JP2016000035A - オメガ9品質カラシナ - Google Patents
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Abstract
Description
、カラシナからの改良された油及びミール、そのような改良されたアブラナ属種の産生方
法、並びにアブラナ属系統の選択された方法に関する。さらなる実施形態は、カラシナの
現在存在する市販栽培品種に比べて増加したオレイン酸含有量及び減少したリノレン酸含
有量を有する内因性の油を含むカラシナの種子、並びに種子油中の増加したオレイン酸含
有量及び種子油中の減少したリノレン酸含有量がその中に安定して組み込まれている形質
を有するカラシナの種子に関する。
本出願は、2008年11月4日に出願された「Omega-9 Quality Brassica Juncea」
についての米国特許仮出願番号第61/198,442号の出願日の利益を主張するもの
である。
その低い飽和脂肪レベルのために、開発された菜種の遺伝子変異種である。「カノーラ」
は、種子油中に2重量%未満エルカ酸(Δ13−22:1)と油不含ミール1グラムにつ
き30マイクロモル未満のグルコシノレートとを有するアブラナ属種の植物を一般に指す
。概して、カノーラ油は、パルミチン酸及びステアリン酸として公知の飽和脂肪酸、オレ
イン酸として公知のモノ不飽和脂肪酸、並びにリノール酸及びリノレン酸として公知の多
価不飽和脂肪酸を含み得る。これらの脂肪酸を、時として、それらの炭素鎖の長さ及びそ
の鎖内の二重結合の数により言及する。例えば、オレイン酸は、炭素数18の鎖と1つの
二重結合を有するので、時としてC18:1と呼ばれ、リノール酸は、炭素数18の鎖と
2つの二重結合を有するので、時としてC18:2と呼ばれ、及びリノレン酸は、炭素数
18の鎖と3つの二重結合を有するので、時としてC18:3と呼ばれる。カノーラ油は
、約7%未満の全飽和脂肪酸(主としてパルミチン酸及びステアリン酸)及び(全脂肪酸
に対する百分率として)60%より多くのオレイン酸を含有することがある。従来、カノ
ーラ作物は、セイヨウアブラナ(Brassica napus)及びアブラナ(Brassica rapa)品種
を含む。最近、他のカノーラタイプに類似した油及びミール品質を有するカノーラ品質カ
ラシナ品種が、カノーラ作物ファミリーに加えられた(2001年10月16日にPot
tesらに発行された米国特許第6,303,849号;Yaoらの米国特許第7,42
3,198号;Potts and Males, 1999)。
オレイン酸(C18:1モノ不飽和脂肪酸)は、血漿コレステロールレベルを低下させ、
種子油中のより高いオレイン酸含有量レベル(>70%)を望ましい形質にする点での有
効性をはじめとする、一定の健康上の恩恵を有すると考えられている。さらに、植物油中
のすべての脂肪酸が、高温及び酸化の影響を同等に受けやすいとは限らない。むしろ、酸
化に対する個々の脂肪酸の感受性は、それらの不飽和度に依存する。例えば、3つの炭素
−炭素二重結合を有するリノレン酸(C18:3)は、炭素−炭素二重結合を1つしか有
さないオレイン酸より98倍速く酸化し、2つの炭素−炭素二重結合を有するリノール酸
は、オレイン酸より41倍速く酸化する(R. T. Holman and O. C. Elmer, 「The rates
of oxidation of unsaturated fatty acid esters,」 J. Am. Oil Chem. Soc. 24, 127-1
29 1947)。オレイン脂肪酸、リノール脂肪酸及びリノレン脂肪酸の相対酸化速度に関す
るさらなる情報については、Hawrysh, 「Stability of Canola Oil,」 Chap. 7, pp. 99-
122, CANOLA AND RAPESEED: PRODUCTION, CHEMISTRY, NUTRITION, AND PROCESSING TECHN
OLOGY, Shahidi, ed., Van Nostrand Reinhold, NY, 1990を参照のこと。
成物の産生に起因するその結果として生ずる劣化に対する、油の耐性と定義することがで
きる。同一の処理、形成、包装及び保管条件下での、異なる植物油間の安定性の大きな違
いは、それらの異なる脂肪酸プロフィールに起因する。従って、高オレイン酸含有量の植
物油は、熱の存在下でその増強された耐酸化性のため、調理用途に好ましい。酸化がその
油の商品価値を大幅に低下させ得る異臭及び臭気を生じさせるので、例えば、油をフライ
油として使用する場合、劣った酸化安定性は、実使用時間を短くする。この理由のため、
高オレイン酸及び低リノレン酸が植物油における望しい形質であり得る。
及びステアロイル−ACPとして合成する。ステアロイル−ACPのオレオイル−ACP
(18:1−ACP)への変換は、可溶性酵素、ステアロイル−ACP Δ9デサチュラ
ーゼ、によって触媒される(Shanklin and Somerville, 1991)。これらのアシル−AC
P類は、葉緑体における糖脂質合成のために使用されるか、葉緑体から出て細胞質にアシ
ル−CoAとして輸送される。オレイン酸のさらなる脱飽和は、それがグリセロ脂質の合
成に使用され、膜に組み込まれてはじめて発生し、これが多価脂肪酸の合成をもたらす。
てある程度制御されることは、当業者に広く公知である。FAD酵素は、脂肪酸、例えば
ステアリン酸(C18:0)、オレイン酸(C18:1)及びリノール酸(C18:2)
、の不飽和を、規定量の炭素数の脂肪アシル鎖から水素原子を除去して炭素−炭素二重結
合を作ることにより調節する。多価不飽和脂肪酸リノレアート(Δ9,12−18:2)
及びα−リノレナート(Δ9,12,15−18:3)の合成は、オレイン酸(Δ9−1
8:1)のリノール酸への変換、ミクロソームω−6オレイン酸デサチュラーゼ(FAD
2)によって触媒される酵素的段階で開始する。その後、リノール酸は、ω−3リノール
酸デサチュラーゼ(FAD3)によるさらなる脱飽和により、ω−リノレン酸に変換され
る。遺伝子工学によるFAD2遺伝子の操作によって脂肪酸プロフィールを改変できたと
いう報告がある。例えば、シロイヌナズナ属(Arabidopsis)突然変異系統における大豆
fad2遺伝子の異種発現は、多価不飽和脂肪酸の蓄積の劇的増加をもたらした(Heppar
d et al., 1996)。対照的に、fad2遺伝子の転写がT−DNA挿入に起因して有意に
減少されるシロイヌナズナ族突然変異系統fad2−5においては、オレイン酸の蓄積の
劇的増加並びにリノール酸及びリノレン酸レベルの有意な減少を示した(Okuley et al.,
1994)。これらの発見は、FAD2遺伝子が、種子貯蔵脂質におけるオレイン酸のリノ
ール酸への変換の制御に重要な役割を果たす。
種、の脂肪酸プロフィールを操作するための有意な努力がなされてきた(例えば、199
7年4月29日に発行された米国特許第5,625,130号、1997年9月16日に
発行された米国特許第5,668,299号、1998年6月16日に発行された米国特
許第5,767,338号、1998年11月24日に発行された米国特許第5,840
,946号、1998年12月15日に発行された米国特許第5,850,026号、1
999年1月19日に発行された米国特許第5,861,187号、2000年5月16
日に発行された米国特許第6,063,947号、2000年7月4日に発行された米国
特許第6,084,157号、2001年1月2日に発行された米国特許第6,169,
190号、2001年11月27日に発行された米国特許第6,323,392号、並び
に1997年11月27日に発行された国際特許出願国際公開第97/43907号及び
2000年9月9日に発行された国際特許出願国際公開第00/51415号を参照のこ
と)。
シナ(B. juncea)」とも呼ぶ)は、アブラナ(AAゲノム;n=10)とクロガラシ(B
rassica nigra)(BBゲノム;n=8)のハイブリダイゼーションの結果として生じた
と一般に考えられているアブラナ属の複二倍体植物である。セイヨウアブラナ(Brassica
napus)(AA CCゲノム;n=19)(本明細書では「セイヨウアブラナ(B. napus
)とも呼ぶ」もアブラナ属の複二倍体植物であるが、アブラナとブラッシカ・オレラセア
(Brassica oleracea)(CCゲノム;n=9)のハイブリダイゼーションの結果として
生じたと考えられている。一部の成長条件下では、カラシナがアブラナより優れた一定の
形質を有することがある。これらの優れた形質としては、より高い収率、より良い耐乾燥
性、より良好な耐暑性、及びより良い耐病性を挙げることができる。徹底的な育種努力に
より、種子が2%未満エルカ酸を含有し、脱脂ミールが1グラムにつき30マイクロモル
未満グルコシノレートを含有する、アブラナ属種の植物が生産された。用語「カノーラ」
は、低エルカ酸(Δ13−22:1)及び低グルコシノレートを含有するアブラナ属種の
品種を述べるために用いられている。概して、カノーラ油は、約7%未満の全飽和脂肪酸
及び(全脂肪酸に対する百分率として)60%より多くのオレイン酸を含有し得る。例え
ば、米国では、21 CFR 184.1555のもと、セイヨウアブラナ又はアブラナ
から採取される低エルカ酸菜種油は、それが成分脂肪酸の2%以下のエルカ酸含有量、5
0.0重量%を超えるオレイン酸(C18:1)含有量、40.0重量%未満のリノール
酸(C18:2)含有量、及び14.0重量%未満のリノレン酸(C18:3)含有量を
有する場合、カノーラ油とみなされる。カナダでは、カナダカノーラ協会(the Canola C
ouncil of Canada)によるカノーラの定義へのカラシナの追加により、カラシナカノーラ
品種は、該種子中に全脂肪酸の55%に等しい又はそれより多いオレイン酸含有量を含む
油を有する種子を生産しなければならい、及びカラシナカノーラ種子から得られるミール
は、油不含ミール1グラムにつき1マイクロモル未満のアリル(2−プロピル)グルコシ
ノレートを含有しなければならないという、追加要件が設定された。
。例えば、カラシナが、フェノール(例えばトコフェロール)、ステロール、スルフィド
、脂肪酸成分、ミネラル及びイソチオシアナートを含むが、これらに限定されない、様々
な成分の相違を含むことは、公知である。カラシナは、強い抗微生物(細菌及び真菌)特
性を有する揮発分も含有する。
ドロキシ−3−ブテニル又は2−ヒドロキシ−4−ペンテニルグルコシノレート、が低い
カノーラ品種も選出された。カノーラ品質ミールは、例えば、油不含ミール1グラムにつ
き30マイクロモル未満の脂肪族グルコシノレートのグルコシノレート含有量を有すると
定義することができる。最近、主な商用カノーラ作物は、セイヨウアブラナ及びアブラナ
(現 Brassica rapa;旧名 Brassica campestris)品種を含む。2001年10月16日
にPottsらに発行された米国特許第6,303,849号には、カノーラに類似した
特性を有する食用油を有するカラシナ系統が開示されている。そこに開示されているカラ
シナ系統は、ATCCアクセッション番号203389及び203390としてそれぞれ
寄託されたカラシナ系統J90−3450及びJ90−4316を含む系統群を有する(
これらの両方が、ブダペスト条約のもと、1998年10月23日にカナダ農務・農産食
品省(Agriculture and Agri-Food Canada)により米国微生物系統保存機関(the Americ
an Type Culture Collection),10801 University Blvd.,Ma
nassas,Va.USA 20110−2209に寄託された)。
他的ではない。前記関連技術の他の制限は、本明細書を読むこと及び本図面を検討するこ
とにより、当業者に明らかになるだろう。
り、範囲の限定を意図したものでないシステム、ツール及び方法と共に説明し、例証する
。様々な実施形態において、上で説明した問題の1つ又はそれ以上が低減又は排除された
が、他の実施形態は、他の改良に関する。
及び油を提供する。本発明の植物の種子における食用油は、他のカラシナ植物の種子にお
いて見出されるものより有意に高いオレイン酸含有量及び低いリノレン酸含有量を有し得
る。多数の高オレイン酸/低リノレン酸(「HOLL」)カラシナ系統を本発明において
開示する。1つの実施形態において、カラシナ系統は、国際公開番号国際公開第2006
/0248611A1号に開示され、それに添付されている図1及び3、並びに配列番号
7、9、12及び13に例示されているように、FAD2及びFAD3遺伝子を含む。結
果として生ずる突然変異体アレルは、デルタ−12脂肪酸デサチュラーゼタンパク質をコ
ードし、これらは、それに添付されている図2並びに配列番号8、10及び11に例示さ
れている。他の実施形態において、カラシナ系統は、fad−a及びfad3−a遺伝子
座での突然変異を含むことがあり、結果として生ずる突然変異体アレルは、予測されるB
jFAD2−A及びBjFAD3−Aタンパク質の配列において1つ又はそれ以上の突然
変異をコードすることがある。本発明での使用に適するfad2−a及びfad3−a突
然変異遺伝子及びタンパク質の代表例としては、国際公開番号国際公開第2006/07
9567A3号(例えば、図1及び2、並びに配列番号3及び4);国際公開番号国際公
開第2005/107590A2号(例えば、配列番号:1から12);米国特許第6,
967,243号B2(例えば、図2及び3、並びに配列番号11、12、15、16、
17及び18);及び欧州公報第1862551号A1(例えば、図1から10、及び配
列番号22から33)に開示されているものも挙げられるが、それらに限定されない。別
の実施形態において、BNfad2−a及びBnfad23−a変換系統は、BnFad
2A、BnFad3A含有カラシナ植物における脂肪酸プロフィールの有意な変化を検出
できるので、アブラナ属植物におけるBJFAD2B及びBJFAD3Bの自然変異を探
すために使用し得る。
性の置換、欠失又はサイレンシングが、約70重量%より多いオレイン酸含有量及び約5
重量%未満のリノレン酸含有量を有する油を生産することができる植物を生じさせること
を、思いがけず発見した。もう1つの実施形態では、アブラナ属植物におけるFAD2及
び/又はFAD3酵素活性を修飾する遺伝子の移動又は移入が、約70重量%より多いオ
レイン酸含有量及び約5重量%未満のリノレン酸含有量を有する油を生産することができ
る植物を生じさせることを、思いがけず発見した。そのような植物は、例えば、カラシナ
又はセイヨウアブラナなどの、四倍体植物又は複二倍体植物である場合がある。従って、
1つの態様において、本発明は、植物における、例えばカラシナの系統における、選択さ
れたFAD2及びFAD3コード配列の欠失又はサイレンシングをもたらす。本発明の植
物から採取される食用油は、次の特徴のうちの1つ又はそれ以上により特徴づけることが
できる:少なくとも70重量%のオレイン酸含有量、約5重量%未満のリノレン酸含有量
、及び約7重量%未満の全飽和脂肪酸含有量。
、「植物の部分」は、本発明の核酸を有する、又は本発明のfad2/fad3コード配
列を有する、又はセイヨウアブラナからFAD2及び/若しくはFAD3酵素を発現する
調節配列、例えばFAD2/FAD3コード領域の上流の配列、を有する、植物細胞、種
子、花粉を含む。本発明の植物、すなわち本発明のマーカーによって選択された後代植物
を含む植物を使用して植物生産品を得るための方法を提供する。本明細書において用いる
場合、「植物生産品」は、改変されたオレイン酸及びリノレン酸の濃度を有する植物生産
品を含めて、本発明の植物、すなわち植物の部分、例えば種子、ミール、脂肪又は油、を
含む植物から採取されるあらゆるものを含む。活性FAD2酵素及び/又はFAD3酵素
を発現することができるセイヨウアブラナからの移入fad2/fad3コード配列を有
するように植物を修飾するための方法を提供する。そのような方法は、例えば、種間ハイ
ブリダイゼーションによりセイヨウアブラナからfad2−a及び/又はfad3−aコ
ード配列の1つ又はそれ以上を植物に移入して、その植物が、置換fad2及び/又はf
ad3コード配列を有するようにすることを含む。そのような方法により、誘導突然変異
の同定及びセイヨウアブラナへの該突然変異の正確な遺伝子移入が可能になる。
めに使用し得る、本発明のfad2/fad3コード配列部分を同定するための増幅プラ
イマを提供する。本発明のfad2/fad3コード配列、又は本発明のfad2/fa
d3コード配列の上流の領域、を使用して植物を得るための方法を提供する。例えば、本
発明の配列は、選択されたFAD2若しくはFAD3遺伝子座からのFAD2及び/若し
