JP2020164528A - 心筋再生を促進させるための化合物、その調製方法、医薬組成物及びこれらの使用 - Google Patents
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Abstract
【課題】心筋細胞の再生及び修復を改善する新規化合物、及びそれにより、非侵襲性の心筋梗塞治療方法の提供を目的とする。【解決手段】本願発明は、新規な３−アリール−２−プロペン−１−オン系誘導体及びその合成工程を含む。また、本願発明は、心筋再生を促進させるための医薬組成物及びその派生物系の使用を開示する。【選択図】図２
Description
本願発明は、新規化合物、その調製方法及びその使用に関し、より具体的には、新規な３−アリール−２−プロペン−１−オン系誘導体、その調製方法、それを含有する医薬組成物、心筋再生を促進させるためのこれらの使用に関する。
心筋梗塞は、臨床診療における一般的な急性心疾患であり、心筋の一部の血液循環における突然の途絶によって引き起こされる。したがって、心筋細胞は酸素不足によって損傷する。一般的に、一度心筋梗塞が発生すると、損傷して死んだ心筋細胞は再生することができない。ただ繊維瘢痕が形成され、損傷して死んだ心筋細胞を有する部分をふさいで回復するだけである。繊維瘢痕は心臓の完全性を維持するために役立つが、硬い繊維瘢痕は収縮することができず、このためさらに心臓の再構成を妨げて機能障害を引き起こし、これらは心不全、不整脈及び心臓性ショック等の心臓病さえも引き起こす。
現在では、心筋梗塞の治療は介入療法及び薬物投与を含む。例えば介入療法はバルーン血管形成、ステント及び冠状動脈迂回手術を含み、薬物投与は血栓溶解剤、カルシウムチャンネル遮断剤、硝酸塩、アンギオテンシン変換酵素阻害剤、β拮抗剤及び麻薬性鎮痛剤を含む。
しかしながら、臨床診療及び基礎医学研究において発展した上記治療方法は、両方とも心筋組織の再生を改善することができず、副作用を引き起こす可能性がある。今のところ、損傷を受けた心筋組織の自己修復を待つ以外に有効な治療はない。
したがって、臨床診療及び基礎医学研究のいずれにおいても、心筋再生を促進させるための関連技術を開発し、心筋梗塞を治療する有効な医薬品を提供することが急務である。
上記欠点によれば、本願発明の目的は、心筋細胞の再生及び修復を改善する新規化合物、及びそれにより、非侵襲性の心筋梗塞治療方法を提供することである。
上記目的を達成するために、本願発明は、下記式（Ｉ）で表される新規化合物を提供する。
上記式（Ｉ）中、Ｘ１は、水素原子又は炭素数１〜６の非置換のアルキル基である。
上記式（Ｉ）中、Ｘ２は、酸素原子（＊−Ｏ−＊）又はアミノ基（＊−ＮＨ−＊又は＊−ＮＸ４−＊）である。
上記式（Ｉ）中、Ｘ３は、水素原子（＊−Ｈ）、ヒドロキシ基（＊−ＯＨ）又は＊−Ｘ２−（ＣＯ）−（Ｙ）ｐ−Ｚ基である。
上記式（Ｉ）中、Ｙは、炭素数１〜６のアルキレン基、炭素数２〜１２のアルケニレン基、炭素数７〜１８のアリーレンアルキレン基又は炭素数６〜１８のアリーレン基である。
上記式（Ｉ）中、Ｚは、＊−ＣＯＯＨ、＊−ＣＯＯＣＨ３、＊−ＯＣＯＣＨ３、＊−ＮＨＣＯＯＣ（ＣＨ３）３、＊−Ｆ、＊−Ｃｌ、＊−Ｂｒ又は＊−Ｉである。
上記式（Ｉ）中、ｐは、０又は１である
好ましくは、上記式（Ｉ）中、Ｚは＊−ＣＯＯＨ、＊−ＣＯＯＣＨ３、＊−ＯＣＯＣＨ３、＊−ＮＨＣＯＯＣ（ＣＨ３）３又は＊−Ｃｌである。
本明細書において、「炭素数１〜６のアルキル基」との記述は、直鎖状又は分岐鎖状のアルキル基を意味し、Ｘ１で表される官能基全体が合計で１〜６の炭素原子を有することを意味する。＊は、結合部位を示す。
好ましくは、Ｘ１は、メチル基、エチル基、プロピル基又はイソプロピル基であってもよいが、これらに限定されない。
好ましくは、上記式（Ｉ）中、Ｘ２は＊−ＮＸ４−＊であり、Ｘ４は＊−Ｘ２−（ＣＯ）−（Ｙ）ｐ−Ｚ基である。より好ましくは、Ｘ４は下記式（ｉ）で表される。
本明細書において、「炭素数１〜６のアルキレン基」との記述は、直鎖状又は分岐鎖状のアルキレン基を意味し、Ｙで表される官能基全体が合計で１〜６の炭素原子を有することを意味する。同様に、本明細書において、「炭素数２〜１２のアルケニレン基」との記述は、直鎖状又は分岐鎖状のアルケニレン基を意味し、Ｙで表される官能基全体が合計で２〜１２の炭素原子を有することを意味する。本明細書において、「炭素数７〜１８のアリーレンアルキレン基」との記述は、アルキレン基と結合したアリーレン基を含む基を意味し、Ｙで表される官能基全体が合計で７〜１８の炭素原子を有することを意味する。つまりアリーレン基及びアルキレン基の全炭素原子が７から１８である。本明細書において、「炭素数６〜１８のアリーレン基」との記述は、単芳香環又は互いに結合した若しくは縮合した複数の芳香環によって形成された多芳香環を意味し、Ｙで表される官能基全体が合計で６〜１８の炭素原子を有することを意味する。
好ましくは、上記式（Ｉ）中、Ｙで表される炭素数１〜６のアルキレン基は、メチレン基（＊−ＣＨ２−＊）、エチレン基（＊−ＣＨ２ＣＨ２−＊）、エチリデン基（＊−ＣＨ（ＣＨ３）−＊）、プロピレン基（＊−ＣＨ２ＣＨ２ＣＨ２−＊）、イソプロピリデン基（＊−Ｃ（ＣＨ３）２−＊）又はブチレン基（＊−ＣＨ２ＣＨ２ＣＨ２ＣＨ２−＊）であってもよいが、これらに限定されない。上記Ｙで表される炭素数２〜１２のアルケニレン基は、ビニレン基（＊−ＣＨ＝ＣＨ−＊）、プロペニレン基（＊−ＣＨ２ＣＨ＝ＣＨ−＊又は＊−ＣＨ＝ＣＨＣＨ２−＊）又はブチレン基（＊−ＣＨ２ＣＨ２−ＣＨ＝ＣＨ−＊、＊−ＣＨ２ＣＨ＝ＣＨＣＨ２−＊又は＊−ＣＨ＝ＣＨＣＨ２ＣＨ２−＊）であってもよいが、これらに限定されない。上記Ｙで表される炭素数７〜１８のアリーレンアルキレン基は、クレシレン（ｃｒｅｓｙｌｅｎｅ）基（＊−ＣＨ２Ｃ６Ｈ４−＊）、トリレン基（＊−Ｃ６Ｈ３（ＣＨ３）−＊）又はフェニレンジメチレン基（＊−ＣＨ２Ｃ６Ｈ４ＣＨ２−＊）であってもよいが、これらに限定されない。上記Ｙで表される炭素数６〜１８のアリーレン基は、フェニレン基（＊−Ｃ６Ｈ４−＊）、ビフェニレン基（＊−Ｃ６Ｈ４−Ｃ６Ｈ４−＊）又はナフチレン基（＊−Ｃ１０Ｈ６−＊）であってもよいが、これらに限定されない。
より具体的には、上記式（Ｉ）中、上記フェニレン基は、オルトフェニレン基、メタフェニレン基又はパラフェニレン基であってもよい。
好ましくは、上記フェニレン基はオルトフェニレン基である。
より具体的には、上記式（Ｉ）中、上記クレシレン基は、オルトクレシレン（ｏｒｔｈｏ−ｃｒｅｓｙｌｅｎｅ）基、メタクレシレン（ｍｅｔａ−ｃｒｅｓｙｌｅｎｅ）基又はパラクレシレン（ｐａｒａ−ｃｒｅｓｙｌｅｎｅ）基であってもよい。
好ましくは、上記クレシレン基はメタクレシレン基である。
本願発明によれば、上記新規化合物は、以下の化合物１から１５のいずれかであってもよいが、これらに限定されない。
本願発明の別の目的は、０℃から２５℃で反応物質Ａを反応物質Ｂと反応させる工程を含む新規化合物の調製方法を提供することである。反応物質Ａがクマル酸誘導体、コーヒー酸誘導体又はケイ皮酸誘導体であり、反応物質Ｂが酸化合物、無水化合物、塩化アシル化合物又はエステル化合物である。
好ましくは、上記物質Ａ及び反応物質Ｂの反応がアルカリ性条件下（ｐＨ９からｐＨ１２の範囲内）で０℃から２５℃で行われる。
好ましくは、反応物質Ａがパラクマル酸、コーヒー酸、カフェ酸メチル又は４−アミノケイ皮酸である。
好ましくは、反応物質Ｂがアセチルサリチル酸、３−クロロフェニル酢酸、ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル−γ−ｎ−アミノ酪酸、グルタル酸無水物、アジピン酸無水物、メチルアジポイルクロリド又はフマル酸モノメチルエステルである。
本願発明の別の目的は、心筋再生を促進させるための３−アリール−２−プロペン−１−オン系誘導体の使用を提供することである。
上記目的を達成するために、本願発明は、心筋再生を促進させるための、下記式（ＩＩ）で表される化合物を含有する医薬組成物の調製方法の使用を提供する。
Ｒ１は、ヒドロキシ基、炭素数１〜６の非置換のアルキル基、炭素数１〜６の非置換のアルコキシ基、炭素数１〜６の置換のアルカン酸基、炭素数７〜１２の置換のシクロアルカン酸基、炭素数６〜１８の置換若しくは非置換のアリールアミン基、炭素数６〜１８の置換若しくは非置換のフェノール基、置換若しくは非置換のアリール基、置換若しくは非置換のチエニル基、置換又は非置換のピロリル基、置換若しくは非置換のピリジル基又は非置換のチアゾリル基である。
