JP2016510318A - 果実細胞の大規模生産プロセス及び果実細胞による疾患の治療 - Google Patents

Abstract

【課題】天然成分から果実細胞を作製するための大規模プロセスを提供する。【解決手段】本発明の種々の実施形態において、メタボリックシンドロームまたは代謝疾患を治療、軽減、緩和または予防する方法であって、インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含む方法が説明される。さらなる実施形態において、大規模プロセスにより作製される果実細胞がさらに説明される。本発明のプロセスにより製造されたブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物は、粉末１ｋｇ当たり少なくとも１０００ｍｇの量（１０００ｍｇ／ｋｇ）のレスベラトロールを含む。【選択図】なし

Description

本発明は、果実細胞の大規模生産プロセスに関する。本発明の一実施形態は、一次及び二次代謝産物を含む果実細胞の大量インビトロ生産プロセスに関する。本発明は、さらに、果実細胞の細胞株カルス培養物の投与によってメタボリックシンドロームに関連する１若しくは複数の症状または合併症を治療、予防、緩和及び／または軽減する方法に関する。

大規模プロセスは、当技術分野において知られており、かつ様々な原料の工業生産のために必要とされている。小規模プロセスと同じ手段によって大規模プロセスを行うことはできないので、たとえ小規模プロセスが存在する場合でも、原料の大規模生産のための特有のプロセスを設計しなければならない。

栄養補助食品は、果実細胞に天然に含まれている例えばポリフェノールなどの所望の有効成分を提供する合成プロセスを用いて作製される場合がある。しかし、合成プロセスを用いると、有効成分とともに天然成分が提供されない。天然成分は、常にではないが製剤の有効性に寄与する。

他の種類の栄養補助食品は、天然植物から作製される。しかし、植物から栄養補助食品を作製する既知の大規模プロセスは全て、所望の有効成分を得るために、作製された植物細胞を抽出することを含む。しかし、例えばポリフェノール含有植物を抽出するとき、抽出物中においてポリフェノール（レスベラトロールを含む）の量は非常に多量であり得るので、最終生成物は苦い場合がある。また、植物の特定部分のみが所望の量の有効成分を含むので、当該特定部分のみをうまく抽出することもできる。

果実細胞の作製のための小規模プロセスは当技術分野において知られているが、大規模プロセスは、一次代謝産物の生産を増大させる一方で二次代謝産物の生産を最小限に抑える傾向があるため、設計がより困難である。ポリフェノールなどの有効成分は二次代謝産物であるので、大規模プロセスでの生産は手間がかかる。

したがって、天然成分から果実細胞（果実細胞の一次代謝産物及び二次代謝産物の両方の生産を含む）を作製するための大規模プロセスが必要とされている。

代謝異常は、肥満、インスリン抵抗性耐糖能異常、２型糖尿病（ＤＭＩＩ）、脂質異常症、脂肪肝、脂肪性肝炎、脂肪症に関連している。これらの代謝異常は、脳卒中心血管疾患のリスクを高める。メタボリックシンドロームの原因は、遺伝及び環境の影響を含めて多元的であると考えられる。

アテローム性動脈硬化は、血管壁に蓄積して血管内の血流通路を狭める脂肪蓄積物によって引き起こされる血管床の疾病である。この過程は、全ての動脈、特に冠動脈に影響し、最終的には冠動脈の閉塞をもたらし、結果的に心臓発作を引き起こし得る。心臓発作は、米国における若年死の原因の第１位である。

脂肪肝疾患は、組織学的に主として肝臓の大滴性（macrovesicular steatosis）によって特徴付けられる病態スペクトラムを含む。脂肪肝疾患の病理学的スペクトラムは、単純な脂肪肝（脂肪症）からその変種であり様々な程度の線維化がみられる脂肪性肝炎に及ぶ。脂肪性肝炎は、進行性であり得、肝硬変、肝不全及び肝細胞癌の原因となり得、特発性肝硬変の主な原因であり得る。よく見られる脂肪肝疾患のリスクファクター（危険因子）は、肥満、２型糖尿病、高脂血症（脂質異常症）である。

２型糖尿病は、最も多い慢性のヒト疾患の１つであり、米国における成人人口のほぼ８％、６５歳以上人口の１９％が罹患している。

メタボリックシンドロームは、「死の四重奏」または「シンドロームＸ」または「インスリン抵抗性症候群」としても知られており、様々な疾患、例えば、心血管疾患、脳卒中及び２型糖尿病、すなわちインスリン抵抗性、高インスリン血症、（腹腔内脂肪の蓄積によって引き起こされる）腹部肥満、高い血清脂質及び高血圧のリスクファクター群である。米国に住む成人の２５％がメタボリックシンドロームと診断される。メタボリックシンドロームの病態生理は、インスリン抵抗性と関連していると考えられている。リスクファクターには、以下のものが含まれる。胴囲の増加（男性で１０２ｃｍ、女性で８８ｃｍ）；高トリグリセリド（＞１５０ｍｇ／ｄＬ）；高密度リポタンパク質（ＨＤＬ）コレステロールの低下（男性で＜４０ｍｇ／ｄＬ、女性で５０ｍｇ／ｄＬ）；高血圧（＞１３０／８５ｍｍＨｇ）及び高い空腹時血糖（＞１００ｍｇ／ｄＬ）。他のリスクファクターも同様にメタボリックシンドロームに寄与しうる。さらに、リスクファクターは個体群によって異なり得る。

空腹時高血糖（ＩＦＧ）は、インスリン抵抗性に関連する糖代謝異常の前糖尿病（pre-diabetic）状態であり、空腹時血糖値１０１〜１２６ｍｇ／ｄＬとして定義される。

耐糖能異常（ＩＧＴ）は、ＩＦＧと同様の定義で定義されるインスリン抵抗性に関連する糖代謝異常の前糖尿病状態、または高グルコース食（通常は７５ｇのグルコース）経口摂取２時間後血糖値１４１〜１９９ｍｇ／ｄＬとして定義される。

代謝疾患の多くは、トリグリセリド蓄積及びインスリン抵抗性によって特徴付けられる。

様々な体内組織、例えば、筋肉、肝臓及び膵臓組織におけるトリグリセリド蓄積は、代謝疾患の発症をもたらす臓器特異的なインスリン抵抗性の重要なファクターであると考えられている。さらに、脂肪滴（組織内の脂肪体と同義）の蓄積がインスリン抵抗性の発症の早期に生じ、その重症度と相関性がある。

持続性高血圧は、いくつかの疾病及び疾患のリスクファクターのうちの１つである。高血圧は、西欧諸国における死因の第３位である虚血性脳卒中の唯一の最も重要な是正可能なリスクファクターである。脳卒中のリスクは、血圧（ＢＰ）測定値が１２０／８０ミリ水銀（ｍｍＨｇ）以上に上昇することから始まる。高血圧を収縮期血圧（ＳＢＰ）１６０ｍｍＨｇ及び／または拡張期血圧（ＤＳＰ）９５ｍｍＨｇと定義した場合、高血圧のほとんどの推定値は約４の脳卒中の相対的なリスクを示す。

地域ベースの研究は、高血圧が５０〜６０％もの患者において心不全の発症に寄与し得ることを示していた。高血圧の患者においては、心不全のリスクが男性で２倍、女性で３倍増加する。フラミンガムスタディによれば、高血圧は心不全症例の約４分の１を占める。

高血圧は、確立された心血管リスクファクターであるのみならず、アテローム性動脈硬化のリスクを増大させる。ＤＢＰの最大五分位群において、高コレステロール及び喫煙のリスクを加味したとしても、高血圧は尚もアテローム性動脈硬化のリスクに著しく寄与することが、種々の臨床試験によって示されている。

高血圧は、慢性腎臓病（ＣＫＤ）患者の８５〜９５％に発症することが報告されている。コントロールされていない高血圧は、ＣＫＤ発症のリスクファクターであり、米国における末期腎臓病の原因の第２位である。

過去においては、最も注目されていたのはＤＢＰであったが、今日では、高いＳＢＰ及び高い脈圧（ＳＢＰとＤＢＰの数値的な差）も共にリスクファクターであると認識されている。重要なことには、ＳＢＰ及びＤＢＰを組み合わせて評価する方がこれら２つの要素を個々に評価するよりも心血管リスク予測を改善することが実証されている。そうは言うものの、ＤＢＰはやはり重要な心血管リスクファクターである。フランクリンら（Franklin et al）による研究において、拡張期高血圧は心血管リスクファクターであった。拡張期高血圧の被験者は高血圧人口の１４％に相当し、拡張期高血圧の被験者の心血管リスクは正常な血圧の被験者の約２倍であることが分かった（Schillaci et al., 2009）。さらに、全国的な中国のデータベースにおいても、拡張期高血圧が心血管疾患の独立したリスクファクターであることが確認された。

脂質過酸化反応は、結果として細胞に損傷を与える過程における脂質の酸化変質を指す。脂質過酸化反応は、いくつかのリスクファクターにより心血管疾患が促進され得る１つの機構であり得る。

脂質過酸化反応は、種々の心血管リスクファクター、例えば、年齢、トリグリセリド、喫煙、高密度リポタンパク質（ＨＤＬ）コレステロール、体格指数（ＢＭＩ）などと相関が高いことが分かった。

妊婦、卵巣摘出した女性及び閉経後女性は、非妊婦、卵巣非摘出女性及び閉経前女性よりも高いレベルの脂質過酸化反応を示し、これらの段階における高レベルの脂質過酸化反応は、少なくとも部分的に、ＣＶＤのリスクを高める原因である。

本態性高血圧の患者から単離した低密度リポタンパク質（ＬＤＬ）は、酸化傾向の増加を示す。したがって、酸化ＬＤＬ（Ｏｘ−ＬＤＬ）によって加速性アテローム性動脈硬化に罹りやすくなり、ＬＤＬの脂質過酸化反応の傾向は、ＬＤＬ自体の血漿濃度と同じように重要なアテローム発生のリスクファクターであり得る。

内皮機能障害の発現としての血流依存性血管拡張反応（ＦＭＤ）は、いくつかの疾病の指標として機能し得る。ＦＭＤは、ＦＭＤの１％の低下に対してオッズ比１．３２で（ｐ＝０．００１）、冠動脈疾患（ＣＡＤ）の高い予測指標であった。アテローム性動脈硬化のみならず、全身性硬化症においても、ＦＭＤは疾病の進行と相関が高かった。ＦＭＤ値と疾病期間の間には逆相関関係があった。

閉経後の女性において、低ＦＭＤ値は、高血圧になる相対的なリスクの増加と相関があった。

ＦＭＤは、虚血性の進行した慢性心不全（ＡＣＨＦ）の患者における死亡リスクの増加に関連している（Shechter et al., 2009）。さらに、心不全（ＨＦ）及びアテローム性動脈硬化のリスクファクターの治療にもかかわらず低ＦＭＤが持続することは、慢性虚血性ＨＦの患者における心イベントの予測因子であった。

脳卒中患者は、非脳卒中患者よりも著しく低い血流依存性血管拡張反応（ＦＭＤ）値を有していた。ＦＭＤは、年齢、性別、卵円孔開存（ＰＦＯ）の有無によって調整された場合、潜因性脳卒中の独立した予測因子となり得る。

最後に、早期のアテローム性動脈硬化を発症しやすいヘテロ接合性家族性高コレステロール血症（ｈｅＦＨ）の子供においては、構造的なアテローム硬化性変化が発生する前にＦＭＤの低下が検出される。

ポリフェノール含有果実抽出物由来の栄養補助食品は、有益な効果があることで有名である。これらの制御的な構成物質の原料としての赤ワインの使用は、アルコール含有量及び糖含有量が高いために制限されている。さらに、ワイン及びワイン用ブドウの治療効果は、品種、生産地、収穫年（年間気候）、加工などに依存し、したがって、これらの制御的な化合物の原料としての赤ワイン、ブドウまたはブドウ種子への依存が一様な、または一貫した原料供給をもたらさないということが明らかにされている。さらに、果実は、多くの場合、残留殺菌剤、病原体、農薬及び汚染物質によって汚染されている。

さらに、赤ワイン及び果実抽出物から得られるポリフェノールの胃腸送達の潜在的有効性は、標的組織及び細胞に対する当該ポリフェノールのバイオアベイラビリティによって制限される。腸を通過する間のバイオアベイラビリティに顕著な相違があるために、所与の食物に含まれる特定のポリフェノールの存在量と、生体内での活性化合物としてのその濃度との間に、相関関係を指摘することはできない。例えばフラボノイドは用量の０〜６０％が小腸で吸収され、排出半減期は２〜４８時間である。ほとんどのポリフェノールは、腸内で広く代謝され、主に血清及び尿中にグルクロン酸抱合物、メチルまたは硫酸塩として存在する。既知のポリフェノールの中でも、赤ブドウ、赤ワイン及び他の食品、例えば異なる種類のベリー類及びピーナッツに含まれるファイトアレキシン・レスベラトロール（トランス−３，５，４’−トリヒドロキシスチルベン）（ＲＥＳ）は、注目の大部分を集めていた。これは、節度をもって赤ワインを消費している結果として高脂肪食を摂取しているにもかかわらず冠状動脈性疾患の発生が少ないことに関連する現象である「フレンチパラドックス」の原因であると考えられている。しかし、ＲＥＳのバイオアベイラビリティは、水溶性の低さや肝取り込みの高さなどのＲＥＳの物理化学的特性によって低下させられる。さらに、ＲＥＳの経口バイオアベイラビリティは、迅速かつ広範な代謝及び結果として生じる様々な代謝産物の形成に起因して非常に低い。

ＲＥＳ活性及び効果を調べる研究は、主に３つのレスベラトロール源に依存している。３つのレスベラトロール源とは、純粋な合成ＲＥＳと、天然植物由来のＲＥＳ（例えばイタドリ抽出物）生成物と、それには及ばないものの、赤ブドウそのものまたは赤ブドウ生成物（赤ワイン、ブドウジュース、ブドウ抽出物）である。赤ブドウ細胞（ＲＧＣ；イスラエル国フルーチュラ・バイオサイエンス社（Fruitura Bioscience Ltd）製）は、レスベラトロール及び赤ブドウに天然に存在する他の成分を含むポリフェノールの全マトリックスを含むブドウ属ヴィニフェラ種（Vitis Vinifera L.）品種の果実に由来する培養細胞の、自然のままの特許で保護された製剤である。

英国特許公開第１，４８９，８３２号 米国特許第４，７５３，８０５号明細書 欧州特許公開第０ ２２１ ８５０号 イタリア特許公開第１，２７３，４８７号

したがって、天然成分から果実細胞（果実細胞の一次代謝産物及び二次代謝産物の両方の生産を含む）を作製するための大規模プロセスが必要とされている。また、大規模プロセスで作製され得る天然（植物性）組成物であって、有効成分量が一貫して繰り返し起こり（例えばクローンの作製）、非常に生物学的に利用可能であり、かつ様々な疾病（代謝障害または代謝疾患に関連する症状または合併症を含む）の治療及び予防のために容易に投与されるような組成物が必要とされている。

本発明の一実施形態では、メタボリックシンドロームまたは代謝疾患を治療、軽減、緩和または予防する方法であって、インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含む方法が提供される。

いくつかの実施形態によれば、本発明は、対象者において、冠状動脈性疾患（アテローム性動脈硬化）、血圧、虚血、心不全、アテローム性動脈硬化、慢性腎臓病（ＣＫＤ）及び腎臓病全身性硬化症、慢性心不全、高血圧、糖尿病、高脂血症、耐糖能異常、肝臓脂肪症、高血糖症、前糖尿病状態、新規発症糖尿病、インスリン抵抗性、真性糖尿病、空腹時血糖異常、高トリグリセリド血症、抗炎症（アディポネクチン）、高コレステロール血症、低ＨＤＬレベル、脂肪肝及び肥満からなる群から選択される１若しくは複数の病気を治療する方法であって、対象者に対して、インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含む方法を提供する。いくつかの実施形態では、対象者はメタボリックシンドロームと診断されている。

発明のいくつか実施形態によれば、果実細胞の細胞株カルス培養物は、大規模プロセスであって、フラスコ内で果実細胞を増殖させるステップと、果実細胞をフラスコから最初のバイオリアクタに植菌するステップと、果実細胞を最初のバイオリアクタから別のバイオリアクタに植菌するステップ（ここで、別のバイオリアクタは最後のバイオリアクタまたは中間のバイオリアクタであり、最初のバイオリアクタまたは別のバイオリアクタのうちの少なくとも一方が使い捨てである）と、最後のバイオリアクタから果実細胞を収穫するステップとを含み、かつ最後のバイオリアクタから収穫された果実細胞が、乾燥されることを特徴とする大規模プロセスにより作製される。

本発明のいくつか実施形態によれば、マグネシウム塩、リン酸塩及び硝酸塩、またはそれらの組合せで強化されたガンボーグＢ５培地が用いられる。

本発明のいくつかの実施形態では、使い捨てバイオリアクタは、１若しくは複数のポリエチレン層から作られたものである。いくつかの実施形態では、使い捨てバイオリアクタは、ポリエチレンの内層及び外層並びにナイロンの中間層から作られたものである。

いくつかの実施形態では、メタボリックシンドロームまたは代謝疾患を治療、軽減、緩和または予防する方法であって、果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含み、果実細胞の細胞株カルス培養物は、大規模プロセスであって、フラスコ内で果実細胞を増殖させるステップと、果実細胞をフラスコから最初のバイオリアクタに植菌するステップと、果実細胞を最初のバイオリアクタから別のバイオリアクタに植菌するステップ（ここで、別のバイオリアクタは最後のバイオリアクタまたは中間のバイオリアクタであり、最初のバイオリアクタまたは別のバイオリアクタのうちの少なくとも一方が使い捨てである）と、最後のバイオリアクタから果実細胞を収穫するステップとを含み、かつ最後のバイオリアクタから収穫された果実細胞が、乾燥されることを特徴とする大規模プロセスにより作製されるような方法が提供される。

いくつかの実施形態では、炎症を治療、軽減、緩和または予防する方法であって、大規模プロセスにより作製された果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含み、大規模プロセスが、フラスコ内で果実細胞を増殖させるステップと、果実細胞をフラスコから最初のバイオリアクタに植菌するステップと、果実細胞を最初のバイオリアクタから別のバイオリアクタに植菌するステップと、最後のバイオリアクタから果実細胞を収穫するステップとを含み、別のバイオリアクタが最後のバイオリアクタまたは中間のバイオリアクタであり、かつ最初のバイオリアクタまたは別のバイオリアクタのうちの少なくとも一方が使い捨てであり、最後のバイオリアクタから収穫された果実細胞が乾燥されることを特徴とする方法が提供される。

