JP2015145351A - 新規なペプチド誘導体及びこれを含有する医薬 - Google Patents

Abstract

【課題】優れたホルモン製剤として、またはホルモン感受性癌の予防・治療及び転移抑制剤として、より作用の強いキスペプチン剤を提供すること。【解決手段】ＡＭレジンの一つである４−（２’，４’−ジメトキシフェニル−Ｆｍｏｃ−アミノメチル）−フェノキシレジンを固相担体としてペプチドを合成し、ペプチド中の各アミノ酸の側鎖の保護基のうち、Ｓｅｒ側鎖の水酸基の保護基であるトリフェニルメチル基を、１％トリフルオロ酢酸を用いて除去し、前記保護基の除去後のＳｅｒ側鎖の水酸基に、オクタン酸及びＷＳＣＩを作用させることで選択的にアシル化し、Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｔｒｐ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ（ＣＯＲ）−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ２、及びＳｅｒ（ＣＯＲ）−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ２（Ｒは炭素数１−２０の置換又は非置換の直鎖状若しくは分枝状のアルキル基である）からなるキスペプチン剤を作製した。【選択図】なし

Description

本発明は、（ａ）Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｔｒｐ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ（ＣＯＲ）−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２（化合物番号１）、（ｂ）Ｓｅｒ（ＣＯＲ）−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２（化合物番号２）、（ただし、上記Ｒは炭素数１−２０の置換又は非置換の直鎖状若しくは分枝状のアルキル基である）から選択されるペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物に関する。

ヒト・メラノーマ細胞より同定されたがん転移抑制遺伝子のＫＩＳＳ１遺伝子［非特許文献１］を始原とするＫＩＳＳ１遺伝子産物は、１４５個のアミノ酸からなり、フーリン（furin）やホルモン前駆体変換酵素などによって分割され、５４個のアミノ酸からなるキスペプチン（キスペプチン−５４）を形成する。キスペプチンと同時期にヒト胎盤から同定された、ＫＩＳＳ１遺伝子を起源とするがん転移抑制物質のメタスチン［非特許文献２］［特許文献１］は、キスペプチンと同一物質として知られる。キスペプチンとメタスチンは共に、低ゴナドトロピン性性腺低形成症患者において遺伝子変異が見つかったＧタンパク質共役受容体５４（ＧＰＲ５４）に対するリガンドであり、カルボキシ末端（Ｃ末端）側で切断されたＫｉＳＳ−１遺伝子産物のＣ末端がアミド化された５４アミノ酸ペプチドである［非特許文献３］。

キスペプチンは、脊椎動物脳内のおもに視床下部にある神経細胞、及び下垂体がつくるペプチドホルモンの一種であり、性腺刺激ホルモン放出ホルモン（ＧｎＲＨ）を分泌する神経細胞や、黄体形成ホルモン（ＬＨ）を分泌する下垂体前葉細胞を刺激する作用が報告されている［非特許文献４］。

キスペプチン−５４は、更に短いアミノ酸配列をとるキスペプチン−１０などに分割され、Ｃ末端側の１０個のアミノ酸からなるペプチド（キスペプチン−１０）が、キスペプチンの生理効果をもたらすとされるコア部分であると考えられている。ヒトのキスペプチン−５４及びキスペプチン−１０はいずれもＣ末端に共通の−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−ＮＨ_２（ＲＦ−ＮＨ_２）構造を有するが、ラット、マウスなどのげっ歯類、ウシ、ヤギ、ヒツジといった反芻動物、並びにブタを含めた家畜のキスペプチン−５４及びキスペプチン−１０は、いずれもＣ末端に−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２（ＲＹ−ＮＨ_２）構造を有する［非特許文献３，５］。また、ヒトと上記動物間のアミノ酸置換（Ｔｙｒ→Ｐｈｅ）は、キスペプチンのゴナドトロピン分泌促進作用に影響を与えないことも明らかとなっており、従って、キスペプチン−１０やその類縁ペプチドが、種を超えた生殖制御を可能とするホルモン製剤としても有用と考えられる［非特許文献５］。

生殖を司る内因性神経ペプチドのキスペプチンは、家畜の繁殖をコントロールする製剤として利用しうる。乳用牛及び肉用牛の生産現場では、人工授精対象牛の微弱発情や、それにともなう交配適期の見逃しなどによる受胎成績の低下、またブタの場合は、雄ブタを許容しない雌ブタの鈍性発情や発情の見落としにより、交配適期を逸し、結果的に受胎不成立となることが、常態的な問題となっている。これまで報告されている種々の方法（プロスタグランジンＦ２αの反復投与、ウマ絨毛性性腺刺激ホルモン（ｅＣＧ又はＰＭＳＧ）とヒト絨毛性性腺刺激ホルモン（ｈＣＧ）の併用投与など）をもってしても確実な交配技術は確立されておらず、ウシやブタの発情同期化の難しさが生産性を高めるための障壁となっている［非特許文献５］。

近年のウシやブタの受胎成績低下の要因については、育種学的な改良によって高い泌乳量や急速な増体などの形質を優先してきた結果として、肝心の繁殖機能が低下した可能性が指摘されている。また、これまでウシやブタの発情同期化・過排卵処置に多用されてきたｅＣＧやｈＣＧなどの異種のホルモン製剤では、その反復投与によって抗体が作られ、結果的にホルモン製剤の効力が落ちてしまうという問題がある。上記に挙げた問題を解決するためには、種を超えた生殖制御を可能とするホルモン製剤の開発が必要である。

キスペプチンは、癌転移抑制作用を有することでも知られており、肺癌、胃癌、肝癌、膵癌、大腸癌、直腸癌、結腸癌、前立腺癌、卵巣癌、子宮頚癌、乳癌、腎癌、膀胱癌、脳腫瘍などの予防・治療、膵臓機能調節作用による膵臓疾患（急性または慢性膵炎、膵癌など）の予防・治療、胎盤機能調節作用による絨毛癌、胞状奇胎、侵入奇胎、流産、胎児の発育不全、糖代謝異常、脂質代謝異常または分娩異常の予防・治療に有効であるとの報告がある［特許文献２］。

