JP2014522808A - 二官能性ホスホネートキレート剤 - Google Patents
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Abstract
ここで、Aは、窒素原子か、環および芳香環が所望により、N、O、Sから選択される1つ以上のヘテロ原子を含み、3から6の炭素原子を含む環、または、5から10のメンバーを含む芳香環を表し、Wはグラフト官能基を表し、XおよびYはキレート官能基を表す。
【選択図】なし
Description
ポジトロン放出断層撮影法(PET)は、ある種の癌を診断、および腫瘍の発生ならびに治療の有効性のモニタリングに使用されている非侵襲性医用画像法である。画像は、ポジトロンを放出する放射性トレーサー(放射活性分子)を生命体に注入して得る。
使用する場合、64Cuおよび67Cuは、二官能性キレート剤(BCA)に組込まれていなければならない。この二官能性により、一方において、金属に結合し、また、他方において、ある種の疾患、特に癌で過剰発現している受容体を標的にすることができ、生物学的に活性の巨大分子またはベクターとの共有結合が可能となる。
従って、Smithらは、64Cuおよび67Cuの同位体標識に関して、BCAとその使用の検討を行った(Journal of Inorganic Biochemistry, (2004), 98, 1874-1901)。前述のBCAは、ポリアミノカルボンあるいはポリアミノホスホネート大環状、またはオープンのポリアミノカルボキシレートである。後者は、大環状と比べて熱力学的安定性がはるかに低い。
Mezzarosらは(Inorganica Chimica Acta, (2010), 363, 1059-1069)、Tc−99mのキレート剤である、ヒドラジノニコチンアミド(HYNIC)に基づくBCAについて述べている。HYNICは活性化されたエステルの形態、特に、N-ハイドロスクシンイミド誘導体の形態で使用され、活性化されたエステル官能基と生体分子のアミン官能基との間で形成したアミド結合で該生体分子に結合している。しかしながら、金属との配位については、錯体の最終構造とその使用を不確実にする、追加の共配位子を使用する必要がある。
出願 EP0298939号は、通常の配位子よりもより安定的と言われているピリジン由来の二官能性配位子を述べているが、これらの新規の配位子のキレート官能基は依然としてカルボキシレート基である。
Aは、以下を表す
− 窒素原子か、
− 環および芳香環が所望により、N、O、Sから選択される1つ以上のヘテロ原子を含み、3から6の炭素原子を含む環、または5から10のメンバーを含む芳香環かのいずれか、
Wは、以下を表す
− 臭素原子か、ヨウ素原子かのいずれか、
− または、E−G−Q基、ここで
*Gは、以下を含む群から選択され
i)oが0から5の間の整数である、-(CH2)o、
ii)nが0から5の間の整数である、-(CH2)n-NH-、
iii)pとqが0から5の間の整数である、-(CH2)p-CO-NH-(CH2)q-NH-、
*Qは、水素原子か、アミノ保護基か、一級および二級アミン、アルコール、チオールと共有結合の形成が可能な官能基のいずれかを表し、かつ
XとYは、各々独立して、次のいずれかを表し、
− 水素原子か、
ただし、条件としては、X、W、Yが同時にHではない)。
本発明の意味において、3から6の炭素原子を含む環とは、3、4、5、または6炭素原子を骨格とする飽和炭素環を意味する。該環では、1つ以上の炭素原子が、窒素、酸素、または硫黄原子から選択される炭素原子以外の他の原子で置換され得る。例を挙げると、シクロプロピル、シクロブチル、シクロペンチル、シクロヘキシル、オキシラン、アジリジン、テトラヒドロチオフェン、テトラヒドロフラン、ピペリジン、ジオキサン、ピロリジン、モルホリン、オキサチオラン基などが言及できる。
(C1-C4)アルキル基とは、メチル、プロピル、n−ブチル、イソブチル、または、tert‐ブチル基を含む群から選択される1から4の炭素原子を含む直鎖または分岐鎖の基を意味する。
アミノ保護基とは、従来から使用されている基、特に、Boc、Fmoc、アシル、トリフルオロアセトアミド、ベンジル、トシル、フタルイミド基を意味する。
Aは以下を表す
− 窒素原子か、
− 環および芳香環が所望により、N、O、Sから選択される1つ以上のヘテロ原子を含み、3から6の炭素原子を含む環、または5から10のメンバーを含む芳香環かのいずれか、
Wは、以下を表す
− 臭素原子か、ヨウ素原子かのいずれか
− または、以下を有するE−G−Q基、ここで
*Eは、酸素原子、
*Gは、以下を含む群から選択される
i)oが0から5の間の整数である-(CH2)o、
ii)nが0から5の間の整数である-(CH2)n-NH-、
iii)pとqが0から5の間の整数である-(CH2)p-CO-NH-(CH2)q-NH-、
*Qは、水素原子か、アミノ保護基か、一級および二級アミン、アルコール、チオールと共有結合の形成が可能な官能基のいずれかを表す、
XとYは、各々独立して、次のいずれかを表し、
− 水素原子か、
ただし、条件としては、
-XおよびY、または
-X、WおよびY
が同時にHではない)
を除く。
− Aは上記で定義した通りであり、
− Wは、酸素原子、
− XとYは、同時にHを表せないことを除き、上記で定義した通りである)。
Wは、以下を表す
− 臭素原子か、ヨウ素原子かのいずれか、
− または、以下を有するE−G−Q基、ここで
*Eは、酸素原子、
*Gは、以下を含む群から選択される
i)oが0から5の間の整数である、-(CH2)o、
ii)nが0から5の間の整数である、-(CH2)n-NH-、
iii)pとqが0から5の間の整数である、-(CH2)p-CO-NH-(CH2)q-NH-、
*Qは、水素原子か、アミノ保護基か、一級および二級アミン、アルコール、チオールと共有結合の形成が可能な官能基のいずれかを表し、
WがHを表す化合物を除き、かつ、
XとYは、各々独立して、次のいずれかを表し、
− 水素原子か、
ただし、条件としては、XとYが同時にHではない)。
Wは、以下を表す
− 臭素原子か、ヨウ素原子かのいずれか、
− または、以下を有するE−G−Q基、ここで
*Eは、酸素原子、
*Gは、以下を含む群から選択される
i)oが0から5の間の整数である、-(CH2)o、
ii)nが0から5の間の整数である、-(CH2)n-NH-、
iii)pとqが0から5の間の整数である、-(CH2)p-CO-NH-(CH2)q-NH-、
*Qは、水素原子か、アミノ保護基か、一級および二級アミン、アルコール、チオールと共有結合の形成が可能な官能基のいずれかを表し、
XとYは、各々独立して、次のいずれかを表し、
− 水素原子か、
ただし、条件としては、XとYが同時にHではない)。
WおよびXがHを表す化合物を除き、W、X、Yは式(I)で定義された通りである)。
Wは、以下で表されるE−G−Q基を表す
*Eは、mが0から5までの整数である(CH2)m基を表し
*Gは、以下を含む基を表し
*Qは、水素原子か、アミノ保護基か、一級および二級アミン、アルコール、チオールと共有結合の形成が可能な官能基のいずれかを表し、
WがHを表す化合物を除き、
Xは、Hを除き式(I)で定義された通りであり、
YはHを表す)。
Xは以下を表し:
*Br
*-O-(CH2)3NHBoc
Xは次の基を表し
本発明の化合物を合成する際の重要なステップは、活性化された官能基の存在下でのホスホン酸エステルを選択的脱保護するステップである。このステップは、ルチジンの存在下で、ジクロロメタンまたはクロロホルムなどの溶液中のトリメチルシリルブロミドの存在下で実施し、続いて、アルコール、特に、メタノールでシリル化エステルの脱保護をする。
例を挙げると、金属イオンとしては、ガンマ線放出放射性金属、ポジトロン放出放射性金属、アルファ線放出放射性金属、ベータ線放出放射性金属、または、オージェ電子放出放射性金属などが言及できる。また、常磁性、蛍光、または、燐光の性質について、非放射性金属の使用も可能である。例を挙げると、ランタニド(ユーロピウム、テルビウム、サマリウム、ジスプロシウム、エルビウム、イッテルビウム、プラセオジム、ネオジム)、鉄、コバルト、ニッケル、銅(64Cuおよび67Cu)、亜鉛、砒素、セレニウム、モリブデン、テクネチウム、ルテニウム、パラジウム、銀、カドミウム、インジウム、アンチモン、レニウム、オスミウム、イリジウム、白金、金、水銀、タリウム、鉛、ビスマス、ポロニウム、ガリウム、ジルコニウム、イットリウム、スカンジウム、アスタチンなどが言及できる。これらすべての金属は、そのままでの使用、または、当事者に周知の塩の形態での使用が可能である。
本発明の有利な実施形態では、式(I)の配位子を用いて生成した錯体の金属は、テルビウムである。
また、活性化された化学的官能基を含む側鎖が存在するので、本発明の化合物は、活性化された官能基を含む該側鎖を経由して生物学的標的(タンパク質、抗体、ペプチド)上に共有結合でグラフトすることが可能である。
(ここで
Wは以下を表す:
− E−G−Q基、ここで
*Eは、酸素原子、
*Gは、以下を含む群から選択され
i)oが0から5の間の整数である、-(CH2)o、
ii)nが0から5の間の整数である、-(CH2)n-NH-、
iii)pとqが0から5の間の整数である、-(CH2)p-CO-NH-(CH2)q-NH-、
*Qは、水素原子か、アミノ保護基か、一級および二級アミン、アルコール、チオールと共有結合の形成が可能な官能基のいずれかを表す)
を用いて生成した少なくとも1つの錯体、共役系を生成する、生物学的に活性な化合物または担体を含む群から選択される標的構造を含む配位子である。
−抗体、特に、テナシンに対するB28.13抗体が結合した配位子L1、または
