JP2010017189A - 前立腺特異的膜抗原に対する修飾抗体およびその使用 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】修飾抗PSMA抗体、又はその抗原結合断片、上記抗体、核酸、組換え発現ベクター並びにこのような抗体及び断片を作製するための宿主細胞を包含する薬剤組成物。ヒトPSMAを検出するため、又はPSMA発現細胞、例えばPSMAを発現する癌若しくは前立腺細胞を除去する若しくは殺すための、in vitro又はin vivoでの本発明の抗体の使用方法。
【選択図】なし
Description
本出願は、米国仮出願第60/295,214号、2001年6月1日出願、第60/323,585号、2001年9月20日出願、および第60/362,810号、2002年3月8日出願に優先権を請求し、これらのすべての内容が本明細書に援用される。本発明は、米国防総省助成金番号DAMD17−98−1−8594のもとに、米国政府と共に行った。米国政府は、本発明に特定の権利を有する。
本発明は、ヒト前立腺特異的膜抗原(PSMA)の細胞外ドメインに対する抗体、例えば修飾抗体、例えば脱免疫(deimmunized)抗体に関し、そして前立腺障害および癌を治療し、防止し、そして診断する際のその使用に関する。
前立腺癌は、米国男性において、癌での最も一般的な死因の1つである。1999年、およそ185,000の新たな症例が診断され、そしてこの疾患で37,500人が死亡した(NCI SEERデータ)。これは、男性で診断される癌すべての約40%を占める。1990年に米国に生まれた男性が、生涯で、臨床的に明らかな前立腺癌と診断される可能性は、およそ8分の1である。発生が近年増加する前であっても、前立腺癌は、男性において、最も蔓延している癌であった(Feldman, A.R.ら (1986) NEJM 315:1394−7)。
(1997) Proc Am Soc Clin Oncol 16:316a(概要);Pienta K.J.ら (1994) J Clin Oncol 12(10):2005−12;Pienta K.J.ら (1997) Urology 50:401−7;Tannock I.F.ら, (1996) J Clin Oncol 14:1756−65;Kantoff P.W.ら, (1996) J. Clin. Oncol. 15 (Suppl):25:110−25)。細胞傷害性化学療法は、この年齢群では許容性が劣っており、そして一般的に、無効であり、そして/または実用的でないとみなされる。さらに、前立腺癌は、細胞傷害性剤に比較的耐性である。したがって、化学療法措置は、この患者群において、有意な生存上の利益があると立証されていない。
0年未満の余命の男性では、注意深く見守るのが適切である(W.J. Catalona, (1994) New Engl. J. Med., 331(15):996−1004)。こうした癌は、検出後、最初の5年間は、まれにしか進行しない。一方、より若い男性では、治癒的治療がしばしばより適切である。
本発明は、とりわけ、ヒト前立腺特異的膜抗原(prostate specific
membrane antigen)(PSMA)の細胞外ドメインに結合する、抗体、および特に修飾抗体、またはその抗原結合断片を提供する。修飾抗PSMA抗体、またはその抗原結合断片は、既定の種、例えばヒトに対するその非修飾対応物と比較して、より低い免疫原性を与える。修飾抗PSMA抗体、またはその断片は、高い親和性および特異性でヒトPSMAに結合し、そしてしたがって、in vivoおよびin vitroで、診断剤、予防剤、または療法剤として使用可能である。したがって、本発明は、抗体、および特に修飾抗PSMA抗体、抗体断片、およびその薬剤組成物と共に、こうした抗体および断片を作成するための核酸、組換え発現ベクターおよび宿主細胞を提供する。
in vitroまたはin vivoいずれかで、PSMAを検出するために、あるいはPSMA発現細胞、例えばPSMA発現癌細胞、前立腺細胞または血管細胞を除去するかまたは殺すために、本発明の抗体を使用する方法もまた、本発明に含まれる。好ましくは、修飾抗体は、J591、J415、J533またはE99抗体由来の1以上の相補性決定領域(CDR)を有するものである。本明細書に論じるように、修飾抗体は、CDR移植抗体、ヒト化抗体、脱免疫抗体、またはより一般的には、非ヒト抗体、例えばマウスJ591、J415、J533またはE99抗体由来のCDR、およびヒトにおいて、より免疫原性でない、例えばマウスCDRが天然に存在するマウスフレームワークより抗原性でないとして選択されるフレームワークを有する抗体であることが可能である。
癌性の前立腺上皮細胞と共に、癌性細胞に近接する血管内皮細胞をターゲッティングすることが可能である。
細胞株に産生される抗体、またはATCC寄託番号PTA−4174を有する細胞株に産生される脱免疫J415抗体の軽鎖または重鎖の可変部由来の、少なくとも1つ、2つ、そして好ましくは3つのCDRを有することが可能である。さらに他の態様において、修飾抗体またはその抗原結合断片は、ATCC寄託番号HB−12127を有する細胞株に産生される抗体、またはATCC寄託番号HB−12101を有する細胞株に産生される抗体の軽鎖または重鎖の可変部由来の、少なくとも1つ、2つ、そして好ましくは3つのCDRを有することが可能である。
表1:CDR配列
i.ヒト軽鎖または重鎖の可変フレームワーク由来の、少なくとも5、10、20、30、40、50、60、70、または80アミノ酸残基、例えば成熟ヒト抗体、ヒト生殖系列抗体配列、またはヒトコンセンサス抗体配列由来の軽鎖または重鎖の可変フレームワーク残基を含む、軽鎖または重鎖の可変フレームワーク;
ii.ヒト軽鎖または重鎖の可変フレームワーク由来の、少なくとも5であるが30未満のアミノ酸残基、例えば成熟ヒト抗体、ヒト生殖系列抗体配列、またはヒトコンセンサス抗体配列由来の軽鎖または重鎖の可変フレームワーク残基を含む、軽鎖または重鎖の可変フレームワーク;
iii.非ヒト抗体、例えばマウス抗体(例えば、配列番号7または8(それぞれ、マウスJ591の重鎖および軽鎖由来;図1Aおよび1Bを参照されたい)、配列番号35または36(それぞれ、マウスJ415の重鎖および軽鎖由来;図5および6を参照されたい)、配列番号109または114(それぞれ、マウスJ533の重鎖および軽鎖由来;図9Aおよび10Aを参照されたい)、あるいは配列番号119または124(それぞれ、マウスE99の重鎖および軽鎖由来;図11Aおよび12Aを参照されたい)に示すフレームワーク・アミノ酸配列を有する抗PSMA抗体)由来の軽鎖または重鎖の可変フレームワーク、あるいは本明細書に記載するマウス抗体(例えば、ATCC寄託番号HB−12126、HB−12109、HB−12127またはHB−12101を有するハイブリドーマ細胞株に産生される、マウスJ591、J415、J533、またはE99抗体)のフレームワーク由来の、少なくとも5、10、20、30、40、50、60、75、またはそれ以上のアミノ酸残基を含む、軽鎖または重鎖の可変フレームワーク;
iv.非ヒト抗体、例えばマウス抗体(例えば、配列番号7または8(それぞれ、マウスJ591の重鎖および軽鎖由来;図1Aおよび1Bを参照されたい)、配列番号35または36(それぞれ、マウスJ415の重鎖および軽鎖由来;図5および6を参照されたい)、配列番号109または114(それぞれ、マウスJ533の重鎖および軽鎖由来;
図9Aおよび10Aを参照されたい)、あるいは配列番号119または124(それぞれマウスE99の重鎖および軽鎖由来;図11Aおよび12Aを参照されたい)に示すフレームワーク・アミノ酸配列を有する抗PSMA抗体)の軽鎖または重鎖の可変部のフレームワークの配列、あるいは本明細書に記載するマウス抗体(例えば、ATCC寄託番号HB−12126、HB−12109、HB−12127またはHB−12101を有するハイブリドーマ細胞株に産生される、マウス抗体)のフレームワークと、少なくとも60%、65%、70%、72%、75%、80%、85%、90%、95%、96%、97%、98%、99%またはそれ以上の同一性を有するか、あるいは、少なくとも1、2、5またはそれ以上の残基、但し10、20、30または40未満の残基が異なるアミノ酸配列を有する、軽鎖または重鎖の可変フレームワーク;あるいは
v.少なくとも5つのアミノ酸置換を有する、非ヒト、例えばマウス、例えばJ591またはJ415軽鎖または重鎖の可変部フレームワーク。
なくとも80%、85%、90%、95%、97%、98%、99%またはそれ以上の同一性を有するアミノ酸配列を有する。他の態様において、修飾抗PSMA抗体の重鎖または軽鎖の可変部は、それぞれ配列番号21または配列番号22、それぞれ配列番号49または配列番号50のアミノ酸配列、あるいはATCC寄託番号PTA−3709またはPTA−4174を有する細胞株に産生される抗体の重鎖または軽鎖の可変部配列と、少なくとも1、2、5、またはそれ以上の残基、但し10、20、30、または40未満の残基が異なるアミノ酸配列を有する。好ましくは、軽鎖または重鎖の可変部には、それぞれ配列番号21または配列番号22、それぞれ配列番号49または配列番号50に示すアミノ酸配列、あるいはATCC寄託番号PTA−3709またはPTA−4174を有する細胞株に産生される抗体の重鎖または軽鎖の可変部配列が含まれる。
換および対応するマウス残基を示し;そして右のパネルは、ヒト生殖系列における対応する位で、最も一般的な残基を示す。
少なくとも5、6、7、または8の置換を有する、フレームワーク領域1;
少なくとも1つの置換を有する、フレームワーク領域2;
少なくとも5、6、7、8、または9の置換を有する、フレームワーク領域3;あるい
は
少なくとも2、3または4の置換を有する、フレームワーク領域4
の1以上が含まれる。
少なくとも1、2または3の置換を有する、フレームワーク領域1;
少なくとも1つの置換を有する、フレームワーク領域2;あるいは
少なくとも1、2または3の置換を有する、フレームワーク領域3
の1以上が含まれる。
抗原結合断片は:残基5(バリン)、40(アラニン)、41(プロリン)、44(グリシン)、82a(セリン)、83(アルギニン)、87(スレオニン)、または108(ロイシン)(表4に示すようなKabat番号付け)からなる群より選択されるヒト重鎖可変フレームワーク由来の、少なくとも1アミノ酸残基を有する。
マウス残基を示し;そして右のパネルは、ヒト生殖系列における対応する位で、最も一般的な残基を示す。
少なくとも4、5、または6の置換を有する、フレームワーク領域1;
少なくとも1、2、または3の置換を有する、フレームワーク領域2;
少なくとも3、4、または5の置換を有する、フレームワーク領域3;あるいは
少なくとも1つの置換を有する、フレームワーク領域4
の1以上が含まれる。
少なくとも1つの置換を有する、フレームワーク領域1;
少なくとも1、2、または3の置換を有する、フレームワーク領域3;あるいは
少なくとも1つの置換を有する、フレームワーク領域4
の1以上が含まれる。
表6:フレームワーク配列
フレームワーク(例えば、それぞれ配列番号8(図1Bを参照されたい)または配列番号36(図6を参照されたい)に示すマウスJ591またはJ415軽鎖フレームワーク、あるいはATCC寄託番号HB−12126または12109を有するハイブリドーマ細胞株に産生される抗体の軽鎖可変フレームワーク)と異なる軽鎖フレームワークを含んでなる、非ヒト軽鎖可変部が含まれる。
残基1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12または13の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基1〜13の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Bにおけるような番号付け);
残基8、9、10、11、12、13、14、15、16、17、18、19または20の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基8〜20の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Bにおけるような番号付け);
残基17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28または29の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基17〜29の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Bにおけるような番号付け);
残基27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38または39の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基27〜39の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Bにおけるような番号付け);
残基30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42または43の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基30〜43の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Bにおけるような番号付け);
残基45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、または57の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基45〜57の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Bにおけるような番号付け);
残基56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、または68の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基56〜68の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Bにおけるような番号付け);
残基71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、ま
たは83の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基71〜83の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Bにおけるような番号付け);
残基73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84または85の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基73〜85の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Bにおけるような番号付け);および
残基94、95、96、97、98、99、100、101、102、103、104、105、または106の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基94〜106の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Bにおけるような番号付け)
からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10個の位で、非ヒト抗PSMA軽鎖可変部、例えばマウスJ591軽鎖可変部(配列番号20またはATCC寄託番号HB−12126を有するハイブリドーマ細胞株に産生される抗体の軽鎖可変部)のフレームワークとは異なる修飾軽鎖フレームワークを含んでなる、修飾非ヒト軽鎖可変部が含まれる。
残基5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、16、17または18の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基5〜18の1以上を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け);
残基11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、または24の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基11〜24の1以上を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け);
残基13、14、15、16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、または26の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基13〜26の1以上を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け);
残基17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、または30の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基17〜30の1以上を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け);
残基27、28、29、30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、または40の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基27〜40の1以上を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け);
