JP2013527444A - 抗体を検出するための方法 - Google Patents
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Abstract
Description
治療抗体は、種々の障害、例えば、免疫学的疾患、炎症性疾患、癌または感染症の処置のためにますます使用されている。これらの治療抗体は、一般的に、様々な種由来のモノクローナル抗体またはキメラもしくはヒト化抗体である(例えば、Leveneら, 2005, J. Royal Soc. Med. 98, pp 145-152、参照)。疾患に依存して、異なる標的抗原に対する治療抗体、例えば、TNFα、VEGF、HER2、CD20、IGF−I受容体、EGFRまたはIL−6受容体が使用されている。
本発明は、抗薬物抗体を検出する改善された免疫学的方法を提供する。本発明はまた、治療抗体処置を受けている患者をモニターする方法を提供する。本発明は、さらに上記方法の実施のために適当なキットに関する。
a)サンプル中の抗原の存在を確認すること;
b)存在するとき、該サンプル中の該抗原を中和すること;および
c)該サンプル中の該ADA(の存在または量)を免疫検出すること
を含む、方法に関する。
a)存在し得る該抗原を中和するために、サンプルを処理すること;および
b)該サンプル中の該ADAの存在または量を免疫検出すること
を含む、方法である。
−該治療抗体、
−該抗原、および
−該治療抗体に対する抗薬物抗体;
の存在または量を決定し、患者プロフィールを得ることを含み、該患者プロフィールは該処置に対する該応答性を示す、方法に関する。
(a)該患者由来のサンプル中で、
−該治療抗体、
−該抗原、および
−該治療抗体に対する抗薬物抗体;
の存在または量を決定すること、
(b)該抗原が工程(a)においてサンプル中に検出されるとき、抗原を中和するために、該対象のさらなるサンプルを処理し、該処理されたサンプル中の該ADAの存在を再び決定すること、
それにより患者プロフィールを得ることを含み、該患者プロフィールは該処置に対する該応答性を示す、方法に関する。
−標的抗原に対する治療抗体、
−該抗原、および
−該治療抗体に対する抗薬物抗体
の存在または量を検出するための試薬を含むキットに関する。
本発明は、ADAを検出するための、および治療抗体処置を受けている患者をモニターするための組成物、キットおよび方法に関する。本発明は、信頼性のあるデータおよび情報を提供する改善されたADA検出方法を開示する。本発明者らは、サンプル中に存在する任意の抗原を中和するサンプルの前処理が、信頼性のあるADA評価のために必須であることを示した。本発明者らはまた、対象由来のサンプル中での3つのパラメーター(ADA、抗原、薬物)の同時決定が、処置に対する患者の発展および応答の予測プロフィールを提供することを証明した。したがって、本発明は、治療抗体処置を受けている患者をモニタリングする効率的な方法を提供し、処置レジメンの適当な、および効率的な調整を可能にする。
本発明において「治療抗体」なる用語は、活性剤として対象に投与することができるあらゆる抗体を示す。このような治療抗体の特定の例は、炎症性疾患、例えば、リウマチ性関節炎または骨関節症の処置において使用される抗体である。これらは、具体的には、抗−TNFα抗体を含む。「治療抗体」なる用語はまた、標的抗原に選択的に結合する抗体誘導体または抗原特異的リガンド分子、例えば、抗体Fabフラグメントまたは抗体Fcフラグメント、合成受容体、可溶性受容体などを含む。
本発明は、サンプル中でADAを決定するための改善された方法に関する。この本発明の局面は、とりわけ、抗原それ自体がサンプル中でADAの定量決定に影響するということを見出したことから生じる。実験のセクションに示されるとおり、試験サンプル中で抗原の存在下で、ADAの測定される量は、実質的に過大評価され、該試験を役に立たない、信頼性のないものにする。本発明は、最初に、サンプル中で抗原を中和することにより、信頼性のある測定を得ることができることを示す。本発明は、したがって、サンプル中の(インビトロ)抗薬物抗体(ADA)を免疫検出するための方法であって、該薬物は標的抗原に対する治療抗体であり、該方法は、
a)サンプル中の抗原の存在を確認すること;
b)存在するとき、該サンプル中の該抗原を中和すること;および
c)該サンプル中の該ADAの存在または量を免疫検出すること
を含む、方法に関する。
a)存在し得る該抗原を中和するために、サンプルを処理すること;および
b)該サンプル中の該ADAの存在または量を免疫検出すること
を含む、方法に関する。
−反応前に、酸溶液をサンプルに加え、pHを約4より下に低下させること;
−室温で酸性サンプルをインキュベートすること;および
−反応前に、塩基性溶液、例えば、TRISバッファーまたはリン酸バッファーまたは炭酸バッファーまたはホウ酸バッファーを酸性サンプルに加え、酸を中和し、pHを4より上、一般的に5から9、さらに一般的に6から8に回復させること
を含む。
抗薬物抗体(「ADA」)は、治療抗体の効果を減少、低下または中和する。したがって、対象由来のサンプル中のこれらのADAの検出は、処置の過程にわたって患者をモニタリングする方法ならびに治療を改善する方法を示す。ADA力価が増加するとき、薬物の治療効果が減少または中和されることを予期することができる。このような状況において、次に、処置プロトコールを、例えば、異なる薬物を使用するように変化させることが推奨される。
−該治療抗体、
−該抗原、および
−該治療抗体に対する抗薬物抗体;
の存在または量を決定し、患者プロフィールを得ることを含み、該患者プロフィールは該処置に対する該応答性を示す、方法に関する。
T0:対象は病気であり、処置されていない。
T1−T2:対象は処置され、処置に対して応答する。本発明者らにより試験されたサンプルは、ほとんどの処置された患者がこのカテゴリー範囲内に入ることを示す。
T3について:対象は処置されるが、応答しない。治療抗体は、ADAにより中和される。処置は効率的ではなく、変更されるべきである。