また、ホルモン感受性癌である前立腺癌に対する内分泌療法において、ＧｎＲＨ受容体を持続的に刺激することで脱感作させ、その結果ＧｎＲＨの作用抑制により、精巣からの男性ホルモン分泌を防ぐ目的で、ＧＰＲ５４アゴニスト（作動薬）が従来的に使用されている。この様な背景から、新規ＧＰＲ５４アゴニスト創薬の分野では、ＴＡＫ−４４８（［Ａｃ］［Ｄ］Ｔｙｒ−Ｈｙｐ−Ａｓｎ−Ｔｈｒ−Ｐｈｅ−［ａｚａ］Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ［Ｍｅ］−Ｔｒｐ−ＮＨ２）を代表とする［非特許文献６］キスペプチン誘導体の開発及び臨床試験が進められている。

他にも、ＧＰＲ５４のアゴニスト及びアンタゴニスト（拮抗薬）として、ヒトのキスペプチン−１０及びキスペプチン−６のＮ末端をアセチル化した例は、過去に報告されているが［非特許文献７］、ｎ−オクタン酸でアシル化修飾されたＧＰＲ５４アゴニストであるキスペプチン誘導体の例はない。

セリン残基がｎ−オクタン酸でアシル化修飾された構造を有する他のペプチドホルモンとしては、成長ホルモン分泌促進ペプチドのグレリン（ghrelin）が、胃から単離されているものの、ｎ−オクタノイル化された他の天然ペプチドは、哺乳類でこれまで見出されていない［非特許文献８］。同定された上記グレリンは、求心性の迷走神経に作用し、その情報が視床下部に到達、摂食を促進させることが知られている。一方、視床下部の神経細胞が分泌するキスペプチンを、合成的にｎ−オクタノイル化させたペプチドが、下垂体前葉細胞を刺激しＬＨを分泌させるという知見はない。

キスペプチンをはじめとする生理活性ペプチドは、一般的に生体内において変性しやすく、また酵素によって容易に分解され、安定性が低い。よってペプチド製剤を使用する場合、充分な薬理効果を得るためには、高投与量かつ長期間投与が必要となるが、主な投与法である注射を頻繁に施すと侵襲性が問題となる。従って、より生理活性の高いキスペプチンが臨床的有用性を秘めていることから、種や投与回数などに制約のない、優れたホルモン製剤として、より作用の強いキスペプチン剤の開発が望まれている。

ＷＯ０２／０８５３９９Ａ１号公報 特許第４８０４７１４号公報

Lee JH, et al, J Natl Cancer Inst. 1996 Dec 4；88(23)1731-7. Ohtaki T, et al, Nature. 2001 May 31;411(6837):613-7. 小澤一史ほか, 顕微鏡 2011 Vol.46, No.2:111-118. Gottsch ML, et al, Endocrinology. 2004 Sep;145(9):4073-7. 大蔵聡ほか， 日本産業動物獣医学会誌 2011 Vol.64 39-44. Matsui H, et al, Neuroendocrinology. 2013 Dec 17. [Epub ahead of print] Roseweir AK, et al, J Neurosci. 2009 Mar 25;29(12)3920-9. Kojima M, et al, Nature. 1999 Dec 9;402(6762)656-60.

本発明の課題は、家畜の繁殖において、発情同期化・過排卵処置に多用されてきた異種のホルモン製剤では、反復投与によって抗体が作られ、結果的に製剤の効力が低下してしまうという問題があったことに鑑み、この問題に対する優れたホルモン製剤として、またはホルモン感受性癌の予防・治療及び転移抑制剤として、より作用の強いキスペプチン剤を提供することにある。

本発明者らは、上記課題を解決すべく鋭意検討する中で、キスペプチンの活性中心である構成アミノ酸を特定の修飾基で修飾することにより、ウシ下垂体前葉細胞からのＬＨ分泌量の指標において、予想外にも天然型キスペプチンより優れた生理活性を示すペプチド誘導体を見いだし、本発明を完成するに至った。

すなわち、本発明は以下の通りのものである。
（１）（ａ）Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｔｒｐ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ（ＣＯＲ）−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２（化合物番号１）；（ｂ）Ｓｅｒ（ＣＯＲ）−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２（化合物番号２）；（ただし、上記Ｒは炭素数１−２０の置換又は非置換の直鎖状若しくは分枝状のアルキル基である）から選択されるペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物。
（２）Ｒが、ｎ−ペンチル基、ｎ−ヘキシル基、ｎ−ヘプチル基、ｎ−オクチル基及びｎ−ノニル基から選ばれるアルキル基である上記（１）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物。
（３）上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物を有効成分とする医薬。
（４）上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物を有効成分とする性腺刺激ホルモン放出ホルモン及び黄体形成ホルモン分泌促進剤。
（５）上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物を有効成分とする家畜用繁殖制御剤。
（６）上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物を有効成分とする、若年性更年期障害、月経異常、排卵障害、不妊症、生殖機能異常、子宮内膜症、癌転移、ホルモン感受性癌の予防及び／又は治療剤。

また、本発明の他の態様として以下のものを例示することができる。
上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物の、医薬を調製のための使用。
上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物の、性腺刺激ホルモン放出ホルモン及び黄体形成ホルモン分泌促進剤を調製のための使用。
上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物の、家畜用繁殖制御剤を調製のための使用。
上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物の、若年性更年期障害、月経異常、排卵障害、不妊症、生殖機能異常、子宮内膜症、癌転移、ホルモン感受性癌の予防及び／又は治療剤を調製のための使用。
上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物の有効量を対象に投与する疾病の治療方法。
上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物の有効量を対象に投与する性腺刺激ホルモン放出ホルモン及び黄体形成ホルモンの分泌促進方法。
上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物の有効量を家畜に投与する繁殖制御方法。
上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物の有効量を対象に投与する若年性更年期障害、月経異常、排卵障害、不妊症、生殖機能異常、子宮内膜症、癌転移、ホルモン感受性癌の予防及び／又は治療方法。
疾病の治療に用いるための上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物。
性腺刺激ホルモン放出ホルモン及び黄体形成ホルモンの分泌促進に用いるための上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物。
家畜の繁殖制御に用いるための上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物。
若年性更年期障害、月経異常、排卵障害、不妊症、生殖機能異常、子宮内膜症、癌転移、ホルモン感受性癌の予防及び／又は治療に用いるための上記（１）又は（２）記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物。