くはFAD3遺伝子の発現をダウンレギュレート若しくは改変すること、又は前記FAD
2及び/若しくはFAD3遺伝子によってコードされたFAD2及び/若しくはFAD3
タンパク質をトランケートすることなどにより、選択されたFAD2及び/又はFAD3
コード配列の発現をダウンレギュレート又は改変し得る部位特異的突然変異を誘導する又
は標的にするために使用し得る。従来の植物育種技術、例えば交配及び戻し交配、並びに
他の育種技術を用いて、本発明のfad2及び/又はfad3コード配列を本発明の植物
の後代に導入することができる。
酸を含む脂肪酸含有量を有するカラシナ品種の種子中の油を含む。
この場合、そのようなミールは、粉砕種子、プレスケーキ、ホワイトフレーク、又は従来
の粉砕及び溶媒抽出プロセスからのミールの形態であり得る。
の検討により、さらなる態様及び実施形態が明らかになるであろう。
る。
群を指す。「系統」は、一般に、少なくとも1つの形質について個体間の遺伝的変異をほ
とんど又はまったく示さない、植物の一群を指す。本出願において用いる場合の「DH(
倍加半数体)系統」は、半数体組織を培養し、その後、細胞分裂を伴わずに染色体含有量
を倍増させて、それぞれの染色体対が2個の重複染色体からなる2倍数の染色体を有する
植物を生じさせることによって産生された、植物の一群を指す。従って、DH系統は、通
常、形質についての個体間の遺伝的変異をほとんど又はまったく示さない。
、均一である、商業生産に用いられる植物系統である。
セスによって作出された系統を指す。このプロセスにより、均一である系統が作出される
。すなわち、その系統内のすべての植物が同じ遺伝子構成を有する。原DH植物をDH1
と呼び、一方、後の世代をDH2、DH3などと呼ぶ。倍加半数体生産株は、周知であり
、幾つかの作物について確証されている。カラシナについての生産株は、Thiagra
rajah及びStringhamによって説明されている(1993)(L. Czern and
Coss. Plant Breeding 111:330-334におけるA comparison of genetic segregation in
traditional and microspore-derived populations of Brassica juncea)。
ン酸含有量を有する、その文脈が指示し得るとおりのカラシナ又は他のアブラナ属種を指
し、より一般的には、それは、少なくとも70.0重量%オレイン酸を含む脂肪酸組成を
示す。
ン酸(C20:0)、ベヘン酸(C22:0)及びテトラコサン酸(C24:0)脂肪酸
の併せた百分率を指す。本明細書にて説明される脂肪酸濃度は、当業者に周知の標準的な
手順に従って決定される。具体的な手順は、実施例において説明する。全脂肪酸含有量に
対する重量百分率として脂肪酸濃度を表示する。
う手順を指し、その分析結果が陽性であった場合、残りの半粒種子を使用して植物を形成
する。
塗布するプロセスである。本実験研究において使用した突然変異誘発剤は、エチルメチル
スルホネート(EMS)であった。その目的は、ある種において新たな遺伝的変異性を生
じさせることであり、通常は具体的な形質を念頭において行う。新規変異を誘導するため
に半数体に対して用いられた突然変異誘発の一例は、Swansonらによって記載され
ている(Plant Cell Rep. 7:83-87,1998)。外来核酸フラグメントでの組換えなどの他の
技術範囲が、突然変異体の産生に適する場合があること、及び一定の技術を用いることに
よって突然変異体の産生を完全にランダムではなく特定のヌクレオチド又はアミノ酸変化
に指向させることができることは、理解されるであろう。そのようなすべての核酸配列変
化導入方法が、本明細書において用いる場合の用語「突然変異誘発」に包含されると考え
られる。
小胞子、胚株、花粉、植物の部分)の選択を含む。これらの細胞を場合により突然変異誘
発に付すことができ、その後、突然変異誘発した細胞のタイプに基づいて再生、受精及び
/又は成長技術を用いてそれらの細胞から植物を発生させる。適用できる再生技術は、当
業者に公知である;例えば、Pua et al., Bio/Technology 5:815-817 (1987);Jain et a
l., Euphytica 40:75-81 (1989);Szarejko et al., Proceedings of an International
Symposium on the Contribution of Plant Mutation Breeding to Crop Improvement, 2:
355-378 (1991);Cegielska-Taras and Szala, Rosliny Oleiste - Oilseed Crops, XVII
I, 21-30 (1997);Ferrie and Keller, Proc. 9th International Rapeseed Congr., Cam
bridge, 3:807-809 (1995);Martini et al., Vortr. Pfl anzenzuchtg. 45:133-154 (19
99);Swanson et al., Theoretical and Applied Genetics. 78:525-530 (1989);and Ki
rti and Chopra, Plant Breeding 102: 1 , 73-78 (1988)を参照のこと。これに関連して
、「M0」は、未処理種子を指し、「M1」は、突然変異誘発物質に暴露された種子及び
結果として生じる植物を指し;「M2」は、自家受粉したM1植物の後代(種子及び植物
)であり;「M3」は、自家受粉したM2植物の後代(種子及び植物)であり;「M4」
は、自家受粉したM3植物の後代(種子及び植物)であり;「M5」は、自家受粉したM
4植物の後代(種子及び植物)である、等々。
は「安定した」は、その脂肪酸成分が、少なくとも2世代、好ましくは少なくとも3世代
、にわたって実質的に同レベルで、好ましくは±5%で、世代から世代へと維持されるこ
とを意味する。本発明の方法は、世代から世代へ±5%以下の安定した改良された脂肪酸
組成を有するカラシナ系統を作出することができる。上で言及した安定性が、植栽の温度
、場所、ストレス及び時間による影響を受けることがあることは、当業者には理解される
。従って、同様の成長条件下で生産された種子を使用して、カノーラ系統間の脂肪酸プロ
フィールの比較を行うべきである。
遺伝子変換も含む。本明細書において用いる場合の用語「単一遺伝子変換植物」は、戻し
交配と呼ばれる植物育種技術よって開発されるアブラナ属植物を指し、この場合、該戻し
交配技術によって品種の所望の形態学的及び生理的特質の本質的にすべてが、該品種への
単一遺伝子移入に加えて、回復される。戻し交配法を本発明と共に用いて、品種を改良す
る又は品種に特質を導入することができる。本明細書において用いる場合の用語「戻し交
配」は、ハイブリッド後代が反復親に戻る反復交配、すなわち、反復親への1回又はそれ
以上の戻し交配(「BC1」、「BC2」などとして識別される)を指す。所望の特質の
ための遺伝子を与える親アブラナ属植物は、「1回(non-recurrent)」又は「ドナー親
」と呼ばれる。この専門用語は、1回親が、戻し交配に1回用いられる、従って、反復さ
れないことを指す。1回親からの遺伝子(単数又は複数)が移入される親アブラナ属植物
は、戻し交配プロトコルにおける幾つかのラウンドにそれが用いられる場合、反復親とし
て公知である(Poehiman & Sleper, 1994;Fehr, 1987)。典型的な戻し交配プロトコル
では、関心のある原品種(反復親)を移入することとなる関心のある単一遺伝子を有する
第二の品種(1回親)と交配する。その後、この交配の結果として生ずる後代を前記反復
親と再び交配し、このプロセスをアブラナ属植物が得られるまで繰り返し、この場合、同
じ環境条件下で成長させたとき5%有意性レベルで判定して、反復親の所望の形態学的及
び生理的特質の本質的にすべてが、1回親からの単一の移入された遺伝子に加えて、その
変換植物において回復される。
ロトコルの目的は、原品種における単一の形質又は特質を改変する又は置換することであ
る。これを達成するために、反復親品種の単一遺伝子を1回親からの所望の遺伝子で修飾
又は置換するが、原品種の残りの望ましい遺伝物質構成、並びに従って望ましい生理的及
び形態学的構成の本質的にすべてを維持する。特定の1回親の選択は、その戻し交配の目
的に依存するだろう。主な目的の1つは、何らかの商業的に望ましい、農業実用面で(ag
ronomically)重要な形質を植物に加えることである。正確な戻し交配プロトコルは、適
切な試験プロトコルを決定するために改変させる特質又は形質に依存するであろう。移入
する特質が優性アレルであれば戻し交配法は簡単になるが、劣性アレルも移入することが
できる。この場合、所望の特質が首尾よく移入されたかどうかを判定するために、その後
代の試験が導入されることもある。
されない多くの単一遺伝子形質が、同定されている。単一遺伝子形質は、トランスジェニ
ックである場合もあり、又はトランスジェニックない場合もあり、これらの形質の例とし
ては、雄性不稔、ワキシースターチ、除草剤耐性、細菌、真菌又はウイルス病に対する耐
性、耐虫性、強化された栄養価、工業的利用能、収量安定性及び収量向上が挙げられるが
、それらに限定されない。これらの遺伝子は、一般に、核によって受け継がれる。これら
の単一遺伝子形質の幾つかは、米国特許第5,959,185号、同第5,973,23
4号及び同第5,977,445号に記載されている。
いずれかに対する抗体を利用して、開示するアレルのうちの1つについての存在又は発現
を判定すること、及び突然変異タンパク質と野生型タンパク質又は他の突然変異体とを区
別してもよい。
中のアブラナ属系統であっても、その野生型株の等価の特質に関するものであり得る基準
値又は性質と比較して望ましい又は有益またはその両方であるように、当該特質が改変さ
れることを意味する。その特質を基準(対照)として使うことができる1つの可能性のあ
る野生型カラシナ株は、J96D−4830であるが、多くの他のものが可能であり、当
業者には容易に識別されるであろう。
を意味し、第一、第二、第三及びその後の世代を含み、並びに自家受粉によって生産され
ることがあり、又は同じ若しくは異なる遺伝子型を有する植物との交配によって生産され
ることもあり、並びにある範囲の適する遺伝子工学技術によって修飾されることもある。
並びに種内交配と種間交配の両方、及び系統内交配と系統間交配の両方、並びに全ての適
する従来の育種及び人工育種技術を含む。従来の育種法によって所望の形質を他のカラシ
ナ系統に移入してもよく、並びに種間交配によって所望の形質を他のアブラナ属種、例え
ばセイヨウアブラナ及びアブラナ、に移入することもできる。従来の育種法と種間交配法
の両方、並びに植物間での遺伝物質のその他の移入法は、十分に文献に記述されている。
ための、すべての操作形態を意味し、配列又は配列フラグメントの挿入、欠失又は修飾、
並びに任意の適するベクター及び/又は技術を用いる定方向又はランダム組換えによる生
物のゲノムへの新たな配列の直接導入を含む。
「遺伝的に由来する」は、当該特質が、当該植物の遺伝子構成の態様により完全に又は一
部分規定されることを意味する。
アビシニアガラシ(Braccica carinata)、ブラッシカ・オレラセア及びアブラナをはじ
めとするアブラナ属に包含される種のいずれか又はすべてを含み得る。
商品名に関する要件をそれぞれ満たす油及びミール品質を有する種子を生産するカラシナ
(すなわち、種子油中に2重量%未満のエルカ酸(Δ13−22:1)及び油不含ミール
1グラムにつき30マイクロモル未満のグルコシノレートを有するカラシナ種の植物)を
指す。
、何かが組換えられたことを意味するので、核酸構築物に言及するとき、この用語は、分
子生物学技術によって互いに連結された又は生産された核酸配列からなる分子を指す。タ
ンパク質又はポリペプチドに言及するときの用語「組換えの」は、分子生物学技術によっ
て作出された組換え核酸構築物を使用して発現されるタンパク質又はポリペプチドを指す
。遺伝子組成に言及するときの用語「組換えの」は、親ゲノムには存在しなかったアレル
の新たな組み合わせを有する配偶子又は後代を指す。組換え核酸構築物は、自然にはライ
ゲートされない又は自然には異なる位置でライゲートされる核酸配列に、ライゲートして
いる、若しくは、ライゲートするように操作されているヌクレオチド配列を含むことがあ
る。従って、核酸構築物を「組換えの」と言うことは、その核酸分子が、遺伝子工学を用
いて、すなわち人間の介入により、操作されたことを示す。組換え核酸構築物は、例えば
、形質転換によって宿主細胞に導入することができる。そのような組換え核酸構築物は、
単離され、その宿主種の細胞に再び導入されたものである、同じ宿主細胞種に由来する又
は異なる宿主細胞種に由来する配列を含み得る。組換え核酸構築物配列は、宿主細胞ゲノ
ムに、その宿主細胞の原形質転換の結果として組み込まれることになる場合もあり、又は
その後の組換え及び/若しくは修復事象の結果として、組み込まれることになる場合もあ
る。
に他する重量百分率を指す。例えば、70%オレイン酸を有する植物への言及は、その油
の脂肪酸成分が70%オレイン酸を含むことを指す。
を超えない集団頻度を有する状態を指す。
は対照的に)異なるアレルを特定の遺伝子座に有するときに用いられる。異型接合性は、
その集団内の個体がその遺伝子座において異型接合である確率である。通常、異型接合性
は、0から100%にわたる百分率(%)として、又は0から1の尺度で表される。
レルの2つのコピーを有することを指す。植物が二重半数体である場合、そのハプロタイ
プの複製中に発生するいずれの自然突然変異を受けても、すべての遺伝子座は同型接合で
あると考えられる。この文脈が示すように、植物は、1つ、幾つか又はすべての遺伝子座
について同型接合である場合がある。
鎖反応に必要な短鎖ポリヌクレオチド又はオリゴヌクレオチドである。例えば、プライマ
は、50ヌクレオチド長以下、好ましくは約30ヌクレオチド長未満、及び最も好ましく
は約24ヌクレオチド長未満であり得る。
の環境(例えば、それが自然に存在する場合にはその自然環境)から取り去られた成分を
指す。単離された核酸又はポリヌクレオチドは、最初に付随していた細胞成分の50%未
満、75%未満、90%未満、及び99.9%未満、又は50%と99.9%の間の任意
の整数値未満を含有することがある。前記細胞成分の残部とは(ゲルに基づき前例とは)
十分に区別できるようにPCRを用いて増幅されたポリヌクレオチドは、例えば、「単離
された」とみなすことができる。本発明のポリヌクレオチドは、「実質的に純粋」である
場合がある、すなわち、当該分野において公知の特定の精製技術を用いて達成することが
できる最高純度を有し得る。
スを指す。1つのポリヌクレオチドの少なくとも1本の鎖を確定されたストリンジェンシ
ー条件下で別のポリヌクレオチドの鎖にアニールすることができるとき、ポリヌクレオチ
ドは互いに「ハイブリダイズ可能」である。ハイブリダイゼーションは、2つのポリヌク
レオチドが実質的に相補的な配列を含有することを必要するが、ハイブリダイゼーション
のストリンジェンシーに依存して、ミスマッチを許容することができる。概して、高スト
リンジェンシーでの(例えば、65℃で0.5×SCCの水溶液中でのような)2つ配列
のハイブリダイゼーションは、それらの配列が、それらの全配列にわたって相当高い相補
度を示すことを必要とする。中ストリンジェンシー(例えば、65℃で2×SCCの水溶
液のような)及び低ストリンジェンシー(例えば、55℃で2×SCCの水溶液のような
)は、ハイブリダイズする配列間でのそれ相応に総合的相補性を必要とする。(1×SC
Cは、0.15M NaCl、0.015M クエン酸Naである)。本明細書において
用いる場合、上記溶液及び温度は、ハイブリダイゼーション手順のプローブ洗浄段階を指
す。「ストリンジェントな(低、中)条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチド」と
いう用語は、1本の鎖だけしか別のポリヌクレオチドの相補鎖にハイブリダイズしないで
あろうが、1本鎖ポリヌクレオチドと2本鎖ポリヌクレオチドの両方を包含するためのも
のである。明記した溶液中での洗浄は、数分から数日の時間範囲にわたって行われること
があり、当業者は、結合された配列に関する異なる相同レベル間の区別に適する洗浄時間
を容易に選択するであろう。
分率を含む内因性脂肪酸含有量を有する種子を生産することができるアブラナ属植物、例
えばカラシナ、を提供する。特定の実施形態において、前記オレイン酸は、約70.0%
、71.0%、72.0%、73.0%、74.0%、75.0%、76.0%、77.