いくつかの実施形態における組成物は、１日１回投与され得る。

いくつかの実施形態では、大規模スケールアッププロセスにおいてインビトロで増殖したブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物を含む粉末形態の組成物であって、ブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物が、ブドウ果実横断切片、ブドウ果皮、ブドウ果実果肉、ブドウ種子、有核または無核の品種のブドウ胚、あるいはブドウ種皮のうちの１つ若しくは複数に由来するものであり、かつブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物が、粉末１ｋｇ当たり少なくとも１０００ｍｇの量（１０００ｍｇ／ｋｇ）のレスベラトロールを含む組成物が提供される。

いくつかの実施形態における組成物は、組成物の単回投与後の血漿中のレスベラトロール濃度の２つのピークによって特徴付けられる。

いくつかの実施形態では、安静時及び／または運動中の拡張期及び収縮期血圧及び／または安静時の心拍数を低下させる方法であって、対象者に対して、インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含む方法が提供される。

本発明については、本明細書において、添付の図面を参照して単に例として説明されている。ここで、具体的に図面を詳細に参照して、示されている特定の形態は例として本発明の好適実施形態を説明するためのものであり、本発明の原理及び概念的側面の最も有用で容易に理解される説明であると考えられるものを提供するために示されていることを強調する。これに関して、本発明の基本的な理解のために必要である以上に詳細に本発明の構造細部を説明することはない。本明細書の説明及び図面は、本発明のいくつかの形態を如何にして実行し得るかを当業者に明らかにしている。

カラギーナン注射の前に、ＲＧＣ製剤、インドメタシン及び対照として水でそれぞれ処理したラットにおける足浮腫の測定結果（体積パーセント）を示している。反復測定のための二元配置分散分析法を用いて統計分析を行い、次にボンフェローニ・ポストホックテスト（ボンフェローニ法）を用いた。対照群（１Ｍ）と陽性対照群（２Ｍ）との比較は、２時間後及び４時間後に統計的に有意な差（ｐ＜０．００１）を示した。対照群とＲＧＣ製剤（３Ｍ）群との比較は、２時間及び４時間後に統計的に有意な差（ｐ＜０．００１）を示した。 本研究中にホットプレートによって測定された群の痛覚過敏作用の分布を示す（結果は、時間の関数としての「ベースラインからのホットプレート潜時，％」として表されている）。反復測定のための二元配置分散分析法を用いて統計分析を行い、次にボンフェローニ法を用いた。対照群（１Ｍ）と陽性対照群（２Ｍ）との比較は、２時間後及び４時間後に統計的に有意な差（ｐ＜０．０５−０．０１）を示した。対照群とＲＧＣ（３Ｍ）との比較は、４時間に統計的に有意な差（ｐ＜０．０１）を示した。 ホットプレートで測定された群の痛覚過敏作用の分布を示す（結果は、時間の関数としての「ホットプレート潜時Δ，ベースライン−実時間」として表されている）。反復測定のための二元配置分散分析法を用いて統計分析を行い、次にボンフェローニ法を用いた。対照群（１Ｍ）と陽性対照群（２Ｍ）との比較は、２時間後及び４時間後に統計的に有意な差（ｐ＜０．０５−０．０１）を示した。対照群とＲＧＣ処理マウス（３Ｍ）との比較は、４時間後に統計的に有意な差（ｐ＜０．０１）を示した。 大規模使い捨てバイオリアクタ内において強化ガンボーグＢ５培地で増殖させた４つの異なるバッチの赤ブドウ細胞の増殖曲線を示す。赤ブドウ細胞は指数増殖し、２０日後から最大４０日後に５００ｇ／１の新鮮（生）バイオマスが得られた。これらの細胞は増殖し続け、より高いバイオマスに達することができる。 異なる量の赤ブドウ細胞（ＲＧＣ）の添加あり及びなしの高フルクトース食を与えたラットにおける、ベースライン時並びに高フルクトース食を与えた３週間後及び５週間後の収縮期血圧（ＢＰ）ｖｓ時間を示す。 ＲＧＣに含まれるレスベラトロールのＬＣ−ＭＳ分析に関連するＵＶクロマトグラム（λ＝３０６ｎｍ）である。 ＲＧＣに含まれるレスベラトロールのＬＣ−ＭＳ分析に関連する抽出イオンクロマトグラム（ｍ／ｚ−２２７．０７０１−２２７．０７３７）である。 代表的なトランスＲＥＳグリコシドの負イオン（negative）ＥＳＩマススペクトル（保持時間４．６４分，ｍ／ｚ３８９．１２５０）を示す。レスベラトロール（ｍ／ｚ２２７．０７１９）はｍ／ｚ３８９．１２５０のインソースフラグメンテーションプロダクトイオンである。 水へのレスベラトロール（ＲＥＳ）の溶解度の結果を、ＲＧＣ−ＲＥＳ、合成−ＲＥＳ及び植物−ＲＥＳの溶解度と比較して示す。 全トランス型ＲＥＳの、１回分の用量のＲＧＣ−ＲＥＳを投与した後の血漿含有量を表している。示されている値は平均値である（ｎ＝１５）。 遊離トランス型ＲＥＳの、１回分の用量のＲＧＣ−ＲＥＳを投与した後の血漿含有量を表している。示されている値は平均値である（ｎ＝１５）。 ＲＧＣ摂取の１２週間後の、被験者の血漿過酸化脂質に対するＲＧＣの効果を示す（２００ｍｇ及び４００ｍｇのＲＧＣをそれぞれ投与した被験者を合わせて示す）。 ＞７０％のＦＭＤ値の相対的な肯定的な変化が起こった被験者の割合を示す（^＊ｐ＜０．０５，^＊＊ｐ＜０．００５）。

本発明を十分に理解するために、以下の詳細な説明において数々の具体的詳細を説明する。しかし、これらの具体的詳細なしでも本発明を実施することができることは、当業者には理解されるであろう。他の例では、本発明を不明瞭にしないように、公知の方法、手順及び成分についての詳細説明はしない。

本発明の種々の実施形態は、メタボリックシンドロームまたはメタボリックシンドロームに関連する症状または合併症、例えば、高血圧、糖尿病、高脂血症、耐糖能異常、肝臓脂肪症、高血糖症、前糖尿病状態、新規発症糖尿病、インスリン抵抗性、真性糖尿病、空腹時血糖異常、高トリグリセリド血症、高コレステロール血症、低ＨＤＬレベル、脂肪肝または肥満などを治療、軽減、緩和及び／または予防する方法であって、インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含む方法に関する。本発明のいくつかの実施形態では、細胞は、後述する大規模プロセスにおいて増殖させられる。

本明細書において、「果実細胞培養物」なる語は、大規模スケールアッププロセスにおいてインビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を指す。果実細胞培養物は、単細胞果実培養物（本明細書においては果実細胞株培養物またはクローン培養物）であってもよいし、あるいは互いに異なる遺伝子型（例えば異なる種）を有する複数の果実に由来する複数の細胞を含むかまたは単一の果実に由来する複数の細胞型または組織を含む異種細胞培養物であってもよい。本発明の細胞培養物は、果実の任意の部分、例えば果皮、果肉、種皮、種子肉などに由来するものであってよい。

本明細書において、「治療（する）」なる語は、疾患、病気または疾病に関連する種々の症状のうちのいくつかまたは全ての予防を指す。「治療（する）」なる語はまた、疾患の症状または根本原因の緩和、改善または軽減、疾患患者の平均寿命の延長、疾病の予防及び疾患からの完全な回復を指す。

「治療する」または「治療」なる語は、さらに、望ましくない生理的な変化または障害を遅らせる（減少させる）ことを目的とする治療を指す場合もある。本発明の適用上、有益または望ましい臨床結果には、検出可能であれ検出不能であれ、症状の緩和、疾病の範囲の縮小、疾病の安定した（すなわち、悪化していない）状態、疾病の進行の遅延または減速、疾病状態の改善または緩和及び寛解（部分寛解か完全寛解かを問わず）が含まれるが、これらに限定されるものではない。「治療」は、治療を受けていない場合に予想される生存期間に比べて、生存期間を延ばすことを意味する場合もある。

「予防する」または「予防」なる語は、所与の疾患がない個人が当該疾患に進行することを防止するかまたは不可能にするための予防または防止措置を指す。予防が必要とされる個人には、或る疾患になりやすいかまたは罹りやすい素因を持っている個人が含まれる。

本明細書において、「炎症性疾患」なる語には、慢性炎症性疾患及び疾病並びに急性炎症性疾患及び疾病が含まれるが、これらに限定されるものではない。これは例４において例示されている。例４は、ラットにおけるカラギーナンによって誘発される後足炎症と関連する足浮腫及び行動痛覚過敏が、本明細書に記載されている大規模プロセスにより製造した赤ブドウ細胞（ＲＧＣ）の経口投与によって実際的に軽減されたことを示しており、このことは、大規模プロセスで作製されたＲＧＣの抗炎症作用を示している。対照的に、Gentilli et al (2001)には、肢へのカラギーナン注射の前にラットに投与された高濃度のレスベラトロール（５０ｍｇ／ｋｇ体重）によって足浮腫が減少しなかったことが記載されている。本明細書において、「脂肪肝」なる語は、脂質代謝の障害に起因して肝細胞に脂肪が過剰に蓄積した状態を指す。脂肪肝は、様々な疾病、例えば、狭心症、心筋梗塞、脳卒中、動脈硬化症、膵炎などを引き起こし得る。

「耐糖能異常」は、本明細書においては、米国糖尿病学会の基準に基づいて定義される。耐糖能異常は、７５ｇのグルコースを摂取した２時間後の経口耐糖能試験値が１４０〜１９９ｍｇ／ｄＬ（７．８〜１１．０ｍｍｏｌ／ｌ）の場合を指す。

「空腹時血糖異常」は、本明細書においては、米国糖尿病学会の基準に基づいて定義される。空腹時血糖異常は、空腹時血糖値が１００〜１２５ｍｇ／ｄＬ（５．６〜６．９ｍｍｏｌ／ｌ）の場合として定義される。

「糖尿病」は、一般的に、空腹時血糖値が１２６ｍｇ／ｄＬ（７．０ｍｍｏｌ／ｌ）以上の場合を指す。

「インスリン抵抗性」は、本明細書においては、空腹時血中インスリン濃度が２０ｍｃＵ／ｍＬを超えた場合として定義される。

「新規発症糖尿病」は、個人において、（通常は空腹時血糖濃度が７．０ｍｍｏｌ／ｌ以上の場合に基づいて定義される）。

「前糖尿病状態」は、多くの場合に新規発症糖尿病に先行する状態であり、メタボリックシンドローム、耐糖能異常、空腹時血糖異常またはインスリン抵抗性によって特徴付けることができる。

「メタボリックシンドローム」または「シンドロームＸ」は、本明細書においては、全米コレステロール教育プログラム（ＮＣＥＰ）成人治療委員会ＩＩＩ（ＡＴＰ ＩＩＩ）のガイドラインに基づいて、以下のファクター、すなわち、１）胴囲の増加（男性で＞１０２ｃｍ［＞４０インチ］、女性で＞８８ｃｍ［＞３５インチ］）；２）高トリグリセリド（＞１５０ｍｇ／ｄＬ）；３）低ＨＤＬコレステロール（男性で＜４０ｍｇ／ｄＬ、女性で＜５０ｍｇ／ｄＬ）；４）最適でない血圧（収縮期＞１３０ｍｍＨｇまたは拡張期ｍｍＨｇ）；及び５）空腹時血糖異常（＞１１０ｍｇ／ｄＬ）のうちの３つ以上の存在によって定義される。

「高血糖症」は、空腹時血糖濃度が７．０ｍｍｏｌ／ｌ以上の場合である。

「肝臓脂肪症」は、肝細胞内に脂質が異常に溜まることを説明する過程を指す。脂肪症は、肥満、インスリン抵抗性、アルコール依存症またはウイルス感染に起因し得る。

本発明の種々の実施形態は、メタボリックシンドロームまたは代謝疾患あるいはメタボリックシンドロームに関連する症状または合併症、例えば、高血圧、糖尿病、高脂血症、耐糖能異常、肝臓脂肪症、高血糖症、前糖尿病状態、新規発症糖尿病、インスリン抵抗性、真性糖尿病、空腹時血糖異常、高トリグリセリド血症、高コレステロール血症、低ＨＤＬレベル、脂肪肝または肥満などを治療、軽減、緩和及び／または予防する方法であって、実質的にインビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物からなる組成物を投与するステップを含む方法に関する。

本発明の一実施形態では、炎症性疾患を治療する方法であって、本発明の種々の実施形態により大規模プロセスで製造されたブドウ細胞の細胞培養物を含む医薬組成物または栄養補助食品組成物あるいは食品添加物を、必要とする対象者に投与することによって治療する方法が提供される。

いくつかの実施形態によれば、果実細胞の細胞株カルス培養物はブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物である。いくつかの実施形態によれば、ブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物は、ブドウ果実横断切片、ブドウ果皮、ブドウ果実果肉、ブドウ種子、有核または無核の品種のブドウ胚、あるいはブドウ種皮のうちの１つ若しくは複数に由来する。

いくつかの実施形態によれば、対象者における血圧を下げる方法であって、当該対象者に対して、インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含む方法が提供される。対象者は、健常者であってよい。いくつかの実施形態では、対象者は、少なくとも週３回、少なくとも３０分間、スポーツ活動に取り組んでいる健康な健常者である。

いくつかの実施形態によれば、「血圧を下げる」なる語は、安静時及び／または運動中の拡張期及び収縮期血圧を低下させかつ／または安静時の心拍数を低下させることを指し、対象者に対して、インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含む。

このことは、例８及び表１８〜表１９において実証される。例８及び表１８〜表１９には、健康で適度に訓練されたサイクリスト（自転車乗り）における６週間のＲＧＣ添加の効果が示されており、運動後の安静時拡張期血圧及びピーク拡張期血圧の著しい減少が示されている。ＲＧＣは、プラセボ群と比較して、安静時の収縮期血圧及び安静時の心拍数をも減少させた。

いくつかの実施形態によれば、組成物は栄養補助食品組成物である。いくつかの実施形態によれば、組成物は医薬組成物である。いくつかの実施形態によれば、組成物は食品添加物である。さらに別の実施形態によれば、栄養補助食品組成物は、栄養補助食品の許容される担体をさらに含む。さらに別の実施形態によれば、医薬組成物は、医薬的に許容される担体をさらに含む。さらに別の実施形態によれば、組成物は、食品添加物の許容される担体をさらに含む。

本明細書においては、「医薬組成物」なる語は、本明細書に記載されている種々の有効成分（すなわち、以下においてさらに詳細に説明する果実細胞培養物）のうちの１つ以上または混合物に、他の化学成分（生理学的に好適な担体及び賦形剤など）を加えて調合したものを指す。医薬組成物の目的は、生物への化合物の投与を促進することである。本発明のいくつかの実施形態によれば、有効成分は果実（例えばブドウ）に由来するので、ここで用いられる医薬組成物は栄養補助食品組成物及び／または食品添加物である。「食品添加物」なる語は、ＦＤＡによって２１ Ｃ．Ｆ．Ｒ． １７０．３（ｅ）（１）において定義され、食品に添加されることを意図する任意の液体または固体物質を含む。この物質は、例えば、独特な味及び／または香りまたは生理作用を有する物質（例えばビタミン）を含み得る。さらに、果実細胞培養物及びそれらから得られる製剤を飼料添加物として動物に与えることができる。

本明細書においては、「有効成分」なる語は、治療効果を担うことができる果実細胞培養物を指す。果実細胞培養物の治療効果は、果実細胞培養物内に含まれる所定量の活性薬剤（例えばポリフェノール）あるいは果実細胞培養物内に含まれる特定の組合せまたは比率の活性薬剤から得ることができる。

さらなる実施形態によれば、インビトロで増殖した細胞株カルス培養物は乾燥させられる。

いくつかの実施形態によれば、細胞株カルス培養物は少なくとも０．５％のポリフェノールを含む。さらなる実施形態によれば、細胞株カルス培養物は少なくとも２％のポリフェノールを含む。ポリフェノール含有量は、吸光光度法であるフォーリン・チオカルト（Folin-Ciocalteau）試験やＨＰＬＣ分析など、当分野で既知の方法を用いて決定することができる。

本明細書において、「ポリフェノール」なる語は、２以上のフェノール基を有する天然の植物有機化合物を指す。ポリフェノールは、フェノール酸などの単純な分子からタンニンなどの大きな高分子化合物まで様々であり得る。ポリフェノールのフェノール環は、通常、様々な糖分子、有機酸及び／または脂質に共役する。この共役化学構造の相違が、様々なポリフェノール化合物の健康上の特性及び作用機序の化学的分類及びバリエーションの原因である。ポリフェノールの例には、アントシアニン、バイオフラボノイド（下位分類のフラボン、フラボノール、イソフラボン、フラバノール、及びフラバノンを含む）、プロアントシアニン、キサントン、フェノール酸、スチルベン及びリグナンが含まれるが、これらに限定されるものではない。レスベラトロール（３，４，５−トリヒドロキシスチルベン）は、ポリフェノールの一種であり、モノマー形態で現れるポリフェノールのスチルベンである；トランス型レスベラトロール、シス型レスベラトロール、トランス型グルコシド及びシス型グルコシド。

ポリフェノールを含む果実の例には、ブドウ、リンゴ、ブルーベリー、プルーン、クランベリー、エルダーベリー、ビルベリー、リンドウ、オレンジ、マンゴー、キウイ、ザクロ、ブラックベリー、ラズベリー、イチゴ、梨、サクランボ、プラム、トマト、グレープフルーツ、パイナップル、柿、アカフサスグリ、エボジア果実が含まれるが、これらに限定されるものではない。

本発明の一実施形態によれば、果実はブドウである。ブドウは、色づいたブドウ（例えば、赤色、黒色、紫色、青色及びそれらの間の色の変化）であってよい。あるいは、ブドウは、色づいていないブドウ（例えば、緑色または白色、またはそれらの間の色の変化）であってよい。

本発明のこの態様の果実は、野生品種または栽培（培養）品種のものであり得る。栽培ブドウの例には、ブドウ属に属するブドウが含まれる。ブドウ属の品種の例には、ブドウ属ヴィニフェラ種（Vitis vinifera）、シルべストリス種（V. silvestris）、ムスカディニア種（V. muscadinia）、ロトゥンディフォリア種（V. rotundifolia）、リパリア種（V. riparia）、シャトルウォーシー種（V. shuttleworthii）、ラブルスカ種（V. lubrisca）、ダビディ種（V. daviddi）、アムレンシス種（V. amurensis）、ロマネリ種（V. romanelli）、エースティバリス種（V. aestivalis）、シンシアナ種（V. Cynthiana）、シネリア種（V. cineria）、パルメイト種（V. palmate）、ムンソニアーナ種（V. munsoniana）、コルディフォリア種（V. cordifolia）、ハイブリッドＡ２３−７−７１、アセリフォリア種（V. acerifolia）、トレレアシー種（V. treleasei）及びベチュリフォリア種（V. betulifolia）が含まれるが、これらに限定されるものではない。

