約90%、約91%、約92%、約93%、約94%、約95%、約96%、約97%、約98%、約99%または約100%同一であるポリヌクレオチド配列を含む。
A.一本鎖RNAウイルス
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドは、一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスゲノムをコードする。いくつかの実施形態では、ssRNAウイルスは、プラスセンスssRNA(+センスssRNA)ウイルスまたはマイナスセンスssRNA(−センスssRNA)ウイルスである。
1.プラスセンス一本鎖RNAウイルイス
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドは、プラスセンス一本鎖RNA(+センスssRNA)ウイルスゲノムをコードする。例示的な+センスssRNAウイルスとしては、ピコルナウイルス科(例えば、コクサッキーウイルス、ポリオウイルス及び、SVV−Aを含めたセネカバレーウイルス(SVV))、コロナウイルス科(例えば、アルファコロナウイルス、例えばHCoV−229E及びHCoV−NL63、ベータコロナウイルス、例えば、HCoV−HKU1、HCoV−OC3及びMERS−CoV)、レトロウイルス科(例えばマウス白血病ウイルス)及びトガウイルス科(例えばシンドビスウイルス)のメンバーが挙げられる。他の例示的なプラスセンスssRNAウイルスの属及び種を以下の表4に示す。
+センスssRNAウイルスのゲノムは、5’−3’配向のssRNA分子を含み、宿主細胞によって直接ウイルスタンパク質に翻訳され得る。したがって、+センスssRNAウイルスをコードする自己複製性ポリヌクレオチドは、感染性ウイルス粒子を生み出すために追加のウイルス複製タンパク質の存在を何ら必要としない。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドにコードされる+センスssRNA複製可能ウイルスゲノムは、ウイルス本来の別個の5’及び3’末端を必要とする。哺乳動物RNA Pol IIによって産生されるmRNA転写産物は、哺乳動物5’及び3’UTRを含有し、よって、感染性ssRNAウイルスの産生に必要とされる別個の天然末端を含有しない。したがって、いくつかの実施形態において、感染性+センスssRNAウイルス(例えば、表5に示すウイルス)を産生するには、ウイルスの別個の内因性5’及び3’末端を維持すべく非ウイルス性RNAが転写産物から除去されるような、Pol IIによってコードされるウイルスゲノム転写産物をウイルスssRNAと哺乳動物mRNA配列との連結部のところで切断することを可能にする追加の5’及び3’配列が必要である。そのような配列は、本明細書において連結部切断配列と呼称される。例えば、いくつかの実施形態では、自己ポリヌクレオチドは以下の構造を含む:
(a)5’−Pol II−連結部切断−センスウイルスゲノム−連結部切断−3’、
(b)3’−Pol II−連結部切断−アンチセンスウイルスゲノム−連結部切断−5’。
連結部切断配列、及びウイルスゲノム転写産物からの非ウイルス性RNAの除去は、様々な方法で成し遂げられ得る。例えば、いくつかの実施形態では、連結部切断配列はsiRNA標的配列であり、自己複製性ポリヌクレオチドの5’及び3’末端の中に組み込まれている。そのような実施形態では、siRNAは、RNA誘導サイレンシング複合体(RISC)またはArgonauteタンパク質によるウイルスゲノム転写産物の切断を媒介すべく生成し得る。例示的な構築物デザインは図32A及び図32Bに描写される。いくつかの実施形態では、連結部切断配列は、前駆体miRNA(pri−miRNA)をコードする配列であり、自己複製性ポリヌクレオチドの5’及び3’末端の中に組み込まれている。そのような実施形態では、pri−miRNA配列は、Droshaによるウイルスゲノム転写産物の切断を可能にするヘアピンループを形成する。いくつかの実施形態では、連結部切断配列はガイドRNA標的配列であり、自己複製性ポリヌクレオチドの5’及び3’末端の中に組み込まれている。そのような実施形態では、gRNAは、RNアーゼ活性を有するCasエンドヌクレアーゼと共に設計及び導入されて正確な連結部位でのウイルスゲノム転写産物の切断を媒介し得る。いくつかの実施形態では、連結部切断配列はリボザイムコード配列であり、ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列のすぐ5’及び3’側で本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドの中に組み込まれている。そうして、コードしているリボザイムはウイルスゲノム転写産物の切断を媒介してウイルスの別個の天然末端を生成する。さらには、当技術分野で現在知られている、または将来定義されることになっている、RNA転写産物を特定部位で切断するための任意のシステムを用いて、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドにコードされるウイルス本来の別個の末端を生成することができる。
いくつかの実施形態では、自己複製性ポリヌクレオチドは、ウイルス転写産物の別個の天然末端を生成するための5’及び3’連結部切断配列を含み、5’及び3’ITRに挟まれている。例えば、いくつかの実施形態では、自己ポリヌクレオチドは以下の構造を含む:
(a)5’−ITR−Pol II−連結部切断−センスウイルスゲノム−連結部切断−ITR−3’、または
(b)3’−ITR−Pol II−連結部切断−アンチセンスウイルスゲノム−連結部切断−ITR−5’。
いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは以下の構造を含む:
(a)5’−Pol II−リボザイム−センスウイルスゲノム−リボザイム−3’、
(b)3’−Pol II−リボザイム−アンチセンスウイルスゲノム−リボザイム−5’、
(c)5’−ITR−Pol II−リボザイム−センスウイルスゲノム−リボザイム−ITR−3’、または
(d)3’−ITR−Pol II−リボザイム−アンチセンスウイルスゲノム−リボザイム−ITR−5’。
いくつかの実施形態では、3’リボザイムコード配列及び5’リボザイムコード配列は同じリボザイムをコードする。いくつかの実施形態では、リボザイムコード配列はデルタ肝炎ウイルスリボザイムまたはハンマーヘッド型リボザイムをコードする。いくつかの実施形態では、3’リボザイムコード配列及び5’リボザイムコード配列は異なるリボザイムをコードする。いくつかの実施形態では、3’リボザイムコード配列はデルタ肝炎ウイルスリボザイムをコードし、5’リボザイムコード配列はハンマーヘッド型リボザイムをコードする。
2.マイナスセンスssRNAウイルス
いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、マイナスセンス一本鎖RNA(−センスssRNA)ウイルスゲノムをコードする。−センスssRNAウイルスのゲノムは、3’−5’配向のssRNA分子を含み、直接タンパク質に翻訳されることができない。もっと正確に言えば、−センスssRNAウイルスのゲノムは最初にRNAポリメラーゼによって+センスmRNA分子に転写されねばならない。例示的な−センスssRNAウイルスとしては、パラミクソウイルス科(例えば麻疹ウイルス及びニューカッスル病ウイルス)、ラブドウイルス科(例えば水疱性口炎ウイルス(VSV)及びマラバ(marba)ウイルス)、アレナウイルス科(例えばラッサウイルス)及びオルトミクソウイルス科(例えばインフルエンザウイルス、例えば、A型インフルエンザ、B型インフルエンザ、C型インフルエンザ及びD型インフルエンザ)のメンバーが挙げられる。
いくつかの実施形態では、−センスssRNAウイルスゲノムをコードする自己複製性ポリヌクレオチドは、−センスssRNAゲノムの複製に必要なウイルスタンパク質に直接翻訳されることができるmRNA転写産物をコードする第1ポリヌクレオチド配列と、ウイルスゲノムのアンチゲノム配列を含む第2ポリヌクレオチド配列とを含む。いくつかの実施形態では、第1及び第2ポリヌクレオチド配列は、真核細胞における発現が可能なプロモーター、例えば哺乳動物プロモーターに機能可能に繋げられている。いくつかの実施形態では、第1及び第2ポリヌクレオチド配列は双方向性プロモーター、例えば双方向性Pol IIプロモーターに機能可能に繋げられている(例えば、図9、図10及び図11を参照のこと)。
いくつかの実施形態では、−センスssRNAゲノムの複製に必要とされるウイルス遺伝子は同じ発現カセットから発現する。いくつかの実施形態では、−センスssRNAゲノムの複製に必要とされるウイルス遺伝子は、異なる発現カセット、例えば2つまたは3つの発現カセット、例えば、遺伝子1つにつき1つの発現カセット、または3つのうち2つの遺伝子についての1つの発現カセットと3つ目の遺伝子についてのもう1つの発現カセットとから発現する。−センスssRNAゲノムの複製に必要とされるウイルス遺伝子は、同じオープンリーディングフレームから、または2つもしくは3つの異なるオープンリーディングフレームから翻訳され得る。一実施形態では、−センスssRNAゲノムの複製に必要とされるウイルス遺伝子は、単一のオープンリーディングフレームから同時翻訳的に発現し、翻訳後に成熟ポリペプチドにプロセシングされる。一実施形態では、−センスssRNAゲノムの複製に必要とされるウイルス遺伝子は2Aペプチド配列によって繋げられており、その結果、オープンリーディングフレームから翻訳されたポリペプチドが自己切断されて個々のポリペプチドになる。−センスssRNAゲノム遺伝子の複製に必要とされるウイルス遺伝子はいかなる順序で並んでいてもよい。いくつかの実施形態では、発現カセットは、−センスssRNAゲノム遺伝子の複製に必要とされるウイルス遺伝子の1つ以上の機能性変異体を含む。当業者であれば、特定の−センスssRNAウイルスに必要とされる遺伝子エレメントに応じて上記システムの適切な変化形態を操作する方法を認識するであろう。この操作は、複製に必須となる追加遺伝子を追加する形態をとり得る。
いくつかの実施形態では、複製に必要なウイルスタンパク質に直接翻訳されることができるmRNA転写産物をコードする第1ポリヌクレオチド配列は、真核細胞における発現が可能なプロモーター、例えば哺乳動物Pol IIプロモーターに機能可能に繋げられており、さらにT7ポリメラーゼをコードする。そのような実施形態では、第2ポリヌクレオチド配列はT7プロモーターに機能可能に繋げられている。例えば、いくつかの実施形態では、自己複製性ポリヌクレオチドは以下の構造を含む:
(a)5’−[複製に必要なウイルス遺伝子]−双方向性プロモーター−[アンチゲノムウイルスゲノム]−3’、
(b)5’−Pol II−[複製に必要なウイルス遺伝子+T7 pol]−T7プロモーター−[アンチゲノムウイルスゲノム]−3’。
いくつかの実施形態では、−センスssRNAウイルスゲノムをコードする自己複製性ポリヌクレオチドは、5’及び3’末端においてAAV由来ITRと隣接しており、例えば、
(a)5’−ITR−[複製に必要なウイルス遺伝子]−双方向性プロモーター−[アンチゲノムウイルスゲノム]−ITR−3’、
(b)5’−ITR−Pol II−[複製に必要なウイルス遺伝子+T7 pol]−T7プロモーター−[アンチゲノムウイルスゲノム]−ITR−3’
である。
B.二本鎖RNAウイルス
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドは、二本鎖RNA(dsRNA)ウイルスゲノムをコードする。例示的なdsRNAウイルスとしては、アマルガウイルス科、ビルナウイルス科、クリソウイルス科、シストウイルス科、エンドルナウイルス科、ハイポウイルス科、メガビルナウイルス科、パルティティウイルス科、ピコビルナウイルス科、クオドリウイルス科、レオウイルス科、トティウイルス科のメンバーが挙げられる。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドはdsRNAウイルスゲノムをコードする。いくつかの実施形態では、dsRNAウイルスゲノムは、マイナスセンス(相補)鎖の5’側のプラスセンス鎖としてコードされる。かくして、いくつかの実施形態では、dsRNAウイルスゲノムは、同じDNAポリヌクレオチド鎖からもう一方に相補的な2つのRNA分子として転写される。いくつかの実施形態では、dsRNAウイルスゲノムの2つのRNA分子は単一のRNAとして転写され、これが例えばリボザイム、エンドヌクレアーゼ、CRISPR系システムまたはそれに類似するものによって切断されてプラス及びマイナスセンス分子になる。
一実施形態では、dsRNAウイルスゲノムは、共有dsDNA鋳型に隣接するプロモーターに機能可能に繋げられた共有dsDNA鋳型から転写される。片方のプロモーターはDNAポリヌクレオチドのワトソン鎖からの転写を引き起こし、それによってdsRNAゲノムのプラス鎖を生成する。もう片方のプロモーターはDNAポリヌクレオチドのクリック鎖からの転写を引き起こし、それによってdsRNAゲノムのマイナス鎖を生成する。いくつかのdsRNAウイルス、例えばレオウイルスは、それらのゲノムが複数のRNA分子からなり、ある場合においてはdsRNAとssRNAとの混合物からなる、という意味でセグメント化されたウイルスである。本開示は、DNAポリヌクレオチドが各セグメントの転写単位を含んでいる実施形態を提供する。いくつかの実施形態では、セグメントは、DNAポリヌクレオチドのワトソン及び/またはクリック鎖上のいくつかのプロモーターから転写される。いくつかの実施形態では、RNAセグメントは、例えばリボザイム、エンドヌクレアーゼ、CRISPR系システムまたはそれに類似するものによる1つ以上のRNAセグメントの転写後切断によって生成する。いくつかの実施形態では、システムのプロモーターの1つ以上はT7プロモーターであり、システムは、T7RNAポリメラーゼをコードするポリヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、T7システムの使用は、dsRNAウイルスゲノムの1つ以上のセグメントの天然5’末端を生成する。いくつかの実施形態では、システムのプロモーターの1つ以上は、真核生物において活性なプロモーター、例えば哺乳動物プロモーターである。
C.一本鎖DNAウイルス
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドは一本鎖DNA(ssDNA)ウイルスゲノムをコードする。例示的なssDNAウイルスとしては、パルボウイルス科(例えばアデノ随伴ウイルス)、アネロウイルス科、ビドナウイルス科、サーコウイルス科、ジェミニウイルス科、ゲノモウイルス科、イノウイルス科、ミクロウイルス科、ナノウイルス科、スマコウイルス科及びスピラウイルス科のメンバーが挙げられる。一実施形態では、自己複製性ポリヌクレオチドはパルボウイルスをコードする。一実施形態では、自己複製性ポリヌクレオチドはアデノ随伴ウイルス(AAV)をコードする。
D.二本鎖DNAウイルス
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドは、二本鎖DNA(dsDNA)ウイルスゲノムをコードする。例示的なdsDNAウイルスとしては、マイオウイルス科、ポドウイルス科、サイフォウイルス科、アロヘルペスウイルス科、ヘルペスウイルス科(例えば、HSV−1、HSV−1、ウマヘルペスウイルス)、ポックスウイルス科(例えばワクチニアウイルス及び粘液腫ウイルス)のメンバーが挙げられる。一実施形態では、自己複製性ポリヌクレオチドはアデノウイルスをコードする。
E.miRNA転写減衰
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドは、1つ以上の必須ウイルス遺伝子の中に挿入された1つ以上のマイクロRNA(miRNA)標的配列を含む複製可能ウイルスゲノムをコードする。miRは、細胞増殖及びアポトーシスの制御に関与するものを含めた幾多のタンパク質をコードする多くの転写産物を調節する。miRによって調節される例示的なタンパク質としては、一般的な原がんタンパク質及び腫瘍抑制因子、例えば、Ras、Myc、Bcl2、PTEN及びp53が挙げられる。
miRNAは正常細胞プロセスに密接に関連しており、それらの調節不全は、がんを含めた多様な疾患の原因になる。重要なことに、miRNAは、正常組織に比べてがん組織において差次的に発現しており、それらを様々ながんの標的機構として役立てることを可能にする。発がん、悪性形質転換または転移との(正あるいは負の)関連を有するmiRNAは「oncomiR」として知られている。表2は、oncomiR及び特定のがんにおけるそれらの相対的発現の一覧を示す。
いくつかの態様では、特定のmiRNAの発現は特定のがん及び/または転移の進展または維持との正の関連を有する。そのようなmiRのことを本明細書では「発がん性miRNA」または「oncomiR」と呼ぶ。いくつかの実施形態では、がんの細胞または組織において発がん性miRNAの発現は、非がん性対照細胞(すなわち正常または健常対照)に認められる発現レベルと比較して増加するかまたは、異なるがんタイプに由来するがん細胞に認められる発現レベルと比較して増加する。例えば、がん細胞における発がん性miRNAの発現は、非がん性対照細胞または異なるがんタイプに由来するがん細胞における発がん性miRNAの発現と比較して少なくとも5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、60%、70%、80%、90%、100%、150%、200%、300%、400%、500%、1000%またはそれ以上増加し得る。いくつかの態様では、がん細胞は、非がん性対照細胞に発現しない発がん性miRNAを発現させ得る。
いくつかの実施形態では、特定のoncomiRの発現は特定のがん及び/または転移の進展または維持との負の関連を有する。そのようなoncomiRのことを本明細書では「腫瘍抑制因子miRNA」または「腫瘍抑制性miRNA」と呼ぶ、というのも、それらの発現はがんの進展を防止または抑制するからである。いくつかの実施形態では、がんの細胞または組織において腫瘍抑制因子miRNAの発現は、非がん性対照細胞(すなわち正常または健常対照)に認められる発現レベルと比較して減少するかまたは、異なるがんタイプに由来するがん細胞に認められる腫瘍抑制因子miRNAの発現レベルと比較して減少する。例えば、がん細胞における腫瘍抑制因子miRNAの発現は、非がん性対照細胞または異なるがんタイプに由来するがん細胞における腫瘍抑制因子miRNAの発現と比較して少なくとも5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、45%、50%、60%、70%、80%、90%または100%減少し得る。いくつかの態様では、非がん性対照細胞は、がん細胞に発現しない腫瘍抑制因子miRNAを発現させ得る。
典型的には、腫瘍抑制性miRNAと対比して発がん性miRNAとして特定のmiRNAを指定することは、がんのタイプによって異なるであろう。例えば、特定のがんにおいて、あるmiRNAの発現は増加すること及びそのがんの進展に関係することがある一方、同じmiRNAの発現が、異なるがんでは減少すること及びそのがんの進展の防止に関係することがある。しかしながら、いくつかのmiRNAはがんのタイプに無関係に発がん性miRNAとして機能することがある。例えば、いくつかのmiRNAは、腫瘍抑制因子遺伝子のmRNA転写産物を分解の標的とし、それによって腫瘍抑制因子タンパク質の発現を減少させる。表2は、いくつかのがん、及び各がんタイプに認められる対応する「上方制御される」miRNA及び「下方制御される」miRNAの一覧を示す。表2中、上方制御されるmiRNAは、その特定のがんにおいて発がん性の可能性があるmiRNAであり、他方、下方制御されるmiRNAは、その特定のがんにおいて腫瘍抑制性の可能性がある。さらなる腫瘍抑制性miRNAの一覧を表3に示す。表1は、選出された12個のoncomiR(9個の腫瘍抑制因子及び3個の発がん性miRNA)と幾多のがんとの関係性を示す。
いくつかの態様では、本明細書に記載のポリヌクレオチドによって生み出されたウイルスの複製は、ウイルスゲノム中の1つ以上の場所に1つ以上のmiRNA標的配列が組み込まれていることで腫瘍細胞に限定される。いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、複製可能ウイルスゲノムの5’UTR及び/または3’UTRの中に組み込まれている。いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、必須ウイルス遺伝子の1つ以上の遺伝子座に組み込まれている。本明細書中で使用する場合、「必須ウイルス遺伝子」は、ウイルス複製、ウイルス遺伝子産物の感染性粒子への組立てに必要とされる、または組立てられた感染性粒子の構造的完全性を維持するのに必要とされる、ウイルス遺伝子を指す。いくつかの実施形態において、必須ウイルス遺伝子には、UL1、UL5、UL6、UL7、UL8、UL9、UL11、UL12、UL14、UL15、UL17、UL18、UL19、UL20、UL22、UL25、UL26、UL26.5、UL27、UL28、UL29、UL30、UL31、UL32、UL33、UL34、UL35、UL36、UL37、UL38、UL39、UL40、UL42、UL48、UL49、UL50、UL52、UL53、UL54、US1、US3、US4、US5、US6、US7、US8、US12、ICP0、ICP4、ICP22、ICP27、ICP47、PB、F、B5R、SERO−1、Cap、Rev、VP1〜4、核タンパク質(N)、リンタンパク質(P)、マトリックスタンパク質(M)、糖タンパク質(G)、ポリメラーゼ(L)、E1、E2、E3、E4、VP1、VP2、VP3、VP4、2A、2B、2C、3A、3B、3C及び3Dが含まれ得る。