−以下が結合した配位子L2:
*抗体は、特に、L-セレクチンに対する強い親和性を有するdreg55抗体、または、L-セレクチンに対するマウス抗体のdreg200抗体、あるいは、「前立腺特異的抗原」(PSA)抗体のPSS233抗体、あるいは、抗「前立腺特異的抗原」(PSA)抗体のPSR222抗体、あるいは、EgB4抗体、1つの可変ドメインにより構成され、かつ、上皮成長因子に対する抗体フラグメント、または、EgA1抗体、1つの可変ドメインにより構成され、かつ、上皮成長因子に対する抗体フラグメントに、または、
*タンパク質は、特に、L-セレクチンに。
dreg55およびdreg20抗体は、Man Sung Coら("Properties and pharmacokinetics of two humanized antibodies specific for L-selectin", Immunotechnology 4 (1999) 253-266)に従って得ることができる。
PSS233抗体、PSR222抗体およびEgB4またはEggA1フラグメントは、THERMO FISHER SCIENTIFIC CD NIMES CEZANNE, 280 allee Graham Bell, Parc Scientifique Georges Besse, 30035 Nimes Cedex 1 Franceから得ることができる。
−抗体、特に、テナシンに対するB28.13抗体が結合した配位子L1、または
−以下が結合した配位子L2:
*抗体は、特に、抗体結合がL-セレクチンに対する強い親和性を有するdreg55またはdreg200抗体、L-セレクチンに対するマウス抗体など、または
*タンパク質は、特に、L-セレクチンに。
(ここで
Wは以下を表す:
− E-G-Q基、ここで
*Eは、酸素原子、
*Gは、以下を含む群から選択される
i)oが0から5の間の整数である、-(CH2)o、
ii)nが0から5の間の整数である、-(CH2)n-NH-、
iii)pとqが0から5の間の整数である、-(CH2)p-CO-NH-(CH2)q-NH-、
*Qは、水素原子か、アミノ保護基か、一級および二級アミン、アルコール、チオールと共有結合の形成が可能な官能基のいずれかを表す)
を用いて生成した少なくとも1つの錯体、式(I)の該化合物に配位する金属および共役系を生成する、生物学的に活性な化合物または担体を含む群から選択される標的構造を含む配位子である。
Wは以下を表す:
− E−G−Q基、ここで
*Eは、酸素原子、
*Gは、以下を含む群から選択される
i)oが0から5の間の整数である、-(CH2)o、
ii)nが0から5の間の整数である、-(CH2)n-NH-、
iii)pとqが0から5の間の整数である、-(CH2)p-CO-NH-(CH2)q-NH-、
*Qは、水素原子、アミノ保護基、または生物学的に活性な分子または担体の一級および二級アミン、アルコール、チオールと共有結合の形成が可能な官能基のいずれかを表す)
および生物学的に活性の化合物または担体を含む共役系である。
ホスホン官能基を有する錯体については、多くの文献に記載されているが、生物学的化合物にそのような構造を共有結合させるための活性化官能基の導入については初めてのことである。これまで報告されたグラフト官能基を有する分子は、その官能基が一般的にカルボキシレートである誘導体であり、そのためカチオンの錯体形成がかなり弱く、このことはpHが低下するときに顕著である。
本発明の更なる主題は、本発明の式(I)の少なくとも1つの化合物または本発明の錯体を含む診断薬である。
この薬は、当事者に周知の画像技術に使用することができ、特に、核磁気共鳴(NMR)、磁気共鳴画像(MRI)、X線による放射線撮影、ポジトロン放出断層撮影(PET)、単一光子放出型断層撮影(SPETまたはSPECT)、放射線撮影、ルミネセンス分光法で使用できる。
本発明では、診断薬は、当事者に周知の技術で、特に、錯体の量を当事者に周知の医薬的に許容される添加剤と混合して調製された医薬的に許容される形で提示し得る。有利には、錯体を生理学的に許容される水性の溶媒中に溶解して調製した注射用液の形式で提示する。
従って、本発明の主題は、前記の疾患の検出に使用する上記の診断薬である。
本発明の更なる主題は、マーカーあるいは受容体の生成、または、関連する疾患の治療法であるが、該方法は疾患があるヒトに、上記の錯体の検出可能な量を投与することを含み、かつ、該マーカーあるいは該受容体に特異な生物学的に活性な分子を含むものである。本発明の錯体は、当事者に周知の技術で製造される。
(1)上記の二官能性配位子。
有利な実施形態では、本発明の更なる主題は、以下を含むキットである:
(1)上記の二官能性配位子、
(2)金属放射性核種の塩またはキレートの溶液、
(3)必要な場合、(1)および(2)の反応法を伴う反応の使用指示書。
(1)上記の二官能性配位子、
(2)必要な場合、使用方を伴う反応の使用指示書。
本発明の更なる主題は、以下を含むキットである:
(1)上記の二官能性配位子、
(2)金属放射性核種の塩またはキレートの溶液、
(3)生物学的に活性な化合物または不活性担体と(1)と(2)との反応法を伴う使用指示書。
(ここで
Wは、以下を表す
− 臭素原子か、ヨウ素原子かのいずれか、
− または、E−G−Q基、ここで
*Eは、酸素原子、
*Gは、以下を含む群から選択される
i)oが0から5の間の整数である、-(CH2)o、
ii)nが0から5の間の整数である、-(CH2)n-NH-、
iii)pとqが0から5の間の整数である、-(CH2)p-CO-NH-(CH2)q-NH-、
*Qは、水素原子、アミノ保護基、官能基のいずれかを表す、
XとYは、各々独立して、いずれかを表し、
− 水素原子か、
基を表し、ここで、uは0か1の整数であり、同一であっても異なっていてもよく、vとwは、1か2の整数であり、R2およびR3が、各々独立して、 (C1-C4)アルキル基を表し、かつ、Jは-CH2であるか、または、5から10メンバーおよび所望によりN、O、Sから選択される1つ以上のヘテロ原子を含む芳香環のいずれかである、
しかし、条件としては、XとYが同時にHではない)、
− E−G−Q基、ここで
*Eは、酸素原子、
*Gは、以下を含む群から選択される
i)oが0から5の間の整数である、-(CH2)o、
ii)nが0から5の間の整数である、-(CH2)n-NH-、
iii)pとqが0から5の間の整数である、-(CH2)p-CO-NH-(CH2)q-NH-、
*Qは、水素原子か、一級および二級アミン、アルコール、チオールと共有結合の形成が可能な官能基のいずれかを表す、
XとYは、各々独立して、次のいずれかを表し、
− 水素原子か、
しかし、条件としては、X、WとYが同時にHではない)。
-XおよびY、または
-X、WおよびY
が同時にHではなく、
および、以下の式の化合物:
は除かれる。
ジエステル1およびアミノアルコール2は、ぞれぞれ、Chem. Commun. 2010, 46, 124に記載のCelia S. Bonneらの方法と、Chem. Eur. J. 2008, 14, 1392.に記載のS. Machidaらの方法で製造した。
トリフェニルホスフィン(7.20 g; 27.46 mmol)および僅かのTHFに溶解したアミノアルコール2(4.80 g; 27.52 mmol)を、アルゴン雰囲気下で、325 mLのTHF中のジエステル1(3.27 g; 13.70 mmol)の溶液に添加する。次に、DIAD(5.43 mL; 27.4 mmol)を滴加する。混合液を70℃で一晩撹拌する。溶媒蒸発後、シリカカラムで連続して2回、初めに、石油エーテル/酢酸エチル7/3で、次にCH2Cl2 100%で、更に、MeOH 0.5%、1%そして1.5%を用いた勾配で精製し、オイルを得た。得られた化合物3の重量は4.5gで、収率は83%である。化合物3の特徴は、以下の通りである:
1H NMR (CDCl3, 300 MHz): δ 1.44 (s, 9H); 1.45 (t, J = 7.1 Hz, 6H); 2.05 (qt, J = 6.3 Hz, 2H); 3.34 (m, 2H); 4.20 (t, J = 12.6 Hz, 2H); 4.47 (q, J = 7.1 Hz, 4H); 4.81 (ブロード s, 1H); 7.74 (s, 2H).
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 14.2; 28.4; 29.4; 37.5; 62.4; 66.6; 79.4; 114.3; 150.2; 156.0; 164.7; 166.8.
IR (cm-1, ATR): ν 3411, 3250, 2980, 1703, 1508, 1238, 1252, 1107, 1029, 784.
ESI+ / MS: m/z 397.2 ([3 + H]+, 100%).
1.01 g (26.67 mmol)のNaBH4を、240 mLのエタノール中のジエステル3(4.48 g; 11.29 mmol)の溶液に添加し、次に、混合液を、還流下で、加熱する。溶媒を蒸発させて、NaHCO3の飽和水性溶液をpH9に添加してから、最後に水を添加する。水相は、ジクロロメタンで抽出する。有機相は、Na2SO4 で乾燥させ、濾過し、濃縮する。得られた生成物4は、白色固体(1.56 g; 44%)で、その特徴は以下の通りである:
1H NMR (CDCl3, 300 MHz): δ 1.44 (s, 9H); 2.01 (qt, J = 6.3 Hz, 2H); 3.32 (m, 2H); 4.09 (t, J = 6 Hz, 2H); 4.71 (s, 4H); 6.71 (s, 2H).