0%、78.0%、79.0%、80.0%、81.0%、82.0%、83.0%、8
4.0%又は85.0%より多くの(これらのすべての整数及び小数部、又は85%より
大きい値を有する任意の整数を含む)オレイン酸を含み得る。特定の実施形態において、
前記脂肪酸のリノレン酸含有量は、約5%、4%、3%、2.5%、2.0%、1.5%
、1.0%、0.5%、又は0%未満であって、これらのすべての整数及び小数部分を含
むものであり得る。1つの例示的実施形態において、前記植物は、その種子が少なくとも
70重量%オレイン酸及び3重量%未満リノレン酸を含む内因性脂肪酸含有量を有するカ
ラシナである。さらなる実施形態において、前記植物は、その種子が少なくとも70重量
%オレイン酸及び5重量%未満リノレン酸を含む内因性脂肪酸含有量を有するカラシナで
ある。
分率と、表11に示すように約5.5%未満の全飽和脂肪酸又は>10%の全飽和脂肪酸
をそれぞれ含み得る低い全飽和脂肪酸又は高い全飽和脂肪酸と、を含む内因性脂肪酸含有
量を有する種子を生産することができるアブラナ属植物、例えばカラシナ植物、を提供す
る。
の点でも、精油(例えば、アリルイソチオシアナート)の点でも、微量成分(例えば、ト
コフェロール、ミネラル、タンニン、フェノール、リン脂質、着色体(color bodies)、
及びこれらに類するもの)の点でも、セイヨウアブラナのものと異なることは、公知であ
る。カラシナからの種子における油(抽出油を含む)は、カラシナからの油のほうが概し
て高いC18:3レベルを有するにもかかわらず、セイヨウカラシナからの油と比較して
酸化安定性が高いことが判明した(C. Wijesundera et al.,「Canola Quality Indian Mu
stard oil (Brassica juncea) is More Stable to Oxidation than Conventional Canola
oil (Brassica napus)」 J. Am. Oil Chem. Soc. (2008) 85:693-699)。
ン酸含有量を減少させるための方法を提供する。そのような方法は:(a)55%より高
いオレイン酸含有量及び14%未満のリノレン酸含有量を有するアブラナ属系統からの少
なくとも幾つかの細胞において突然変異誘発を引き起こすこと;(b)前記突然変異誘発
細胞の少なくとも1つから植物を再生させ、少なくとも70%オレイン酸(又は、上述の
ような、別の閾値濃度のオレイン酸)及び3%未満リノレン酸(又は、上述のような、別
の閾値濃度のリノレン酸)を含む脂肪酸含有量を有する再生植物を選択すること;並びに
(c)前記再生植物からの植物のさらなる発生を誘導すること、を含み得、前記植物のさ
らなる発生の個々の植物は、少なくとも70%(又は別の閾値濃度)のオレイン酸及び3
%未満(又は別の閾値濃度)のリノレン酸を含む脂肪酸含有量を有する。一部の実施形態
において、前記アブラナ属は、カラシナであってもよい。用語「高いオレイン酸含有量」
及び「低いリノレン酸含有量」は、上に記載した可能な値の全範囲を包含する。別の実施
形態において、本発明の方法は、上に記載した可能な値の範囲などの、低下したリノール
酸含有量のために、前記系統、前記再生植物及び前記植物のさらなる発生のうちの1つ以
上を選択することをさらに含み得る。さらなる実施形態において、段階(c)は、段階(
b)の再生植物からの種子を選択し、成長させることを含むことがある。さらなる実施形
態において、本発明の方法は、所望のオレイン酸含有量、リノール酸含有量、又は両方が
達成されるまで、明記した段階を反復することを含み得る。
個々の種子をスクリーニングするための方法を提供し、これらの方法は、前記種子の発芽
物の部分についての脂肪酸のオレイン酸含有量、又はリノール酸含有量、又はオレイン酸
含有量とリノール酸含有量、のうちの1つ又はそれ以上を決定すること;前記含有量の1
つ又はそれ以上と基準値とを比較すること;及び前記種子の可能性の高い相対オレイン酸
、リノール酸、又はオレイン酸とリノール酸の含有量を推測することを含む。特定の実施
形態において、分析に用いる前記植物の部分は、葉、子葉、幹、葉柄、茎、又は任意の他
の組織、例えば種子の組成との確実な相関関係を明示する組成を有する組織、若しくは組
織の断片の一部または全部であり得る。一連の実施形態において、前記発芽物の部分は、
葉の部分である場合がある。一定の実施形態において、前記種子の脂肪酸組成を推測する
段階は、前記の葉における所与の酸の有意に変化したレベルが、その種子におけるその酸
のレベルの同様の相対変化を反映すると仮定することを含み得る。本発明の特定の実施形
態では、葉組織を分析することによる、その種子が少なくとも70重量%オレイン酸及び
3重量%未満リノレン酸を含む内因性脂肪酸含有量を有する個々の植物系統についてアブ
ラナ植物をスクリーニングするための方法。加えて、前記葉組織を、気液クロマトグラフ
ィーにより脂肪酸組成について分析することができ、この場合、前記脂肪酸の抽出は、バ
ルク種子(bulk-seed)分析又は半粒種子分析などの方法によって行うことができる。
ラシナ植物である場合がある、アブラナ属植物を提供する。一定の実施形態において、前
記植物は、突然変異体アレルによって表されるfad2−a及びfad3−a遺伝子座で
同型接合性である場合がある。追加の実施形態において、前記カラシナ植物、植物細胞、
又はその部分、は、本明細書において開示する、前述の配列からの核酸配列を有する遺伝
子アレルを含有する。
ことにより(参考のために、米国特許公開第20030221217号、Yao et al.を参
照のこと)、本発明のHOLL、カノーラ品質カラシナ(≧70%オレイン酸及び≦5%
リノレン酸)と低オレイン酸/高リノレン酸カラシナ植物(約45%オレイン酸及び約1
4%リノレン酸)とを区別することを含み得る。この区別は、当該分野において公知であ
るように、BJfad2a遺伝子が、カノーラ品質カラシナ系統における唯一の機能性オ
レアート脂肪酸デサチュラーゼ遺伝子であることを確認することを含み得る。
8611A1号に開示され、それに添付されている図1及び3、並びに配列番号7、9、
12及び13に例示されているように、fad2及びfad3遺伝子を含有する。結果と
して生ずる突然変異体アレルは、デルタ−12脂肪酸デサチュラーゼタンパク質をコード
し、これらは、それに添付されている図2並びに配列番号8、10及び11に例示されて
いる。他の実施形態において、カラシナ系統は、fad2−a及びfad3−a遺伝子座
での突然変異を含むことがあり、結果として生ずる突然変異体アレルは、予測されるBJ
FAD2−a及びBJFAD3−aタンパク質の配列に1つ又はそれ以上の突然変異をコ
ードすることがある。本発明での使用に適するfad2a及びfad3a突然変異遺伝子
及びそれらの結果として生ずるタンパク質の代表例としては、国際公開番号国際公開第2
006/079567A3号(例えば、図1及び2、並びに配列番号3及び4);国際公
開番号国際公開第2005/107590A2号(例えば、配列番号:1から12);米
国特許第6,967,243号B2(例えば、図2及び3、並びに配列番号11、12、
15、16、17及び18);及び欧州公報第1862551号A1(例えば、図1から
10、及び配列番号22から33)に開示されているものも挙げられるが、それらに限定
されない。
列番号1に例示し、及びFAD2 6R:CCTTTCTTGTCACCTTCCCTG
TCCを配列番号2に例示する。fad31フラグメントを、プライマ対BNFD31
CF(GAGGCTTGGACGACCACTTG)(配列番号3)及びBNFD31
CR(GACTGGACCAACGAGGAATG)(配列番号4)によって増幅する。
fad2及びfad32の突然変異体HOLLアレルを検出する目的で、PCR増幅を用
いて突然変異体特異的プライマFAD2GM(CGCACCGTGATGGTTAACG
GTTT)(配列番号5)及びFAD3cGM(ATAAATAATGTTGATCTA
CTTAT)(配列番号6)を設計した。
により、適切なプライマを用いるPCR技術により、又は任意の他の一般に用いられてい
る技術により、検出可能であり得る。特定の実施形態において、本発明のアレルの一部に
相同な配列を含むことができる核酸プローブを提供する。さらなる実施形態は、本発明の
配列、例えば、増加したオレイン酸含有量と関係づけられる配列、を増幅するための又は
該配列の存在を検出するために適するプライマ対の使用を含むことがある。
を用いる:(a)「基準配列」、(b)「比較ウインドウ」、(c)「配列同一性」、(
d)「配列同一性百分率」及び(e)「実質的同一性」。
定された配列である。基準配列は、例えば、完全長cDNA若しくは遺伝子配列のセグメ
ント、又は完全cDNA若しくは遺伝子配列のような、特定の配列のサブセット又は全体
であり得る。
た指定のセグメントを指し、この場合、比較ウインドウ内のポリヌクレオチド配列は、2
配列の最適なアラインメントのために、(付加又は欠失を含まない)基準配列と比較して
付加又は欠失(すなわち、ギャップ)を含み得る。一般に、比較ウインドウは、長さが少
なくとも20連続ヌクレオチドであり、場合により、30、40、50、100、又はそ
れ以上長いことがある。ポリヌクレオチド配列にギャップが含まれているため基準配列へ
の高い類似性を避けるために、ギャップペナルティを概して導入し、それをマッチ数から
減算することは、当業者には理解される。
の2配列間の同一パーセントの判定は、数学的アルゴリズムを用いて実現することができ
る。そのような数学的アルゴリズムの非限定例は、Myers and Miller (1988) CABIOS 4:1
1-17のアルゴリズム;Smith et al. (1981) Adv. Appl. Math. 2:482の局所相同性アルゴ
リズム;Needleman and Wunsch (1970) J. Mol. Biol. 48:443-453の相同性アラインメン
トアルゴリズム;Pearson and Lipman (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. 85:2444-2448の
類似性検索法;Karlin and Altschul (1993) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90:5873-5877
におけるように改良された、Karlin and Altschul (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA
872264のアルゴリズムである。
比較に利用することができる。そのような実装としては、PC/Geneプログラム(カ
リフォルニア州、Mountain ViewのIntelligeneticsから入
手可能)におけるCLUSTAL;Wisconsin Genetics Softw
are Package、バージョン8(米国、ウィスコンシン州、Madison、5
75 Science DriveのGenetics Computer Group
(GCG)から入手可能)における、ALIGNプログラム(バージョン2.0)並びに
GAP、BESTFIT、BLAST、FASTA及びTFASTAが挙げられるが、そ
れらに限定されない。これらのプログラムを用いるアラインメントを、デフォルトパラメ
ータを用いて実行することができる。CLUSTALプログラムは、Higgins et al. (19
88) Gene 73:237-244 (1988);Higgins et al. (1989) CABIOS 5:151-153; Corpet et al
. (1988) Nucleic Acids Res. 16:10881-90;Huang et al. (1992) CABIOS 8:155-65;及
びPearson et al. (1994) Meth. Mol. Biol. 24:307-331によって十分に説明されている
。ALIGNプログラムは、上のMyers and Miller (1998)のアルゴリズムに基づく。ア
ミノ酸配列を比較するとき、ALIGNプログラムでPAM120重量残基表、12のギ
ャップ長ペナルティ、及び4のギャップペナルティを用いることができる。Altschul et
al. (1990) J. Mol. Biol. 215:403のBLASTプログラムは、上のKarlin and Altschu
l (1990)のアルゴリズムに基づく。BLASTNプログラム、スコア=100、ワード長
=12、でBLASTヌクレオチド検索を行って、本発明のタンパク質をコードするヌク
レオチド配列に相同なヌクレオチド配列を得ることができる。BLASTXプログラム、
スコア=50、ワード長=3、でBLASTタンパク質検索を行って、本発明のタンパク
質又はポリペプチドに相同なアミノ酸配列を得ることができる。比較目的でギャップ付き
アラインメントを達成するには、Altschul et al. (1997) Nucleic Acids Res. 25:3389
に記載されているように(BLSST 2.0における)ギャップ付きBLASTを利用
することができる。あるいは、(BLAST 2.0における)PSI−BLASTを用
いて、分子間の遠縁関係を検出する反復検索を行うことができる。上のAltschul et al.