本発明による、より生理活性の強いキスペプチン剤を用いることで、家畜の繁殖における交配技術の向上、またはホルモン感受性癌の予防・治療及び転移抑制が期待される。具体的には、発情同期化・過排卵処置に多用されてきた、異種ホルモン製剤の反復投与による、好ましくない免疫反応の誘発や、結果としておこるホルモン製剤の効力低下を回避することが可能となり、より侵襲性が低く、かつ、畜種や投与回数などに制約のない、優れたホルモン処置プログラムやホルモン製剤の開発が可能となる。

様々な修飾条件下キスペプチン刺激による、培養ウシ下垂体前葉細胞からのＬＨ分泌反応を指標としたキスペプチン活性評価の結果を示した図である。

本発明のペプチド誘導体としては、（ａ）化合物番号１に示す、Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｔｒｐ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ（ＣＯＲ）−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２、（ｂ）化合物番号２に示す、Ｓｅｒ（ＣＯＲ）−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２、から選択され、かかるペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物は、視床下部の神経細胞を刺激しＧｎＲＨの産生誘導活性を有し、且つ下垂体前葉細胞を刺激しＬＨの分泌を誘導するペプチドホルモンとして機能する。

上記ペプチド誘導体において、Ｒは炭素数１−２０の置換又は非置換の直鎖状若しくは分枝状のアルキル基である。具体的にはＲは、メチル基、エチル基、プロピル基、イソプロピル基、ｎ−ブチル基、イソブチル基、ｓｅｃ−ブチル基、ｔｅｒｔ−ブチル基、ｎ−ペンチル基、１-メチルブチル基、２-メチルブチル基、３-メチルブチル基、１，１-ジメチルプロピル基、１，２-ジメチルプロピル基、２，２-ジメチルプロピル基、３−ペンチル基、ｎ−ヘキシル基、１-メチルヘプチル基、２-メチルヘプチル基、３-メチルヘプチル基、４-メチルヘプチル基、１，１-ジメチルブチル基、１，２-ジメチルブチル基、１，３-ジメチルブチル基、２，２-ジメチルブチル基、２，３-ジメチルブチル基、３，３-ジメチルブチル基、３，３-ジメチルブタン−２−イル基、２，３-ジメチルブタン−２−イル基、３−ヘキシル基、２-エチルペンチル基、２-メチルペンタン−３−イル基、ヘプチル基、オクチル基、ノニル基、デシル基、ウンデシル基、ドデシル基、トリデシル基、テトラデシル基、ペンタデシル基、ヘキサデシル基、ヘプタデシル基、オクタデシル基、ノナデシル基、イコシル基等が挙げられる。本発明のペプチド誘導体において、Ｒとして、好ましくは置換又は非置換のｎ−ペンチル基、ｎ−ヘキシル基、ｎ−ヘプチル基、ｎ−オクチル基、及びｎ−ノニル基であり、より好ましくは非置換のｎ−ペンチル基、ｎ−ヘキシル基、ｎ−ヘプチル基、ｎ−オクチル基、及びｎ−ノニル基であり、さらに好ましくは非置換のｎ−ヘキシル基、ｎ−ヘプチル基、及びｎ−オクチル基であり、最も好ましくは非置換のｎ−ヘプチル基である。
Ｒの置換基としては、フッ素、塩素、臭素、ヨウ素等のハロゲン、ヒドロキシル基、チオール基、アミノ基、ニトロ基、シアノ基、Ｒ^１Ｏで表すことのできるアルコキシ基、Ｒ^２ＣＯで表すことのできるアシル基、Ｒ^３ＣＯ_２で表すことのできるアシルオキシ基、Ｒ^４Ｓで表すことのできるアルキルチオ基、Ｒ^５ＳＯで表すことのできるアルキルスルフィニル基、Ｒ^６ＳＯ_２で表すことのできるアルキルスルホニル基、Ｒ^７ＳＯ_３で表すことのできるアルキルスルホニルオキシ基、Ｒ^８ＮＨで表すことのできるアルキルアミノ基、Ｒ^８Ｒ^９Ｎで表すことのできるジアルキルアミノ基が挙げられる。ここでＲ^１〜Ｒ^９としては、上記Ｒと同様のアルキル基を用いることができる。Ｒ^１〜Ｒ^９として、好ましくは炭素数１〜３のアルキル基、さらに好ましくはメチル基である。

さらに本発明のペプチド誘導体には、化合物番号１及び／又は化合物番号２で表される化合物を構成するアミノ酸配列において、１〜３個、好ましくは１又は２個、特に好ましくは１個のアミノ酸が、欠失、置換、挿入又は付加したアミノ酸配列を有し、かつ、ＧｎＲＨ及びＬＨの分泌促進活性を有する化合物、より好ましくは、視床下部の神経細胞を刺激しＧｎＲＨの産生誘導活性を有し、且つ下垂体前葉細胞を刺激しＬＨの分泌を誘導するペプチドホルモンとして機能する化合物も便宜上含まれる。キスペプチン−１０（化合物番号３）のＣ末端アミノ酸であるＴｙｒや、Ｎ末端から２つ目に存在するＡｒｇ及びＬｅｕは、それぞれ置換及び／又は欠失しても活性が保たれることが知られており、本発明のペプチド誘導体においてもアミノ酸が部分的に置換及び／又は欠失したとても、構造が維持され、上記活性機能を依然として有すると考えられる。このようにアミノ酸が部分的に置換及び／又は欠失したペプチド誘導体としては、例えば化合物番号１に示すＴｙｒ−Ａｓｎ−Ｔｒｐ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ（ＣＯＲ）−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２のＣ末端のアミド化されたチロシン（−Ｔｙｒ−ＮＨ_２）が、アミド化されたフェニルアラニン（−Ｐｈｅ−ＮＨ_２）に置換された化合物や、化合物番号２に示すＳｅｒ（ＣＯＲ）−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２のアミド化されたチロシン（−Ｔｙｒ−ＮＨ_２）が、アミド化されたフェニルアラニン（−Ｐｈｅ−ＮＨ_２）に置換された化合物などを例示することができる。

