JP2019509746A - バクテリオファージ改変法 - Google Patents
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Abstract
本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法およびキットを提供する。【選択図】図2
Description
関連出願の相互参照
本出願は2016年3月28日に出願された米国特許出願第62/314、163号の利益および優先権を主張するものであり、その内容全体が参照により本明細書に組み込まれる。
本出願は2016年3月28日に出願された米国特許出願第62/314、163号の利益および優先権を主張するものであり、その内容全体が参照により本明細書に組み込まれる。
技術分野
本技術は、全般的には組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法およびキットに関する。
本技術は、全般的には組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法およびキットに関する。
本技術の背景に関する以下の説明は、単に本技術を理解する上での補助として提供されるものであり、本技術の先行技術を説明または構成することを認めるものではない。
モデルファージは、異種タンパク質産物を細菌細胞に送達するために分子生物学的手法を用いて改変されてきた(例えば、米国特許第2009/0155215号;M.J.Loessnerら、Applied and Environmental Microbiology、第62巻、第4号、1133〜40頁(1996))。これまでに改変されたモデルファージの天然宿主範囲は限られている。ファージゲノムのバリエーションを作り出し、新しいファージゲノムを改変する方法により、診断および治療に有用な多様な特性(例えば、多様な宿主範囲)を有するファージを同定することができる。
多様なファージの改変は、一般にファージゲノムの特性によりさらに困難となる。例えば、ファージゲノムは、制限部位が比較的少なく、大幅に修飾されるので、従来のクローン技術をファージと共に使用することは困難である。ファージは、非コードDNAがほとんどないコンパクトなゲノムも有し、これによって、従来の改変に対応するゲノム中の部位を発見するのが困難になり得る。インビトロ戦略に依存する多くの既存のファージ改変技術は、一般に非効率的であり、拡大が困難である。さらに、細菌内でのファージの改変は、細菌に対するファージの毒性、ならびに大きく改変されたゲノムの安定性維持の難しさにより困難であり得る。
一態様において、本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、(a)非組換えバクテリオファージゲノムとsgRNA−CRISP酵素複合体とを、インビトロで、sgRNA−CRISPR酵素複合体が、非組換えバクテリオファージゲノム中のプロトスペーサー配列を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で接触させることと、(b)切断非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビトロで、組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることとを含む方法(別名、「切断および組換え3.0」(BAR3.0)方法)を提供する。切断非組換えバクテリオファージゲノムは、第1の切断バクテリオファージゲノム断片および第2の切断バクテリオファージゲノム断片を含む。幾つかの実施形態において、異種核酸は、第1の切断バクテリオファージゲノム断片の3’末端に相同な5’フランキング領域、および第2の切断バクテリオファージゲノム断片の5’末端に相同な3’フランキング領域を含む。幾つかの実施形態において、プロトスペーサー配列は、5’GCTTACGCAGAAGATGCAGA3’(配列番号5)である。
さらにまたはあるいは、幾つかの実施形態において、方法は、組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主中で増幅させることをさらに含む。細菌宿主は、非天然細菌宿主細胞または天然細菌宿主細胞であり得る。
さらにまたはあるいは、幾つかの実施形態において、CRISPR酵素は、Cas1、Cas1B、Cas2、Cas3、Cas4、Cas5、Cas6、Cas7、Cas8、Cas9、Cas10、Csy1、Csy2、Csy3、Cse1、Cse2、Csc1、Csc2、Csa5、Csn2、Csm2、Csm3、Csm4、Csm5、Csm6、Cmr1、Cmr3、Cmr4、Cmr5、Cmr6、Csb1、Csb2、Csb3、Csx17、Csx14、Csx10、Csx16、CsaX、Csx3、Csx1、Csx15、Csf1、Csf2、Csf3およびCsf4からなる群から選択されるCasタンパク質である。ある種の実施形態において、CRISPR酵素はCas9である。
方法のある種の実施形態において、非組換えバクテリオファージゲノムは、K1−5ファージに対応する。組換えバクテリオファージゲノムの核酸配列は、配列番号3または配列番号4を含み得る。
別の態様において、本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、(a)単一の第1の認識部位を含む非組換えバクテリオファージゲノムと第1の制限酵素とを、インビトロで、第1の制限酵素が第1の認識部位を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で接触させることと、(b)切断非組換バクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビトロで、組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることとを含む方法(別名、BAR4.0方法)を提供する。切断非組換えバクテリオファージゲノムは、第1の切断バクテリオファージゲノム断片および第2の切断バクテリオファージゲノム断片を含む。幾つかの実施形態において、異種核酸は、第1の切断バクテリオファージゲノム断片の3’末端に相同な5’フランキング領域、および第2の切断バクテリオファージゲノム断片の5’末端に相同な3’フランキング領域を含む。
さらにまたはあるいは、幾つかの実施形態において、方法は、組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主中で増幅させることをさらに含む。細菌宿主は、非天然細菌宿主細胞または天然細菌宿主細胞であり得る。
幾つかの実施形態において、第1の制限酵素はSwaIである。他の実施形態において、第1の制限酵素は、NheIである。
方法のある種の実施形態において、非組換えバクテリオファージゲノムは、大腸菌(Escherichia coli)(別名、大腸菌(E.coli))T7に対応する。組換えバクテリオファージゲノムの核酸配列は、配列番号1、配列番号2、配列番号6または配列番号7を含み得る。
さらにまたはあるいは、本明細書に開示されたBAR3.0およびBAR4.0方法の幾つかの実施形態において、組換え系は、5’−3’エキソヌクレアーゼ、DNAポリメラーゼおよびDNAリガーゼを含む。
一態様において、本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、(a)非組換えバクテリオファージゲノムと、(i)sgRNA−CRISPR酵素複合体とを、インビトロで、sgRNA−CRISPR酵素複合体が、非組換えバクテリオファージゲノム中のプロトスペーサー配列を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で、または(ii)制限酵素とを、インビトロで、制限酵素が非組換えバクテリオファージゲノム中の唯一の認識部位を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で、接触させることと、(b)切断非組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主細胞に形質転換することであって、細菌宿主細胞が、異種核酸を発現するベクターを含む、形質転換することと、(c)切断非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビボで、非内因性組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることとを含む方法(別名、BARner方法)を提供する。切断非組換えバクテリオファージゲノムは、第1の切断バクテリオファージゲノム断片および第2の切断バクテリオファージゲノム断片を含む。幾つかの実施形態において、異種核酸は、第1の切断バクテリオファージゲノム断片の3’末端に相同な5’フランキング領域、および第2の切断バクテリオファージゲノム断片の5’末端に相同な3’フランキング領域を含む。
切断非組換えバクテリオファージゲノムは、エレクトロポレーションにより細菌宿主細胞に形質転換され得る。細菌宿主細胞は、非天然細菌宿主細胞または天然細菌宿主細胞であり得る。幾つかの実施形態において、非内因性組換え系は、細菌宿主細胞に誘導される。ある種の実施形態において、非内因性組換え系は、アラビノースの添加により誘導される。
さらにまたはあるいは、幾つかの実施形態において、CRISPR酵素は、Cas1、Cas1B、Cas2、Cas3、Cas4、Cas5、Cas6、Cas7、Cas8、Cas9、Cas10、Csy1、Csy2、Csy3、Cse1、Cse2、Csc1、Csc2、Csa5、Csn2、Csm2、Csm3、Csm4、Csm5、Csm6、Cmr1、Cmr3、Cmr4、Cmr5、Cmr6、Csb1、Csb2、Csb3、Csx17、Csx14、Csx10、Csx16、CsaX、Csx3、Csx1、Csx15、Csf1、Csf2、Csf3およびCsf4からなる群から選択されるCasタンパク質である。
さらにまたはあるいは、幾つかの実施形態において、制限酵素は、AclI、HindIII、SspI、MluCI Tsp509I、PciI、AgeI、BspMI、BfuAI、SexAI、MluI、BceAI、HpyCH4IV、HpyCH4III、BaeI、BsaXI、AflIII、SpeI、BsrI、BmrI、BglII、AfeI、AluI、StuI、ScaI、ClaI、BspDI、PI−SceI、NsiI、AseI、SwaI、CspCI、MfeI、BssSI、BssSαI、Nb.BssSI、BmgBI、PmlI、DraIII、AleI、EcoP15I、PvuII、AlwNI、BtsIMutI、TspRI、NdeI、NlaIII、CviAII、FatI、MslI、FspEI、XcmI、BstXI、PflMI、BccI、NcoI、BseYI、FauI、SmaI、XmaI、TspMI、Nt.CviPII、LpnPI、AciI、SacII、BsrBI、MspI、HpaII、ScrFI、BssKI、StyD4I、BsaJI、BslI、BtgI、NciI、AvrII、MnlI、BbvCI、Nb.BbvCI、Nt.BbvCI、SbfI、Bpu10I、Bsu36I、EcoNI、HpyAV、BstNI、PspGI、StyI、BcgI、PvuI、BstUI、EagI、RsrII、BsiEI、BsiWI、BsmBI、Hpy99I、MspA1I、MspJI、SgrAI、BfaI、BspCNI、XhoI、PaeR7I、TliI、EarI、AcuI、PstI、BpmI、DdeI、SfcI、AflII、BpuEI、SmlI、AvaI、BsoBI、MboII、BbsI、XmnI、BsmI、Nb.BsmI、EcoRI、HgaI、AatII、ZraI、Tth111I、PflFI、PshAI、AhdI、DrdI、Eco53kI、SacI、BseRI、PleI、Nt.BstNBI、MlyI、HinfI、EcoRV、MboI、Sau3AI、DpnII、BfuCI、DpnI、BsaBI、TfiI、BsrDI、Nb.BsrDI、BbvI、BtsI、BtsαI、Nb.BtsI、BstAPI、SfaNI、SphI、SrfI、NmeAIII、NaeI、NgoMIV、BglI、AsiSI、BtgZI、HinP1I、HhaI、BssHII、NotI、Fnu4HI、Cac8I、MwoI、NheI、BmtI、SapI、BspQI、Nt.BspQI、BlpI、TseI、ApeKI、Bsp1286I、AlwI、Nt.AlwI、BamHI、FokI、BtsCI、HaeIII、PhoI、FseI、SfiI、NarI、KasI、SfoI、PluTI、AscI、EciI、BsmFI、ApaI、PspOMI、Sau96I、NlaIV、KpnI、Acc65I、BsaI、HphI、BstEII、AvaII、BanI、BaeGI、BsaHI、BanII、RsaI、CviQI、BstZ17I、BciVI、SalI、Nt.BsmAI、BsmAI、BcoDI、ApaLI、BsgI、AccI、Hpy166II、Tsp45I、HpaI、PmeI、HincII、BsiHKAI、ApoI、NspI、BsrFI、BsrFαI、BstYI、HaeII、CviKI−1、EcoO109I、PpuMI、I−CeuI、SnaBI、I−SceI、BspHI、BspEI、MmeI、TaqαI、NruI、Hpy188I、Hpy188III、XbaI、BclI、HpyCH4V、FspI、PI−PspI、MscI、BsrGI、MseI、PacI、PsiI、BstBI、DraI、PspXI、BsaWI、BsaAIおよびEaeIである。
別の態様において、本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、(a)無傷非組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主細胞に形質転換することであって、細菌宿主細胞が、異種核酸を発現するベクターを含む、形質転換することと、(b)無傷非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビボで、非内因性組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることとを含む方法(別名、BREDner方法)を提供する。幾つかの実施形態において、異種核酸は、無傷非組換えバクテリオファージゲノム中の第1の領域に相同な5’フランキング領域、および無傷非組換えバクテリオファージゲノム中の第2の領域に相同な3’フランキング領域を含み、そこで、無傷非組換えバクテリオファージゲノムの第1の領域は、5’から無傷非組換えバクテリオファージゲノムの第2の領域までに位置する。無傷非組換えバクテリオファージゲノムは、エレクトロポレーションにより細菌宿主細胞に形質転換され得る。細菌宿主細胞は、非天然細菌宿主細胞または天然細菌宿主細胞であり得る。幾つかの実施形態において、非内因性組換え系は、細菌宿主細胞に誘導される。ある種の実施形態において、非内因性組換え系は、アラビノースの添加により誘導される。
さらにまたはあるいは、本明細書に開示されたBREDnerおよびBARner方法の幾つかの実施形態において、組換え系は、誘導性プロモーター(例えば、araBプロモーター)に機能し得る形で連結されたλRedタンパク質Gam、ExoおよびBetaを含む。
本技術の方法の上記実施形態のいずれかにおいて、異種核酸は、約500〜1050塩基対または1050塩基対〜5kbの長さである。異種核酸は、生物発光タンパク質、蛍光タンパク質、化学発光タンパク質、またはそれらのいずれかの組み合わせをコードするオープンリーディングフレームを含み得る。生物発光タンパク質の例としては、エクオリン、ホタルルシフェエラーゼ、ウミシイタケルシフェラーゼ、赤色ルシフェラーゼ、luxABまたはナノルシフェラーゼが挙げられる。化学発光タンパク質の例としては、β−ガラクトシダーゼ、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)、またはアルカリホスファターゼが挙げられる。蛍光タンパク質の例としては、TagBFP、Azurite、EBFP2、mKalama1、Sirius、Sapphire、T−Sapphire、ECFP、Cerulean、SCFP3A、mTurquoise、単量体Midoriishi−Cyan、TagCFP、mTFP1、EGFP、Emerald、Superfolder GFP、単量体AzamiGreen、TagGFP2、mUKG、mWasabi、EYFP、Citrine、Venus、SYFP2、TagYFP、単量体Kusabira―Orange、mKOκ、mKO2、mOrange、mOrange2、mRaspberry、mCherry、dsRed、mStrawberry、mTangerine、tdTomato、TagRFP、TagRFP−T、mApple、mRuby、mPlum、HcRed−Tandem、mKate2、mNeptune、NirFP、TagRFP657、IFP1.4、iRFP、mKeima Red、LSS−mKate1、LSS−mKate2、PA−GFP、PAmCherry1、PATagRFP、Kaede(緑色)、Kaede(赤色)、KikGR1(緑色)、KikGR1(赤色)、PS−CFP2、PS−CFP2、mEos2(緑色)、mEos2(赤色)、PSmOrangeまたはDronpaが挙げられる。
