JP2019011365A - 癌治療のための副次的遺伝子不活性化バイオマーカーおよび標的 - Google Patents
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Abstract
Description
特定の実施形態では、例えば以下が提供される:
(項目1)
対象における癌を治療する際に使用するための組成物であって、前記癌が、ハウスキーピング遺伝子中にホモ接合性欠失を有し、前記ハウスキーピング遺伝子が、機能的に冗長な相同体を有し、前記組成物が、前記冗長な相同体の活性を阻害するのに十分な量の前記冗長な相同体の阻害剤を含む、前記組成物。
(項目2)
前記阻害剤が、前記冗長な相同体の発現または活性を阻害する核酸であるか、前記冗長な相同体に特異的に結合する抗体であるか、または前記冗長な相同体の小分子阻害剤である、項目1に記載の組成物。
(項目3)
化学療法薬をさらに含む、項目1に記載の組成物。
(項目4)
前記化学療法薬が、DNAホメオスタシスに干渉する、項目3に記載の組成物。
(項目5)
a)前記ハウスキーピング遺伝子が、エノラーゼ1(ENO1)であり、前記冗長な相同体が、エンドラーゼ2(ENO2)であるか、
b)前記ハウスキーピング遺伝子が、ヘキソース−6−リン酸デヒドロゲナーゼ(H6PD)であり、前記冗長な相同体が、グルコース−6デヒドロゲナーゼ(G6PD)であるか、
c)前記ハウスキーピング遺伝子が、キネシンファミリーメンバー1B(KIF1B)であり、前記冗長な相同体が、キネシンファミリーメンバー1A(KIF1A)またはキネシンファミリーメンバー1C(KIF1C)であるか、
d)前記ハウスキーピング遺伝子が、ニコチンアミドヌクレオチドアデニルリルトランスフェラーゼ1(NMNAT1)であり、前記冗長な相同体が、ニコチンアミドヌクレオチドアデニリルトランスフェラーゼ2(NMNAT2)またはニコチンアミドヌクレオチドアデニリルトランスフェラーゼ3(NMNAT3)であるか、
e)前記ハウスキーピング遺伝子が、ユビキチン化因子E4B(UBE4B)であり、前記冗長な相同体が、ユビキチン化因子4A(UBE4A)であるか、
f)前記ハウスキーピング遺伝子が、アコニターゼ1(ACO1)であり、前記冗長な相同体が、アコニターゼ2(ACO2)またはアコニターゼ3(ACO3)であるか、
g)前記ハウスキーピング遺伝子が、kelch様9(KLHL9)であり、前記冗長な相同体が、kelch様13(KLHL13)であるか、
h)前記ハウスキーピング遺伝子が、パントテン酸キナーゼ1(PANK1)であり、前記冗長な相同体が、パントテン酸キナーゼ3(PANK3)であるか、または
i)前記ハウスキーピング遺伝子が、キナーゼファミリーメンバー20B(KIF20B)であり、前記冗長な相同体が、キナーゼファミリーメンバー20A(KIF20A)である、項目1に記載の組成物。
(項目6)
部分(a)の阻害剤が、ホスホノアセトヒドロキサム酸塩、またはその誘導体である、項目5に記載の組成物。
(項目7)
部分(b)の阻害剤が、デヒドロエピアンドロステロン、またはその誘導体である、項目5に記載の組成物。
(項目8)
部分(d)の阻害剤が、Np2AD、Np4AD、もしくはNap4AD、またはそれらの誘導体である、項目5に記載の組成物。
(項目9)
部分(f)の阻害剤が、フルオロクエン酸塩、またはその誘導体である、項目5に記載の組成物。
(項目10)
部分(h)の阻害剤が、ホパンテン酸塩、またはその誘導体である、項目5に記載の組成物。
(項目11)
細胞増殖を障害する、および/または細胞の細胞死を誘導する生体外方法であって、前記細胞が、ハウスキーピング遺伝子中にホモ接合性欠失を有し、前記ハウスキーピング遺伝子が、機能的に冗長な相同体を有し、前記細胞を、前記冗長な相同体の活性を阻害するのに十分な量の前記冗長な相同体の阻害剤と接触させることを含む、前記生体外方法。
(項目12)
対象における癌を治療する方法であって、前記癌が、ハウスキーピング遺伝子中にホモ接合性欠失を有し、前記ハウスキーピング遺伝子が、機能的に冗長な相同体を有し、前記冗長な相同体の活性を阻害するのに十分な量の前記冗長な相同体の阻害剤を、前記対象に投与することを含む、前記方法。
(項目13)
細胞増殖を障害する、および/または細胞の細胞死を誘導する方法であって、前記細胞が、ハウスキーピング遺伝子中にホモ接合性欠失を有し、前記ハウスキーピング遺伝子が、機能的に冗長な相同体を有し、前記細胞を、前記冗長な相同体の活性を阻害するのに十分な量の前記冗長な相同体の阻害剤と接触させることを含む、前記方法。
(項目14)
項目1に記載の方法によって治療された対象における治療計画の有効性を評価する生体外方法であって、前記対象由来の試料中の前記ハウスキーピング遺伝子の代謝経路の1つ以上の代謝産物のレベルを測定することを含み、前記代謝産物の蓄積が、前記治療が有効であることを示す、前記生体外方法。
(項目15)
前記ハウスキーピング遺伝子が、エノラーゼであり、前記代謝産物が、グリセリン酸塩である、項目14に記載の方法。
(項目16)
癌を有する対象を治療する際に使用するための組成物であって、前記癌の細胞が前記エノラーゼ1(ENO1)遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異を含むことが決定され、前記組成物が、有効量の解糖阻害剤を含む、前記組成物。
(項目17)
前記ヘテロ接合性変異が、前記ENO1遺伝子の1つのコピーの全てまたは一部の欠失である、項目16に記載の組成物。
(項目18)
前記ヘテロ接合性変異が、前記ENO1の1つのコピーを不活性化する置換または挿入である、項目16に記載の組成物。
(項目19)
前記欠失が、染色体1p36におけるヘテロ接合性の喪失を含む、項目17に記載の組成物。
(項目20)
前記解糖阻害剤が、小分子解糖阻害剤、またはそのプロドラッグを含む、項目16に記載の組成物。
(項目21)
前記解糖阻害剤が、エノラーゼ阻害剤である、項目16に記載の組成物。
(項目22)
前記エノラーゼ阻害剤が、小分子エノラーゼ阻害剤である、項目21に記載の組成物。
(項目23)
前記小分子エノラーゼ阻害剤が、D−タルトロン酸セミアルデヒドリン酸塩;3−アミノエノールピルビン酸−2−リン酸塩;ホスホノアセトヒドロキサム酸塩(PhAH);2−フルオロ−2−ホスホノアセトヒドロキサム酸塩;(3−ヒドロキシ−2−ニトロプロピル)ホスホン酸塩;(ニトロエチル)ホスホン酸塩;d−(ホスホノエチル)ニトロール酸塩;またはそれらのプロドラッグを含む、項目17に記載の組成物。
(項目24)
前記小分子エノラーゼ阻害剤が、PhAHまたはPhAHプロドラッグである、項目23に記載の組成物。
(項目25)
前記解糖阻害剤が、ピルビン酸キナーゼ、エノラーゼ、ホスホグリセリン酸ムターゼ、ホスホグリセリン酸キナーゼ、グリセルアルデヒドリン酸デヒドロゲナーゼ、トリオースリン酸イソメラーゼ、フルクトース二リン酸アルドラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、ホスホグルコースイソメラーゼ、またはヘキソキナーゼ阻害剤である、項目16に記載の組成物。
(項目26)
前記解糖阻害剤が、2−デオキシグルコース、6−アミノニコチンアミド、テトロース二リン酸、コニンギン酸、またはMJE3である、項目16に記載の組成物。
(項目27)
前記解糖阻害剤が、ENO1遺伝子の全てまたは一部に相補的な阻害性ポリヌクレオチドである、項目25に記載の組成物。
(項目28)
前記阻害性ポリヌクレオチドが、siRNAである、項目25に記載の組成物。
(項目29)
前記解糖阻害剤が、少なくとも第2の治療との併用投与を目的とする、項目16に記載の組成物。
(項目30)
第2の治療薬をさらに含む、項目29に記載の組成物。
(項目31)
前記第2の治療薬が、ホルモン治療薬、癌細胞標的治療薬、または化学療法薬を含む、項目30に記載の組成物。
(項目32)
前記第2の治療薬が、ミトコンドリア電子伝達鎖の阻害剤を含む、項目30に記載の組成物。
(項目33)
前記第2の治療薬が、ムブリチニブ、アンチマイシンA、ロテノン、またはオリゴマイシンを含む、項目30に記載の組成物。
(項目34)
前記第2の治療薬が、Hif1α転写因子の阻害剤を含む、項目30に記載の組成物。
(項目35)
前記治療薬が、PX−478を含む、項目30に記載の組成物。
(項目36)
前記第2の治療薬が、さらなる解糖経路阻害剤を含む、項目30に記載の組成物。
(項目37)
前記さらなる解糖経路阻害剤が、2−デオキシグルコース、6−アミノニコチンアミド、テトロース二リン酸、コニンギン酸、またはMJE3である、項目36に記載の組成物。
(項目38)