本発明のペプチド誘導体において、ラット、マウスなどのげっ歯類、ウシ、ヤギ、ヒツジといった反芻動物、並びにブタを含めた家畜におけるキスペプチンの、Ｃ末端−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２（ＲＹ−ＮＨ_２）構造と、ヒトのＣ末端−Ａｒｇ−Ｐｈｅ−ＮＨ_２（ＲＦ−ＮＨ_２）構造との間のアミノ酸置換（Ｔｙｒ→Ｐｈｅ）は、キスペプチンのゴナドトロピン分泌促進作用に影響を与えないことから、本発明のペプチド誘導体の投与対象として、マウス、ラット、ハムスター、モルモット、ウサギ、ヤギ、ヒツジ、ロバ、ブタ、ウシ、ウマ、イヌ、ネコ、ニワトリ、サル、ヒト等を例示することができる。

本発明のペプチド誘導体を作製する方法としては特に制限されず、本発明のペプチド誘導体の母体となるペプチド（アミノ酸オリゴマー）の合成法としては、アミノ酸をアミド化により順次伸長する方法や、数個のアミノ酸からなるアミドセグメントを結合する方法がある。アミノ酸をアミド化により順次伸長する方法としては、例えば高分子にアミノ酸を結合させ、別のアミノ酸を結合させていく固相合成方法が挙げられる。また、有機化学的合成法の他にも、アミノ酸配列をコードしたＤＮＡ断片を組み込んだベクターを、大腸菌、酵母、昆虫細胞、哺乳動物細胞といった発現系を用いて合成させる、公知の遺伝子工学的ペプチド合成法に従って製造することもできる。
また、反応後は通常の精製法、たとえば、溶媒抽出・蒸留・カラムクロマトグラフィー・液体クロマトグラフィー・再結晶などの精製法を組み合わせて本発明のペプチドを精製単離することができる。上記方法で得られるペプチドが遊離体である場合は公知の方法によって適当な塩に変換することができ、逆に塩で得られた場合は、公知の方法によって遊離体に変換することができる。

以下に、固相合成法を用いた本発明のペプチドの合成法の一例を示す。

固相合成に用いる担体としては、固相合成法に用いることのできる担体であればいかなる担体を用いても良いが、通常は樹脂（レジン）にリンカーを介してペプチド鎖のＣ末端のカルボキシル基と結合することのできる担体を用いる。このような固相担体の代表的な例としてはＷａｎgレジン、ＡＭレジン、ＴＧＲレジン等を挙げることができるが、これらに限られるものではない。これらの担体が購入時等に膨潤していない状態であれば、合成に先立って膨潤させる必要がある。担体を膨潤させるための溶媒としては、担体がペプチド合成に用いることができる程度に膨潤する溶媒であれば、いかなる溶媒も用いることができるが、好ましくはＮ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）又はジクロロメタン（ＤＣＭ）である。膨潤した担体はろ過等により溶媒中から取り出すことができる。

固相合成に用いるアミノ酸としては、主鎖のアミノ基が９−フルオレニルメチルカルボニル（Ｆｍｏｃ）基又はｔ−ブトキシカルボニル（Ｂｏｃ）基で保護されているものが好ましいが、これらに限られるものではない。ペプチド合成後の担体からの切り出しが容易という点で、主鎖のアミノ基がＦｍｏｃ基で保護されたアミノ酸（以下、Ｆｍｏｃ−ＡＡ−ＯＨ、ただしＡＡは本発明のペプチド中のアミノ酸を示す、とも言う）が好ましい。またこの場合、アミノ酸の側鎖部位に、水酸基、チオール基、アミノ基、カルボキシル基等が存在する場合、これらの官能基はＦｍｏｃ基及びＢｏｃ基以外の保護基で保護されることが好ましい。このような保護基の導入については、Green&Wuts, “PROTECTIVE GROUPS in ORGANIC SYNTHESIS” 3^rded. John Wiley&Sons, Inc.を参照し、用いることができる。

担体へのＦｍｏｃ−Ｔｙｒ−ＯＨの導入は公知の方法で行うことができる。例えば、縮合剤としてカルボジイミド系縮合剤を用いる方法が挙げられる。前記カルボジイミド系縮合剤としてはジシクロヘキシルカルボジイミド（ＤＣＣ）、ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＰＣ）、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（ＷＳＣＩ）等を挙げることができる。また、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩を用いる際は、中和のために等量若しくは少過剰のアミンを加える必要がある。前記アミンとしては、トリエチルアミン、トリブチルアミン、ヒューニッヒ塩基等の第三級アミンが好ましく用いられる。反応に用いる溶媒としては、担体へアミノ酸を導入することができる限りいかなる溶媒を用いても良いが、ＤＣＭ、テトラヒドロフラン、トルエン等を用いることができ、好ましくはＤＣＭである。反応は、０℃〜溶媒の沸点までの反応温度で行うことができ、室温で反応させることが好ましい。前記反応では、通常触媒を用いられ、該触媒としてはピリジン、４−ジメチルアミノピリジン、４−ピロリジノピリジン等を用いることができる。上記反応によりＦｍｏｃ−Ｔｙｒが導入された担体は、ろ過等により溶媒中から取り出すことができる。

また、担体にＦｍｏｃ−Ｔｙｒが導入されたもの又はＢｏｃ−Ｔｙｒが導入されたものは、市販のものをもちいてもよい。このような保護されたＴｙｒが導入された担体は、渡辺化学工業株式会社、シグマアルドリッチ社等から購入することもできる。