残基31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、または44の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基31〜44の1以上を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け);
残基56、57、58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、または69の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基56〜69の1以上を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け);
残基60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、または73の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基60〜73の1以上を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け);
残基70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、または83の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基70〜83の1以上を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け);
残基71、72、73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83または84の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基71〜84の1以上
を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け);
残基73、74、75、76、77、78、79、80、81、82、83、84、85または86の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基73〜86の1以上を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け);
残基76、77、78、79、80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、または92の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基76〜92の1以上を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け);および
残基81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、または94の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基81〜94の1以上を含むT細胞エピトープ(図6におけるような直鎖番号付け)
からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4、5、6、7個の位で、非ヒト抗PSMA軽鎖可変部、例えばマウスJ415軽鎖可変部(配列番号48またはATCC寄託番号HB−12109を有するハイブリドーマ細胞株に産生される抗体の軽鎖可変部)のフレームワークとは異なる軽鎖フレームワークを含んでなる、修飾非ヒト軽鎖可変部が含まれる。
残基2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、または14の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基2〜14の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);
残基10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、または22の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基10〜22の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);
残基16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、または28の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基16〜28の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);
残基30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、または42の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基30〜42の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);
残基32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、43、または44の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基32〜44の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);
残基43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、または55の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基43〜55の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);
残基46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、または58の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基46〜58の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);
残基58、59、60、61、62、63、64、65、66、67、68、69、または70の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基58〜70の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);
残基62、63、64、65、66、67、68、69、70、71、72、73または74の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基62〜74の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);
残基70、71、72、73、74、75、76、77、78、79、80または81
の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基70〜81の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);
残基81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、または93の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基81〜93の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);
残基84、85、86、87、88、89、90、91、92、93、95、または96の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基84〜96の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);
残基91、92、93、95、96、97、98、99、100、101、102、または103の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基91〜103の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け);および
残基100、101、102、103、104、105、106、107、108、109、110、111、または112の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基100〜112の1以上を含むT細胞エピトープ(図3Aにおけるような番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、5、7、10個の位で、非ヒト抗PSMA重鎖可変部(例えば配列番号19のマウスJ591重鎖可変部またはATCC寄託番号HB−12126を有するハイブリドーマ細胞株に産生される抗体の重鎖可変フレームワーク)のフレームワークとは異なる重鎖フレームワークを含んでなる、非ヒト重鎖可変部が含まれる。
残基10、11、12、13、14、15、16、17、18、19、20、21、22または23の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基10〜23の1以上を含むT細胞エピトープ(図5におけるような番号付け);
残基16、17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、または29の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基16〜29の1以上を含むT細胞エピトープ(図5におけるような番号付け);
残基21、22、23、24、25、26、27、28、29、30、31、32、33、または34の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基21〜34の1以上を含むT細胞エピトープ(図5におけるような番号付け);
残基30、31、32、33、34、35、36、37、38、39、40、41、42、または43の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基30〜43の1以上を含むT細胞エピトープ(図5におけるような番号付け);
残基35、36、37、38、39、40、41、42、43、44、45、46、47、または48の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基35〜48の1以上を含むT細胞エピトープ(図5におけるような番号付け);
残基43、44、45、46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、または56の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基43〜56の1以上を含むT細胞エピトープ(図5におけるような番号付け);
残基46、47、48、49、50、51、52、53、54、55、56、57、58または59の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基46〜59の1以上を含むT細胞エピトープ(図5におけるような番号付け);
残基49、50、51、52、53、54、55、56、57、58、59、60、61、または62の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基49〜62の1以上を含むT細胞エピトープ(図5におけるような番号付け);
残基64、65、66、67、68、69、70、71、72、73、74、75、7
6、または77の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基64〜77の1以上を含むT細胞エピトープ(図5におけるような番号付け);
残基80、81、82、83、84、85、86、87、88、89、90、91、92、または93の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基80〜93の1以上を含むT細胞エピトープ(図5におけるような番号付け);
残基86、87、88、89、90、91、92、93、94、95、96、97、98、または99の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基86〜99の1以上を含むT細胞エピトープ(図5におけるような番号付け);および
残基104、105、106、107、108、109、110、111、112、113、114、115、116、または117の1つ以上の、範囲内または隣接する位、あるいは残基104〜117の1以上を含むT細胞エピトープ(図5におけるような番号付け)
からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4、5個の位で、非ヒト抗PSMA重鎖可変部(例えば配列番号47のマウスJ591重鎖可変部またはATCC寄託番号HB−12109を有するハイブリドーマ細胞株に産生される抗体の重鎖可変フレームワーク)のフレームワークとは異なる重鎖フレームワークを含んでなる、非ヒト重鎖可変部が含まれる。
択される、少なくとも1、2、3、4、5、6、または7位で、異なることが可能である。
には:
残基1(グルタミン酸)、2(バリン)、4(ロイシン)、7(セリン)、8(グリシン)、11(ロイシン)、14(プロリン)、15(グリシン)、19(リジン)、20(イソロイシン)、21(セリン)、22(システイン)、および25(セリン)(図3Aに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13アミノ酸を有する、フレームワーク領域1;
残基26(グリシン)、28(スレオニン)、29(フェニルアラニン)、および32(チロシン)(図3Aに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4アミノ酸を有する、CDR1;
残基36(トリプトファン)、37(バリン)、38(アルギニン/リジン)、39(グルタミン)、41(プロリン)、43(リジン)、44(グリシン)、45(ロイシン)、46(グルタミン酸)、および47(トリプトファン)(図3Aに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10アミノ酸を有する、フレームワーク領域2;
51位(図3Aに示すような直鎖番号付け)での少なくとも1つのイソロイシンを有する、CDR2;
残基67(アルギニン/リジン)、73(アスパラギン酸)、75(セリン)、80(チロシン)、85(セリン)、86(ロイシン)、87(アルギニン)、89(グルタミン酸)、90(アスパラギン酸)、91(スレオニン)、92(アラニン)、93(バリン)、94(チロシン)、95(チロシン)、および96(システイン)(図3Aに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14アミノ酸を有する、フレームワーク領域3;
残基100(トリプトファン)および101(アスパラギン)(図3Aに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2アミノ酸を有する、CDR3;または
残基105(トリプトファン)、106(グリシン)、107(グルタミン)、108(グリシン)、109(スレオニン)、112(スレオニン)、113(バリン)、114(セリン)、および115(セリン)(図3Aに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9アミノ酸を有する、フレームワーク領域4
の1以上が含まれる。
ン)、88(システイン)、90(グルタミン)、95(プロリン)、97(スレオニン)、98(フェニルアラニン)、99(グリシン)、101(グリシン)、102(スレオニン)、103(リジン)、105(グルタミン酸/アスパラギン酸)または107(リジン)(図3Bにおけるような直鎖番号付け)の1以上より選択され、そして該残基の1以上より選択される位に位置する、少なくとも、1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、20、30、40、50、60、または70アミノ酸を含んでなる、軽鎖可変部が含まれる。
残基2(イソロイシン)、4(メチオニン)、5(スレオニン)、6(グルタミン)、8(プロリン)、10(セリン)、12(セリン)、14(セリン)、16(グリシン)、17(グルタミン酸/アスパラギン酸)、18(アルギニン)、20(スレオニン)、21(ロイシン)、22(スレオニン)、および23(システイン)(図3Bに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、14、15アミノ酸を有する、フレームワーク領域1;
残基24(リジン)、25(アラニン)、26(セリン)、29(バリン)、30(グリシン)、31(スレオニン)、および33(バリン)(図3Bに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4、5、6、7アミノ酸を有する、CDR1;
残基35(トリプトファン)、36(チロシン)、37(グルタミン)、38(グルタミン)、39(リジン)、40(プロリン)、43(セリン)、44(プロリン)、45(リジン)、47(ロイシン)、48(イソロイシン)、および49(チロシン)(図3Bに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12アミノ酸を有する、フレームワーク領域2;
残基51(アラニン)、52(セリン)、54(アルギニン)、および56(スレオニン)(図3Bに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4アミノ酸を有する、CDR2;