さらにまたはあるいは、本明細書に開示された方法の幾つかの実施形態において、異種核酸のオープンリーディングフレームは、生物発光タンパク質、蛍光タンパク質、化学発光タンパク質またはそれらのいずれかの組み合わせの発現を誘導できる発現制御配列に機能し得る形態で連結される。発現制御配列は、誘導性プロモーターまたは構成的プロモーターであり得る。
配列番号1〜4または6のいずれか1つを含む核酸配列を有するゲノムを含む、組換えバクテリオファージも本明細書で提供される。異種核酸配列をバクテリオファージゲノムに組み込むためのキットも本明細書で開示される。
本方法のある種の態様、様式、実施形態、バリエーションおよび特徴は、本技術が実質的に理解されるように、様々なレベルの詳細により以下に記載されることが認識されるべきである。
ファージゲノムを改変する最も一般的に用いられる十分に確立された方法の一つは、その細菌宿主における相同組換えであり、これは、23bpなどの短い2つの相同DNA配列間で起こり得る(Alberts Bら、MOLECULAR BIOLOGY OF THE CELL、第5版、Garland Science,New York,NY(2007); Snyder Lら、MOLECULAR GENETICS OF BACTERIA、第4版、ASM Press、Washington,DC(2013))。相同組換えは、プラスミドとファージゲノムとの間で起こり、異種遺伝子をファージゲノムに組み込み、最終的にはファージ粒子にパッケージングすることを可能にする。しかし、相同組換えでは、ごく一部の組換え子孫ファージしか得られない。報告された組換え率は、10−10〜10−4の範囲である(Loessner M.ら、Appl Environ Microbiol 62:1133〜1140(1996);Le S.ら、PLoS One 8:e68562(2013);Mahichi F.ら、FEMS Microbiol Lett 295:211〜217(2009))。組換えバクテリオファージの生成の主な問題の一つは、このようなバクテリオファージを作り出すのに用いられる組換え方法が非効率的であり、その結果、組換えバクテリオファージゲノムの収率が低い場合が多いことである。大きなバクテリオファージゲノム(例えば、約40〜48kbまたは40〜48kb超)の形質転換は、多くの細菌株および種において禁止されており、形質転換後の生存バクテリオファージ粒子の単離を困難にしている。例えばChauthaiwaleら、Microbiological Reviews 56(4):577〜592(1992)を参照されたい。またVaughanら,Nature Biotechnology 14:309〜314(1996)も参照されたい。したがって、従来のファージスクリーニング法を用いた所望のクローンの発見は、労働集約的であり、予測不可能である。
本開示は、異種核酸配列をバクテリオファージゲノムに組み込み、異種核酸配列を発現する組換えバクテリオファージを単離する方法を提供する。本明細書に開示された方法は、従来のファージ改変法、例えば、エレクトロポレーションされたDNAのバクテリオファージリコンビニアリング(BRED)で観察されたものと比較して、異種核酸配列に関連する表現型特性を発現する、組換えバクテリオファージゲノムをより多く回収することを可能にする(Marinelli LJら、PLoS One 3:e3957(2008))。例えば、組換えバクテリオファージゲノムの全収率は、本技術のBAR4.0方法では約44%〜69%、および本技術のBAR3.0方法では2.78%であった。対照的に、BREDを使用すると、組換えバクテリオファージは生成されなかった(すなわち、組換えバクテリオファージゲノムの回収0%)。
本方法の実施において、分子生物学、タンパク質生化学、細胞生物学、微生物学および組換えDNAにおける多くの従来の技術が用いられる。例えば、Sambrook and Russell編(2001)Molecular Cloning:A Laboratory Manual、 第3版;the series Ausubelら編(2007)Current Protocols in Molecular Biology;the series Methods in Enzymology(Academic Press,Inc.,N.Y.);MacPhersonら(1991)PCR 1:A Practical Approach(IRL Press at Oxford University Press);MacPhersonら(1995)PCR 2:A Practical Approach;Harlow and Lane編(1999)Antibodies、A Laboratory Manual;Freshney(2005)Culture of Animal Cells:A Manual of Basic Technique、第5版;Gait編(1984)Oligonucleotide Synthesis;米国特許第4683195号;Hames and Higgins編(1984)Nucleic Acid Hybridization;Anderson(1999)Nucleic Acid Hybridization;Hames and Higgins編(1984)Transcription and Translation;Immobilized Cells and Enzymes(IRL Press(1986));Perbal(1984)A Practical Guide to Molecular Cloning; Miller and Calos編(1987)Gene Transfer Vectors for Mammalian Cells(Cold Spring Harbor Laboratory);Makrides編(2003)Gene Transfer and Expression in Mammalian Cells;Mayer and Walker編(1987)Immunochemical Methods in Cell and Molecular Biology(Academic Press, London);およびHerzenbergら編(1996)Weir‘s Handbook of Experimental Immunologyを参照されたい。
定義
他に定義されない限り、本明細書で用いられるすべての技術および科学用語は、全般的にこの技術が属する分野の当業者により一般に理解されるのと同様の意味を有する。本明細書および添付の特許請求の範囲において用いられる単数形「1つ(a、an)」および「その(the)」は、文脈が他のものを明らかに指示しない限り、複数の支持対象を含む。例えば、「細胞」の言及は、2つ以上の細胞の組み合わせなどを含む。一般に、本明細書で用いられる命名法、ならびに以下に記載される細胞培養、分子遺伝学、有機化学、分析化学、核酸化学、およびハイブリダイゼーションにおける実験室手順は、当技術分野で周知であり、一般に用いられるものである。
他に定義されない限り、本明細書で用いられるすべての技術および科学用語は、全般的にこの技術が属する分野の当業者により一般に理解されるのと同様の意味を有する。本明細書および添付の特許請求の範囲において用いられる単数形「1つ(a、an)」および「その(the)」は、文脈が他のものを明らかに指示しない限り、複数の支持対象を含む。例えば、「細胞」の言及は、2つ以上の細胞の組み合わせなどを含む。一般に、本明細書で用いられる命名法、ならびに以下に記載される細胞培養、分子遺伝学、有機化学、分析化学、核酸化学、およびハイブリダイゼーションにおける実験室手順は、当技術分野で周知であり、一般に用いられるものである。
本明細書で用いられる数値に関する用語「約」は、他に記載のない限り、または文脈から明白でない限り、数値のプラスマイナス1%、5%または10%(超または未満)の範囲に含まれる数値を含むと一般に解釈される(ただし、このような数値が、可能な値の0%未満または100%超である場合は除く)。
本明細書で用いられる「バクテリオファージ」または「ファージ」は、細菌に感染するウイルスを指す。バクテリオファージは、宿主生合成機構(すなわち、細菌に感染するウイルス)の一部またはすべてを利用することにより、細菌内部で増幅する、偏性細胞内寄生体である。様々なバクテリオファージが、様々な物質を含有し得るが、これらはすべて、核酸およびタンパク質を含有し、ある種の状況下で、脂質膜に封入され得る。ファージに応じて、核酸はDNAまたはRNAのいずれかであってよい(しかし、両方はない)。
本明細書で用いられる「発現」は、以下の1つ以上を含む:遺伝子の前駆体mRNAへの転写;成熟mRNAを産生するための前駆体mRNAのスプライシングおよび他のプロセシング;mRNAの安定化;成熟mRNAのタンパク質への翻訳(コドンの使用量およびtRNAの有用性を含む);ならびに適切な発現および機能に必要な場合、翻訳産物のグリコシル化および他の修飾。
本明細書で用いられる「発現制御配列」は、機能し得る形で連結されたコード配列の発現に影響を与えるのに必要なポリヌクレオチド配列を指す。発現制御配列は、核酸配列の転写、転写後事象、および翻訳を制御する配列である。発現制御配列としては、適切な転写開始、終結、プロモーターおよびエンハンサー配列;効率的RNAプロセシングシグナル、例えば、スプライシングおよびポリアデニル化シグナル;細胞質mRNAを安定化する配列;翻訳効率を増強する配列(例えば、リボソーム結合部位);タンパク質安定性を増強する配列;ならびに所望される場合、タンパク質分泌を増強する配列が挙げられる。このような制御配列の性質は、宿主生物に応じて異なり、原核生物において、このような制御配列は、一般にプロモーター、リボソーム結合部位および転写末端配列を含む。用語「制御配列」は、最低限、その存在が発現に必須である任意の構成要素を包含することが意図され、その存在が有利であるさらなる構成要素、例えば、リーダー配列も包含し得る。
本明細書で用いられる、「異種核酸配列」は、通常は生じないゲノムの位置に配置される任意の配列である。異種核酸配列は、バクテリオファージで天然に生じない配列を含み得るか、または異種核酸配列は、バクテリオファージで天然に見出されるが、ゲノムの通常は生じない位置に配置される配列のみを含む。幾つかの実施形態において、異種核酸配列は、天然ファージ配列ではない。ある種の実施形態において、異種核酸配列は、異なるファージ由来の天然ファージ配列である。他の実施形態において、異種核酸配列は、野生型ファージのゲノムで天然に生じる配列ではあるが、その後、天然に生じない別の部位に移動し、新しい部位においてその配列を異種配列にする。
「相同性」または「同一性」または「類似性」は、2つのペプチド間または2つの核酸分子間での配列類似性を指す。相同性は、比較のためにアラインメントされ得る各配列の位置を比較することによって決定され得る。比較される配列の位置が、同じ核酸塩基またはアミノ酸により占められている場合、分子はその位置で相同である。配列間の相同性の程度は、配列により共有されるマッチングまたは相同位置の数の関数である。ポリヌクレオチドまたはポリヌクレオチド領域(またはポリペプチドもしくはポリペプチド領域)は、別の配列に対して一定のパーセンテージ(例えば、少なくとも60%、65%、70%、75%、80%、85%、90%、95%、98%または99%)の「配列同一性」を有し、アラインメントされたとき、2つの配列を比較すると、そのパーセンテージの塩基(またはアミノ酸)が同一であることを意味する。このアラインメントおよびパーセント相同性または配列同一性は、当技術分野で公知のソフトウェアプログラムを用いて決定され得る。幾つかの実施形態において、デフォルトパラメーターがアラインメントに用いられる。1つのアライメントプログラムは、デフォルトパラメーターを用いるBLASTである。特に、プログラムは、以下のデフォルトパラメーターを用いるBLASTNおよびBLASTPである:遺伝子コード=標準;フィルター=なし;鎖=両方;カットオフ=60;期待値=10;マトリックス=BLOSUM62;記述=50配列:ソート=HIGH SCORE;データベース=非冗長、GenBank+EMBL+DDBJ+PDB+GenBank CDS翻訳+SwissProtein+SPupdate+PIR。これらのプログラムの詳細は、National Center for Biotechnology Informationで見出すことができる。生物学的に同等なポリヌクレオチドは、指定されたパーセント相同性を有し、同じまたは類似の生物活性を有するポリペプチドをコードするものである。2つの配列が、互いに40%未満の同一性または25%未満の同一性を共有する場合、それらは、「無関係」または「非相同性」とみなされる。
本明細書で用いられる「宿主細胞」は、ファージに感染させて、子孫ファージ粒子を生成することができる細菌細胞である。宿主細胞は、特定の種類のファージゲノムDNAからファージ粒子を形成できる。幾つかの実施形態において、ファージゲノムDNAは、宿主細胞をファージに感染させることにより、宿主細胞に導入される。幾つかの実施形態において、ファージゲノムDNAは、形質転換、エレクトロポレーションまたは任意の他の好適な技術を用いて宿主細胞に導入される。幾つかの実施形態において、ファージゲノムDNAは、宿主細胞に導入されたとき、実質的に純粋である。幾つかの実施形態において、ファージゲノムDNAは、宿主細胞に導入されたとき、ベクター中に存在する。宿主細胞の定義は、ファージによって異なり得る。例えば、大腸菌は、特定の種類のファージの天然宿主細胞であり得るが、肺炎桿菌はそうではない。
本明細書で用いられる用語「単離した」は、(天然であるかまたは実験的設定であるかどうかにかかわらず)最初に産生されたときに結合していた構成要素の少なくとも一部から分離された物質または実体を指す。単離した物質および/または実体は、それが最初に結合していた他の構成要素の少なくとも約10%、約20%、約30%、約40%、約50%、約60%、約70%、約80%、約90%またはそれ以上から分離され得る。幾つかの実施形態において、単離した物質および/または実体は、約80%超、約85%、約90%、約91%、約92%、約93%、約94%、約95%、約96%、約97%、約98%、約99%または約99%超純粋である。本明細書で用いられる物質は他の構成要素を実質的に含まない場合「純粋」である。
本明細書で用いられる「機能し得る形で連結された」は、発現制御配列が、目的の核酸に対して配置され、目的の核酸の転写を開始、調整または制御することを意味する。
本明細書で用いられる「ファージゲノム」は、天然に生じるファージゲノムおよびその誘導体を含む。一般に、誘導体は、天然に生じるファージと同じ宿主中で増幅する能力を有する。幾つかの実施形態において、天然に生じるファージゲノムと誘導体ファージゲノムとの間の唯一の違いは、(ゲノムが線状の場合)ファージゲノムの少なくとも一端または(ゲノムが環状の場合)ゲノムの少なくとも一点からのヌクレオチドの欠失および付加のうちの少なくとも1つである。
本明細書で用いられる用語「ポリヌクレオチド」または「核酸」は、非修飾または修飾RNAまたはDNAであり得る任意のRNAまたはDNAを意味する。ポリヌクレオチドとしては、一本鎖および二本鎖DNA、一本鎖および二本鎖領域の混合物であるDNA、一本鎖および二本鎖RNA、一本鎖および二本鎖領域の混合物であるRNA、ならびに一本鎖、またはより典型的には二本鎖、または一本鎖および二本鎖領域の混合物であり得るDNAおよびRNAを含むハイブリッド分子が挙げられるが、これらに限定されない。さらに、ポリヌクレオチドは、RNAもしくはDNAまたはRNAとDNAの両方を含む、3本鎖領域を指す。用語ポリヌクレオチドは、1つ以上の修飾塩基を含有するDNAまたはRNA、ならびに安定性または他の理由のために修飾された骨格を有するDNAまたはRNAも含む。
本明細書で用いられる用語「組換え」は、例えば、細胞もしくは核酸、タンパク質またはベクターに関して用いられる場合、細胞、核酸、タンパク質またはベクターが、異種核酸もしくはタンパク質の導入、または天然の核酸もしくはタンパク質の変更により修飾されているか、または物質がこのように修飾された細胞に由来することを示す。したがって、例えば、組換え細胞は、天然(非組換え)型の細胞では見出されない遺伝子を発現するか、またはさもなければ異常に発現される、不十分に発現される、またはまったく発現されない天然遺伝子を発現する。
本明細書で用いられる、生物のゲノム中の内因性核酸配列(またはその配列からコードされたタンパク質産物)は、この内因性核酸配列の発現が変更されるように、異種配列が内因性核酸配列に隣接して配置されている場合、本明細書において「組換え」とみなされる。この文脈において、異種配列がそれ自体が生物に内因性(同じ生物またはその子孫に由来する)または外因性(異なる生物またはその子孫に由来する)であるかどうかにかかわらず、異種配列は、内因性核酸配列に天然に隣接しない配列である。例として、プロモーター配列は、この遺伝子が変化した発現パターンを有するように、生物のゲノム中の遺伝子の天然プロモーターに(例えば、相同組換えにより)置換され得る。この遺伝子は、それが天然にフランキングする配列の少なくとも一部から分離されるため「組換え」である。核酸はまた、ゲノム中の対応する核酸で天然に生じない任意の修飾を含有する場合、「組換え」とみなされる。例えば、内因性コード配列は、例えば、ヒトの介入により人工的に導入される挿入、欠失または点変異を含有する場合「組換え」とみなされる。「組換え核酸」は、異種部位において宿主細胞染色体に組み込まれた核酸、およびエピソームとして存在する核酸構築物も含む。