Ｒ２は、水素原子、ヒドロキシ基、炭素数１〜６の非置換のアルキル基、アミノ基（＊−ＮＨ２）、アセトキシ基（＊−ＯＣＯＣＨ３）、＊−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ＝ＣＨ２又は＊−Ｘ２（ＣＯ）−（Ｙ）ｐ−Ｚ基である。
Ｒ３は、水素原子、ヒドロキシ基、炭素数１〜６の非置換のアルキル基、炭素数１〜６の非置換のアルコキシ基又は＊−Ｏ−ＣＯ−（Ｙ）ｐ−Ｚ基であるか、あるいはＲ２及びＲ３が結合して下記式（ｉｉ）で表される基を形成する。
Ｒ４は、水素原子、炭素数１〜６の非置換のアルコキシ基、＊−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ＝ＣＨ２又は下記式（ｉｉｉ）で表される基である。
Ａは、ベンゼン環、チオフェン環又はピリジン環である。
Ｘ２は、酸素原子（＊−Ｏ−＊）又はアミノ基（＊−ＮＨ−＊又は＊−ＮＸ４−＊）である。
Ｙは、炭素数１〜６のアルキレン基、炭素数２〜１２のアルケニレン基、炭素数７〜１８のアリーレンアルキレン基又は炭素数６〜１８のアリーレン基である。
Ｚは、ピリジル基（＊−Ｃ５Ｈ４Ｎ）、アセチル基（＊−ＣＯＣＨ３）、＊−ＣＯＯＨ、＊−ＣＯＯＣＨ３、＊−ＯＣＯＣＨ３、＊−ＮＨＣＯＯＣ（ＣＨ３）３、＊−Ｆ、＊−Ｃｌ、＊−Ｂｒ又は＊−Ｉである。
ｐは、０又は１である。
略言すると、上記３−アリール−２−プロペン−１−オン系誘導体は、上記新規化合物１から１５だけでなく、他の市販されているケイ皮酸誘導体をも含有する。
好ましくは、上記式（ＩＩ）中、Ｚは、＊−ＣＯＣＨ３、＊−ＣＯＯＨ、＊−ＣＯＯＣＨ３、＊−ＯＣＯＣＨ３、＊−ＮＨＣＯＯＣ（ＣＨ３）３又は＊−Ｃｌである。
好ましくは、上記式（ＩＩ）中、Ｘ２は、＊−Ｏ−＊、＊−ＮＨ−＊又は＊−ＮＸ４−＊であり、Ｘ４は、＊−Ｘ２−（ＣＯ）−（Ｙ）ｐ−Ｚ基である。
より好ましくは、Ｘ４は、下記式（ｉ）で表される。
好ましくは、上記式（ＩＩ）中、Ｒ３は、＊−ＣＨ３、＊−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ＝ＣＨ２、＊−ＮＨ２又は＊−Ｏ−ＣＯ−（Ｙ）ｐ−Ｚ基である。
好ましくは、上記式（ＩＩ）中、Ｒ２が＊−Ｘ２（ＣＯ）−（Ｙ）ｐ−Ｚ基である場合、Ｒ１がヒドロキシ基である。
好ましくは、上記式（ＩＩ）中、Ｙがアルケニレン基である場合、Ｚが＊−ＣＯＯＣＨ３である。
好ましくは、上記式（ＩＩ）中、Ｘ２、Ｙ、ｐ及びＺは、上記式（Ｉ）における基と同一である。さらに、上記式（ＩＩ）中、Ｚはピリジル基（＊−Ｃ５Ｈ４Ｎ）又はアセチル基（＊−ＣＯＣＨ３）でもある。
好ましくは、上記式（ＩＩ）中、Ｒ１は、＊−ＯＨ、＊−ＯＣＨ３、＊−ＯＣＨ２Ｃ６Ｈ４ＯＨ、＊−ＯＣＨ（ＣＯＯＨ）ＣＨ（ＯＨ）ＣＯＯＨ、＊−Ｏ−ＣＨ（ＣＯＯＨ）ＣＨ２（Ｃ６Ｈ３）（ＯＨ２）、＊−Ｏ（Ｃ６Ｈ７）（ＯＨ）３（ＣＯＯＨ）、＊−ＮＨＣ６Ｈ４ＯＨ、＊−Ｃ４Ｈ３Ｓ（ＣＨ３）、＊−Ｃ６Ｈ４ＯＨ、＊−（Ｎ）−Ｃ４Ｈ４Ｎ、＊−Ｃ５Ｈ４Ｎ又は＊−Ｃ３ＳＮ（ＮＨ２）（ＣＨ３）である。
好ましくは、上記３−アリール−２−プロペン−１−オン系誘導体は、損傷した心筋細胞の再生及び修復を促進させるのに有用であり、上記化合物１から１５及び以下の化合物１６から４６の１つであってもよいが、これらに限定されない。
また、本願発明は、心筋再生を促進させるための医薬組成物をも提供する。上記医薬組成物は、上記３−アリール−２−プロペン−１−オン系誘導体（例えば化合物１から４６）及び薬学的に許容可能な担体を含有する。
概括すると、本願発明は、新規な３−アリール−２−プロペン−１−オン系誘導体及びその合成方法を提供する。上記新規化合物は、損傷した心筋細胞の再生及び修復を促進させるのに有用である。さらに、本願発明は、心筋再生を促進させるための上記３−アリール−２−プロペン−１−オン系誘導体の使用をも提供する。
以下の実施形態は、心筋再生のための上記本願発明の化合物及び医薬組成物の調製の使用を説明するために提案される。当業者は、以下の実施例から本願発明の利点及び効果を容易に理解し得る。本書中に提案される記載は、説明の目的のための好ましい実施形態にすぎず、発明の範囲を限定することを意図しない。本開示を実施又は応用するために、発明の精神及び範囲を逸脱することなく種々の変形及び変異がなされ得る。
実施例１：化合物１から１５の合成
本願発明において記載される新規化合物は、アルカリ性条件下で０℃から２５℃の温度で反応物質Ａを反応物質Ｂと反応させて調製される。反応物質Ａは、クマル酸誘導体、コーヒー酸誘導体又はケイ皮酸誘導体であり、反応物質Ｂは、酸化合物、無水化合物、塩化アシル化合物又はエステル化合物である。
本願発明において記載される新規化合物は、アルカリ性条件下で０℃から２５℃の温度で反応物質Ａを反応物質Ｂと反応させて調製される。反応物質Ａは、クマル酸誘導体、コーヒー酸誘導体又はケイ皮酸誘導体であり、反応物質Ｂは、酸化合物、無水化合物、塩化アシル化合物又はエステル化合物である。
化合物１
パラクマル酸（１ｇ、６．０ｍｍｏｌ）を１０％（ｗ／ｗ）水酸化ナトリウム溶液８ｍｌに溶解し、５℃〜１０℃に冷却した。次いでテトラヒドロフラン５ｍｌに溶解したグルタル酸無水物（０．９７ｇ、８．４ｍｍｏｌ）を上記反応液にゆっくり添加した。３０分間撹拌した後、水４０ｍｌ及び酢酸エチル４０ｍｌを反応液に添加し、ｐＨを５．２に調整した。有機層を分離し、濃縮して乾燥した後、水５０ｍｌを添加し、ｐＨをまず９．３３に調整し、次いで１Ｎ塩酸を用いて５．０に調整して沈殿した。１時間撹拌した後、沈殿物をろ過し、乾燥させてＨＰＬＣ純度１００％のライトベージュの粉末０．５３３５ｇを得た。
パラクマル酸（１ｇ、６．０ｍｍｏｌ）を１０％（ｗ／ｗ）水酸化ナトリウム溶液８ｍｌに溶解し、５℃〜１０℃に冷却した。次いでテトラヒドロフラン５ｍｌに溶解したグルタル酸無水物（０．９７ｇ、８．４ｍｍｏｌ）を上記反応液にゆっくり添加した。３０分間撹拌した後、水４０ｍｌ及び酢酸エチル４０ｍｌを反応液に添加し、ｐＨを５．２に調整した。有機層を分離し、濃縮して乾燥した後、水５０ｍｌを添加し、ｐＨをまず９．３３に調整し、次いで１Ｎ塩酸を用いて５．０に調整して沈殿した。１時間撹拌した後、沈殿物をろ過し、乾燥させてＨＰＬＣ純度１００％のライトベージュの粉末０．５３３５ｇを得た。
化合物１の構造を下記表１に示す。化合物１の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）：δ１２．２５５（ｓ、２Ｈ）、７．７２３（ｄ、２Ｈ）、７．５７７（ｄ、１Ｈ）、７．１６６（ｄ、２Ｈ）、６．４９４（ｄ、１Ｈ）、２．６１８（ｔ、２Ｈ）、２．３３０（ｔ、２Ｈ）、１．８４１（ｔｔ、２Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ１４Ｈ１５Ｏ６；２７９．０８５９。
化合物２
コーヒー酸（０．３ｇ、１．６ｍｍｏｌ）をアセトニトリル６ｍｌに添加し、均等に混合した。その後トリエチルアミン（０．４６ｍｌ、３．３ｍｍｏｌ）を添加し、５分間撹拌した。氷浴を用いて反応液を５℃〜１０℃に冷却し、次いでテトラヒドロフラン２ｍｌに溶解したグルタル酸無水物（０．１７ｇ、１．５ｍｍｏｌ）をゆっくり添加した。２時間反応後、反応液を乾燥させ、酢酸エチル３０ｍｌ及び１０％（ｗ／ｗ）塩化アンモニウム３０ｍｌを添加して分離した。水層を酢酸エチル３０ｍｌを用いて逆抽出し、混合した有機層を乾燥させて白色固体０．２６８５ｇを得た。酢酸イソプロピル及びアセトンを用いて上記白色固体を結晶化させ、ＰＬＣ純度１００％の０．１３３９ｇの白色粉末を得た。
コーヒー酸（０．３ｇ、１．６ｍｍｏｌ）をアセトニトリル６ｍｌに添加し、均等に混合した。その後トリエチルアミン（０．４６ｍｌ、３．３ｍｍｏｌ）を添加し、５分間撹拌した。氷浴を用いて反応液を５℃〜１０℃に冷却し、次いでテトラヒドロフラン２ｍｌに溶解したグルタル酸無水物（０．１７ｇ、１．５ｍｍｏｌ）をゆっくり添加した。２時間反応後、反応液を乾燥させ、酢酸エチル３０ｍｌ及び１０％（ｗ／ｗ）塩化アンモニウム３０ｍｌを添加して分離した。水層を酢酸エチル３０ｍｌを用いて逆抽出し、混合した有機層を乾燥させて白色固体０．２６８５ｇを得た。酢酸イソプロピル及びアセトンを用いて上記白色固体を結晶化させ、ＰＬＣ純度１００％の０．１３３９ｇの白色粉末を得た。