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 28.5; 29.4; 37.6; 64.4; 65.7; 79.4; 105.6; 156.3; 161.2; 166.5.
IR (cm-1, ATR): ν 3371, 2974, 1685, 1602, 1572, 1520, 1272, 1146, 1048, 844.
ESI+ / MS: m/z 313.2 ([4 + H]+, 100%); 314.2 (31%); 355.2 (33%).
0℃で、67mLのTHF中のトシルクロリド(3.55 g; 18.64 mmol)溶液を、THF/H2O混合液(34 mL / 34 mL)中のジオール4(1.45 g; 4.66 mmol)およびHaOH(1.12 g; 27.96 mmol)の溶液に滴下する。これで、周囲温度で反応が起こる。2つの相を分離した後、水相は、ジクロロメタンで抽出する。混合した有機相は、まず、NaHCO3の5%水性溶液、次に、NaClの飽和水性溶液で洗浄する。次いで、有機相は、Na2SO4で乾燥し、濾過し、濃縮する。シリカカラムクロマトグラフ(CH2Cl2 / MeOH: 勾配は1%から2%まで)で精製した後、収率85%(白色固体)でビス-トシル化化合物(2.44 g)を得た。化合物5の特徴は、以下の通りである:
1H NMR (CDCl3, 300 MHz): δ 1.46 (s, 9H); 1.92 (m, 2H); 2.44 (s, 6H); 3.31 (m, 2H); 4.04 (t, J = 6.1 Hz, 2H); 4.70 (ブロード s, 1H); 4.98 (s, 4H); 6.81 (s, 2H); 7.34 (d, J = 8.1 Hz, 4H); 7.81 (d, J = 8.3 Hz, 4H).
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 21.8; 28.5; 29.4; 37.6; 66.1; 71.3; 79.6; 107.7; 128.2; 130.1; 132.8; 145.3; 155.3; 156.1; 166.7.
IR (cm-1, ATR) ν: 3356, 2926, 1677, 1366, 1171, 1033, 840, 809, 669.
ESI+ / MS: m/z 607.7 (54%); 643.2 ([5 +Na]+, 100%); 702.3 (34%).
アミン6を、Chem. Eur. J., 2000, 14, 6に記載のS. Aimeらによる手順で製造した。
炎処理した後のK2CO3(3.14 g; 22.72 mmol)を窒素下で200mLの アセトニトリル中のアミン6(2.73 g; 8.60 mmol)溶液に添加する。20分間撹拌した後、アセトニトリルとヨードカリウム(1.29g; 7.75mmol)中に溶解したビス-トシル化誘導体5(2.35 g; 3.78 mmol)を添加し、混合液を70℃まで加熱する。一晩70℃の温度を維持した後でも反応は終了しない。0.92g(2.89 mmol)のアミン6、1.02g(7.42 mmol)のK2CO3、0.41g(2.47 mmol)のヨードカリウムを、再度添加し、22時間70℃で撹拌する。濾過後、溶媒を蒸発させ、シリカカラム(CH2Cl2 / MeOH勾配: 勾配2%から6%まで)精製してオイルを得る。得られた生成物7の重量は、1.75g(50%、薄黄色)である。化合物7の特徴は、以下の通りである:
1H NMR (CDCl3, 300 MHz): δ 1.24 (t, J= 7 Hz, 24H); 1.36 (s, 9H); 1.91 (m, 2H); 3.18 (m, 10H); 4.04 (m, 22H); 5.09 (ブロード s, 1H); 6.99 (s, 2H).
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 16.4 (d, J = 5.5 Hz); 28.4; 29.2; 37.5; 50.3 (dd, J = 157.7 Hz, J = 8.3 Hz); 61.9; 62.0 (d, J = 6.2 Hz); 62.4 (t, J = 8.4 Hz); 65.5; 79.0; 108.2; 156.0; 159.4; 166.3.
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 24.60.
IR (cm-1, ATR): ν 3303, 2980, 1708, 1597, 1230, 1019, 959.
ESI+ / MS: m/z 908.1 (27%): 933.4 ([7 +Na]+, 100%).
1.97mL(26.6 mmol)のトリフルオロ酢酸を、0℃の窒素下で、15mLのジクロロメタン中のアミン7(1.21 g; 1.33 mmol)の溶液に添加する。次に、出発物質が消えるまで、周囲温度で、混合液を作る。溶媒を蒸発させ、次に、粗生成物(トリフラート塩)を真空で乾燥させる(褐色オイル)。精製せずに、次のステップで使用する。化合物8の特徴は、以下の通りである:
1H NMR (CDCl3, 300 MHz): δ 1.31 (t, J = 7 Hz, 24H); 2.29 (m, 2H); 3.30 (m, 10H); 4.18 (m, 16H); 4.32 (ブロード s, 4H); 4.46 (m, 2H); 7.39 (s, 2H); 7.92 (ブロード s, 2H).
13C NMR (CDCl3, 100 MHz): δ 16.2; 26.1; 37.1; 50.4 (dd, J = 158.9 Hz, J = 6.1 Hz); 57.6 (t, J = 5.8 Hz); 63.5 (t, J = 3.4 Hz); 67.7; 110.7; 115.5 (q, J = 289.0 MHz); 155.7; 160.2 (q, J = 39.7 MHz); 171.8.
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 24.05.
IR (cm-1, ATR): ν 2989, 1774, 1634, 1202, 1160, 1023, 975.
ESI+ / MS: m/z 406.2 ([8 (free amine) + 2H]2+, 100%); 811.3 ([8 (free amine) + H]+, 32%).
トリエチルアミン(0.33 mL; 2.39 mmol)と、次に、アセトニトリルに溶解したDSC(612.2 mg; 2.39 mmol)を、窒素下で、30mLのアセトニトリル中のアンモニウム塩8(1.33mmol)溶液に添加する。反応混合液を、開始物質が消えるまで、周囲温度で撹拌する。溶媒が蒸発した後、ジクロロメタンを添加する。有機相は、TLCの検査で残留DSCが消失していることを示すまで、NH4Clの飽和水性溶液で数回、洗浄する。有機相は、Na2SO4で乾燥し、濾過し、濃縮する。褐色オイル(821 mg; 65%)の得られた生成物9は、以下の特色を有する:
1H NMR (CDCl3, 300 MHz): δ 1.30 (t, J = 7.1 Hz, 24H); 2.06 (m, 2H); 2.79 (s, 4H); 3.20 (d, J =10.0 Hz, 8H); 3.39 (m, 2H); 4.21 (m, 21H); 7.52 (ブロード s, 2H).
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 16.6 (t, J = 3 Hz); 25.6; 28.4; 38.6; 50.7 (dd, J = 160.2 Hz, J = 7.7 Hz); 62.3 (t, J = 3.7 Hz); 152.1; 169.9.
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 24.13.
ESI+ / MS: m/z 869.3 (77%); 952.3 ([9 +H]+, 100%).
1mL(7.64 mmol)のルチジンおよび0.88mL(7.64 mmol)のTMSBrを、5mLのジクロロメタン中のカルバメート9(181.7mg; 0.19mmol)溶液に、窒素下で、添加する。これを約5時間撹拌する。次に、溶媒は蒸発する。得られた粗生成物を、メタノール中に採り、次に、蒸発する。これをその後2回実施する。得られた固体は、ジクロロメタン存在下で遠心分離し、次に、ジクロロメタンおよびメタノールで数回洗浄する。最終生成物L1を、ルチジニウム塩(薄茶色固体)として得て、以下の特徴がある。
ESI+ / MS (水 / アセトニトリル / ギ酸): m/z 728.1 ([L1 + H]+, 100%).
溶剤浄化装置で乾燥した、200mLのアセトニトリル中の1.5g(4.73 mmol)のアミン6および1.14gのK2CO3(8.24 mmol)を、窒素雰囲気下で、2つ口のフラスコに導入する。次に、混合液を30分間還流する。0.96g(2.06 mmol)の化合物10(P. Kadjane et al., in Inorg. Chem, 2009, 48, 4601に記載された方法で製造)を添加する。出発試薬が完全に消費されるまで、反応混合液を36時間還流する。残留K2CO3を除去するために溶液を濾過して、次に、蒸発乾固する。油性残査は、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製する。使用した溶離液は、ジクロロメタンおよびメタノールの混合液である:CH2Cl2 / MeOH(100/0から95/5まで)。1.2gの化合物11を得る(1.26 mmol)、つまり、62%の収率である。化合物11の特徴は以下である:
1H NMR (CDCl3, 300 MHz): δ 1.33 (t, J = 70 Hz, 24H); 3.22 (d, J = 10 Hz, 8H); 3.98 - 4.27 (m, 20H); 6.56 (d, J = 2.6 Hz, 2H); 7.95 (s, 2H); 8.44 (d, J = 2.6 Hz, 2H).
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 16.5 (d, J = 6.0 Hz); 49.0 (d, J = 8.0 Hz); 51.1 (dd, J = 158.0 Hz, J = 8.5 Hz); 54.0; 62.0 (d, J = 7.1 Hz); 109.1; 112.2; 128.0; 150.4; 153.2.
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 23.98.
分析計算値C33H58BrN7O12P4.H2O: C 41.00, H 6.26, N 10.14 実測値:C 40.83, H 6.44, N 9.95
IR (cm-1, ATR): ν 3486, 2982, 2928, 2907, 1679, 1589, 1463-1388, 1211, 1017.
EI+ / MS: m/z 949.3 ([11 + H]+, 100%).