いくつかの実施形態では、必須ウイルス遺伝子の1つ以上の遺伝子座に挿入されているmiRNA標的配列は、正常な非がん性細胞によって発現されるががん細胞では発現しないかまたは発現の減少を示すmiRNAに対応している。正常(非がん性)細胞に発現するmiRNAは、ポリヌクレオチド中の対応する標的配列に結合することになり、miRNA標的配列を含有するウイルス遺伝子の発現を抑制することになり、それによってウイルス複製及び/または感染性粒子への構造組立てを防止する。かくして、miRNA標的配列の挿入は、コードされるウイルスの溶解作用から正常細胞を保護する。いくつかの実施形態では、miRNA標的配列は、腫瘍抑制性miRNA(例えば、表3中に列挙されるmiRNA)の標的配列である。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、少なくとも1個、少なくとも2個、少なくとも3個、少なくとも4個、少なくとも5個、少なくとも6個、少なくとも7個、少なくとも8個、少なくとも9個または少なくとも10個の必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入されたmiRNA標的配列を含み得る。いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列が1つ以上の必須ウイルス遺伝子の5’非翻訳領域(UTR)及び/または3’UTRの中に組み込まれている。いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列がウイルスゲノム中の非必須遺伝子(例えば、ガンマ34.5)の3’または5’UTRの中に組み込まれている。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に組み込まれたmiRNA標的配列を含む。いくつかの態様では、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドは、1つ以上の必須ウイルス遺伝子の中に組み込まれた複数のmiRNA標的配列を含む。いくつかの実施形態では、ポリヌクレオチドは、複数(例えば2つ以上)の必須ウイルス遺伝子の中に組み込まれたmiRNA標的配列を含む。例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、2、3、4、5、6、7、8、9、10個またはそれより多くの必須ウイルス遺伝子の中に挿入されたmiRNA標的配列を含み得る。そのような実施形態では、各必須ウイルス遺伝子が1つのmiRNA標的配列を含むことになると同時に、ポリヌクレオチドが全体として複数のmiRNA標的配列を含むことになるであろう。そのような実施形態では、複数のmiRNA標的配列が同じmiRNAに対応していてもよい。例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、2、3、4、5、6、7、8、9、10個またはそれより多くの必須ウイルス遺伝子の中に挿入された同じmiRNA標的配列を含み得る。そのような実施形態では、複数のmiRNA標的配列が、2つ以上の異なるmiRNAに対応していてもよい。例えば、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、第1必須ウイルス遺伝子の中に挿入され第1miRNAに対応しているmiRNA標的配列、第2必須ウイルス遺伝子の中に挿入され第2miRNAに対応しているmiRNA標的配列、第3必須ウイルス遺伝子の中に挿入され第3miRNAに対応しているmiRNA標的配列などを含み得る。
いくつかの実施形態では、miRNA標的配列の複数のコピーが必須ウイルス遺伝子の遺伝子座の中に組み込まれている。例えば、いくつかの実施形態では、miRNA標的配列の2、3、4、5、6、7、8、9、10個またはそれより多くのコピーが必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入され得る。いくつかの実施形態では、必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入されている複数のmiRNA標的配列の各々は、同じmiRNAに対応している。いくつかの実施形態では、必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入されている複数のmiRNA標的配列の各々は、異なるmiRNAに対応している。例えば、2、3、4、5、6、7、8、9、10個またはそれより多くの異なるmiRNAに対応するmiRNA標的配列が必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入され得る。
いくつかの実施形態では、miRNA標的配列の複数のコピーが複数の必須ウイルス遺伝子の遺伝子座の中に組み込まれている。例えば、いくつかの実施形態では、miRNA標的配列の2、3、4、5、6、7、8、9、10個またはそれより多くのコピーが2、3、4、5、6、7、8、9、10個またはそれより多くの必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入され得る。いくつかの実施形態では、特定の必須ウイルス遺伝子の中に挿入されている複数のmiRNA標的配列が全て、同じmiRNAに対応し得る。例えば、いくつかの実施形態では、第1必須ウイルス遺伝子は、各々第1miRNAに対応している複数のmiRNA標的配列を含み得、第2必須ウイルス遺伝子は、各々第2miRNAに対応している複数のmiRNA標的配列を含み得る。いくつかの実施形態では、自己複製性ポリヌクレオチドはさらに、第3、第4、第5、第6、第7、第8、第9または第10miRNAに各々対応する複数のmiRNA標的配列を含んだそれぞれ第3、第4、第5、第6、第7、第8、第9または第10の必須ウイルス遺伝子を含み得る。
いくつかの実施形態では、異なるmiRNAに対応する複数のmiRNA標的配列が、複数の必須ウイルス遺伝子遺伝子座に挿入されている。例えば、いくつかの実施形態では、第1必須ウイルス遺伝子は、2つ以上の異なるmiRNAに対応する複数のmiRNA標的配列を含み得、第2必須ウイルス遺伝子は、2つ以上の異なるmiRNAに対応する複数のmiRNA標的配列を含み得る。そのような実施形態では、第1必須ウイルス遺伝子中のmiRNA標的配列は第2必須ウイルス遺伝子中のmiRNA標的配列と同じであってもよいし、または異なっていてもよい。いくつかの実施形態では、自己複製性ポリヌクレオチドはさらに、異なるmiRNAに対応する複数のmiRNA標的配列を各々含むものである第3、第4、第5、第6、第7、第8、第9または第10必須ウイルス遺伝子を含み得る。いくつかの実施形態では、第1、第2、第3、第4、第5、第6、第7、第8、第9または第10必須ウイルス遺伝子のうちのいずれか1つの中にあるmiRNA標的配列は、その他の必須ウイルス遺伝子のうちのいずれかの中にあるmiRNA標的配列と同じであり得る。いくつかの実施形態では、第1、第2、第3、第4、第5、第6、第7、第8、第9または第10必須ウイルス遺伝子のうちのいずれか1つの中にあるmiRNA標的配列は、その他の必須ウイルス遺伝子のうちのいずれかの中にあるmiRNA標的配列とは異なり得る。
いくつかの実施形態では、複数のmiRNA標的配列が縦並びに1つ以上の必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入されており、互いにリンカー配列またはスペーサー配列によって隔てられている。いくつかの実施形態では、リンカーまたはスペーサー空間配列は4つ以上のヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、リンカーまたはスペーサー空間配列は5、6、7、8、9、10個またはそれより多くのヌクレオチドを含む。一実施形態では、リンカー配列またはスペーサー配列は少なくとも4つ〜少なくとも6つのヌクレオチドを含む。
いくつかの実施形態では、少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10個またはそれより多くの下記サブユニットのどちらかが縦並びに1つ以上の必須ウイルス遺伝子の遺伝子座に挿入されている:(a)第1miRNAの標的配列−リンカーまたはスペーサー配列−第1miRNAの標的配列、または(b)第1miRNAの標的配列−リンカーまたはスペーサー配列−第2miRNAの標的配列。いくつかの実施形態では、miRNA標的配列は、表3中に列挙されるmiRNAのうちのいずれか1つ以上の標的配列である。
F.搭載薬分子
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、搭載薬分子をコードする核酸配列を含む。本明細書中で使用する場合、「搭載薬分子」(「治療用分子」とも呼称される)は、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドにコードされるウイルスまたはその感染性粒子の治療有効性をさらに増強することができる任意の分子を指す。本開示において使用するのに適する搭載薬分子としては、タンパク質またはペプチド、例えば細胞毒性ペプチド、免疫調節性ペプチド(例えば、抗原結合性分子、例えば抗体またはその抗原結合性断片、サイトカイン、ケモカイン、可溶性受容体、細胞表面受容体リガンド、二分ペプチド、及び酵素が挙げられる。そのような搭載薬分子はさらに、核酸配列(例えば、shRNA、siRNA、アンチセンスRNA、アンタゴミール、リボザイム及びアプタマー)を含んでいてもよい。搭載薬分子の性質は疾患の種類及び望まれる治療転帰によって様々であろう。
いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、搭載薬分子をコードするポリヌクレオチド配列の3’または5’UTRの中に組み込まれている。そのような実施形態では、搭載薬の翻訳及びその後の発現は、対応するmiRNAが発現する細胞では起こらないかまたはかなり低減される。いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列は、治療用ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド配列の3’及び/または5’UTRの中に挿入されている。
いくつかの実施形態では、治療用分子の発現は、非がん性細胞に比べてがん細胞において増進する治療用分子の発現を促す転写制御エレメント(例えば、hTERT、HE4、CEA、OC、ARF、CgA、GRP78、CXCR4、HMGB2、INSM1、メソテリン、OPN、RAD51、TETP、H19、uPAR、ERBB2、MUC1、Frz1、IGF2−P4または低酸素(HRE)及び放射線応答エレメントに由来するプロモーター)によってさらに調節され得る。いくつかの実施形態では、搭載薬分子の発現は自己複製性ポリヌクレオチドと同じ転写制御エレメントの制御下にある。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は自己複製性ポリヌクレオチドを含み、さらに、細胞毒性ペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む。本明細書中で使用する場合、「細胞毒性ペプチド」は、宿主細胞に発現した場合に細胞死を、及び/または宿主細胞によって分泌された場合に隣接細胞の細胞死を誘導することができるタンパク質を指す。いくつかの実施形態では、細胞毒性ペプチドは、カスパーゼ、p53、ジフテリア毒素(DT)、シュードモナス外毒素A(PEA)、I型リボソーム不活性化タンパク質(RIP)(例えば、サポリン及びゲロニン)、II型RIP(例えばリシン)、志賀様毒素1(Slt1)、感光性活性酸素種(例えば、killer−red)である。特定の実施形態では、細胞毒性ペプチドは、カスパーゼ遺伝子などのアポトーシスによる細胞死を招く自殺遺伝子にコードされる。
いくつかの実施形態では、搭載薬は免疫調節性ペプチドである。本明細書中で使用する場合、「免疫調節性ペプチド」は、特定の免疫受容体及び/または経路を調節すること(例えば、活性化させること、または阻害すること)ができるペプチドである。いくつかの実施形態では、免疫調節性ペプチドは、免疫細胞、組織細胞及び間質細胞を含めた任意の哺乳動物細胞に作用することができる。好ましい実施形態では、免疫調節性ペプチドは、T細胞、NK細胞、NKT T細胞、B細胞、樹状細胞、マクロファージ、好塩基球、マスト細胞または好酸球などの免疫細胞に対して作用する。例示的な免疫調節性ペプチドとしては、抗原結合性分子、例えば抗体またはその抗原結合性断片、サイトカイン、ケモカイン、可溶性受容体、細胞表面受容体リガンド、二分ペプチド、及び酵素が挙げられる。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、自己複製性ポリヌクレオチドを含み、さらに、IL−1、IL−12、IL−15、IL−18、TNFα、IFNα、IFNβまたはIFNγなどのサイトカインをコードするポリヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、自己複製性ポリヌクレオチドを含み、さらに、CXCL10、CXCL9、CCL21、CCL4またはCCL5などのケモカインをコードするポリヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、自己複製性ポリヌクレオチドを含み、さらに、NKG2Dリガンド、ニューロピリンリガンド、Flt3リガンド、CD47リガンド(例えばSIRP1α)などの、細胞表面受容体のリガンドをコードするポリヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、自己複製性ポリヌクレオチドを含み、さらに、可溶性受容体、例えば可溶性サイトカイン受容体(例えば、IL−13R、TGFβR1、TGFβR2、IL−35R、IL−15R、IL−2R、IL−12R、及びインターフェロン受容体)または可溶性自然免疫受容体(例えば、toll様受容体、補体受容体など)をコードするポリヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、自己複製性ポリヌクレオチドを含み、さらに、細胞内RNA及び/またはDNAの感知に関与するタンパク質の優勢作動薬型突然変異体(例えば、STING、RIG−1またはMDA−5の優勢作動薬型突然変異体)をコードするポリヌクレオチドを含む。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、自己複製性ポリヌクレオチドを含み、さらに、抗体またはその抗原結合性断片(例えば、一本鎖可変断片(scFv)、F(ab)など)などの抗原結合性分子をコードするポリヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、抗原結合性分子は、細胞表面受容体、例えば、免疫チェックポイント受容体(例えば、PD1、PDL1及びCTLA4)、または細胞成長及び活性化に関与する別の細胞表面受容体(例えば、OX40、CD200R、CD47、CSF1R、41BB、CD40及びNKG2D)に特異的に結合する。
いくつかの実施形態では、搭載薬分子は、サソリポリペプチド、例えば、クロロトキシン、BmKn−2、ネオプラジン1、ネオプラジン2及びマウリポリン(mauriporin)である。いくつかの実施形態では、治療用分子は、ヘビポリペプチド、例えば、コントルトロスタチン、アポキシンI、ボトロプストキシンI、BJcuL、OHAP−1、ロドストミン(rhodostomin)、drCT−I、CTX−III、B1L、及びACTX−6である。いくつかの実施形態では、搭載薬分子は、クモポリペプチド、例えばラタルシン及びヒアルロニダーゼである。いくつかの実施形態では、搭載薬分子は、ハチポリペプチド、例えばメリチン及びアパミンである。いくつかの実施形態では、搭載薬分子は、カエルポリペプチド、例えば、PsT−1、PdT−1、及びPdT−2である。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、自己複製性ポリヌクレオチドを含み、さらに、酵素をコードするポリヌクレオチドを含む。いくつかの実施形態では、酵素は、細胞外マトリックスを改変することによって腫瘍微小環境を調整することができる。そのような実施形態において、酵素には、マトリックスメタロプロテアーゼ(例えばMMP9)、コラゲナーゼ、ヒアルロニダーゼ、ゼラチナーゼまたはエラスターゼが含まれ得るが、これらに限定されない。いくつかの実施形態では、酵素は、遺伝子指向性酵素プロドラッグ療法(GDEPT)システムの一部、例えば、単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ、シトシンデアミナーゼ、ニトロレダクターゼ、カルボキシペプチダーゼG2、プリンヌクレオシドホスホリラーゼもしくはシトクロムP450である。いくつかの実施形態では、酵素は、標的細胞において細胞死経路を誘導するかまたは活性化させることができる(例えばカスパーゼ)。
いくつかの実施形態では、搭載薬分子は二分ペプチドである。本明細書中で使用する場合、「二分ペプチド」は、非がん性エフェクター細胞上に発現した細胞表面抗原に結合することができる第1ドメインと、標的細胞(例えば、がん細胞、腫瘍細胞、または異なる種類のエフェクター細胞)によって発現された細胞表面抗原に結合することができる第2ドメインとからなる多量体タンパク質を指す。いくつかの実施形態では、二分ポリペプチドの個々のポリペプチドドメインは、抗体またはその抗原結合断片(例えば、一本鎖可変断片(scFv)またはF(ab))、サソリポリペプチド、ダイアボディ、フレキシボディ、DOCK−AND−LOCK(商標)抗体、またはモノクローナル抗イディオタイプ抗体(mAb2)を含み得る。いくつかの実施形態では、二分ポリペプチドの構造は、二重可変ドメイン抗体(DVD−Ig(商標))、Tandab(登録商標)、二重特異性T細胞係合子(BiTE(商標))、DuoBody(登録商標)または二重親和性再指向性(DART)ポリペプチドであり得る。いくつかの実施形態では、二分ポリペプチドはBiTEであり、表6及び/または表7に示す抗原に特異的に結合するドメインを含む。例示的なBiTEを以下の表5に示す。
いくつかの実施形態では、エフェクター細胞上に発現する細胞表面抗原は、以下の表6から選択される。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞上またはエフェクター細胞上に発現する細胞表面抗原は、以下の表7から選択される。いくつかの実施形態では、腫瘍細胞上に発現する細胞表面抗原は、腫瘍抗原である。いくつかの実施形態では、腫瘍抗原は、CD19、EpCAM、CEA、PSMA、CD33、EGFR、HER2、EphA2、MCSP、ADAM17、PSCA、17−A1、NKGD2リガンド、CSF1R、FAP、GD2、DLL3またはニューロピリンから選択される。いくつかの実施形態では、腫瘍抗原は、表7に列挙されるものから選択される。
III.自己複製性ポリヌクレオチドを含む組換え核酸分子を製造する方法
