JP2011523553A - ＰｒｆＡ＊変異株リステリアを含む組成物およびその使用法 - Google Patents

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Abstract

本発明は、ＰｒｆＡを恒常的に発現し、かつＰｒｆＡ応答性制御因子と作動可能に連結された、腫瘍または感染病原体抗原のようなポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む、組換えリステリアを提供する。免疫応答の誘導もしくは増強のためのおよび／または疾患治療における、リステリアおよびその組成物の使用法が提供される。当該細菌の作製法も提供される。
【選択図】図１Ａ

Description

連邦支援による研究または開発に関する記述
本発明は、米国国立衛生研究所により授与された助成５Ｕ０１ＡＩ０７０８３４−０２およびＳＢＩＲ助成５Ｒ４４ＣＡ１０１４２１−０３の下、部分的に米国政府の支援によりなされたものである。政府は、本発明において一定の権利を有し得る。
本発明の分野は、概略的には、異種ポリペプチドを含めたポリペプチド発現に有用な、新規な組換えリステリアに関する。具体的には、本発明は、ワクチン組成物において有用なＰｒｆＡにおける変異を含む組換え細菌に関する。
他の組換えワクチンプラットフォームと比較した組換えリステリア・モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）（Ｌｍ）に基づくワクチンの利点が認識されたことにより、その進行中の開発および早期臨床試験における現在の評価が促進されてきた。これらの利点には、製造業のための直接発酵法のような実用的な事柄およびその他の望ましい特性、例えば、防御的Ｌｍ特異的免疫の存在下でも反復投与可能であることなどが含まれる（Ｂｏｕｗｅｒ，Ｈ．Ｇ．ら，（１９９９）Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｉｔｙ ６７：２５３−２５８；Ｓｔａｒｋｓ，Ｈ．ら，（２００４）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１７３：４２０−４２７；Ｓｔｅｖｅｎｓ，Ｒ．ら，（２００５）Ｖａｃｃｉｎｅ ２３：１４７９−１４９０）。このワクチンプラットフォームに対する説得力のある論拠は、マウスのリステリア症モデルにおいてよく知られた関連要因、すなわち、リステリア・モノサイトゲネスによる単回免疫化に応答して誘導される、長命な機能的ＣＤ４＋およびＣＤ８＋記憶Ｔ細胞に基づいている（Ｈａｒｔｙ，Ｊ．Ｔ．ら，（２０００）Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１８：２７５−３０８；Ｐａｍｅｒ，Ｅ．Ｇ．（２００４）Ｎａｔ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．４：８１２−８２３）。現在、頑強な先天性および後天性細胞性免疫による、いくつかの動物モデルにおける組換えリステリア・モノサイトゲネスワクチンの顕著な有効性を実証する数多くの刊行物が存在する（Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔ，Ｄ．Ｇ．ら，（２００４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １０１：１３８３２−１３８３７；Ｂｒｕｈｎ，Ｋ．Ｗ．ら，（２００７）Ｍｉｃｒｏｂｅｓ Ｉｎｆｅｃｔ．９：１２２６−１２３５；Ｐａｔｅｒｓｏｎ，Ｙ．およびＭａｃｉａｇ，Ｐ．Ｃ．（２００５）Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．７：４５４−４６０）。癌および腫瘍の治療に対する組換えリステリア・モノサイトゲネスワクチンの使用が報告されている（例えば、Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔら，（２００４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １０１：１３８３２−１３８３７；Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔら，（２００５）Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄ．１１：８５３−８６０）；Ｓｔａｒｋｓら，（２００４）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１７３：４２０−４２７；Ｓｈｅｎら，（１９９５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９２：３９８７−３９９１を参照されたい）。リステリアに基づくワクチンも、例えば、米国特許出願公開第２００５／０２８１７８３号、同第２００５／０２４９７４８号、同第２００４／０２２８８７７号および同第２００４／０１９７３４３号に報告されており、これらはそれぞれ、その内容全体が参照により本明細書に組み込まれる。したがって、組換えＬｍに基づくワクチンは、癌のみならず、ＨＩＶ、ＨＣＶ、結核およびマラリアのような感染症を予防または治療するための機能的な細胞性免疫を誘発する効果的なワクチンに対する、緊急で広範な必要性に対処するための新たなアプローチを示す。後の数年間の結果により、前臨床研究において観察される強力な活性が、ヒトにおける有効性へと変わるか否かが示されるであろう。
食品媒介性の病原菌であるリステリア・モノサイトゲネスは、免疫力の低下した個体において強い病原性を有するため、弱毒化ワクチンプラットフォームがヒトにおける評価へと発展することが不可欠である（Ｌｏｒｂｅｒ，Ｂ．（１９９７）Ｃｌｉｎ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｄｉｓ．２４：１−９）。野生型菌株１０４０３Ｓに由来する弱毒生ワクチンおよび光化学的不活化ワクチンのプラットフォームが共に記載されている（Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔ，Ｄ．Ｇ．ら，（２００５）Ｎａｔ．Ｍｅｄ．１１：８５３−８６０；Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔ，Ｄ．Ｇ．ら，（２００４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １０１：１３８３２−１３８３７）。弱毒化生ワクチン菌株は、野生型細菌による感染の主要標的器官である肝臓内での増殖を協同して制限するａｃｔＡおよびｉｎｌＢ毒性遺伝子（リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ）の両方が欠失している。この欠失の組合せにより、感染肝常在性クッパー細胞からのＡｃｔＡ仲介による細胞間伝播を介した肝細胞内への間接的伝播のみならず、ＩｎｌＢ−肝細胞増殖因子受容体の相互作用を介した直接的な肝細胞感染が阻止される（Ｄｒａｍｓｉ，Ｓ．ら，（１９９５）Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．１６：２５１−２６１）。血清肝機能検査（ＬＦＴ）であるアラニンアミノ基転移酵素（ＡＬＴ）およびアスパラギン酸アミノ基転移酵素（ＡＳＴ）により測定されるように、マウスにおける肝毒性は、リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢを静脈内にした（ＩＶ）マウスにおいて野生型Ｌｍに比べ著しく低い。さらに、リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢに基づく菌株を用量漸増的に投与されたカニクイザルで実施された２つのＧＬＰ毒性試験において、肝毒性は最小でありかつ用量制限性ではなかった（未発表データ）。リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢワクチン株は、進行癌を有する成人被検体において行われている、ＦＤＡに認可された２つの進行中の第１相臨床試験の基礎をなす。不活化されているが代謝的に活性（ＫＢＭＡ）と呼ばれる第二のワクチンプラットフォームは、リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢに由来し、ヌクレオチド除去修復（ＮＥＲ）経路のＤＮＡ修復酵素をコードする遺伝子であるｕｖｒＡおよびｕｖｒＢ両方の欠失も有する。ＫＢＭＡ（リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ΔｕｖｒＡＢ）ワクチンは、合成ソラレンであるＳ−５９と長波長紫外線との併用処置による光化学的不活化に対して極めて感受性が高い。不活化されている間に、ＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチンは、その遺伝子産物を一過性に発現することができ、これによりファゴリソソームを逃れ、野生型リステリア・モノサイトゲネスおよびワクチニアウイルスによる攻撃に対する機能的細胞性免疫および防御を誘導することができる（Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔ，Ｄ．Ｇ．ら，（２００５）Ｎａｔ．Ｍｅｄ．１１：８５３−８６０）。
ＰｒｆＡは、細胞内で活性化されて中心的な毒性調節因子として働く転写因子であり、これが、哺乳動物におけるリステリア・モノサイトゲネスの増殖生活様式の「ジキル博士とハイド氏（Ｄｒ．Ｊｅｋｙｌｌ ａｎｄ Ｍｒ．Ｈｙｄｅ）」的分裂として、または腐生菌として記述されてきたことを可能にしている（Ｇｒａｙ，Ｍ．Ｊ．ら，（２００６）Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．７４：２５０５−２５１２）。ＰｒｆＡノックアウト株は非毒性である（Ｖａｚｑｕｅｚ−Ｂｏｌａｎｄ，Ｊ．Ａ．ら，（２００１）Ｃｌｉｎ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｒｅｖ．１４：５８４−６４０）。野生型Ｌｍでは、ＰｒｆＡは宿主細胞感染時に発現され、続いて、それぞれリステリオリシンＯ（ＬＬＯ）およびホスホリパーゼＣをコードするｈｌｙおよびｐｌｃＡ遺伝子を含むｐｒｆＡレギュロンの発現を誘導する。これらの遺伝子産物が一緒になって、ファゴリソソームの苛酷な微小環境からの菌の逃避を仲介する。ＰｆｒＡはまた、非食細胞の受容体介在性感染を促進するリガンドをコードするインターナリン遺伝子（例えば、ｉｎｌＡおよびｉｎｌＢ）の転写を制御する（Ｓｃｏｒｔｔｉ，Ｍ．ら，（２００７）Ｍｉｃｒｏｂｅｓ Ｉｎｆｅｃｔ．）。ＰｒｆＡ依存性プロモーターを、異種遺伝子をｈｌｙまたはａｃｔＡプロモーターと連結させることにより、組換えリステリア・モノサイトゲネスワクチンにおけるＡｇ発現を駆動するのに利用することができる（Ｇｕｎｎ，Ｇ．Ｒ．ら，（２００１）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ １６７：６４７１−６４７９；Ｓｈｅｎ，Ｈ．ら，（１９９５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９２：３９８７−３９９１）。ＰＡ依存性遺伝子の恒常的活性化をもたらすＰｒｆＡにおけるアミノ酸置換は、まとめてＰｒｆＡ＊変異体として知られている（Ｒｉｐｉｏ，Ｍ．Ｔ．ら，（１９９７）Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１７９：１５３３−１５４０；Ｓｃｏｒｔｔｉ，Ｍ．ら，（２００７）Ｍｉｃｒｏｂｅｓ Ｉｎｆｅｃｔ．）。高溶血性の表現型を有する野生型リステリア・モノサイトゲネス株が、ＰｒｆＡに、最も一般的にはＧ１４５Ｓに変異を有し、このことが、１０４０３Ｓのような実験用の菌株に比べて毒性を増加させている可能性がある（Ｒｉｐｉｏ，Ｍ．Ｔ．ら，（１９９７）Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１７９：１５３３−１５４０）。同様に、化学的変異誘発法により選択された、ＰｒｆＡ依存性遺伝子の発現が増加したその他のＰｒｆＡ変異体でも、マウスにおける毒性の増加が見られた（Ｓｈｅｔｒｏｎ−Ｒａｍａ，Ｌ．Ｍ．ら，（２００３）Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．４８：１５３７−１５５１）。免疫化の前にＰｒｆＡ依存性遺伝子を導入することにより、多様な機構を通じてワクチンの効果を増強させる可能性があり、このような機構には、より強力なＣＤ４＋およびＣＤ８＋Ｔ細胞応答を引き起こす、宿主細胞の細胞質中でのファゴリソソーム逃避の増加およびＰｒｆＡ依存性コード抗原の発現が含まれる。
効果の増大したワクチンの開発のために、感染細胞、特に抗原提示細胞の細胞質への、リステリア仲介による異種抗原送達法における向上が望まれる。Ｌｍに基づくワクチンの最終的な臨床開発を促進するために、その効力を増強するか、またはその毒性を軽減する改良法が引き続き必要とされている。
本発明は、異種抗原送達ベクターとして有用な、毒性遺伝子の恒常的変異体活性化因子を含むリステリアを提供する。ある実施形態では、リステリアから感染細胞の細胞質への異種ポリペプチドおよび／またはポリヌクレオチドの送達は、ＰｒｆＡレギュロンの恒常的活性化により増強される。リステリアを含む医薬組成物およびワクチンのような組成物が提供される。哺乳動物において免疫応答を誘導するまたは疾患を治療もしくは予防するための、リステリアの使用法がさらに提供される。
一態様では、本発明は、ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドならびにＰｒｆＡ応答性調節エレメントを含む組換えポリヌクレオチドおよび異種ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む、組換えリステリア菌を提供する。異種ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドは、ＰｒｆＡ応答性調節エレメントと作動可能に連結されている。ある態様では、異種ポリペプチドは非細菌性である。本発明のある態様では、ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドは、Ｙ６３Ｃ、Ｅ７７Ｋ、Ｌ１４９Ｆ、Ｇ１４５Ｓ、Ｇ１５５ＳおよびＳ１８３Ａからなる群より選択される変異体を含む。ある態様では、ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドはＧ１５５Ｓ変異である。本発明のある態様では、組換えポリヌクレオチドは、シグナルペプチドおよび異種ポリペプチドを含む融合タンパク質をコードする。本発明のある態様では、ＰｒｆＡ応答性調節エレメントは、ｈｌｙプロモーター、ｐｌｃＡプロモーター、ｐｌｃＢプロモーター、ｍｐｌプロモーター、ｈｐｔプロモーター、ｉｎｌＣプロモーター、ｉｎｌＡプロモーター、ｉｎｌＢプロモーター、ＰｒｆＡプロモーターおよびａｃｔＡプロモーターからなる群より選択される。ある態様では、ＰｒｆＡ応答性調節エレメントはａｃｔＡプロモーターである。本発明のある態様では、シグナルペプチドは、リステリア・モノサイトゲネス由来ＡｃｔＡシグナルペプチド、リステリア・モノサイトゲネス由来ＬＬＯシグナルペプチド、ラクトコッカス・ラクティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ）由来Ｕｓｐ４５シグナルペプチド、炭疽菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｎｔｈｒａｃｉｓ）由来防御抗原シグナルペプチド、リステリア・モノサイトゲネス由来ｐ６０シグナルペプチド、バチルス・スブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ）由来ＰｈｏＤシグナルペプチド、ｓｅｃＡ２シグナルペプチドおよびＴａｔシグナルペプチドからなる群より選択されるシグナルペプチドである。ある態様では、シグナルペプチドは、リステリア・モノサイトゲネス由来ＡｃｔＡシグナルペプチドである。ある態様では、融合タンパク質は、ＡｃｔＡの最初の１００アミノ酸を含む。
本発明のある態様では、組換えリステリア菌は、腫瘍関連抗原、腫瘍関連抗原由来のペプチド、感染症抗原および感染症抗原由来のポリペプチドからなる群より選択される抗原を含む、異種ポリペプチドを含む。ある態様では、感染症抗原は、肝炎ウイルス、インフルエンザウイルス、ヒト免疫不全ウイルス、パピローマウイルス、単純ヘルペスウイルス１、単純ヘルペスウイルス２、サイトメガロウイルス、結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）、熱帯熱マラリア原虫（Ｐｌａｓｍｏｄｉｕｍ ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ）またはクラミジア・トラコマティス（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｔｒａｃｈｏｍａｉｔｉｓ）からなる群より選択される、ウイルスまたは異種感染病原体由来である。肝炎ウイルスの例としては、Ａ型肝炎ウイルス、Ｂ型肝炎ウイルスまたはＣ型肝炎ウイルスが挙げられるが、これらに限定されない。
本発明のある態様では、毒性遺伝子の恒常的変異体活性化因子を含むリステリアは、リステリア・モノサイトゲネス種に属する。ある態様では、組換えリステリア菌は、例えば、細胞間伝播、非食細胞内への侵入、増殖またはＤＮＡ修復のうちの１つまたは複数に関して弱毒化されている。ある場合には、リステリアは、ａｃｔＡ変異、ｉｎｌＢ変異、ｕｖｒＡ変異、ｕｖｒＢ変異、ｕｖｒＣ変異、核酸標的化化合物またはｕｖｒＡＢ変異／核酸標的化合物のうちの１つまたは複数により弱毒化されている。ある場合には、核酸標的化合物はソラレンである。ある態様では、本発明は、組換えＰｒｆＡ＊リステリア菌を提供し、ここでは、当該細菌が増殖に関して弱毒化されるように、核酸と直接反応する核酸標的化合物との反応により当該細菌の核酸が改変されている。ある場合には、細菌は、増殖に関して改変された細菌を弱毒化する核酸架橋を含む。ある場合には、細菌は、増殖に関してこの細菌を弱毒化するソラレン−核酸付加物を含む。ある場合には、細菌は、自身の改変された核酸を修復する細菌の能力を減弱させる遺伝子変異をさらに含む。本発明のある態様では、細菌は、ａｃｔＡ、ｉｎｌＢ、ｕｖｒＡおよびｕｖｒＢに不活化変異を含み、かつ細菌は、ソラレン−核酸架橋により増殖に関して弱毒化されている。本発明のある態様では、ＰｒｆＡ＊リステリアは、不活化されているが代謝的に活性（ＫＢＭＡ）である。
本発明は、組換えＰｒｆＡ＊リステリア菌と１つまたは複数の薬学的に許容される添加剤、アジュバントおよび共刺激分子とを含む、医薬組成物を提供する。ある態様では、組成物はさらに治療剤を含む。
本発明は、宿主における非リステリア抗原に対する免疫応答の誘導方法を提供し、この方法は、ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドをコードする組換えリステリア菌ならびにＰｒｆＡ応答性調節エレメントを含む組換えポリヌクレオチドおよびＰｒｆＡ応答性調節エレメントと作動可能に連結された抗原をコードする、異種ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含む組成物の有効量を、宿主に投与することを含む。ある態様では、本発明は、宿主における非リステリア抗原の免疫原性を増強する方法を提供する。ある態様では、本発明は、宿主における非リステリア感染または癌性状態を予防または治療する方法を提供する。ある態様では、抗原は、腫瘍関連抗原、腫瘍関連抗原由来のペプチド、感染症抗原および感染症抗原由来のポリペプチドからなる群より選択される。ある態様では、免疫応答は先天性免疫応答であり、ある態様では、免疫応答は後天性免疫応答である。本発明のある態様では、宿主はヒトである。本発明のある態様では、本発明の組換えリステリアは、ＰｒｆＡ＊組換えリステリアとの投与に応答して誘導されるコード抗原に対して特異的なＴ細胞の機能性を増強する。
本発明は、宿主における免疫応答を誘導または増強する方法を提供し、この方法では、本発明の組換えＰｒｆＡ＊リステリア菌の投与が繰り返される。ある態様では、本発明の組換えＰｒｆＡ＊リステリア菌が最初に投与され、次いで、非リステリア免疫原性組成物と共に１回または複数回投与される。ある場合には、非リステリア免疫原性組成物が最初に投与され、次いで、本発明の組換えＰｒｆＡ＊リステリア菌が１回または複数回投与される。
本発明のある態様では、異種ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドの発現が野生型ＰｒｆＡポリペプチドにより制御される組換えリステリア菌により誘導された抗原の免疫原性に比べて、抗原に対する免疫原性が増強される。ある場合には、免疫原性の増強は、ＭＣＰ−１、ＩＬ−６、ＩＦＮ−γ、ＴＮＦαまたはＩＬ−１２ｐ７０の発現増加を含む。
本発明は、組換えリステリア菌の調製法を提供する。例えば、ＰｒｆＡ応答性調節エレメントの制御下にある、異種ポリペプチドをコードする組換えポリヌクレオチドを、ＰｒｆＡ＊リステリア菌内に安定に導入する。ある場合には、異種ポリペプチドをシグナル配列と融合する。ある態様では、異種ポリペプチドをコードする組換えポリヌクレオチドを、リステリア染色体内に組み込む。ある場合には、異種ポリペプチドをコードする組換えポリヌクレオチドを、ｔＲＮＡａｒｇ遺伝子内にまたはリステリア染色体のａｃｔＡ遺伝子内に組み込む。ある態様では、ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドをコードする組換えポリヌクレオチドを、非機能性のｐｒｆＡ対立遺伝子を含むリステリア菌内に安定に導入する。
リステリア・モノサイトゲネスＰｒｆＡ＊ワクチン株の特徴付けを示す図である。（Ａ）ｐＰＬ２部位特異的組込みベクターを用いて、リンカー配列で間隔を置きＡｃｔＡ（ＡｃｔＡＮ１００）の最初の１００アミノ酸と融合させた、４つのワクチニアウイルスＴ細胞エピトープ（Ａ２４Ｒ、Ｃ４Ｌ、Ｋ３ＬおよびＢ８Ｒ）およびオボアルブミンＳＬ８エピトープを発現する、リステリア・モノサイトゲネスＱｕａｄｖａｃ株の構造。（Ｂ）酵母抽出物ブロスにおける異種タンパク質発現。（Ｃ）感染Ｊ７７４マクロファージ細胞における感染後７時間での異種Ａｇ発現。（Ｄ）感染ＤＣ２．４樹状細胞における感染後２．５時間での異種Ａｇ発現。（Ｅ）Ｊ７７４マクロファージにおける同質遺伝子のリステリア・モノサイトゲネスワクチン株の細胞内増殖。 ＰｒｆＡ＊ワクチン株により誘導された先天性および後天性免疫の向上を示す図である。（Ａ）５×１０６ｃｆｕのリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ＷＴ ｐｒｆＡ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１４５ＳおよびＰｒｆＡ＊ Ｙ６３Ｃ株の単回静脈内投与の８時間後に測定した血清サイトカイン／ケモカインレベル。サイトカイン／ケモカインは、サイトメトリービーズアレイ（ＣＢＡ）により測定した。各記号は１個体の動物を表す。少なくとも２つの実験のうちの代表的な１つの実験のデータである。（Ｂ、Ｃ）ＰｒｆＡ＊弱毒生ワクチン株は、より高い程度の抗原特異的免疫を誘導した。Ｃ５７ＢＬ／６マウスを、５×１０６ｃｆｕのリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ＷＴ ｐｒｆＡ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１４５ＳおよびＰｒｆＡ＊ Ｙ６３Ｃ株の静脈内投与により免疫化した。ワクチン接種７日後の応答ピーク時に、細胞内サイトカイン染色により抗原特異的Ｔ細胞応答を測定した。（Ｂ）各群の代表的な動物のドットブロットを示す。（Ｃ）５個体の動物からなる各群の平均±標準偏差を示す。 ＰｒｆＡ＊がＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチンの免疫原性を増強することを示す図である。（Ａ）１×１０８粒子のＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ＷＴ ｐｒｆＡ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１４５ＳおよびＰｒｆＡ＊ Ｙ６３Ｃ株の単回静脈内投与の８時間後に測定した血清サイトカイン／ケモカインレベル。サイトカイン／ケモカインは、サイトメトリービーズアレイ解析（ＣＢＡ）により測定した。各記号は１個体の動物を表す。（Ｂ、Ｃ）ＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスＰｒｆＡ＊株は、より高い程度の抗原特異的免疫を誘導した。Ｃ５７ＢＬ／６マウスを、１×１０８粒子のＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ＷＴ ｐｒｆＡ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１４５ＳおよびＰｒｆＡ＊ Ｙ６３Ｃ株の静脈内投与により免疫化した。ワクチン接種７日後の応答ピーク時に、細胞内サイトカイン染色により抗原特異的Ｔ細胞応答を測定した。（Ｂ）各群の代表的な動物のドットブロットを示す。（Ｃ）５個体の動物からなる各群の平均±標準偏差を示す。 誘導性Ｔ細胞応答のＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスＰｒｆＡ＊株による効力向上を示す図である。（Ａ、Ｂ）Ｃ５７ＢＬ／６マウスを、ＨＢＳＳ（左パネル）または１×１０８粒子のＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ＷＴ ｐｒｆＡ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１４５ＳおよびＰｒｆＡ＊ Ｙ６３Ｃ株を用いて、２週間間隔で２回、静脈内または筋肉内投与（図中に示す）により免疫化した。７日後に、マウスをｇＢ２（対照；中央ピーク）、Ａ２４Ｒ負荷標的（右ピーク）またはＢ８Ｒ負荷標的（左ピーク）による抗原投与を行って、インビボ細胞溶解活性を測定した。（Ａ）各群の代表的な動物のヒストグラムを示す。（Ｂ）静脈内または筋肉内投与によりワクチン接種したマウスのＡ４２ＲおよびＢ８Ｒに特異的なインビボ細胞溶解活性を示す。各記号は、１個体の動物を表す。（Ｃ）ＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ｉｎｌＢ／ＷＴ ｐｒｆＡまたはＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓの様々な投与量で、２週間間隔で２回ワクチン接種した後の、Ｂ８Ｒに特異的なインビボ細胞溶解活性を示す。各５個体の動物からなる群の平均±標準偏差を示す。（Ｄ）野生型リステリア・モノサイトゲネスの２回のＬＤ５０抗原投与に対する防御免疫を示す。Ｂａｌｂ／ｃマウスを、１×１０８粒子のＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ＷＴ ｐｒｆＡまたはＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓで１回、静脈内投与により免疫化した。ＨＢＳＳを対照として使用した。抗原投与３日後に脾臓を採取し、ＣＦＵ用に平板培養した。ＷＴ ｐｒｆＡとｐｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ間での防御のｌｏｇの差は、スチューデントｔ検定による判定で統計的に有意である。（Ｅ）１×１０７ｐｆｕのワクチニアウイルスによる腹腔内抗原投与後の卵巣におけるウイルス力価。Ｃ５７ＢＬ／６マウスを、１×１０８粒子のＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ＷＴ ｐｒｆＡまたはｐｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓで２回、静脈内にワクチン接種した。ワクチニアウイルス抗原投与の５日後にウイルス力価を測定した。各記号は１個体の動物を表す。ＷＴ ＰｒｆＡとＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ間での防御の対数の差は、スチューデントｔ検定による判定で統計的に有意である。 ＰｒｆＡ＊が、ＨＰＶ Ｅ７をコードするＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチンの免疫原性を増強することを示す図である。最後のワクチン接種７日後の応答ピーク時に、細胞内サイトカイン染色によりＨＰＶ Ｅ７特異的Ｔ細胞応答を測定した。（Ａ）リステリア生菌による単回ワクチン接種のデータ。（Ｂ）ＫＢＭＡによるプライムブーストワクチン接種のデータ。 ＰｒｆＡ＊が、ＨＰＶ Ｅ７をコードするＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチンの免疫原性を増強することを示す図である。最後のワクチン接種７日後の応答ピーク時に、細胞内サイトカイン染色によりＬＬＯ特異的Ｔ細胞応答を測定した。（Ａ）リステリア生菌による単回ワクチン接種のデータ。（Ｂ）ＫＢＭＡによる初回・追加ワクチン接種のデータ。 ＰｒｆＡ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１４５ＳおよびＰｒｆＡ＊ Ｙ６３Ｃのアミノ酸配列を示す図である。
発明の詳細な説明
I．序論
本発明は、リステリア内の毒性遺伝子の恒常的変異体活性化因子の制御下で抗原が発現された場合、その抗原に対する免疫応答が増強され得るという発見に一部基づく。リステリア・モノサイトゲネスの二分された生活様式は、「ジキル博士とハイド氏（Ｄｒ．Ｊｅｋｙｌｌ ａｎｄ Ｍｒ．Ｈｙｄｅ）」に例えられてきた。腐生菌としては、リステリアは環境中で無害な生活を送る。しかし、哺乳動物宿主に感染すると、リステリアは、哺乳動物の生理的条件下で、自身の増殖・繁栄を可能にする数多くの毒性遺伝子の発現により有害なものへと変わる。無害な腐生生活様式から有害な毒性の生活様式への切替えに中心的な役割を果たすのが、ＰｒｆＡタンパク質である。温度、ｐＨ、鉄濃度、炭水化物濃度および活性酸素種を含めた数々の刺激に応答したＰｒｆＡの活性化。ＰｒｆＡの変異体が、一部はＰｒｆＡ依存性遺伝子の恒常的発現により同定されてきた。このような恒常的ＰｒｆＡ変異体は、ＰｒｆＡ＊変異体と呼ばれている。ある場合には、恒常的ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドは、リステリア、例えば、Ｇ１５５Ｓ ＰｒｆＡ＊変異株において、高毒性の表現型を表すことが示されている。
本発明は、抗原に対する免疫応答を刺激するのに有用な組換えリステリア菌を提供する。本発明のある態様では、組換えリステリア菌は、ＰｒｆＡタンパク質の発現が恒常的であるような変異をｐｒｆＡ対立遺伝子内に含む。組換えリステリアは、ポリペプチド、例えば、ＰｒｆＡ応答性調節エレメントの制御下にある抗原をさらに含む。ある場合には、ポリペプチドは、シグナル配列がこのポリペプチドに連結されている融合タンパク質であり得る。ＰｒｆＡ応答性調節エレメントの例としては、ａｃｔＡプロモーター、ｈｌｙプロモーター、ｐｉｃＡプロモーター、ｉｎｌＡプロモーター、ｉｎｌＢプロモーターおよびｐｒｆＡプロモーターが挙げられるが、これらに限定されない。
本発明のある態様では、異種ポリペプチドは腫瘍抗原であり、本発明のある態様では、ポリペプチドは感染症関連抗原である。本発明のある態様では、異種ポリペプチドは非リステリアポリペプチドであり、本発明のある態様では、異種ポリペプチドは非細菌性である。
本発明のある態様では、リステリアはリステリア・モノサイトゲネスである。ある場合には、リステリアは、細胞間伝播および／または非食細胞内への侵入に関して弱毒化されている。ある場合には、リステリアは、ａｃｔＡおよび／またはｉｎｌＢに不活性化変異を含む。ある場合には、リステリアは、ａｃｔＡｉｎｌＢ二重欠失変異株である。ある場合には、リステリアは、少なくとも１つの核酸修復遺伝子、例えば、ｕｖｒＡ、ｕｖｒＢ、ｕｖｒＣまたは組換え修復遺伝子などに不活性化変異を含む。例えば、リステリアは、ｕｖｒＡＢ欠失変異株である。ある場合には、細菌は核酸架橋剤（例えば、ソラレン）をさらに含む。本発明のある態様では、リステリアは、不活化されているが代謝的に活性（ＫＢＭＡ）である。
上記態様のリステリアを含む医薬組成物、免疫原性組成物および／またはワクチンがさらに提供される。ある態様では、医薬組成物は薬学的に許容される担体をさらに含む。本発明のある態様では、リステリアはアジュバントをさらに含む。
本発明のある態様では、本発明のリステリアは、治療剤と組み合わせて使用される。ある場合には、リステリアは治療剤と共に投与され、ある場合には、リステリアは治療剤の前に投与される。ある場合には、リステリアは治療剤の後に投与される。
本発明は、本発明の組換えリステリアの使用法を提供する。ある場合には、本発明は、抗原に対する免疫応答の誘導方法を提供する。ある場合には、本発明は、抗原の免疫原性の増強方法を提供する。ある場合には、抗原の免疫原性は、野生型ＰｒｆＡポリペプチドの制御下においてリステリア内で発現された場合の抗原の免疫原性に比べて増強される。免疫原性の増強は、当該分野で公知の方法により測定され得る。ある態様では、免疫原性の増強は、免疫応答により誘導されることが知られている、サイトカイン、ケモカインおよびポリペプチドの発現増加を測定することにより測定され得る。例えば、ＭＣＰ−１、ＩＬ−６、ＩＦＮ−γ、ＴＮＦαおよび／またはＩＬ−１２ｐ７０。本発明のある態様では、免疫応答により誘導されることが知られている、サイトカイン、ケモカインおよびポリペプチドの発現増加は、野生型ＰｒｆＡポリペプチドの制御下においてリステリア内で発現された場合に抗原により誘導されるそれらの発現に比べて増加し得る。本発明は、感染または癌性状態の予防または治療法を提供する。
癌および腫瘍の治療のための、組換えリステリア・モノサイトゲネスワクチンの使用が報告されている（例えば、Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔら，（２００４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １０１：１３８３２−１３８３７；Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔら，（２００５）Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄ．１１：８５３−８６０）；Ｓｔａｒｋｓら，（２００４）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１７３：４２０−４２７；Ｓｈｅｎら，（１９９５）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９２：３９８７−３９９１を参照されたい）。リステリアに基づくワクチンも、例えば、米国特許出願公開第２００７／０２０７１７０号；同第２００７／０２０７１７１号；同第２００７／０１９００６３号；同第２００５／０２８１７８３号；同第２００５／０２４９７４８号；同第２００４／０２２８８７７号および同第２００４／０１９７３４３号に報告されており、これらはそれぞれ、その内容全体が参照により本明細書に組み込まれる。
II．ＰｒｆＡおよびｐｒｆＡレギュロン
ＰｒｆＡ（ポジティブ調節因子Ａ）は、リステリア毒性における重要な一連の遺伝子の誘導において中心的な役割を担っている（Ｓｃｏｒｔｔｉ，Ｍ．ら，（２００７）Ｍｉｃｒｏｂｅｓ ａｎｄ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ ９（１０）：１１９６−２０７）。ＰｒｆＡは、カノニカル配列ｔＴＡＡＣａｎｎｔＧＴｔＡａ（大文字は、不変ヌクレオチドを表す）を有する回文構造のプロモーターエレメントと結合することにより転写を活性化する。コアＰｒｆＡレギュロンを表１にまとめる。その他の数多くの遺伝子が、ＰｒｆＡにより弱くまたは不規則に制御されている（Ｓｃｏｒｔｔｉ，Ｍ．ら（２００７）を参照されたい）。本発明のある態様では、異種ポリペプチドは、ＰｒｆＡレギュロンプロモーターの制御下で発現される。
Figure 2011523553
ＰｒｆＡは、腸内細菌のＣｒｐ（ｃＡＭＰ受容体タンパク質）と構造的に関連する、２７ｋＤａｌのタンパク質である（図７）。このタンパク質は、β‐ロールを有するＮ末端ドメイン、α−へリックス、ヒンジ／ドメイン間領域、ＤＮＡ結合へリックス−ターン−へリックス（ＨＴＨ）ドメインおよびＨＴＨモチーフの安定化に役立つＣ末端αＧドメインからなる。ＰｒｆＡは、本来の形態での低活性化状態およびコンホメーション変化後の高活性化状態の２つの機能的状態で存在する。本来の低活性化状態から高活性化状態へのコンホメーション変化は、温度、ｐＨ、低鉄濃度、低炭水化物源および活性酸素種の存在を含めた環境的刺激により活性化されると思われる。ＰｒｆＡ活性化は、主として感染細胞の細胞質中で生じるものと思われる。ＰｒｆＡ依存性転写の調節は、３つの主要な要素、i）ＰｒｆＡタンパク質活性の変化、ii）ＰｒｆＡ濃度の変化およびiii）プロモーターの配置に基づく差次的発現に依存する。したがって、本発明のある態様では、異種ポリペプチド発現は、ＰｒｆＡ活性におけるこれらの変化に応答する。
ＰｒｆＡ変異体ポリペプチドを含有する数多くのリステリア・モノサイトゲネス株が同定されており、これらにおいては、ＰｒｆＡ依存性遺伝子が恒常的に過剰発現されている（Ｓｃｏｒｔｔｉ，Ｍ．ら，（２００７）Ｍｉｃｒｏｂｅｓ ａｎｄ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ ９（１０）：１１９６−２０７）。このようなＰｒｆＡポリペプチド変異体は、ＰｒｆＡ＊変異またはＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドと呼ばれ、Ｉ４５Ｓ、Ｙ６３Ｃ、Ｅ７７Ｋ、Ｌ１４０Ｆ、Ｇ１４５ＳおよびＧ１５５Ｓが包含されるが、これらに限定されない（図７）。ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドは、ＰｒｆＡの低活性化状態から高活性化状態への切替えに関与するコンホメーション変化を模倣すると仮定されている。ＰｒｆＡ＊変異体を有するリステリア菌株では、超活性化ＰｒｆＡタンパク質が、ＰｒｆＡ依存性遺伝子を、それが正常に下方制御される条件下で恒常的に過剰発現させる。ある場合には、ＰｒｆＡ＊ポリペプチドにおける変異がＰｒｆＡポリペプチドとＤＮＡとの結合を増強させ得（例えば、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１４５ＳおよびＰｒｆＡ＊ Ｌ１４０Ｆ）、またある場合には、ＰｒｆＡ＊変異が補助因子とＰｒｆＡポリペプチドとの結合を増強させ得る（例えば、ＰｒｆＡ＊
Ｙ６３Ｃ）（Ｍｉｎｅｒ，Ｍ．Ｄ．ら，（２００８）Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．へ投稿）。ＰｒｆＡ＊変異体を有するリステリア菌株は毒性であり、少なくともＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓの場合には、この変異株は超毒性である。
上にまとめたＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドに加え、当業者は、その他のＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドを生成し得る。例えば、リステリアを、エチルメタンスルホン酸のような免疫源と接触させた後に、ＰｒｆＡ依存性遺伝子が正常に下方制御される条件下で増殖させ得る（Ｓｈｅｔｒｏｎ−Ｒａｍａ，Ｌ．Ｍ．ら，（２００３）Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．４８：１５３７−１５５１）。ＰｒｆＡ依存性遺伝子の発現を抑制する条件の例としては、容易に代謝される糖類の存在および低ｐＨが挙げられる。ＰｒｆＡ＊変異体を有するリステリアは、ＰｒｆＡ−レギュロンプロモーター制御下でのＰｒｆＡ依存性遺伝子（表１を参照されたい）発現またはレポーター遺伝子発現の直接的測定を非限定的に含む、多くの異なるスクリーニング法により同定され得る。ｐｒｆＡ遺伝子を変異させるその他の方法は当該分野で公知であり、部位特異的突然変異誘発、特異的に変異を施した遺伝子の化学合成およびＤＮＡシャッフリング法が挙げられるが、これらに限定されない。