80 mLの新たに蒸留したTHFおよび24mLのトリエチルアミンの溶液中にある、1.12 g (1.20 mmol)の化合物11、182 mg (1.44 mmol)の90%の6-ヘプチン酸、42 (0.06 mmol) mg の[Pd(PPh3)2Cl2]を、250mLの2つ口のフラスコに導入する。溶液を、30分間、窒素の連続流に通過させて脱気する。22.9mg(0.1mmol)のCuIを添加し、次に、反応混合液を60℃で15時間加熱する。溶媒を蒸発およびジクロロメタンによる一連の同時蒸発により除去する。油性残査は、250mLのCH2Cl2/H2O混合液(50/50)に採り、水相は抽出する。有機相は、飽和NaCl溶液で洗浄し、次に、Na2SO4で乾燥する。残査は、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製する。使用した溶離液は、CH2Cl2 / MeOH混合液(100/0から93/7)である。1.01g(1.02mmol)の化合物12は、褐色オイルの形態、つまり、85%の収率で得られる。化合物12は、以下の特徴を有する:
1H NMR (CDCl3, 300 MHz): δ 1.33 (t, J = 7.0 Hz, 24H); 1.70 (m, 2H); 1.95 (m, 2H); 2.43 (m, 2H); 2.51 (m, 2H); 3.26 (d, J = 10 Hz, 8H); 4.05 - 4.35 (m, 20H); 6.50 (d, J = 2.6 Hz, 2H); 7.82 (s, 2H); 8.45 (d, J = 2.6 Hz, 2H).
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 16.5 (d, J = 6.1 Hz); 19.1; 19.4; 24.0; 27.2; 50.1 (dd, J = 159.9 Hz, J = 9.4 Hz); 58.3; 62.2 (d, J = 7.0 Hz); 96.6; 108.8; 111.4; 127.67; 137.4; 150.0; 152.1; 175.4; 206.9.
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 24.73.
分析計算値C40H67N7O14P4: C 48.34, H 6.79, N 9.86 実測値:C 48.52, H 7.12, N 9.65
IR (cm-1, ATR): ν 2233, 1720, 1211, 1019, 987, 795.
EI+ / MS: m/z 994.4 ([12 + H]+, 100%).
300mg(0.30mmol)の化合物12、175mg(0.68mmol)のN,N'-炭酸ジスクシンイミジル、240 μL のトリエチルアミンおよび45mLのCH2Cl2を100mLの1つ口のフラスコに導入する。反応混合液を、窒素雰囲気下で12時間撹拌する。次に、反応混合液を蒸発乾固し、100mLのCH2Cl2に採り、引き続いて、NH4Clの飽和水性溶液および水で洗浄する。有機相は、Na2SO4で乾燥させ、濾過し、次に、蒸発乾固する。320mgの化合物13は、淡黄色オイルの形態(0.29 mmol; 97%)で得られ、以下の特徴を有する。
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 16.6 (d, J = 6.1 Hz); 19.2; 23.9; 25.7; 27.4; 30.6; 50.1 (dd, J = 158.4 Hz, J = 9.7 Hz); 62.1 (d, J = 7.2 Hz); 79.0; 95.9; 108.8; 111.3; 127.9; 137.2; 150.2; 152.7; 168.4; 169.2.
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 24.49.
IR (cm-1, ATR): ν 2234, 1841, 1784, 1740, 1715, 1209, 962, 742.
224mg(2.09mmol)のルチジンおよび320mg(2.09mmol)のTMSBrを、10mLのジクロロメタン溶液中にある57mgの化合物13(0.053mmol)が含まれた50mLの1つ口のフラスコに導入する。反応混合液を、周囲温度で12時間撹拌し、次に、揮発性物質を、減圧下の周囲温度で蒸発する。TMSBrを、ジクロロメタンで同時蒸発する(この手順を2回繰り返す)。白色沈殿を得る。10mLのメタノールを添加し、周囲温度で、減圧下で、直ちに蒸発する。この手順を2回繰り返す。得られた白色沈殿は、ジクロロメタンで、次に、メタノールで洗浄し、ルチジニウムモノホスホナートの形態で、褐色粉末の配位子L2を得るが、その特徴は以下の通りである:
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 16.89.
分析計算値C28H38N8O16P4・C7H9N・4H2O: C, 40.20; H, 5.30; N, 12.05 実測値 : C, 40.26; H, 5.24; N, 12.07
IR (cm-1, ATR): ν 2157, 1837, 1781, 1736, 1611, 1203, 987, 795.
ESI- / MS: m/z 865.15 ([L2-H]-, 30%); 768.14 ([L2-NHS]-, 100%).
20 mLの新たに蒸留したTHFおよび8mLのトリエチルアミンの溶液中にある、400mg(0.42mmol)の化合物10、191mg(0.67mmol)の化合物14および15mg(0.021mmol)の[Pd(PPh3)2Cl2]を、250mLの2つ口のフラスコに導入する。溶液を、30分間、窒素の連続流を通過させて脱気する。8mg(0.04mmol)のCuIを添加し、次に、反応混合液を60℃で15時間加熱する。溶媒を蒸発と、次に、ジクロロメタンによる同時蒸発により除去する。得られた油性残査は、60mLのCH2Cl2/H2O混合液(50/50)に採り、水相は抽出した。有機相は、飽和NaCl溶液で洗浄し、次に、Na2SO4で乾燥する。残査は、シリカゲルカラムクロマトグラフィーで精製する。使用した溶離液は、CH2Cl2 / MeOH混合液(100/0から93/7)である。428mg(0.37mmol)の化合物15は、褐色オイルの形態、つまり、88%の収率で得られる。化合物15は、以下の特徴を有する:
1H NMR (CDCl3, 300 MHz): δ 1.31 (t, 24 H, J = 7.1 Hz); 1.41 (s, 9H); 1
.54-1.74 (m, 4H); 1.75-1.92 (m, 2H); 2.25 (t, J = 7.2Hz, 2H); 2.47 (t, J = 6.8 Hz, 2H); 3.34-3.06 (m, 12H); 3.93-4.28 (m, 22 H); 6.52 (d, J = 2.6 Hz, 2H); 7.72 (s, 2H); 8.44 (d, 2H, J = 2.6 Hz).
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 16.4 (d, J = 6.1 Hz); 19.3; 25.0; 27.9; 28.4; 30.2; 35.8; 36.1; 37.0; 49.9 (d, J = 159.4 Hz); 53.9; 62.0; 62.1; 78.6; 79.2; 96.6; 108.6; 111.2; 127.8; 137.3; 150.0; 152.5; 172.9.
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 24.50.
分析計算値C48H83N9O15P4・2MeOH: C, 49.46; H, 7.55; N, 10.38 実測値:C, 49.31; H, 7.39; N, 10.01
ESI+ / MS: m/z 1172.5 ([15+Na]+, 100%).
10mLのCH2Cl2溶液中の120mgの化合物15(0.10 mmol)を、100mL の1つ口のフラスコに導入する。78 μL (1 mmol)のトリフルオロ酢酸を、添加し、次に、反応混合液を周囲温度で15時間撹拌する。揮発性化合物を蒸発で、次に、ジクロロメタンで一連の同時蒸発により除去する。150mgの化合物16(アンモニウムトリフラート)を、褐色オイルの形態で得るが、その特徴は以下である:
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 24.83.
IR (cm-1, ATR): ν 2158, 1676, 1200, 1015, 797.
ESI+ / MS: m/z 1050.5 ([16+H]+, 100%).
57mg(0.05mmol)の化合物16、27mg(0.09mmol)のN,N'-炭酸ジスクシンイミジル、50μLのトリエチルアミンおよび15mLのCH2Cl2を50mLの1つ口のフラスコに導入する。反応混合液を、窒素雰囲気下で12時間撹拌する。次に、反応混合液を蒸発乾固し、20mLのCH2Cl2に採り、引き続いて、NH4Clの飽和水性溶液および水で洗浄する。有機相は、Na2SO4で乾燥させ、濾過し、次に、蒸発乾固する。50mgの化合物17 は、淡黄色オイルの形態で得られ、以下の特徴を有する。
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 16.7 (d, J = 6.2 Hz); 19.5; 25.3; 25.7; 28.1; 29.8; 36.3; 38.9; 50.2 (dd, J = 159 Hz, J = 8.4 Hz); 53.9; 54.1; 62.3 (d, J = 6.9 Hz); 108.9; 111.4; 128.0; 150.0; 152.7; 170.0; 173.8; 180.2; 186.1; 195.1; 205.2.
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 24.54.
IR (cm-1, ATR): ν 2239, 1812, 1781, 1736, 1611, 1204, 1060, 794.
ESI+ / MS: m/z 1213.4 ([17+Na]+, 90%).
204mg(2.21mmol)のルチジンおよび232mg(1.68mmol)のTMSBrを、10mL のジクロロメタン中の50mgの化合物17(42μmol)溶液を含む50mLの1つ口のフラスコに添加する。反応混合液を、周囲温度で12時間撹拌し、次に、揮発性物質を、減圧下の周囲温度で蒸発する。TMSBrを、ジクロロメタンで同時蒸発する(この手順を2回繰り返す)。その結果、白色の沈殿物が得られる。10mLのメタノールを添加し、直ちに、周囲温度で、減圧下で蒸発する。ルチジニウムモノホスホナートの形態で得た、配位子L3は、以下の特徴を持つ。
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 16.68.
ESI- / MS: m/z: 965.2 ([L3-H]-, 30%).