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、1つ以上のベクターを使用して試験管内で製造される。「ベクター」という用語は、別の核酸分子を移動させるかまたは輸送することができる核酸分子を指して本明細書中で使用される。大抵は、移動させる核酸をベクター核酸分子の中に挿入する。ベクターは、細胞における自律複製を指示する配列を含み得、及び/または宿主細胞DNA中への組込みを可能にするのに十分な配列を含み得る。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドをプラスミド主鎖の中に挿入することによって製造される。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、1つ以上のウイルスベクターを使用して製造される。時としてウイルスベクターのことを「組換えウイルス」または「ウイルス」と呼ぶことがある。いくつかの実施形態では、二ベクターシステムを使用する。例えば、いくつかの実施形態では、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドをAAV由来ITRで挟む。そうした上で、ITRに挟まれたポリヌクレオチドを第1発現ベクターの中に挿入し、第2発現ベクターの中には、ITRによって媒介される複製に必要とされるAAVタンパク質(例えばRep78及びRep52)をコードするポリヌクレオチドを挿入する。そのような実施形態では、第1及び第2ベクターを(トランスフェクション、形質導入、電気穿孔などの手段で)好適な宿主細胞(例えば昆虫細胞株)に細胞内送達して、ITRに挟まれたポリヌクレオチドが宿主細胞のゲノムの中に安定的に組み込まれた細胞を生成する。いくつかの実施形態では、第1及び第2ベクターはヘルペスウイルス発現ベクターである。いくつかの実施形態では、第1及び第2ベクターはバキュロウイルス発現ベクターである。そのような発現システムは、例えば、Li et al.,Plos One,8:8,2013に記載されている。いくつかの実施形態では、宿主細胞は、ITRに挟まれた自己複製性ポリヌクレオチドを、ITRの非存在下で生み出される量よりも多い量で産生する。いくつかの実施形態では、ITRに挟まれた導入遺伝子をトランスフェクトした宿主細胞から得られるITRに挟まれたウイルスゲノムDNAは、ITRを含有せずに同様に(例えば組換えバキュロウイルス感染によって)トランスフェクトされた導入遺伝子に比べて4〜60倍多いDNAを生み出し得る。(Li et al,PLoS One,2013を参照のこと)。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドは、単一ベクター発現システムを使用して試験管内で製造される。例えば、いくつかの実施形態では、AAV ITRに挟まれた本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドを含む発現カセットを組換えHSVゲノム主鎖のUL3遺伝子とUL4遺伝子との間(例えば遺伝子間遺伝子座)またはICP4遺伝子座に挿入する(例えば図4B及び図5Bを参照のこと)。ITRによって媒介される複製に必要とされるAAVタンパク質(例えばRep78及びRep52)をコードするポリヌクレオチドを含む第2発現カセットは組換えHSVゲノム主鎖のICP0またはICP4遺伝子座に挿入する。Repタンパク質の発現は、ITRに挟まれたポリヌクレオチドが単一ベクターから効率的に複製されることを可能にする。いくつかの実施形態では、Repタンパク質をコードするポリヌクレオチドは、調節性または誘導性プロモーターに機能可能に繋げられている。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子は、ITRに挟まれた自己複製性ポリヌクレオチドを含む発現カセットと、ITRによって媒介される複製に必要なAAVタンパク質をコードするポリヌクレオチドを含む発現カセットとを含むHSVベクターを好適な宿主細胞の細胞内に(例えば、トランスフェクション、形質導入、電気穿孔などの手段で)送達することによって製造される。好適な宿主細胞としては、昆虫及び哺乳動物細胞株が挙げられる。HSVベクターを含む宿主細胞は、挿入された発現カセットの発現及び組換えDNA分子の産生を可能にする適切な時間量にわたって培養される。その後、組換えDNA分子を宿主細胞DNAから単離し、治療的使用のために製剤化する(例えば、粒子内に封入する)。
いくつかの実施形態では、上記AAV−ITRシステムによって製造される組換えDNA分子は、各末端が共有結合で繋がっている2本の一本鎖DNA分子の産生をもたらす。例えば、第1DNA分子の5’ITRは第2DNA分子の3’ITRに共有結合で繋げられており、第1DNA分子の3’ITRは第2DNA分子の5’ITRに共有結合で繋げられている。そのような実施形態では、共有結合で繋げられた、ITRに挟まれたポリヌクレオチドは、本明細書中でNanoV分子と呼称される末端閉鎖型線形二本鎖腫瘍溶解性ウイルス核酸分子を形成している。いくつかの実施形態では、各一本鎖DNA分子は、ITRに挟まれたポリヌクレオチドを1つ含む。例えば、いくつかの実施形態では、NanoV分子は2つのssDNA分子を含むものであり、ここで、1つのssDNA分子は下記構造:5’−ITR−[自己複製性ポリヌクレオチドのセンス配列]−ITR−3’を含んでおり、1つのssDNA分子は下記構造:3’−ITR−[自己複製性ポリヌクレオチドのアンチセンス配列]−ITR−3’を含んでいる。いくつかの実施形態では、各一本鎖DNA分子は、ITRに挟まれたポリヌクレオチドを2つ以上含む(つまり、ITRに挟まれたポリヌクレオチドのコンカテマー)。ITRに挟まれたポリヌクレオチドのコンカテマーは様々な配向を有し得る。例えば、いくつかの実施形態では、コンカテマーは頭−頭配向または尾−尾配向で形成される。
IV.自己複製性ポリヌクレオチドを含む粒子
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドは「粒子」の中に封入されている。本明細書中で使用する場合、粒子は、非組織由来構成物、例えば、リポソーム、リポプレックス、ナノ粒子、ナノカプセル、マイクロ粒子、マイクロスフェア、脂質粒子、エクソソーム、小胞などを指す。特定の実施形態では、粒子は、非タンパク質性及び非免疫原性である。そのような実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドのカプセル封入は、全身性の抗ウイルス免疫応答を誘導することなくウイルス性搭載薬の送達を可能にし、中和抗ウイルス抗体の作用を軽減する。さらに、本明細書に記載のポリヌクレオチドのカプセル封入は、ポリヌクレオチドを分解から防護し、標的宿主細胞内へのポリヌクレオチドの導入を容易にする。
いくつかの実施形態では、粒子は対象の中で生分解性である。そのような実施形態では、対象における粒子の蓄積を伴わずして多回用量の粒子を対象に投与することができる。好適な粒子の例としては、ポリスチレン粒子、ポリ(乳酸−コ−グリコール酸)PLGA粒子、ポリペプチド系カチオン性ポリマー粒子、シクロデキストリン粒子、キトサン粒子、脂質系粒子、ポリ(β−アミノエステル)粒子、低分子量ポリエチレンイミン粒子、ポリホスホエステル粒子、ジスルフィド架橋ポリマー粒子、ポリアミドアミン粒子、ポリエチレンイミン(PEI)粒子、及びPLURIONICS安定化ポリプロピレンスルフィド粒子が挙げられる。
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドは無機粒子の中に封入されている。いくつかの実施形態では、無機粒子は、金ナノ粒子(GNP)、金ナノロッド(GNR)、磁気ナノ粒子(MNP)、磁気ナノチューブ(MNT)、カーボンナノホーン(CNH)、カーボンフラーレン、カーボンナノチューブ(CNT)、リン酸カルシウムナノ粒子(CPNP)、メソポーラスシリカナノ粒子(MSN)、シリカナノチューブ(SNT)、または星状中空シリカナノ粒子(SHNP)である。
A.エクソソーム
いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドはエクソソームの中に封入されている。エクソソームは、多胞体と親細胞(例えば、本明細書中でドナー細胞とも呼称される、エクソソームを放出する細胞)の形質膜との融合の後に細胞外環境へと放出される、細胞内に起源を有する小さな膜小胞である。エクソソームの表面は、親細胞の細胞膜に由来する脂質二重層を含み、親細胞表面に発現した膜タンパク質をさらに含むことがある。いくつかの実施形態では、エクソソームはさらに、親細胞からのサイトゾルを含有することがある。エクソソームは、上皮細胞、B及びTリンパ細胞、マスト細胞(MC)ならびに樹状細胞(DC)を含めた多様な細胞種によって産生され、血漿、尿、気管支肺胞洗浄液、腸管上皮細胞及び腫瘍組織の中に確認されている。エクソソームの組成はその由来となる親細胞種に依存するため、「エクソソーム特有の」タンパク質は存在しない。しかしながら、多くのエクソソームは、親細胞においてエクソソームの起源となった細胞内小胞に関連するタンパク質(例えば、エンドソーム及びリソソームに関連する及び/またはそれらによって発現されるタンパク質)を含む。例えば、エクソソームは、抗原提示分子、例えば主要組織適合性複合体I及びII(MHC−I及びMHC−II)、テトラスパニン(例えばCD63)、いくつかの熱ショックタンパク質、細胞骨格構成要素、例えばアクチン及びチューブリン、細胞内膜融合、細胞−細胞相互作用(例えばCD54)に関与するタンパク質、シグナル伝達タンパク質、ならびにサイトゾル酵素に富んでいることがある。
エクソソームは、エクソソーム膜と標的細胞の形質膜との融合によって1つの細胞(例えば親細胞)から標的またはレシピエント細胞への細胞タンパク質の移動を媒介し得る。したがって、エクソソームによって封入される材料を変更することは、本明細書に記載のポリヌクレオチドなどの外来薬剤を標的細胞に導入し得る機構を提供する。1つ以上の外来薬剤(例えば本明細書に記載のポリヌクレオチド)を含有すべく改変されたエクソソームのことを本明細書では「改変型エクソソーム」と呼ぶ。いくつかの実施形態では、改変型エクソソームは、外来薬剤(例えば本明細書に記載のポリヌクレオチド)を親細胞内に導入することによって製造される。そのような実施形態では、親細胞から産生される改変型エクソソームの中に外来核酸自体または外来核酸の転写産物が組み込まれるように、エクソソーム産生親細胞の中に外来核酸を導入する。当技術分野で知られている手段、例えば、外来核酸の形質導入、トランスフェクション、形質転換及び/またはマイクロインジェクションによって親細胞に外来核酸を導入することができる。
いくつかの実施形態では、改変型エクソソームは、本明細書に記載のポリヌクレオチドをエクソソーム内に直接導入することによって製造される。いくつかの実施形態では、本明細書に記載のポリヌクレオチドを完全エクソソームの中に導入する。「完全エクソソーム」は、産生の由来を親細胞とするタンパク質及び/または遺伝物質を含むエクソソームを指す。完全エクソソームを得る方法は当技術分野で既知である(例えば、Alvarez−Erviti L.et al.,Nat Biotechnol.2011 Apr;29(4):34−5、Ohno S,et al.,Mol Ther 2013 Jan;21(1):185−91、及び欧州特許公報第2010663号を参照のこと)。
特定の実施形態では、外来薬剤(例えば本明細書に記載のポリヌクレオチド)を空エクソソームの中に導入する。「空エクソソーム」は、親細胞に由来するタンパク質及び/または遺伝物質(例えばDNAまたはRNA)を欠くエクソソームを指す。空エクソソーム(例えば、親細胞由来の遺伝物質を欠くもの)を製造する方法は、UV曝露、エクソソーム内への核酸の装填を媒介する内因性タンパク質の突然変異/欠失、ならびに空いた穴から内因性遺伝物質がエクソソームの外へ抜け出るような穴をエクソソーム膜に空ける電気穿孔及び化学処理を含めて当技術分野で既知である。いくつかの実施形態では、空エクソソームは、pHが約9〜約14である水溶液による処理によってエクソソームを開いてエクソソーム膜を得ること、小胞内成分(例えば小胞内タンパク質及び/または核酸)を除去すること、及びエクソソーム膜の再組立てを行って空エクソソームを形成することによって製造される。いくつかの実施形態では、小胞内成分(例えば小胞内タンパク質及び/または核酸)を超遠心分離または密度勾配超遠心分離によって除去する。いくつかの実施形態では、超音波処理、機械的振動、多孔質膜に通す押出し、電流、またはこれらの技術のうちの1つ以上の組合せによって膜の再組立てを行う。特定の実施形態では、超音波処理によって膜の再組立てを行う。
いくつかの実施形態では、完全または空エクソソームに外来薬剤(例えば本明細書に記載のポリヌクレオチド)を装填して改変型エクソソームを生成することは、従来の分子生物学技術、例えば、試験管内での形質転換、トランスフェクション及び/またはマイクロインジェクションを用いて成し遂げられ得る。いくつかの実施形態では、電気穿孔によって完全または空エクソソームの中に外来薬剤(例えば本明細書に記載のポリヌクレオチド)を直接導入する。いくつかの実施形態では、リポフェクション(例えばトランスフェクション)によって完全または空エクソソームの中に外来薬剤(例えば本明細書に記載のポリヌクレオチド)を直接導入する。本開示に係るエクソソームの製造に使用するのに適するリポフェクションキットは当技術分野で既知であり、市販されている(例えば、Roche提供のFuGENE(登録商標)HDトランスフェクション試薬、及びInvitrogen提供のLIPOFECTAMINE(商標)2000)。いくつかの実施形態では、熱ショックを用いる形質転換によって完全または空エクソソームの中に外来薬剤(例えば本明細書に記載のポリヌクレオチド)を直接導入する。そのような実施形態では、親細胞から単離したエクソソームをエクソソーム膜の透過化のために二価カチオン、例えば(CaClの)Ca2+の存在下で冷却する。その後、エクソソームに外来核酸とのインキュベート及び短時間の熱ショック処理(例えば、42℃で30〜120秒間のインキュベート)が行われ得る。特定の実施形態では、外来核酸が環状DNAプラスミドである場合に、熱ショック法を用いる完全または空エクソソームの形質転換を用いる。特定の実施形態では、空エクソソームへの外来薬剤(例えば本明細書に記載のポリヌクレオチド)の装填は、小胞内成分の除去後に薬剤とエクソソーム膜との混合または共インキュベーションを行うことによって成し遂げられ得る。したがって、エクソソーム膜から再組立てされた改変型エクソソームは小胞内空間内に外来薬剤が組み込まれることになる。エクソソーム内に封入された核酸を製造するためのさらなる方法は当技術分野で既知である(例えば、米国特許第9,889,210号、第9,629,929号及び第9,085,778号;国際PCT公開第WO2017/161010号及び第WO2018/039119号を参照のこと)。
エクソソームは、細胞株、骨髄由来細胞及び一次患者試料に由来する細胞を含めた幾多の異なる親細胞から得ることができる。親細胞から放出されたエクソソームは、当技術分野で知られている手段によって親細胞培養物の上清から単離され得る。例えば、エクソソームの物理特性を利用してそれらを培地またはその他の材料源から分離することができ、これには、電荷(例えば電気泳動分離)、大きさ(例えば、濾過、分子ふるいなど)、密度(例えば、通常の遠心分離、または勾配遠心分離)及びスベドベリ定数(例えば、外力を伴うかまたは伴わない沈降など)に基づく分離が含まれる。あるいは、またはさらに、単離は、1つ以上の生物学的特性に基づくものであり得、表面マーカーを利用することができる方法(例えば、沈降の場合、固相との可逆的結合、FACS分離、特異的リガンド結合、非特異的リガンド結合など)を含み得る。エクソソーム表面タンパク質の分析は、エクソソームと会合したCD63などのタンパク質に対する蛍光標識抗体を使用するフローサイトメトリーによって決定され得る。エクソソームを特性評価するためのさらなるマーカーは国際PCT公開第WO2017/161010号に記載されている。さらに他の企図される方法では、PEGによって誘導される融合及び/または超音波融合を含めた化学的及び/または物理的方法を用いてエクソソームを融合させることもできる。
いくつかの実施形態では、サイズ排除クロマトグラフィーを利用してエクソソームを単離することができる。いくつかの実施形態では、当技術分野で一般的に知られているように、クロマトグラフィー分離後に(1つ以上のクロマトグラフィー画分の)遠心分離技術によってエクソソームをさらに単離することができる。いくつかの実施形態では、エクソソームの単離は、以前に記載(Raposo,G.et al.,J.Exp.Med.183,1161−1172(1996))を参照のこと)がなされている分画遠心法、超遠心分離、サイズに基づく膜濾過、濃縮、及び/またはレートゾーナル遠心法を含むがこれらに限定されない方法の組合せを伴い得る。
いくつかの実施形態では、エクソソーム膜は、リン脂質、糖脂質、脂肪酸、スフィンゴ脂質、ホスホグリセリド、ステロール、コレステロール及びホスファチジルセリンのうちの1つ以上を含む。加えて、膜は1つ以上のポリペプチド及び1つ以上の多糖、例えばグリカンを含むことがある。例示的なエクソソーム膜組成、及び1つ以上の膜成分の相対量を変化させる方法は国際PCT公開第WO2018/039119号に記載されている。
好ましくは、本明細書に記載の粒子は、溶解性を増大させ、生体内での凝集によって引き起こされる可能性がある合併症を回避し、ピノサイトーシスを容易にするために、ナノスケールの大きさを有する。いくつかの実施形態では、粒子の平均直径は約1000nm未満である。いくつかの実施形態では、粒子の平均直径は約500nm未満である。いくつかの実施形態では、粒子の平均直径は約30〜約100nm、約50〜約100nm、または約75〜約100nmである。いくつかの実施形態では、粒子の平均直径は約30〜約75nm、または約30〜約50nmである。いくつかの実施形態では、粒子の平均直径は約100〜約500nmである。いくつかの実施形態では、粒子の平均直径は約200〜約400nmである。いくつかの実施形態では、粒子の平均粒径は約350nmである。
いくつかの実施形態では、粒子はエクソソームであり、直径が約30〜約100nm、約30〜約200nm、または約30〜約500nmである。いくつかの実施形態では、粒子はエクソソームであり、直径が約10〜約100nm、約20〜約100nm、約30〜約100nm、約40〜約100nm、約50〜約100nm、約60〜約100nm、約70〜約100nm、約80〜約100nm、約90〜約100nm、約100〜約200nm、約100〜約150nm、約150〜約200nm、約100〜約250nm、約250〜約500nm、または約10〜約1000nmである。いくつかの実施形態では、粒子はエクソソームであり、直径が約20nm〜300nm、約40nm〜200nm、約20nm〜250nm、約30nm〜150nm、または約30nm〜100nmである。
B.脂質ナノ粒子
特定の実施形態では、本明細書に記載の組換えDNA分子は、脂質ナノ粒子(LNP)の中に封入されている。特定の実施形態では、LNPは、1つ以上の脂質、例えば、トリグリセリド(例えばトリステアリン)、ジグリセリド(例えばベヘン酸グリセロール(glycerol bahenate))、モノグリセリド(例えば、モノステアリン酸グリセロール)、脂肪酸(例えばステアリン酸)、ステロイド(例えばコレステロール)及びワックス(例えばパルミチン酸セチル)を含む。いくつかの実施形態では、LNPはカチオン性脂質及び1つ以上のヘルパー脂質を含む。
カチオン性脂質は、選択されたpH、例えば生理的pHで正味の正電荷を有するいくつかの脂質種のいずれかを指す。そのような脂質としては、限定されないが、1,2−ジリノレイルオキシ−N,N−ジメチルアミノプロパン(DLinDMA)、1,2−ジリノレニルオキシ−N,Nジメチルアミノプロパン(DLenDMA)、ジオクタデシルジメチルアンモニウム(DODMA)、ジステアリルジメチルアンモニウム(DSDMA)、N,N−ジオレイル−N,N−ジメチルアンモニウムクロリド(DODAC)、N−(2,3−ジオレイルオキシ)プロピル)−N,N,N−トリメチルアンモニウムクロリド(DOTMA)、N,N−ジステアリル−N,N−ジメチルアンモニウムブロミド(DDAB)、N−(2,3−ジオレオイルオキシ)プロピル)−N,N,N−トリメチルアンモニウムクロリド(DOTAP)、3−(N−(N’,N’−ジメチルアミノエタン)−カルバモイル)コレステロール(DC−Chol)、及びN−(1,2−ジミリストイルオキシプロパ−3−イル)−N,N−ジメチル−N−ヒドロキシエチルアンモニウムブロミド(DMRIE)が挙げられる。例えば、生理的pH未満で正電荷を有するカチオン性脂質としては、限定されないが、DODAP、DODMA、及びDMDMAが挙げられる。いくつかの実施形態では、カチオン性脂質は、C18アルキル鎖、頭部基とアルキル鎖との間のエーテル結合、及び0〜3個の二重結合を含む。そのような脂質としては、例えば、DSDMA、DLinDMA、DLenDMA、及びDODMAが挙げられる。カチオン性脂質は、エーテル結合、及びpH滴定可能な頭部基を含み得る。そのような脂質としては、例えば、DODMAが挙げられる。さらなるカチオン性脂質は、参照により本明細書に援用される米国特許第7,745,651号、第5,208,036号、第5,264,618号、第5,279,833号、第5,283,185号、第5,753,613号、第5,785,992号に記載されている。
いくつかの実施形態では、カチオン性脂質は、プロトン化可能な第三級アミン頭部基を含む。そのような脂質のことを本明細書ではイオン化可能脂質と呼ぶ。イオン化可能脂質は、イオン化可能アミン頭部基を含み典型的に約7未満のpKaを含む脂質種を指す。したがって、酸性pHを有する環境においてイオン化可能アミン頭部基は、負に帯電した分子(例えば核酸、例えば本明細書に記載の組換えポリヌクレオチド)と優先的にイオン化可能脂質が相互作用するようにプロトン化され、かくしてナノ粒子の組立て及びカプセル封入を容易にする。したがって、いくつかの実施形態では、イオン化可能脂質は、脂質ナノ粒子内への核酸の装填を増加させることができる。pHが約7より高い環境(例えば、約7.4の生理的pH)では、イオン化可能脂質は中性電荷を含む。イオン化可能脂質を含む粒子がエンドソームの低pH(例えばpH<7)環境中に取り込まれると、イオン化可能脂質は再びプロトン化され、アニオン性エンドソーム膜と会合し、粒子の中に封入された内容物の放出が促進される。