同系の弱毒生ワクチン株およびＫＢＭＡワクチン株の効力に対するＧ１４５Ｓ、Ｇ１５５ＳおよびＹ６３Ｃを含めた３つのＰｒｆＡ＊変異体の影響が評価された（実施例１を参照されたい）。同質遺伝子のリステリア・モノサイトゲネスワクチン株間の免疫的効力の差異を区別できるように、マウスにおいて広範なＣＤ８＋Ｔ細胞応答を誘導することが既に示されている５つの明確なＭＨＣクラスIエピトープをコードする、Ａｇ発現カセットを作製した（Ｍｏｕｔａｆｔｓｉ，Ｍ．ら，（２００６）Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．２４：８１７−８１９）。ブロス培養における同質遺伝子株の増殖曲線は区別ができなかったが、天然ｐｒｆＡを有するリステリア・モノサイトゲネス株に比べ、ＰｒｆＡ＊ワクチン株においてＡｇの発現および分泌の有意な増加が観察された。興味深いことに、感染および細胞内増殖のみならず、感染マクロファージまたは樹状細胞系統由来の細胞質において測定されたＡｇ発現レベルは、すべての同質遺伝子ワクチン株の間で同等であった。しかし、注目すべきことに、マウスにおける免疫原性はｐｒｆＡ依存性であり、試験された他のｐｒｆＡ対立遺伝子に比べ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓで明らかに最大であった。細菌またはウイルス抗原投与に対する防御により測定されたワクチン誘導性ＣＤ＋Ｔ細胞の度数および機能性は、試験された他のすべてのｐｒｆＡ対立遺伝子を有するワクチンに比べ、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓを有する弱毒生ワクチンおよびＫＢＭＡ組換えリステリア・モノサイトゲネスワクチン株において有意に向上した。したがって、ブロス培養での相対的なＰｒｆＡ依存性発現は、必ずしもワクチン効力と関連しなかったが、ｐｒｆＡ Ｇ１５５Ｓ活性化変異は、確かにワクチン効力を増強した。まとめると、これらの実験結果は、免疫化前のｐｒｆＡレギュロン活性化およびＡｇ発現誘導は、Ｌｍベースのワクチンの効力を増強することを示している。
本発明のある態様では、異種ポリペプチドは、ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドを含む組換えリステリア菌においてＰｒｆＡレギュロンの制御下で発現される。ある場合には、ＰｒｆＡ＊変異体は、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ変異体ポリペプチドである。
III．シグナルペプチド
「シグナルペプチド」および「シグナル配列」という用語は、本明細書では互換的に使用される。ある実施形態では、シグナルペプチドは、ポリペプチドが細胞から分泌されるように、シグナルペプチドと融合したそのポリペプチドの細胞（例えば、細菌細胞）の細胞膜を横切る輸送の促進を助ける。したがって、ある実施形態では、シグナルペプチドは、「分泌シグナルペプチド」または「分泌配列」である。シグナルペプチドは通常、分泌されるポリペプチドのＮ末端に位置している。
ある実施形態では、組換え核酸分子、発現カセットおよび／または発現ベクターによりコードされる融合タンパク質および／またはタンパク質キメラの一部分であるシグナルペプチドは、その融合タンパク質および／またはタンパク質キメラ中の少なくとも１つの他のポリペプチド配列に対して異種性である。ある実施形態では、組換え核酸分子、発現カセットおよび／または発現ベクターによりコードされるシグナルペプチドは、これら組換え核酸分子、発現カセットおよび／または発現ベクターが組み込まれるか、または既に組み込まれている細菌に対し、異種性（すなわち、外来性）である。ある実施形態では、シグナルペプチドは、組換え核酸分子、発現カセットおよび／または発現ベクターが組み込まれる細菌に内因性である。
ある実施形態では、シグナルペプチドをコードするポリヌクレオチドは、細菌（例えば、リステリア・モノサイトゲネスのようなリステリア）内での発現に対してコドン最適化されている。ある実施形態では、特定の細菌に対してコドン最適化されたポリヌクレオチドは、その細菌に対して外来性である。他の実施形態では、特定の細菌に対してコドン最適化されたポリヌクレオチドは、その細菌に内因性である。
多種多様なシグナルペプチドが当該分野で公知である。さらに、シグナルペプチド配列の予測に使用され得る、「ＳｉｇｎａｌＰ」アルゴリズムのような様々なアルゴリズムおよびソフトウェアプログラムが当該技術分野において利用可能である。例えば、Ａｎｔｅｌｍａｎｎら，Ｇｅｎｏｍｅ Ｒｅｓ．，１１：１４８４−５０２（２００１）；Ｍｅｎｎｅら，Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ，１６：７４１−２（２０００）；Ｎｉｅｌｓｅｎら，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇ．，１０：１−６（１９９７）；Ｚｈａｎｇら，Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｓｃｉ．，１３：２８１９−２４（２００４）；Ｂｅｎｄｔｓｅｎら，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，３４０：７８３−９５（２００４）（ＳｉｇｎａｌＰ３．０に関する）；Ｈｉｌｌｅｒら，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．，３２：Ｗ３７５−９（２００４）；Ｓｃｈｎｅｉｄｅｒら，Ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ ４：１５７１−８０（２００４）；Ｃｈｏｕ，Ｃｕｒｒ．Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｐｅｐｔ．Ｓｃｉ．，３：６１５−２２（２００２）；Ｓｈａｈら，Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ，１９：１９８５−９６（２００３）；およびＹｕａｎら，Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍｕｎ．３１２：１２７８−８３（２００３）を参照されたい。
ある実施形態では、シグナルペプチドは原核性である。ある別の実施形態では、シグナルペプチドは真核性である。例えば、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）におけるタンパク質発現のための真核性シグナルペプチドの使用が、Ｈｕｍｐｈｒｅｙｓら，Ｐｒｏｔｅｉｎ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ａｎｄ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ，２０：２５２−２６４（２０００）に記載されている。
ある実施形態では、シグナルペプチドは細菌性シグナルペプチドである。ある実施形態では、シグナルペプチドは非リステリア性シグナルペプチドである。ある実施形態では、シグナルペプチドは非リステリア性シグナルペプチドである。ある実施形態では、シグナルペプチドはグラム陽性細菌に由来する。ある実施形態では、シグナルペプチドは細胞内細菌に由来する。
ある実施形態では、組換え核酸分子中で使用されるシグナルペプチドは、リステリアに由来する。さらなる実施形態では、このシグナルペプチドはリステリア・モノサイトゲネスに由来する。ある実施形態では、シグナルペプチドは、リステリア・モノサイトゲネス由来のシグナルペプチドである。別の実施形態では、細菌シグナルペプチドはバチルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）に由来する。ある実施形態では、細菌シグナルペプチドはスタフィロコッカス（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ）に由来する。ある実施形態では、細菌シグナルペプチドはラクトコッカス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ）に由来する。ある実施形態では、細菌シグナルペプチドは、バチルス、スタフィロコッカスまたはラクトコッカスに由来する。ある実施形態では、細菌シグナルペプチドは、バチルス、スタフィロコッカスまたはラクトコッカス菌由来のシグナルペプチドである。ある実施形態では、細菌シグナルペプチドは、炭疽菌、バチルス・スブチリス、黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ）またはラクトコッカス・ラクティス由来のシグナルペプチドである。
本明細書に記載のポリヌクレオチドのある実施形態では、細菌のような生物に由来するシグナルペプチドは、その生物から得られる天然のシグナルペプチド配列と同一である。他の実施形態では、組換え核酸分子によりコードされるシグナルペプチド配列は、天然のシグナルペプチド配列のフラグメントおよび／またはバリアントであり、ここで、バリアントはシグナルペプチドとして依然機能する。バリアントには、置換、欠失、追加および／また挿入により元の配列とは異なるポリペプチドが包含される。例えば、ある実施形態では、ポリヌクレオチドによりコードされるシグナルペプチドは、１つまたは複数の保存的変異を含む。可能な保存的アミノ酸変化は当業者に公知である。
別のシグナルペプチドに由来するシグナルペプチド（すなわち、他のシグナルペプチドのフラグメントおよび／またはバリアント）は、好ましくは、元のシグナルペプチドと実質的に同等である。例えば、別のシグナルペプチドに由来するシグナルペプチドがシグナルペプチドとして機能する能力は、元のシグナルペプチド配列に対して施された変化（欠失、変異など）により実質的に影響を受けないものであるべきである。ある実施形態では、得られるシグナルペプチドは、本来のシグナルペプチド配列と、少なくとも約７０％、少なくとも約８０％、少なくとも約９０％または少なくとも約９５％同等のシグナルペプチドとして機能することができる。ある実施形態では、シグナルペプチドはアミノ酸配列において、元のシグナルペプチドと、少なくとも約７０％、少なくとも約８０％、少なくとも約９０％または少なくとも約９５％の同一性を有する。シグナルペプチドのフラグメントは、好ましくは、元のシグナルペプチドの少なくとも約８０または９０％の長さである。
ある実施形態では、異種ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドによりコードされるシグナルペプチドは、ｓｅｃＡ１シグナルペプチド、ｓｅｃＡ２シグナルペプチドまたはツインアルギニン転位（Ｔａｔ）シグナルペプチドである。ある実施形態では、シグナルペプチドはｓｅｃＡ１シグナルペプチドシグナルペプチドである。ある実施形態では、シグナルペプチドは非ｓｅｃＡ１シグナルペプチドである。ある実施形態では、シグナルペプチドはｓｅｃＡ２シグナルペプチドである。ある実施形態では、シグナルペプチドはツインアルギニン転位（Ｔａｔ）シグナルペプチドである。ある実施形態では、これらのｓｅｃＡ１、ｓｅｃＡ２またはＴａｔシグナルペプチドは、リステリアに由来する。ある実施形態では、これらのｓｅｃＡ１、ｓｅｃＡ２またはＴａｔシグナルペプチドは、非リステリア性である。例えば、ある実施形態では、ｓｅｃＡ１、ｓｅｃＡ２またはＴａｔシグナルペプチドは、以下の属に属する細菌に由来する：バチルス、スタフィロコッカスまたはラクトコッカス。
ある実施形態では、シグナルペプチドを含む融合タンパク質は、リステリア・モノサイトゲネス由来のＡｃｔＡシグナルペプチドおよび異種ポリペプチドである。ある場合には、本発明は、特定の態様において、異種抗原をコードする第二の核酸と作動可能に連結されかつインフレームである改変ＡｃｔＡをコードする第一の核酸を含む、ポリヌクレオチドを提供する。本発明はまた、ポリヌクレオチドの発現が改変ＡｃｔＡと異種抗原とを含む融合タンパク質を生成する、ポリヌクレオチドを含有するリステリアを提供する。改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの天然の分泌配列、別のリステリアタンパク質に由来する分泌配列、非リステリア菌タンパク質に由来する分泌配列を含み得るか、または改変ＡｃｔＡは、任意の分泌配列を欠き得る。
ＡｃｔＡに由来する融合タンパク質パートナーは、発現増加、安定性増加、分泌増加、免疫提示増強、免疫応答刺激、腫瘍に対する生存率向上、癌に対する生存率向上、感染病原体に対する生存率向上などにおいて使用される。
一態様では、本発明は、融合タンパク質をコードする核酸配列と作動可能に連結されたＰｒｆＡ依存性プロモーターを含むポリヌクレオチドを提供し、ここで、融合タンパク質は、（ａ）改変ＡｃｔＡおよび（ｂ）異種抗原を含む。ある実施形態では、プロモーターはａｃｔＡプロモーターである。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの少なくとも最初の５９アミノ酸を含む。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの最初の５９を超えるアミノ酸を含む。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡのシグナル配列を含むＡｃｔＡのフラグメントである（または、ＡｃｔＡのシグナル配列を含むＡｃｔＡのフラグメントに由来する）。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの最初の少なくとも５９アミノ酸を含むが、ＡｃｔＡの最初の約２６５アミノ酸を超えない。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの最初の５９を超えるアミノ酸を含むが、ＡｃｔＡの最初の約２６５アミノ酸より少ない。換言すれば、ある実施形態では、改変ＡｃｔＡ配列は、ＡｃｔＡ配列のアミノ酸５９とアミノ酸約２６５の間のある箇所で切り取られた、ＡｃｔＡ（ＡｃｔＡシグナル配列を含む）のＮ末端フラグメントに対応する。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの最初の５９〜２００アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の５９〜１５０アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の５９〜１２５アミノ酸またはＡｃｔＡの最初の５９〜１１０アミノ酸を含む。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの最初の５９〜２００アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の５９〜１５０アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の５９〜１２５アミノ酸またはＡｃｔＡの最初の５９〜１１０アミノ酸からなる。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの最初の約６５〜約２００アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の約６５〜約１５０アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の約６５〜約１２５アミノ酸またはＡｃｔＡの最初の約６５〜約１１０アミノ酸を含む。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの最初の約６５〜約２００アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の約６５〜約１５０アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の約６５〜約１２５アミノ酸またはＡｃｔＡの最初の約６５〜約１１０アミノ酸からなる。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの最初の７０〜２００アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の８０〜１５０アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の８５〜１２５アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の９０〜１１０アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の９５〜１０５アミノ酸またはＡｃｔＡの最初の約１００アミノ酸を含む。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの最初の７０〜２００アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の８０〜１５０アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の８５〜１２５アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の９０〜１１０アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の９５〜１０５アミノ酸またはＡｃｔＡの最初の約１００アミノ酸からなる。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡのアミノ酸１〜１００を含む。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡのアミノ酸１〜１００からなる。
本発明のある態様では、ＡｃｔＡ−Ｎ−１００異種抗原融合パートナーの形態を用いる組換えリステリアは、天然のａｃｔＡプロモーターおよび５’非翻訳領域（ＵＴＲ）ＲＮＡを有する上記抗原融合構築物と機能的に連結されている。ａｃｔＡプロモーターからのＰｒｆＡ依存性転写により、ＡｃｔＡタンパク質ＧＵＧ翻訳開始部位の前に、１５０ヌクレオチドの５'ＵＴＲ ＲＮＡが合成される。ａｃｔＡプロモーター５'ＵＴＲを欠くＬ．モノサイトゲネス変異株は、低レベルのＡｃｔＡを発現する結果、野生型親菌に比べて、細胞内アクチン動員の欠如、細胞間伝播不能および弱毒化を特徴とする表現型となる（Ｗｏｎｇら，Ｃｅｌｌｕｌａｒ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ６：１５５−１６６）。
別の態様において、本発明は、異種抗原をコードする第二の核酸と作動可能に連結されかつインフレームである改変ＡｃｔＡをコードする第一の核酸を含む、ポリヌクレオチドを提供する。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの少なくとも最初の５９アミノ酸を含むが、最初の約２６５アミノ酸よりも少ない。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの最初の５９〜２００アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の５９〜１５０アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の５９〜１２５アミノ酸またはＡｃｔＡの最初の５９〜１１０アミノ酸を含む。ある実施形態では、改変ＡｃｔＡは、ＡｃｔＡの最初の７０〜２００アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の８０〜１５０アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の８５〜１２５アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の９０〜１１０アミノ酸、ＡｃｔＡの最初の９５〜１０５アミノ酸またはＡｃｔＡの最初の約１００アミノ酸を含む。ある実施形態では、第一の核酸は、ＡｃｔＡのアミノ酸１〜１００をコードする。ある実施形態では、ポリヌクレオチドはゲノム性である。ある別の実施形態では、ポリヌクレオチドはプラスミドベースである。ある実施形態では、ポリヌクレオチドは、プロモーターと作動可能に連結されている。
ある実施形態では、Ｌ．モノサイトゲネスのＡｃｔＡの最初の１００アミノ酸をコードする天然配列は、所望の異種抗原配列とインフレームで機能的に連結されている。ある実施形態では、異種抗原配列は、低ＧＣ率の生物体であるＬ．モノサイトゲネスの最適コドン利用に従って合成される。ある実施形態では、５'非翻訳配列と共にａｃｔＡプロモーターを用いた組成物が望ましい。
融合タンパク質パートナーとしてＡｃｔＡ Ｎｌ００を含む構築物を作製するために使用される核酸およびポリペプチドをに開示する。Ｌ．モノサイトゲネスのおける発現に対してコドン最適化された配列および非コドン最適化配列が同定されている。
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本発明のシグナルペプチドのその他の例としては、リステリア・モノサイトゲネス由来ＬＬＯシグナルペプチド、ラクトコッカス・ラクティス由来Ｕｓｐ４５シグナルペプチド、炭疽菌由来防御抗原、リステリア・モノサイトゲネス由来ｐ６０シグナルペプチド、バチルス・スブチリス由来ＰｈｏＤシグナルペプチドが挙げられるが、これらに限定されない。
融合タンパク質パートナーとしてＬＬＯおよびＢａＰａを含む構築物を作製するために使用される核酸およびポリペプチドを表３−1〜５に開示する。Ｌ．モノサイトゲネスのおける発現に対してコドン最適化された配列および非コドン最適化配列が同定されている。
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細菌は、タンパク質分泌のために、ｓｅｃＡ１、ｓｅｃＡ２およびツインアルギニン転位（Ｔａｔ）を含めた多様な経路を利用する。どの経路を利用するかは、主としてプレタンパク質のＮ末端に位置するシグナル配列のタイプにより決定される。分泌タンパク質の大部分はＳｅｃ経路を利用し、この経路では、タンパク質が、細菌膜に埋め込まれたタンパク質性のＳｅｃポアを通って、折り畳まれていない構造で移行する。これに対し、Ｔａｔ経路を利用するタンパク質は、折りたたまれた構造で分泌される。任意のこれらのタンパク質分泌経路に対応したシグナルペプチドをコードするヌクレオチド配列は、所望の異種タンパク質コード配列と遺伝子的にインフレーム融合され得る。シグナルペプチドは、最適には、真に所望するタンパク質を細胞外環境に放出するために、カルボキシル末端にシグナルペプチダーゼ切断部位を含む（ＳｈａｒｋｏｖおよびＣａｉ，２００２ Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７７：５７９６−５８０３；Ｎｉｅｌｓｅｎら，１９９７ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ １０：１−６；ならびにｗｗｗ．ｃｂｓ．ｄｔｕ．ｄｋ／ｓｅｒｖｉｃｅｓ／ＳｉｇｎａｌＰ／）。
本発明のポリヌクレオチド中で使用されるシグナルペプチドは、多様な分泌経路だけでなく、多様な細菌属にも由来し得る。シグナルペプチドには、一般に、共通する構造的構成があり、荷電したＮ末端（Ｎ−ドメイン）、疎水性コア領域（Ｈ−ドメイン）および高極性のＣ末端領域（Ｃ−ドメイン）を有するが、配列保存性は示さない。ある実施形態では、シグナルペプチドのＣ−ドメインは、I型シグナルペプチダーゼ（ＳＰａｓｅI）切断部位を有し、この切断部位に対して−１および−３の位置にコンセンサス配列Ａ−Ｘ−Ａが存在する。ｓｅｃ経路を介して分泌されるタンパク質は、平均２８残基のシグナルペプチドを有する。ｓｅｃＡ２タンパク質分泌経路は、リステリア・モノサイトゲネスで最初に発見され、ｓｅｃＡ２パラログにおける変異株は、寒天培地上の粗いコロニー表現型およびマウスにおける弱毒性表現型を特徴とする（ＬｅｎｚおよびＰｏｒｔｎｏｙ，２００２ Ｍｏｌ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．４５：１０４３−１０５６；ならびにＬｅｎｚら，２００３ ＰＮＡＳ １００：１２４３２−１２４３７）。Ｔａｔ経路により分泌されるタンパク質に関連したシグナルペプチドは、Ｓｅｃシグナルペプチドと同様に三部分の構成を有するが、Ｎ−ドメイン／Ｈ−ドメイン境界に位置するＲＲ−モチーフ（Ｒ−Ｒ−Ｘ−＃−＃、ここで＃は疎水性残基である）を有することを特徴とする。細菌Ｔａｔシグナルペプチドは、ｓｅｃシグナルペプチドよりも平均１４アミノ酸だけ長い。バチルス・スブチリスのセクレトームは、Ｔａｔ分泌経路を利用する６９種もの推定タンパク質を含み得、そのうちの１４種はＳＰａｓｅI切断部位を含む（Ｊｏｎｇｂｌｏｅｄら，２００２ Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７７：４４０６８−４４０７８；Ｔｈａｌｓｍａら，２０００ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．Ｒｅｖ．６４：５１５−５４７）。
IV．異種ポリペプチドおよび異種ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド
リステリア内のポリヌクレオチドによりコードされるおよび／またはリステリアにより発現される「異種ポリペプチド」は、リステリアに対して異種性である。特定の実施形態では、異種ポリペプチドは非リステリア性である。特定の実施形態では、異種ポリペプチドは、天然のリステリアにおいて、ゲノムＤＮＡ内にもリステリアに感染したどのバクテリオファージ内にも見られない。ある実施形態では、１つまたは複数の異種ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドは組換え型である。特定の実施形態では、異種ポリペプチドは非細菌性である。
ある実施形態では、異種ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドがリステリア内で発現される場合、リステリアにおける発現を指令することができる、作動可能に連結されたプロモーターが好ましい。ある実施形態では、プロモーターは原核性である（例えば、ｈｌｙまたはａｃｔＡプロモーターのようなリステリアのプロモーター）。ある実施形態では、異種抗原をコードするポリヌクレオチドは、リステリアにおける発現に対してコドン最適化されている（例えば、その内容全体が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許出願公開第２００５／０２４９７４８号を参照されたい）。
ある実施形態では、リステリアにより細胞内（例えば、哺乳動物細胞）に送達されるか、または本発明のリステリアにより細胞内（例えば、哺乳動物細胞）に送達される核酸によってコードされる異種ポリペプチドは、抗原を含む。ある実施形態では、抗原は、腫瘍抗原（例えば、ヒト腫瘍抗原）または抗原性フラグメントもしくはそのバリアントである。ある別の実施形態では、抗原は、感染病原体由来の抗原または抗原性フラグメントもしくはそのバリアントである。
本明細書に記載の組換え核酸分子および本明細書に記載の発現カセットもしくは発現ベクターは、任意の所望のポリペプチドをコードするために使用され得る。特に、組換え核酸分子、発現カセットおよび発現ベクターは、細菌における異種ポリペプチド発現に有用である。
ある実施形態では（使用する組換え核酸分子、発現カセットまたは発現ベクターに応じて）、本発明のポリヌクレオチドによりコードされるポリペプチドは、シグナルペプチドを有する融合タンパク質の一部としてコードされる。他の実施形態では、コードされるポリペプチドは、組換え核酸分子により別々のポリペプチドとしてコードされる。さらに他の実施形態では、組換え核酸分子のポリヌクレオチドによりコードされるポリペプチドは、シグナルペプチドは含まないが組換え核酸分子を含む融合タンパク質の一部として、コードされる。さらに他の実施形態では、本発明の組換え核酸分子のポリヌクレオチドによりコードされるポリペプチドは、このポリペプチドが別のポリペプチド配列内に組み込まれている融合タンパク質（本明細書では、タンパク質キメラとも呼ぶ）の一部としてコードされる。
したがって、本明細書（以下およびその他の場所）に列挙される、本発明の組換え核酸分子のポリヌクレオチドによりコードされる各ポリペプチドは、特定の組換え核酸分子に応じて、組換え核酸分子による、融合タンパク質（シグナルペプチドと、および／または他のポリペプチドともしくはその中に、融合されている）として、または別々のポリペプチドとして発現され得ることが理解される。
ある実施形態では、ポリペプチドは、組換え核酸分子によりコードされる融合タンパク質の一部であり、その融合タンパク質のシグナルペプチドに対して異種性である。ある実施形態では、ポリペプチドは、それが異種性である別のポリペプチド内にある。
ある実施形態では、ポリペプチドは細菌性（リステリア性または非リステリア性）である。ある実施形態では、ポリペプチドは細菌性ではない。ある実施形態では、ポリヌクレオチドによりコードされるポリペプチドは、哺乳動物ポリペプチドである。例えば、ポリペプチドは、ヒトにおいて見られるポリペプチド配列（例えば、ヒトポリペプチド）に対応し得る。ある実施形態では、ポリペプチドはリステリア性である。ある実施形態では、ポリペプチドは非リステリア性である。ある実施形態では、ポリペプチドは、組換え核酸分子が組み込まれるかまたは組み込まれている細菌に内因性のものではない（すなわち、外来性である）。
ある実施形態では、ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドは、細菌における発現に対してコドン最適化されている。ある実施形態では、ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドは、細菌における発現に対して完全にコドン最適化されている。ある実施形態では、コドン最適化ポリヌクレオチドによりコードされるポリペプチドは、細菌に対して外来性である（すなわち、細菌に対して異種性である）。
「ポリペプチド」という用語は、本明細書において「ペプチド」および「タンパク質」と互換的に使用され、そこに含まれるアミノ酸配列の長さまたは大きさに関する制限はないものとする。しかし、通常、ポリペプチドは、少なくとも約６個のアミノ酸を含むであろう。ある実施形態では、ポリペプチドは、少なくとも約９個、少なくとも約１２個、少なくとも約２０個、少なくとも約３０個または少なくとも約５０個のアミノ酸を含むであろう。ある実施形態では、ポリペプチドは、少なくとも約１００個のアミノ酸を含む。ある実施形態では、ポリペプチドは、タンパク質の特定の１つのドメイン（例えば、細胞外ドメイン、細胞内ドメイン、触媒ドメインまたは結合ドメイン）である。ある実施形態では、ポリペプチドは全（すなわち、完全長）タンパク質を含む。
ある実施形態では、組換え核酸分子のポリヌクレオチドによりコードされるポリペプチドは、疾患に対する対症的治療を提供する抗原またはタンパク質である。ある実施形態では、コードされるポリペプチドは治療用タンパク質である。
ある実施形態では、組換え核酸分子のポリヌクレオチドによりコードされるポリペプチドは抗原である。ある実施形態では、抗原は細菌抗原である。ある実施形態では、抗原は非リステリア菌抗原である。しかし、ある実施形態では、抗原は非リステリア抗原である。他の実施形態では、抗原は非細菌抗原である。ある実施形態では、抗原は哺乳動物抗原である。ある実施形態では、抗原はヒト抗原である。ある実施形態では、ポリペプチドは、１つまたは複数の免疫原性エピトープを含む抗原である。ある実施形態では、抗原は、１つまたは複数のＭＨＣクラスIエピトープを含む。他の実施形態では、抗原は、１つまたは複数のＭＨＣクラスIIエピトープを含む。ある実施形態では、エピトープはＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープである。他の実施形態では、エピトープはＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープである。
抗原をコードするポリヌクレオチドは、いかなる厳密な核酸配列（すなわち、天然の完全長抗原をコードする）にも限定されないが、本発明の細菌または組成物中で個体に投与された場合に所望の免疫応答を誘発するのに十分なポリペプチドをコードする、任意の配列であり得る。本明細書で使用される「抗原」という用語は、そのフラグメントが抗原性（すなわち、免疫原性）である限り、より大きな抗原タンパク質のフラグメントを包含することも理解される。さらに、ある実施形態では、組換え核酸のポリヌクレオチドによりコードされる抗原は、天然の抗原配列のバリアントであり得る。（他の非抗原タンパク質をコードするポリヌクレオチドに関しても同様に、所与のタンパク質をコードするポリヌクレオチドの配列は、発現される所望のタンパク質が、個体に投与された場合に所望の効果（例えば、対症的効果）をもたらす限り、異なり得る。）
別の抗原に由来する抗原は、他方の抗原の抗原性フラグメント、他方の抗原の抗原性バリアントまたは他方の抗原フラグメントの抗原性バリアントである抗原を含む。抗原のバリアントは、１つまたは複数の置換、欠失、追加および／または挿入により元の抗原とは異なる抗原を含む。
抗原性フラグメントは、任意の長さであり得るが、最も一般的には、少なくとも約６アミノ酸、少なくとも約９アミノ酸、少なくとも約１２アミノ酸、少なくとも約２０アミノ酸、少なくとも約３０アミノ酸、少なくとも約５０アミノ酸または少なくとも約１００アミノ酸である。抗原の抗原性フラグメントは、その抗原由来の少なくとも１つのエピトープを含む。ある実施形態では、エピトープはＭＨＣクラスIエピトープである。他の実施形態では、エピトープはＭＨＣクラスIIエピトープである。ある実施形態では、エピトープはＣＤ４＋Ｔ細胞エピトープである。他の実施形態では、エピトープはＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープである。
タンパク質内の抗原性領域（エピトープを含む）の予測に有用な様々なアルゴリズムおよびソフトウェアが、当業者にとって利用可能である。例えば、ＭＨＣクラスIおよびクラスII分子と結合するエピトープを選択するために使用できるアルゴリズムが公表されている。例えば、公表されている「ＳＹＦＰＥＩＴＨＩ」は、ＭＨＣ結合ペプチドを予測するために使用できる（Ｒａｍｍｅｎｓｅｅら，（１９９９）Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ５０：２１３−９）。その他の公表されているアルゴリズムの例に関しては、以下の参考文献を参照されたい：Ｐａｒｋｅｒら，（１９９４）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５２：１６３−７５；ＳｉｎｇｈおよびＲａｇｈａｖａ（２００１）Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ １７：１２３６−１２３７；ＳｉｎｇｈおよびＲａｇｈａｖａ（２００３）Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ １９：１００９−１０１４；Ｍａｌｌｉｏｓ（２００１）Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ １７：９４２−８；Ｎｉｅｌｓｅｎら，（２００４）Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ ２０：１３８８−９７；Ｄｏｎｎｅｓら，（２００２）ＢＭＣ Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ ３：２５；Ｂｈａｓｉｎら，（２００４）Ｖａｃｃｉｎｅ ２２：３１９５−２０４；Ｇｕａｎら，（２００３）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．３１：３６２１−４；Ｒｅｃｈｅら，（２００２）Ｈｕｍ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．６３：７０１−９；Ｓｃｈｉｒｌｅら，（２００１）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ ２５７：１−１６；Ｎｕｓｓｂａｕｍら，（２００１）Ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｅｔｉｃｓ（２００１）５３：８７−９４；Ｌｕら，（２０００）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．６０：５２２３−７。例えば、Ｖｅｃｔｏｒ ＮＴＩ（登録商標）Ｓｕｉｔｅ（Ｉｎｆｏｒｍａｘ，Ｉｎｃ，Ｂｅｔｈｅｓｄａ，ＭＤ）、ＧＣＧ Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ Ｐａｃｋａｇｅ（Ａｃｃｅｌｒｙｓ，Ｉｎｃ．，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）、Ｗｅｌｌｉｎｇら，（１９８５）ＦＥＢＳ Ｌｅｔｔ．１８８：２１５−２１８、Ｐａｒｋｅｒら，（１９８６）Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ２５：５４２５−５４３２、Ｖａｎ ＲｅｇｅｎｍｏｒｔｅｌおよびＰｅｌｌｅｑｕｅｒ（１９９４）Ｐｅｐｔ．Ｒｅｓ．７：２２４−２２８、ＨｏｐｐおよびＷｏｏｄｓ（１９８１）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ７８：３８２４−３８２８ならびにＨｏｐｐ（１９９３）Ｐｅｐｔ．Ｒｅｓ．６：１８３−１９０も参照されたい。この段落の上記参考文献で論じられているアルゴリズムまたはソフトウェアパッケージは、あるものはＭＨＣクラスIおよび／またはクラスII結合ペプチドまたはエピトープの予測を、あるものはプロテアソーム切断部位の同定を、さらにあるものは親水性に基づく抗原性の予測を対象とする。
所望の性質のエピトープを少なくとも１つ含むと考えられる抗原性フラグメント候補が一度同定されれば、その配列をコードするポリヌクレオチドを発現カセットに組み込んで、リステリアワクチンベクターまたは他の細菌ワクチンベクター内に導入することができる。次いで、この抗原性フラグメントを発現するリステリアまたは他の細菌により生じた免疫応答を評価することにより、このフラグメントの免疫原性を確認することができる。ＥＬＩＳＰＯＴアッセイ、細胞内サイトカイン染色（ＩＣＳ）アッセイ、細胞傷害性Ｔ細胞活性アッセイなどのような一般的な免疫学的アッセイを用いて、選択された抗原フラグメントが所望の免疫原性を保持していることを検証することができる。さらに、リステリアおよび／または細菌ワクチンの抗腫瘍効果も、既知の方法を用いて評価することができる；例えば、抗原フラグメントを発現するＣＴ２６マウス結腸細胞をマウス内に移植し、次いで、ワクチン候補をマウスにワクチン接種して、腫瘍サイズ、転移、生存率などに対する効果を、対照群および／または完全長抗原と比較して観察する。
さらに、抗原性フラグメントの同定に使用するエピトープおよび／またはＭＨＣリガンド情報を含む膨大なデータベースが公表されている。例えば、Ｂｒｕｓｉｃら，（１９９８）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．２６：３６８−３７１；Ｓｃｈｏｎｂａｃｈら，（２００２）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ ３０：２２６−９；およびＢｈａｓｉｎら，（２００３）Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ １９：６６５−６６６；およびＲａｍｍｅｎｓｅｅら，（１９９９）Ｉｍｍｕｎｏ ｇｅｎｅｔｉｃｓ ５０：２１３−９を参照されたい。
抗原性バリアントのアミノ酸配列は、元の抗原に対して、少なくとも約６０％、少なくとも約７０％、少なくとも約８０％、少なくとも約９０％、少なくとも約９５％または少なくとも約９８％の同一性を有する。
ある実施形態では、抗原性バリアントは、元の抗原に対して少なくとも約８０％の同一性を有する保存的バリアントであり、抗原性バリアントと元の抗原の配列間の置換は、保存的アミノ酸置換である。以下に挙げる置換は、考えられる保存的アミノ酸置換である：バリン、イソロイシンまたはロイシンは、アラニンに置換される；リジン、グルタミンまたはアスパラギンは、アルギニンに置換される；グルタミン、ヒスチジン、リジンまたはアルギニンは、アスパラギンに置換される；グルタミン酸はアスパラギン酸に置換される；；セリンはシステインに置換される；アスパラギンはグルタミンに置換される；アスパラギン酸はグルタミン酸に置換される；プロリンまたはアラニンは、グリシンに置換される；アスパラギン、グルタミン、リジンまたはアルギニンは、ヒスチジンに置換される；ロイシン、バリン、メチオニン、アラニン、フェニルアラニンまたはノルロイシンは、イソロイシンに置換される；ノルロイシン、イソロイシン、バリン、メチオニン、アラニンまたはフェニルアラニンは、ロイシンに置換される；アルギニン、グルタミンまたはアスパラギンは、リジンに置換される；ロイシン、フェニルアラニンまたはイソロイシンは、メチオニンに置換される；ロイシン、バリン、イソロイシン、アラニンまたはチロシンは、フェニルアラニンに置換される；アラニンはプロリンに置換される；スレオニンはセリンに置換される；セリンはスレオニンに置換される；チロシンまたはフェニルアラニンは、トリプトファンに置換される；トリプトファン、フェニルアラニン、スレオニンまたはセリンは、チロシンに置換される；トリプトファン、フェニルアラニン、スレオニンまたはセリンは、チロシンに置換される；イソロイシン、ロイシン、メチオニン、フェニルアラニン、アラニンまたはノルロイシンは、バリンに置換される。ある実施形態では、抗原性バリアントは、元の抗原に対して少なくとも約９０％の同一性を有する保存的バリアントである。