前記癌が、口腔癌、口腔咽頭癌、鼻咽頭癌、呼吸器癌、泌尿生殖器癌、胃腸癌、中枢または末梢神経系組織癌、内分泌もしくは神経内分泌癌または造血細胞癌、神経膠腫、肉腫、癌腫、リンパ腫、黒色腫、線維腫、髄膜腫、脳癌、口腔咽頭癌、鼻咽頭癌、腎癌、胆道癌、褐色細胞腫、膵島細胞癌、リ−フラウメニ腫瘍、甲状腺癌、副甲状腺癌、下垂体腫瘍、副腎腫瘍、骨原性肉種、多発性神経内分泌I型およびII型腫瘍、乳癌、肺癌、頭頸部癌、前立腺癌、食道癌、気道癌、肝癌、膀胱癌、胃癌、膵癌、卵巣癌、子宮癌、子宮頸癌、精巣癌、大腸癌、直腸癌、または皮膚癌である、項目16に記載の組成物。
(項目39)
前記癌が、膠芽細胞腫、希突起神経膠腫、または大細胞神経内分泌肺腫瘍である、項目16に記載の組成物。
(項目40)
前記癌が、転移性癌である、項目16に記載の組成物。
(項目41)
前記癌が、少なくとも第1の化学療法に抵抗性である、項目16に記載の組成物。
(項目42)
癌を有する対象を治療するための方法であって、前記癌の細胞が、前記エノラーゼ1(ENO1)遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異を含むことが決定され、前記方法が、解糖阻害剤を前記対象に投与することを含む、前記方法。
(項目43)
解糖阻害剤治療に癌を有する対象を選択する生体外方法であって、前記対象の癌細胞が、前記エノラーゼ1(ENO1)遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異を含むかを決定することを含み、前記癌細胞が前記ヘテロ接合性変異を含む場合、前記対象が、解糖阻害剤治療に選択される、前記生体外方法。
(項目44)
解糖阻害剤治療に癌を有する対象を選択する生体外方法であって、
(a)前記対象の癌細胞が、前記エノラーゼ1(ENO1)遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異を含むかを決定することと、
(b)前記対象の癌細胞が前記ヘテロ接合性変異を含む場合、解糖阻害剤治療のために対象を選択することと、を含む、前記生体外方法。
(項目45)
癌を有する対象における解糖阻害剤治療に対する応答を予測する生体外方法であって、前記対象の癌細胞が、前記エノラーゼ1(ENO1)遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異を含むかを決定することを含み、前記癌細胞が前記ヘテロ接合性変異を含む場合、前記対象が解糖阻害剤治療に対する好ましい応答を有することが予測される、前記生体外方法。
(項目46)
癌を有する対象における解糖阻害剤治療に対する応答を予測する生体外方法であって、(a)前記対象の癌細胞が、前記エノラーゼ1(ENO1)遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異を含むかを決定することと、
(b)前記対象由来の癌細胞が前記ヘテロ接合性変異を含む場合、前記対象を、解糖阻害剤治療に対する好ましい応答を有することが予測される対象として特定するか、または前記対象由来の癌細胞が前記ヘテロ接合性変異を含まない場合、前記対象を、解糖阻害剤治療に対する好ましい応答を有することが予測されない対象として特定することと、を含む、前記生体外方法。
(項目47)
前記解糖阻害剤治療が、エノラーゼ阻害剤治療である、項目43〜46のいずれか1項に記載の方法。
(項目48)
前記ヘテロ接合性変異が、ENO1の1つのコピーの全てまたは一部の欠失である、項目43〜46のいずれか1項に記載の方法。
(項目49)
前記対象の癌細胞が、前記エノラーゼ1(ENO1)遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異を含むかを報告することをさらに含む、項目43〜46のいずれか1項に記載の方法。
(項目50)
前記報告が、書面による報告書または電子報告書を提供することを含む、項目49に記載の方法。
(項目51)
前記対象が、解糖阻害剤治療に対して好ましい応答を有することが予測される対象または予測されない対象として特定されたかを報告することをさらに含む、項目46に記載の方法。
(項目52)
前記報告が、書面による報告書または電子報告書を提供することを含む、項目51に記載の方法。
(項目53)
前記対象の癌細胞が前記ヘテロ接合性変異を含むかを決定することが、DNA配列決定、ポリメラーゼ連鎖反応、核酸ハイブリダイゼーション、またはDNA制限分析を含む、項目43〜46のいずれか1項に記載の方法。
(項目54)
前記対象の癌細胞が前記ヘテロ接合性変異を含むかを決定することが、エノラーゼ発現または活性を測定することを含む、項目43〜46のいずれか1項に記載の方法。
(項目55)
解糖阻害剤治療に対する好ましい応答が、腫瘍サイズまたは負荷の低減、腫瘍成長の阻止、腫瘍関連疼痛の低減、癌関連病変の低減、癌関連症状の低減、癌の非進行、無病期間の増加、無増悪期間の増加、寛解の誘導、転移の低減、患者生存率の増加、または抗癌治療に対する腫瘍の感受性の増加を含む、項目45または46に記載の方法。
(項目56)
解糖阻害剤と、前記エノラーゼ1(ENO1)遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異について細胞を試験するための試薬と、を含む、キット。
(項目57)
前記解糖阻害剤が、エノラーゼ阻害剤である、項目56に記載のキット。
(項目58)
前記エノラーゼ阻害剤が、小分子エノラーゼ阻害剤である、項目57に記載のキット。
(項目59)
前記エノラーゼ阻害剤が、D−タルトロン酸セミアルデヒドリン酸塩;3−アミノエノールピルビン酸−2−リン酸塩;ホスホノアセトヒドロキサム酸塩(PhAH);2−フルオロ−2−ホスホノアセトヒドロキサム酸塩;(3−ヒドロキシ−2−ニトロプロピル)ホスホン酸塩;(ニトロエチル)ホスホン酸塩;d−(ホスホノエチル)ニトロール酸塩、またはそのプロドラッグを含む、項目58に記載のキット。
(項目60)
エノラーゼ阻害剤治療の有効性を監視するための生体外方法であって、エノラーゼ阻害剤で治療される対象由来の試料中のグリセリン酸塩または1,3ジヒドロキシアセトンのレベルを測定することを含み、グリセリン酸塩または1,3ジヒドロキシアセトンのレベルが基準レベルと比較して上昇していない場合、前記対象がさらなるエノラーゼ阻害剤治療を必要とし、グリセリン酸塩または1,3ジヒドロキシアセトンのレベルが基準レベルと比較して上昇している場合、前記対象が追加のエノラーゼ阻害剤治療を必要としない、
前記生体外方法。
(項目61)
エノラーゼ阻害剤治療の有効性を監視するための生体外方法であって、
(a)エノラーゼ阻害剤で治療された対象由来の試料中のグリセリン酸塩または1,3ジヒドロキシアセトンのレベルを測定することと、
(b)グリセリン酸塩もしくは1,3ジヒドロキシアセトンのレベルが基準レベルと比較して上昇していない場合、前記対象を、追加のエノラーゼ阻害剤治療が必要である対象として特定するか、またはグリセリン酸塩もしくは1,3ジヒドロキシアセトンのレベルが基準レベルと比較して上昇している場合、前記対象を、追加のエノラーゼ阻害剤治療が必要でない対象として特定することと、を含む、前記生体外方法。
(項目62)
さらなるエノラーゼ阻害剤治療が、エノラーゼ阻害剤治療のさらなる投与、またはより高い用量のエノラーゼ阻害剤治療の投与である、項目60または62に記載の方法。
(項目63)
癌を有する対象を治療するための組成物であって、前記癌の細胞がtRNAシンテターゼ(ARS)遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異を含むことが決定されており、前記組成物が、有効量のARS阻害剤、またはそのプロドラッグを含む、前記組成物。
(項目64)
前記ヘテロ接合性変異が、ARS遺伝子の1つのコピーの全てまたは一部の欠失である、項目63に記載の組成物。
(項目65)
前記欠失が、5q13、1q41、6p21、9q24、11p15、1p13、1p35、16q13、16q24、5q31、5q32、または5q35からなる群から選択される領域におけるヘテロ接合性の喪失である、項目64に記載の組成物。
(項目66)
前記ヘテロ接合性変異が、ARS遺伝子の1つのコピーを不活性化する置換または挿入である、項目63に記載の組成物。
(項目67)
前記ARS遺伝子が、EPARS、VARS、IARS、CARS、SARS、YARS、AARS、KARS、LARS、HARS、またはRARSのうちの1つである、項目63に記載の組成物。
(項目68)
前記ARS遺伝子が、TARSである、項目63に記載の組成物。
(項目69)
前記ARS阻害剤が、小分子阻害剤である、項目63に記載の組成物。