さらなる好ましい態様において、本発明の方法は、上記の値またはスコアを測定または(例えば、臨床記録から)集められ得るさらなる患者データと組み合わせて、試験をさらに精密化することを含む。特定の態様において、したがって、本発明の方法は、サイトカイン、ホルモンおよび成長因子、リウマチ因子および特定の抗体から選択され得る1つまたはいくつかのさらなる抗原の存在または量を決定することをさらに含む。このようなさらなる因子の特定の好ましい例は、以下のものを含む:
−サイトカインおよびケモカイン:IL1、IL6、IL8、IL10、ILK12、IL17、IL23、GM−CSF、IFNガンマ、ProMPP1および/またはProMPP3;
−自己免疫性抗体:抗核抗体(二本鎖DNA(dsDNA)に対するANA抗体)
−生物学的パラメーターおよび血液学的パラメーター:C反応性タンパク質(CRP)、RFリウマチ因子、血清アミロイドA、IgG、IgA、IgM、ヘモグロビン、赤血球沈降速度(ESR)、白血球および血小板数、CD19−B細胞の数、CD3_、CD4_、CD8_、CD4_,CD25_、および/またはCD8_、HLA−DR_T細胞の数
−患者パラメーター:例えば、性別、VS、年齢またはDAS28。体重、
−処置パラメーター:薬量学
Wn:処置の影響に対するこれらのパラメーターの重要性による、それぞれのパラメーターに対する重みである。
{TNF}:TNFのスコア因子。測定されるTNFの濃度による、モニタリングスコアに対するTNF影響。
{抗−TNF}:抗−TNFのスコア因子。測定される抗−TNFの濃度による、モニタリングスコアに対する抗−TNF影響。抗−TNFのスコア因子のスコア因子は、「薬量学」依存である(臨床データセットにおいて利用できる情報)。
{ADA}:ADAのスコア因子。測定されるADAの濃度による、モニタリングスコアに対するADA影響。
{CRP}:CRPのスコア因子。臨床データセットにより提供されるC反応性タンパク質の濃度による、モニタリングスコアに対するCRP影響。
{ESR}:ESRのスコア因子。臨床データセットにより提供される赤血球沈降速度による、モニタリングスコアに対するESR影響。沈降速度は「年齢および性別」依存である;臨床データセットにおける情報)。
本発明者らは、検出されるTNFアルファの生物学的活性が、処置に対して応答しない患者であることを決定した(図5のエリアT3およびT4、参照)、該活性は、TNFアルファサンプルへの暴露時に標的細胞溶解を評価することにより検出した。本発明者らの結果は、驚くべきことに、該TNFアルファが生物学的に不活性であることを示す。これらの結果は全く予期されておらず、抗−TNFアルファ処置を受けている患者が循環不活性なTNFアルファを有していることは報告されていない。本発明者らの結果は、不活性なTNFアルファレベルが抗−TNF処置に対する患者の応答の喪失と相関することをさらに示す。このような不活性なTNFアルファの存在は、興味深い。本発明者らは、TNFアルファが最初に抗−TNAアルファ治療抗体により捕捉され、次にADAが治療抗体分子に結合したとき放出されるという仮説を立てる。ADAから放出されるTNFアルファは、ADA結合により引き起こされる立体構造または構造変化の結果として、不活性である(または不活性化される)。
−サンプル中で、治療抗体に対する抗薬物抗体の存在または量を検出するための1つまたはいくつかの試薬;
−サンプル中で、該治療抗体の標的抗原を中和する1つまたはいくつかの試薬
を含むキットである。
実験のセクションにおいて、全ての用量は、標準に関して較正された量である。TNFの用量(pg/ml)は、国際標準を用いて決定する。薬物の用量(μg/ml)は、製薬会社により与えられる濃度値を用いて決定する。ADAの用量(ng/ml)は、標準としてウサギポリクローナル抗体を用いて決定する。ウサギ(origin Hyla)を、抗−TNF免疫グロブリンのFabもしくはFab’2フラグメントまたはヒトP75TNF受容体で免疫化する。ADAヒト標準の定量化は、ビウレットの方法(比色分析によるタンパク質の用量)により得られる。
薬物をポリスチレンマイクロタイタープレート上に被覆する。
・最初に、酸溶液、例えば、酢酸溶液をサンプルに加える。酸性サンプルを、室温で約5分インキュベートする。
・次に、塩基性溶液、例えば、TRIS溶液を酸性サンプルに加え、酸溶液を中和する。
・次に、サンプル(希釈されているか、または希釈されていない)を抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・ビオチン化薬物を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化薬物と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、抗−エタネルセプト抗体の量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
該試験は、血清または血漿上で行うべきである。TNFαは溶液中で不安定であるので、血液採取直後のサンプルを使用することが好ましい。決定を即座に行わないとき、サンプルは冷凍すべきである。何らかの非特異的結合を回避するために、6か月以上冷凍されたか、または濁っているサンプルは、遠心し、濾過すべきである。
モノクローナル抗−TNFα抗体をポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・抗−TNFαビオチン化抗体を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−TNFα抗体と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、TNFαの量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、pg/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルのTNFαの量の定義を可能にする。
TNFαをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・抗−ヒトIgGビオチン化抗体を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−IgG抗体と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、エタネルセプトの量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、μg/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルのエタネルセプトの量の定義を可能にする。
エタネルセプトをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・ビオチン化エタネルセプトを加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化エタネルセプトと形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、抗−エタネルセプト抗体の量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、ng/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルの抗−エタネルセプト抗体の量の定義を可能にする。
処置の過程中、3つのパラメーター(TNF、エタネルセプト、抗−エタネルセプト)の割合の漸進的変化を、ヒト対象において本発明にしたがってモニタリングした。Rheumatoid患者(患者1)由来の血清サンプルを、エタネルセプトの第1の注入前に試験した。該結果は以下に示される:
該試験は、血清または血漿上で行った。TNFαは溶液中で不安定であるので、サンプルは、血液採取直後に使用するか、または冷凍した。何らかの非特異的結合を回避するために、6か月以上冷凍されたか、または濁っているサンプルは、遠心し、濾過した。
モノクローナル抗−TNFα抗体をポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・抗−TNFαビオチン化抗体を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−TNFα抗体と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、TNFαの量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、pg/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルのTNFαの量の定義を可能にする。
TNFαをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・抗−ヒトIgGビオチン化抗体を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−IgG抗体と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、アダリムマブの量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、μg/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルのアダリムマブの量の定義を可能にする。
アダリムマブをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・ビオチン化アダリムマブを加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化アダリムマブと形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、抗−アダリムマブ抗体の量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、ng/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルの抗−アダリムマブ抗体の量の定義を可能にする。
処置の過程中、3つのパラメーター(TNF、アダリムマブ、抗−アダリムマブ)の割合の漸進的変化を、本発明を使用してモニタリングした。
リウマチ性関節炎患者(患者2)由来の血清サンプルを、アダリムマブ(W0)の第1の注入前、およびアダリムマブ(W6、W21、W30、W39)の後の注入前に試験した。
該試験は、血清または血漿上で行った。TNFαは溶液中で不安定であるので、サンプルは、血液採取直後に使用するか、または冷凍した。何らかの非特異的結合を回避するために、6か月以上冷凍されたか、または濁っているサンプルは、遠心し、濾過した。
モノクローナル抗−TNFα抗体をポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・抗−TNFαビオチン化抗体を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−TNFα抗体と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、TNFαの量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、pg/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルのTNFαの量の定義を可能にする。
TNFαをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・抗−ヒトIgGビオチン化抗体を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−IgG抗体と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、インフリキシマブの量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、μg/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルのインフリキシマブの量の定義を可能にする。
インフリキシマブをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・ビオチン化インフリキシマブを加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化インフリキシマブと形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、抗−インフリキシマブ抗体の量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、ng/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルの抗−インフリキシマブ抗体の量の定義を可能にする。
処置の過程中、3つのパラメーター(TNF、インフリキシマブ、抗−インフリキシマブ)の割合の漸進的変化を、ヒト対象においてモニタリングした。
第1のリウマチ性関節炎患者(患者3)において、血清サンプルは、インフリキシマブ(W2)の第2の注入前およびインフリキシマブ(W6、W14、W28、W42、W56)の後の注入前に試験した。
該試験は、血清または血漿上で行った。TNFαは溶液中で不安定であるので、サンプルは、血液採取直後に使用するか、または冷凍した。何らかの非特異的結合を回避するために、6か月以上冷凍されたか、または濁っているサンプルは、遠心し、濾過した。
モノクローナル抗−TNFα抗体をポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・抗−TNFαビオチン化抗体を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−TNFα抗体と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、TNFαの量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、pg/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルのTNFαの量の定義を可能にする。
TNFαをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・ビオチン化抗−PEG抗体を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−PEG抗体と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、インフリキシマブの量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、μg/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルのセルトリズマブペゴールの量を定義させる
セルトリズマブペゴールをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・ビオチン化セルトリズマブペゴールを加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化セルトリズマブペゴールと形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、抗−インフリキシマブ抗体の量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、ng/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルの抗−セルトリズマブペゴール抗体の量の定義を可能にする。
セルトリズマブペゴールをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・ビオチン化抗−ヒトIgGおよびビオチン化抗−ヒトIgMを加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−ヒトIgGおよび抗−ヒトIgMと形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、抗−インフリキシマブ抗体の量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、ng/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルの抗−セルトリズマブペゴール抗体の量の定義を可能にする。
該試験は、血清または血漿上で行った。TNFαは溶液中で不安定であるので、サンプルは、血液採取直後に使用するか、または冷凍した。何らかの非特異的結合を回避するために、6か月以上冷凍されたか、または濁っているサンプルは、遠心し、濾過した。
モノクローナル抗−TNFα抗体をポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・抗−TNFαビオチン化抗体を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−TNFα抗体と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、TNFαの量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、pg/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルのTNFαの量の定義を可能にする。
TNFαをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・抗−ヒトIgGビオチン化抗体を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−IgG抗体と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、インフリキシマブの量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、μg/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルのゴリムマブの量の定義を可能にする。
インフリキシマブをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・ビオチン化ゴリムマブを加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化ゴリムマブと形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、抗−インフリキシマブ抗体の量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、ng/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルの抗−ゴリムマブ抗体の量の定義を可能にする。
TNF活性は、L929細胞毒性アッセイ(Bloquel Cら (2004) Hum Gene Ther. 15:189-201)を使用することにより評価した。TNF血清サンプルの連続希釈物をL929細胞とインキュベートし、生存細胞数をMTTダイイング(dying)アッセイにより決定した。
該試験は、血清または血漿上で行った。TNFαは溶液中で不安定であるので、サンプルは、血液採取直後に使用するか、または冷凍した。何らかの非特異的結合を回避するために、6か月以上冷凍されたか、または濁っているサンプルは、遠心し、濾過した。それぞれの患者において、処置中の異なる時点で検出を行った。
モノクローナル抗−TNFα抗体をポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・抗−TNFαビオチン化抗体を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−TNFα抗体と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、TNFαの量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、pg/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルのTNFαの量の定義を可能にする。
TNFαをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・抗−ヒトIgGビオチン化抗体を加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化抗−IgG抗体と形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、インフリキシマブの量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、μg/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルのインフリキシマブの量の定義を可能にする。
インフリキシマブをポリスチレンマイクロタイタープレート(8ウェルの4片)上に被覆する。
・最初に、希釈サンプルを抗体被覆ウェルに加え、結合させる。インキュベーション後、非結合タンパク質を洗浄により除去する。
・ビオチン化インフリキシマブを加える。インキュベーション後、非結合抗体を洗浄により除去する。
・次に、セイヨウワサビペルオキシダーゼ標識ストレプトアビジンを加える。該ストレプトアビジンは、ビオチン化インフリキシマブと形成される複合体に結合する。インキュベーション後、ウェルを再び洗浄し、あらゆる過剰の抱合体を除去する。
・結合酵素は、基質TMB(3,3’,5,5’テトラメチルベンジジン)の添加により示される。色強度は、抗−インフリキシマブ抗体の量に比例する。
・H2SO4(0.25M)を添加して、酵素反応を停止させる。
・H2SO4(0.25M)による該反応停止後、光学濃度は、450nmで分光光度計により読む。
較正範囲は、ng/mLにおいて示されるそれぞれの患者サンプルの抗−インフリキシマブ抗体の量の定義を可能にする。
−[CRP]:CRP濃度、mg/Lにて示される
−ESR:赤血球沈降速度、mm/hにて示される
−薬量学:薬量学が正常であるか、薬量学が正常薬量学よりも高いかを知るため
−年齢、性別、体重。
{TNF}:測定されたTNFの濃度によるTNFのスコア因子。例として:
10pg/mlより小さい測定されたサンプルに対するスコア因子は1である。
10から100pg/mlの測定されたサンプルに対するスコア因子は4である。
100pg/mlより大きい測定されたサンプルに対するスコア因子は10である。
正常薬量学を有する患者において:
0.1μg/mlより小さい測定されたサンプルに対するスコア因子は10である。
0.1から0.5μg/mlの測定されたサンプルに対するスコア因子は6である。
0.5から1.8μg/mlの測定されたサンプルに対するスコア因子は4である。
1.8μg/mlより大きい測定されたサンプルに対するスコア因子は1である。
0.1μg/mlより小さい測定されたサンプルに対するスコア因子は12.5である。
0.1から0.5μg/mlの測定されたサンプルに対するスコア因子は10である。