ある実施形態では、別の抗原に由来する組換え核酸分子によりコードされる抗原は、実質的に他方の抗原と同等である。別の抗原に由来する抗原は、得られた抗原が、アミノ酸配列において、元の抗原に対して少なくとも約７０％の同一性を有し、かつ元の抗原の少なくとも約７０％の免疫原性を保持する場合、それが由来する元の抗原と実質的に同等である。ある実施形態では、実質的に同等な抗原は、アミノ酸配列において、元の抗原に対し、少なくとも約８０％、少なくとも約９０％、少なくとも約９５％または少なくとも約９８％の同一性を有する。ある実施形態では、実質的に同等な抗原は、元の抗原に対する保存的置換のみを含む。ある実施形態では、実質的に同等な抗原は、元の抗原の、少なくとも約８０％、少なくとも約９０％または少なくとも約９５％の免疫原性を保持する。特定の得られた抗原の免疫原性を判定して元の抗原のものと比較し、この得られた抗原が実質的に元の抗原と同等であるか否かを判定するために、得られた抗原と元の抗原の両方を、当業者に公知の数多くの任意の免疫原性アッセイで試験することができる。例えば、元の抗原または得られた抗原を発現するリステリアは、本明細書に記載のように調製することができる。異なる抗原を発現するこれらのリステリアが免疫応答を生じさせる能力は、当該リステリアをマウスにワクチン接種し、次いで、ＥＬＩＳＰＯＴアッセイ、細胞内サイトカイン染色（ＩＣＳ）アッセイ、細胞傷害性Ｔ細胞活性アッセイなどの一般的な手法を用いて評価することにより、測定することができる。
ある実施形態では、組換え核酸分子によりコードされる抗原は、腫瘍関連抗原であるか、または腫瘍関連抗原由来の抗原である。ある実施形態では、抗原は瘍関連抗原である。
ある実施形態では、組換え核酸分子は、腫瘍関連抗原と同一ではなく腫瘍関連抗原由来の抗原をコードする。例えば、ある実施形態では、組換え核酸分子のポリヌクレオチドによりコードされる抗原は、腫瘍関連抗原フラグメント、腫瘍関連抗原バリアントまたは腫瘍関連抗原フラグメントのバリアントを含み得る。ある場合には、腫瘍抗原のような抗原は、アミノ酸配列が宿主内因性のものとわずかに異なる場合に、ワクチンにおいてより高い免疫応答を誘導することが可能である。他の場合には、得られた抗原は、元の抗原よりも低い免疫応答を誘導するが、例えば、小型のサイズであるために、リステリアワクチンベクターでの異種性発現にはより好都合である。ある実施形態では、腫瘍関連抗原バリアントまたは腫瘍関連抗原フラグメントのバリアントのアミノ酸配列は、腫瘍関連抗原またはその対応するフラグメントのアミノ酸配列とは１つまたは複数のアミノ酸が異なる。腫瘍関連抗原に由来する抗原は、その抗原をコードするポリヌクレオチドの宿主内での発現の際に所望の免疫応答を誘導することができるエピトープ配列を、少なくとも１つ含むであろう。
したがって、ある実施形態では、組換え核酸分子中のポリヌクレオチドは、腫瘍関連抗原に由来する抗原をコードし、ここで、この抗原は、腫瘍関連抗原の抗原性フラグメントを少なくとも１つ含む。抗原性フラグメントは、腫瘍関連抗原のエピトープを少なくとも１つ含む。ある実施形態では、別の抗原に由来する抗原は、他方の抗原の抗原性（すなわち、免疫原性）フラグメントまたは抗原性バリアントである。ある実施形態では、抗原は、他方の抗原の抗原性フラグメントである。ある実施形態では、抗原は、他方の抗原の抗原性バリアントである。
Ｔ細胞により認識される数多くの腫瘍関連抗原が同定されている（Ｒｅｎｋｖｉｓｔら，Ｃａｎｃｅｒ Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｉｎｎｕｍｏｔｈｅｒ．５０：３−１５（２００１））。これらの腫瘍関連抗原は、分化抗原（例えば、ＰＭＳＡ、チロシナーゼ、ｇｐ１００）、組織特異抗原（例えば、ＰＡＰ、ＰＳＡ）、発生抗原、腫瘍関連ウイルス抗原（例えば、ＨＰＶ １６ Ｅ７）、癌精巣抗原（例えば、ＭＡＧＥ、ＢＡＧＥ、ＮＹ−ＥＳＯ−１）、胚抗原（例えば、ＣＥＡ、アルファフェトプロテイン）、腫瘍性タンパク質抗原（例えば、Ｒａｓ、ｐ５３）、過剰発現タンパク質抗原（例えば、ＥｒｂＢ２（Ｈｅｒ２／Ｎｅｕ）、ＭＵＣ１）または変異タンパク質抗原であり得る。異種核酸配列によりコードされ得る腫瘍関連抗原としては、７０７−ＡＰ、アネキシンII、ＡＦＰ、ＡＲＴ−４、ＢＡＧＥ、β−カテニン／ｍ、ＢＣＬ−２、ｂｃｒ−ａｂｌ、ｂｃｒ−ａｂｌｐ１９０、ｂｃｒ−ａｂｌｐ２１０、ＢＲＣＡ−１、ＢＲＣＡ−２、ＣＡＭＥＬ、ＣＡＰ−１、ＣＡＳＰ−８、ＣＤＣ２７／ｍ、ＣＤＫ−４／ｍ、ＣＥＡ（Ｈｕａｎｇら，Ｅ×ｐｅｒ Ｒｅｖ．Ｖａｃｃｉｎｅｓ（２００２）１：４９−６３）、ＣＴ９、ＣＴ１０、Ｃｙｐ−Ｂ、Ｄｅｋ−ｃａｉｎ、ＤＡＭ−６（ＭＡＧＥ−Ｂ２）、ＤＡＭ−１０（ＭＡＧＥ−Ｂ１）、ＥｐｈＡ２（Ｚａｎｔｅｋら，Ｃｅｌｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ｄｉｆｆｅｒ．（１９９９）１０：６２９−３８；Ｃａｒｌｅｓ−Ｋｉｎｃｈら，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．（２００２）６２：２８４０−７）、ＥＬＦ２Ｍ、ＥｐｈＡ２（Ｚａｎｔｅｋら，Ｃｅｌｌ Ｇｒｏｗｔｈ Ｄｉｆｆｅｒ．（１９９９）１０：６２９−３８；Ｃａｒｌｅｓ−Ｋｉｎｃｈら，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．（２００２）６２：２８４０−７）、ＥＴＶ６−ＡＭＬ１、Ｇ２５０、ＧＡＧＥ−１、ＧＡＧＥ−２、ＧＡＧＥ−３、ＧＡＧＥ−４、ＧＡＧＥ−５、ＧＡＧＥ−６、ＧＡＧＥ−７Ｂ、ＧＡＧＥ−８、ＧｎＴ−Ｖ、ｇｐ１００、ＨＡＧＥ、ＨＥＲ２／ｎｅｕ、ＨＬＡ−Ａ＊０２０１−Ｒ１７０Ｉ、ＨＰＶ−Ｅ７、Ｈ−Ｒａｓ、ＨＳＰ７０−２Ｍ、ＨＳＴ−２、ｈＴＥＲＴ、ｈＴＲＴ、ｉＣＥ、アポトーシス阻害剤（例えば、サバイビン）、ＫＩＡＡ０２０５、Ｋ−Ｒａｓ、１２−Ｋ−Ｒａｓ（コドン１２変異を有するＫ−Ｒａｓ）、ＬＡＧＥ、ＬＡＧＥ−１、ＬＤＬＲ／ＦＵＴ、ＭＡＧＥ−１、ＭＡＧＥ−２、ＭＡＧＥ−３、ＭＡＧＥ−６、ＭＡＧＥ−Ａ１、ＭＡＧＥ−Ａ２、ＭＡＧＥ−Ａ３、ＭＡＧＥ−Ａ４、ＭＡＧＥ−Ａ６、ＭＡＧＥ−Ａ１０、ＭＡＧＥ−Ａ１２、ＭＡＧＥ−Ｂ５、ＭＡＧＥ−Ｂ６、ＭＡＧＥ−Ｃ２、ＭＡＧＥ−Ｃ３、ＭＡＧＥ−Ｄ、ＭＡＲＴ−１、ＭＡＲＴ−１／Ｍｅｌａｎ−Ａ、ＭＣ１Ｒ、ＭＤＭ−２、メソテリン、ミオシン／ｍ、ＭＵＣ１、ＭＵＣ２、ＭＵＭ−１、ＭＵＭ−２、ＭＵＭ−３、ｎｅｏ−ｐｏｌｙＡポリメラーゼ、ＮＡ８８−Ａ、Ｎ−Ｒａｓ、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ＮＹ−ＥＳＯ−１ａ（ＣＡＧ−３）、ＰＡＧＥ−４、ＰＡＰ、プロテイナーゼ３（ＰＲ３）（Ｍｏｌｌｄｒｅｍら，Ｂｌｏｏｄ（１９９６）８８：２４５０−７；Ｍｏｌｌｄｒｅｍら，Ｂｌｏｏｄ（１９９７）９０：２５２９−３４）、Ｐ１５、ｐ１９０、Ｐｍｌ／ＲＡＲα、ＰＲＡＭＥ、ＰＳＡ、ＰＳＭ、ＰＳＭＡ、ＲＡＧＥ、ＲＡＳ、ＲＣＡＳ１、ＲＵ１、ＲＵ２、ＳＡＧＥ、ＳＡＲＴ−１、ＳＡＲＴ−２、ＳＡＲＴ−３、ＳＰ１７、ＳＰＡＳ−１、ＴＥＬ／ＡＭＬ１、ＴＰＩ／ｍ、チロシナーゼ、ＴＡＲＰ、ＴＲＰ−１（ｇｐ７５）、ＴＲＰ−２、ＴＲＰ−２／ＩＮＴ２、ＷＴ−１ならびにＮＹ−ＥＳＯ−１およびＬＡＧＥ−１遺伝子に由来する代わりに翻訳されるＮＹ−ＥＳＯ−ＯＲＦ２およびＣＡＭＥＬタンパク質が挙げられるが、これらに限定されない。
組換え核酸分子中のポリヌクレオチドによりコードされる抗原は、まだ同定されていない抗原を含めた、腫瘍特異的免疫応答を誘発し得る任意の腫瘍関連抗原を包含し得る。組換え核酸はまた、２つ以上の腫瘍関連抗原をコードし得る。
ある実施形態では、抗原は、メソテリン（Ａｒｇａｎｉら，Ｃｌｉｎ Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．７（１２）：３８６２−８（２００１））、Ｓｐ１７（Ｌｉｍら，Ｂｌｏｏｄ ９７（５）：１５０８−１０（２００１））、ｇｐ１００（Ｋａｗａｋａｍｉら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９１：６４５８（１９９４））、ＰＡＧＥ−４（Ｂｒｉｎｋｍａｎｎら，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．５９（７）：１４４５−８（１９９９））、ＴＡＲＰ（Ｗｏｌｆｇａｎｇら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ ９７（１７）：９４３７−４２（２０００））、ＥｐｈＡ２（Ｔａｔｓｕｍｉら，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．６３（１５）：４４８１−９（２００３））、ＰＲ３（Ｍｕｌｌｅｒ−Ｂｅｒａｔら，Ｃｌｉｎ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈ．７０（１）：５１−９（１９９４））、前立腺幹細胞抗原（ＰＳＣＡ）（Ｒｅｉｔｅｒら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．，９５：１７３５−４０（１９９８）；Ｋｉｅｓｓｌｉｎｇら，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，１０２：３９０−７（２００２））またはＳＰＡＳ−１（米国特許出願公開第２００２／０１５０５８８号）である。
本発明のある実施形態では、組換え核酸分子または発現カセットによりコードされる抗原はＣＥＡである。他の実施形態では、抗原はＣＥＡの抗原性フラグメントおよび／または抗原性バリアントである。ＣＥＡは、結腸癌、胃癌および膵臓癌の９０％、非小細胞肺癌の７０％および乳癌の５０％を含め、ヒト腫瘍の高い割合で過剰発現される、１８０−ｋＤＡの細胞間接着膜糖タンパク質である（Ｈａｍｍａｒｓｔｒｏｍ，Ｓｅｍｉｎ．Ｃａｎｃｅｒ Ｂｉｏｌ．，９：６７−８１）。ＣＥＡを模倣する抗イディオタイプモノクローナル抗体（Ｆｏｏｎら，Ｃｌｉｎ．Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．，８７：９８２−９０（１９９５）、またはＣＥＡを発現する組換えワクチニアウイルス（Ｔｓａｎｇら，Ｊ．Ｎａｔｌ．Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎｓｔ．，８７：９８２−９０（１９９５）を用いたワクチン接種）のような様々な免疫療法が研究されてきたが、残念なことに大きな成果はない。それにもかかわらず、本発明者らは、ワクチン接種した患者から生じたヒトＴ細胞により認識される、ＨＬＡ＊０２０１拘束性エピトープであるＣＡＰ−１（ＣＥＡ６０５−６１３）を同定した。ＤＣパルスによるこのエピトープの患者へのワクチン接種では、臨床的応答を誘導できなかった（Ｍｏｒｓｅら，Ｃｌｉｎ．Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．，５：１３３１−８（１９９９））。最近、６１０位においてアスパラギン酸からアスパラギンへのヘテロクリティックな置換を有するＣＥＡ６０５−６１３ペプチドアゴニストが同定された（ＣＡＰ１−６Ｄ）。このアミノ酸置換は、このペプチドのＭＨＣ結合親和性を変化させなかったが、改変ペプチドリガンド（ＡＰＬ）の使用により、ＣＥＡ特異的細胞傷害性Ｔリンパ球（ＣＴＬ）のインビトロでの発生が向上した。ＣＡＰ１−６Ｄ特異的ＣＴＬは、天然ＣＥＡを発現する腫瘍細胞を認識し溶解させる能力を保持していた（Ｚａｒｅｍｂａら，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．，５７：４５７０−７（１９９７）；Ｓａｌａｚａｒら，Ｉｎｔ．Ｊ．Ｃａｎｃｅｒ，８５：８２９−３８（２０００））。Ｆｏｎｇらは、Ｆｌｔ３−リガンドでワクチン接種した結腸癌患者におけるＣＥＡ特異的免疫の誘導が、このＡＰＬとインキュベートされたＤＣを増大することを実証した。有望なことに、ワクチン接種後の１２人の患者のうち２人において、ペプチド−ＭＨＣテトラマー＋Ｔ細胞の誘導と関連する劇的な腫瘍退縮が認められた（Ｆｏｎｇ ら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．，９８：８８０９−１４（２００１））。
別の実施形態では、組換え核酸分子によりコードされる抗原は、プロテイナーゼ３であるかまたはプロテイナーゼ３に由来する抗原である。例えば、一実施形態では、抗原はＨＬＡ−Ａ２．１拘束性ペプチドＰＲ１を含む（アミノ酸１６９〜１７７；ＶＬＱＥＬＮＶＴＶ）。プロテイナーゼ３および／またはＰＲ１エピトープに関する情報は、以下の参考文献において入手可能である；米国特許第５，１８０，８１９号、Ｍｏｌｌｄｒｅｍら，Ｂｌｏｏｄ，９０：２５２９−２５３４（１９９７）；Ｍｏｌｌｄｒｅｍら，Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓｅａｒｃｈ，５９：２６７５−２６８１（１９９９）；Ｍｏｌｌｄｒｅｍら，Ｎａｔｕｒｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，６：１０１８−１０２３（２０００）；およびＭｏｌｌｄｒｅｍら，Ｏｎｃｏｇｅｎｅ，２１：８６６８−８６７３（２００２）。
ある実施形態では、組換え核酸分子または発現カセットによりコードされる抗原は、Ｋ−Ｒａｓ、Ｈ−Ｒａｓ、Ｎ−Ｒａｓ、１２−Ｋ−Ｒａｓ、メソテリン、ＰＳＣＡ、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ＷＴ−１、サバイビン、ｇｐ１００、ＰＡＰ、プロテイナーゼ３、ＳＰＡＳ−１、ＳＰ−１７、ＰＡＧＥ−４、ＴＡＲＰ、Ｂ−ｒａｆ、チロシナーゼ、ｍｄｍ−２、ＭＡＧＥ、ＲＡＧＥ、ＭＡＲＴ−１、ｂｃｒ／ａｂｌ、Ｈｅｒ−２／ｎｅｕ、アルファフェトプロテイン、マンモグロビン、ｈＴＥＲＴ（テロメラーゼ）、ＰＳＡまたはＣＥＡからなる群より選択される抗原である。ある実施形態では、抗原はＫ−Ｒａｓである。ある実施形態では、抗原はＨ−Ｒａｓである。ある実施形態では、抗原はＮ−Ｒａｓである。ある実施形態では、抗原はＫ−Ｒａｓである。ある実施形態では、抗原はメソテリンである。ある実施形態では、抗原はＰＳＣＡである。ある実施形態では、抗原はＮＹ−ＥＳＯ−１である。ある実施形態では、抗原はＷＴ−１である。ある実施形態では、抗原はサバイビンである。ある実施形態では、抗原はｇｐ１００である。ある実施形態では、抗原はＰＡＰである。ある実施形態では、抗原はプロテイナーゼ３である。ある実施形態では、抗原はＳＰＡＳ−１である。ある実施形態では、抗原はＳＰ−１７である。ある実施形態では、抗原はＰＡＧＥ−４である。ある実施形態では、抗原はＴＡＲＰである。ある実施形態では、抗原はＣＥＡである。
ある実施形態では、抗原はヒトメソテリンである。
ある実施形態では、抗原は、メソテリン、ＳＰＡＳ−１、プロテイナーゼ３、ＥｐｈＡ２、ＳＰ−１７、ｇｐ１００、ＰＡＧＥ−４、ＴＡＲＰ、Ｂ−ｒａｆ、チロシナーゼ、ｍｄｍ−２、ＭＡＧＥ、ＲＡＧＥ、ＭＡＲＴ−１、ｂｃｒ／ａｂｌ、Ｈｅｒ−２／ｎｅｕ、アルファフェトプロテイン、マンモグロビン、ｈＴＥＲＴ（テロメラーゼ）、ＰＳＡもしくはＣＥＡ、またはこれらのタンパク質の１つに由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、メソテリンであるか、またはメソテリンに由来する。他の実施形態では、抗原は、ＥｐｈＡ２であるか、またはＥｐｈＡ２に由来する抗原である。ある実施形態では、本明細書に記載の組換え核酸分子によりコードされる抗原は、Ｅｐｈａ２（またはＥｐｈａ２に由来する抗原）ではない。ある実施形態では、抗原はＥｐｈａ２以外の腫瘍関連抗原である。ある実施形態では、抗原は、Ｅｐｈａ２以外の腫瘍関連抗原に由来する。
ある実施形態では、組換え核酸分子中のポリヌクレオチドは、Ｋ−Ｒａｓ、Ｈ−Ｒａｓ、Ｎ−Ｒａｓ、１２−Ｋ−Ｒａｓ、メソテリン、ＰＳＣＡ、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ＷＴ−１、サバイビン、ｇｐ１００、ＰＡＰ、プロテイナーゼ３、ＳＰＡＳ−１、ＳＰ−１７、ＰＡＧＥ−４、ＴＡＲＰ、Ｂ−ｒａｆ、チロシナーゼ、ｍｄｍ−２、ＭＡＧＥ、ＲＡＧＥ、ＭＡＲＴ−１、ｂｃｒ／ａｂｌ、Ｈｅｒ−２／ｎｅｕ、アルファフェトプロテイン、マンモグロビン、ｈＴＥＲＴ（テロメラーゼ）、ＰＳＡまたはＣＥＡに由来する抗原をコードする。ある実施形態では、抗原はＫ−Ｒａｓに由来する。ある実施形態では、抗原はＨ−Ｒａｓに由来する。ある実施形態では、ポリペプチドはＮ−Ｒａｓである。ある実施形態では、抗原は１２−Ｋ−Ｒａｓに由来する。ある実施形態では、抗原は、メソテリンに由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、ＰＳＣＡに由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、ＮＹ−ＥＳＯ−１由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、ＷＴ−１に由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、サバイビンに由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、ｇｐ１００に由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、ＰＡＰに由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、プロテイナーゼ３に由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、ＳＰＡＳ−１に由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、ＳＰ−１７に由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、ＰＡＧＥ−４に由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、ＴＡＲＰに由来する抗原である。ある実施形態では、抗原は、ＣＥＡに由来する抗原である。
ある実施形態では、抗原は、メソテリンまたはその抗原性フラグメントもしくは抗原性バリアントである。ある実施形態では、抗原は、メソテリンシグナルペプチドおよび／またはＧＰＩアンカーが欠失したメソテリンである。ある実施形態では、抗原は、メソテリンシグナルペプチドおよび／またはＧＰＩアンカーが欠失したヒトメソテリンである。ある実施形態では、抗原は、メソテリンシグナルペプチドおよびＧＰＩアンカーが欠失したヒトメソテリンである。
ある実施形態では、抗原は、ＮＹ−ＥＳＯ−１またはその抗原性フラグメントもしくは抗原性バリアントである。
ある実施形態では、組換え核酸分子中のポリヌクレオチドにコードされるポリペプチドは、腫瘍関連抗原、例えば、ヒト前立腺幹細胞抗原（ＰＳＣＡ；ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．ＡＦ０４３４９８）、ヒト精巣抗原（ＮＹ−ＥＳＯ−１；ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．ＮＭ＿００１３２７）、ヒト癌胎児抗原（ＣＥＡ；ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｍ２９５４０）、ヒトメソテリン（ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｕ４０４３４）、ヒトサバイビン（ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｕ７５２８５）、ヒトプロテイナーゼ３（ＧｅｎＢａｎｋ Ｎｏ．Ｘ５５６６８）、ヒトＫ−Ｒａｓ（ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏｓ．Ｍ５４９６９およびＰＯ１１１６）、ヒトＨ−Ｒａｓ（ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｐ０１１１２）、ヒトＮ−Ｒａｓ（ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｐ０１１１１）およびヒト１２−Ｋ−Ｒａｓ（Ｇｌｙ１２Ａｓｐ変異を含むＫ−Ｒａｓ）（例えば、ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｋ００６５４を参照されたい）の抗原性フラグメントを少なくとも１つ含む。ある実施形態では、組換え核酸分子中のポリヌクレオチドにコードされるポリペプチドは、少なくとも１つの保存的に置換されたアミノ酸を有する腫瘍関連抗原の抗原性フラグメントを含む。ある実施形態では、組換え核酸分子中のポリヌクレオチドにコードされるポリペプチドは、少なくとも１つのアミノ酸残基が欠失した抗原性フラグメントを含む。ある実施形態では、組換え核酸分子中のポリヌクレオチドにコードされるポリペプチドは、２つ以上のタイプの腫瘍関連抗原由来の抗原性配列の組合せ、例えば、メソテリンおよびＲａｓの両方に由来する抗原性フラグメントの組合せを含む。
抗原性であると予測される腫瘍抗原の領域の例として、以下のものが挙げあられる：ＰＳＣＡアミノ酸配列（ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．ＡＦ０４３４９８）のアミノ酸２５〜３５；７０〜８０；および９０〜１１８；ＮＹ−ＥＳＯ−１（ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．ＮＭ＿００１３２７）のアミノ酸４０〜５５、７５〜８５、１００〜１１５および１２８〜１４６；ＣＥＡアミノ酸配列（ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｍ２９５４０）のアミノ酸７０〜７５、１５０〜１５５、２０５〜２２５、３３０〜３４０および５１０〜５２０；メソテリンポリペプチド配列（ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｕ４０４３４）のアミノ９０〜１１０、１４０〜１５０、２０５〜２２５、２８０〜３１０、３９０〜４１０、４２０〜４２５および５５０〜５７５；サバイビンポリペプチド配列（ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｕ７５２８５）のアミノ酸１２〜２０、３０〜４０、４５〜５５、６５〜８２、９０〜９５、１０２〜１１５および１１５〜１３０；プロテイナーゼ３アミノ酸配列（ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｘ５５６６８に見られる）のアミノ酸１０〜２０、３０〜３５、６５〜７５、１１０〜１２０および１６０〜１７０；ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏｓ．Ｐ０１１１７またはＭ５４９６８（ヒトＫ−Ｒａｓ）のアミノ酸１０〜２０、３０〜５０、５５〜７５、８５〜１１０、１１５〜１３５、１４５〜１５５および１６０〜１８５；ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｐ０１１１２（ヒトＨ−Ｒａｓ）のアミノ酸１０〜２０、２５〜３０、３５〜４５、５０〜７０、９０〜 １１０、１１５〜１３５および１４５〜１７５；ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｐ０１１１１（ヒトＮ−Ｒａｓ）のアミノ酸１０〜２０、２５〜４５、５０〜７５、８５〜１１０、１１５〜１３５、１４０〜１５５および１６０〜１８０；ならびに１２−Ｋ−Ｒａｓ（ＧｅｎＢａｎｋ Ａｃｃ．Ｎｏ．Ｋ００６５４に開示されている配列）の最初の２５アミノ酸。これらの抗原性領域は、Ｈｏｐｐ−ＷｏｏｄｓおよびＷｅｌｌｉｎｇ抗原性プロットにより予測された。
ある実施形態では、別々のポリペプチドとして、選択されたシグナルペプチドを有する融合タンパク質としてまたはポリペプチドが別のポリペプチド内に挿入されたタンパク質キメラとして、本発明のポリヌクレオチドによりコードされるポリペプチドは、以下のヒトメソテリンのペプチドを１つまたは複数含むポリペプチドである：ＳＬＬＦＬＬＦＳＬ（アミノ酸２０〜２８）；ＶＬＰＬＴＶＡＥＶ（アミノ酸５３０〜５３８）；ＥＬＡＶＡＬＡＱＫ（アミノ酸８３〜９２）；ＡＬＱＧＧＧＰＰＹ（アミノ酸２２５〜２３４）；ＦＹＰＧＹＬＣＳＬ（アミノ酸４３５〜４４４）；およびＬＹＰＫＡＲＬＡＦ（アミノ酸４７５〜４８４）。例えば、ある実施形態では、本発明のポリヌクレオチドによりコードされる抗原は、１つまたは複数のこれらのペプチドを含むヒトメソテリンの（抗原性）フラグメントである。これらのメソテリンペプチド配列およびこれらと医学関連の免疫応答との関係は、ＰＣＴ国際公開公報第２００４／００６８３７号に見ることができる。
あるいは、組換え核酸分子中のポリヌクレオチドは、自己免疫疾患特異的抗原をコードし得る。Ｔ細胞仲介性の自己免疫疾患では、自己抗原に対するＴ細胞応答が自己免疫疾患を引き起こす。本発明のワクチンによる自己免疫疾患治療で使用される抗原のタイプは、自己免疫応答の原因となる特定のＴ細胞を標的とし得る。例えば、抗原は、自己免疫を引き起こすそれらのＴ細胞に特異的なイディオタイプであるＴ細胞受容体の一部であり得、ここで、本発明のワクチンに組み込まれる抗原は、自己免疫応答を引き起こすそれらのＴ細胞に特異的な免疫応答を誘発するであろう。これらのＴ細胞を除去することは、自己免疫疾患を軽減するための治療機構となるであろう。自己免疫疾患における自己抗原に対して生成される抗体を標的とするまたはこの抗体を分泌する特定のＢ細胞クローンを標的とする免疫応答を引き起こすであろう抗原をコードするポリヌクレオチドを、組換え核酸分子内に組み込むことが、別の可能性してある。例えば、イディオタイプ抗原をコードするポリヌクレオチドを組換え核酸分子内に組み込み、自己免疫疾患において自己抗原と反応するこのようなＢ細胞および／または抗体に対する抗イディオタイプ免疫応答を引き起こし得る。本発明の発現カセットおよび組換え核酸分子を含む細菌を含むワクチンで治療可能な自己免疫疾患としては、関節リウマチ、多発性硬化症、クローン病、狼瘡、重症筋無力症、白斑、強皮症、乾癬、尋常性天疱瘡、線維筋痛症、大腸炎および糖尿病が挙げられるが、これらに限定されない。アレルギー反応の治療に対しても同様のアプローチを行うことができ、このアプローチでは、ワクチン微生物内に組み込まれた抗原は、アレルギー反応の調節に有効なＴ細胞、Ｂ細胞または抗体を標的とする。乾癬のようないくつかの自己免疫疾患では、この疾患により、同様に標的とされ得る抗原の発現を伴った増殖過剰な細胞増殖を生じる。増殖過剰な細胞に対する免疫応答を引き起こすような抗原が考えられる。
任意で、組換え核酸分子は、タンパク質構造に関連した固有の疾患を標的とする抗原をコードする。抗体、Ｂ細胞またはＴ細胞を標的として、上記イディオタイプ抗原を使用することがこの一例である。特定の疾患から生じる固有のタンパク質構造を標的とすることが別の可能性としてある。アルツハイマー病、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）およびウシ海綿状脳症（ＢＳＥ）のような疾患に見られるアミロイド斑を引き起こすタンパク質に対する免疫応答を発生させる抗原を組み込むことが、この一例であろう。このアプローチは、斑形成の減少をもたらすだけかもしれないが、ＣＪＤのような疾患の場合には、治療ワクチンを提供し得る。この疾患は、感染型プリオンタンパク質により引き起こされる。ある実施形態では、本発明のポリヌクレオチドは、ワクチンにより生じた免疫応答が、ＣＪＤを引き起こす感染性タンパク質を、除去する、減少させる、または制御するように、感染型プリオンタンパク質に対する抗原をコードする。
ある実施形態では、組換え核酸分子によりコードされるポリペプチドは、感染症抗原であるか、または感染症抗原に由来する。ある実施形態では、組換え核酸分子によりコードされるポリペプチドは感染症抗原である。ある実施形態では、組換え核酸分子によりコードされるポリペプチドは感染症抗原に由来する。
本発明の他の実施形態では、抗原は、ヒトまたは動物病原体に由来する。病原体は、任意で、ウイルス、細菌、真菌または原虫である。例えば、抗原は、ウイルス性または真菌性または細菌性抗原であり得る。一実施形態では、病原体に由来する組換え核酸分子によりコードされる抗原は、その病原体により産生されるタンパク質であるか、またはその病原体により産生されるタンパク質に由来する。例えば、ある実施形態では、組換え核酸分子、発現カセットおよび／または発現ベクターによりコードされるポリペプチドは、病原体により産生されるタンパク質のフラグメントおよび／またはバリアントである。
例えば、ある実施形態では、抗原は、ヒト免疫不全ウイルス（例えば、ｇｐ１２０、ｇｐ１６０、ｇｐ４１、ｐ２４ｇａｇおよびｐ５５ｇａｇのようなｇａｇ抗原、ならびにＨＩＶのｐｏｌ、ｅｎｖ、ｔａｔ、ｖｉｆ、ｒｅｖ、ｎｅｆ、ｖｐｒ、ｖｐｕおよびＬＴＲ領域に由来するタンパク質など）、ネコ免疫不全ウイルスまたはヒトもしくは動物ヘルペスウイルスに由来する。例えば、ある実施形態では、抗原はｇｐ１２０である。一実施形態では、抗原は、単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶ）１型および２型（例えば、ｇＤ、ｇＢ、ｇＨ、ＩＣＰ２７のような前初期タンパク質など）、サイトメガロウイルス（例えば、ｇＢおよびｇＨなど）、メタニューモウイルス、エプスタイン・バーウイルスまたは水痘帯状疱疹ウイルス（例えば、ｇｐI、IIまたはIIIなど）に由来する。（例えば、Ｃｈｅｅら，（１９９０）Ｃｙｔｏｍｅｇａｌｏｖｉｒｕｓｅｓ（Ｊ．Ｋ．ＭｃＤｏｕｇａｌｌ，編，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ Ｖｅｒｌａｇ，ｐｐ．１２５−１６９；ＭｃＧｅｏｃｈら，（１９８８）Ｊ．Ｇｅｎ．Ｖｉｒｏｌ．６９：１５３１−１５７４；米国特許第５，１７１，５６８号；Ｂａｅｒら，（１９８４）Ｎａｔｕｒｅ ３１０：２０７−２１１；およびＤａｖｉｓｏｎら，（１９８６）Ｊ．Ｇｅｎ．Ｖｉｒｏｌ．６７：１７５９−１８１６を参照されたい。）
別の実施形態では、抗原は、肝炎ウイルス、例えば、Ｂ型肝炎ウイルス（例えば、Ｂ型肝炎表面抗原）、Ａ型肝炎ウイルス、Ｃ型肝炎ウイルス、デルタ肝炎ウイルス、Ｅ型肝炎ウイルスまたはＧ型肝炎ウイルスに由来する。例えば、国際公開第８９／０４６６９号；同９０／１１０８９号；および同９０／１４４３６号を参照されたい。肝炎抗原は、表面、コアまたはその他の関連抗原であり得る。ＨＣＶゲノムは、Ｅ１およびＥ２を含めたいくつかのウイルスタンパク質をコードする。例えば、Ｈｏｕｇｈｔｏｎら，Ｈｅｐａｔｏｌｏｇｙ １４：３８１−３８８（１９９１）を参照されたい。
ウイルス抗原である抗原は、任意で、ピコルナウイルス科（例えば、ポリオウイルス、ライノウイルスなど）；カリシウイルス科；トガウイルス科（例えば、風疹ウイルス、デングウイルスなど）；フラビウイルス科；コロナウイルス科；レオウイルス科（例えば、ロタウイルスなど）；ビルナウイルス科；ラブドウイルス科（例えば、狂犬病ウイルスなど）；オルトミクソウイルス科（例えば、Ａ型、Ｂ型およびＣ型インフルエンザウイルスなど）；フィロウイルス科；パラミクソウイルス科（例えば、ムンプスウイルス、麻疹ウイルス、呼吸器多核体ウイルス、パラインフルエンザウイルスなど）；ブニヤウイルス科；アレナウイルス科；レトロウイルス科（例えば、ＨＴＬＶ−Ｉ；ＨＴＬＶ−１１；ＨＩＶＩ１１ｂ、ＨＩＶＳＦ２、ＨＴＶＬＡＶ、ＨＩＶＬＡＩ、ＨＩＶＭＮの単離体由来の抗原を非限定的に含めたＨＩＶ−１（ＨＴＬＶ−１１１、ＬＡＶ、ＡＲＶ、ｈＴＬＲなどとしても知られている）；ＨＩＶ−１ＣＭ２３５、ＨＩＶ−１；特に、ＨＩＶ−２；サル免疫不全ウイルス（ＳＩＶ））のいずれか１科のウイルス；パピローマウイルス、ダニ媒介性脳炎ウイルスなどに由来する。これらおよびその他のウイルスに関する説明に関しては、例えば、Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，３ｒｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ（Ｗ．Ｋ．Ｊｏｋｌｉｋ編，１９８８）；Ｆｕｎｄａｍｅｎｔａｌ Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，３ｒｄ Ｅｄｉｔｉｏｎ（Ｂ．Ｎ．Ｆｉｅｌｄｓ，Ｄ．Ｍ．ＫｎｉｐｅおよびＰ．Ｍ．Ｈｏｗｌｅｙ編 １９９６）を参照されたい。一実施形態では、抗原はＦｌｕ−ＨＡである（Ｍｏｒｇａｎら，Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６０：６４３（１９９８））。
ある別の実施形態では、抗原は、細菌性病原体、例えば、マイコバクテリウム属（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）、バチルス属（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）、エルシニア属（Ｙｅｒｓｉｎｉａ）、サルモネラ属（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）、ナイセリア属（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ）、ボレリア属（Ｂｏｒｒｅｌｉａ）（例えば、ＯｓｐＡもしくはＯｓｐＢまたはそれらの誘導体）、クラミジア属（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ）またはボルデテラ属（Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ）（例えば、Ｐ．６９、ＰＴおよびＦＨＡ）などに由来するか、あるいはプラスモディウム属（Ｐｌａｓｍｏｄｉｕｍ）またはトキソプラズマ属（Ｔｏ×ｏｐｌａｓｍａ）のような寄生虫に由来する。一実施形態では、抗原は、結核菌（例えば、ＥＳＡＴ−６、８５Ａ、８５Ｂ、８５Ｃ、７２Ｆ）、炭疽菌（例えば、ＰＡ）またはペスト菌（Ｙｅｒｓｉｎｉａ ｐｅｓｔｉｓ）（例えば、Ｆ１、Ｖ）に由来する。さらに、本発明での使用に適した抗原は、ジフテリア、百日咳、破傷風、結核、細菌性もしくは真菌性肺炎、中耳炎、淋病、コレラ、チフス、髄膜炎、単核球症、ペスト、細菌性赤痢もしくはサルモネラ症、レジオネラ症、ライム病、ハンセン病、マラリア、鉤虫、オンコセルカ症、住血吸虫症、トリパノソーマ症、リーシュマニア症、ジアルジア、アメーバ症、フィラリア症、ボレリアおよび旋毛虫症を非限定的に含めた疾患の原因となる、既知の原因病原体から採取されるか、または由来し得る。またさらなる抗原は、クールー、クロイツフェルト・ヤコブ病（ＣＪＤ）、スクレイピー、伝染性ミンク脳症および慢性消耗性疾患の原因病原体のような特殊な病原体から、または狂牛病と関連したプリオンのようなタンパク性感染粒子から採取されるか、または由来し得る。
さらに他の実施形態では、抗原は、神経変性疾患（例えば、アルツハイマー病など）、代謝性疾患（例えば、I型糖尿病など）および薬物依存（例えば、ニコチン中毒など）の発生または進行に関与する生物学的因子から採取されるか、または由来し得る。あるいは、組換え核酸分子によりコードされる抗原は、疼痛管理に使用され、かつこの抗原は、疼痛シグナルの伝達に関与する疼痛受容体またはその他の作用物質である。
ある実施形態では、抗原は、ヒトタンパク質であるか、またはヒトタンパク質に由来する。他の実施形態では、抗原は、非ヒトタンパク質であるか、または非ヒトタンパク質（そのフラグメントおよび／またはバリアント）に由来する。ある実施形態では、発現カセットによりコードされる融合タンパク質の抗原部分は、非ヒト動物のタンパク質であるか、または非ヒト動物に由来するタンパク質である。例えば、抗原が、ヒトにおいて使用されるリステリアに基づくワクチン内で発現される場合でも、ある実施形態では、この抗原は、マウスメソテリンであるか、またはマウスメソテリンに由来し得る。
V．リステリア
ある実施形態では、リステリアは、リステリア・モノサイトゲネス種に属する。ある別の実施形態では、細菌はリステリア・イバノビイ（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｉｖａｎｏｖｉｉ）、リステリア・シーリゲリ（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｓｅｅｌｉｇｅｒｉ）、リステリア・イノキュア（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｉｎｎｏｃｕａ）、Ｌ．ウェルシメリ（Ｌ．ｗｅｌｓｈｉｍｅｒｉ）またはＬ．グライイ（Ｌ．ｇｒａｙｉ）種のメンバーである。
ある実施形態では、リステリアは非天然である。ある実施形態では、リステリアは弱毒化されている。ある実施形態では、リステリアは生存している。ある実施形態では、リステリアは、変異リステリア、組換えリステリアであるかまたは別の方法で改変されている。ある実施形態では、リステリアは弱毒化されている。ある実施形態では、リステリアは代謝的に活性である。特定の実施形態では、リステリアはバクテリオファージに感染していない。本発明はさらに、組換え型であるリステリアを提供する。さらに、リステリアは、単離されているか、および／または実質的に精製されているものであり得る。
ある実施形態では、弱毒化リステリアは、増殖、細胞間伝播、宿主細胞への結合もしくは侵入、複製またはＤＮＡ修復の１つまたは複数において弱毒化されている。ある実施形態では、リステリアは、ａｃｔＡ変異、ｉｎｌＢ変異、ｕｖｒＡ変異、ｕｖｒＢ変異、ｕｖｒＣ変異、核酸標的化合物またはｕｖｒＡＢ変異／核酸標的化合物の１つまたは複数により弱毒化されている。ある実施形態では、弱毒化リステリアは、細胞間伝播および／または非食細胞内への侵入において弱毒化されている。ある実施形態では、リステリアは、ａｃｔＡ変異またはａｃｔＡ変異／ｉｎｌＢ変異の１つまたは複数により弱毒化されている。ある実施形態では、リステリアはΔａｃｔＡまたはΔａｃｔＡΔｉｎｌＢである。
ある実施形態では、弱毒化リステリアは、細胞間伝播に関して弱毒化されている。ある実施形態では、細胞間伝播に関して弱毒化されているリステリアは、（例えば、非改変または野生型リステリアに比べて）ＡｃｔＡに関して欠損がある。ある実施形態では、リステリアはａｃｔＡ遺伝子に弱毒化変異を含む。ある実施形態では、リステリアはａｃｔＡ遺伝子に完全または部分的欠失を含む。
ある実施形態では、弱毒化リステリア菌の細胞間伝播の能力は、弱毒化変異を有しないリステリア（例えば、野生型リステリア）に比べて、少なくとも約１０％、少なくとも約２５％、少なくとも約５０％、少なくとも約７５％または少なくとも約９０％減少している。ある実施形態では、弱毒化リステリア菌の細胞間伝播の能力は、弱毒化変異を有しないリステリアに比べて、少なくとも約２５％減少している。ある実施形態では、弱毒化リステリア菌の細胞間伝播の能力は、弱毒化変異を有しないリステリアに比べて、少なくとも約５０％減少している。
リステリア菌が細胞間伝播に関して弱毒化されているか否かを判定するためのインビトロアッセイは、当業者に公知である。例えば、選択された培養細胞単層の感染後に経時的に形成されるプラークの直径を測定し得る。Ｌ２細胞単層内のプラークアッセイは、Ｓｕｎ，Ａ．，Ａ．ＣａｍｉｌｌｉおよびＤ．Ａ．Ｐｏｒｔｎｏｙ．１９９０，Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｓｍａｌｌ−ｐｌａｑｕｅ ｍｕｔａｎｔｓ ｄｅｆｅｃｔｉｖｅ ｆｏｒ ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ ｃｅｌｌ−ｔｏ−ｃｅｌｌ ｓｐｒｅａｄ．Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎ．５８：３７７０−３７７８に、この測定法に修正を加えたものでは、Ｓｋｏｂｌｅ，Ｊ．，Ｄ．Ａ．ＰｏｒｔｎｏｙおよびＭ．Ｄ．Ｗｅｌｃｈ．２０００，Ｔｈｒｅｅ ｒｅｇｉｏｎｓ ｗｉｔｈｉｎ ＡｃｔＡ ｐｒｏｍｏｔｅ Ａｒｐ２／３ ｃｏｍｐｌｅｘ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ａｃｔｉｎ ｎｕｃｌｅａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｍｏｔｉｌｉｔｙ．Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１５０：５２７−５３８に既に記載されているように行うことができる。簡潔には、Ｌ２細胞を６ウェル組織培養皿でコンフルーエントになるまで増殖させ、次いで、細菌に１時間感染させる。感染後、０．８％アガロース含有ＤＭＥ、ウシ胎仔血清（例えば、２％）および所望の濃度のゲンタマイシンを含む、４０℃まで加温した培地で細胞を重層する。培地中のゲンタマイシン濃度は、プラークサイズに著しく影響し、選択されたリステリア菌株が細胞間伝播を達成する能力の尺度となる（Ｇｌｏｍｓｋｉ，Ｉ Ｊ．，Ｍ．Ｍ．Ｇｅｄｄｅ，Ａ．Ｗ．Ｔｓａｎｇ，Ｊ．Ａ．ＳｗａｎｓｏｎおよびＤ．Ａ．Ｐｏｒｔｎｏｙ．２００２．Ｊ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．１５６：１０２９−１０３８）。例えば、ある実施形態では、５０μｇ／ｍｌの濃度でゲンタマイシンを含む培地で重層した場合、単層の感染後３日で、細胞間伝播欠損の表現型を有するリステリア菌株のプラークサイズは、野生型リステリアに比べ、少なくとも５０％減少する。その一方で、ゲンタマイシンを５μｇ／ｍｌのみ含む培地＋アガロースで感染単層を重層した場合、細胞間伝播欠損の表現型を有するリステリア菌株と野生型リステリアとの間でのプラークサイズは同程度であった。したがって、選択された菌株が感染細胞単層において細胞間伝播を達成するための、野生型リステリアと比較した相対的能力は、アガロース含有培地中のゲンタマイシン濃度を変化させることにより測定し得る。任意で、ニュートラルレッド（ＧＩＢＣＯ ＢＲＬ；ＤＭＥ＋アガロース培地中、１：２５０希釈）を含む培地を、感染後４８時間の重層に添加することにより、プラーク直径の可視化および測定を容易にし得る。さらに、プラークアッセイは、他の初代細胞または継代細胞に由来する単層において行い得る。例えば、肝細胞由来細胞株であるＨｅｐＧ２細胞または初代ヒト肝細胞を用いて、選択されたリステリア変異株が細胞間伝播を達成するための能力を野生型リステリアと比較して評価し得る。ある実施形態では、細胞間伝播に関してリステリアを弱毒化する変異または他の改変を含むリステリアは、高濃度のゲンタマイシン（約５０μｇ／ｍｌ）で「ピンポイント」プラークを形成する。