(1997)を参照のこと。BLAST、ギャップ付きBLAST、PSI−BLASTを利用
するとき、それぞれのプログラム(例えば、ヌクレオチド配列についてはBLASTN、
タンパク質についてはBLASTX)のデフォルトパラメータを用いることができる。ア
ラインメントを手動で精査により行うこともできる。アラインした配列間の相同性及び変
異を、もしあれば、同定するために、(ミシガン州、Ann ArborのGene C
odes Corporationからの)Sequencher(商標)ソフトウェア
を用いてアラインメントを行うこともできる。
一性」又は「同一性」は、明記した比較ウインドウにわたって最大一致に向けてアライン
した際に同じである2つの配列内の残基を指す。配列同一性百分率をタンパク質に関連し
て用いるとき、同一でない残基位置は、アミノ酸残基が類似した化学的性質(例えば、電
荷又は疎水性)を有する他のアミノ酸残基を置換し、従って、その分子の官能性を変えな
い保存アミノ酸置換に、多くの場合、差があると考えられる。配列が保存的置換の点で異
なるとき、配列同一パーセントを上方に調整して、その置換の保存性について修正する。
そのような保存的置換に差がある配列を、「配列類似性」又は「類似性」を有すると言う
。この調整を行うための手段は当業者に周知である。概して、これは、完全ミスマッチで
はなく部分ミスマッチとして保存的置換をスコアリングすることを含み、それによって配
列同一性百分率を増加させる。従って、例えば、同一のアミノ酸に1のスコアが与えられ
、非保存的置換にゼロのスコアが与えられる場合、保存的置換にはゼロと1の間のスコア
が与えられる。保存的置換のスコアリングは、例えば、プログラムPC/GENE(カリ
フォルニア州、Mountain ViewのIntelligenetics)で実行
して、算出される。
つの最適にアラインされた配列を比較することにより決定された値を意味し、この場合、
前記比較ウインドウ内のポリヌクレオチド配列の一部は、前記2配列の最適なアラインメ
ントのために(付加又は欠失を含まない)基準配列と比較して付加又は欠失(すなわち、
ギャップ)を含むことがある。この百分率は、両方の配列内の同一の核酸塩基又はアミノ
酸残基が存在する位置の数を判定してマッチ位置の数を得、そのマッチ位置数を比較ウイ
ンドウ内の全位置数で割り、その結果に100をかけて配列同一性百分率を得ることによ
って算出される。
グラムの1つを用い、標準的なパラメータを用いて基準配列と比較して、ポリヌクレオチ
ドが、少なくとも70%の配列相同性、好ましくは少なくとも80%、さらに好ましくは
少なくとも90%、及び最も好ましくは少なくとも95%、を有する配列を含むことを意
味する。コドン縮重、アミノ酸類似性、リーディングフレームの位置決め、及びこれらに
類するものを考慮に入れることにより、これらの値を適切に調整して、2つのヌクレオチ
ド配列によりコードされているタンパク質の対応する同一性を判定できることは、当業者
には理解されるであろう。ペプチドに関連しての「実質的同一性」という用語は、ペプチ
ドが、明記した比較ウインドウにわたって基準配列との少なくとも70%の配列同一性、
基準配列との好ましくは80%、さらに好ましくは85%、最も好ましくは少なくとも9
0%又は95%の配列同一性を有する配列を含むことを示す。好ましくは、Needleman et
al. (1970) J. Mol. Biol. 48:443の相同性アラインメントアルゴリズムを用いて、最適
なアラインメントを行う。2つのペプチド配列が実質的に同一であることの指標は、一方
のペプチドが、もう一方のペプチドに対して産生された抗体と免疫反応性であるというこ
とである。従って、あるペプチドは、例えば、それら2つのペプチドが保存的置換にしか
差がない場合、もう一方のペプチドと実質的に同一である。「実質的に類似した」ペプチ
ドは、同一でない残基位置が保存的アミノ酸変化に差がある場合があることを除き、上で
述べたように配列を共有する。
に関して、少なくとも68.0重量%オレイン酸及び4.0重量%未満又は4.0重量%
に等しいリノレン酸を含む脂肪酸含有量を有する非硬化油を意味する。カノーラ植物に関
して、用語「オメガ−9」は、少なくとも68.0重量%オレイン酸及び4.0重量%未
満リノレン酸を含む内因性脂肪酸含有量を有する種子を生産するカノーラ植物を意味する
。
RFs)並びに/又は前に開示した突然変異体fad2及びfad3遺伝子の5’上流領
域を含む、単離されたDNA配列を提供する。従って、本発明は、前述の突然変異体アレ
ルからの突然変異を含む、予測突然変異体タンパク質のペプチド配列も提供する。膜結合
デサチュラーゼ、例えばFAD2、が保存ヒスチジンボックスを有することは、公知であ
る。これらのヒスチジンボックス外のアミノ酸残基の変化もFAD2酵素活性に影響を及
ぼすことがある(Tanhuanpaa et al., Molecular Breeding 4:543-550, 1998)。
る。具体的には、本発明のアレルを、高オレイン酸アブラナ属種、例えばカラシナ、セイ
ヨウアブラナ、アブラナ、クロガラシ及びアシビニアガラシ、の育種に使用し得る。本発
明は、突然変異体アレルと別の配列を区別するための分子マーカーを提供する。それによ
り、本発明は、本発明のアレルを有する植物を含む遺伝子交配種の分離及び選択分析のた
めの方法を提供する。それにより、本発明は、本発明のアレルを有する植物を含む遺伝子
交配種に由来する後代の分離及び選択分析のための方法を提供する。
るアブラナ属植物、例えばカラシナ植物、を同定するための方法を提供する。本発明の方
法は、例えば、特定のFAD2及び/又はFAD3アレル、例えば本発明のアレル又は野
生型J96D−4830/BJfad2aアレル、のゲノムにおける存在を判定すること
を含むみ得る。特定の実施形態において、前記方法は、同定されたアレルの1つに関連し
た核酸多型の存在の同定を含み得、又は本発明のアレルの1つに関連した抗原決定基の同
定を含み得る。そのような判定は、例えば、ある範囲の技術、例えば関連DNAフラグメ
ントのPCR増幅、DNAフィンガープリント解析(fingerprinting)、RNAフィンガ
ープリント解析、ゲルブロッティング及びRFLP分析、ヌクレアーゼ保護アッセイ、関
連核酸フラグメントのシークエンシング、抗体(モノクローナル若しくはポリクローナル
)の産生、又は関連アレルによって生産されたタンパク質とそのタンパク質の他の変異体
若しくは野生型形態とを区別することに適している別法を用いて果たすことができる。本
発明は、本発明の突然変異体アレルの存在によって判定することにより、その種子が少な
くとも70重量%のオレイン酸を含む内因性脂肪酸含有量を有するカラシナ植物を同定す
るための方法も提供する。
化を用いて、例えば3’ミスマッチを用いて、アレル特異的PCRプライマを設計するこ
とができる。様々なプライマの組み合わせ、例えば、(その野生型アレルを増幅するため
に)3’末端に「G/C」又は(突然変異体アレルを増幅するために)3’末端に「A/
T」を有するフォワードプライマ又はリバースプライマ、を作ることができる。他の選択
された実施形態では、本発明の突然変異体アレルの特異的単一塩基対変化を用いて、例え
ば3’ミスマッチを用いて、アレル特異的PCRプライマを設計することができる。様々
なプライマの組み合わせ、例えば、(その野生型アレルを増幅するために)3’末端に「
C/G」又は(突然変異体アレルを増幅するために)3’末端に「T/A」を有するフォ
ワードプライマ又はリバースプライマ、を作ることができる。アレル特異的PCRプロト
コルの例示的概要については、Myakishev et al., 2001, Genome Research 11: 163-169
、又はTanhuanpaa et al., 1999, Molecular Breeding 4: 543-550を参照のこと。
ルの同定に用いることができる。そのような方法としては、例えば、TaqManアッセ
イ又はモレキュラービーコン(Molecular Beacon)アッセイ(Tapp et al., BioTechniqu
es 28:732-738)、インベーダ・アッセイ(Invader Assays)((Mein et al., Genome Re
search 10:330-343, 2000)、Illlumina(登録商標)ゴールデン・ゲート・ア
ッセイ(Golden Gate Assays)(
1309746082250_0.com
)、又は一本鎖高次構造多形(single strand conformational polymorphisms:SSCP
)に基づくアッセイ(Orita et al., Proc. Natl. Acad. ScL U.S.A.86:2766-2770, 1989
)を挙げることができる。
するfad2及びfad3コード配列を含むアブラナ属植物を提供する。そのような突然
変異FAD2/FAD3タンパク質は、野生型FAD2タンパク質と比較してたった1つ
のアミノ酸変化を含有し得る。代表的実施形態において、様々なカラシナ系統は、前述の
アレルによってコードされた、前述の突然変異FAD2タンパク質を含有する。増加した
オレイン酸含有量及び低下したリノレン酸含有量を本発明の植物に付与するために有効で
あるようにそのようなアレルを選択することができる。特定の実施形態では、育種技術に
よって所望のアレルを植物に導入することができる。別の実施形態では、植物形質転換を
はじめとする分子生物学技術によって、本発明のアレルを導入することができる。そのよ
うな実施形態において、本発明の植物は、少なくとも約70重量%オレイン酸及び約3重
量%未満リノレン酸又は上述のような任意の他のオレイン酸及びリノレン酸含有量閾値を
含む内因性脂肪酸含有量を有する種子を生産し得る。本発明の植物は、約70重量%から
85重量%オレイン酸、約70重量%から約78重量%オレイン酸、及び約0.1重量%
から約3重量%リノール酸を含有する場合もあり、この場合の油の組成は、親系統に遺伝
的に由来する。本発明の植物は、7.1重量%未満から約6.2重量%未満の全脂肪酸含
有量を有する場合もある。1つの実施形態において、前記植物は、少なくとも約70%の
オレイン酸及び3%未満のリノール酸を含む内因性脂肪酸含有量を有する種子を生産し、
この場合の油の組成は、親系統に遺伝的に由来する。
示した脂肪酸組成を有する内因性油含有量を有する、及び内因性油含有量についての遺伝
的決定基が本発明の突然変異体アレルに由来する、カラシナ種子であり得る、アブラナ属
種子を提供する。そのような種子は、例えば、本発明のそれぞれの突然変異体アレルの自
家受粉によって得ることができる。あるいは、そのような種子は、例えば、前記突然変異
体アレル系統と第二の親との交配、その後の選択によって得ることができ、この場合の第
二の親は、任意の他のアブラナ属系統、例えば、カノーラ品質カラシナ若しくは非カノー
ラ品質カラシナであるカラシナ系統である場合もあり、又は任意の他のアブラナ属種、例
えばセイヨウアブラナ、アブラナ、クロガラシ及びアビシニアガラシ、である場合もある
。これらの育種技術は、当業者に周知である。
た組成を有する成熟種子を発生させるカラシナ植物などの、カラシナ属の遺伝的に安定し
た植物を提供する。そのような植物は、本発明の突然変異体アレルを有するカラシナ系統
に由来する場合がある。そのような植物の油組成は、その親系統に遺伝的に由来する場合
がある。
た組成を含む内因性脂肪酸含有量を有する成熟種子を生産する、遺伝的に安定したアブラ
ナ属植物、例えばカラシナ植物、を生産するプロセスを提供する。本発明のプロセスは、
セイヨウアブラナからのオメガ−9遺伝子(例えば、fad2a及びfad3a)を他の
アブラナ属植物、例えばカラシナ、と交配してF1後代を作る段階を含み得る。例えば自
家受粉又は倍加半数体植物の発生を含み得る手段によって、前記F1後代を繁殖させるこ
とができる。突然変異体FAD2アレルと突然変異体FAD3アレルを組み合わせること
により二重突然変異体遺伝子アレル(fad2及びfad3)を有する植物は、任意の単
一突然変異体植物より優れた油脂肪酸プロフィールを有することができる。結果として生
ずる後代を、上述の実施形態の1つ又はそれ以上について開示した組成を有する種子を産
生する遺伝的に安定した植物についての選択に付すことができる。そのような種子は、例
えば、全抽出可能油中の約7.1%から約6.5%の全飽和物含有量を含む、安定化され
た脂肪酸プロフィールを有することができる。一定の変異体において、後代は、別の実施
形態について上で示したような組成を有する種子又は油をそれら自体が生産できる。約7
0重量%より多くのオレイン酸含有量及び約3重量%未満のリノレン酸含有量を有する。
植物、におけるオレイン酸の増加を、リノール酸及びリノレン酸の対応する減少によって
、他の脂肪酸は事実上不変のままでありながら、果たすことができる。そのような特質を
例証するデータを本明細書の表1、6〜10、及び12〜14に示す。原カラシナバック
グラウンド脂肪酸データを表2に、及びBC2F2半粒種子選択系統についての脂肪酸デ
ータを表7、8及び10に示す。表12は、非常に高いオレイン酸及び低いリノレン酸を
伴う、加えて非常に低いリノール酸レベルを示す、脂肪酸プロフィールを有するBC3F
3 1/2種子データを例証するものである。表14は、表12に示した系統(成長させ
て自家受粉させ、その後、15の種子バルクを試験した、BC3F3 1/2種子選択物
)についてのBC3F4種子データ(全種子に関するFAME)を例証するものである。
これらの結果は、表12(BC3F3)において見出されるプロフィールを裏付けるもの
であり、それらのプロフィールが安定していることを示す。
現型を有する植物を提供する。例えば、本発明の突然変異体アレルから得られる高オレイ
ン酸及び低リノレン酸表現型は、M2、M3及びM4世代を通して遺伝継承性され得る。
の調節を含む。「発現可能な」とは、コード配列の一次構造、すなわち配列、が、その配
列が活性タンパク質をコードすることを示すことを意味する。それにもかかわらず、発現
可能なコード配列は、特定の細胞では活性タンパク質として発現されないことがある。こ
の「遺伝子サイレンシング」は、例えば、インビボでの様々な相同トランスジーン不活性
化のメカニズムによって発生し得る。相同トランスジーン不活性化は、導入遺伝子がセン
ス配向で挿入された植物に関して、遺伝子とトランスジーンの両方がダウンレギュレート
されるという予想外の結果と共に説明されている(Napoli et al., 1990 Plant Cell 2:2
79-289)。そのような共抑制についての正確な分子的基礎は不明であるが、相同遺伝子配
列の不活性化については少なくとも2つの推定的メカニズムが存在する。メチル化による
転写不活性化が、1つのメカニズムとして提案されており、この場合、重複DNA領域が
内因性メカニズムに遺伝子サイレンシングについてのシグナルを送る。転写後メカニズム
も提案されており、この場合、遺伝子とトランスジーンの両方からの総合発現レベルが、
両方のメッセージの閾値誘導減損を誘発する高い転写産物レベルを生じさせると考えられ
る(van Bokland et al., 1994, Plant J. 6:861-877)。従って、本発明では、ゲノム内
の発現可能なコード配列が、特定の細胞においてすべて発現されるとは限らないだろう。
脂肪酸デサチュラーゼの活性が改変される、オレイン酸含有量が改変される、又はリノレ
ン酸含有量が改変されるカラシナ植物を提供する。脂肪酸デサチュラーゼ(「FAD」)
とは、タンパク質が脂肪酸の生合成の際に二重結合を導入する活性を阻害することを意味
する。例えば、FAD2/FAD3酵素は、オレイン酸からのリノール酸の生合成の際に
第二の二重結合を導入する活性を特徴とし得る。改変されるデサチュラーゼ活性としては
、基準植物、細胞又はサンプルと比較してデサチュラーゼ活性の増加、低下又は除去を挙
げることができる。
ラーゼをコードする核酸配列の発現の除去を含み得る。発現の除去とは、核酸配列によっ
てコードされた機能性アミノ酸配列が検出可能なレベルで生産されないことを本明細書で
は意味する。デサチュラーゼ活性の低下は、デサチュラーゼをコードする核酸配列、例え
ば、FAD2酵素又はFAD3酵素をコードする本発明の配列の転写の除去を含み得る。
転写の除去とは、前記核酸配列によってコードされたmRNA配列が検出可能なレベルで
転写されないことを本明細書では意味する。デサチュラーゼ活性の低下は、デサチュラー
ゼをコードする核酸配列からのトランケート型アミノ酸配列の生産を含むこともある。ト
ランケート型アミノ酸配列の生産とは、前記核酸配列によってコードされたアミノ酸配列
が、野生型核酸配列によってコードされた機能性アミノ酸配列の1つ又はそれ以上のアミ
ノ酸を欠失していることを本明細書では意味する。加えて、デサチュラーゼ活性の低下は
、変異体デサチュラーゼアミノ酸配列の生産を含むことがある。変異体アミノ酸配列の生
産とは、前記アミノ酸配列が、野生型核酸配列によってコードされたアミノ酸配列とは異
なる1つ又はそれ以上のアミノ酸を有することを意味する。本明細書においてより詳細に
