JP2011130770A - 新規のraag10細胞表面標的および当該標的を認識する抗体ファミリー - Google Patents
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Abstract
【解決手段】本発明は、疾病およびがんに関連する抗原、RAAG10の同定およびキャラクタリゼーションを提供する。さらに本発明は、抗原RAAG10を結合するモノクローナル抗体のファミリを提供し、RAAG10を発現する種々のヒトのがんおよび疾病を診断し処置する方法も提供する。別の態様では、本発明は、年4月9日および年4月23日にアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションにて保管された特許管理番号ATCC番号PTA−4217、ATCC番号PTA−4218、ATCC番号PTA−4244、およびATCC番号PTA−4245の宿主細胞株の任意の一つによって産生されるモノクローナル抗体抗RAAG10である。
【選択図】なし
Description
本明細書は、2002年6月19日出願の米国仮出願第60/390,203号の利益を主張する。この出願は、その全体が参考として援用されている。
本発明は、生物学および免疫療法の分野にある。より具体的には、疾病およびがんに関連する新規の抗原、RAAG10、およびRAAG10に結合するモノクローナル抗体のファミリに関する。本発明はさらに、RAAG10に関連する多様なヒトの疾病およびがんを、抗RAAG10ファミリ抗体を用いて診断および/または処置することを提供する。
抗体は、診断学の公知の方法で使用されるほか、治療薬剤として有用であることがわかっている。たとえば、ここ数年、がんを処置するために、免疫療法を用いたり、または治療目的による抗体利用を用いたりしている。受動免疫療法には、モノクローナル抗体を使用しがんを処置することが含まれる。たとえば、非特許文献1を参照すること。これらの抗体には、腫瘍細胞の成長または生存の直接阻害、および体の免疫系による本来の細胞死滅活性を強化する能力の両方があるため、抗体固有の治療的生物活性を有することができる。これらの薬剤は、単独または放射線または化学療法薬と併用して投与することができる。このような治療例としてリツキシマブおよびトラスツズマブの二つがあげられ、それぞれ、非ホジキンリンパ腫および乳がんの処置用として承認されている。あるいは、抗体を使用して抗体コンジュゲートを作ることができる。抗体コンジュゲートでは、抗体が毒性物質に連結しており、その物質を腫瘍を標的とするように、具体的には腫瘍と結合させるようになっている。ゲムツズマブオゾガマイシンは、白血病の処置に使用される承認された抗体コンジュゲートの一例である。がん細胞に結合し、診断および治療への利用が可能とされるモノクローナル抗体は、刊行物に開示されている。たとえば以下の特許明細書、特に標的タンパク質の分子量をいくつか開示しているものを参照すること:特許文献1(200kDのc−erbB−2(Her2)のほか、サイズが40〜200KDの未知の抗原)および特許文献2(50kDおよび55kDの腫瘍胎児タンパク質)。臨床試験中の抗体の例および/または固形腫瘍を処置するものとして承認された例として、トラスツズマブ(抗原:180kD、HER2/neu)、エドレコロマブ(抗原:40〜50kD、Ep−CAM)、抗人乳脂肪球(HMFG1)(抗原>200kD、HMWムチン)、セツキシマブ(抗原:150kDおよび170kD、EGF受容体)、アレムツズマブ(抗原:21〜28kD、CD52)、およびリツキシマブ(抗原:35kD、CD20)が挙げられる。
細胞表面の標的を特異的に認識する抗体および他の薬剤によって疾病および/またはがんを処置するのに利用することができるような疾病細胞および/またはがん細胞の表面上にある新規の標的が必要とされている。さらに、本明細書に開示されている発見に基づき、RAAG10の疾病促進活性を低減または増加することによって調節することができる細胞表面上の標的を特異的に認識する新規の抗体および他の薬剤が求められている。
以下に詳細に記載するように、本発明者らは、本明細書にRAAG10と示す新規の抗原を発見した。これは、B7−H3Lと示すこともあり、本明細書に提示される新規の抗体の抗原標的として同定されるものである。同様のポリペプチドが公知である。たとえば、マウスB7−H3ホモログの同定を記載し、T細胞増殖およびIFN−γ産生を媒介することが示されているヒトB7−H3遺伝子を特徴付ける非特許文献2を参照すること。
本発明は、種々のヒトがんで発現されるRAAG10に結合するモノクローナル抗体を提供する。一態様によれば、本発明は、RAAG10に結合するモノクローナル抗体のファミリである。
本発明は、例えば以下の項目を提供する。
(項目1)
RAAG10に特異的に結合し、以下の特徴を少なくとも一つ以上有する実質的に精製された免疫グロブリンポリペプチドまたはその抗原結合断片:
a.がん細胞上のRAAG10に結合する能力、
b.インビトロまたはインビボの生細胞の表面上に露出しているRAAG10の一部に結合する能力、
c.RAAG10を発現するがん細胞に治療薬剤または検出可能マーカーを送達する能力、および
d.RAAG10を発現するがん細胞の中へ治療薬剤または検出可能マーカーを送達する能力。
(項目2)
前記がん細胞は、副腎腫瘍、エイズに関連するがん、胞状軟部肉腫、星細胞系腫瘍、膀胱がん(有棘細胞がん腫および移行上皮がん腫)、骨がん(アダマンチノーマ、動脈瘤様骨嚢腫、骨軟骨腫、骨肉腫)、脳および脊髄がん、転移性脳腫瘍、乳がん、頚動脈小体腫瘍、子宮頚癌、軟骨肉腫、脊索腫、嫌色素性腎細胞がん腫、明細胞がん腫、大腸がん、結腸直腸がん、皮膚の良性線維性組織球腫、線維形成性小円形細胞腫瘍、上衣細胞腫、ユーイング肉腫、骨外性粘液性軟骨肉腫、線維形成不全骨、骨の線維異形成、胆嚢および胆管がん、妊娠性絨毛性疾患、胚細胞腫瘍、頭部および頸部がん、島細胞腫瘍、カポジ肉腫、腎がん(腎芽細胞腫、乳頭状腎細胞がん腫)、白血病、脂肪腫/良性脂肪性腫瘍、脂肪肉腫/悪性の脂肪性腫瘍、肝がん(肝芽腫、肝細胞がん)、リンパ腫、肺がん、髄芽腫、黒色腫、髄膜腫、多発性内分泌異常増殖、多発性骨髄腫、骨髄異形成症候群、神経芽腫、神経内分泌腫瘍、卵巣がん、膵臓がん、乳頭甲状腺がん、上皮小体腫瘍、小児がん、末梢神経鞘腫、褐色細胞腫、下垂体部腫瘍、前立腺がん、後方ブドウ膜黒色腫、まれな血液疾患、転移性腎がん、横紋筋様腫瘍、横紋筋肉腫、肉腫、皮膚がん、軟部組織の肉腫、扁平細胞がん、胃がん、滑膜肉腫、睾丸がん、胸腺がん腫、胸腺腫、転移性甲状腺がん、および子宮がん(頚部のがん腫、子宮内膜がん腫、および平滑筋腫)からのがん細胞からなる群から選択される、項目1に記載の精製された免疫グロブリンポリペプチドまたは抗原結合断片。