ある実施形態では、リステリアは、（非変異株または野生型リステリアに比べ）非食細胞内への侵入に関して弱毒化されている。ある実施形態では、リステリアは、１つまたは複数のインターナリン（または同等物）に関して欠損がある。ある実施形態では、リステリアはインターナリンＡに関して欠損がある。ある実施形態では、リステリアはインターナリンＢに関して欠損がある。ある実施形態では、リステリアはｉｎｌＡに変異を含む。ある実施形態では、リステリアはｉｎｌＢに変異を含む。ある実施形態では、リステリアは、ａｃｔＡおよびｉｎｌＢの両方に変異を含む。ある実施形態では、リステリアは、機能的なＡｃｔＡおよびインターナリンＢが欠失している。ある実施形態では、弱毒化リステリア菌はΔａｃｔＡΔｉｎｌＢ二重欠失変異株である。ある実施形態では、リステリア菌は、ＡｃｔＡおよびインターナリンＢの両方に関して欠損がある。
ある実施形態では、弱毒化リステリア菌の非食細胞内への侵入能力は、弱毒化変異を有しないリステリア（例えば、野生型菌）に比べて、少なくとも約１０％、少なくとも約２５％、少なくとも約５０％、少なくとも約７５％または少なくとも約９０％減少している。ある実施形態では、弱毒化リステリア菌の非食細胞内への侵入能力は、弱毒化変異を有しないリステリアに比べて、少なくとも約２５％減少している。ある実施形態では、弱毒化リステリア菌の非食細胞内への侵入能力は、弱毒化変異を有しないリステリアに比べて、少なくとも約５０％減少している。ある実施形態では、弱毒化リステリア菌の非食細胞内への侵入能力は、弱毒化変異を有しないリステリアに比べて、少なくとも約７５％減少している。
ある実施形態では、弱毒化リステリアは、２つ以上のタイプの非食細胞内への侵入に関して弱毒化されていない。例えば、弱毒化菌株は、肝細胞内への侵入に関しては弱毒化されているが、上皮細胞内への侵入に関しては弱毒化されていなくてもよい。別の例としては、弱毒化菌株は、上皮細胞内への侵入に関しては弱毒化されているが、肝細胞に関しては弱毒化されていなくてもよい。特定の改変リステリアの非食細胞内への侵入に関する弱毒化は、特定の細胞受容体と相互作用した結果、非食細胞の感染を促進するインベイシンタンパク質をコードする示された遺伝子の変異、例えば、欠失変異の結果である。例えば、リステリアΔｉｎｌＢ変異株は、肝細胞細胞株（例えば、ＨｅｐＧ２）および初代ヒト肝細胞を含めた肝細胞の増殖因子受容体を発現する非食細胞内への侵入に関して弱毒化されている。
ある実施形態では、リステリアは非食細胞内への侵入に関して弱毒化されているが、そのリステリアは、少なくとも樹状細胞および／またはマクロファージのような食細胞による取込みが依然可能である。一実施形態では、弱毒化リステリアが食細胞内へ侵入する能力は、その菌株に施されたインベイシン変異のような改変により減少することはない（すなわち、その菌株が食細胞により取り込まれる測定能力の約９５％以上が改変後に保持されている）。他の実施形態では、弱毒化リステリアが食細胞内へ侵入する能力は、約１０％以下、約２５％以下、約５０％以下または約７５％以下だけ減少している。
本発明のある実施形態では、リステリアが非食細胞内へ侵入する能力における弱毒化の量は、２倍の減少からかなり高レベルの弱毒化までの範囲である。ある実施形態では、リステリアが非食細胞内へ侵入する能力における弱毒化の量は、少なくとも約０．３ｌｏｇ、約１ｌｏｇ、約２ｌｏｇ、約３ｌｏｇ、約４ｌｏｇ、約５ｌｏｇまたは少なくとも約６ｌｏｇである。ある実施形態では、弱毒化は、約０．３〜＞８ｌｏｇ、約２〜＞８ｌｏｇ、約４〜＞８ｌｏｇ、約６〜＞８ｌｏｇ、約０．３〜８ｌｏｇ、また約０．３〜７ｌｏｇ、また約０．３〜６ｌｏｇ、また約０．３〜５ｌｏｇ、また約０．３〜４ｌｏｇ、また約０．３〜３ｌｏｇ、また約０．３〜２ｌｏｇ、また約０．３〜１ｌｏｇの範囲にある。ある実施形態では、弱毒化は、約１〜＞８ｌｏｇ、１〜７ｌｏｇ、１〜６ｌｏｇ、また約２〜６ｌｏｇ、また約２〜５ｌｏｇ、また約３〜５ｌｏｇの範囲にある。
リステリア菌が非食細胞内への侵入に関して弱毒化されているか否かを決定するためのインビトロアッセイは、当業者に公知である。例えば、Ｄｒａｍｓｉら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ １６：２５１−２６１（１９９５）およびＧａｉｌｌａｒｄら，Ｃｅｌｌ ６５：１１２７−１１４１（１９９１）の両方に、変異Ｌ．モノサイトゲネス株が特定の細胞株内へ侵入する能力をスクリーニングするためのアッセイが記載されている。例えば、特定の改変を有するリステリア菌が、特定のタイプの非食細胞内への侵入に関して弱毒化されているか否かを判定するために、弱毒化リステリア菌が特定のタイプの非食細胞内へ侵入する能力を測定し、改変を有しない同一リステリア菌の非食細胞内へ侵入する能力と比較する。同様に、特定の変異を有するリステリア菌株が、特定のタイプの非食細胞内への侵入に関して弱毒化されているか否かを判定するために、変異体リステリア菌株が特定のタイプの非食細胞へ侵入する能力を測定し、変異を有しないリステリア菌の非食細胞へ侵入する能力と比較する。例えば、改変リステリア菌が肝細胞のような非食細胞に感染する能力と、非改変リステリアまたは野生型リステリアが食細胞に感染する能力とを比較してもよい。このようなアッセイでは、通常、改変および非改変リステリアをインビトロの非食細胞に限られた時間の間（例えば、１時間）加え、次いで、細胞をゲンタマイシン含有溶液で洗浄して細胞外のあらゆる細菌を死滅させ、細胞を溶解させ、次いでプレーティングして力価を評価する。このようなアッセイの例は、米国特許公開第２００４／０２２８８７７号に見られる。さらに、菌株がインターナリンＢに関して欠損があることの確認は、その菌株の表現型と、インターナリンＢ変異株に関して既に報告されている表現型とを比較することにより行い得る。
リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡΔｉｎｌＢ株は、特許手続き上の微生物の寄託の国際的承認に関するブダペスト条約の規定の下、２００３年１０月３日に、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション（Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｔｙｐｅ Ｃｕｌｔｕｒｅ Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ）（ＡＴＣＣ）、１０８０１ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｂｌｖｄ．、Ｍａｎａｓｓａｓ、Ｖｉｒｇｉｎｉａ ２０１１０−２２０９、米国（Ｐ．Ｏ．Ｂｏｘ １５４９，Ｍａｎａｓｓａｓ，Ｖｉｒｇｉｎｉａ，２０１０８，米国）に寄託され、アクセッション番号ＰＴＡ−５５６２に指定された。別のリステリア・モノサイトゲネス株である、ΔａｃｔＡΔｕｖｒＡＢ株も、特許手続き上の微生物の寄託の国際的承認に関するブダペスト条約の規定の下、２００３年１０月３日にＡＴＣＣに寄託され、アクセッション番号ＰＴＡ−５５６３に指定された。
ある実施形態では、リステリアは、（例えば、野生型に比べて）核酸修復に関して弱毒化されている。例えば、ある実施形態では、リステリアは、少なくとも１つのＤＮＡ修復酵素に関して欠損がある（例えば、リステリア・モノサイトゲネスｕｖｒＡＢ変異株）。ある実施形態では、リステリアは、ＰｈｒＢ、ＵｖｒＡ、ＵｖｒＢ、ＵｖｒＣ、ＵｖｒＤおよび／またはＲｅｃＡに関して欠損がある。ある実施形態では、細菌は、ＵｖｒＡ、ＵｖｒＢ、および／またはＵｖｒＣに関して欠損がある。ある実施形態では、細菌は、ｐｈｒＢ、ｕｖｒＡ、ｕｖｒＢ、ｕｖｒＣ、ｕｖｒＤおよび／またはｒｅｃＡ遺伝子に弱毒化変異を含む。ある実施形態では、細菌は、ｕｖｒＡ、ｕｖｒＢおよび／またはｕｖｒＣ遺伝子に１つまたは複数の変異を含む。ある実施形態では、細菌は、ＵｖｒＡ、ＵｖｒＢおよび／またはＵｖｒＣが機能的に欠失している。ある実施形態では、細菌は、機能的ＵｖｒＡおよびＵｖｒＢが欠失している。ある実施形態では、細菌はｕｖｒＡＢ欠失変異株である。ある実施形態では、細菌はΔｕｖｒＡＢΔａｃｔＡ変異株である。ある実施形態では、核酸修復に関して弱毒化されているおよび／または少なくとも１つのＤＮＡ修復酵素に関して欠損がある細菌の核酸は、核酸標的化合物との反応により改変される。ΔｕｖｒＡＢリステリア・モノサイトゲネス変異株のような核酸修復変異株およびこの変異株の作製法は、その内容全体が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許公開第２００４／０１９７３４３号において詳細に説明されている（例えば、米国特許第２００４／０１９７３４３号の実施例７を参照されたい）。
ある実施形態では、弱毒化リステリア菌の核酸修復能力は、弱毒化変異を有しないリステリア菌（例えば、野生型菌）に比べて、少なくとも約１０％、少なくとも約２５％、少なくとも約５０％、少なくとも約７５％または少なくとも約９０％減少している。ある実施形態では、弱毒化リステリア菌の核酸修復能力は、弱毒化変異を有しないリステリア菌に比べて、少なくとも約２５％減少している。ある実施形態では、核酸修復に関して弱毒化されたリステリア菌の核酸修復能力は、弱毒化変異を有しないリステリア菌に比べ、少なくとも約５０％減少している。
細菌株に特定の変異が存在することの確認は、当業者に公知の様々な方法により行い得る。例えば、菌株ゲノムの関連する部分をクローニングして配列決定し得る。あるいは、欠失またはその他の変異と隣接する領域をコードするプライマー対を用いたＰＣＲにより、特定の変異を同定し得る。サザンブロット法を用いて、細菌ゲノムにおける変化を検出することもできる。また、ウエスタンブロット法のような当業者に一般的な方法を用いて、特定のタンパク質が菌株により発現されるか否かを解析し得る。菌株が所望の遺伝子に変異を含むことの確認は、その菌株の表現型と、既報の表現型を有する菌株の表現型とを比較することにより行い得る。例えば、ｕｖｒＡＢ欠失のようなヌクレオチド除去修復変異の存在は、細菌がヌクレオチド除去修復（ＮＥＲ）機構を用いてその核酸を修復する能力を試験するアッセイ使用して、その能力を野生型細菌と比較することにより評価し得る。このような機能的アッセイは当該分野で公知である。例えば、シクロブタンダイマー除去またはＵＶ誘導（６〜４）産物の除去を測定して、変異株におけるＮＥＲ酵素における欠損を測定し得る（例えば、Ｆｒａｎｋｌｉｎら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８１：３８２１−３８２４（１９８４）を参照されたい）。あるいは、核酸修復における欠損を評価して生存測定を行い得る。例えば、リステリアにソラレン／ＵＶＡ処置を行い、次いで、その増殖および／または生存能力を野生型と比較して評価し得る。本発明は、不活化されているが代謝的に活性（ＫＢＭＡ）なリステリア菌またはリステリア菌株（例えば、Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔら，（２００５）Ｎａｔ．Ｍｅｄ．［７月２４日の発行前電子出版］を参照されたい）。ＫＢＭＡリステリア菌は、代謝的に活性であるが、例えば、寒天上でコロニーを形成することができない。ＤＮＡ修復遺伝子の少なくとも１つにおける不活性化変異、例えば、ΔｕｖｒＡＢにより、コロニー形成を抑制するには十分であるが、代謝を実質的に阻害するには十分ではない低濃度の核酸架橋剤（例えば、ソラレン）を用いて、リステリアを死滅させることが可能である。ソラレン／ＵＶＡ光による限定的な処置および／または鎖間のゲノム架橋形成に高特異的な核酸架橋剤による処置の結果は、菌体は死滅するが、代謝的には活性であるというものである。
本発明は、本発明の弱毒化リステリアを作製または操作するための数多くのリステリア菌株を提供する（表４−１〜３）。本発明のリステリアは、この表に開示される菌株に限定されるべきではない。
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ある実施形態では、リステリアの弱毒化は、宿主に対するリステリアの生物学的効果の観点から測定し得る。菌株の病原性は、マウスまたその他の脊椎動物におけるＬＤ５０の測定により評価し得る。ＬＤ５０とは、リステリアが脊椎動物の５０％を死亡させるのに必要な、その脊椎動物内に注射されるリステリアの量または投与量のことである。ＬＤ５０値は、特定の改変（例えば、変異）を有する細菌と特定の改変を有しない細菌とに関する弱毒化レベルの測定値として比較し得る。例えば、特定の変異を有しない細菌株が１０３細菌のＬＤ５０であり、特定の変異を有する細菌株が１０５細菌のＬＤ５０である場合、その菌株はＬＤ５０が１００倍または２ｌｏｇだけ増加するように弱毒化されている。
ある実施形態では、弱毒化リステリアは、親または野生型リステリアのＬＤ５０よりも、少なくとも約５倍高い、少なくとも約１０倍高い、少なくとも約１００倍高い、少なくとも約１０００倍高いまたは少なくとも約１×１０４高いＬＤ５０を有する。
さらなる例として、弱毒化の程度はまた、組織病態の程度または血清肝臓酵素レベルのような他の生物学的効果により定性的に測定し得る。臨床検査室で、リステリア（または他の細菌）を注射したマウスについてアラニンアミノトランスフェラーゼ（ＡＬＴ）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（ＡＳＴ）、アルブミンおよびビリルビンの血清レベルを測定する。リステリアの弱毒化を評価するための方法として、特定の改変／変異を有するリステリアおよび有しないリステリアに関して、マウスまたはその他の脊椎動物におけるこれらの効果を比較し得る。リステリアの弱毒化は、組織病態によっても測定し得る。感染脊椎動物の様々な組織、例えば、肝臓、脾臓および神経系などから回収可能なリステリアの量を、変異リステリアおよび非変異リステリアを注射した脊椎動物間でこの値を比較することにより、弱毒化のレベルの尺度として使用することもできる。例えば、肝臓または脾臓のような感染組織から回収可能な量を時間の関数として、変異リステリアおよび非変異リステリアを注射した脊椎動物間でこの値を比較することにより、弱毒化の尺度として使用し得る。
したがって、リステリアの弱毒化は、野生型リステリアの標的であることが知られているマウスの特定の選択された器官における細菌負荷の観点から測定し得る。例えば、リステリアの弱毒化は、ＢＨＩ寒天培地上で肝臓または脾臓ホモジネート（Ｈ２Ｏ＋０．２％ＮＰ４０中でホモジナイズ）のプレーティング希釈物から生じたコロニー（コロニー形成単位；ＣＦＵまたはｃｆｕ）を計数することにより測定し得る。例えば、静脈内、腹腔内、筋肉内および皮下を含めた任意の数の経路による改変リステリアの投与後に、肝臓または脾臓のｃｆｕを経時的に測定し得る。さらに、リステリアを、肝臓および脾臓（または他の任意の選択された器官）において、上記のように競争的指標アッセイにより投与後から経時的に測定して、薬剤耐性の野生型リステリア（または他の任意の選択されたリステリア菌株）と比較し得る。
変異リステリアを作製する方法は当該分野で公知である。細菌の変異は、変異性化学物質または放射線照射の後に変異株の選択を行うなどの従来の変異誘発法により達成し得る。細菌の変異はまた、組換えＤＮＡ技術により当業者が達成し得る。例えば、欠失変異株を含めた変異株作製での使用には、Ｃａｍｉｌｌｉら，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｍｉｃｒｏ．８：１４３−１５７（１９９３）に記載のｐＫＳＷベクターを用いた対立遺伝子交換法が適している（Ｃａｍｉｌｌｉら，（１９９３）は、その内容全体が参照により本明細書に組み込まれる）。あるいは、Ｂｉｓｗａｓら，Ｊ．Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ．１７５：３６２８−３６３５（１９９３）に記載の遺伝子置換プロトコールを使用し得る。他の同様な方法が当業者に公知である。
様々な細菌変異株の構築は、それぞれその内容全体が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許出願第１０／８８３，５９９号、米国特許出願公開第２００４／０１９７３４３号および同２００４／０２２８８７７号に記載されている。
非食細胞による弱毒化細菌の取込みにおける弱毒化の程度は、安全かつ効果的なワクチンを提供するために完全な弱毒化である必要なない。ある実施形態では、弱毒化の程度は、毒性症状を予防するか、または致死的でないレベルまで軽減するのに十分な毒性減少をもたらす程度である。
ある実施形態では、リステリアは、コロニー形成、複製および／または分裂を行うことができない。本発明のある実施形態では、リステリアは、増殖に関して親または野生型リステリアに比べ弱毒化されている。
ある実施形態では、弱毒化リステリアは、不活化されているが代謝的に活性（ＫＢＭＡ）である（その内容全体が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許出願公開第２００４／０１９７３４３号およびＢｒｏｃｋｓｔｅｄｔら，Ｎａｔ．Ｍｅｄ．，１１：８５３−６０（２００５））。
リステリア個体群の核酸は、様々な方法により改変し得る。細菌の核酸は、物理学的方法、例えば、紫外線または電離放射線の照射により改変し得る。ｘ線またはγ線のような電離放射線を用いて、核酸中の一本鎖または二本鎖切断を引き起こし得る。紫外線照射を用いて、核酸中にピリミジンダイマーを生じ得る。適切な照射量は、複製およびタンパク質発現に対する照射の効果を上に詳述したように評価することで決定し得る。
リステリアの核酸は、化学的方法、例えば、核酸標的化化合物（本明細書では核酸標的化合物とも呼ぶ）との反応により改変し得る。ある実施形態では、核酸を改変することができる核酸標的化化合物でリステリアを処置して、リステリアの増殖を弱毒化する。ある実施形態では、核酸を改変することができる核酸標的化化合物でリステリアを処置してリステリアの増殖を弱毒化し、ここでは、このリステリア個体群は、免疫応答を誘発するのに十分な程度まで所望のタンパク質抗原を依然発現することができる。核酸標的化化合物は、特定の核酸改変機構に限定されない。このような化合物は、核酸と直接反応することにより（すなわち、化合物の全部または一部分が核酸と共有結合する）、または間接的に核酸改変を引き起こす（例えば、一重項酸素または酸素ラジカル酸素の発生を介して酸素傷害を引き起こすことによるか、傷害を引き起こす化合物のラジカルの発生によるか、またはその他の核酸還元もしくは酸化機構による）ことにより、核酸を改変する。エンジインは、ＤＮＡ二重鎖切断をもたらすラジカル種を形成する化合物のクラスの一例である［Ｎｉｃｏｌａｏｕら，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，９０：５８８１−５８８８（１９９３）］。核酸と直接反応する化合物は、その化合物の活性化、例えば、その化合物への照射に対して反応し得る。間接的に反応して核酸改変を引き起こす化合物は、その化合物の活性化種を発生するか、または何か他の活性化種を発生するために同様な活性化を必要とし得る。核酸標的化化合物の活性化の方法に限定するわけではないが、本発明の一実施形態には、核酸と直接反応するか、または生成後に核酸と反応する活性酸素種（例えば、一重項酸素）のような反応種を発生する、光活性化化合物の使用が含まれる。
核酸標的化化合物は、生物学的試料の他の成分を有意に改変することなく選択的に核酸を改変する。このような化合物は、細胞膜、タンパク質および脂質を有意に変化させるまたは損傷することなく、適切な核酸改変をもたらす。このような化合物は、これらの他の細胞成分を有意でない程度まで改変し得る。細胞膜、タンパク質および脂質のようなこれらの細胞成分は、その生物学的機能が十分に維持されていれば、有意に変化したことにならない。リステリアを核酸標的化化合物で処置する場合、核酸改変がリステリアの複製を弱毒化させるものである一方、リステリアの細胞膜、タンパク質および脂質は実質的に影響されず、リステリアの遺伝子発現は活性であり（例えば、遺伝子発現に必要な酵素は有意に影響されない）、リステリア表面には、化合物で処理されなかったリステリアと基本的に同じ抗原が維持されている。その結果、リステリアの増殖が有意に弱毒化されている一方で、ワクチンとして有効な十分な抗原性または免疫原性が維持されるため、このような化合物は、ワクチンとして使用する不活性リステリアの調製に有用である。これらの化合物は核酸を特異的に改変するため、複製を弱毒化しつつ十分なレベルのタンパク質発現を維持するように所望のレベルに改変を調節し得る。改変は、化合物濃度、反応媒体のような反応のパラメーターを変化させること、光量またはｐＨのような化合物活性化因子を調節することあるいは酸素濃度の調節（例えば脱気により物理学的に、または脱酸素剤の使用により化学的に）により酸素傷害を引き起こす化合物を調節することにより、調節し得る。核酸標的化化合物は、核酸と選択的に結合する傾向を有する、すなわち、核酸に対して測定可能な親和性を有する、任意の化合物である。このような化合物は、生物学的試料の他の多くの成分、特にタンパク質、酵素、脂質および膜のような成分に対するよりも核酸に対して強い親和性を有する。核酸標的化は、遺伝子転写およびタンパク質翻訳の機構のような生物学的試料の他の構成要素に有意な影響を与えずに、核酸改変に対する特異性をもたらす。
化合物は、多くの様式で核酸に対して標的化し得る。以下の任意の様式またはそれらの組合せにより結合する化合物は、核酸標的化化合物とみなされる。インターカレーション、副溝結合、主溝結合、静電結合（例えば、リン酸骨格結合）および配列特異的結合（主溝または副溝中の配列認識を介する）は、すべて核酸との非共有様式の結合である。これらの結合様式の１つまたは複数を含む化合物は、核酸に対して高親和性を有するであろう。本発明は以下の化合物に限定されないが、このような核酸との結合様式を有する化合物の一部の例は以下の通りである：インターカレーターの例としては、アクリジン、アクリドン、プロフラビン、アクリフラビン、アクチノマイシン、アントラシクリノン、ベータ−ロドマイシンＡ、ダウナマイシン、チアキサンテノン、ミラシルＤ、アントラマイシン、マイトマイシン、エキノマイシン、キノマイシン、トリオスチン、ジアクリジン、エリプチシン（ｅｌｌｉｐｔｉｃｅｎｅ）（二量体、三量体および類似体を含む）、ノルフィリンＡ、フルオレンおよびフルオレノン、フルオレノジアミン、キナクリン、ベンゾアクリジン、フェナジン、フェナントラジン、フェノチアジン、クロルプロマジン、フェノキサジン、ベンゾチアゾール、キサンテンおよびチオ−キサンテン、アントラキノン、アントラピラゾール、ベンゾチオピラノインドール、３，４−ベンツピレン、ベンゾピレンジオールエポキシド、１−ピレニルオキシラン、ベンゾアントラセン−５，６−オキシド、ベンゾジピロン、ベンゾチアゾール、キノロン、クロロキン、キニーネ、フェニルキノリンカルボキサミド、フロクマリン（例えば、ソラレン、イソソラレンおよびそれらの硫黄類似体）、エチジウム塩、プロピジウム、コラリン、エリプチシンカチオンおよび誘導体、多環炭化水素およびそれらのオキシラン誘導体ならびにエキニマイシン（ｅｃｈｉｎｉｍｙｃｉｎ）が挙げられる；副溝結合剤の例としては、ジスタマイシン、マイトマイシン、ネトロプシン、その他のレキシトロプシン、ヘキスト３３２５８およびその他のヘキスト色素、ＤＡＰＩ（４'，６'−ジアミジン−２−フェニルインドール）、ベレニルならびにトリアリルメタン色素が挙げられる；主溝結合剤の例としては、アフラトキシンが挙げられる；静電結合剤の例としては、スペルミン、スペルミジンおよびその他のポリアミンが挙げられる；そして配列特異的結合剤の例としては、三重へリックス形成、Ｄ−ループ形成および一本鎖標的との直接的塩基対形成のような配列特異的相互作用により結合する核酸または類似体が挙げられる。その他の配列特異的結合化合物としては、ポリピロール化合物、ポリピロールイミダゾール化合物、シクロプロピルピロロインドール化合物および関連する副溝結合化合物が挙げられる［Ｗｅｍｍｅｒ，Ｎａｔｕｒｅ Ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ，５（３）：１６９−１７１（１９９８），Ｗｕｒｔｚら，Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ＆Ｂｉｏｌｏｇｙ ７（３）：１５３−１６１（２０００），Ａｎｔｈｏｎｅｙら，Ａｍ．Ｊ．Ｐｈａｒｍａｃｏｇｅｎｏｍｉｃｓ １（１）：６７−８１（２００１）］。
核酸標的化に加え、これらの化合物は、核酸と反応した結果、核酸と共有結合することもできる。核酸アルキル化剤は、核酸と共有結合的に反応することができる化合物のクラスであり、マスタード（例えば、モノまたはビスハロエチルアミン基およびモノハロエチルスルフィド基）、マスタード同等物（例えば、エポキシド、アルファハロケトン）およびマスタード中間体（例えば、アジリジン、アジリジニウムおよびそれらの硫黄類似体）、メタスルホン酸エステルならびにニトロソウレアが挙げられるが、これらに限定されない。核酸アルキル化剤は通常、核酸上の求核基と反応する。これらの化合物の核酸アルキル化活性および核酸標的化能の組合せが、核酸と特異的に共有結合的反応を起こす能力をこれらに付与し、本発明で使用するリステリア核酸の所望の改変をもたらす。これらの化合物の特異性は、リステリア内に侵入しないであろうクエンチャーの使用によりさらに増強され得る。このようなクエンチャーは、リステリア表面との反応を停止させる一方で、核酸標的化化合物を依然リステリア核酸と反応させるであろう。このような反応停止に関する記述は、その開示が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許第６，２７０，９５２号に見ることができる。リステリア核酸の改変は、化合物濃度および反応条件を調節することにより制御し得る。適切な濃度および反応条件は、上で詳述したように、複製およびタンパク質発現に対するそれらの効果を評価することにより決定される。本発明で使用される化合物は、約１０ｐＭ〜１０ｍＭ、また約１００ｐＭ〜１ｍＭ、また約１ｎＭ〜１０μＭ、また約１〜５００ｎＭ、また約１〜２００ｎＭまたは約１〜１００ｎＭの濃度において効果的である。核酸、特にリステリア核酸との特異的反応のための核酸標的化された核酸反応性化合物に関する記述は、その開示が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許第６，１４３，４９０号および同第６，０９３，７２５号に見ることができる。
核酸は、核酸改変を引き起こすために照射による活性化を必要とする核酸標的化化合物を用いて改変し得る。このような化合物は、上述のように核酸に対して標的化されている。これらの化合物としては、アクリジン、アクリドン、アントリル誘導体、アロキサジン（例えば、リボフラビン）、ベンゾトリアゾール誘導体、平面芳香族化合物のジアゾ誘導体、平面芳香族化合物のシアノ誘導体、トルイジン、フラビン、フェノチアジン（例えば、メチレンブルー）、フロクマリン、アンゲリシン、ソラレン、ソラレンの硫黄類似体、キノロン、キノリン、キノキサリン、ナプチリジン、フルオロキノロン、アントラキノンおよびアントラセンが挙げられるが、これらに限定されない。これらの化合物の多くは、ＤＮＡ光切断剤として使用される［Ｄａ Ｒｏｓら，Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｄｅｓｉｇｎ ７：１７８１（２００１）］。本発明は、核酸標的化化合物の活性化法に限定されないが、通常、これらの化合物は、特定波長の光で活性化され得る。効果的な光の波長は、化合物の性質に依存し、約２００〜１２００ｎｍのいずれかの範囲であり得る。これらの化合物では、化合物が核酸と直接結合することなく、例えば、核酸近傍で活性酸素種を発生することにより、活性化が核酸の改変を引き起こす。一部のこれらの化合物では、活性化により化合物が核酸と直接結合する（すなわち、化合物が共有結合する）。一部のこれらの化合物は、核酸と反応して鎖間架橋を形成し得る。ソラレンは、核酸を架橋する化合物のクラスの一例である。これらの化合物は通常、ＵＶＡ光（３２０〜４００ｎｍ）により活性化される。本発明で使用されるソラレン化合物は、その開示が参照により本明細書に組み込まれる、米国特許第６，１３３，４６０号および同第５，５９３，８２３号に例示されている。この場合も、核酸標的化と活性化による核酸改変能との組合せが、核酸との特異的反応をもたらす。リステリア核酸の改変は、化合物濃度、反応条件および光線量を調節することにより制御し得る。適切な濃度および光線量は、上で詳述したように、複製およびタンパク質発現に対するそれらの効果を評価することにより決定される。反応は、化合物濃度および光曝露レベルに加え、試料がＵＶＡ光を照射される条件により影響される。例えば、緩衝培地中のリステリア個体群を照射するために必要な全濃度は、増殖培地（例えば、ＢＨＩ、Ｔｒｉｐｔａｓｅ Ｓｏｙ Ｂｒｏｔｈ）で培養される個体群により異なるであろう。光反応は、ソラレンと相互作用し得る増殖培地の含有物により影響され得るため、高い全濃度のソラレンが必要となる。さらに、リステリアの効果的な光線量は、その菌の増殖相および増殖相間の化合物の存在もしくは非存在に依存し得る。一実施形態では、リステリア個体群は、ソラレンＵＶＡ処置の間、増殖培地を含む。一実施形態では、リステリア個体群にソラレンを添加し、その個体群をソラレンおよび増殖培地の存在下で培養してリステリアを増殖させ、そしてリステリア増殖相のある時点でＵＶＡ処置を行う。一実施形態では、適切なＵＶＡ光量での照射の前に、個体群をソラレンの存在下で０．５〜１のＯＤ（１×１０７〜１×１０９ＣＦＵ／ｍＬ）まで増殖させる。ソラレン化合物は、約１０ｐＭ〜１０ｍＭ、また約１００ｐＭ〜１ｍＭ、また約１ｎＭ〜１０μＭ、また約１〜５００ｎＭ、また約１〜２００ｎＭまたは約１〜１００ｎＭの濃度において、ＵＶＡ光量が約０．１〜１００Ｊ／ｃｍ２、また約０．１〜２０Ｊ／ｃｍ２または約０．５〜１０Ｊ／ｃｍ２、約０．５〜６Ｊ／ｃｍ２または約２〜６Ｊ／ｃｍ２の範囲にある場合に効果的である。一実施形態では、ソラレン濃度が約１０ｐＭ〜１０ｍＭ、また約１〜５０００ｎＭ、また約１〜５００ｎＭ、また約５〜５００ｎＭまたは約１０〜４００ｎＭの増殖培地の存在下でリステリアを処置する。一実施形態では、増殖培地の存在下で処置したリステリアを、濃度が約１０ｐＭ〜１０ｍＭ、また約１〜５０００ｎＭ、また約１〜５００ｎＭ、また約５〜５００ｎＭまたは約１０〜４００ｎＭのソラレン存在下で、０．５〜１のＯＤまで増殖させる。０．５〜１のＯＤまで増殖させた後、ＵＶＡ光を、約０．１〜１００Ｊ／ｃｍ２、また約０．１〜２０Ｊ／ｃｍ２または約０．５〜１０Ｊ／ｃｍ２、約０．５〜６Ｊ／ｃｍ２または約２〜６Ｊ／ｃｍ２の範囲の光線量でリステリア個体群に照射する。
ある実施形態では、リステリアの核酸を改変するために使用される核酸標的化合物は、β−アラニン、Ｎ−（アクリジン−９−イル）、２−［ビス（２−クロロエチル）アミノ］エチルエステルのようなアルキル化剤である。他の実施形態では、リステリアの核酸を改変するために使用される核酸標的化合物は、ＵＶＡ照射により活性化されるソラレン化合物（例えば、４'−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５'，８−トリメチルソラレン、本明細書では「Ｓ−５９」とも呼ぶ）である。
一実施形態では、本発明は、リステリア核酸が改変されてリステリア個体群の増殖が弱毒化されるが、リステリアの遺伝子発現は実質的に影響を受けないようにリステリア個体群を処置することを含む、ワクチン組成物の作製法を含む。別の実施形態では、本発明は、リステリア核酸が改変されてリステリア個体群の増殖が弱毒化されるが、リステリアの遺伝子発現は実質的に影響を受けないようにリステリア個体群を処置し、次いでそのリステリア個体群を用いて、抗原提示細胞を抗原で負荷し、抗原提示細胞の活性化／成熟を誘発することを含む、ワクチン組成物の作製法を含む。一実施形態では、リステリア個体群を照射により処置する。一実施形態では、リステリア個体群を、核酸改変を間接的に引き起こす核酸標的化化合物との反応により処置する。さらなる実施形態では、核酸標的化化合物を照射により活性化し、そしてこの化合物の活性化が核酸の間接的な改変を引き起こす。さらなる実施形態では、核酸標的化化合物の活性化により、核酸を改変する活性酸素種が生じる。一実施形態では、リステリア個体群を、核酸と直接反応する核酸標的化化合物との反応により処置する。一実施形態では、核酸標的化化合物を、約１０ｐＭ〜１０ｍＭ、また約１００ｐＭ〜１ｍＭ、また約１〜５００ｎＭ、また約１〜２００ｎＭまたは約１〜１００ｎＭの濃度で反応させる。一実施形態では、核酸標的化化合物はアルキル化剤を含む。一実施形態では、アルキル化剤は、マスタード、マスタード中間体およびマスタード同等物からなる群より選択される。一実施形態では、核酸標的化化合物は、インターカレーター、副溝結合剤、主溝結合剤、静電結合剤および配列特異的結合剤からなる群より選択される核酸標的基を含む。一実施形態では、核酸標的化化合物は、その化合物の活性化により核酸と直接反応する。一実施形態では、化合物の活性化は照射によるものでる。一実施形態では、照射はＵＶＡ照射である。好適な一実施形態では、核酸標的化化合物は、ＵＶＡ照射により活性化されるソラレン化合物である。一実施形態では、ソラレン化合物は、約１０ｐＭ〜１０ｍＭ、また約１００ｐＭ〜１ｍＭ、また約１〜５００ｎＭ、また約１〜２００ｎＭまたは約１〜１００ｎＭの濃度であり、かつＵＶＡ照射は、約０．１〜１００Ｊ／ｃｍ２、また約０．１〜２０Ｊ／ｃｍ２または約０．５〜５Ｊ／ｃｍ２または約２〜４Ｊ／ｃｍ２の光線量である。一実施形態では、リステリア個体群の増殖は、少なくとも約０．３ｌｏｇ、また少なくとも約１ｌｏｇ、約２ｌｏｇ、約３ｌｏｇ、約４ｌｏｇ、約６ｌｏｇまたは少なくとも約８ｌｏｇだけ弱毒化されている。別の実施形態では、リステリア個体群の増殖は、約０．３〜＞１０ｌｏｇ、約２〜＞１０ｌｏｇ、約４〜＞１０ｌｏｇ、約６〜＞１０ｌｏｇ、約０．３〜８ｌｏｇ、約０．３〜６ｌｏｇ、約０．３〜５ｌｏｇ、約１〜５ｌｏｇまたは約２〜５ｌｏｇだけ弱毒化されている。一実施形態では、リステリア個体群による抗原発現は、核酸改変処置をされていないリステリア個体群による抗原発現の、少なくとも約１０％、約２５％、約５０％、約７５％または少なくとも約９０％である。一実施形態では、発現される抗原は、リステリア自体に由来する抗原である。一実施形態では、リステリアは、抗原をコードする異種核酸配列を含む。一実施形態では、抗原は疾患関連抗原である。一実施形態では、抗原は、感染症、自己免疫疾患、アレルギー、癌およびその他の高増殖性疾患からなる群より選択される疾患に関連する。一実施形態では、抗原は腫瘍関連抗原である。一実施形態では、腫瘍抗原は、分化抗原、組織特異抗原、発生抗原、腫瘍関連ウイルス抗原、癌精巣抗原、胚抗原、腫瘍性タンパク質抗原、過剰発現タンパク質抗原および変異タンパク質抗原からなる群より選択される。一実施形態では、腫瘍抗原は、メソテリン、Ｓｐ１７、ｇｐ１００、ＰＲ３、ＰＡＧＥ−４、ＴＡＲＰ、ＷＴ−１、ＮＹ−ＥＳＯ−１およびＳＰＡＳ−１からなる群より選択される。一実施形態では、リステリアは遺伝子変異を含む。一実施形態では、遺伝子変異は、改変されたリステリア核酸を修復するリステリアの能力の弱毒化をもたらす。一実施形態では、遺伝子変異は、リステリアの属および種により、ｐｈｒＢ、ｕｖｒＡ、ｕｖｒＢ、ｕｖｒＣ、ｕｖｒＤおよびｒｅｃＡあるいはそれらの機能的に同等な遺伝子からなる群より選択される遺伝子内にある。一実施形態では、遺伝子変異は、ｐｈｒＢ、ｕｖｒＡ、ｕｖｒＢ、ｕｖｒＣ、ｕｖｒＤおよびｒｅｃＡあるいはそれらの機能的に同等な遺伝子からなる群より選択される、１つまたは複数の遺伝子内にある。一実施形態では、遺伝子変異は、ＰｈｒＢ、ＵｖｒＡ、ＵｖｒＢ、ＵｖｒＣ、ＵｖｒＤおよびＲｅｃＡからなる群より選択されるＤＮＡ修復酵素の活性における弱毒化をもたらす。さらなる実施形態では、これらの変異を有するリステリアを、ＵＶＡ照射により活性化されるソラレンにより処置する。一実施形態では、リステリアはリステリア・モノサイトゲネスである。一実施形態では、リステリアは、食細胞によるリステリア取込みに有意な影響を与えることなくリステリアの非食細胞への侵入能力の弱毒化をもたらす変異を含む。一実施形態では、リステリア変異は、１つまたは複数のインターナリン遺伝子内にある。一実施形態では、リステリア変異は、ｉｎｌＡ、ｉｎｌＢおよびインターナリンをコードする任意の遺伝子からなる群より選択される遺伝子内にある。一実施形態では、リステリア・モノサイトゲネスは、ｉｎｌＡおよびｉｎｌＢの両遺伝子内に遺伝子変異を含む。一実施形態では、リステリアは、感染細胞のファゴリソソームからリステリアが逃避する能力の弱毒化をもたらす変異を有する。一実施形態では、リステリア変異はｈｌｙ遺伝子内にある。一実施形態では、リステリアは、リステリアによるアクチン重合の弱毒化をもたらす変異を含む。好適な一実施形態では、リステリア変異はａｃｔＡ遺伝子内にある。一実施形態では、リステリアは、ａｃｔＡ遺伝子および１つもしくは複数のインターナリン遺伝子内に変異を含む。好適な一実施形態では、リステリアは、ａｃｔＡ遺伝子およびｉｎｌＢ遺伝子内に変異を含み、好ましくは、リステリアは、ａｃｔＡ／ｉｎｌＢ欠失変異株を含む。好適な一実施形態では、リステリア・モノサイトゲネスａｃｔＡ／ｉｎｌＢ欠失変異株は、ｕｖｒＡＢ遺伝子内に欠失変異をさらに含む。
リステリアは、ある実施形態では、核酸標的化合物により弱毒化され得る。ある実施形態では、核酸標的化合物はβ−アラニン、Ｎ−（アクリジン−９−イル）、２−［ビス（２−クロロエチル）アミノ］エチルエステルのような核酸アルキル化剤である。ある実施形態では、核酸標的化合物を、ＵＶＡ照射のような照射により活性化する。ある実施形態では、リステリアをソラレン化合物で処置する。例えば、ある実施形態では、４'−（４−アミノ−２−オキサ）ブチル−４，５'，８−トリメチルソラレン（「Ｓ−５９」）のようなソラレンおよびＵＶＡ光での処置により細菌を改変する。ある実施形態では、細菌の核酸は、ソラレン化合物およびＵＶＡ照射での処置により改変されている。核酸標的化合物を用いて細菌を増殖に関して弱毒化するため細菌改変法の説明は、米国特許出願公開第２００４／０１９７３４３号およびＢｒｏｃｋｓｔｅｄｔら，Ｎａｔ．Ｍｅｄ．，１１：８５３−６０（２００５）に記載されている。ある実施形態では、リステリアは、ＤＮＡ修復に関して弱毒化されている。
例えば、ΔａｃｔＡΔｕｖｒＡＢ Ｌ．モノサイトゲネスのようなリステリアの処置のために、ある実施形態では、（約）ＯＤ６００＝０．５の対数期培養物にＳ−５９ソラレンを２００ｎＭまで添加し、次いで、培養物がその吸光度に達した時点で６Ｊ／ｍ２のＵＶＡ光により不活性化し得る。不活性化条件は、Ｓ−５９濃度、ＵＶＡ量、ＵＶＡ処置前のＳ−５９曝露時間を変化させること、およびリステリアａｃｔＡ／ｕｖｒＡＢ株の菌増殖期間中の処置時間を変化させることにより最適化される。対照として親リステリア株を用いる。リステリアの不活性化（殺対数）は、ＢＨＩ（ブレインハートインフュージョン）寒天プレートにおけるその細菌のコロニー形成の不能性により測定する。さらに、３５Ｓパルスチェイス実験を用いて、Ｓ−５９／ＵＶＡ不活性化後に新たに発現されたタンパク質の合成および分泌を測定することにより、Ｓ−５９／ＵＶＡリステリアにおいて継続する代謝活性および細菌内ＬＬＯのようなタンパク質発現を確認し得る。３５Ｓ代謝標識法を用いたＬＬＯ発現は、通常通りに測定し得る。Ｓ−５９／ＵＶＡで不活性化されたリステリアａｃｔＡ／ｕｖｒＡＢは、３５Ｓ−メチオニンの存在下で１時間インキュベートし得る。ＬＬＯのようなタンパク質の発現および／または分泌は、全細胞溶解物および細菌培養液のＴＣＡ沈殿の両方について測定し得る。不活性化後に継続する組換えリステリアからの発現および分泌を確認するために、ＬＬＯ特異的モノクローナル抗体を免疫沈降に使用し得る。
ある実施形態では、増殖に関して弱毒化されたリステリアはまた、核酸修復に関して弱毒化されている、および／または少なくとも１つのＤＮＡ修復酵素に関して欠損がある。例えば、ある実施形態では、（ＵＶＡ処置と組み合わせた）ソラレンのような核酸標的化合物により核酸が改変されている細菌は、ｕｖｒＡＢ欠損変異株である。
ある実施形態では、リステリアの増殖は、少なくとも約０．３ｌｏｇ、また少なくとも約１ｌｏｇ、約２ｌｏｇ、約３ｌｏｇ、約４ｌｏｇ、約６ｌｏｇまたは少なくとも約８ｌｏｇだけ弱毒化されている。別の実施形態では、リステリアの増殖は、約０．３〜＞１０ｌｏｇ、約２〜＞１０ｌｏｇ、約４〜＞１０ｌｏｇ、約６〜＞１０ｌｏｇ、約０．３〜８ｌｏｇ、約０．３〜６ｌｏｇ、約０．３〜５ｌｏｇ、約１〜５ｌｏｇまたは約２〜５ｌｏｇだけ弱毒化されている。ある実施形態では、リステリアによるＬＬＯ発現は、非改変リステリアにおけるＬＬＯ発現の、少なくとも約１０％、約２５％、約５０％、約７５％または少なくとも約９０％である。
VI．医薬組成物、免疫原性組成物および／またはワクチン
本明細書に記載のリステリアを含む、医薬組成物、免疫原性組成物およびワクチンのような様々な異なる組成物も本発明により提供される。ある実施形態では、組成物は単離されている。