化合物２の構造を下記表１に示す。化合物２の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：δ７．５７６（ｄ、１Ｈ）、７．３４７−６．９１３（ｍ、３Ｈ）、６．３９２−６．２８７（ｄ＋ｄ、１Ｈ）、２．７０５−２．６６９（ｍ、２Ｈ）、２．４８３−２．４４７（ｍ、２Ｈ）、２．１５２−１．９８６（ｍ、２Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ１４Ｈ１５Ｏ７；２９５．０８１２。
化合物３
コーヒー酸（０．２５ｇ、１．４ｍｍｏｌ）をテトラヒドロフラン５ｍｌに添加し、次いでトリエチルアミン（０．７６ｍｌ、５．４ｍｍｏｌ）を添加した。数分間混合した後、反応液を濃縮して乾燥させ、テトラヒドロフラン７ｍｌを残渣に添加し、溶解するまで撹拌した。氷浴で５℃〜１０℃に冷却した後、テトラヒドロフラン３ｍｌに溶解したグルタル酸無水物（０．４ｇ、３．４ｍｍｏｌ）をゆっくり添加した。１時間撹拌した後、反応液を乾燥させ、酢酸エチル３０ｍｌ及び水３０ｍｌを添加して分離した。有機層をさらに鹹水３０ｍｌを用いて洗浄し、次いで無水硫酸ナトリウムを用いて乾燥させた。溶剤を蒸発させ、残渣を酢酸イソプロピル及びアセトンを用いて結晶化させ、ＨＰＬＣ純度１００％の白色粉末０．１６２９ｇを得た。
コーヒー酸（０．２５ｇ、１．４ｍｍｏｌ）をテトラヒドロフラン５ｍｌに添加し、次いでトリエチルアミン（０．７６ｍｌ、５．４ｍｍｏｌ）を添加した。数分間混合した後、反応液を濃縮して乾燥させ、テトラヒドロフラン７ｍｌを残渣に添加し、溶解するまで撹拌した。氷浴で５℃〜１０℃に冷却した後、テトラヒドロフラン３ｍｌに溶解したグルタル酸無水物（０．４ｇ、３．４ｍｍｏｌ）をゆっくり添加した。１時間撹拌した後、反応液を乾燥させ、酢酸エチル３０ｍｌ及び水３０ｍｌを添加して分離した。有機層をさらに鹹水３０ｍｌを用いて洗浄し、次いで無水硫酸ナトリウムを用いて乾燥させた。溶剤を蒸発させ、残渣を酢酸イソプロピル及びアセトンを用いて結晶化させ、ＨＰＬＣ純度１００％の白色粉末０．１６２９ｇを得た。
化合物３の構造を下記表１に示す。化合物３の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）；δ７．６４５（ｄ、１Ｈ）、７．５３７−７．５１３（ｍ、２Ｈ）、７．２７８（ｄ、１Ｈ）、６．４８２（ｄ、１Ｈ）、２．７０３−２．６６３（ｍ、４Ｈ）、２．４６３−２．４２５（ｍ、４Ｈ）、２．００９−１．９６９（ｍ、４Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋ＮＨ４］ ＋；４２６．１４０２。
化合物４
パラクマル酸（１ｇ、６．０ｍｍｏｌ）をアセトニトリル１０ｍｌに溶解し、次いでトリエチルアミン（２．５ｍｌ、１７．９ｍｍｏｌ）を添加した。０℃〜１０℃に冷却した後、次いでジクロロメタン５ｍｌに溶解したグルタル酸無水物の溶液（０．９３ｇ、７．３ｍｍｏｌ）をゆっくり添加した。添加後、反応液を濃縮して乾燥させ、褐色油を得た。水３０ｍｌを添加し、水層をジクロロメタン３０ｍｌをそれぞれ用いて３回洗浄し、酢酸エチル３０ｍｌをそれぞれ用いて２回洗浄した。最後に水層のｐＨを４．８に調整して所望の化合物を沈殿した。ろ過後、ＨＰＬＣ純度９９．２％の白色固体０．２５４２ｇを得た。
パラクマル酸（１ｇ、６．０ｍｍｏｌ）をアセトニトリル１０ｍｌに溶解し、次いでトリエチルアミン（２．５ｍｌ、１７．９ｍｍｏｌ）を添加した。０℃〜１０℃に冷却した後、次いでジクロロメタン５ｍｌに溶解したグルタル酸無水物の溶液（０．９３ｇ、７．３ｍｍｏｌ）をゆっくり添加した。添加後、反応液を濃縮して乾燥させ、褐色油を得た。水３０ｍｌを添加し、水層をジクロロメタン３０ｍｌをそれぞれ用いて３回洗浄し、酢酸エチル３０ｍｌをそれぞれ用いて２回洗浄した。最後に水層のｐＨを４．８に調整して所望の化合物を沈殿した。ろ過後、ＨＰＬＣ純度９９．２％の白色固体０．２５４２ｇを得た。
化合物４の構造を下記表１に示す。化合物４の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）：δ７．７１７（ｄ、２Ｈ）、７．５６９（ｄ、１Ｈ）、７．１５０（ｄ、２Ｈ）、６．４８８（ｄ、１Ｈ）、２．５８３（ｔ、２Ｈ）、２．２５０（ｔ、２Ｈ）、１．６５６−１．５５８（ｍ、４Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ１５Ｈ１７Ｏ６；２９３．１０１３。
化合物５
窒素下でパラクマル酸（０．３３３ｇ、２．０ｍｍｏｌ）をテトラヒドロフラン無水物１０ｍｌに溶解し、次いでシリンジを用いてメチルアジポイルクロリド（０．３６ｇ、２．０ｍｍｏｌ）を添加した。氷浴で反応液を冷却し、次いでエチレンジアミン（０．３ｇ、３．０ｍｍｏｌ）をゆっくり添加した。室温で２〜３時間撹拌した後、回転乾燥機を用いて溶剤を除去した。ジクロロメタン及び水を添加して液体抽出した。有機層を乾燥させ、５０％メタノールを溶出剤として用いるカラムクロマトグラフィーによって粗生成物を精製し、ＨＰＬＣ純度１００％の生成物１７ｍｇを得た。
窒素下でパラクマル酸（０．３３３ｇ、２．０ｍｍｏｌ）をテトラヒドロフラン無水物１０ｍｌに溶解し、次いでシリンジを用いてメチルアジポイルクロリド（０．３６ｇ、２．０ｍｍｏｌ）を添加した。氷浴で反応液を冷却し、次いでエチレンジアミン（０．３ｇ、３．０ｍｍｏｌ）をゆっくり添加した。室温で２〜３時間撹拌した後、回転乾燥機を用いて溶剤を除去した。ジクロロメタン及び水を添加して液体抽出した。有機層を乾燥させ、５０％メタノールを溶出剤として用いるカラムクロマトグラフィーによって粗生成物を精製し、ＨＰＬＣ純度１００％の生成物１７ｍｇを得た。
化合物５の構造を下記表１に示す。化合物５の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：δ７．６７５−７．６２９（ｍ、３Ｈ）、７．１５０（ｄ、２Ｈ）、６．４６３（ｄ、１Ｈ）、３．６６７（ｓ、３Ｈ）、２．６２０（ｔ、２Ｈ）、２．４０１（ｔ、２Ｈ）、１．７５１−１．７３６（ｍ、４Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ１６Ｈ１９Ｏ６；３０７．１１８１；［Ｍ＋Ｎａ］＋；３２９．１０００。
化合物６
窒素下でコーヒー酸（０．３６９ｇ、２．０ｍｍｏｌ）をテトラヒドロフラン無水物１０ｍｌに溶解し、次いでメチルアジポイルクロリド（０．５１４６ｇ、３．０ｍｍｏｌ）をシリンジを用いて添加した。氷浴で溶液を冷却し、次いでエチレンジアミン（０．５１２９ｇ、５．０ｍｍｏｌ）ゆっくり添加した。室温で２から３時間撹拌した後、回転乾燥機を用いて溶剤を除去した。ジクロロメタン及び水を添加し、液体抽出した。その後有機層を乾燥させた。５０％〜６０％メタノール水溶液を溶出剤として用いる逆相カラムクロマトグラフィーを用いてＨＰＬＣ純度１００％の生成物１３．８ｍｇを得た。
窒素下でコーヒー酸（０．３６９ｇ、２．０ｍｍｏｌ）をテトラヒドロフラン無水物１０ｍｌに溶解し、次いでメチルアジポイルクロリド（０．５１４６ｇ、３．０ｍｍｏｌ）をシリンジを用いて添加した。氷浴で溶液を冷却し、次いでエチレンジアミン（０．５１２９ｇ、５．０ｍｍｏｌ）ゆっくり添加した。室温で２から３時間撹拌した後、回転乾燥機を用いて溶剤を除去した。ジクロロメタン及び水を添加し、液体抽出した。その後有機層を乾燥させた。５０％〜６０％メタノール水溶液を溶出剤として用いる逆相カラムクロマトグラフィーを用いてＨＰＬＣ純度１００％の生成物１３．８ｍｇを得た。
化合物６の構造を下記表１に示す。化合物６の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：δ７．６３５（ｄ、１Ｈ）、７．５２３（ｄｄ、１Ｈ）、７．４９８（ｄ、１Ｈ）、７．２６４（ｄ、１Ｈ）；６．４８１（ｄ、１Ｈ）、３．６７０（ｓ、６Ｈ）、２．６３８−２．５９９（ｍ、４Ｈ）、２．４１８−２．３８４（ｍ、４Ｈ）、１．７４７−１．７２３（ｍ、８Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋ＮＨ４］＋；４８２．２０５９。
化合物７