いくつかの実施形態では、LNPは1つ以上の非カチオン性ヘルパー脂質を含む。例示的なヘルパー脂質としては、(1,2−ジラウロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン)(DLPE)、1,2−ジフィタノイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DiPPE)、1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホコリン(DSPC)、1,2−ジパルミトイル−sn−グリセロ−3−ホスホコリン(DPPC)、1,2−ジオレイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DOPE)、1,2−ジパルミトイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DPPE)、1,2−ジミリストイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DMPE)、(1,2−ジオレオイル−sn−グリセロ−3−ホスホ−(1’−rac−グリセロール)(DOPG)、1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DSPE)、セラミド、スフィンゴミエリン及びコレステロールが挙げられる。
ポリエチレングリコール(PEG)修飾リン脂質及び誘導体化脂質、例えば誘導体化セラミド(PEG−CER)、例えばN−オクタノイル−スフィンゴシン−1−[スクシニル(メトキシポリエチレングリコール)−2000](C8 PEG−2000セラミド)を、好ましくは本明細書において開示される化合物及び脂質の1つ以上と組み合わせて、本明細書に記載のリポソーム性医薬組成物に使用する及び含ませることも、企図される。
いくつかの実施形態では、脂質ナノ粒子はさらに、1つ以上のC6−C20アルキルを含む脂質と共有結合した5kDa以下の長さのポリ(エチレン)グリコール鎖を含むPEG修飾脂質を1つ以上含み得る。いくつかの実施形態では、LNPはさらに、1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−ポリ(エチレングリコール)(DSPE−PEG)、または1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−N−[アミノ(ポリエチレングリコール)](DSPE−PEG−アミン)を含む。いくつかの実施形態では、PEG修飾脂質は、脂質ナノ粒子中の総脂質含有量の約0.1%〜約1%を構成する。いくつかの実施形態では、PEG修飾脂質は脂質ナノ粒子中の総脂質含有量の約0.1%、約0.2%、約0.3%、約0.4%、約0.5%、約0.6%、約0.7%、約0.8%、約0.9%、または約1.0%を構成する。
いくつかの実施形態では、LNPはカチオン性脂質及び1つ以上のヘルパー脂質を含み、カチオン性脂質はDOTAPである。いくつかの実施形態では、LNPはカチオン性脂質及び1つ以上のヘルパー脂質を含み、1つ以上のヘルパー脂質はコレステロールを含む。いくつかの実施形態では、LNPはカチオン性脂質及び1つ以上のヘルパー脂質を含み、1つ以上のヘルパー脂質はDLPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPはカチオン性脂質及び1つ以上のヘルパー脂質を含み、1つ以上のヘルパー脂質はDOPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPはカチオン性脂質及び少なくとも2つのヘルパー脂質を含み、カチオン性脂質はDOTAPであり、少なくとも2つのヘルパー脂質はコレステロール及びDLPEを含む。いくつかの実施形態では、少なくとも2つのヘルパー脂質はコレステロール及びDOPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPはカチオン性脂質及び少なくとも3つのヘルパー脂質を含み、カチオン性脂質はDOTAPであり、少なくとも3つのヘルパー脂質はコレステロール、DLPE及びDSPEを含む。いくつかの実施形態では、少なくとも3つのヘルパー脂質はコレステロール、DOPE及びDSPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPはDOTAP、コレステロール及びDLPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPはDOTAP、コレステロール及びDOPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPはDOTAP、コレステロール、DLPE及びDSPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPはDOTAP、コレステロール、DLPE及びDSPE−PEGを含む。いくつかの実施形態では、LNPはDOTAP、コレステロール、DOPE及びDSPEを含む。いくつかの実施形態では、LNPはDOTAP、コレステロール、DOPE及びDSPE−PEGを含む。
いくつかの実施形態では、LNPはDOTAP、コレステロール(Chol)及びDLPEを含み、DOTAP:Chol:DLPEの比は(総脂質含有量に占める百分率として)約50:35:15である。いくつかの実施形態では、LNPはDOTAP、コレステロール(Chol)及びDLPEを含み、DOTAP:Chol:DOPEの比は(総脂質含有量に占める百分率として)約50:35:15である。いくつかの実施形態では、LNPはDOTAP、コレステロール(Chol)、DLPE、DSPE−PEGを含み、DOTP:Chol:DLPEの比は(総脂質含有量に占める百分率として)約50:35:15であり、粒子は約0.2%のDSPE−PEGを含む。いくつかの実施形態では、LNPは、イオン化可能脂質、例えば、7.SS切断可能なpH応答性脂質様物質(例えばCOATSOME(登録商標)SSシリーズ)を含む。カチオン性の、またはイオン化可能な、本開示の製剤及び方法に適する脂質のさらなる例は、例えば、WO2018089540A1、WO2017049245A2、US20150174261、US2014308304、US2015376115、WO201/199952、及びWO2016/176330に記載されている。
いくつかの実施形態では、ナノ粒子は、標的細胞によるナノ粒子の取込みを調節するまたは容易にするために、グリコサミノグリカン(GAG)で被覆されている(図2)。GAGは、ヘパリン/ヘパリン硫酸(heparin sulfate)、コンドロイチン硫酸/デルマタン硫酸、ケラチン硫酸(keratin sulfate)、またはヒアルロン酸(HA)であり得る。特定の実施形態では、ナノ粒子の表面はHAで被覆されており、腫瘍細胞による取込みのために粒子を指向する。いくつかの実施形態では、脂質ナノ粒子はアルギニン−グリシン−アスパラギン酸トリペプチド(RGDペプチド)で被覆されている(Ruoslahti,Advanced Materials,24,2012,3747−3756、及びBellis et al.,Biomaterials,32(18),2011,4205−4210を参照のこと)。
いくつかの実施形態では、LNPの平均粒径は約150nm〜約500nmである。例えば、いくつかの実施形態では、LNPの平均粒径は約200nm〜約500nm、約300nm〜約500nm、約350nm〜約500nm、約400nm〜約500nm、約425nm〜約500nm、約450nm〜約500nm、または約475nm〜約500nmである。
いくつかの実施形態では、LNPの平均ゼータ電位は約−20mV未満である。例えば、いくつかの実施形態では、LNPの平均ゼータ電位は、約−30mV未満、約35mV未満、または約−40mV未満である。いくつかの実施形態では、LNPの平均ゼータ電位は、約−50mV〜約−20mV、約−40mV〜約−20mV、または約−30mV〜約−20mVである。いくつかの実施形態では、LNPの平均ゼータ電位は、約−30mV、約−31mV、約−32mV、約−33mV、約−34mV、約−35mV、約−36mV、約−37mV、約−38mV、約−39mV、または約−40mVである。
いくつかの実施形態では、脂質ナノ粒子は、本明細書に記載の組換え核酸分子を含み、脂質(L)対核酸(N)の比を約3:1(L:N)で含む。いくつかの実施形態では、脂質ナノ粒子は、本明細書に記載の組換え核酸分子を含み、L:N比を約4:1、約5:1、約6:1または約7:1で含む。いくつかの実施形態では、脂質ナノ粒子は、本明細書に記載の組換え核酸分子を含み、L:N比を約4.5:1、約4.6:1、約4.7:1、約4.8:1、約4.9:1、約5:1、約5.1:1、約5.2:1、約5.3:1、約5.4:1、または約5.5:1で含む。
VI.治療用組成物及び使用方法
本開示の一態様は、本明細書に記載の組換え核酸分子を含む治療用組成物、または本明細書に記載の組換え核酸分子を含む粒子、及びがんの治療方法に関する。本明細書に記載の組成物は、所望の送達経路に適した任意の様式で製剤化され得る。典型的には、製剤は、誘導体またはプロドラッグ、溶媒和物、立体異性体、ラセミ体または互変異性体を含めたあらゆる生理学的に許容される構成物を、薬学的に許容される任意の担体、希釈剤及び/または賦形剤と共に含んでいる。
本明細書中で使用する場合、「薬学的に許容される担体、希釈剤または賦形剤」には、ヒトまたは飼育動物における使用が許容されることが米国食品医薬品局によって承認されている任意の佐剤、担体、賦形剤、滑剤、甘味剤、希釈剤、保存剤、色素/着色剤、香味増強剤、界面活性剤、湿潤剤、分散剤、懸濁化剤、安定化剤、等張化剤、溶媒、界面活性剤または乳化剤が含まれるが、これらに限定されない。例示的な薬学的に許容される担体としては、限定されないが、糖、例えば、ラクトース、グルコース及びスクロース;澱粉、例えばトウモロコシ澱粉及びジャガイモ澱粉;セルロース及びその誘導体、例えば、カルボキシメチルセルロースナトリウム、エチルセルロース及び酢酸セルロース;トラガカント;麦芽;ゼラチン;タルク;ココアバター、蝋、動物性及び植物性脂肪、パラフィン、シリコーン、ベントナイト、ケイ酸、酸化亜鉛;油、例えば、ピーナッツ油、綿実油、紅花油、ゴマ油、オリーブ油、トウモロコシ油及び大豆油;グリコール、例えばプロピレングリコール;ポリオール、例えば、グリセリン、ソルビトール、マンニトール及びポリエチレングリコール;エステル、例えばオレイン酸エチル及びラウリン酸エチル;寒天;緩衝剤、例えば水酸化マグネシウム及び水酸化アルミニウム;アルギン酸;発熱原不含水;等張生理食塩水;リンガー液;エチルアルコール;リン酸緩衝液;ならびに医薬製剤に採用される他の適合する任意の物質が挙げられる。
「薬学的に許容される塩」には酸付加塩と塩基付加塩とが両方とも含まれる。薬学的に許容される塩には(タンパク質の遊離アミノ基を使用して形成される)酸付加塩が含まれるが、これは、無機酸、例えば、塩酸、臭化水素酸、硫酸、硝酸、リン酸など、及び有機酸、例えば、限定されないが、酢酸、2,2−ジクロロ酢酸、アジピン酸、アルギン酸、アスコルビン酸、アスパラギン酸、ベンゼンスルホン酸、安息香酸、4−アセトアミド安息香酸、カンファー酸、カンファー−10−スルホン酸、カプリン酸、カプロン酸、カプリル酸、炭酸、ケイ皮酸、クエン酸、サイクラミン酸、ドデシル硫酸、エタン−1,2−ジスルホン酸、エタンスルホン酸、2−ヒドロキシエタンスルホン酸、ギ酸、フマル酸、ガラクタル酸、ゲンチジン酸、グルコヘプトン酸、グルコン酸、グルクロン酸、グルタミン酸、グルタル酸、2−オキソ−グルタル酸、グリセロリン酸、グリコール酸、馬尿酸、イソ酪酸、乳酸、ラクトビオン酸、ラウリン酸、マレイン酸、リンゴ酸、マロン酸、マンデル酸、メタンスルホン酸、粘液酸、ナフタレン−1,5−ジスルホン酸、ナフタレン−2−スルホン酸、1−ヒドロキシ−2−ナフトエ酸、ニコチン酸、オレイン酸、オロト酸、シュウ酸、パルミチン酸、パモ酸、プロピオン酸、ピログルタミン酸、ピルビン酸、サリチル酸、4−アミノサリチル酸、セバシン酸、ステアリン酸、コハク酸、酒石酸、チオシアニン酸、pトルエンスルホン酸、トリフルオロ酢酸、ウンデシレン酸などによって形成される。また、遊離カルボキシル基を使用して形成される塩は、例えば、ナトリウム、カリウム、リチウム、アンモニウム、カルシウム、マグネシウム、鉄、亜鉛、銅、マンガン、アルミニウム塩など、無機塩基から誘導され得る。有機塩基から誘導される塩としては、限定されないが、第一級、第二級及び第三級アミン、置換型アミン、例えば、天然に存在する置換型アミン、環状アミン、及び塩基性イオン交換樹脂、例えば、アンモニア、イソプロピルアミン、トリメチルアミン、ジエチルアミン、トリエチルアミン、トリプロピルアミン、ジエタノールアミン、エタノールアミン、デアノール、2−ジメチルアミノエタノール、2−ジエチルアミノエタノール、ジシクロヘキシルアミン、リジン、アルギニン、ヒスチジン、カフェイン、プロカイン、ヒドラバミン、コリン、ベタイン、ベネタミン、ベンザチン、エチレンジアミン、グルコサミン、メチルグルカミン、テオブロミン、トリエタノールアミン、トロメタミン、プリン、ピペラジン、ピペリジン、N−エチルピペリジン、ポリアミン樹脂などの塩が挙げられる。特に好ましい有機塩基は、イソプロピルアミン、ジエチルアミン、エタノールアミン、トリメチルアミン、ジシクロヘキシルアミン、コリン及びカフェインである。
本開示は、がん細胞または標的細胞を死滅させる方法であって、組成物をがん細胞に細胞内送達するのに十分な条件の下で、細胞を本明細書に記載のポリヌクレオチドもしくは粒子、またはその組成物に曝露することを含む、当該方法を提供する。本明細書中で使用する場合、「がん細胞」または「標的細胞」は、本明細書に記載のポリヌクレオチドもしくは粒子または本明細書に記載のその組成物による治療または投与のために選択された哺乳動物細胞を指す。本明細書中で使用する場合、「がん細胞を死滅させること」は、具体的には、アポトーシスまたは壊死によるがん細胞の死滅を指す。がん細胞の死滅は、腫瘍サイズ測定、細胞計数ならびに、アネキシンV及びヨウ化プロピジウムの組込みなどの細胞死マーカーを検出するためのフローサイトメトリーを含むがこれらに限定されない、当技術分野で知られている方法によって決定され得る。
本開示はさらに、がんの治療または防止を、それを必要とする対象において行う方法であって、有効量の本明細書に記載の治療用組成物を対象に投与するものである、当該方法を提供する。投与経路は、治療する疾患の場所及び性質によって当然様々であろうが、例えば、皮内、経皮(transdermal)、皮下(subdermal)、非経口、経鼻、静脈内、筋肉内、鼻腔内、皮下(subcutaneous)、経皮(percutaneous)、気管内、腹腔内、腫瘍内、灌流、洗浄、直接注射及び経口投与が含まれ得る。本明細書に記載のカプセル封入ポリヌクレオチド組成物は、複数の臓器及び/または細胞種に組成物を送達するために全身投与が必要となり得る転移がんの治療に特に有用である。したがって、特定の実施形態では、本明細書に記載の組成物は全身投与される。
本明細書中で交換可能に使用される「有効量」または「有効用量」は、疾患または症状の症候の改善または矯正をもたらす、本明細書に記載の組成物の量及びまたは用量を指す。改善は、疾患もしくは症状、または疾患もしくは症状の症候の任意の改善または矯正である。改善は、観察可能もしくは測定可能な改善であり、または、対象の全体的幸福感の改善であり得る。したがって、当業者であれば、治療は疾患症状を改善し得るが疾患の完全な治癒でない場合があるということを理解する。対象における改善としては、腫瘍負荷の減少、腫瘍細胞増殖の減少、腫瘍細胞死の増加、免疫経路の活性化、腫瘍が進行するまでの時間の増加、がん疼痛の減少、生存率の上昇または生活の質の向上が挙げられ得るが、これらに限定されない。
いくつかの実施形態では、有効用量の投与は、単回用量の本明細書に記載の組成物の投与によって成し遂げられ得る。本明細書中で使用する場合、「用量」は、一度に送達される組成物の量を指す。いくつかの実施形態では、用量は、所与の体積の中の粒子の数(例えば、粒子/mL)で測定されてもよい。いくつかの実施形態では、用量は、各粒子の中に存在する本明細書に記載のポリヌクレオチドのゲノムコピー数(例えば、各粒子がポリヌクレオチドの少なくとも1つのゲノムコピーを含む場合の粒子数/mL)によってより厳密に表されてもよい。いくつかの実施形態では、有効用量の送達には、多回用量の本明細書に記載の組成物の投与が必要となり得る。したがって、有効用量の投与には、少なくとも2、3、4、5、6、7、8、9、10、20、30、40、50回またはそれより多い回数の用量の本明細書に記載の組成物を投与することが必要となり得る。
多回用量の本明細書に記載の組成物が投与される実施形態では、各用量を同じ施与者によって及び/または同じ地理的位置で投与する必要はない。さらに、投薬は所定のスケジュールに従って施され得る。例えば、所定の投薬スケジュールは、本明細書に記載の組成物の用量を1日1回、2日に1回、週に1回、2週間に1回、1ヶ月に1回、1ヶ月に2回、1年に1回、半年に1回などで投与することを含み得る。所定の投薬スケジュールを所与の患者のために必要に応じて調節してもよい(例えば、投与する組成物の量を加減してもよく、及び/または用量の頻度を増減してもよく、及び/または投与する用量の総数を増減してもよい)。
本明細書中で使用する場合、「防止」または「予防」は、疾患の症候の完全な防止、疾患の症候の発症の遅延、または後に進展する疾患症候の重症度の低減を意味し得る。
「対象」または「患者」という用語は、本明細書中で使用される場合、本明細書に記載の方法に従って本明細書に記載の組成物を投与される任意の哺乳動物対象を意味するものとして解釈される。具体的な実施形態では、本開示の方法は、ヒト対象を治療するために採用される。また、非ヒト霊長類(例えば、サル、ヒヒ及びチンパンジー)、マウス、ラット、ウシ、ウマ、ネコ、イヌ、ブタ、ウサギ、ヤギ、シカ、ヒツジ、フェレット、アレチネズミ、モルモット、ハムスター、コウモリ、トリ(例えば、ニワトリ、シチメンチョウ及びアヒル)、魚類及び爬虫類を治療するために本開示の方法を採用してもよい。
「がん」は、本明細書中で使用される場合、制御されない細胞成長を典型的な特徴とする、哺乳動物の生理学的状態を指す、または表す。がんの例としては、限定されないが、癌腫、リンパ腫、芽腫、肉腫(脂肪肉腫、骨原性肉腫、脈管肉腫、内皮肉腫、平滑筋肉腫、脊索腫、リンパ管肉腫、リンパ管内皮肉腫、横紋筋肉腫、線維肉腫、粘液肉腫及び軟骨肉腫を含む)、神経内分泌腫瘍、中皮腫、滑液膜腫、シュワン細胞腫、髄膜腫、腺腫、メラノーマ、及び白血病またはリンパ系悪性腫瘍が挙げられる。そのようながんのより詳しい例としては、扁平上皮癌(例えば表皮扁平上皮癌)、肺癌、例えば、小細胞肺癌、非小細胞肺癌、肺腺癌及び肺扁平上皮癌腫、小細胞肺癌腫、腹膜癌、肝細胞癌、胃癌、例えば消化器癌、膵臓癌、神経膠芽腫、子宮頸癌、卵巣癌、肝臓癌、膀胱癌、肝細胞腫、乳癌、結腸癌、直腸癌、大腸癌、子宮内膜または子宮癌腫、唾液腺癌腫、腎臓癌、前立腺癌、外陰癌、甲状腺癌、肝細胞癌腫、肛門癌腫、陰茎癌腫、精巣癌、食道癌、胆道の腫瘍、ユーイング腫瘍、基底細胞癌腫、腺癌、汗腺癌腫、皮脂腺癌腫、乳頭癌腫、乳頭腺癌、嚢胞腺癌、髄様癌腫、気管支原性癌腫、腎細胞癌腫、肝細胞腫、胆管癌腫、絨毛癌、精上皮腫、胎児性癌種、ウィルムス腫瘍、精巣腫瘍、肺癌腫、膀胱癌腫、上皮癌腫、神経膠腫、星細胞腫、骨芽種、頭蓋咽頭腫、上衣細胞腫、松果体腫、血管芽腫、聴神経腫、乏突起神経膠腫、髄膜腫、メラノーマ、神経芽腫、網膜芽細胞腫、白血病、リンパ腫、多発性骨髄腫、ワルデンストレームマクログロブリン血症、骨髄異形成病、重鎖病、神経内分泌腫瘍、シュワン細胞腫及び他の癌腫、ならびに頭頸部癌が挙げられる。さらに、良性前立腺肥大(BPH)、髄膜腫、シュワン細胞腫、神経線維腫症、ケロイド、筋腫及び子宮筋腫、ならびにその他を含めて良性(すなわち非がん性)過剰増殖性の疾患、障害及び症状もまた、本明細書において開示される開示物を用いて治療され得る。
A.例示的な自己複製性ポリヌクレオチド
当業者であれば、コードされるウイルスの性質が様々であろうこと、及び治療される疾患兆候によって決まるであろうことを理解するであろう。例えば、いくつかの実施形態では、特定のがんの治療にポリオウイルスが使用され得る。ポリオウイルスゲノムは、単一のポリプロテインをコードする一本鎖プラスセンス極性RNA分子を含む。5’非翻訳領域(UTR)は2つの機能性ドメインであるクローバーリーフ及び配列内リボソーム進入部位(IRES)を内包し、ウイルスタンパク質VPgに共有結合で繋げられている。3’UTRはポリアデニル化されている(例えば図6Aを参照のこと)。いくつかの実施形態では、ポリオウイルスゲノムは5’及び3’末端においてAAV由来ITRと隣接している(例えば図6Aを参照のこと)。