本明細書で使用される「担体」は、任意およびすべての溶媒、分散媒、媒体、コーティング剤、希釈剤、抗真菌剤、等張／吸収遅延剤、緩衝剤、担体液剤、懸濁剤、コロイドなどを包含する。薬学的に許容される担体は当業者に公知であり、活性成分と組み合せた場合にその成分の生物学的活性の保持を可能にしかつ被検体の免疫系と非反応性である任意の材料を含む。例えば、薬学的に許容される担体としては、水、緩衝生理食塩溶液（例えば、０．９％生理食塩水）、油／水乳剤のような乳剤および様々なタイプの湿潤剤が挙げられるが、これらに限定されない。利用可能な担体としては、油（例えば、鉱油）、デキストロース溶液、グリセロール溶液、チョーク、デンプン、塩類、グリセロールおよびゼラチンも挙げられるが、これらに限定されない。
当業者に公知の任意の適切な担体が医薬組成物において使用さ得るが、担体のタイプは、投与様式に応じて異なるであろう。本発明の組成物は、任意の適切な投与方法、例えば、局所、経口、経鼻、静脈内、頭蓋内、腹腔内、皮下または筋肉内投与を含む投与法のために製剤化され得る。ある実施形態では、皮下注射のような非経口投与用に、担体は、水、生理食塩水、アルコール、脂質、ワックスまたは緩衝剤を含む。ある実施形態では、任意の上記担体あるいは固体担体、例えば、マンニトール、ラクトース、デンプン、ステアリン酸マグネシウム、サッカリンナトリウム、タルカム、セルロース、グルコース、スクロースおよび炭酸マグネシウムなどが経口投与用に使用される。
このような担体を含む組成物は、公知の従来の方法により製剤化される（例えば、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ'ｓ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，１８ｔｈ ｅｄｉｔｉｏｎ，Ａ．Ｇｅｎｎａｒｏ，編，Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏ．，Ｅａｓｔｏｎ，ＰＡ，１９９０；およびＲｅｍｉｎｇｔｏｎ，Ｔｈｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｙ ２０ｔｈ Ｅｄ．Ｍａｃｋ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ，２０００を参照されたい）。
医薬組成物に加え、免疫原性組成物が提供される。例えば、本発明は、本明細書に記載の組換え細菌を含む免疫原性組成物を提供する。
ある実施形態では、免疫原性組成物中の組換え細菌は、宿主（例えば、ヒトのような哺乳動物）への組成物の投与により、抗原を含むポリペプチドを、その抗原に対する免疫応答を誘発するのに十分なレベルで放出する。ある実施形態では、免疫原性組成物により刺激される免疫応答は、細胞性免疫応答である。ある実施形態では、免疫原性組成物により刺激される免疫応答は、体液性免疫応答である。ある実施形態では、免疫原性組成物により刺激される免疫応答は、体液性および細胞性免疫応答を共に含む。
特定の形態の組換え細菌（および／または特定の発現カセット）が免疫原性組成物において（またはワクチンとして）有用であるか否かは、その組換え細菌がインビトロまたはモデル系において免疫応答を刺激する能力を試験することにより決定し得る。
これらの免疫細胞応答をインビトロまたはインビボ両方の方法により測定して、特定の組換え細菌（および／または特定の発現カセット）の免疫応答が効果的であるか否かを決定し得る。対象とするタンパク質または抗原の、組換え細菌個体群と混合した抗原提示細胞による提示を測定することが、１つの可能性としてある。組換え細菌を、適切な抗原提示細胞または細胞系、例えば、樹状細胞と混合してもよく、そしてそのタンパク質または抗原を認識するＴ細胞へのこの樹状細胞による抗原提示を測定することができる。組換え細菌が十分なレベルのタンパク質または抗原を発現している場合、その抗原は、樹状細胞によりペプチドフラグメントにまで処理されて、ＭＨＣクラスIまたはクラスIIとの関連でＴ細胞へ提示されるであろう。提示タンパク質または抗原を検出する目的で、特定のタンパク質または抗原に応答するＴ細胞クローンまたはＴ細胞系を使用し得る。Ｔ細胞はまた、Ｔ細胞が癌細胞系と融合されて不死化した、Ｔ細胞ハイブリドーマであり得る。このようなＴ細胞ハイブリドーマ、Ｔ細胞クローンまたはＴ細胞系は、ＣＤ８＋またはＣＤ４＋Ｔ細胞を含み得る。樹状細胞は、抗原が処理される経路に応じて、ＣＤ８＋またはＣＤ４＋Ｔ細胞に提示し得る。ＣＤ８＋Ｔ細胞がＭＨＣクラスIとの関連で抗原を認識するのに対し、ＣＤ４＋はＭＨＣクラスIIとの関連で抗原を認識する。Ｔ細胞は、そのＴ細胞受容体による特異的認識を介した提示抗原により刺激され、その結果、ＩＬ−２、腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）またはインターフェロン−γ（ＩＦＮ−γ）のような特定のタンパク質を産生し、それらは（例えば、ＥＬＩＳＡ法、ＥＬＩＳＰＯＴ法または細胞内サイトカイン染色（ＩＣＳ）を用いて）定量的に測定され得る。これらは当該分野で公知の手法である。
あるいは、提示抗原によるＴ細胞ハイブリドーマの刺激により活性化されるβ−ガラクトシダーゼのようなレポーター遺伝子を含むように、ハイブリドーマを設計し得る。β−ガラクトシダーゼの産生増加は、変色を生じるクロロフェノール赤−Ｂ−ガラクトシドのような基質上でのその活性により容易に測定し得る。変色は、特定の抗原提示の指標として直接測定し得る。
本発明の組換え細菌ワクチンの抗原発現を評価するためのさらなるインビトロおよびインビボの方法が、当業者に公知である。組換え細菌による特定の異種抗原発現を直接測定することも可能である。例えば、放射活性物質で標識したアミノ酸を細胞集団に添加することができ、そして特定のタンパク質内に組み込まれた放射活性物質の量を測定することができる。細胞集団により合成されたタンパク質は、例えば、ゲル電気泳動またはキャピラリー電気泳動により単離することができ、そして放射活性物質の量を定量的に測定して特定のタンパク質の発現レベルを評価することができる。あるいは、放射活性物質なしでタンパク質を発現させ、ＥＬＩＳＡ法のような様々な方法により、あるいは酵素結合抗体または蛍光標識抗体を用いて検出するゲル電気泳動法およびウエスタンブロット法により可視化することができる。
Ｅｌｉｓｐｏｔ法、細胞内サイトカイン染色法（ＩＣＳ）、刺激膵臓細胞のサイトカイン発現測定ならびに細胞傷害性Ｔ細胞活性のインビトロおよびインビボでの評価は、すべて免疫原性評価のための当業者に公知の手法である。
さらに、免疫原性組成物またはワクチンをマウスモデルのような動物モデルに投与した後に、生存率または腫瘍増殖を評価することにより、ワクチン組成物の治療効果を評価し得る。例えば、リステリア投与および抗原投与後に生存率を測定し得る。
特定の抗原を発現する免疫原性組成物またはワクチンの免疫原性を試験するために有用なマウスモデルは、対象抗原またはモデル抗原を発現するように最初に腫瘍細胞を改変し、次いで、対象抗原を発現するその腫瘍細胞をマウス内に移植することにより作製し得る。対象抗原またはモデル抗原を含むポリペプチドを発現する組換え細菌を含む、候補免疫原性組成物またはワクチンを、マウス内への腫瘍細胞移植前に（候補組成物の予防的効果を試験するため）あるいは腫瘍細胞移植後に（候補組成物の治療的効果を試験するため）、このマウスに接種し得る。
一例として、ＣＴ２６マウスのマウス結腸癌細胞を、当該技術分野で一般的な手法を用いて、所望の抗原またはモデル抗原をコードする発現カセットを含む適切なベクターでトランスフェクトし得る。次いで、フローサイトメトリーおよびウエスタンブロット法のような一般的手法を用いて、免疫原性および／または有効性のアッセイでの使用に十分なレベルで抗原またはモデル抗原を発現するクローンを同定する。
あるいは、腫瘍細胞系列にとって内因性の抗原（例えば、ＣＴ２６マウスのマウス結腸癌細胞にとって内因性のレトロウイルスｇｐ７０腫瘍抗原ＡＨ１またはヘテロクリット性のエピトープＡＨ１−Ａ５）に対応するかまたは由来する抗原を発現する組換え細菌を含む候補組成物を試験し得る。このようなアッセイでは、追加の抗原を発現するようにさらに改変することなく、腫瘍細胞を動物モデルに移植し得る。次いで、抗原を含む候補ワクチンを試験し得る。
上述のように、本明細書に記載の細菌を含むワクチン組成物も提供される。
ある実施形態では、ワクチン組成物は、本明細書に記載のいずれかの組換え細菌に感染している抗原提示細胞（ＡＰＣ）を含む。ある実施形態では、ワクチン（または免疫原性もしくは医薬組成物）は抗原提示細胞を含まない（すなわち、ワクチンまたは組成物は細菌ベースのワクチンまたは組成物であり、ＡＰＣベースのワクチンまたは組成物ではない）。
ワクチン組成物（ならびに医薬および免疫原性組成物）投与に適した投与法は当該分野で公知であり、経口、静脈内、真皮内、腹腔内、筋肉内、リンパ内、鼻腔内および皮下の投与経路を含む。
ワクチン製剤は当該分野で公知であり、ある実施形態では、様々な添加剤、例えば、保存剤（例えば、チメロサール、２−フェノキシエタノール）、安定化剤、アジュバント（例えば、水酸化アルミニウム、リン酸アルミニウム、サイトカイン）、抗生物質（例えば、ネオマイシン、ストレプトマイシン）およびその他の物質などを含み得る。ある実施形態では、ラクトースまたはグルタミン酸ナトリウム（ＭＳＧ）のような安定化剤を添加して、温度変化または凍結乾燥工程のような様々な条件に対してワクチン製剤を安定化させる。ある実施形態では、ワクチン製剤は、滅菌水、生理食塩水または等張緩衝生理食塩水（例えば、リン酸塩により生理的ｐＨに緩衝されている）のような懸濁流体または希釈剤も含み得る。ワクチンは、製造工程からの少量の残留物も含有し得る。
例えば、ある実施形態では、ワクチン組成物は凍結乾燥（すなわち、フリーズドライされている）。凍結乾燥調製物は、投与前に滅菌溶液（例えば、クエン酸塩−重炭酸塩緩衝液、緩衝水、０．４％生理食塩水など）と組み合わせ得る。
ある実施形態では、ワクチン組成物は、ワクチンに対する免疫応答を向上させるために、アジュバントまたは共刺激分子のような当該分野で公知の追加成分をさらに含む。上記のものに加え、利用可能なアジュバントとしては、ケモカインおよびＣｐＧのような細菌核酸配列が挙げられる。ある実施形態では、ワクチンは、ＣＴＬＡ４のような、ワクチンに対する免疫応答を向上させる抗体を含む。ある実施形態では、共刺激分子は、ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−２、ＩＬ−１２、ＩＬ−１４、ＩＬ−１５、ＩＬ−１８、Ｂ７．１、Ｂ７．２およびＢ７−ＤＣからなる群より選択される１つまたは複数の因子を含み、これらは本発明のワクチン組成物中に任意に含まれる。その他の共刺激分子は当業者に公知である。
さらなる態様では、本発明は、抗原を発現するリステリアを含むワクチンまたは免疫原性組成物を改善する方法を提供する。
本発明の組換えリステリア、免疫原性組成物またはワクチンを作製する方法も提供される。例えば、一実施形態では、組換え細菌（例えば、組換えリステリア菌）を含むワクチンの作製法は、抗原をコードする組換え核酸分子を細菌内に導入することを含む。ある場合には、組換えリステリアはＰｒｆＡ＊変異を含む。別の場合には、組換えリステリアはヌルｐｒｆＡ対立遺伝子を含む。この場合、遺伝子操作されたｐｒｆＡ＊対立遺伝子をリステリアゲノム内、例えば、ｔＲＮＡａｒｇ遺伝子内に組み込む（Ｐｏｒｔ，Ｇ．Ｃ．およびＦｒｅｉｔａｇ，Ｎ．Ｅ．（２００７）Ｉｎｆｅｃｔ．Ｉｍｍｕｎｉｔｙ ７５：５８８６−５８９７）。ある実施形態では、ＰｒｆＡ応答性調節エレメントと作動可能に連結された組換えポリヌクレオチドを組換えＰｒｆＡ＊菌内に導入し、ここで、この組換えポリヌクレオチドは抗原をコードする。ある実施形態では、（ａ）シグナルペプチドをコードする第一のポリヌクレオチドおよび（ｂ）抗原をコードする第二のポリヌクレオチドを含む組換え核酸分子をＰｒｆＡ＊菌内に導入してワクチンを作製し、ここで、第二のポリヌクレオチドは第一のポリヌクレオチドと同じ翻訳リーディングフレーム内にあり、組換え核酸分子はシグナルペプチドと抗原とを含む融合タンパク質コードし、この融合タンパク質はＰｒｆＡ応答性調節エレメントと作動可能に連結されている。ある実施形態では、ワクチンを作製するために使用される組換え核酸分子は、（ａ）リステリアＡｃｔＡ、ＡｃｔＡフラグメントまたはこれらのバリアントをコードする第一のポリヌクレオチドおよび（ｂ）ポリペプチドをコードする第二のポリヌクレオチドを含む組換え核酸分子であり、ここで、第二のポリヌクレオチドは第一のポリヌクレオチドと同じ翻訳リーディングフレーム内にあり、組換え核酸分子は、非リステリアポリペプチドがＡｃｔＡ、ＡｃｔＡフラグメントまたはこれらのバリアントと融合されているかあるいはＡｃｔＡ、ＡｃｔＡフラグメントまたはこれらのバリアント内に挿入されている、タンパク質キメラをコードする。
VII．使用法
宿主（例えば、哺乳動物）における免疫応答の誘導および／または状態の予防もしくは治療のための、本明細書に記載のリステリアまたは医薬、免疫原性もしくはワクチン組成物の様々な使用法が提供される。ある実施形態では、治療または予防される状態は、疾患である。ある実施形態では、疾患は癌である。ある実施形態では、疾患は感染症である。
本明細書で使用される、（状態または疾患に関する）「治療」または「治療すること」は、有益なまたは所望の結果を得るためのアプローチを包含する。好適な実施形態では、これらの結果には臨床結果が含まれる。本発明の目的上、疾患に関する有益なまたは所望の結果には、以下に挙げる１つまたは複数のものが非限定的に含まれ得る：疾患に関連した状態の改善、疾患の治癒、疾患の重症度の軽減、疾患進行の遅延、疾患に関連した１つもしくは複数の症状の緩和、罹患者の生活の質の向上および／または生存期間の延長。同様に、本発明の目的上、状態に関する有益なまたは所望の結果には、以下に挙げる１つまたは複数のものが非限定的に含まれ得る：状態の改善、状態の治癒、状態の重症度の軽減、状態進行の遅延、状態に関連した１つもしくは複数の症状の緩和、状態を有する者の生活の質の向上および／または生存期間の延長。例えば、本明細書に記載の組成物が癌治療に使用される実施形態では、有益なまたは所望の結果には、以下に挙げる１つまたは複数のものが非限定的に含まれる：腫瘍性もしくは癌性細胞の増殖低下（または破壊）、癌に見られる腫瘍性細胞の転位減少、腫瘍サイズの縮小、癌による症状の減少、癌罹患者の生活の質の向上、疾患の治療に必要な他の薬剤用量の減少、癌進行の遅延および／または癌を有する患者の生存期間延長。
本明細書で使用される、疾患の「予防」または疾患からの「宿主の防御」（本明細書では互換的に使用される）という用語は、以下に挙げる１つまたは複数のものを非限定的に包含する：疾患の発症もしくは進行の停止、遅延、妨害、緩徐化、阻止および／もしくは延期、疾患進行の安定化ならびに／あるいは疾患発達の遅延。（本明細書では互換的に使用される）状態の「予防」または状態からの「宿主の防御」はという用語は、以下に挙げる１つまたは複数のものを非限定的に包含する：状態の発症もしくは進行の停止、遅延、妨害、緩徐化、阻止および／もしくは延期、状態進行の安定化ならびに／あるいは状態発達の遅延。この予防の期間は、治療中の疾患もしくは状態および／または個体の経歴に応じて、様々な時間の長さであり得る。例として、病原体により引き起こされる感染症に対する予防または防御のためにワクチンを設計する場合、疾患の「予防」または疾患からの「宿主の防御」という用語は、以下に挙げる１つまたは複数のものを非限定的に包含する：宿主の病原体感染、宿主の病原体感染の進行または宿主の病原体感染に関連した疾患の発症もしくは進行の、停止、遅延、妨害、緩徐化、阻止および／または延期、ならびに／あるいは宿主の病原体感染の進行安定化。また、例として、ワクチンが抗癌ワクチンである場合、疾患の「予防」または疾患からの「宿主の防御」という用語は、以下に挙げる１つまたは複数のものを非限定的に包含する：癌または転移の発達、癌進行または癌再発の、停止、遅延、妨害、緩徐化、阻止および／または延期。
一態様では、本発明は、本明細書に記載の細菌の有効量または本明細書に記載の細菌を含む組成物（例えば、医薬組成物、免疫原性組成物またはワクチン）の有効量を、宿主（例えば、哺乳動物）に投与することを含めた、宿主における抗原に対する免疫応答を誘導する方法を提供する。
ある実施形態では、免疫応答はＭＨＣクラスI免疫応答である。他の実施形態では、免疫応答はＭＨＣクラスII免疫応答である。さらに他の実施形態では、細菌また組成物の投与により誘導される免疫応答は、ＭＨＣクラスI応答およびＭＨＣクラスII応答の両方である。したがって、ある実施形態では、免疫応答はＣＤ４＋Ｔ細胞応答を含む。ある実施形態では、免疫応答はＣＤ８＋Ｔ細胞応答を含む。ある実施形態では、免疫応答は、ＣＤ４＋Ｔ細胞応答およびＣＤ８＋Ｔ細胞応答の両方を含む。ある実施形態では、免疫応答は、Ｂ細胞応答および／またはＴ細胞応答を含む。Ｂ細胞応答は、当業者に公知の方法を用いて、抗原に対する抗体の力価を決定することにより測定し得る。ある実施形態では、本明細書に記載の組成物により誘導される免疫応答は、体液性応答である。他の実施形態では、誘導される免疫応答は、細胞性免疫応答である。ある実施形態では、免疫応答は、細胞性および体液性免疫応答の両方を含む。ある実施形態では、免疫応答は抗原特異的である。ある実施形態では、免疫応答は、抗原特異的Ｔ細胞応答である。
免疫応答の誘導方法の提供に加え、本発明は、宿主（例えば、ヒト患者のような哺乳動物被検体）における状態または疾患を予防または治療する方法も提供する。これらの方法は、本明細書に記載の細菌または本明細書に記載の細菌を含む組成物の有効量を、宿主に投入することを含む。ある実施形態では、疾患は癌である。ある実施形態では、疾患は感染症である。
ある実施形態では、疾患は癌である。状態が治療または予防されるある実施形態では、疾患は、黒色腫、乳癌、膵臓癌、肝臓癌、結腸癌、結腸直腸癌、肺癌、脳癌、精巣癌、卵巣癌、扁平上皮癌、消化管癌、子宮頸癌、腎臓癌、甲状腺癌または前立腺癌である。ある実施形態では、癌は黒色腫である。ある実施形態では、癌は膵臓癌である。ある実施形態では、癌は結腸癌である。ある実施形態では、癌は前立腺癌である。ある実施形態では、癌は転移性である。
他の実施形態では、疾患は、感染症またはウイルス、細菌、真菌もしくは原虫のような病原体により引き起こされる別の疾患である。ある実施形態では、疾患は感染症である。
ある実施形態では、癌の予防または治療におけるリステリアの使用は、既に存在するか、あるいは環境曝露および／または家族的素因のような個体の危険因子が増加している癌を予防または治療するために、リステリアを個体の免疫系細胞に送達することを含む。他の実施形態では、癌の予防また治療における細菌の使用は、腫瘍を除去されたか、または過去に癌を有していたが現在は寛解している個体に、細菌を送達することを含む。
ある実施形態では、本明細書に記載の細菌を含む組成物の宿主への投与が、宿主におけるＣＤ４＋Ｔ細胞応答を誘発する。他のある実施形態では、本明細書に記載の細菌を含む組成物の宿主への投与が、宿主におけるＣＤ８＋Ｔ細胞応答を誘発する。ある実施形態では、本明細書に記載の細菌を含む組成物の投与が、宿主におけるＣＤ４＋Ｔ細胞応答およびＣＤ８＋Ｔ細胞応答の両方を誘発する。
状態の治療に対するワクチンまたはその他の組成物の有効性は、個体、例えばマウスにおいて評価し得る。マウスモデルは、ヒトにおける有効性に関するモデルとして認められており、本発明のワクチンの評価および明確化に有用である。マウスモデルは、任意の個体におけるワクチンの効果の可能性を実証するために使用される。ワクチンは、特定の疾患に対する予防的または治療的効果をもたらす能力に関して評価し得る。例えば、感染症の場合、細菌が感染症関連抗原を発現する本発明の適切なワクチンの好適量を、一群のマウスに接種し得る。次いで、このマウスをワクチン抗原に関連した感染病原体に感染させ、感染に対する防御を評価し得る。感染症の進行を対照群（非接種または媒体のみもしくは適切な抗原を含まない細菌を接種）と比較して観察し得る。
癌ワクチンの場合には、腫瘍細胞モデルが利用可能であり、所望の腫瘍抗原を含有する本発明の細菌を含む組成物による接種前（治療用モデル）または後（予防用モデル）に、所望の腫瘍抗原を発現する腫瘍細胞系列を一群のマウス内に注射し得る。腫瘍抗原を含有する細菌による接種は、接種していない、媒体を接種した、または無関係な抗原を発現する細菌を接種した対照群と比較し得る。このようなモデルにおけるワクチンの有効性は、腫瘍注射後の時間の関数として腫瘍体積の観点から、または腫瘍注射後の時間の関数として生存個体数の観点から評価し得る。一実施形態では、細菌を含む組成物を接種したマウスにおける腫瘍体積は、接種していない、媒体を接種した、または無関係な抗原を発現する細菌を接種したマウスにおける腫瘍体積よりも、約５％、約１０％、約２５％、約５０％、約７５％、約９０％または１００％小さい。別の実施形態では、腫瘍体積におけるこの差異は、マウス内への腫瘍移植後、少なくとも約１０、約１７または約２４日で観察される。一実施形態では、細菌を含む組成物を接種したマウスにおける生存期間中央値は、接種していない、媒体を接種した、または無関係な抗原を発現する細菌を接種したマウスよりも、少なくとも約２、約５、約７または少なくとも約１０日長い。
本明細書に記載の方法における宿主（すなわち、被検体）は、任意の脊椎動物、好ましくは、家畜、競技用動物およびヒトを含めた霊長類を含む哺乳動物である。ある実施形態では、宿主は哺乳動物である。ある実施形態では、宿主はヒトである。
リステリアまたはその菌株を含む組成物の送達は、任意の所定の悪性もしくは感染性疾患またはその他の状態に適した経路によるものだけでなく、任意の適切な方法、例えば、真皮内、皮下、腹腔内、静脈内、筋肉内、リンパ内、経口または鼻腔内などによるものであり得る。ある実施形態では、投与法は粘膜投与である。
細菌および免疫刺激剤を含む組成物は、同時、逐次的または別々に宿主に投与し得る。免疫刺激剤の例としては、ＩＬ−２、ＩＬ−１２、ＧＭＣＳＦ、ＩＬ−１５、Ｂ７．１、Ｂ７．２およびＢ７−ＤＣおよびＩＬ−１４が挙げられるが、これらに限定されない。
本明細書で使用される、細菌または組成物（医薬組成物または免疫原性組成物）の「有効量」とは、有益なまたは所望の結果をもたらすのに十分な量のことである。予防的使用では、有益なまたは所望の結果には、生化学的、組織学的および／または行動上の症状、その合併症および疾患発達中に現れる中間的な病理学的表現型を含めた、疾患のリスクの除去または低減、重症度の軽減あるいは開始の遅延のような結果が含まれる。治療的使用では、有益なまたは所望の結果には、その合併症および疾患発達中に現れる中間的な病理学的表現型を含めた、疾患の阻害または抑制、疾患による１つまたは複数の（生化学的、組織学的および／または行動上の）症状の減少、疾患罹患者の生活の質の向上、疾患の治療に必要な他の薬剤の用量の減少、他の薬剤の効果の増強、疾患進行の遅延および／または患者の生存期間延長のような臨床結果が含まれる。有効量は、１回または複数回の投与で投与され得る。本発明の目的上、有効量の薬物、化合物または医薬組成物とは、直接または間接的に、予防的または治療的処置を達成するのに十分な量のことである。臨床的文脈において理解されるように、薬物、化合物または医薬組成物の有効量は、別の薬物、化合物または医薬組成物と併用して得られる場合もあれば、そうでない場合もある。したがって、有効量は、１つまたは複数の治療剤の投与という文脈で考えてよく、１つまたは複数の他の薬剤と併用して所望の結果が得られる可能性があるか、または得られる場合、単一薬剤は有効量で投与されるものと考えてよい。
ある実施形態では、癌の治療的処置のために、有効量は、所望の免疫応答をもたらすであろう量を含み、ここで、免疫応答は、標的腫瘍の増殖を緩徐化するか、腫瘍のサイズを減少させるか、または好ましくは腫瘍を完全に除去する。ワクチンの投与は、適切な間隔で反復してもよく、接種個体の複数の異なる部位に同時に投与してもよい。ある実施形態では、癌の予防的処置のために、個体が癌を発症する可能性が有意に減少するように防御免疫応答をもたらすであろう用量を含む。ワクチン接種法は、単回用量で構成されてもよく、または防御免疫応答が確立されるまで適切な間隔で反復してもよい。
本発明は、免疫応答を誘発するための方法を包含し、特に、哺乳動物に投与された初回ワクチン中に存在する標的抗原に対する追加応答の増強を含めた、追加免疫応答を誘発するための方法を包含する。標的抗原は、病的状態と関連した抗原、例えば、癌性細胞または病原体上に存在することが確認された抗原であり得る。初回ワクチンの有効量に続いて、標的抗原の免疫学的に活性な部分をコードし発現する代謝的に活性な弱毒化ＰｒｆＡ＊リステリアを含む、第二のワクチンを投与する。本発明の方法では、有効量の初回ワクチンを哺乳動物に投与することにより、初回免疫応答が誘発される。初回ワクチンは、ＰｒｆＡ＊リステリア以外に、標的抗原をコードする代謝的に活性なリステリアを含まない。初回ワクチンは、標的抗原自体、例えば、アジュバントの有無を問わないタンパク質、腫瘍細胞溶解物、照射腫瘍細胞、標的抗原のペプチドでパルスした抗原提示細胞（例えば、樹状細胞）を含み得るか、またはそれは標的抗原を生じる作用因子を含み得る。標的抗原を生じる適切な作用因子としては、組換えベクター、例えば、細菌、ウイルスおよび裸のＤＮＡが挙げられる。組換えベクターは、当該分野で公知の一般的手法を用いて調製され、標的抗原をコードするヌクレオチド配列と作動可能に連結された適切な制御エレメントを含む。例えば、Ｐｌｏｔｋｉｎら，（編）（２００３）Ｖａｃｃｉｎｅｓ，４ｔｈ ｅｄ．，Ｗ．Ｂ．Ｓａｕｎｄｅｒｓ，Ｃｏ．，Ｐｈｉｌａ．，ＰＡ．；Ｓｉｋｏｒａら，（編）（１９９６）Ｔｕｍｏｒ Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ Ｐｒｅｓｓ，Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ，ＵＫ；ＨａｃｋｅｔｔおよびＨａｒｎ（編）Ｖａｃｃｉｎｅ Ａｄｊｕｖａｎｔｓ，Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ，Ｔｏｔｏｗａ，ＮＪ；Ｉｓａａｃｓｏｎ（編）（１９９２）Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ ＤＮＡ Ｖａｃｃｉｎｅｓ，Ｍａｒｃｅｌ Ｄｅｋｋｅｒ，ＮＹ，ＮＹ；Ｍｏｒｓｅら，（編）（２００４）Ｈａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｃａｎｃｅｒ Ｖａｃｃｉｎｅｓ，Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ，Ｔｏｔｏｗａ，ＮＪ），Ｌｉａｏら，（２００５）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．６５：９０８９−９０９８；Ｄｅａｎ（２００５）Ｅｘｐｅｒｔ Ｏｐｉｎ．Ｄｒｕｇ Ｄｅｌｉｖ．２：２２７−２３６；Ａｒｌｅｎら，（２００３）Ｅｘｐｅｒｔ Ｒｅｖ．Ｖａｃｃｉｎｅｓ ２：４８３−４９３；Ｄｅｌａ Ｃｒｕｚら，（２００３）Ｖａｃｃｉｎｅ ２１：１３１７−１３２６；Ｊｏｈａｎｓｅｎら，（２０００）Ｅｕｒ．Ｊ．Ｐｈａｒｍ．Ｂｉｏｐｈａｒｍ．５０：４１３−４１７；Ｅｘｃｌｅｒ（１９９８）Ｖａｃｃｉｎｅ １６：１４３９−１４４３；Ｄｉｓｉｓら，（１９９６）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５６：３１５１−３１５８）を参照されたい。ペプチドワクチンが記載されている（例えば、ＭｃＣａｂｅら，（１９９５）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．５５：１７４１−１７４７；Ｍｉｎｅｖら，（１９９４）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．５４：４１５５−４１６１；Ｓｎｙｄｅｒら，（２００４）Ｊ．Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ７８：７０５２−７０６０を参照されたい）。
ウイルス由来ベクターは、ウイルス、改変ウイルスおよびウイルス粒子を含む。ウイルス由来ベクターは、哺乳動物被検体に直接投与され得るか、または抗原提示細胞（ＡＰＣ）内にエキソビボで導入され、次いでこのＡＰＣが被検体に投与され得る。
ウイルスベクターは、例えば、アルファウイルスおよびフラビウイルスを含むトガウイルス；アルファウイルス、例えば、シンドビスウイルス、シンドビス株ＳＡＡＲ８６、セムリキ森林ウイルス（ＳＦＶ）、ベネズエラウマ脳炎（ＶＥＥ）、東部ウマ脳炎（ＥＥＥ）、西部ウマ脳炎、ロスリバーウイルス、サギヤミ（Ｓａｇｉｙａｍｉ）ウイルス、オニョンニョンウイルス、ハイランドＪウイルスなどに基づき得る。フラビウイルス、例えば、黄熱病ウイルス、黄熱病株１７Ｄ、日本脳炎、セントルイス脳炎、ダニ媒介脳炎、デングウイルス、西ナイルウイルス、クンジンウイルス（西ナイルウイルスの亜型）など；ウマ動脈炎ウイルスのようなアルテリウイルス；および風疹ウイルス、ヘルペスウイルス、改変ワクチニアアンカラ（ＭＶＡ）のようなルビウイルス；トリポックスウイルスベクター；鶏痘ベクター；ワクチニアウイルスベクター；インフルエンザウイルスベクター；アデノウイルスベクター；ヒトパピローマウイルスベクター；ウシパピローマウイルスベクターなど。ウイルスベクターは、オルソポックスウイルス、例えば、痘瘡ウイルス（天然痘）、ワクチニアウイルス（天然痘に対するワクチン）、アンカラ（ＭＶＡ）またはコペンハーゲン株、ラクダ痘、サル痘または牛痘などに基づき得る。ウイルスベクターは、鶏痘ウイルスまたはカナリアポックスウイルスのようなトリポックスウイルスのウイルスに基づき得る。ウイルスベクターは、水疱性口内炎ウイルス（ＶＳＶ）または黄熱病ウイルス（ＹＦＶ）に基づき得る。
アデノウイルスベクターおよびアデノ随伴ウイルスベクター（ＡＡＶ）が利用可能であり、アデノウイルスベクターとしては、アデノウイルスセロタイプ５（アデノ５；Ａｄ５）、アデノ６、アデノ１１、アデノ２６およびアデノ３５が挙げられる。６つの亜群（亜群Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、ＥおよびＦ）に分類される、少なくとも５１のヒトアデノウイルスセロタイプが利用可能である。例えば、「空」アデノウイルスベクターに対する免疫応答の評価に有用なアデノウイルスタンパク質としては、ヘキソン３タンパク質、線維タンパク質およびペントンベースタンパク質のようなヘキソンタンパク質が挙げられ、またアデノウイルスタンパク質に対するヒトの免疫応答が記載されている（例えば、Ｗｕら，（２００２）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．７６：１２７７５−１２７８２；Ｍａｓｃｏｌａ（２００６）Ｎａｔｕｒｅ ４４１：１６１−１６２；Ｒｏｂｅｒｔｓら，（２００６）Ｎａｔｕｒｅ ４４１：２３９−２４３を参照されたい）。
樹状細胞（ＤＣ）ベクターのような抗原提示細胞（ＡＰＣ）ベクターとしては、抗原を負荷された、腫瘍溶解物を負荷された、または核酸（核酸は、例えば、プラスミド、ｍＲＮＡまたはウイルスであり得る）を含む組成物をトランスフェクトされた細胞が挙げられる。ＤＣ／腫瘍融合ワクチンも使用し得る。例えば、Ｄｉ Ｎｉｃｏｌａら，（２００４）Ｃｌｉｎ．Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．１０：５３８１−５３９０；Ｃｅｒｕｎｄｏｌｏら，（２００４）Ｎａｔｕｒｅ Ｉｍｍｕｎｏｌ．５：７−１０；Ｐａｒｍｉａｎｉら，（２００２）Ｊ．Ｎａｔｌ．Ｃａｎｃｅｒ Ｉｎｓｔ．９４：８０５−８１８；Ｋａｏら，（２００５）Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｌｅｔｔ．１０１：１５４−１５９；Ｇｅｉｇｅｒら，（２００５）Ｊ．Ｔｒａｎｓｌ．Ｍｅｄ．３：２９；Ｏｓａｄａら，（２００５）Ｃａｎｃｅｒ Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ．Ｎｏｖ．５，１−１０［印刷前電子出版］；Ｍａｌｏｗａｎｙら，（２００５）Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．１３：７６６−７７５；ＭｏｒｓｅおよびＬｙｅｒｌｙ（２００２）Ｗｏｒｌｄ Ｊ．Ｓｕｒｇ．２６：８１９−８２５；Ｇａｂｒｉｌｏｖｉｃｈ（２００２）Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．４：４５４−４５８；Ｍｏｒｓｅら，（２００３）Ｃｌｉｎ．Ｂｒｅａｓｔ Ｃａｎｃｅｒ ３ Ｓｕｐｐｌ．４：Ｓ１６４−Ｓ１７２；Ｍｏｒｓｅら，（２００２）Ｃａｎｃｅｒ Ｃｈｅｍｏｔｈｅｒ．Ｂｉｏｌ．Ｒｅｓｐｏｎｓｅ Ｍｏｄｉｆ．２０：３８５−３９０；Ａｒｌｅｎら，（２００３）Ｅｘｐｅｒｔ Ｒｅｖ．Ｖａｃｃｉｎｅｓ ２：４８３−４９３；ＭｏｒｓｅおよびＬｙｅｒｌｙ（１９９８）Ｅｘｐｅｒｔ Ｏｐｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔｉｇ．Ｄｒｕｇｓ ７：１６１７−１６２７；Ｈｉｒｓｃｈｏｗｉｔｚら，（２００４）Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｏｎｃｏｌ．２２：２８０８−２８１５；Ｖａｓｉｒら，（２００５）Ｂｒ．Ｊ．Ｈａｅｍａｔｏｌ．１２９：６８７−７００；Ｋｏｉｄｏら，（２００５）Ｇｙｎｅｃｏｌ．Ｏｎｃｏｌ．９９：４６２−４７１を参照されたい。
腫瘍細胞、例えば、自己および同種腫瘍細胞がワクチンとして利用可能である（Ａｒｌｅｎら，（２００５）Ｓｅｍｉｎ．Ｏｎｃｏｌ．３２：５４９−５５５）。ワクチンは、改変腫瘍細胞、例えば、腫瘍細胞溶解物または放射線照射腫瘍細胞であり得る。腫瘍細胞は、サイトカイン（ＧＭ−ＣＳＦ、ＩＬ−１２、ＩＬ−１５など）、ＮＫＧ２Ｄリガンド、ＣＤ４０Ｌ、ＣＤ８０、ＣＤ８６などのような分子をコードする核酸を組み込むことによっても改変し得る（Ｄｒａｎｏｆｆ（２００２）Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｒｅｖ．１８８：１４７−１５４；Ｊａｉｎら，（２００３）Ａｎｎ．Ｓｕｒｇ．Ｏｎｃｏｌ．１０：８１０−８２０；ＢｏｒｒｅｌｌｏおよびＰａｒｄｏｌｌ（２００２）Ｃｙｔｏｋｉｎｅ Ｇｒｏｗｔｈ Ｆａｃｔｏｒ Ｒｅｖ．３：１８５−１９３；Ｃｈｅｎら，（２００５）Ｃａｎｃｅｒ Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒ．２７：１−１１；Ｋｊａｅｒｇａａｒｄら，（２００５）Ｊ．Ｎｅｕｒｏｓｕｒｇ．１０３：１５６−１６４；Ｔａｉら，（２００４）Ｊ．Ｂｉｏｍｅｄ．Ｓｃｉ．１１：２２８−２３８；Ｓｃｈｗａａｂら，（２００４）Ｊ．Ｕｒｏｌ．１７１：１０３６−１０４２；Ｆｒｉｅｓｅら，（２００３）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．６３：８９９６−９００６；Ｂｒｉｏｎｅｓら，（２００２）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．６２：３１９５−３１９９；ＶｉｅｗｅｇおよびＤａｎｎｕｌｌ（２００３）Ｕｒｏｌ．Ｃｌｉｎ．Ｎｏｒｔｈ Ａｍ．３０：６３３−６４３；Ｍｉｎｃｈｅｆｆら，（２００１）Ｃｒｉｔ．Ｒｅｖ．Ｏｎｃｏｌ．Ｈｅｍａｔｏｌ．３９：１２５−１３２を参照されたい）。
ワクチンは、裸のＤＮＡベクターおよび裸のＲＮＡベクターを含み得る。核酸を含有するこれらのワクチンは、遺伝子銃、エレクトロポレーション、細菌ゴースト、マイクロスフィア、微粒子、リポソーム、ポリカチオンナノ粒子などにより投与し得る（例えば、Ｄｏｎｎｅｌｌｙら，（１９９７）Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５：６１７−６４８；Ｍｉｎｃｈｅｆｆら，（２００１）Ｃｒｉｔ．Ｒｅｖ．Ｏｎｃｏｌ．Ｈｅｍａｔｏｌ．３９：１２５−１３２；Ｓｏｎｇら，（２００５）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．７９：９８５４−９８６１；Ｅｓｔｃｏｕｒｔら，（２００４）Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｒｅｖ．１９９：１４４−１５５を参照されたい）。
裸の核酸投与のための試薬および方法、例えば、遺伝子銃、皮内、筋肉内およびエレクトロポレーション法によるものが利用可能である。核酸ワクチンはロックト核酸（ＬＮＡ）を含んでいてもよく、この場合、ＬＮＡが機能的部分とプラスミドＤＮＡとの結合を可能にし、そしてこの機能的部分がアジュバントとなり得る（例えば、Ｆｅｎｓｔｅｒｌｅら，（１９９９）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６３：４５１０−４５１８；Ｓｔｒｕｇｎｅｌｌら，（１９９７）Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．７５：３６４−３６９；Ｈｅｒｔｏｕｇｈｓら，（２００３）Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．３１：５８１７−５８３０；Ｔｒｉｍｂｌｅら，（２００３）Ｖａｃｃｉｎｅ ２１：４０３６−４０４２；Ｎｉｓｈｉｔａｎｉら，（２０００）Ｍｏｌ．Ｕｒｏｌ．４：４７−５０；Ｔｕｔｉｎｇ（１９９９）Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｍｏｌ．Ｔｈｅｒ．１：２１６−２２５を参照されたい）。核酸ワクチンは、未熟樹状細胞のワクチンへの移動を促進する試薬および初回免疫が生じ得る流入領域リンパ節への成熟ＤＣの移動を促進する試薬と組み合わせて使用してもよく、これらの試薬には、ＭＩＰ１アルファおよびＦｌｔ３Ｌが包含される（例えば、ＫｕｔｚｌｅｒおよびＷｅｉｎｅｒ（２００４）Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．１１４：１２４１−１２４４；Ｓｕｍｉｄａら，（２００４）Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．１１４：１３３４−１３４２を参照されたい）。
細菌ベクターとしては、例えば、サルモネラ菌（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）、赤痢菌（Ｓｈｉｇｅｌｌａ）、エルシニア菌（Ｙｅｒｓｉｎｉａ）、ラクトコッカス菌（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）、連鎖球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ）、カルメット・ゲラン桿菌（Ｂａｃｉｌｌｅ Ｃａｌｍｅｔｔｅ Ｇｕｅｒｉｎ）、炭疽菌および大腸菌が挙げられる。細菌を遺伝子操作して、組換え抗原、異種抗原または腫瘍、癌細胞もしくは感染体に由来する抗原をコードする核酸を含有させ得る。さらに、細菌を改変して弱毒化し得る。別の態様において、非リステリア菌ワクチンは、組換え抗原をコードする核酸を全く欠き得る（例えば、Ｘｕら，（２００３）Ｖａｃｃｉｎｅ ２１：６４４−６４８；Ｐａｓｅｔｔｉら，（２００３）Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．７７：５２０９−５２１９；ＬｏｅｓｓｎｅｒおよびＷｅｉｓｓ（２００４）Ｅｘｐｅｒｔ Ｏｐｉｎ．Ｂｉｏｌ．Ｔｈｅｒ．４：１５７−１６８；Ｇｒａｎｇｅｔｔｅら，（２００２）Ｖａｃｃｉｎｅ ２０：３３０４−３３０９；Ｂｙｒｄら，（２００２）Ｖａｃｃｉｎｅ ２０：２１９７−２２０５；Ｅｄｅｌｍａｎら，（１９９９）Ｖａｃｃｉｎｅ １７：９０４−９１４；Ｄｏｍｅｎｅｃｈら，（２００５）Ｍｉｃｒｏｂｅｓ ａｎｄ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ ７：８６０−８６６を参照されたい）。
１用量または複数用量のワクチンで投与される初回免疫ベクターまたは追加免疫ベクターの有効量は、当業者により決定され得る。このような量は、通常通りの試験により決定され得る範囲内に収まるであろう。
初回ワクチンおよび追加ワクチンは、以下に挙げる経路の任意の１つまたは組合せにより投与し得る。一態様では、初回ワクチンおよび追加ワクチンを同じ経路により投与する。別の態様において、初回ワクチンおよび追加ワクチンを異なる経路により投与する。「異なる経路」という用語は、異なる様式、例えば、経口、静脈内および筋肉内によるものだけでなく、体の異なる部位、例えば、口腔、非口腔、腸内、非経口、直腸内、節内（リンパ節）、静脈内、動脈内、皮下、筋肉内、腫瘍内、腫瘍周囲、腫瘍内、点滴、粘膜、鼻、脳脊髄腔または脳脊髄液などである部位を包含するが、これらに限定されない。
有効量の初回免疫または追加ワクチンは、１用量で投与し得るが、１用量に限定されない。したがって、投与は、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０回またはそれを超えるワクチン投与であり得る。２回以上のワクチン投与がある場合、投与は、１分、２分、３、４、５、６、７、８、９、１０分またはそれを超える時間間隔で、約１時間、２時間、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４時間などの間隔で、隔てられ得る。時間（ｈｏｕｒｓ）に関連した「約」という用語は、３０分以内の任意の間隔をプラスまたはマイナスすることを意味する。投与は、１日、２日、３日、４日、５日、６日、７日、８日、９日、１０日、１１日、１２日、１３日、１４日、１５日、１６日、１７日、１８日、１９日、２０日、２１日およびこれらの組合せの時間間隔で隔てられ得る。本発明は、時間的に均等に隔てられた投与間隔に限定されないが、非限定的な例を挙げれば、１日目、４日目、７日目および２５日目での投与からなる初回免疫計画のような不均等な間隔を包含する。