パラクマル酸（１ｇ、６．０ｍｍｏｌ）を１０％（ｗ／ｗ）水酸化ナトリウム溶液１０ｍｌに溶解した。５℃〜１０℃に冷却した後、次いでテトラヒドロフラン３ｍｌに溶解したアセチルサリチル酸無水物（２．４５ｇ、７．２ｍｍｏｌ）の溶液をゆっくり添加した。３０分間撹拌した後、反応液を蒸発させ、水３０ｍｌ及び酢酸エチル４０ｍｌを添加した。ｐＨを４から５に調整した水２０ｍｌを用いて有機層を再度洗浄した。さらに５％塩化アンモニウム溶液を用いて有機層を３回、次いで水４０ｍｌを用いて洗浄し、炭酸水素ナトリウムによってｐＨを６．０に調整した。分離後、無水硫酸ナトリウムを用いて有機層を乾燥させた。その後溶液を濃縮して乾燥させ、白色固体１．９ｇを得た。ジクロロメタン３０ｍｌを添加し、固体を得、水を用いて２回洗浄し、ｐＨを７．３７に調整した。次いで無水硫酸ナトリウムを用いて有機層を乾燥させ、濃縮して乾燥させ、ＨＰＬＣ純度８９．９％の白色固体４９．６ｍｇを得た。
パラクマル酸（１ｇ、６．０ｍｍｏｌ）を１０％（ｗ／ｗ）水酸化ナトリウム溶液１０ｍｌに溶解した。５℃〜１０℃に冷却した後、次いでテトラヒドロフラン３ｍｌに溶解したアセチルサリチル酸無水物（２．４５ｇ、７．２ｍｍｏｌ）の溶液をゆっくり添加した。３０分間撹拌した後、反応液を蒸発させ、水３０ｍｌ及び酢酸エチル４０ｍｌを添加した。ｐＨを４から５に調整した水２０ｍｌを用いて有機層を再度洗浄した。さらに５％塩化アンモニウム溶液を用いて有機層を３回、次いで水４０ｍｌを用いて洗浄し、炭酸水素ナトリウムによってｐＨを６．０に調整した。分離後、無水硫酸ナトリウムを用いて有機層を乾燥させた。その後溶液を濃縮して乾燥させ、白色固体１．９ｇを得た。ジクロロメタン３０ｍｌを添加し、固体を得、水を用いて２回洗浄し、ｐＨを７．３７に調整した。次いで無水硫酸ナトリウムを用いて有機層を乾燥させ、濃縮して乾燥させ、ＨＰＬＣ純度８９．９％の白色固体４９．６ｍｇを得た。
化合物７の構造を下記表１に示す。化合物７の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：δ８．２００（ｄｄ、１Ｈ）、７．７４１−７．６８２（ｍ、４Ｈ）、７．４５９（ｔ、１Ｈ）、７．２５９−７．２４１（ｍ、３Ｈ）、６．５００（ｄ、１Ｈ）、２．２６４（ｓ、３Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ１８Ｈ１５Ｏ６；３２７．０８６０；［Ｍ＋Ｎａ］＋；３４９．０６７７。
化合物８
アセチルサリチル酸（１．８ｇ、１０．０ｍｍｏｌ）、トルエン２０ｍｌ及びジメチルホルムアミド３滴を２５０ｍｌシングルネックフラスコに添加した。４０℃で３分間撹拌した後、塩化チオニル（１．８ｍｌ、２４．８ｍｍｏｌ）を反応液に添加し、次いで６０℃で２時間加熱した。２５℃に冷却した後、過剰の塩化チオニル及び溶剤すべてを回転乾燥機を用いて除去した。トルエン２０ｍｌを反応液に添加し、溶剤を再度除去して淡黄色の液体を得た。その後コーヒー酸（１．８１ｇ、１０．０ｍｍｏｌ）、テトラヒドロフラン２０ｍｌ及びトリエチルアミン（１．５ｍｌ、１０．０ｍｍｏｌ）を上記液体に添加し、室温で３時間撹拌した。次いで飽和塩化アンモニウム溶液２０ｍｌを添加した。分離後、有機層を蒸発させてオフホワイトの固体４．８２ｇを得た。上記固体を酢酸エチル４０ｍｌに溶解し、水４０ｍｌを用いて洗浄した。有機層を乾燥させ、ろ過し、蒸発させてオレンジ色の液体３．７４ｇを得た。カラムクロマトグラフィー（シリカゲル：６３．４ｇ；カラムの直径：４．５ｃｍ；カラムの長さ：１３．５ｃｍ；及び溶出剤はジクロロメタン：メタノール＝１：０から５０：１である）を用いて所望の生成物を収集し、再度カラムクロマトグラフィーを用いてＨＰＬＣ純度９４．６％の所望の化合物５６ｍｇを得た。
アセチルサリチル酸（１．８ｇ、１０．０ｍｍｏｌ）、トルエン２０ｍｌ及びジメチルホルムアミド３滴を２５０ｍｌシングルネックフラスコに添加した。４０℃で３分間撹拌した後、塩化チオニル（１．８ｍｌ、２４．８ｍｍｏｌ）を反応液に添加し、次いで６０℃で２時間加熱した。２５℃に冷却した後、過剰の塩化チオニル及び溶剤すべてを回転乾燥機を用いて除去した。トルエン２０ｍｌを反応液に添加し、溶剤を再度除去して淡黄色の液体を得た。その後コーヒー酸（１．８１ｇ、１０．０ｍｍｏｌ）、テトラヒドロフラン２０ｍｌ及びトリエチルアミン（１．５ｍｌ、１０．０ｍｍｏｌ）を上記液体に添加し、室温で３時間撹拌した。次いで飽和塩化アンモニウム溶液２０ｍｌを添加した。分離後、有機層を蒸発させてオフホワイトの固体４．８２ｇを得た。上記固体を酢酸エチル４０ｍｌに溶解し、水４０ｍｌを用いて洗浄した。有機層を乾燥させ、ろ過し、蒸発させてオレンジ色の液体３．７４ｇを得た。カラムクロマトグラフィー（シリカゲル：６３．４ｇ；カラムの直径：４．５ｃｍ；カラムの長さ：１３．５ｃｍ；及び溶出剤はジクロロメタン：メタノール＝１：０から５０：１である）を用いて所望の生成物を収集し、再度カラムクロマトグラフィーを用いてＨＰＬＣ純度９４．６％の所望の化合物５６ｍｇを得た。
化合物８の構造を下記表１に示す。化合物８の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：δ８．２４２−８．２０７（ｍ、１Ｈ）、７．７０８（ｔ、１Ｈ）、７．６０２（ｄ、１Ｈ）、７．４５１（ｔ、１Ｈ）、７．４０７−６．９６８（ｍ、４Ｈ）、６．４２５−６．３１２（ｄ＋ｄ、１Ｈ）、２．２６６（ｓ、３Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ１８Ｈ１５Ｏ７；３４３．０８２２；［Ｍ＋ＮＨ４］＋；３６０．１０９１。
化合物９
パラクマル酸（０．３０４ｇ、２．０ｍｍｏｌ）、トリエチルアミン（２．９ｍｌ、２８．０ｍｍｏｌ）及びアセトニトリル４．０ｍｌの混合物を予め準備した粗製の３−クロロフェニルアセチルクロリド（０．８ｇ、１．４ｍｍｏｌ）に添加し、氷浴で冷却した。添加後、氷浴を除去し、溶液を室温で１時間撹拌した。水及び１、２−ジクロロエタンを反応液に添加して抽出し、ｐＨを６．０前後に調整した。０．５時間撹拌した後、分離した層及び有機層の溶剤を蒸発させて残渣（２．８ｇ）を残し、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（溶出剤は酢酸エチル：ジクロロメタン＝１：１．５である）を用いて精製し、ＨＰＬＣ純度８７．８％の白色固体２６ｍｇを得た。
パラクマル酸（０．３０４ｇ、２．０ｍｍｏｌ）、トリエチルアミン（２．９ｍｌ、２８．０ｍｍｏｌ）及びアセトニトリル４．０ｍｌの混合物を予め準備した粗製の３−クロロフェニルアセチルクロリド（０．８ｇ、１．４ｍｍｏｌ）に添加し、氷浴で冷却した。添加後、氷浴を除去し、溶液を室温で１時間撹拌した。水及び１、２−ジクロロエタンを反応液に添加して抽出し、ｐＨを６．０前後に調整した。０．５時間撹拌した後、分離した層及び有機層の溶剤を蒸発させて残渣（２．８ｇ）を残し、シリカゲルカラムクロマトグラフィー（溶出剤は酢酸エチル：ジクロロメタン＝１：１．５である）を用いて精製し、ＨＰＬＣ純度８７．８％の白色固体２６ｍｇを得た。
化合物９の構造を下記表１に示す。化合物９の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：δ７．６６１（ｄ、１Ｈ）、７．６３５（ｄ、２Ｈ）、７．４２３（ｓ、１Ｈ）、７．３４２（ｄ、１Ｈ）、７．３２４−７．３１２（ｍ、２Ｈ）、７．１４６（ｄ、２Ｈ）、６．４５７（ｄ、１Ｈ）、３．９３９（ｓ、２Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ１７Ｈ１４ＣｌＯ４；３１７．０５８０。
化合物１０
３−クロロフェニル酢酸（１．７１ｇ、１０．０ｍｍｏｌ）、トルエン２０ｍｌ及びジメチルホルムアミド２滴を２５０ｍｌシングルネックフラスコに添加した。２４℃で５分間撹拌した後、塩化チオニル（１．５ｍｌ、２０．７ｍｍｏｌ）を添加し、６５℃で１時間加熱した。２５℃に冷却した後、過剰の塩化チオニル及び溶剤を回転乾燥機を用いて除去した。次いでテトラヒドロフラン２５ｍｌを反応液に添加して再度溶剤を除去し、２．１８ｇの淡黄色の液体を得た。次いでコーヒー酸（１．８１ｇ、１０．０ｍｍｏｌ）、テトラヒドロフラン２０ｍｌ及びトリエチルアミン（１．４ｍｌ、１０ｍｍｏｌ）を上記液体に添加し、反応液を室温で４時間撹拌した。次いで飽和塩化アンモニウム溶液２０ｍｌを添加し、有機層を分離した。回転乾燥機を用いて有機層の溶剤を除去し５．１３ｇのオフホワイトの固体を得た。上記固体をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル：６７．４ｇ；カラムの直径４ｃｍ；カラムの長さ：１４ｃｍ；及び溶出剤は酢酸エチル：ヘプタン＝１：３から１：１である）を用いて精製し、ＨＰＬＣ純度９７．６％の所望の生成物を収集した。