残基59(プロリン)、61(アルギニン)、62(フェニルアラニン)、63(セリン)、64(グリシン)、65(セリン)、66(グリシン)、67(セリン)、68(グリシン)、69(スレオニン)、70(アスパラギン酸)、71(フェニルアラニン)、73(ロイシン)、74(スレオニン)、75(スレオニン)、76(セリン)、77(セリン)、79(グルタミン)、81(グルタミン酸)、82(アスパラギン酸)、85(アスパラギン酸)、86(チロシン)、87(チロシン)、および88(システイン)(図3Bに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、20、21、22、23、24アミノ酸を有する、フレームワーク領域3;
残基90(グルタミン)、95(プロリン)、97(スレオニン)、および98(フェニルアラニン)(図3Bに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4アミノ酸を有する、CDR3;または
残基99(グリシン)、101(グリシン)、102(スレオニン)、103(リジン)、105(グルタミン酸/アスパラギン酸)、および107(リジン)(図3Bに示すような直鎖番号付け)からなる群より選択される、少なくとも1、2、3、4、5、6アミノ酸を有する、フレームワーク領域4
の1以上が含まれる。
型的には標識もしくは療法(例えば細胞傷害性または細胞分裂抑制性)剤に連結することが可能である。分子実体は、例えば別のペプチド、タンパク質(例えば組換えウイルス粒子の例えばウイルスコートタンパク質を含む)、非ペプチド化学的化合物、同位体などであることが可能である。抗PSMA抗体、またはその抗原結合断片を、例えば化学的カップリング、遺伝子融合、非共有結合、または別の方式で、1以上の他の分子実体に、機能可能であるように連結することが可能である。例えば、抗PSMA抗体、またはその抗原結合断片を、蛍光標識、生物学的活性酵素標識、放射性同位体(例えば放射性イオン)、核磁気共鳴活性標識、発光標識、または発色団などの標識にカップリングすることが可能である。他の態様において、抗PSMA抗体、またはその抗原結合断片を、療法剤、例えば細胞傷害性部分、例えば療法薬剤、放射性同位体、植物、真菌、もしくは細菌起源の分子、または生物学的タンパク質(例えばタンパク質毒素)もしくは粒子(例えばウイルスコートタンパク質を介して、例えば組換えウイルス粒子に)、あるいはそれらの混合物にカップリングすることが可能である。療法剤は、細胞内で活性である薬剤または他の剤、例えば本明細書に記載するような、短距離高エネルギーα放射体(エミッター)を含む、短距離放射能放射体であることが可能である。いくつかの好ましい態様において、抗PSMA抗体、またはその抗原結合断片を、植物または細菌起源の分子(またはその誘導体)、例えばメイタンシノイド(例えばメイタンシノールまたはDM1メイタンシノイド、図15を参照されたい)、タキサン、またはカリケアマイシンにカップリングすることが可能である。放射性同位体は、α、β、またはγ放射体、あるいはβおよびγ放射体であることが可能である。療法剤として有用な放射性同位体には、イットリウム(90Y)、ルテチウム(177Lu)、アクチニウム(225Ac)、プラセオジム、アスタチン(211At)、レニウム(186Re)、ビスマス(212Biまたは213Bi)、およびロジウム(188Rh)が含まれる。例えば診断剤で使用するための、標識として有用な放射性同位体には、ヨウ素(131Iまたは125I)、インジウム(111In)、テクネチウム(99mTc)、リン(32P)、炭素(14C)、およびトリチウム(3H)、または上に列挙される療法的同位体の1つが含まれる。また抗PSMA抗体、またはその抗原結合断片を、別の抗体に連結して、例えば二特異性または多特異性抗体を形成することが可能である。
重鎖可変部、例えば本明細書に記載するような修飾重鎖可変部をコードする第一の核酸を提供し;
軽鎖可変部、例えば本明細書に記載するような修飾軽鎖可変部をコードする第二の核酸を提供し;そして
前記の第一の核酸および第二の核酸を、前記軽鎖および重鎖の可変部の発現および組み立てを可能にする条件下で、宿主細胞に導入する
ことを含む。
宿主細胞は、真核細胞、例えば哺乳動物細胞、昆虫細胞、酵母細胞、または原核細胞、例えば大腸菌(E. coli)であることが可能である。例えば、哺乳動物細胞は、培養細胞または細胞株であることが可能である。典型的な哺乳動物細胞には、リンパ球細胞株(例えばNS0)、チャイニーズハムスター卵巣細胞(CHO)、COS細胞、卵母細胞、およびトランスジェニック動物由来の細胞、例えば乳腺上皮細胞が含まれる。例えば、本明細書に記載する修飾抗体をコードする核酸を、トランスジェニック動物において発現することが可能である。1つの態様において、核酸は、組織特異的プロモーター(例えば乳腺特異的プロモーター)の制御下に置かれ、そしてトランスジェニック動物において、抗体が産生される。例えば、抗体分子は、トランスジェニックウシ、ブタ、ウマ、ヒツジ、ヤギまたはげっ歯類などのトランスジェニック動物のミルク中に分泌される。
、そして接触工程は、修飾抗PSMA抗体またはその断片を培地に添加することによって、達成可能である。該方法は、in vivo(例えば療法または予防)プロトコルの一部として、被験者に存在する細胞(例えば前立腺細胞または非前立腺癌性細胞または転移性細胞)に対して行うことが可能である。
該特許の内容は、本明細書に援用される。カリケアマイシンは、例えば、ブロモ複合体カリケアマイシン(例えばアルファ、ベータまたはガンマブロモ複合体)、ヨード複合体カリケアマイシン(例えばアルファ、ベータまたはガンマヨード複合体)、またはその類似体および模倣体(mimics)であることが可能である。ブロモ複合体カリケアマイシンには、α1−BR、α2−BR、α3−BR、α4−BR、β1−BR、β2−BRおよびγ1−BRが含まれる。ヨード複合体カリケアマイシンには、α1−I、α2−I、α3−I、β1−I、β2−I、δ1−Iおよびγ1−BRが含まれる。カリケアマイシン、並びにその突然変異体、類似体および模倣体は、例えば米国特許第4,970,198号、1990年11月13日発行、第5,264,586号、1993年11月23日発行、第5,550,246号、1996年8月27日発行、第5,712,374号、1998年1月27日発行、および第5,714,586号、1998年2月3日発行に記載され、これらの内容は本明細書に援用される。メイタンシノールを、例えばN−スクシンイミジル3−(2−ピリジルジチオ)プロピオネート(N−スクシンイミジル4−(2−ピリジルジチオ)ペンタノエートまたはSPPとしても知られる)、4−スクシンイミジル−オキシカルボニル−a−(2−ピリジルジチオ)−トルエン(SMPT)、N−スクシンイミジル−3−(2−ピリジルジチオ)ブチレート(SDPB)、2−イミノチオレーン、またはS−アセチル無水コハク酸を用いて、抗体にカップリングさせることが可能である。
プロリドおよびフルタミドを併用して、行うことが可能である。
たはその断片を放射性イオン、例えばインジウム(111In)、ヨウ素(131Iまたは125I)、イットリウム(90Y)、ルテチウム(177Lu)、アクチニウム(225Ac)、ビスマス(212Biまたは213Bi)、イオウ(35S)、炭素(14C)、トリチウム(3H)、ロジウム(188Rh)、テクネチウム(99mTc)、プラセオジム、またはリン(32P)とカップリングする。
本発明は、とりわけ、ヒト前立腺特異的膜抗原(PSMA)の細胞外ドメインに対する抗体、例えば修飾抗体、またはその抗原結合断片を提供する。修飾抗PSMA抗体、またはその抗原結合断片は、既定の種、例えばヒトに対するその非修飾対応物と比較して、よ
り低い免疫原性を与えられている。ヒトPSMAは、正常、良性過形成性上皮細胞(例えば良性前立腺分泌腺房上皮)、および癌性前立腺上皮細胞(例えば前立腺上皮内異常増殖および前立腺腺癌)と共に、癌性細胞、例えば腎臓、尿路上皮(例えば膀胱)、精巣、結腸、直腸、肺(例えば非小細胞肺癌)、乳房、肝臓、神経(例えば神経内分泌)、グリア(例えばグリア芽腫)、膵臓(例えば膵管)、黒色腫(例えば悪性黒色腫)、または軟組織肉腫の癌性細胞に近接した血管内皮細胞の表面上に発現される。本発明の抗体、例えば修飾抗体は、PSMAを発現する細胞の細胞表面に結合する。PSMAは、通常、細胞膜から細胞にリサイクルされる。したがって、本発明の抗体は、PSMA再循環過程を通じて、PSMAと共に内部に入り、それによって、抗体にコンジュゲート化した剤、例えば標識剤、細胞傷害性剤、またはウイルス粒子(例えば細胞傷害性剤、例えばアポトーシス促進因子をコードする遺伝子を含有するウイルス粒子)の搬送(delivery)を可能にする。
本明細書において、「PSMA」または「前立腺特異的膜抗原」タンパク質は、哺乳動物PSMA、好ましくはヒトPSMAタンパク質を指す。ヒトPSMAには、その内容が本明細書に援用される、Israeliら (1993) Cancer Res. 53:227−230;Suら (1995) Cancer Res. 55:1441−1443;US 5,538,866、US 5,935,818、およびWO 97/35616に開示されるPSMA cDNAの2つの選択的スプライシングmRNA変異体(それぞれ約2,653ヌクレオチドおよび約2,387ヌクレオチドを含有する)にコードされる2つのタンパク質産物、PSMAおよびPSM’が含まれる。PSMAの長い転写物は、トランスフェリン受容体と配列相同性を有し、そしてNAALADアーゼ活性を有する、II型膜貫通受容体として性質決定される、約100〜120kDa分子量のタンパク質産物をコードする(Carterら (1996) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 93:749−753)。したがって、用語「ヒトPSMA」は、Israeliら (1993) Cancer Res. 53:227−230;Suら (1995) Cancer Res. 55:1441−1443;US 5,538,866、US 5,935,818、およびWO 97/35616に示されるようなアミノ酸配列を有するかまたは該アミノ酸配列に相同である(例えば少なくとも約85%、90%、95%同一である)か;あるいは(a)天然存在(自然発生)ヒトPSMA核酸配列(例えばIsraeliら (1993) Cancer
Res. 53:227−230またはUS 5,538,866);(b)天然存在ヒトPSMA配列に縮重した核酸配列;(c)天然存在ヒトPSMA核酸配列に相同な(例えば少なくとも約85%、90%、95%同一の)核酸配列;または(d)ストリンジェントな条件下、例えば非常にストリンジェントな条件下で、前述の核酸配列の1つにハイブリダイズする核酸配列にコードされる、少なくとも2つのタンパク質産物、ヒトPSMAおよびPSM’を指す。
33の結合を妨げる。該エピトープは、J591、E99、J415、またはJ533抗体に認識されるエピトープに対して、空間的にごく近接していることが可能であるし、または機能的に関連することが可能であり、例えば、直鎖配列中で、またはコンホメーション的に重複するエピトープまたは隣接するエピトープであることが可能である。1つの態様において、抗PSMA抗体は、ヒトPSMAのほぼアミノ酸120〜500、好ましくは130〜450、より好ましくは134〜437、または153〜347の領域内に完全にまたは部分的に位置するエピトープに結合する(アミノ酸残基は、US 5,538,866に開示されるヒトPSMA配列に対応する)。好ましくは、該エピトープには、少なくとも1つのグリコシル化部位、例えば少なくとも1つのN連結グリコシル化部位(例えばヒトPSMAのほぼアミノ酸190〜200、好ましくはほぼアミノ酸195に位置するアスパラギン残基;アミノ酸残基は、US 5,538,866に開示されるヒトPSMA配列に対応する)が含まれる。
する血管内皮細胞を処理して、例えば殺すかまたは除去して、あるいは別の方式で、該血管内皮細胞の特性を変化させることが可能である。抗PSMA抗体の例には、例えば単一特異性抗体、モノクローナル(例えばヒト)抗体、組換え抗体または修飾抗体、例えばキメラ抗体、CDR移植抗体、ヒト化抗体、脱免疫抗体、およびin vitro生成抗PSMA抗体が含まれる。
て好ましくは2つの軽(L)鎖可変部(本明細書においてVLという形に省略する)を含んでなるタンパク質を指す。VHおよびVL領域は、さらに、「フレームワーク領域」(FR)と称される、より保存された領域が点在する、「相補性決定領域」(「CDR」)と称される超可変部に細分されることが可能である。フレームワーク領域およびCDRの範囲は正確に定義されている(本明細書に援用される、Kabat, E.A.ら (1991) Sequences of Proteins of Immunological Interest, 第5版, U.S. Department of Health and Human Services, NIH Publication
No.91−3242、およびChothia, C.ら (1987) J. Mol. Biol. 196:901−917を参照されたい)。好ましくは、各VHおよびVLは、以下の順序:FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3、FR4で、アミノ末端からカルボキシ末端に配置される、3つのCDRおよび4つのFRで構成される。
用語、抗体の「抗原結合断片」(または単に「抗体部分」または「断片」)は、本明細書において、PSMA(例えばヒトPSMA)に特異的に結合する抗体部分、例えば1以上の免疫グロブリン鎖が全長でないが、PSMA(例えばヒトPSMAタンパク質)に特異的に結合する分子を指す。用語、抗体の「抗原結合断片」内に含まれる結合断片の例には(i)Fab断片、VL、VH、CLおよびCH1ドメインからなる一価断片;(ii)F(ab’)2断片、ヒンジ領域でのジスルフィド架橋によって連結される2つのFab断片を含んでなる二価断片;(iii)VHおよびCH1ドメインからなるFd断片;(iv)抗体の単一のアームのVLおよびVHドメインからなるFv断片、(v)VHドメインからなるdAb断片(Wardら, (1989) Nature 341:544−546);および(vi)特異的に結合するのに十分なフレームワークを有する、単離相補性決定領域(CDR)、例えば可変部の抗原結合部分が含まれる。軽鎖可変部の抗原結合部分および重鎖可変部の抗原結合部分、例えばFv断片の2つのドメイン、VLおよびVHを、組換え法を用いて、単一タンパク質鎖として作成可能にする合成リンカーによって、連結することが可能であり、ここで、VLおよびVH領域は対形成して、一価分子を形成する(一本鎖Fv(scFv)として知られる;例えばBirdら (1988) Science 242:423−426;およびHustonら (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85:5879−5883を参照されたい)。こうした一本鎖抗体もまた、用語、抗体の「抗原結合断片」内に含まれると意図される。当業者に知られる慣用的技術を用いて、これらの抗体断片を得て、そして損なわれていない抗体と同一の方式で、有用性に関して、該断片をスクリーニングする。
を無視することが可能である)。好ましい態様において、比較目的のために並列される参照配列の長さは、参照配列の長さの少なくとも30%、好ましくは少なくとも40%、より好ましくは少なくとも50%、さらにより好ましくは少なくとも60%、そしてさらにより好ましくは少なくとも70%、80%、90%、100%である。その後、対応するアミノ酸位またはヌクレオチド位でのアミノ酸残基またはヌクレオチドを比較する。第一の配列の位が、第二の配列において対応する位と同一のアミノ酸残基またはヌクレオチドで占められている場合、該分子はその位で同一である(本明細書において、アミノ酸または核酸「同一性」は、アミノ酸または核酸「相同性」と同等である)。2つの配列間の同一性パーセントは、2つの配列の最適な並列のために導入する必要がある、ギャップの数および各ギャップの長さを考慮した、配列によって共有される同一の位の数の関数である。
特定の置換が許容されうるかどうか、すなわち結合活性などの望ましい生物学的特性に不都合に影響を及ぼさないかどうかは、Bowie, JUら (1990) Science 247:1306−1310に記載されるように決定可能である。「保存的アミノ酸置換」は、アミノ酸残基が、類似の側鎖を有するアミノ酸残基と交換されるものである。類似の側鎖を有するアミノ酸残基のファミリーは当該技術分野において定義されている。これらのファミリーには、塩基性側鎖を有するアミノ酸(例えばリジン、アルギニン、ヒスチジン)、酸性側鎖を有するアミノ酸(例えばアスパラギン酸、グルタミン酸)、非荷電極性側鎖を有するアミノ酸(例えばアスパラギン、グルタミン、セリン、スレオニン、チロシン、システイン)、非極性側鎖を有するアミノ酸(例えばグリシン、アラニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、フェニルアラニン、メチオニン、トリプトファン)、ベータ分岐側鎖を有するアミノ酸(例えばスレオニン、バリン、イソロイシン)、および芳香族側鎖を有するアミノ酸(例えばチロシン、フェニルアラニン、トリプトファン、ヒスチジン)が含まれる。
多くの種類の抗PSMA抗体、またはその抗原結合断片が本発明の方法で有用である。抗体は、IgG(例えばIgG1、IgG2、IgG3、IgG4)、IgM、IgA1、IgA2、IgD、またはIgEを含む、多様なアイソタイプであることが可能である。好ましくは、抗体は、IgGアイソタイプ、例えばIgG1である。抗体分子は全長であることが可能である(例えばIgG1またはIgG4抗体)し、または抗原結合断片のみを含むことが可能である(例えばFab、F(ab’)2、Fvまたは一本鎖Fv断片)。これらには、モノクローナル抗体、組換え抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、脱免疫抗体、およびヒト抗体と共に、前述のものの抗原結合断片が含まれる。
Harbor Laboratory Press, ニューヨーク州コールドスプリングハーバーを参照されたい。