論じるように、本発明は、本発明の突然変異系統が、野生型系統J96D−4830と比
較して変異体アミノ酸を有するFAD2及びFAD3酵素を生産することを開示する。様
々なタイプの突然変異、例えばフレームシフト突然変異、置換及び欠失を、デサチュラー
ゼ活性を低下させる目的で核酸配列に導入することができる。
なFAD2/FAD3ポリペプチド配列を提供する。ポリペプチドの構造に、そのペプチ
ドの生物学的機能を実質的に改変せずに、何らかの修飾及び変更を加えて、生物学的の等
価のポリペプチドを得ることができることは、当該分野において周知である。本明細書に
おいて用いる場合、用語「保存アミノ酸置換」は、ペプチド内の所与の位置におけるある
アミノ酸での別のアミノ酸の置換であって、測定可能な機能喪失又は獲得を一切伴わずに
行って、生物学的に等価のポリペプチドを得ることができる置換を指す。そのような変更
を加える場合、側鎖置換基の相対的類似性、例えばそれらのサイズ、電荷、疎水性、親水
性及びこれらに類するものに基づいて同様のアミノ酸残基の置換を行うことができ、並び
に常例的な試験によってそのような置換をそのペプチドの機能性に対するそれらの影響に
ついてアッセイすることができる。反対に、本明細書において用いる場合の「非保存的ア
ミノ酸置換」は、ペプチド内の所与の位置におけるあるアミノ酸での別のアミノ酸の置換
であって、測定可能な機能喪失又は獲得を生じさせて生物学的に等価でないポリペプチド
を得る置換を指す。
以下の親水性値:Arg(+3.0);Lys(+3.0);Asp(+3.0);Gl
u(+3.0);Ser(+0.3);Asn(+0.2);Gln(+0.2);Gl
y(0);Pro(−0.5);Thr(−0.4);Ala(−0.5);His(−
0.5);Cys(−1.0);Met(−1.3);Val(−1.5);Leu(−
1.8);Ile(−1.8);Tyr(−2.3);Phe(−2.5);及びTrp
(−3.4)が割り当てられており、一部の実施形態では、あるアミノ酸残基で、類似し
た親水性値(例えば、プラス又はマイナ2.0の値以内)を有する別のアミノ酸残基を置
換する場合、保存アミノ酸置換を行うことができる。残基の親水性値が有意に異なる、例
えば2.0より大きい差がある場合には非保存アミノ酸置換を行うことができる。
プラス又はマイナ2.0の値以内)を有する別のアミノ酸残基を置換する場合には保存ア
ミノ酸置換を行うことができる。そのような実施形態では、その疎水性及び電荷特性に基
づいて、次のように、そのようなアミノ酸残基にハイドロパシー指数を割り当てることが
できる:Ile(+4.5);Val(+4.2);Leu(+3.8);Phe(+2
.8);Cys(+2.5);Met(+1.9);Ala(+1.8);Gly(−0
.4);Thr(−0.7);Ser(−0.8);Trp(−0.9);Tyr(−1
.3);Pro(−1.6);His(−3.2);Glu(−3.5);Gin(−3
.5);Asp(−3.5);Asn(−3.5);Lys(−3.9);及びArg(
−4.5)。残基のハイドロパシー指数が有意に異なる、例えば2.0より大きい差があ
る場合には非保存アミノ酸置換を行うことができる。例えば、これに基づき、BJfad
2−aにおけるアミノ酸105に対応する位置での野生型His(−3.2)の次のアミ
ノ酸での置換は、非保存置換であろう:Ile(+4.5);Val(+4.2);Le
u(+3.8);Phe(+2.8);Cys(+2.5);Met(+1.9);Al
a(+1.8);Gly(−0.4);Thr(−0.7);Ser(−0.8);及び
Trp(−0.9)。
に分けられ:非極性:Ala、Val、Leu、Ile、Phe、Trp、Pro、Me
t;酸性:Asp、Glu;塩基性:Lys、Arg、His;中性:Gly、Ser、
Thr、Cys、Asn、Gln、Tyr、あるアミノ酸残基で同じクラス内の別のアミ
ノ酸残基を置換する場合には保存アミノ酸置換を行ってもよい。前記残基が同じクラスに
入らない場合には非保存アミノ酸置換、例えば塩基性アミノ酸での中性又は非極性アミノ
酸の置換、を行ってもよい。
そのようなミールは、粉砕種子の形態である場合もあり、プレスケーキ(溶媒抽出若しく
は他の化学的抽出に付されていないが、油を排出するようにプレスされた種子)の形態で
ある場合もあり、ホワイトフレーク(粉砕され、より多くの油を除去するためにヘキサン
などの溶媒で抽出された種子)の形態である場合もあり、又は従来の粉砕及び溶媒抽出プ
ロセスからのミールの形態である場合もある。1つの特定の実施形態では、カラシナ種子
を、例えば、国際公開第2008024840A2号、国際公開第03/053157号
、米国特許第5,844,086号;国際公開第97/27761号;米国特許出願第2
005/0031767号、又は J. Caviedes, "Aqueous Processing Of Rapeseed (Can
ola)," Thesis For Degree Of Master Of Applied Science, University Of Toronto 199
6, pages 1-147に記載されているタイプの水溶液処理に付す。
ともできる。これらの使用の一部は、工業的、化粧品又は医薬的なものであり得る。本発
明の油は、本発明の油が適するいずれの用途においても使用することができる。一般に、
本発明の油は、例えば、様々な用途、例えば潤滑剤、潤滑添加剤、金属工作液、作動液及
び不燃性油圧油、において鉱油、エステル、脂肪酸又は動物脂肪の代わりに使用すること
ができる。本発明の油は、変性油の製造プロセスにおいて材料としてとして使用すること
もできる。本発明の油変性技術の例としては、分留、水素添加、油のオレイン酸又はリノ
レン酸含有量の変更、並びに当業者に公知の他の変性技術が挙げられる。一部の実施形態
では、本発明の油を、エステル交換油の生産、トリステアリンの生産、又は電気機器に含
めることができる誘電流体組成物に用いる。
2号;国際公開第2004/0009789A1号も参照のこと);燃料、例えば、バイ
オディーゼル(米国特許第6,887,283号;国際公開第2009/038108A
1号も参照のこと);複写機器用の記録材料(米国特許第6,310,002号);粗製
油類似組成物(米国特許第7,528,097号);コンクリート用のシーリング材組成
物(米国特許第5,647,899号);硬化性コーティング剤(米国特許第7,384
,989号);工業用フライ油;洗浄配合物(国際公開第2007/104102A1号
;国際公開第2009/007166A1号も参照のこと);及びはんだ付用フラックス
における溶剤(国際公開第2009/069600A1号)が挙げられる。本発明の油は
、工業プロセス、例えばバイオプラスチックの生産(米国特許第7,538,236号)
;及び逆乳化重合によるポリアクリルアミドの生産(米国特許第6,686,417号)
、においても使用することができる。
ワセリン代用品として(米国特許第5,976,560号);石鹸の構成要素として、又
は石鹸生産プロセスにおける材料として(国際公開第97/26318号;米国特許第5
,750,481号;国際公開第2009/078857A1号);口腔処置溶液の構成
要素として(国際公開第00/62748A1号);老化処置用組成物の構成要素として
(国際公開第91/11169号);及び皮膚又は毛髪用エーロゾルフォーム製剤の構成
要素として(米国特許第6,045,779号)の使用が挙げられる。
対する防護バリアに使用することができ(Barclay and Vega, 「Sunflower oil may help
reduce nosocomial infections in preterm infants.」Medscape Medical News <http:/
/cme.medscape.com/viewarticle/501077>, accessed September 8th, 2009);及びオメ
ガ−9脂肪酸を大量に含んだ油を用いて、移植片生着を増進することができる(米国特許
第6,210,700号)。
解されるはずである。前に述べたように、本発明の油及び変性油は、例えば、当業者に公
知のすべての用途において鉱油、エステル、脂肪酸又は動物性脂肪の代わりに使用するこ
とができる。
の具体的な実施形態を一般的な方法で説明し、以下の実施例によってさらに説明する。本
発明は、すべてのカノーラ品質カラシナ種ばかりでなく、すべての非カノーラ品質カラシ
ナ種にも、間違いなく適用される。カラシナ、クロガラシ及びアビシニアガラシを含むす
べての他のアブラナ属種に本発明を適用して実質的に同様の結果を生じさせることができ
る。以下の実施例が、開示する特定の形態に本発明を限定するためのものでなく、むしろ
、本発明が、本発明の範囲内に入るすべての修飾、等価物及び選択肢を包含するものであ
ることも、理解されるはずである。
図1を参照して、カラシナ遺伝的背景を完全に回復させるための、高オレイン酸−低リ
ノレン酸選択物とカラシナ親(Zem1、Zem2及びZEスコロスペルカ)間の1回又
はそれ以上の戻し交配(BC3及びBC4)。ゼロエルカ酸カラシナ系統のみを、戻し交
配プログラムで使用した。これは、FAE遺伝子(単数又は複数)と非競合状態でfad
2及びfad3突然変異体アレルの完全発現が可能であるだろうからである。
BC3F2、BC4F2)の後、後代種子を、先ず、fad2a及びfad3a遺伝子の
存在について組織スクリーニングに付し(本明細書においてより詳細に説明するようなマ
ーカーを使用する)、その後、成長開花させて、後の戻し交配において使用する。選択さ
れた系統から収穫した種子を、半粒種子を使用する油プロフィール分析、非破壊的一粒完
全種子NIR分析、又は一粒種子NIR(FTNIR)に付す。その後、増加したオレイ
ン酸レベル及び低下したリノレン酸レベルを含有するサンプルを土壌にまき、成長成熟さ
せる。これらの植物から自家受粉種子が生産し、高オレイン酸及び低リノレン酸に相当す
る油プロフィールについてバルク種子を分析する。67〜80%の範囲内のオレイン酸及
び5%未満のリノレン酸を有する選択物を特定する。これらの選択物をそれら自体の間で
異種交配させて、所望の脂肪酸プロフィールを作出した。
与することが公知のfad2a及びfad3a遺伝子に特異的な突然変異の存在について
スクリーニングした。植物は、その表現型(葉形及びきめ)がカラシナ親のものに近似し
ていた。植物は、親カラシナに類似した現地条件下で耐裂莢性及び耐乾燥性も示した。
望ましくないAAゲノム領域に特異的なSSRマーカーは提示されない。
プリント解析のために凍結乾燥した。多数の植物を使用してF1個体を産生する場合、後
の産生の際に観察されることがあるアレルを説明するためにすべての祖先からの組織も採
集した。親組織を採集しない場合には、それぞれの親種子ロット(源)からの6つの植物
のランダムなサンプルを採集する別の選択肢を実行した。1系統につき6以下の個体から
DNAを単離し、それぞれの等分割量をプールして遺伝子フィンガープリント解析のため
の親対照を作った。この交配プログラムにおいて使用したすべてのオメガ−9セイヨウア
ブラナの遺伝子フィンガープリントは以前に確証されており、並びにこれらの系統内のす
べてのAゲノム及びCゲノム連鎖群にわたって収集したデータの代表である。
対応するアレルを推定的に同定する目的でアブラナ、クロガラシ及びブラッシカ・オレラ
セア・アクセッション(単数又は複数)についても葉組織を収集し、DNAを単離し、D
NAサンプルプールも作製した。
及びB.オレラセアのプールをスクリーニングする。観察されたDNAフラグメントの情
報を収集することに加えて、ヌルアレルに関する情報を書き留める。収集した遺伝子型判
定情報をGeneflow(商標)遺伝子型判定データベースに保存する。Genefl
ow(商標)遺伝子型判定データベース多型報告機能を用いて、それらの選択されたカラ
シナ及びセイヨウアブラナ系統についての情報価値のあるSSRマーカーの同定を果たす
。
らの戻し交配集団をスクリーニングすることによって、セイヨウアブラナに特異的なゲノ
ム領域を低減するマーカー支援選抜(maker-assisted selection)を行う。多型共優性マ
ーカーに加えて、カラシナ系統についてのヌルをスコアリングするマーカーも、所望のA
及びBゲノム領域についてのマーカー支援選抜に用いる。進めるための植物の選択は、表
現型観察と遺伝子型観察の両方を用いて育種及び研究室焦点により行う。マーカープロフ
ィールに基づき、望ましくないAAゲノムセグメントばかりでなく、オメガ−9セイヨウ
アブラナCCゲノムを有さない後代植物を、次の段階に進めるために選択する。
FAD2bに関係があるBBゲノムDNA並びに(BBゲノムを代表する)クロガラシ
及びカラシナからの他の利用可能な配列の存在を検出することができるDNAマーカーを
開発する。マーカー開発のために、二重半数体地図作成用集団を開発する。加えて、公知
B−ゲノム配列からDNA(SSR及びSNP)マーカーを開発する。これらのマーカー
によって、前記変換系統におけるカラシナのバックグラウンドの回復度を確認することが
できる。
アブラナSSRマーカーを親スクリーニングに利用することができる。これらのマーカー
を、カラシナ(Zem1、Zem2及びZEスコロスペルカ系統)、オメガ−9、セイヨ
ウアブラナ、アブラナ、クロガラシ及びB.オレラセアに属するアブラナ属系統のパネル
で、現在、スクリーニングしている。このスクリーニングにより、2つのタイプの情報が
得られる。第一に、これらのSSRマーカーをセイヨウアブラナゲノムから発現させたの
で、そのスクリーニングにより、他のゲノムにおけるそれらの利用能に関する情報が得ら
れ、及びAA、BB又はCCゲノムに特異的に対応するアレルを同定することができる。
第二に、そのスクリーニングにより、カラシナ遺伝地図作成及び形質遺伝子移入に使用す
るためのマーカーのコアセットを特定することができる。
公共データベース(public database)を検索した。101がセイヨウアブラナ(AA C
Cゲノム)からのものであり、113がクロガラシ(BBゲノム)からのものであり、9
5がB.オレラセア(CCゲノム)からのものであり、及び129がアブラナ(AAゲノ
ム)からのものである、合計438の公共SSRを特定した。これらのうち、クロガラシ
からの113のSSR、アブラナからの129のSSR、及びセイヨウアブラナからのS
SRの一部を、カラシナにおいて潜在的に有用であるものとして特定した。
開発したSSR及びSNPマーカーを使用して、戻し交配におけるカラシナバックグラウ
ンドの存在を確認する。親スクリーニングから特定し情報価値のあるマーカー使用して、
カラシナ連鎖地図、並びに共有マーカー遺伝子を特定するためにカラシナとセイヨウアブ
ラナとの比較地図も構築する。カラシナにおいて遺伝子移入されたfad2a及びfad
3a遺伝子座の遺伝地図を作製して、それらがカラシナのAAゲノムに首尾よく遺伝子移
入された証拠を得る。
2b、fad3a、及びfad3b配列を同定して、改良された脂肪酸プロフィールを有
する選択系統におけるfad2及びfad3変異の位置を突きとめる。
系統との種間ハイブリダイゼーションを示すものである。表4は、カラシナ/オメガ−9
セイヨウアブラナ(F1種間ハイブリッド)FADマーカースクリーニング結果を示すも
のである。図5は、カラシナ//カラシナ/オメガ−9セイヨウアブラナ(BC1)GO
Iスクリーニング結果を示すものである。表6は、カラシナ*2//カラシナ/オメガ−
9セイヨウアブラナ(BC2F1)GOIスクリーニング結果を示すものである。
前述のような、高オレイン酸及び低リノレン酸の種子油プロフィールを示す自家受粉及
び倍加半数体植物を、BBゲノムについて選択されたマーカーを使用してスクリーニング
した。前記変換系統に存在するBBゲノムを確認する。これらの突然変異体カラシナ系統
は、セイヨウアブラナについて選択された陽性Cゲノムマーカー数の減少(又は完全な不
在)も示す。これらのプロフィールを、前記系統の農業実用面(agronomics)を改良する
、例えば、イールド・ドラッグを低減する、裂莢を低減する、様々な成長ゾーンについて
の成熟度を改変する、ストレス抵抗性を増大させる、耐病性を増大させる、及びこれらに
類する、当該分野において公知の追加の戻し交配及び自家受粉技術によってさらに改良す
る。
粉及びDH後代におけるBゲノムの判定に、3つの異なる方法を用いる。
セイヨウアブラナ系統とカラシナ系統の間の遺伝的多型を判定することができる分子マ
ーカーを特定する。合計1931のセイヨウアブラナSSRマーカーをスクリーニングし
て、カラシナゲノムとセイヨウアブラナとを区別することができるSSRのコアセットを
特定した。加えて、実施例2において説明したように、公共データベースを検索して、親
スクリーニングのための追加のマーカーを特定した。従って、2,300より多くのSS
Rマーカーを、セイヨウアブラナに対してカラシナを区別するそれらの能力について調査
した。このスクリーニングからの1セットのマーカーを、後代におけるカラシナゲノムの
濃縮又はセイヨウアブラナゲノムの消失若しくは不在の判定に用いる。もう1つのマーカ