初回ワクチンおよび追加ワクチンの相対的タイミングを決定する上で、以下のことを考慮し得る。抗原または抗原をコードする核酸の投与が抗原特異的免疫細胞の増大を刺激し、ピークに達した後、抗原特異的免疫細胞の数が低減することが見い出されてる（例えば、Ｂａｄｏｖｉｎａｃら，（２００２）Ｎａｔｕｒｅ Ｉｍｍｕｎｏｌ．３：６１９−６２６を参照されたい）。追加ワクチン接種の開始は、ピークに達する前に、ピークに合わせてまたはピーク後に施行し得る。
追加ワクチン接種の施行は、抗原特異的免疫細胞群が、最終的に得られる抗原特異的免疫細胞の最大数の少なくとも２０％に；最終的に得られる抗原特異的免疫細胞の最大数の少なくとも３０％；少なくとも４０％；少なくとも５０％；少なくとも６０％；少なくとも７０％；少なくとも８０％；少なくとも９０％；少なくとも９５％；少なくとも９９％にまで増大した（数が増加した）ときに開始し得る。さらなる初回・追加ワクチン計画が利用可能であり、例えば、抗原特異的細胞群が、抗原特異的細胞の最大数の９０％未満に；抗原特異的細胞の最大数の８０％未満；７０％未満；６０％未満；５０％未満；４０％未満；３０％未満；２０％未満；１０％未満；５％未満；１．０％未満；０．５％未満；０．１％未満；０．０５％未満または０．０１％未満に縮小したときに開始し得る。抗原特異的細胞は、ベクター特異的抗原に対して特異的（空ベクターに対して特異的）またはベクターに含有される核酸により発現される異種抗原に対して特異的なものとして同定し得る。
他の態様では、追加ワクチン接種の施行は、初回ワクチン接種が開始された約５日後；初回ワクチン接種が開始された約１０日後；初回ワクチン接種が開始された約１５日；約２０日；約２５日；約３０日；約３５日；約４０日；約４５日；約５０日；約５５日；約６０日；約６５日；約７０日；約７５日；約８０日；約６ヵ月；約１年後に開始し得る。
追加ワクチン接種は、初回ワクチン接種の５〜１０日後；初回ワクチン接種の１０〜１５日後；初回ワクチン接種の１５〜２０日後；初回ワクチン接種の２０〜２５日後；初回ワクチン接種の２５〜３０日後；初回ワクチン接種の３０〜４０日後；初回ワクチン接種の４０〜５０日後；初回ワクチン接種の５０〜６０日後；初回ワクチン接種の６０〜７０日後；などに施行し得る。
初回ワクチン接種開始と追加ワクチン接種開始の間の期間は、当業者により決定され得る。例えば、初回免疫化の発生後に測定された生理的パラメーターに敏感なアルゴリズムに基づき得る。
用量および方法は、少なくとも部分的には、様式の有効性、使用されるワクチン送達法、被検体の必要性により決定され、かつ施行者の判断に依存するであろう。
例えば、本発明で使用されるワクチン中のＰｒｆＡ＊リステリアは、各用量が、体重７０ｋｇ当たり１０７〜１０８個の間のリステリア；体重７０ｋｇ当たり２×１０７〜２×１０８個の間のリステリア；体重７０ｋｇ当たり５×１０７〜５×１０８個の間のリステリア；体重７０ｋｇ当たり１０８〜１０９個の間のリステリア；７０ｋｇ当たり２．０×１０８〜２．０×１０９個の間のリステリア；７０ｋｇ当たり５．０×１０８〜５．０×１０９個の間のリステリア；７０ｋｇ当たり１０９〜１０１０個の間のリステリア；７０ｋｇ当たり２×１０９〜２×１０１０のリステリア；７０ｋｇ当たり５×１０９〜５×１０１０；７０ｋｇ当たり１０１１〜１０１２個の間のリステリア；７０ｋｇ当たり２×１０１１〜２×１０１２個の間のリステリア；７０ｋｇ当たり５×１０１１〜５×１０１２個の間のリステリア；７０ｋｇ当たり１０１２〜１０１３個の間のリステリア；７０ｋｇ当たり２×１０１２〜２×１０１３個の間のリステリア；７０ｋｇ当たり５×１０１２〜５×１０１３個の間のリステリア；などを湿重量当たりで含む、１用量または複数用量で投与し得る。上記各用量はまた、表面積１．７平方メートル当たりの基準または肝臓重量１．５ｋｇ当たりの基準に基づき提供される。マウス肝臓は、本発明のリステリア投与時に重量約１．５グラムであることに留意するべきである。ヒト肝臓は重量約１．５キログラムである。
本発明のある実施形態では、ＰｒｆＡ＊リステリアの追加免疫投与は、初回免疫投与による免疫応答を、少なくとも２倍、時には約３〜５倍の間、または５倍〜１０倍、または１０倍〜１００倍またはそれよりも増強するであろう。本発明のある実施形態では、初回免疫投与および追加免疫投与は、免疫応答に対して相乗作用を有するであろう。本発明のある実施形態では、増強された免疫応答はＴ細胞応答を含み、ある実施形態では、そのＴ細胞応答はＣＤ８＋Ｔ細胞応答であろう。本発明のある実施形態では、初回免疫投与および追加免疫投与は、標的抗原に対する哺乳動物の寛容状態を崩壊させるであろう。これらすべての実施形態の例を以下に提供する。
癌および感染症は、免疫系を調節する試薬の投与により治療および／または抑制し得る。本発明に包含される初回・追加免疫法は、上方制御された免疫応答を引き起こし、かつ自己抗原に対する寛容の崩壊を含む。したがって、こうした初回・追加免疫法は、癌の増殖抑制および／または癌に関連した１つまたは複数の症状の改善において有用であることが期待される。この初回・追加免疫法はまた、病原体により引き起こされる疾患の予防および／または治療において有用であることが期待される。
上記に加え、これらの方法を用いて哺乳動物が治療に反応するか否かを決定し得る。例えば、特定の抗原に対して初回・追加免疫法を用いる場合、追加免疫後に有意な免疫応答が得られなければ、それはその哺乳動物が標的抗原に対して非応答性であり、別の治療様式に従うべきであることを示唆する。このような例は、標的抗原が存在しないかまたは改変されているために標的抗原と交差反応しないような癌または病原体の遺伝的背景である場合であり得る。
ある実施形態では、癌に対する個人の治療的処置を、癌であると診断された個人に対する初回治療として開始してもよく、または他の治療と組み合わせて用いてもよい。例えば、外科的に腫瘍を除去されたまたは放射線治療もしくは化学療法による治療を受けている個人を、その個人の任意の残存腫瘍を減少もしくは消失させる、または癌再発のリスクを低減するために、ワクチンで治療してもよい。ある実施形態では、癌に対する個人の予防的治療を、環境条件または遺伝的素因により特定の癌に罹患するリスクの高い個人に対して開始するであろう。
宿主に投与される医薬組成物またはワクチンの用量は、宿主の種類、宿主の大きさおよび宿主の状態もしくは疾患により異なるであろう。組成物の用量は、組成物の投与頻度および投与経路にもよるであろう。正確な用量は、治療される患者を考慮して各医師により選択される。
ある実施形態では、本明細書に記載のリステリアを含む医薬組成物、免疫原性組成物またはワクチンの１回量は、約１０２〜約１０１２個の細菌を含む。別の実施形態では、１回量は、約１０５〜約１０１１個の細菌を含む。別の実施形態では、１回量は、約１０６〜約１０１１個の細菌を含む。さらに別の実施形態では、医薬組成物またはワクチンの１回量は、約１０７〜約１０１０個の細菌を含む。さらに別の実施形態では、医薬組成物またはワクチンの１回量は、約１０７〜約１０９個の細菌を含む。
本発明のリステリアは、ある実施形態では、各用量が、少なくとも約１０００リステリア単位／ｋｇ体重、少なくとも約１０，０００リステリア単位／ｋｇ体重、少なくとも約１００，０００リステリア単位／ｋｇ体重、少なくとも約１００万リステリア単位／ｋｇ体重または少なくとも約１，０００万リステリア単位／ｋｇ体重を含む、１用量または複数用量で投与する。本発明は、リステリアの単位が、ソラレン処置前のコロニー形成単位（ＣＦＵ）に相当するＣＦＵであるか、または単位がリステリア細胞数である、上記用量を提供する。ある実施形態では、測定される弱毒化リステリアの有効量は、少なくとも約１×１０３ＣＦＵ／ｋｇまたは少なくとも約１×１０３リステリア細胞／ｋｇを含む。ある実施形態では、測定される弱毒化リステリアの有効量は、少なくとも約１×１０５ＣＦＵ／ｋｇまたは少なくとも約１×１０５リステリア細胞／ｋｇを含む。特定の実施形態では、測定される弱毒化リステリアの有効量は、少なくとも約１×１０６ＣＦＵ／ｋｇまたは少なくとも約１×１０６リステリア細胞／ｋｇを含む。ある実施形態では、測定される弱毒化リステリアの有効量は、少なくとも約１×１０７ＣＦＵ／ｋｇまたは少なくとも約１×１０７リステリア細胞／ｋｇを含む。いくつかのさらなる実施形態では、測定される弱毒化リステリアの有効量は、少なくとも約１×１０８ＣＦＵ／ｋｇまたは少なくとも約１×１０８リステリア細胞／ｋｇを含む。
ある実施形態では、本明細書に記載のリステリアを含む医薬組成物、免疫原性組成物またはワクチンの１回量は、約１ＣＦＵ／ｋｇ〜約１×１０１０ＣＦＵ／ｋｇ（ＣＦＵ＝コロニー形成単位）を含む。ある実施形態では、組成物の１回量は、約１０ＣＦＵ／ｋｇ〜約１×１０９ＣＦＵ／ｋｇを含む。別の実施形態では、組成物またはワクチンの１回量は、約１×１０２ＣＦＵ／ｋｇ〜約１×１０８ＣＦＵ／ｋｇを含む。さらに別の実施形態では、組成物またはワクチンの１回量は、約１×１０３ＣＦＵ／ｋｇ〜約１×１０８ＣＦＵ／ｋｇを含む。さらに別の実施形態では、組成物またはワクチンの１回量は、約１×１０４ＣＦＵ／ｋｇ〜約１×１０７ＣＦＵ／ｋｇを含む。ある実施形態では、組成物の１回量は、少なくとも約１ＣＦＵ／ｋｇを含む。ある実施形態では、組成物の１回量は、少なくとも約１０ＣＦＵ／ｋｇを含む。別の実施形態では、組成物またはワクチンの１回量は、少なくとも約１×１０２ＣＦＵ／ｋｇを含む。さらに別の実施形態では、組成物またはワクチンの１回量は、少なくとも約１×１０３ＣＦＵ／ｋｇを含む。さらに別の実施形態では、組成物またはワクチンの１回量は、少なくとも約１×１０４ＣＦＵ／ｋｇを含む。
ある実施形態では、ヒトのような宿主１体に対して適切な（すなわち、効果的な）用量は、マウスのような別の宿主のＬＤ５０データから、当業者に公知の方法を用いて推定し得る。
ある実施形態では、本発明の医薬組成物、免疫原性組成物またはワクチンは、後の抗生物質投与なしで投与し得る。リステリア生菌を宿主に投与する場合は、接種後のリステリア複製を制限するために、宿主に抗生物質を投与する必要があり得る。しかし、リステリアが宿主内での増殖に関して弱毒化されている場合は、宿主内でのリステリア増殖を制御するために抗生物質を投与する必要はないであろう。本発明のある態様では、リステリアは、宿主内での増殖に関して弱毒化されている。例えば、本発明のある態様では、リステリアは不活化されているが代謝的に活性である。このような場合、宿主内でのリステリア増殖を制御するために抗生物質を投与する必要はないであろう。
ある実施形態では、医薬組成物、免疫原性組成物またはワクチンは、本明細書に記載のリステリアに感染している、樹状細胞のような抗原提示細胞を含む。ある実施形態では、本明細書に記載のような細菌を含む抗原提示細胞に基づくワクチンの個々の用量は、約１×１０３〜約１×１０１０個の間の抗原提示細胞を含む。ある実施形態では、ワクチンの個々の用量は、約１×１０５〜約１×１０９個の間の抗原提示細胞を含む。ある実施形態では、ワクチンの個々の用量は、約１×１０７〜約１×１０９個の間の抗原提示細胞を含む。
ある実施形態では、１日でのまたは１週間もしくは１ヶ月もしくは１年もしくは数年にわたる、用量単位の複数回投与が好ましい。ある実施形態では、毎日で複数日間または週１回で複数週間、用量単位を投与する。ある実施形態では、リステリアを哺乳動物被検体に、少なくとも２回、少なくとも３回、少なくとも４回、少なくとも５回、少なくとも１０回または少なくとも２０回投与する。
本発明はまた、本明細書に記載の細菌と抗原提示細胞とを接触させることを含む、抗原提示細胞上でのＭＨＣクラスＩ抗原提示およびＭＨＣクラスＩI抗原提示を誘導する方法を提供する。
本発明はさらに、以下の段階を含む、抗原に対する宿主における免疫応答を誘導する方法を提供する：（ａ）適切な条件下でかつ抗原提示細胞に負荷するのに十分な時間だけ、本明細書に記載のリステリア菌と宿主由来の抗原提示細胞とを接触させる段階；および（ｂ）この抗原提示細胞を宿主に投与する段階。
VIII．キット
本発明はさらに、本明細書に記載のリステリアを含むキットおよび製品あるいは本明細書に記載のリステリアを含む組成物を提供する。
以下の実施例は、本発明を説明するために提供されるのであり、限定するためではない。
実施例１
本研究では、同系の弱毒生およびＫＢＭＡワクチン株に対する、Ｇ１４５Ｓ、Ｇ１５５ＳおよびＹ６３Ｃを含む３つのＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドの影響を評価した。
材料および方法
マウス
６〜１２週齢の雌Ｃ５７ＢＬ／６およびＢａｌｂ／ｃマウスをＣｈａｒｌｅｓ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（Ｗｉｌｍｉｎｇｔｏｎ，ＭＡ）より入手した。Ａｎｚａ動物管理使用委員会（Ｉｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎａｌ Ａｎｉｍａｌ Ｃａｒｅ ａｎｄ Ｕｓｅ Ｃｏｍｍｉｔｔｅｅ）に承認された動物プロトコールに従って研究を行った。
菌株
リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ΔｕｖｒＡＢ株においてリステリア・モノサイトゲネスワクチン株を構築した（９）。８００ｂｐ〜１ｋｂの隣接相同性を有する様々なｐｒｆＡ対立遺伝子を温度感受性対立遺伝子交換ベクターｐＫＳＷ内にクローニングすることによりｐｒｆＡ＊変異株を構築し、一般的手法を用いて野生型対立遺伝子と置換するために使用した（１２）。活性化ｐｒｆＡ表現型を有する菌株を、卵黄重層プレート（ｅｇｇ−ｙｏｌｋ ｏｖｅｒｌａｙ ｐｌａｔｅ）上でのホスホリパーゼ活性（５０）およびウマ血液寒天培地（Ｒｅｍｅｌ）上での溶血両方のゾーン増加に関してスクリーニングした。表現型が妥当なクローンをゲノムｐｒｆＡ遺伝子座の配列決定により確認した。単一の合成遺伝子から長さの異なる４つのワクチニアＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープおよびオボアルブミン（ＯＶＡ）由来ＣＤ８＋Ｔ細胞エピトープＳＩＩＮＦＥＫＬを発現する「Ｑｕａｄｖａｃ」構築物と称する抗原発現カセットを、これらのエピトープが連結されてリンカー配列により隔てられるようにコンピュータで設計した。Ｇｅｎｅ Ｄｅｓｉｇｎｅｒソフトウェアを用いて、アミノ酸配列をリステリア・モノサイトゲネスでの発現に対してコドン最適化し（４８）、ａｃｔＡプロモーターの下流にａｃｔＡ遺伝子のアミノ末端とインフレームでクローニングした。既に記載されているように、構築物をｐＰＬ２組込みベクター誘導体内にクローニングし、様々なｐｒｆＡ＊株バックグラウンドの細菌染色体のｔＲＮＡＡｒｇ遺伝子座に安定に組み込んだ（２３）。すべての分子構築物をＤＮＡ配列決定により確認した。
異種抗原発現のウエスタンブロット検出
酵母抽出物培地中で０．７のＯＤ６００（後期対数）まで増殖させた細菌培養物のＴＣＡ沈殿上清の等量について、ブロス培養物のウエスタンブロットを行った。リステリア・モノサイトゲネス感染宿主細胞のウエスタンブロット用に、Ｊ７７４細胞またはＤＣ２．４細胞を５０または１００の感染効率（ＭＯＩ）で１時間接種し、これらの細胞を５０μｇ／ｍＬゲンタマイシンを添加したＰＢＳおよびＤＭＥＭ培養液で３回洗浄した。早期の時点に関しては、感染後１．５または２．５時間でＤＣ２．４を回収した。後期の時点に関しては、７時間でＪ７７４細胞を回収した。ウエスタンブロット解析用に、細胞をＳＤＳ試料緩衝液で溶解させて収集し、４〜１２％ポリアクリルアミドゲル上で泳動し、ニトロセルロース膜に転写した。すべてのウエスタンブロットで、ＡｃｔＡタンパク質の成熟Ｎ末端に対して産生されたポリクローナル抗体を使用した。
免疫化
酵母抽出物培地中で一晩増殖させた培養物から、弱毒化生菌を免疫化用に調製した。ＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネス株を、既に記載されているようにＳ５９−ソラレンおよびＵＶＡで処置した（９）。光化学的に不活性化された細菌（ＫＢＭＡ Ｌｍ）をＤＰＢＳで１回洗浄して、８％ＤＭＳＯ中に再懸濁し、次いで−８０℃で貯蔵した。細菌を注射用にハンクス平衡塩溶液（ＨＢＳＳ）中に希釈した。弱毒化生菌の注射用ストックを蒔いてコロニー形成単位（ＣＦＵ）を確認した。５×ｌ０６ＣＦＵの弱毒化生菌および１×１０８粒子のＫＢＭＡ菌を、尾静脈内に２００μＬ容量でｉ．ｖ．または単一の頭側脛骨筋内に３０μＬ容量を筋肉内（ｉ．ｍ）投与し、別の頭側脛骨筋内に追加ワクチン接種を行った。
血清サイトカインおよびケモカインの検出
ＫＢＭＡ接種の２、４および８時間後ならびに弱毒化生Ｌｍ接種の４、８および２４時間後に、マウスから後眼窩採血により血清を採取した。マウス炎症Ｃｙｔｏｍｅｔｒｉｃ Ｂｅａｄ Ａｒｒａｙキット（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｓａｎ Ｊｏｓｅ，ＣＡ）を用いて、製造者の使用説明書に従いサイトカイン／ケモカインを測定した。ＦＡＣＳＣａｎｔｏフローサイトメーター（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を用いて試料を得た。データをＣｙｔｏｍｅｔｒｉｃ Ｂｅａｄ Ａｒｒａｙソフトウェア（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を用いて解析した。
ペプチド
ＯＶＡ２５７−２６４（ＳＩＩＮＦＥＫＬ）、ＬＬＯ１９０−２０１（ＮＥＫＹＡＱＡＹＰＮＶＳ）、ＨＳＶ−ｇＢ２（ＳＳＩＥＦＡＲＬ）、Ｂ８Ｒ２０−２７（ＴＳＹＫＦＥＳＶ）、Ｋ３Ｌ６−１５（ＹＳＬＰＮＡＧＤＶＩ）、Ｃ４Ｌ１２５−１３２（ＬＮＦＲＦＥＮＶ）、Ａ４２Ｒ８８−９６（ＹＡＰＶＳＰＩＶＩ）（２７）ペプチドをＳｙｎｔｈｅｔｉｃ Ｂｉｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ（Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）により合成した。
フローサイトメトリー用試薬
ＣＤ３ＦＩＴＣまたはＰＥ−Ｃｙ７（クローン１４５−２Ｃ１１）、ＣＤ４ＦＩＴＣ（クローンＧＫ１．５）、ＣＤ８ＰＥ−Ｃｙ７またはＡＰＣ−Ｃｙ７（クローン５３−６．７）、ＣＤ１９ＦＩＴＣ（クローンＭＢ１９−１）、ＴＮＦ ＰＥ（クローンＭＰ６−×Ｔ２２）、ＩＦＮ−γＡＰＣ（クローン×ＭＧ１．２）をｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ（Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）から購入した。ＣＤ８αＰｅｒＣＰ（クローン５３−６．７）をＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ（Ｓａｎ Ｊｏｓｅ，ＣＡ）から購入した。
インビボ細胞傷害性アッセイ
未処置レシピエントの脾細胞を１μＭ濃度の対照（ＨＳＶ−ｇＢ２）または標的（Ｂ８ＲまたはＡ４２Ｒ）ペプチドでパルスした。次いで、細胞を０．２μＭ（ＣＦＳＥｌｏ）、１μＭ（ＣＦＳＥｍｅｄ）または５μＭ（ＣＦＳＥｈｉ）濃度のカルボキシフルオセイン二酢酸サクシンイミジルエステル（ＣＦＳＥ，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｒｏｂｅｓ，Ｅｕｇｅｎｅ，ＯＲ）で標識した。３×１０６個の標識脾臓細胞の各群を混合してｉ．ｖ．注射した。１６時間後に脾臓を回収し、対照群に対する標的の割合を測定して、パーセント殺作用を計算した。
抗原特異的Ｔ細胞の細胞内染色
細胞内サイトカイン染色のために、既に記載されているように、脾細胞をブレフェルジンＡの存在下、関連するペプチドで５時間刺激した（Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔ，Ｄ．Ｇら，（２００４）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ １０１：１３８３２−１３８３７）。刺激した細胞をＣＤ４およびＣＤ８に関して表面染色し、次いで、Ｃｙｔｏｆｉ×／Ｃｙｔｏｐｅｒｍキット（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｓａｎ Ｊｏｓｅ，ＣＡ）を用いて固定および透過処理した。次いで、細胞をＩＦＮ−γ、ＴＮＦ−αおよび／またはＩＬ−２に関して染色した。ＦＡＣＳＣａｎｔｏフローサイトメーター（ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）を用いて試料を得た。ＣＤ４＋またはＣＤ８＋の事象のみを含むようにデータをゲートし、次いで、ＩＦＮ−γを発現するこれらの細胞のパーセントを測定した。データをＦｌｏｗＪｏソフトウェア（Ｔｒｅｅｓｔａｒ，Ａｓｈｌａｎｄ，ＯＲ）を用いて解析した。
リステリア・モノサイトゲネス防御試験
防御免疫を評価するために、既に記載されているように、示された菌株をＢａｌｂ／ｃマウスに接種し、２×ＬＤ５０の野生型リステリア・モノサイトゲネス（１×１０コロニー形成単位；ＣＦＵ）による接種の１４日後に抗原投与し、その３日後に、器官ホモジネート中の膵臓におけるＣＦＵを測定した（Ｂａｈｊａｔ，Ｋ．Ｓ．ら，（２００５）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１７９：７３７６−７３８４）。中間致死（ＬＤ５０）値を既に記載されているように測定した（１０）。
ワクチニアウイルス防御試験
リステリア・モノサイトゲネスＱｕａｄｖａｃ株による初回および追加ワクチン接種を２７日の間隔でＣ５７ＢＬ／６マウスに行い、２８日後にマウス腹腔内に１×１０７プラーク形成単位（ＰＦＵ）のワクチニアウイルスによる抗原投与を行った。ウイルス抗原投与の５日後に、記載されているように、卵巣中のウイルス力価を測定することにより防御を評価した（１）。
統計解析
ワクチニアウイルスまたはリステリア・モノサイトゲネス抗原投与に対する防御の差をＳｔｕｄｅｎｔのｔ検定により判定した。別途記述されない限り、すべての実験は少なくとも２回行った。別途記述されない限り、すべての実験は少なくとも２回行った。
結果
同系ＰｒｆＡ＊リステリア・モノサイトゲネスワクチン株の構築および特徴付け
本発明者らは、免疫化前のＰｒｆＡレギュロン導入が、組換え弱毒化生およびＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチンの免疫効力を増加させるという仮説を立てた。この仮説を試験するために、本発明者らは、ｐｒｆＡにおいてのみ異なる、ａｃｔＡ、ｉｎｌＢ、ｕｖｒＡおよびｕｖｒＢの完全なコード領域欠失を含むリステリア・モノサイトゲネス（リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ΔｕｖｒＡＢ）をバックグラウンドとした同系菌株群を構築した。本発明者らは、化学的変異誘発により生じたものまたは自発変異株であり、かつ恒常的活性化型のＰｒｆＡ＊タンパク質をコードする、３つのＰｒｆＡ変異株を選択した（３７、４１）。ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ、Ｇ１４５ＳまたはＹ６３Ｃを有する菌株は、天然ｐｒｆＡを有する同系菌株に比べて、ａｃｔＡプロモーター依存性β−グルクロニダーゼレポータータンパク質の発現を増加させ、またある場合には、野生型（ＷＴ）リステリア・モノサイトゲネスの毒性を増加させることが既に示されている（２６、２８、３７、４１）。
同系のリステリア・モノサイトゲネスワクチン株間の免疫効力の差が区別できるように、本発明者らは、マウスにおける広範なＣＤ８＋Ｔ細胞応答を誘発することが既に示されている５つの明確に定義されたＨ−２ｂ−拘束性ＭＨＣクラスIエピトープをコードする、Ａｇ発現カセットを構築した。直列に区切られた４つのワクチニアウイルス（Ａ４２Ｒ、Ｃ４Ｌ、Ｋ３Ｌ、Ｂ８Ｒ）エピトープおよびニワトリオボアルブミン（ＳＬ８）エピトープをコードする構築物を合成し、次いで、ＡｃｔＡの１００Ｎ末端アミノ酸を有する融合タンパク質として、ＰｒｆＡ調節性ａｃｔＡプロモーターの制御下にクローニングした。「Ｑｕａｄｖａｃ」として知られる構築物を、既に記載されているように、ｐＰＬ２誘導体内にクローニングし、次いで、ＷＴ、Ｇ１４５Ｓ、Ｇ１５５ＳまたはＹ６３Ｃ ｐｒｆＡ対立遺伝子を保持する４つの同系菌株（リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ΔｕｖｒＡＢ）中のｔＲＮＡＡｒｇ遺伝子座に組み込んだ（図１Ａ）（２３）。この４つの同系ワクチン株はすべて、酵母抽出物またはブレインハートインフュージョンブロス培養で等しく増殖させた（データ不掲載）。酵母抽出ブロス培養で増殖させたワクチン株を、弱毒化生リステリア・モノサイトゲネスワクチンとして直接用いる（１０）か、または、既に記載されているように、合成ソラレンＳ−５９および長波長ＵＶ光で光化学的に不活性化してＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチンを得た（９）。
本発明者らは、４つの弱毒化生リステリア・モノサイトゲネスワクチンのブロス培養におけるＡｇ発現および分泌レベルを比較し、そして予想通り、ＷＴ ｐｒｆＡ対立遺伝子を有する菌株に比べ、ＰｒｆＡ＊株においてより高い発現レベルが観察された（図１Ｂ）。上皮細胞への侵入増強と組み合わせたブロス培養で増殖させたＰｒｆＡ＊株におけるＰｒｆＡ依存性遺伝子の過剰発現が詳細に記載されている（２８、３４、４１、４７）のに対し、感染培養哺乳動物細胞においてＰｒｆＡ＊表現型が再現されるか否かはほとんど知られていない。本発明者らは、ＨｅｐＧ２（肝臓）またはＰｔＫ２（上皮系）のような非食細胞系ではなく、それぞれ食作用性のマウスマクロファージまたは樹状細胞（ＤＣ）系列であるＪ７７４およびＤＣ２．４において、リステリア・モノサイトゲネスワクチン株からのＡｇ発現を評価した。リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ株は、肝細胞増殖因子受容体を発現する肝細胞のＩｎｌＢ依存性感染を仲介することができず、また上皮組織には、本発明において使用される筋肉内および静脈内免疫化経路に関連する主要な標的が見られない。驚くべきことに、同系リステリア・モノサイトゲネスワクチン株で感染させたＪ７７４マクロファージにおけるＡｇ発現レベルは、ｐｒｆＡ対立遺伝子に関係なく同等であった（図１Ｃ）。注目すべきことに、ＤＣ２．４ＤＣにおけるＡｇ発現レベルも早期の時点で同等であった（図１Ｄ）。Ｊ７７４（図１Ｅ）およびＤＣ２．４（非掲載）細胞系列におけるすべてのリステリア・モノサイトゲネスワクチン株の感染（取込み）および細胞内増殖は同等であり、かつｐｒｆＡ対立遺伝子に依存しなかった。
ＰｒｆＡ＊は、リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ΔｕｖｒＡＢ株の毒性をわずかに増加させる
ＰｒｆＡ＊変異リステリアは、Ｂａｌｂ／ｃマウスにおいて弱毒性を最大で１０倍まで増加させたことが報告されている。例えば、ｐｒｆＡ Ｇ１５５Ｓは、その同系野生型株のＬＤ５０値を２×１０４ｃｆｕから３×１０３ｃｆｕまで減少させた（４１）。しかし、弱毒化株の毒性に対するＰｒｆＡ＊変異株の影響は未知である。マウスにおけるリステリア・モノサイトゲネスワクチンの試験に使用される免疫化用量は通常、ＬＤ５０値の１０分の１であるが、本発明者らは、ＩＶ投与後速やかに肝臓から除去されかつマウスにおいてＷＴリステリア・モノサイトゲネスに比べ３ｌｏｇよりも弱毒化されている菌株であるリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ΔｕｖｒＡＢ毒性株に対する、本発明で使用される３つのＰｒｆＡ＊変異株の影響を測定した（６、９、１０）。ＰｒｆＡ＊は、リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ΔｕｖｒＡＢ毒性株の毒性をわずかに増加させ、ＬＤ５０値は、ｐｒｆＡ Ｇ１４５ＳまたはｐｒｆＡ Ｙ６３Ｃ対立遺伝子を保持する同系菌株においては２．１倍（３．５×１０７ｃｆｕ対７．３×１０７ｃｆｕ）だけ、ｐｒｆＡ Ｇ１５５Ｓ対立遺伝子を保持する同系菌株においては１．４倍（５．２×１０７ｃｆｕ対７．３×１０ｃｆｕ）だけ減少した（表５）。
ＩＶ投与に応答して誘導されるＴｈ１極性化炎症誘発性血清サイトカインのプロファイルにより示されるように、弱毒化リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢに基づく菌株を含めたＬｍに基づくワクチンは、先天性免疫の強力な活性化因子である（４）。先天性免疫の活性化は、リステリア・モノサイトゲネスワクチンの誘導による免疫応答の質と関連するため、本発明者らは、同系ワクチン株のＩＶ投与後の最初の２４時間のいくつかの時点における血清サイトカインレベルを測定した。Ｃ５７ＢＬ／６マウスに、４つの同系ワクチン株に対する０．１ＬＤ５０値に近い用量である、５×ｌ０６ｃｆｕを静脈内注射した。３つのすべてのＰｒｆＡ＊ワクチン株が、投与の８時間以内に、天然ｐｒｆＡを有するワクチン株に比べ統計的に有意に高いレベルの炎症誘発性サイトカイン／ケモカインを誘導した（図２Ａ）。３つのＰｒｆＡ＊株の間に有意な差は見られなかったが、ＰｒｆＡ＊ Ｙ６３Ｃワクチン株を投与されたマウスにおいては、マウス間でばらつきの増加が見られた。
Figure 2011523553
ＰｒｆＡ＊は、弱毒化生リステリア・モノサイトゲネスワクチンの免疫原性を増加させる
本発明者らは、ワクチン効力に対するＰｒｆＡ＊の影響を評価するために、同系ワクチン株の免疫原性を評価した。比較を容易にするために、ワクチニアウイルス感染後に、高、中および低頻度のＴ細胞応答を誘発することが示されている複数の定義されたＨ−２ｂ拘束性ＭＨＣクラスIワクチニアウイルスエピトープ（Ａ４２Ｒ、Ｃ４Ｌ、Ｋ３Ｌ、Ｂ８Ｒ）および加えて強力なＯＶＡエピトープであるＳＬ８からなる一般的な異種Ａｇ（「Ｑｕａｄｖａｃ」と称する）を同系ワクチン株に発現させた。この方法により、免疫化の用量範囲にわたるワクチン誘導ＣＤ８＋Ｔ細胞応答の度数の順位付けおよびワクチニアウイルスでの抗原投与による応答の質の評価の両方を行うことができる。
雌Ｃ５７ＢＬ／６マウス群を、４つの同系リステリア・モノサイトゲネスＱｕａｄｖａｃ株５×１０６ｃｆｕで静注により免疫化し、単回免疫化の７日後である応答ピーク時に、ＣＤ８＋および（Ｌｍ特異的）ＣＤ４＋Ｔ細胞頻度を細胞内サイトカイン染色により測定した（１０）。ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓリステリア・モノサイトゲネスワクチンは、Ｇ１４５ＳおよびＹ６３ＣＰｒｆＡ＊ワクチン株ならびにＷＴ ｐｒｆＡを有する菌株に比べ、より高い度数の抗原特異的Ｔ細胞応答を誘導した（図２Ｂおよび２Ｃ）。ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓリステリア・モノサイトゲネスワクチン免疫化マウスにおける抗原特異的ＩＦＮ−γ＋Ｔ細胞の度数増加は、免疫優性ＳＬ８およびＢ８Ｒエピトープだけでなく、中程度のおよび弱いエピトープであるＡ４２Ｒ、Ｃ４ＬおよびＫ３Ｌでも有意に高かった。ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓワクチン株で免疫化したマウスでは、ＬＬＯ特異的ＣＤ４＋Ｔ細胞応答はその他のワクチン株に比べて２倍増加した。
ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５ＳはＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチンの免疫原性を増加させる
本発明者らは、ＰｒｆＡの恒常的活性化およびＰｒｆＡレギュロンの導入が、空胞からの逃避の増進および抗原提示細胞の細胞質中での異種抗原発現レベルの増加を含めた様々な機構により、ＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスの免疫原性を向上させ得るという仮説を立てた。本発明者らは、ＣＤ８＋Ｔ細胞効力および防御免疫には、免疫化リステリア・モノサイトゲネス株が細胞質にアクセスすることが必要であることを既に実証した（５）。ＫＢＭＡワクチン株は、細胞質中では増大することができないため、ＬＬＯおよびホスホリパーゼＣの発現増加による食胞からの逃避効率の増加が、ワクチン効力を増強させる可能性がある。
ＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネス株に対する先天性および後天性免疫を評価するために、Ｃ５７ＢＬ／６マウスを、十分に耐容される用量である１×１０８粒子のＩＶにより免疫化した。既に記載されているように、本発明者らは、１０−ｌｏｇの殺作用のリステリア・モノサイトゲネスワクチン調製物を生じる光化学的不活性化条件を用いた（９）。したがって、個々のマウスが１個の弱毒化リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ΔｕｖｒＡＢ菌を受け取る可能性は、非免疫化用量である１０−２であった。感染後最初の８時間の間、血清サイトカイン／ケモカインレベルを測定した。この時間帯には応答ピークが含まれることを本発明者らが以前の実験で観察しており、そしてこのピークは２４時間以内にバックグラウンドレベルに戻った（６）。ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ワクチン株は、ＷＴ ｐｒｆＡを有するＫＢＭＡワクチンにより誘導されレベルよりも高いレベルのＭＣＰ−１、ＩＬ−１２ｐ７０およびＩＦＮ−γを誘導した（図３Ａ）。３つのＰｒｆＡ＊株間で有意な差は見られなかったが、ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓワクチンにより誘導されたサイトカインのレベルは、ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ Ｇ１４５ＳまたはＹ６３Ｃワクチンにより誘導されたレベルよりも高い傾向にあった。
本発明者らは、２週間の間隔で２回のワクチン接種を受けたＣ５７ＢＬ／６マウスにおける同系ＫＢＭＡワクチン株の免疫原性を比較した。５つのＱｕａｄｖａｃエピトープに特異的な二次抗原特異的ＣＤ８＋Ｔ細胞応答の最も高い度数が、ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ免疫化マウスにおいて観察された（図３ＢおよびＣ）。全体的にＣＤ８＋応答の度数は、ＫＢＭＡ ＷＴ ｐｒｆＡに比べ、他の２つのＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ワクチン株で免疫化したマウスにおいて高かったが、このことは、評価したすべてのＣＤ８Ｔ細胞エピトープに当てはまるわけではなかった（図３ＢおよびＣ）。興味深いことに、弱毒化生ワクチン株とは対照的に、ＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスＰｒｆＡ＊株で免疫化したマウスの中では、ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ワクチン株で免疫化したマウスＬＬＯ−特異的ＣＤ４＋Ｔ細胞応答の度数は高い方ではなかった。このように、ｐｒｆＡ Ｇ１５５Ｓ対立遺伝子は、弱毒化生およびＫＢＭＡワクチン株の両方に最も高い免疫原性をもたらした。
ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓワクチンは免疫効力を増大させた
誘導性Ｔ細胞応答の度数は、必ずしもその応答の効力を表すものではないことが十分に立証さている。ワクチン誘導性ＣＤ８＋Ｔ細胞応答の効力を評価するために、本発明者らは、２つのワクチニアエピトープであるＡ４２ＲおよびＢ８Ｒに特異的なインビボ細胞溶解活性を評価した。Ｃ５７ＢＬ／６マウスを４つの同系ＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネス株で２回免疫化した。本発明者らは、２つの別の免疫化経路、すなわち静脈内（ＩＶ）および筋肉内（ＩＭ）により免疫原性を評価した。本発明者らは、従来の接種経路により投与された場合のＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ワクチン株の効力を評価するために、ＩＭ免疫化を評価した。ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊またはＷＴ ｐｒｆＡワクチンで免疫化した全群において、強力なＢ８Ｒエピトープに特異的なインビボ細胞傷害性により測定される強い応答が観察された。標的殺作用の程度は、ＩＶで免疫化したマウスでの方がわずかに高かった（図４Ａおよび４Ｂ）。ＩＶまたはＩＭによりＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓで免疫化したマウスにおいて、Ａ４２Ｒワクチニアウイルスエピトープに対する強力な殺作用活性も誘発された。しかし、野生型ＰｒｆＡに基づきかつＩＭで投与されたＫＢＭＡワクチンにより誘導された、Ａ４２Ｒに対する殺作用活性は、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓに比べて２倍低下していた。Ｇ１４５ＳまたはＹ６３Ｃに基づくＫＢＭＡワクチンは、ＩＭ経路で投与された場合、中程度の効力であった（図４Ｂ）。用量応答実験では、ＷＴ ｐｒｆＡを保持するＫＢＭＡで免疫化したマウスに比べ、ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５ＳのＢ８Ｒ応答を誘導する高い効力が見られた（図４Ｃ）。
ワクチン誘導性Ｔ細胞効力の適切な尺度は、生きた病原体による抗原投与に対する防御免疫である。本発明者らは、ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５ＳまたはＷＴ ｐｒｆＡで免疫化したマウスにおけるＴ細胞効力を、ＷＴリステリア・モノサイトゲネスまたはワクチニアウイルスでの抗原投与により評価した。ファゴリソソームから逃避できないリステリア・モノサイトゲネスの菌株は防御免疫を誘導できないが、二次抗原刺激で増大し得る抗原特異的Ｔ細胞応答は誘発される（５、２０）。本発明者らは、ＫＢＭＡ Ｌｍに基づくワクチン投与により、致死的な野生型リステリア・モノサイトゲネス抗原投与に対する一過性の防御が生じることを既に記載した。誘導されたＴ細胞応答は、時間とともに減弱し、ＣＤ４＋Ｔ細胞補助の非存在下で誘導されたＴ細胞応答を連想させる（３、４５）。ＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ΔｕｖｒＡＢでのマウス免疫化により、１４日目に２ｌｏｇの防御が生じた。ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓワクチン誘導性適応応答の効力を評価するために、マウスを１×１０８粒子で１回免疫化し、１４日後に２×ＬＤ５０の野生型リステリア・モノサイトゲネスで抗原投与した。３日後に、脾臓および肝臓（データ不掲載）におけるコロニー形成単位（ｃｆｕ）を測定した。Ｄに示されるように、野生型リステリア・モノサイトゲネスからの防御は、ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ免疫化マウスにおいて、ＷＴ ｐｒｆＡを有するＫＢＭＡに比べ３ｌｏｇ向上した。
次に本発明者らは、ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓの免疫効力増強が、ワクチニアウイルス抗原投与にも拡張されるか否かを判定した。Ｃ５７ＢＬ／６マウスを２週間間隔で、ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５ＳもしくはＷＴ ｐｒｆＡワクチンまたはＷＴ ｐｒｆＡを保持しかつＱｕａｄｖａｃＡｇをコードしないＫＢＭＡ対照により、ＩＭ経路で２回免疫化した。防御記憶免疫を評価するために、最後の免疫化の３０日後に、マウスに１×１０７ｐｆｕのワクチニアウイルスによる抗原投与を行い、その５日後にマウス卵巣のウイルス力価を測定した。様々なワクチニアウイルスエピトープに対して誘導されたＴ細胞応答の度数向上と一致して、ＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ株を背景とするＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ変異リステリアを投与したマウスにおいて、ウイルス抗原投与に対して２ｌｏｇの統計的に有意な防御向上が見られた。
これらの結果は、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓが、弱毒化生およびＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチンに免疫効力増加をもたらし、かつ注目すべきことに、厳密な感染症抗原投与モデルにおいて、従来の免疫化経路で防御免疫を誘発する能力をＫＢＭＡワクチンにもたらすことを実証する。
考察