以下、Ｆｍｏｃ−Ｔｙｒが導入された担体を例に本発明のペプチドの一般的な合成法を説明する。

＜Ｆｍｏｃの除去＞
Ｆｍｏｃ−Ｔｙｒが導入された担体を反応溶媒で膨潤させ、２級アミンを添加することによりＦｍｏｃ基を除去することができる。反応の進行は、Ｆｍｏｃ基の除去により発生する二酸化炭素の泡で確認することができる。前記反応溶媒としてはＤＭＦを用いることが好ましい。また、前記２級アミンとしては、通常ピペリジンが用いられるが、ピロリジン、ジエチルアミン、ジブチルアミン、ジイソプロピルアミン等を用いることもできる。上記反応は、０℃〜溶媒の沸点までの反応温度で行うことができ、室温で反応させることが好ましい。反応後の担体は、ろ過等により溶媒中から取り出すことができる。

＜ペプチド鎖の伸長＞
上記で得たＦｍｏｃを除去したＴｙｒが導入された担体を再度ＤＭＦに膨潤し、Ｆｍｏｃ−Ａｒｇ−ＯＨ、縮合剤、ヒューニッヒ塩基を添加し、ペプチド鎖の伸長を行う。前記縮合剤としては、Ｏ−（ベンゾトリアゾール−１−イル）−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラメチルウロニウムヘキサフルオロホスフェート（ＨＢＴＵ）、Ｏ−（ベンゾトリアゾール−１−イル）−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラメチルウロニウムテトラフルオロボラート（ＴＢＴＵ）、Ｏ−（ベンゾトリアゾール−１−イル）−Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラメチルウロニウムテトラフルオロボラート（ＴＢＴＵ）、１−［ビス（ジメチルアミノ）メチレン］−１Ｈ−１，２，３−トリアゾロ［４，５−ｂ］ピリジニウム ３−オキシド ヘキサフルオロホスフェート（ＨＡＴＵ）、１−ヒドロキシベンゾトリアゾール（ＨＯＢt）、１−ヒドロキシ−７−アザベンゾトリアゾール（ＨＯＡt）等を単独で又は混合して用いることができる。上記反応は、０℃〜溶媒の沸点までの反応温度で行うことができ、室温で反応させることが好ましい。ペプチド鎖の伸長は、Ｋａｉｓｅｒ試験により確認することができ、反応後の担体は、ろ過等により溶媒中から取り出すことができる。

上記、Ｆｍｏｃの除去及びペプチド鎖の伸長を、順次Ｌｅｕ、Ｇｌｙ、Ｐｈｅ、Ｓｅｒについて行うことにより、化合物番号２に示すペプチド鎖に対応するペプチドを合成することができる。また、さらに、Ｆｍｏｃの除去及びペプチド鎖の伸長を、順次Ａｓｎ、Ｔｒｐ、Ａｓｎ、Ｔｙｒについて行うことにより、化合物番号１に示すペプチド鎖に対応するペプチドを合成することができる。

合成したペプチド鎖は、担体からの切り出しの前にセリン残基の側鎖部位の水酸基をアシル化する。該アシル化に先立って、セリン残基の側鎖部位の水酸基の保護基を除去する。前記脱保護については、Green&Wuts, “PROTECTIVE GROUPS in ORGANIC SYNTHESIS” 3^rded. John Wiley&Sons, Inc.を参照し、用いることができる。

前記アシル化のための反応は、脂肪酸を用いて公知の方法で行うことができる。前記脂肪酸は、ＲＣＯＯＨ（Ｒは、上記で定めた通り。）である。

前記アシル化反応としては、例えば、縮合剤としてカルボジイミド系縮合剤を用いる方法が挙げられる。前記カルボジイミド系縮合剤としてはジシクロヘキシルカルボジイミド（ＤＣＣ）、ジイソプロピルカルボジイミド（ＤＩＰＣ）、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩（ＷＳＣＩ）等を挙げることができる。また、１−エチル−３−（３−ジメチルアミノプロピル）カルボジイミド塩酸塩を用いる際は、中和のために等量若しくは少過剰のアミンを加える必要がある。前記アミンとしては、トリエチルアミン、トリブチルアミン、ヒューニッヒ塩基等の第三級アミンが好ましく用いられる。反応に用いる溶媒としては、担体へアミノ酸を導入することができる限りいかなる溶媒を用いても良いが、ＤＣＭ、テトラヒドロフラン、トルエン、ピリジン等を用いることができ、好ましくはＤＣＭである。反応は、０℃〜溶媒の沸点までの反応温度で行うことができ、室温で反応させることが好ましい。前記反応では、通常触媒を用いられ、該触媒としてはピリジン、４−ジメチルアミノピリジン、４−ピロリジノピリジン等を用いることができる。上記反応によりアシル基が導入されたペプチドが結合した担体は、ろ過等により溶媒中から取り出すことができる。

アシル化後のペプチドは、公知の方法で担体から切り出すことができる。例えば、ペプチドの切り出しはトリフルオロ酢酸等の強酸を用いて行う。この際、ペプチド中の各アミノ酸の側鎖の保護基の除去が同時に行われても良い。ペプチド中の各アミノ酸の側鎖の保護基の除去が同時に行われる場合、副反応を抑制する目的で、トリイソプロピルシラン及び／又はエタンジチオールを添加しても良い。ただし、切り出し後にＣ末端カルボン酸のアミド化を行う必要があるため、この時点でアミノ酸の側鎖のカルボン酸の保護基が除去されることは望ましくない。前記ペプチドの担体からの切り出しは、通常水中で行われ、反応温度は４℃〜室温が好ましい。
ペプチドをレジンから切り出した後に、ペプチドのＣ末端のカルボン酸の第１級アミド化を行う。前記アミド化は、公知の方法で行うことができるが、例えば、４−（４，６−ジメトキシ−１，３，５−トリアジン−２−イル）−４−メチルモルホリニウム 塩酸塩 ｎ−水和物とアンモニアの溶液を用いる方法が挙げられる。前記、アンモニアの溶液としては、第１級アミドが製造される限り、いかなるアンモニア溶液を用いても構わないが、アンモニアのアルコール溶液を用いることが好ましい。
前記Ｃ末端のカルボン酸の第１級アミド化後に、必要であればペプチド中の各アミノ酸の保護基の除去を行う。前記保護基の除去については、Green&Wuts, “PROTECTIVE GROUPS in ORGANIC SYNTHESIS” 3^rd ed. John Wiley&Sons, Inc.を参照し、用いることができる。