本明細書で使用する「組換えバクテリオファージゲノム」は、異種核酸配列をバクテリオファージゲノムに挿入することにより遺伝的に修飾されたバクテリオファージゲノムである。「組換えバクテリオファージ」は、組換えバクテリオファージゲノムを含むバクテリオファージを意味する。幾つかの実施形態において、バクテリオファージゲノムは、規定された部位でゲノム中に異種核酸配列を導入する組換えDNA技術により修飾される。幾つかの実施形態において、異種核酸配列は、内因性ファージゲノムのヌクレオチドの対応する欠失なしに導入される。言い換えれば、塩基N1およびN2が、野生型バクテリオファージゲノムにおいて隣接している場合、異種核酸配列は、N1とN2との間に挿入される。したがって、得られる組換えバクテリオファージゲノムにおいて、異種核酸配列を、ヌクレオチドN1およびN2にフランキングする。幾つかの実施形態において、内因性ファージヌクレオチドは、異種核酸配列の挿入中に除去または置換される。例えば、幾つかの実施形態において、異種核酸配列は、除去される内因性ファージ配列の一部またはすべての代わりに挿入される。幾つかの実施形態において、内因性ファージ配列は、異種核酸配列の挿入部位(複数可)から離れたファージゲノムの位置から除去される。
本明細書で使用する用語「制限エンドヌクレアーゼ」および「制限酵素」は、細菌酵素を指し、その各々が、「制限部位」、「認識部位」または「二本鎖認識部位」として公知の特定のヌクレオチド配列でまたはその付近で二本鎖DNAを切断する。
本明細書で使用する用語「試料」は、対象から得られる臨床試料、または単離された生物を指す。ある種の実施形態において、試料は、生物学的源(すなわち、生物学的試料)、例えば、対象から採取された組織、体液、または生物から得られる。試料源としては、粘液、痰、気管支肺胞洗浄液(BAL)、気管支洗浄液(BW)、全血、体液、脳脊髄液(CSF)、尿、血漿、血清または組織が挙げられるが、これらに限定されない。
バクテリオファージ
バクテリオファージは、宿主生合成機構の一部またはすべてを利用することにより細菌内部で増幅する偏性細胞内寄生体である。ファージは、核酸およびタンパク質を含有し、脂質膜に覆われ得る。ファージに応じて、核酸ゲノムは、DNAまたはRNAのいずれかであり得るが、その両方ではなく、環状または線状形態のいずれかで存在し得る。ファージゲノムのサイズは、ファージに応じて異なる。最も単純なファージは、数千ヌクレオチドのサイズのみであるゲノムを有し、より複雑なファージは、そのゲノムに100000超、稀に1000000超のヌクレオチドを含有し得る。ファージ粒子の個々の種類のタンパク質の数および量はファージに応じて異なる。タンパク質は、感染時に機能し、環境ヌクレアーゼから核酸ゲノムを保護する。
バクテリオファージは、宿主生合成機構の一部またはすべてを利用することにより細菌内部で増幅する偏性細胞内寄生体である。ファージは、核酸およびタンパク質を含有し、脂質膜に覆われ得る。ファージに応じて、核酸ゲノムは、DNAまたはRNAのいずれかであり得るが、その両方ではなく、環状または線状形態のいずれかで存在し得る。ファージゲノムのサイズは、ファージに応じて異なる。最も単純なファージは、数千ヌクレオチドのサイズのみであるゲノムを有し、より複雑なファージは、そのゲノムに100000超、稀に1000000超のヌクレオチドを含有し得る。ファージ粒子の個々の種類のタンパク質の数および量はファージに応じて異なる。タンパク質は、感染時に機能し、環境ヌクレアーゼから核酸ゲノムを保護する。
ファージゲノムは、様々なサイズおよび形状(例えば、線状または環状)で出現する。多くのファージは、直径24nmから200nmまでサイズに幅がある。カプシドは、1つ以上のファージタンパク質の多くのコピーからなり、ファージゲノムの周囲の保護エンベロープとして作用する。多くのファージは、ファージカプシドに付着した尾部を有する。尾部は、ファージ核酸が感染中に通過する中空管である。尾部のサイズは、様々であり得、一部のファージは、尾部構造すらない。より複雑なファージでは、尾部は、細菌宿主細胞の感染中に収縮する収縮鞘に囲まれている。ファージは、尾部の末端に、基底薄層およびそれに付着する1つ以上の尾部繊維を有する。基底薄層および尾部繊維は、ファージの宿主細胞への結合に関与する。
溶菌性または毒性ファージは、細菌中でのみ増幅し得、ファージの生活環の最後で細菌宿主細胞を溶菌し得るファージである。溶菌性ファージの生活環は、暗黒期から始まる。暗黒期中、感染性ファージ粒子は、宿主細胞の内側においても、またはその外側においても発見できない。ファージ核酸は、宿主生合成機構を引き継ぎ、ファージ特異的mRNAおよびタンパク質が産生される。初期ファージmRNAは、ファージDNA合成、および宿主DNA、RNAおよびタンパク質生合成の遮断に必要とされる初期タンパク質をコードする。場合によって、初期タンパク質は、実際に宿主染色体を分解する。ファージDNAが作製された後、後期mRNAおよび後期タンパク質が作製される。後期タンパク質は、ファージを含む構造タンパク質および細菌細胞の溶菌に必要なタンパク質である。次の段階において、ファージ核酸および構造タンパク質が集められ、感染性ファージ粒子が細胞内に蓄積する。細菌は、ファージ溶菌性タンパク質の蓄積により溶菌を開始し、細胞内ファージ粒子が放出される。感染細胞ごとに放出される粒子数は、1000超と高くてよい。溶菌性ファージは、プラークアッセイにより列挙され得る。アッセイは、各プラークが、単一の感染性ファージから生じるように十分に低いファージ濃度で行われる。プラークを生じさせる感染性粒子は、PFU(プラーク形成単位)と呼ばれる。
溶原性ファージは、溶菌サイクルを通じて増幅し得るか、または宿主細胞の静止状態に入り得るファージである。静止状態において、ファージゲノムは、プロファージとして存在する(すなわち、それは、ファージを産生する可能性を有する)。多くの場合、ファージDNAは、実際に、宿主染色体に組み込まれ、宿主染色体とともに複製され、娘細胞に伝達される。プロファージを寄生させる宿主細胞は、プロファージの存在による悪影響を受けず、溶原状態をいつまでも持続することができる。溶原状態は、悪条件に曝されると終了し得る。溶原状態の終了を支持する条件としては、乾燥、紫外線または電離放射線への曝露、変異原性化学物質への曝露などが挙げられる。悪条件により、プロテアーゼ(RecAタンパク質)の産生、ファージ遺伝子の発現、逆組み込みプロセス、および溶菌の増大が生じ得る。
幾つかの実施形態において、ファージゲノムは、少なくとも5キロベース(kb)、少なくとも10kb、少なくとも15kb、少なくとも20kb、少なくとも25kb、少なくとも30kb、少なくとも35kb、少なくとも40kb、少なくとも45kb、少なくとも50kb、少なくとも55kb、少なくとも60kb、少なくとも65kb、少なくとも70kb、少なくとも75kb、少なくとも80kb、少なくとも85kb、少なくとも90kb、少なくとも95kb、少なくとも100kb、少なくとも105kb、少なくとも110kb、少なくとも115kb、少なくとも120kb、少なくとも125kb、少なくとも130kb、少なくとも135kb、少なくとも140kb、少なくとも145kb、少なくとも150kb、少なくとも175kb、少なくとも200kb、少なくとも225kb、少なくとも250kb、少なくとも275kb、少なくとも300kb、少なくとも325kb、少なくとも350kb、少なくとも375kb、少なくとも400kb、少なくとも425kb、少なくとも450kb、少なくとも475kbまたは少なくとも500kbの核酸を含む。
本技術のファージ改変方法
BAR3.0
一態様において、本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、(a)非組換えバクテリオファージゲノムとsgRNA−CRISP酵素複合体とを、インビトロで、sgRNA−CRISPR酵素複合体が非組換えバクテリオファージゲノム中のプロトスペーサー配列を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で接触させることと、(b)切断非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビトロで、組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で、組み換えることとを含む方法を提供する。切断非組換えバクテリオファージゲノムは、第1の切断バクテリオファージゲノム断片および第2の切断バクテリオファージゲノム断片を含む。幾つかの実施形態において、異種核酸は、第1の切断バクテリオファージゲノム断片の3’末端に相同な5’フランキング領域、および第2の切断バクテリオファージゲノム断片の5’末端に相同な3’フランキング領域を含む。幾つかの実施形態において、プロトスペーサー配列は、5’GCTTACGCAGAAGATGCAGA3’(配列番号5)である。
BAR3.0
一態様において、本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、(a)非組換えバクテリオファージゲノムとsgRNA−CRISP酵素複合体とを、インビトロで、sgRNA−CRISPR酵素複合体が非組換えバクテリオファージゲノム中のプロトスペーサー配列を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で接触させることと、(b)切断非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビトロで、組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で、組み換えることとを含む方法を提供する。切断非組換えバクテリオファージゲノムは、第1の切断バクテリオファージゲノム断片および第2の切断バクテリオファージゲノム断片を含む。幾つかの実施形態において、異種核酸は、第1の切断バクテリオファージゲノム断片の3’末端に相同な5’フランキング領域、および第2の切断バクテリオファージゲノム断片の5’末端に相同な3’フランキング領域を含む。幾つかの実施形態において、プロトスペーサー配列は、5’GCTTACGCAGAAGATGCAGA3’(配列番号5)である。
BAR3.0方法の幾つかの実施形態において、異種核酸の相同5’フランキング領域は、約20〜30塩基対(bps)、30〜40bps、40〜50bps、50〜60bps、60〜70bps、70〜80bps、80〜90bps、90〜100bps、100〜110bps、110〜120bps、120〜130bps、130〜140bps、140〜150bps、150〜160bps、160〜170bps、170〜180bps、180〜190bps、190〜200bps、200〜210bps、210〜220bps、220〜230bps、230〜240bps、240〜250bps、250〜260bps、260〜270bps、270〜280bps、280〜290bps、290〜300bps、300〜310bps、310〜320bps、320〜330bps、330〜340bps、340〜350bps、350〜360bps、360〜370bps、370〜380bps、380〜390bps、390〜400bps、400〜410bps、410〜420bps、420〜430bps、430〜440bps、440〜450bps、450〜460bps、460〜470bps、470〜480bps、480〜490bps、490〜500bps、500〜510bps、510〜520bps、520〜530bps、530〜540bps、540〜550bps、550〜560bps、560〜570bps、570〜580bps、580〜590bpsまたは590〜600bpsの長さを有する。
さらにまたはあるいは、BAR3.0方法の幾つかの実施形態において、異種核酸の相同3’フランキング領域は約20〜30塩基対(bps)、30〜40bps、40〜50bps、50〜60bps、60〜70bps、70〜80bps、80〜90bps、90〜100bps、100〜110bps、110〜120bps、120〜130bps、130〜140bps、140〜150bps、150〜160bps、160〜170bps、170〜180bps、180〜190bps、190〜200bps、200〜210bps、210〜220bps、220〜230bps、230〜240bps、240〜250bps、250〜260bps、260〜270bps、270〜280bps、280〜290bps、290〜300bps、300〜310bps、310〜320bps、320〜330bps、330〜340bps、340〜350bps、350〜360bps、360〜370bps、370〜380bps、380〜390bps、390〜400bps、400〜410bps、410〜420bps、420〜430bps、430〜440bps、440〜450bps、450〜460bps、460〜470bps、470〜480bps、480〜490bps、490〜500bps、500〜510bps、510〜520bps、520〜530bps、530〜540bps、540〜550bps、550〜560bps、560〜570bps、570〜580bps、580〜590bpsまたは590〜600bpsの長さを有する。
さらにまたはあるいは、幾つかの実施形態において、BAR3.0方法は、組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主中で増幅させることをさらに含む。例えば、細菌宿主は、エレクトロポレーションにより組換えバクテリオファージゲノムで形質転換され得る。細菌宿主は、非天然細菌宿主細胞または天然細菌宿主細胞であり得る。
さらにまたはあるいは、BAR3.0方法の幾つかの実施形態において、非組換えバクテリオファージゲノムは、T3、T7、M6、K11、F92、K1−5およびK1Fに対応する。BAR3.0方法のある種の実施形態において、非組換えバクテリオファージゲノムは、K1−5ファージに対応する。BAR3.0方法のある種の実施形態において、非組換えバクテリオファージゲノムは、ミオウイルス科、サイフォウイルス科、ポドウイルス科、リポスリックスウイルス科、ルディウイルス科、アンプラウイルス科、バイカウダウイルス科(Bucaudaviridae)、クラバウイルス科、コルチコウイルス科、シストウイルス科、フセロウイルス科、グロブロウイルス科、グッタウイルス科、イノウイルス科、レビウイルス科、ミクロウイルス科(Mircoviridae)、プラズマウイルス科およびテクティウイルス科からなる群から選択されるファージ群に対応する。組換えバクテリオファージゲノムの核酸配列は、配列番号3または配列番号4を含み得る。
BAR4.0
別の態様において、本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、(a)単一の第1の認識部位を含む非組換えバクテリオファージゲノムと第1の制限酵素とを、インビトロで、第1の制限酵素が、第1の認識部位を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で接触させることと、(b)切断非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビトロで、組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることとを含む方法を提供する。切断非組換えバクテリオファージゲノムは、第1の切断バクテリオファージゲノム断片および第2の切断バクテリオファージゲノム断片を含む。幾つかの実施形態において、異種核酸は、第1の切断バクテリオファージゲノム断片の3’末端に相同な5’フランキング領域、および第2の切断バクテリオファージゲノム断片の5’末端に相同な3’フランキング領域を含む。
別の態様において、本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、(a)単一の第1の認識部位を含む非組換えバクテリオファージゲノムと第1の制限酵素とを、インビトロで、第1の制限酵素が、第1の認識部位を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で接触させることと、(b)切断非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビトロで、組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることとを含む方法を提供する。切断非組換えバクテリオファージゲノムは、第1の切断バクテリオファージゲノム断片および第2の切断バクテリオファージゲノム断片を含む。幾つかの実施形態において、異種核酸は、第1の切断バクテリオファージゲノム断片の3’末端に相同な5’フランキング領域、および第2の切断バクテリオファージゲノム断片の5’末端に相同な3’フランキング領域を含む。