いくつかの実施形態では、1つ以上のmiRNA標的配列はウイルス遺伝子、例えば必須ウイルス遺伝子に機能可能に繋げられている。例えば、ポリオウイルスゲノムは、この目的に適したいくつかの遺伝子、例えば、限定されないが、ウイルスRNAゲノムの複数のコピーを作る機能を有するRNA依存性RNAポリメラーゼ、3Dpol;ウイルスRNAに結合しウイルスのプラス及びマイナス鎖RNAの合成に必要とされるタンパク質であるウイルスポリペプチドVPg(3B)を切断するプロテアーゼ、2Apro及び3Cpro/3CDpro;ウイルス複製に必要なタンパク質複合体を構成する2BC、2B、2C(ATPアーゼ)、3AB、3A、3Bタンパク質;ウイルスカプシドのタンパク質でありVP2及びVP4、VP1及びVP3へとさらに切断される、VP0を含む。いくつかの実施形態では、miRNA転写減衰型ポリオウイルスゲノムは、ポリヌクレオチドの複製及び核内進入に役立つAAV由来ITR配列に挟まれている(例えば図6Bを参照のこと)。他の遺伝子を適宜選択してもよい。いくつかの実施形態では、miRNA標的配列は、遺伝子の機能性ポリペプチドをコードする能力を維持しながらmiRNA標的配列の転写をもたらす遺伝子座内の場所にmiRNA標的配列を挿入することによって、ウイルス遺伝子、例えば必須ウイルス遺伝子に機能可能に繋げられている。いくつかの実施形態では、miRNA標的配列はウイルス遺伝子の5’UTRまたは3’UTRの中に挿入されている。いくつかの実施形態では、miRNA標的配列は、オープンリーディングフレーム内、例えば、ポリペプチドを翻訳及び翻訳後切断して2つ以上の機能性タンパク質にするのを可能にしてmiRNA標的配列がインフレームとなるような2つのポリペプチドのコード配列の間などに挿入されている。例えば、miRNA標的配列は2つの2Aペプチド配列の間に挿入され得、miRNA標的配列の挿入部位の下流(3’側)には、ポリペプチド配列のリーディングフレームを保つために必要に応じて追加のヌクレオチドが加えられ得る。
いくつかの実施形態では、四量体miR−124、miR−145、miR−34a、及びlet7標的部位を含有するmiRNA標的配列カセットを1つ以上の必須ポリオウイルス遺伝子の転写減衰のために3’UTRの中に挿入することによって野生型ポリオウイルスゲノムが改変されている(図8A)。いくつかの実施形態では、このmiRNA転写減衰型ポリオウイルスは、非小細胞肺癌の治療に使用するのに適している(図8A)。いくつかの実施形態では、四量体miR−122、miR−124、miR−34a、及びlet7標的部位を含有するmiRNA標的配列カセットを1つ以上の必須ポリオウイルス遺伝子の3’UTRの中に挿入することによって野生型PVゲノムが改変されている(図8B)。いくつかの実施形態では、このmiRNA転写減衰型ポリオウイルスは、肝細胞癌腫の治療に使用するのに適している(図8B)。いくつかの実施形態では、四量体miR−124、miR−143、miR−145、及びlet7標的部位を含有するmiRNA標的配列カセットを1つ以上の必須ポリオウイルス遺伝子の転写減衰のための3’UTRの中に挿入することによって野生型ポリオウイルスゲノムが改変されている(図8C)。いくつかの実施形態では、このmiRNA転写減衰型ポリオウイルスは、前立腺癌の治療に使用するのに適している(図8C)。
いくつかの実施形態では、特定のがんの治療にVSVが使用され得る。VSVゲノムは、5つの主要タンパク質:核タンパク質(N)、リンタンパク質(P)、マトリックスタンパク質(M)、糖タンパク質(G)及びポリメラーゼ(L)をコードする一本鎖マイナスセンス極性RNA分子を含む。ウイルスがコードする5つのタンパク質1つにつき単シストロン性mRNAが1つ存在している。mRNAは、キャップ形成、メチル化及びポリアデニル化されている。VSVは細胞質性マイナスセンスRNAウイルスであるため、mRNA合成及び修飾のための酵素はビリオン内にパッケージングされている(図9A)。いくつかの実施形態では、VSVゲノムは、ポリヌクレオチドの複製及び核内進入に役立つAAV由来ITR配列に挟まれている(図9A)。
いくつかの実施形態では、VSVゲノムの1つ以上の必須ウイルス遺伝子(例えば、N、P、M、GまたはL遺伝子の1つ以上)の遺伝子座に挿入された1つ以上のmiRNA標的配列を含むmiRNA標的配列カセットを挿入することによって野生型VSVゲノムが改変されている(図9B)。いくつかの実施形態では、miRNA標的配列は遺伝子の5’UTRまたは3’UTRの中に挿入されている。いくつかの実施形態では、四量体miR−122、miR−124、miR−34a、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを転写減衰のための5つのウイルスコード転写産物のうちの4つ(例えば、N、P、M、GまたはL遺伝子のうちの4つ)の3’UTRの中に挿入することによって野生型VSVゲノムが改変されている(図11A)。いくつかの実施形態では、このmiRNA転写減衰型VSVは肝細胞癌腫の治療に使用するのに適している(図11A)。いくつかの実施形態では、四量体miR−124、miR−143、miR−145、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを転写減衰のための5つのウイルスコード転写産物のうちの4つ(例えば、N、P、M、GまたはL遺伝子のうちの4つ)の3’UTRの中に挿入することによって野生型VSVゲノムが改変されている(図11B)。いくつかの実施形態では、このmiRNA転写減衰型VSVは前立腺癌の治療に使用するのに適している(図11B)。いくつかの実施形態では、四量体miR−124、miR−145、miR−34a、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを転写減衰のための5つのウイルスコード転写産物のうちの4つ(例えば、N、P、M、GまたはL遺伝子のうちの4つ)の3’UTRの中に挿入することによって野生型VSVゲノムが改変されている(図11C)。いくつかの実施形態では、このmiRNA転写減衰型VSVは非小細胞肺癌の治療に使用するのに適している(図11C)。
いくつかの実施形態では、特定のがんの治療にアデノウイルスが使用され得る。AAVゲノムは、24〜36個のタンパク質コード遺伝子をコードする二本鎖DNA分子を含む。E1A、E1B、E2A、E2B、E3及びE4転写単位はウイルス再生サイクルにおいて早くに転写される(図12A)。これらの転写単位の中で遺伝子にコードされるタンパク質は主にウイルス転写の調節、ウイルスDNAの複製、及び感染に対する宿主応答の抑制に関与する。いくつかの実施形態では、アデノウイルスゲノムは、ポリヌクレオチドの複製及び核内進入に役立つAAV由来ITR配列に挟まれている(図12A)。
いくつかの実施形態では、AAVゲノムの1つ以上の必須ウイルス遺伝子(例えば、E1A、E1B、E2A、E2B、E3またはE4の1つ以上)の中に挿入された1つ以上のmiRNA標的配列を含むmiRNA標的配列カセットの挿入によって野生型AAVゲノムが改変されている(図12B)。いくつかの実施形態では、四量体miR−122、miR−124、miR−34a、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを1つ以上の必須遺伝子(例えば、E1A、E1B、E2A、E2B、E3またはE4の1つ以上)の3’UTRの中に挿入することによって野生型AAVゲノムが改変されている(図13A)。いくつかの実施形態では、このmiRNA転写減衰型アデノウイルスは肝細胞癌腫の治療に使用するのに適している(図13A)。いくつかの実施形態では、四量体miR−124、miR−143、miR−145、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを1つ以上の必須遺伝子(例えば、E1A、E1B、E2A、E2B、E3またはE4の1つ以上)の3’UTRの中に挿入することによって野生型AAVゲノムが改変されている(図13B)。いくつかの実施形態では、このmiRNA転写減衰型アデノウイルスは前立腺癌の治療に使用するのに適している(図13B)。いくつかの実施形態では、四量体miR−124、miR−145、miR−34a、及びlet7標的部位を含むmiRNA標的配列カセットを1つ以上の必須遺伝子(例えば、E1A、E1B、E2A、E2B、E3またはE4の1つ以上)の3’UTRの中に挿入することによって野生型AAVゲノムが改変されている(図13C)。いくつかの実施形態では、このmiRNA転写減衰型アデノウイルスは非小細胞肺癌の治療に使用するのに適している(図13C)。
以下の実施例は、本開示の様々な実施形態を例示する目的のために提供されるものであり、本開示を何らかのかたちで制限する意図はない。本発明の実施例は、本明細書に記載の方法と併せて、好ましい実施形態をさしあたって代表するものであり、例示的なものであり、本開示の範囲に対する限定の意図はない。その中での変更、及び特許請求の範囲から明確にされる本開示の趣旨の中に包含される他の用途は、当業者によって想到されるであろう。
実施例1:複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド構築物の操作
本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチド構築物は、標準的な分子生物学及び遺伝学の技術を用いて操作及び製造される。特定のウイルスをコードする例示的な構築物、及びこれらの構築物を使用した治療のための対応するがんを以下の表13、表14及び表15に記載する。しかしながら、適切なウイルスは、ウイルスの所望の特質及び治療するがんの特質に基づいて選択され得る。同様に、miRNA標的配列カセット(miR TS)をウイルスゲノム中の1つ以上の場所に挿入して、正常な非がん性細胞においてコードされるウイルスゲノムの複製を制御しながらがん細胞において複製を可能にすることができる。例示的な構築物は本開示の全体を通して記載されている。作製した構築物を以下の表8にまとめる。
自己複製性ポリヌクレオチドの設計後、構築物を送達のためにプラスミド主鎖中への挿入またはアデノ随伴ウイルス(AAV)由来の末端逆位反復配列(ITR)の追加によって操作する。これらの2つの特定タイプの送達機構、すなわち、プラスミドゲノム構築物、及びITRに挟まれたナノウイルス(NanoV)構築物を設計するためのプロトコール及び方法を開発したので以下に説明する。
実施例2:複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド構築物を含むプラスミドの設計及び製造
SVVウイルスDNAはGenscriptにて合成され、ポリ(A)、5’ハンマーヘッド型リボザイム及び3’デルタ肝炎リボザイムは、ギブソン・アセンブリによるベースベクター中への挿入時に融合PCRによって加えられた。このベースベクターは長さが2.4kbであり、最小限の複製起点、及び哺乳動物細胞での使用のために最適化されたカナマイシン耐性カセットを含有する(図31A)。発現カセットは配列ID:1として開示されている。似たようなベクターをコクサッキーウイルスで構築したが(CVA21)、これを図31Bに示す。CVA21発現カセットは配列番号2として開示されている。
実施例3:ITRに挟まれたNanoV構築物の設計及び製造
ITRに挟まれたNanoV構築物を製造するためには自己複製性ポリヌクレオチド構築物を、テトラサイクリン(Tet)応答性プロモーターの制御下にある、AAV由来ITRに挟まれた発現カセットの中に挿入する。図17は、模範的なNanoV構築物の模式図を示す。テトラサイクリン応答性プロモーターであるTRE−tightはmCherryの発現を促すが、このmCherryは代用物として使用されており、適切なウイルスゲノム構築物(図17中、OVで示される)で置き換えられ得る。テトラサイクリン制御性トランス活性化因子(tTA)の発現は、図17中にUbCPとして示される恒常的プロモーターによって制御される。このNanoV構築物は、種々のNanoVカセットの速やかな挿入を可能にするGatewayクローニングシステム(Thermo Fisher)を用いてHSV−1のUL3/4遺伝子間領域に挿入される。培養培地にテトラサイクリンを添加するとTetがtTAに結合し、mCherry構築物の発現が妨げられる。したがって、培養培地からのTetの除去は誘導性mCherry発現を可能にする。加えて、第2の恒常的プロモーター(例えばCMV)の制御下にあるiDimerizeカセット(Takara)をHSV−1 BAC内のUL50/51遺伝子間遺伝子座に挿入する。iDimerizeカセットは、ヘテロ二量体化剤誘導性Rep78/52発現を調節する2つのヘテロ二量体化ドメイン(DmrA及びDmrC)を含む。A/Cヘテロ二量体化剤AP21967を培養培地に添加することによってiDimerizeカセットが活性化され、その結果、ITRに挟まれたNanoV構築物の複製を促すものであるRep78/52発現がもたらされる。
iDimerizeカセットによるRep78/52発現の調節を実証するために、Vero細胞にiDimerize−Repカセットを0.5nm、5nm、50nmまたは500nmのAP21967の存在下でトランスフェクトした。Repタンパク質をコードするプラスミド(pCDNA−Rep)を陽性対照として使用した。トランスフェクションから24時間後にタンパク質を細胞から抽出し、α−Repまたはα−アクチン抗体を使用してSDS−PAGE/ウェスタンブロット分析に供した。図18に示すように、50nM以上のヘテロ二量体化剤濃度はiDimerizeカセットからのRep78/52発現を誘導したが、ヘテロ二量体化剤の添加はpCDNA−Repトランスフェクト細胞におけるRep発現レベルに何ら影響を与えなかった。
NanoV構築物の産生を実証するために、図17に示す組換えHSV−1ベクターにU2OS細胞を感染させた。感染から3日後に感染細胞を採集し、Miniprep DNA精製キット(Qiagen)を使用してDNAを精製した。このシステムによって産生される、予測されるNanoV単量体及び二量体を図19Aに示す。NanoV DNAではなくHSV DNAの自由末端を露出させるため及び閉鎖末端を有さないDNAを分解するために、抽出したDNAをNheI及びExoIII消化に供した。その後、消化されたDNA断片をアガロースゲルで分析してNanoV単量体及び二量体の存在を判定した。図19Bに示すように、単量体及び二量体断片の両方について、予測された大きさのところにバンドが現れている(それぞれ3.7kb及び7.4kb)。3.7kbと7.4kbとの両方のバンドからDNAを抽出し、続いて、内在mCherryカセットに特異的な内在物を使用するPCR分析を実施した(図19Cの模式図を参照のこと)。図19Dに示すように、これらのPCR反応は、3.7及び7.4kbの両バンドから抽出されたDNAから1.9kbのアンプリコンを生成し、このことから、ITRの内部のポリヌクレオチド配列が複製されたことが実証された。
NanoVコンカテマーの配向を決定するために、3.7kb単量体及び7.4kb二量体の両方から抽出したDNAをAflIIで消化し、非還元性アガロースゲル電気泳動によって分析した。予想されるAflIIの切断部位はUbCプロモーター内にあり、それによって、図20Aに示すように単量体では予測される1.2kb及び2.5kbの大きさを有する切断生成物が生成する。コンカテマーから予測される生成物の大きさは二量体の配向(例えば、図20Bに示すように、頭−頭、尾−尾、または頭−尾)によって様々であろう。図18Bからの3.7kb断片から抽出されたDNAのAflII切断は、予測された1.2kb及び2.5kbの断片を生成した(図20C、バンドの存在を白いバーが示している)。図19Bからの7.4kb断片から抽出されたDNAのAflII切断は、コンカテマーの尾−尾配向を示唆する1.2kb及び5kb、ならびにコンカテマーの頭−頭配向を示唆する2.5kb及び2.4kbの断片の大きさを生じさせた。
実施例4:プラスミドゲノムから感染性ピコルナウイルスウイルスを生み出すには3’及び5’リボザイムが必要である
哺乳動物Pol IIプロモーターの制御下にあるSVVコードポリヌクレオチドを含んでいる実施例2で生成したプラスミドから感染性SVVウイルスを生み出す能力を評価するために、実験を実施した。プラスセンス一本鎖RNAウイルス、例えばSVV及びコクサッキーウイルスは、適切な複製のためにウイルス本来の別個の5’及び3’末端を必要とするが、これらは、哺乳動物5’及び3’UTRを含有する哺乳動物RNA Pol II転写産物によって生み出されないものである。したがって、感染性+センスssRNAウイルスの産生には、Pol IIによってコードされるSVV転写産物から非ウイルス性RNAを除去するのを触媒する、及び複製可能な感染性SVVの発現を可能にする、5’及び3’リボザイム配列を内包することが必要であった(図22及び図23Aの概略図解を参照のこと)。
手短に述べると、5’及び3’リボザイムコード配列の挿入を含む(SVV w/R)、及び含まない(SVV w/o R)、SVVウイルスゲノムをコードするDNAポリヌクレオチドを生成させた(図23A)。これらの構築物を、実施例2に記載されているようにDNAプラスミドの中に挿入した。末端リボザイム配列を含む、及び含まないSVVコードプラスミドの感染性ウイルスを生み出す能力を試験するために、293T細胞を1×10細胞/ウェルで6ウェルプレートに播種した。播種から24時間後に、Lipofectamine3000中の1μgの上記SVVプラスミド構築物を293T細胞に4時間トランスフェクトし、この時点で完全培地を各ウェルに加えた。トランスフェクトされた293Tからの上清を72時間後に回収し、0.45μMフィルターでシリンジ濾過を行い、H1299細胞に対して段階希釈した(図23B中のプロトコール図解を参照のこと)。48時間後、上清をH1299培養物から除去し、細胞をクリスタルバイオレットで染色してウイルス感染力を評価した。図24に示すように、末端リボザイムを含む構築物からのみ活性溶解性SVVが生み出されたことがクリスタルバイオレット染色における透明性の低下から示唆される。したがって、これらのデータは、本明細書に記載のポリヌクレオチドの中へのリボザイムコード配列の組込みが感染性SVVウイルスの製造に必要であることを示している。
実施例5:SVVコードポリヌクレオチドを含むDNAプラスミドは試験管内で搭載薬タンパク質を発現させることができる
SVVコードポリヌクレオチドの中に組み込まれた搭載薬コード配列から搭載薬タンパク質を発現させる、実施例2に記載のSVVプラスミドの能力を評価するために、実験を実施した。3つの搭載薬を試験した:mCherryレポーター、ナノルシフェラーゼ(Nanoluciferase)タンパク質、及びCXCL10。末端リボザイム配列を含むSVVコードプラスミドは、mCherryタンパク質を発現させることができたが、末端リボザイム配列を含まないSVVコードプラスミドはそれができなかった(図25A)。さらに、SVVコードプラスミドはナノルシフェラーゼ(Nanoluciferase)を発現させることができた(図25B)。そしてさらに、SVVコードプラスミドはCXCL10を発現させることができた(図25C)。これらのデータは、これらのプラスミド構築物が、感染性SVVを生み出すことに加えて、蛍光タンパク質(mCherryによって例示される)、酵素タンパク質(ナノルシフェラーゼ(Nanoluciferase)によって例示される)及び組換えケモカイン(CXCL10によって例示される)を含めた複数の異なる種類の搭載薬タンパク質を発現させることもできたということを実証している。
実施例6:SVVをコードする自己複製性ポリヌクレオチドのmRNA転写減衰
実施例2に記載のSVVコードポリヌクレオチドがmiRNA転写減衰され得るか否かを判定するために、実験を実施した。図26に示すように、miR−1及びmiR−122標的配列を含むmiRNA標的カセット(miR−T)を、インフレームでSVVウイルスポリプロテインと共に内因性ウイルス2A及び合成T2A配列の間に挿入した(図16も参照のこと)。miR−1標的配列は、筋肉細胞においてウイルス複製を制御すると予測され、miR−122標的配列は、肝細胞においてウイルス複製を制御すると予測される。実施例4に記載されるように、SVVコードプラスミドがトランスフェクトされた293T細胞の上清からのウイルスの単離によってmiRNA転写減衰型SVV及びWT(対照)SVVウイルスを製造した。このウイルスを使用して、miR−1及びmiR−122模倣体が発現している許容H1299細胞に感染させた。48時間後、Cell Titer GloアッセイによってH446上清中のウイルス力価を評価することにより、WT SVVと対比してSVV miR−T構築物のmiRNA転写減衰を判定した。以下の表9の左列に示すように、陰性対照模倣体、miR−1、及びmiR−122のTCID50/mLは同等であり、したがって、WTウイルスの場合、同族miRNAはウイルス複製に対して何ら影響を与えなかった。しかしながら、miR−1かmiR−122かのどちらかが発現している細胞にSVV miR−T構築物を感染させたときに複数の対数の感染力価の減少が認められたとおり、標的細胞にmiR−1またはmiR−122模倣体がトランスフェクトされている場合にSVV miR−T(右列)のIC50はSVV WTウイルス(左列)に比べて大幅に低減された。これらのデータは、本明細書に記載の自己複製性ポリヌクレオチドから生み出されるウイルスが複数の組織特異的miRNAの挿入によって転写減衰され得ることを実証している。
実施例7:SVVコードポリヌクレオチドを含むプラスミドは生体内で感染性ウイルスを生み出す
H1299異種移植モデルを使用して、SVVコードポリヌクレオチドを含むプラスミドの生体内で感染性ウイルスを生み出す能力を決定するために実験を実施した。手短に述べると、5×10個のH1299細胞を8週齢の雌の無胸腺ヌードマウス(Charles River Laboratories)の右側腹に皮下接種した。腫瘍体積がおよそ100mmの体積に達したときにマウスを無作為に2つの実験群に割り当て、以下に本明細書に記載しているとおりに処置した。