３−クロロフェニル酢酸（１．７１ｇ、１０．０ｍｍｏｌ）、トルエン２０ｍｌ及びジメチルホルムアミド２滴を２５０ｍｌシングルネックフラスコに添加した。２４℃で５分間撹拌した後、塩化チオニル（１．５ｍｌ、２０．７ｍｍｏｌ）を添加し、６５℃で１時間加熱した。２５℃に冷却した後、過剰の塩化チオニル及び溶剤を回転乾燥機を用いて除去した。次いでテトラヒドロフラン２５ｍｌを反応液に添加して再度溶剤を除去し、２．１８ｇの淡黄色の液体を得た。次いでコーヒー酸（１．８１ｇ、１０．０ｍｍｏｌ）、テトラヒドロフラン２０ｍｌ及びトリエチルアミン（１．４ｍｌ、１０ｍｍｏｌ）を上記液体に添加し、反応液を室温で４時間撹拌した。次いで飽和塩化アンモニウム溶液２０ｍｌを添加し、有機層を分離した。回転乾燥機を用いて有機層の溶剤を除去し５．１３ｇのオフホワイトの固体を得た。上記固体をカラムクロマトグラフィー（シリカゲル：６７．４ｇ；カラムの直径４ｃｍ；カラムの長さ：１４ｃｍ；及び溶出剤は酢酸エチル：ヘプタン＝１：３から１：１である）を用いて精製し、ＨＰＬＣ純度９７．６％の所望の生成物を収集した。
化合物１０の構造を下記表１に示す。化合物１０の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：δ７．６１３（ｄ、１Ｈ）、７．５１１−７．４７８（ｍ、２Ｈ）、７．３５６−７．２８１（ｍ、６Ｈ）、７．２５０−７．２１４（ｍ、３Ｈ）、６．４５５（ｄ、１Ｈ）、３．７２６（ｓ、２Ｈ）、３．６９６（ｓ、２Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ２５Ｈ１９Ｃｌ２Ｏ６；４８５．０５６９。
化合物１１
３−クロロフェニル酢酸（０．４３ｇ、２．５ｍｍｏｌ）、トルエン１０ｍｌ及びジメチルホルムアミド２滴を１００ｍｌシングルネックフラスコに添加した。２４℃で１０分撹拌した後、塩化チオニル（０．５ｍｌ、６．９ｍｍｏｌ）を添加し、６５℃で１時間加熱した。反応液を２５℃に冷却した後、過剰の塩化チオニル及び溶剤を回転乾燥機を用いて除去した。次いでトルエン１０ｍｌを反応液に添加し、再度溶剤を除去して淡黄色の液体を得た。次いでカフェ酸メチル（０．４９ｇ、２．５ｍｍｏｌ）、テトラヒドロフラン１０ｍｌ及びトリエチルアミン（０．４ｍｌ、２．９ｍｍｏｌ）を上記液体に添加し、反応液を室温で３時間撹拌した。次いで飽和塩化アンモニウム溶液２０ｍｌを添加して有機層を分離した。その後有機層を飽和炭酸水素ナトリウム溶液２０ｍｌ及び水２０ｍｌを用いて洗浄した。有機層を乾燥させ、ろ過し、蒸発させてオレンジ色の液体を得た。カラムクロマトグラフィー（シリカゲル：５１．６ｇ；カラムの直径４．５ｃｍ；カラムの長さ：１０ｃｍ；及び溶出剤は酢酸エチル：ヘプタン＝１：５である）を用いてＨＰＬＣ純度９８．６％の生成物２７．３ｍｇを得た。
３−クロロフェニル酢酸（０．４３ｇ、２．５ｍｍｏｌ）、トルエン１０ｍｌ及びジメチルホルムアミド２滴を１００ｍｌシングルネックフラスコに添加した。２４℃で１０分撹拌した後、塩化チオニル（０．５ｍｌ、６．９ｍｍｏｌ）を添加し、６５℃で１時間加熱した。反応液を２５℃に冷却した後、過剰の塩化チオニル及び溶剤を回転乾燥機を用いて除去した。次いでトルエン１０ｍｌを反応液に添加し、再度溶剤を除去して淡黄色の液体を得た。次いでカフェ酸メチル（０．４９ｇ、２．５ｍｍｏｌ）、テトラヒドロフラン１０ｍｌ及びトリエチルアミン（０．４ｍｌ、２．９ｍｍｏｌ）を上記液体に添加し、反応液を室温で３時間撹拌した。次いで飽和塩化アンモニウム溶液２０ｍｌを添加して有機層を分離した。その後有機層を飽和炭酸水素ナトリウム溶液２０ｍｌ及び水２０ｍｌを用いて洗浄した。有機層を乾燥させ、ろ過し、蒸発させてオレンジ色の液体を得た。カラムクロマトグラフィー（シリカゲル：５１．６ｇ；カラムの直径４．５ｃｍ；カラムの長さ：１０ｃｍ；及び溶出剤は酢酸エチル：ヘプタン＝１：５である）を用いてＨＰＬＣ純度９８．６％の生成物２７．３ｍｇを得た。
化合物１１の構造を下記表１に示す。化合物１１の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：δ７．６１８（ｄ、１Ｈ）、７．５０３−７．４７６（ｍ、２Ｈ）、７．３４４−７．２６６（ｍ、６Ｈ）、７．２４２−７．２０５（ｍ、３Ｈ）、６．４９０（ｄ、１Ｈ）、３．７６７（ｓ、３Ｈ）、３．７１３（ｓ、２Ｈ）、３．６８６（ｓ、２Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ２６Ｈ２１Ｃｌ２Ｏ６；４９９．０７１９。
化合物１２
ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル−γ−ｎ−アミノ酪酸（１．５９ｇ、７．８ｍｍｏｌ）を窒素下で２５０ｍｌシングルネックフラスコに添加した。次いでテトラヒドロフラン８ｍｌ及びトリエチルアミン（２．２ｍｌ、１５．８ｍｍｏｌ）を添加し、反応液を−２０℃で５分間撹拌した。その後トリメチルアセチル＝クロリド０．９６ｍｌ、７．８ｍｍｏｌ）及びテトラヒドロフラン５ｍｌの混合物を反応液に１０分間添加し、０℃で２時間撹拌した。次いでコーヒー酸（０．７ｇ、３．９ｍｍｏｌ）及びテトラヒドロフラン８ｍｌの混合物を反応液２分間添加し、室温で４５時間撹拌した。次いで飽和塩化アンモニウム溶液３０ｍｌを添加した。有機層を分離し、蒸発させた。酢酸エチル３０ｍｌを残渣に添加し、水３０ｍｌを用いて洗浄した。その後有機層の溶剤を除去し、白色固体２．１３ｇを得た。カラムクロマトグラフィー（シリカゲル：６５ｇ；カラムの直径４ｃｍ；カラムの長さ：１５ｃｍ；及び溶出剤はジクロロメタン：メタノール＝５０：１から２０：１である）精製後、ＨＰＬＣ純度９７．４％の生成物１７．８ｍｇを得た。
ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル−γ−ｎ−アミノ酪酸（１．５９ｇ、７．８ｍｍｏｌ）を窒素下で２５０ｍｌシングルネックフラスコに添加した。次いでテトラヒドロフラン８ｍｌ及びトリエチルアミン（２．２ｍｌ、１５．８ｍｍｏｌ）を添加し、反応液を−２０℃で５分間撹拌した。その後トリメチルアセチル＝クロリド０．９６ｍｌ、７．８ｍｍｏｌ）及びテトラヒドロフラン５ｍｌの混合物を反応液に１０分間添加し、０℃で２時間撹拌した。次いでコーヒー酸（０．７ｇ、３．９ｍｍｏｌ）及びテトラヒドロフラン８ｍｌの混合物を反応液２分間添加し、室温で４５時間撹拌した。次いで飽和塩化アンモニウム溶液３０ｍｌを添加した。有機層を分離し、蒸発させた。酢酸エチル３０ｍｌを残渣に添加し、水３０ｍｌを用いて洗浄した。その後有機層の溶剤を除去し、白色固体２．１３ｇを得た。カラムクロマトグラフィー（シリカゲル：６５ｇ；カラムの直径４ｃｍ；カラムの長さ：１５ｃｍ；及び溶出剤はジクロロメタン：メタノール＝５０：１から２０：１である）精製後、ＨＰＬＣ純度９７．４％の生成物１７．８ｍｇを得た。
化合物１２の構造を下記表１に示す。化合物１２の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：δ７．６４４（ｄ、１Ｈ）、７．５３５−７．５０７（ｍ、２Ｈ）、７．２９３（ｄ、１Ｈ）、６．８４５（ｄ、１Ｈ）、３．１７３−３．１３４（ｍ、４Ｈ）、２．６３７−２．５９６（ｍ、４Ｈ）、１．８８５−１．８４６（ｍ、４Ｈ）、１．４４０（ｓ、１８Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ２７Ｈ３９Ｎ２Ｏ１０；５５１．２５９１；［Ｍ＋Ｎａ］＋；５７３．２４１４。
化合物１３
室温で４−アミノケイ皮酸（０．２０１ｇ、１．０ｍｍｏｌ）及びテトラヒドロフラン２ｍｌを混合し、次いでグルタル酸無水物（０．１６９ｇ、２．０ｍｍｏｌ）を添加し、１．５時間撹拌した。その後沈殿物をろ過し、水を用いて洗浄し、ＨＰＬＣ純度９８．２％の白色固体０．３３６ｇを得た。
室温で４−アミノケイ皮酸（０．２０１ｇ、１．０ｍｍｏｌ）及びテトラヒドロフラン２ｍｌを混合し、次いでグルタル酸無水物（０．１６９ｇ、２．０ｍｍｏｌ）を添加し、１．５時間撹拌した。その後沈殿物をろ過し、水を用いて洗浄し、ＨＰＬＣ純度９８．２％の白色固体０．３３６ｇを得た。