BAR4.0方法の幾つかの実施形態において、異種核酸の相同5’フランキング領域は、約20〜30塩基対(bps)、30〜40bps、40〜50bps、50〜60bps、60〜70bps、70〜80bps、80〜90bps、90〜100bps、100〜110bps、110〜120bps、120〜130bps、130〜140bps、140〜150bps、150〜160bps、160〜170bps、170〜180bps、180〜190bps、190〜200bps、200〜210bps、210〜220bps、220〜230bps、230〜240bps、240〜250bps、250〜260bps、260〜270bps、270〜280bps、280〜290bps、290〜300bps、300〜310bps、310〜320bps、320〜330bps、330〜340bps、340〜350bps、350〜360bps、360〜370bps、370〜380bps、380〜390bps、390〜400bps、400〜410bps、410〜420bps、420〜430bps、430〜440bps、440〜450bps、450〜460bps、460〜470bps、470〜480bps、480〜490bps、490〜500bps、500〜510bps、510〜520bps、520〜530bps、530〜540bps、540〜550bps、550〜560bps、560〜570bps、570〜580bps、580〜590bpsまたは590〜600bpsの長さを有する。
さらにまたはあるいは、BAR4.0方法の幾つかの実施形態において、異種核酸の相同3’フランキング領域は、約20〜30塩基対(bps)、30〜40bps、40〜50bps、50〜60bps、60〜70bps、70〜80bps、80〜90bps、90〜100bps、100〜110bps、110〜120bps、120〜130bps、130〜140bps、140〜150bps、150〜160bps、160〜170bps、170〜180bps、180〜190bps、190〜200bps、200〜210bps、210〜220bps、220〜230bps、230〜240bps、240〜250bps、250〜260bps、260〜270bps、270〜280bps、280〜290bps、290〜300bps、300〜310bps、310〜320bps、320〜330bps、330〜340bps、340〜350bps、350〜360bps、360〜370bps、370〜380bps、380〜390bps、390〜400bps、400〜410bps、410〜420bps、420〜430bps、430〜440bps、440〜450bps、450〜460bps、460〜470bpS、470〜480bps、480〜490bps、490〜500bps、500〜510bps、510〜520bps、520〜530bps、530〜540bps、540〜550bps、550〜560bps、560〜570bps、570〜580bps、580〜590bpsまたは590〜600の長さを有する。
さらにまたはあるいは、幾つかの実施形態において、BAR4.0方法は、組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主中で増幅させることをさらに含む。例えば、細菌宿主は、エレクトロポレーションにより組換えバクテリオファージゲノムで形質転換され得る。細菌宿主は、非天然細菌宿主細胞または天然細菌宿主細胞であり得る。
さらにまたはあるいは、BAR4.0方法の幾つかの実施形態において、非組換えバクテリオファージゲノムは、T3、T7、M6、K11、F92、K1−5およびK1Fに対応する。BAR4.0方法のある種の実施形態において、非組換えバクテリオファージゲノムは、大腸菌T7に対応する。BAR4.0方法のある種の実施形態において、非組換えバクテリオファージゲノムは、ミオウイルス科、サイフォウイルス科、ポドウイルス科、リポスリックスウイルス科、ルディウイルス科、アンプラウイルス科、バイカウダウイルス科(Bucaudaviridae)、クラバウイルス科、コルチコウイルス科、シストウイルス科、フセロウイルス科、グロブロウイルス科、グッタウイルス科、イノウイルス科、レビウイルス科、ミクロウイルス科(Mircoviridae)、プラズマウイルス科およびテクティウイルス科からなる群から選択されるファージ群に対応する。組換えバクテリオファージゲノムの核酸配列は、配列番号1、配列番号2、配列番号6または配列番号7を含み得る。
BARner
一態様において、本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、(a)非組換えバクテリオファージゲノムと、(i)sgRNA−CRISPR酵素複合体とを、インビトロで、sgRNA−CRISPR酵素複合体が非組換えバクテリオファージゲノム中のプロトスペーサー配列を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で、または(ii)制限酵素とを、インビトロで、制限酵素が非組換えバクテリオファージゲノム中の唯一の認識部位を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で接触させることと、(b)切断非組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主細胞に形質転換することであって、細菌宿主細胞が、異種核酸を発現するベクターを含む、形質転換することと、(c)切断非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビボで、非内因性組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることとを含む方法を提供する。切断非組換えバクテリオファージゲノムは、第1の切断バクテリオファージゲノム断片および第2の切断バクテリオファージゲノム断片を含む。幾つかの実施形態において、異種核酸は、第1の切断バクテリオファージゲノム断片の3’末端に相同な5’フランキング領域、および第2の切断バクテリオファージゲノム断片の5’末端に相同な3’フランキング領域を含む。切断非組換えバクテリオファージゲノムは、エレクトロポレーションにより細菌宿主細胞に形質転換され得る。細菌宿主細胞は、非天然細菌宿主細胞または天然細菌宿主細胞であり得る。幾つかの実施形態において、非内因性組換え系は、細菌宿主細胞に誘導される。ある種の実施形態において、非内因性組換え系は、アラビノースの添加により誘導される。
一態様において、本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、(a)非組換えバクテリオファージゲノムと、(i)sgRNA−CRISPR酵素複合体とを、インビトロで、sgRNA−CRISPR酵素複合体が非組換えバクテリオファージゲノム中のプロトスペーサー配列を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で、または(ii)制限酵素とを、インビトロで、制限酵素が非組換えバクテリオファージゲノム中の唯一の認識部位を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で接触させることと、(b)切断非組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主細胞に形質転換することであって、細菌宿主細胞が、異種核酸を発現するベクターを含む、形質転換することと、(c)切断非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビボで、非内因性組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることとを含む方法を提供する。切断非組換えバクテリオファージゲノムは、第1の切断バクテリオファージゲノム断片および第2の切断バクテリオファージゲノム断片を含む。幾つかの実施形態において、異種核酸は、第1の切断バクテリオファージゲノム断片の3’末端に相同な5’フランキング領域、および第2の切断バクテリオファージゲノム断片の5’末端に相同な3’フランキング領域を含む。切断非組換えバクテリオファージゲノムは、エレクトロポレーションにより細菌宿主細胞に形質転換され得る。細菌宿主細胞は、非天然細菌宿主細胞または天然細菌宿主細胞であり得る。幾つかの実施形態において、非内因性組換え系は、細菌宿主細胞に誘導される。ある種の実施形態において、非内因性組換え系は、アラビノースの添加により誘導される。
BARner方法の幾つかの実施形態において、異種核酸の相同5’フランキング領域は、約20〜30塩基対(bps)、30〜40bps、40〜50bps、50〜60bps、60〜70bps、70〜80bps、80〜90bps、90〜100bps、100〜110bps、110〜120bps、120〜130bps、130〜140bps、140〜150bps、150〜160bps、160〜170bps、170〜180bps、180〜190bps、190〜200bps、200〜210bps、210〜220bps、220〜230bps、230〜240bps、240〜250bps、250〜260bps、260〜270bps、270〜280bps、280〜290bps、290〜300bps、300〜310bps、310〜320bps、320〜330bps、330〜340bps、340〜350bps、350〜360bps、360〜370bps、370〜380bps、380〜390bps、390〜400bps、400〜410bps、410〜420bps、420〜430bps、430〜440bps、440〜450bps、450〜460bps、460〜470bps、470〜480bps、480〜490bps、490〜500bps、500〜510bps、510〜520bps、520〜530bps、530〜540bps、540〜550bps、550〜560bps、560〜570bps、570〜580bps、580〜590bpsまたは590〜600bpsの長さを有する。
さらにまたはあるいは、BARner方法の幾つかの実施形態において、異種核酸の相同3’フランキング領域は、約20〜30塩基対(bps)、30〜40bps、40〜50bps、50〜60bps、60〜70bps、70〜80bps、80〜90bps、90〜100bps、100〜110bps、110〜120bps、120〜130bps、130〜140bps、140〜150bps、150〜160bps、160〜170bps、170〜180bps、180〜190bps、190〜200bps、200〜210bps、210〜220bps、220〜230bps、230〜240bps、240〜250bps、250〜260bps、260〜270bps、270〜280bps、280〜290bps、290〜300bps、300〜310bps、310〜320bps、320〜330bps、330〜340bps、340〜350bps、350〜360bps、360〜370bps、370〜380bps、380〜390bps、390〜400bps、400〜410bps、410〜420bps、420〜430bps、430〜440bps、440〜450bps、450〜460bps、460〜470bps、470〜480bps、480〜490bps、490〜500bps、500〜510bps、510〜520bps、520〜530bps、530〜540bps、540〜550bps、550〜560bps、560〜570bps、570〜580bps、580〜590bpsまたは590〜600bpsの長さを有する。
さらにまたはあるいは、BARner方法の幾つかの実施形態において、非組換えバクテリオファージゲノムは、T3、T7、M6、K11、F92、K1−5およびK1Fに対応する。BARner方法のある種の実施形態において、非組換えバクテリオファージゲノムは、ミオウイルス科、サイフォウイルス科、ポドウイルス科、リポスリックスウイルス科、ルディウイルス科、アンプラウイルス科、バイカウダウイルス科(Bucaudaviridae)、クラバウイルス科、コルチコウイルス科、シストウイルス科、フセロウイルス科、グロブロウイルス科、グッタウイルス科、イノウイルス科、レビウイルス科、ミクロウイルス科(Mircoviridae)、プラズマウイルス科およびテクティウイルス科からなる群から選択されるファージ群に対応する。
BREDner
別の態様において、本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、(a)無傷非組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主細胞に形質転換することであって、細菌宿主細胞が、異種核酸を発現するベクターを含む、形質転換することと、(b)無傷非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビボで、非内因性組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることとを含む方法を提供する。幾つかの実施形態において、異種核酸は、無傷非組換えバクテリオファージゲノム中の第1の領域に相同な5’フランキング領域、および無傷非組換えバクテリオファージゲノム中の第2の領域に相同な3’フランキング領域を含み、そこで、無傷非組換えバクテリオファージゲノムの第1の領域は、5’から無傷非組換えバクテリオファージゲノムの第2の領域までに位置する。無傷非組換えバクテリオファージゲノムは、エレクトロポレーションにより細菌宿主細胞に形質転換され得る。細菌宿主細胞は、非天然細菌宿主細胞または天然細菌宿主細胞であり得る。幾つかの実施形態において、非内因性組換え系は、細菌宿主細胞に誘導される。ある種の実施形態において、非内因性組換え系は、アラビノースの添加により誘導される。
別の態様において、本開示は、組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、(a)無傷非組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主細胞に形質転換することであって、細菌宿主細胞が、異種核酸を発現するベクターを含む、形質転換することと、(b)無傷非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビボで、非内因性組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることとを含む方法を提供する。幾つかの実施形態において、異種核酸は、無傷非組換えバクテリオファージゲノム中の第1の領域に相同な5’フランキング領域、および無傷非組換えバクテリオファージゲノム中の第2の領域に相同な3’フランキング領域を含み、そこで、無傷非組換えバクテリオファージゲノムの第1の領域は、5’から無傷非組換えバクテリオファージゲノムの第2の領域までに位置する。無傷非組換えバクテリオファージゲノムは、エレクトロポレーションにより細菌宿主細胞に形質転換され得る。細菌宿主細胞は、非天然細菌宿主細胞または天然細菌宿主細胞であり得る。幾つかの実施形態において、非内因性組換え系は、細菌宿主細胞に誘導される。ある種の実施形態において、非内因性組換え系は、アラビノースの添加により誘導される。
BREDner方法の幾つかの実施形態において、異種核酸の相同5’フランキング領域は、約20〜30塩基対(bps)、30〜40bps、40〜50bps、50〜60bps、60〜70bps、70〜80bps、80〜90bps、90〜100bps、100〜110bps、110〜120bps、120〜130bps、130〜140bps、140〜150bps、150〜160bps、160〜170bps、170〜180bps、180〜190bps、190〜200bps、200〜210bps、210〜220bps、220〜230bps、230〜240bps、240〜250bps、250〜260bps、260〜270bps、270〜280bps、280〜290bps、290〜300bps、300〜310bps、310〜320bps、320〜330bps、330〜340bps、340〜350bps、350〜360bps、360〜370bps、370〜380bps、380〜390bps、390〜400bps、400〜410bps、410〜420bps、420〜430bps、430〜440bps、440〜450bps、450〜460bps、460〜470bps、470〜480bps、480〜490bps、490〜500bps、500〜510bps、510〜520bps、520〜530bps、530〜540bps、540〜550bps、550〜560bps、560〜570bps、570〜580bps、580〜590bpsまたは590〜600bpsの長さを有する。
さらにまたはあるいは、BREDner方法の幾つかの実施形態において、異種核酸の相同3’フランキング領域は、約20〜30塩基対(bps)、30〜40bps、40〜50bps、50〜60bps、60〜70bps、70〜80bps、80〜90bps、90〜100bps、100〜110bps、110〜120bps、120〜130bps、130〜140bps、140〜150bps、150〜160bps、160〜170bps、170〜180bps、180〜190bps、190〜200bps、200〜210bps、210〜220bps、220〜230bps、230〜240bps、240〜250bps、250〜260bps、260〜270bps、270〜280bps、280〜290bps、290〜300bps、300〜310bps、310〜320bps、320〜330bps、330〜340bps、340〜350bps、350〜360bps、360〜370bps、370〜380bps、380〜390bps、390〜400bps、400〜410bps、410〜420bps、420〜430bps、430〜440bps、440〜450bps、450〜460bps、460〜470bps、470〜480bps、480〜490bps、490〜500bps、500〜510bps、510〜520bps、520〜530bps、530〜540bps、540〜550bps、550〜560bps、560〜570bps、570〜580bps、580〜590bpsまたは590〜600bpsの長さを有する。