2、6‐ビス(ブロモメチル)ピリジン18を、Tetrahedron, 2003, 59, 5039に記載のT. Vermodenらによる手順で製造した。
炎処理した後のK2CO3(391.13mg;2.83mmol)の20mLの アセトニトリル中の溶液に、窒素下で、アミン6(359.13mg;1.13mmol)を添加し、次に、2、6‐ビス(ブロモメチル)ピリジン18(300mg;1.13mmol)を添加する。混合液を更に6時間、65℃で加熱し、次に、一晩、周囲温度で静置する。濾過後、溶媒を蒸発させて、粗生成物を、シリカカラム(CH2Cl2 / MeOH勾配:100/0から94/6まで)で精製する。得られた生成物19の重量は、253mg(44%、オイル)である。化合物19の特徴は、以下の通りである:
1H NMR (CDCl3, 300 MHz): δ 1.29 (t, J = 7.3 Hz, 12H); 3.23 (d, J = 9.7 Hz, 4H); 4.11 (m, 10H); 4.51 (s, 2H); 7.31 (d, J = 7.6 Hz, 1H); 7.51 (d, J = 7.6 Hz, 1H); 7.68 (t, J = 7.8 Hz, 1H).
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 16.6 (t, J = 3.1 Hz); 34.0; 50.4 (dd, J = 159.8 Hz, J = 7.4 Hz); 62.2; 122.1; 123.1; 137.6; 156.0; 158.8.
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 24.4.
IR (cm-1, ATR): ν 3415, 962-1016, 1592-1675, 1392.
ESI+ / MS (CH2Cl2): m/z 363.0 (22%); 417.9 (44%); 501.1 ([19+H]+, 54%); 503.1 ([19+H]+, 54%); 523.1 ([19+Na]+, 70%); 525.1 ([19+Na]+, 70%); 598.2 (17%); 737.0 (42%); 752.3 (100%); 759.3 (94%).
炎処理した後のK2CO3(1.98g;14.31mmol)の20mL の アセトニトリル中の溶液に、1.20g(4.77mmol)のtert‐ブチル 6-ブロモヘキサノアート20(M. S. Shchepinov ヨーロッパ特許出願 EP1506959A2, 2005に記載の手順に従って製造)および1.02gのベンジルアミン(9.52mmol)を、窒素下で、添加し、次に、混合液を65℃で24時間維持する。濾過後、水を添加し、次に、水相は、ジクロロメタンで抽出する。有機相は、Na2SO4で乾燥させ、濾過し、濃縮する。粗生成物を、シリカカラム(CH2Cl2 / MeOH勾配:100/0から90/10まで)で精製する。得られた生成物21の重量は、1.32g(56%、オイル)である。
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 25.1; 26.9; 28.2; 29.9; 35.6; 49.3; 54.1; 80.1; 127.0; 128.3; 128.5; 140.5; 173.3.
分析計算値C17H27NO2: C, 73.61; H, 9.81; N, 5.05 実測値:C, 73.59; H, 9.90; N, 5.07
IR (cm-1, ATR): ν 2931; 1604; 1727.
ESI+ / MS (CH2Cl2): m/z 222.1 ([21-C4H9+H]+, 66%); 278.2 ([21+H]+, 100%); 392.3 (16%); 432.2 (31%); 481.3 (31%); 709.5 (19%).
300mg(1.08mmol)の化合物21および223.21mgの亜リン酸ジエチル(1.62mmol)を、混合し、次に、ホルムアルデヒド(水中で37%)(174.63mg;2.15mmol)を滴下する。反応混合液を100℃で3時間加熱する。蒸発乾固後、粗生成物を、シリカカラム(CH2Cl2 / MeOH勾配:100/0から99/1まで)で精製する。290mgのアミン22が、オイルの形態で得られ、収率は63%である。生成物22は、以下の特徴を持つ:
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 16.6 (d, J = 5.8 Hz); 25.1; 26.7; 28.2; 32.8; 35.7; 49.2 (d, J = 156.2 Hz); 54.9 (d, J = 8.3 Hz); 59.7 (d, J = 8.3 Hz); 61.8 (d, J = 6.8 Hz); 80.0; 127.1; 128.3; 129.1; 139.1; 173.2.
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 25.8.
IR (cm-1, ATR): ν 2932; 1727; 1679; 1052.
水素発生器(0.1 bar)を用いて水素を、250mg(0.584mmol)のアミン22および20mLのエタノール中の150mgの木炭上パラジウムを含む溶液に送り込む。混合液は、還流下で、3.5時間加熱する。セライトで濾過および溶媒の蒸発後、160mgの化合物23をオイルの形態で取得する(つまり、収率81%)。生成物23は、以下の特徴を持つ。
13C NMR (CDCl3, 75 MHz): δ 16.6 (d, J = 5.4 Hz); 25.0; 26.7; 28.2; 29.5; 35.6; 45.3 (d, J = 154.3 Hz); 51.3 (d, J = 15.3 Hz); 62.1 (d, J = 6.7 Hz); 80.1; 173.2.
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 26.4.
ESI+ / MS (CH2Cl2): m/z 338.2 ([23+H]+, 100%); 369.0 (45%); 373.6 (56%); 675.5 (21%); 780.4 (96%).
炎処理した後のK2CO3(2.17g;15.70mmol)の8mLの アセトニトリル中の溶液に、化合物23(125mg;0.37mmol)およびモノ置換生成物19(250mg;0.498mmol)を、窒素下で添加し、次に、混合液を70℃で一晩加熱する。濾過後、溶媒を蒸発させて、粗生成物を、シリカカラム(CH2Cl2 / MeOH勾配:100/0から95/5まで)で精製する。得られた生成物24の重量は、259mg(92%)である。
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 26.1.
IR (cm-1, ATR): ν 3476-2933, 1727, 1020.
ESI+ / MS (CH2Cl2): m/z 780.4 ([24+Na]+, 100%).
0.78mL(10 .54 mmol)のトリフルオロ酢酸を、0℃の窒素下で、ジクロロメタン中のエステル24 (400 mg; 0.527mmol)の溶液に添加する。次に、周囲温度で一晩かけて混合液を作る。溶媒を蒸発させて、粗生成物を、シリカカラム(CH2Cl2 / MeOH勾配:100/0から95/5まで)で精製する。得られた生成物25の重量は、254mg(69%)である。化合物25の特徴は以下の通りである:
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 23.7-26.0 (ブロード m).
IR (cm-1, ATR): ν 3477-2934, 1727, 1020.
ESI+ / MS (CH2Cl2): m/z 430.2 (6%); 552.3 (8%); 594.6 (8%); 702.3 ([25+H]+, 100%); 757.2 (27%); 774.4 (14%); 934.15 (10%).
152.42mg(0.595mmol)のN,N'-炭酸ジスクシンイミジルおよび0.19mL(1.35mmol)のトリエチルアミンを、10mLのCH2Cl2中の190mg(0.270mmol)の酸25に添加する。反応の終了にともない、反応混合物を蒸発乾固し、CH2Cl2に採り、引き続いて、DSCが消失するまでNH4Clの飽和水性溶液で数回洗浄する(TLCで検査)。有機相は、Na2SO4で乾燥させ、濾過し、次に、蒸発乾固する。133.5mgのN−ヒドロキシスクシンイミドエステル26を得るが(62%)、その特徴は以下の通りである:
31P NMR (CDCl3, 161.9 MHz): δ 24.5.
ESI+ / MS (CH2Cl2): m/z 799.3 ([26+H]+, 100%); 822.0 (20%).