いくつかの実施形態によれば、果実細胞または細胞株カルス培養物は、色づいたブドウまたは色づいていないブドウから得られる。本明細書において説明されているように、いくつかの実施形態によれば、果実細胞は、果実細胞培養物から作成される。本発明のいくつかの実施形態によれば、果実細胞は、ブドウ果実細胞の培養物から作成される。いくつかの実施形態によれば、ブドウ果実細胞の培養物は、ブドウ果実横断切片、ブドウ果皮、ブドウ果実果肉、ブドウ種子、有核または無核の品種のブドウ胚、あるいはブドウ種皮のうちの１つ若しくは複数に由来する。別の実施形態によれば、果実細胞培養物は、植物の任意の部分に由来するものであってよい。植物の任意の部分には、胚乳、アリューロン層、胚（または胚盤及び子葉としての胚の一部）、果皮、茎、葉、塊茎、毛状突起及び根が含まれるが、これらに限定されるものではない。

本発明のいくつかの実施形態によれば、ポリフェノールを含む原料の量は果実によって異なり得るが、果実細胞培養物を作製するための培養プロトコールの使用は、製剤及びその含有量の再現性を保証する。したがって、同じ培養物から作製した果実細胞の様々なバッチは、類型的なＨＰＬＣフィンガープリントを有する。いくつかの実施形態によれば、各バッチにおける様々な原料の濃度は変化し得るが、上記したように、同じ培養物から作製した場合、ＨＰＬＣフィンガープリントは全てのバッチで一貫している。

さらなる実施形態によれば、本発明の組成物は、粘膜投与向けに設計されている。

いくつかの実施形態によれば、本発明の組成物は味がない（無味である）。いくつかの実施形態によれば、本発明の組成物は味がある。

いくつかの実施形態によれば、本発明の組成物は経口組成物である。他の実施形態によれば、本発明の組成物は、洗口液、細長片、泡、粉末、チューインガム、経口噴霧剤、ロゼンジ（薬用キャンディ）、カプセル及び歯磨き粉の形態をとる。さらに別の実施形態によれば、本発明の組成物は粉末の形態をとる。

いくつかの実施形態によれば、アルコール依存症、肝臓中毒、心不全などのアルコール関連する影響を回避するために、果実細胞培養物にはアルコールが含まれない。

本発明の種々の実施形態は、メタボリックシンドロームまたは代謝疾患、あるいはメタボリックシンドロームまたは代謝疾患に関連する症状または合併症、例えば、高血圧、糖尿病、高脂血症、耐糖能異常、肝臓脂肪症、高血糖症、前糖尿病状態、新規発症糖尿病、インスリン抵抗性、真性糖尿病、空腹時血糖異常、高トリグリセリド血症、高コレステロール血症、低ＨＤＬレベル、脂肪肝または肥満などを治療、軽減、緩和及び／または予防する方法であって、インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物と、１％未満のアルコールとを含むノンアルコール組成物を投与するステップを含む方法に関する。

いくつかの実施形態によれば、果実細胞の細胞株カルス培養物はブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物である。いくつかの実施形態によれば、ブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物は、ブドウ果実横断切片、ブドウ果皮、ブドウ果実果肉、ブドウ種子、有核または無核の品種のブドウ胚、あるいはブドウ種皮のうちの１つ若しくは複数に由来する。さらなる実施形態によれば、組成物は、栄養補助食品組成物または医薬組成物、あるいは食品添加物である。

糖類の摂取に関連する問題（例えば、肥満、糖尿病、虫歯など）を回避するために、いくつかの実施形態によれば、果実培養物に含まれる甘味料は１０％ｗ／ｖ未満である。本明細書において、「甘味料」なる語は、例えばスクロース（ショ糖）、グルコース（ブドウ糖）、フルクトース（果糖）などの、甘味を与える糖を指す。

本発明の種々の実施形態は、メタボリックシンドロームあるいはメタボリックシンドロームまたは代謝疾患に関連する症状または合併症、例えば、高血圧、糖尿病、高脂血症、耐糖能異常、肝臓脂肪症、高血糖症、前糖尿病状態、新規発症糖尿病、インスリン抵抗性、真性糖尿病、空腹時血糖異常、高トリグリセリド血症、高コレステロール血症、低ＨＤＬレベル、脂肪肝または肥満などを治療、軽減、緩和及び／または予防する方法であって、インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を含む低糖組成物（１０％未満の甘味料を含む）を投与するステップを含む方法に関する。いくつかの実施形態によれば、甘味料の量は５％未満である。いくつかの実施形態によれば、甘味料の量は２％未満である。いくつかの実施形態によれば、甘味料の量は１％未満である。いくつかの実施形態によれば、甘味料の量は０．５〜１％である。

いくつかの実施形態によれば、果実細胞の細胞株カルス培養物はブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物である。さらなる実施形態によれば、本発明の組成物は、栄養補助食品組成物または医薬組成物、あるいは食品添加物または機能性食品及び機能性飲料。通常、対象者が摂取し得る粉末の量は、１回の投与当たり、少なくとも１ｍｇ、５ｍｇ、１０ｍｇ、１５ｍｇ、２０ｍｇ、２５ｍｇ、３０ｍｇ、３５ｍｇ、４０ｍｇ、４５ｍｇ、５０ｍｇ、７０ｍｇ、９０ｍｇ、１００ｍｇ、１２０ｍｇ、１４０ｍｇ、１６０ｍｇ、１８０ｍｇ、２００ｍｇ、２５０ｍｇ、３００ｍｇ、３５０ｍｇ、４００ｍｇ、４５０ｍｇ、５００ｍｇ、５５０ｍｇ、６００ｍｇ、６５０ｍｇ、７００ｍｇ、７５０ｍｇ、８００ｍｇ、９００ｍｇ、１０００ｍｇ、１１００ｍｇ、１５００ｍｇ、１７００ｍｇ、２０００ｍｇなどから５０ｇまでの範囲であり得る。いくつかの実施形態では、粉末量は、対象者の年齢及び体重並びに投薬計画に応じて、約５〜１０ｍｇ、１０〜２０ｍｇ、２０〜３０ｍｇ、３０〜４０ｍｇ、４０〜５０ｍｇ、５０〜６０ｍｇ、６０〜７０ｍｇ、７０〜８０ｍｇ、９０〜１００ｍｇ、１００〜２００ｍｇｍｇ、２００〜３００ｍｇ、３００〜４００ｍｇ、４００〜５００ｍｇ、５００〜６００ｍｇ、６００〜７００ｍｇ、７００〜８００ｍｇｍｇ、８００〜９００ｍｇ、９００〜１０００ｍｇ、１〜２ｇ、２〜３ｇ、３〜４ｇ、４〜５ｇ、５〜１０ｇまたは１０〜５０ｇである。いずれの場合も、投与される組成物の量は、治療される対象者、苦痛の激しさ、投与法、医師の判断などによって決まることになる。本発明の組成物は、１日１回ないし３回、あるいは必要な場合は１日４回以上摂取することができる。本発明の組成物は、長期間または特定の期間、例えば少なくとも１週間、２週間、１箇月、２箇月、３箇月、４箇月またはそれ以上の間、摂取することができる。

例４に見られるように、高フルクトース食を与えたラットにおける体重、収縮期ＢＰ、血漿トリグリセリド、インスリン及びアディポネクチンのレベルを、ベースライン時並びに高フルクトース食を与えた３週間後及び５週間後に測定した。高フルクトース食は、血圧、血漿トリグリセリド、インスリン及びアディポネクチンのレベルの著しい上昇を誘発した。高フルクトース食が与えられたラットに対する赤ブドウ培養物（ＲＧＣ）の効果を試験した。果実細胞培養物の添加は、高フルクトース食によって誘発される血圧上昇（図５）並びに高フルクトース食によって誘発される血漿トリグリセリド及びインスリンのレベルの上昇を抑制した。さらに、治療からすでに２週間経過後、４ｍｇのレスベラトロールしか含まれていない赤ブドウ培養物の投与で、血圧に対する果実細胞培養物の効果が観察された。これは、ＲＧＣに含まれる天然のレスベラトロール及び他のブドウポリフェノールの独自の組合せによって生じ得る。いくつかの実施形態では、収縮期血圧、インスリン抵抗性及びトリグリセリドのレベルに対するレスベラトロールの有効量は、４ｍｇ（２００ｍｇ／Ｋｇ／日のＲＧＣ粉末）〜１６ｍｇ（８００ｍｇ／Ｋｇ／日のＲＧＣ粉末）である。いくつかの実施形態では、収縮期血圧、インスリン抵抗性及びトリグリセリドのレベルに対するレスベラトロールの有効量は、０．５ｍｇ（５０ｍｇ／Ｋｇ／日のＲＧＣ粉末）〜４０ｍｇ（２４００ｍｇ／Ｋｇ／日のＲＧＣ粉末）である。

ＳＤラットにおいてメタボリックシンドロームを誘発するために高フルクトース食を用いたことに留意されたい。この誘発は、高フルクトース食を与えたラットにおける収縮期血圧、トリグリセリド及びインスリンのレベルの増加によって裏付けられる。このモデル系では、ＲＧＣの添加は、ＢＰを低下させるのみならず、メタボリックシンドロームの他の症状を改善させた。

本発明の別の実施形態によれば、細胞培養物は、植物の任意の部分、例えば、胚乳、糊粉層（アリューロン層）、胚（または胚盤及び子葉としての胚の部分）、果皮、茎、葉、塊茎、毛状突起及び根に由来するものであってよいが、これらに限定されるものではない。

経口投与に適した製剤は、各々が所定量の果実細胞培養物を含む個別のユニット、例えば、粉末、ピル、トローチ、ロゼンジ、カプセル、カシェー剤または錠剤などとして作製することができる。

「治療有効量」なる語は、（ｉ）本明細書に記載されている特定の疾病、病気または疾患を治療するか、（ｉｉ）特定の疾病、病気または疾患の１若しくは複数の症状を軽減、改善するかまたは取り除くか、あるいは（ｉｉｉ）特定の疾病、病気または疾患の１若しくは複数の症状の発症を遅らせるような、本発明の化合物の量を意味する。特定の実施形態では、治療有効量は、血糖値を下げる、インスリン分泌を増加させる、グルカゴン分泌を減少させる、インスリン抵抗性を低下させる、インスリン感受性を高める、のうちの１つ以上を達成することができる。

有効成分を適切な機械で圧縮して粉末や顆粒などの自由流動形態にし、任意で、結合剤、潤滑剤、不活性希釈剤、防腐剤、界面活性剤または分散剤と混合することによって、圧縮錠を作製することができる。不活性液体希釈剤で湿らせた粉末状の有効成分の混合物を適切な機械で成形することによって、成形錠剤を作製することができる。錠剤は、任意でコーティングしたり割線を入れたりすることができ、任意で錠剤からの有効成分の徐放または制御放出がなされるように形作られる。

経口使用のために、水性または油性の懸濁液、分散性の粉末または顆粒、乳剤、硬カプセル剤または軟カプセル剤、例えば、ゼラチンカプセル、シロップまたはエリキシル剤を調合することができる。

より速い吸収は、香りレベルの増加や、他の香り成分、例えば、メントール及びメントール誘導体、リモネン、カルボン、イソメントール、ユーカリプトール、メントン、ピネン、樟脳（カンフル）及び樟脳誘導体、並びにモノテルペン天然物、モノテルペン誘導体及びセスキテルペン（カリオフィレン及びコパエンを含む）などの添加の影響を受け得る。

製剤は、血流への活性薬剤の送達を増大させる他の化学物質を含むこともできる。当該化学物質の例には、２３−ラウリルエーテル、アプロチニン、アゾン、塩化ベンザルコニウム、塩化セチルピリジニウム、臭化セチルトリメチルアンモニウム、シクロデキストリン、デキストラン硫酸塩、ラウリン酸、ラウリン酸／プロピレングリコール、リゾホスファチジルコリン、メントール、メトキシサリチル酸、オレイン酸メチル、オレイン酸、ホスファチジルコリン、ポリオキシエチレン、ポリソルベート８０、ＥＤＴＡナトリウム塩、グリココール酸ナトリウム、グリコデオキシコール酸ナトリウム、ラウリル硫酸ナトリウム、サリチル酸ナトリウム、タウロコール酸ナトリウム、タウロデオキシコール酸ナトリウム、スルホキシド及び種々のアルキルグリコシドが含まれるが、これらに限定されるものではない。

他の変更も活性薬剤の放出速度に影響を及ぼし得る。基剤を柔らかくするためのテクスチャ調整剤（Texture modifier）は、放出をより速くすることができ、固い基剤は、放出をより遅くすることができる。重炭酸ナトリウムや水酸化ナトリウムなどのアルカリ性物質を添加することによって唾液を弱アルカリ性にすることができ、それによって血流中への薬剤の頬／舌吸収が増加し得る。

本発明の活性薬剤の放出は、製剤の形状及び大きさにも影響され得る。例えば、広い表面積を有する平らな板ガムは、噛んだときにガムから唾液へ活性薬剤をより速く放出し得るが、円形や立方体のガムは、薬剤及び活性薬剤をより遅く放出し得る。

チューインガムの錠剤化は、英国特許公開第１，４８９，８３２号（特許文献１）、米国特許第４，７５３，８０５号明細書（特許文献２）、欧州特許公開第０ ２２１ ８５０号（特許文献３）及びイタリア特許公開第１，２７３，４８７号（特許文献４）に開示されている。これらの特許には、活性薬剤をチューインガムに添加して錠剤化したものが開示されている。

製剤に着色剤を加えることもできる。いくつかの実施形態によれば、着色剤は食品品質の色素を含む。いくつかの実施形態によれば、製剤に塗膜形成要素を加えることができる。製剤に加えることができる塗膜形成要素には、メチルセルロース、ゼラチン、ヒドロキシプロピルセルロース、エチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、カルボキシメチルセルロース及びそれらの組合せが含まれる。別の実施形態によれば、本発明の果実細胞培養物は、非着色濃度で提供される。

鼻吸入による投与の場合、便利なことに、適切な推進剤、例えば、ジクロロジフルオロメタン、トリクロロフルオロメタン、ジクロロテトラフルオロエタンまたは二酸化炭素を用いて、加圧パックまたはネブライザからエアロゾルスプレー製剤の形態で、有効成分を送達することができる。加圧エアロゾルの場合、定量を投与するためのバルブを提供することによって、投与単位を決定することができる。ディスペンサで使用するための例えばゼラチンのカプセル及びカートリッジは、化合物と適切な粉末ベース（ラクトースやデンプンなど）との粉末混合物を含んで形にされ得る。

いくつかの実施形態によれば、果実細胞培養物及びそれらから得られる製剤は、食品添加物として与えられ、経口摂取することもできる。

いくつかの実施形態によれば、様々な食品に食品添加物及び食品成分組成物を添加することができる。さらなる実施形態によれば、血流への送達を増大させるために、飲み込む前に口の中に留められる食品に果実細胞培養物が加えられる。当該食品の例には、チョコレート、菓子及びアイスクリーム、乳製品、バー、パン、シリアル、ヨーグルト並びに飲料が含まれる。

本明細書において、「食品」なる語は、実質的にタンパク質、炭水化物及び／または脂肪からなる物質であって、成長、回復及び生命維持に必要なプロセスを維持するため並びにエネルギーを供給するために生物の体内で使用されるものを表現する言葉である。食品は、ミネラル、ビタミン、調味料などの補助的な物質も含み得る。マリアム・ウェブスター社の大学生用の辞書（Merriam-Webster's Collegiate Dictionary, 10th Edition, 1993）を参照されたい。本明細書における「食品」なる語は、ヒトまたは動物の摂取に適している飲料をさらに含む。

いくつかの実施形態による製剤を含む食品はまた、追加の添加物、例えば、抗酸化剤、甘味剤、香味剤、着色剤、防腐剤、ビタミン及びミネラルなどの栄養添加剤、アミノ酸（すなわち、必須アミノ酸）、乳化剤、酸味料などのｐＨ調整剤、親水コロイド、消泡剤及び離型剤、小麦粉改良剤または小麦粉強化剤、膨らまし剤または膨張剤、ガス及びキレート剤など（これらの有用性及び効果は当分野で公知である）も含み得る。

有効成分の毒性及び治療効果は、インビトロで、細胞培養物において、または実験動物において、標準的な薬学的手順によって判定することができる。これらのインビトロ及び細胞培養物アッセイ並びに動物実験から得られたデータは、ヒトにおいて用いるための投与量の範囲を定める際に用いることができる。投与量は、用いられる剤形及び利用される投与経路によって異なり得る。個々の医師は、患者の身体状態を考慮して、ぴったりの製剤、投与経路及び投与量を選択することができる（例えば、Fingl, et al., 1975, in "The Pharmacological Basis of Therapeutics", Ch. 1 p.1を参照）。

本発明のいくつかの実施形態では、メタボリックシンドロームの治療、緩和または予防に用いるための、大規模スケールアッププロセスにおいてインビトロで増殖したブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物を含む粉末形態の組成物であって、ブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物が、ブドウ果実横断切片、ブドウ果皮、ブドウ果実果肉、ブドウ種子、有核または無核の品種のブドウ胚、あるいはブドウ種皮のうちの１つ若しくは複数に由来するものであり、かつブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物が、粉末１ｋｇ当たり少なくとも１０００ｍｇの量（１０００ｍｇ／ｋｇ）のレスベラトロールを含む組成物が提供される。本発明のいくつかの実施形態では、本明細書に記載の大規模プロセスの種々の実施形態により製造されるブドウ細胞におけるレスベラトロールの少なくとも９０％は、トランス型グルコシドレスベラトロールである。