0.5から1.8μg/mlの測定されたサンプルに対するスコア因子は7.5である。
1.8μg/mlより大きい測定されたサンプルに対するスコア因子は1.25である。
10ng/mlより小さい測定されたサンプルに対するスコア因子は1である。
10から200ng/mlの測定されたサンプルに対するスコア因子は5である。
200ng/mlより大きい測定されたサンプルに対するスコア因子は10である。
6mg/Lより小さい測定されたサンプルに対するスコア因子は1である。
6から50mg/Lの測定されたサンプルに対するスコア因子は4である。
50mg/Lより大きい測定されたサンプルに対するスコア因子は10である。
15mm/hより小さい測定されたサンプルに対するスコア因子は1である。
15から20mm/hの測定されたサンプルに対するスコア因子は4である。
20mm/hより大きい測定されたサンプルに対するスコア因子は10である。
それぞれのパラメーターからの全てのスコア因子は、処置に対するこれらのパラメーターの影響による重み因子(Wn)と関連する。
例として:
TNFの重み因子は15%である。
抗−TNFの重み因子は30%である。
ADAの重み因子は35%である。
CRPの重み因子は10%である。
ESRの重み因子は10%である。
7.1.インフリキシマブで処置されたリウマチ性関節炎患者の分析
本発明者らは、処置の過程中の異なる時点で、インフリキシマブで処置されたリウマチ性関節炎患者由来の血清サンプルを試験した。以下の表Aはそれぞれの患者について示す:
−TNF、抗−TNF(インフリキシマブ)およびADA(抗−インフリキシマブ)の測定されるレベル
−臨床データセット:CRP、ESRおよび薬量学からの情報
−それぞれのパラメーターに対するスコア因子
−それぞれのパラメーターに対する重み因子
−モニタリングスコアの結果
−全臨床データセットによる処置に対する患者応答:応答(R)、非応答または非完全応答(NR)、処置開始時(T0)
本発明者らはまた、炎症性疾患(強直性脊椎炎、クローン病、乾癬など)の血清サンプルを試験した。患者をインフリキシマブで処置した。サンプルを処置の過程中の異なる時点で分析した。以下の表Bはそれぞれの患者について示す:
−TNF、抗−TNF(インフリキシマブ)およびADA(抗−インフリキシマブ)の測定されるレベル
−臨床データセット:CRP、ESRおよび薬量学からの情報
−それぞれのパラメーターに対するスコア因子
−それぞれのパラメーターに対する重み因子
−モニタリングスコアの結果
−全臨床データセットによる処置に対する患者応答:応答(R)、非応答または非完全応答(NR)、処置開始時(T0)
Claims (16)
- サンプル中の抗薬物抗体(ADA)を免疫検出するための方法であって、該薬物は標的抗原に対する治療抗体であり、該方法は、
a)サンプル中の抗原の存在を確認すること;
b)存在するとき、該サンプル中の該抗原を中和すること;および
c)該サンプル中の該ADAの存在または量を免疫検出すること
を含む、方法。 - 治療抗体処置に対する患者の応答性を検出するための方法であって、該治療抗体は標的抗原に対するものであり、該方法は、該患者由来のサンプル中で、
−該治療抗体、
−該抗原、および
−該治療抗体に対する抗薬物抗体;
の存在または量を決定し、患者プロフィールを得ることを含み、該患者プロフィールは該処置に対する該応答性を示す、方法。 - 該決定が、免疫測定法、好ましくはELISAまたは免疫捕獲により行われる、請求項2に記載の方法。
- 該抗原がTNFαである、請求項1から3のいずれかに記載の方法。
- 薬物が、インフリキシマブ、エタネルセプト、アダリムマブ、ゴリムマブおよびセルトリズマブペゴールから選択される抗−TNFα抗体である、請求項4に記載の方法。
- 患者が自己免疫性または炎症性疾患を有する、請求項2から5のいずれかに記載の方法。
- 該患者由来のサンプル中で、C反応性タンパク質(CRP)または赤血球沈降速度(ESR)の存在または量を決定することをさらに含む、請求項2から6のいずれかに記載の方法。
- 患者の処置をモニターまたは調整するための、請求項2から7のいずれかに記載の方法。
- サンプルが体液サンプル、好ましくは血清または血漿サンプルである、請求項1から8のいずれかに記載の方法。
- 抗−TNAアルファ処置を受けている患者をモニターするための請求項8に記載の方法であって、該方法は、該患者由来のサンプル中で、
−該治療抗体、
−該抗原、および
−該治療抗体に対する抗薬物抗体;
の存在または量を決定し、患者プロフィールを得ることを含み、該患者プロフィールは、該患者が該処置に対して応答するか否かを示し、それにより、処置の調整を可能にする方法。 - TNFアルファレベルが10pg/ml未満であり、治療抗体レベルが1μg/mlを越えており、ADAレベルが50ng/ml未満であるとき、患者が応答性であり、該処置が持続または減少さえされるべきである、請求項10に記載の方法。
- 不活性なTNFアルファのレベルが検出されるときの、前記請求項のいずれかに記載の方法。
- 不活性なTNFアルファのレベルが10pg/mlを越えるとき、患者は該処置に対して非応答性である、請求項12に記載の方法。
- 治療抗体処置に対する患者の応答性を検出するための方法であって、該治療抗体はTNFアルファに対するものであり、該方法は該患者由来のサンプル中で、不活性なTNFアルファの存在または量を決定し、該存在または量は、該処置に対する該患者の応答性が低いまたは低下していることを示すことを含む、方法。
- 抗−TNFアルファ処置を受けている患者をモニターするための方法であって、該方法は該患者由来のサンプル中で、不活性なTNFアルファの存在または量を決定し、該存在または量は、該処置に対する該患者の応答性を示すことを含む、方法。
- サンプル中で、
−標的抗原に対する治療抗体、
−該抗原、および
−該治療抗体に対する抗薬物抗体
の存在または量を検出するための試薬を含むキット。
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