0.16mL (1.40 mmol)のルチジンおよび0.15mL(1.12 mmol)のTMSBrを、ジクロロメタン中のエステル26(30 mg; 0.0375 mmol)の溶液に、窒素下で、添加する。約22時間撹拌する。次に、溶媒を蒸発する。粗組成物を、メタノール中で採り、次に、蒸発する。これをその後2回実施する。得られた固体をジクロロメタンおよびメタノールで数回洗浄する。最終生成物L4を、ルチジニウム塩(茶色固体)の形態で得る。粗化合物L4の特徴は、以下の通りである:
5.1手順
水20μL中の溶液中のストレプトアビジン(0.2mg;3.3nmol)を、重炭酸アンモニウム緩衝液(pH=8.05;C=200.10-3mol.L-1)の200μL水溶液中にある配位子L2(0.13mg;13.2x10-9mol)を含む1mLのフラスコに添加する。得られた溶液を周囲温度で15時間撹拌する。反応混合液は、濃縮され、過剰の配位子は超遠心分離により(VIVASPIN 500 Sartorius Stedim, cut-off 5000MWCO PES, 回転数: 1500 r.p.m.)除去する。溶液を、各サイクルが2分で、緩衝液100 μLを添加して、5サイクルの遠心分離にかける。この処理後、100μLの遠心分離物を回収する。後者は、2つの方法で分析する:可視紫外吸収分光法および質量分析。
遠心分離物はMALDI-MSで解析した。
マトリックス:α‐シアノ‐4‐ヒドロキシけい皮酸
沈着方法:乾燥液滴
非標識ストレプトアビジンの質量スペクトル(図1)は、m/z値の13038ユニットで主ピークを示す。標識ストレプトアビジンの質量スペクトル解析(図2)は、3つの主ピークを13049、13860、14549で示すが、それぞれ、非標識ストレプトアビジンのモノマー(Strep)、配位子L2で標識されたモノマー(Strep-(L2))、2回標識されたモノマー(Strep(L2)2)に対応する。
遠心分離物25 μL、または0.83nmolのStrepL2の滴定は、TbCl3.6H2O (C=5.36×10-5 mol.L-1)の溶液を用いて実施する。
ストレプトアビジンに結合した配位子のホスホナート基による金属の錯体形成は、試料の吸収極大を320nmから329nmに移動する。この波長は、210μLのTb添加、または1:1錯体を形成する11.3nmolのStrepTbL2に達する。これから、ストレプトアビジンあたり13の配位子L2を標識する平均度を推定する。
B28.13抗体は、腫瘍(大腸癌など)近傍で発現する細胞外糖蛋白である、テナシンに対する抗体である。
6.1 HPLC分析
抗体のHPLC分析法を開発した。この分析は、Waters2996ダイオードアレイ付きのUV検知器を装備しているAlliance 2695 HPLC chain (Waters)で実施した。分離の実施は、Poros R1 1x150 mmカラム(10 μm) (Applied Biosystems)で行う。流速は、0.4mL/分に固定し、カラム温度は50℃を維持し、使用した勾配は、溶媒A:酸性化水(0.1% TFA)、溶媒B: 酸性化アセトニトリル(0.1% TFA)である。勾配を、5%の溶媒Bで開始し、5分間維持し、次に、25分間85%まで直線的に増大させ、更に、再び1分間95%まで増大させ、かつ、95%で3分間を維持する。5%の溶媒Bでのカラム平衡のステップは、溶出に従う。溶出は、210nmでモニターする(図3)。
MALDI‐TOF分析を、抗体に対して実施した。抗体の溶液は、ZipTip C18 (Millipore)を用いて脱塩する。70 pmolの抗体を載せて、次に、5 μLのH2O/アセトニトリル/HCOOH 20/75/5(v/v/v)に溶出する。0.6μLの試料(約8pmol)を、0.6μLのシナピニン酸(50% アセトニトリル中2 mg/mLで)を用いて、MALDI MTP348プレート(Brucker Daltonics)上に3重に沈着させる。分析は、正モードで実施し、かつ、質量分析計(Autoflex, Brucker Daltonics)は、BSAを用いて20000から190000のm/z範囲で測定した。結果を図4に示した。
この結果から、148000Da近傍のB28.13抗体の質量評価ができた。
標識実験は、0.86mgの固体配位子L1(純度30%)、3.5x10-7molを添加した、230 μg (つまり、1.55x10-9 mol)のB28.13抗体で実施された。これは、各抗体に対して配位子L1の230当量を意味する。pHを、PBS緩衝液で7の値に調整し、反応混合物を周囲温度で1時間撹拌した。
次いで、過剰な配位子L1を除去するために、反応混合物を、カットオフが30kDaのvivaspin500モジュール(Sartorius)を用いて限外濾過法で精製し、pH7で、Tris-HCl 0.01 M緩衝液を用いて数回洗浄(20サイクル)する。
次に、ZipTip C18により脱塩した後で、前記のMALDIプレート上で反応混合物を沈着する。結果を図5に示した。
質量スペクトルから、抗体の質量に添加された配位子L1の質量により、[M+H]+ピークが僅かに右側に移動していることが示された。最大値では、800Daの差があり、これは抗体当たり1配位子L1に相当する。
標識B28.13抗体の活性は、ヒト大腸癌からの切片に標識され、続けて、色素を含む2次抗体で明示されることで試験した。この試験は、抗体が依然として、その標的に対して親和性を有していたことを示した(図6)。
dreg55抗体は、L-セレクチンに対して非常に強い親和性を有するモノクローナル抗体である。
7.1 HPLC分析
抗体のHPLC分析法を開発した。この分析は、Waters2996ダイオードアレイ付きのUV検知器を装備しているAlliance 2695 HPLC chain (Waters)で実施した。分離の実施は、Poros R1 1x150 mmカラム(10 μm) (Applied Biosystems)で行う。流速は、0.4mL/分に固定し、カラム温度は50℃を維持し、使用した勾配は、溶媒A:酸性化水(0.1% TFA)、溶媒B: 酸性化アセトニトリル(0.1% TFA)である。勾配を、5%の溶媒Bで開始し、5分間維持し、次に、25分間85%まで直線的に増大させ、更に、再び1分間95%まで増大させ、かつ、95%で3分間を維持する。5%の溶媒Bでのカラム平衡は、溶出に従う。溶出は、210nmでモニターする(図7)。
MALDI‐TOF分析を、抗体に対して実施した。抗体の溶液は、ZipTip C18 (Millipore)を用いて脱塩する。70 pmolの抗体を載せて、次に、5 μLのH2O/アセトニトリル/HCOOH 20/75/5(v/v/v)に溶出する。0.6μLの試料(約8pmol)を、0.6μLのシナピニン酸(50% アセトニトリル中2 mg/mLで)を用いて、MALDI MTP348プレート(Brucker Daltonics)上に3重で沈着する。分析は、正モードで実施(図8)し、かつ、質量分析計(Autoflex, Brucker Daltonics)は、BSAを用いて20000から190000のm/z範囲で測定した。
この結果から、148000Da近傍のdreg55抗体の質量評価ができた。
標識実験は、0.65mgの固体配位子L2(17%のルチジニウム塩を含む3.4x10-8 molの配位子L2)を添加した、400 μg (4mg/mLでの100μLの溶液、つまり、2.7x10-9 mol)のdreg55抗体で実施され、これは、各抗体に対して配位子L2の230当量を意味する。pHを、PBS緩衝液で7.3の値に調整し、反応混合物を周囲温度で1時間撹拌した。
次いで、過剰な配位子L2を除去するために、反応混合物を、カットオフが30kDaのvivaspin500モジュール(Sartorius)を用いて限外濾過法で精製し、pH7.4で、Tris-HCl 0.01 M緩衝液を用いて数回洗浄(20サイクル)した。
次に、ZipTip C18により脱塩した後で、前記のMALDIプレート上で反応混合物(11pmol)を沈着させた(図9)。
質量スペクトルから、抗体の質量に添加された配位子L2の質量により、[M+H]+ピークが右側に移動していることが示された。最大値では、7000Daの差があり、これは抗体当たり約9配位子L2に相当する。
また、蛍光アッセイにより、抗体当たりの配位子L2の数の評価が確立した。このアッセイは、Tris-HCl 0.01 M pH7(20 μL/添加)の溶液中で調製された5×10-6 MでのTbCl3溶液の連続的添加により、6.7×10-11 molの標識抗体で実施された。
測定は、390nmのフィルタおよび励起波長λexcitation = 328 nmを用いて、HORIBA Jobin Yvon分光蛍光光度計で実施した。発光スペクトルが、400から750nmで取得され、544nmで、テルビウムのピーク発光が測定された。
544nmで計測された蛍光の直線的増大が、2×10-9 molのTbCl3の近傍で開始するプラトーの前で、観測される(図10)。2つの直線の交差点は、アッセイの当量点に対応する。この量の溶液中に存在する抗体の量に対する比率から、抗体当たりの配位子L2の数を得る。この数は、30配位子L2/抗体と評価される。
次に、標識抗体は、Tris-HCl 0.01 M pH 7溶液中で、5.35x10-4 M で3当量のTbCl3溶液を添加して、Tb3+で錯体化した。反応混合物を限外濾過法(vivaspin500、カットオフ 30 kDa)で再度精製し、かつ、過剰なTb3+を除去するために、pH7でTris-HCl 0.01 M緩衝液で数回(20サイクル)洗浄した。
測定は、pH 7でのTris-HCl 0.01 Mの溶液中で、HORIBA Jobin Yvon Fluoromax分光蛍光光度計で実施した。
7.6.1 発光
発光スペクトル測定に使用した励起波長は、328nmである。取得は、400から750nmまでの間で実施され、最大発光は544 nmで測定された(図11)。
励起スペクトルは、544nmで発光に対して測定し、かつ、250から450nmとの間で取得した(図12)。
励起スペクトルは、328nmで最大値を示す。
7.6.3 寿命
錯体の寿命は、予め策定された励起および発光波長(λexcitation = 328 nmおよびλemission = 544 nm)を用いて計測した(図13)。
曲線は、溶液中で発光する単一種の存在を示唆する、ミネッセンスの単一指数的な低下を示す。測定された寿命は、1.6msである。