化合物１３の構造を下記表１に示す。化合物１３の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：δ７．６４３−７．６１１（ｍ、３Ｈ）、７．５５１（ｄ、２Ｈ）、６．４０１（ｄ、１Ｈ）、２．４５４（ｔ、２Ｈ）、２．３９３（ｔ、２Ｈ）、１．９７８（ｔｔ、２Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ１４Ｈ１６ＮＯ５；２７８．１０６７。
化合物１４
フマル酸モノメチルエステル（０．７２ｇ、５．５ｍｍｏｌ）、トルエン１０ｍｌ及びジメチルホルムアミド２滴を１００ｍｌシングルネックフラスコに添加した。１７℃で３分間撹拌した後、塩化チオニル（１１．０ｍｍｏｌ）０．９ｍｌを添加し、６０℃で３時間加熱した。反応液を３０℃に冷却した後、過剰の塩化チオニル及び溶剤全てを回転乾燥機を用いて除去した。次いで４−アミノケイ皮酸（０．８２ｇ、５．０ｍｍｏｌ）、テトラヒドロフラン１０ｍｌ及びトリエチルアミン（１．４ｍｌ、１０．０ｍｍｏｌ）を残渣に添加し、０℃で３０分間、次いで室温で１９時間撹拌した。その後飽和塩化アンモニウム溶液２０ｍｌ及び水５ｍｌを反応液に添加し、有機層を分離した。ジクロロメタン２０ｍｌを用いて水層を２回逆抽出した。混合した有機層を乾燥させ、ろ過し、蒸発させて黄色固体を得、カラムクロマトグラフィー（シリカゲル：５２．９ｇ；カラムの直径：４ｃｍ；カラムの長さ：１１ｃｍ；及び溶出剤は酢酸エチル：ヘプタン＝１：３から１：０である）ＨＰＬＣ純度９４．０％の所望の生成物２２．５ｍｇを得た。
フマル酸モノメチルエステル（０．７２ｇ、５．５ｍｍｏｌ）、トルエン１０ｍｌ及びジメチルホルムアミド２滴を１００ｍｌシングルネックフラスコに添加した。１７℃で３分間撹拌した後、塩化チオニル（１１．０ｍｍｏｌ）０．９ｍｌを添加し、６０℃で３時間加熱した。反応液を３０℃に冷却した後、過剰の塩化チオニル及び溶剤全てを回転乾燥機を用いて除去した。次いで４−アミノケイ皮酸（０．８２ｇ、５．０ｍｍｏｌ）、テトラヒドロフラン１０ｍｌ及びトリエチルアミン（１．４ｍｌ、１０．０ｍｍｏｌ）を残渣に添加し、０℃で３０分間、次いで室温で１９時間撹拌した。その後飽和塩化アンモニウム溶液２０ｍｌ及び水５ｍｌを反応液に添加し、有機層を分離した。ジクロロメタン２０ｍｌを用いて水層を２回逆抽出した。混合した有機層を乾燥させ、ろ過し、蒸発させて黄色固体を得、カラムクロマトグラフィー（シリカゲル：５２．９ｇ；カラムの直径：４ｃｍ；カラムの長さ：１１ｃｍ；及び溶出剤は酢酸エチル：ヘプタン＝１：３から１：０である）ＨＰＬＣ純度９４．０％の所望の生成物２２．５ｍｇを得た。
化合物１４の構造を下記表１に示す。化合物１４の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）：δ１２．２８３（ｂｒ ｓ、１Ｈ）、１０．７０９（ｓ、１Ｈ）、７．７０７（ｄ、２Ｈ）、７．６６３（ｄ、２Ｈ）、７．５２３（ｄ、１Ｈ）、７．２１１（ｄ、１Ｈ）、６．７２６（ｄ、１Ｈ）、６．４３０（ｄ、１Ｈ）、３．７４６（ｓ、３Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ１４Ｈ１４ＮＯ５；２７６．０８６６。
化合物１５
アセチルサリチル酸（１．０ｇ、５．５ｍｍｏｌ）、トルエン２０ｍｌ及びジメチルホルムアミド３滴を１００ｍｌシングルネックフラスコに添加した。２０℃で３分間撹拌した後、塩化チオニル（０．９ｍｌ、１１．０ｍｍｏｌ）を添加し、６０℃で１．５時間加熱した。３５℃に冷却した後、過剰の塩化チオニル及び溶剤すべてを回転乾燥機を用いて除去した。その後テトラヒドロフラン１０ｍｌを残渣に添加し、再度蒸発させて淡黄色の液体１ｇを得た。次いで４−アミノケイ皮酸（０．８１ｇ、５．０ｍｍｏｌ）、テトラヒドロフラン１０ｍｌ及びトリエチルアミン（１０．０ｍｍｏｌ）１．４ｍｌを添加し、まず０℃で１時間、次いで室温で２２時間撹拌した。その後飽和塩化アンモニウム溶液２５ｍｌ及び水５ｍｌを反応液に添加し、有機層を分離した。回転乾燥機を用いて溶剤を除去し、黄色固体０．９１ｇを得た。カラムクロマトグラフィー（シリカゲル：６４．７ｇ；カラムの直径４ｃｍ；カラムの長さ：１２．５ｃｍ；及び溶出剤は酢酸エチル：ヘプタン＝１：５から１：１）精製後、ＨＰＬＣ９２．７％の生成物１０．７ｍｇを得た。
アセチルサリチル酸（１．０ｇ、５．５ｍｍｏｌ）、トルエン２０ｍｌ及びジメチルホルムアミド３滴を１００ｍｌシングルネックフラスコに添加した。２０℃で３分間撹拌した後、塩化チオニル（０．９ｍｌ、１１．０ｍｍｏｌ）を添加し、６０℃で１．５時間加熱した。３５℃に冷却した後、過剰の塩化チオニル及び溶剤すべてを回転乾燥機を用いて除去した。その後テトラヒドロフラン１０ｍｌを残渣に添加し、再度蒸発させて淡黄色の液体１ｇを得た。次いで４−アミノケイ皮酸（０．８１ｇ、５．０ｍｍｏｌ）、テトラヒドロフラン１０ｍｌ及びトリエチルアミン（１０．０ｍｍｏｌ）１．４ｍｌを添加し、まず０℃で１時間、次いで室温で２２時間撹拌した。その後飽和塩化アンモニウム溶液２５ｍｌ及び水５ｍｌを反応液に添加し、有機層を分離した。回転乾燥機を用いて溶剤を除去し、黄色固体０．９１ｇを得た。カラムクロマトグラフィー（シリカゲル：６４．７ｇ；カラムの直径４ｃｍ；カラムの長さ：１２．５ｃｍ；及び溶出剤は酢酸エチル：ヘプタン＝１：５から１：１）精製後、ＨＰＬＣ９２．７％の生成物１０．７ｍｇを得た。
化合物１５の構造を下記表１に示す。化合物１５の核磁気共鳴スペクトルは以下の通りである。１Ｈ−ＮＭＲ（５００ＭＨｚ、ＤＭＳＯ−ｄ６）：δ１０．５２３（ｓ、１Ｈ）、７．９４８（ｄｄ、１Ｈ）、７．７６５（ｔｄ、１Ｈ）、７．７００（ｄ、２Ｈ）、７．６６６−７．６２７（ｍ、３Ｈ）、７．５６４（ｔｄ、１Ｈ）、７．５０８（ｄ、１Ｈ）、７．３７８（ｔ、１Ｈ）、７．３２１（ｔ、１Ｈ）、７．２３６（ｄ、２Ｈ）、６．３６９（ｄ、１Ｈ）、２．２３０（ｓ、３Ｈ）、２．１５４（ｓ、３Ｈ）。質量分析：［Ｍ＋Ｈ］＋；Ｃ２７Ｈ２２ＮＯ８；４８８．１３４８；［Ｍ＋Ｎａ］＋；５１０．１１７１。
実施例２：心筋再生を改善するための化合物１から４６の使用
下記式（ＩＩ）で表される化合物は、損傷した心筋細胞の心筋再生及び修復を促進させることができる。
下記式（ＩＩ）で表される化合物は、損傷した心筋細胞の心筋再生及び修復を促進させることができる。
上記式（ＩＩ）中、Ｒ１は、ヒドロキシ基、炭素数１〜６の非置換のアルキル基、炭素数１〜６の非置換のアルコキシ基、炭素数１〜６の置換のアルカン酸基、炭素数７〜１２の置換のシクロアルカン酸基、炭素数６〜１８の置換若しくは非置換のアリールアミン基、炭素数６〜１８の置換若しくは非置換のフェノール基、置換若しくは非置換のアリール基、置換若しくは非置換のチエニル基、置換若しくは非置換のピロリル基、置換若しくは非置換のピリジル基又は非置換のチアゾリル基である。
Ｒ２は、水素原子、ヒドロキシ基、炭素数１〜６の非置換のアルキル基、アミノ基（＊−ＮＨ２）、アセトキシ基（＊−ＯＣＯＣＨ３）、＊−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ＝ＣＨ２又は＊−Ｘ２（ＣＯ）−（Ｙ）ｐ−Ｚ基である。
Ｒ３は、水素原子、ヒドロキシ基、炭素数１〜６の非置換のアルキル基、炭素数１〜６の非置換のアルコキシ基又は＊−Ｏ−ＣＯ−（Ｙ）ｐ−Ｚ基であるか、あるいはＲ２及びＲ３が結合して下記式（ｉｉ）で表される基を形成する。
Ｒ４は、水素原子、炭素数１〜６の非置換のアルコキシ基、＊−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ＝ＣＨ２又は下記式（ｉｉｉ）で表される基である。
Ａは、ベンゼン環、チオフェン環又はピリジン環である。
Ｘ２は、酸素原子（＊−Ｏ−＊）又はアミノ基（＊−ＮＨ−＊又は＊−ＮＸ４−＊）である。
Ｙは、炭素数１〜６のアルキレン基、炭素数２〜１２のアルケニレン基、炭素数７〜１８のアリーレンアルキレン基又は炭素数６〜１８のアリーレン基である。
Ｚは、＊−Ｃ５Ｈ４Ｎ、＊−ＣＯＣＨ３、＊−ＣＯＯＨ、＊−ＣＯＯＣＨ３、＊−ＯＣＯＣＨ３、＊−ＮＨＣＯＯＣ（ＣＨ３）３、＊−Ｆ、＊−Ｃｌ、＊−Ｂｒ又は＊−Ｉである。
ｐは、０又は１である。
上記化合物１から１５に加えて、式（ＩＩ）で表される化合物は化合物１６から４６をも含有する。化合物１から４６の構造を表２〜表４に示す。
有効成分として、上記化合物１から４６は、それぞれ薬学的に許容可能な担体と混合して心筋再生を促進させるための医薬組成物、心筋梗塞を予防するための健康食品及び心筋梗塞の予後を維持するための健康食品を形成する。