いくつかの実施形態によれば、本発明のプロセスで作製された果実細胞に含まれる様々なポリフェノールの相対量は、農業により生産されたブドウ果実に含まれる様々なポリフェノールの相対量とは異なる。このことは、例３の表９にはっきりと見られる。表９は、本発明の種々の実施形態により大規模プロセスで生成された乾燥ブドウ細胞培養物における全レスベラトロールを、ブドウ中のレスベラトロールの量と比較したものである。いくつかの実施形態によれば、本発明のプロセスで作製される果実細胞においては、農業により生産されるブドウ果実に比べて、特定のポリフェノールの量が増大される。いくつかの実施形態によれば、果実細胞中のレスベラトロールの量が増大される。いくつかの実施形態によれば、果実細胞（ブドウ細胞であり得る）を乾燥させて粉末にした後の、果実細胞（ブドウ細胞であり得る）に含まれるレスベラトロールの量は、１０００〜５００００ｍｇ／ｋｇである。本発明のいくつかの実施形態によれば、果実細胞を乾燥させて粉末にした後のレスベラトロールの量は１０００ｍｇ／ｋｇ以上である。本発明のいくつかの実施形態によれば、果実細胞を乾燥させて粉末にした後のレスベラトロールの量は３０００ｍｇ／ｋｇ以上である。本発明のいくつかの実施形態によれば、果実細胞を乾燥させて粉末にした後のレスベラトロールの量は５０００ｍｇ／ｋｇ以上である。本発明のいくつかの実施形態によれば、果実細胞を乾燥させて粉末にした後のレスベラトロールの量は、１００００ｍｇ／ｋｇ以上である。本発明のいくつかの実施形態によれば、果実細胞を乾燥させて粉末にした後のレスベラトロールの量は２００００ｍｇ／ｋｇ以上である。本発明のいくつかの実施形態によれば、果実細胞を乾燥させて粉末にした後のレスベラトロールの量は３００００ｍｇ／ｋｇ以上である。本発明のいくつかの実施形態によれば、果実細胞を乾燥させて粉末にした後のレスベラトロールの量は４００００ｍｇ／ｋｇ以上である。本発明のいくつかの実施形態によれば、果実細胞を乾燥させて粉末にした後のレスベラトロールの量は５００００ｍｇ／ｋｇ以上である。本発明のいくつかの実施形態によれば、果実細胞を乾燥させて粉末にした後のレスベラトロールの量は６００００ｍｇ／ｋｇ以上である。本発明のいくつかの実施形態によれば、果実細胞を乾燥させて粉末にした後のレスベラトロールの量は７００００ｍｇ／ｋｇ以上である。

いくつかの実施形態によれば、本発明のプロセスで作製された果実細胞中の様々な成分の相対量は、農業により生産されたブドウ果実中の様々な成分の相対量とは異なる。いくつかの実施形態によれば、果実細胞中の糖の相対量は、農業により生産されたブドウ果実中の糖の相対量に比べて低下している。

一実施形態によれば、乾燥果実（ドライフルーツ）細胞には最大１０％ｗ／ｖの甘味料が含まれる。いくつかの実施形態によれば、乾燥果実細胞には最大１５％ｗ／ｖの甘味料が含まれる。一実施形態によれば、乾燥果実細胞には１０〜１５％ｗ／ｖの甘味料が含まれる。一実施形態によれば、乾燥果実細胞には１５〜２０％ｗ／ｖの甘味料が含まれる。いくつかの実施形態によれば、本発明の大規模方法により作製した果実細胞は、１０％ｗ／ｖ未満の甘味料を含む。いくつかの実施形態によれば、果実細胞は５％ｗ／ｖ未満の甘味料を含む。いくつかの実施形態によれば、果実細胞は３％ｗ／ｖ未満の甘味料を含む。いくつかの実施形態によれば、果実細胞は２％ｗ／ｖ未満の甘味料を含む。いくつかの実施形態によれば、果実細胞は１％ｗ／ｖ未満の甘味料を含む。いくつかの実施形態によれば、果実細胞は約１％ｗ／ｖの甘味料を含む。本明細書において、「甘味料」なる語は、例えばスクロース（ショ糖）、グルコース（ブドウ糖）、フルクトース（果糖）などの、甘味を与える糖を指す。

一実施形態によれば、乾燥果実細胞は２０％ｗ／ｖ未満の甘味料を含む。一実施形態によれば、乾燥果実細胞は３０％ｗ／ｖ未満の甘味料を含む。

いくつかの実施形態によれば、果実細胞は乾燥させられるので、果実細胞に含まれる原料（糖を含む）が濃縮される。いくつかの実施形態によれば、原料は５倍濃縮される。いくつかの実施形態によれば、原料は１０倍濃縮される。いくつかの実施形態によれば、原料は１５倍濃縮される。いくつかの実施形態によれば、原料は２０倍濃縮される。いくつかの実施形態によれば、原料は２５倍濃縮される。いくつかの実施形態によれば、原料は３０倍濃縮される。

いくつかの実施形態によれば、本発明の大規模プロセスにより作製した果実細胞は味がない（無味である）。他の実施形態によれば、本発明の大規模プロセスにより作製した果実細胞は味がある。本発明の種々の実施形態は、果実細胞の大規模インビトロ生産プロセスに関する。本発明のいくつかの実施形態では、本プロセスは、果実細胞の抽出を含まない。驚いたことに、本明細書に記載されている大規模プロセスにより製造された果実細胞は、大量のポリフェノールを含むことが示された。

本発明の一実施形態では、増殖させたブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物の大規模インビトロ生産プロセスであって、フラスコ内でブドウ細胞を増殖させるステップと、ブドウ細胞をフラスコから最初のバイオリアクタに植菌するステップと、生成されたブドウ細胞を収穫するステップとを含む大規模プロセスが提供される。本発明のいくつかの実施形態では、増殖させたブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物の大規模インビトロ生産プロセスであって、フラスコ内でブドウ細胞を増殖させるステップと、ブドウ細胞をフラスコから最初のバイオリアクタに植菌するステップと、ブドウ細胞を最初のバイオリアクタから別のバイオリアクタに植菌するステップ（ここで、別のバイオリアクタは最後のバイオリアクタまたは中間のバイオリアクタであり、１つ以上の中間のバイオリアクタによるさらにいくつかのステップが行われ得る、かつ最初のバイオリアクタまたは別のバイオリアクタのうちの少なくとも一方が使い捨てである）と、最後のバイオリアクタからブドウ細胞を収穫するステップとを含み、最後のバイオリアクタから収穫されたブドウ細胞が、乾燥されることを特徴とする大規模プロセスが提供される。

「使い捨てバイオリアクタ」とは、使い捨てのバッグ（袋）を備えたバイオリアクタを意味し、培養容器の代わりに単回使用バッグであり得る。使い捨てバッグは、通常、３層以上のプラスチック箔で作られている。本発明のいくつかの実施形態では、１つの層は、機械的安定性を提供するために、ポリエチレン製、ポリエチレンテレフタレート製またはＬＤＰＥ製である。第２の層は、ガスバリアとして働くナイロン、ＰＶＡまたはＰＶＣを用いて作られている。最後に、接触層は、ＰＶＡまたはＰＰ、あるいは別のポリエチレン、ポリエチレンテレフタレートまたはＬＤＰＥの層から作られている。医療用の場合、生成物に接触する単回使用材料は、欧州医薬品庁（ＥＭＡ）、または他の領域を統括する同様の当局による認定を受けたものでなければならない。

本発明のいくつかの実施形態によれば、使い捨てバイオリアクタは、１若しくは複数のポリエチレン層から作られたものである。本発明のいくつかの実施形態では、使い捨てバイオリアクタは、ポリエチレンの内層及び外層並びにナイロンの中間層から作られたものである。

一般的に、単回使用バイオリアクタを作製するための２つの異なる手法が存在し、両者は培地を撹拌するために用いる手段が異なる。

いくつかの単回使用バイオリアクタは、従来のバイオリアクタと同様に撹拌器を用いるが、撹拌器はプラスチック製のバックに組み込まれている。閉じられたバック及び撹拌器は、事前に滅菌される。使用時には、バックはバイオリアクタに取り付けられ、撹拌器は駆動機構に機械的または磁気的に接続される。

他の単回使用バイオリアクタは、揺動（ロッキングモーション）によって撹拌される。他の単回使用バイオリアクタは、エアリフト型バイオリアクタである。エアリフト型バイオリアクタでは、反応培地は撹拌され、空気の導入によって通気される。この型のバイオリアクタは、単回使用バック内で機械撹拌器を必要としない。

いくつかの実施形態によれば、果実細胞を作製するための大規模プロセスは、複数の後続ステップからなる。本発明のいくつかの実施形態によれば、各ステップで作製される果実細胞の量は、その前のステップで作製されたものよりも多いかまたは多くない。さらに、各ステップで作製された果実細胞は、植菌されるかまたは収穫されて、大規模プロセスの次のステップのための発端（スタータ）として用いられる。大規模プロセスの最後のステップでは、通常、果実細胞を、増殖プロフィールの平坦域に到達するまで増殖させる。

本発明の大規模プロセスを用いる利点は明らかであり、実施例の項に示されている。例２の実験２に見られるように、強化ガンボーグＢ５培地による赤ブドウ細胞（ＲＧＣ）バイオマスは、非強化ガンボーグＢ５培地の存在下で得られるバイオマスに比べて遥かに大きかった。さらに、種々の濃度のマグネシウム塩、硝酸塩及びリン酸塩（ＫＮＯ_３、ＭｇＳＯ_４、ＭｇＮＯ_３、ＮａＨ_２ＰＯ_４）を含有するガンボーグＢ５培地を使用することにより、大規模バイオリアクタにおいてさえ、生成された細胞中に高いレスベラトロールレベルが得られた。

表４及び例２の実験３は、大規模使い捨てバイオリアクタ内において強化培地で増殖させたブドウ細胞に含まれる全ポリフェノール及びレスベラトロールのレベルが、三角フラスコで増殖させたブドウ細胞において得られたレベルよりも高かったこと、すなわち、それぞれ９１０ｍｇ／ｌ及び２０３ｍｇ／ｌであったことを示している。他者によって行われた測定とは対照的に、１０００〜５０００リットルの大規模使い捨てバイオリアクタでの果実植物細胞の増殖の成功（高レベルのレスベラトロール及びポリフェノール生産量を伴う）を実証するのはこれが初めてである。

表７及び例２の実験７は、ブドウ細胞によって生成されるレスベラトロールの量に対する２つの培地（ＩＭ１培地並びに、マグネシウム塩、リン酸塩及び硝酸塩で強化されたガンボーグＢ５培地）の効果を示している。この効果を、滅菌された使い捨ての透明なプラスチック容器でできた２０Ｌバイオリアクタ内で評価した。さらに、A. Decendit (1996) Biotechnology Lettersに公表されたデータ（ここでは、２０Ｌのガラス容器内においてＩＭ１培地で細胞を増殖させた）と比較した。結果は、使い捨てバイオリアクタ内においてＩＭ１培地で増殖させた赤ブドウ細胞が、同じ培地（Decendit）を用いて撹拌型ガラス製バイオリアクタ内において生成されたレベルよりも約３倍高い９３ｍｇ／ｌのレスベラトロールを生成した（表７）ことを示している。さらに、これらの細胞を使い捨てバイオリアクタ内の強化ガンボーグＢ５培地で増殖させると、非常に高レベルのレスベラトロール３８７ｍｇ／ｌが生成された。このように、本実験は、１若しくは複数の使い捨てバイオリアクタと、様々な濃度のマグネシウム塩、硝酸塩及びリン酸塩（ＫＮＯ_３、ＭｇＳＯ_４、ＭｇＮＯ_３、ＮａＨ_２ＰＯ_４）を含有するガンボーグＢ５培地とを用いることの利点、並びに１若しくは複数の使い捨てバイオリアクタ及び強化ガンボーグＢ５培地の組合せを用いることの利点を示している。

いくつかの実施形態によれば、果実細胞はバイオリアクタ内で増殖させられる。いくつかの実施形態によれば、バイオリアクタは、せん断応力及び流体力学的圧力の強さを最小限に抑える一方で適切な混合及び物質移動を可能にするように設計されている。本発明のいくつかの実施形態によれば、バイオリアクタのうちの少なくとも１つは使い捨てバイオリアクタである。これは、最初のバイオリアクタ、または中間のバイオリアクタ、または最後のバイオリアクタ、あるいはそれらの組合せであり得る。本発明のいくつかの実施形態によれば、使い捨てバイオリアクタは最後のバイオリアクタであり、その後、細胞は、収穫されて乾燥されることにより粉末が形成される。

本発明の或る例示的な実施形態によれば、第１のステップは、三角フラスコなどのフラスコまたはバイオリアクタ内での果実細胞培養物の作成を含む。いくつかの実施形態によれば、第１のステップは、最大１．０Ｌの果実細胞培養物の作成を含む。さらなる実施形態によれば、第１のステップは、最大１．５Ｌの果実細胞培養物の作成を含む。さらなる実施形態によれば、第１のステップは、最大２．０Ｌの果実細胞培養物の作成を含む。

いくつかの実施形態によれば、第１のステップは、ガラス製、金属製またはプラスチック製のフラスコを用いて行われる。いくつかの実施形態によれば、フラスコは使い捨てである。さらなる実施形態によれば、フラスコは何回も再使用してよい。いくつかの実施形態によれば、フラスコは、使用後に次の使用までの間に任意の適切な手段によって滅菌される。

いくつかの実施形態によれば、第１のステップは、果実細胞を増殖させるための任意の適切な培地の使用を含む。いくつかの実施形態によれば、果実細胞を増殖させるために用いられる培地には、細胞増殖培地、塩、ビタミン、糖、ホルモン、またはそれらの任意の組合せが含まれる。いくつかの実施形態によれば、細胞増殖培地は、ガンボーグＢ５培地（Gamborg et al., Exp. Cell Res. 50: 151, 1968）またはその変更形態である。いくつかの実施形態によれば、ガンボーグＢ５培地には、マグネシウム塩、リン酸塩、硝酸塩などの塩、またはそれらの任意の組合せが含まれる。本発明のいくつかの実施形態によれば、ガンボーグＢ５培地には、ＫＮＯ_３、ＭｇＳＯ_４、ＮａＨ_２ＰＯ_４、またはそれらの組合せが含まれる。いくつかの実施形態によれば、培地には、ガンボーグＢ５ビタミン群、またはそれらの任意の組合せが含まれる。さらなる実施形態によれば、培地には、スクロースなどの糖、ガンボーグＢ５培地、またはそれらの任意の組合せが含まれる。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に添加されるＫＮＯ_３の濃度は２５〜４５ｍＭである。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に添加されるＭｇＳＯ_４の濃度は１〜１５ｍＭである。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に添加されるＭｇＮＯ_３の濃度は５〜３５ｍＭである。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に添加されるＫＮＯ_３の濃度は１５ｍＭ〜６０ｍＭである。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に添加されるＭｇＳＯ_４の濃度は０．５〜２５ｍＭである。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に添加されるＭｇＮＯ_３の濃度は１〜５０ｍＭである。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に添加されるＫＮＯ_３の濃度は３０〜４０ｍＭである。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に添加されるＭｇＳＯ_４の濃度は５〜１０ｍＭである。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に添加されるＭｇＮＯ_３の濃度は２０〜３０ｍＭである。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地にミオイノシトールが添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地にＨ_３ＢＯ_３が添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地にＭｎＳＯ_４が添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地にＮａＨ_２ＰＯ_４が添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地にビオチンが添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地にｍＭのＤ−パントテン酸カルシウムが添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に約０．５ｍＭのミオイノシトールが添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に約０．０５ｍＭのＨ_３ＢＯ_３が添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に約０．０４ｍＭのＭｎＳＯ_４が添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に約１ｍＭのＮａＨ_２ＰＯ_４が添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に約０．００４ｍＭのビオチンが添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に約０．２ｍＭのＤ−パントテン酸カルシウムが添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に約０．１、０．２、０．３、０．４、０．５、０．６、０．７、０．８、０．９、１．０、２、３、４、５、６、７、８、９、１０ｍＭのミオイノシトールが添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に約０．０１、０．０２、０．０３、０．０４、０．０５、０．０６、０．０７、０．０８、０．０９、０．１ｍＭのＨ_３ＢＯ_３が添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に約０．０１、０．０２、０．０３、０．０４、０．０５、０．０６、０．０７、０．０８、０．０９、０．１ｍＭのＭｎＳＯ_４が添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に０．１、０．２、０．３、０．４、０．５、０．６、０．７、０．８、０．９、１．０、２、３、４、５、６、７、８、９、１０ｍＭのＮａＨ_２ＰＯ_４が添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に約０．００１、０．００２、０．００３、０．００４、０．００５、０．００６、０．００７、０．００８、０．００９、０．０１ｍＭのビオチンが添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に約０．１、０．２、０．３、０．４、０．５、０．６、０．７、０．８、０．９、１．０、２、３、４ｍＭのＤ−パントテン酸カルシウムが添加される。

本発明の一実施形態では、ガンボーグＢ５培地に添加されるスクロースの濃度は２〜４％である。別の実施形態では、濃度は約３％である。

さらなる実施形態によれば、細胞増殖培地にカゼインを含有させることができる。さらなる実施形態によれば、細胞増殖培地に成長ホルモンを含有させることができる。さらなる実施形態によれば、増殖培地はホルモンを含む。いくつかの実施形態によれば、ホルモンの追加なしで果実細胞を増殖させる。

いくつかの実施形態によれば、本プロセスの１つ以上のステージにおいて用いられ得る植物培地の例には、次に挙げるものが含まれるが、これらに限定されるものではない。Anderson (Anderson, In Vitro 14:334, 1978; Anderson, Act. Hort., 112: 13, 1980), Chee and Pool (Sci. Hort. 32:85, 1987), CLC/Ipomoea (CP) (Chee et al., J. Am. Soc. Hort. Sci. 117:663, 1992), Chu (N.sub.6) (Chu et al., Scientia Sinic. 18:659, 1975; Chu, Proc. Symp. Plant Tiss. Cult., Peking 43, 1978), DCR (Gupta and Durzan, Plant Cell Rep. 4: 177, 1985), DKW/Juglans (Driver and Kuniyuki, HortScience 19:507, 1984; McGranahan et al., in: Bonga and Durzan, eds., Cell and Tissue Culture in Forestry, Martinus Nijhoff, Dordrecht, 1987), De Greef and Jacobs (De Greef and Jacobs, Plant Sci. Lett. 17:55, 1979), Eriksson (ER) (Eriksson, Physiol. Plant. 18:976, 1965), Gresshoff and Doy (DBM2) (Gresshoff and Doy, Z Pflanzenphysiol. 73 : 132, 1974), Heller's (Heller, Ann. Sci. Nat. Bot. Biol. Veg. 11th Ser. 14: 1, 1953), Hoagland's (Hoagland and Arnon, Circular 347, Calif. Agr. Exp. Stat., Berkeley, 1950), Kao and Michayluk (Kao and Michayluk, Planta 126: 105, 1975), Linsmaier and Skoog (Linsmaier and Skoog, Physiol. Plant. 18: 100, 1965), Litvay's (LM) (Litvay et al., Plant Cell Rep. 4:325, 1985), Nitsch and Nitsch (Nitsch and Nitsch, Science 163 :85, 1969), Quoirin and Lepoivre (Quoirin et al., C. R. Res. Sta. Cult. Fruit Mar., Gembloux 93, 1977), Schenk and Hildebrandt (Schenk and Hildebrandt, Can. J. Bot. 50: 199, 1972), White's (White, The Cultivation of Animal and Plant Cells, Ronald Press, NY, 1963), など。