弱毒化生リステリア・モノサイトゲネスに基づくワクチンプラットフォームは、強力な先天性免疫および後天性細胞性免疫を刺激するという固有の性質のため、臨床的に開発および評価されているところである（ｃｌｉｎｉｃａｌｔｒｉａｌｓ．ｇｏｖ識別番号ＮＣＴ００３２７６５２およびＮＣＴ００５８５８４５）。実施例１の実験では、本発明者らは、マウスへのワクチン接種前のＰｒｆＡレギュロン活性化が、同系の野生型細菌性病原体およびワクチニアウイルスによる抗原投与に対する防御の向上と関連した、弱毒化生およびＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチン誘導性の先天性／細胞性免疫のレベルを有意に増強したことを示す。これらの結果は、臨床へと発展する将来のＬｍに基づくワクチンにｐｒｆＡ Ｇ１５５Ｓ対立遺伝子を含めるための理論的根拠の基礎をなす。
弱毒化生およびＫＢＭＡワクチンの両方に対する免疫効力が、免疫化前のｐｒｆＡレギュロン活性化により有意に増強された。ＰｒｆＡ＊による免疫グロブリン効力の増強は、ＫＢＭＡワクチンでより明白であった。本発明者らは、野生型Ｌ．モノサイトゲネスによる抗原投与に対する防御細胞性免疫を誘発するのに必要な抗原提示細胞におけるＩＦＮ−βおよび他の活性化シグナルの誘導に向けて不可欠な段階である、ファゴリソソームからの逃避を、ＫＢＭＡワクチンが不活化されていても依然行うことを既に示した（５、９、３０）。しかし、ＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチンは、α−ＣＤ４０Ａｂによりもたらされる代替援助と組み合わせて投与された場合または同種の初回・追加免疫化法を用いた場合にのみ、単回免疫化後に防御免疫を誘発することができる（５）。これらの結果は、ＫＢＭＡワクチンに対する免疫効力が弱毒化生リステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢワクチン株に比べて減少していることが、野生型Ｌ．モノサイトゲネスのように、単回免疫化後に防御免疫を誘発し得ることを実証している。生リステリア・モノサイトゲネス株は、インビトロ感染マクロファージの細胞質中で７時間で１００倍に増大して（図１Ｄ）、ＰｒｆＡの完全な活性化をもたらし、ａｃｔＡプロモーターにより駆動されるコード抗原を含むｐｒｆＡ依存性遺伝子の発現を誘導した。したがって、様々な弱毒化生ワクチン間での免疫効力の違いが、ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ワクチン株で見られたものほど顕著でなかったのは驚くべきことではない。ＫＢＭＡワクチンは、免疫化された宿主の細胞内では増殖することができず、非複製ベクターの条件下では、ワクチン接種前のＰｒｆＡレギュロン導入およびコードＡｇの発現が免疫効力を有意に増強した。
最近公表された研究では、野生型リステリア・モノサイトゲネス株１０４０３の免疫原性が、未知の活性化ｐｒｆＡ変異を含む異なる野生型リステリア・モノサイトゲネス株４３２５１と比較された（４２）。この研究では、異なる野生型リステリア・モノサイトゲネス株を使用したため、リステリア・モノサイトゲネス株がＬＬＯおよびｐ６０特異的免疫の増強および野生型リステリアの抗原投与に対する防御の増加を誘発したものの、基礎となる機構およびヒトにおける試験に適した組換え弱毒化ワクチンプラットフォームへの可能な応用に関して結論を出すことは難しい。さらに、組換えリステリア・モノサイトゲネスワクチン株において発現された異種抗原の免疫原性に対する恒常的ＰｒｆＡ活性化の影響は、この研究では評価されなかった。
ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊に基づくワクチンの免疫効力増強は、いくつかの独立した機構によるものであろう。寄与因子には、最終的にＭＨＣクラスI分子上で提示されるエピトープ密度の増加およびＣＤ８＋Ｔ細胞の刺激効率の向上をもたらす、ファゴリソソームからの逃避効率の増加ならびに細胞質中のＡｇ発現および分泌が含まれ得る。ＰｒｆＡ依存性毒性遺伝子の過剰発現が、細胞毒性を増加させ、野生型株の毒性減少およびワクチン効力の減少をもたらし得る（１０、１７、４６）のに対し、この機構は、Ｊ７７４細胞での等しい細胞内増殖により示されるように（図１Ｅ）、本研究で使用したワクチン株の相対的免疫原性に影響を与えなかったと思われる。他の可能性としては、感染部位での炎症性サイトカイン環境の改善またはｅ−カドヘリンＤＣ−ＤＣ接着のＩｎｌＡ仲介性の崩壊増加による、ＰｒｆＡ＊ワクチンで免疫化した動物での樹状細胞（ＤＣ）のリンパ節への移動増強を挙げ得る（２２）。ＩｎｌＡとマウスＥ−カドヘリンとの結合がそのヒトホモログとの結合に比べて減弱しても（２４、２９）、ＰｒｆＡ＊株からのＩｎｌＡレベルの増加が依然この過程を増強し得る。その一方で、ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ワクチンの免疫効力増強は、宿主範囲の拡大または標的細胞感染の増強によるものではなかったと思われる。注目すべきことに、経口感染にとって重要であるにもかかわらず、ＩｎｌＡは、本研究で用いられた筋肉内または静脈内経路では、非食細胞感染の仲介において同様の重要な役割は果たしていない。さらに、肝細胞増殖因子受容体を介したＩｎｌＢ仲介性の肝細胞感染は無関係であり、それは、この毒性決定因子が本研究で使用されたワクチン株から欠失していたからである。この見解は、培養マクロファージまたは樹状細胞の感染が、試験されたすべてのワクチン株の間で区別不可能であったという観察結果（図１Ｃおよび１Ｄ）、およびリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ ＰｒｆＡ＊株の毒性が、野生型Ｌ．モノサイトゲネスに比べて３ｌｏｇを超えて弱毒化されているリステリア・モノサイトゲネスΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ親株よりも２〜４倍しか増加しなかったという観察結果（１０）（表５）を合わせたものにより支持される。
ここに示される結果が、リステリア・モノサイトゲネスワクチンの効力を増加させるためにＰｒｆＡレギュロンの活性化が重要であることを実証しているが、ブロス培養において観察されたＡｇの過剰発現は、免疫効力増強と必ずしも関連しなかった。特筆すべきことに、ｐｒｆＡ Ｇ１５５Ｓ、Ｇ１４５ＳおよびＹ６３Ｃ変異は、すべてブロス培養で増殖させたワクチン株のＰｒｆＡ依存性Ａｇ発現の高い（かつ同等の）過剰発現をもたらしたのに対し、ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓワクチン株においてのみ免疫効力が有意に増加した。宿主−病原体反応は、定義によれば複雑で多因子性の過程であるため、ＰｒｆＡ依存性発現の増強が最適な免疫原性と必ずしも関連しなかったということは驚くべきことではない。ＰｒｆＡ依存性遺伝子の一過性の調節が、適切な細胞区画内で特定の細菌タンパク質の発現をもたらして発病を促進する。例えば、ＡｃｔＡ発現が細胞質内で２００倍に誘導されて、宿主細胞のアクチン重合および細胞間伝播を促進する（３５、４０）。本研究におけるＡｇは、ＡｃｔＡの最初の１００アミノ酸とのＮ末端融合物として発現され、天然ａｃｔＡプロモーターにより駆動された。ＫＢＭＡワクチンの場合、ｐｒｆＡ Ｇ１５５Ｓが適切なレベルのＰｒｆＡ依存性の誘導をもたらし効力を増強したが、光化学的に不活性化された細菌にとって十分な代謝経済のバランスを与えた。ｐｒｆＡ Ｌ１０４Ｆを用いてＰｒｆＡ依存性リステリア・モノサイトゲネスセクレトームを特徴付ける最近の研究において（３４）、それまでその発現が活性化ＰｒｆＡに関連していることが知られていなかった、いくつかのタンパク質が確認された。このデータは、野生型Ｌ．モノサイトゲネスの発病に関与する複数の細菌タンパク質の証拠を提供し、ＰｒｆＡ＊変異体がリステリア・モノサイトゲネスワクチンの効力に複雑な影響を及ぼし得ることを示す。
リステリア・モノサイトゲネスワクチンによる前臨床研究の圧倒的大部分においては、ＩＶまたは腹腔内投与が用いられてきた。ＩＭおよび皮下免疫化経路を研究した報告はわずかである（１０、１５）。しかし、経口免疫化は、マウス、非ヒト霊長類およびヒトでの１研究において調査されている（２、８、２９、３３）。これまでに行われたまたは現在進行中のリステリア・モノサイトゲネスによる３つの臨床試験では、ＩＶ投与を用いている。ＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチンが、弱毒化生ワクチンに比べて向上したリスク対効果プロファイルを有し得るのに対し、従来の免疫化の投与経路は、特に予防的設定における広範な採用および／または承認のために必要であり得る。本発明者らは、初回・追加免疫化法により、ＫＢＭＡ ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５ＳワクチンがＩＭ免疫化後に弱毒化生リステリア・モノサイトゲネスワクチンに匹敵する機能的細胞性免疫を誘発したことをここに示す。
様々なｐｒｆＡ対立遺伝子を含む同系の弱毒化生およびＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチン群の免疫効力を評価することにより、本発明者らは、免疫化前のＰｒｆＡレギュロンの恒常的誘導が、機能的細胞性免疫を誘発する弱毒化生ＫＢＭＡワクチンの能力を増強することを、従来の免疫化経路を用いて示した。
実施例１の参考文献
１．Ａｌｅｘａｎｄｅｒ−Ｍｉｌｌｅｒ，Ｍ．Ａ．，Ｇ．Ｒ．Ｌｅｇｇａｔｔ，ａｎｄ Ｊ．Ａ．Ｂｅｒｚｏｆｓｋｙ．（１９９６）．Ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ｅｘｐａｎｓｉｏｎ ｏｆ ｈｉｇｈ−ｏｒ ｌｏｗ−ａｖｉｄｉｔｙ ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ Ｔ ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅｓ ａｎｄ ｅｆｆｉｃａｃｙ ｆｏｒ ａｄｏｐｔｉｖｅ ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９３：４１０２−４１０７．
２．Ａｎｇｅｌａｋｏｐｏｕｌｏｓ，Ｈ．，Ｋ．Ｌｏｏｃｋ，Ｄ．Ｓｉｓｕｌ，Ｅ．Ｊｅｎｓｅｎ，Ｊ．Ｆ．Ｍｉｌｌｅｒ，ａｎｄ Ｅ．Ｌ．Ｈｏｈｍａｎｎ．（２００２）．Ｓａｆｅｔｙ ａｎｄ Ｓｈｅｄｄｉｎｇ ｏｆ ａｎ Ａｔｔｅｎｕａｔｅｄ Ｓｔｒａｉｎ ｏｆ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｗｉｔｈ ａ Ｄｅｌｅｔｉｏｎ ｏｆ ａｃｔＡ／ｐｌｃＢ ｉｎ Ａｄｕｌｔ Ｖｏｌｕｎｔｅｅｒｓ：ａ Ｄｏｓｅ Ｅｓｃａｌａｔｉｏｎ Ｓｔｕｄｙ ｏｆ Ｏｒａｌ Ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ．Ｉｎｆｅｃｔ Ｉｍｍｕｎ ７０：３５９２−３６０１．
３．Ｂａｈｊａｔ，Ｋ．Ｓ．ｕｎｐｕｂｌｉｓｈｅｄ ｄａｔａ．
４．Ｂａｈｊａｔ，Ｋ．Ｓ．，Ｗ．Ｌｉｕ，Ｅ．Ｅ．Ｌｅｍｍｅｎｓ，Ｓ．Ｐ．Ｓｃｈｏｅｎｂｅｒｇｅｒ，Ｄ．Ａ．Ｐｏｒｔｎｏｙ，Ｔ．Ｗ．Ｄｕｂｅｎｓｋｙ，ａｎｄ Ｄ．Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔ．（２００６）．Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ａ Ｃｙｔｏｓｏｌｉｃ Ｓｕｒｖｅｉｌｌａｎｃｅ Ｐａｔｈｗａｙ Ｃｏｎｔｒｏｌｓ ＣＤ８＋Ｔ Ｃｅｌｌ Ｐｏｔｅｎｃｙ Ｄｕｒｉｎｇ Ｂａｃｔｅｒｉａｌ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ．Ｉｎｆｅｃｔ Ｉｍｍｕｎ ７４：６３８７−９７．
５．Ｂａｈｊａｔ，Ｋ．Ｓ．，Ｗ．Ｌｉｕ，Ｅ．Ｅ．Ｌｅｍｍｅｎｓ，Ｓ．Ｐ．Ｓｃｈｏｅｎｂｅｒｇｅｒ，Ｄ．Ａ．Ｐｏｒｔｎｏｙ，Ｔ．Ｗ．Ｄｕｂｅｎｓｋｙ，Ｊｒ．，ａｎｄ Ｄ．Ｇ．Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔ．（２００６）．Ｃｙｔｏｓｏｌｉｃ Ｅｎｔｒｙ Ｃｏｎｔｒｏｌｓ ＣＤ８＋−Ｔ−Ｃｅｌｌ Ｐｏｔｅｎｃｙ ｄｕｒｉｎｇ Ｂａｃｔｅｒｉａｌ Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ．Ｉｎｆｅｃｔ Ｉｍｍｕｎ ７４：６３８７−６３９７．
６．Ｂａｈｊａｔ，Ｋ．Ｓ．，Ｒ．Ａ．Ｐｒｅｌｌ，Ｈ．Ｅ．Ａｌｌｅｎ，Ｗ．Ｌｉｕ，Ｅ．Ｅ．Ｌｅｍｍｅｎｓ，Ｍ．Ｌ．Ｌｅｏｎｇ，Ｄ．Ａ．Ｐｏｒｔｎｏｙ，Ｔ．Ｗ．Ｄｕｂｅｎｓｋｙ，Ｊｒ．，Ｄ．Ｇ．Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔ，ａｎｄ Ｍ．Ａ．Ｇｉｅｄｌｉｎ．（２００７）．Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｉｍｍａｔｕｒｅ ｈｅｐａｔｉｃ ＮＫ ｃｅｌｌｓ ａｓ ｉｍｍｕｎｏｔｈｅｒａｐｙ ｆｏｒ ｌｉｖｅｒ ｍｅｔａｓｔａｔｉｃ ｄｉｓｅａｓｅ．Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ １７９：７３７６−７３８４．
７．Ｂｏｕｗｅｒ，Ｈ．Ｇ．，Ｈ．Ｓｈｅｎ，Ｘ．Ｆａｎ，Ｊ．Ｇ．Ｍｉｌｌｅｒ，Ｒ．Ａ．Ｂａｒｒｙ，ａｎｄ Ｄ．Ｊ．Ｈｉｎｒｉｃｈｓ．（１９９９）．Ｅｘｉｓｔｉｎｇ Ａｎｔｉｌｉｓｔｅｒｉａｌ Ｉｍｍｕｎｉｔｙ Ｄｏｅｓ Ｎｏｔ Ｉｎｈｉｂｉｔ ｔｈｅ Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ ｏｆ ａ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ−Ｓｐｅｃｉｆｉｃ Ｐｒｉｍａｒｙ Ｃｙｔｏｔｏｘｉ Ｔ−Ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ Ｒｅｓｐｏｎｓｅ．Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ ａｎｄ Ｉｍｍｕｎｉｔｙ ６７：２５３−２５８．
８．Ｂｏｙｅｒ，Ｊ．Ｄ．，Ｐ．Ｃ．Ｍａｃｉａｇ，Ｒ．Ｐａｒｋｉｎｓｏｎ，Ｌ．Ｗｕ，Ｍ．Ｇ．Ｌｅｗｉｓ，Ｄ．Ｂ．Ｗｅｉｎｅｒ，ａｎｄ Ｙ．Ｐａｔｅｒｓｏｎ．（２００６）．Ｒｈｅｓｕｓ ｍａｃａｑｕｅｓ ｗｉｔｈ ｈｉｇｈ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ｖａｃｃｉｎｅ ｉｎｄｕｃｅｄ ＩＦＮ−ｇａｍｍａ ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ ｃｅｌｌｓ ｂｅｔｔｅｒ ｃｏｎｔｒｏｌ ｖｉｒａｌ ｓｅｔ−ｐｏｉｎｔ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｃｈａｌｌｅｎｇｅ ｗｉｔｈ ＳＩＶ２３９．Ｖａｃｃｉｎｅ ２４：４４９８−４５０２．
９．Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔ，Ｄ．Ｇ．，Ｋ．Ｓ．Ｂａｈｊａｔ，Ｍ．Ａ．Ｇｉｅｄｌｉｎ，Ｗ．Ｌｉｕ，Ｍ．Ｌｅｏｎｇ，Ｗ．Ｌｕｃｋｅｔｔ，Ｙ．Ｇａｏ，Ｐ．Ｓｃｈｎｕｐｆ，Ｄ．Ｋａｐａｄｉａ，Ｇ．Ｃａｓｔｒｏ，Ｊ．Ｙ．Ｌｉｍ，Ａ．Ｓａｍｐｓｏｎ−Ｊｏｈａｎｎｅｓ，Ａ．Ａ．Ｈｅｒｓｋｏｖｉｔｓ，Ａ．Ｓｔａｓｓｉｎｏｐｏｕｌｏｓ，Ｈ．Ｇ．Ｂｏｕｗｅｒ，Ｊ．Ｅ．Ｈｅａｒｓｔ，Ｄ．Ａ．Ｐｏｒｔｎｏｙ，Ｄ．Ｎ．Ｃｏｏｋ，ａｎｄ Ｔ．Ｗ．Ｄｕｂｅｎｓｋｙ，Ｊｒ．（２００５）．Ｋｉｌｌｅｄ ｂｕｔ ｍｅｔａｂｏｌｉｃａｌｌｙ ａｃｔｉｖｅ ｍｉｃｒｏｂｅｓ：ａ ｎｅｗ ｖａｃｃｉｎｅ ｐａｒａｄｉｇｍ ｆｏｒ ｅｌｉｃｉｔｉｎｇ ｅｆｆｅｃｔｏｒ Ｔ−ｃｅｌｌ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ａｎｄ ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ ｉｍｍｕｎｉｔｙ．Ｎａｔ Ｍｅｄ １１：８５３−８６０．
１０．Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔ，Ｄ．Ｇ．，Ｍ．Ａ．Ｇｉｅｄｌｉｎ，Ｍ．Ｌ．Ｌｅｏｎｇ，Ｋ．Ｓ．Ｂａｈｊａｔ，Ｙ．Ｇａｏ，Ｗ．Ｌｕｃｋｅｔｔ，Ｗ．Ｌｉｕ，Ｄ．Ｎ．Ｃｏｏｋ，Ｄ．Ａ．Ｐｏｒｔｎｏｙ，ａｎｄ Ｔ．Ｗ．Ｄｕｂｅｎｓｋｙ，Ｊｒ．（２００４）．Ｌｉｓｔｅｒｉａ−ｂａｓｅｄ ｃａｎｃｅｒ ｖａｃｃｉｎｅｓ ｔｈａｔ ｓｅｇｒｅｇａｔｅ ｉｍｍｕｎｏｇｅｎｉｃｉｔｙ ｆｒｏｍ ｔｏｘｉｃｉｔｙ．Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ １０１：１３８３２−１３８３７．
１１．Ｂｒｕｈｎ，Ｋ．Ｗ．，Ｎ．Ｃｒａｆｔ，ａｎｄ Ｊ．Ｆ．Ｍｉｌｌｅｒ．（２００７）．Ｌｉｓｔｅｒｉａ ａｓ ａ ｖａｃｃｉｎｅ ｖｅｃｔｏｒ．Ｍｉｃｒｏｂｅｓ Ｉｎｆｅｃｔ ９：１２２６−１２３５．
１２．Ｃａｍｉｌｌｉ，Ａ．，Ｌ．Ｇ．Ｔｉｌｎｅｙ，ａｎｄ Ｄ．Ａ．Ｐｏｒｔｎｏｙ．（１９９３）．Ｄｕａｌ ｒｏｌｅｓ ｏｆ ｐｌｃＡ ｉｎ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ．Ｍｏｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ ８：１４３−１５７．
１３．Ｃｏｈｅｎ，Ｊ．（２００７）．ＡＩＤＳ ｒｅｓｅａｒｃｈ．Ｄｉｄ Ｍｅｒｃｋ'ｓ ｆａｉｌｅｄ ＨＩＶ ｖａｃｃｉｎｅ ｃａｕｓｅ ｈａｒｍ？ Ｓｃｉｅｎｃｅ ３１８：１０４８−１０４９．
１４．Ｃｏｈｅｎ，Ｊ．（２００７）．ＡＩＤＳ ｒｅｓｅａｒｃｈ．Ｐｒｏｍｉｓｉｎｇ ＡＩＤＳ ｖａｃｃｉｎｅ'ｓ ｆａｉｌｕｒｅ ｌｅａｖｅｓ ｆｉｅｌｄ ｒｅｅｌｉｎｇ．Ｓｃｉｅｎｃｅ ３１８：２８−２９．
１５．Ｄａｔｔａ，Ｓ．Ｋ．，Ｓ．Ｏｋａｍｏｔｏ，Ｔ．Ｈａｙａｓｈｉ，Ｓ．Ｓ．Ｓｈｉｎ，Ｉ．Ｍｉｈａｊｌｏｖ，Ａ．Ｆｅｒｍｉｎ，Ｄ．Ｇ．Ｇｕｉｎｅｙ，Ｊ．Ｆｉｅｒｅｒ，ａｎｄ Ｅ．Ｒａｚ．（２００６）．Ｖａｃｃｉｎａｔｉｏｎ ｗｉｔｈ ｉｒｒａｄｉａｔｅｄ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｉｎｄｕｃｅｓ ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ Ｔ ｃｅｌｌ ｉｍｍｕｎｉｔｙ．Ｉｍｍｕｎｉｔｙ ２５：１４３−１５２．
１６．Ｄｒａｍｓｉ，Ｓ．，Ｉ．Ｂｉｓｗａｓ，Ｅ．Ｍａｇｕｉｎ，Ｌ．Ｂｒａｕｎ，Ｐ．Ｍａｓｔｒｏｅｎｉ，ａｎｄ Ｐ．Ｃｏｓｓａｒｔ．（１９９５）．Ｅｎｔｒｙ ｏｆ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｉｎｔｏ ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅｓ ｒｅｑｕｉｒｅｓ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｉｎｌＢ，ａ ｓｕｒｆａｃｅ ｐｒｏｔｅｉｎ ｏｆ ｔｈｅ ｉｎｔｅｒｎａｌｉｎ ｍｕｌｔｉｇｅｎｅ ｆａｍｉｌｙ．Ｍｏｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ １６：２５１−２６１．
１７．Ｇｌｏｍｓｋｉ，Ｉ．Ｊ．，Ａ．Ｌ．Ｄｅｃａｔｕｒ，ａｎｄ Ｄ．Ａ．Ｐｏｒｔｎｏｙ．（２００３）．Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｍｕｔａｎｔｓ ｔｈａｔ ｆａｉｌ ｔｏ ｃｏｍｐａｒｔｍｅｎｔａｌｉｚｅ ｌｉｓｔｅｒｏｌｙｓｉｎ Ｏ ａｃｔｉｖｉｔｙ ａｒｅ ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ，ａｖｉｒｕｌｅｎｔ，ａｎｄ ｕｎａｂｌｅ ｔｏ ｅｖａｄｅ ｈｏｓｔ ｅ×ｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｄｅｆｅｎｓｅｓ．Ｉｎｆｅｃｔ Ｉｍｍｕｎ ７１：６７５４−６７６５．
１８．Ｇｒａｙ，Ｍ．Ｊ．，Ｎ．Ｅ．Ｆｒｅｉｔａｇ，ａｎｄ Ｋ．Ｊ．Ｂｏｏｒ．（２００６）．Ｈｏｗ ｔｈｅ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｐａｔｈｏｇｅｎ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｍｅｄｉａｔｅｓ ｔｈｅ ｓｗｉｔｃｈ ｆｒｏｍ ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ Ｄｒ．Ｊｅｋｙｌｌ ｔｏ ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ Ｍｒ．Ｈｙｄｅ．Ｉｎｆｅｃｔ Ｉｍｍｕｎ ７４：２５０５−２５１２．
１９．Ｇｕｎｎ，Ｇ．Ｒ．，Ａ．Ｚｕｂａｉｒ，Ｃ．Ｐｅｔｅｒｓ，Ｚ．−Ｋ．Ｐａｎ，Ｔ．−Ｃ．Ｗｕ，ａｎｄ Ｙ．Ｐａｔｅｒｓｏｎ．（２００１）．Ｔｗｏ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｖａｃｃｉｎｅ ｖｅｃｔｏｒｓ ｔｈａｔ ｅｘｐｒｅｓｓ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｆｏｒｍｓ ｏｆ ｈｕｍａｎ ｐａｐｉｌｌｏｍａ ｖｉｒｕｓ−１６（ＨＰＶ−１６）Ｅ７ ｉｎｄｕｃｅ ｑｕａｌｉｔａｔｉｖｅｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ Ｔ ｃｅｌｌ ｉｍｍｕｎｉｔｙ ｔｈａｔ ｃｏｒｒｅｌａｔｅｓ ｗｉｔｈ ｔｈｅｉｒ ａｂｉｌｉｔｙ ｔｏ ｉｎｄｕｃｅ ｒｅｇｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｅｓｔａｂｌｉｓｈｅｄ ｔｕｍｏｒｓ Ｉｍｍｏｒｔａｌｉｚｅｄ ｂｙ ＨＰＶ−１６１．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１６７：６４７１−６４７９．
２０．Ｈａｍｉｌｔｏｎ，Ｓ．Ｅ．，Ｖ．Ｐ．Ｂａｄｏｖｉｎａｃ，Ａ．Ｋｈａｎｏｌｋａｒ，ａｎｄ Ｊ．Ｔ．Ｈａｒｔｙ．（２００６）．Ｌｉｓｔｅｒｉｏｌｙｓｉｎ Ｏ−Ｄｅｆｉｃｉｅｎｔ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ａｓ ａ Ｖａｃｃｉｎｅ Ｄｅｌｉｖｅｒｙ Ｖｅｈｉｃｌｅ：Ａｎｔｉｇｅｎ−Ｓｐｅｃｉｆｉｃ ＣＤ８ Ｔ Ｃｅｌｌ Ｐｒｉｍｉｎｇ ａｎｄ Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ Ｉｍｍｕｎｉｔｙ．Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ １７７：４０１２−４０２０．
２１．Ｈａｒｔｙ，Ｊ．Ｔ．，Ａ．Ｒ．Ｔｖｉｎｎｅｒｅｉｍ，ａｎｄ Ｄ．Ｗ．Ｗｈｉｔｅ．（２０００）．ＣＤ８＋Ｔ ｃｅｌｌ ｅｆｆｅｃｔｏｒ ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ｉｎ ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ ｔｏ ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ．Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１８：２７５−３０８．
２２．Ｊｉａｎｇ，Ａ．，Ｏ．Ｂｌｏｏｍ，Ｓ．Ｏｎｏ，Ｗ．Ｃｕｉ，Ｊ．Ｕｎｔｅｒｎａｅｈｒｅｒ，Ｓ．Ｊｉａｎｇ，Ｊ．Ａ．Ｗｈｉｔｎｅｙ，Ｊ．Ｃｏｎｎｏｌｌｙ，Ｊ．Ｂａｎｃｈｅｒｅａｕ，ａｎｄ Ｉ．Ｍｅｌｌｍａｎ．（２００７）．Ｄｉｓｒｕｐｔｉｏｎ ｏｆ Ｅ−ｃａｄｈｅｒｉｎ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ａｄｈｅｓｉｏｎ ｉｎｄｕｃｅｓ ａ ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌｌｙ ｄｉｓｔｉｎｃｔ ｐａｔｈｗａｙ ｏｆ ｄｅｎｄｒｉｔｉｃ ｃｅｌｌ ｍａｔｕｒａｔｉｏｎ．Ｉｍｍｕｎｉｔｙ ２７：６１０−６２４．
２３．Ｌａｕｅｒ，Ｐ．，Ｍ．Ｙ．Ｃｈｏｗ，Ｍ．Ｊ．Ｌｏｅｓｓｎｅｒ，Ｄ．Ａ．Ｐｏｒｔｎｏｙ，ａｎｄ Ｒ．Ｃａｌｅｎｄａｒ．（２００２）．Ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｏｎ，ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ，ａｎｄ ｕｓｅ ｏｆ ｔｗｏ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｓｉｔｅ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｐｈａｇｅ ｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎ ｖｅｃｔｏｒｓ．Ｊ Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ １８４：４１７７−４１７８．
２４．Ｌｅｃｕｉｔ，Ｍ．，Ｓ．Ｄｒａｍｓｉ，Ｃ．Ｇｏｔｔａｒｄｉ，Ｍ．Ｆｅｄｏｒ−Ｃｈａｉｋｅｎ，Ｂ．Ｇｕｍｂｉｎｅｒ，ａｎｄ Ｐ．Ｃｏｓｓａｒｔ．（１９９９）．Ａ ｓｉｎｇｌｅ ａｍｉｎｏ ａｃｉｄ ｉｎ Ｅ−ｃａｄｈｅｒｉｎ ｒｅｓｐｏｎｓｉｂｌｅ ｆｏｒ ｈｏｓｔ ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ ｔｏｗａｒｄｓ ｔｈｅ ｈｕｍａｎ ｐａｔｈｏｇｅｎ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ．Ｅｍｂｏ Ｊ １８：３９５６−３９６３．
２５．Ｌｏｒｂｅｒ，Ｂ．（１９９７）．Ｌｉｓｔｅｒｉｏｓｉｓ．Ｃｌｉｎ Ｉｎｆｅｃｔ Ｄｉｓ ２４：１−９；ｑｕｉｚ １０−１１．
２６．Ｍｉｎｅｒ，Ｍ．Ｄ．，Ｇ．Ｃ．Ｐｏｒｔ，ａｎｄ Ｎ．Ｅ．Ｆｒｅｉｔａｇ．Ｓｕｂｍｉｔｔｅｄ ２００８．Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ ｉｍｐａｃｔ ｏｆ ｍｕｔａｔｉｏｎａｌ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｎ ｔｈｅ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｃｅｎｔｒａｌ ｖｉｒｕｌｅｎｃｅ ｒｅｇｕｌａｔｏｒ ＰｒｆＡ．Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．
２７．Ｍｏｕｔａｆｔｓｉ，Ｍ．，Ｂ．Ｐｅｔｅｒｓ，Ｖ．Ｐａｓｑｕｅｔｔｏ，Ｄ．Ｃ．Ｔｓｃｈａｒｋｅ，Ｊ．Ｓｉｄｎｅｙ，Ｈ．Ｈ．Ｂｕｉ，Ｈ．Ｇｒｅｙ，ａｎｄ Ａ．Ｓｅｔｔｅ．（２００６）．Ａ ｃｏｎｓｅｎｓｕｓ ｅｐｉｔｏｐｅ ｐｒｅｄｉｃｔｉｏｎ ａｐｐｒｏａｃｈ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｓ ｔｈｅ ｂｒｅａｄｔｈ ｏｆ ｍｕｒｉｎｅ Ｔ（ＣＤ８＋）−ｃｅｌｌ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｔｏ ｖａｃｃｉｎｉａ ｖｉｒｕｓ．Ｎａｔ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ ２４：８１７−８１９．
２８．Ｍｕｅｌｌｅｒ，Ｋ．Ｊ．，ａｎｄ Ｎ．Ｅ．Ｆｒｅｉｔａｇ．（２００５）．Ｐｌｅｉｏｔｒｏｐｉｃ Ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ ｏｆ Ｂａｃｔｅｒｉａｌ Ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ Ｒｅｓｕｌｔｉｎｇ ｆｒｏｍ ｔｈｅ Ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｖｅ Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ Ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ Ｆａｃｔｏｒ ＰｒｆＡ．Ｉｎｆｅｃｔ Ｉｍｍｕｎ ７３：１９１７−１９２６．
２９．Ｎｅｅｓｏｎ，Ｐ．，Ｊ．Ｂｏｙｅｒ，Ｓ．Ｋｕｍａｒ，Ｍ．Ｇ．Ｌｅｗｉｓ，Ｌ．Ｍａｔｔｉａｓ，Ｒ．Ｖｅａｚｅｙ，Ｄ．Ｗｅｉｎｅｒ，ａｎｄ Ｙ．Ｐａｔｅｒｓｏｎ．（２００６）．Ａ ＤＮＡ ｐｒｉｍｅ−ｏｒａｌ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｂｏｏｓｔ ｖａｃｃｉｎｅ ｉｎ ｒｈｅｓｕｓ ｍａｃａｑｕｅｓ ｉｎｄｕｃｅｓ ａ ＳＩＶ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ ＣＤ８ Ｔ ｃｅｌｌ ｍｕｃｏｓａｌ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚｅｄ ｂｙ ｈｉｇｈ ｌｅｖｅｌｓ ｏｆ ａｌｐｈａ４ｂｅｔａ７ ｉｎｔｅｇｒｉｎ ａｎｄ ａｎ ｅｆｆｅｃｔｏｒ ｍｅｍｏｒｙ ｐｈｅｎｏｔｙｐｅ．Ｖｉｒｏｌｏｇｙ ３５４：２９９−３１５．
３０．Ｏ'Ｒｉｏｒｄａｎ，Ｍ．，Ｃ．Ｈ．Ｙｉ，Ｒ．Ｇｏｎｚａｌｅｓ，Ｋ．Ｄ．Ｌｅｅ，ａｎｄ Ｄ．Ａ．Ｐｏｒｔｎｏｙ．（２００２）．Ｉｎｎａｔｅ ｒｅｃｏｇｎｉｔｉｏｎ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａ ｂｙ ａ ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ ｃｙｔｏｓｏｌｉｃ ｓｕｒｖｅｉｌｌａｎｃｅ ｐａｔｈｗａｙ．Ｐｒｏｃ Ｎａｔｌ Ａｃａｄ Ｓｃｉ ＵＳＡ ９９：１３８６１−１３８６６．
３１．Ｐａｍｅｒ，Ｅ．Ｇ．（２００４）．Ｉｍｍｕｎｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｔｏ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ．Ｎａｔ Ｒｅｖ Ｉｍｍｕｎｏｌ ４：８１２−８２３．
３２．Ｐａｔｅｒｓｏｎ，Ｙ．，ａｎｄ Ｐ．Ｃ．Ｍａｃｉａｇ．（２００５）．Ｌｉｓｔｅｒｉａ−ｂａｓｅｄ ｖａｃｃｉｎｅｓ ｆｏｒ ｃａｎｃｅｒ ｔｒｅａｔｍｅｎｔ．Ｃｕｒｒ Ｏｐｉｎ Ｍｏｌ Ｔｈｅｒ ７：４５４−４６０．
３３．Ｐｅｔｅｒｓ，Ｃ，Ｘ．Ｐｅｎｇ，Ｄ．Ｄｏｕｖｅｎ，Ｚ．Ｋ．Ｐａｎ，ａｎｄ Ｙ．Ｐａｔｅｒｓｏｎ．（２００３）．Ｔｈｅ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ＨＩＶ Ｇａｇ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ ＣＤ８＋Ｔ ｃｅｌｌｓ ｉｎ ｔｈｅ ｓｐｌｅｅｎ ａｎｄ ｇｕｔ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ ｌｙｍｐｈｏｉｄ ｔｉｓｓｕｅ ｂｙ ｐａｒｅｎｔｅｒａｌ ｏｒ ｍｕｃｏｓａｌ ｉｍｍｕｎｉｚａｔｉｏｎ ｗｉｔｈ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ＨＩＶ Ｇａｇ．ＪＩｍｍｕｎｏｌ １７０：５１７６−５１８７．
３４．Ｐｏｒｔ，Ｇ．Ｃ，ａｎｄ Ｎ．Ｅ．Ｆｒｅｉｔａｇ．（２００７）．Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｎｏｖｅｌ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｓｅｃｒｅｔｅｄ ｖｉｒｕｌｅｎｃｅ ｆａｃｔｏｒｓ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｍｕｔａｔｉｏｎａｌ ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｃｅｎｔｒａｌ ｖｉｒｕｌｅｎｃｅ ｒｅｇｕｌａｔｏｒ，ＰｒｆＡ．Ｉｎｆｅｃｔ Ｉｍｍｕｎ ７５：５８８６−５８９７．
３５．Ｐｏｒｔｎｏｙ，Ｄ．Ａ．，Ｖ．Ａｕｅｒｂｕｃｈ，ａｎｄ Ｉ．Ｊ．Ｇｌｏｍｓｋｉ．（２００２）．Ｔｈｅ ｃｅｌｌ ｂｉｏｌｏｇｙ ｏｆ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ：ｔｈｅ ｉｎｔｅｒｓｅｃｔｉｏｎ ｏｆ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ ａｎｄ ｃｅｌｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｉｍｍｕｎｉｔｙ．Ｊ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ １５８：４０９−４１４．
３６．Ｒａｐｐｕｏｌｉ，Ｒ．（２００７）．Ｂｒｉｄｇｉｎｇ ｔｈｅ ｋｎｏｗｌｅｄｇｅ ｇａｐｓ ｉｎ ｖａｃｃｉｎｅ ｄｅｓｉｇｎ．Ｎａｔ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ ２５：１３６１−１３６６．
３７．Ｒｉｐｉｏ，Ｍ．Ｔ．，Ｇ．Ｄｏｍｉｎｇｕｅｚ−Ｂｅｒｎａｌ，Ｍ．Ｌａｒａ，Ｍ．Ｓｕａｒｅｚ，ａｎｄ Ｊ．Ａ．Ｖａｚｑｕｅｚ−Ｂｏｌａｎｄ．（１９９７）．Ａ Ｇｌｙｌ４５Ｓｅｒ ｓｕｂｓｔｉｔｕｔｉｏｎ ｉｎ ｔｈｅ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｌ ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＰｒｆＡ ｃａｕｓｅｓ ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｖｅ ｏｖｅｒｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｖｉｒｕｌｅｎｃｅ ｆａｃｔｏｒｓ ｉｎ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ．Ｊ Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ １７９：１５３３−１５４０．
３８．Ｓｃｏｒｔｔｉ，Ｍ．，Ｈ．Ｊ．Ｍｏｎｚｏ，Ｌ．Ｌａｃｈａｒｍｅ−Ｌｏｒａ，Ｄ．Ａ．Ｌｅｗｉｓ，ａｎｄ Ｊ．Ａ．Ｖａｚｑｕｅｚ−Ｂｏｌａｎｄ．（２００７）．Ｔｈｅ ＰｒｆＡ ｖｉｒｕｌｅｎｃｅ ｒｅｇｕｌｏｎ．Ｍｉｃｒｏｂｅｓ Ｉｎｆｅｃｔ．
３９．Ｓｈｅｎ，Ｈ．，Ｍ．Ｋ．Ｓｌｉｆｋａ，Ｍ．Ｍａｔｌｏｕｂｉａｎ，Ｅ．Ｒ．Ｊｅｎｓｅｎ，Ｒ．Ａｈｍｅｄ，ａｎｄＪ．Ｆ．Ｍｉｌｌｅｒ．（１９９５）．Ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ａｓ ａ ｌｉｖｅ ｖａｃｃｉｎｅ ｖｅｈｉｃｌｅ ｆｏｒ ｔｈｅ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ ａｎｔｉ−ｖｉｒａｌ ｃｅｌｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄ ｉｍｍｕｎｉｔｙ．Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．９２：３９８７−３９９１．
４０．Ｓｈｅｔｒｏｎ−Ｒａｍａ，Ｌ．Ｍ．，Ｈ．Ｍａｒｑｕｉｓ，Ｈ．Ｇ．Ｂｏｕｗｅｒ，ａｎｄ Ｎ．Ｅ．Ｆｒｅｉｔａｇ．（２００２）．Ｉｎｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ａｃｔＡ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ．Ｉｎｆｅｃｔ Ｉｍｍｕｎ ７０：１０８７−１０９６．
４１．Ｓｈｅｔｒｏｎ−Ｒａｍａ，Ｌ．Ｍ．，Ｋ．Ｍｕｅｌｌｅｒ，Ｊ．Ｍ．Ｂｒａｖｏ，Ｈ．Ｇ．Ｂｏｕｗｅｒ，Ｓ．Ｓ．Ｗａｙ，ａｎｄ Ｎ．Ｅ．Ｆｒｅｉｔａｇ．（２００３）．Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｏｆ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｍｕｔａｎｔｓ ｗｉｔｈ ｈｉｇｈ−ｌｅｖｅｌ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｈｏｓｔ ｃｙｔｏｓｏｌ−ｉｎｄｕｃｅｄ ｇｅｎｅ ｐｒｏｄｕｃｔｓ．Ｍｏｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ ４８：１５３７−１５５１．
４２．Ｓｍｉｔｈｅｙ，Ｍ．Ｊ．，Ｓ．Ｂｒａｎｄｔ，Ｎ．Ｅ．Ｆｒｅｉｔａｇ，Ｄ．Ｅ．Ｈｉｇｇｉｎｓ，ａｎｄ Ｈ．Ｇ．Ｂｏｕｗｅｒ．（２００８）．Ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎ ｏｆ ｅｎｈａｎｃｅｄ ＣＤ８ Ｔ ｃｅｌｌ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｆｏｌｌｏｗｉｎｇ ｉｍｍｕｎｉｚａｔｉｏｎ ｗｉｔｈ ａ ｈｙｐｅｒ−ａｎｔｉｇｅｎ ｓｅｃｒｅｔｉｎｇ ｉｎｔｒａｃｙｔｏｓｏｌｉｃ ｂａｃｔｅｒｉａｌ ｐａｔｈｏｇｅｎ．Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ １８０：３４０６−３４１６．
４３．Ｓｔａｒｋｓ，Ｈ．，Ｋ．Ｗ．Ｂｒｕｈｎ，Ｈ．Ｓｈｅｎ，Ｒ．Ａ．Ｂａｒｒｙ，Ｔ．Ｗ．Ｄｕｂｅｎｓｋｙ，Ｄ．Ｂｒｏｃｋｓｔｅｄｔ，Ｄ．Ｊ．Ｈｉｎｒｉｃｈｓ，Ｄ．Ｅ．Ｈｉｇｇｉｎｓ，Ｊ．Ｆ．Ｍｉｌｌｅｒ，Ｍ．Ｇｉｅｄｌｉｎ，ａｎｄ Ｈ．Ｇ．Ｂｏｕｗｅｒ．（２００４）．Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ａｓ ａ ｖａｃｃｉｎｅ ｖｅｃｔｏｒ：ｖｉｒｕｌｅｎｃｅ ａｔｔｅｎｕａｔｉｏｎ ｏｒ Ｅｘｉｓｔｉｎｇ ａｎｔｉｖｅｃｔｏｒ ｉｍｍｕｎｉｔｙ ｄｏｅｓ ｎｏｔ ｄｉｍｉｎｉｓｈ ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃ ｅｆｆｉｃａｃｙ．Ｊ Ｉｍｍｕｎｏｌ １７３：４２０−４２７．
４４．Ｓｔｅｖｅｎｓ，Ｒ．，Ａ．Ｌａｖｏｙ，Ｓ．Ｎｏｒｄｏｎｅ，Ｍ．Ｂｕｒｋｈａｒｄ，ａｎｄ Ｇ．Ａ．Ｄｅａｎ．（２００５）．Ｐｒｅ−Ｅｘｉｓｔｉｎｇ ｉｍｍｕｎｉｔｙ ｔｏ ｐａｔｈｏｇｅｎｉｃ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｄｏｅｓ ｎｏｔ ｐｒｅｖｅｎｔ ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ ｏｆ ｉｍｍｕｎｅ ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ ｔｏ ｆｅｌｉｎｅ ｉｍｍｕｎｏｄｅｆｉｃｉｅｎｃｙ ｖｉｒｕｓ ｂｙ ａ ｎｏｖｅｌ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｖａｃｃｉｎｅ．Ｖａｃｃｉｎｅ ２３：１４７９−１４９０．
４５．Ｔｖｉｎｎｅｒｅｉｍ，Ａ．Ｒ．，Ｓ．Ｅ．Ｈａｍｉｌｔｏｎ，ａｎｄ Ｊ．Ｔ．Ｈａｒｔｙ．（２００２）．ＣＤ８（＋）−Ｔ−ｃｅｌｌ ｒｅｓｐｏｎｓｅ ｔｏ ｓｅｃｒｅｔｅｄ ａｎｄ ｎｏｎｓｅｃｒｅｔｅｄ ａｎｔｉｇｅｎｓ ｄｅｌｉｖｅｒｅｄ ｂｙ ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｄｕｒｉｎｇ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ．Ｉｎｆｅｃｔ Ｉｍｍｕｎ ７０：１５３−１６２．
４６．Ｖａｚｑｕｅｚ−Ｂｏｌａｎｄ，Ｊ．Ａ．，Ｍ．Ｋｕｈｎ，Ｐ．Ｂｅｒｃｈｅ，Ｔ．Ｃｈａｋｒａｂｏｒｔｙ，Ｇ．Ｄｏｍｉｎｇｕｅｚ−Ｂｅｒｎａｌ，Ｗ．Ｇｏｅｂｅｌ，Ｂ．Ｇｏｎｚａｌｅｚ−Ｚｏｒｎ，Ｊ．Ｗｅｈｌａｎｄ，ａｎｄ Ｊ．Ｋｒｅｆｔ．（２００１）．Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ ａｎｄ ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｖｉｒｕｌｅｎｃｅ ｄｅｔｅｒｍｉｎａｎｔｓ．Ｃｌｉｎ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ Ｒｅｖ １４：５８４−６４０．
４７．Ｖｅｇａ，Ｙ．，Ｍ．Ｒａｕｃｈ，Ｍ．Ｊ．Ｂａｎｆｉｅｌｄ，Ｓ．Ｅｒｍｏｌａｅｖａ，Ｍ．Ｓｃｏｒｔｔｉ，Ｗ．Ｇｏｅｂｅｌ，ａｎｄ Ｊ．Ａ．Ｖａｚｑｕｅｚ−Ｂｏｌａｎｄ．（２００４）．Ｎｅｗ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｐｒｆＡ＊ ｍｕｔａｎｔｓ，ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎａｌ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｏｆ ＰｒｆＡ＊ ｐｒｏｔｅｉｎｓ ａｎｄ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ−ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｖｉｒｕｌｅｎｃｅ ｒｅｇｕｌａｔｏｒ ＰｒｆＡ．Ｍｏｌ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ ５２：１５５３−１５６５．