(項目3)
項目1に記載の前記免疫グロブリンポリペプチドまたはその抗原結合断片をコードする単離された核酸配列。
(項目4)
前記核酸はプロモータに作動可能に連結される、項目3に記載の核酸。
(項目5)
前記プロモータおよび前記核酸は発現ベクターに含まれている、項目4に記載の核酸。
(項目6)
前記ポリペプチドはモノクローナル抗体である、項目3に記載の核酸。
(項目7)
項目3に記載の核酸を含むベクターによって形質移入されるか、形質転換されるか、または感染された細胞株。
(項目8)
実質的に精製された免疫グロブリンポリペプチドまたはその抗原結合断片を産生する方法であって、
a.前記免疫グロブリンポリペプチドまたは抗原結合断片が発現するような条件下で、項目3に記載の前記核酸によって形質転換させた細胞株を成長させる工程、および
b.前記発現した免疫グロブリンポリペプチドまたは断片を収集する工程
を含む方法。
(項目9)
前記細胞株はハイブリドーマである、項目8に記載の方法。
(項目10)
前記ハイブリドーマは、ATCC番号PTA−4217、ATCC番号PTA−4218、ATCC番号PTA−4244、およびATCC番号PTA−4245からなる群から選択される、項目9に記載の方法。
(項目11)
前記免疫グロブリンポリペプチドはモノクローナル抗体である、項目8に記載の方法。
(項目12)
治療上有効な量の項目1に記載の前記精製された免疫グロブリンまたは抗原結合断片を薬学的に受容可能な担体とともに含む薬学的組成物。
(項目13)
RAAG10に特異的に結合し、以下の特徴を少なくとも一つ以上有する治療上有効な量のモノクローナル抗体またはその抗原結合断片を薬学的に受容可能な担体とともに含む薬学的組成物:
a.がん細胞上のRAAG10に結合する能力、
b.インビトロまたはインビボの生細胞の表面上に露出しているRAAG10の一部に結合する能力、
c.RAAG10を発現するがん細胞に治療薬剤または検出可能マーカーを送達する能力、および
d.RAAG10を発現するがん細胞の中へ治療薬剤または検出可能マーカーを送達する能力。
(項目14)
前記組成物は追加の治療的成分を含む、項目13記載の薬学的組成物。
(項目15)
ATCC番号PTA−4217、ATCC番号PTA−4218、ATCC番号PTA−4244、およびATCC番号PTA−4245、またはその子孫からなる群から選択される単離された細胞株。
(項目16)
化学療法薬と結合された抗RAAG10抗体を含む組成物を投与することを含む前記化学療法薬をがん細胞に送達する方法であって、前記がん細胞は、副腎腫瘍、エイズに関連するがん、胞状軟部肉腫、星細胞系腫瘍、膀胱がん(有棘細胞がん腫および移行上皮がん腫)、骨がん(アダマンチノーマ、動脈瘤様骨嚢腫、骨軟骨腫、骨肉腫)、脳および脊髄がん、転移性脳腫瘍、乳がん、頚動脈小体腫瘍、子宮頚癌、軟骨肉腫、脊索腫、嫌色素性腎細胞がん腫、明細胞がん腫、大腸がん、結腸直腸がん、皮膚の良性線維性組織球腫、線維形成性小円形細胞腫瘍、上衣細胞腫、ユーイング肉腫、骨外性粘液性軟骨肉腫、線維形成不全骨、骨の線維異形成、胆嚢および胆管がん、妊娠性絨毛性疾患、胚細胞腫瘍、頭部および頸部がん、島細胞腫瘍、カポジ肉腫、腎がん(腎芽細胞腫、乳頭状腎細胞がん腫)、白血病、脂肪腫/良性脂肪性腫瘍、脂肪肉腫/悪性の脂肪性腫瘍、肝がん(肝芽腫、肝細胞がん)、リンパ腫、肺がん、髄芽腫、黒色腫、髄膜腫、多発性内分泌異常増殖、多発性骨髄腫、骨髄異形成症候群、神経芽腫、神経内分泌腫瘍、卵巣がん、膵臓がん、乳頭甲状腺がん、上皮小体腫瘍、小児がん、末梢神経鞘腫、褐色細胞腫、下垂体部腫瘍、前立腺がん、後方ブドウ膜)黒色腫、まれな血液疾患、転移性腎がん、横紋筋様腫瘍、横紋筋肉腫、肉腫、皮膚がん、軟部組織の肉腫、扁平細胞がん、胃がん、滑膜肉腫、睾丸がん、胸腺がん腫、胸腺腫、転移性甲状腺がん、および子宮がん(頚部のがん腫、子宮内膜がん腫、および平滑筋腫)からのがん細胞からなる群から選択される、方法。
(項目17)
前記化学療法薬は個体に投与される、項目16に記載の方法。
(項目18)
前記ハイブリドーマは、ATCC番号PTA−4217、ATCC番号PTA−4218、ATCC番号PTA−4244、およびATCC番号PTA−4245またはその子孫からなる群から選択される、項目16に記載の方法。
(項目19)
化学療法薬と結合された抗RAAG10抗体を含む有効量の組成物を個体に投与することを含む前記個体内でがん細胞の成長を阻害する方法であって、前記がん細胞は、副腎腫瘍、エイズに関連するがん、胞状軟部肉腫、星細胞系腫瘍、膀胱がん(有棘細胞がん腫および移行上皮がん腫)、骨がん(アダマンチノーマ、動脈瘤様骨嚢腫、骨軟骨腫、骨肉腫)、脳および脊髄がん、転移性脳腫瘍、乳がん、頚動脈小体腫瘍、子宮頚癌、軟骨肉腫、脊
索腫、嫌色素性腎細胞がん腫、明細胞がん腫、大腸がん、結腸直腸がん、皮膚の良性線維性組織球腫、線維形成性小円形細胞腫瘍、上衣細胞腫、ユーイング肉腫、骨外性粘液性軟骨肉腫、線維形成不全骨、骨の線維異形成、胆嚢および胆管がん、妊娠性絨毛性疾患、胚細胞腫瘍、頭部および頸部がん、島細胞腫瘍、カポジ肉腫、腎がん(腎芽細胞腫、乳頭状腎細胞がん腫)、白血病、脂肪腫/良性脂肪性腫瘍、脂肪肉腫/悪性の脂肪性腫瘍、肝がん(肝芽腫、肝細胞がん)、リンパ腫、肺がん、髄芽腫、黒色腫、髄膜腫、多発性内分泌異常増殖、多発性骨髄腫、骨髄異形成症候群、神経芽腫、神経内分泌腫瘍、卵巣がん、膵臓がん、乳頭甲状腺がん、上皮小体腫瘍、小児がん、末梢神経鞘腫、褐色細胞腫、下垂体部腫瘍、前立腺がん、後方ブドウ膜)黒色腫、まれな血液疾患、転移性腎がん、横紋筋様腫瘍、横紋筋肉腫、肉腫、皮膚がん、軟部組織の肉腫、扁平細胞がん、胃がん、滑膜肉腫、睾丸がん、胸腺がん腫、胸腺腫、転移性甲状腺がん、および子宮がん(頚部のがん腫、子宮内膜がん腫、および平滑筋腫)からのがん細胞からなる群から選択される、方法。