いくつかの他の例示的な実施形態によれば、果実細胞及び培地は第１のステップ中に連続的に混合される。さらなる実施形態によれば、果実細胞及び培地は第１のステップ中に時々混合される。いくつかの実施形態によれば、第１のステップ中の温度は２０〜３０℃である。いくつかの実施形態によれば、第１のステップ中の温度は２２〜２８℃である。いくつかの実施形態によれば、第１のステップ中に５日間以上、果実細胞を増殖させる。いくつかの実施形態によれば、第１のステップ中に７日間以上、果実細胞を増殖させる。いくつかの実施形態によれば、第１のステップ中に５日間以上かつ２週間未満、果実細胞を増殖させる。いくつかの実施形態によれば、第１のステップ中に５日間以上かつ１２日間未満、果実細胞を増殖させる。

いくつかの例示的な実施形態によれば、本発明のプロセスで用いられるバイオリアクタには、第１のステップから得られた果実細胞、培地及び任意の追加の原料をバイオリアクタに入れるための入口が含まれる。さらなる実施形態によれば、本発明のプロセスで用いられるバイオリアクタには、所望の原料を取り出すための出口が含まれる。いくつかの実施形態によれば、出口は、バイオリアクタの余剰ガスを軽減するように設計されたガス出口を含む。いくつかの実施形態によれば、ガス出口は手動で操作される。他の実施形態によれば、ガス出口は自動的に操作され、フラスコ内の気圧が規定圧力に達したらフラスコからガスが放出される。いくつかの実施形態によれば、規定圧力は最大８ＰＳＩである。

果実細胞増殖の第１のステップが終了したら、いくつかの例示的な実施形態によれば、果実細胞を小規模バイオリアクタ（本明細書において、最初のバイオリアクタとも称する）に植菌する。大規模プロセスの第２のステップのために。いくつかの実施形態によれば、小規模バイオリアクタは４Ｌのリアクタである。さらなる実施形態によれば、小規模バイオリアクタは３〜５Ｌのリアクタである。さらなる実施形態によれば、小規模バイオリアクタは３〜１０Ｌのリアクタである。さらなる実施形態によれば、小規模バイオリアクタは４−８Ｌのリアクタである。

小規模バイオリアクタは、任意の適切な材料、例えば、ガラス、金属、プラスチック及び／または任意の種類のポリマーなどから製造することができる。いくつかの実施形態によれば、小規模バイオリアクタは使い捨てである。小規模バイオリアクタは、使い捨てでない場合には、いくつかの実施形態によれば、使用後に次の使用までの間に任意の適切な手段によって洗浄及び滅菌される。

上記したように、より大量の果実細胞をバイオリアクタで増殖させる場合には、レスベラトロールなどのポリフェノールを含む二次代謝産物の生産は、例えば三角フラスコなどのガラス製フラスコを用いる小規模生産における同じ代謝産物の量に比べて著しく減少することが分かっている。しかし、本明細書で詳述する大規模プロセスは、バイオリアクタで増殖させた場合に二次代謝産物の量が減少しない果実細胞を提供する。さらに、特定の二次代謝産物の生産を増大させることすらできる。

したがって、本発明の種々の実施形態によれば、小規模バイオリアクタで増殖させた果実細胞に含まれる二次代謝産物の相対量は、本プロセスの第１のステップにおける相対量と比べて著しく減少してはいない。いくつかの実施形態によれば、第１のステップにおいて増殖培地で用いるための上記成分を本プロセスの第２のステップにおいても用いることができる。いくつかの実施形態によれば、小規模バイオリアクタで用いられる増殖培地は、大規模プロセスの第１のステップで用いたものと同じである。いくつかの実施形態によれば、第２のステップにおいて増殖培地に存在する種々の成分の相対量は、第１のステップにおける相対量と同じである。他の実施形態によれば、第２のステップにおいて増殖培地に存在する種々の成分の相対量は、第１のステップで用いられる相対量とは異なる。いくつかの実施形態によれば、本プロセスの第２のステップにおいて増殖培地に追加の原料を添加する。

いくつかの実施形態によれば、小規模バイオリアクタには、第１のステップから得られた果実細胞、空気、培地及び任意の追加の原料をバイオリアクタに入れるための入口が含まれる。さらなる実施形態によれば、小規模バイオリアクタには、所望の原料を取り出すための出口が含まれる。いくつかの実施形態によれば、出口は、バイオリアクタの余剰ガスを軽減するように設計されたガス出口を含む。いくつかの実施形態によれば、ガス出口は手動で操作される。他の実施形態によれば、ガス出口は自動的に操作され、バイオリアクタ内の気圧が規定圧力に達したらバイオリアクタからガスが放出される。いくつかの実施形態によれば、規定圧力は８ＰＳＩである。

いくつかの実施形態によれば、果実細胞及び培地は第２のステップ中に連続的に混合される。さらなる実施形態によれば、果実細胞及び培地は第２のステップ中に時々混合される。いくつかの実施形態によれば、第２のステップ中の温度は２０〜３０℃である。いくつかの実施形態によれば、第２のステップ中に１週間以上かつ２週間未満、果実細胞を増殖させる。本発明のいくつかの実施形態では、果実細胞を、次のバイオリアクタに植菌する前に９〜１６日間増殖させる。

大規模プロセスの第３のステップのために、収穫した果実細胞を大規模バイオリアクタに入れる。いくつかの実施形態によれば、大規模バイオリアクタは３０〜５０Ｌのリアクタである。さらなる実施形態によれば、大規模バイオリアクタは４０〜６０Ｌのリアクタである。さらなる実施形態によれば、大規模バイオリアクタは３０〜７０Ｌのリアクタである。さらなる実施形態によれば、大規模バイオリアクタは２０〜１００Ｌのリアクタである。

大規模バイオリアクタは、任意の適切な材料、例えば、ガラス、金属、プラスチック及び／または任意の種類のポリマーなどから製造することができる。いくつかの実施形態によれば、大規模バイオリアクタは使い捨てである。大規模バイオリアクタは、使い捨てでない場合には、いくつかの実施形態によれば、使用後に次の使用までの間に任意の適切な手段によって洗浄及び滅菌される。

小規模バイオリアクタと同様に、本発明の種々の実施形態によれば、大規模バイオリアクタで増殖させた果実細胞に含まれる二次代謝産物の相対量は、本プロセスの先行ステップにおける相対量と比べて著しく減少してはいない。いくつかの実施形態によれば、先行ステップのうちのいずれかにおいて増殖培地で用いるための上記成分を本プロセスの第３のステップにおいても用いることができる。いくつかの実施形態によれば、大規模バイオリアクタで用いる増殖培地は、大規模プロセスの先行ステップのうちのいずれかで用いる増殖培地と同じである。いくつかの実施形態によれば、第３のステップにおいて増殖培地中に存在する種々の成分の相対量は、本プロセスの先行ステップのうちのいずれかにおける相対量と同じである。他の実施形態によれば、第３のステップにおいて増殖培地中に存在する種々の成分の相対量は、本プロセスの先行ステップのうちのいずれかで用いた相対量とは異なる。いくつかの実施形態によれば、本プロセスの第３のステップにおいて、増殖培地に追加の原料を添加する。

いくつかの実施形態によれば、大規模バイオリアクタには、第２のステップから得られた果実細胞、培地、空気及び任意の追加の原料をバイオリアクタに入れるための入口が含まれる。さらなる実施形態によれば、大規模バイオリアクタには、所望の原料を取り出すための出口が含まれる。いくつかの実施形態によれば、出口は、バイオリアクタの余剰ガスを軽減するように設計されたガス出口を含む。いくつかの実施形態によれば、ガス出口は手動で操作される。他の実施形態によれば、ガス出口は自動的に操作され、バイオリアクタ内の気圧が規定圧力に達したらバイオリアクタからガスが放出される。いくつかの実施形態によれば、規定圧力は最大８ＰＳＩである。

いくつかの例示的な実施形態によれば、果実細胞及び培地は第３のステップ中に連続的に混合される。さらなる実施形態によれば、果実細胞及び培地は第３のステップ中に時々混合される。いくつかの実施形態によれば、第３のステップ中の温度は２０〜３０である。いくつかの実施形態によれば、第３のステップ中に約２〜３週間、果実細胞を増殖させる。いくつかの実施形態によれば、第３のステップ中に約３〜５週間、果実細胞を増殖させる。いくつかの実施形態によれば、第３のステップ中に約１２〜３０日間、果実細胞を増殖させる。

果実細胞増殖の第３のステップが終了したら、通常は任意の適切な手段によって中規模バイオリアクタから果実細胞を植菌する。大規模プロセスの４つの例示的なステップのために、収穫した果実細胞をより大規模なバイオリアクタに入れる。いくつかの実施形態によれば、より大規模なバイオリアクタは１０００Ｌのリアクタである。さらなる実施形態によれば、より大規模なバイオリアクタは２００〜５００Ｌのリアクタである。さらなる実施形態によれば、大規模バイオリアクタは５００〜１０００Ｌのリアクタである。さらなる実施形態によれば、大規模バイオリアクタは１０００〜１５００Ｌのリアクタである。さらなる実施形態によれば、大規模バイオリアクタは５００〜１１００Ｌのリアクタである。

より大規模なバイオリアクタは、任意の適切な材料、例えば、ガラス、金属、プラスチック及び／または任意の種類のポリマーなどから製造することができる。いくつかの実施形態によれば、大規模バイオリアクタは使い捨てである。大規模バイオリアクタは、使い捨てでない場合には、いくつかの実施形態によれば、使用後に次の使用までの間に任意の適切な手段によって洗浄及び滅菌される。

小規模バイオリアクタと同様に、本発明の種々の実施形態によれば、より大規模なバイオリアクタで増殖させた果実細胞に含まれる二次代謝産物の相対量は、本プロセスの先行ステップにおける相対量と比べて著しく減少してはいない。いくつかの実施形態によれば、先行ステップのうちのいずれかにおいて増殖培地で用いるための上記成分を本プロセスの第４のステップにおいても用いることができる。いくつかの実施形態によれば、より大規模なバイオリアクタで用いられる増殖培地は、先行ステップのうちのいずれかで用いたものと同じである。いくつかの実施形態によれば、第４のステップにおいて増殖培地中に存在する種々の成分の相対量は、先行ステップのうちのいずれかにおける相対量と同じである。他の実施形態によれば、第４のステップにおいて増殖培地中に存在する種々の成分の相対量は、先行ステップのうちのいずれかで用いた相対量とは異なる。いくつかの実施形態によれば、本プロセスの第４のステップにおいて、増殖培地に追加の原料を添加する。

いくつかの実施形態によれば、より大規模なバイオリアクタには、第３または第２のステップから得られた果実細胞、培地及び任意の追加の原料をバイオリアクタに入れるための入口が含まれる。さらなる実施形態によれば、より大規模なバイオリアクタには、所望の原料を取り出すための出口が含まれる。いくつかの実施形態によれば、出口は、バイオリアクタの余剰ガスを軽減するように設計されたガス出口を含む。いくつかの実施形態によれば、ガス出口は手動で操作される。他の実施形態によれば、ガス出口は自動的に操作され、バイオリアクタ内の気圧が規定圧力に達したらバイオリアクタからガスが放出される。

いくつかの実施形態によれば、果実細胞及び培地は第４のステップ中に連続的に混合される。さらなる実施形態によれば、果実細胞及び培地は第４のステップ中に時々混合される。いくつかの実施形態によれば、第４のステップ中の温度は２０〜３０℃である。いくつかの実施形態によれば、第３または第４のステップ中に果実細胞を１０〜７０％の細胞バイオマスに達するまで増殖させる。

いくつかの実施形態によれば、大規模プロセスが終わった後、果実細胞をより大規模なバイオリアクタで増殖させる。当該実施形態によれば、より大規模なバイオリアクタで果実細胞を１０〜７０％の細胞バイオマスに達するまで増殖させる。１０〜７０％の細胞バイオマスに達したら、任意の適切な手段によって大規模バイオリアクタから果実細胞を収穫し、さらに加工する。いくつかの実施形態によれば、果実細胞は、乾燥、凍結乾燥、フリーズドライ及び噴霧乾燥によってさらに加工される。いくつかの実施形態によれば、果実細胞の加工には、そこからの有効成分の抽出は含まれない。

いくつかの実施形態によれば、大規模プロセスは、細胞をフラスコから任意の大きさであり得るバイオリアクタに植菌しかつ細胞を収穫する１ステップを含み得る。他の実施形態によれば、一連のバイオリアクタ（各バイオリアクタは、通常、その前に使用したバイオリアクタよりも大きい）で果実細胞を植菌することができる。大規模プロセスによれば、任意の数の追加的なステップを行う。追加的なステップは、可能な中間ステップを含み、該中間ステップにおいて、細胞は収穫または植菌されてより大規模なバイオリアクタに入れられ、そこで収穫または植菌されるまで増殖させられて、より大規模なバイオリアクタへ移される。さらなる実施形態によれば、本プロセスは、大規模バイオリアクタから収穫した果実細胞を増殖させる追加的なステップを含む。

本発明の様々な態様について以下の実施例においてより詳細に説明する。これらは、本発明の種々の実施形態を示すものであるが、本発明の範囲を限定するものとして解釈されるべきではない。

実施例

例１
製造−産業レベルの大規模化

１．原料及び方法
生産プロセスには、５つのステージを有する漸進的プロセスにおけるブドウ細胞の増殖が含まれる。振盪三角フラスコ内でのブドウ細胞の増殖から始めて、小規模及び大規模使い捨てバイオリアクタでさらに増殖させる。重要な鍵となる因子は、異なる規模のバイオリアクタでの増殖中に、細胞に含まれる高レベルの二次代謝産物であるレスベラトロールを維持することである。増殖の最後の大規模ステージの最後に、所要のバイオマスで、ブドウ細胞を収穫して乾燥させることにより、種々の医療用途に用いられる乾燥細胞（ＲＧＣ）のバイオマスをもたらすピンクがかった紫の微粉末が生成される。

ブドウ細胞株の形成

ブドウ横断切片から得られるカルス：野外生育のブドウ植物から開花の２０〜５０日後に長さ４〜８ｃｍの若いブドウの房を収穫し、水道の蛇口から流した水でよく洗った。無核ブドウのヴィニフェラ種（Vitis vinifera cv.）「ＡＶＮＩＲ ８２５」（Ａｇｒａｍａｎとガメイレッドの交配種）の緑色の未熟な果粒を、１．３％ｗ／ｖの次亜塩素酸ナトリウムと、湿潤剤として（０．１％ｖ／ｖ）のＴｗｅｅｎ２０とを含有する溶液中で１０分間滅菌した。フィルタ滅菌された１．７ｍＭのアスコルビン酸及び０．８ｍＭのクエン酸、１００ｍｇ／ｌのＤＴＴ（ジチオトレイトール）及び５０ｍｇ／ｌのアセチルシステインを補足した１／２ ＭＳ（Murashige and Skoog, 1962, Physiol Plant 15:473-497）液体基礎培地下で、メスを用いて外植片を長さ２〜３ｍｍの横断断片に切断した。細胞の神経発生を阻害するため、及び緑色の健全な果粒ディスクの回復を可能にするために、上記の切断培地に以下の抗酸化物質を添加した：ＰＶＰ（０．５及び１ｇ／１）、Ｌ−システイン（１５０ｍｇ／ｌ）、没食子酸（１．５ｍｇ／ｌ）、ＤＴＴ（７０ｍｇ／ｌ）、ビオプテリン（１５ｍｇ／ｌ）、アスコルビン酸（１５０ｍｇ／ｌ）及びクエン酸（１５０ｍｇ／ｌ）。

果粒ディスクを、２５ｍｌのオートクレーブ滅菌したムラシゲスクーグ（ＭＳ）培地を含有する１００×１５ｍｍの培養皿に置き、０．２５％のゲルライト（登録商標）で固化した。１０２ｋｐａで１５分間オートクレーブ滅菌する前に、ｐＨをｐＨ５．９になるように調整した。各々が２５個の果粒ディスクを含む３０枚の培養皿をパラフィルムで密閉し、２６℃で３日間にわたって暗所で培養した。培養物を、白色蛍光灯による１５〜３０μｍｏｌ^−２ｓ^−１の放射照度の１６時間の日長下で、２５℃で培養した。ＭＳ塩及びビタミン培地には、２５０ｍｇ／ｌのカゼイン加水分解物、２％のスクロース及び１００ｍｇ／ｌのイノシトールをも補足した。カルス誘導のために、０．２ｍｇ／ｌのカイネチン及び０．１ｍｇ／ｌのＮＡＡ（α−ナフタレン酢酸）をも補足した（ＲＤ１と呼ばれる培地）。

培養開始から３〜４週間後に、果粒ディスクに沿って緑色及び赤色のカルスの混合物が見えた。カルスは、脆くて細長い細胞からなり、そのうちのいくつかはアントシアニンの濃い色素を示していた。アントシアニンが豊富なカルス部分を選択して、個々に継代培養して増殖させた。緑色のカルス部分を別々に培養した。

ブドウ皮細胞から得られるカルス：野外生育のブドウ植物から開花の２０〜５０日後に長さ４〜８ｃｍの若いブドウの房を収穫し、水道の蛇口から流した水でよく洗った。無核ブドウのヴィニフェラ種「ＡＶＮＩＲ ８２５」（Ａｇｒａｍａｎとガメイレッドの交配種）の緑色の未熟な果粒を、１．３％ｗ／ｖの次亜塩素酸ナトリウムと、湿潤剤として（０．１％ｖ／ｖ）のＴｗｅｅｎ２０とを含有する溶液中で１０分間滅菌した。果皮に３〜８ｍｍの切り込みを入れ、滅菌したピンセットを用いて皮のみを剥くことによって、果皮を分離した。フィルタ滅菌された１．７ｍＭのアスコルビン酸及び０．８ｍＭのクエン酸、１００ｍｇ／ｌのＤＴＴ（ジチオトレイトール）及び５０ｍｇ／ｌのアセチルシステインを補足した１／２ ＭＳ（Murashige and Skoog, 1962）液体基礎培地下で、皮の分離を行った。

果皮をＲＤ−１培地に置いた。約１０〜１４日後に、皮ピル（skin pill）の切断面において細胞の塊が発生し始めた。アントシアニンが豊富な細胞を選択して、さらに新鮮培地に継代培養してさらに増殖させた。

ブドウ種皮から得られるカルス：野外生育のブドウ植物から開花の２０〜５０日後に長さ４〜８ｃｍの若いブドウの房を収穫し、水道の蛇口から流した水でよく洗った。無核ブドウのヴィニフェラ種「ＡＶＮＩＲ ８２５」の緑色の未熟な果粒を、１．３％ｗ／ｖの次亜塩素酸ナトリウムと、湿潤剤として（０．１％ｖ／ｖ）のＴｗｅｅｎ２０とを含有する溶液中で１０分間滅菌した。若い緑色の生育中の種子が見えるように果粒を切り開いた。未熟な種皮を切断し、培地に置いた。フィルタ滅菌された１．７ｍＭのアスコルビン酸及び０．８ｍＭのクエン酸、１００ｍｇ／ｌのＤＴＴ（ジチオトレイトール）及び５０ｍｇ／ｌのアセチルシステインを補足した１／２ ＭＳ（Murashige and Skoog, 1962）液体基礎培地下で、皮の分離を行った。