いは新鮮または凍結前立腺腫瘍細胞)の膜分画;単離または精製PSMA、例えばヒトPSMAタンパク質(例えば生化学的に単離したPSMA,またはその一部、例えばPSMAの細胞外ドメイン)が含まれる。PSMAに対する抗体を生成する技術がUS 6,107,090、US 6,136,311に記載され、該特許すべての内容は、明確に本明細書に援用される。
1つの軽鎖が抗PSMA抗体であり、そして他の重鎖および軽鎖が、PSMA以外の抗原、またはPSMAの別のエピトープに特異的である、二官能性抗体を産生可能である。
t EAら、前記)に割り当て可能である。このサブグループのコンセンサス配列に比較したJ415 VKの配列を図8Cに示す。
Human Services, 1991)に割り当て可能である。このサブグループのコンセンサス配列に比較したJ533 VHの配列を図9Bに示す。J533 VKは、マウス・カッパ鎖サブグループIII(Kabat EAら、前記)に割り当て可能である。このサブグループのコンセンサス配列に比較したJ533 VKの配列を図10Bに示す。
VKの配列を図12Bに示す。
表8:抗体可変鎖配列
5,693,762に提供され、これらのすべての内容が本明細書に援用される。これらの方法には、重鎖または軽鎖の少なくとも1つから、免疫グロブリンFv可変部のすべてまたは一部をコードする核酸配列を単離し、操作し、そして発現することが含まれる。こうした核酸の供給源は、当業者に周知であり、そして例えば、上述のように、あらかじめ決定した標的に対する抗体を産生するハイブリドーマから得ることが可能である。その後、ヒト化抗体またはその断片をコードする組換えDNAを、適切な発現ベクターにクローニングすることが可能である。
DRと相互作用可能なアミノ酸残基が含まれる(例えばUS 5,585,089を参照されたい)。ドナーからアミノ酸を選択する規準が、US 5,585,089、例えばUS 5,585,089の12〜16欄に記載され、この内容は本明細書に援用される。アクセプターフレームワークは、成熟ヒト抗体フレームワーク配列またはコンセンサス配列であることが可能である。
抗PSMA抗体、またはその抗原断片はまた、その内容が特に本明細書に援用される、WO 98/52976およびWO 00/34317に開示される方法によって、ヒトT細胞エピトープの特異的欠失または「脱免疫化」によって修飾可能である。簡潔には、抗PSMA抗体のマウス重鎖および軽鎖の可変部を、MHCクラスIIに結合するペプチドに関して解析可能であり;これらのペプチドは、潜在的なT細胞エピトープに相当する(WO 98/52976およびWO 00/34317に定義されるとおり)。潜在的なT細胞エピトープを検出するため、「ペプチドスレッディング」と称されるコンピュータモデリングアプローチが適用可能であり、そしてさらに、WO 98/52976およびWO 00/34317に記載されるように、マウスVHおよびVL配列に存在するモチーフに関して、ヒトMHCクラスII結合ペプチドのデータベースを検索することが可能である。これらのモチーフは、18の主要なMHCクラスII DRアロタイプのいずれかに結合し、そしてしたがって、潜在的なT細胞エピトープを構成する。検出される潜在的なT細胞エピトープは、可変部において、少数のアミノ酸残基を置換することによって、または好ましくは単一アミノ酸置換によって、除去可能である。ありうる保存的置換を作成する限り、排他的にではないが、しばしば、ヒト生殖系列抗体配列中のこの位に一般的なアミノ酸を使用することが可能である。ヒト生殖系列配列は、TomliNS0n, I.A.ら (1992) J. Mol. Biol. 227:776−798;Cook, G.P.ら (1995) Immunol. Today Vol.16(5):237−242;Chothia, D.ら (1992) J. Mol.
Bio. 227:799−817に開示される。V BASEディレクトリは、ヒト免疫グロブリン可変部配列の包括的なディレクトリを提供する(TomliNS0n, I.A.ら MRC Centre for Protein Engineering, 英国ケンブリッジによって編集)。マウスのVHおよびVL遺伝子の突然変異誘発によって、抗PSMA抗体の脱免疫VHおよびVLを構築した後、突然変異誘発した可変配列を、場合によって、ヒト定常部、例えばヒトIgG1またはκ定常部に融合させることが可能である。
CDRと重複する、潜在的なT細胞エピトープを、CDR外部の置換によって除去した。いくつかの場合、CDR内の改変が唯一のオプションであり、そしてしたがってこの置換を含む変異体および含まない変異体を試験すべきである。他の場合、潜在的なT細胞エピトープを除去するのに必要な置換は、抗体結合に重要である可能性があるフレームワーク内の残基位でのものである。これらの場合、この置換を含む変異体および含まない変異体を試験すべきである。したがって、いくつかの場合、いくつかの変異体の脱免疫重鎖および軽鎖の可変部を設計し、そして最適な脱免疫抗体を同定するため、多様な重鎖/軽鎖の組み合わせを試験した。その後、異なる変異体の結合親和性と、脱免疫の度合い、すなわち可変部に残る潜在的なT細胞エピトープの数を組み合わせて考慮することによって、最終脱免疫抗体を選択することが可能である。
1つの態様において、マウスのVHおよびVL遺伝子の突然変異誘発によって、マウスJ591領域の脱免疫VHおよびVLを構築した。マウスJ591可変部配列を図1A〜1Bに示す。マウスJ591重鎖および軽鎖の可変部における潜在的なエピトープ(ペプチドスレッディングプログラムを用いて同定)を、それぞれ、図3Aおよび3Bに示す。MHCクラスIIに結合すると予測される13量体ペプチドを下線で示し、CDRは図3Aの残基26〜35、50〜66、および99〜104、並びに図3Bの残基24〜34、50〜56、および89〜97に位置し、そして脱免疫重鎖および軽鎖の可変部において改変された残基はボックスに入れる。可能な場合、アミノ酸置換は、ヒト生殖系列重鎖および軽鎖の可変部に一般的に用いられるものである。ペプチドスレッディングソフトウェアを用いた、in silico解析に加えて、マウスJ591配列に存在するモチーフに関して、ヒトMHCクラスII結合ペプチドのデータベースを検索した。
5Q(R)Vは、残基2の潜在的なエピトープを除去し;
11,12LV(R)VKは、残基10の潜在的なエピトープを除去し;
12V(R)Kもまた、ヒトMHCクラスII結合ペプチドのデータベース由来のモチー
フを除去するよう変化し;
16,17TS(R)AT、および19R(R)Kは、残基16の潜在的なエピトープを除去し;
残基30のエピトープはCDR1に渡り、そしてしたがって改変せず;
40,41SH(R)APは、残基32および35の潜在的なエピトープを除去し;
44S(R)Gは、43のエピトープに関する結合スコアを減少させ、この13量体はC
DR2に渡り;
残基46、58および62のエピトープはCDR2に渡り、そしてしたがって改変せず;
75,76SS(R)TDは、残基70の潜在的なエピトープを除去し;
82aR(R)S、83T(R)Rは、残基81および84の潜在的なエピトープを除去し;
87S(R)T、この変化は、ヒトMHCクラスII結合ペプチドのデータベース由来の
モチーフを除去するよう作成され;
残基91のエピトープはCDR3に渡り、そしてしたがって改変せず;そして
108T(R)Lは、残基100の潜在的なエピトープを除去する。
0、31、35、45、47、56、60、71、73、81、94であった(図3B)。マウスJ591軽鎖可変部において残基に行う変化の根底にある原理の説明を以下に示す(改変された残基が、Kabat番号付け系に基づいて同定されていることに注目されたい):
3V(R)Qは、残基1の潜在的なエピトープを除去し;
8−11HKFM(R)PSSLは、残基8(13)の潜在的なエピトープを除去し;
20−22SII(R)TLTは、残基17および20の潜在的なエピトープを除去し;
21I(R)Lもまた、ヒトMHCクラスII結合ペプチドのデータベース由来のモチー
フを除去するよう変化し;
残基27のエピトープはCDR1に渡り、そしてしたがって改変せず;
42Q(R)Pは、残基31のエピトープに関する結合スコアを減少させ;
残基44および47のエピトープはCDR2に渡り、そしてしたがって改変せず;
58V(R)Iは、ヒトMHCクラスII結合ペプチドのデータベース由来のモチーフを
除去するよう変化し;
60D(R)S、62T(R)Sは、残基56および60のエピトープを除去し;
76−78TNV(R)SSL、80S(R)P、83L(R)Fは、残基71、73、76お
よび81のエピトープを除去し;
87F(R)YIは、ヒトMHCクラスII結合ペプチドのデータベース由来のモチーフ
を除去するよう変化し;
100A(R)Pおよび103M(R)Kは、残基94のエピトープを除去し;そして
104L(R)Vおよび106L(R)Iは、ヒトMHCクラスII結合ペプチドのデータベース由来のモチーフを除去するよう変化する。
ヒトIgG1またはκ定常部を付加して、そして複合遺伝子をNS0細胞にトランスフェクションして、完全な組換え抗PSMA抗体を産生した。これらの抗体は、元来のマウス抗体と同程度に効率的にPSMA(LNCap細胞上)に結合し、そしてヒトにおいて、減少した免疫原性を有するか、またはまったく免疫原性を持たない。
20L(R)Iは、残基10および16の潜在的なエピトープを除去し;
87N(R)Sは、残基80および86の潜在的なエピトープを除去し;
94、95GI(R)AVは、残基86の潜在的なエピトープを除去し;そして
112L(R)Vは、残基104の潜在的なエピトープを除去する。
13I Aは、残基5、11および13の潜在的なエピトープを除去し;
15V Aは、残基5、11および13の潜在的なエピトープを除去し;
19V−Mは、残基11、13および17の潜在的なエピトープを除去し;
41E−Tは、残基31の潜在的なエピトープを除去し;
63T−Sは、残基56および60の潜在的なエピトープを除去し;
68A−Gは、残基56および60の潜在的なエピトープを除去し;そして
80T−Aは、残基70、71、73、および76の潜在的なエピトープを除去する。
Technologies、カタログ番号:11360−039)を補ったダルベッコの修飾イーグル培地(DMEM)(Life Technologies、カタログ番号:31965−023)である。抗体産生のため、NS0細胞を飽和まで増殖させる際、キサンチンおよびミコフェノール酸を添加せず、そしてFBSを5%に減少させる。
Technologies、カタログ番号:15240)、ゲンタマイシン(Life
Technologies、カタログ番号:15710)、ピルビン酸ナトリウム(Life Technologies、カタログ番号:11360−039)、250μg/mlキサンチン(Sigmaカタログ番号:X−3627、0.5M NaOH中、25mg/mlで、ストックを作成)、および0.8μg/mlミコフェノール酸(Sigmaカタログ番号:M−3536、100%エタノール中、2.5mg/mlで、ストックを作成)を補ったダルベッコの修飾イーグル培地(DMEM)(Life Technologies、カタログ番号:31965−023)である。
産生に関してプレートをスクリーニングした。0.7より高い、高ODを持つウェルから、6つの単一のコロニーを選別して、24ウェル細胞培養プレートに移した。5〜6日以内に、細胞を、25cm2フラスコに拡大した。24ウェルおよび25cm2フラスコ中の飽和培養から、ヒトIgG1/κ ELISAのための以下のプロトコルを用いて、選択したクローンの抗体産生性をアッセイした。
Binding Siteカタログ番号:AU015)を用いて、ウェルあたり100μlでコーティングする。コーティングしたプレートを4℃で一晩または37℃で1時間インキュベーションする。その後、プレートをPBST(0.05%Tween20を含むPBS)で3回洗浄する。ウェルあたり100μl、24ウェルプレートから25μl+75μlのPBSTで、96ウェルプレートに試料を添加する。ブランクウェルをPBSTのみで処理する。反応混合物を室温で1時間インキュベーションする。その後、プレートをPBST(0.05%Tween20を含むPBS)で3回洗浄する。二次抗体、ペルオキシダーゼをコンジュゲートしたヒツジαヒトIgGγ鎖特異的抗体(The Binding Siteカタログ番号:APO04)を、PBST中1:1000の比で、ウェルあたり100μl、添加する。混合物を室温で1時間インキュベーションする。その後、混合物をPBST(0.05%Tween20を含むPBS)で3回洗浄する。
最高の産生性を持つクローンを、75cm2フラスコ中に拡大し、そしてその後、2x175cm2フラスコ中に拡大した。175cm2フラスコの1つ由来の細胞を用いて、5%FBSを含有する非選択DMEMを含有する4x三重層フラスコ(500cm2、Nalge Nunc International)に接種し、他由来の細胞を、以下に詳述するNS0細胞を凍結するプロトコルに詳述されるように凍結した。
を除去する。その後、1/10体積の1M Tris−HCl pH8(Sigmaカタログ番号:T3038)を細胞上清に添加して、これを0.1M Tris−HCl pH8.0にする。0.5〜1mlのProsep A(Milliporeカタログ番号:113 111824)を添加し、そして室温で一晩攪拌する。3000rpmで5分間回転させることによって、Prosep Aを収集し、その後、Biorad Poly−Prepカラム(カタログ番号:73 1−1550)に充填する。カラムを10mlPBSで洗浄し、その後、0.1MグリシンpH3.0で1ml分画に溶出する。100μlの1M Tris−HCl pH8(Sigma、上述のとおり)を含有する試験管に各分画を収集する。各分画の吸光度を280nmで測定する。抗体を含有する分画をプールし、そしてPBSに対して、室温で一晩透析する。0.2ミクロン・シリンジフィルターを通じたろ過によって、調製物を滅菌し、そして各分画の吸光度を280nmで測定する。ヒトIgGに関するELISAによって、抗体濃度を測定する。
上に詳述するようなプロトコルにしたがって、LNCap膜調製への結合に関する、ELISAにおいて、J415脱免疫抗体(脱免疫軽鎖サブユニットおよび脱免疫重鎖サブユニットの多様な組み合わせを含む)を試験した。ELISAプレートをLNCap膜調製物でコーティングし、そしてリン酸緩衝生理食塩水中の5%BSAを用いてブロッキングした。J415キメラ抗体(それぞれ、ヒト重鎖および軽鎖の定常部に融合させたマウス重鎖および軽鎖の可変部)および脱免疫抗体の2倍希釈を適用した。検出には、キメラ抗体およびマウス抗体それぞれに関して、西洋ワサビペルオキシダーゼをコンジュゲートしたヤギ抗ヒトIgGおよびロバ抗マウスを用いた。o−フェニレンジアミン基質を用いて発色させた。
いずれかと組み合わせた際、抗体はまったく産生されなかった。脱免疫J415軽鎖バーション1、2、および3は、構造的グラウンド上で、不全である可能性がある。より高い親和性および減少した免疫原性のための最適な鎖の組み合わせは、DIVH4/DIVK5である。
損なわれていない抗体でない抗PSMA抗体もまた、本発明で有用である。こうした抗体は、上述の抗体のいずれに由来することも可能である。例えば、抗原結合断片と共に、上述の抗体由来の全長単量体、二量体または三量体ポリペプチド自体が有用である。この種の有用な抗体相同体には(i)Fab断片、VL、VH、CLおよびCH1ドメインからなる一価断片;(ii)F(ab’)2断片、ヒンジ領域でのジスルフィド架橋によって連結される2つのFab断片を含んでなる二価断片;(iii)VHおよびCH1ドメインからなるFd断片;(iv)抗体の単一のアームのVLおよびVHドメインからなるFv断片、(v)VHドメインからなるdAb断片(Wardら, (1989) Nature 341:544−546);および(vi)単離相補性決定領域(CDR)、例えば抗原結合断片を提供するのに十分なフレームワークを伴う、1以上の単離CDRが含まれる。さらに、Fv断片の2つのドメイン、VLおよびVHは別個の遺伝子にコードされているが、組換え法を用いて、単一タンパク質鎖として作成可能にする合成リンカーによって、これらを連結することが可能であり、ここで、VLおよびVH領域は対形成して、一価分子を形成する(一本鎖Fv(scFv)として知られる;例えばBirdら (1988) Science 242:423−426;およびHustonら (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85:5879−5883を参照されたい)。こうした一本鎖抗体もまた、用語、抗体の「抗原結合断片」内に含まれると意図される。当業者に知られる慣用的技術を用いて、これらの抗体断片を得て、そして損なわれていない抗体と同一の方式で、有用性に関して、該断片をスクリーニングする。
であるように連結することによって、抗体のVLまたはVH領域をコードする核酸を、それぞれ、全長軽鎖遺伝子または全長重鎖遺伝子に変換することが可能である。ヒト軽鎖および重鎖の定常部遺伝子の配列は当該技術分野に知られる。好ましくは、定常部はヒトであるが、他の種、例えばげっ歯類(例えばマウスまたはラット)、霊長類、ラクダ、ウサギ由来の定常部もまた使用可能である。これらの種由来の定常部が当該技術分野に知られる(例えばKabat, E.A.ら (1991) Sequences of Proteins of Immunological Interest, 第5版, U.S. Department of Health and Human Services, NIH Publication No.91−3242を参照されたい)。
を通じて、検出することが可能である。適切な蛍光物質の例には、ウンベリフェロン、フルオレセイン、フルオレセイン・イソチオシアネート、ローダミン、ジクロロトリアジニルアミン・フルオレセイン、塩化ダンシルまたはフィコエリトリンが含まれ;発光物質の例には、ルミノールが含まれ;そして生物発光物質の例には、ルシフェラーゼ、ルシフェリン、およびエクオリンが含まれる。