(項目20)
前記化学療法薬は、前記がん細胞の中に送達される、項目19に記載の方法。
(項目21)
前記抗RAAG10抗体は、細胞株によって発現されるモノクローナル抗体であり、前記ハイブリドーマは、ATCC番号PTA−4217、ATCC番号PTA−4218、ATCC番号PTA−4244、およびATCC番号PTA−4245、またはその子孫からなる群から選択される、項目19に記載の方法。
(項目22)
個体からの細胞を抗RAAG10抗体に接触させ、存在する場合、前記細胞からのRAAG10と前記抗体との複合体を検出することを含む前記個体内のがん細胞の有無を検出する方法であって、前記がん細胞は、副腎腫瘍、エイズに関連するがん、胞状軟部肉腫、星細胞系腫瘍、膀胱がん(有棘細胞がん腫および移行上皮がん腫)、骨がん(アダマンチノーマ、動脈瘤様骨嚢腫、骨軟骨腫、骨肉腫)、脳および脊髄がん、転移性脳腫瘍、乳がん、頚動脈小体腫瘍、子宮頚癌、軟骨肉腫、脊索腫、嫌色素性腎細胞がん腫、明細胞がん腫、大腸がん、結腸直腸がん、皮膚の良性線維性組織球腫、線維形成性小円形細胞腫瘍、上衣細胞腫、ユーイング肉腫、骨外性粘液性軟骨肉腫、線維形成不全骨、骨の線維異形成、胆嚢および胆管がん、妊娠性絨毛性疾患、胚細胞腫瘍、頭部および頸部がん、島細胞腫瘍、カポジ肉腫、腎がん(腎芽細胞腫、乳頭状腎細胞がん腫)、白血病、脂肪腫/良性脂肪性腫瘍、脂肪肉腫/悪性の脂肪性腫瘍、肝がん(肝芽腫、肝細胞がん)、リンパ腫、肺がん、髄芽腫、黒色腫、髄膜腫、多発性内分泌異常増殖、多発性骨髄腫、骨髄異形成症候群、神経芽腫、神経内分泌腫瘍、卵巣がん、膵臓がん、乳頭甲状腺がん、上皮小体腫瘍、小児がん、末梢神経鞘腫、褐色細胞腫、下垂体部腫瘍、前立腺がん、後方ブドウ膜)黒色腫、まれな血液疾患、転移性腎がん、横紋筋様腫瘍、横紋筋肉腫、肉腫、皮膚がん、軟部組織の肉腫、扁平細胞がん、胃がん、滑膜肉腫、睾丸がん、胸腺がん腫、胸腺腫、転移性甲状腺がん、および子宮がん(頚部のがん腫、子宮内膜がん腫、および平滑筋腫)からのがん細胞からなる群から選択される、方法。
(項目23)
RAAG10とRAAG10結合パートナーとの間の以下に示す相互作用の少なくとも一つを阻止する薬剤:
a.がん細胞上のRAAG10に結合する能力、
b.インビトロまたはインビボの生細胞の表面上に露出しているRAAG10の一部に結合する能力、
c.RAAG10を発現するがん細胞に治療薬剤または検出可能マーカーを送達する能力、および
d.RAAG10を発現するがん細胞の中へ治療薬剤または検出可能マーカーを送達する能力。
(項目24)
治療上有効な量の項目23に記載の薬剤を薬学的に受容可能な担体とともに含む薬学的組成物。
ある態様では、本発明は、(i)個体から得られる血液または組織の試料中のRAAG10の存在を分析する工程と、(ii)前記試料中のRAAG10マーカーの量が、正常(非疾病)血液または組織の試料と比べて増加しているのかを検出する工程と、(iii)前記マーカーの量の増加を疾病陽性診断と関連付けるか、前記マーカーの量の増加無しを疾病陰性診断と関連付ける工程を含む個体の疾病の診断を補助する方法である。ある実施形態では、抗RAAG10抗体を使用してマーカーを検出する。ある実施形態では、本方法は、放射性核種イメージング、流動細胞計測法、および免疫組織化学からなる群から選択される技術によって達成される。
本発明は、乳がん、大腸がん、肺がん、および前立腺がんを含むがこれらに限定されるものではない種々のタイプの組織のがん細胞上に発現される新規の抗原、RAAG10を提供する。さらに、本発明は、RAAG10に結合するモノクローナル抗体およびポリペプチドを提供し、これらの抗体およびポリペプチドを作製し使用して、RAAG10の発現および/または過剰発現に関連する種々の疾病ヒトがんを診断し処置する方法を提供する。
本発明の実施は、特に断り書きのない限り、当該技術の範囲内にある分子生物学(組換え技術を含む)、微生物学、細胞生物学、生化学および免疫学の従来の技術を利用する。このような技術は、Molecular Cloning:A Laboratory Manual,Second edition(Sambrookら、1989)Cold Spring Harbor Press;Oligonucleotide Synthesis(M.J.Gait編、1984);Methods in Molecular Biology,Humana Press;Cell Biology:A Laboratory Notebook(J.E.Cellis編、1998)Academic Press;Animal Cell Culture(R.I.Freshney編、1987);Introduction to Cell and Tissue Culture(J.P.MatherおよびP.E.Roberts,1998)Plenum Press;Cell and Tissue Culture:Laboratory Procedures(A.Doyle,J.B.Griffiths,およびD.G.Newell編、1993−8)J.WileyおよびSons;Methods in Enzymology(Academic Press,Inc.);Handbook of Experimental Immunology(D.M.WeirおよびC.C.Blackwell編);Gene Transfer Vectors for Mammalian Cells(J.M.MillerおよびM.P.Calos編、1987);Current Protocols in Molecular Biology(F.M.Ausubelら編、1987);PCR:The Polyrnerase Chain Reaction,(Mullisら編、1994);Current Protocols in Immunology(J.E.Coliganら編、199 1);Short Protocols in Molecular Biology(WileyおよびSons,1999);Immunobiology(C.A.JanewayおよびP.Travers,1997);Antibodies(P.Finch,1997);Antibodies: a practical approach(D.Catty.