種皮部分をＲＤ−１培地に置いた。約１２〜２０日後、種皮は褐色に変色し、種皮外植片の上部にカルスが現れ始めた。赤褐色の色素に富んだ細胞を選択し、さらに新鮮培地に継代培養してさらに増殖させた。

液体培養の確立：５０ｍｇ／ｌの種々の培地（ＲＤ１〜ＲＤ６−下記参照）に１０ｇのカルスを添加することによって、液体培養を確立した。固形培地上でうまく確立された全ての細胞株が、同じ培地の組合せ（ただしゲル化剤を含まない）で均質な細胞懸濁液を作った。７０ｍｇ／ｌのＤＴＴまたは１５０ｍｇ／ｌの、アスコルビン酸またはクエン酸のいずれかの添加により、増殖が向上し、果粒由来の懸濁培養物の細胞の神経発生が阻害された。液体培養の確立のために、全ての外植片の種類をうまく利用した。７〜１０日毎にルーチン的に培養物を新鮮増殖培地に継代培養した。

果粒由来のカルス細胞株を確立するために導入された追加のブドウ属の種：上記のプロトコールを用いて、下記のブドウ属の種を培養した。

ブドウ属シルべストリス種、ムスカディニア種、ロトゥンディフォリア種、リパリア種、シャトルウォーシー種、ラブルスカ種、ダビディ種、アムレンシス種、ロマネリ種、エースティバリス種、シンシアナ種、シネリア種、パルメイト種、ムンソニアーナ種、コルディフォリア種、ハイブリッドＡ２３−７−７１、アセリフォリア種、トレレアシー種、ベチュリフォリア種。

ヴィニフェラ種のブドウ横断切片、ブドウ皮及びブドウ種子のカルスの生産効率を下表Ａに例示する。

本研究において使用したブドウ属の種のうちのいくつかの種からの、異なるカルス「タイプ」の生産効率を下表Ｂにまとめた。

ステージ１：振盪三角フラスコ
オービタルシェーカー上の１リットルの三角フラスコ内で、蛍光灯連続照明下（１０００ｌｘ）で温度２５±５℃で懸濁液中において赤ブドウ細胞を増殖させる。増殖培地には、ガンボーグＢ５培地及びビタミン培地が含まれ、２５０ｍｇ／ｌのカゼイン加水分解物、２〜４％のスクロース、１００ｍｇ／ｌのミオイノシトール、０．２ｍｇ／ｌのカイネチン及び０．１ｍｇ／ｌのＮＡＡ（１−ナフタレン酢酸）、２５〜４５ｍＭのＫＮＯ_３、１〜１５ｍＭのＭｇＳＯ_４または５〜３５ｍＭのＭｇＮＯ_３及び１ｍＭのＮａＨ_２ＰＯ_４（ｐＨ５．８）が補足されている。６〜１１日毎に細胞を継代培養する。

ステージ２：小規模バイオリアクタ
小規模バイオリアクタ培養は、ステージ１の三角フラスコで増殖させた７〜１６日齢の細胞懸濁液を、温度２５±５℃で、４〜８リットルの使い捨てバイオリアクタに植菌することによって行う。強化ガンボーグＢ５塩及びビタミン培地を含みかつ、２５０ｍｇ／ｌのカゼイン加水分解物、２〜４％のスクロース、１００ｍｇ／ｌのミオイノシトール、２５〜４５ｍＭのＫＮＯ_３、１〜１５ｍＭのＭｇＳＯ_４または５〜３５ｍＭのＭｇＮＯ_３及び１ｍＭのＮａＨ_２ＰＯ_４、０．２ｍｇ／ｌのカイネチン及び０．１ｍｇ／ｌのＮＡＡ（１−ナフタレン酢酸）（ｐＨ５．４〜５．８）が補足されている増殖培地で、蛍光灯連続照明下（１０００ｌｘ）で、細胞懸濁液中において細胞を増殖させる。９〜１６日毎に細胞を継代培養する。

ステージ３：大規模バイオリアクタ
小規模バイオリアクタで増殖させた細胞懸濁液を、３０〜５０リットルの使い捨てバイオリアクタに植菌する。蛍光灯連続照明下（１０００ｌｘ）で温度２５±５℃で細胞懸濁液中において細胞を増殖させる。増殖培地には、強化ガンボーグＢ５塩及びビタミン培地が含まれ、かつ２５０ｍｇ／ｌのカゼイン加水分解物、２〜４％のスクロース、１００ｍｇ／ｌのミオイノシトール、２５〜４５ｍＭのＫＮＯ_３、１〜１５ｍＭのＭｇＳＯ_４または５〜３５ｍＭのＭｇＮＯ_３及び１ｍＭのＮａＨ_２ＰＯ_４、０．２ｍｇ／ｌのカイネチン及び０．１ｍｇ／ｌのＮＡＡ（１−ナフタレン酢酸）（ｐＨ５．４〜５．８）が補足されている。１２〜３０日毎に細胞を継代培養する。

ステージ４：より大規模なバイオリアクタ
小規模または大規模バイオリアクタで増殖させた細胞懸濁液を３００〜１０００リットルの使い捨てバイオリアクタに植菌する。蛍光灯連続照明下（１０００ｌｘ）で温度２５±５℃で細胞懸濁液中において細胞を増殖させる。増殖培地には、強化ガンボーグＢ５塩及びビタミン培地が含まれ、かつ２５０ｍｇ／ｌのカゼイン加水分解物、２〜４％のスクロース、１００ｍｇ／ｌのミオイノシトール、２５〜４５ｍＭのＫＮＯ_３、１〜１５ｍＭのＭｇＳＯ_４または５〜３５ｍＭのＭｇＮＯ_３及び１ｍＭのＮａＨ_２ＰＯ_４、０．２ｍｇ／ｌのカイネチン及び０．１ｍｇ／ｌのＮＡＡ（１−ナフタレン酢酸）（ｐＨ５．４〜５．８）が補足されている。

ステージ５：収穫
細胞が１０％〜７０％（ｗ／ｖ）の細胞バイオマスに到達した時点で細胞を収穫する。収穫した細胞を乾燥させて、典型的な組成物、味及び匂いを有するピンクがかった紫の微粉末を生成する。

例２
大規模バイオリアクタで増殖させた赤ブドウ細胞におけるレスベラトロールのレベルに対する培地組成及びバイオリアクタデザインの効果

２．１ 培地組成

実験１：振盪三角フラスコで増殖させた赤ブドウ細胞におけるレスベラトロールの量に対する培地組成の効果

例１のステージ１で説明したように、赤ブドウ細胞を振盪三角フラスコ内において種々の培地組成、すなわち、ＭＳ培地、ＷＰ培地、ＷＰ＋カゼインガンボーグＢ５培地で増殖させた。表１に示す結果は、ガンボーグＢ５培地の存在下で増殖させた細胞が、ＭＳ培地、ＷＰ培地及びＷＰ＋カゼイン培地の存在下で増殖させた細胞よりも約４〜１５倍高いレスベラトロールレベルを生じさせることを示している。

実験２：大規模使い捨てバイオリアクタで増殖させた赤ブドウ細胞におけるレスベラトロールのレベル及び増殖に対する培地組成の効果

例１のステージ３で説明したように、赤ブドウ細胞を大規模使い捨てバイオリアクタ内において種々の培地組成で増殖させた。

赤ブドウ細胞を２種類の培地、すなわちガンボーグＢ５培地及び強化ガンボーグＢ５培地で増殖させた。下表２に示すように、ガンボーグＢ５培地に高レベルのマグネシウム塩、リン酸塩及び硝酸塩または硫酸塩（ＫＮＯ_３、ＭｇＳＯ_４、ＭｇＮＯ_３、ＮａＨ_２ＰＯ_４）を補足したことによって、非強化ガンボーグＢ５培地の存在下で得られるバイオマスに比べて、高い赤ブドウ細胞のバイオマスが得られた。

さらに、大規模使い捨てバイオリアクタで増殖させた赤ブドウ細胞におけるレスベラトロール及び全ポリフェノールのレベルに対する培地組成の効果を調べた。赤ブドウ細胞は、ＷＰ培地及び、種々の濃度のマグネシウム塩、硝酸塩及びリン酸塩（結果的に、ＫＮＯ_３、ＭｇＳＯ_４、ＭｇＮＯ_３、ＫＮＯ_３及びＮａＨ_２ＰＯ_４）を含有するガンボーグＢ５培地で増殖させた。表３は、これらの塩が、とりわけ強化ガンボーグＢ５培地に添加される場合に、高レベルのポリフェノール及び高レベルのレスベラトロールの生産のために必要であることを示している。ＷＰ培地と対照的に、全ポリフェノール及びレスベラトロールのレベルは非常に低い。

図４は、大規模使い捨てバイオリアクタ内において強化ガンボーグＢ５培地で増殖させた赤ブドウ細胞の増殖曲線を示している。赤ブドウ細胞は指数増殖し、２０日後から最大４０日後に５００ｇ／１の新鮮（生）バイオマスが得られた。これらの細胞は増殖し続けてより高いバイオマスに到達することもできる。

実験３：振盪三角フラスコから大規模バイオリアクタまで異なる増殖ステージで増殖させたＲＧＣのレスベラトロールレベル及び全ポリフェノールレベルの一貫性

振盪三角フラスコから大規模使い捨てバイオリアクタまで異なる規模のステージにおいて、例１のステージ１〜４で説明したように、強化ガンボーグＢ５培地の存在下で赤ブドウ細胞を増殖させた。

表４の結果は、赤ブドウ細胞が三角フラスコ内で良好に増殖し、大量のレスベラトロール及び全ポリフェノールを合成したことを示している。５０リットルまたは３００〜１０００リットルの規模のいずれかの使い捨てバイオリアクタで細胞を増殖させた場合には、三角フラスコで増殖させた場合と比較して、細胞の生重量及び乾燥重量によって示される増殖率がより高かった。表４のデータを参照されたい。三角フラスコでの生重量１６６ｇ／１と比較すると、スケールアップバイオリアクタの全ての大きさで生重量は２３０ｇ／１を上回っていた（表４）。さらに、大規模使い捨てバイオリアクタ内の強化培地中の全ポリフェノールのレベル及びレスベラトロールのレベルは、三角フラスコで得られたレベルよりも高く、それぞれ９０１ｍｇ／ｌ及び２００ｍｇ／ｌであった（表４）。他者によって行われた測定とは対照的に、大規模使い捨てバイオリアクタ内での果実植物細胞の増殖の成功（高レベルのレスベラトロール及びポリフェノール生産量を伴う）を実証するのはこれが初めてである。

実験４：大規模使い捨てバイオリアクタで増殖させた赤ブドウ細胞におけるレスベラトロール及び全ポリフェノールのレベルに対するカゼイン加水分解物の効果

例１のステージ３で説明したように、大規模使い捨てバイオリアクタ内において強化ガンボーグＢ５培地の存在下で赤ブドウ細胞を増殖させた。

表５に見られるように、使い捨て大規模バイオリアクタ内において強化培地で増殖させた場合には、２５０ｍｇ／ｌのカゼイン加水分解物の有無にかかわらず、赤ブドウ細胞におけるレスベラトロール及び全ポリフェノールのレベルは類似していた。

実験５：大規模使い捨てバイオリアクタで増殖させた赤ブドウ細胞のレスベラトロール及び全ポリフェノールのレベルに対する植物ホルモン添加の効果

例１のステージ３で説明したように、赤ブドウ細胞を、大規模使い捨てバイオリアクタ内の強化ガンボーグＢ５培地で増殖させた。表６に見られるように、使い捨て大規模バイオリアクタで増殖させた場合には、０．５ｍｇ／ｌのＮＡＡ及び０．２ｍｇ／ｌのカイネチンの有無にかかわらず、赤ブドウ細胞におけるレスベラトロール及び全ポリフェノールの生成のレベルは類似していた（表６）。

実験６：大規模使い捨てバイオリアクタで増殖させた赤ブドウ細胞に対するスクロース濃度の効果

例１のステージ３で説明したように、赤ブドウ細胞を、大規模使い捨てバイオリアクタ（５０リットル）内において種々のスクロース濃度の強化ガンボーグＢ５培地で増殖させた。

赤ブドウ細胞を、２、３、４及び６％のスクロースを含有する強化ガンボーグＢ５培地で増殖させた。下表６Ａに示すように、２〜４％のスクロース（１４３〜２６０ｇ／Ｌ）で細胞を増殖させた場合に、最適な細胞増殖及びバイオマスが達成される。それよりも高いスクロース濃度では、例えば６％のスクロースは、細胞増殖を１０倍阻害する（２４ｇ／Ｌ）。

実験７：大規模使い捨てバイオリアクタで増殖させた赤ブドウ細胞におけるレスベラトロール及び全ポリフェノールのレベルに対するバイオリアクタ構成、設計及び構造の効果

赤ブドウ細胞によって生成されるレスベラトロールの量に対する２つの培地（ＩＭ１培地並びに、マグネシウム塩、リン酸塩及び硝酸塩で強化されたガンボーグＢ５培地）の効果を、滅菌された使い捨ての透明なプラスチック容器から製造された２０Ｌバイオリアクタ内で評価し、さらに、A. Decendit (1996) Biotechnology Lettersに公表されたデータ（ここでは、２０Ｌのガラス容器内においてＩＭ１培地で細胞を増殖させた）と比較した。

結果は、使い捨てバイオリアクタ内においてＩＭ１培地で増殖させた赤ブドウ細胞が９３ｍｇ／ｌのレスベラトロール（表７）を生成し、これは、同じ培地（Decendit）を用いて撹拌型ガラス製バイオリアクタ内で生成されたレスベラトロールよりも約３倍高いレベルであることを示していた。さらに、これらの細胞を使い捨てバイオリアクタ内において強化ガンボーグＢ５培地で増殖させた場合には、３８７ｍｇ／ｌという非常に高レベルのレスベラトロールが生成された（表７）。

さらに、強化ガンボーグＢ５培地を含む特定の培地組成と使い捨てバイオリアクタデザインとの組合せにより、細胞は、ＩＭ１培地及び撹拌型ガラス製バイオリアクタで生産されたレベルよりも１０〜１２倍のレスベラトロールを生産し、使い捨てバイオリアクタ内においてＩＭ１培地で増殖させた細胞の４倍のレスベラトロールを生産した（表７）。

これらの結果は、２０Ｌ以上のバイオリアクタで生成されるＲＧＣ中のレスベラトロールを高レベルに維持するためには、バイオリアクタの種類及び培地組成の両方が必要であることを示している。

例３
組成物：

赤色及び紫色のブドウはともに強力なポリフェノール、抗酸化物質及びレスベラトロールを含んでおり、動脈の狭窄及び硬化の両方を予防するのに役立つ。増加の一途をたどる研究によれば、赤色及び紫色のブドウ中に存在し、最終的には赤ワイン中にも存在するレスベラトロールは、体内の重要な代謝経路に影響を与えるものであり、我々の健康に寄与し得ることが示されている。しかし、これらは糖含量が非常に高く、したがって適度に摂取すべきである。

大規模使い捨てバイオリアクタで増殖させた赤ブドウ細胞の組成物は、他に類のないものである。

赤ブドウ細胞の化学組成物は、糖及びレスベラトロールのレベル以外は、標準的な農業のやり方を用いて増殖させたブドウと同様である。

実験８：ブドウ園で成長させた赤ブドウとの比較における、大規模使い捨てバイオリアクタで増殖させた赤ブドウ細胞における全糖、グルコース及びフルクトースのレベルの低さ

例１のステージ３及び４で説明したように、大規模使い捨てバイオリアクタ内において強化ガンボーグＢ５培地で増殖させた赤ブドウ細胞に含まれる全糖、グルコース及びフルクトースの量は、農業手段によって増殖させた異なる種類の赤ブドウから得られるこれらの糖のレベルと比較して２５分の１〜５０分の１であった（表８）。

実験９：大規模使い捨てバイオリアクタで増殖させた赤ブドウの全ポリフェノール及びレスベラトロール組成物のレベル

赤ブドウ細胞に含まれる全ポリフェノールのレベルは、露地で成長させた赤ブドウに含まれる量と同様であるが、レスベラトロールは例外で、４０〜８００倍高いレベルで存在している（表９及び表１０）。例１のステージ３及び４で説明したように大規模使い捨てバイオリアクタで増殖させた赤ブドウ細胞５バッチ中のレスベラトロールのレベルは、生重量１ｋｇ当たり７２６〜９１６ｍｇであり、それに対して農業により生産された赤ブドウでは０〜４２．５ｍｇ／ｋｇである（表９）。乾燥プロセス後の赤ブドウ細胞の乾燥粉末中のレスベラトロールのレベルは、粉末１ｋｇ当たり６０００〜３１０００ｍｇである（表１０）。

方法：２８０、５２０及び３０６ｎｍにおけるＵＶ／ＶＩＳ検出を伴うＨＰＬＣを用いて赤ブドウ細胞中のポリフェノール及びレスベラトロールのレベルを分析した。

例４
インビボでカラギーナンによって誘発される足浮腫ラットモデルにおける培養ブドウ細胞の効果

本研究の目的は、本発明により生産した細胞の生産効率を検証するために、本発明の大規模プロセスにより製造したＲＧＣ（赤ブドウ細胞）のインビボ抗炎症活性をラットの急性炎症モデルにおいて評価することであった。げっ歯類の急性炎症を研究するために最も広く用いられている実験モデルの１つは、カラギーナンの足底内投与に基づくものである。

本研究では、ＲＧＣの有効性を次の２つの方法によって評価した。
１．足体積の測定
２．自由に動き回るラットの炎症性痛覚

原料及び方法：
例１に従って作製した赤ブドウ細胞（ＲＧＣ）。
カラギーナン注射の２時間前に、ＲＧＣを、滅菌飲料水中に懸濁させた懸濁液として体重１ｋｇ当たり４００ｍｇ（４００ｍｇ／ｋｇ）（２ｍｌ／４０ｍｇ）の用量で経口投与した。
ＲＧＣ組成物：各ラットに注射したポリフェノール及びレスベラトロールの量は、それぞれ１４ｍｇ及び４．８ｍｇであった（ＲＧＣ１００ｍｇ当たりポリフェノール３．５ｍｇ、及びＲＧＣ１００ｍｇ当たりレスベラトロール１．２ｍｇ）。
カラギーナンはラットの足浮腫を誘発した：ラットを８匹ずつ３つの群に分けた。全ての群のラットに対し、各ラットの左後足の足底下組織に１％のカラギーナン（０．１ｍｇ／足）または滅菌食塩水（０．９％ＮａＣｌ）を注射した。