(項目70)
前記小分子阻害剤が、ボレリジン、またはそのプロドラッグを含む、項目64に記載の組成物。
(項目71)
タンパク質合成阻害剤をさらに含む、項目63に記載の組成物。
(項目72)
癌を有する対象を治療するための方法であって、前記癌の細胞がtRNAシンテターゼ(ARS)遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異を含むことが決定されており、前記方法が、ARS阻害剤、またはそのプロドラッグを前記対象に投与することを含む、前記方法。
(項目73)
ARS阻害剤治療のために癌を有する対象を選択する生体外方法であって、
(a)前記対象の癌細胞がARS遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異を含むかを決定することと、
(b)前記対象の癌細胞が前記ヘテロ接合性変異を含む場合、ARS阻害剤治療のために対象を選択することと、を含む、前記生体外方法。
(項目74)
癌を有する対象におけるARS阻害剤治療に対する応答を予測する生体外方法であって、前記対象の癌細胞がARS遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異を含むかを決定することを含み、前記癌細胞が前記ヘテロ接合性変異を含む場合、前記対象が、ARS阻害剤治療に対する好ましい応答を有することが予測される、前記生体外方法。
(項目75)
癌を有する対象における解糖阻害剤治療に対する応答を予測する生体外方法であって、(a)前記対象の癌細胞がARS遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異を含むかを決定することと、
(b)前記対象に由来する癌細胞が前記ヘテロ接合性変異を含む場合、前記対象を、ARS治療に対する好ましい応答を有することが予測される対象として特定するか、または前記対象に由来する癌細胞が前記ヘテロ接合性変異を含まない場合、前記対象を、ARS阻害剤治療に対する好ましい応答を有することが予測されない対象として特定すること、を含む、前記生体外方法。
(項目76)
ARS阻害剤と、ARS遺伝子の1つのコピーを不活性化するヘテロ接合性変異について細胞を試験するための試薬と、を含む、前記キット。
ゲノムの大きな領域の欠失(例えば、ヘテロ接合性欠失)は、癌における原型的身体事象であり、重要な腫瘍抑制遺伝子の機能を切断することによって腫瘍形成を促す。これらの欠失は、癌の病因において既知の役割を持たない近傍遺伝子を包含する場合が多く、多くの例では、必須代謝酵素をコードする必須遺伝子を含む。しかしながら、腫瘍細胞中の酵素活性の一部分の喪失(例えば、50%喪失)は、典型的に、必須ハウスキーピング遺伝子の場合でも耐容される。この1つの理由は、大部分の代謝酵素が非常に過剰に存在し、毒性が臨界閾値以下の発現の喪失に依存するためである。典型的に、活性の50%超の喪失は、癌細胞に対する任意の効果を有するために必要である。
al.;Law)。ここに提示されるデータは、乳酸塩レベルが、生体外のENO1欠失細胞中のエノラーゼ2阻害後に著しく減少することを示す(図14c)。これは、治療に対して良好な応答を呈する患者が、基準値と比較して、減少した腫瘍乳酸塩レベルを有することを示し得る。あるいは、治療前後に血清代謝産物を分析することが可能であり得る。以前の研究は、それらの血清または尿代謝プロファイルに基づいて、癌患者を良性状態の健常な患者から区別できることを示した。これは、卵巣癌から肝細胞癌まで多種多様な癌に当てはまる(Chen et al.;Odunsi;Spratlin et al.)。治療時の腫瘍代謝変化は、特に標的タンパク質の上流または下流にある、血清代謝産物中の変化として検出され得る。このように、特定のバイオマーカーが見出され、治療の有効性を監視するために使用することができる。PhAHで治療したD423MG ENO1ヌル細胞の初期代謝特徴付けは、グリセリン酸塩の顕著な上方調節を示す(図14a)。グリセリン酸塩は、2−ホスホグリセリン酸塩および3−ホスホグリセリン酸塩の同時加水分解の結果として生成される可能性があり、その中間体は、エノラーゼブロックの直ぐ上流に蓄積することが予想される(図14c)。グリセリン酸塩は、正常な血清および脳脊髄液中で安定かつ少量であり、したがって、阻害剤有効性の潜在的マーカーであり得る。
「ハウスキーピング遺伝子」は、基本的細胞機能の維持に必要な遺伝子を意味する。
本発明の文脈におけるハウスキーピング遺伝子は、基本的細胞機能の維持に必要な任意の遺伝子である。脊椎動物ならびにマウスにおける遺伝的相互作用研究の大半は、多くの必須細胞性ハウスキーピング機能が、1つの相同体の喪失に直面して細胞生存性を可能にするが、多数の相同体の喪失時に完全な致死性を可能にする、重複機能をコードする多数の相同体遺伝子(すなわち、冗長な相同体)によって行われることを示す。(Deutscher et al.2006;Costanzo et al.2010;Vavouri et al.2008;Brookfield et al.1997)
ある実施形態は、生体内または試料中のいずれかで、ENO1またはARS等の遺伝子の1つのコピーのヘテロ接合性不活性化を検出することに関する。例えば、いくつかの実施形態では、不活性化は、癌細胞の核酸配列中の変化(変異)を検出または測定することによって検出され得る。なおもさらなる態様では、遺伝子の不活性化は、癌細胞と関連付けられる発現の低減またはエノラーゼ活性の低減を検出することによって間接的に検出される。
いくつかの実施形態では、ヘテロ接合性変異の存在を評価することは、遺伝子生成物(例えば、ARSまたはENO1)をコードするRNAまたはDNA等のコーディング核酸を検出または定量することを必要とし得る。例えば、いくつかの態様では、癌細胞ゲノムの全てまたは一部は、遺伝子の1つのコピー中の変異の存在を検出するように配列決定される(例えば、置換、欠失、変換、または挿入)。いくつかの態様では、ポリメラーゼ鎖反応(PCR)は、ENO1またはARS配列の全てまたは一部を増幅するように使用され得る。
いくつかの態様では、実施形態の方法は、エノラーゼ1タンパク質の発現または活性の検出に関する。例えば、エノラーゼ1タンパク質を結合、精製、除去、定量、および/または他の方法で一般に検出するための免疫検出法を用いることができる。本実施形態により調製される抗体は、対象または試料、例えば、腫瘍生検中のエノラーゼ1を検出および/または定量化するように用いられ得る。いくつかの免疫検出法として、酵素結合免疫吸着測定(ELISA)、放射免疫測定(RIA)、免疫放射測定、蛍光免疫測定、化学発光測定、生物発光測定、およびウェスタンブロット分析がほんの数例として挙げられる。様々な有用な免疫検出法の工程は、それぞれ参照により本明細書に組み込まれる、例えば、Doolittle MH and Ben−Zeev O,1999;Gulbis B and Galand P,1993;De Jager R et al.,1993;およびNakamura et al.,1987に記載されている。
上述のように、免疫測定は、それらの最も簡潔および/または直接的な意味において結合測定である。ある好ましい免疫測定は、当該技術分野において既知の様々な種類の酵素結合免疫吸着測定(ELISA)および/または放射免疫測定(RIA)である。組織切片を使用する免疫組織化学的検出も特に有用である。
本実施形態の抗エノラーゼ1抗体は、免疫組織化学(IHC)による研究のために調製された新鮮−凍結および/またはホルマリン固定され、パラフィンに埋め込まれた組織ブロックと併用されてもよい。これらの粒子標本から組織ブロックを調製する方法は、様々な予後診断因子の以前のIHC研究において良好に使用され、および/または当業者に周知である(Brown et al.,1990;Abbondanzo et al.,1990;Allred et al.,1990)。
本実施形態の抗体は、細胞内組織成分を特定するように、電子顕微鏡法と併用されてもよい。つまり、電子密度標識は、抗エノラーゼ1抗体に直接または間接的に共役される。実施形態による電子密度標識の例は、フェリチンおよび金である。電子密度標識は、電子を吸収し、電子顕微鏡法によって可視化され得る。
いくつかの態様では、本実施形態は、上記の免疫検出法とともに使用するための免疫検出キットに関する。抗エノラーゼ1抗体は、一般にそのような抗原を検出するように使用されるため、抗体は、好ましくはキットに含まれる。しかしながら、そのような構成要素の双方を含むキットが提供され得る。したがって、免疫検出キットは、適切な容器手段に、タンパク質、ポリペプチド、および/またはペプチドに結合する第1の抗体(例えば、抗エノラーゼ1抗体)、および/または任意選択により、免疫検出試薬、および/またはさらに任意選択により、精製もしくは組み換えタンパク質、ポリペプチド、および/もしくはペプチドを含む。