dreg200抗体は、L-セレクチンに対するマウス抗体である。
8.1 MALDI‐TOF MS分析
MALDI‐TOF分析を、抗体に対して実施した。抗体の溶液は、ZipTip C18を用いて脱塩され、次に、上記のMALDI標的に沈着した。結果を図14に示す。
MALDI質量スペクトルは、dreg200抗体が約150000Daのモル質量を有することを示す。
標識実験は、0.27mgの固体配位子L2(17%のルチジニウム塩を含む2.58x10-7 molの配位子L2)を添加した、200μg (8mg/mLでの25μLの溶液、つまり、1.32x10-9 mol)のdreg200抗体で実施され、これは、各抗体に対して配位子L2の200当量を意味する。pHを、PBS緩衝液で7.3の値に調整し、反応混合物を周囲温度で1時間撹拌した。
次いで、過剰な配位子L2を除去するために、反応混合物を、カットオフが30kDaのvivaspin500モジュールを用いて限外濾過法で精製し、pH7で、Tris-HCl 0.01 M緩衝液を用いて数回洗浄(20サイクル)した。
次に、ZipTip C18により脱塩した後で、前記のMALDIプレート上で反応混合物(11pmol)を沈着させた。結果は、図15に示す。
MALDIスペクトルから、8000Daの値での[M+H]+ピークが右側に移動していることが示された。この質量差は、約10配位子L2/抗体に対応する。
また、蛍光アッセイにより、抗体当たりの配位子L2の数の評価が確立した。このアッセイは、Tris-HCl 0.01 M pH7(20 μL/添加)の溶液中で調製された10-6 MでのTbCl3溶液の連続的添加により、3.8×10-11 molの標識抗体で実施された。
544nmで計測された蛍光の直線的増大が、8×10-10 molのTbCl3の近傍で開始するプラトーの前で、観測される(図16)。2つの直線の交差点は、アッセイの当量点に対応する。この量の溶液中に存在する抗体の量に対する比率から、抗体当たりの配位子L2の数を得る。この数は、21配位子L2/抗体と評価される。
次に、標識抗体は、pH 7でのTris-HCl 0.01 M溶液中で、7.4x10-5 M で2当量のTbCl3溶液を添加して、Tb3+で錯体化した。反応混合物を限外濾過法(vivaspin500、カットオフ 30 kDa)で再度精製し、かつ、過剰なTb3+を除去するために、pH7でTris-HCl 0.01 M緩衝液で数回(20サイクル)洗浄した。
実験は、50μgのL-セレクチン(組換えヒトタンパク質)で実施した。
9.1 HPLC分析
L-セレクチンのHPLC分析法を開発した。この分析は、Waters2996ダイオードアレイ付きのUV検知器を装備しているAlliance 2695 HPLC chain (Waters)で実施した。分離の実施は、Symmetry C18カラム3.5 μm, 4.6 x 75 mm (Waters)で行う。流速は、0.5mL/分に固定し、カラム温度は40℃を維持し、使用した勾配は、溶媒A:酸性化水(0.1% TFA)、溶媒B: 酸性化アセトニトリル(0.1% TFA)である。勾配を、5%の溶媒Bで開始し、5分間維持し、次に、25分間85%まで直線的に増大させ、更に、再び1分間95%まで増大させ、かつ、95%で3分間を維持する。5%の溶媒Bでのカラム平衡のステップは、溶出に従う。溶出は、210nmでモニターする(図17)。
9.2 MALDI‐TOF MS分析
MALDI‐TOF分析を、試料に対して実施した。抗体の溶液は、ZipTip C18を用いて脱塩され、次に、上記のMALDI標的に沈着した。得られた[M+H]+ピークは、比較的広く、L-セレクチンに対する72 kDaの質量を示す(図18)。
標識実験は、0.005%HCI(pH〜3)で調製し、1.02mg/mL(17%のルチジニウム塩を含む)で配位子L2 の10μL溶液を添加した、46μg(6.4x10-9 mol)の量のL-セレクチンで実施され、これは、L-セレクチンの各当量に関して配位子L2の15当量を意味する。pHを、PBS緩衝液で7.3の値に調整し、反応混合物を周囲温度で1時間撹拌した。
次いで、過剰な配位子L2を除去するために、反応混合物を、カットオフが7kDa(単一通過)のZebaカラム(Thermo Scientific)で精製した。カラムは、pH7で、Tris-HCl 0.01 M緩衝液を用いて調製した。
次に、ZipTip C18により脱塩した後で、前記のMALDI標的上で反応混合物を沈着させた(図19)。
MALDIスペクトルから、2000Daの値での[M+H]+ピークが右側に移動していることが示された。この質量差は、約3配位子L2/ L-セレクチンに対応する。
9.4 テルビウムによる錯体化
次に、標識L-セレクチンの試料は、pH 7でのTris-HCl 0.01 M溶液中で、10-3 Mで5当量のTbCl3溶液を添加して、Tb3+で錯体化した。反応混合物を、過剰なTb3+を除去するために、pH7で、Tris-HCl 0.01 M緩衝液を用いて調製したZebaカラム(単一通過)で再度精製した。
PSS233抗体は、抗PSA (前立腺特異的抗原)抗体である。
10.1 MALDI‐TOF MS分析
MALDI‐TOF分析を、モル質量を測定するために標識する前に、抗体に対して実施した。抗体は、ZipTip C18を用いて脱塩され、次に、マトリクスとしてシナピニン酸を用いて、上記のMALDI標的に沈着した(図20)。
MALDI‐MS分析は、PSS233抗体が約150000Daのモル質量を有することを示す。
標識実験は、0.8mgの固体配位子L2(17%のルチジニウム塩を含む7.7x10-7 molの配位子L2)を添加した、108μg (7.2x10-10 mol)のPSS233で実施され、これは、各抗体に対して配位子L2の1065当量を意味する。pHを、PBS緩衝液で7.1の値に調整し、反応混合物を周囲温度で1時間撹拌した。
次いで、過剰な配位子L2を除去するために、反応混合物を、カットオフが30kDaのvivaspin500モジュールを用いて限外濾過法で精製し、pH7で、Tris-HCl 0.01 M緩衝液を用いて数回洗浄(20サイクル)した。
次に、ZipTip C18により脱塩した後で、前記のMALDIプレート上で反応混合物を沈着させた(図21)。
MALDIスペクトルから、5500Daの値での[M+H]+ピークが右側に移動していることが示された。この質量差は、約7配位子L2/抗体に対応する。
次に、標識抗体は、pH 7でのTris-HCl 0.01 M溶液中で、2.2x10-8 mol のTbCl3溶液を添加して、Tb3+で錯体化した。反応混合物を限外濾過法(vivaspin500、カットオフ 30 kDa)で再度精製し、かつ、過剰なTb3+を除去するために、pH7でTris-HCl 0.01 M緩衝液で数回(20サイクル)洗浄した。
測定は、pH 7でのTris-HCl 0.01 Mの溶液中で、HORIBA Jobin Yvon Fluoromax分光蛍光光度計で実施した。
10.4.1 発光
発光スペクトル測定に使用した励起波長は、328nmである。取得は、400から750nmまでで実施され、最大発光は544 nmで測定された(図22)。
励起スペクトルは、544nmで発光に対して測定し、かつ、250から450nmとの間で取得した(図23)。
励起スペクトルは、329nmで最大値を示す。
10.4.3 寿命
錯体の寿命は、予め策定された励起および発光波長(λexcitation = 328 nmおよびλemission = 544 nm)を用いて計測した(図24)。
曲線は、溶液中で発光する単一種の存在を示唆する、ミネッセンスの単一指数的な低下を示す。測定された寿命は、1.94msである。
PSR222抗体は、抗PSA (前立腺特異的抗原)抗体である。
11.1 MALDI‐TOF MS分析
MALDI‐TOF分析を、モル質量を測定するために標識する前に、抗体に対して実施した。抗体は、ZipTip C18を用いて脱塩され、次に、マトリクスとしてシナピニン酸を用いて、上記のMALDI標的に沈着した(図25)。
MALDI‐MS分析は、PSR222抗体が約147500Daのモル質量を有することを示す。
標識実験は、0.13mgの固体配位子L2(17%のルチジニウム塩を含む1.25x10-7 molの配位子L2)を添加した、75μg (5x10-10 mol)のPSR233で実施され、これは、各抗体に対して配位子L2の250当量を意味する。pHを、PBS緩衝液で7.1の値に調整し、反応混合物を周囲温度で1時間撹拌した。
次いで、過剰な配位子L2を除去するために、反応混合物を、カットオフが30kDaのvivaspin500モジュールを用いて限外濾過法で精製し、pH7で、Tris-HCl 0.01 M緩衝液を用いて数回洗浄(20サイクル)した。
次に、ZipTip C18により脱塩した後で、前記のMALDIプレート上で反応混合物を沈着させた(図26)。
MALDIスペクトルから、2500Daの値での[M+H]+ピークが右側に移動していることが示された。この質量差は、約3配位子L2/抗体に対応する。
次に、標識抗体は、pH 7でのTris-HCl 0.01 M溶液中で、5.25x10-9 mol のTbCl3溶液を添加して、Tb3+で錯体化した。反応混合物を限外濾過法(vivaspin500、カットオフ 30 kDa)で再度精製し、かつ、過剰なTb3+を除去するために、pH7でTris-HCl 0.01 M緩衝液で数回(20サイクル)洗浄した。
測定は、pH 7でのTris-HCl 0.01 Mの溶液中で、HORIBA Jobin Yvon Fluoromax分光蛍光光度計で実施した。
11.4.1 発光
発光スペクトル測定に使用した励起波長は、328nmである。取得は、400から750nmまでで実施され、最大発光は544 nmで測定された(図27)。
励起スペクトルは、544nmで発光に対して測定し、かつ、250から450nmとの間で取得した(図28)。
励起スペクトルは、328nmで最大値を示す。
11.4.3 寿命
錯体の寿命は、予め策定された励起および発光波長(λexcitation = 328 nmおよびλemission = 544 nm)を用いて計測した(図29)。
曲線は、溶液中で発光する単一種の存在を示唆する、ミネッセンスの単一指数的な低下を示す。測定された寿命は、2.17msである。
EgB4は、上皮成長因子(EGF)に対する(抗体の1つの可変単量体ドメインから成る)抗体フラグメントである。