図22に例示される、SSVをコードするリボザイム有効発現カセット(SVV w/R)及びリボザイム無効(SVV w/o R)カセットを含むプラスミドをLipofectamine3000で製剤化した。手短に述べると、各構築物14μgを1:1の比でLipofectamine3000と混合し、ボルテックスし、次いで10分間インキュベートし、その後、注射した。14μg/用量のプラスミドDNAの2回の投薬を、接種後18日目及び20日目に腫瘍内に投与した。電気測径器を使用して腫瘍体積を週に3回測定した。感染性ウイルスの評価のために20、22及び23日目に腫瘍を採取した。
図27Aに示すように、リボザイム有効SVVコードプラスミドで処置したマウスは、リボザイム無効SVVコードプラスミドで処置したマウスに比べて腫瘍成長の有意な阻害を実証した。各群から採取した腫瘍からウイルスを単離してH1299細胞に対して滴定し、ウイルス性溶解をクリスタルバイオレット染色で評価した。図27Bに示すように、SVV w/o R群から単離されたウイルス(図27Bの左パネル)に比べて、SVV w/Rプラスミドで処置したマウスに由来する腫瘍からの単離物(図27Bの右パネル)は、クリスタルバイオレット染色における透明性の低下によって示される活性な溶解性ウイルスを含有していた。これらのデータは、SVVをコードするリボザイム有効ポリヌクレオチドを含むプラスミドが、生体内で感染性の溶解性ウイルスを生み出し、腫瘍内に送達された場合に腫瘍成長を阻害する、ということを実証している。
実施例8:SVVコードポリヌクレオチドを含むプラスミドは生体内で搭載薬を発現させる
SVVコードポリヌクレオチドを含むプラスミドの、生体内に投与された場合に様々な搭載薬を発現させる能力を評価するために、さらなる実験を実施した。実施例7に記載されるように、リボザイム有効プラスミドDNA構築物を製剤化し、H1299異種移植モデルの腫瘍内に注射した。SVVコードポリヌクレオチド配列に加えて、ナノルシフェラーゼ(Nanluciferase)(図28A)またはCXCL10(図28B)をコードする配列をプラスミドインサートの中に組み込んだ。2日目(ナノルシフェラーゼ(Nanluciferase))または6日目(CXCL10)に腫瘍を採取し、各々の搭載薬タンパク質の発現について評価した。図28A〜28Bに示すとおり、ルシフェラーゼコードポリヌクレオチドを含むSVVプラスミド、またはCXCL10コードポリヌクレオチドを含むSVVプラスミドの腫瘍内投与は、単離された腫瘍における各搭載薬の検出をもたらした(図28Aは、増強された発光を示し、図28Bは、上昇したCXCL10のレベルを示す)。これらのデータは、SVVコードプラスミドが、感染性ウイルスを生み出すことに加えて、生体内で外来酵素及びサイトカイン搭載薬を発現させることができるということを実証している。
実施例9:SVVコードプラスミドを静脈内送達するための脂質ナノ粒子の製剤化
プラスミドの静脈内送達のために、SVVコードプラスミドを脂質ナノ粒子に製剤化した。
脂質ナノ粒子製造:
脂質:
以下の脂質を脂質ナノ粒子の製剤化に使用した:
(a)N−[1−(2,3−ジオレオイルオキシ)プロピル]−N,N,N−トリメチルアンモニウム(DOTAP)、
(b)コレステロール、
(c)1,2−ジラウロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DLPE)、
(d)1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−N−[アミノ(ポリエチレングリコール)(PEG−DSPEアミン)
(e)1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−(ポリエチレングリコール)(PEG−DSPE)。
製剤化:
脂質をエタノールに50:35:15(DOTAP:コレステロール:DLPE)の比で調製した。また、ある場合には脂質ナノ粒子を0.2%PEG−DSPEまたはPEG−DSPEアミンと共に製剤化した。マイクロ流体マイクロ混合物(Precision NanoSystems,Vancouver,BC)を使用して2mL/分(エタノール、脂質混合物を0.5mL/分、水性緩衝液、プラスミドDNAを1.5mL/分)の混合流速で粒子を調製した。得られた粒子をタンジェンシャルフロー濾過(TFF)によってCa及びMgを含有するPBSで洗浄した。
HA複合化手順:
高分子量ヒアルロナン(HA)(700KDa(Lifecore Biomedical))を0.2MのMES緩衝液(pH5.5)に溶解させて5mg/mLの終濃度にした。HA混合物を1−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド塩酸塩(EDC)及びN−ヒドロキシスルホスクシンイミド(sulfo−NHS)で1:1:6(HA:EDC:sulfo−NHS)のモル比で活性化した。30分の活性化の後、脂質粒子を添加し、pHを7.4に調節した。溶液を室温で2時間インキュベートした。
各カプセル封入製剤について得られたパラメータを以下の表10に示す。
粒子製剤の物理的特質の分析:
表10に記載される得られた粒子製剤の各々について粒径分布及びゼータ電位測定を、Malvern Nano−ZS Zetasizer(Malvern Instruments Ltd,Worcestershire,UK)を使用して光散乱によって決定した。粒径測定はHBS中でpH7.4で実施し、ゼータ電位測定は0.01M HBS中でpH7.4で実施した。HA複合化に先立って、TFFの前後に製剤の特性を評価した。これらの評価の結果を以下の表11に示す。
結果:
プラスミドDNAを細胞に好結果に送達して感染性ウイルスを生み出す各製剤の能力を評価するために、H1299細胞に各製剤をトランスフェクトした。Lipofectamineを使用して製剤化されたプラスミドDNAを陽性対照として使用し、Lipofectamine単独を陰性対照として使用した。トランスフェクションから3日後に上清を採集し、H466細胞に対する上清の滴定、及びCell Titer Glo生存能アッセイによってSVV TCID50/mLを算出した。
表12に示すとおり、種々の製剤のTCID50/mL値が感染性ウイルスの産生を実証していることから、プラスミドDNAの脂質粒子製剤はプラスミドDNAを細胞に送達することができ、感染性ウイルスを生み出した。
実施例10:プラスミドDNAの静脈内注射は腫瘍部位への送達及び腫瘍成長の阻害をもたらす
肺癌異種移植モデルにおける静脈内送達
SVVコードプラスミドDNAの脂質粒子製剤が全身投与された場合にpDNAを腫瘍に送達することができるか否かを判定する実験を実施した。実施例9及び表10に記載の製剤52021−4Dを選択し、粒子をPBS中に、約95%の活性DNA回収率及び脂質カプシド化効率で製剤化した。
腫瘍体積がおよそ150mm3の体積に達したときに100μL(およそ27μgのDNA)のLNPを静脈内投与した。PBSをビヒクル対照として使用した。2つの追加用量のLNPまたはビヒクル対照を1日おきに、合計3回の用量で静脈内投与した。最後の投薬から48時間後にマウスを屠殺し、腫瘍組織を回収した。
図29に示すように、LNPで処置したマウスから採取した腫瘍にSVVプラスミドDNAが検出された。したがって、LNPはプラスミドDNAを腫瘍部位に送達することができる。
SVVコードプラスミドDNAの脂質粒子製剤が実施例7に記載のH1299異種移植モデルに静脈内投与された場合に腫瘍成長に影響を及ぼすことができるか否かを判定する実験を実施した。標的指向性部分ヒアルロン酸及び試験管内での機能が存在するため、実施例9及び表10に記載の脂質ナノ粒子(LNP)製剤52021−2Dをさらなる分析のために選択し、粒子をPBS中に、約95%の活性DNA回収率及び脂質カプシド化効率で製剤化した。
腫瘍体積がおよそ150mmの体積に達したときに100μL(およそ27μgのDNA)のLNPを静脈内投与した。PBSをビヒクル対照として使用した。3つの追加用量のLNPまたはビヒクル対照を1日おきに合計4回の用量で静脈内投与した。電気測径器を使用して腫瘍体積を週に少なくとも2回測定した。
図30に示すように、LNPに製剤化されたプラスミドDNAの静脈内送達は、PBS対照において観察された成長と比較して、時の経過と共に腫瘍成長を有意に阻害した(図30、****p<0.0001、Bonferroni補正を伴う二元配置ANOVA)。これらの結果は、感染性ウイルスをコードするプラスミドDNAが非ウイルス性ビヒクル中で静脈内送達されることができ、生体内での腫瘍成長を有意に阻害することができる、ということを実証している。
肝細胞癌腫異種移植モデルにおける静脈内送達:
肝細胞癌腫のマウス異種移植モデルにおける静脈内LNP送達の効果を評価するには、同様の実験を実施することになる。手短に述べると、マウスに3×10個のHepG2細胞を接種し、上記のとおりに製剤化されたLNPで静脈内に処置することになる。腫瘍成長を経時的に測定することになり、実験の最後に腫瘍をさらなる分析のために採取することになる。これらの実験は、腫瘍溶解性ウイルスをコードし静脈内投与されるLNP封入構築物の、肝細胞癌腫モデルにおける腫瘍成長を阻害する能力を実証すると予測される。
実施例11:LNP内に封入されウイルスゲノムをコードする自己複製性ポリヌクレオチドによる、がんに罹患している患者の処置
がんに罹患している患者を治療する本明細書に記載の自己複製性ウイルスゲノムの能力を評価するために実験が実施され得る。そのような実験では、ウイルスゲノムをコードする自己複製性ポリヌクレオチドを、概して実施例1に記載されているとおりに操作する。
これらの自己複製性ポリヌクレオチドは、プラスミド主鎖中への組込みのためにさらに操作され得る。あるいは、自己複製性ポリヌクレオチドを大規模に試験管内で増殖させるためには、ポリヌクレオチド複製及び核内進入に役立つAAV−ITR配列を、ウイルスゲノム全体を挟むように組み込んでNanoV構築物を生成することができる。ITRに挟まれたゲノムの全体を、組換えHSVゲノム主鎖の遺伝子間遺伝子座(図4B、図7B)、あるいはICP4遺伝子座(図5B、図10B、ICP4はICP4補足細胞株によってトランスで提供される)に挿入する。ITRに挟まれたウイルスゲノムDNAの効率的な複製を可能にするためにAAV rep遺伝子をICP0の中に挿入する(実施例3を参照のこと)。
標準的な分子生物学技術(例えば、Maxi−prep)を用いてプラスミドゲノムまたはNanoVゲノムを培養物から精製し、その後、凍結乾燥させたヒアルロナン(HA)で表面改質された脂質ナノ粒子(LNP)の中に封入する(実施例9を参照のこと)。カプセル封入されていないウイルスゲノムDNAを超遠心分離によって除去し、ナノ粒子内に封入されたウイルスゲノムをqPCRによって定量する。がんに罹患している患者への生体内投与のために、LNPを薬学的に許容される安定化剤と共にリン酸緩衝溶液(PBS)で調製する。1日目に、体積10mLの薬学的に許容される担体の中に入った1010個のベクターゲノムで患者を静脈内輸注によって処置する。標準的な医療手順を用いて患者をがんの存在について追跡評価する。あり得るこれらの実験の転帰としては、腫瘍成長の部分的または完全な阻害、腫瘍転移の阻害、寛解する時間の延長、及び/または標準治療と比較したときの再発率の減少が挙げられる。
実施例12:LNP内に封入されウイルスゲノムをコードする自己複製性ポリヌクレオチドによる、肺癌に罹患している患者の治療
非小細胞肺癌(NSCLC)に罹患している患者または小細胞肺癌(SCLC)に罹患している患者を治療する、本明細書に記載の自己複製性ウイルスゲノムの能力を評価するために、実施例11に従って実験が実施され得る。
LNP内に封入され得る及びNSCLC及びSCLCの治療に使用され得る例示的な自己複製性ポリヌクレオチドの概要を、以下の表13に示す。
実施例13:肝細胞癌腫に罹患している患者の治療。
肝細胞癌腫に罹患している患者を治療する、本明細書に記載の自己複製性ウイルスゲノムの能力を評価するために、実施例11に従って実験が実施され得る。
LNP内に封入され得る及び肝細胞癌腫の治療に使用され得る例示的な自己複製性ポリヌクレオチドの概要を、以下の表14に示す。
実施例14:前立腺癌に罹患している患者の治療。
前立腺癌に罹患している患者を治療する、本明細書に記載の自己複製性ウイルスゲノムの能力を評価するために、実施例11に従って実験が実施され得る。
LNP内に封入され得る及び前立腺癌の治療に使用され得る例示的な自己複製性ポリヌクレオチドの概要を、以下の表15に示す。
参照による援用
本明細書中で引用される全ての参考文献、論文、刊行物、特許、特許公報及び特許出願は、参照によりそれらの全体があらゆる目的のために援用される。しかしながら、本明細書中で引用される何らか参考文献、論文、刊行物、特許、特許公報及び特許出願に対する言及は、それらが有効な先行技術をなす、または世界のいずれかの国において一般常識の一部を形成する、ということの承認または何らかのかたちの示唆として解釈されず、また、そう解釈されるべきでない。
本明細書では本開示の好ましい実施形態を示し説明してきたが、そのような実施形態が例として提供されているにすぎないことは当業者には明らかであろう。今や、当業者であれば本開示から逸脱することなく幾多の変化形態、変更及び置換えを想到するであろう。本開示を実施する際、本明細書に記載の本開示の実施形態に対する様々な代替形態が採用され得ることは、理解されるべきである。以下の請求項によって本開示の範囲を画定すること、またこれらの請求項の範囲内に入る方法及び構造体ならびにそれらの均等物をそれによって包含することを企図する。
参考文献
1.Loffler A et al.,Blood.2000;95:2098−2103
2.Bargou R et al.,Science.2008;321:974−977
3.Klinger M et al.,Blood.2012;119:6226−6233
4.Topp MS et al.,J Clin Oncol.2011;29:2493−2498。
5.Loffler A et al.,Leukemia.2003;17:900−909
6.Topp MS et al.,Blood.2012;120:5185−5187
7.Brischwein K et al.,Mol Immunol.2006;43:1129−1143
8.Herrmann I et al.,PLoS ONE.2010;5:e13474。
9.Cioffi M et al.,Clin Cancer Res.2012;18:465−474
10.Witthauer J et al.,2009;117:471−481
11.Osada T et al.,Br J Cancer.2010;102:124−133
12.Lutterbuese R et al.,J Immunother.2009;32:341−352。
13.Friedrich M et al.,Molecular Cancer Therapeutics.2012;11:2664−2673
14.Laszlo GS et al.,Blood.2014;123:554−561
15.Friedrich M et al.,Mol Cancer Ther.2014;13:1549−1557
16.Lutterbuese R et al.,PNAS,2010;107:12605−12610
17.Wuellner U et al.,Antibodies 2015,4,426−440
18.Lopez−Albaitero A,Xu H,Guo H,et al.Oncoimmunology,2017;6(3):e1267891
19.Hammond SA et al.,Cancer Research.2007;67:3927−3935
20.Torisu−Itakura H et al.,J Immunother.2011;34:597−605
21.Yamamoto K et al.,Biochem J.2012;445:135−144
22.Feldmann A et al.,The Journal of Immunology.2012;189:3249−3259
23.Mack M et al.,PNAS.1995;92:7021−7025
24.Zhang T et al.,Cancer Research.2011;71:2066−2076
25.Godbersen C et al.,Mol Cancer Ther.2017 Jul;16(7):1335−1346
26.Ross SL et al.,PLoS One,2017;e0l83390

Claims (152)

  1. 複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含む組換えDNA分子を含む脂質ナノ粒子(LNP)であって、
    前記ポリヌクレオチド配列が、哺乳動物RNAポリメラーゼII(Pol II)に結合することができるプロモーター配列に機能可能に繋げられており、かつ3’リボザイムコード配列と5’リボザイムコード配列とに挟まれており、
    前記複製可能ウイルスゲノムをコードする前記ポリヌクレオチドの起源が非ウイルス性である、前記LNP。
  2. 前記複製可能ウイルスゲノムが一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスである、請求項1に記載のLNP。
  3. 前記複製可能ウイルスゲノムが、一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスであり、プラスセンス((+)センス)またはマイナスセンス((−)センス)ssRNAウイルスである、請求項1に記載のLNP。
  4. 前記複製可能ウイルスゲノムが(+)センスssRNAウイルスであり、前記(+)センスssRNAウイルスがピコルナウイルスである、請求項3に記載のLNP。
  5. 前記ピコルナウイルスがセネカバレーウイルス(SVV)またはコクサッキーウイルスである、請求項4に記載のLNP。
  6. 前記LNPを細胞と接触させることでウイルス粒子が前記細胞によって産生され、前記ウイルス粒子が感染性及び溶解性である、請求項1〜5のいずれか1項に記載のLNP。
  7. 前記組換えDNA分子がさらに、外来搭載薬タンパク質をコードするポリヌクレオチド配列を含む、請求項1〜6のいずれか1項に記載のLNP。
  8. 前記外来搭載薬タンパク質が、蛍光タンパク質、酵素タンパク質、サイトカイン、ケモカイン、または細胞表面受容体に結合することができる抗原結合性分子である、請求項7に記載のLNP。
  9. 前記サイトカインがFlt3リガンド及びIL−18から選択される、請求項8に記載のLNP。
  10. 前記ケモカインがCXCL10及びCCL4から選択される、請求項8に記載のLNP。
  11. 前記抗原結合性分子が、免疫チェックポイント受容体に対する結合及び阻害を行うことができる、請求項8に記載のLNP。
  12. 前記免疫チェックポイント受容体がPD1である、請求項11に記載のLNP。
  13. 前記複製可能ウイルスゲノムをコードする前記核酸配列の中にマイクロRNA(miRNA)標的配列(miR−TS)カセットが挿入されており、前記miR−TSカセットが1つ以上のmiRNA標的配列を含み、細胞における対応する1つ以上のmiRNAの発現が前記細胞における前記複製可能ウイルスゲノムの複製を阻害する、請求項1〜12のいずれか1項に記載のLNP。
  14. 前記1つ以上のmiRNAが、miR−124、miR−1、miR−143、miR−128、miR−219、miR−219a、miR−122、miR−204、miR−217、miR−137、及びmiR−126から選択される、請求項13に記載のLNP。
  15. 前記miR−TSカセットが、miR−124標的配列の1つ以上のコピー、miR−1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−143標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項14に記載のLNP。
  16. 前記miR−TSカセットが、miR−128標的配列の1つ以上のコピー、miR−219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−122標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項14に記載のLNP。
  17. 前記miR−TSカセットが、miR−128標的配列の1つ以上のコピー、miR−204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−219標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項14に記載のLNP。
  18. 前記miR−TSカセットが、miR−217標的配列の1つ以上のコピー、miR−137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−126標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項14に記載のLNP。
  19. 前記組換えDNA分子が、複製可能ウイルスゲノムをコードする前記ポリヌクレオチド配列を含むプラスミドである、請求項1〜18のいずれか1項に記載のLNP。
  20. 前記LNPが、カチオン性脂質、コレステロール及び中性脂質を含む、請求項1〜19のいずれか1項に記載のLNP。
