JP2019500041A - トリアシルグリセロールの部分的酵素加水分解 - Google Patents
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Abstract
【選択図】なし
Description
[0001]本出願は、その開示内容が参照により本明細書に組み込まれる、2015年12月30日出願の米国仮特許出願第62/272,833号明細書の出願日の利益を主張する。
[0002]本発明は、リパーゼ遺伝子をコードする核酸配列で形質転換された宿主細胞、ならびにリパーゼ遺伝子をコードする核酸配列で形質転換された宿主細胞を使用する方法に関する。リパーゼ遺伝子はその宿主細胞において発現されて、少なくとも1種類の長鎖多価不飽和脂肪酸を含むオイル中のトリアシルグリセロールのエステル結合を加水分解する能力が付与される。その宿主細胞を用いて、長鎖多価不飽和脂肪酸が豊富なオイル組成物の商業生産に有用であるように、十分な量のリパーゼを製造する。本発明はさらに、リパーゼ遺伝子をコードする核酸配列に関する。
[0003]オメガ−3脂肪酸などの長鎖多価不飽和脂肪酸(LC−PUFA)は、日常の生活および機能に不可欠である。例えば、血清トリグリセリドの低下に関する、シス−5,8,11,14,17−エイコサペンタエン酸(EPA)およびシス−4,7,10,13,16,19−ドコサヘキサエン酸(DHA)などのオメガ−3脂肪酸の有益な効果は、現在、十分に確立されている。これらの化合物は、他の心臓保護的利点についても知られている。実際に、アメリカ心臓協会(American Heart Association)も、オメガ−3脂肪酸が心血管および心疾患リスクを下げ得ることを報告している。LC−PUFAの他の利点は、炎症、神経変性疾患の予防および/または治療、および認知発達に関連する利点である。オメガ−3脂肪酸などのLC−PUFAが豊富な食事は、心疾患、癌、関節炎、アレルギー、および他の慢性疾患に有益な作用を有することも示されている。
[0007]ポリヌクレオチド配列を含む核酸分子で形質転換された宿主細胞であって、そのポリヌクレオチド配列が、オイル中のトリアシルグリセロールのエステル結合を加水分解するポリペプチドをコードする、宿主細胞、かかる宿主細胞を使用する方法、およびかかる宿主細胞を用いてリパーゼを生成するプロセスが本明細書において開示される。
[0012]添付の配列表に挙げられる核酸配列および推定アミノ酸翻訳配列は、37C.F.R§1.822で定義されるように、ヌクレオチド塩基およびアミノ酸の標準的な文字省略形を用いて示されている。DNA配列の場合には、それぞれの核酸配列の1つの鎖のみが示されているが、示される鎖を参照することによって、相補鎖が含まれると理解される。
[0016]本発明の特徴および利点は、以下の詳細な説明を読めば、当業者によってより容易に理解され得る。本発明の特定の特徴は、明確にするために上記および下記に記述され、個々の実施形態の文脈において、そのサブコンビネーションを形成するように組み合わせてもよいことは理解されよう。
[0024]配列同一性は、本明細書において、配列を比較することによって決定される、2つ以上のアミノ酸(ポリペプチドまたはタンパク質)配列または2つ以上の核酸(ポリヌクレオチド)配列との関係性として定義される。当技術分野において、「同一性」とは、場合により、かかる配列のストリング(string)間のマッチによって決定される、アミノ酸または核酸配列間の配列関連性の程度も意味する。2つのアミノ酸配列間の「類似性」は、アミノ酸配列および第2ポリペプチドの配列と、一方のポリペプチドのアミノ酸配列およびその保存アミノ酸置換を比較することによって決定される。「同一性」および「類似性」は、限定されないが、Computational Molecular Biology,Lesk,A.M.,ed.,Oxford University Press,New York,1988;Biocomputing:Informatics and Genome Projects,Smith,D.W.,ed.,Academic Press,New York,1993;Computer Analysis of Sequence Data,Part I,Griffin,A.M.,and Griffin,H.G.,eds.,Humana Press,New Jersey,1994;Sequence Analysis in Molecular Biology,von Heine,G.,Academic Press,1987;およびSequence Analysis Primer,Gribskov,M.and Devereux,J.,eds.,M Stockton Press,New York,1991;およびCarillo,H.,and Lipman,D.,SIAM J.Applied Math.,48:1073(1988)に記載の方法を含む既知の方法によって容易に計算することができる。