12.1 MALDI‐TOF MS分析
MALDI‐TOF分析を、抗体フラグメントに対して実施した。抗体フラグメントの溶液は、マトZipTip C18を用いて脱塩され、次に、リクスとしてシナピニン酸を用いて、15pmolの量の試料をMALDI標的に沈着した。取得は、正モードで、4000から40000のm/z範囲で実施した。質量分析計は、ミオグロビンを用いて測定した(図30)。
MALDI分析は、EgB4抗体フラグメントが17200Daのモル質量を有することを示す。
標識は、1.58mgの固体配位子L2(27%のルチジニウム塩を含む1.33x10-6 molの配位子L2)を添加した、270μg (1.57x10-8 mol)のEgB4で実施され、これは、各抗体フラグメントに対して配位子L2の85当量を意味する。pHを、PBS緩衝液で7の値に調整し、反応混合物を周囲温度で1時間撹拌した。
次いで、過剰な配位子L2を除去するために、反応混合物を、カットオフが10kDaのvivaspin500モジュールを用いて限外濾過法で精製し、pH7で、Tris-HCl 0.01 M緩衝液を用いて数回洗浄(20サイクル)した。
次に、ZipTip C18により脱塩した後で、前記のMALDIプレート上で反応混合物を沈着させたがシグナルは観察されない。
標識の度を知るために、標識抗体フラグメントは、トリシンSDSポリアクリルアミドゲルに沈着した。ゲルは、H. Schagger and G. Von Jagow (Analytical Biochemistry, 1987, 166, 368)に記載された手順に従って製造した。通常のゲル中のグリシンをトリシンで置換えると、低分子量のタンパク質の良好な分離ができる。H. SchaggerおよびG. Von Jagowによって述べられたスペーサーゲルは省略し、かつ、ゲルに使用したアクリルアミド濃度は、16.5%Tである。
U. K. Laemmli (Nature, 1970, 277, 680)が述べている製造に従い、ゲル沈着の前に、試料を、レムリ緩衝液中で希釈(少なくとも1:4の比率で)する。
ゲルは、抗体フラグメントが完全に標識され、かつ、2から10配位子L2/抗体フラグメントの間の標識の度に対応する、標識生成物が19から25kDaの間の質量分布であることを示す。
次に、標識抗体フラグメントの溶液は、pH 7でのTris-HCl 0.01 M溶液中で、2.35x10-7mol のTbCl3溶液を添加してTb3+で、または、15当量のTb3+で錯体化した。反応混合物を限外濾過法(vivaspin500、カットオフ 10 kDa)で再度精製し、かつ、過剰なTb3+を除去するために、pH7でTris-HCl 0.01 M緩衝液で数回(20サイクル)洗浄した。Tb3+溶液を添加後、沈殿物が形成される。
EgA1は、上皮成長因子(EGF)に対する抗体フラグメントである。
13.1 MALDI‐TOF MS分析
MALDI‐TOF分析を、抗体フラグメントに対して実施した。抗体フラグメントの溶液は、ZipTip C18を用いて脱塩され、次に、マトリクスとしてシナピニン酸を用いて、15pmolの量の試料をMALDI標的に沈着した(図32)。
MALDI分析は、EgA1抗体フラグメントが17100Daのモル質量を有することを示す。
標識は、1.38mgの固体配位子L2(27%のルチジニウム塩を含む1.1x10-6 molの配位子L2)を添加した、115μg (6.7x10-9 mol)のEgA1で実施され、これは、各抗体フラグメントに対して配位子L2の170当量を意味する。pHを、PBS緩衝液で7の値に調整し、反応混合物を周囲温度で1時間撹拌した。
次いで、過剰な配位子L2を除去するために、反応混合物を、カットオフが10kDaのvivaspin500モジュールを用いて限外濾過法で精製し、pH7で、Tris-HCl 0.01 M緩衝液を用いて数回洗浄(20サイクル)した。
次に、ZipTip C18により脱塩した後で、前記のMALDI標的上で反応混合物を沈着させたが、シグナルは観察されない。
13.3.1 トリシンゲルSDS-PAGE
標識の度を知るために、標識抗体フラグメントは、トリシンSDSポリアクリルアミドゲルに沈着した。ゲルは上記のように調整し、かつ、ゲルに使用したアクリルアミド濃度は、16.5%Tである。
ゲル沈着の前に、試料を、レムリ緩衝液中で希釈(少なくとも1:4の比率で)する。
図33に示すように、ゲルは、標識抗体フラグメントのレベルで質量のばらつきを示さない。抗体フラグメントの画分は、非標識抗体フラグメントと比べて、低質量のように思われる。このゲルからは結論は導かれない。
13.3.2 グリシンSDS-PAGEゲル
また、15%Tのアクリルアミド濃度で、この試料用に、グリシンSDS-PAGEゲルを調整した。ゲル沈着の前に、試料を、レムリ緩衝液中で希釈(少なくとも1:4の比率で)する。
ゲル(図34)は、抗体フラグメントが完全に標識され、かつ、1から10配位子L2/抗体フラグメントの間の標識の度に対応する、標識生成物が18から24kDaの間の質量分布であることを示す。
13.4 テルビウムによる錯体化
次に、標識抗体フラグメントの溶液は、pH 7でのTris-HCl 0.01 M溶液中で、1x10-7mol のTbCl3溶液を添加してTb3+で、または、15当量のTb3+で錯体化した。反応混合物を限外濾過法(vivaspin500、カットオフ 10 kDa)で再度精製し、かつ、過剰なTb3+を除去するために、pH7でTris-HCl 0.01 M緩衝液で数回(20サイクル)洗浄した。Tb3+溶液を添加後、沈殿物が形成される。
Claims (19)
- 以下の式(I)の化合物:
Aは以下を表す
− 窒素原子か、
− 環および芳香環が所望により、N、O、Sから選択される1つ以上のヘテロ原子を含み、3から6の炭素原子を含む環、または5から10のメンバーを含む芳香環、
Wは、以下を表す
− 臭素原子か、ヨウ素原子かのいずれか、
− または、以下を有するE−G−Q基、ここで
*Eは、酸素原子、
*Gは、以下を含む群から選択される
i)oが0から5の間の整数である-(CH2)o、
ii)nが0から5の間の整数である-(CH2)n-NH-、
iii)pとqが0から5の間の整数である-(CH2)p-CO-NH-(CH2)q-NH-、
iv)
*Qは、水素原子か、アミノ保護基か、一級および二級アミン、アルコール、チオールと共有結合の形成が可能な官能基のいずれかを表し、
XとYは、各々独立して、次のいずれかを表し、
− 水素原子か、
− または
− または
ただし、条件としては、X、W、Yが同時にHではない)
およびそれらの塩。 - − XおよびY、または
− X、WおよびY
が同時にHではなく、
および、以下の式の化合物:
は除かれる、請求項1に記載の化合物。 - Aが5から10メンバーおよび所望によりN、O、Sから選択される1つ以上のヘテロ原子を含む芳香環である、請求項2に記載の化合物。
- Aがピリジンを表す、請求項3に記載の化合物。
- XおよびYが、ピジリンの窒素のオルト位にあり、かつ、Wがピジリンの窒素のパラ位にあることを特徴とする、請求項4に記載の化合物。
- Wが、
*Br
*-O-(CH2)3NHBoc
- XおよびYがそれぞれ以下の基、
- Jがピラゾール‐1‐イル基またはピリジン‐2‐イル基を表す、請求項1から7までのいずれか一項に記載の化合物。
- XおよびWが、ピジリンの窒素のオルト位にあり、かつ、Yがピジリンの窒素のパラ位にあるることを特徴とする、請求項4に記載の化合物。
- WがE−G−Q基を表す、ここで:
*Eは、mが0から5までの整数である(CH2)m基を表し
*Gは、以下を含む基を表し
i)
*Qは、水素原子か、アミノ保護基か、一級および二級アミン、アルコール、チオールと共有結合の形成が可能な官能基にいずれかを表し、
Xは以下を表し:
請求項9に記載の化合物。 - ホスホン酸エステルの選択的脱保護のステップを含むことを特徴とし、該ステップが、活性化された官能基および少なくとも1つのホスホン酸エステル官能基を有する式(I)の化合物を、ルチジンの存在下で、ジクロロメタンまたはクロロホルムなどの溶液中のトリメチルシリルブロミドと接触させ、続いて、アルコール、特に、メタノールで、シリル化エステルの脱保護をすることを含む、請求項1から10までのいずれか一項に記載の式(I)の化合物の製造法。
- 金属イオンと請求項1から10までのいずれか一項に記載の二官能性配位子との間の錯体。
- 錯体が、さらに、生物学的に活性な化合物または担体を含む群から選択される標的構造に結合していることを特徴し、したがって、式(I)
Aは以下を表す
− 窒素原子か、
− 環および芳香環が所望により、N、O、Sから選択される1つ以上のヘテロ原子を含み、3から6の炭素原子を含む環、または5から10のメンバーを含む芳香環のいずれか、
Wは以下を表す
− E−G−Q基、ここで
*Eは、酸素原子、
*Gは、以下を含む群から選択される
i)oが0から5の間の整数である-(CH2)o、
ii)nが0から5の間の整数である-(CH2)n-NH-、
iii)pとqが0から5の間の整数である-(CH2)p-CO-NH-(CH2)q-NH-、
iv)-(CH2)m-CO-NH-(CH2)p-NHZ、および
v)
*Qは、一級および二級アミン、アルコール、チオールと共有結合の形成が可能な官能基を表す、および
XとYは、各々独立して、次のいずれかを表し、
− 水素原子か、
− または
− または
しかし、条件としては、X、W、Yが同時にHではない)
およびその医学的に許容される塩が共役錯体を構成していることを特徴とする、請求項12に記載の錯体。 - 請求項10に定義した式(I)の二官能性配位子および生物学的に活性な化合物または担体を含む共役系。
- 二官能性配位子が、
L1:
- 請求項12、13および15のいずれか一項に記載の少なくとも1つの錯体または請求項14に記載の少なくとも1つの系および医薬的に許容されるビヒクルを含む診断薬。
- 薬剤としての使用するための、請求項12、13および15のいずれか一項に記載の錯体、または、請求項11に記載の少なくとも1つの系。
- 請求項10に定義した二官能性配位子を含む診断薬の製造用キット。
- (1)請求項10に定義した二官能性配位子
(2)金属放射性核種の塩またはキレートの溶液
を含む、請求項18に記載の診断薬の製造用キット。
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