上記式（ＩＩ）で表されるように、心筋再生に使用される上記化合物は塩又はエステルであってよい。例えば上記式（ＩＩ）で表される化合物の１つがアルカリ金属類又はアルカリ土類金属類と反応してナトリウム塩、カリウム塩、マグネシウム塩、カルシウム塩、アンモニウム塩、炭酸塩、硝酸塩、重炭酸塩、塩酸塩、硫酸塩又はケイ酸塩を形成する。あるいは、式（ＩＩ）で表される化合物の１つがアルコール類と反応してメチルエステル、エチルエステル、プロピルエステル、ブチルエステル、アミルエステル、酢酸メチル、酢酸エチル、ギ酸ブチル、酢酸ブチル、吉草酸ブチル、プロピオン酸ブチル、酪酸メチル又はブタン酸エチル等のエステル類を形成する。
上記「薬学的に許容可能な担体」又は「許容可能な担体」は、デンプン、コーンデンプン、ゼラチン、アラビアガム、食用色素、香辛料、着香料及び防腐剤等の薬学的に又は食品用の許容可能な賦形剤又は添加剤を含有する。投与経路は、経口投与、皮膚投与、腹腔内投与、静脈内投与、経鼻投与又は眼投与を含有する。好ましい投与経路は経口投与である。
患者の年齢、体重、健康状態、病気の種類、病気の進行及び病変部位に応じて、当該分野における一般常識に従い医療関係者によって上記医薬組成物の投与量が決定される。上記医薬組成物は、単独で又は他の薬剤とともに投与し得る。管理プロセスは、薬局における日常方法に従い医療関係者が行うべきである。
上記健康食品における有効成分の量は、特定の群に応じて調整し得る。好ましくは、上記量は１日摂取量に適している。包装には、特定群（例えば妊娠雌性又は腎疾患のある患者）の推奨される使用法、基準及び使用条件又は他の食品若しくは薬剤と摂取する際の他の注意事項を表示してもよく、これによって医師、薬剤師又は関係者から指示なしに摂取する購入者を安全にする。
試験例１：心筋再生のための化合物１から４６の活性評価
ミオシンは、機能的及び構造的に心筋の重要な成分であり、ミオシン重鎖から構成される。これらの中で、α−心筋ミオシン重鎖（α−ＭＨＣ）は、心臓の発生初期に心筋細胞において特異的に発現するＭＹＨ６遺伝子にエンコードされる。ＭＹＨ６遺伝子は主に心房に発現され、心筋細胞の収縮作用において重要な役割を果たす。また上記遺伝子は、心筋細胞細胞系譜の誘導及び維持に関与する転写制御の場合に、心臓を認識する手がかりとなる。α−ＭＨＣは心臓の初期発生において重要なタンパク質であり、Ｈ９Ｃ２細胞株（心筋芽細胞）におけるα−ＭＨＣの発現レベルは、幹細胞の分化及び心筋梗塞の予後の維持を促進させる試験例の効果を評価する適切な指標である。
ミオシンは、機能的及び構造的に心筋の重要な成分であり、ミオシン重鎖から構成される。これらの中で、α−心筋ミオシン重鎖（α−ＭＨＣ）は、心臓の発生初期に心筋細胞において特異的に発現するＭＹＨ６遺伝子にエンコードされる。ＭＹＨ６遺伝子は主に心房に発現され、心筋細胞の収縮作用において重要な役割を果たす。また上記遺伝子は、心筋細胞細胞系譜の誘導及び維持に関与する転写制御の場合に、心臓を認識する手がかりとなる。α−ＭＨＣは心臓の初期発生において重要なタンパク質であり、Ｈ９Ｃ２細胞株（心筋芽細胞）におけるα−ＭＨＣの発現レベルは、幹細胞の分化及び心筋梗塞の予後の維持を促進させる試験例の効果を評価する適切な指標である。
１．１：Ｈ９Ｃ２細胞株の細胞培養
Ｈ９Ｃ２細胞株は、ラット由来の心筋芽細胞であり、財団法人食品工業産業發展研究所（台湾）から購入される。培地は、４．５ｇ／Ｌグルコース及び１．５ｇ／Ｌ重炭酸ナトリウム（シグマ、Ｃａｔ．Ｓ５７６１）を含有するように調整された４ｍＭのＬ−グルタミン（ギブコ（登録商標）、Ｃａｔ．１２８０００１７）並びに１０％（ｖ／ｖ）ウシ胎仔血清（ギブコ（登録商標）、Ｃａｔ．１０４３７０２８）を有する９０％（ｖ／ｖ）ダルベッコ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ）改変イーグル培地である。大気雰囲気下、５％（ｖ／ｖ）ＣＯ２中、３７℃で培養した。
Ｈ９Ｃ２細胞株は、ラット由来の心筋芽細胞であり、財団法人食品工業産業發展研究所（台湾）から購入される。培地は、４．５ｇ／Ｌグルコース及び１．５ｇ／Ｌ重炭酸ナトリウム（シグマ、Ｃａｔ．Ｓ５７６１）を含有するように調整された４ｍＭのＬ−グルタミン（ギブコ（登録商標）、Ｃａｔ．１２８０００１７）並びに１０％（ｖ／ｖ）ウシ胎仔血清（ギブコ（登録商標）、Ｃａｔ．１０４３７０２８）を有する９０％（ｖ／ｖ）ダルベッコ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ）改変イーグル培地である。大気雰囲気下、５％（ｖ／ｖ）ＣＯ２中、３７℃で培養した。
１．２：細胞生存率試験のためのＭＴＴ試験
細胞毒性を有しない適した化合物濃度を見出すために、細胞を９０％培養密度で培養し、細胞を２４ウェルプレートに１．５×１０４細胞／ウェル濃度で播種した。２４時間後、０．２から３０μｇ／ｍｌの化合物１から４６及びＤＭＳＯ（シグマ、Ｃａｔ．Ｄ４５４０）を添加し、４８時間処理した（各群を３回行った）。ＰＢＳ緩衝液（リン酸緩衝食塩水）で洗浄した後、０．５ｍｇ／ｍｌＭＴＴ（チアゾリルブルーテトラゾリウムブロミド；シグマ、Ｃａｔ．Ｍ２１２８）を添加し、２４ウェルプレートを３７℃で４時間培養した。その後顕微鏡によって青紫色の結晶が観察された。次いで上清を除去し、ＤＭＳＯ２００μＬを加えて結晶を溶解した。ピペットを用いて各サンプルを再度混合し、５７０ｎｍにおける吸光度を測定した（値は３回の平均値である）。ＤＭＳＯ群の値は１００％であり、細胞生存率が１００％であることを意味する。以下の試験では、化合物の濃度を細胞生存率が８０％〜１２０％範囲内となるように選択し、下記図１に示すように心筋細胞の成長が影響されないことを確かめた。
細胞毒性を有しない適した化合物濃度を見出すために、細胞を９０％培養密度で培養し、細胞を２４ウェルプレートに１．５×１０４細胞／ウェル濃度で播種した。２４時間後、０．２から３０μｇ／ｍｌの化合物１から４６及びＤＭＳＯ（シグマ、Ｃａｔ．Ｄ４５４０）を添加し、４８時間処理した（各群を３回行った）。ＰＢＳ緩衝液（リン酸緩衝食塩水）で洗浄した後、０．５ｍｇ／ｍｌＭＴＴ（チアゾリルブルーテトラゾリウムブロミド；シグマ、Ｃａｔ．Ｍ２１２８）を添加し、２４ウェルプレートを３７℃で４時間培養した。その後顕微鏡によって青紫色の結晶が観察された。次いで上清を除去し、ＤＭＳＯ２００μＬを加えて結晶を溶解した。ピペットを用いて各サンプルを再度混合し、５７０ｎｍにおける吸光度を測定した（値は３回の平均値である）。ＤＭＳＯ群の値は１００％であり、細胞生存率が１００％であることを意味する。以下の試験では、化合物の濃度を細胞生存率が８０％〜１２０％範囲内となるように選択し、下記図１に示すように心筋細胞の成長が影響されないことを確かめた。
１．３：細胞の破壊及び採取
Ｈ９Ｃ２細胞を約９０％培養密度で培養し、２４ウェルプレートに１．５×１０４細胞／ウェル濃度で播種した。２４時間後、化合物１から４６及びＤＭＳＯを４８時間添加した（各群を３回行った）。化合物１から４６の濃度を下記表５に記載する。ＰＢＳ緩衝液で洗浄した後、０．０５％（ｗ／ｖ）２００μＬ／ウェルのトリプシンを５分間添加した。次いで細胞培養液を添加してトリプシン反応を停止した。細胞懸濁液を４℃、１０００ｒｐｍで３分間遠心分離し、細胞をＰＢＳ緩衝液を用いて３回洗浄した。その後細胞をＰＢＳ中に再懸濁し、−８０℃で凍結した。穏やかに混合して細胞を解凍した。凍結−解凍サイクルを３回繰り返して細胞を破壊した。最後に溶液を４℃、３０００ｒｐｍで１５分間遠心分離し、上清を回収し、次いで−２０℃で貯蔵した。
Ｈ９Ｃ２細胞を約９０％培養密度で培養し、２４ウェルプレートに１．５×１０４細胞／ウェル濃度で播種した。２４時間後、化合物１から４６及びＤＭＳＯを４８時間添加した（各群を３回行った）。化合物１から４６の濃度を下記表５に記載する。ＰＢＳ緩衝液で洗浄した後、０．０５％（ｗ／ｖ）２００μＬ／ウェルのトリプシンを５分間添加した。次いで細胞培養液を添加してトリプシン反応を停止した。細胞懸濁液を４℃、１０００ｒｐｍで３分間遠心分離し、細胞をＰＢＳ緩衝液を用いて３回洗浄した。その後細胞をＰＢＳ中に再懸濁し、−８０℃で凍結した。穏やかに混合して細胞を解凍した。凍結−解凍サイクルを３回繰り返して細胞を破壊した。最後に溶液を４℃、３０００ｒｐｍで１５分間遠心分離し、上清を回収し、次いで−２０℃で貯蔵した。