４８．Ｖｉｌｌａｌｏｂｏｓ，Ａ．，Ｊ．Ｅ．Ｎｅｓｓ，Ｃ．Ｇｕｓｔａｆｓｓｏｎ，Ｊ．Ｍｉｎｓｈｕｌｌ，ａｎｄ Ｓ．Ｇｏｖｉｎｄａｒａｊａｎ．（２００６）．Ｇｅｎｅ Ｄｅｓｉｇｎｅｒ：ａ ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ｂｉｏｌｏｇｙ ｔｏｏｌ ｆｏｒ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｉｎｇ ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ ＤＮＡ ｓｅｇｍｅｎｔｓ．ＢＭＣ Ｂｉｏｉｎｆｏｒｍａｔｉｃｓ ７：２８５．
４９．Ｗｏｌｌｅｒｔ，Ｔ．，Ｂ．Ｐａｓｃｈｅ，Ｍ．Ｒｏｃｈｏｎ，Ｓ．Ｄｅｐｐｅｎｍｅｉｅｒ，Ｊ．ｖａｎ ｄｅｎ Ｈｅｕｖｅｌ，Ａ．Ｄ．Ｇｒｕｂｅｒ，Ｄ．Ｗ．Ｈｅｉｎｚ，Ａ．Ｌｅｎｇｅｌｉｎｇ，ａｎｄ Ｗ．Ｄ．Ｓｃｈｕｂｅｒｔ．（２００７）．Ｅｘｔｅｎｄｉｎｇ ｔｈｅ Ｈｏｓｔ Ｒａｎｇｅ ｏｆ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｂｙ Ｒａｔｉｏｎａｌ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｄｅｓｉｇｎ．Ｃｅｌｌ １２９：８９１−９０２．
５０．Ｗｏｎｇ，Ｋ．Ｋ．，ａｎｄ Ｎ．Ｅ．Ｆｒｅｉｔａｇ．２００４．Ａ ｎｏｖｅｌ ｍｕｔａｔｉｏｎ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ ｃｅｎｔｒａｌ Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ ｒｅｇｕｌａｔｏｒ ＰｒｆＡ ｔｈａｔ ｒｅｓｕｌｔｓ ｉｎ ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｖｅ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ｏｆ ｖｉｒｕｌｅｎｃｅ ｇｅｎｅ ｐｒｏｄｕｃｔｓ．Ｊ Ｂａｃｔｅｒｉｏｌ １８６：６２６５−６２７６．
実施例２
リステリア・モノサイトゲネス株であるΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ΔｕｖｒＡＢ−ＨＰＶ Ｅ７（ＢＨ１４０９）およびΔａｃｔＡ／ΔｉｎｌＢ／ΔｕｖｒＡＢ／ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ−ＨＰＶ Ｅ７（ＢＨ１６３３またはＢＨ１７３３）の免疫原性を、弱毒化生またはＫＢＭＡワクチンとして比較した。
材料および方法
野生型および実施例１でＱｕａｄＶａｃワクチンに関して記載されている、ＨＰＶ Ｅ７を発現するＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓリステリア・モノサイトゲネス。
１×１０７ＣＦＵの弱毒化生リステリア・モノサイトゲネスの単回投与または３×１０７粒子のＫＢＭＡ Ｌｍの２回接種によりＣ５７ＢＬ／６マウスに静脈内接種した。初回接種の１４日後にＫＢＭＡの追加ワクチン接種を施行した。最後の接種の７日後に脾臓を回収した。ＨＰＶ Ｅ７４９−５７特異的ＣＤ８＋およびＬＬＯ１９０−２０１特異的ＣＤ４＋Ｔ細胞をＩＦＮ−γＥＬＩＳｐｏｔまたは細胞内サイトカイン染色により測定した。
結果
Ｌｍに基づくワクチンの免疫効力に対するＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓの影響を測定するために、ＷＴ ｐｒｆＡまたはＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ変異を含むＨＰＶ Ｅ７発現リステリア・モノサイトゲネス株をＣ５７ＢＬ／６マウスに接種した。最後の接種の７日後に脾臓を回収し、実施例１に記載されているように、Ｅ７４９−５７およびＬＬＯ１９０−２０１特異的免疫応答をｇ−ＩＦＮ−γＥＬＩＳｐｏｔまたは細胞内サイトカイン染色により測定した。弱毒化生リステリア・モノサイトゲネス（１×１０７ＣＦＵ、ｉ．ｖ．）の単回接種または光化学的に不活性化されたヌクレオチド除去修復欠失リステリア・モノサイトゲネス（ＫＢＭＡ；３×１０７粒子、ｉ．ｖ．）の２回接種後に免疫応答を評価した。ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓを含むことにより、弱毒化生リステリア・モノサイトゲネスおよびＫＢＭＡリステリア・モノサイトゲネスワクチン株により誘導されるＥ７−特異的ＣＤ８＋Ｔ細胞応答が共に著しく増強された（図５）。さらに、弱毒化生ＰｒｆＡ＊ Ｇ１５５Ｓ株接種後のＣＤ４＋ＬＬＯ１９０−２０１特異的応答も、ＷＴ ｐｒｆＡ株に比べて有意に増加した（図６）。
本明細書に引用されるすべての刊行物、特許、特許出願、インターネットサイトおよびアクセッション番号／データベース配列（ポリヌクレオチドおよびポリペプチド配列を共に含む）は、あらゆる目的でその内容全体が参照により本明細書に組み込まれ、その範囲は、個々の刊行物、特許、特許出願、インターネットサイトおよびアクセッション番号／データベース配列がそのまま参照により組み込まれることが具体的かつ個別に示された場合と同じである。

Claims (73)

  1. 組換えリステリア菌であって、
    （ａ）ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと、
    （ｂ）（i）ｐｒｆＡ応答性調節エレメントと、
    （ii）異種ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと
    を含む組換えポリヌクレオチドと
    を含み、
    前記異種ポリペプチドをコードする前記ポリヌクレオチドが、前記ｐｒｆＡ応答性調節エレメントと作動可能に連結され、かつ前記異種ポリペプチドが非細菌性であるかまたは異種性感染性病原体である、組換えリステリア菌。
  2. 前記ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドが、Ｙ６３Ｃ、Ｅ７７Ｋ、Ｌ１４９Ｆ、Ｇ１４５Ｓ、Ｇ１５５ＳおよびＳ１８３Ａからなる群より選択される変異を含む、請求項１に記載の組換えリステリア菌。
  3. 前記ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドがＧ１５５Ｓ変異を含む、請求項２に記載の組換えリステリア菌。
  4. 前記組換えポリヌクレオチドが、シグナルペプチドと前記異種ポリペプチドとを含む融合タンパク質をコードする、請求項１〜３のいずれか１項に記載の組換えリステリア菌。
  5. 前記ｐｒｆＡ応答性調節エレメントが、ｈｌｙプロモーター、ｐｌｃＡプロモーター、ｐｌｃＢプロモーター、ｍｐｌプロモーター、ｈｐｔプロモーター、ｉｎｌＣプロモーター、ｉｎｌＡプロモーター、ｉｎｌＢプロモーター、ｐｒｆＡプロモーターおよびａｃｔＡプロモーターからなる群より選択される、請求項１〜４のいずれか１項に記載の組換えリステリア菌。
  6. 前記ｐｒｆＡ応答性調節エレメントがａｃｔＡプロモーターである、請求項５に記載の組換えリステリア菌。
  7. 前記シグナルペプチドが、リステリア・モノサイトゲネス（Ｌｉｓｔｅｒｉａ ｍｏｎｏｃｙｔｏｇｅｎｅｓ）由来のＡｃｔＡシグナルペプチド、リステリア・モノサイトゲネス由来のＬＬＯシグナルペプチド、ラクトコッカス・ラクティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ）由来のＵｓｐ４５シグナルペプチド、炭疽菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｎｔｈｒａｃｉｓ）由来の防御抗原シグナルペプチド、リステリア・モノサイトゲネス由来のｐ６０シグナルペプチド、バチルス・スブチリス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ｓｕｂｔｉｌｉｓ）由来のＰｈｏＤシグナルペプチド、ｓｅｃＡ２シグナルペプチドおよびＴａｔシグナルペプチドからなる群より選択されるシグナルペプチドである、請求項４に記載の組換えリステリア菌。
  8. 前記シグナルペプチドがリステリア・モノサイトゲネス由来のＡｃｔＡシグナルペプチドである、請求項７に記載の組換えリステリア菌。
  9. 前記融合タンパク質がＡｃｔＡの最初の１００アミノ酸を含む、請求項４に記載の組換えリステリア菌。
  10. 前記異種ポリペプチドが、腫瘍関連抗原、腫瘍関連抗原由来のポリペプチド、感染症抗原および感染症抗原由来のポリペプチドからなる群より選択される抗原を含む、請求項１〜９のいずれか１項に記載の組換えリステリア菌。
  11. 前記異種ポリペプチドが、Ｋ−Ｒａｓ、Ｈ−Ｒａｓ、Ｎ−Ｒａｓ、１２−Ｋ−Ｒａｓ、メソテリン、ＰＳＣＡ、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ＷＴ−１、サバイビン、ｇｐ１００、ＰＡＰ、プロテイナーゼ３、ＳＰＡＳ−１、Ｂ−ｒａｆ、チロシナーゼ、ｍｄｍ−２、ＭＡＧＥ、ＲＡＧＥ、ＭＡＲＴ−１、ｂｃｒ／ａｂｌ、Ｈｅｒ−２／ｎｅｕ、アルファフェトプロテイン、マンモグロビン、ｈＴＥＲＴ（テロメラーゼ）、ＰＳＡおよびＣＥＡからなる群より選択される抗原であるか、またはＫ−Ｒａｓ、Ｈ−Ｒａｓ、Ｎ−Ｒａｓ、１２−Ｋ−Ｒａｓ、メソテリン、ＰＳＣＡ、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ＷＴ−１、サバイビン、ｇｐ１００、ＰＡＰ、プロテイナーゼ３、ＳＰＡＳ−１、Ｂ−ｒａｆ、チロシナーゼ、ｍｄｍ−２、ＭＡＧＥ、ＲＡＧＥ、ＭＡＲＴ−１、ｂｃｒ／ａｂｌ、Ｈｅｒ−２／ｎｅｕ、アルファフェトプロテイン、マンモグロビン、ｈＴＥＲＴ（テロメラーゼ）、ＰＳＡおよびＣＥＡからなる群より選択される抗原に由来するポリペプチドを含む、請求項１０に記載の組換えリステリア菌。
  12. 前記感染症抗原が、ウイルスあるいは肝炎ウイルス、インフルエンザウイルス、ヒト免疫不全ウイルス、パピローマウイルス、単純ヘルペスウイルス１、単純ヘルペスウイルス２、サイトメガロウイルス、結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）、熱帯熱マラリア原虫（Ｐｌａｓｍｏｄｉｕｍ ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ）またはクラミジア・トラコマティス（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｔｒａｃｈｏｍａｉｔｉｓ）からなる群より選択される異種性感染性病原体由来である、請求項１０に記載の組換えリステリア菌。
  13. 前記感染症抗原が、Ａ型肝炎ウイルス、Ｂ型肝炎ウイルスまたはＣ型肝炎ウイルス由来である、請求項１２に記載の組換えリステリア菌。
  14. 前記リステリア菌がリステリア・モノサイトゲネス種に属する、請求項１〜１３のいずれか１項に記載の組換えリステリア菌。
  15. 細胞間伝播、非食細胞内への侵入、増殖またはＤＮＡ修復の１つまたは複数に関して弱毒化されている、請求項１〜１４のいずれか１項に記載の組換えリステリア菌。
  16. 前記リステリアが、
    ａ．ａｃｔＡ変異、
    ｂ．ｉｎｌＢ変異、
    ｃ．ｕｖｒＡ変異、
    ｄ．ｕｖｒＢ変異、
    ｅ．ｕｖｒＣ変異、
    ｆ．核酸標的化化合物もしくは
    ｇ．ｕｖｒＡＢ変異と核酸標的化合物
    の１つまたは複数により弱毒化されている、請求項１５に記載の組換えリステリア菌。
  17. 前記核酸標的化合物がソラレンである、請求項１６に記載の組換えリステリア菌。
  18. 前記細菌が増殖に関して弱毒化されるように、前記細菌の核酸が、核酸と直接反応する核酸標的化合物との反応により改変されている、請求項１〜１４のいずれか１項に記載の組換えリステリア菌。
  19. 前記細菌が、増殖に関して前記改変細菌を弱毒化する核酸架橋を含む、請求項１〜１４のいずれか１項に記載の組換えリステリア菌。
  20. 前記細菌が、増殖に関して前記細菌を弱毒化するソラレン−核酸付加物を含む、請求項１〜１４のいずれか１項に記載の組換えリステリア菌。
  21. 前記細菌が、その改変された核酸を修復する前記細菌の能力を減弱させる遺伝子変異をさらに含む、請求項１〜１４のいずれかに記載の組換えリステリア菌。
  22. 前記細菌が、ａｃｔＡ、ｉｎｌＢ、ｕｖｒＡおよびｕｖｒＢに不活性化変異を含み、かつ前記細菌が、ソラレン−核酸架橋により増殖に関して弱毒化されている、請求項２１に記載の組換えリステリア菌。
  23. 請求項１〜２２のいずれか１項に記載の組換えリステリア菌ならびに薬学的に許容される添加剤、アジュバントおよび共刺激分子の１つまたは複数を含む、医薬組成物。
  24. 前記組成物が治療剤をさらに含む、請求項２３に記載の医薬組成物。
  25. 宿主における非リステリア抗原に対する免疫応答を誘導する方法であって、
    （ａ）ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと、
    （ｂ）（i）ｐｒｆＡ応答性調節エレメントと、
    （ii）異種ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと
    を含む組換えポリヌクレオチドと
    を含む組換えリステリア菌を含む有効量の組成物を宿主に投与することを含み、
    前記異種ポリペプチドをコードする前記ポリヌクレオチドが、前記ｐｒｆＡ応答性調節エレメントと作動可能に連結され、かつ前記異種ポリペプチドが前記抗原を含む方法。
  26. 宿主における非リステリア抗原に対する免疫原性を増強する方法であって、
    （ａ）ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと、
    （ｂ）（i）ｐｒｆＡ応答性調節エレメントと、
    （ii）異種ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと
    を含む組換えポリヌクレオチドと
    を含む組換えリステリア菌を含む有効量の組成物を宿主に投与することを含み、
    前記異種ポリペプチドをコードする前記ポリヌクレオチドが、前記ｐｒｆＡ応答性調節エレメントと作動可能に連結され、前記異種ポリペプチドが前記抗原を含む方法。
  27. 宿主における非リステリア感染または癌性状態を予防または治療する方法であって、
    （ａ）ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと、
    （ｂ）（i）ｐｒｆＡ応答性調節エレメントと、
    （ii）異種ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドと
    を含む組換えポリヌクレオチドと
    を含む組換えリステリア菌を含む有効量の組成物を宿主に投与することを含み、
    前記異種ポリペプチドをコードする前記ポリヌクレオチドが、前記ｐｒｆＡ応答性調節エレメントと作動可能に連結されている方法。
  28. 前記ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドが、Ｙ６３Ｃ、Ｅ７７Ｋ、Ｌ１４９Ｆ、Ｇ１４５Ｓ、Ｇ１５５ＳおよびＳ１８３Ａからなる群より選択される変異を含む、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  29. 前記ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドがＧ１５５Ｓ変異を含む、請求項２８に記載の方法。
  30. 前記組換えポリヌクレオチドが、シグナルペプチドと前記異種ポリペプチドとを含む融合タンパク質をコードする、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  31. 前記ｐｒｆＡ応答性調節エレメントが、ｈｌｙプロモーター、ｐｌｃＡプロモーター、ｐｌｃＢプロモーター、ｍｐｌプロモーター、ｈｐｔプロモーター、ｉｎｌＣプロモーター、ｉｎｌＡプロモーター、ｉｎｌＢプロモーター、ｐｒｆＡプロモーターおよびａｃｔＡプロモーターからなる群より選択される、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  32. 前記ｐｒｆＡ応答性調節エレメントがａｃｔＡプロモーターである、請求項３１に記載の方法。
  33. 前記シグナルペプチドが、リステリア・モノサイトゲネス由来のＡｃｔＡシグナルペプチド、リステリア・モノサイトゲネス由来のＬＬＯシグナルペプチド、ラクトコッカス・ラクティス由来のＵｓｐ４５シグナルペプチド、炭疽菌由来の防御抗原、リステリア・モノサイトゲネス由来のｐ６０シグナルペプチド、バチルス・スブチリス由来のＰｈｏＤシグナルペプチド、ｓｅｃＡシグナルペプチおよびＴａｔシグナルペプチドからなる群より選択される、請求項３０に記載の方法。
  34. 前記シグナルペプチドがリステリア・モノサイトゲネス由来のＡｃｔＡシグナルペプチドである、請求項３３に記載の方法。
  35. 前記融合タンパク質がＡｃｔＡの最初の１００アミノ酸を含む、請求項３０に記載の方法。
  36. 前記異種ポリペプチドが非細菌性である、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  37. 前記異種ポリペプチドが、腫瘍関連抗原、腫瘍関連抗原由来のポリペプチド、感染症抗原および感染症抗原由来のポリペプチドからなる群より選択される抗原を含む、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  38. 前記異種ポリペプチドが、Ｋ−Ｒａｓ、Ｈ−Ｒａｓ、Ｎ−Ｒａｓ、１２−Ｋ−Ｒａｓ、メソテリン、ＰＳＣＡ、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ＷＴ−１、サバイビン、ｇｐ１００、ＰＡＰ、プロテイナーゼ３、ＳＰＡＳ−１、Ｂ−ｒａｆ、チロシナーゼ、ｍｄｍ−２、ＭＡＧＥ、ＲＡＧＥ、ＭＡＲＴ−１、ｂｃｒ／ａｂｌ、Ｈｅｒ−２／ｎｅｕ、アルファフェトプロテイン、マンモグロビン、ｈＴＥＲＴ（テロメラーゼ）、ＰＳＡおよびＣＥＡからなる群より選択される抗原であるか、またはＫ−Ｒａｓ、Ｈ−Ｒａｓ、Ｎ−Ｒａｓ、１２−Ｋ−Ｒａｓ、メソテリン、ＰＳＣＡ、ＮＹ−ＥＳＯ−１、ＷＴ−１、サバイビン、ｇｐ１００、ＰＡＰ、プロテイナーゼ３、ＳＰＡＳ−１、Ｂ−ｒａｆ、チロシナーゼ、ｍｄｍ−２、ＭＡＧＥ、ＲＡＧＥ、ＭＡＲＴ−１、ｂｃｒ／ａｂｌ、Ｈｅｒ−２／ｎｅｕ、アルファフェトプロテイン、マンモグロビン、ｈＴＥＲＴ（テロメラーゼ）、ＰＳＡおよびＣＥＡからなる群より選択される抗原に由来するポリペプチドを含む、請求項３７に記載の方法。
  39. 前記感染症抗原が、ウイルスあるいは肝炎ウイルス、インフルエンザウイルス、ヒト免疫不全ウイルス、パピローマウイルス、単純ヘルペスウイルス１、単純ヘルペスウイルス２、サイトメガロウイルス、結核菌（Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓ）、熱帯熱マラリア原虫（Ｐｌａｓｍｏｄｉｕｍ ｆａｌｃｉｐａｒｕｍ）またはクラミジア・トラコマティス（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｔｒａｃｈｏｍａｉｔｉｓ）からなる群より選択される異種性感染性病原体由来である、請求項３７に記載の方法。
  40. 前記感染症抗原が、Ａ型肝炎ウイルス、Ｂ型肝炎ウイルスまたはＣ型肝炎ウイルス由来である、請求項３９に記載の方法。
  41. 前記リステリア菌がリステリア・モノサイトゲネス種に属する、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  42. 前記リステリアが、細胞間伝播、非食細胞内への侵入、増殖またはＤＮＡ修復の１つまたは複数に関して弱毒化されている、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  43. 前記リステリアが、
    ａ．ａｃｔＡ変異、
    ｂ．ｉｎｌＢ変異、
    ｃ．ｕｖｒＡ変異、
    ｄ．ｕｖｒＢ変異、
    ｅ．ｕｖｒＣ変異、
    ｆ．核酸標的化化合物もしくは
    ｇ．ｕｖｒＡＢ変異と核酸標的化合物
    の１つまたは複数により弱毒化されている、請求項４２に記載の方法。
  44. 前記核酸標的化合物がソラレンである、請求項４３に記載の方法。
  45. 前記細菌が増殖に関して弱毒化されるように、前記細菌の核酸が、核酸と直接反応する核酸標的化合物との反応により改変されている、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  46. 前記細菌が、増殖に関して前記改変細菌を弱毒化する核酸架橋を含む、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  47. 前記細菌が、増殖に関して前記細菌を弱毒化するソラレン−核酸付加物を含む、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  48. 前記細菌が、その改変された核酸を修復する前記細菌の能力を減弱させる遺伝子変異をさらに含む、請求項４５〜４７のいずれか１項に記載の方法。
  49. 前記細菌が、ａｃｔＡ、ｉｎｌＢ、ｕｖｒＡおよびｕｖｒＢに不活性化変異を含み、かつ前記細菌が、ソラレン−核酸架橋により増殖に関して弱毒化されている、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  50. 前記免疫応答が先天性免疫応答である、請求項２５または２６に記載の方法。
  51. 前記免疫応答が後天性免疫応答である、請求項２５または２６に記載の方法。
  52. 前記組換えリステリア菌が、アジュバントおよび／または共刺激分子と共に投与される、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  53. 前記組換えリステリア菌が、治療剤と組み合わせて投与される、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  54. 前記組換えリステリア菌の投与が繰り返される、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  55. 前記組換えリステリア菌の２回目の投与が、前記リステリア菌の最初の投与に続いて約２週間後に繰り返される、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  56. 前記組換えリステリア菌の投与後に、生きている代謝的に活性なリステリアを含まず、かつ前記非リステリア抗原をコードするワクチンを投与する、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  57. 哺乳動物における非リステリア抗原に対する免疫応答を増強するための方法であって、
    前記哺乳動物に、前記非リステリア抗原をコードする請求項１〜２２のいずれか１項に記載の組換えリステリアの有効量の追加免疫用量を投与することを含み、
    前記哺乳動物が、前記非リステリア抗原を提供するワクチンの有効量の初回刺激用量を既に投与されており、
    （ａ）前記ワクチンが、前記非リステリア抗原をコードする生きている代謝的に活性なリステリアを含まず、かつ
    （ｂ）前記ワクチンが、前記非リステリア抗原をコードする裸のＤＮＡを含む場合
    である方法。
  58. 前記抗原に対する前記免疫原性が、前記異種ポリペプチドをコードする前記ポリヌクレオチドを含む組換えリステリア菌により誘導される抗原の免疫原性に比べて増強され、前記異種ポリペプチドをコードする前記ポリヌクレオチドの発現が、野生型ＰｒｆＡポリペプチドにより制御される、請求項２６に記載の方法。
  59. 前記増強された免疫原性が、ＭＣＰ−１、ＩＬ−６、ＩＦＮ−γ、ＴＮＦαまたはＩＬ−１２ｐ７０の１つまたは任意の組合せの発現増加を含む、請求項２６に記載の方法。
  60. 前記宿主がヒトである、請求項２５〜２７のいずれか１項に記載の方法。
  61. 組換えリステリア菌を調製する方法であって、
    異種ポリペプチドをコードする組換えポリヌクレオチドをリステリア菌内に安定に導入することを含み、
    前記リステリア菌が、ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを含み、かつ
    前記異種ポリペプチドが非細菌性であり、かつ
    リステリア菌内への導入後に、前記異種ポリペプチドをコードする前記組換えポリヌクレオチドが、ＰｒｆＡ応答性調節エレメントと作動可能に連結される方法。
  62. 前記組換えポリヌクレオチドが、前記異種ポリペプチドと作動可能に連結された前記ＰｒｆＡ応答性調節エレメントを含む、請求項６１に記載の方法。
  63. 前記組換えポリヌクレオチドが、シグナルポリペプチドと前記異種ポリペプチドとを含む融合タンパク質をコードする、請求項６１に記載の方法。
  64. 前記異種ポリペプチドをコードする前記組換えポリヌクレオチドが、前記リステリア染色体内に組み込まれる、請求項６１に記載の方法。
  65. 前記異種ポリペプチドをコードする前記組換えポリヌクレオチドが、前記リステリア染色体のｔＲＮＡａｒｇ遺伝子内に組み込まれる、請求項６４に記載の方法。
  66. 前記シグナルポリペプチドがＡｃｔＡシグナルポリペプチドであり、かつ異種ポリペプチドをコードする前記組換えポリヌクレオチドがリステリアのａｃｔＡ遺伝子内に導入される、請求項６３に記載の方法。
  67. 組換えリステリア菌を調製する方法であって、
    （ａ）ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドをコードする組換えポリヌクレオチドと、
    （ｂ）異種ポリペプチドをコードする組換えポリヌクレオチドと
    が、リステリア菌内に安定に導入され、
    前記リステリア菌が非機能性のｐｒｆＡ対立遺伝子を含み、
    前記異種ポリペプチドをコードする前記組換えポリヌクレオチドの導入後に、前記核酸が、ＰｒｆＡ応答性調節エレメントと作動可能に連結される方法。
  68. 前記異種ポリペプチドをコードする前記組換えポリヌクレオチドが、ＰｒｆＡ応答性調節エレメントと作動可能に連結される、請求項６７に記載の方法。
  69. 前記組換えポリヌクレオチドが、シグナルポリペプチドと前記異種ポリペプチドとを含む融合タンパク質をコードする、請求項６７に記載の方法。
  70. 前記ＰｒｆＡ＊変異体ポリペプチドをコードする前記組換えポリヌクレオチドが、前記リステリア染色体内に組み込まれる、請求項６７に記載の方法。
  71. 前記異種ポリペプチドをコードする前記組換えポリヌクレオチドが、前記リステリア染色体内に組み込まれる、請求項６７に記載の方法。
  72. ＰｒｆＡ応答性調節エレメントと作動可能に連結された前記異種ポリペプチドをコードする前記組換えポリヌクレオチドが、前記リステリア染色体のｔＲＮＡａｒｇ遺伝子内に組み込まれる、請求項７０に記載の方法。
  73. 前記シグナルポリペプチドがＡｃｔＡシグナルポリペプチドであり、かつ異種ポリペプチドをコードする前記核酸が前記リステリアのａｃｔＡ遺伝子内に導入される、請求項６９に記載の方法。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2017513502A (ja) * 2014-04-24 2017-06-01 アドバクシス， インコーポレイテッド 組み換え型リステリアワクチン株およびこれを生産する方法

Families Citing this family (28)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8765687B2 (en) 2005-10-17 2014-07-01 Sloan Kettering Institute For Cancer Research WT1 HLA class II-binding peptides and compositions and methods comprising same
CA2645766A1 (en) 2006-04-10 2007-10-25 Sloan Kettering Institute For Cancer Research Immunogenic wt-1 peptides and methods of use thereof
US8709445B2 (en) * 2007-07-31 2014-04-29 Los Angeles Biomedical Research Institute At Harbor-Ucla Medical Center Vaccination with killed but metabolically active (KBMA) protozoans with toll-like receptor agonists
US9017660B2 (en) 2009-11-11 2015-04-28 Advaxis, Inc. Compositions and methods for prevention of escape mutation in the treatment of Her2/neu over-expressing tumors
US9650639B2 (en) 2008-05-19 2017-05-16 Advaxis, Inc. Dual delivery system for heterologous antigens
EP2288379A4 (en) 2008-05-19 2012-08-08 Advaxis DOUBLE RELEASE SYSTEM FOR HETEROLOGIST ANTIGENE
US10016617B2 (en) 2009-11-11 2018-07-10 The Trustees Of The University Of Pennsylvania Combination immuno therapy and radiotherapy for the treatment of Her-2-positive cancers
ES2613630T3 (es) 2010-05-23 2017-05-25 Aduro Biotech, Inc. Métodos y composiciones que utilizan Listeria para un tratamiento auxiliar del cáncer
US20130101614A1 (en) * 2010-06-15 2013-04-25 The Regents Of The University Of California Novel live recombinant booster vaccine against tuberculosis
JP5981436B2 (ja) * 2010-10-01 2016-08-31 ザ トラスティーズ オブ ザ ユニバーシティ オブ ペンシルバニア 寄生的に感染している対象におけるワクチン不応答性を反転させるためのリステリアワクチンベクターの使用
CN103415620B (zh) * 2010-11-17 2016-10-12 艾杜罗生物科技公司 诱导针对EGFRvIII的免疫应答的方法和组合物
CA2829960A1 (en) 2011-03-11 2012-09-20 John Rothman Listeria-based adjuvants
EP3520810A3 (en) 2012-01-13 2019-11-06 Memorial Sloan-Kettering Cancer Center Immunogenic wt1 peptides and use thereof
BR112014022662A2 (pt) 2012-03-12 2017-10-03 Advaxis Inc Inibição da função de célula supressora seguindo tratamento de vacina de listeria
EP2916854A4 (en) * 2012-11-06 2016-06-22 Aduro Biotech Inc BACTERIAL SPECIES WHICH CAN BE MISSED AND METHODS OF PREPARATION AND USE THEREOF
EA201590397A8 (ru) 2012-12-27 2016-08-31 Адуро Биотек, Инк. Способствующие экспрессии антигенных последовательностей у listeria партнеры для гибридизации, представляющие собой сигнальные пептиды, и способы их получения и применения
US9919037B2 (en) 2013-01-15 2018-03-20 Memorial Sloan Kettering Cancer Center Immunogenic WT-1 peptides and methods of use thereof
US10815273B2 (en) 2013-01-15 2020-10-27 Memorial Sloan Kettering Cancer Center Immunogenic WT-1 peptides and methods of use thereof
US20170106067A1 (en) * 2014-06-12 2017-04-20 The Johns Hopkins University Combinatorial immunotherapy for pancreatic cancer treatment
WO2016061115A1 (en) 2014-10-13 2016-04-21 Providence Health & Services-Oregon D/B/A Providence Portland Medical Center Bacterial vaccines deficient in the 2-c-methyl-d-erythritol-4-phosphate pathway and methods of preparation and use thereof
WO2016073585A1 (en) * 2014-11-05 2016-05-12 The Regents Of The University Of California General secretory pathway (gsp) mutant listeria spp., and methods for making and using the same
IL259931B2 (en) 2015-12-16 2024-02-01 Gritstone Bio Inc Identification of neo-antigens, preparation, and use
SG11201806392XA (en) * 2016-01-27 2018-08-30 Advaxis Inc Personalized delivery vector-based immunotherapy and uses thereof
CN107058202A (zh) * 2017-03-23 2017-08-18 上海理工大学 一种基因敲除减毒单核细胞增生李斯特氏菌及其制备方法
AU2018348165A1 (en) 2017-10-10 2020-05-21 Gritstone Bio, Inc. Neoantigen identification using hotspots
KR20200090855A (ko) 2017-11-22 2020-07-29 그릿스톤 온콜로지, 인코포레이티드 신생항원에 대한 접합 에피토프 제시 감소
CN110408634B (zh) 2018-04-27 2021-08-03 苏州若泰医药科技有限公司 一种非整合李斯特菌疫苗及抗肿瘤免疫应答方法
US20210236545A1 (en) * 2018-08-02 2021-08-05 Suzhou Royaltech Med Co., Ltd Tumor immunotherapy composition based on antigen-presenting cells activated by attenuated listeria monocytogenes, preparation method therefor and application thereof

Family Cites Families (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5171568A (en) 1984-04-06 1992-12-15 Chiron Corporation Recombinant herpes simplex gb-gd vaccine
ES2012739T5 (es) 1987-11-18 2001-12-01 Chiron Corp Diagnosticos para nanbv.
HU225068B1 (en) 1989-03-17 2006-05-29 Chiron Corp Process for producing diagnostics and vaccine of nanbh
GEP20002164B (en) 1989-05-18 2000-07-10 Novartis Vaccines & Diagnostic Oligomers, method for detecting of hcv sequence, kit for its detecting, method for production of the blood free from hcv
US5593823A (en) 1993-06-28 1997-01-14 Cerus Corporation Method for inactivating pathogens in blood using photoactivation of 4'-primary amino-substituted psoralens
US5691132A (en) 1994-11-14 1997-11-25 Cerus Corporation Method for inactivating pathogens in red cell compositions using quinacrine mustard
US6093725A (en) 1997-01-06 2000-07-25 Cerus Corporation Frangible compounds for pathogen inactivation
DE69819360T2 (de) 1997-11-20 2004-08-19 Cerus Corp., Concord Neue psoralene zur inaktivierung von pathogenen
WO1999034839A1 (en) 1998-01-06 1999-07-15 Cerus Corporation Methods for quenching pathogen inactivators in biological materials
AU2004224425B2 (en) 2003-02-06 2010-06-24 Aduro Biotech Modified free-living microbes, vaccine compositions and methods of use thereof
CA2515369C (en) 2003-02-06 2015-03-31 Cerus Corporation Listeria attenuated for entry into non-phagocytic cells, vaccines comprising the listeria, and methods of use thereof
KR20060130038A (ko) 2003-10-15 2006-12-18 메디뮨 인코포레이티드 리스테리아에 의거한 ＥｐｈＡ２ 백신
US7842289B2 (en) 2003-12-24 2010-11-30 Aduro Biotech Recombinant nucleic acid molecules, expression cassettes, and bacteria, and methods of use thereof
JP2009504787A (ja) 2005-08-19 2009-02-05 シーラス コーポレイション 抗体によって媒介される免疫応答の増強
WO2007117371A2 (en) 2006-03-01 2007-10-18 Anza Therapeutics, Inc. Engineered listeria and methods of use thereof
US7935804B2 (en) 2006-03-01 2011-05-03 Aduro Biotech Engineered Listeria and methods of use thereof
US20070207171A1 (en) 2006-03-01 2007-09-06 Cerus Corporation Engineered listeria and methods of use thereof

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2017513502A (ja) * 2014-04-24 2017-06-01 アドバクシス， インコーポレイテッド 組み換え型リステリアワクチン株およびこれを生産する方法

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