さらにまたはあるいは、BREDner方法の幾つかの実施形態において、無傷非組換えバクテリオファージゲノムは、T3、T7、M6、K11、F92、K1−5およびK1Fに対応する。BREDner方法のある種の実施形態において、非組換えバクテリオファージゲノムは、ミオウイルス科、サイフォウイルス科、ポドウイルス科、リポスリックスウイルス科、ルディウイルス科、アンプラウイルス科、バイカウダウイルス科(Bucaudaviridae)、クラバウイルス科、コルチコウイルス科、シストウイルス科、フセロウイルス科、グロブロウイルス科、グッタウイルス科、イノウイルス科、レビウイルス科、ミクロウイルス科(Mircoviridae)、プラズマウイルス科およびテクティウイルス科からなる群から選択されるファージ群に対応する。
さらにまたはあるいは、本明細書に開示された方法(BAR3.0、BAR4.0、BARnerおよびBREDner)の上記実施形態のいずれかにおいて、組換え系は、5’−3’エキソヌクレアーゼ、DNAポリメラーゼおよびDNAリガーゼを含む。一実施形態において、5’−3’エキソヌクレアーゼは、T5エキソヌクレアーゼであり、DNAポリメラーゼは、Phusion(登録商標)DNAポリメラーゼであり、DNAリガーゼは、Taqリガーゼである。本明細書に開示された方法の他の実施形態において、組換え系は、誘導性プロモーター(例えば、araBプロモーター)に機能し得る形で連結されたλRedタンパク質Gam、ExoおよびBetaを含む。本明細書に開示された方法のある種の実施形態において、組換え系は、RecET(RecE、RecT)オペロンを含む。本明細書に開示された方法の他の実施形態において、組換え系は、RecAリコンビナーゼまたはRecA機能獲得バリアントを含む。
生体試料内の細菌種の正確な同定は、細菌感染を治療するのに好適な療法の選択についての情報を提供する。本明細書に開示された方法を用いて生成される組換えバクテリオファージを使用して、生体試料(例えば、全血、血漿、血清)内に存在する細菌を同定することができる。このような方法は、生体試料と本明細書に開示された方法を用いて生成された組換えバクテリオファージとを接触させることと、組換えファージに感染した細菌宿主細胞の存在を検出することであって、組換えファージが、検出可能な遺伝子産物をコードする異種核酸を含む、検出することとを伴い、それにより、生体試料内に存在する細菌が同定される。
さらにまたはあるいは、本明細書に開示された方法を用いて生成される組換えバクテリオファージは、生体試料(例えば、全血、血漿、血清)内に存在する細菌の抗生物質感受性をプロファイリングする方法で用いられ得る。これらの方法は、(a)生体試料と抗生物質および本明細書に開示された方法を用いて生成された組換えバクテリオファージとを接触させることと、(b)組換えファージに感染した細菌宿主細胞の存在を検出することであって、そこで組換えファージが、検出可能な遺伝子産物をコードする異種核酸を含む、検出することと、(c)組換えファージに感染した細菌宿主細胞の数が未治療の対照試料で観察された数と比較して減少しているとき、抗生物質が、生体試料内に存在する細菌を阻害するのに有効であることを判断することとを含む。
CRISPR酵素
様々なCRISPR酵素が、本開示の開示されたBAR3.0およびBARner方法との併用に利用できる。幾つかの実施形態において、CRISPR酵素は、II型CRISPR酵素である。幾つかの実施形態において、CRISPR酵素は、DNA切断を触媒する。幾つかの実施形態において、CRISPR酵素は、RNA切断を触媒する。幾つかの実施形態において、CRISPR酵素は、任意のCas9タンパク質、例えば、任意の天然発生細菌Cas9、ならびにそれらの任意のバリアント、相同体またはオルソログである。Casタンパク質の非限定的例としては、Cas1、Cas1B、Cas2、Cas3、Cas4、Cas5、Cas6、Cas7、Cas8、Cas9(Csn1およびCsx12としても知られる)、Cas10、Csy1、Csy2、Csy3、Cse1、Cse2、Csc1、Csc2、Csa5、Csn2、Csm2、Csm3、Csm4、Csm5、Csm6、Cmr1、Cmr3、Cmr4、Cmr5、Cmr6、Csb1、Csb2、Csb3、Csx17、Csx14、Csx10、Csx16、CsaX、Csx3、Csx1、Csx15、Csf1、Csf2、Csf3、Csf4、それらの相同体またはそれらのバリアントが挙げられる。幾つかの実施形態において、CRISPR酵素は、プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)部位で標的核酸の両鎖を切断する。BAR3.0方法のある種の実施形態において、CRISPR酵素は、Cas9である。
様々なCRISPR酵素が、本開示の開示されたBAR3.0およびBARner方法との併用に利用できる。幾つかの実施形態において、CRISPR酵素は、II型CRISPR酵素である。幾つかの実施形態において、CRISPR酵素は、DNA切断を触媒する。幾つかの実施形態において、CRISPR酵素は、RNA切断を触媒する。幾つかの実施形態において、CRISPR酵素は、任意のCas9タンパク質、例えば、任意の天然発生細菌Cas9、ならびにそれらの任意のバリアント、相同体またはオルソログである。Casタンパク質の非限定的例としては、Cas1、Cas1B、Cas2、Cas3、Cas4、Cas5、Cas6、Cas7、Cas8、Cas9(Csn1およびCsx12としても知られる)、Cas10、Csy1、Csy2、Csy3、Cse1、Cse2、Csc1、Csc2、Csa5、Csn2、Csm2、Csm3、Csm4、Csm5、Csm6、Cmr1、Cmr3、Cmr4、Cmr5、Cmr6、Csb1、Csb2、Csb3、Csx17、Csx14、Csx10、Csx16、CsaX、Csx3、Csx1、Csx15、Csf1、Csf2、Csf3、Csf4、それらの相同体またはそれらのバリアントが挙げられる。幾つかの実施形態において、CRISPR酵素は、プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)部位で標的核酸の両鎖を切断する。BAR3.0方法のある種の実施形態において、CRISPR酵素は、Cas9である。
制限酵素
様々な制限酵素が、本開示の開示されたBAR4.0およびBARner方法との併用に利用できる。制限酵素の非限定的例としては、AclI、HindIII、SspI、MluCI Tsp509I、PciI、AgeI、BspMI、BfuAI、SexAI、MluI、BceAI、HpyCH4IV、HpyCH4III、BaeI、BsaXI、AflIII、SpeI、BsrI、BmrI、BglII、AfeI、AluI、StuI、ScaI、ClaI、BspDI、PI−SceI、NsiI、AseI、SwaI、CspCI、MfeI、BssSI、BssSαI、Nb.BssSI、BmgBI、PmlI、DraIII、AleI、EcoP15I、PvuII、AlwNI、BtsIMutI、TspRI、NdeI、NlaIII、CviAII、FatI、MslI、FspEI、XcmI、BstXI、PflMI、BccI、NcoI、BseYI、FauI、SmaI、XmaI、TspMI、Nt.CviPII、LpnPI、AciI、SacII、BsrBI、MspI、HpaII、ScrFI、BssKI、StyD4I、BsaJI、BslI、BtgI、NciI、AvrII、MnlI、BbvCI、Nb.BbvCI、Nt.BbvCI、SbfI、Bpu10I、Bsu36I、EcoNI、HpyAV、BstNI、PspGI、StyI、BcgI、PvuI、BstUI、EagI、RsrII、BsiEI、BsiWI、BsmBI、Hpy99I、MspA1I、MspJI、SgrAI、BfaI、BspCNI、XhoI、PaeR7I、TliI、EarI、AcuI、PstI、BpmI、DdeI、SfcI、AflII、BpuEI、SmlI、AvaI、BsoBI、MboII、BbsI、XmnI、BsmI、Nb.BsmI、EcoRI、HgaI、AatII、ZraI、Tth111I、PflFI、PshAI、AhdI、DrdI、Eco53kI、SacI、BseRI、PleI、Nt.BstNBI、MlyI、HinfI、EcoRV、MboI、Sau3AI、DpnII、BfuCI、DpnI、BsaBI、TfiI、BsrDI、Nb.BsrDI、BbvI、BtsI、BtsαI、Nb.BtsI、BstAPI、SfaNI、SphI、SrfI、NmeAIII、NaeI、NgoMIV、BglI、AsiSI、BtgZI、HinP1I、HhaI、BssHII、NotI、Fnu4HI、Cac8I、MwoI、NheI、BmtI、SapI、BspQI、Nt.BspQI、BlpI、TseI、ApeKI、Bsp1286I、AlwI、Nt.AlwI、BamHI、FokI、BtsCI、HaeIII、PhoI、FseI、SfiI、NarI、KasI、SfoI、PluTI、AscI、EciI、BsmFI、ApaI、PspOMI、Sau96I、NlaIV、KpnI、Acc65I、BsaI、HphI、BstEII、AvaII、BanI、BaeGI、BsaHI、BanII、RsaI、CviQI、BstZ17I、BciVI、SalI、Nt.BsmAI、BsmAI、BcoDI、ApaLI、BsgI、AccI、Hpy166II、Tsp45I、HpaI、PmeI、HincII、BsiHKAI、ApoI、NspI、BsrFI、BsrFαI、BstYI、HaeII、CviKI−1、EcoO109I、PpuMI、I−CeuI、SnaBI、I−SceI、BspHI、BspEI、MmeI、TaqαI、NruI、Hpy188I、Hpy188III、XbaI、BclI、HpyCH4V、FspI、PI−PspI、MscI、BsrGI、MseI、PacI、PsiI、BstBI、DraI、PspXI、BsaWI、BsaAIおよびEaeIが挙げられる。BAR4.0方法の幾つかの実施形態において、第1の制限酵素は、SwaIである。BAR4.0方法の他の実施形態において、第1の制限酵素は、NheIである。
様々な制限酵素が、本開示の開示されたBAR4.0およびBARner方法との併用に利用できる。制限酵素の非限定的例としては、AclI、HindIII、SspI、MluCI Tsp509I、PciI、AgeI、BspMI、BfuAI、SexAI、MluI、BceAI、HpyCH4IV、HpyCH4III、BaeI、BsaXI、AflIII、SpeI、BsrI、BmrI、BglII、AfeI、AluI、StuI、ScaI、ClaI、BspDI、PI−SceI、NsiI、AseI、SwaI、CspCI、MfeI、BssSI、BssSαI、Nb.BssSI、BmgBI、PmlI、DraIII、AleI、EcoP15I、PvuII、AlwNI、BtsIMutI、TspRI、NdeI、NlaIII、CviAII、FatI、MslI、FspEI、XcmI、BstXI、PflMI、BccI、NcoI、BseYI、FauI、SmaI、XmaI、TspMI、Nt.CviPII、LpnPI、AciI、SacII、BsrBI、MspI、HpaII、ScrFI、BssKI、StyD4I、BsaJI、BslI、BtgI、NciI、AvrII、MnlI、BbvCI、Nb.BbvCI、Nt.BbvCI、SbfI、Bpu10I、Bsu36I、EcoNI、HpyAV、BstNI、PspGI、StyI、BcgI、PvuI、BstUI、EagI、RsrII、BsiEI、BsiWI、BsmBI、Hpy99I、MspA1I、MspJI、SgrAI、BfaI、BspCNI、XhoI、PaeR7I、TliI、EarI、AcuI、PstI、BpmI、DdeI、SfcI、AflII、BpuEI、SmlI、AvaI、BsoBI、MboII、BbsI、XmnI、BsmI、Nb.BsmI、EcoRI、HgaI、AatII、ZraI、Tth111I、PflFI、PshAI、AhdI、DrdI、Eco53kI、SacI、BseRI、PleI、Nt.BstNBI、MlyI、HinfI、EcoRV、MboI、Sau3AI、DpnII、BfuCI、DpnI、BsaBI、TfiI、BsrDI、Nb.BsrDI、BbvI、BtsI、BtsαI、Nb.BtsI、BstAPI、SfaNI、SphI、SrfI、NmeAIII、NaeI、NgoMIV、BglI、AsiSI、BtgZI、HinP1I、HhaI、BssHII、NotI、Fnu4HI、Cac8I、MwoI、NheI、BmtI、SapI、BspQI、Nt.BspQI、BlpI、TseI、ApeKI、Bsp1286I、AlwI、Nt.AlwI、BamHI、FokI、BtsCI、HaeIII、PhoI、FseI、SfiI、NarI、KasI、SfoI、PluTI、AscI、EciI、BsmFI、ApaI、PspOMI、Sau96I、NlaIV、KpnI、Acc65I、BsaI、HphI、BstEII、AvaII、BanI、BaeGI、BsaHI、BanII、RsaI、CviQI、BstZ17I、BciVI、SalI、Nt.BsmAI、BsmAI、BcoDI、ApaLI、BsgI、AccI、Hpy166II、Tsp45I、HpaI、PmeI、HincII、BsiHKAI、ApoI、NspI、BsrFI、BsrFαI、BstYI、HaeII、CviKI−1、EcoO109I、PpuMI、I−CeuI、SnaBI、I−SceI、BspHI、BspEI、MmeI、TaqαI、NruI、Hpy188I、Hpy188III、XbaI、BclI、HpyCH4V、FspI、PI−PspI、MscI、BsrGI、MseI、PacI、PsiI、BstBI、DraI、PspXI、BsaWI、BsaAIおよびEaeIが挙げられる。BAR4.0方法の幾つかの実施形態において、第1の制限酵素は、SwaIである。BAR4.0方法の他の実施形態において、第1の制限酵素は、NheIである。
異種核酸
本明細書に開示された方法の幾つかの実施形態において、異種核酸は、生物発光タンパク質、蛍光タンパク質、化学発光タンパク質、またはそれらのいずれかの組み合わせをコードするオープンリーディングフレームを含む。幾つかの実施形態において、コードされた遺伝子産物(複数可)は、適当な刺激にさらされると検出可能なシグナルを発生し、得られたシグナルにより、組換えファージに感染した細菌宿主細胞の検出が可能になる。ある種の実施形態において、オープンリーディングフレームは、オープンリーディングフレームを含む異種核酸配列を含む組換えファージに感染した細菌宿主細胞をスクリーニングすることにより同定され得るマーカーとして働くタンパク質をコードする。このようなマーカーの例としては、例として、蛍光標識、発光標識、化学発光標識または酵素標識が挙げられるが、これらに限定されない。幾つかの実施形態において、異種核酸配列は、バクテリオファージで天然に見出されるが、ゲノムの通常は生じない位置に配置されている配列をさらに含む。
本明細書に開示された方法の幾つかの実施形態において、異種核酸は、生物発光タンパク質、蛍光タンパク質、化学発光タンパク質、またはそれらのいずれかの組み合わせをコードするオープンリーディングフレームを含む。幾つかの実施形態において、コードされた遺伝子産物(複数可)は、適当な刺激にさらされると検出可能なシグナルを発生し、得られたシグナルにより、組換えファージに感染した細菌宿主細胞の検出が可能になる。ある種の実施形態において、オープンリーディングフレームは、オープンリーディングフレームを含む異種核酸配列を含む組換えファージに感染した細菌宿主細胞をスクリーニングすることにより同定され得るマーカーとして働くタンパク質をコードする。このようなマーカーの例としては、例として、蛍光標識、発光標識、化学発光標識または酵素標識が挙げられるが、これらに限定されない。幾つかの実施形態において、異種核酸配列は、バクテリオファージで天然に見出されるが、ゲノムの通常は生じない位置に配置されている配列をさらに含む。
幾つかの実施形態において、異種核酸配列の長さは、少なくとも100塩基、少なくとも200塩基、少なくとも300塩基、少なくとも400塩基、少なくとも500塩基、少なくとも600塩基、少なくとも700塩基、少なくとも800塩基、少なくとも900塩基、少なくとも1キロ塩基(kb)、少なくとも1.1kb、少なくとも1.2kb、少なくとも1.3kb、少なくとも1.4kb、少なくとも1.5kb、少なくとも1.6kb、少なくとも1.7kb、少なくとも1.8kb、少なくとも1.9kb、少なくとも2.0kb、少なくとも2.1kb、少なくとも2.2kb、少なくとも2.3kb、少なくとも2.4kb、少なくとも2.5kb、少なくとも2.6kb、少なくとも2.7kb、少なくとも2.8kb、少なくとも2.9kb、少なくとも3.0kb、少なくとも3.1kb、少なくとも3.2kb、少なくとも3.3kb、少なくとも3.4kb、少なくとも3.5kb、少なくとも3.6kb、少なくとも3.7kb、少なくとも3.8kb、少なくとも3.9kb、少なくとも4.0kb、少なくとも4.5kb、少なくとも5.0kb、少なくとも5.5kb、少なくとも6.0kb、少なくとも6.5kb、少なくとも7.0kb、少なくとも7.5kb、少なくとも8.0kb、少なくとも8.5kb、少なくとも9.0kb、少なくとも9.5kb、少なくとも10kbまたはそれ以上である。ある種の実施形態において、異種核酸配列は、1kb、2kb、3kb、4kb、5kb、6kb、7kb、8kb、9kbおよび10kbからなる群から選択される長さ以下である長さを含む。幾つかの実施形態において、異種核酸配列は、ファージゲノムを含むファージ粒子にパッケージングされ得る異種核酸配列の最大長以下である長さを含む。