編、IRL Press,1988−1989);Monoclonal antibodies:a practical approach(P.ShepherdおよびC.Dean編、Oxford University Press,2000);Using antibodies: a laboratory manual(E.HarlowおよびD.Lane(Cold Spring Harbor Laboratory Press,1999);The Antibodies(M.ZanettiおよびJ.D.Capra編、Harwood Academic Publishers,1995);およびCancer: Principles and Practice of Oncology(V.T.DeVitaら編、J.B.Lippincott Company,1993)のような文献に十分説明されている。
「RAAG10」および「B7−H3L」は、本発明の抗体をいい、グリコシル化分子の分子量が約100kDである上記の新規のポリペプチド抗原のことをいう。本明細書により詳細に記載しているように、この抗原は、異なるエピトープを一つより多く有する。本発明の好ましい抗体の実施形態のいくつかは、RAAG10抗原の三つの特異的エピトープうち一つを標的とする。RAAG10は、正常組織を相手にする場合と比較すると、特定のがん細胞上で過剰発現すると現在考えている。
モノクローナル抗体の作製方法は当該技術分野において公知である。利用することができる一方法は、KohlerおよびMilstein、Nature 256:495−497(1975)の方法またはそれを改良した方法である。典型的には、モノクローナル抗体は、マウスなどの非ヒト種で発生させる。通常、免疫化にはマウスまたはラットを使用するが、他の動物を使用してもよい。ヒトRAAG10を含み免疫原性を示す量の細胞、細胞抽出物、またはタンパク質調製物を用いマウスに免疫性を与えることによって抗体が産生する。免疫原は、初代細胞、培養細胞株、がん細胞、核酸、または組織とすることができるが、これに限定されるものではない。一実施形態では、ヒト胎児性膀胱細胞を使用する。別の実施形態では、ヒト膵臓の前駆細胞を使用する。ヒト胎児性膀胱細胞およびヒト膵臓の前駆細胞を単離し培養する方法は、実施例1で詳しく説明する。免疫原、たとえば、ヒト胎児性膀胱細胞またはヒト膵臓の前駆細胞に使用される細胞は、免疫原としてそれらを使用する前に、ある期間(少なくとも24時間)培養してもよい。細胞(たとえば、ヒト胎児性膀胱細胞またはヒト膵臓の前駆細胞)自体を免疫源として、またはリビ(Ribi)などの非変性佐剤と組み合わせて免疫原として使用してもよい。通常、細胞は免疫原として使用するとき、無傷の状態、好ましくは生存可能な状態を維持していなければならない。免疫性付与を受けた動物では、無傷細胞の方が、裂けた細胞よりも良好に抗原を検出することができる。変性剤またはきつい佐剤、たとえばフロイント剤(Freud’s adjuvants)を使用すると、ヒト胎児性膀胱細胞またはヒト膵臓の前駆細胞を破裂させる虞があるため、これらの使用は避ける。免疫原は、複数回、定期的に、たとえば2週毎または毎週投与してもよいし、動物(たとえば組換え組織)内での生存度を維持できるような方法で投与してもよい。抗RAAG10抗体の産生に使用される方法、およびRAAG10に結合する他のモノクローナル抗体の産生に使用することのできる方法を実施例2に記載する。
RAAG10に結合するモノクローナル抗体をスクリーニングするためにいくつかの方法を使用することができる。当然のことながら、「結合」とは免疫学的に関連のある結合、すなわち免疫グロブリン分子がコードされている特定の抗原に特異的である結合のことであり、非特異的標的に対し非常に高い濃度で免疫グロブリンを使用するときに生じると考えられる非特異的結合のことではない。一実施形態では、標準的なスクリーニング技術を用い、RAAG10結合についてモノクローナル抗体をスクリーニングする。このようにして抗RAAG10モノクローナル抗体を得た。ブタペスト条約に従い、2002年4月9日、抗RAAG10モノクローナル抗体を産生するハイブリドーマをアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(ATCC)、10801 ユニバーシティ通り(University Blvd.)、マナッサス、バージニア、20110−2209に保管した。特許管理表示はPTA−4217、PTA−4218、PTA−4244、およびPTA−4245である。
抗RAAG10抗体のキャラクタリゼーションのためにいくつかの方法を使用することができる。一つの方法は、抗体が結合するエピトープを同定することである。エピトープマッピングが種々の販売元、たとえばペプスキャン・システムズ(Pepscan Systems)(エデルヘルトウェグ(Edelhertweg)15、8219、PH レリースタッド(Lelystad)、オランダ)から市販されている。抗RAAG10抗体が結合している配列を決定するのにエピトープマッピングを使用することができる。エピトープは、直鎖エピトープ、すなわちアミノ酸の単一伸張部に含まれるエピトープ、または単一伸張部に必ずしも含まれなくてもよいアミノ酸の3次元的相互作用によって形成されるコンホメーションのエピトープとすることができる。長さの異なるペプチド類(たとえば少なくとも4〜6のアミノ酸長)を単離または合成し(たとえば組み換えによって)、抗RAAG10抗体の結合分析に使用することができる。抗RAAG10抗体が結合するエピトープは、細胞外配列に由来する重複ペプチド類を使用し、抗RAAG10抗体によって結合を決定する系統的なスクリーニングによって決定することができる。RAAG10のエピトープマッピングについては実施例で詳しく説明する。我々は、RAAG10エピトープが一つより多く存在することを突き止めたほか、一つのエピトープに結合する我々の抗体KID13、LUCA1およびGB8、第2のエピトープに結合する我々の抗体SKIN2、PA20、およびKID1、および第3のエピトープに結合する我々の抗体BLA8を決定した。これらの抗体は、同様の固有の結合性および生物学的特徴をもつ新規の抗体群からの例示に過ぎず、これらはすべて本発明の範囲内に特に包含されるものである。