ーシステムは、SNPマーカーセットの使用を含む。3,000を超えるSNPがコンソ
ーシアームによって開発された。2つのハイスループット・イルミナ(Illumina)アッセ
イを生成する(すなわち、1つの1536プレックスSNP OPA(Ligo Poo
l All))。これらのOPAの両方(合計3,072のSNPアッセイ)を、全部で
3つの四倍体セイヨウアブラナ、カラシナ及びアビシニアガラシ系統、並びにアブラナ属
の全部で3つの二倍体先祖「Uの三角形」(1935)−クロガラシ、B.オレラセア及
びアブラナ −からなる親パネルを用いてスクリーニングする。後代においてカラシナフ
ラグメントを明白に追跡できる1セットのSNPを特定する。具体的には、後代において
Bゲノムの存在を確認することができるSNPをそのセットに含める。このように、後代
植物のスクリーニングに多数の情報価値のあるSSR及びSNPを使用することにより、
高いBゲノム百分率を有する植物を特定する。自家受粉及びDH後代を特性づけした後、
分離後代を用いて比較地図を構築することにより、セイヨウアブラナ及びカラシナ系統群
に対するマーカー遺伝子座の遺伝地図作製位置を妥当性評価する。比較地図により、種間
マッチングに従って可能性のあるマーカー遺伝子座の再配列、付加又は欠失を特定するこ
とができる。
蛍光インサイチュー・ハイブリダイゼーション(FISH)技術を用いて、後代におけ
るBゲノムの存在及び濃縮を判定する。マーカー分析のためにも、細胞学的研究、例えば
染色体数、異数体の出現の特定、のためにも、関心のあるゲノムセグメントの判定のため
にも、後代植物を用いる。FISHは、分子マーカーによって得た情報をさらに強化する
ことができる強力なツールである。このために、Bゲノムの存在を明白に判定することが
できる候補SSR及びSNPマーカー配列を使用して、大きなBACクローンを抜き出し
、その後、それらを、高いBゲノム百分率を有するものとして特定された候補後代植物の
分裂中期伸展標本(spreads)に対してプローブとして用いる。BAC配列は、コンピュ
ータを利用する方法を用いて特定されもするが、BAC配列がそのデータベースにおいて
入手できることを条件とする。そうである場合には、インシリコ(in silico)で特定され
たBACをそれぞれの源から得、FISH実験において使用することができる。
競合非標識プローブとして全カラシナDNAを使用して全核BBゲノムDNAで候補後
代植物の染色体をプローブ化することができるゲノムインサイチューハイブリダイゼーシ
ョン(GISH)技術を用いる。カラシナにおけるBBゲノム染色体への強いハイブリダ
イゼーションが、その後代におけるBBゲノムの存在を示す。
配及びさらなる自家受粉のために使用する。分離集団において、MASを使用して、所望
の表現型を維持しながら、可能な多型遺伝子座の最大数で優良ゲノムを回収する。セイヨ
ウアブラナに関連したA及びCゲノムからのアレルを示すサンプルに対する選択に重点を
置いて、SSR又はSNPマーカーで戻し交配後代の遺伝子型を判定する。このプロセス
は、所望の表現型を得る為に多数の遺伝子座が必要とされるときに有効である。
公開番号US2008/0168587に開示されているB−ゲノムfad2、fad
3突然変異又はクロガラシにおいて若しくはカラシナ種子において新たに引き起こされた
突然変異を組み合わせることにより、脂肪種子に対するさらなる改良を果たす。一例では
、様々な系統間で交配を行い、選択物を特定し、これらの選択物を組み合わせることによ
り、匹敵する農業実用収量を有するさらなる安定した高オレイン酸及び低リノレン酸選択
物が生産される。
るための他の潜在的方法としては、例えば、公知生殖質からの方法、高速中性子/EMS
突然変異体からの方法、RNAiの適用からの方法、遺伝子発現の調節のジンクフィンガ
ー媒介制御からの方法が挙げられる。上に記載した方法のいずれかによって、fad2b
及びfad3b酵素の発現レベルを低下又は除去することができる。
遺伝子及び/又はfad3b遺伝子を有する第二のクロガラシ、アビシニアガラシ又はカ
ラシナ植物と交配すること;(b)分子マーカーを使用して、前記fad2b遺伝子及び
/又はfad3b遺伝子の遺伝子移入を追跡すること;(c)段階(a)の交配から種子
を得ること;(d)種子のFAPを分析し、その後、種子選択物から稔性植物を成長させ
ること;(e)段階(d)の植物の自家受粉から後代種子を得ること;(f)様々な環境
にわたって後代の温室及び野外試験を行うこと;及び(g)<3%のリノレン酸値及び約
68%から約80%の間のオレイン酸値を有する種子を前記後代の中で特定することによ
って、突然変異FAD遺伝子をカラシナ植物に移入する。
AD2B及びFAD3Bの酵素のダウンレギュレーションを果たす。
HOLL油プロフィールは、細胞質雄性不稔系(例えば、オグラ型セイヨウアブラナC
MS126−1を参照のこと)とそれらの対応する稔性回復バックグラウンドとを含むH
OLL親系統を作出することによって生産されたハイブリッドにおいて表される。
除草剤耐性形質(イミダゾリノン耐性):セイヨウアブラナにおけるイミダゾリノン耐
性形質(BASF)は、LG01(AAゲノム、グリホサート耐性挿入部位からおおよそ
20cM)に位置するPM2突然変異部位を含み、PM1突然変異部位は、LG11(C
Cゲノム)に位置する。ahas3がAAゲノムに対応し、一方、AHAS1がCCゲノ
ムに対応すると考えられる。Swansonら(Theor. Appl Genet. 78:525-530, 1989
)は、ahas3遺伝子のみがイミダゾリノン除草剤に対する耐性をもたらすことを示し
ている。AAゲノムに位置する2つの他のAHASゲノム:ahas2及びahas4、
が存在する。2つのahas遺伝子がイミダゾリノン除草剤に対する耐性に必要とされる
場合、BBゲノム上に位置するAHAS遺伝子を突然変異誘発のために特定することがで
きる。カラシナにおけるPM2だけでは、十分な耐性が得られないことが判明した。従っ
て、カラシナにおいて2つ又はそれ以上の遺伝子を発生させて、十分なイミダゾリノン耐
性をもたらす。
配の後代にイミダゾリノン除草剤を噴霧して、耐性についてアッセイする。インベーダ・
アッセイを用いてPM2の存在によりPM2突然変異の存在が確認される。BBゲノム染
色体とCCゲノム染色体が対合し、結果としてセイヨウアブラナCCゲノムからカラシナ
BゲノムへのPM1の遺伝的伝達が生じたかどうかを判定するためにPM1突然変異につ
いてアッセイする。
合、PM2を含有するオメガ−9セイヨウアブラナ系統をカラシナ系統との交配種の作成
に使用して、セイヨウアブラナ生殖質を完成HOLLカラシナ系統に再導入する必要をな
くす。イミダゾリノン耐性カラシナのマーカー支援選抜は、BBゲノムの回復及び決定と
同時に起こる。HOLLカラシナイミダゾリノン耐性系統が発生されれば、それを、他の
カラシナ栽培品種へのその後の形質遺伝子移入に用いる。
よるTIPS突然変異のカラシナへの導入によって、グリホサート耐性カラシナの開発を
成し遂げる。5つのパラログが同定されており、これらのうちの1つ又は2つがEPSP
S遺伝子の最高発現変種であった。結果としてグリホサート耐性表現型を生じさせること
ができる修飾epsps遺伝子がAゲノム上に存在することが判明し、それらをオメガ−
9カラシナと交配して、グリホサート耐性オメガ−9カラシナを生産する。
採集する。サンプルに除草剤選択マーカーを噴霧し、その後、遺伝子特異的マーカーで接
合状態を検査する。耐性及び感受性クラスを含むように耐性及び感受性植物のランダムな
サンプルからDNAをプールすることにより、バルク分離個体分析(bulk segregant ana
lysis:BSA)プールを作る。R及びSプール、並びに優良栽培品種及び形質転換ドナ
ー栽培品種を、SSR又はSNPマーカーを使用して遺伝子型判定して、予測挿入染色体
を特定する。歪みのあるバルクを用いて染色体に関する選択的遺伝子型判定を行って、遺
伝子挿入部位を特定する。マーカー支援遺伝子移入を用いて、関心のある遺伝子を所望の
HOLLカラシナに遺伝子移入する。
特定のタンパク質産物をコードする遺伝子の単離及び特性づけを可能にした分子生物学
技術の登場により、植物生物学の分野の科学者は、外来若しくは追加の遺伝子を含有し、
発現するように又は(おそらく異なるプロモータによって誘導された)天然遺伝子の修飾
変種を発現するように植物ゲノムを遺伝子操作して、植物の形質を特異的に改変すること
に強い関心を抱いた。そのような外来のさらなる及び/又は修飾された遺伝子を本明細書
では総称して「トランスジーン(transgene)」と呼ぶ。ここ20年にわたり、トランスジ
ェニック植物を生産するための幾つかの方法が様々な作物について開発されており、それ
らの方法としては、アグロバクテリウム媒介形質転換及びパーティクルボンバードメント
(particle bombardment)が挙げられる。具体的なアブラナ属形質転換プロトコルについて
は、参考のために特許(1993年2月23日、Moloneyらに発行された米国特許
第5,188,958号;2000年4月18日、Chenらに発行された米国特許第6
,051,756号;2001年10月2日、Tulsieramらに発行された米国特
許第6,297,056号)を参照のこと。本発明は、特定の実施形態において、特許請
求の範囲に記載する品種又は系統の形質転換変種にも関する。
うなベクターは、調節要素(例えば、プロモータ)の制御下の、又は該要素に作動するよ
うに連結された、遺伝子を含むDNAを含む。発現ベクターは、1つ又はそれ以上のその
ような作動可能に連結された遺伝子/調節要素の組み合わせを含有する。前記ベクター(
単数又は複数)はプラスミドの形態であり得、及びアブラナ属植物(単数又は複数)の遺
伝物質にトランスジーンを組み込むための下で説明するような形質転換法を用いて形質転
換アブラナ属植物を生じさせるために該ベクターを単独で使用することができ、又は他の
プラスミドと併用することができる。
ーカーであって、該マーカーを含有する形質転換細胞をネガティブ選択、すなわちその選
択マーカー遺伝子を含有しない細胞の成長の阻害、又はポジティブ選択、すなわちその遺
伝子マーカーによってコードされた産物についてのスクリーニング、のいずれかによって
回収することができる調節要素(例えば、プロモータ)に作動可能に連結されたものであ
る少なくとも1つの遺伝子マーカーを含む。植物形質転換のための一般に使用されている
多くの選択マーカーが形質転換技術分野において周知であり、それらとしては、例えば、
抗生物質若しくは除草剤であり得る選択的化学薬品を代謝により解毒する酵素をコードす
る遺伝子、又はその阻害剤に対して反応しない改変された標的をコードする遺伝子が挙げ
られる。少数のポジティブ選択法も当該分野において公知である。
シンホスホトランスフェラーゼII(nptII)遺伝子であり、これは、植物調節シグ
ナルの制御下でカナマイシンに対する耐性を付与する(Fraley et al., Proc. Natl. Aca
d. Sci. U.S.A., 80:4803, 1983)。もう1つの一般的に使用されている選択マーカー遺
伝子は、抗生物質ヒグロマイシンに対する耐性を付与するヒグロマイシンホスホトランス
フェラーゼ遺伝子である(Vanden Elzen et al., Plant Mol. Biol, 5:299, 1985)。
ンタマイシンアセチルトランスフェラーゼ、ストレプトマイシンホスホトランスフェラー
ゼ、及びアミノグリコシド−3’−アデニルトランスフェラーゼ、ブレオマイシン耐性決
定因子が挙げられる(Hayford et al., Plant Physiol. 86:1216, 1988; Jones et al.,
Mol. Gen. Genet., 210:86, 1987;Svab et al., Plant Mol. Biol. 14:197, 1990; Hill
e et al., Plant Mol. Biol. 7:171, 1986)。他の選択マーカー遺伝子は、除草剤、例え
ばグリホサート、グリホシナート、2,4−D又はブロモキシニル、に対する耐性を付与
する(Comai et al., Nature 311:141-744, 1985;Lira et al.,国際公開第2008/0
70845号Wright et al.,国際公開第2005/107437号及び国際公開第200
7/053482号;Gordon-Kamm et al., Plant Cell 2:603-618, 1990;Stalker et a
l., Science 242:419-423, 1988)。細菌起源のものでない植物形質転換用の他の選択マ
ーカー遺伝子としては、例えば、マウスジヒドロ葉酸レダクターゼ、植物5−エノール−
ピルビル−シキミ酸−3−リン酸シンターゼ及び植物アセト乳酸シンターゼが挙げられる
(Eichholtz et al., Somatic Cell Mol. Genet. 13:67, 1987;Shah et al., Science 2
33:478, 1986;Charest et al., Plant Cell Rep. 8:643, 1990)。原核及び真核細胞に
おける遺伝子発現には、緑色蛍光タンパク質(GFP)をコードする遺伝子がマーカーと
して利用されている(Chalfie et al., Science 263:802, 1994)。GFP及びGFPの
変異体を選択マーカーとして使用することができる。
ヌクレオチド配列によって進められるはずである。幾つかのタイプのプロモータが形質転
換分野において今では周知であり、単独で使用することができる又はプロモータと併用す
ることができる他の調節要素も周知である。本明細書において用いる場合、「プロモータ
」は、転写の始点の上流のDNA領域であって、転写を開始させるためのRNAポリメラ
ーゼ及び他のタンパク質の認識及び結合に関与する領域への言及を含む。「植物プロモー
タ」は、植物細胞において転写を開始させることができるプロモータである。発生制御下
のプロモータの例としては、一定の組織、例えば葉、根、種子、繊維、木部導管、仮導管
又は厚膜組織、において転写を優先的に開始させるプロモータが挙げられる。そのような
プロモータは、「組織優先の(tissue-preferred)」と言われる。一定の組織のみで転写
を開始させるプロモータは、「組織特異的」と言われる。「細胞タイプ」特異的プロモー
タは、1つ又はそれ以上の器官における一定の細胞タイプ、例えば根又は葉の導管細胞、
において主として発現を進める。「誘導性」プロモータは、環境制御下にあるプロモータ
である。誘導性プロモータによる転写に影響を及ぼし得る環境条件の例としては、嫌気性
条件、又は光の存在が挙げられる。組織特異的、組織優先、細胞タイプ特異的、及び誘導
性プロモータが、「非構成的」プロモータのクラスを構成する。「構成的」プロモータは
、大部分の環境条件下で活性であるプロモータである。
作動可能に連結させる。場合により、アブラナ属において発現させるための遺伝子に作動
可能に連結されているシグナル配列をコードするヌクレオチド配列に誘導性プロモータを
作動可能に連結させる。誘導性プロモータを用いると、転写速度が誘導剤に応じて増大す
る。本発明では任意の誘導性プロモータを使用することができる。Ward et al., Plant M
ol. Biol. 22:361-366 (1993)参照。例示的誘導性プロモータとしては、銅に応答するA
CEI系からのもの(Mett et al., PNAS 90:4567-4571, 1993);ベンゼンスルホンアミ
ド除草剤毒性緩和剤に応答するトウモロコシからのIn2遺伝子(Hershey et al., Mol.
Gen. Genetics 227:229-237 (1991);及びGatz et al., Mol. Gen. Genetics 243:32-38
(1994))又はTn10からのTetリプレッサー(Gatz et al., Mol. Gen. Genetics 2
27:229-237 (1991))が挙げられるが、それらに限定されない。特に好ましい誘導性プロ
モータは、植物が通常は応答しない誘導剤に応答するプロモータである。例示的誘導性プ
ロモータは、その転写活性がグルココルチコステロイドホルモンによって誘導される、ス
テロイドホルモン遺伝子からの誘導性プロモータである(Schena et al., Proc. Natl. A
cad. ScL U.S.A. 88:0421 (1991))。
作動可能に連結させる、又はアブラナ属において発現させるための遺伝子に作動可能に連
結されているシグナル配列をコードするヌクレオチド配列に構成的プロモータを作動可能
に連結させる。本発明では多くの異なる構成的プロモータを利用することができる。例示
的構成プロモータとしては、植物ウイルスからのプロモータ、例えばCaMVからの35
Sプロモータ(Odell et al., Nature 313:810-812, 1985)、及び米アクチン(McElroy
et al., Plant Cell 2:163-171, 1990);ユビキチン(Christensen et al., Plant Mol.