本発明のペプチド誘導体の塩としては、薬理学的に許容される有機酸塩、金属塩、アンモニウム塩、有機アミン付加塩などが挙げられる。

上記本発明のペプチド誘導体の有機酸塩としては、具体的には酢酸塩、２，２−ジクロロ酢酸塩、トリフルオロ酢酸塩、アシル化したアミノ酸の塩、アジピン酸塩、アルギン酸塩、アスコルビン酸塩、Ｌ−アスパラギン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、安息香酸塩、４−アセトアミド安息香酸塩、ホウ酸塩、（＋）−ショウノウ酸塩、カンファースルホン酸塩、カプリン酸塩、カプロン酸塩、カプリル酸塩、ケイ皮酸塩、クエン酸塩、シクラミン酸塩、シクロヘキサンスルファミン酸塩、ドデシル硫酸塩、エタン−１，２−ジスルホン酸塩、エタンスルホン酸塩、２−ヒドロキシ−エタンスルホン酸塩、ギ酸塩、フマル酸塩、ガラクタル酸塩、ゲンチシン酸塩、グルコヘプトン酸塩、Ｄ−グルコン酸塩、Ｄ−グルクロン酸塩、Ｌ−グルタミン酸塩、α−オキソグルタル酸塩、グリコール酸塩、馬尿酸塩、臭化水素酸塩、塩酸塩、ヨウ化水素塩酸、（＋）−Ｌ−乳酸塩、（±）−ＤＬ−乳酸塩、ラクトビオン酸塩、ラウリン酸塩、マレイン酸塩、（−）−Ｌ−リンゴ酸塩、マロン酸塩、（±）−ＤＬ−マンデル酸塩、メタンスルホン酸塩、ナフタレン−２−スルホン酸塩、ナフタレン−１，５−ジスルホン酸塩、１−ヒドロキシ−２−ナフトエ酸塩、ニコチン酸塩、硝酸塩、オレイン酸塩、オロト酸塩、シュウ酸塩、パルミチン酸塩、パモ酸塩、過塩素酸塩、リン酸塩、Ｌ−ピログルタミン酸塩、サッカリン酸塩、サリチル酸塩、４−アミノサリチル酸塩、セバシン酸塩、ステアリン酸塩、コハク酸塩、硫酸塩、タンニン酸塩、（＋）−Ｌ−酒石酸塩、チオシアン酸塩、ｐ−トルエンスルホン酸塩、ウンデシレン酸塩、吉草酸等塩が挙げられる。

上記有機酸塩の他にも、本発明のペプチド誘導体の塩としては、リチウム、ナトリウム、カリウムなどの各アルカリ金属塩、マグネシウム、カルシウムなどの各アルカリ土類金属塩、アルミニウム、亜鉛などの各金属塩；Ｌ−アルギニン、ベネタミン、ベンザチン、コリン、デアノール、ジエタノールアミン、ジエチルアミン、ジメチルアミン、ジプロピルアミン、ジイソプロピルアミン、２−（ジエチルアミノ）−エタノール、エタノールアミン、エチルアミン、エチレンジアミン、イソプロピルアミン、Ｎ−メチル−グルカミン、ヒドラバミン、１Ｈ−イミダゾール、Ｌ−リジン、モルフォリン、４−（２−ヒドロキシエチル）−モルフォリン、メチルアミン、ピペリジン、ピペラジン、プロピルアミン、ピロリジン、１−（２−ヒドロキシエチル）−ピロリジン、ピリジン、キヌクリジン、キノリン、イソキノリン、トリエタノールアミン、トリメチルアミン、トリエチルアミン、Ｎ−メチル−Ｄ−グルカミン、２−アミノ−２−（ヒドロキシメチル）−１，３−プロパンジオール、及びトロメタミンを含む、第一級、第二級、第三級、若しくは第四級の脂肪族又は芳香族アミンの塩が挙げられる。

本発明の医薬の有効成分としては、化合物番号１及び／又は化合物番号２で表される化合物の溶媒和物や結晶多形も含まれる。ここで溶媒和物とは、非共有結合分子間力によって結合した化学量論的又は非化学量論的な量の溶媒をさらに含む、本発明の化合物又はその塩を指す。溶媒が水である場合、溶媒和物は水和物である。

本発明の医薬は、当業者に公知の方法で製剤化することができる。例えば、薬学的に許容しうる担体もしくは媒体、具体的には、滅菌水や生理食塩水、植物油、乳化剤、懸濁剤、界面活性剤、安定剤、香味剤、賦形剤、防腐剤、結合剤などと適宜組み合わせて、一般に認められた製薬実施に要求される単位用量形態で混和することによって製剤化された、医薬組成物であってもよい。

前記医薬組成物において、経口投与用としては、本発明の医薬を当該技術分野においてよく知られる薬学的に許容しうる担体と混合することにより、錠剤、丸薬、糖衣剤、カプセル、液体、ゲル、シロップ、スラリー、懸濁液などとして処方することができる。担体としては、当該技術分野において公知のものを広く使用することができ、例えば、乳糖、白糖、塩化ナトリウム、グルコース、尿素、澱粉、炭酸カルシウム、カオリン、結晶セルロース、ケイ酸などの賦形剤；水、エタノール、プロパノール、単シロップ、グルコース液、澱粉液、ゼラチン溶液、カルボキシメチルセルロース、セラック、メチルセルロース、リン酸カリウム、ポリビニルピロリドンなどの結合剤、乾燥澱粉、アルギン酸ナトリウム、寒天末、ラミナラン末、炭酸水素ナトリウム、炭酸カルシウム、ポリオキシエチレンソルビタン脂肪酸エステル、ラウリル硫酸ナトリウム、ステアリン酸モノグリセリド、澱粉、乳糖などの崩壊剤；白糖、ステアリン、カカオバター、水素添加油などの崩壊抑制剤；第４級アンモニウム塩類、ラウリル硫酸ナトリウムなどの吸収促進剤；グリセリン、澱粉などの保湿剤；澱粉、乳糖、カオリン、ベントナイト、コロイド状ケイ酸などの吸着剤；精製タルク、ステアリン酸塩、ホウ酸末、ポリエチレングリコールなどの潤沢剤などを用いることができる。さらに錠剤は、必要に応じ、通常の剤皮を施した錠剤、例えば、糖衣錠、ゼラチン被包錠、腸溶被錠、フィルムコーティング錠、あるいは二重錠、多層錠とすることができる。