本明細書に開示の方法によって作製されるRAAG10に対するモノクローナル抗体を使用し、卵巣、乳房、肺、前立腺、大腸、腎臓、膵臓、皮膚、甲状腺、脳、心臓、肝臓、胃、神経、血管、骨、および上部消化管を含むがこれらに限定されるものではない種々の組織中のがん細胞の有無を診断目的で同定することができる。本明細書に開示の方法によって作製されるRAAG10に対するモノクローナル抗体を使用し、固形腫瘍から放出された後に血液中を循環するがん細胞の有無またはそのレベルを同定してもよい。このように循環している抗原は、本明細書に教示されている方法に従って検出することのできる状態を保つ無傷RAAG10抗原またはその断片であると考えられる。このような検出は、当該技術分野では一般に使用される標準的な方法を使用し、FACS分析によって実施してもよい。
さらに、本発明は、抗RAAG10抗体、抗RAAG10抗体由来のポリペプチド、抗RAAG10抗体をコードする配列を含むポリヌクレオチド、および本明細書に記載のような他の薬剤を含む薬学的組成物を含む組成物も包含する。本明細書での使用からもわかるように、組成物は、さらに、RAAG10に結合する一つ以上の抗体、ポリペプチドおよび/またはタンパク質、および/またはRAAG10に結合する一つ以上の抗体、ポリペプチドおよびタンパク質をコードする配列を含む一つ以上のポリヌクレオチドを含む。
RAAG10に対するモノクローナル抗体は、がんまたは他の疾病を患う個体に治療目的で使用してもよい。抗RAAG10抗体による治療には、上記記載のようなインビトロおよびインビボでの複合体の形成が伴うと考えられる。一実施形態では、モノクローナル抗体抗RAAG10は、がん細胞に結合し、がん細胞の増殖を減らすことができる。当然のことながら、抗体は、生理学的(たとえばインビボ)条件下での結合を促進する濃度で投与される。別の実施形態では、大腸、肺、乳房、前立腺、卵巣、膵臓、腎臓などの種々の組織のがん細胞および肉腫などその他のタイプのがんに対する免疫療法のために、RAAG10に対するモノクローナル抗体を使用することができる。別の実施形態では、モノクローナル抗体抗RAAG10が単独でがん細胞に結合し、がん細胞にアポトーシス細胞死を引き起こすことができる。別の実施形態では、モノクローナル抗体抗RAAG10は、がん細胞に結合し、転移の進行を遅延させることができる。さらに別の実施形態では、抗RAAG10抗体による対症療法をがん個体に処方する。がん個体に対する対症療法には、疾病の有害な症状、またはがんの進行には直接影響を及ぼさない疾病のために施された他の処置が原因の医原性症状の処置または低減が含まれる。これには、痛み、栄養的補給、性の問題、心理学的な悩み、抑圧、疲労、精神医学的疾患、吐き気、嘔吐などを緩和する処置が含まれる。
免疫原として使用するヒト胎児性膀胱細胞を調製するために、以下の方法を使用した。妊娠週令が14から21週のヒト胎児性膀胱をアラメダ・カウンティ、カリフォルニアのアドバンスド・バイオサイエンス・リサーチ(Advanced Bioscience Research)から得た。膀胱を調達し、組織培地として氷で冷やしながら実験所に輸送した。到着後すぐに、膀胱を20mlの冷却PBSで3回洗った。解剖顕微鏡下で、膀胱周辺の余分な組織を取って膀胱をきれいにし、冷却PBSで2回洗った。かみそりの刃を用い、乾いた100mm培養シャーレの中で膀胱を1mm角に細分化した。10mlのOpti−MEM培地(ギブコBRL、カタログ番号22600)を加えた。PBSに溶かした5%BSAによって予め覆っておいた15ml遠心管へ組織片を5mlピペットで移した。次に組織片を1000×gで5分間遠心分離した。ペレットを6mlのOpti−MEM培地に再懸濁した。以下の成長因子(それぞれ培地1ミリリットル中の最終濃度で示す)を含む3mlのOpti−MEM培地を6ウェルプレートの各ウェルに入れ、そこで組織を培養した:インスリン10μg/ml、トランスフェリン10μg/ml、ビタミンE 5μg/ml、アプロチニン25μg/ml、プロゲステロン3ng/ml、KGF10ng/ml、ヘレグリン5nM、ゲンタマイシン100μg/ml(最初の2日間細胞培養に加えた)。この条件下で、上皮細胞が遊出し、上皮細胞コロニーを形成した。初期の培養物には線維芽細胞の限定的な成長が観察されたが、これらの細胞を短時間トリプシン処理して除去した。注入の3日前に、最終濃度0.05%でトリプシン(ギブコBRL、カタログ番号25300−054)を加え、線維芽細胞を取り出した。
インスリン 10μg/ml
トランスフェリン 10μg/ml
上皮成長因子 5ng/ml
エタノールアミン 10−6M
ホスホエタノールアミン 10−6M
セレン 2.5×10−8M
トリヨードサイロニン 10−12M
プロゲステロン 10−9M
ヒドロコルチゾン 10−9M
フォルスコリン 1μM
ヘレグリン 10nM
アプロチニン 25μg/ml
ウシの下垂体抽出物 75μg/ml
ゲンタマイシン 100μg/ml
再懸濁した細胞集合体を24ウェルシャーレのフィブロネクチン被覆のウェル(6〜12)に分注し、加湿器付の5%CO2インキュベータ中で72時間、摂氏37度でインキュベートした。72時間後、上皮細胞は、浮遊する球状構造体を形成し、間葉細胞または間質細胞がウェルの表面に付着していた。1.2gm/Lの重炭酸塩および10mMのHepesバッファを含むF12/DMEM(50:50)培地に上記のホルモンを追加し、これをフィブロネクチン被覆のプレート(個体群の成長に合わせ12ウェル、次に6ウェル、次に60mm、次に100mmのプレート)上に塗布したものを用い、細胞を1:2の分割比で4日毎に継代培養した。