阻害剤は、必須ハウスキーピング遺伝子の冗長な相同体の発現または活性を減少させる化合物である。発現または活性の減少は、必須ハウスキーピング遺伝子の冗長な相同体の生物学的機能の低減によって定義される。阻害剤は、当該技術分野において既知であるか、または本明細書に記載の方法を使用して特定される。ハウスキーピング遺伝子の活性は、当該技術分野において既知の方法によって測定される。
本発明の実施形態は、解糖の阻害剤を用いて癌細胞を有効に治療することを目的とする組成物および方法に関する。例えば、解糖阻害剤は、ピルビン酸キナーゼ(例えば、PKLR1またはPKM2)、エノラーゼ(例えば、ENO1、ENO2、またはENO3)、ホスホグリセリン酸ムターゼ(例えば、PGM1、PGM2、PGM2L1、PGM3、またはPGM5)、ホスホグリセリン酸キナーゼ(例えば、PGK1またはPGK2)、グリセルアルデヒドリン酸デヒドロゲナーゼ(GAPDH)、トリオースリン酸イソメラーゼ(TPI)、フルクトース二リン酸アルドラーゼ(例えば、Aldoa、Aldob、またはAldoc)、ホスホフルクトキナーゼ(PFK1)、ホスホグルコースイソメラーゼ(GPI)、およびヘキソキナーゼ(例えば、HK1、HK2、またはHK3)の阻害剤であり得る。
ある実施形態では、本発明は、1つ以上のARS遺伝子(複数可)のヘテロ接合性不活性化を有する癌を治療する際に使用するためのARS阻害剤、およびその投与に関する。いくつかの態様では、ARS阻害剤は、好ましくは真核アミノアシルtRNAを阻害する。例えば、ARS阻害剤は、プロリルtRNAシンテターゼ、システイニルtRNAシンテターゼ、グリシルtRNAシンテターゼ、アラニルtRNAシンテターゼ、アスパルチルtRNAシンテターゼ、グルタミルtRNAシンテターゼ、アスパラギルtRNAシンテターゼ、グルタミニルtRNAシンテターゼ、セリルtRNAシンテターゼ、アルギニルtRNAシンテターゼ、ヒスチジルtRNAシンテターゼ、チロシルtRNAシンテターゼ、またはグルタミル−プロリル−tRNAシンテターゼ(例えば、ハロフジノン)を阻害する薬剤であり得る。ARS阻害剤の例として、TARS阻害剤、ボレリジン、ならびに抗菌ARS阻害剤(およびその誘導体)、例えばムピロシン;SB−234764;インドールマイシン;AN−2690;CB−432;イコフンジペン;REP8839;シスペンタシン:チャンギシンマイシン;ミクロシンC(または加工されたミクロシンC);ホスミドシン;アスカマイシン;アグロシン;SB−217452;またはアルボマイシンが挙げられるが、これらに限定されない。本実施形態の方法により使用され得る追加の阻害剤は、参照により本明細書に組み込まれる、米国特許公開第20120058133号に提供される。
本発明の化合物は、プロドラッグ形態でも存在し得る。プロドラッグは、多くの望ましい品質の医薬品を強化することが知られているため(例えば、可溶性、生物活性、製造等)、本発明のいくつかの方法において用いられる化合物は、必要に応じてプロドラッグ形態で送達され得る。一般に、そのようなプロドラッグは、実施形態の解糖阻害剤の機能的誘導体であり、生体内で活性解糖阻害剤に容易に変換可能である。適切なプロドラッグ誘導体の選択および調製の従来の手順は、例えば、″Design of Prodrugs″,ed.H.Bundgaard,Elsevier,1985;Huttunen et al.,2011;およびHsieh et al.,2009に記載され、それぞれ参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
本実施形態の解糖阻害剤の有効性を増加させるために、これらの組成物を、癌の治療に有効な他の薬剤と複合することが望ましい場合がある。非限定例として、癌の治療は、他の抗癌剤と一緒に解糖阻害剤によって実装され得る。「抗癌」剤は、例えば、癌細胞を死滅させること、癌細胞中のアポトーシスを誘導すること、癌細胞の増殖率を低減すること、転移の発生または数を低減すること、腫瘍サイズを低減すること、腫瘍成長を阻害すること、腫瘍または癌細胞への血液供給を低減すること、癌細胞または腫瘍に対する免疫応答を促進すること、癌の侵攻を防止もしくは阻害すること、または癌を有する対象の寿命を増加させることによって、対象における癌に負の影響を及ぼすことができる。より一般的に、これらの他の組成物は、細胞を死滅させるか、または増殖を阻害するのに有効な複合量で提供される。これは、双方の薬剤を含む単一組成物または医薬製剤と細胞を接触させること(または対象に投与すること)によるか、または2つの別個の組成物または製剤と細胞を接触させることによって達成され得、同時に、1つの組成物は、解糖阻害剤を含み、もう一方は、第2の薬剤(複数可)を含む。
A/B/A B/A/B B/B/A A/A/B A/B/B B/A/A A/B/B/B B/A/B/B B/B/B/A B/B/A/B A/A/B/B A/B/A/B A/B/B/A B/B/A/A B/A/B/A B/A/A/B A/A/A/B B/A/A/A A/B/A/A A/A/B/A
化学療法も多様な併用療法を含む。いくつかの態様では、実施形態の解糖阻害剤は、化学療法薬と併せて投与される(または製剤される)。複合化学療法として、例えば、チオテパおよびシクロスホスファミド等のアルキル化剤;ブスルファン、インプロスルファン、およびピポスルファン等のアルキルスルホン酸塩;ベンゾドーパ、カルボクオン、メツレドーパ、およびウレドーパ等のアジリジン;アルトレタミン、トリエチレンメラミン、トリエチレンホスホルアミド、トリエチレンチオホスホルアミド、およびトリメチルオロメラミンを含むエチレンイミンおよびメチルアメラミン;アセトゲニン(特にブラタシンおよびブラタシノン);カンプトテシン(合成類似体トポテカンを含む);ブリオスタチン;カリスタチン;CC−1065(そのアドゼレシン、カルゼレシン、およびビゼレシン合成類似体を含む);クリプトフィシン(特にクリプトフィシン1およびクリプトフィシン8);ドラスタチン;デュオカルマイシン(合成類似体KW−2189およびCB1−TM1を含む);エレウテロビン;パンクラチスタチン;サルコジクチイン;スポンジスタチン;クロラムブシル、クロルナファジン、クロロホスファミド、エストラムスチン、イフォスファミド、メコロレタミン、塩酸メクロレタミンオキシド、メルファラン、ノヴェムビチン、フェネステリン、プレドニムスチン、トロフォスファミド、ウラシルマスタード等のニトロゲンマスタード;カルムスチン、クロロゾトシン、フォテムスチン、ロムスチン、ニムスチン、およびラニムスチン等のニトロソウレア;エネジイン抗生物質等の抗生物質(例えば、カリケアミシン、特にカリケアミシンγII、およびカリケアミシンωII;ダイネミシンAを含むダイネミシン;クロドロン酸塩等の二リン酸塩;エスペラミシン;ならびにネオカルジノスタチン発色団および関連色素エネジイン抗生物質発色団、アクラシノマイシン、アクチノマイシン、アウトラマイシン、アザセリン、ブレオマイシン、カクチノマイシン、カラビシン、カルミノマイシン、カルジノフィリン、クロモマイシン、ダクチノマイシン、ダウノルビシン、デトルビシン、6−ジアゾ−5−オキソ−L−ノルロイシン、ドキソルビシン(モルホリノ−ドキソルビシン、シアノモルホリノ−ドキソルビシン、2−ピロリノ−ドキソルビシン、およびデオキシドキソルビシンを含む)、エピルビシン、エソルビシン、イダルビシン、マルセロマイシン、ミトマイシンC等のミトマイシン、マイコフェノール酸、ノガラマイシン、オリボマイシン、ペプロマイシン、ポトフィロマイシン、ピューロマイシン、クエラマイシン、ロドルビシン、ストレプトニグリン、ストレプトゾシン、ツベリシジン、ウベニメックス、ジノスタチン、ゾルビシン;メトトレキサートおよび5−フルオロウラシル(5−FU)等の抗代謝産物;デノプテリン、プテロプテリン、トリメトレキサート等の葉酸類似体;フルダラビン、6−メルカプトプリン、チアミプリン、チオグアニン等のプリン類似体;アンシタビン、アザシチジン、6−アザウリジン、カルモフール、シタラビン、ジデオキシウリジン、ドキシフルリジン、エノシタビン、フロキシウリジン等のピリミジン類似体;カルステロン、プロピオン酸ドロモスタノロン、エピチオスタノール、メピチオスタン、テストラクトン等のアンドロゲン;ミトタン、トリロスタン等の抗アドレナル;フロリン酸等の葉酸補充薬;アセグラトン;アルドホスファミドグリコシド;アミノレブリン酸;エニルウラシル;アムサクリン;ベストラブシル;ビサントレン;エダトラキセート;デフォファミン;