１．４：α−ＭＨＣ発現レベルの決定
ラットミオシン重鎖６、心筋アルファ（ＭＹＨ６）ＥＬＩＳＡキット（マイバイオサイエンス（ＭｙＢｉｏＳｏｕｒｃｅ）、Ｃａｔ．ＭＢＳ７５３９４６）及びＥＬＩＳＡリーダーを用いてα−ＭＨＣ発現レベルを決定した。次いでＥＬＩＳＡリーダーが読み取った吸光度４５０ｎｍの値を記録した（値は３回の平均である）。ＤＭＳＯ群の値を１００％に設定し、化合物１から４６で処理したα−ＭＨＣ群の相対的発現レベルを算出した。
ラットミオシン重鎖６、心筋アルファ（ＭＹＨ６）ＥＬＩＳＡキット（マイバイオサイエンス（ＭｙＢｉｏＳｏｕｒｃｅ）、Ｃａｔ．ＭＢＳ７５３９４６）及びＥＬＩＳＡリーダーを用いてα−ＭＨＣ発現レベルを決定した。次いでＥＬＩＳＡリーダーが読み取った吸光度４５０ｎｍの値を記録した（値は３回の平均である）。ＤＭＳＯ群の値を１００％に設定し、化合物１から４６で処理したα−ＭＨＣ群の相対的発現レベルを算出した。
図１に示すように、Ｈ９Ｃ２細胞を化合物１から４６で処理した後、細胞はそれにもかかわらず正常に成長し（細胞生存率８０％〜１２０％の範囲内）、処置群全てのα−ＭＨＣ発現レベルは、ＤＭＳＯ添加群と比較して増大した。つまり化合物１から４６は、実際にＨ９Ｃ２細胞においてα−ＭＨＣ発現レベルを促進させる。このことは、化合物１から４６が心筋再生を促進し、修復することができることを示す。
試験例２：ゼブラフィッシュの心筋再生における化合物１から４６の作用評価
凍傷によるゼブラフィッシュの心臓の損傷領域（〜３０％）は、２１日以内で修復する。したがって成体ゼブラフィッシュは、心臓の損傷を研究するのに適した動物モデルである。ゼブラフィッシュの心臓に損傷を与えた後、再生工程は３つの工程を含む。第１工程は心筋細胞の増殖であり、第２工程は囲心細胞の再生であり、最終工程は血管内皮細胞の再生である。
凍傷によるゼブラフィッシュの心臓の損傷領域（〜３０％）は、２１日以内で修復する。したがって成体ゼブラフィッシュは、心臓の損傷を研究するのに適した動物モデルである。ゼブラフィッシュの心臓に損傷を与えた後、再生工程は３つの工程を含む。第１工程は心筋細胞の増殖であり、第２工程は囲心細胞の再生であり、最終工程は血管内皮細胞の再生である。
心筋再生及び修復のための化合物の作用を評価するために、形質転換ゼブラフィッシュ（Ｔｇ−ｆｌｉ１−ｅＧＦＰ）を用いて麻酔をし、心臓凍傷を実施した。したがって形質転換ゼブラフィッシュの血管内皮細胞は緑色蛍光タンパク質を発現することができる。ゼブラフィッシュの心臓に凍傷によって損傷を与えた後、損傷した細胞は緑色蛍光タンパク質することができず、これによって心臓の損傷領域を評価することができる。
２．１：成体ゼブラフィッシュにおける心臓損傷の実施
６ｍｍ長さ及び０．８ｍｍ幅のクライオプローブ（ｃｒｙｏｐｒｏｂｅ）を用いてゼブラフィッシュにおける心凍結損傷を実施した。心臓損傷を実施するために、麻酔した成体ゼブラフィッシュをスポンジのスリットに腹側を上にして配置した。２つの胸びれの間の皮膚及び筋肉を切開し、次いで下の銀色の皮下組織をピンセットで穏やかに開いて心臓に接近した。その後クライオプローブを胸部に穏やかに挿入して低温損傷のために心臓に接触した。
６ｍｍ長さ及び０．８ｍｍ幅のクライオプローブ（ｃｒｙｏｐｒｏｂｅ）を用いてゼブラフィッシュにおける心凍結損傷を実施した。心臓損傷を実施するために、麻酔した成体ゼブラフィッシュをスポンジのスリットに腹側を上にして配置した。２つの胸びれの間の皮膚及び筋肉を切開し、次いで下の銀色の皮下組織をピンセットで穏やかに開いて心臓に接近した。その後クライオプローブを胸部に穏やかに挿入して低温損傷のために心臓に接触した。
ゼブラフィッシュの心臓の再生及び修復を評価するために、心臓収集を行った。心臓収集を行う場合、胸部の鰓弓を切開して心室に接近し、動脈球（ａｒｔｅｒｉａｌ ｂａｌｌ）及び心室が見えるようにした。次いで動脈鉗子を用いて動脈球を除去し、心臓を切り取って心臓収集を終了した。
本願発明において、低温損傷又は心臓収集に関するあらゆる実験工程は、上記手順と同様である。
２．２：ゼブラフィッシュの心筋再生のための化合物１から４６の作用評価
形質転換ゼブラフィッシュに低温損傷を行った後、形質転換ゼブラフィッシュに１２．５μｇ／ｇの試験例を７日間毎日与えた。８日目にゼブラフィッシュを犠牲にし、心臓の損傷領域を算出し、さらにゼブラフィッシュにおける心筋再生及び修復を促進させる作用を評価するために、心臓収集を行った。
形質転換ゼブラフィッシュに低温損傷を行った後、形質転換ゼブラフィッシュに１２．５μｇ／ｇの試験例を７日間毎日与えた。８日目にゼブラフィッシュを犠牲にし、心臓の損傷領域を算出し、さらにゼブラフィッシュにおける心筋再生及び修復を促進させる作用を評価するために、心臓収集を行った。
形質転換ゼブラフィッシュの血管内皮細胞は緑色蛍光タンパク質を発現することができるため、蛍光発光領域は損傷のない領域を示し得る。つまり蛍光発光のない領域は損傷領域であり、心臓に対するその割合を算出して低温損傷領域の百分率を得ることができる。
溶剤のみを含有する試験例を与えた群は溶媒として示す。溶媒の損傷領域の百分率を確認するために、心臓損傷ゼブラフィッシュに溶剤のみを含有する試験例を７日間与えた。低温損傷領域の百分率は２７％であった。次いで心臓損傷ゼブラフィッシュに化合物１から４６をそれぞれ含有する試験例を７日間与え、群毎に低温損傷領域の百分率を算出し、図２に示す。図２に示す結果によると、化合物１から４６をそれぞれ含有する試験例を７日間与えた群すべての低温損傷領域の百分率は、、溶媒の結果と比較して明らかに減少した。つまり化合物１から４６は実際にゼブラフィッシュの心筋再生及び修復を促進させることができる。
本開示の様々な特徴及び利点、ならびに本開示の構造や特徴の詳細を上述したが、これらの記載は例示的なものにすぎない。詳細、特に各部の形状、寸法、配置は、添付の請求の範囲の記載の広範な一般的意味によって示される本開示の原理の範囲内において変更可能である。
Claims (7)
- 下記式（ＩＩ）で表される化合物を含有する、心筋再生を促進させるための医薬組成物。
Ｒ２は、水素原子、ヒドロキシ基、炭素数１〜６の非置換のアルキル基、アミノ基、アセトキシ基、＊−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ＝ＣＨ２又は＊−Ｘ２（ＣＯ）−（Ｙ）ｐ−Ｚ基である。
Ｒ３は、水素原子、ヒドロキシ基、炭素数１〜６の非置換のアルキル基、炭素数１〜６の非置換のアルコキシ基又は＊−Ｏ−ＣＯ−（Ｙ）ｐ−Ｚ基であるか、あるいはＲ２及びＲ３が結合して下記式（ｉｉ）で表される基を形成する。
Ｘ２は、＊−Ｏ−＊、＊−ＮＨ−＊又は＊−ＮＸ４−＊であり、Ｘ４は下記式（ｉ）で表される。
Ｙは、炭素数１〜６の非置換のアルキレン基、炭素数２〜１２の非置換のアルケニレン基、炭素数７〜１８の非置換のアリーレンアルキレン基又は炭素数６〜１８の非置換のアリーレン基である。
ｐは、０又は１である。） - Ｚが、＊−Ｃ５Ｈ４Ｎ、＊−ＣＯＣＨ３、＊−ＣＯＯＨ、＊−ＣＯＯＣＨ３、＊−ＯＣＯＣＨ３、＊−ＮＨＣＯＯＣ（ＣＨ３）３又は＊−Ｃｌである請求項１に記載の心筋再生を促進させるための医薬組成物。
- Ｒ２が、＊−ＣＨ３、＊−Ｏ−ＣＨ２−ＣＨ＝ＣＨ２、＊−ＮＨ２又は＊−Ｏ−ＣＯ−（Ｙ）ｐ−Ｚ基である請求項１又は請求項２に記載の心筋再生を促進させるための医薬組成物。
- Ｒ２が、＊−Ｘ２（ＣＯ）−（Ｙ）ｐ−Ｚ基である場合、Ｒ１がヒドロキシ基である請求項１又は請求項２に記載の心筋再生を促進させるための医薬組成物。
- Ｙがアルケニレン基である場合、Ｚが＊−ＣＯＯＣＨ３である請求項１から請求項４のいずれか一項に記載の心筋再生を促進させるための医薬組成物。
- 上記式（ＩＩ）で表される化合物が下記式１から４６からなる群より選択される請求項１に記載の心筋再生を促進させるための医薬組成物。
- 薬学的に許容可能な担体をさらに含有する請求項１から請求項６のいずれか一項に記載の心筋再生を促進させるための医薬組成物。
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| A911 | Transfer to examiner for re-examination before appeal (zenchi) |
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