11から16日培養したヒト胎児性膀胱(HFB)細胞を使用し、モノクローナル抗体を産生させた。免疫原としての注入、および主に継代数3から5の抗体のスクリーニングのためにヒト膵臓前駆(hPED)細胞を使用した。マウス1匹当り約106HFBまたはヒト膵臓前駆細胞を足蹠からBalb/cマウスに週に1度注入した。非変性佐剤(たとえばRibi)を使用した。毎週注入してから6週間後、免疫性を付与された各動物の尾から血液滴を得、FACS分析を使用し、HFBに対する抗体のタイターを検査した。タイターが少なくとも1:2000に達していたマウスをCO2チャンバー内で頚椎脱臼により屠殺した。ハイブリドーマ調製のためにリンパ節を回収した。
抗RAAG10ファミリ抗体、上清の体積を測定し、同量のバインディング・バッファを上清に加えた。この混合物を室温で平衡化させた。上清を0.22μmフィルタに通して濁りを取った。上清はGradiFracシステムを使用して、プロテイン−Gカラム上へ添加した。カラムは5〜10カラム体積のバインディング・バッファで洗浄した。モノクローナル抗体は溶出バッファで溶出し、2mlの画分を集めた。画分はOD280で読み取り、モノクローナル抗体を含んでいる画分をプールした。溶出されたモノクローナル抗体画分は、3Mトリスを1/20体積加えることによって中和した。試料は、4℃で1X PBSの中で透析した(1回当たり少なくとも3時間、3回バッファを交換)。精製したモノクローナル抗体を無菌ろ過し(0.2uM)、2〜8℃で貯蔵した。
抗体BLA8: BLA8が反応した抗原を同定するために、免疫沈降実験を実施した。免疫沈降をするために、濃縮LnCap細胞10mlを、40mlの溶解バッファで溶解した。溶解バッファは、2%トリトンX−100、プロテアーゼ阻害剤カクテル(ロシュ・モレキュラー・バイオケミカルズ(5mlの溶解バッファ当たり、Roche Molecular Biochemicals)のコンプリートminiEDTAフリー・プロテアーゼ・カクテルを1タブレット)、0.1%アジ化ナトリウムおよび2mMのPMSFによって補強されたハンクス平衡塩類溶液(HBSS+)からなるものとした。細胞溶解物を4℃で30分間24,000×gによって濁りを取ってから、2mg/mlのマウスIgGコンジュゲートCNBr 6MBセファロースビーズからなるカラムに通し、ここで溶解物は、事前に不要物が取り除かれるものとする。次に、事前に不要物を取り除いたLnCap溶解物を、BLA8コンジュゲートCNBrセファロース6MBのカラムに通した。BLA8カラムは、膨張したCNBr 6MBセファロースビーズ1ml当たり3mgのBLA8をコンジュゲートさせたものとした。次に、ビーズ(マウスIgGおよびBLA8の両方とも)を、0.1Mグリシン、pH2.5で溶出する前に溶解バッファで3回洗浄した。溶離液は1カラム体積の画分で集め、最終濃度0.1Mのトリス、pH8.0で中和し、最終pHを約7.2にした。次に、中和した画分を、マイクロ濃縮器(ミリポアのCentricon10)によって画分体積の10%にまで濃縮した。次に、濃縮溶離液の10%をSDS−PAGEおよびウェスタンブロット法によって分離した。同時に、溶離液の30%をさらにSDS−PAGEに適している体積に濃縮し、コマシー(Commassie)染色によって分離した。
精製抗体抗RAAG10は、膨張したセファロースビーズ体積1ml当たり2mgのBLA8 mAb濃度とし、製造業者の使用説明書に従って、臭化シアン活性化(CNBr)セファロース4B樹脂(アマーシャム・ファルマシア・バイオテック(Amersham Pharmacia Biotech)、カタログ番号17−0430−01)共有結合であった。新しく成長させたLNCap細胞を30個のコンフルエントなT−175培養フラスコから収集した。細胞は遠心してペレット状にし、溶解バッファの定量をT175フラスコ1個当たり500μlにして、(2%トリトンX−100、プロテアーゼ阻害剤および0.1%のアジ化ナトリウムを含むハンクス平衡塩類溶液(HBSS+))溶解バッファに再懸濁した。細胞はセルスクレーパーでこすって取った。細胞/溶解バッファの懸濁物をボルテックスで混合し、次に、4oCで45分間24,000×gで遠心分離によって濁りを取った。濁りを取った溶解物を取り出し、マウスIgGコンジュゲートCNBrセファロースに4oCで2時間かけ事前に不要物を取り除いた。次に、事前に不要物を取り除いた溶解物を、BLA8 CNBrセファロース・マトリックスに通した。次に、BLA8ビーズを、pH2.5の0.1Mグリシンで溶出する前に、溶解バッファ(少なくとも10カラム体積)で多数回洗浄した。マトリックスは合計で5カラム体積の溶出バッファで溶出した。溶離液は1カラム体積分の画分にして集めた。各ファクションはそれぞれ独立して、セントリコン(centricon)−10濃縮装置(ミリポア、#4206)により、体積が約60μlに達するまで濃縮した。溶離液の10%をSDS−PAGEによって分離し、ウェスタンブロット法によって分析した。残りの90%は、単一のレーン上にロードし、SDS−PAGEおよびコマシー(commassie)染色することによって分離した。コマシー(commassie)染色によって、糖タンパク質に典型的な3本のバンドが100、200、および250+kDa範囲とこれらの周辺とに観察され、最も強いバンドは100kDaバンドで、その次が200kDaバンドで、250kDa+バンドは着色が最も薄かった。これらのバンドは、ウェスタンブロット法によって観察されたバンドに相当し、単一のタンパク質のモノマー(100kDa)型、ホモ二量体(200kDa)型およびホモ三量体(250+kDa)型を示すと理論付けられた。100kDaおよび200kDaのバンドは切除し、質量分光分析に供した。