デメコルシン;ジアジクオン;エルフォルミチン;酢酸エリプチニウム;エポチロン;エトグルシド;硝酸ガリウム;ヒドロキシウレア;レンチナン;ロニダイニン;マイタンシンおよびアンサミトシン等のマイタンシノイド;ミトグアゾン;ミトキサントロン;モピダンモール;ニトラエリン;ペントスタチン;フェナメット;ピラルビシン;ロソキサントロン;ポドフィリン酸;2−エチルヒドラジド;プロカルバジン;PSKポリサッカリド複合体;ラゾキサン;リゾキシン;シゾフィラン;スピロゲルマニウム;テヌアゾン酸;トリアジクオン;2,2’,2”−トリクロロトリエチルアミン;トリコテセン(特にT−2毒素、ヴェラクリンA、ロリジンA、およびアングイジン);ウレタン;ビンデシン;ダカルバジン;マンノムスチン;ミトブロニトール;ミトラクトール;ピポブロマン;ガシトシン;アラビノシド(″Ara−C″);シクロホスファミド;タキソイド、例えば、パクリタキセルおよびドセタキセルゲムシタビン;6−チオグアニン;メルカプトプリン;シスプラチン、オキサリプラチン、およびカルボプラチン等の白金配位錯体;ビンブラスチン;白金;エトポシド(VP−16);イフォスファミド;ミトキサントロン;ビンクリスチン;ビノレルビン;ノバントロン;テニポシド;エダトレキセート;ダウノマイシン;アミノプテリン;キセローダ;イバンドロン酸塩;イリノテカン(例えば、CPT−11);トポイソメラーゼ阻害剤RFS2000;ジフルオロメチルオルニチン(DMFO);レチノール酸等のレチノイド;カペシタビン;カルボプラチン、プロカルバジン、プリコマイシン、ゲムシタビエン、ナベルビン、ファルネシル−タンパク質トランスフェラーゼ阻害剤、トランス白金、および上記のいずれかの薬学的に許容される塩、酸、または誘導体が挙げられる。ある実施形態では、本明細書に提供される組成物が、ゲフィチニブと併用され得る。他の実施形態では、本実施形態は、Gleevacと併せて実施され得る(例えば、約400〜約800mg/日のGleevacが患者に投与され得る)。ある実施形態では、1つ以上の化学療法薬が、本明細書に提供される組成物と併用され得る。
癌治療に有効であり、広く使用されている他の要素は、γ線、X線、および/または放射性同位体の腫瘍細胞への配向送達として一般に知られているものを含む。電磁波およびUV照射等のDNA損傷因子の他の形態も企図される。これらの因子の全てが、DNA、DNAの前駆体、DNAの複製および修復、および染色体の組立および維持に対して広範な損傷を及ぼす可能性が高い。X線の投与範囲は、長期間(3〜4週間)の場合、50〜200レントゲンの日用量から2000〜6000レントゲンの単一用量の範囲である。放射性同位体の投与範囲は、広く異なり、同位体の半減期、放射される放射線の強度および種類、ならびに腫瘍性細胞による取り込みに依存する。
免疫療法は、概して、癌細胞を標的および破壊するための免疫エフェクター細胞および分子の使用に依存する。免疫エフェクターは、例えば、腫瘍細胞の表面上のいくつかのマーカーに特異的な抗体であり得る。抗体単独で、治療のエフェクターとして機能し得るか、または他の細胞を採用して細胞死滅に実際に作用し得る。抗体は、薬物または毒素(化学療法薬、放射性核種、リシンA鎖、コレラ毒素、百日咳毒素等)に共役されてもよく、単に標的薬剤として機能し得る。あるいは、エフェクターは、腫瘍細胞標的と直接または間接的に相互作用する表面分子を担持するリンパ球であり得る。様々なエフェクター細胞は、細胞毒性T細胞およびNK細胞を含む。
さらに別の実施形態では、二次治療は、治療的ポリヌクレオチドが、治療組成物の前、後、または同時に投与される遺伝子治療である。遺伝子生成物の発現のためのウイルスベクターは、当該技術分野において周知であり、アデノウイルス、アデノ関連ウイルス、レトロウイルス、ヘルペスウイルス、レンチウイルス、ワクシニアウイルスを含むポックスウイルス、およびSV40を含むパピローマウイルス等の真核発現系を含む。あるいは、発現構成体の投与は、リポソームまたはDOTAP:コレステロール小胞等の脂質系ベクターにより達成され得る。これらの方法の全ては、当該技術分野において周知である(例えば、Sambrook et al.,1989;Ausubel et al.,1998;Ausubel,1996)。
上記のとおり、腫瘍抑制癌遺伝子は、過剰な細胞増殖を阻害するように機能する。これらの遺伝子の不活性化は、それらの阻害性活性を破壊し、無秩序な増殖をもたらす。
アポトーシス、またはプログラム細胞死は、正常な胚の発育に必須の過程であり、成体組織中のホメオスタシスを維持し、発癌を抑制する(Kerr et al.,1972)。Bcl−2ファミリーのタンパク質およびICE様プロテアーゼは、他の系中のアポトーシスの重要な調節因子およびエフェクターであることが実証された。濾胞性リンパ腫と関連して発見されたBcl−2タンパク質は、アポトーシスを制御すること、および多様なアポトーシス性刺激に応答して細胞生存を強化することにおいて顕著な役割を果たす(Bakhshi et al.,1985;Cleary and Sklar,1985;Cleary et al.,1986;Tsujimoto et al.,1985;Tsujimoto and Croce,1986)。進化的に保存されたBcl−2タンパク質は、現在、関連タンパク質のファミリーメンバーであることが認識されており、デスアゴニストまたはデスアンタゴニストとして分類され得る。
癌を有する個人の約60%は、予防的、診断的または段階的、治癒的、および緩和的手術を含む、いくつかの種類の手術を受ける。治癒的手術は、本明細書において提供される治療、化学療法、放射線療法、ホルモン療法、遺伝子治療、療法免疫、および/または代替療法等の他の治療と併用され得る癌治療である。
治療の治療的有効性を改善するために、他の薬剤が本明細書に提供される組成物と併用され得ることが企図される。これらの追加の薬剤として、免疫調製剤、細胞表面受容体およびGAP接合の上方調節に作用する薬剤、細胞増殖抑制剤および分化剤、細胞接着の阻害剤、またはアポトーシス誘導剤に対する過剰増殖性細胞の感受性を増加させる薬剤が挙げられる。免疫調節剤として、腫瘍壊死因子;インターフェロンα、β、およびγ;IL−2および他のサイトカイン;F42Kおよび他のサイトカイン類似体;またはMIP−1、MIP−1β、MCP−1、RANTES、および他のケモカインが挙げられる。細胞表面受容体またはそれらのリガンド、例えば、Fas/Fasリガンド、DR4またはDR5/TRAILの上方調節が、過剰増殖性細胞に対する自己分泌または傍分泌作用を確立することによって、本明細書に提供される組成物のアポトーシス誘導能力を強化することがさらに企図される。GAP接合の数を上昇させることによる細胞間シグナル伝達の増加は、近傍の過剰増殖性細胞集団に対する抗過剰増殖作用を増加させる。他の実施形態では、細胞増殖抑制剤または分化剤は、治療の抗過剰増殖作用を改善するために、本明細書に提供される組成物と併用され得る。細胞接着の阻害剤は、本発明の有効性を改善するように企図される。細胞接着阻害剤の例は、焦点接着キナーゼ(FAK)阻害剤およびロバスタチンである。抗体c225等のアポトーシスに対する過剰増殖性細胞の感受性を増加させる他の薬剤は、治療の有効性を改善するために、本明細書に提供される組成物と併用され得ることがさらに企図される。
細胞の成長は阻害され、例えば、低減されるか、または細胞死は、阻害剤を含む組成物と細胞を接触させることによって誘導される。細胞成長の阻害とは、組成物に曝露されていない細胞と比較して、細胞がより低い速度で増殖するか、または生存性が減少したことを意味する。細胞成長は、クリスタルバイオレット、トリパンブルー等の当該技術分野において既知の方法、またはATP、NADH、カパーゼ、LDH、またはMTTの測定によって測定される。
本発明は、阻害剤を含む組成物を対象に投与することを含む。
以下の実施例は、本発明の好適な実施形態を実証するために含まれる。発明者によって発見された代表技術に従う実施例において開示される技術は、本発明の実施において良好に機能するため、その実践の好適な形態を構成すると考えられ得ることは、当業者に理解されるはずである。しかしながら、当業者であれば、本開示に照らして、本発明の趣旨または範囲を逸脱することなく、開示される特定の実施形態に多くの変更を行うことができ、なおも同様または類似の結果を得ることができることを理解するであろう。
癌細胞の増殖および/または死は、癌がハウスキーピング遺伝子中にホモ接合性欠失を有し、このハウスキーピング遺伝子が、冗長な相同体の活性を阻害するのに十分な量で冗長な相同体の阻害剤を対象に投与するか、またはそれと細胞を接触させることによって、機能的に冗長な相同体を有する場合に誘導される。
細胞培養