前記医薬組成物において、非経口投与用としては、本発明の医薬を当該技術分野においてよく知られる薬学的に許容しうる賦形剤を用いて通常の製剤実施に従って処方することができる。

注射剤用の水溶性賦形剤としては、例えば生理食塩水、ブドウ糖やその他の補助薬を含む等張液、例えばＤ−ソルビトール、Ｄ−マンノース、Ｄ−マンニトール、塩化ナトリウムが挙げられ、適当な溶解補助剤、例えばアルコール、具体的にはエタノール、ポリアルコール、例えばプロピレングリコール、ポリエチレングリコール、非イオン性界面活性剤、例えばポリソルベート８０（ＴＭ）、ＨＣＯ−５０と併用してもよい。

油性賦形剤としてはゴマ油、大豆油があげられ、溶解補助剤として安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールと併用してもよい。また、緩衝剤、例えばリン酸塩緩衝液、酢酸ナトリウム緩衝液、無痛化剤、例えば、塩酸プロカイン、安定剤、例えばベンジルアルコール、フェノール、酸化防止剤と配合してもよい。調製された注射液は通常、適当なアンプルに充填させる。

また、本発明の医薬の分散を制御するなどの目的で、担体、例えば、コラーゲン、ハイドロキシアパタイト、ヒアルロン酸、フィブリン、多糖、リポゾームと配合してもよい。調製された製剤は、経口剤または非経口投与剤として使用できる。

（投与形態）
本発明の医薬の適当な投与経路としては特に限定されず、経口、直腸内、経粘膜、または腸内、または筋肉内、皮下、骨髄内、鞘内、直接心室内、静脈内、硝子体内、腹腔内、鼻腔内、または眼内注射が含まれる。投与経路は、患者／患畜の年齢や病状、併用する他の薬剤などを考慮して適宜選択することができる。

本発明の医薬の投与量としては、性腺刺激ホルモン放出ホルモン及び黄体形成ホルモンを分泌促進しうる量であればよく、投与方法、年齢、症状等により適宜決定することができる。例えば、前記有効成分の質量に基づき、一回につき体重１ｋｇあたり０．００１ｍｇ〜１ｍｇ、また好ましくは患者／患畜あたり１回投与あたり０．００２〜１００ｍｇである。

本発明において、Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｔｒｐ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２（化合物番号３）をキスペプチン１０、すなわちＫＰ１０と表記し、Ｓｅｒ−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２（化合物番号４）をキスペプチン６、すなわちＫＰ６と表記する。後述する実施例において、ＫＰ１０のＮ末端のＴｙｒの位置を１位、Ｃ末端のＴｙｒの位置を１０位と数え、ＫＰ６のＮ末端のＳｅｒの位置を１位、Ｃ末端のＴｙｒの位置を６位と数える。また、化合物番号５（実施例１）の［ｄＹ］ＫＰ１０はＫＰ１０のＮ末端（１位）のＴｙｒがＤ体（右旋性）であることを意味し、化合物番号６（実施例１）の［ｄＳ］ＫＰ６はＫＰ６のＮ末端（１位）のＳｅｒがＤ体（右旋性）であることを意味する。化合物番号７（実施例１）のＡｃ−ＫＰ１０及び化合物番号８（実施例１）のＡｃ−ＫＰ６は、ＫＰ１０及びＫＰ６のＮ末端（１位）アミノ酸のアミノ基がアセチル化していることを意味する。さらに、化合物番号９（実施例１）のオクタン酸側鎖付ＫＰ１０及び、化合物番号１０（実施例１）のオクタン酸側鎖付ＫＰ６は、ＫＰ１０及びＫＰ６のＣ末端から数えて６位のＳｅｒがｎ−オクタノイル化されていることを意味する。

以下、実施例により本発明をより詳細に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらの例示に限定されるものではない。以下の実施例は全て、日本生理学会が定める生理学領域における動物実験に関する基本的指針に則り、国立大学法人山口大学共同獣医学部における動物実験倫理委員会の認可を得て行った。

１．ウシ脳下垂体前葉細胞の調製
ウシ脳下垂体前葉は、黒毛和牛雌（２６か月齢）より、２０１１年９月から２０１２年７月の期間に得た。ウシ脳下垂体前葉組織を酵素法により単一細胞化し、単一化した細胞の生細胞率は、トリパンブルー染色により９０％以上であることを確認してその後の実験に用いた。単一化した細胞は、１％非必須アミノ酸（100×; Gibco, Grand Island, NY, USA）、１００ ＩＵ／ｍＬペニシリン、５０ μｇ／ｍＬストレプトマイシン、１０％ウマ血清（Gibco, Grand Island, NY, USA）、２．５％ウシ胎児血清（Gibco, Grand Island, NY, USA）を加えたダルベッコ改変イーグル培地（DMEM; Gibco, Grand Island, NY, USA）に懸濁した。２．５×１０^５細胞／ｍＬの濃度に調製した細胞を、２４ウェルプレート(MS-80240;住友ベークイライト、東京、日本)上で、３７℃、５％二酸化炭素、湿潤条件下において８２時間培養した。