以下の検査を行った：

足体積の測定
・カラギーナン注射の直前、注射の０、１、２、４時間後の時点で、１時間毎にキャリパを用いてカラギーナン注射した足体積を測定した。
・２つの軸線で足寸法を測定し、足体積を計算した。このモデルの足浮腫体積は、炎症の重症度を示すものであった。
・各時点に対して、ベースライン足体積を減算することによって、またはベースライン足体積の％として、足体積の変化を計算した。

自由に動き回るラットの炎症性痛覚を測定するためのホットプレート法
ホットプレート法を用いて、自由に動き回るラットの炎症性痛覚を測定した。浮腫を誘発し、かつ溶媒、インドメタシンまたはＲＧＣ製剤のいずれかで処理した後、ラットを５５±０．５℃の温度に維持したホットプレート上に置いた。ベースラインに比べて、後足を動かしたり舐めたりするまでの潜時、あるいはホットプレートからジャンプするまでの潜時を反応時間と考えた。注射の１、２及び４時間後に反応時間を書き留めた。反応がない場合は、組織損傷を防ぐために、カットオフ時間を３０秒とした。

群の割当：
溶媒投与対照（１Ｍ）群：対照ラットには、カラギーナン注射の２時間前に、滅菌飲料水（溶媒）を投与した。
陽性対照群（「２Ｍ」）：陽性対照群のラットには、カラギーナン注射の２時間前に、体重１ｋｇ当たり２ｍｇのインドメタシンを投与した。
実験群（「３Ｍ」）：ラットには、カラギーナン注射の２時間前に、ＲＧＣを、滅菌飲料水中に懸濁させた懸濁液として体重１ｋｇ当たり４００ｍｇの用量（１ｍｌ／４０ｍｇのＲＧＣ）で経口投与した。

結果

足の腫れ：
図１は、ＲＧＣ製剤、インドメタシン及び対照として水でそれぞれ処理したラットにおける足浮腫の結果（体積パーセント）を示している。反復測定のための二元配置分散分析法を用いて統計分析を行い、次にボンフェローニ・ポストホックテスト（ボンフェローニ法）を用いた。対照群（１Ｍ）と陽性対照群（２Ｍ）との比較は、２時間後及び４時間後に統計的に有意な差（ｐ＜０．００１）を示した。対照群とＲＧＣ製剤（３Ｍ）群との比較は、２時間後及び４時間後に統計的に有意な差（ｐ＜０．００１）を示した。

図１に示したように、ラットをＲＧＣ製剤で処理した場合、１時間後または２時間後に足の腫れが少なくとも陽性対照のレベルまで減少した。さらに、４時間後、ＲＧＣ製剤で処理したラットは、対照よりもさらに大きな足の腫れの減少を示した。

炎症性痛覚
図２は、ＲＧＣ製剤、インドメタシン及び対照として水でそれぞれ処理した後の、各群の痛覚過敏作用を示している。反復測定のための二元配置分散分析法を用いて統計分析を行い、次にボンフェローニ法を用いた。対照群（１Ｍ）と陽性対照群（２Ｍ）との比較は、２時間後及び４時間後に統計的に有意な差（ｐ＜０．０５−０．０１）を示した。対照群とＲＧＣ（３Ｍ）との比較は、４時間に統計的に有意な差（ｐ＜０．０１）を示した。

図２に見られるように、溶媒投与対照群（１Ｍ）（滅菌飲料水を投与）は、カラギーナン注射の２時間後及び４時間後に、熱刺激に対する潜時Δ（時間）の著しい増加を示した。このことは、この群におけるラットの足底熱刺激に対する反応性の低下によって裏付けられた。

図３に見られるように、陽性対照群（インドメタシン処理ラット，２Ｍ）は、カラギーナン注射の２時間後及び４時間後に、溶媒投与対照群と比較して熱刺激に対する反応の潜時Δの著しい減少を示した。

ＲＧＣ処理ラット（３Ｍ）は、カラギーナン注射の４時間後に、熱刺激に対する反応の潜時Δの減少を示した。これは、溶媒投与対照群と比較して統計的に有意であった。

結論として、この例において示された結果は、ラットにおけるカラギーナンによって誘発される後足炎症と関連する足浮腫及び行動痛覚過敏が、例１に記載したプロセスにより製造したＲＧＣの経口投与によって実際的に軽減されたことを示しており、このことは、ＲＧＣ製剤の抗炎症作用が大規模プロセスで作製されるＲＧＣ中においてさえも回復されることを示している。これは、同じカラギーナン誘発性痛覚過敏モデルを用いたGentilli et al (2001)に記載されている研究とは著しい対照をなす。彼らの研究は、ラットに対して後足へのカラギーナン注射の前に投与された高濃度のレスベラトロール（体重１ｋｇ当たり５０ｍｇ（５０ｍｇ／ｋｇ）。それに対して、本願の研究に用いたのは６ｍｇ／ｋｇに相当する）が足浮腫を減少させなかったことを示している。

例５
動物実験

イスラエル国エルサレムのハーラン・ラボラトリーズ社（Harlan Laboratories Ltd）から４０匹のオスのスプラーグ・ドーリー（ＳＤ）ラット（体重２５０±２５ｇ）を入手した。ラットは、標準サイズのケージに入れ、２２℃の動物飼育室に置き、１４時間の明／１０時間の暗の周期の条件下で飼育した。ラットは、５日間の順応期間中、標準的なラット食で維持し、不断で飲用の水道水を与えた。順応期間に続いて、ラットを、２１％のタンパク質、５％の脂肪、６０％の炭水化物０．４９％のナトリウム、０．４９％のカリウムからなるフルクトース強化食（Teklad-Harlan, Madison, USA）に切り替え、４つの群に分けた（各群に１０匹のラット）。

全てのＳＤラットに高フルクトース食を５週間与えた。高フルクトース食を与えた３週間後に、ラットの一部（３０匹のラット）に対して、異なる用量（２００、４００及び８００ｍｇ／Ｋｇ／日）のＲＧＣをラットの食事に直接添加した。

体重、収縮期ＢＰ、血漿トリグリセリド、インスリン及びアディポネクチンのレベルを、ベースライン時並びに高フルクトース食を与えた３週間後及び５週間後に測定した。すなわち、第１及び第２の測定を３０匹のラットへのＲＧＣ添加の前に行い、第３の測定を５週間後に（すなわち、ＲＧＣ添加期間の２週間後に）行った。研究の開始時並びに高フルクトース食を与えた３週間後及び５週間後に、２０匹のラット（１０匹は対照群のラット、１０匹は４００ｍｇのＲＧＣを添加したラット）を、尿中ナトリウム排泄を分析するために代謝ケージに入れた。

血圧測定
電気血圧計及び空気振動トランスデューサ（58500 BP Recorder, UGO BASILE, Varese, Italy）を用いて、非観血的テールカフ（tail cuff）法によって収縮期血圧（ＢＰ）を測定した。測定を行う間、ラットは温度調整されたラットホルダに保持した。５つの連続した測定値の平均を用いて収縮期ＢＰを決定した。

実験室測定
指示された時点で、絶食の５時間後に、全てのラットから、イソフルランでの浅麻酔下で、後眼窩静脈叢穿刺から血液サンプルを採取した（第１及び第２の測定をＲＧＣ添加の前に行い、第３の測定を開始時点から５週間後に（すなわち、ＲＧＣ添加期間の２週間後に）行った）。

凝結防止のためにＥＤＴＡの存在下で血漿用の血液を採取し、冷所に保存した。遠心分離に続いて、血漿を分離し、さらなる分析を行うまで−８０℃で凍結させた。酵素比色反応の自動分析器（Olympus AU 2700, Hamburg, Germany）によりトリグリセリドレベルを分析した。Ｉ−１２５ＲＩＡキット（INSIK-5, Diasorin, USA）を用いて血漿インスリンを評価した。アディポネクチンＲＩＡキット（Cat. #MADP-60HK from Linco Research Inc., St. Charles, MO）によって、総血漿アディポネクチン濃度を測定した。自動分析器（Olympus An 2700; Olympus Diagnostics, Hamburg, Germany）によって尿中ナトリウム排泄率を測定した。

結果

血圧、血漿トリグリセリド、インスリン、アディポネクチン及びナトリウム排泄に対するＲＧＣの効果

高フルクトース食を与えたラットにおいて、ＲＧＣを添加してもしなくても体重増加量は同様であった（図１１）。高フルクトース食は、血圧、血漿トリグリセリド、インスリン及びアディポネクチンのレベルの著しい上昇を誘発した（図５，表４）。収縮期ＢＰは、高フルクトース食を投与した５週間後に１３７ｍｍＨｇから１５６ｍｍＨｇに１９．１±１．１ｍｍＨｇ上昇した（ｐ＜０．００１）。ＲＧＣの添加により、高フルクトース食によって誘発されるＢＰ上昇（図５）は、２００ｍｇ／Ｋｇ／日のＲＧＣを投与した第１の群においては１６１±４．５から１５１±３．６ｍｍＨｇに、４００ｍｇ／Ｋｇ／日のＲＧＣを投与した第２の群においては１６２±５から１５２±３ｍｍＨｇに、８００ｍｇ／Ｋｇ／日のＲＧＣＲＧＣを投与した第３の群においては１６２±２．８から１５０±１．８ｍｍＨｇに、それぞれ抑制した（ｐ＜０．０５）。ＲＧＣの添加により、血漿中のトリグリセリドのレベルは、２００ｍｇ／Ｋｇ／日のＲＧＣを投与した第１の群においては２３４±１４から１７１±１２ｍｇ／ｄＬに、４００ｍｇ／Ｋｇ／日のＲＧＣを投与した第２の群においては２３５±１２から１６７±２４ｍｇ／ｄＬに、８００ｍｇ／Ｋｇ／日のＲＧＣを投与した第３の群においては２１９±３１から１４２±２１ｍｇ／ｄＬに、それぞれ抑制した。ＲＧＣは、高フルクトース食によって誘発される血漿インスリンレベルの上昇を、対照群（フルクトース強化食）における±４３．５ｍｇ／ｄＬから、それぞれ２００、４００及び８００ｍｇ／Ｋｇ／日の用量でＲＧＣ処理したラット群における３３．９±２．６、３４．４±３．８及び３１．６±２．９ｍｇ／ｄＬまで抑制した。

それぞれ２００、４００及び８００ｍｇ／Ｋｇ／日の用量でＲＧＣ処理したラット群におけるアディポネクチンレベルが６．０±０．４，４．５±０．２及び５．４±０．５であったのに対して、対照群におけるアディポネクチンレベルが５．８±０．３であったことが示すように、ＲＧＣは、アディポネクチンレベルに確実な効果を及ぼさなかった。

ＲＧＣを添加したラットにおいても添加しなかったラットにおいても、ベースライン時の尿中ナトリウム排泄は同じであった（それぞれ０．５±０．１及び０．７±０．２ｍｍｏｌ／日，ｐ＝０．４３）。尿中ナトリウム排泄は、高フルクトース食の３週間後に著しく増加し、ＲＧＣの添加後には変化がなかった（３週間後、ＲＧＣを添加しなかったラット及びＲＧＣを添加したラットにおいてそれぞれ３．５±０．２及び２．３±０．３ｍｍｏｌ／日；両者ｐ＜０．０５であり、５週間後、それぞれ３．１±０．２及び１．８±０．３ｍｍｏｌ／日；群間でｐ＝０．４であった）。

例６
他の源から得られるＲＥＳと比較してのＲＧＣ−ＲＥＳの化学的特性、及びＲＧＣ−ＲＥＳのヒトのバイオアベイラビリティ特性

原料及び方法
例１に従って赤ブドウ細胞（ＲＧＣ）を作製した。ＲＧＣのレスベラトロール（ＲＥＳ）含有量を、合成ＲＥＳ較正曲線を用いて３０６ｎｍでＨＰＬＣ分析によって測定した。

ＲＧＣ−ＲＥＳのＬＣ−ＭＳ分析
ＲＧＣ粉末を８０％メタノールに溶解させた。試料の液体クロマトグラフィー質量分析（ＬＣ−ＭＳ）を、Ａｃｃｅｌａ ＬＣシステム／エレクトロスプレーイオン化源を備えた四重極トラップ（ＬＴＱ）型Ｏｒｂｉｔｒａｐ ＤｉｓｃｏｖｅｒｙハイブリッドＦＴ質量分析計（サーモフィッシャーサイエンティフィック社（Thermo Fisher Scientific Inc.）製）を用いて行った。質量分析計を負イオン化モードで作動させ、ｍ／ｚ１５０〜２０００の範囲で質量スペクトルを得た。

溶解度アッセイ
ＲＧＣ、合成レスベラトロール（Ｓ−ＲＥＳ；シグマアルドリッチ社）及び植物イタドリからのレスベラトロール抽出物（植物−ＲＥＳ）を８０％メタノールに溶解させることにより１００％の溶解を達成した。その後、全てのＲＥＳ源をｐＨ２及びｐＨ７の水に溶解させ、水への溶解度のパーセンテージをメタノールへの溶解度と比較した。全ての試料中のＲＥＳをその特性吸収プロフィールに基づいて３０６ｎｍで測定し、レスベラトロール分析標準の較正曲線によって濃度を決定した。

結果

ＬＣ−ＭＳ
ＲＧＣ粉末のための負イオンモード及び代表的ＬＣ／ＭＳクロマトグラムでの質量スペクトルを図６Ａ及び図６Ｂに示す。ＬＣ−ＭＳ分析によって、ＲＧＣにおいてレスベラトロールの４つの誘導体が検出され（ｍ／ｚ−２２７．０７０１−２２７．０７３７）、これらは全て３０６ｎｍでのＵＶ吸光度を示している。これらの誘導体のうち３つは、４．６分、５．３分及び６．１分の保持時間に検出されたトランス型ＲＥＳ異性体のヘキソース配糖体であった。第４の誘導体は、６．９分の保持時間に検出されたトランス型ＲＥＳのものであった（表１２）。ＥＳＩマススペクトル（図７）に示すように、４つの誘導体の同一性を確認した。

溶解度
ＲＧＣ−ＲＥＳの溶解度を２つのトランス型ＲＥＳ生成物、すなわち合成−ＲＥＳ及び植物イタドリ−ＲＥＳの溶解度と比較した。検査した３つの生成物は全て、８０％メタノール溶液に完全に溶解した。しかし、３つのＲＥＳ生成物を、胃のｐＨ状態を再現する酸性化した水（ｐＨ＝２）及びｐＨ７．０の水に溶解させたとき、ＲＧＣ−ＲＥＳの溶解度は、ＲＧＣ−ＲＥＳに関しては６倍以上高い４４％であり、他の２つのＲＥＳ源に関しては７％であった（図８）。

ヒトバイオアベイラビリティの研究
本研究は、単回用量無作為化クロスオーバ比較薬物動態研究であった。１５人の成人の健常な絶食男性被験者に対して、少なくとも７日間のウォッシュアウト期間を隔てて、治験中の生成物ＲＧＣ（５０ｍｇまたは１５０ｍｇのトランス−ＲＥＳに相当する経口用量）を投与した。投与の４時間後に標準食を与えた。本研究は、イスラエル国保健省（ＭＯＨ）の全ての規則及び規制に準拠して、かつＩＣＨ ＧＣＰガイダンスに従って行った。このプロトコールは、ソロカ大学医療センターＩＲＢによって承認されたものであり、各患者に対する５０または１５０ｍｇの単回用量の投与と、その後の７日間のウォッシュアウトと、１回目の用量とは異なる（最初に５０ｍｇを投与された患者は２回目の投与で１５０ｍｇを投与され、逆の場合も同様であるように投与される）２回目の単回用量とが含まれる。本研究へは１５人の健常な非喫煙男性ボランティアを募集した。ボランティア適格条件は、年齢１８〜５５歳；ＢＭＩ＞１９及び＜３０であった。被験者は、１回目の投与の７日前から、及び本研究期間全体を通して、ＲＥＳ含有食品、栄養サプリメントまたはドリンクを控え、かつ一般用医薬品を含む全ての薬物を控えるように依頼された。

試料の採取及び管理
投与の前（ｔ０）及び投与の０．３３、０．６７、１、１．５、２、２．５、３、４、５、６、８、１０及び１２時間後に、Ｋ_２ＥＤＴＡ含有チューブに様々な血液試料を採取した。血液試料を氷浴中に保持し、黄色光の下で直ちに処理した。

血漿中のレスベラトロール含有量の分析
試料作製及び血漿試料中の遊離ＲＥＳ（free RES）及び全ＲＥＳ（total RES）のＬＣ−ＭＳ分析は、ＰＲＡＣＳインスティテュート（Toronto, Canada）が行った。血漿試料を液液抽出し、の分析のためにＬＣ−ＭＳ／ＭＳシステムに用いた。定量下限値（ＬＬＯＱ）は、遊離ＲＥＳ及び全ＲＥＳに関してそれぞれ０．５及び２０ｎｇ／ｍＬであった。全ＲＥＳの分析のために、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳ分析に先立って、酵素加水分解及びタンパク質沈殿抽出を行った。

薬物動態解析
ノンコンパートメントモデル薬物動態手法を用いて遊離ＲＥＳ及び全ＲＥＳ（遊離及び共役）に関する以下の薬物動態変数、すなわち、最大血漿濃度（Ｃｍａｘ）及び最大血漿濃度時間（Ｔｍａｘ）、全収集期間の平均濃度、台形法による時間（０）から最後の定量化可能な濃度（Ｃｌａｓｔ，ＬＯＱを超えている）までの血漿濃度−時間曲線下面積（ＡＵＣ）を計算した。

ＬＤＬ酸化アッセイ
ＬＤＬの作製：不連続密度勾配超遠心法によって、健康で血中脂質が正常なボランティアの血漿からＬＤＬを分離した。

銅イオンに誘導されるＬＤＬ酸化：各実験におけるブドウ粉末エタノール抽出物の濃度の増加とともに、ＬＤＬ（１００ｍｇのタンパク質／ｍＬ）を室温で１０分間インキュベートした。ＣｕＳＯ_４を加え、チューブを３７℃で２時間インキュベートした。インキュベーションの終わりに、チオバルビツール酸反応性物質（ＴＢＡＲＳ）及び過酸化脂質（ＰＤ）の生成量を測定することによって、ＬＤＬ酸化量を測定した。

脂質過酸化反応アッセイ：吸光度５３２ｎｍにおいて、マロンジアルデヒド（ＭＤＡ）の標準曲線を用いて、チオバルビツール酸反応性物質（ＴＢＡＲＳ）アッセイによって培地中のＬＤＬ酸化量を直接測定した。分光光度法（３６５ｎｍ）で測定したヨウ素をヨウ化物に変換する能力によって過酸化脂質形成を分析する過酸化脂質テストによって、リポタンパク質酸化も測定した。