ホモ接合性欠失を有する細胞株は、既知の方法を使用して培養する。(1p36比較目的で、細胞株U87、LN319、SW1088、U343、U373、およびA1207は、同じ条件下で成長される)。
ハウスキーピング遺伝子を標的とするヘアピンを調製し、ハウスキーピング遺伝子のタンパク質レベルを低減する能力についてスクリーニングする。
細胞中のハウスキーピング遺伝子をノックダウンする表現型効果の救済は、shRNA抵抗性形態のハウスキーピング遺伝子を過剰発現することによって行われる。つまり、6個のサイレント変異は、QuickChangeキット(Stratagene,La Jolla,CA,USA)に従って、部位配向された突然変異を使用して、shRNAにより標的されるハウスキーピング遺伝子コード領域に導入される。shRNA抵抗性ハウスキーピング遺伝子コード領域は、pHAGE−CMVレンチウイルスベクターにクローン化され、ドキシサイクリンの存在または不在下で、shRNAを運ぶ細胞株中で過剰発現される。対照として、同じ細胞株は、GFP遺伝子を運ぶレンチウイルスベクターによって感染される。
shRNAまたはPhAH治療された細胞株の細胞成長は、クリスタルバイオレット染色によって、またはPromega Cell Titer Glo(登録商標)増殖キット(Roche,Indianapolis,IN)を使用するかのいずれかで測定される。クリスタルバイオレット測定の場合、各時点で10,000個の細胞を6ウェルプレートに播種する。指示される時点で、細胞を10%ホルマリンで固定し、クリスタルバイオレット溶液で1時間染色する。染色抽出は、10%酢酸溶液を使用して行い、590nmで吸光度を読み取った。Cell titer Glo(登録商標)実験は、製造者により指示されるように行う。1ウェル当たり1000個の細胞を、各時点で96ウェルプレートに置き、24時間毎に発光値を記録する。全ての実験は、3重複で行う。
ハウスキーピング遺伝子の活性は、当該技術分野において既知の方法を使用して測定する。
ウェスタンブロット
al.,2007)のように行った。
一般的な方法
細胞培養
細胞株D423−MG(ENO1を含む1p36ホモ接合性欠失)およびD502−MG(1p36ホモ接合性欠失、ENO1を含まない)を得て、DMEM培地中で20%FBSを用いて培養した(Duncan et al.,2010;D423およびD502は、Duncan et al.,においてH423およびH502と称されるが、Sanger データベースではD423−MGおよびD502−MGと称され、ここではその命名を採用する)。比較目的で、細胞株U87、LN319、SW1088、U343、U373、およびA1207は、同じ条件下で成長させた。ScienCell(Carlsbad,CA)から得られた正常なヒト胚星状細胞は、製造者により提供される媒質中で成長させた。
エノラーゼ2を標的とする22個のヘアピンをスクリーニングし、4つの独立したヘアピンがタンパク質レベルを50%超低減させたことが分かった。これらのヘアピンのうち2つは、pLKO.1ベクター(ShENO2−1およびshENO2−2)中に存在し、残りの2つは、発現停止GIPZ(shENO2−3)およびTRIPZ(shENO2−4)shRNAmirベクター(Open Biosystems,Huntsville,AL)中に存在した。GIPZベクター中のヘアピンは、製造者により提供されるプロトコルを使用して、TRIPZベクターにクローン化した。TRIPZベクターは、ドキシサイクリン誘導時にのみ発現される、赤色蛍光タンパク質レポーターを有するドキシサイクリン誘導系である。組み換えレンチウイルスは、標準プロトコルに従い、293T細胞の一時的形質導入によって生成した。つまり、72μgのshRNAプラスミド、54μgのデルタ8.9、および18μgのVSVGプラスミドは、Fugene(登録商標)(Roche,Indianapolis,IN)を使用して、245mm2皿に置かれた293T細胞に形質導入した。形質導入から72時間後にウイルス上清を回収し、23,000rpmで遠心分離により濃縮して、細胞成長培地中に再懸濁した。形質導入の場合、ウイルス溶液を、4μg/mLポリブレンを含む細胞培養培地に添加し、感染から48時間後、2μg/mLピューロマイシンを使用して細胞を選択し、ウェスタンブロットによってENO2のノックダウンについて試験した。
細胞株D423−MG中のENO2をノッキングする表現型効果の救済は、ENO2のshRNA抵抗性形態を過剰発現することによって行った。つまり、6個のサイレント変異は、QuickChangeキット(Stratagene,La Jolla,CA,USA)に従って、部位配向された突然変異を使用して、shENO2−4により標的されるENO2コード領域に導入した。shRNA抵抗性ENO2コード領域は、pHAGE−CMVレンチウイルスベクターにクローン化され、ドキシサイクリンの存在または不在下で、shENO2−4を運ぶD423−MG細胞株中で過剰発現された。対照として、同じ細胞株は、GFP遺伝子を運ぶレンチウイルスベクターによって感染した。
shRNAまたはPhAH治療された細胞株の細胞成長は、クリスタルバイオレット染色によって、またはPromega Cell Titer Glo(登録商標)増殖キット(Roche,Indianapolis,IN)を使用するかのいずれかで測定した。クリスタルバイオレット測定の場合、各時点で10,000個の細胞を6ウェルプレートに播種した。指示される時点で、細胞を10%ホルマリンで固定し、クリスタルバイオレット溶液で1時間染色した。染色抽出は、10%酢酸溶液を使用して行い、590nmで吸光度を読み取った。Cell titer Glo(登録商標)実験は、製造者により指示されるように行った。1ウェル当たり1000個の細胞を、各時点で96ウェルプレートに置き、24時間毎に発光値を記録した。全ての実験は、3重複で行う。
アンカレッジ非依存性成長測定は、6ウェルプレート中で2重複または3重複で行った。1ウェル当たり104の指示細胞を、1%低融点アガロースDMEM+10% FBSを含む底部寒天の上の0.4%低融点アガロースを含むDMEM+10% FBS中に播種した。14〜21日後、コロニーをヨードニトロテトラゾリウムクロリド(Sigma−Aldrich)で染色し、計数した。
D423−MG細胞の注入は、以前に記載されるとおり行い(Zheng etal.,2008)、6〜12週齢のSCIDマウス(Charles River)を、Z軸を備えた定位装置(Stoelting)の中に置いた。歯科用ドリルを使用して、頭蓋骨のブレグマの前方0.5mm、後方3.0mmに穴を開けた。Hanks緩衝食塩溶液中の100,000個の細胞を、非斜角30ゲージ針を用いて、10μLハミルトンシリンジを使用して、脳の表面の3mm下の右尾状核の中に注入した。9mm Autoclipアプライヤーを使用して、頭皮を閉合した。動物は、神経障害の発生について毎日追跡した。
エノラーゼ活性は、Joseph et al.,1996において前述されるように、ピルビン酸キナーゼ−乳酸デヒドロゲナーゼ連結測定においてNADH酸化に続いて測定した。つまり、細胞を、20mM Tris HCL、1mM EDTA、および1mM β−メルカプトエタノール pH7.4中に溶解し、ポリトロンホモジナイザーを使用して10秒間3回均質化した後、超音波処理した。エノラーゼ活性は、340nmでの吸光度により分光光度的、または340nmでの励起および460nmでの放出により蛍光標識的のいずれかでNADHの酸化を測定することにより記録した。
2回のPBS洗浄後に、細胞をRIPA緩衝液中で15分間、軽く振動させてインキュベートした。次に溶解物を回収し、超音波処理して、14,000RPMで10分間4℃で遠心分離した。SDS−PAGEおよびウェスタンブロットは、以前のMaseret al.(2007)のように行った。以下の抗体を使用した:Cell signaling Technologies(Danvers,MA)からのエノラーゼ1 CST#3810;エノラーゼ2 #9536;GAPDH CST#3683、およびSigma−Aldrich(St Louis,MO)からのVinculin。
ホスホノアセトヒドロキサム酸リチウム塩(PhAH)は、TCRS LLC(Bristol,PA)により、Anderson et al.,1984のプロトコルに従ってカスタム合成した。構造および精度をNMRにより検証した。PhAHを50mMストックでPBS中に溶解し、使用するまで−80℃で凍結保存した。化合物の不安定性を考慮して、媒質を5日毎に置き換え、新鮮な阻害剤を新鮮な媒質とともに添加した。ラパマイシン、ソラフェニブ、ラパチニブ、およびPHA665752は、それぞれLC Labs(Woburn,MA)およびTocris(Ellisville,MO)から得た。