Biol. 12:619-632, 1989;Christensen et al., Plant Mol. Biol 18:675-689 (1992))
;pEMU(Last et al., Theor. Appl. Genet. 81: 581-588, 1991);MAS(Velten
et al., EMBO J. 3:2723-2730, 1984);トウモロコシH3ヒストン(Lepetit et al.,
Mol. Gen. Genetics 231: 276-285, 1992;Atanassova et al., Plant Journal 2 (3):29
1-300, 1992)のような遺伝子からのプロモータが挙げられるが、それらに限定されない
。ALSプロモータ、セイヨウアブラナALS3構造遺伝子に対して5’のXba1/N
colフラグメント(又は前記Xba1/Ncolフラグメントに対するヌクレオチド配
列類似性)、は、特に有用な構成プロモータの代表である。PCT出願国際公開第96/
30530号を参照のこと。
織特異的プロモータを作動可能に連結させる。場合により、アブラナ属において発現させ
るための遺伝子に作動可能に連結されているシグナル配列をコードするヌクレオチド配列
に組織特異的プロモータを作動可能に連結させる。組織特異的プロモータに作動可能に連
結された関心のある遺伝子で形質転換された植物は、特定の組織において排他的に、又は
優先的に、トランスジーンのタンパク質生産を生じさせる。本発明では任意の組織特異的
又は組織優先プロモータを利用することができる。例示的組織特異的又は組織優先プロモ
ータとしては、根優先プロモータ −例えばファセオリン遺伝子からのもの(Murai et al
., Science 23:476-482 (1983)及びSengupta-Gopalan et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
U.S.A. 82:3320-3324 (1985));葉特異的及び光誘導プロモータ、例えばcab若しくは
rubiscoからのもの(Simpson et al., EMBO J. 4(1 1):2723-2729 (1985)、及びT
imko et al., Nature 318:579-582 (1985)));葯特異的プロモータ、例えばLAT52
からのもの(Twell et al., Mol. Gen. Genetics 217:240-245 (1989));花粉特異的プ
ロモータ、例えばZm13からのもの(Guerrero et al., Mol. Gen. Genetics 244:161-
168 (1993))、又は小胞子特異的プロモータ、例えばapgからのもの(Twell et al.,
Sex. Plant Reprod. 6:217-224 (1993))が挙げられるが、それらに限定されない。
ペルオキシソーム、グリオキシソーム、細胞壁若しくはミトコンドリア)への、又は分泌
のためにアポプラストへの輸送は、シグナル配列をコードするヌクレオチド配列を、関心
のあるタンパク質をコードする遺伝子の5’及び/又は3’領域に作動可能に連結させる
ことによって果たされる。タンパク質の合成及び(コードされたタンパク質が最終的に区
画化される)処理中に、構造遺伝子の5’及び/又は3’末端のターゲッティング配列が
決まるだろう。
プラスに、ポリペプチドを指向させる。多くのシグナル配列が当該分野において公知であ
る。例えば、Becker et al., Plant Mol. Biol. 20:49 (1992);C. Knox et al., Plant
Mol. Biol. 9:3-17 (1987);Lerner et al., Plant Physiol. 91: 124-129 (1989);Font
es et al., Plant Cell 3:483-496 (1991);Matsuoka et al., Proc. Natl. Acad. Sci.
88:834 (1991);Gould et al., J. Cell. Biol. 108:1657 (1989);Creissen et al., Pl
ant J. 2:129 (1991);Kalderon, et al., Cell 39:499-509 (1984);Steifel et al., P
lant Cell 2:785-793 (1990)を参照のこと。
できる。例えば、当該分野において十分に理解されている形質転換植物の選択及び繁殖技
術によって多数のトランスジェニック植物が得られ、それらを従来の様式で収穫し、その
後、関心のある組織から又は全バイオマスから外来タンパク質を抽出することができる。
植物バイオマスからのタンパク質の抽出は、例えば、Heney and Orr, Anal. Biochem. 11
4:92-6 (1981)により論じられている公知の方法によって、果たすことができる。
ニック植物は、アブラナ属植物である。もう1つの実施形態において、前記関心のあるバ
イオマスは、種子である。より高い発現レベルを示す比較的少数のトランスジェニック植
物については、主として、組み込まれたDNA分子の近似的染色体位置を特定する従来の
RFLP、PCR及びSSR分析により、遺伝地図を作製することができる。これに関し
ての例示的方法論については、Glick and Thompson, Methods in Plant Molecular Biolo
gy and Biotechnology, CRC Press, Boca Raton 269:284 (1993)を参照のこと。染色体位
置に関する地図情報は、対象トランスジェニック植物の所有権保護に有用である。無許可
の繁殖が企てられ、他の生殖質との交配種が作られた場合、組み込み領域の前記地図と疑
わしい植物についての類似の地図とを比較して、後述の疑わしい植物が前記対象植物と共
通の系統図を有するかどうかを判定することができる。地図比較は、ハイブリダイゼーシ
ョン、RFLP、PCR、SSR及びシークエンシング(これらのすべてが従来の技術で
ある)を伴うだろう。
非常に多数の植物形質転換方法が開発されている。例えば、Miki et al., 「Procedures
for Introducing Foreign DNA into Plants」 in Methods in Plant Molecular Biology
and Biotechnology, B. R. Glick and J. E. Thompson, Eds. (CRC Press, Inc., Boca R
aton, 1993) pages 67-88を参照のこと。加えて、植物細胞又は組織形質転換及び植物の
再生のための発現ベクター及びインビトロ培養方法を利用することができる。例えば、Gr
uber et al., 「Vectors for Plant Transformation」 in Methods in Plant Molecular
Biology and Biotechnology, B. R. Glick and J. E. Thompson, Eds. (CRC Press, Inc.
, Boca Raton, 1993) pages 89-119を参照のこと。
、アグロバクテリウムの天然形質転換系に基づく。例えば、Horsch et al., Science 227
:1229 (1985)を参照のこと。A.ツメファシエンス(A. tumefaciens)及びA.リゾゲネ
ス(A. rhizogenes)は、植物細胞を遺伝子的に形質転換させる植物病原性土壌細菌であ
る。A.ツメファシエンス及びA.リゾゲネスのそれぞれTi及びRiプラスミドは、植
物の遺伝子形質転換に関与する遺伝子を有する。例えば、C.I. Kado, Crit. Rev. Plant
Sci. 10:1 (1991)を参照のこと。本発明の目的に適するアグロバクテリウム媒介遺伝子移
入のためのアグロバクテリウムベクター系及び方法についての説明は、Bhalla and Singh
, Nature Protocols 3(2): 181 -9 (2008)、Cardoza and Stewart, Methods Mol Biol. 3
43:257-66 (2006)、 Gruber et al., supra、Miki et al., supra、及びMoloney et al.,
Plant Cell Reports 8:238 (1989)によって提供されている。1996年10月8日に発
行された米国特許第5,563,055号(Townsend及びThomas)も参照
のこと。
グロバクテリウム媒介形質転換の代替法として開発された。一般に利用できる植物形質転
換法は、1から4μmの長さを有するマイクロプロジェクタイルの表面にDNAが担持さ
れる、マイクロプロジェクタイル媒介形質転換である。植物細胞壁及び膜を貫通するため
に十分である300から600m/sの速度にマイクロプロジェクタイルを加速する遺伝
子銃装置を用いて、発現ベクターを植物組織に導入する。Sanford et al., Part. Sci. T
echnol. 5:27 (1987)、J.C. Sanford, Trends Biotech. 6:299 (1988)、Klein et al., B
io/Technology 6:559-563 (1988)、J.C. Sanford, Physiol. Plant 7:206 (1990)、 Klei
n et al., Biotechnology 10:268 (1992)。1991年5月14日に発行された米国特許
第5,015,580号(Christouら);1994年6月21日に発行された米
国特許第5,322,783号(Tomesら)も参照のこと。
Zhang et al., Bio/Technology 9:996 (1991)。あるいは、リポソームとスフェロプラス
トの融合体が、発現ベクターを植物に導入するために用いられている。Deshayes et al.,
EMBO J. 4:2731 (1985), Christou et al., Proc Natl. Acad. ScL U.S.A. 84:3962 (19
87)。CaCl2沈殿法、ポリビニルアルコール又はポリ−L−オルニチンを使用するプ
ロトプラストへのDNAの直接取り込みも報告されている。Hain et al., Mol. Gen. Gen
et. 199: 161 (1985)及びDraper et al., Plant Cell Physiol. 23: 451 (1982)。プロト
プラスト並びに全細胞及び組織のエレクトロポレーションも記載されている。Donn et al
., In Abstracts of VIIth International Congress on Plant Cell and Tissue Culture
IAPTC, A2-38, p 53 (1990);D'Halluin et al., Plant Cell 4:1495-1505 (1992)、及
びSpencer et al., Plant Mol. Biol. 24:51-61 (1994)。
法を用いて、上記選択マーカー遺伝子の発現により形質転換細胞、組織及び/又は植物を
優先的に選択することができる。
にまた、そのトランスジェニック品種を別の(形質転換されていない又は形質転換された
)品種と交配して、新たなトランスジェニック品種を生産することができるだろう。ある
いは、上述の形質転換技術を用いて特定のアブラナ属系統に遺伝子工学で作られた遺伝形
質を、植物育種技術分野において周知である従来の戻し交配技術を用いて、別の系統に移
すことができるだろう。例えば、戻し交配アプローチを用いて、遺伝子工学で作られた形
質を周知の非優良品種から優良品種に移すことができ、又はそのゲノム内に外来遺伝子を
含有する品種からその遺伝子を含有しない品種(単数若しくは複数)に移すことができる
だろう。本明細書において用いる場合、「交配」は、その文脈に依存して、単純なXとY
の交配を指すこともあり、又は戻し交配を指すこともある。
でき、又は組織培養及び再生によって行うこともできる。アブラナ属の様々な組織の組織
培養及びそれらからの植物の再生は公知である。例えば、組織培養によるアブラナ属栽培
品種の繁殖は、次のもののいずれかに限定されないが、次のもののいずれかに記載されて
いる:Chuong et al., 「A Simple Culture Method for Brassica Hypocotyl Protoplast
s,」 Plant Cell Reports 4:4-6 (1985);T.L. Barsby et al.,「A Rapid and Efficient
Alternative Procedure for the Regeneration of Plants from Hypocotyl Protoplasts
of Brassica napus」Plant Cell Reports (Spring, 1996);K. Kartha et al., 「In vi
tro Plant Formation from Stem Explants of Rape」 Physiol. Plant, 31: 217-220 (19
74);S. Narasimhulu et al., 「Species Specific Shoot Regeneration Response of Co
tyledonary Explants of Brassicas,」 Plant Cell Reports (Spring 1988);E. Swanson
, 「Microspore Culture in Brassica,」 Methods in Molecular Biology, Vol. 6, Chap
ter 17, p. 159 (1990)。
理学的及び形態学的特質を有するアブラナ属植物を生産する、細胞を提供することである
。
離された細胞を含む組成物、又は植物の部分に作り上げられたそのような細胞のコレクシ
ョンを示す。組織培養物の例示的タイプは、植物又は植物の部分、例えば胚、花粉、花、
種子、長角果、葉、幹、根、根尖、葯、めしべ及びこれらに類するもの、が無損傷である
組織培養物を生じさせることができる、プロトプラスト、カルス、植物クランプ及び植物
細胞である。植物組織培養物を調製及び維持するための手段は、当該分野において周知で
ある。例としては、器官を構成する組織培養物を使用して、再生植物を生産が生産された
。米国特許第5,959,185号、同第5,973,234号及び同第5,977,4
45号には、一定の技術が記載されている。
ラナ植物を生産するための方法にも関し、この場合の第一又は第二の親アブラナ属植物は
、少なくとも1つの突然変異FAD遺伝子(すなわち、FAD2及び/又はFAD3)を
含むアブラナ属植物である。従って、本発明のカラシナ系列を使用するいずれのそのよう
な方法も、本発明:自家受粉、戻し交配、ハイブリッド生産、集団との交配及びこれらに
類するもの、の一部である。
本発明によるトランスジェニック植物を用いて、外来タンパク質を大量生産することが
できる。例えば、当該分野において十分に理解されている形質転換植物の選択及び繁殖技
術によって多数のトランスジェニック植物が得られ、それらを従来の様式で収穫し、その
後、関心のある組織から又は全バイオマスから外来タンパク質を抽出することができる。
植物バイオマスからのタンパク質の抽出は、例えば、Heney and Orr, Anal. Biochem. 11
4:92-6 (1981)により論じられている公知の方法によって、果たすことができる。
植物は、カノーラ植物である。もう1つの実施形態において、前記関心のあるバイオマス
は、種子である。より高い発現レベルを示す比較的少数のトランスジェニック植物につい
ては、主として、組み込まれたDNA分子の近似的染色体位置を特定する従来のRFLP
、PCR及びSSR分析により、遺伝地図を作製することができる。これに関しての例示
的方法論については、Glick and Thompson, Methods in Plant Molecular Biology and B
iotechnology, CRC Press, Boca Raton 269:284 (1993)を参照のこと。染色体位置に関す
る地図情報は、対象トランスジェニック植物の所有権保護に有用である。無許可の繁殖が
企てられ、他の生殖質との交配種が作られた場合、組み込み領域の前記地図と疑わしい植
物についての類似の地図とを比較して、後述の疑わしい植物が前記対象植物と共通の系統
図を有するかどうかを判定することができる。地図比較は、ハイブリダイゼーション、R
FLP、PCR、SSR及びシークエンシング(これらのすべてが従来の技術である)を
伴うだろう。
きる。より詳細には、植物を遺伝子工学で作り変えて、農業実用的関心のある様々な表現
型を発現させることができる。この事項に関与する例示的遺伝子としては、下に類別する
ものが挙げられるが、それらに限定されない:
A.植物耐病性遺伝子。植物防御は、植物中の耐病性遺伝子(R)と病原体中の対応す
る非病原性(Avr)遺伝子の産物との特異的相互作用によって活性化されることが多い
。クローニングされた耐性遺伝子で植物品種を形質転換させて、特定の病原株に対して耐
性である植物を遺伝子工学で作ることができる。例えば、Jones et al., Science 266:78
9 (1994) (cloning of the tomato Cf-9 gene for resistance to Cladosporium fulvum)
;Martin et al., Science 262:1432 (1993) (tomato Pto gene for resistance to Pseu
domonas syringae pv. tomato encodes a protein kinase);Mindrinos et al., Cell 78
:1089 (1994) (Arabidopsis RSP2 gene for resistance to Pseudomonas syringae)を参
照のこと。
T出願国際公開第96/30517号;PCT出願国際公開第93/19181号を参照
のこと。
誘導体又はそれらをモデルにした合成ポリペプチド。例えば、Bt δ−エンドトキシン
遺伝子のクローニング及びヌクレオチド配列を開示しているGeiser et al., Gene 48:109
(1986)を参照のこと。さらに、δ−エンドトキシン遺伝子をコードするDNA分子は、
バージニア州、Manassasの米国微生物系統保存機関(American Type Culture Co
llection)から、例えばATCCアクセッション番号40098、67136、3199
5及び31998で購入することができる。
ン遺伝子のヌクレオチド配列を開示している、Van Damme et al., Plant Molec. Biol. 2
4:25 (1994)による開示を参照のこと。
照のこと。この出願は、害虫に対する殺幼虫剤としてのアビジン及びアビジン相同体の使
用を教示している。
阻害剤。例えば、Abe et al., J. Biol. Chem. 262:16793 (1987)(米システインプロテ
イナーゼ阻害剤のヌクレオチド配列);Huub et al., Plant Molec. Biol. 21: 985 (199
3)(タバコプロテイナーゼ阻害剤IをコードするcDNAのヌクレオチド配列);Sumita
ni et al., Biosci. Biotech. Biochem. 57:1243 (1993)(ストレプトマイセス・ニトロ
スポレウス (Streptomyces nitrosporeus)アルファ−アミラーゼ阻害剤のヌクレオチド
配列);及び米国特許第5,494,813号(Hepher及びAtkinson、1
996年2月27日発行)を参照のこと。
それらの変異体、それらに基づく模倣剤又はそれらのアンタゴニスト若しくはアゴニスト
。例えば、クローニングされた幼虫ホルモンエステラーゼ、幼虫ホルモンの不活性化因子
、のバキュロウイルス発現についての、Hammock et al., Nature 344:458 (1990)による
開示を参照のこと。
又は神経ペプチド。例えば、Regan, J. Biol. Chem. 269:9 (1994)(発現クローニングに
より、昆虫利尿ホルモン受容体をコードするDNAが生じる);及びPratt et al., Bioc
hem. Biophys. Res. Comm. 163:1243 (1989)(アロスタチン(allostatin)が胎生ゴキブ
リ(Diploptera puntata)において同定される)の開示を参照のこと。昆虫特異的、麻痺
性神経毒をコードする遺伝子を開示している、Tomalskiらの米国特許第5.26
6,317号も参照のこと。
虫毒ペプチドをコードする遺伝子の植物における異種発現の開示について、Pang et al.,
Gene 116:165 (1992)を参照のこと。
イド誘導体、又は殺虫活性を有する別の非タンパク質分子の過剰蓄積の原因となる酵素。
あろうと、合成のものであろうと、糖分解酵素、タンパク質分解酵素、脂質分解酵素、ヌ
クレアーゼ、シクラーゼ、トランスアミナーゼ、エステラーゼ、ヒドロラーゼ、ホスファ
ターゼ、キナーゼ、ホスホリラーゼ、ポリメラーゼ、エラスターゼ、キチナーゼ及びグル
カナーゼ。カラーゼ(callase)遺伝子のヌクレオチド配列を開示している、Scott
らの名義のPCT出願国際公開第93/02197号を参照のこと。キチナーゼをコード
する配列を含有するDNA分子は、例えば、ATCCからアクセッション番号39637
及び67152で入手することができる。タバコスズメガ・キチナーゼをコードするcD
NAのヌクレオチド配列を教示している Kramer et al., Insect Biochem. Molec. Biol.