結果

人口統計学的特性及び安全性：１５人の健常な男性ボランティアが本研究に参加した。被験者の年齢範囲は２８〜５５歳（平均４２．１歳）、ＢＭＩ範囲は２１．４〜３０（平均２５．８）であった。全ての被験者は、スクリーン時及び投与時の検査パラメータ及びバイタルサイン測定値に関して臨床的に有意な異常がなく、薬物及びアルコールに対して陰性であることをテストした。本研究を通して有害事象は観察も報告もされなかった。

遊離及び全レスベラトロールの血漿薬物動態：全ＲＥＳ及び遊離ＲＥＳに関する平均のトランス型ＲＧＣ−ＲＥＳの血漿濃度−時間曲線を図６に示す。図に見られるように、両濃度におけるＲＧＣプロフィールは、２つの明瞭な濃度ピーク、すなわち１時間後の第１のピークと、５時間後の第２の（より高い）ピークを示している。

ｔ−ＲＥＳの平均薬物動態パラメータを表１３Ａ及び表１３Ｂにまとめた。

最初の２つの測定時点である０．３３時間及び０．６７時間で分析を行ったところ、測定可能な量のＲＧＣを投与された被験者の血漿中のＲＥＳが明らかになった（表１４）。さらに、０．３３時間の時点では、ＲＧＣ群の全ての被験者（ＲＧＣを１５０ｍｇ投与した群の１人を除く）は、測定可能な濃度の全ＲＥＳを有していた（表１４及び表１５）。

結論

ＲＧＣに由来するＲＥＳは、１つのヘキソース部分の追加によって特徴付けられる。ヘキソースの正確な種類及び正確な位置は特定されていないが、ＲＧＣ−ＲＥＳはピセイド（赤ブドウに天然に存在する最もよく見られる種類のＲＥＳ）である可能性が最も高い。遊離ＲＥＳ及び全ＲＥＳの両形態において実証された２つのピークの現象は独特なものであり、他の種類のＲＥＳには見られなかった。溶解度試験において観察されたように（溶解度試験では、ＲＧＣ−ＲＥＳは合成及び植物由来ＲＥＳ源よりも水溶性が高かった）、ＲＧＣ−ＲＥＳ中のグリコシド基の存在がＲＧＣ−ＲＥＳをより溶解しやすくした可能性がある。この独特な２つの濃度ピークパターンは、赤ブドウのポリフェノールの全マトリックス及び高レベルの配糖体レスベラトロールを含有しかつ両者の相乗効果をもたらすＲＧＣ固有の組成物にも起因し得る。この特徴は、投与の２０分後という早さでＲＥＳが高い率で、高濃度で存在することに現れていたであろう。

濃度／時間曲線（図９Ａ）にはっきりと見られるように、ＲＧＣ−ＲＥＳは、１時間後及び５時間後に現れる２つの非常に明白な濃度ピークを生じさせた。

重要なことには、ＲＥＳの合成または酵母発酵源の濃度時間曲線（Poulsen et al., 2013）及び植物由来ＲＥＳの濃度時間曲線（Amiot, et al., 2013）は、明白な１つの濃度ピークを示している。このことは、持続効果を得るために１日に１回のＲＧＣの補足で十分であることを示しており、その一方で、他の製品では、同じ効果を得るために１日に２回以上の補足またはより高いレベルが必要とされ得る。

例７
臨床研究−高血圧前症または軽度（中程度）高血圧症を患う人々の血圧、血管機能及び血漿酸化パラメータに対するＲＧＣ粉末の効果

ランダム化二重盲検プラセボ対照研究を行った。適格被験者を参加させ、無作為に３つの治療計画に分け、２００ｍｇのＲＧＣ粉末、または４００ｍｇのＲＧＣ粉末、またはプラセボを投与した。治療対象者（被験者）は、他の関連する薬を併用していなかった。治験薬またはプラセボを１２週間にわたって１日１回摂取させた。投薬量中のレスベラトロール及び全ポリフェノールの量を下表１６に示す。

結果
５５人中４６人の被験者（９２％）が研究を完了した。ベースライン基準は、全処置群にわたって比較可能であった。２００ｍｇのＲＧＣで処置した群は、他の２つの処置群と比較して高いＢＭＩを有していた。研究対象母集団の平均年齢は５７．５±７．２歳（範囲：４１．７〜７０．０歳）であった。

安全性
ＲＧＣでの処置は、安全でかつ良好な耐容性を示していた。１つの重篤な有害事象（ＳＡＥ）である胸焼けは胸痛に変わったが、翌日同時に解消され、研究成果に関連していそうにない中程度のＳＡＥであると考えられた。他の全ての有害事象は軽度または中等度であり、研究成果に関連しているとは考えられなかった。研究中にバイタルサインや実験室での値の臨床的に有意な変化は生じなかった。

有効性

血圧（ＢＰ）
拡張期ＢＰは、２００ｍｇのＲＧＣで処置した群において−４．１８±８．９６ｍｍＨｇ低下した。異なる群間の比較は、この変化がプラセボとは統計的に有意に異なることを示した（表１７，ｐ＝０．０３２０）。２００ｍｇのＲＧＣで処置した群においては、ベースライン時と処理終了時との間で収縮期ＢＰの僅かな変化が見られた（表１７）。

血漿酸化パラメータ
表１７に示したように、４００ｍｇのＲＧＣで処置した群では、ベースライン時と処理終了時との間で過酸化脂質値が著しく３１．４±５６．０低下した。２００ｍｇのＲＧＣで処置した群でも、３０．０±４８．２の過酸化脂質値の低下が観察された。

サンプルサイズをより大きくできるように２つのＲＧＣ処置群から得られた過酸化脂質値を合わせると、平均過酸化脂質値は、３１．０±５２．３ｎｍｏｌ／ｍｌ減少した（図１０，ｐ＝０．０１３）。

血流依存性血管拡張反応（ＦＭＤ）により測定される血管機能

２００ｍｇのＲＧＣで処置した群の６人の被験者、４００ｍｇのＲＧＣで処置した群の８人の被験者及びプラセボを投与した９人の被験者において、ＦＭＤにより血管機能を測定した。４００ｍｇのＲＧＣで処置した群では、ベースライン時と処理終了時との間で統計的に有意なＦＭＤの２．１４±１．８２ｍｍＨｇの増加が観察された（表１７，ｐ＝０．０１３）。ＦＭＤは、上腕部の血圧計カフ（腕帯）を５分間２００ｍｍＨｇまで膨張させ、その後、カフを緩めてから６０、９０及び１２０秒後に超音波検査によって動脈の拡張を測定することによって行った。

４００ｍｇのＲＧＣで処置した群の８人の被験者全て（１００％）には、肯定的な相対的な変化が起こった（＞７０％のＦＭＤ）が、これに対して、２００ｍｇのＲＧＣで処置した群では６人の被験者のうちの２人（３３．３％）、プラセボを投与した群では９人の被験者のうちの２人（２２．２％）であった（図１１）。４００ｍｇのＲＧＣで処置した群において観察された改善率は、２００ｍｇのＲＧＣで処置した群及びプラセボ群の両方で観察されたものとは統計的に有意に異なっていた（４００ｍｇ対２００ｍｇではｐ＝０．０１５、４００ｍｇ対プラセボではｐ＝０．００２３）。

ここに示す結果は、ＲＧＣ粉末の毎日の摂取が、軽度高血圧症の被験者においてＦＭＤを向上させ、酸化ストレスを改善し得ることを示している。ＲＧＣは、医学的に治療されていない軽度高血圧症の被験者において拡張期及び収縮期血圧を低下させることもできる。

例８
健康で適度に訓練されたサイクリスト（自転車乗り）の測定に対する赤ブドウ細胞（ＲＧＣ）粉末摂取の効果の二重盲検ランダム化プラセボ対照研究

実験手順
例１に従ってＲＧＣ細胞培養物の粉末を作製した。

健康で適度に訓練されたサイクリストからなる３つの群に対する臨床研究を行った。１５人の被験者に６週間１日２００ｍｇの用量でＲＧＣを投与し、１４人の被験者に１日１０００ｍｇの用量でＲＧＣを投与した。１５人の被験者（対照群）にプラセボを６週間投与した。

ＲＧＣ摂取前のベースライン来院時に、被験者に対して、体重、身長、体脂肪率の測定を含む身体測定を行った。その後、被験者に対して、静止自転車エルゴメータを用いた心肺運動負荷試験を行った。測定されたパラメータには、安静時及び最大運動時の心拍数及び血圧、並びに一連のエアロビックフィットネスパラメータが含まれる。ＲＧＣまたはプラセボ摂取の６週間後に精密測定を繰り返した。

表１８に見られるように、安静時拡張期血圧の５％〜６％の大幅な低下は、添加後の２つのＲＧＣ群においてのみ見られた。同様に、平均安静時収縮期血圧も低下した。拡張期及び収縮期血圧の低下を示した被験者の数を測定すると、両ＲＧＣ群におけるそのような被験者の数は、プラセボ群と比較してほぼ２倍であることが明らかになった。安静時の心拍数に関しても同様の状況が明らかになった。

最大運動時には（表１９）、研究終了時に低用量群のみにおいて統計学的には五分五分で拡張期血圧が低下した。研究終了時に最大運動時の拡張期血圧が低下した参加者の数は、両ＲＧＣ群において、プラセボ群と比較して３倍以上多かった。最大運動時における最大収縮期血圧測定値にも同様の傾向が見られた。

表１８は、ベースライン時及び研究終了時の平均安静時心拍数及び血圧並びに群間の差に関するデータを示している。各パラメータが改善した参加者の割合も括弧内に示されている。

表１９は、ベースライン時及び研究終了時の最大有酸素能力の測定値並びに群間の差に関するデータを示している。各パラメータが改善した参加者の割合も括弧内に示されている。

本明細書において本発明の特定の特徴について図示及び説明してきたが、当業者は、本発明の多くの変更形態、置換形態、変形形態及び等価形態を想到するであろう。したがって、添付の特許請求の範囲は、本発明の真の趣旨に含まれる全てのそのような変更形態及び変形形態を網羅するものであることを理解されたい。

有効性

血漿酸化パラメータ
表１７に示したように、４００ｍｇのＲＧＣで処置した群では、ベースライン時と処理終了時との間で過酸化脂質値が著しく３１．４±５６．０ｎｍｏｌ／ｍｌ低下した。２００ｍｇのＲＧＣで処置した群でも、３０．０±４８．２ｎｍｏｌ／ｍｌの過酸化脂質値の低下が観察された。

Claims (29)

1. メタボリックシンドロームまたは代謝疾患を治療、軽減、緩和または予防する方法であって、
   インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含むことを特徴とする方法。
2. 前記果実細胞がブドウ果実細胞であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
3. メタボリックシンドロームである対象者において、冠状動脈性疾患（アテローム性動脈硬化）、血圧、虚血、心不全、アテローム性動脈硬化、慢性腎臓病（ＣＫＤ）及び腎臓病全身性硬化症、慢性心不全、高血圧、糖尿病、高脂血症、耐糖能異常、肝臓脂肪症、高血糖症、前糖尿病状態、新規発症糖尿病、インスリン抵抗性、真性糖尿病、空腹時血糖異常、高トリグリセリド血症、抗炎症（アディポネクチン）、高コレステロール血症、低ＨＤＬレベル、脂肪肝及び肥満からなる群から選択される１若しくは複数の病気を治療する方法であって、
   前記対象者に対して、インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含むことを特徴とする方法。
4. 対象者において、冠状動脈性疾患（アテローム性動脈硬化）、血圧、虚血、心不全、アテローム性動脈硬化、慢性腎臓病（ＣＫＤ）及び腎臓病、全身性硬化症、慢性心不全、高血圧、糖尿病、高脂血症、耐糖能異常、肝臓脂肪症、高血糖症、前糖尿病状態、新規発症糖尿病、ンスリン抵抗性、真性糖尿病、空腹時血糖異常、高トリグリセリド血症、抗炎症（アディポネクチン）、高コレステロール血症、低ＨＤＬレベル、脂肪肝及び肥満からなる群から選択される１若しくは複数の病気を治療または予防する方法であって、
   前記対象者に対して、インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含むことを特徴とする方法。
5. 前記１若しくは複数の病気が、高血圧、高トリグリセリド血症及び糖尿病であることを特徴とする請求項３または請求項４に記載の方法。
6. 前記果実細胞の細胞株カルス培養物が、ブドウ果実横断切片、ブドウ果皮、ブドウ果実果肉、ブドウ種子、有核または無核の品種のブドウ胚、あるいはブドウ種皮のうちの１つ若しくは複数に由来することを特徴とする請求項１に記載の方法。
7. 前記組成物が栄養補助食品組成物であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
8. 前記栄養補助食品組成物が、洗口液、粉末、細長片、泡、チューインガム、経口噴霧剤、ロゼンジ、カプセル、歯磨き粉、食品成分添加物（栄養補助食品）、食品成分、食品及び飲料からなる群から選択される形態をとることを特徴とする請求項１に記載の方法。
9. 栄養補助食品組成物または、前記インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を乾燥させたものが、無味であることを特徴とする請求項１に記載の方法。
10. 前記果実細胞の細胞株カルス培養物が、大規模プロセスにより作製され、
    前記大規模プロセスが、
    フラスコ内で果実細胞を増殖させるステップと、
    前記果実細胞を前記フラスコから最初のバイオリアクタに植菌するステップと、
    前記果実細胞を前記最初のバイオリアクタから別のバイオリアクタに植菌するステップと、
    前記最後のバイオリアクタから前記果実細胞を収穫するステップとを含み、
    前記別のバイオリアクタが最後のバイオリアクタまたは中間のバイオリアクタであり、かつ前記最初のバイオリアクタまたは前記別のバイオリアクタのうちの少なくとも一方が使い捨てであり、
    前記最後のバイオリアクタから収穫された前記果実細胞が乾燥されることを特徴とする請求項１ないし請求項９のいずれか１項に記載の方法。
11. 当該プロセスにおいて用いられる各バイオリアクタの大きさが、その前に前記果実細胞を増殖させたバイオリアクタよりも大きいことを特徴とする請求項１０に記載の大規模プロセス。
12. 前記別のバイオリアクタが中間のバイオリアクタである場合には、前記果実細胞を別の中間のバイオリアクタまたは前記最後のバイオリアクタに植菌する追加ステップを行うことを特徴とする請求項１０に記載の大規模プロセス。
13. 前記最初のバイオリアクタまたは前記別のバイオリアクタが、４〜１０リットルのバイオリアクタであることを特徴とする請求項１０に記載の大規模プロセス。
14. 前記最初のバイオリアクタまたは前記別のバイオリアクタが、１０〜５０リットルのバイオリアクタであることを特徴とする請求項１０に記載の大規模プロセス。
15. 前記最初のバイオリアクタまたは前記別のバイオリアクタが、５０〜２００リットルのバイオリアクタであることを特徴とする請求項１０に記載の大規模プロセス。
16. 前記最初のバイオリアクタまたは前記別のバイオリアクタが、２００〜５００リットルのバイオリアクタであることを特徴とする請求項１０に記載の大規模プロセス。
17. 前記最初のバイオリアクタまたは前記別のバイオリアクタが、２００〜１０００リットルのバイオリアクタであることを特徴とする請求項１０に記載の大規模プロセス。
18. 前記果実細胞をガンボーグＢ５培地で増殖させることを特徴とする請求項１０に記載の大規模プロセス。
19. 前記ガンボーグＢ５培地が、マグネシウム塩、リン酸塩及び硝酸塩、またはそれらの組合せで強化されたものであることを特徴とする請求項１８に記載の大規模プロセス。
20. 前記ガンボーグＢ５培地が、ＫＮＯ_３、ＭｇＳＯ_４、ＭｇＮＯ_３またはＮａＨ_２ＰＯ_４、あるいはそれらの組合せで強化されたものであることを特徴とする請求項１８に記載の大規模プロセス。
21. 前記使い捨てバイオリアクタが、１若しくは複数のポリエチレン層から作られたものであることを特徴とする請求項１０に記載の大規模プロセス。
22. 前記使い捨てバイオリアクタが、ポリエチレンの内層及び外層並びにナイロンの中間層から作られたものであることを特徴とする請求項２１に記載の大規模プロセス。
23. 前記ガンボーグＢ５培地が、植物ホルモンを含まないことを特徴とする請求項１８に記載の大規模プロセス。
24. メタボリックシンドロームまたは代謝疾患を治療、軽減、緩和または予防する方法であって、
    大規模プロセスにより作製された果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含み、
    前記大規模プロセスが、
    フラスコ内で果実細胞を増殖させるステップと、
    前記果実細胞を前記フラスコから最初のバイオリアクタに植菌するステップと、
    前記果実細胞を前記最初のバイオリアクタから別のバイオリアクタに植菌するステップと、
    前記最後のバイオリアクタから前記果実細胞を収穫するステップとを含み、
    前記別のバイオリアクタが最後のバイオリアクタまたは中間のバイオリアクタであり、かつ前記最初のバイオリアクタまたは前記別のバイオリアクタのうちの少なくとも一方が使い捨てであり、
    前記最後のバイオリアクタから収穫された前記果実細胞が乾燥されることを特徴とする方法。
25. 炎症を治療、軽減、緩和または予防する方法であって、
    大規模プロセスにより作製された果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含み、
    前記大規模プロセスが、
    フラスコ内で果実細胞を増殖させるステップと、
    前記果実細胞を前記フラスコから最初のバイオリアクタに植菌するステップと、
    前記果実細胞を前記最初のバイオリアクタから別のバイオリアクタに植菌するステップと、
    前記最後のバイオリアクタから前記果実細胞を収穫するステップとを含み、
    前記別のバイオリアクタが最後のバイオリアクタまたは中間のバイオリアクタであり、かつ前記最初のバイオリアクタまたは前記別のバイオリアクタのうちの少なくとも一方が使い捨てであり、
    前記最後のバイオリアクタから収穫された前記果実細胞が乾燥されることを特徴とする方法。
26. 前記組成物が１日１回投与されることを特徴とする請求項１に記載の方法。
27. 大規模スケールアッププロセスにおいてインビトロで増殖したブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物を含む粉末状の組成物であって、
    前記ブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物が、ブドウ果実横断切片、ブドウ果皮、ブドウ果実果肉、ブドウ種子、有核または無核の品種のブドウ胚、あるいはブドウ種皮のうちの１つ若しくは複数に由来するものであり、
    前記ブドウ果実細胞の細胞株カルス培養物が、粉末１ｋｇ当たり少なくとも１０００ｍｇの量のレスベラトロールを含むことを特徴とする組成物。
28. 当該組成物の単回投与後における、血漿中のレスベラトロールの２つの濃度ピークによって特徴付けられることを特徴とする請求項２７に記載の組成物。
29. 対象者において血圧を低下させる方法であって、
    前記対象者に対して、インビトロで増殖した果実細胞の細胞株カルス培養物を含む組成物を投与するステップを含むことを特徴とする方法。

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