TCGA Agilent SNPアレイデータおよびAffymetrixアレイCGHデータデータベース(The Cancer Genome Atlas Research Network、2008)の分析は、359個のGBM試料中5つがENO1のホモ接合性欠失を有することを明らかにし、他のゲノムデータセットは、最大5% 16、19、20のENO1ホモ接合性欠失頻度を示す。遺伝子発現分析は、これらの試料中のエノラーゼ1発現のほぼ完全な不在を示す(図1b、図18)。GBM細胞株、D423−MG20は、CAMTA1、VAMP3、PER3、UTS2、TNFRSF9、PARK7、ERRFI1、SLC45A1、RERE、ENO1、CA6、SLC2A5、GPR157、MIR34A、H6PD、SPSB1、およびSLC25A33遺伝子にわたって1p36.23ホモ接合性欠失を有すると特定された。第2のGBM細胞株、D502−MGもまた、この遺伝子座のホモ接合性欠失を被るが、SLC25A33遺伝子を通して正常なENO1を残す(図1c)。これらの株のウェスタンブロット分析は、D423−MG中のエノラーゼ1タンパク質の喪失およびエノラーゼ2の正常発現、ならびにD502−MGおよび試験した全ての他のグリア/膠芽腫細胞株中の双方のタンパク質の存在を示す(図1d)。
癌ゲノムは、多数のコピー数増幅および欠失を特徴とし、それぞれ、ドライバー発癌遺伝子および腫瘍抑制遺伝子を標的とする。多くの場合、これらのゲノム変化は、意図される標的(複数可)に加えて多くの他の遺伝子に作用する、大きな地域事象である。そのような広域ゲノム変化が癌細胞中で否定的に選択されないという事実は、それら自体が、これらの近傍パッセンジャーのコピー数変化が、任意の有害生物学的影響を及ぼしてはならないことを含意する。つまり、これらのパッセンジャーゲノム事象は、例えば、共欠失されるパッセンジャーが、ヒッスハウスキーピング機能を果たす冗長な多重遺伝子ファミリーのメンバーであるとき、それらの細胞に固有の意図されない(副次的)脆弱性を形成することができることが企図される。脊椎動物ならびにマウスにおける遺伝的相互作用研究の大半は、多くの必須細胞性ハウスキーピング機能が、1つの相同体の喪失に直面して細胞生存性を可能にするが、多数の相同体の喪失時に完全な致死性を可能にする、重複機能をコードする多数の相同体遺伝子(Vavouri et al.,2008;Costanzo et al.,2008;Deutscher et al.,2006)によって行われることを示す。この概念的枠組みでは、冗長な必須ハウスキーピング遺伝子のホモ接合性欠失が、癌特異的脆弱性を形成し得ることが仮定され、それによって、第2の非欠失相同体の薬理的不活性化は、欠失を運ぶ腫瘍細胞中の活性の完全喪失をもたらすが、双方の遺伝子が正常であり発現される正常細胞の健康を低下させないと想定された。
20%ウシ胎仔血清を含むダルベッコ変法イーグル培地中で標準技術を使用して細胞を培養した。shRNA実験は、293T細胞の一次的な形質転換を介したレンチウイルス生成に続いて、4μg/mLのポリブレンを含む培地中の形質導入および2μg/mLのピューロマイシンによる選択によって行った。shRNA発現は、1μg/mLのドキシサイクリンを用いて誘導し、ノックダウンをウェスタンブロットによって試験した。shRNA抵抗性ENO2クローンは、StratageneからのQuickChange部位配向突然変異キットを用いてサイレント変異を導入した後、pHAGE−CMVレンチウイルスベクターにクローン化することによって形成した。細胞増殖実験は、クリスタルバイオレット染色、CellTiter−Glo測定(Roche)を使用し、IncuCyte(Essen Bioscience)を使用して合流を測定することによって行った。SCIDマウス中のENO2ノックダウンの有無にかかわらず、D−423MG細胞の同所性頭蓋内注入は、以前に記載のとおり行った(Zheng et al.,2008)。上記細胞の軟寒天コロニー形成測定は、6ウェルプレート中に104細胞を播種することによって、標準技術を使用して行った。阻害剤研究の場合、PhAHリチウム塩は、Anderson et al.(1984)のプロトコルに従い、TCRSによってカスタム合成した。エノラーゼ活性測定の場合、NADH酸化は、以前に記載のとおりピルビン酸キナーゼ−乳酸デヒドロゲナーゼ連結反応において測定した(Joseph et al.,1996)。細胞周期研究の場合、PhAHの有無にかかわらず、細胞を48時間インキュベートし、ヨウ化プロピジウムで染色して、フローサイトメトリー分析を介して分類した。Annexin V/7−AAD測定の場合、PhAHの有無にかかわらず、細胞を96時間処理し、Annexin V−PEおよび7−AADで染色して、製造者のプロトコルに従い、フローサイトメトリーによってアポトーシスについて評価した(Biovision)。
細胞株D423−MGは、1p36ホモ接合性欠失され、ENO1を含み、D502−MGは、1p36ホモ接合性欠失され、ENO1を含まない(Duncan et al.,2010)。細胞D423およびD502は、Duncan et al.においてH423およびH502と称されるが、Wellcome Trust Sanger Instituteデータベースでは、D423−MGおよびD502−MGと称され、ここではその命名を採用した(ワールドワイドウェブ上のsanger.ac.uk)。Gli56は、Mueller et al. (2007)に記載される。D423−MGの欠失は、CAMTA1、VAMP3、PER3、UTS2、TNFRSF9、PARK7、ERRFI1、SLC45A1、RERE、ENO1、CA6、SLC2A5、GPR157、MIR34A、H6PD、SPSB1、およびSLC25A33遺伝子にわたるが、Gli56中の欠失は、UTS2、TNFRSF9、PARK7、ERRFI1、SLC45A1、RERE、ENO1、CA6、SLC2A5、GPR157、MIR34A、H6PD、SPSB1、SLC25A33、TMEM201、C1orf200、PIK3CD、CLSTN1、CTNNBIP1、LZIC、NMNAT1、RBP7、およびUBE4B遺伝子座にわたる。20%ウシ胎仔血清(FBS)を含むダルベッコ変法イーグル培地(DMEM)中で細胞を培養した。比較のために、細胞株U87、LN319、SW1088、U343、U373、およびA1207は、同じ条件下で成長させた。正常なヒト星状細胞は、ScienCellから得た。
ENO2を標的とする22個のヘアピンをスクリーニングし、4つの独立したヘアピンがタンパク質レベルを50%未満まで低減させたことが分かった。これらのヘアピンのうち2つは、pLKO.1ベクター(ShENO2−1およびshENO2−2)中に存在し、残りの2つは、発現停止GIPZ(shENO2−3)およびTRIPZ(shENO2−4)shRNAmirベクター(Open Biosystems)中に存在した。ENO2 shRNA配列は以下のとおりであった。
shENO2−1:5’−CAAGGGAGTCATCAAGGACAA−3’(配列番号1);
shENO2−2:5’−CGCCTGGCTAATAAGGCTTTA−3’(配列番号2);
shENO2−3:5’−CGGCCTTCAACGTGATCAA−3’(配列番号3);
shENO2−4:5’−GGGACTGAGAACAAATCCA−3’(配列番号4)。
細胞株D423−MG中のENO2をノックダウンする表現型効果の救済は、ENO2のshRNA抵抗性形態を過剰発現することによって行った。つまり、6個のサイレント変異は、QuickChange部位配向された突然変異キット(Stratagene)を使用して、shENO2−4により標的とされるENO2コード領域に導入された。shRNA抵抗性ENO2コード領域は、pHAGE−CMVレンチウイルスベクターにクローン化され(D.N.Kottonからの寛大な寄贈)、ドキシサイクリンの存在または不在下で、shENO2−4を運ぶD423−MG細胞株中で過剰発現された。対照として、同じ細胞株は、緑色発光タンパク質(GFP)遺伝子を運ぶレンチウイルスベクターによって感染された。ENO1またはENO2の異所性再発現の場合、配列決定された検証cDNAクローンは、pHAGE−CMVレンチウイルスベクターにゲートウェイクローン化され、上記の膠芽腫細胞株にレンチウイルス的に形質導入された。