本発明の別の側面は、本発明の修飾抗体および抗原結合断片の組換え発現に使用可能な、単離核酸、ベクターおよび宿主細胞組成物に関する。1つの態様において、抗PSMA抗体、例えば修飾抗PSMA抗体(例えば脱免疫J591またはJ415抗PSMA抗体)、またはその抗原結合断片の、それぞれ、重鎖および軽鎖の可変部をコードするヌクレオチド配列を含んでなる、第一の単離核酸および第二の単離核酸を提供する。
軽鎖可変部は、以下の領域を含有する:配列番号25のほぼヌクレオチド261〜329にコードされる、配列番号22のほぼアミノ酸残基1〜23(直鎖番号付け;配列番号13もまた参照されたい)に対応する、FR1ドメイン;配列番号25のほぼヌクレオチド330〜362にコードされる、配列番号22のほぼアミノ酸残基24〜34(直鎖番号付け;配列番号4もまた参照されたい)に対応する、CDR1ドメイン;配列番号25のほぼヌクレオチド363〜407にコードされる、配列番号22のほぼアミノ酸残基35〜49(直鎖番号付け;配列番号14もまた参照されたい)に対応する、FR2ドメイン;配列番号25のほぼヌクレオチド408〜428にコードされる、配列番号22のほぼアミノ酸残基50〜56(直鎖番号付け;配列番号5もまた参照されたい)に対応する、CDR2ドメイン;配列番号25のほぼヌクレオチド429〜524にコードされる、配列番号22のほぼアミノ酸残基57〜88(直鎖番号付け;配列番号15もまた参照されたい)に対応する、FR3ドメイン;配列番号25のほぼヌクレオチド525〜551にコードされる、配列番号22のほぼアミノ酸残基89〜97(直鎖番号付け;配列番号6もまた参照されたい)に対応する、CDR3ドメイン;および配列番号25のほぼヌクレオチド552〜581にコードされる、配列番号22のほぼアミノ酸残基98〜107(直鎖番号付け;配列番号16もまた参照されたい)に対応する、FR4ドメイン。
ぼヌクレオチド429〜524にコードされる、配列番号57のほぼアミノ酸残基57〜88(直鎖番号付け;配列番号43もまた参照されたい)に対応する、FR3ドメイン;配列番号56のほぼヌクレオチド525〜551にコードされる、配列番号57のほぼアミノ酸残基89〜97(直鎖番号付け;配列番号34もまた参照されたい)に対応する、CDR3ドメイン;および配列番号56のほぼヌクレオチド552〜581にコードされる、配列番号57のほぼアミノ酸残基98〜107(直鎖番号付け;配列番号44もまた参照されたい)に対応する、FR4ドメイン。好ましい修飾(脱免疫)抗PSMA J415免疫グロブリン軽鎖可変部(J415DIVK5)のヌクレオチド配列およびアミノ酸配列を、それぞれ、配列番号50および52に示し;J415DIVK5は、J415DIVK1に関して上に示すのと同一の方式で、その構成要素配列に分割することが可能である。
くはその相補体に、本明細書に記載するストリンジェントな条件(例えば非常にストリンジェントな条件)下でハイブリダイズ可能な配列を有する、抗PSMA修飾抗体重鎖可変部ヌクレオチド配列を含んでなる。
有する、抗PSMA修飾抗体軽鎖可変部アミノ酸をコードする。
えば異なるベクター中に含有される。
原核または真核宿主細胞が使用可能である。用語「宿主細胞」および「組換え宿主細胞」は、本明細書において、交換可能に用いられる。こうした用語は、特定の対象細胞のみでなく、こうした細胞の子孫または潜在的子孫も指す。突然変異または環境の影響によって、続く世代に特定の修飾が起こる可能性があるため、こうした子孫は、実際、親細胞に同一でない可能性があるが、それでも、本明細書で用いるような、用語の範囲内に含まれる。宿主細胞は、原核細胞、例えば大腸菌などの細菌細胞、または真核細胞、例えば昆虫細胞、酵母、または好ましくは哺乳動物細胞(例えば培養細胞または細胞株)いずれであることも可能である。他の適切な宿主細胞が当業者に既知である。
(1990) Gene Expression Technology:Methods in Enzymology 185, Academic Press, カリフォルニア州サンディエゴにさらに論じられる。あるいは、例えばT7プロモーター制御配列およびT7ポリメラーゼを用いて、組換え発現ベクターを、in vitroで転写し、そして翻訳することが可能である。
本発明の修飾抗体、またはその抗原結合部分の組換え発現のための典型的な系において、抗体重鎖および抗体軽鎖両方をコードする組換え発現ベクターを、リン酸カルシウム仲介トランスフェクションによって、dhfr−CHO細胞に導入する。組換え発現ベクター内で、抗体重鎖遺伝子および軽鎖遺伝子は、各々、遺伝子の高レベルの転写を駆動する、エンハンサー/プロモーター制御要素(例えばCMVエンハンサー/AdMLPプロモーター制御要素またはSV40エンハンサー/AdMLPプロモーター制御要素など、SV40、CMV、アデノウイルスなどに由来するもの)に機能可能であるように連結されている。組換え発現ベクターはまた、メトトレキセート選択/増幅を用いて、該ベクターでトランスフェクションされているCHO細胞の選択を可能にする、DHFR遺伝子も所持する。選択される形質転換宿主細胞を培養して、抗体重鎖および軽鎖の発現を可能にし
て、そして損なわれていない抗体を培地から回収する。標準的な分子生物学技術を用いて、組換え発現ベクターを調製し、宿主細胞にトランスフェクションし、形質転換細胞を選択し、該宿主細胞を培養し、そして培地から抗体を回収する。
別の側面において、本発明は、組成物、例えば薬剤的に許容しうるキャリアーと共に配合した、本明細書に記載する修飾抗体分子が含まれる、薬剤的に許容しうる組成物を提供する。
う。特定の態様において、活性化合物は、移植物、経皮パッチおよびマイクロカプセルに入れた搬送系を含む、徐放配合物など、迅速な放出に対して化合物を保護するであろうキャリアーと共に調製可能である。エチレン酢酸ビニル、ポリ無水物、ポリグリコール酸、コラーゲン、ポリオルトエステル類、およびポリ乳酸などの、生物分解性、生体適合性ポリマーが使用可能である。こうした配合を調製するための多くの方法が特許されるかまたは当業者に一般的に知られる。例えばSustained and Controlled Release Drug Delivery Systems, J.R. RobiNS0n監修, Marcel Dekker, Inc., ニューヨーク, 1978を参照されたい。
投薬措置を調整して、最適な望ましい反応(例えば療法反応)を提供する。例えば、単一の多量用量(bolus)を投与することが可能であるし、いくつかの分割用量を時間に渡って(over time)投与することが可能であるし、あるいは療法状況の要求に示される
ように、比例して用量を減少させるかまたは増加させることが可能である。投与を容易にし、そして投薬量を均一にするため、非経口組成物を投薬単位型で配合することが、特に好適である。本明細書において、投薬単位型は、治療しようとする被験者の単位投薬量として適している、物理的に別個の単位を指し;各単位は、必要な薬剤的キャリアーと会合した、望ましい療法効果を生じると計算される、あらかじめ決定された量の活性化合物を含有する。本発明の投薬単位型の仕様は、(a)活性化合物の特有の特性および達成しようとする特定の療法効果、並びに(b)こうした活性化合物を治療のために化合する当該技術分野に生得的な、個体における感度の限界によって指定され、そしてこれらに直接応じる。
療法的に有効な量は、個体の疾患状態、年齢、性別、および体重などの要因、並びに抗体または抗体部分が、個体において望ましい反応を引き出す能力に応じて多様である可能性がある。療法的に有効な量はまた、修飾抗体または抗体断片のいかなる有毒または有害な影響も、療法的に有益な効果に圧倒されるものである。「療法的に有効な投薬量」は、好ましくは、未処理被験者に比較して、測定可能なパラメーター、例えば腫瘍増殖率を、少なくとも約20%、より好ましくは少なくとも約40%、さらにより好ましくは少なくとも約60%、そしてさらにより好ましくは少なくとも約80%、阻害する。化合物が測定可能なパラメーター、例えば癌を阻害する能力は、ヒト腫瘍における有効性を予測する、動物モデル系で評価することが可能である。あるいは、組成物のこの特性は、化合物が阻害する能力を調べることによって、in vitroの阻害の場合、当業者に知られるアッセイによって、評価することが可能である。
ことが可能である。
修飾抗体は、in vitroおよびin vivoで、診断的、療法的および予防的有用性を有する。例えば、これらの抗体を、培養中の細胞に、例えばin vitroでまたはex vivoで投与するか、あるいは被験者に、例えばin vivoで投与して、癌(前立腺癌および非前立腺癌)と共に、非癌性前立腺状態(例えば良性過形成性前立腺障害)などの、多様な障害を治療し、防止し、そして/または診断することが可能である。
1つの態様において、本発明は、細胞、例えば前立腺細胞(例えば癌性または非癌性の前立腺細胞、例えば正常、良性または過形成性の前立腺上皮細胞)、または悪性非前立腺細胞、例えば非前立腺固形腫瘍、軟組織腫瘍、または転移性病変に見られる細胞(例えば腎臓、尿路上皮(例えば膀胱)、精巣、結腸、直腸、肺(例えば非小細胞肺癌)、乳房、肝臓、神経(例えば神経内分泌)、グリア(例えばグリア芽腫)、膵臓(例えば膵管)の癌および/または転移、黒色腫(例えば悪性黒色腫)、または軟組織肉腫に見られる細胞)を処理する、例えば除去するかまたは殺す方法を提供する。本発明の方法には、該細胞、または近くの細胞、例えば該細胞に近接する血管内皮細胞を、該細胞を処理する、例えば除去するかまたは殺すのに十分な量の、修飾抗PSMA抗体、例えば本明細書に記載するような修飾抗PSMA抗体と接触させる工程が含まれる。
ト、例えば本明細書に開示する痛みまたは痛みに関連する障害を持つ患者である。例えば被験者は、前立腺疾患、例えば良性前立腺過形成または前立腺癌、あるいは非前立腺癌、例えばPSMAを発現する血管系を有する癌(例えば腎臓、尿路上皮(例えば膀胱)、精巣、結腸、直腸、肺(例えば非小細胞肺癌)、乳房、肝臓、神経(例えば神経内分泌)、グリア(例えばグリア芽腫)、または膵臓(例えば膵管)の癌、黒色腫(例えば悪性黒色腫)、または軟組織肉腫)を有する可能性がある。痛みは、骨の痛みと共に、腫脹する前立腺のための閉塞性排尿症状、例えば排尿躊躇または尿流減少、頻尿または夜間多尿に関連する痛みであることが可能である。本発明の修飾抗PSMA抗体を用いた痛みの治療は、鎮痛薬、例えば麻薬の必要性を減少させるか、または劇的に低下させるか、または除去することさえ可能である。さらに、痛みを減少させることによって、治療法は、動きに関連する痛みの結果、機能不全となっていた、例えば肢の移動度を回復することが可能である。
M1メイタンシノイド、図15を参照されたい)にカップリングすることが可能である。DM1は、メイタンシンのスルフィドリル含有誘導体であり、ジスルフィドリンカーを介して、これを抗体に連結することが可能であり、該リンカーは、標的細胞内部で、DM1を放出する。ジスルフィドリンカーは、他のリンカーより、保管中、および血清中、より高い安定性を示す。メイタンシンは、微小管の形成および現存する微小管の脱重合を妨げることによって、細胞殺傷を達成する細胞傷害性剤である。メイタンシンは、現在臨床的に使用されているドキソルビシン、メトトレキセート、およびビンカ・アルカロイドなどの抗癌剤より、100〜1000倍、より細胞傷害性である。あるいは、抗PSMA抗体、またはその抗原結合断片をタキサン、カリケアマイシン、プロテオソーム阻害剤、またはトポイソメラーゼ阻害剤にカップリングすることが可能である。[(1R)−3−メチル−1−[[(2S)−1−オキソ−3−フェニル−2−[(3−メルカプトアセチル)アミノ]プロピル]アミノ]ブチル]ボロン酸が適切なプロテオソーム阻害剤である。N,N’−ビス[2−(9−メチルフェナジン−1−カルボキサミド)エチル]−1,2−エタンジアミンが適切なトポイソメラーゼ阻害剤である。
r Regressions in Colorectal Tumor Xenografts,” (1996) Cancer Research, 56:3287−3292に記載されており、該文献は本明細書に援用される。
Tら (1995) Clin Cancer Res. 1:1447−1454;Meredith RFら (1996) J Nucl Med 37:1491−1496;Alvarez RDら (1997) Gynecologic Oncology 65:94−101)。
に結合するIgG1、2、または3あるいはIgM由来の部分などの補体結合部位を有する、本発明の修飾抗体分子もまた、補体の存在下で使用可能である。1つの態様において、標的細胞を含んでなる細胞集団を、本発明の結合剤および適切なエフェクター細胞でex vivo処理するのを、補体または補体を含有する血清を添加することによって、補うことが可能である。本発明の修飾抗体またはその断片でコーティングした標的細胞の食作用は、補体タンパク質の結合によって改善可能である。別の態様において、修飾抗体またはその断片でコーティングした標的細胞もまた、補体によって溶解可能である。
本発明にやはり含まれるのは、PSMA関連障害を防止するため、本明細書に記載する抗体、例えば修飾抗体を用いることを伴う、細胞を殺すかまたは除去する方法である。例えば、これらの物質を用いて、前立腺癌または他の癌の発展または進行を防止するかまたは遅延させることが可能である。
皮細胞)の位置を決定する診断法およびイメージング法は、本発明の修飾抗体を使用することによって、非常に改善される。さらに、生存および死亡前立腺細胞を区別する能力は、特定の治療措置の有効性を監視するのに特に好都合である可能性がある。
本明細書に記載する抗PSMA抗体、例えば修飾抗PSMA抗体、またはその抗原結合断片を、他の療法と併用することが可能である。例えば、併用療法には、1以上のさらなる療法剤、例えば1以上の抗癌剤、細胞傷害性剤または細胞分裂抑制性剤、ホルモン治療、ワクチン、および/または他の免疫療法と同時配合され、そして/または同時投与される本発明の組成物が含まれることが可能である。他の態様において、抗PSMA抗体を、手術、放射線療法、凍結手術、および/または熱療法を含む、他の療法治療様式と併用投与する。こうした併用療法は、より低い投薬量で投与される療法剤を好適に利用して、したがって多様な単一療法に関連する、ありうる毒性または合併症を回避することが可能である。
、ホルモン療法(例えば血清テストステロン濃度を減少させるか、またはテストステロン活性を阻害する治療、例えば黄体形成ホルモン放出ホルモン(LHRH)類似体またはアゴニスト(例えばリュープロン、ゾラデックス、ロイプロリド、ブセレリン、またはゴセレリン)またはアンタゴニスト(例えばアバレリクス)の投与)を含む、前立腺癌を治療するための現存する様式の1以上と併用投与可能である。非ステロイド性抗アンドロゲン、例えばフルタミド、ビカルチマド、またはニルタミドもまた、ホルモン療法に使用可能であり、これと共に、ステロイド性抗アンドロゲン(例えば酢酸シプロテロンまたは酢酸メゲストロール)、エストロゲン(例えばジエチルスチルベストロール)、PROSCARTM、二次または三次ホルモン操作(例えばコルチコステロイド(例えばヒドロコルチゾン、プレドニゾン、またはデキサメタゾン)、ケトコナゾール、および/またはアミノグルテチミドを伴う)、5a−レダクターゼ阻害剤(例えばフィナステリド)、ハーブ剤(例えばPC−SPES)、下垂体摘出術、および副腎摘出術も使用可能である。さらに、ホルモン療法は、断続的に、または上記治療のいずれかと併用して、例えばロイプロリドおよびフルタミドを併用して、行うことが可能である。
Cancer Res 3:1277−1288;Frostら (1997) Cancer 80:317−333;Kossmanら (1999) Clin Cancer Res 5:2748−2755)。IL−2は、多量用量または連続注入いずれかで投与することが可能である。したがって、本発明の抗体は、IL−2と併用投与して、その療法能力を最大にすることが可能である。
1つの側面において、本発明は、PSMAタンパク質の存在をin vitroで(例えば癌性組織または前立腺組織由来の組織生検などの生物学的試料において)またはin
vivoで(例えば被験者におけるin vivoイメージングにおいて)検出する診断法を提供する。該方法には:(i)修飾抗PSMA抗体またはその断片と試料を接触させ、または被験者に修飾抗PSMA抗体を投与し;(場合によって)(ii)参照試料、例えば対照試料(例えば血漿、組織、生検などの対照生物学的試料、あるいは対照被験者)を接触させ;そして(iii)抗PSMA抗体、および試料または被験者、あるいは対照試料または被験者間の複合体の形成を検出することが含まれ、ここで、対照試料または対照被験者に比較した、試料または被験者における複合体形成の変化、例えば統計的に有意な変化が、試料中にPSMAが存在する指標となる。
Antibodies for Cancer Detection and Therapy, R.W. Baldwinら(監修), pp 65−85(Academic Press 1985)を参照されたい。あるいは、放射標識が陽電子を放出する場合(例えば11C、18F、15O、および13N)、Brookhaven National LaboratoryにあるPet VIと称するものなどの、陽電子放出横断軸(transaxial)断層撮影スキャナーを用いることが可能である。
り高い波長で実質的な吸収を有するよう、選択すべきである。多様な適切な蛍光化合物および発色団が、本明細書に援用される、Stryer (1968) Science,
162:526およびBrand, L.ら (1972) Annual Review of Biochemistry, 41:843−868に記載される。本明細書に援用される、米国特許第3,940,475号、第4,289,747号、および第4,376,110号に開示されるものなどの慣用法によって、蛍光発色団基で修飾抗体を標識することが可能である。
予防的および療法的治療法両方に関して、こうした治療は、薬理ゲノミクスの分野から得られる知識に基づいて、特別に調整するかまたは修飾することが可能である。「薬理ゲノミクス」は、本明細書において、臨床的開発中の薬剤、および市場にある薬剤に対する
、遺伝子配列決定、統計遺伝学、および遺伝子発現解析などのゲノミクス技術の適用を指す。例えば、Eichelbaum, M.ら (1996) Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 23:983−985およびLinder,