[試験方法]
[0052]分光光度的活性アッセイ:リパーゼの活性を決定するために、37℃での分光光度的アッセイを用い、そのアッセイではp−ニトロフェニルエステルが加水分解される。形成されたp−ニトロフェノールによって生じる410nmでの吸光度の増加が測定され、酵素活性と相関する。1活性単位(U)は、用いられる条件下にてp−ニトロフェノール1μmol/分を生成する酵素の量として定義される。したがって、適切な希釈液中に100mM MOPSバッファー、pH7.5、0.24mM p−ニトロフェニルエステルおよびCFE38μl/mlを含有する反応混合物、ならびにCFEの代わりにバッファーを含有するブランクを用い、吸光度の変化を5分間記録した。このΔabs/分に基づいて、容量活性(U/ml、等式1参照)およびタンパク質特異的活性(U/mg総タンパク質、等式2)を計算することができる。可溶性タンパク質画分を含有するCFE(可溶性(Soluble))および総タンパク質を含有するCFE(総(Total))を測定した。最初の事例では、酪酸p−ニトロフェニル(pNPB)を基質として使用した。
[0055]タンパク質−MSシーケンシングによって、2つの市販のカンジダ・ルゴサ(Candida rugosa)リパーゼ、Amano AYおよびBioCataysts Lipomod 034におけるアイソフォームを測定した。5CRアイソフォームを見つけ、両方のリパーゼにおいて同定された2つの主要なアイソフォームはCR Lip1およびCR Lip3であった。5つのアイソフォームすべての遺伝子を作成し、ピキア・パストリス(Pichia pastoris)における発現に関してDNA2.0(カリフォルニア州メンローパーク(Menlo Park,CA))によってコドン最適化した。培養上清への組換えリパーゼの分泌を可能にするサッカロミセス・セレビシエ(Saccharomyces cerevisiae)のα接合因子遺伝子に、リパーゼ遺伝子を融合した。天然タンパク質のエクスポートでα接合因子が切断された。1つはAOXプロモーター(pD912)を有し、もう1つはGAPプロモーター(pD915)を有する2種類の発現ベクターを作成し、個々にそれぞれが、ピキア・パストリス(Pichia pastoris)ヘクローニングされた。pD912において、対象の遺伝子は下流で、かつα因子と融合して、クローニングされ、強いメタノール誘導性AOXプロモーターの制御下にある。pD915において、対象の遺伝子は下流で、かつα因子と融合してクローニングされ、中程度に強い構成的GAPプロモーターの制御下にある。pD912およびpD915の両方に関して、zeocinが選択マーカーであり、ピキア(Pichia)ゲノムに組み込まれると、大腸菌(E.coli)における増殖に必要なpUC開始点は除去された。DNA構築物のうちの10をDNA2.0(カリフォルニア州メンローパーク)によって作成し、DNA2.0によって作成された2つのベクターそれぞれで使用した。ポジティブコントロールも使用した(DNA2.0からのpJ912_クチナーゼ)。
[0056]
ピキア・パストリス(P.pastoris)の形質転換のために、多量のプラスミドDNAが必要である。DNA2.0によって作成されたDNAは大腸菌(E.coli)において増殖された。コンピテントセルを作成した。得られたストックをグリセロールストックに変換し、残りの培養物を使用して、プラスミドDNAを抽出した。
[0057]キアゲン社(Qiagen)からの標準プロトコル(「Qiagen Plasmid Midi Kitを使用したプラスミドDNAの精製」)を用いて、残りの培養物からのプラスミド−DNAの抽出を達成した。得られたプラスミドDNAを0.8%アガロースゲル上で分析し、DNA濃度を測定した。その結果を表1に示す。
[0058]プラスミド直鎖化:増殖され、したがってより多い量で利用可能なプラスミドは、直鎖化しなければならなかった(直鎖状DNAは、ピキア・パストリス(Pichia pastoris)の形質転換に必要である)。直鎖化のために、以下の制限酵素が使用された:pD912−構築物には、SacIが使用され(インキュベーション温度37℃)、pD915−構築物には、SwaIが使用された(インキュベーション温度25℃)。