shRNAまたはPhAH治療された細胞株の細胞成長は、クリスタルバイオレット染色によって、またはPromega CellTiter−Glo増殖キット(Roche)、あるいは生体内でIncuCyte(Essen BioScience)との合流を測定するかのいずれかで測定した。IncuCyteを使用する成長曲線は、2時間毎に撮像することによって4重複の複製とともに生成した。クリスタルバイオレット測定の場合、各時点に104個の細胞を6ウェルプレートに播種した。指示される時点で、細胞は、10%ホルマリンで固定され、クリスタルバイオレット溶液で1時間染色した。染色抽出は、10%酢酸溶液を使用して行い、590nmで吸光度を読み取った。CellTiter−Glo実験を製造者の指示に従って行い、1ウェル当たり103個の細胞を、各時点で96ウェルプレートに置き、24時間毎に発光値を記録した。全ての実験は、3重複で行う。軟寒天(アンカレッジ非依存性)成長は、指示された遺伝子型の104個の細胞を播種した6ウェルプレート中で監視した。培地は10% FBSを含むDMEMを含み、上部寒天は、0.4%低融点アガロースを含むが、底部寒天は、1%低融点アガロースを含んだ。発光(GFP)によって成長を監視し、28日後にコロニーをヨードニトロテトラゾリウムクロリド(Sigma−Aldrich)で染色し、計数した。
非標的ヘアピンを形質導入されたD423−MG細胞、またはpGIPZを通して送達されたshENO2−3の生体内腫瘍形成能は、以前に記載のとおり決定した(Zheng et al.,2008)。深い麻酔下にあるSCIDマウス(Charles River)を、z軸を備える定位装置(Stoelting)の中に置いた。次に、3×105個の細胞を、非斜角30ゲージ針を用いて、10μLハミルトンシリンジを使用して、脳の表面の3mm下の右尾状核の中に頭蓋内注入した。動物は、神経障害の発生について毎日追跡した。全てのマウス実験は、ハーバードおよびダナ−ファーバー癌研究所の研究機関の動物管理使用委員会(Harvard and Dana−Farber Cancer Institute Institutional Animal Care and Use Committee)の承認により行った。
エノラーゼ活性は、前述されるように(Joseph et al.,1996)、ピルビン酸キナーゼ−乳酸デヒドロゲナーゼ連結測定においてNADH酸化を介して測定した。つまり、細胞を、20mM Tris HCL、1mM EDTA、および1mM β−メルカプトエタノール(pH7.4)中に溶解し、ポリトロンホモジナイザーを使用して10秒間3回均質化した後、超音波処理した。エノラーゼ活性は、340nmでの吸光度により分光高度的、または340nmでの励起および460nmでの放出により蛍光標識的のいずれかでNADHの酸化を測定することにより記録した。
2回のリン酸緩衝生理食塩水(PBS)での洗浄後に、細胞をRIPA緩衝液中で15分間、軽く振動させてインキュベートした。次に溶解物を回収し、超音波処理して、14,000rpmで10分間4℃で遠心分離した。SDS−PAGEおよびウェスタンブロットは、前述のように行った(Taniuchi et al.,2005)。以下の抗体を使用した:Cell Signaling Technologiesからのエノラーゼ1 CST#3810;エノラーゼ2 #9536;およびGAPDH CST#3683;ホスホル−AMPK Thr172 CST#2535 、ならびにSigma−AldrichからのVinculin。
PhAHリチウム塩は、Anderson et al.(1984)のプロトコルに従って、TCRSによってカスタム合成した。構造および精度をNMRにより検証した。PhAHを50mMストックでPBS中に溶解し、使用するまで−80℃で凍結保存した。化合物の不安定性を考慮して、媒質を5日毎に置き換え、新鮮な阻害剤を新鮮な媒質とともに添加した。ラパマイシン、ソラフェニブ、ラパチニブ、およびPHA665752は、LC LabsおよびTocris Bioscienceからそれぞれ得た。
D423−MGおよびU373細胞株は、PhAH(25μM)の存在下または不在下で48時間処理し、75%エタノール中−20℃で一晩固定した。翌日、細胞を冷たいPBSで洗浄し、100μgのRNase A(Qiagen)で処理し、50μgのヨウ化プロピジウム(Roche)で染色した。フローサイトメトリー取得は、3色FACScanフローサイトメーターおよびCellQuestソフトウェア(Becton Dickinson)を使用して行った。各試料の場合、104事象をゲートした。データ分析は、ModFit LT(Verity Software House)を使用して行った。
D423−MGおよびU373細胞株は、PhAH(25μM)の存在下または不在下で48時間処理し、75%エタノール中−20℃で一晩固定した。Annexin V/7−AAD測定の場合、細胞を、Annexin V−PEおよび7−AADで染色して、製造者のプロトコルに従い、フローサイトメトリーによってアポトーシスについて評価した(Biovision)。アポトーシス細胞は、Becton−Dickinson FACScanサイトメーターを使用して決定した。早期アポトーシス(annexiin V−陽性、7−AAD−陰性)および後期アポトーシス(annexin V−陽性および7−AAD−陽性)細胞を、細胞死の決定に含めた。
発明者は、TARS阻害剤ボレリジンに対する細胞の感受性に対するTARS欠乏の影響を決定するための研究を行った。第1に、ゲノムコピー数とTARSの発現との間の相関を定義するために分析を行った(図19)。TARS遺伝子コピー数は、いくつかの細胞株中で測定し(図19a)、これらのデータを、同じ細胞株中のTARSのmRNA発現レベルに対してプロットした。黒色腫細胞株の中で、SK−MEL−2細胞は、TARSのヘテロ接合性欠失を有すると特定され、451 Lu細胞は、TARS欠乏であると特定され、SK−MEL−5およびHEML細胞は、TARSの野生型であると特定された(図20a)。TARSタンパク質の発現レベルが、遺伝子コピー数およびmRNA発現レベルに基づいて予想されるレベルに対応することを確認するために、ウェスタンブロットを行った(図20c)。
ENO1ホモ接合性不活性化(例えば、欠失)が、抗体結合研究を使用して検出され得るかを確認するように研究を行った。つまり、ヒト癌細胞株、ENO1ホモ接合性欠失(D423−MG)またはWT(U87)を、ヌードマウスの脳に注入し、腫瘍を形成させた。標準組織病理手順に従って、腫瘍担持脳を固定し、パラフィン切片を切断した。ヘマトキシリン/イオシンで染色したD423−MG ENO1ヌル腫瘍細胞は、形態学によって容易に検出され得、マウス細胞ではなくヒト細胞のみを標識する、NUMAに対する抗体(EpitomicsからのS2825)で染色することによって検証された。ENO1に対する抗体(ProteinTechからの11204−1−AP)での染色は、広く発現したハウスキーピング遺伝子から予想されるように、正常なマウス脳において強い免疫反応性を示した。予想のとおり、D423−MG ENO1ヌル腫瘍中で染色は認められなかったが、U87 ENO1 WT腫瘍では強い染色が認められた。これらの結果は、ENO1タンパク質に対して配向された免疫組織化学によって、ENO1ヌル腫瘍を特定することが可能であること、およびこの手法が例えば、ENO2阻害剤から利益を得る患者のスクリーニングに使用され得ることを示す。
上に示されるARS遺伝子およびエノラーゼ遺伝子についての結果とは反対に、研究は、CHEK1タンパク質発現が、ゲノムコピー数と相関しないことを示す。COMIC(Sanger Center)からのゲノムコピー数は、染色体11上のCHEK1が、細胞株SK−MEL−2中に1つのみのコピーを有することを示す(図26A)。実際に、マイクロアレイ発現およびアレイCGHコピー数データは、CHEK1のmRNAレベルとゲノムコピーとの間に良好な相関を示す(図26B)。しかしながら、SK−MEL−2細胞は、ウェスタンブロットによって、より低レベルのCHEK1タンパク質を発現しない(図26C)。同様に、SK−MEL−2細胞中のCHEK1の過剰発現は、AZD7762、CHEK1阻害剤に対する抵抗性を付与しない(図26D)。これらの結果は、CHEK1の一次発現対照が転写後事象であること、およびCHEK1遺伝子座におけるヘテロ接合性の喪失がCHEK1タンパク質の発現を著しく低減するのに不十分であることを示し得る。
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以下の参考文献は、それらが例示の手順または本明細書に記載されるものを相補する他の詳細を提供する限りにおいて、参照により本明細書に特異的に組み込まれる。
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