M.W.ら (1997) Clin. Chem. 43:254−266を参照されたい。療法剤の代謝の相違は、薬理学的に活性である薬剤の用量および血中濃度間の関係を改変することによって、重度の毒性または療法的失敗を導く可能性がある。一般的に、2つの種類の薬理遺伝学的状態が区別可能である。薬剤が体に作用する方式を改変する(薬剤作用改変)単一の要因として伝達される遺伝的状態、または体が薬剤に作用する方式を改変する(薬剤代謝改変)単一の要因として伝達される遺伝的状態である。これらの薬理遺伝学的状態は、まれな遺伝子欠陥として、または天然存在多型として、いずれかで生じうる。より具体的には、該用語は、患者の遺伝子が薬剤に対する反応をどのように決定するか(例えば患者の「薬剤反応表現型」または「薬剤反応遺伝子型」)の研究を指す。したがって、本発明の別の側面は、個体の薬剤反応遺伝子型にしたがって、個体の予防的または療法的治療を調整する方法を提供する。
ハイブリドーマE99、J415、J533、およびJ591は、特許手続き上の微生物の寄託の国際的承認に関するブダペスト条約の要件にしたがい、そしてこれを満足して、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(“A.T.C.C.”), 10801 University Boulevard, Manassas, VA 20110−2209に寄託されている。ハイブリドーマE99は、1996年5月2日に寄託され、そしてA.T.C.C.寄託番号HB−12101を得た。ハイブリドーマJ415は、1996年5月30日に寄託され、そしてA.T.C.C.寄託番号HB−12109を得た。ハイブリドーマJ533およびJ591は、1996年6月6日に寄託され、そしてそれぞれ、A.T.C.C.寄託番号HB−12127およびHB−12126を得た。
ション(ATCC), 10801 University Boulevard, Manassas, VA 20110−2209に、2001年9月18日に寄託され、そして寄託番号PTA−3709を割り当てられた。脱免疫J415を産生するNS0細胞株は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクション(ATCC), 10801 University Boulevard, Manassas, VA 20110−2209に、2002年3月21日に寄託され、そして寄託番号PTA−4174を割り当てられた。これらの寄託は、特許手続き上の微生物の寄託の国際的承認に関するブダペスト条約の条件下で維持されるであろう。この寄託は、当業者の便宜としてのみ行われ、そして寄託が35U.S.C.§112下で必要であることの是認ではない。
実施例1.111インジウム、90イットリウム及び177ルテチウムに対する抗PSMA抗体のキレート化
修飾抗PSMAモノクローナル抗体を、111インジウム、90イットリウム又は177ルテチウムで、該抗体の表面に存在する第1級アミンにキレーター1,4,7,10−テトラアザシクロドデカン−N,N',N",N"'−4酢酸(DOTA)の4カルボン酸基の1つを直接カップリングさせる
ことによって放射能標識することができる。次に、DOTAコンジュゲートした抗体(DOTA conjugated antibody)を精製し、滅菌濾過し、バイアルに入れる。使用前に、該精製抗体を、DOTAに結合する望ましい放射能標識と混合することができる。
モノクローナル抗体deJ591を1,4,7,10−テトラアザシクロドデカン−N,N',N",N"'−4
酢酸(DOTA)とコンジュゲートさせ、続いて、111インジウム、90イットリウム及び177ルテチウムで放射能標識した。放射能標識及び品質管理試験を、臨床等級mAb deJ591の3つの個別のバイアルで行なった。
ュゲーション
モノクローナル抗体deJ591を、1,4,7,10-テトラアザシクロドデカン-N,N’,N”,N"'-4酢酸(DOTA)によって次のように修飾した。簡単に説明すると、deJ591 25mgを、24時間の期間にわたって、30 kDa microsep遠心分離濃縮器(Pall Filtron,MA)中で濃縮し、1%DTPA (pH 5.0)5x4mlで洗浄した。次に、抗体緩衝液を、同じ遠心分離手法を用いて、0.1Mリン酸塩(pH7.0)に変えた。水2ml中にDOTA (0.361mmole)146mgとN-ヒドロキシスクシンイミド(0.313mmole)36mgとを溶解して、NaOHでpHを7.3に調節して
から、1-エチル-3-(3-ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド10mgを加えることによ
って、DOTAの活性エステルを調製した(下記参照)。
た。
て分析し、2つの50μlアリコートに、トレーサー量の111Inをスパイクした InCl3(0
.01M HCl)の1.30mM溶液20又は30μlを混合した。混合物を37℃で16時間
インキュベートしてから、シリカゲル含浸ガラス繊維10cmストリップ(ITLC-SG, Gelman, prod.# 61885)及び1%DTPA(pH6.0)の溶離剤を用いて、ITLCによって分析した。抗
体結合活性(antibody bound activity)は最初の状態に(at the origin)留まり、遊離111Inは111In-DTPA複合体として溶媒と共に前方に移動する。111In及び111In -DOTA-J591の相対的量を、0.5のRfでITLCストリップを切断し、2つの半体をNa(Tl)I検出器でカウン
トすることによって測定した。111InとDOTA-deJ591との間のモル反応比率及び、検出された111Inと111In-DOTA-J591との実測比率を考察することによって、結合部位の数を算出する。典型的に、5.1モルのDOTAがdeJ591にコンジュゲートする。表10は、deJ591の2つのコンジュゲーションからの結果を示す。
下記放射能標識手段は、111Inに関して述べるが、例えば90Y は177Luのような他の放射
能標識によっても用いることができる。酢酸アンモニウム緩衝化DOTA-deJ591に111In(希HCl中)を加えることによって、放射能標識を達成した。該抗体に対するオートラジオリシ
スの影響を避けるために、反応時間を最小にし、投与の前に、反応混合物をサイズ排除カラムによって精製した。簡単には、111InCl3(8mCi,0.01M HCl)20μl、DOTA-deJ591 (4mg/ml,0.3M NH4OAc, pH 7)400μlから成る混合物を37℃で20分間反応させた。次に、反応混合物をPBS中無菌1%HSA 4x10ml(HSAはUS認可アルブミンの規格を満たす;Central Laboratory Blood Transfusion Service Swiss Red Cross, Bern, Switzerland,License No. 647製造)で平衡化した16ml Biogel-P6DG カラム(Bio-Rad, CA)上で分離した。反応混合物を該カラムに負荷させた後直ちに、これをさらに2mlの1%HSA PBSで洗浄してから、主要111In-DOTA-deJ591フラクションを5mlの1%HSA PBSで溶出した。次に、精製111In-DOTA-deJ591を滅菌濾過して、滅菌真空バイアルに入れた。この方法を用いて、7.6mCi 111In/mg DOTA-deJ591の比活性を得た。
下記放射能標識手段は、臨床研究及び安定性研究のための111In-DOTA-J591のルーチン
調製に用いることができる。DOTA-J591溶液(8mg/ml,0.3M 酢酸アンモニウム,pH7)
に、111In塩化物及び酢酸アンモニウム緩衝液(1 M)を添加することによって、放射能標識を達成する。該抗体に対するオートラジオリシスの影響を避けるために、反応時間は最小にされている。標識111In-DOTA-J591を、サイズ排除カラムを用いて精製し、0.2mミ
リポア膜フィルターを用いて滅菌濾過してから、患者に投与する。
30分間インキュベートし、該混合物のアリコートを、ITLC (SG及び5mM DTPA,pH5)を
用いて、標識効率を測定するために試験する。結合が最適であるならば(>70%)、10〜40mlの5mM DTPAの添加によって、反応を停止させる。
ション(典型的に5〜8ml)を滅菌容器中に回収する。ITLC(前記と同じ)を用いて放射化学純度を測定した後に、標識効率が>95%である場合には、0.2mフィルターを用いて標識複合体を滅菌バイアル中に濾過する。最終比活性は典型的に3〜5mCi/抗体mgである。
手段は、111Inに関して上述した手段と、インキュベーション時間が10〜15分間で
あることを除いて、同様である。90Y-DOTA-J591の放射化学純度は>97%でなければな
らない。
手段は、2つの変更を除いて、上記手段と同様である。酢酸アンモニウムの添加量は減少し(177Luの各mCiに対して3〜5ml)、インキュベーション時間は僅か5分間である。177Lu-DOTA-J591の放射化学純度は>97%であるべきである。
放射能標識DOTA-deJ591調製物中の遊離111In量を、シリカゲル含浸ガラス繊維サポートと1%DTPA (pH 5.5)の移動相とによるインスタント薄層クロマトグラフィー方法を用い
て評価した。簡単には、放射能標識DOTA-deJ591の一部を10 cm ITLC-SGストリップ (Gelman, prod. # 61885)上にスポットし、1% DTPA (pH 5.5)中で展開した。溶媒の先端が該ストリップの末端に達した直後に、該ストリップを溶媒から取り出し、0.5のRfで切断した。2部分を放射能に関して分析し、次式を用いて、放射化学純度を測定した:
放射化学純度=(Rf 0〜0.5中の放射能(activity))/(ストリップ中の総放射能)
免疫反応性
111In-DOTA-deJ591調製物の免疫反応性を、Lindmo方法(Lindmo T. et al. (1994) J. Immunol. Methods, 72:77-89, 1994)に従って評価した、この方法は、無限に過剰な抗原への放射能標識抗体の結合を推定する。簡単には、250μlの総試験量の0.2%BSA 1
0mM HEPES中に10,000cpmの111In-DOTA-deJ591及び種々な量のLNCaP細胞を含有す
る5種類の試験溶液を調製した(2通りに)。これらの溶液を4oCにおいて60分間インキュベートしてから、単離し(遠心分離によって)、氷冷PBSで洗浄した。次に、膜をガ
ンマーカウンターで、添加した総放射能を示す基準と共にカウントした。データを次に、Lindmo法を用いて、結合した割合の逆数(reciprocal of the fraction bound)(y-軸)に
対する基質濃度の逆数(reciprocal of the substrate concentration)(x-軸)としてプロ
ットした。データを最小二乗線形回帰法(least squares linear regression method)(Sigma Plot)に従ってフィットさせて、yインターセプトを免疫反応性の逆数(reciprocal of the immunoreactivity)と見なした。LNCaP細胞に由来する膜を用いる同様な方法と、その後の該膜の遠心分離単離は、同様な結果を与えた。これらの結果は、72%の平均免疫反応性を与えた(表11参照)。
DOTAコンジュゲートし、部分精製されたバルク中間体deJ591に対して免疫組織化学を行なった。結果は、該調製物が前立腺組織に特異的であり、反応性が、裸の(naked)deJ591抗体と同じであることを示した。
111In-DOTA-deJ591調製物の増殖不能性を、USP 24/NF 19の方法に従ってチオグリコラ
ート培地を用いて測定した。簡単には、111In-DOTA-deJ591調製物の4通りの0.1mlサ
ンプルを15mlの流体チオグリコラート培地に移して、混合物を35℃で14日間インキュベートした。この培地を、4日目、7日目及び14日目に増殖の何らかの徴候に関して目視検査した。3調製物のすべては、増殖を示さなかった(表11参照)。
111In-DOTA-deJ591調製物の内毒素を、USP 24/NF 19に従ってLimulus amebocyte溶解物
(lysate)アッセイを用いて測定した。簡単には、Limulus amebocyte溶解物キット(Bio Whittaker lot # 7L3790,感度0.125EU/ml)を、試験サンプル0.25mlによって再
構成した。4通りの試験サンプル、人為的陽性試験サンプル、陰性対照及び陽性対照を37℃において60分間インキュベートした。陽性結果は、180°反転によって影響されなかった粘性ゲルの形成によって代表された。1つの調製物は、5EU/ml未満の値を示した。このアッセイは、投与直前まで患者投与量に対して繰り返すことができる(及び繰り返されるであろう)。
DOTAコンジュゲートしたdeJ591抗体の大規模製造を下記パラグラフで述べる。上記方法論との主要な相違は、該抗体を濃縮し、ダイアフィルトレーションするためのmicrosep遠心分離濃縮器の代わりの撹拌セル(stirred cell)の使用と、該DOTAコンジュゲートしたdeJ591抗体から未反応のDOTA及び他の試薬を除去するためのSephadex G-25カラムの使用で
あった。これらの変更は、規模の増大によって必要になった。公称1000mg規模に関する出発物質の比率を表12に記載する。この方法は、出発物質の同様な比率を用いて、スケールアップすることができる。
pH 7.1中に該抗体を緩衝液交換することによって、deJ591を調製した。次に、30kDカットオフ膜を備えたStirred Cell Unit(Millipore又は同等物)を用いて、抗体を約10mg/mlに濃縮した。濃縮済み抗体を次に、0.22μmフィルターに通して滅菌濾過した。
DOTA-deJ591のサンプルを、280nmの波長において分光光度計での光学密度によって分析した。これらの算出に用いた吸光係数はA280,E0.1% 1cm=1.4であった。この分析の作用範囲(0.2OD単位〜1.2OD単位、直線、CV2%未満)内の吸光度読取りを与えるように、試験サンプルを適当に希釈した。タンパク質濃度の受容される範囲は、8.0mg/ml±0.5mg/mlである。
DOTA-deJ591のサンプルを、確証済みLimulus Amebocyte Lysate試験(LAL) Gel Clot Assay (BioWhittaker又は同等物)を用いて、発熱性物質に関して試験した。0.06EU/ml 感受性溶解物を用いて、ゲル・クロットアッセイに対するある種の化学物質の阻害レベルを克服するために、分析のための内毒素を含まない水中でサンプルを1:10又は1:25のいずれかで希釈した。加工(processing)中の各緩衝液又は中間体サンプルに関して2通りの測定を行なった、サンプル値は、該緩衝液に対して設定された希釈レベルで得られた値以下である必要があった。すべてのサンプルと共に、陽性及び陰性対照並びに阻害対照を実施した。提案された受容される範囲は、DOTA-deJ591 1mgにつき5EU以下であっ
た。
DOTA-deJ591のアリコートを、流体チオグラート及び大豆−カゼイン・ブロスに直接接種した。14日間のインキュベーション後に、これらの培地を検査した。必然的に、両方の培地は14日間後に増殖を示さなかった。
DOTA-deJ591調製物の免疫反応性を、過剰な抗原の無限量に対する放射能標識抗体の結合を推定するLindmo方法 (Lindmo T. et al.(1994) J. Immunol. Methods 72:77-89)に従って評価した。簡単には、0.2 % BSA 10 mM HEPESの総試験量250μl中に10,000cpmの111インジウム標識DOTA-deJ591及び種々な量のLNCaP細胞又は細胞膜を含有する5種類の試験溶液を調製した(2通り)。これらの溶液を4℃で60分間インキュベートしてから、単離し(遠心分離による)、氷冷PBSで洗浄した。次に、これらの膜をガンマーカウンターで、添加した総放射能を示す基準と共にカウントした。データを次に、Lindmo法を用いて、結合した割合の逆数(y-軸)に対する基質濃度の逆数(x-軸)としてプロットした。データを最小二乗線形回帰法(Sigma Plot)に従ってフィットさせて、yインターセプトを免疫反応性の逆数と見なした。免疫反応性の目標は75%以上であった。
結合DOTA数/抗体を、インジウムの自然発生同位体及び111インジウムによる飽和結合方法を用いて測定した。DOTA-deJ591の複数アリコ−ト(少なくとも2つ)に、10〜30μlの範囲内の種々の量の、トレーサー量の111InをスパイクしたInCl3(0.01 M HCl)の3.0mM溶液を混合した。混合物を37℃で16時間インキュベートしてから、シリカゲル含浸ガラス繊維10cmストリップ(ITLC-SG, Gelman,又は同等物)及び1% DTPA (pH 6.0)の溶離剤を用いて、ITLCによって分析した。抗体結合放射能は最初の状態に留まり、遊離111Inは111In-DTPA複合体として溶媒と共に前方に移動する。111In及び111In -DOTA-J591の相対的量を、0.5のRfでITLCストリップを切断し、2つの半体をNa(Tl)I検出器でカウントすることによって測定した。111InとDOTA-deJ591との間のモル反応比率及び、検出された111Inと111In-DOTA-J591との実測比率を考察することによって、結合部位の数を算出した。DOTA分子/抗体の目標数は4〜6であった。DOTAコンジュゲートしたdeJ591抗体のサンプルロットの分析結果を以下の表13に示す。
に関するDOTAコンジュゲーション数を表14に示す。Lot Biov983.2-2に関するDOTAモル/抗体の平均数は5.06であり、Lot 243101に関しては5.96であった。抗体当りにコンジュゲートしたDOTAモルの数は、Lot 243101に関する方がやや高く、免疫反応性は、表15に示すように、影響されなかった。実際に、Lot 243101の免疫反応性は、比較ロットの免疫反応性よりも高く、このことは有利である。他の小規模臨床的ロットが90%より大きい免疫反応性値を有することは、注目すべきである(データ示さず)。
DOTA-J591イムノコンジュゲート(immunoconjugate)の代替合成は、次の通りである:deJ591 956.5mgを6回ディアフィルトレーションした。該抗体を30kDa microsep