抗RAAG10抗体が結合する抗原を、実施例4および5に記載のように単離し、MALDI質量分析をした。免疫親和性カラムの溶離液をSDS−PAGEによって分離し、バンドを切除して抽出する。ゲル・スライスは、トリプシンによって「ゲル中」消化する(Gharahdaghi,F.,Weinberg,C.R.,Meagher,D.A.,Imai,B.S.およびMische,S.M.(1999)Electrophoresis20,601−605)。抽出したペプチドを、クラトス(Kratos)、AXIMA CFRのマトリックス支援レーザー脱離/イオン化飛行時間質量分析法(MALDI−Tof)によって分析する。ペプチド質量は100ppm以内で決定し、カーブドフィールドリフレクトロンをもつ時間イオンゲートを利用し、ポストソース分解(PSD)によってペプチドの単離および切断をする。検索は、プロテイン・プロスペクター・プログラム(Protein Prospector Programs)(Clauser K.R.,Baker P.R.およびBurlinganie A.L.,Analytical Chemistry、第71巻、14,2871−(1999))MSFitおよびMSTagによって実施する。
BLA8が反応した抗原を同定するために、免疫沈降(Ippt)実験を実施した。Ipptをするために、濃縮LnCap細胞10mlを、40mlの溶解バッファで溶解した。溶解バッファは、2%トリトンX−100、プロテアーゼ阻害剤カクテル(ロシュ・モレキュラー・バイオケミカルズ(5mlの溶解バッファ当たり、Roche Molecular Biochemicals)のコンプリートminiEDTAフリー・プロテアーゼ・カクテルを1タブレット)、0.1%アジ化ナトリウムおよび2mMのPMSFによって補強されたハンクス平衡塩類溶液(HBSS+)からなるものとした。細胞溶解物を4℃で30分間24,000×gによって濁りを取ってから、2mg/mlのマウスIgGコンジュゲートCNBr 6MBセファロースビーズからなるカラムに通し、ここで溶解物は、事前に不要物が取り除かれるものとする。次に、事前に不要物を取り除いたLnCap溶解物を、BLA8コンジュゲートCNBrセファロース6MBのカラムに通した。BLA8カラムは、膨張したCNBr 6MBセファロースビーズ1ml当たり3mgのBLA8をコンジュゲートさせたものとした。次に、ビーズ(マウスIgGおよびBLA8の両方で)を、0.1Mグリシン、pH2.5で溶出する前に溶解バッファで3回洗浄した。溶離液は1カラム体積の画分で集め、最終濃度0.1Mのトリス、pH8.0で中和し、最終pHを約7.2にした。次に、中和した画分を、マイクロ濃縮器(ミリポアのCentricon10)によって画分体積の10%にまで濃縮した。次に、濃縮溶離液の10%をSDS−PAGEおよびウェスタンブロット法によって分離した。同時に、溶離液の30%をさらにSDS−PAGEに適している体積に濃縮し、コマシー(Commassie)染色によって分離した。
ウェスタンブロットの結果、抗体LUCA1、SKIN2、PA20およびBLA8がすべて同じ抗原にブロットすると思われることが示されたが、この結果を確認するために、LnCap細胞からの精製BLA8抗原を使用して固相プレートELISAを実施した。精製抗原は、ハンクス平衡塩類溶液(HBSS+)に1:25で希釈(ウェル一つにつき50μl)し、NUNCマキソーブ(maxisorb)プレート(VWR)に室温で2時間結合させた。次に、1%BSAを含むHBSS+をウェル一つ当たり200μl用い結合プレートを30分間ブロックした。ブロックした後、LUCA1、SKIN2、PA20、およびBLA8(すべて0.5μg/ウェル、ブロッキングバッファに希釈)を、マキソーブプレートに加え、室温で1時間相互作用させた。マウスIgG、およびLnCap細胞に対して反応性のある無関係な抗体を、負の対照としてウェル一つ当たり同じ濃度にして使用した。プレートをHBSS+で十分洗浄した。次に、0.04μg/ウェルで使用する第2の抗体、西洋わさびペルオキシダーゼ(HRP)コンジュゲートロバ抗マウスIgG(重鎖および軽鎖に特異的)をウェルに加え、室温で30分間インキュベートした。プレートをHBSS+で十分に洗浄し、次に、HRPに基づく色変化反応用のTMB基質に晒した。1Mリン酸を追加(基質に対して1:1)して、この反応を止めた。次に、この反応をO.D.450で読んだ。このELISAによって、LUCA1、SKIN2、PA20およびBLA8はすべて、BLA8抗原に強く反応する(O.D.450は負の対照よりも少なくとも2倍増加)一方、負の対照は、ほとんどまたは全く反応を示さなかった。
我々は、単一の抗原に対する抗体を多数生成してきたので、mAbsのBLA8ファミリの四つの抗体(LUCA1、PA20、SKIN2およびBLA8)間にエピトープの違いがあるのか判断するために実験を始めた。量的に制限があったため、LUCA1、PA20およびBLA8だけをビオチン化した。ビオチン化するために、200ugビオチン/抗体mgの比率のスルホ−NHS−LCビオチンを用い、濃度2mg/mlの各抗体250ugをPBS中で室温で2時間インキュベートした。pH8.0の1Mトリスを最終濃度が100mMになるよう追加することによってビオチン化の反応を停止させた。反応停止のために、室温でさらに20分インキュベートした。次に、ビオチン化済み抗体のバッファをPBSに交換した。