23:691 (1993)、及びパセリubi4−2ポリユビキチン遺伝子のヌクレオチド配列を提
供している Kawalleck et al., Plant Molec. Biol. 21:673 (1993)も参照のこと。
クレオチド配列についての Bottela et al., Plant Molec. Biol. 24:757 (1994)による
開示;及びトウモロコシカルモジュリンcDNAクローンのヌクレオチド配列を提供して
いる Griess et al., Plant Physiol. 104:1467 (1994)を参照のこと。
原体を阻害するタキプレシン(Tachyplesin)のペプチド誘導体の開示)及びPCT出願
国際公開第95/18855号(耐病性を付与する合成抗微生物ペプチドを教示している
)を参照のこと。
β、トランスジェニックタバコ植物をシュードモナス・ソラナセアラム(Pseudomonas so
lanacearum)に対して耐性にする溶菌ペプチド類似体、の異種発現についてのJaynes et
al., Plant Sci. 89:43 (1993)を参照のこと。
えば、形質転換植物細胞におけるウイルスコートタンパク質の蓄積は、そのコートタンパ
ク質遺伝子が由来するウイルスにより及び関連ウイルスにより果たされるウイルス感染症
及び/又はウイルス性疾患発現に対する耐性をもたらす。Beachy et al., Ann. Rev. Phy
topathol. 28:451 (1990)を参照のこと。形質転換植物に対して、アルファルファモザイ
クウイルス、キュウリモザイクウイルス、タバコ条斑ウイルス、ジャガイモXウイルス、
ジャガイモYウイルス、タバコエッチ病ウイルス、タバコ茎えそウイルス及びタバコモザ
イクウイルスに対するコートタンパク質媒介耐性が付与される。同上。
代謝機能を標的にする抗体は、作用を受けた酵素を不活性化して、昆虫を殺すだろう。Ta
ylor et al., Abstract #497, Seventh Int'l Symposium on Molecular Plant-Microbe I
nteractions (Edinburgh, Scotland) (1994)(一本鎖抗体フラグメントの生産によるトラ
ンスジェニックタバコにおける酵素的不活性化)を参照のこと。
物をウイルス攻撃から防護することを示している、Tavladoraki et al., Nature 366:469
(1993)を参照のこと。
タンパク質。例えば、真菌エンドα−1,4−D−ポリガラクツロナーゼは、植物細胞壁
ホモ−α−1,4−D−ガラクツロナーゼを可溶化することにより、真菌コロニー形成及
び植物栄養放出を助長する。Lamb et al., Bio/Technology 10:1436 (1992)を参照のこと
。豆エンドポリガラクツロナーゼ阻害タンパク質をコードする遺伝子のクローニング及び
特性づけは、Toubart et al., Plant J. 2:367 (1992)により記載されている。
/Technology 10:305 (1992)には、大麦リボソーム不活性化遺伝子を発現するトランスジ
ェニック植物が、増加された耐真菌病性を有することが示されている。
A.成長点又は分裂組織を阻害する除草剤、例えばイミダゾリノン又はスルホニル尿素
。このカテゴリーの中の例示的遺伝子は、例えば、Lee et al., EMBOJ. 7:1241 (1988)及
び Miki et al., Theor. Appl. Genet. 80:449 (1990)によってそれぞれ記載されている
ような突然変異体ALS及びAHASをコードする。
ンターゼ(EPSP)遺伝子(組換え核酸の誘導、及び/又は天然EPSP遺伝子の様々
な形態のインビボ突然変異誘発による)、aroA遺伝子及びグリホサートアセチルトラ
ンスフェラーゼ(GAT)遺伝子、それぞれによって付与される耐性)、他のホスホノ化
合物、例えばグルホシナート(ストレプトマイセス・ハイグロスコピカス(Streptomyces
hygroscopicus)及びストレプトマイセス・ビリジクロモゲン(Streptomyces viridichr
omogenes)をはじめとするストラプトマイセス種からのホスフィノトリシンアセチルトラ
ンスフェラーゼ(PAT)遺伝子)、並びにピリジノキシ又はフェノキシプロピオン酸及
びシクロヘキサノン(ACCアーゼ阻害剤をコードする遺伝子)。例えば、植物にグルホ
サート耐性を付与することができる形態のEPSPのヌクレオチド配列を開示している、
Shahらの米国特許第4,940,835号及びBarryらの米国特許第6,248
,876号を参照のこと。突然変異体aroA遺伝子をコードするDNA分子は、ATC
Cアクセッション番号39256で入手することができ、及びその突然変異遺伝子のヌク
レオチド配列は、Conamiの米国特許第4,769,061号に開示されている。K
umadaらの欧州特許出願第0 333 033号及びGoodmanらの米国特許第
4,975,374号には、L−ホスフィノトリシンなどの除草剤に対する耐性を付与す
るグルタミンシンセターゼ遺伝子のヌクレオチド配列が開示されている。PAT遺伝子の
ヌクレオチド配列は、Leemanらの欧州特許第0 242 246号に提供されてお
り、DeGreef et al., Bio/Technology 7:61 (1989)には、PAT活性をコードするキメラ
bar遺伝子を発現するトランスジェニック植物の生産が記載されている。フェノキシプ
ロピオン酸及びシクロヘキサノン、例えばセトキシジム及びハロキシホップ、に対する耐
性を付与する遺伝子の例は、Marshall et al., Theor. Appl. Genet. 83:435 (1992)によ
って記載されている、Acc1−S1、Acc1−S2及びAcc1−S3遺伝子である
。グリホサート耐性を付与することができるGAT遺伝子は、Castleらの国際公開
第2005012515号に記載されている。2,4−D、fop、及びピリジルオキシ
オーキシン除草剤に対する耐性を付与する遺伝子は、国際公開第2005107437号
及び米国特許出願番号第11/587,893号(両方ともDow AgroScien
ces LLCに譲渡された)に記載されている。
ンゾニトリル(ニトリラーゼ遺伝子)。Przibila et al., Plant Cell 3:169 (1991)には
、突然変異体psbA遺伝子をコードするプラスミドでのクラミドモナス属(Chlamycomo
nas)の形質転換が記載されている。ニトリラーゼ遺伝子についてのヌクレオチド配列は
、Stalkerらの米国特許第4,810,648号に開示されており、及びこれらの
遺伝子を含有するDNA分子は、ATCCアクセッション番号53435、67441及
び67442で入手できる。グルタチオンS−トランスフェラーゼをコードするDNAの
クローニング及び発現は、Hayes et al., Biochem. J. 285:173 (1992)により記載されて
いる。
:
A.例えばステアリル−ACPデサチュラーゼのアンチセンス遺伝子で植物を形質転換
させてその植物のステアリン酸含有量を増加させることによる、修飾脂肪酸代謝。Knultz
on et al., Proc. Natl. Acad. ScL U.S.A. 89:2624 (1992)を参照のこと。
加えることとなるフィテート破壊を増進するフィターゼをコードする遺伝子の導入。例え
ば、クロコウジカビ(Aspergillus niger)フィターゼ遺伝子のヌクレオチド配列の開示
については、Van Hartingsveldt et al., Gene 127:87 (1993)を参照のこと。2)フィテ
ート含有量を低減した遺伝子を導入することができるだろう。例えばトウモロコシの場合
、低いフィチン酸レベルを特徴とするトウモロコシ突然変異体の原因となる単一アレルに
関連したDNAをクローニングし、その後、再導入することにより、これを果たすことで
きるだろう。Raboy et al., Maydica 35:383 (1990)を参照のこと。
転換することによってもたらされる、修飾炭水化物組成物。Shiroza et al., J. Bacteri
ol. 170:810 (1988)(連鎖球菌(Streptococcus)突然変異体フルクトシルトランスフェ
ラーゼ遺伝子のヌクレオチド配列)、Steinmetz et al., Mol. Gen. Genet. 20:220 (198
5)(枯草菌(Bacillus subtilis)レバンスクラーゼ遺伝子のヌクレオチド配列)、Pen e
t al., Bio/Technology 10:292 (1992)(バチルス・リケニフォルミス(Bacillus lichen
ifonnis)α−アミラーゼを発現するトランスジェニック植物の生産)、Elliot et al.,
Plant Molec. Biol. 21: 515 (1993)(トマトインベルターゼ遺伝子のヌクレオチド配列
)、Sogaard et al., J. Biol. Chem. 268:22480 (1993)(大麦α−アミラーゼ遺伝子の
部位特異的突然変異誘発)、及びFisher et al., Plant Physiol. 102:1045 (1993)(ト
ウモロコシ内乳デンプン分枝酵素II)を参照のこと。
発明の範囲内で多くの改変及び変更を加えることができる。そのような変更は、公知の等
価物で本発明の任意の態様を置換して実質的に同じ方法で同じ結果を達成することを含む
。数値範囲は、その範囲を定義する数値を含む。本発明は、実質的に上で説明したような
並びに実施例及び図に関しての、すべての実施形態及び変形形態を含む。
Claims (24)
- 種子が、少なくとも70.0重量%オレイン酸及び5.0重量%未満リノレン酸を含む
内因性脂肪酸含有量を有する、カラシナ(Brassica juncea)植物。 - 種子が、3.0重量%未満のリノレン酸を含む内因性脂肪酸含有量を有する、請求項1
に記載のカラシナ植物。 - 種子が、70.0重量%から85.0重量%オレイン酸を含む内因性脂肪酸含有量を有
する、請求項1に記載のカラシナ植物。 - 種子が、70.0重量%から85.0重量%オレイン酸及び3.0重量%未満のリノレ
ン酸を含む内因性脂肪酸含有量を有する、請求項1に記載のカラシナ植物。 - 請求項1に記載のカラシナ植物の種子から抽出される内因性の油であって、前記種子が
、少なくとも70.0重量%オレイン酸及び5.0重量%未満リノレン酸を含む内因性脂
肪酸含有量を有するものである油。 - 70.0%から85.0%オレイン酸を含む脂肪酸含有量を有する、請求項5に記載の
油。 - 3.0重量%未満リノレン酸を含む内因性脂肪酸含有量を有する、請求項5に記載の油
。 - 70.0重量%から85.0重量%オレイン酸を含む内因性脂肪酸含有量を有する、請
求項5に記載の油。 - 70.0重量%から85.0重量%オレイン酸及び3.0重量%未満リノレン酸を含む
内因性脂肪酸含有量を有する、請求項5に記載の油。 - 少なくとも70.0重量%オレイン酸及び5.0重量%未満リノレン酸の脂肪酸含有量
を含む全抽出可能油を有する、請求項1に記載の種子。 - 70.0重量%から85.0重量%のオレイン酸含有量及び0.1重量%から3.0重
量%のリノレン酸含有量を含む全抽出可能油を有する、請求項10に記載の種子。 - 突然変異fad2遺伝子を含有する、請求項1に記載のカラシナ植物。
- 突然変異fad3遺伝子を含有する、請求項1に記載のカラシナ植物。
- 少なくとも70,0重量%オレイン酸及び5.0重量%未満リノレン酸を含む脂肪酸含
有量を有する、カラシナ品種の種子中の油。 - 種子が、少なくとも70,0重量%オレイン酸及び5.0重量%未満リノレン酸を含む
内因性脂肪酸含有量を有する、カラシナ植物を生産する方法であって、
突然変異fad2a核酸配列、突然変異fad2b核酸配列、突然変異fad3a核酸
配列、突然変異fad3a核酸配列及び突然変異fad3b核酸配列からなる群より選択
される1つ又はそれ以上の核酸配列を、従来の交配法により、前記カラシナ植物に導入す
ることを含む方法。 - 少なくとも70,0重量%オレイン酸及び5.0重量%未満リノレン酸を含む内因性脂
肪酸含有量を有するカラシナ植物の種子からのミール。 - 粉砕種子、プレスケーキ、ホワイトフレーク、又は従来の粉砕及び溶媒抽出プロセスか
らのミールの形態のものである、請求項16に記載のカノーラミール。 - カラシナ植物からの種子であって、従来の育種法によって前記カラシナ植物に導入した
遺伝子である、Brassica aa及び/又はBrassica bbゲノムの1つ
又はそれ以上のゲノム成分からの1つ又はそれ以上の非組換えfad2及びfad3遺伝
子が組み込まれているものであり、少なくとも70.0重量%オレイン酸及び5.0重量
%未満リノレン酸を含む脂肪酸含有量を有する油を生産するものである種子。 - 前記1つ又はそれ以上の非組換えfad2及びfad3遺伝子が組み込まれている種子
であって、少なくとも70.0重量%オレイン酸及び5.0重量%未満リノレン酸を含む
脂肪酸含有量を有する油を生産するものである種子を生産する後代植物である、請求項2
0に記載の種子の少なくとも1つから生産される後代植物の一又はそれ以上の世代。 - 少なくとも70.0重量%オレイン酸及び5.0重量%未満リノレン酸を含む脂肪酸含
有量を有する種子油である、非トランスジェニックカラシナ植物の作物の種子において生
産される種子油。 - カラシナの作物であって、該作物全体を通して、平均して、少なくとも70.0重量%
オレイン酸及び5.0重量%未満リノレン酸である内因性油含有量を有する種子を生産す
るものであるカラシナの作物。 - 請求項21に記載の作物の種子の少なくとも1つから得られる後代作物の一又はそれ以
上の世代。 - カラシナ栽培品種であって、該作物全体を通して、平均して、少なくとも70.0重量
%オレイン酸及び5.0重量%未満リノレン酸である内因性油含有量を有する種子を生産
するものであるカラシナ栽培品種。 - 請求項23に記載のカラシナ栽培品種をアブラナ属(Brassica)種の植物と交配するこ
とによって生産される脂肪種子植物。
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