幾つかの実施形態において、異種核酸配列の長さは、100〜500塩基、200〜1000塩基、500〜1000塩基、500〜1500塩基、1kb〜2kb、1.5kb〜2.5kb、2.0kb〜3.0kb、2.5kb〜3.5kb、3.0kb〜4.0kb、3.5kb〜4.5kb、4.0kb〜5.0kb、4.5kb〜5.5kb、5.0kb〜6.0kb、5.5kb〜6.5kb、6.0kb〜7.0kb、6.5kb〜7.5kb、7.0kb〜8.0kb、7.5kb〜8.5kb、8.0kb〜9.0kb、8.5kb〜9.5kbまたは9.0kb〜10.0kbである。
幾つかの実施形態において、異種核酸配列は、内因性ファージゲノム配列の欠失なしにファージゲノムに挿入される。幾つかの実施形態において、異種核酸配列は、内因性ファージゲノム配列を置換する。幾つかの実施形態において、異種核酸配列は、ファージゲノムから以前に除去された内因性ファージゲノム配列を含む。
ある種の実施形態において、異種核酸配列は、異種核酸配列の長さより短い内因性ファージゲノム配列を置換する。したがって、幾つかの実施形態において、組換えファージゲノムの長さは、野生型ファージゲノムの長さよりも長い。幾つかの実施形態において、異種核酸配列は、異種核酸配列の長さより長い内因性ファージゲノム配列を置換する。したがって、幾つかの実施形態において、組換えファージゲノムの長さは、野生型ファージゲノムの長さよりも短い。ある種の実施形態において、異種核酸配列は、異種核酸配列の長さに等しい内因性ファージゲノム配列を置換する。
ある種の実施形態において、異種核酸のオープンリーディングフレームは、異種核酸を発現する組換えファージに感染した宿主細胞に目的の表現型を付与するタンパク質をコードする。幾つかの実施形態において、目的の表現型は、異種核酸のオープンリーディングフレームによりコードされた遺伝子産物の発現である。
ある種の実施形態において、異種核酸のオープンリーディングフレームは、オープンリーディングフレームの発現を誘導できる発現制御配列に機能し得る形で連結され、そこでオープンリーディングフレームは、生物発光タンパク質、蛍光タンパク質、化学発光タンパク質またはそれらのいずれかの組み合わせをコードする。幾つかの実施形態において、発現制御配列は、異種核酸配列内に位置する。他の実施形態において、発現制御配列は、内因性ファージゲノム配列に位置する。例えば、オープンリーディングフレームは、内因性ファージオープンリーディングフレーム配列の下流またはその代わりにファージゲノムに挿入され得る。幾つかの実施形態において、発現制御配列は、誘導性プロモーターまたは構成的プロモーターである。例えば、Djordjevic&Klaenhammer、Methods in Cell Science20(1):119〜126(1998)を参照されたい。誘導性プロモーターまたは構成的プロモーターは、内因性ファージプロモーター配列、非内因性ファージプロモーター配列または細菌宿主プロモーター配列であり得る。さらにまたはあるいは、幾つかの実施形態において、誘導性プロモーターは、pH感受性プロモーターまたは温度感受性プロモーターである。
幾つかの実施形態において、異種核酸配列は、第1のオープンリーディングフレームおよび少なくとも1つの補足的なオープンリーディングフレームを含む。ある種の実施形態において、第1および少なくとも1つの補足的なオープンリーディングフレームは、同じ発現制御配列に機能し得る形で連結される。幾つかの実施形態において、第1および少なくとも1つの補足的なオープンリーディングフレームは、異なる発現制御配列に機能し得る形で連結される。
蛍光タンパク質としては、青色/UV蛍光タンパク質(例えば、TagBFP、Azurite、EBFP2、mKalama1、Sirius、SapphireおよびT−Sapphire)、シアン蛍光タンパク質(例えば、ECFP、Cerulean、SCFP3A、mTurquoise、単量体Midoriishi−Cyan、TagCFPおよびmTFP1)、緑色蛍光タンパク質(例えば、EGFP、Emerald、Superfolder GFP、単量体Azami Green、TagGFP2、mUKGおよびmWasabi)黄色蛍光タンパク質(例えば、EYFP、Citrine、Venus、SYFP2およびTagYFP)、オレンジ色蛍光タンパク質(例えば、単量体Kusabira−Orange、mKOκ、mKO2、mOrangeおよびmOrange2)、赤色蛍光タンパク質(例えば、mRaspberry、mCherry、dsRed、mStrawberry、mTangerine、tdTomato、TagRFP、TagRFP−T、mAppleおよびmRuby)、遠赤色蛍光タンパク質(例えば、mPlum、HcRed−Tandem、mKate2、mNeptuneおよびNirFP)、近赤外蛍光タンパク質(例えば、TagRFP657、IFP1.4およびiRFP)、ロングストークスシフトタンパク質(例えば、mKeimaRed、LSS−mKate1およびLSS−mKate2)、光活性化蛍光タンパク質(例えば、PA−GFP、PAmCherry1およびPATagRFP)、光変換性蛍光タンパク質(例えば、Kaede(緑色)、Kaede(赤色)、KikGR1(緑色)、KikGR1(赤色)、PS−CFP2、PS−CFP2、mEos2(緑色)、mEos2(赤色)、PSmOrangeおよびPSmOrange)、フルオレセイン、ローダミンおよび光切り替え可能な蛍光タンパク質(例えば、Dronpa)が挙げられるが、これらに限定されない。
生物発光タンパク質の例としては、エクオリン(クラゲであるオワンクラゲ由来)およびルシフェラーゼ(ホタルおよびウミシイタケ由来のルシフェラーゼ、ナノルシフェラーゼ、赤色ルシフェラーゼ、luxABなどを含む)がある。また、これらのタンパク質は、タンパク質ドメインが密接に共局在化している場合にのみ光を発生する、2つの異なる機能ドメインに遺伝的に分離されている。これらのタンパク質両方の様々な発光スペクトルシフト変異誘導体は、過去数十年にわたって生成されており、生細胞内のマルチカラーイメージングおよび共局在化に用いられている。
化学発光タンパク質の例としては、β−ガラクトシダーゼ、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)およびアルカリホスファターゼが挙げられる。ペルオキシダーゼは、光を発生させる反応においてルミノールを酸化する過酸化物を生成し、アルカリホスファターゼは、基質分子からリン酸塩を除去し、これを不安定化して、発光をもたらすカスケードを開始する。
幾つかの実施形態において、異種核酸のオープンリーディングフレームは、抗体または他の結合分子で検出され得るエピトープを含む。例えば、エピトープを認識する抗体は、(例えば、化学発光または蛍光タンパク質の共有結合により)シグナル発生部分に直接連結され得るか、またはシグナル発生部分に直接連結された、少なくとも1つの追加の結合試薬、例えば、二次抗体を用いて検出され得る。幾つかの実施形態において、エピトープは、野生型バクテリオファージおよび細菌宿主細胞には存在しない。したがって、試料中のエピトープの検出は、異種核酸を含む組換えファージに感染した細菌宿主細胞の存在を示し、そこで異種核酸のオープンリーディングフレームは、エピトープを含む。
他の実施形態において、異種核酸のオープンリーディングフレームは、オープンリーディングフレームの発現産物が、オープンリーディングフレームによりコードされたポリペプチドまたはタンパク質に融合したタグ(例えば、ポリヒスチジン、FLAG、グルタチオンS−トランスフェラーゼ(GST)など)を含むように、ポリペプチドタグ配列を含む。
キット
本技術は、異種核酸配列をバクテリオファージゲノムに組み込むためのキットを提供する。配列番号1〜4または6のいずれか1つを含む核酸配列を有するゲノムを含む組換えバクテリオファージも本明細書において提供される。
本技術は、異種核酸配列をバクテリオファージゲノムに組み込むためのキットを提供する。配列番号1〜4または6のいずれか1つを含む核酸配列を有するゲノムを含む組換えバクテリオファージも本明細書において提供される。
一態様において、本技術のキットは、(a)複数のバクテリオファージゲノムを含有する1つ以上のコード化/標識バイアル、(b)組換え系、および(c)少なくとも1つのCRSPR酵素または制限酵素を含む。
幾つかの実施形態において、複数のバクテリオファージゲノムを含有する各コード化/標識バイアルは、異なるバクテリオファージ型に対応する。他の実施形態において、複数のバクテリオファージゲノムを含有する各コード化/標識バイアルは、同じバクテリオファージ型に対応する。幾つかの実施形態において、各ファージバイアルは、ファージバイアル中のバクテリオファージまたはバクテリオファージ株が感染する細菌の種類を識別する固有のコードが割り当てられる。固有のコードは、機械識別パターン、例えば、バーコード、QRコード(登録商標)、アルファニューメリックストリングまたはリーダーにより識別され得る任意の他のパターンによりコードされ得る。各固有のコードは、例えば、対応するファージ試料を保存するバイアルまたは容器のバーコードステッカーとして示され得る。幾つかの実施形態において、キットは、バクテリオファージゲノムの長期保存を可能にする条件下、例えば、バクテリオファージ特異的、制御温度、湿度およびpH条件下で保存される。
幾つかの実施形態において、キットは、5’−3’エキソヌクレアーゼ、DNAポリメラーゼおよびDNAリガーゼを含む、組換え系を含む。例えば、一実施形態において、5’−3’エキソヌクレアーゼは、T5エキソヌクレアーゼであり、DNAポリメラーゼは、Phusion(登録商標)DNAポリメラーゼであり、DNAリガーゼは、Taqリガーゼである。キットの他の実施形態において、組換え系は、誘導性プロモーター(例えば、araBプロモーター)に機能し得る形で連結されたλRedタンパク質Gam、ExoおよびBetaを含む。キットのある種の実施形態において、組換え系は、RecET(RecE、RecT)オペロンを含む。他の実施形態において、組換え系は、RecAリコンビナーゼまたはそのバリアントを含む。
さらにまたはあるいは、幾つかの実施形態において、キットはCas1、Cas1B、Cas2、Cas3、Cas4、Cas5、Cas6、Cas7、Cas8、Cas9、Cas10、Csy1、Csy2、Csy3、Cse1、Cse2、Csc1、Csc2、Csa5、Csn2、Csm2、Csm3、Csm4、Csm5、Csm6、Cmr1、Cmr3、Cmr4、Cmr5、Cmr6、Csb1、Csb2、Csb3、Csx17、Csx14、Csx10、Csx16、CsaX、Csx3、Csx1、Csx15、Csf1、Csf2、Csf3およびCsf4からなる群から選択される1つ以上のCRISPR酵素を含む。1つ以上のCRISPR酵素は、sgRNAに結合し得る。ある種の実施形態において、sgRNAは、プロトスペーサー配列5’GCTTACGCAGAAGATGCAGA3’(配列番号5)を標的とする。
さらにまたはあるいは、幾つかの実施形態において、キットはAclI、HindIII、SspI、MluCI Tsp509I、PciI、AgeI、BspMI、BfuAI、SexAI、MluI、BceAI、HpyCH4IV、HpyCH4III、BaeI、BsaXI、AflIII、SpeI、BsrI、BmrI、BglII、AfeI、AluI、StuI、ScaI、ClaI、BspDI、PI−SceI、NsiI、AseI、SwaI、CspCI、MfeI、BssSI、BssSαI、Nb.BssSI、BmgBI、PmlI、DraIII、AleI、EcoP15I、PvuII、AlwNI、BtsIMutI、TspRI、NdeI、NlaIII、CviAII、FatI、MslI、FspEI、XcmI、BstXI、PflMI、BccI、NcoI、BseYI、FauI、SmaI、XmaI、TspMI、Nt.CviPII、LpnPI、AciI、SacII、BsrBI、MspI、HpaII、ScrFI、BssKI、StyD4I、BsaJI、BslI、BtgI、NciI、AvrII、MnlI、BbvCI、Nb.BbvCI、Nt.BbvCI、SbfI、Bpu10I、Bsu36I、EcoNI、HpyAV、BstNI、PspGI、StyI、BcgI、PvuI、BstUI、EagI、RsrII、BsiEI、BsiWI、BsmBI、Hpy99I、MspA1I、MspJI、SgrAI、BfaI、BspCNI、XhoI、PaeR7I、TliI、EarI、AcuI、PstI、BpmI、DdeI、SfcI、AflII、BpuEI、SmlI、AvaI、BsoBI、MboII、BbsI、XmnI、BsmI、Nb.BsmI、EcoRI、HgaI、AatII、ZraI、Tth111I、PflFI、PshAI、AhdI、DrdI、Eco53kI、SacI、BseRI、PleI、Nt.BstNBI、MlyI、HinfI、EcoRV、MboI、Sau3AI、DpnII、BfuCI、DpnI、BsaBI、TfiI、BsrDI、Nb.BsrDI、BbvI、BtsI、BtsαI、Nb.BtsI、BstAPI、SfaNI、SphI、SrfI、NmeAIII、NaeI、NgoMIV、BglI、AsiSI、BtgZI、HinP1I、HhaI、BssHII、NotI、Fnu4HI、Cac8I、MwoI、NheI、BmtI、SapI、BspQI、Nt.BspQI、BlpI、TseI、ApeKI、Bsp1286I、AlwI、Nt.AlwI、BamHI、FokI、BtsCI、HaeIII、PhoI、FseI、SfiI、NarI、KasI、SfoI、PluTI、AscI、EciI、BsmFI、ApaI、PspOMI、Sau96I、NlaIV、KpnI、Acc65I、BsaI、HphI、BstEII、AvaII、BanI、BaeGI、BsaHI、BanII、RsaI、CviQI、BstZ17I、BciVI、SalI、Nt.BsmAI、BsmAI、BcoDI、ApaLI、BsgI、AccI、Hpy166II、Tsp45I、HpaI、PmeI、HincII、BsiHKAI、ApoI、NspI、BsrFI、BsrFαI、BstYI、HaeII、CviKI−1、EcoO109I、PpuMI、I−CeuI、SnaBI、I−SceI、BspHI、BspEI、MmeI、TaqαI、NruI、Hpy188I、Hpy188III、XbaI、BclI、HpyCH4V、FspI、PI−PspI、MscI、BsrGI、MseI、PacI、PsiI、BstBI、DraI、PspXI、BsaWI、BsaAIおよびEaeIからなる群から選択される1つ以上の制限酵素を含む。
さらにまたはあるいは、幾つかの実施形態において、キットは、天然または非天然細菌宿主細胞を含有するバイアルをさらに含む。幾つかの実施形態において、細菌宿主細胞は、大腸菌である。ある種の実施形態において、細菌宿主細胞は大腸菌株DH10Bである。
幾つかの実施形態において、キットは、実験ラン間の組換え系の何らかの変動を補正する陽性対照異種核酸配列をさらに含む。キットは、使用説明書、自動分析ソフトウェア、容器、パッケージ、例えば、商業販売などを対象とした包装材料も含み得る。
キットは、洗浄緩衝液および/または試薬、ハイブリダイゼーション緩衝液および/または試薬、標識緩衝液および/または試薬、ならびに検出手段の1つ以上をさらに含み得る。緩衝液および/または試薬は、キットを対象とした特定の検出技術用に通常最適化される。また、手順の様々なステップを行うためにこれらの緩衝液および試薬を使用するプロトコルも、キットに含まれ得る。キットのさらなる任意選択の構成要素としては、本明細書に開示された異種核酸によりコードされた遺伝子産物の発現培地、例えば、生物発光のためのニュートリエントおよび補因子を含有する培地、装置、例えば、生物発光を検出するために特定の波長の光を照射するように構成されたランプ、ならびに異種核酸の発現の程度を測定するための装置、例えば、フォトメーターまたはフォトディテクターが挙げられ得る。
さらにまたはあるいは、本明細書に開示されたキットは、複数の抗体を含有するコード化および標識バイアルも含み得る。
実施例
実施例1:T7ファージの本技術のBAR4.0ファージ改変方法
本実施例は、本技術のBAR4.0方法が、異種核酸をバクテリオファージゲノム(例えば、T7ファージゲノム)に組み込むのに、および異種核酸配列を発現する組換えバクテリオファージを単離するのに有用であることを示す。
実施例1:T7ファージの本技術のBAR4.0ファージ改変方法
本実施例は、本技術のBAR4.0方法が、異種核酸をバクテリオファージゲノム(例えば、T7ファージゲノム)に組み込むのに、および異種核酸配列を発現する組換えバクテリオファージを単離するのに有用であることを示す。