[0060]白金耳を使用して、グリセロールストックからのピキア・パストリス(Pichia pastoris)PPS9010細胞をYPD培地5mlに接種し、30℃および180rpmにて一晩インキュベートした。この培養物を使用して、新鮮YPD培地100mlをOD6000.15〜0.2に接種し、次いで、これを30℃および120rpmにてインキュベートした。OD600が1.3〜1.5に達したら、培養物を2本の50ml Falconチューブに満たし、500*gにて4℃で10分間遠心した。上清をデカントし、廃棄した。氷冷の滅菌、超純水50mlにペレットを再懸濁し、500*gにて4℃で5分間遠心した。この上清もデカントし、廃棄した。再び、氷冷の滅菌、超純水50mlにペレットを再懸濁し、500*gにて4℃で5分間遠心した。この上清もデカントし、廃棄した。次いで、この細胞を氷冷の滅菌1Mソルビトール20mlに再懸濁し、500*gにて4℃で5分間遠心した。再び、上清をデカントし、廃棄した。次いで、細胞を最後に、1Mソルビトール250μlに再懸濁した。
[0061]作成されたピキア(Pichia)コンピテント細胞を直鎖化プラスミドで形質転換し、上述のように大腸菌(E.coli)を使用してその量を増大した。ピキア(Pichia)コンピテント細胞100μlに、直鎖化プラスミド(2〜4μg)10μlを添加し、ギャップ2mmの電気穿孔キュベットに懸濁液を移した。細胞を氷上で5分間インキュベートし、1500V、200Ω、25μFで電気穿孔処理した。この混合物に、氷冷の1Mソルビトール1mlを添加し、混合物を30℃で1時間インキュベートした。次いで、混合物を1000*gで21℃にて5分間遠心し、上清をデカントした。上清の残りの液滴中にペレットを再懸濁した。200μg/mlのゼオシン(zeocin)を有するYPD培地5mlにそれぞれのコロニーを白金耳で移し、28℃および180rpmにて一晩インキュベートした。長期間貯蔵するために、培養液1mlを50%グリセロール0.5mlと混合し、室温で15分間振とうし、−80℃で貯蔵した。
[0062]トリブチリン寒天平板アッセイおよびSDS−PAGE分析をすべての試料で行い、試験されたすべてのクローンがトリブチリンに対する活性を示すこと、および予想されるリパーゼバンドが確認されることを検証した。培養物の活性は、基質としてp−NPDを用いて分光光度的活性アッセイによって測定された。試料のタンパク質含有量は、標準手順に従ってブラッドフォード(Bradford)試薬によって分析された。この結果から、CR Lip1クローンがリパーゼの高レベルの発現を有することが分かった。CR Lip5クローンのいずれについても、活性は検出されず、いくつかのCR Lip3クローンおよびCR Lip4クローンについては、中程度の活性が測定された。CR Lip2クローンの活性は一般に非常に低い。振とうフラスコ発現には、より一定の成長条件を受け、したがってより信頼できるデータを得られるように行う必要があった。
[0063]AOX−構築物の振とうフラスコ発現に関して、バッフルを備えた300mlフラスコ中のBMGY培地25mlに、グリセロールストックを用いて接種した。この前培養物を28℃で110rpmにて24時間インキュベートした。細胞を遠心(3000*g、5分、室温)することによって収集し、BMMY培地50mlに再懸濁し、バッフルおよび気泡プラグ(foam plug)を備えた1000mlフラスコに満たした。発現のために、培養物を28℃および110rpmにて96時間インキュベートした。誘導を維持するため、メタノール250μlを1日に1回添加した。96時間後、培養物を遠心し(3000*g、5分、4℃)、上清を別のチューブに移し、それを−20℃で保存した。
[0065]上述の分光光度的活性アッセイによって、培養物の上清の活性を測定した。基質として、p−NPD(p−ニトロフェニルデカノエート)を使用した。
[0067]比較のために、大腸菌(Escherichia coli)におけるリパーゼアイソフォームの発現も実施した。遺伝子構築物をDNA2.0から合成DNAとしてオーダーし、ネオマイシン耐性遺伝子を保持する発現ベクターにおいてクローニングし;対象の遺伝子は、pBADプロモーターを介してL−アラビノースによって誘導される。その結果を表4に示す。
[0068]魚油の加水分解について、実施例1に従って作成されたカンジダ・ルゴサ(Candida rugosa)リパーゼアイソフォームを試験するために、pH−スタット装置で滴定なしで40mlスケールにて、35℃での反応をセットアップした。Amanoから市販のカンジダ・ルゴサ(Candida rugosa)リパーゼAY−30(CRL11と呼ばれる)を比較用リパーゼとして使用した。CR Lip2およびCR Lip5の活性が乏しいため、CR Lip1、CR Lip3およびCR Lip4のみを使用した。魚油濃度は50%(v/v)であった。CR Lip1およびCR Lip4については、市販のリパーゼの0.1%(w/w)E/Sに相当する、8.6U(p−NPD活性に基づく)/魚油(g)を用いた。バッファーとして、50mM KPi(pH7.5)を使用した。酵素の量が少ないために、CR Lip3の酵素濃度は、6.8U/魚油(g)に制限され、CR Lip2の酵素濃度は、0.9U(市販のリパーゼの0.01%(w/w)E/Sに相当する)に制限された。