  21. 前記カチオン性脂質が1,2−ジオレオイル−3−トリメチルアンモニウム−プロパン(DOTAP)であり、前記中性脂質が1,2−ジラウロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DLPE)または1,2−ジオレオイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DOPE)である、請求項20に記載のLNP。
  22. リン脂質−ポリマー複合体をさらに含み、
    前記リン脂質−ポリマー複合体が、1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−ポリ(エチレングリコール)(DSPE−PEG)、または1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−N−[アミノ(ポリエチレングリコール)](DSPE−PEG−アミン)である、
    請求項20または請求項21に記載のLNP。
  23. ヒアルロナンが前記LNPの表面と複合している、請求項1〜22のいずれか1項に記載のLNP。
  24. 複数の、請求項1〜23のいずれか1項に記載の脂質ナノ粒子
    を含む、治療用組成物であって、前記複数のLNPの平均粒径が約150nm〜約500nmである、前記治療用組成物。
  25. 前記複数のLNPの平均粒径が、約200nm〜約500nm、約300nm〜約500nm、約350nm〜約500nm、約400nm〜約500nm、約425nm〜約500nm、約450nm〜約500nm、または約475nm〜約500nmである、請求項24に記載の治療用組成物。
  26. 前記複数のLNPの平均ゼータ電位が、約−20mV未満、約−30mV未満、約35mV未満、または約−40mV未満である、請求項24または請求項25に記載の治療用組成物。
  27. 前記複数のLNPの平均ゼータ電位が、約−50mV〜約−20mV、約−40mV〜約−20mV、または約−30mV〜約−20mVである、請求項26に記載の治療用組成物。
  28. 前記複数のLNPの平均ゼータ電位が、約−30mV、約−31mV、約−32mV、約−33mV、約−34mV、約−35mV、約−36mV、約−37mV、約−38mV、約−39mV、または約−40mVである、請求項26または請求項27に記載の治療用組成物。
  29. 対象への前記治療用組成物の投与によって前記組換えDNAポリヌクレオチドが前記対象の標的細胞に送達され、前記組換えDNAポリヌクレオチドが、前記対象の前記標的細胞を溶解させることができる感染性ウイルスを生み出す、請求項24〜28のいずれか1項に記載の治療用組成物。
  30. 前記組成物が静脈内または腫瘍内に送達される、請求項29に記載の治療用組成物。
  31. 前記標的細胞ががん細胞である、請求項29に記載の治療用組成物。
  32. がん性腫瘍の成長を阻害することを、それを必要とする対象において行う方法であって、請求項24〜31のいずれか1項に記載の治療用組成物を、それを必要とする前記対象に投与することを含み、前記組成物の投与が前記腫瘍の前記成長を阻害する、前記方法。
  33. 前記投与が腫瘍内投与または静脈内投与である、請求項32に記載の方法。
  34. 前記がんが肺癌または肝臓癌である、請求項32または請求項33に記載の方法。
  35. 複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含む組換えDNA分子であって、
    前記ポリヌクレオチド配列が、哺乳動物RNAポリメラーゼII(Pol II)に結合することができるプロモーター配列に機能可能に繋げられており、かつ3’リボザイムコード配列と5’リボザイムコード配列とに挟まれており、
    前記複製可能ウイルスゲノムをコードする前記ポリヌクレオチドの起源が非ウイルス性である、前記組換えDNA分子。
  36. 前記コードされるウイルスが一本鎖RNA(ssRNA)ウイルスである、請求項35に記載の組換えDNA分子。
  37. 前記ssRNAウイルスがプラスセンス((+)センス)またはマイナスセンス((−)センス)ssRNAウイルスである、請求項36に記載の組換えDNA分子。
  38. 前記(+)センスssRNAウイルスがピコルナウイルスである、請求項37に記載の組換えDNA分子。
  39. 前記ピコルナウイルスがセネカバレーウイルス(SVV)またはコクサッキーウイルスである、請求項38に記載の組換えDNA分子。
  40. 前記組換えDNA分子が、非ウイルス性送達ビヒクルによって細胞内に導入されたときに感染性の溶解性ウイルスを生み出すことができる、請求項35〜39のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  41. 前記組換えDNA分子がさらに、外来搭載薬タンパク質をコードするポリヌクレオチド配列を含む、請求項35〜39のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  42. 前記外来搭載薬タンパク質が、蛍光タンパク質、酵素タンパク質、サイトカイン、ケモカイン、細胞表面受容体に対するリガンド、または細胞表面受容体に結合することができる抗原結合性分子である、請求項41に記載の組換えDNA分子。
  43. 前記サイトカインがIL−18である、請求項42に記載の組換えDNA分子。
  44. 細胞表面受容体に対する前記リガンドがFlt3リガンドである、請求項42に記載の組換えDNA分子。
  45. 前記ケモカインがCXCL10及びCCL4から選択される、請求項42に記載の組換えDNA分子。
  46. 前記抗原結合性分子が、免疫チェックポイント受容体に対する結合及び阻害を行うことができる、請求項42に記載の組換えDNA分子。
  47. 前記免疫チェックポイント受容体がPD1である、請求項46に記載の組換えDNA分子。
  48. 前記複製可能ウイルスゲノムをコードする前記核酸配列の中にマイクロRNA(miRNA)標的配列(miR−TS)カセットが挿入されており、
    前記miR−TSカセットが1つ以上のmiRNA標的配列を含み、
    細胞における対応する1つ以上のmiRNAの発現が、前記細胞における前記コードされるウイルスの複製を阻害する、
    請求項35〜47のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  49. 前記1つ以上のmiRNAが、miR−124、miR−1、miR−143、miR−128、miR−219、miR−219a、miR−122、miR−204、miR−217、miR−137、及びmiR−126から選択される、請求項48に記載の組換えDNA分子。
  50. 前記miR−TSカセットが、miR−124標的配列の1つ以上のコピー、miR−1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−143標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項49に記載の組換えDNA分子。
  51. 前記miR−TSカセットが、miR−128標的配列の1つ以上のコピー、miR−219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−122標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項49に記載の組換えDNA分子。
  52. 前記miR−TSカセットが、miR−128標的配列の1つ以上のコピー、miR−204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−219標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項49に記載の組換えDNA分子。
  53. 前記miR−TSカセットが、miR−217標的配列の1つ以上のコピー、miR−137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−126標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項49に記載の組換えDNA分子。
  54. 前記組換えDNA分子が、複製可能ウイルスゲノムをコードする前記ポリヌクレオチド配列を含むプラスミドまたはNanoVである、請求項35〜53のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  55. 複製可能ウイルスゲノムをコードするポリヌクレオチド配列を含む組換えDNA分子であって、
    前記複製可能ウイルスをコードする前記ポリヌクレオチド配列の起源が非ウイルス性であり、
    前記組換えDNA分子が、非ウイルス性送達ビヒクルによって細胞内に導入されたときに複製可能ウイルスを生み出すことができる、
    前記組換えDNA分子。
  56. 前記複製可能ウイルスゲノムがDNAウイルスのゲノムまたはRNAウイルスのゲノムである、請求項55に記載の組換えDNA分子。
  57. 前記DNAゲノムまたはRNAゲノムが二本鎖または一本鎖ウイルスである、請求項56に記載の組換えDNA分子。
  58. 前記一本鎖ゲノムがプラスセンス((+)センス)またはマイナスセンス((−)センス)ゲノムである、請求項57に記載の組換えDNA分子。
  59. 前記細胞が哺乳動物細胞である、請求項55に記載の組換えDNA分子。
  60. 前記細胞が、哺乳動物対象の中に存在している哺乳動物細胞である、請求項59に記載の組換えDNA分子。
  61. 前記複製可能ウイルスが、アデノウイルス、コクサッキーウイルス、ポリオウイルス、セネカバレーウイルス、ウマヘルペスウイルス、単純ヘルペスウイルス1型(HSV−1)、ラッサウイルス、マウス白血病ウイルス、A型インフルエンザウイルス、B型インフルエンザウイルス、ニューカッスル病ウイルス、麻疹ウイルス、パルボウイルス、レオウイルス、シンドビスウイルス、ワクチニアウイルス、粘液腫ウイルス、水疱性口炎ウイルス(VSV)、マラバウイルスからなる群から選択される、請求項55に記載の組換えDNA分子。
  62. 前記複製可能ウイルスゲノムをコードする前記ポリヌクレオチドの中に挿入された1つ以上のマイクロRNA(miRNA)標的配列(miR−TS)カセットをさらに含み、
    前記miR−TSカセットが1つ以上のmiRNA標的配列を含み、
    細胞における対応する1つ以上のmiRNAの発現が、前記細胞における前記コードされるウイルスの複製を阻害する、
    請求項55〜61のいずれかに記載の組換えDNA分子。
  63. 前記1つ以上のmiR−TSカセットが1つ以上の必須ウイルス遺伝子の5’非翻訳領域(UTR)または3’UTRの中に組み込まれている、請求項62に記載の組換えDNA分子。
  64. 前記1つ以上の必須ウイルス遺伝子が、UL1、UL5、UL6、UL7、UL8、UL9、UL11、UL12、UL14、UL15、UL17、UL18、UL19、UL20、UL22、UL25、UL26、UL26.5、UL27、UL28、UL29、UL30、UL31、UL32、UL33、UL34、UL35、UL36、UL37、UL38、UL39、UL40、UL42、UL48、UL49、UL50、UL52、UL53、UL54、US1、US3、US4、US5、US6、US7、US8、US12、ICP0、ICP4、ICP22、ICP27、ICP47、PB、F、B5R、SERO−1、Cap、Rev、VP1〜4、核タンパク質(N)、リンタンパク質(P)、マトリックスタンパク質(M)、糖タンパク質(G)、ポリメラーゼ(L)、E1、E2、E3、E3、VP1、VP2、VP3、VP4、2A、2B、2C、3A、3B、3C、及び3Dからなる群から選択される、請求項63に記載の組換えDNA分子。
  65. 前記1つ以上のmiR−TSカセットが1つ以上の非必須遺伝子の5’非翻訳領域(UTR)または3’UTRの中に組み込まれている、請求項62に記載の組換えDNA分子。
  66. 前記ポリヌクレオチドが、レプリコン、プラスミド、コスミド、ファージミド、トランスポゾン、細菌人工染色体、酵母人工染色体、または末端閉鎖型線形二本鎖腫瘍溶解性ウイルス(Ov)DNA分子から選択される核酸ベクターの中に挿入されている、請求項55〜65のいずれかに記載の組換えDNA分子。
  67. 前記ポリヌクレオチドが、DNAポリヌクレオチドであり、さらに、前記複製可能ウイルスゲノムをコードする前記核酸配列の5’末端に第1AAV由来末端逆位反復配列(ITR)、及び前記複製可能ウイルスゲノムをコードする前記核酸配列の3’末端に第2AAV由来ITRを含む、請求項55に記載の組換えDNA分子。
  68. 前記ポリヌクレオチドが、DNAポリヌクレオチドであり、さらに、前記複製可能ウイルスゲノムをコードする前記核酸配列のすぐ3’側の第1リボザイムコード配列、及び前記複製可能ウイルスゲノムをコードする前記核酸配列のすぐ5’側の第2リボザイムコード配列を含む、請求項55に記載の組換えDNA分子。
  69. 前記第1及び第2リボザイムコード配列が、ハンマーヘッド型リボザイムまたはデルタ肝炎ウイルスリボザイムをコードする、請求項68に記載の組換えDNA分子。
  70. 前記プロモーター配列が、真核生物RNAポリメラーゼに結合することができる、請求項55に記載の組換えDNA分子。
  71. 前記プロモーター配列が、哺乳動物RNAポリメラーゼに結合することができる、請求項55に記載の組換えDNA分子。
  72. 前記ポリヌクレオチドがDNAポリヌクレオチドであり、前記哺乳動物ポリメラーゼが感染性複製可能RNAウイルスの転写を促す、請求項55に記載の組換えDNA分子。
  73. 前記ポリヌクレオチドがDNAポリヌクレオチドであり、前記哺乳動物ポリメラーゼが感染性複製可能DNAウイルスの転写を促す、請求項55に記載の組換えDNA分子。
  74. 前記プロモーター配列が選択的にがん細胞における前記ポリヌクレオチドの転写を促す、請求項55に記載の組換えDNA分子。
  75. 前記プロモーター配列が、hTERT、HE4、CEA、OC、ARF、CgA、GRP78、CXCR4、HMGB2、INSM1、メソテリン、OPN、RAD51、TETP、H19、uPAR、ERBB2、MUC1、Frz1、またはIGF2−P4からなる群から選択される遺伝子に由来する、請求項55〜76のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  76. 細胞毒性ポリペプチド、サイトカイン、ケモカイン、抗原結合性分子、細胞表面受容体に対するリガンド、可溶性受容体、酵素、サソリポリペプチド、ヘビポリペプチド、クモポリペプチド、ハチポリペプチド、カエルポリペプチド及び治療用核酸からなる群から選択される搭載薬分子をコードする核酸配列をさらに含む、請求項55〜75のいずれかに記載の組換えDNA分子。
  77. 1つ以上のmiR−TSカセットが、前記搭載薬分子をコードする前記核酸配列の5’非翻訳領域(UTR)または3’UTR配列の中に組み込まれている、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  78. 前記細胞毒性ポリペプチドが、p53、ジフテリア毒素(DT)、シュードモナス外毒素A(PEA)、I型リボソーム不活性化タンパク質(RIP)、II型RIP、または志賀様毒素1(Slt1)から選択される、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  79. 前記酵素が、
    メタロプロテアーゼ、コラゲナーゼ、エラスターゼ、ヒアルロニダーゼ、カスパーゼ、ゼラチナーゼ、または
    遺伝子指向性酵素プロドラッグ療法(GDEPT)システムの一部であり単純ヘルペスウイルスチミジンキナーゼ、シトシンデアミナーゼ、ニトロレダクターゼ、カルボキシペプチダーゼG2、プリンヌクレオシドホスホリラーゼもしくはシトクロムP450から選択される酵素
    から選択される、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  80. 前記ゼラチナーゼが線維芽細胞活性化タンパク質(FAP)である、請求項79に記載の組換えDNA分子。
  81. 前記メタロプロテアーゼがマトリックスメタロプロテアーゼ(例えばMMP9)またはADAM17である、請求項79に記載の組換えDNA分子。
  82. 前記サイトカインが、オステオポンチン、IL−13、TGFβ、IL−35、IL−18、IL−15、IL−2、IL−12、IFNα、IFNβ、IFNγからなる群から選択される、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  83. 前記ケモカインが、CXCL10、CCL4、CCL5、CXCL9及びCCL21から選択される、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  84. 細胞表面受容体に対する前記リガンドが、NKG2Dリガンド、ニューロピリンリガンド、Flt3リガンド、CD47リガンドである、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  85. 前記抗原結合性分子が、
    PD−1、PDL−1、CTLA4、CCR4、OX40、CD200R、CD47、CSF1R、EphA2、CD19、EpCAM、CEA、PSMA、CD33、EGFR、CCR4、CD200、CD40、CD47、HER2、DLL3、4−1BB、17−1A、GD2、及び表7中に列挙されている腫瘍抗原のうちの任意の1つ以上
    からなる群から選択される細胞表面抗原に結合する、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  86. 前記サソリポリペプチドが、クロロトキシン、BmKn−2、ネオプラジン1、ネオプラジン2及びマウリポリン(mauriporin)からなる群から選択される、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  87. 前記ヘビポリペプチドが、コントルトロスタチン、アポキシンI、ボトロプストキシンI、BJcuL、OHAP−1、ロドストミン(rhodostomin)、drCT−I、CTX−III、B1L、及びACTX−6からなる群から選択される、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  88. 前記クモポリペプチドが、ラタルシン及びヒアルロニダーゼからなる群から選択される、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  89. 前記ハチポリペプチドが、メリチン及びアパミンからなる群から選択される、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  90. 前記カエルポリペプチドが、PsT−1、PdT−1、及びPdT−2からなる群から選択される、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  91. 前記搭載薬タンパク質が免疫細胞に対して作用する、請求項76〜84のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  92. 前記免疫細胞が、T細胞、B細胞、ナチュラルキラー(NK)細胞、NKT細胞、マクロファージ、及び/または樹状細胞からなる群から選択される、請求項91に記載の組換えDNA分子。
  93. 前記搭載薬ポリペプチドが、
    ヒト細胞表面抗原に結合することができる第1ドメインと、ヒト腫瘍細胞抗原に結合することができる第2ドメインとを含む二分ポリペプチド
    である、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  94. 前記二分ポリペプチドの片方または両方のドメインが、抗体、一本鎖可変断片(scFv)、F(ab)、免疫グロブリン重鎖可変ドメイン、ダイアボディ、フレキシボディ、DOCK−AND−LOCK(商標)抗体、及びモノクローナル抗イディオタイプ抗体(mAb2)からなる群から選択される抗原結合性分子である、請求項93に記載の組換えDNA分子。
  95. 前記二分ポリペプチドが、二重可変ドメイン抗体(DVD−Ig(商標))、二重特異性T細胞係合子(BiTE(商標))、DuoBody(登録商標)、二重親和性再指向性(DART)ポリペプチドまたはTandab(登録商標)である、請求項94に記載の組換えDNA分子。
  96. 前記抗体が、操作されたFcドメインを有するIgG抗体である、請求項94に記載の組換えDNA分子。
  97. 前記治療用核酸が、アンタゴミール、短鎖ヘアピンRNA(shRNA)、リボザイムまたはアプタマーである、請求項76に記載の組換えDNA分子。
  98. 前記miR−TSカセット中に含まれた前記miRNA標的配列に結合するmiRNAが発現している細胞において前記ポリヌクレオチドが複製されない、または最小限に複製される、請求項62〜97のいずれかに記載の組換えDNA分子。
  99. 前記miRNAが表3から選択される、請求項98に記載の組換えDNA分子。