大きなDNA挿入物の細菌への形質転換は、多くの細菌株および種において従来禁止されていた(Piers D.ら、Microbiol Mol Biol Rev.80(3):523−43(2016))。従来の方法、例えば、BREDによりRecA+またはRecA−K12大腸菌株において組換えNanoLuc(登録商標)T3バクテリオファージおよび組換えNanoLuc(登録商標)T7バクテリオファージを生成する以前の試みは成功しなかった。実際に、BREDを使用すると、組換えファージは得られなかった。
BAR4.0は、インビトロ組換え方法であり、大きなDNA挿入物の細菌細胞への形質転換を可能にする。図1は、NanoLuc(登録商標)レポーター遺伝子の単一挿入および二重挿入を各々含有する、組換えT7ファージ株DLPECO1およびDLPECO2を生成するために使用した本技術のBAR4.0方法を概説している。DLPECO1およびDLPECO2ファージ株の完全ゲノム配列を図10および図11各々に示す。図17は、本明細書に開示されたBAR4.0方法を用いて、T7ファージのNheI部位付近に挿入された異種核酸配列(配列番号6)を示している。図18は、本明細書に開示されたBAR4.0方法を用いて、T7ファージのSwaI部位付近に挿入された異種核酸配列(配列番号7)を示している。
T7バクテリオファージDNAを、ZymoZRウイルスDNAキット(Cat番号D3015)(Zymo Research、Irvine、CA)を用いて清澄ファージ溶菌液から抽出した。T7ファージDNA約100ngを、製造業者仕様書に従って制限酵素SwaI(NEB R0604)(New England Biolabs、Ipswich、MA)で消化した。ウイルスゲノムに相同性の60bpに囲まれた、NanoLuc(登録商標)遺伝子を含有する、gBlock(Integrated DNA Technologies、Coralille、IAにより合成)を、Gibson Assembly(登録商標)(New England Biolabs、Ipswich、MA)によりSwaI切断部位に挿入した。
得られたT7/NanoLuc(登録商標)融合産物2μlをNEB10β細胞(NEB C3030K)(New England Biolabs、Ipswich、MA)にエレクトロポレーションした。細胞を、LB寒天上にプレーティングし、0.65%軟寒天をオーバーレイした。37℃で一晩インキュベートした後、単離したプラークを選択し、NanoLuc(登録商標)の挿入部位をフランキングするプライマーを用いてPCRによりNanoLuc(登録商標)の挿入についてスクリーニングした(図2)。アンプリコンのサイズの700bpの増幅は、SwaI制限部位でのT7ゲノムへのNanoLuc(登録商標)レポーター遺伝子の挿入の成功と相関していた。図2を参照されたい。細菌宿主細胞を組換えファージ株DLPECO1に感染させ、発光を様々な細菌宿主細胞濃度で10〜60分間測定することにより、NanoLuc(登録商標)の発生を評価した。図3は、NanoLuc(登録商標)の単一挿入を含有する組換えT7ファージ株により発生したNanoLuc(登録商標)シグナルの強度が、細菌細胞濃度および時間に依存していたことを示している。
SwaI部位でのNanoLuc(登録商標)の単一挿入を有する組換えT7ファージ(図4参照)を単離した後、上に概説したクローニングプロトコルを用いて、NanoLuc(登録商標)の第2の挿入をNheI制限部位(NEB R0131)(New England Biolabs、Ipswich、MA)で行った。37℃で一晩インキュベートした後、単離したプラークを選択し、NanoLuc(登録商標)の第2の挿入部位をフランキングする(すなわち、NanoLuc(登録商標)とファージゲノムDNAとの間の接合部に及ぶ)プライマーを用いてPCRによりNanoLuc(登録商標)の第2の挿入についてスクリーニングした。約1kbのPCR産物は、NheI制限部位でのT7ゲノムへのNanoLuc(登録商標)レポーター遺伝子の挿入の成功と相関していた。図5および図7を参照されたい。したがって、BAR4.0技術を用いて得られた組換えT7ファージゲノムの全収率は、約44%〜約69%であった。
細菌宿主細胞を組換えファージ株DLPECO2に感染させ、発光を様々な細菌宿主細胞濃度で10〜60分間測定することにより、NanoLuc(登録商標)の発生を評価した。図6は、NanoLuc(登録商標)の二重挿入を含有する組換えT7ファージ株により発生したNanoLuc(登録商標)シグナルの強度が、細菌細胞濃度および時間に依存していたことを示している。図8は、NanoLuc(登録商標)の二重挿入を含有する組換えT7ファージ株が、NanoLuc(登録商標)の単一挿入を含有する組換えT7ファージ株で観察されたものと比較して、有意に高い感受性と共に、有意に高い発光を示したことを示している。
NanoLuc(登録商標)の発生が、T7ファージに感染できる細菌宿主細胞に特異的であることを確実にするために、DH10B細胞(正常なT7宿主)を、T7に感染できない尿路病原性大腸菌株UPECと並行して感染させた。図9は、発光が、感染したDH10B細胞で検出されたが、発光がUPECでは検出されなかったことを示している。
これらの結果は、本技術の方法により、(a)目的の異種核酸配列を含有し、(b)目的の異種核酸配列に関連する表現型特性を発現する、組換えバクテリオファージゲノムが生成されることを示している。したがって、本明細書に開示された方法は、組換えバクテリオファージゲノムを生成するのに有用である。
実施例2:K1−5ファージにおける本技術のBAR3.0ファージ改変方法
本実施例は、本技術のBAR3.0方法が、異種核酸をバクテリオファージゲノム(例えば、K1−5ファージゲノム)に組み込むのに、および異種核酸配列を発現する組換えバクテリオファージを単離するのに有用であることを示す。
本実施例は、本技術のBAR3.0方法が、異種核酸をバクテリオファージゲノム(例えば、K1−5ファージゲノム)に組み込むのに、および異種核酸配列を発現する組換えバクテリオファージを単離するのに有用であることを示す。
K1−5ファージは、K1またはK5莢膜型のいずれかを有する様々な大腸菌株を感染させる、44385bpの末端冗長性の溶菌性バクテリオファージである。NanoLuc(登録商標)ルシフェラーゼ遺伝子(上流リボソーム結合部位(RBS)を有する)を、本明細書に開示されたBAR3.0方法を用いてK1−5ゲノムの3’末端に向けて挿入した。NanoLuc(登録商標)レポーターの意図されるゲノム挿入部位は、ヌクレオチド位置43913と43914との間であった。プロトスペーサー配列5’GCTTACGCAGAAGATGCAGA3’(配列番号5)を標的とするsgRNA−Cas9複合体は、K1−5ゲノムのヌクレオチド位置43898と43899との間の切断を誘導するように設計された。RBS/NanoLuc(登録商標)カセットはまた、sgRNA−Cas9複合体により除去されるK1−5ゲノムの3’末端に存在する核酸配列を含有していた。したがって、異種核酸挿入物は、5’(K1−5ゲノムのヌクレオチド位置43872〜43913)+(RBS)+(NanoLuc(登録商標))+(K1−5ゲノムのヌクレオチド位置43914〜44385)3’を含んでいた。図15は、本明細書に開示されたBAR3.0方法を用いてK1−5ファージに挿入された異種核酸配列(配列番号3)を示している。図16は、組換えNanoLuc(登録商標)K1−5ファージの完全ゲノム配列(配列番号4)を示している。
sgRNAを生成するために、標的特異的DNAオリゴヌクレオチドを合成し、EnGen(登録商標)sgRNA合成キット、化膿レンサ球菌(New England Biolabs、Ipswich、MA)の鋳型として使用した。標的特異的DNAオリゴヌクレオチドは、EnGen(登録商標)sgRNA反応混合物に供給される化膿レンサ球菌Cas9 Scaffold Oligoに相補的なT7プロモーター配列、標的プロトスペーサー配列、および14ヌクレオチドオーバーラップ配列を含有する。標的特異的DNAオリゴヌクレオチドを、EnGen2X sgRNA反応混合物(NTP、dNTP、化膿レンサ球菌Cas9 Scaffold Oligo)およびEnGen sgRNA酵素混合物(DNAおよびRNAポリメラーゼ)と室温で混合した。DNA合成および転写反応は、37℃で30分のインキュベーション期間中行われた。得られたsgRNAは、標的特異的/crRNA配列ならびにtracrRNAを含有していた。続いて、DNA汚染物を、DNaseI処理で実質的に除去し、sgRNAをRNAクリーンアップキットで精製した。
化膿レンサ球菌Cas9ヌクレアーゼ(New England Biolabs、Ipswich、MA)を、供給業者のプロトコルに従って、精製したsgRNAで共インキュベートした後、これを使用して、精製したK1−5ゲノムDNA約2.4μgを切断した。切断したK1−5ゲノムDNAをフェノール、クロロホルム、イソアミルアルコール抽出、次いで、エタノール沈殿により精製した。
切断したK1−5ゲノムDNA約2μgおよび挿入DNA200ngを、NEBuilder(登録商標)HiFi DNAアセンブリクローニングキット(New England Biolabs、Ipswich、MA)を用いてギブソンアセンブリ反応で結合した。反応が50℃で1時間行われた後、フェノール、クロロホルム、イソアミルアルコール抽出、次いで、エタノール沈殿により精製した。
この精製反応からの全DNA約440ngを、エレクトロポレーション(2.4kB、600Ω、25μF)により、非天然細菌宿主であるNEB(登録商標)10−βエレクトロコンピテント大腸菌(New England Biolabs、Ipswich、MA)に形質転換し、SOC培地(2%トリプトン、0.5%酵母抽出物、10mM Nacl、2.5mM KCl、10mM MgCl2、10mM MgSO4および20mMグルコース)950μlに37℃で約2時間回収した。上清(ファージ粒子を含有)を使用して、天然宿主を感染させることができるように、形質転換反応物を遠心分離した。上清約100μlを使用して、K5大腸菌100μlを感染させた。感染媒体を、0.65%LBトップ寒天3mLにプレーティングし、37℃で一晩インキュベートして、プラークを発現させた。
表現型分析。何百ものプラークが、一晩インキュベートした後、観察された。合計36個のプラークを10mMトリス−HCl+10mM MgSO4 20μLに採取した。これらの分離株を使用して、ログ相のK5大腸菌100μLをMgSO4の存在下で約1時間感染させた。図12は、分離株#30により発生したRLUが、任意の他の分離株よりも数倍高かったことを示している。高いRLU値が、実際に、組換えファージを示しているのか、または単に技術的ミスを示しているのかを判断するために、より大きなK5大腸菌培養物を分離株#30により長時間感染させることにより、分離株#30をさらに分析した。分離株#30感染媒体の残りを使用して、ログ相のK5大腸菌の5mL培養物を再感染させた。図13は、1.25時間後、ファージまたは細菌細胞のみを含有する試料と比較して、細菌細胞とファージ(分離株#30に由来)の両方を含有する試料のみRLUが高かったことを示している。BAR3.0技術を用いて得られた組換えK1−5ファージゲノムの全収率は、約2.78%であった。したがって、図13は、本明細書に開示されたBAR3.0方法により、組換えNanoLuc(登録商標)K1−5ファージゲノムが生成されることを示している。
遺伝子型分析。分離株#30プラークをPCRの鋳型として使用して、NanoLuc(登録商標)レポーター挿入物内部からファージゲノムに及ぶ組換え接合部の存在についてスクリーニングした。図14は、組換え接合部が、分離株#30由来の組換えK1−5ファージで検出されたが、野生型K1−5ファージでは検出されなかったことを示している。約916bpのPCR産物は、NanoLuc(登録商標)レポーター遺伝子の挿入の成功と相関していた。したがって、図14は、本明細書に開示されたBAR3.0方法により、組換えNanoLuc(登録商標)K1−5ファージゲノムが生成されることを示している。
これらの結果は、本技術の方法により、(a)目的の異種核酸配列を含有し、(b)目的の異種核酸配列に関連する表現型特性を発現する組換えバクテリオファージゲノムが生成されることを示している。したがって、本明細書に開示された方法は、組換えバクテリオファージゲノムを生成するのに有用である。
実施例3:本技術のBREDnerファージ改変方法
本実施例は、本技術のBREDner方法が、組換えバクテリオファージゲノムを生成するのに有用であることを示す。
本実施例は、本技術のBREDner方法が、組換えバクテリオファージゲノムを生成するのに有用であることを示す。
BREDnerプロトコルは、pKD46プラスミド(GenBank Acc.No.:AY048746.1)のλRedリコンビナーゼ系によりもたらされた相同組換え率の上昇を利用する。λRedリコンビナーゼ遺伝子(gam−bet−exo)の発現は、araBプロモーターに機能し得る形で連結される。細菌宿主細胞を、pKD46プラスミド、および両側が100〜500bpの相同ファージ配列にフランキングするナノルシフェラーゼ配列(例えば、NanoLuc(登録商標))を含む、第2のプラスミドで形質転換する。相同組換え系を、10mMアラビノースを添加することにより、pKD46プラスミドおよび第2のプラスミドを含有する形質転換された細菌宿主細胞に誘導する。
pKD46プラスミドと第2のプラスミドの両方を含有する細菌宿主細胞を中間−ログ相までアラビノースの存在下で培養した後、エレクトロポレーションでの使用のために、細胞を、1Mソルビトールで洗浄し100倍濃縮する。ファージDNA約100ngを、pKD46プラスミドと第2のプラスミドの両方を含有する細菌宿主細胞にエレクトロポレーションする。次いで、エレクトロポレーションした細胞は、対応するファージ宿主株を含有する0.65%トップ寒天にプレーティングする1時間前に回収できる。プレートを一晩インキュベートし、得られたプラークをPCRにより、またはNanoLuc(登録商標)の発生についてスクリーニングし、組換え発光ファージ用に選択する。
これらの結果は、本技術の方法により、(a)目的の異種核酸配列を含有し、(b)目的の異種核酸配列に関連する表現型特性を発現する組換えバクテリオファージゲノムが生成されることを示している。したがって、本明細書に開示された方法は、組換えバクテリオファージゲノムを生成するのに有用である。
実施例4:本技術のBARnerファージ改変方法
本実施例は、本技術のBARner方法が、組換えバクテリオファージゲノムを生成するのに有用であることを示す。
本実施例は、本技術のBARner方法が、組換えバクテリオファージゲノムを生成するのに有用であることを示す。
BARnerプロトコルは、制限酵素を使用して、目的の異種核酸配列の所望の挿入部位を囲むファージDNAに二本鎖切断を導入するBREDnerプロトコルの変形である。
BARnerプロトコルは、pKD46プラスミド(GenBank Acc.No.:AY048746.1)のλRedリコンビナーゼ系によりもたらされた相同組換え率の上昇を利用する。λRedリコンビナーゼ遺伝子(gam−bet−exo)の発現は、araBプロモーターに機能し得る形で連結される。細菌宿主細胞を、pKD46プラスミド、および両側が100〜500bpの相同ファージ配列にフランキングするナノルシフェラーゼ配列(例えば、NanoLuc(登録商標))を含む、第2のプラスミドで形質転換する。相同組換え系を、10mMアラビノースを添加することにより、pKD46プラスミドおよび第2のプラスミドを含有する形質転換された細菌宿主細胞に誘導する。pKD46プラスミドと第2のプラスミドの両方を含有する細菌宿主細胞を中間−ログ相までアラビノースの存在下で培養した後、細胞を、1Mソルビトールで洗浄し100倍濃縮する。ファージDNA約100ngを、適当な制限酵素で切断し、フェノール/クロロホルムを用いて精製した後、細胞にエレクトロポレーションする。エレクトロポレーションした細胞を、1時間回収し、適当な宿主株を含有する0.65%トップ寒天上にプレーティングする。プレートを一晩インキュベートし、得られたプラークをPCRにより、またはNanoLuc(登録商標)の発生についてスクリーニングし、組換え発光ファージ用に選択する。
これらの結果は、本技術の方法により、(a)目的の異種核酸配列を含有し、(b)目的の異種核酸配列に関連する表現型特性を発現する組換えバクテリオファージゲノムが生成されることを示している。したがって、本明細書に開示された方法は、組換えバクテリオファージゲノムを生成するのに有用である。
均等物
本技術は、本技術の個々の態様の単一の例として意図される、本出願に記載の特定の実施形態に関して限定されないものとする。当業者に明らかであるように、その精神および範囲から逸脱せずに本技術の多くの変形および変更が行われ得る。本明細書に列挙されたものに加えて、本技術の範囲内の機能的に均等な方法および装置は、前述の説明から当業者に明らかであろう。このような変形および変更は、本技術の範囲に含まれることが意図される。本技術は、特定の方法、試薬、化合物、組成物または生物系に限定されず、当然ながら変更され得ることが理解されるべきである。本明細書で用いられる用語は、特定の実施形態を説明することのみを目的としており、限定を意図するものではないことも理解されるべきである。