遠心分離濃縮器(Pall Filtron, MA)で、約15mg/mlまで濃縮し、金属を含まない0.1Mリン酸ナトリウム(pH7.1)で12.5倍に希釈した。この手段は6回行なった。
0.1Mの金属を含まないリン酸塩緩衝液5.95ml中のDOTA598mg(1.48mmol)と、0.1Mの金属を含まないリン酸塩緩衝液2.7ml中のN−ヒドロキシスクシンイミド132mg(1.15mmol)とを混合することによって、DOTAの活性エステルを調製した。NaOHによって、pHを6.9〜7.2に調節してから、0.1Mの金属を含まないリン酸塩緩衝液1.45ml中の1−エチル−3−(3−ジメチルアミノプロピル)カルボジイミド144mg(0.75mmol)を添加した。この反応混合物を0.2ミクロン滅菌フィルターに通して濾過して、氷上で1時間冷却してから、deJ591溶液に加えて、2〜8℃で14〜18時間一晩インキュベートした。得られたDOTA-deJ591を、0.3Mの金属を含まない酢酸アンモニウム中で平衡化させたG-25カラムに通して精製することによって、過剰なDOTA及び他の反応物質から分離した。精製コンジュゲートを撹拌セルユニットで10mg/mlにまで濃縮し、0.3M酢酸アンモニウムで洗浄してから、0.22μmフィルターに通しての濾過によって滅菌して、滅菌ポリプロピレンバイアルに入れて2〜8℃において貯蔵した。
7.1)中のJ591抗体10.5mg/ml、Chelex 100 樹脂(抗体10mg当り樹脂1ml)で処理;0.3M酢酸アンモニウム緩衝液(pH7.0)、Chelex 100 樹脂(緩衝液1L当り樹脂20ml)で処理;DOTA-NHS.PF6 (FW 646.4)、Macrocyclics、Dallas、TX。実験方法
:3個のポリプロピレン・バイアルに別々に,J591抗体(10.5mg/ml、143mmol)2.0mlを装入して、氷上で30分間の期間にわたって冷却した。DOTA-NHS3.3mgを、金属を含まない水(Chelex 100樹脂で処理、氷上で30分間予め冷却)0.356ml中に溶解して、14.3nmol/μlの濃度にした。該3抗体溶液に、この新たに調製されたDOTA-NHS溶液70、90及び110μlを別々に加えた。反応混合物を室温において4時間の期間にわたって磁気撹拌バーでゆっくり撹拌し、次に緩衝液交換のために、CentriCon-30中で0.3M酢酸アンモニウム緩衝液(pH7.0、Chelex 100処理)によって、15mlに希釈した。次に、濃縮物(約1.5ml)を再び15mlに希釈してから、1.5mlに濃縮した。これらの濃縮物を次に0.2ミクロンフィルターに通して濾過した。CentriCon管及びフィルターを少量の酢酸アンモニウム緩衝液で洗浄して、最終生成物中に濾過して加えた(それぞれ、総量2ml)。
の代わりに、DOTA-HOBT活性エステルも、例えば、エチルクロロホルメート又はイソブチルクロロホルメート、p−ニトロフェニルエステルの混合無水物の使用のような、当該技術分野で知られた他の活性化方法と同様に、用いることができる。
PSMA陽性ヒトLNCaP腫瘍を有するヌードマウスにおいて、131I又は111Inで放射能標識されたモノクローナルdeJ591及びマウスJ415抗体の薬物動態、生体内分布及び腫瘍取り込みを分析した。放射能標識MAbsの腫瘍内分配を確認するために、オートラジオグラフィー分析を行なった。
1Iによって放射能標識した。111Inの放射能標識に関しては、J415及びdeJ591抗体を最初に1,4,7,10-テトラアザシクロドデカン-N,N’,N",N"'-4酢酸(DOTA)とコンジュゲートさせ、次に111Inで標識して、200MBq/mgの比活性を生じた。
MD)を、10%ウシ胎仔血清を補充したRPMI 1640中、37℃、5%CO2含有雰囲気中で増殖させた。使用前に、細胞をトリプシン処理し、カウントし、Matrigel (Collaborative Biomedical Products, Bedford, MA)中に懸濁させた。生後8〜10週間のNu/Nu Balb C マウスの右及び左側腹部にMatrigel (BD Biosciences, Bedford MA)中の5x106LNCaP細胞の懸濁液を接種した。14〜18日間後に、腫瘍(10〜300mg)が発生した。PSMA陰性DU145 及びPC3細胞をヌードマウスに同じ方法で移植した。
衝液(170mM,pH7.4、2mM CaCl2及び5mM KCl含有)中に15分間浸漬し、tris緩衝液(170mM、pH 7.4)で洗浄し、131I-J591 MAbと共に4℃で1時間インキュベートした。100nM J591 MAbの存在下で非特異的結合を測定した。これらの切片を次に、PBS(0.2% BSA含有)で3回、Tris緩衝液で1回洗浄してから、アセトンで固定し、次に写真用フィルムに暴露した。
LNCaP腫瘍を有するヌードマウスにおいて、131I標識されたdeJ591及びJ415の生体内分布及び腫瘍取り込みを131I-7E11の生体内分布及び腫瘍取り込みと比較した。注入後2日目に、deJ591、J415及び7E11は同じ腫瘍取り込み及び血液プール活性を有した。6日目に、J415の腫瘍取り込み(15.4±1.1)は、deJ591の腫瘍取り込み(9.58±1.1)に比べて有意に高かった。deJ591及びJ415の両方の血液活性は、7E11の血液活性に比べて有意に低かった。131I標識MAbに関して、腫瘍/血液比率及び腫瘍/筋肉比率は、J415ではJ591又は7E11によるよりも有意に高かった。
1.29)の両方の腫瘍取り込み(注入量%/g)は、無関係抗体の取り込み(4.41±
0.40)に比べて有意に高かった。肺、腎臓、筋肉における取り込みは、3種類の抗体
のすべてで同じであった。第2対照研究では、131I-deJ591の腫瘍取り込みを、PSMA陰性前立腺腫瘍(PC3及びDU145)を有するヌードマウスにおいて測定した。注入後4日目に、131I-deJ591の腫瘍取り込みは、PC3腫瘍(n=10)ではわずか0.66±0.07% ID/gであり、DU145腫瘍(n=6)では0.55±0.03%ID/gであった。これとは対照的に、131I-J591の腫瘍取り込みは、PSMA陽性LNCaP腫瘍では11.4±1.49% ID/gであり、これはPSMA陰性腫瘍におけるよりも有意に高かった(p<0.01)。
111Inに関しては、deJ591及びJ415の腫瘍取り込みは、経時的に徐々に上昇し、7E11の
腫瘍取り込みと全く同じであった。J415及びJ591の両方の血液クリアランスの動力学は、7E11に比べてより迅速である。注入後6日目に、J415 (2.63±0.23)及びdeJ591(2.52±0.16)の血液活性は、7E11(4.16±0.21)の血液活性の約50%である。その結果として、J415及びdeJ591による腫瘍/血液比率は、7E11の腫瘍/血液比率に比べて有意に高い。肝臓、脾臓及び腎臓におけるこれら3種類の抗体の取り込みには、軽微な差が存在するに過ぎなかった。
静脈内注入後4〜6日目に、腫瘍試験片(n=20)をヘマトキシリン(H)及びエオシン(E)染色及びオートラジオグラフィーのために回収して、131I標識MAbの腫瘍内生体内分布を研究した。H及びE染色は、研究した試験片のすべてにおいて横断面積の平均50%になる、かなりの量の壊死を明らかにする。オートラジオグラフは、3種類の抗体のすべてに関して焦点的な、幾らか不均質な分布図を明らかにする。興味深いことには、PSMAint及びPSMAextに対するMAbによる生体内分布図は、殆ど逆のパターン(reciprocal pattern)を示す。即ち、7E11(anti-PSMAint)は、明白に、壊死部位への局在を好むが、J415及びJ591(anti-PSMAext)は、生存腫瘍部位内の明白な選択的蓄積を示す。131I-J591を組織切片上で直接インキュベートした場合のex vivoオートラジオグラフィーは、均質な結合パターンを示した。
PSMA陽性LNCaP腫瘍における放射能標識J591及びJ415の局在は、非常に特異的である。
これらの結果は、例えばdeJ591及びdeJ415のようなPSMA特異的インターナリジング抗体(internalizing antibodies)が、PSMA陽性腫瘍の治療のためにβ放射する放射性核種(131I,
90Y, 177Lu) のデリバリーを目標とする新規な治療法の開発のための理想的なMAbでありうることを、明確に実証する。
in vitro及びin vivo動物モデルで、90Y-DOTA-deJ591は実質的な抗腫瘍活性を実証している。これらの研究では、免疫不全“ヌード”マウスにPSMA発現ヒト前立腺癌細胞(LNCaP)を筋肉内移植した。幾つかの研究では、同じ動物の反対側の大腿部にPSMA不在ヒト前立
腺癌系(PC3)を同時移植した。癌を約2週間の期間にわたって“定着”させ、この期間に
、癌は血液供給を発達させて、さらなる増殖を可能にする。治療開始時に、癌移植片は平均すると直径1.0cm(又は動物体重の約5%)になる。
意に長く生存し、平均生存時間(MST)は、対照の40日間に比べて、80〜100日間まで増加した。
癌は治療に反応せず、該治療の特異性を実証する。
177Lu-DOTA-deJ591で治療された、LNCaP腫瘍を有するヌードマウスは、90Y-DOTA-deJ591治療マウスと同様な反応を示した。この研究では、LNCaP腫瘍を有するマウス(300〜400mg)を3群に分割した。対照群は治療を受けなかった。群2は200μCiの177Lu-DOTA-deJ591を受容し、群3は300μCiの177Lu-DOTA-deJ591を受容した。177Lu-DOTA-deJ591は、投与量に依存した形式で、平均腫瘍質量を、この2種類の投与量レベルで80〜97%減ずることができた。対照群は、腫瘍サイズの漸進的増加を示した、これは着実な体重損失を伴なった、該マウスは、低い体質量(body mass)のために53日間までに殺した。200μCiの177Lu-DOTA-deJ591で治療されたマウスは、注入後20日間までに腫瘍収縮を示したが、その後に、幾つかの動物では腫瘍再増殖が見られた。同じ群はまた、注入後20日目に、約90%(基準重量の)の体質量最低を有し、その後、出発質量の100〜105%までの平均体重の着実な上昇を有した。90日目に、11匹のマウスのうちの4匹は触知可能な腫瘍を有さなかった。300μCiの177Lu-DOTA-deJ591で治療されたマウスは、注入後40日間までに腫瘍収縮を有し、その後、幾つかの動物では腫瘍再増殖が見られた。同じ群はまた、注入後20日目に、約90%の体質量最低を有し、その後、出発質量の105〜110%までの平均体重の着実な上昇を有した。90日目に、11匹のマウスのうちの5匹は触知可能な腫瘍を有さなかった。
上昇するPSAレベルと、許容される血液学的機能、肝機能及び腎機能を有するホルモン非依存性患者は、マウスmAbJ591の単回投与量を受容した。投与量は、3〜6患者の群に
おいて段階的に増加した(0.5〜300mg)。各投与量は、“冷(cold)”mAbにプラスして、トレーサーとして10mCi131Iヨウ素で標識されたJ5911.0mg以下を包含した。投与量レベルは、次のように0.5〜300.0mgの範囲であった:0.5mg、1.0mg、2.0mg、5.0mg、10mg、25mg、50mg、100mg、125mg、150mg、200mg、250mg及び300mg。血液及び尿を回収して、薬物動態、毒性及びヒト抗マウス抗体(HAMA)反応をモニターした。患者を注入日(0日)並びに2、4及び6日に造影して、mAbターゲッティングをフォローした。
ターゲッティングは前立腺癌に特異的であり、非癌部位への明らかな局在化はなかった。131I-mJ591の平均有効血清滞留時間は、44.0時間(メジアン47.4時間)であると測定された。評価可能な16患者のうちの8人は、ヒト抗マウス抗体(HAMA)反応を発達させた。即ち、それらの免疫系は、マウス由来抗体の異物性を認識した。1患者のみが、マウス抗体に関連した不利なイベントを有した。この患者は、マウスmAbに対する重度なアレルギー(アナフィラキシー)反応を有し、これは、患者がそれで以前に治療された他の実験薬物の精製に用いられた、マウス抗体への以前(不明)の暴露によるものであると後に判明した。要約すると、33患者をターゲッティングに関して評価した:33患者のうちの27人は陽性の骨スキャンを有し、27人のうちの24人(約90%)は陽性のモノクローン抗体スキャンを有した;33患者のうちの9人は陽性の軟組織(CTスキャン)を有し、これらの9人のうちの8人(約90%)は陽性のモノクローン抗体スキャンを有した。
は、異種由来抗体(foreign species-derived antibody)による反復治療を不可能にする。複数回治療を可能にするために、マウス抗体分子を、異種(マウス)アミノ酸配列を除去して、それらを遺伝学的に既知同種ヒト配列と置換する分子設計手法を用いて、“脱免疫化(de-immunized)”することができる。上述したように、マウスJ591は脱免疫化を受けて、“deJ591”を生じている。
vivoで特異的に標的とし、有意な“不利”局在化及び有意な毒性を示さなかった。
単一患者をmAb deJ591で治療した。この患者は、大きい低分化型前立腺癌を有し、多重コースの外部ビーム・ラジオグラフィー並びに多重形式のホルモン及び非ホルモン化学療法に失敗していた。該患者は個人患者用INDで治療され、5か月間のコースにわたって、
10mg〜200mgの範囲内のdeJ591投与量を全体で12回受容していた。4回投与量(#1、3、6及び11)を、薬物動態測定及び生体内分布のために131ヨウ素及び111インジウムのいずれかでトレース−放射能標識した。131I-deJ591の平均有効血清滞留時
間は、投与量に依存して、31.9〜51.3時間の範囲であった。既知腫瘍部位への腫瘍局在化は、該5か月間にわたる放射能標識投与量の各々の後に良好であった。投与量12回分(dose twelve)を、血液に150rad未満の線量をデリバリーするように算出した治療量の90イットリウム(19mCi)で放射能標識した。この線量は、FDAと相談して決定
されたものであり、外部ビームによって及び131ヨウ素によってデリバリーされる事前の放射能療法を考慮に入れたものであった。この患者では、検出可能なヒト抗脱免疫化(anti-deimmunized)抗体(免疫)応答は発生しなかった。該患者の血小板数は、90Y−DOTA-deJ591投与後5週間目に64,000に低下し(正常:150,000〜300,000)(骨髄への照射(radiation)の予想結果として)、その後、正常レベルに自然に回復した。他の血液学的又は非血液学的毒性は生じなかった。該患者は副作用を経験しなかった。該患者のPSAは、deJ591-DOTA-90Y投与時の63から36に減退した。腫瘍数又はサイズの測定可能な減少は生じなかった。この患者は、90Y-DOTA-deJ591による治療開始後11か月半で、彼の転移前立腺癌のために死亡した。
試験
この実施例は、この遺伝子操作されたmAbのmAbターゲッティング、毒性、薬物動態(PK)及び免疫原性(ヒト抗脱免疫化Ab)を評価するためのdeJ591の臨床試験の結果を述べる。deJ591は、抗体依存性細胞傷害性(ADCC)の強力な仲介体である。PSMAは腫瘍中に、但し、すべての癌の正常でない血管内皮に発現されるので、deJ591の診断的及び治療的有用性は前立腺癌を超えて他の癌にも及びうる。
最初に15患者がこの試験に参加した。13患者は4回の計画投与量のすべてを受容した;2患者は1回以下の投与量を受容した。1患者は、迅速な注入速度のために、彼の初回注入の5分間中に低血圧になった。治療を完了しなかった第2患者は、もはや彼を試験適格者にしなかった、迅速な疾患進行のために1週間後に研究から離脱した。この後者の患者も残りの13人の患者も、如何なる毒性及び副作用を経験しなかった。13患者のうちの10人は、陽性の骨スキャンを示し、10人すべてが骨部位への優れたmAbターゲッティングを実証した。3患者は、CTスキャンによって測定されるような軟組織疾患を有し、2人はこれらの部位へのmAbターゲッティングを実証したが、111In-DOTA-deJ591陰性であった第3患者は、18か月間内にサイズを変化させなかった照射済み骨盤腫瘤(pelvic mass)を有した。非前立腺癌部位へのmAbターゲッティングは認められなかった。患者のいずれも該抗体に対する免疫応答を発生させなかった。deJ591の血漿半減期は投与量によって変化した。
この実施例は、ホルモン不応性前立腺癌を有する患者における、mAbターゲッティング、生体内分布及び薬物動態を評価し、このmAbによる放射免疫療法の抗体投与量を最適化するためのdeJ591の臨床試験の結果を述べる。
111In-DOTA-deJ591注射の0日(注射日)、3及び6日目に全身及びSPECTイメージングを受けた。111In-DOTA-deJ591イメージング結果を、CT、MRI及び骨スキャンと比較した。すべての患者は3回の連続測定で上昇するPSAレベルを示した。
18%)では偽陰性であった。非標的転移部位は、3患者では軟組織中に、1患者では骨及び軟組織の両方に存在した。
では一般に最少であった。生理的部位のなかで、最高の取り込みは肝臓中で観察され、6日目に取り込みは27±1.7%であった。肝臓によって吸収された線量は、111Inでは2.8±0.25rad/mCiであり、90Yでは20.1±2.1rad/mCiであった。111In-DOTA-deJ591 の血漿クリアランス(T1/2)は、34±5時間であった。
111In-DOTA-deJ591に関して実施例8で述べたような、177Lu-DOTA-deJ591によるイメージング研究は、同様な結果を生じている。次の概要は、177Lu及び111Inに関して得られた結果の組み合わせを表す。
“裸の”mAbのトレーサーとして、又は90Y(放射性核種スキャンで造影しない、純粋なβ
エミッター)の投与前の代理イメージング剤として用いた。177Luはγ及びβ粒子の両方
を放出し、直接のイメージングを可能にするので、177Luをイメージング剤及び治療剤の
両方として用いることができる。抗体スキャンを、各患者に対して得られた標準イメージング研究(骨、CT又はMRスキャン)と比較して、転移部位へのdeJ591ターゲッティングの基礎的感度、特異性及び精度を評価した。骨転移及び軟組織転移を独立的に評価した。