２．ペプチドの合成
化合物番号９及び化合物番号１０で表されるペプチド誘導体は、P. Robberecht et. al. Mol. Phrmacol. 42, 347-355 (1992)に記載の方法を参考に合成した。
すなわち、ＡＭレジンの一つである４−（２’，４’−ジメトキシフェニル−Ｆｍｏｃ−アミノメチル）−フェノキシレジンを固相担体とし、ペプチドの合成を行った。まず、前記固相担体にＦｍｏc-Ｔｙｒ−ＯＨを結合し、順次Ｆｏｃの除去、ペプチド伸長を繰り返し、Ａｒｇ、Ｌｅｕ、Ｇｌｙ、Ｐｈｅ、Ｓｅｒ、Ａｓｎ、Ｔｒｐ、Ａｓｎ、Ｔｙｒをペプチド鎖に組み込みながら伸長し、Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｔｒｐ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒからなるペプチドを合成した。ペプチド伸長は、ＨＯＢt及びＨＢＴＵを用いた。続いて、ペプチド中の各アミノ酸の側鎖の保護基のうち、Ｓｅｒ側鎖の水酸基の保護基であるトリフェニルメチル基（トリチル基）を、１％トリフルオロ酢酸を用いて除去した。前記保護基の除去後のＳｅｒ側鎖の水酸基に、オクタン酸及びＷＳＣＩを作用させることで、選択的にアシル化を行った。アシル化後のペプチドはトリフルオロメタンスルホン酸を用いて担体から切り出され、Ｃ末端のカルボン酸を第１級アミドへと変換した後に、ＨＰＬＣで生成を行った。得られた化合物番号９で表されるペプチド誘導体は、質量分析において１４４５（Ｍ＋１）^＋のピークを示し、その計算値と一致した。
上記手法と同様の方法により、化合物番号１０で表されるペプチド誘導体を合成した、得られたペプチド誘導体は、質量分析において８６８（Ｍ＋１）^＋のピークを示し、その計算値と一致した。

３．各化合物による培養ウシ下垂体前葉細胞の刺激
黒毛和牛雌（ｎ＝１６）より得た脳下垂体前葉細胞を８２時間培養後、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）にて２度洗浄した。その後、０．１％ウシ血清アルブミン（BSA; protease-free grade, 01862-87;ナカライテスク、京都、日本）加DMEMのみ、１０ｎＭ（１ｘ１０^−８Ｍ）ＧｎＲＨ（株式会社ペプチド研究所、大阪、日本）を含む０．１％BSA加DMEM、１０ｎＭ（１ｘ１０^−８Ｍ）、１００ｎＭ（１ｘ１０^−７Ｍ）、１０００ｎＭ（１ｘ１０^−６Ｍ）、１０，０００ｎＭ（１ｘ１０^−５Ｍ）の各濃度の、ＫＰ１０（化合物番号３）、［ｄＹ］ＫＰ１０（化合物番号５）、［ｄＳ］ＫＰ６（化合物番号６）、Ａｃ−ＫＰ１０（化合物番号７）、Ａｃ−ＫＰ６（化合物番号８）、オクタン酸側鎖付ＫＰ１０（化合物番号９）、オクタン酸側鎖付ＫＰ６（化合物番号１０）をそれぞれ含む０．１％BSA加DMEMで、脳下垂体前葉細胞の培養液を交換した。前記キスペプチン誘導体は、上記方法により合成され（株式会社スクラム、東京、日本）、高速液体クロマトグラフィー及び質量分析法で確認された高純度ものを使用した。各化合物との刺激開始から２時間後、培養液を回収し、ウシＬＨ濃度測定まで‐３０℃で保管した。

４．培養ウシ下垂体前葉細胞からのＬＨ分泌量を指標としたキスペプチン活性評価
上記で回収した培養液中のＬＨ濃度は、^１２５Ｉ標識ウシＬＨ及び抗ヒツジＬＨ抗血清 （AFP11743B，AFP192279; National Hormone and Pituitary Program of the National Institute of Diabetes and Digestive and Kidney Diseases (NIDDK), Bethesda, CA, USA）を用いた二抗体ラジオイムノアッセイにて二重測定した。検出限界値は０．４０ｎｇ／ｍＬであった。また、２．０４ｎｇ／ｍＬにおいて、測定内変動係数は３．６％、測定間変動係数は６．２％であった。培養液のみを下垂体前葉細胞に添加したControl培養液中ＬＨ濃度に対する、各化合物を添加した培養液中ＬＨ濃度の比率を求めたところ、オクタン酸側鎖付ＫＰ１０（化合物番号９）及びオクタン酸側鎖付ＫＰ６（化合物番号１０）の添加による刺激では、添加濃度の差がＬＨ濃度の比率差に現れず（図１）、また、ＫＰ１０のＬＨ濃度比率に対し、約２倍のＬＨ分泌を誘導することが明らかとなった。

本発明は、家畜の繁殖における発情同期化・過排卵処置に好適に利用することができる、優れたホルモン製剤として、また、ホルモン感受性癌の予防・治療及び転移抑制剤として有用性を発揮しうると期待される。

Claims (6)

1. （ａ）Ｔｙｒ−Ａｓｎ−Ｔｒｐ−Ａｓｎ−Ｓｅｒ（ＣＯＲ）−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２（化合物番号１）；
   （ｂ）Ｓｅｒ（ＣＯＲ）−Ｐｈｅ−Ｇｌｙ−Ｌｅｕ−Ａｒｇ−Ｔｙｒ−ＮＨ_２（化合物番号２）；
   （ただし、上記Ｒは炭素数１−２０の置換又は非置換の直鎖状若しくは分枝状のアルキル基である）
   から選択されるペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物。
2. Ｒが、ｎ−ペンチル基、ｎ−ヘキシル基、ｎ−ヘプチル基、ｎ−オクチル基及びｎ−ノニル基から選ばれるアルキル基である請求項１記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物。
3. 請求項１又は２記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物を有効成分とする医薬。
4. 請求項１又は２記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物を有効成分とする性腺刺激ホルモン放出ホルモン及び黄体形成ホルモン分泌促進剤。
5. 請求項１又は２記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物を有効成分とする家畜用繁殖制御剤。
6. 請求項１又は２記載のペプチド誘導体、若しくはその塩、又はそれらの溶媒和物を有効成分とする、若年性更年期障害、月経異常、排卵障害、不妊症、生殖機能異常、子宮内膜症、癌転移、ホルモン感受性癌の予防及び／又は治療剤。