本技術は、本技術の個々の態様の単一の例として意図される、本出願に記載の特定の実施形態に関して限定されないものとする。当業者に明らかであるように、その精神および範囲から逸脱せずに本技術の多くの変形および変更が行われ得る。本明細書に列挙されたものに加えて、本技術の範囲内の機能的に均等な方法および装置は、前述の説明から当業者に明らかであろう。このような変形および変更は、本技術の範囲に含まれることが意図される。本技術は、特定の方法、試薬、化合物、組成物または生物系に限定されず、当然ながら変更され得ることが理解されるべきである。本明細書で用いられる用語は、特定の実施形態を説明することのみを目的としており、限定を意図するものではないことも理解されるべきである。
さらに、本開示の特徴または態様は、マーカッシュ群に関して説明される場合、当業者であれば、それにより開示が、マーカッシュ群の任意の個々のメンバーまたはメンバーのサブグループに関しても説明されることを認識されるであろう。
当業者に理解されるように、あらゆる目的のために、特に記述された説明を提供することに関して、本明細書で開示されるすべての範囲は、あらゆる可能な下位範囲およびその下位範囲の組み合わせも包含する。任意の列挙された範囲からは、少なくとも同等の2等分、3等分、4等分、5等分、10等分などに分解されている同じ範囲を十分に説明し、可能にしていることが容易に認識され得る。非限定的例として、本明細書で考察される各範囲は、低位3分の1、中位3分の1および高位3分の1などに容易に分解され得る。当業者に理解されるように、すべての言語、例えば、「最大」、「少なくとも」、「超」、「未満」などは、列挙された数字を含み、上で考察された下位範囲に実質的に分解され得る範囲を指す。最後に、当業者に理解されるように、範囲は、各個々のメンバーを含む。したがって、例えば、1〜3個の細胞を有する群は、1、2または3個の細胞を有する群を指す。同様に、1〜5個の細胞を有する群は、1、2、3、4または5個などの細胞を有する群を指す。
本明細書において参照または引用したすべての特許、特許出願、仮特許出願および刊行物は、本明細書の明確な教示と矛盾しない程度に、すべての図および表を含む、その全体が参照により組み込まれる。
Claims (42)
- 組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、
(a)非組換えバクテリオファージゲノムとsgRNA−CRISPR酵素複合体とをインビトロで、前記sgRNA−CRISPR酵素複合体が、前記非組換えバクテリオファージゲノム中のプロトスペーサー配列を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で接触させることと、
(b)前記切断非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビトロで、組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることと
を含む、方法。 - 前記切断非組換えバクテリオファージゲノムが、第1の切断バクテリオファージゲノム断片および第2の切断バクテリオファージゲノム断片を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記異種核酸が、前記第1の切断バクテリオファージゲノム断片の3’末端に相同な5’フランキング領域、および前記第2の切断バクテリオファージゲノム断片の5’末端に相同な3’フランキング領域を含む、請求項2に記載の方法。
- 前記組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主中で増幅させることをさらに含む、請求項1〜3のいずれか一項に記載の方法。
- 前記細菌宿主が、非天然細菌宿主細胞である、請求項4に記載の方法。
- 前記CRISPR酵素が、Cas1、Cas1B、Cas2、Cas3、Cas4、Cas5、Cas6、Cas7、Cas8、Cas9、Cas10、Csy1、Csy2、Csy3、Cse1、Cse2、Csc1、Csc2、Csa5、Csn2、Csm2、Csm3、Csm4、Csm5、Csm6、Cmr1、Cmr3、Cmr4、Cmr5、Cmr6、Csb1、Csb2、Csb3、Csx17、Csx14、Csx10、Csx16、CsaX、Csx3、Csx1、Csx15、Csf1、Csf2、Csf3およびCsf4からなる群から選択されるCasタンパク質である、請求項1〜5のいずれか一項に記載の方法。
- 前記プロトスペーサー配列が、5’GCTTACGCAGAAGATGCAGA3’(配列番号5)である、請求項1〜6のいずれか一項に記載の方法。
- 前記非組換えバクテリオファージゲノムがK1−5ファージに対応する、請求項1〜7のいずれか一項に記載の方法。
- 前記組換えバクテリオファージゲノムの前記核酸配列が、配列番号3を含む、請求項1〜8のいずれか一項に記載の方法。
- 前記組換えバクテリオファージゲノムの前記核酸配列が、配列番号4を含む、請求項1〜9のいずれか一項に記載の方法。
- 組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、
(a)単一の第1の認識部位を含む非組換えバクテリオファージゲノムと第1の制限酵素とを、インビトロで、前記第1の制限酵素が、前記第1の認識部位を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で接触させることと、
(b)前記切断非組換えバクテリオファージゲノムを異種核酸と、インビトロで、組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることと
を含む、方法。 - 前記切断非組換えバクテリオファージゲノムが、第1の切断バクテリオファージゲノム断片および第2の切断バクテリオファージゲノム断片を含む、請求項11に記載の方法。
- 前記異種核酸が、前記第1の切断バクテリオファージゲノム断片の3’末端に相同な5’フランキング領域、および前記第2の切断バクテリオファージゲノム断片の5’末端に相同な3’フランキング領域を含む、請求項12に記載の方法。
- 前記非組換えバクテリオファージゲノムが大腸菌T7に対応する、請求項11〜13のいずれか一項に記載の方法。
- 前記組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主細胞中で増幅させることをさらに含む、請求項11〜14のいずれか一項に記載の方法。
- 前記細菌宿主細胞が、天然細菌宿主細胞である、請求項15に記載の方法。
- 前記第1の制限酵素が、SwaIである、請求項11〜16のいずれか一項に記載の方法。
- 前記第1の制限酵素が、NheIである、請求項11〜16のいずれか一項に記載の方法。
- 前記異種核酸が、約500〜1050塩基対の長さである、請求項1〜18のいずれか一項に記載の方法。
- 前記組換え系が、5’−3’エキソヌクレアーゼ、DNAポリメラーゼおよびDNAリガーゼを含む、請求項1〜19のいずれか一項に記載の方法。
- 組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、
(a)非組換えバクテリオファージゲノムと
(i)sgRNA−CRISPR酵素複合体とを、インビトロで、前記sgRNA−CRISPR酵素複合体が前記非組換えバクテリオファージゲノム中のプロトスペーサー配列を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で、または
(ii)制限酵素とを、インビトロで、前記制限酵素が、前記非組換えバクテリオファージゲノム中の唯一の認識部位を切断して、切断非組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で、
接触させることと、
(b)前記切断非組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主細胞に形質転換することであって、前記細菌宿主細胞が、異種核酸を発現するベクターを含む、形質転換することと、
(c)前記切断非組換えバクテリオファージゲノムを前記異種核酸と、インビボで、非内因性組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることと
を含む、方法。 - 前記切断非組換えバクテリオファージゲノムが、第1の切断バクテリオファージゲノム断片および第2の切断バクテリオファージゲノム断片を含む、請求項21に記載の方法。
- 前記異種核酸が、前記第1の切断バクテリオファージゲノム断片の3’末端に相同な5’フランキング領域、および前記第2の切断バクテリオファージゲノム断片の5’末端に相同な3’フランキング領域を含む、請求項22に記載の方法。
- 前記CRISPR酵素が、Cas1、Cas1B、Cas2、Cas3、Cas4、Cas5、Cas6、Cas7、Cas8、Cas9、Cas10、Csy1、Csy2、Csy3、Cse1、Cse2、Csc1、Csc2、Csa5、Csn2、Csm2、Csm3、Csm4、Csm5、Csm6、Cmr1、Cmr3、Cmr4、Cmr5、Cmr6、Csb1、Csb2、Csb3、Csx17、Csx14、Csx10、Csx16、CsaX、Csx3、Csx1、Csx15、Csf1、Csf2、Csf3およびCsf4からなる群から選択されるCasタンパク質である、請求項21〜23のいずれか一項に記載の方法。
- 前記制限酵素が、AclI、HindIII、SspI、MluCI Tsp509I、PciI、AgeI、BspMI、BfuAI、SexAI、MluI、BceAI、HpyCH4IV、HpyCH4III、BaeI、BsaXI、AflIII、SpeI、BsrI、BmrI、BglII、AfeI、AluI、StuI、ScaI、ClaI、BspDI、PI−SceI、NsiI、AseI、SwaI、CspCI、MfeI、BssSI、BssSαI、Nb.BssSI、BmgBI、PmlI、DraIII、AleI、EcoP15I、PvuII、AlwNI、BtsIMutI、TspRI、NdeI、NlaIII、CviAII、FatI、MslI、FspEI、XcmI、BstXI、PflMI、BccI、NcoI、BseYI、FauI、SmaI、XmaI、TspMI、Nt.CviPII、LpnPI、AciI、SacII、BsrBI、MspI、HpaII、ScrFI、BssKI、StyD4I、BsaJI、BslI、BtgI、NciI、AvrII、MnlI、BbvCI、Nb.BbvCI、Nt.BbvCI、SbfI、Bpu10I、Bsu36I、EcoNI、HpyAV、BstNI、PspGI、StyI、BcgI、PvuI、BstUI、EagI、RsrII、BsiEI、BsiWI、BsmBI、Hpy99I、MspA1I、MspJI、SgrAI、BfaI、BspCNI、XhoI、PaeR7I、TliI、EarI、AcuI、PstI、BpmI、DdeI、SfcI、AflII、BpuEI、SmlI、AvaI、BsoBI、MboII、BbsI、XmnI、BsmI、Nb.BsmI、EcoRI、HgaI、AatII、ZraI、Tth111I、PflFI、PshAI、AhdI、DrdI、Eco53kI、SacI、BseRI、PleI、Nt.BstNBI、MlyI、HinfI、EcoRV、MboI、Sau3AI、DpnII、BfuCI、DpnI、BsaBI、TfiI、BsrDI、Nb.BsrDI、BbvI、BtsI、BtsαI、Nb.BtsI、BstAPI、SfaNI、SphI、SrfI、NmeAIII、NaeI、NgoMIV、BglI、AsiSI、BtgZI、HinP1I、HhaI、BssHII、NotI、Fnu4HI、Cac8I、MwoI、NheI、BmtI、SapI、BspQI、Nt.BspQI、BlpI、TseI、ApeKI、Bsp1286I、AlwI、Nt.AlwI、BamHI、FokI、BtsCI、HaeIII、PhoI、FseI、SfiI、NarI、KasI、SfoI、PluTI、AscI、EciI、BsmFI、ApaI、PspOMI、Sau96I、NlaIV、KpnI、Acc65I、BsaI、HphI、BstEII、AvaII、BanI、BaeGI、BsaHI、BanII、RsaI、CviQI、BstZ17I、BciVI、SalI、Nt.BsmAI、BsmAI、BcoDI、ApaLI、BsgI、AccI、Hpy166II、Tsp45I、HpaI、PmeI、HincII、BsiHKAI、ApoI、NspI、BsrFI、BsrFαI、BstYI、HaeII、CviKI−1、EcoO109I、PpuMI、I−CeuI、SnaBI、I−SceI、BspHI、BspEI、MmeI、TaqαI、NruI、Hpy188I、Hpy188III、XbaI、BclI、HpyCH4V、FspI、PI−PspI、MscI、BsrGI、MseI、PacI、PsiI、BstBI、DraI、PspXI、BsaWI、BsaAIおよびEaeIである、請求項21〜23のいずれか一項に記載の方法。
- 組換えバクテリオファージゲノムを生成する方法であって、
(a)無傷非組換えバクテリオファージゲノムを細菌宿主細胞に形質転換することであって、前記細菌宿主細胞が、異種核酸を発現するベクターを含む、形質転換することと、
(b)前記無傷非組換えバクテリオファージゲノムを前記異種核酸と、インビボで、非内因性組換え系の存在下で、組換えバクテリオファージゲノムを産生する条件下で組み換えることと
を含む、方法。 - 前記異種核酸が、
(a)前記無傷非組換えバクテリオファージゲノム中の第1の領域に相同な5’フランキング領域、および
(b)前記無傷非組換えバクテリオファージゲノム中の第2の領域に相同な3’フランキング領域
を含み、
前記無傷非組換えバクテリオファージゲノムの前記第1の領域が、5’から前記無傷非組換えバクテリオファージゲノムの前記第2の領域までに位置する、請求項26に記載の方法。 - 前記細菌宿主細胞が、非天然細菌宿主細胞または天然細菌宿主細胞である、請求項21〜27のいずれか一項に記載の方法。
- 前記非内因性組換え系が、前記細菌宿主細胞に誘導される、請求項21〜28のいずれか一項に記載の方法。
- 前記非内因性組換え系が、アラビノースの添加により誘導される、請求項29に記載の方法。
- 前記非内因性組換え系が、誘導性プロモーターに機能し得る形で連結された、λRedタンパク質Gam、ExoおよびBetaを含む、請求項21〜30のいずれか一項に記載の方法。
- 前記誘導性プロモーターがaraBである、請求項31に記載の方法。
- 前記異種核酸が、生物発光タンパク質、蛍光タンパク質、化学発光タンパク質またはそれらの任意の組合せをコードするオープンリーディングフレームを含む、請求項1〜8、または11〜32のいずれか一項に記載の方法。
- 前記異種核酸の前記オープンリーディングフレームが、前記生物発光タンパク質、前記蛍光タンパク質、前記化学発光タンパク質またはそれらの任意の組合せの発現を誘導できる発現制御配列に機能し得る形で連結される、請求項33に記載の方法。
- 前記生物発光タンパク質がエクオリン、ホタルルシフェエラーゼ、ウミシイタケルシフェラーゼ、赤色ルシフェラーゼ、luxABまたはナノルシフェラーゼである、請求項33または34に記載の方法。
- 前記化学発光タンパク質が、β−ガラクトシダーゼ、西洋ワサビペルオキシダーゼ(HRP)、またはアルカリホスファターゼである、請求項33または34に記載の方法。
- 前記蛍光タンパク質が、TagBFP、Azurite、EBFP2、mKalama1、Sirius、Sapphire、T−Sapphire、ECFP、Cerulean、SCFP3A、mTurquoise、単量体Midoriishi−Cyan、TagCFP、mTFP1、EGFP、Emerald、Superfolder GFP、単量体Azami Green、TagGFP2、mUKG、mWasabi、EYFP、Citrine、Venus、SYFP2、TagYFP、単量体Kusabira−Orange、mKOκ、mKO2、mOrange、mOrange2、mRaspberry、mCherry、dsRed、mStrawberry、mTangerine、tdTomato、TagRFP、TagRFP−T、mApple、mRuby、mPlum、HcRed−Tandem、mKate2、mNeptune、NirFP、TagRFP657、IFP1.4、iRFP、mKeima Red、LSS−mKate1、LSS−mKate2、PA−GFP、PAmCherry1、PATagRFP、Kaede(緑色)、Kaede(赤色)、KikGR1(緑色)、KikGR1(赤色)、PS−CFP2、PS−CFP2、mEos2(緑色)、mEos2(赤色)、PSmOrangeまたはDronpaである、請求項33または34に記載の方法。
- 前記発現制御配列が、誘導性プロモーターまたは構成的プロモーターである、請求項34〜37のいずれか一項に記載の方法。
- 前記CRISPR酵素が、Cas9である、請求項6に記載の方法。
- 前記組換えバクテリオファージゲノムの前記核酸配列が、配列番号2を含む、請求項11〜26のいずれか一項に記載の方法。
- 前記組換えバクテリオファージゲノムの前記核酸配列が、配列番号1を含む、請求項11〜26のいずれか一項に記載の方法。
- 前記組換えバクテリオファージゲノムの前記核酸配列が、配列番号6または配列番号7を含む、請求項11〜26のいずれか一項に記載の方法。
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