B7H3全長に相補的なDNAのクローニング。 ゲートウェイ(Gateway(商標))pCMV−SPORT6ベクター(インビトロジェン、カールズバッド、カリフォルニア州)に構築されたヒト卵巣癌細胞SKOV3 cDNAライブラリを、標準的なプロトコルを使用してチャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞に形質移入した。細胞表面上にBLA8抗原を発現する形質移入体は、BLA8抗体上で2回「パニングする」ことによって濃縮した。濃縮後、DNAを放出させるために細胞を溶解した。粗溶解物をポリメラーゼ連鎖反応(PCR)によるB7H3クローニング用の鋳型として使用した。つまり、遺伝子バンクで購入できるEST配列に基づいたB7H3のオープン・リーディング・フレーム(ORF)に隣接するように、1対のB7H3特異的プライマー(センス:5’―AGCCGCCTCACAGGAAGATGCT−3’、およびアンチセンス:5’―CCCTGGTCCTCATGGTCAGGCTAT−3’)を設計した。B7H3特異的プライマー各50pmol、無ヌクレアーゼH2O、1X PCRバッファ、dNTP各200μM、および2.5Uプラチナ・ハイフィデリティ・TaqDNAポリメラーゼ(インビトロジェン、カールズバッド、カリフォルニア州)と1.5μl細胞溶解物とを組み合わせることによりPCRを実施した。反応液を2分間94℃でインキュベートし、続いて10秒間94℃での鋳型変性および3分間68℃でのプライマーのアニーリング/伸張を28サイクル、および10分間68℃で最終伸張を実施した。一定分量のPCR生成物を1.2%アガロースゲル上で分離し、臭化エチジウム染色によって可視化した。約1.6kbに優勢なバンドが同定され、これをゲル精製し、pTargeT(商標)哺乳類発現ベクター(プロメガ、マディソン、ウィスコンシン州)へクローン化した。HindIIIを使用し制限酵素断片分析をすることによって形質転換体を特徴づけ、cDNA挿入断片の配向をPCRによって決定した。ヌクレオチド配列を決定するために、同じ制限酵素パターンおよび正確な配向を備えるクローンを選択した。これらのクローンのうち7つから1605bpORFが発見され、これらはすべて、遺伝子バンクで購入できるB7H3 EST配列と重複していた。これらのcDNAクローンをCHO細胞中で発現させた後、BLA8抗体で染色した結果からも、これらcDNAクローンが確定的であることを確認した。
凍結した組織試料をOCT化合物に包埋し、ドライアイスで冷やしたイソペンタンで急速凍結した。ライカ(Leica)3050CMミクトロトーム(mictrotome)で厚さ5μmに凍結切片を切断し、スライドガラス上に解凍標本を作製した。切片を−20℃でエタノールで固定し、室温にて一晩風乾させた。固定した切片を使用するまで−80℃で貯蔵した。免疫組織化学を実施するために、組織切片を戻し、まず、ブロッキングバッファ(PBS、5%正常ヤギ血清)で30分間、室温でインキュベートし、次にブロッキングバッファ(5μg/ml)に希釈した抗RAAG10抗体および対照モノクローナル抗体とともに一晩インキュベートした。次に切片をブロッキングバッファで3回洗浄した。結合モノクローナル抗体を、pH5.05の0.1M酢酸ナトリウムバッファおよび0.003%の過酸化水素(シグマ、カタログ番号H1009)中ヤギ抗マウスIgG+IgM(H+L)F(ab’)2−ペルオキシダーゼコンジュゲートおよびペルオキシダーゼ基質ジアミノベンゼジン(1mg/ml、シグマ、カタログ番号D5637)によって検出した。染色するスライドは、ヘマトキシリンによって対比染色し、ニコンの顕微鏡によって観察した。
モノクローナル抗体抗RAAG10を使用し、異なるタイプの組織からの種々の細胞株について反応性をテストした。プロテアーゼを使用せずに異なる株化細胞系からの細胞を成長表面から除去し、OCT化合物に充填し包埋した。細胞を凍結し、切片化し、次に標準的IHCプロトコルを使用して染色した。セルアレイ(CellArray(商標))技術については、国際公開第WO01/43869号に記載されている。弱い染色陽性の場合「+」、中程度の染色陽性の場合「++」、強い染色陽性の場合「+++」、および染色陰性の場合「−」として、得られた結果を得点化した。種々の細胞株(がん細胞株を含む)への抗RAAG10抗体の結合を示すセルアレイ結合実験からの結果を表6にまとめた。
*CC−−Biowhittaker
(実施例13. 抗RAAG10抗体の腫瘍および正常組織への結合)
外科的切除によって得られる正常組織および腫瘍組織を凍結し、標本にした。ライカ(Leica)3050CMミクトロトーム(mictrotome)で厚さ5μmに凍結切片を切断し、ベクタバウンド(vectabound)−コーティングスライド上に解凍標本を作製した。切片を−20℃でエタノールで固定し、室温にて一晩風乾させた。一次抗体抗RAAG10を1対100(最終濃度1ug/ml)に希釈して使用した。組織切片を回収し、まず、ブロッキングバッファ(PBS、5%正常ヤギ血清)で30分間、室温でインキュベートし、次にブロッキングバッファ(5μg/ml)に希釈した抗RAAG10抗体および対照モノクローナル抗体とともに一晩インキュベートした。次に切片をブロッキングバッファで3回洗浄した。結合したモノクローナル抗体を、pH5.05の0.1M酢酸ナトリウムバッファおよび0.003%の過酸化水素(シグマ、カタログ番号H1009)中でヤギ抗マウスIgG+IgM(H+L)F(ab’)2−ペルオキシダーゼ複合体およびペルオキシダーゼ基質ジアミノベンゼジン(1mg/ml、シグマ、カタログ番号D5637)で検出した。染色するスライドは、ヘマトキシリンによって対比染色し、ニコンの顕微鏡によって観察したPolyMICA(商標)検出キットを使用し、抗RAAG10抗体の結合を判断した。
MAb−ZAP(アドバンスド・ターゲティング・システムズ(Advanced Targeting Systems)、サン・ディエゴ、カリフォルニア州)は、サポリンにコンジュゲートした抗マウスIgGであって、タンパク質合成を阻害する毒素である。この毒素は、細胞膜に不透過性である。モノクローナル抗体が内部移行可能な細胞表面抗原に結合されている場合、毒素−コンジュゲートは、結合されているモノクローナルに結合し内部移行することができ、その結果、細胞を死滅させる。毒性活性を示すには内部移行に依存するので、細胞毒性効果を発現させる内部移行に依存する任意の毒素に対する適切な標的として所定の表面抗原が有効であるのかを判断するにはMAb−ZAPが有用であると考えられる。このように、MAb−ZAPは、メイタンシノイドおよびカリケアマイシンなど上記のような内部移行依存性毒素のモデルとして有用である。
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