  100. 前記1つ以上のmiRNAが、miR−124、miR−1、miR−143、miR−128、miR−219、miR−219a、miR−122、miR−204、miR−217、miR−137、及びmiR−126から選択される、請求項98に記載の組換えDNA分子。
  101. 前記miR−TSカセットが、miR−124標的配列の1つ以上のコピー、miR−1標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−143標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項100に記載の組換えDNA分子。
  102. 前記miR−TSカセットが、miR−128標的配列の1つ以上のコピー、miR−219a標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−122標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項100に記載の組換えDNA分子。
  103. 前記miR−TSカセットが、miR−128標的配列の1つ以上のコピー、miR−204標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−219標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項100に記載の組換えDNA分子。
  104. 前記miR−TSカセットが、miR−217標的配列の1つ以上のコピー、miR−137標的配列の1つ以上のコピー、及びmiR−126標的配列の1つ以上のコピーを含む、請求項100に記載の組換えDNA分子。
  105. 前記組換えDNA分子が、前記自己複製性ポリヌクレオチドを含むプラスミドである、請求項55〜104のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  106. 組換えDNA分子であって、
    (i)ウイルスゲノムのセンス配列を含む第1一本鎖DNA(ssDNA)分子、及び
    (ii)前記ウイルスゲノムのアンチセンス配列を含む第2ssDNA分子
    を含み、
    前記第1及び第2ssDNA分子の各々が3’末端逆位反復配列及び5’末端逆位反復配列を含むものであり、
    前記センスssDNA分子の前記3’末端が前記アンチセンスssDNA分子の前記5’末端に共有結合で繋げられ、かつ前記センスssDNA分子の前記5’末端が前記アンチセンスssDNA分子の前記3’末端に共有結合で繋げられて末端閉鎖型線形二本鎖腫瘍溶解性ウイルス(Ov)DNA分子を形成している、前記組換えDNA分子。
  107. 前記コードされるウイルスがマイナスセンスまたはプラスセンス一本鎖(ss)RNAウイルスである、請求項106に記載の組換えDNA分子。
  108. 前記プラスセンスssRNAウイルスがポリオウイルス(PV)である、請求項107に記載の組換えDNA分子。
  109. 前記マイナスセンスssRNAウイルスが水疱性口炎ウイルス(VSV)ゲノムである、請求項107に記載の組換えDNA分子。
  110. 前記第1及び第2ssDNA分子の各々がさらに、前記ウイルスゲノム配列のすぐ5’側のリボザイムコード配列、及び前記ウイルスゲノム配列のすぐ3’側のリボザイムコード配列を含む、請求項106に記載の組換えDNA分子。
  111. 前記ウイルスゲノムが、1つ以上の必須ウイルス遺伝子の中に挿入された1つ以上のマイクロRNA(miRNA)標的配列を含む、請求項106〜110のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  112. 前記1つ以上のmiRNA標的配列が、前記1つ以上の必須ウイルス遺伝子の3’非翻訳領域(UTR)及び/または5’UTRの中に挿入されている、請求項111に記載の組換えDNA分子。
  113. 前記1つ以上のmiRNA標的配列が、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つまたはそれより多くの必須ウイルス遺伝子の中に挿入されている、請求項111または請求項112に記載の組換えDNA分子。
  114. 少なくとも2つ、少なくとも3つまたは少なくとも4つのmiRNA標的配列が1つ以上の必須ウイルス遺伝子の中に挿入されている、請求項111〜113のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  115. 前記少なくとも2つ、少なくとも3つまたは少なくとも4つのmiRNA標的配列が、1つのmiRNAの標的配列を含む、請求項114に記載の組換えDNA分子。
  116. 前記少なくとも2つ、少なくとも3つまたは少なくとも4つのmiRNA標的配列が、少なくとも2つ、少なくとも3つまたは少なくとも4つの異なるmiRNAの標的配列を含む、請求項114に記載の組換えDNA分子。
  117. 前記ウイルスゲノムがVSVゲノムであり、前記1つ以上のmiRNA標的配列が、核タンパク質(N)、リンタンパク質(P)、マトリックスタンパク質(M)、糖タンパク質(G)及び/またはポリメラーゼ(L)タンパク質をコードする遺伝子の1つ以上の中に挿入されている、請求項106に記載の組換えDNA分子。
  118. 前記ウイルスゲノムがPVゲノムであり、前記1つ以上のmiRNA標的配列が、VP1、VP2、VP3、VP4、2A、2B、2C、3A、3B(VPg)、3Cまたは3Dタンパク質をコードする遺伝子の1つ以上の中に挿入されている、請求項106に記載の組換えDNA分子。
  119. 3’及び5’ITRがAAVに由来する、請求項106〜118のいずれか1項に記載の組換えDNA分子。
  120. 前記AAVがAAV2である、請求項119に記載の組換えDNA分子。
  121. 有効量の、請求項1〜120のいずれか1項に記載の組換えDNA分子と、
    哺乳動物対象への投与に適した担体と
    を含む組成物。
  122. 請求項55〜120のいずれか1項に記載の組換えDNA分子を含む粒子。
  123. 前記粒子が生分解性である、請求項122に記載の粒子。
  124. 前記粒子が、ナノ粒子、エクソソーム、リポソーム及びリポプレックスからなる群から選択される、請求項123に記載の粒子。
  125. 前記エクソソームが、完全エクソソームまたは空エクソソームに由来する改変型エクソソームである、請求項124に記載の粒子。
  126. 前記ナノ粒子が、カチオン性脂質、コレステロール及び中性脂質を含む脂質ナノ粒子(LNP)である、請求項124に記載の粒子。
  127. 前記カチオン性脂質が1,2−ジオレオイル−3−トリメチルアンモニウム−プロパン(DOTAP)であり、前記中性脂質が1,2−ジラウロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DLPE)または1,2−ジオレオイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(DOPE)である、請求項126に記載のLNP。
  128. リン脂質−ポリマー複合体をさらに含み、
    前記リン脂質−ポリマー複合体が、1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−ポリ(エチレングリコール)(DSPE−PEG)、または1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−N−[アミノ(ポリエチレングリコール)](DSPE−PEG−アミン)である、
    請求項126または請求項127に記載のLNP。
  129. ヒアルロナンが前記LNPの表面と複合している、請求項126〜128のいずれか1項に記載のLNP。
  130. 複数の、請求項126〜129のいずれか1項に記載の脂質ナノ粒子
    を含む、治療用組成物であって、前記複数のLNPの平均粒径が約150nm〜約500nmである、前記治療用組成物。
  131. 前記複数のLNPの平均粒径が、約200nm〜約500nm、約300nm〜約500nm、約350nm〜約500nm、約400nm〜約500nm、約425nm〜約500nm、約450nm〜約500nm、または約475nm〜約500nmである、請求項130に記載の治療用組成物。
  132. 前記複数のLNPの平均ゼータ電位が、約−20mV未満、約−30mV未満、約35mV未満、または約−40mV未満である、請求項130または請求項131に記載の治療用組成物。
  133. 前記複数のLNPの平均ゼータ電位が、約−50mV〜約−20mV、約−40mV〜約−20mV、または約−30mV〜約−20mVである、請求項132に記載の治療用組成物。
  134. 前記複数のLNPの平均ゼータ電位が、約−30mV、約−31mV、約−32mV、約−33mV、約−34mV、約−35mV、約−36mV、約−37mV、約−38mV、約−39mV、または約−40mVである、請求項131または請求項132に記載の治療用組成物。
  135. 対象への前記組成物の送達によって前記カプセル封入DNA発現カセットが標的細胞に送達され、前記カプセル封入DNA発現カセットが、前記標的細胞を溶解させることができる感染性ウイルスを生み出す、請求項130〜134のいずれか1項に記載の治療用組成物。
  136. 前記組成物が静脈内または腫瘍内に送達される、請求項135に記載の治療用組成物。
  137. 前記標的細胞ががん細胞である、請求項136に記載の治療用組成物。
  138. 請求項1〜120のいずれか1項に記載のポリヌクレオチドを含む無機粒子。
  139. 前記無機粒子が、金ナノ粒子(GNP)、金ナノロッド(GNR)、磁気ナノ粒子(MNP)、磁気ナノチューブ(MNT)、カーボンナノホーン(CNH)、カーボンフラーレン、カーボンナノチューブ(CNT)、リン酸カルシウムナノ粒子(CPNP)、メソポーラスシリカナノ粒子(MSN)、シリカナノチューブ(SNT)、または星状中空シリカナノ粒子(SHSN)からなる群から選択される、請求項138に記載の粒子。
  140. 前記粒子の平均直径が、約500nm未満である、約250nm〜約500nmである、または約350nmである、請求項138または請求項139に記載の粒子を含む組成物。
  141. がん細胞を死滅させる方法であって、
    前記がん細胞を、請求項122〜140のいずれか1項に記載の粒子もしくは組成物、またはその組成物に、前記粒子を前記がん細胞に細胞内送達するのに十分な条件の下で曝露すること
    を含み、カプセル封入ポリヌクレオチドによって生み出される複製可能ウイルスが前記がん細胞の死滅をもたらす、前記方法。
  142. 前記複製可能ウイルスが非がん性細胞では生み出されない、請求項141に記載の方法。
  143. 前記方法が、生体内、試験管内または生体外で実施される、請求項141または請求項142に記載の方法。
  144. 対象のがんを治療する方法であって、
    前記がんに罹患している対象に有効量の、請求項122〜140のいずれか1項に記載の粒子もしくは組成物、またはその組成物を投与すること
    を含む、前記方法。
  145. 前記粒子またはその組成物が、静脈内に投与される、鼻腔内に投与される、吸入剤として投与される、または腫瘍中に直接注射される、請求項144に記載の方法。
  146. 前記粒子またはその組成物が前記対象に繰り返し投与される、請求項144または請求項145に記載の方法。
  147. 前記対象が、マウス、ラット、ウサギ、ネコ、イヌ、ウマ、非ヒト霊長類またはヒトである、請求項144〜146のいずれかに記載の方法。
  148. 前記がんが、肺癌、乳癌、卵巣癌、子宮頸癌、前立腺癌、精巣癌、大腸癌、結腸癌、膵臓癌、肝臓癌、胃癌、頭頸部癌、甲状腺癌、悪性神経膠腫、神経膠芽腫、メラノーマ、B細胞慢性リンパ球性白血病、びまん性大細胞型B細胞リンパ腫(DLBCL)、及び辺縁帯リンパ腫(MZL)から選択される、請求項144〜147のいずれかに記載の方法。
  149. 前記肺癌が小細胞肺癌または非小細胞肺癌である、請求項148に記載の方法。
  150. 前記肝臓癌が肝細胞癌腫(HCC)である、請求項148に記載の方法。
  151. 先行請求項のいずれかに記載の組換えDNA分子を製造する方法であって、
    a.前記組換えDNA分子を第1ウイルス発現ベクターの中に挿入すること
    であって、前記組換えDNA分子が前記ポリヌクレオチドの5’アデノ随伴ウイルス(AAV)由来末端逆位反復配列(ITR)及び3’AAV由来ITR末端を含む、前記挿入すること、
    b.ITRによって媒介される複製に必要とされるAAVタンパク質をコードするポリヌクレオチドを第2ウイルス発現ベクターの中に挿入すること、ならびに
    c.前記第1及び前記第2ウイルス発現ベクターを細胞に細胞内送達すること
    を含み、
    前記組換えDNA分子がゲノムの中に安定的に組み込まれ、
    前記細胞が、前記ITRに挟まれたポリヌクレオチドを、ITRの非存在下で生み出される場合よりも多い量で産生する、前記方法。
  152. 前記ウイルス発現ベクターがヘルペスウイルスまたはバキュロウイルスである、請求項144に記載の方法。
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Families Citing this family (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2771110C2 (ru) 2017-07-26 2022-04-26 Онкорус, Инк. Онколитические вирусные векторы и их применение
MX2020007010A (es) 2018-01-05 2020-12-10 Ottawa Hospital Res Inst Vectores modificados de orthopoxvirus.
JP7399868B2 (ja) * 2018-03-12 2023-12-18 メイヨ・ファウンデーション・フォー・メディカル・エデュケーション・アンド・リサーチ がんを処置するための感染性核酸の使用
FI3864163T3 (fi) 2018-10-09 2024-05-03 Univ British Columbia Koostumukset ja järjestelmät, joihin sisältyvät transfektiokompetentit vesikkelit, joissa ei ole orgaanisia liuottimia eikä pesuaineita, sekä niihin liittyvät menetelmät
SG11202104887UA (en) * 2018-11-13 2021-06-29 Oncorus Inc Encapsulated polynucleotides and methods of use
AU2020204989A1 (en) * 2019-01-04 2021-07-08 Elevatebio Technologies, Inc. Encapsulated RNA polynucleotides and methods of use
EP3938524A1 (en) * 2019-03-14 2022-01-19 Massachusetts Institute of Technology Engineered herpes simplex virus-1 (hsv-1) vectors and uses thereof
CA3150053A1 (en) * 2019-08-05 2021-02-11 Virogin Biotech Canada Ltd Genetically modified enterovirus vectors
EP4041902A1 (en) * 2019-10-10 2022-08-17 Oncorus, Inc. Dual viruses and dual oncolytic viruses and methods of treatment
CN113368261A (zh) * 2021-06-17 2021-09-10 苏州大学 一种非病毒载体及其制备方法与应用
WO2023225371A1 (en) * 2022-05-20 2023-11-23 Virogin Biotech Canada Ltd Genetically modified enterovirus vectors with enhanced genomic stability
CN115381849A (zh) * 2022-06-27 2022-11-25 浙江大学 抗口腔肿瘤药物活性成分及其用途

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20050214923A1 (en) * 2004-03-25 2005-09-29 Yu Dechao Pan cancer oncolytic vectors and methods of use thereof
JP2006525815A (ja) * 2003-05-28 2006-11-16 ウィスコンシン・アラムナイ・リサーチ・ファウンデイション Poliiプロモーターおよびリボザイムを有する組換えインフルエンザベクター
JP2007506434A (ja) * 2003-09-26 2007-03-22 ノバルティス アクチエンゲゼルシャフト SenecaValleyウイルスベースの組成物および疾患の処置方法
WO2014171526A1 (ja) * 2013-04-17 2014-10-23 国立大学法人九州大学 遺伝子改変コクサッキーウイルス

Family Cites Families (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB0810912D0 (en) * 2008-06-13 2008-07-23 Inst Animal Health Ltd Vector
ES2706899T3 (es) * 2008-09-26 2019-04-01 Tocagen Inc Vectores de terapia génica y citosina desaminasas
RU2639550C2 (ru) * 2009-12-16 2017-12-21 Курна, Инк. Лечение заболеваний, связанных с сайт-1 мембраносвязанной пептидазой транскрипционных факторов (mbtps1), путем ингибирования природного антисмыслового транскрипта к mbtps1
WO2013083753A2 (en) * 2011-12-07 2013-06-13 Institut Pasteur Identification of a swine parecho-like virus and applications
JP2015514746A (ja) * 2012-04-18 2015-05-21 ラモット アット テル アビブ ユニバーシティ, リミテッド 核酸を送達するための脂質化グリコサミノグリカン粒子
US10513711B2 (en) * 2014-08-13 2019-12-24 Dupont Us Holding, Llc Genetic targeting in non-conventional yeast using an RNA-guided endonuclease
AU2016274655B2 (en) * 2015-06-10 2021-06-17 Hookipa Biotech Gmbh HPV vaccines
CA3045771A1 (en) * 2015-12-02 2017-06-08 Memorial Sloan-Kettering Cancer Center Seneca valley virus (svv) cellular receptor targeted oncotherapy

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2006525815A (ja) * 2003-05-28 2006-11-16 ウィスコンシン・アラムナイ・リサーチ・ファウンデイション Poliiプロモーターおよびリボザイムを有する組換えインフルエンザベクター
JP2007506434A (ja) * 2003-09-26 2007-03-22 ノバルティス アクチエンゲゼルシャフト SenecaValleyウイルスベースの組成物および疾患の処置方法
US20050214923A1 (en) * 2004-03-25 2005-09-29 Yu Dechao Pan cancer oncolytic vectors and methods of use thereof
WO2014171526A1 (ja) * 2013-04-17 2014-10-23 国立大学法人九州大学 遺伝子改変コクサッキーウイルス

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
PLOS ONE, vol. Vol. 8, Issue 1, e55228, JPN7023001265, 2013, ISSN: 0005024796 *

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