[0071]これらの実施例において、ゲオトリクム・カンジドゥム(Geotrichum candidum)由来のリパーゼ遺伝子をコードするポリヌクレオチド配列が同定され、上記の実施例1に記載のようにピキア・パストリス(Pichia pastoris)において発現された。Amanoから市販のカンジダ・ルゴサ(Candida rugosa)リパーゼAY−30(CRL11と呼ばれる)を比較用リパーゼとして使用した。
Claims (20)
- 配列番号1、配列番号2、または配列番号3と少なくとも75%の同一性を有するポリヌクレオチド配列を含む核酸分子で形質転換された宿主細胞であって、前記ポリヌクレオチド配列が、少なくとも1種類の長鎖多価不飽和脂肪酸(LC−PUFA)を含むオイル中のトリアシルグリセロールのエステル結合を加水分解するポリペプチドをコードする、宿主細胞。
- 前記宿主細胞が、ピキア・パストリス(Pichia pastoris)である、請求項1に記載の宿主細胞。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、配列番号1、配列番号2、または配列番号3と75〜99%の同一性を有する、請求項1または2に記載の宿主細胞。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、リパーゼ遺伝子をコードする、請求項1〜3のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、カンジダ・ルゴサ(Candida rugosa)リパーゼ1遺伝子をコードする、請求項1〜4のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、カンジダ・ルゴサ(Candida rugosa)リパーゼ3遺伝子をコードする、請求項1〜4のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、ゲオトリクム・カンジドゥム(Geotrichum candidum)リパーゼ2遺伝子をコードする、請求項1〜4のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- 前記長鎖多価不飽和脂肪酸が、エイコサペンタエン酸(EPA)、ドコサヘキサエン酸(DHA)、およびそれらの組み合わせを含む、請求項1〜7のいずれか一項に記載の宿主細胞
- 前記オイルが粗製または未精製オイルである、請求項1〜8のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- 前記オイルが海産オイルである、請求項1〜9のいずれか一項に記載の宿主細胞。
- 配列番号1、配列番号2、または配列番号3と少なくとも75%の同一性を有するポリヌクレオチド配列を含む核酸分子で形質転換された宿主細胞を使用する方法であって、前記ポリヌクレオチド配列が、少なくとも1種類の長鎖多価不飽和脂肪酸を含むオイル中のトリアシルグリセロールのエステル結合を加水分解するポリペプチドをコードする、方法。
- 前記宿主細胞が、ピキア・パストリス(Pichia pastoris)である、請求項11に記載の方法。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、配列番号1、配列番号2、または配列番号3と75〜99%の同一性を有する、請求項11または12に記載の方法。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、リパーゼ遺伝子をコードする、請求項11〜13のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、カンジダ・ルゴサ(Candida rugosa)リパーゼ1遺伝子をコードする、請求項11〜14のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、カンジダ・ルゴサ(Candida rugosa)リパーゼ3遺伝子をコードする、請求項11〜14のいずれか一項に記載の方法。
- 前記ポリヌクレオチド配列が、ゲオトリクム・カンジドゥム(Geotrichum candidum)リパーゼ2遺伝子をコードする、請求項11〜14のいずれか一項に記載の方法。
- 前記長鎖多価不飽和脂肪酸が、エイコサペンタエン酸(EPA)、ドコサヘキサエン酸(DHA)、およびそれらの組み合わせを含む、請求項11〜17のいずれか一項に記載の方法。
- 前記オイルが粗製または未精製オイルである、請求項11〜18のいずれか一項に記載の方法。
- 前記オイルが海産オイルである、請求項11〜19のいずれか一項に記載の方法。
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