再発性/再発した前立腺癌を有する患者の90Y-DOTA-deJ591療法の投与量段階的上昇の
I相試験を行なった。投与量は5mCi/m2から開始し、3〜6患者の群に対して+2.5〜5mCi/m2の増分で段階的に上昇させた。この研究の設計は次のように要約される:111In-DOTA-deJ591の生体内分布を測定し、関連した用量決定を行なうために、該抗体を患者に
投与し、7〜10日後に、90Y-DOTA-deJ591を5.0、10、15、17.5及び20mCi/m2で投与した。すべての投与は、約5mg/分の速度で静脈内注入で行なった。deJ591-DOTAを、90Yの所定投与量に達するために3〜5mCi-90Y/mg抗体の比活性で標識し、残部は“冷”deJ591で総deJ591 20mgにした。投与量は、投与量レベルの間に6〜8週間を置いて投与した。90Y-DOTA-deJ591のその後の投与が考慮された。
この試験の目的は、(1)再発性及び/又は転移性前立腺癌を有する患者における脱免疫化モノクローナル抗体(mAb)、deJ591-DOTA-90イットリウム(90Y)の反復(分割)投与量の毒性及び最大耐量(maximum tolerated dose)(MTD)を明確にすること;(2)deJ591-DOTA-90Yの薬物動態を明確にすること;(3)deJ591-DOTA-90Yに対するヒト抗脱免疫化抗
体免疫応答を明確にすること;及び(4)deJ591-DOTA-90Yの反復(分割)投与量の予備
効力(preliminary efficacy)(反応率)を明確にすることである。
90Y-DOTA-deJ591の結果として2度以上のアレルギー反応を発生させた患者は、もはやDOTA-deJ591を受容せず、毒性に関してフォローされることになる。
後の投与後12週間目に安定であった又は反応した場合には、患者を悪化するまでフォローした。
111In -DOTA-deJ591の注射後、10分間、1、2、4、24時間並びに2、3、4及び7日目に血液サンプルを得た。血液アリコートを既知111In標準と共に測定することによって、血液中注入量%(%I.D.)を算出した。90Y- DOTA-deJ591後に、同じ間隔を置いて、同様な血液サンプルを採取した。血液アリコートを既知111In又は90Y標準と共に測定することによって、血液中の%I.D.を算出した。
NCI CTEP Common Toxicity Criteria (CTC),version2 (April, 1999)を用いた。CTEPはCTCを標準化しているので、NCIは、この資料にCTCを含めることを必要としない。すべて
の治療領域は、CTC version 2.0のコピーにアクセスすることができる。コピーをCTEPウェブサイトからダウンロードすることもできる。
血液学的毒性:4度顆粒球減少症[ANC<500/mm2];4度血小板減少症[血小板数
<10,000/mm2];又はCTCによって定義されるような、熱性好中球減少症若しくは
好中球減少性感染症。他の毒性:90Y-DOTA-deJ591に帰因する3度以上の非血液学的毒性
。
0/6又は1/6患者がDLTを経験し、次に高い投与量レベルを有する2患者以上がDLTを経験する投与量レベルとしてMTDが定義される。MTDにひと度達したならば、その投与量で少なくとも6患者を評価して、投与計画の毒性及び90Y-DOTA-deJ591の薬物動態をより良好に決定すべきである。
mAbの薬物動態及び生体内分布を明確にするためのdeJ591の実際の投与及び関連研究の他に、行なわれた他の介入(実験(labs)、イメージング研究、事務所訪問)は標準的手段である。実験室試験の幾つかは、通常、前立腺癌のセッティング(setting)(例えば、免疫反応レベル)では行なわれない。他の実験室及びラジオグラフィー手段は、前立腺癌を有する患者の管理では標準的であるが、通常よりも大きな頻度で行なうことができる。
前立腺癌の進行は、PSAレベルの上昇、骨スキャンでの新しい病巣、新しい疾患関連症状、及び頻度は低いが、測定可能な軟組織腫瘤サイズの増大によって明らかになる。反応は一般に、生化学的に(PSA変化)又は測定可能な病巣(単数又は複数)のサイズ変化によって評価される。
20患者がこのプロトコールによって治療されており、この20人のうちの19人を現在評価することができる。20患者のすべてが1つ以上の形式のホルモン療法に失敗しており、20患者のうちの11人は少なくとも1つの化学療法計画に失敗していた。その上、患者のすべてが上昇するPSAレベル及び150,000の最小血小板数を有した。
90Y-DOTA-deJ591は、非免疫原性であり(これは反復治療を可能にする)、毒性は用量依存性の可逆的骨髄抑制に限定されている。重要なことには、90Y-DOTA-deJ591は、進行した前立腺癌を有する患者において用量依存性の抗腫瘍効果を有した。I相データは、90Y-DOTA-deJ591の単回投与(20mCi/m2以下)が、前立腺癌の治療のための最適の線量計測法によって安全であることを示唆している。さらに、線量計測法推定値は、多重投与も安全であることを示している。
90Y-DOTA-deJ591を受容した2患者は、放射能標識J591による治療前に上昇するPSAレベルを有した(図13A及び13B参照)。プロット上のX軸は時間(日数)を表す。この軸上の負数は、J591治療前の日数を示す。“0”時点で、患者は治療のための90Y-J591を受容した。グラフは、治療前の急激に上昇するPSAが数週間の治療内に鋭敏なターンをして、その後の長期間(少なくとも10週間)安定になることを実証する。PSAレベルの安定性は、進行性疾患が進行を停止したことを示唆する。高線量の放射能標識J591は、疾患負担の軽減及び/又は腫瘍増殖速度の停止の延長をもたらすことができる。さらに、反復投与も、腫瘍負担の絶対的減少並びに腫瘍増殖速度の停止の実質的延長をもたらすことができる。
脱免疫化mAb deJ591-DOTA-177ルテチウムのI相試験
この実施例は、最終的療法(例えば、手術及び/又は照射)後に再発した前立腺癌を有する及び/又はホルモン非依存性であり、彼らのために標準療法が存在しない対象の臨床研究を述べる。これらの患者のための治療的療法は現在存在しない。その上、この実施例は177Lu標識deJ591を主として扱う。177 Luは、β−エミッター及びγ−エミッターの両方である。このようなものとして、177Luは放射線療法及びイメージングの両方に用いることができる。
患者は、5mg/分以下の注入速度で投与されるdeJ591-DOTA-177Luの投与量を受容した。deJ591の総投与量は、依然として10mg/m2に固定されたままであった。177Lu線量(mCi/m2)は、各線量レベルに関して3〜6患者の群で段階的に上昇した(以下の表15参照)。DeJ591-DOTA-177Luは、所定の線量の177Luに達するように3〜10mCi/mg抗体の比活性で標識したものであり、残部は“冷”deJ591で10mg/m2総deJ591までにした。線量の段階的上昇(escalation)は、現行の線量レベルで少なくとも3患者が重篤な血液学的毒性なく6週間以上フォローされるまで、保留された。1つの線量レベルで最初の3患者のいずれかが6週間までに1度又は2度の血液学的毒性を経験する場合には、回復が始まるまで、又は8週間のさらなるモニターリングと毒性評価が行なわれるまで、段階的上昇は保留された。いずれかの患者が3度又は4度の血液学的毒性を経験する場合には、少なくとも6患者を該線量レベルで参加させて、段階的上昇の前に、少なくとも8週間又は回復が始まるまでフォローする必要があった。いかなる時にも、2例の線量限定毒性(dose-limiting
toxicity)が特定の線量レベルで見られた場合には、該線量レベルでのさらなる参加は停止される。このような場合には、MTDの決定を助けるために、先行線量レベルに少なくとも6患者を参加させるべきである(以下の“毒性”項参照)。
注入後1時間以内(0日目)及びその後2週間内の付加的な少なくとも5時点(例えば、1、3、5、10及び15日目)で、全身画像を得た。適当なコリメーターを装備したデュアル・ヘッドADACガンマカメラを用いて、ガンマカメラ画像を得た。主要器官(心臓、肝臓、脾臓、腎臓、骨髄、GI管及び膀胱)中の注入線量%(%I.D.)を、問題の領域(regions of interest)(ROI)を描画して(drawing)、各器官の相対的カウント及び各器官からのウォッシュアウトの動力学(kinetics of wash out)を測定することによって算出した。時には、SPECT研究を腹、骨盤及び/又は転移病巣が疑われる領域に対して行なった。可能な場合には、177Luの既知標準を用いて、腫瘍塊1g当りの注入線量%を算出した。
NCI CTEP Common Toxicity Criteria (CTC), version 2 (April, 1999)を用いた。CTEPはCTCを標準化しているので、NCIは、この資料内にCTCを含めることを必要としない。 すべての治療領域をCTC version 2.0のコピーにアクセスさせる。コピーをCTEPウェブサイトからダウンロードすることもできる。
血液学的毒性:7日間を超える4度の顆粒球減少症(ANC<500μl)又は4度の血小板減少症(血小板<10,000)。他の毒性:177Lu-DOTA-deJ591に帰因する、3度以上の非血液学的毒性。
不利なイベントとは、原因作用に関係なく、臨床試験中又は治療後4週間に被検患者(research partient)における不都合な医学的発生として定義される。これは、臨床的若し
くは実験室的所見、併発性疾患又は、参加の時点(ベースライン)で存在する疾患若しくは状態の憎悪若しくは悪化を包含する。不利なイベントは、重篤な基準(以下参照)のいずれをも満たさない場合には、重篤ではない。
すべての臨床的不利なイベント及び異常な実験的値を、実験的作用因子に対する可能な関係に関して評価した。原因作用/帰因の下記カテゴリー:明確、推定、可能、見込みなし、及び無関係を用いる。
この試験では、先在状態(即ち、不利なイベントを報告する期間が始まる前に存在する障害)は、状態が悪化しない限り又は不利なイベントを報告する期間中にエピソードの頻度が増加しない限り、不利なイベントとして報告しない。
各不利なイベントは、重篤な又は非重篤な、及び予測された又は予測されないとして分類した。不利なイベントは、それが死亡を生じた;それが生命をあやふくした(即ち、対象を死の直接の危険にさらした、遭遇された不利なイベント;より重症になった場合に、仮説的に死を生じたと思われる不利なイベントには該当しない);それが入院(in-patient hospitalization)を必要とした又は延長した;それが持続の又は重大な障害又は無能を生じた;及びそれが先天的な異常/先天性欠損を生じた場合には、重篤として分類された。
毒性には、Common Toxicity Criteriaスケール又は下記を用いた、0〜4のスケールで等級を付けた:
(1)0=非毒性。
(2)1=弱毒性、通常一過性、特別な治療を必要とせず、一般に患者の活動を妨害しない。
(3)2=簡単な治療手段によって改良することができる、中程度の毒性;通常の活動を損なう。
(4)3=治療の介入を必要とし、通常の活動を妨害する、重度の毒性;入院を必要とすることもしないこともある。
(5)4=入院を必要とする、生命をあやふくする毒性。
(6)5=致命的毒性。
前立腺癌は、PSAレベルの上昇、骨スキャンでの新しい病巣、新しい疾患関連症状及び
頻度は低いものの、測定可能な軟組織腫瘤サイズの増大によって明らかになる。反応は、
一般に、生化学的に(PSA変化)又は測定可能な病巣(単数又は複数)のサイズの変化に
よって評価される。
て:完全な反応は、物理的な検査又はイメージング研究による、すべての測定可能な病巣の完全な消失と、2か月間を越えて新しい病巣の出現のないこととして定義される。部分的反応は、すべての測定可能な病巣の最長垂線直径の積の合計の50%以上の減少として定義される。新しい病巣は存在しえない。安定な疾患:部分的反応の基準を満たさず、2か月間を越えて進行性疾患の徴候のない患者。進行性疾患は、測定不能な(immeasurable)病巣の最長垂線直径の積の合計の25%を超える増加、新しい病巣の出現又は治療前ベースラインを超える前立腺特異的抗原の増加として定義される。
反応の持続期間は、治療開始から悪化がPSAの上昇、測定可能な病巣(単数又は複数)の
拡大又は骨スキャンでの新しい病巣(単数又は複数)によって立証されるまでの時間間隔である。PSA上昇は、PSAの第2連続上昇によって確認されなければならず、持続期間は治療開始からPSAの最初の上昇までの時間として定義される。
CT/Boneスキャンで立証された前立腺癌病巣とPSAレベル上昇とを有するホルモン不応性患者を、I相線量段階的上昇(10〜75mCi/m2)研究に参加させた。すべての患者が1種類以上のホルモン療法に失敗していた。
血液サンプルを2週間採取し、同じ2週間に5回イメージング研究を行なった。血液化学、血液学及びPSAレベルを3か月間以上モニターした。
髄への線量は0.7rad/mCiである。177Lu-DOTA-deJ591の血漿 T1/2は、43±11時間であった。血液化学、肝機能及び腎機能に有意な変化は見られなかった。種々な線量レベルで血液学的変化が観察されたが、60mCi/m2 線量レベルにおいてさえも、重大な毒性は見られなかった。
15mCi/m2(3患者)及び30mCi/m2(3患者)のレベルで受容した。すべての患者が1種類以上のホルモン療法に失敗しており、1患者(17%)は少なくとも1つの化学療法計画に失敗していた。毒性は最低であり、2度又は3度の不利なイベントを有する患者はなく、毒性は、可逆的な骨髄抑制、本来の血小板減少症に限定された。いずれの患者も177Lu-DOTA-J591に対して免疫反応を発生させなかった。
177Lu-J591は非免疫原性(これは、反復治療を可能にすると考えられる)であり、これまで用いられた投与量において低毒性を有する。177Lu-J591は、進行した前立腺癌を有する患者において用量関連抗腫瘍効果を有する。約20mCi/m2であると推定される最大耐量を有する90Y-DOTA-deJ591とは対照的に、177Lu-DOTA-deJ591は30mCi/m2線量レベルにおいても安全である。177Lu-DOTA-deJ591は、131I-DOTA-deJ591(in vivoで脱ハロゲン化され、取り込まれるmAbのためには理想的ではない)及び90Y-DOTA-deJ591の両方に関連した欠点を除去するように思われる。腫瘍組織中の177Lu-DOTA-deJ591の長い滞留時間も、抗腫瘍反応を増強することができる。
免疫組織化学的研究は、前立腺上皮細胞の他に、無数の充実性腫瘍の血管内皮細胞によってもPSMAが発現されるが、良性組織における正常な血管内皮によっては発現されないことを示す。上述したように、PSMAのこの発現パターンは、実際にあらゆる充実性腫瘍において生じる。
を測定し、免疫原性に関して評価するために、111In-DOTA-deJ591のIRB認可I相用量段階的上昇試験を開始した。適格な患者は、その腫瘍タイプが新生脈管構造(neovasculate)上にPSMAを発現することが知られている難治性充実性腫瘍悪性度(refractory solid tumor malignancies)を有する患者である。
該研究に参加した患者は、8人の腎細胞癌患者、4人の膀胱癌患者、2人の結腸癌患者、及び1人の膵臓癌患者を包含した。すべての患者が、111In-DOTA-deJ591注入から0日目(注入日)、2、5及び7日目に全身及びSPECTイメージングを受けた。111In-DOTA-deJ591イメージング結果をCTスキャン及び骨スキャンと比較した。
1人、膵臓癌1人及び腎細胞癌1人)では偽陰性であった。非標的転移部位は、肝臓、腎臓床(renal bed)、膵臓、肺、及び腹腔リンパ節を包含した。検出されなかった肺病巣は、1cm未満のサイズであった。
20、40及び80mg/週間投与量レベル)、患者が安定した疾患又は反応する疾患を有
する場合には、8週間サイクルでの再治療をオプションとした。これまでに、9患者がこのスケデュールでの治療を現在受けている。
、deJ591が、放射能又はサイトトキシンによる充実性腫瘍血管内皮のターゲッティングのために有効なアプローチであることを実証する。
この試験のための対象は、最終的療法(例えば、手術及び/又は放射線)後に再発した前立腺癌を有する、及び/又はホルモン非依存性であり、かれらのために標準療法が存在しない対象である。これらの患者のために現在、治療的療法は存在しない。
IL-2は、T細胞、B細胞及びナチュラルキラー(NK)細胞を含めた、あらゆる主要な種類のリンパ球の増殖を促進し、分泌能力を強化する(Smith K.A. (1988) Science 240:169)。
抗原選択性T細胞及びB細胞クローンのIL-2刺激膨張が、抗原特異的免疫反応の大きさを決定するが、反応の性質は、付加的なサイトカイン、細胞溶解性分子及び抗体のIL-2促進分泌によって決定される(Smith K.A (1993) Blood 81:1414-1423)。さらに、IL-2は、NK細胞に対するその効果を通して、NK細胞と単球との相互作用を包含する抗原非特異的宿主反応を刺激する。これらの機能の結果として、IL-2は、当然、特に癌の免疫療法における免疫刺激剤として有益であることになる。しかし、IL-2の治療的使用は、IL-2の主要な効果の1つがIL-2反応性細胞による二次的サイトカイン(secondary cytokine)分泌の刺激から成るので、困難である。IL-2の可能な有益な効果の多くは、これらの二次的サイトカインに帰因することができ、これらの二次的サイトカインは、総合的免疫/炎症反応に寄与する、付加的な細胞種類、特に単球を強化し、活性化する。しかし、これらの同じ二次的サイトカインは、あまりに多量に産生されると、重度な毒性をも生じる可能性がある。IL-2は最初、150百万単位(MU)のChiron Corporation IL-2に相当する、非常に高用量で癌の治療に用いられた(Rosenberg S.A (1990) Sci. Am 262:62-69)。この高用量は、化学療法の用量段階的上昇及び用量増大原理を用いて決定され、重大な3又は4度の毒性を付随する。高用量のIL-2は、発熱、悪寒、倦怠、筋肉痛、悪心/嘔吐、低血圧、及びことによると死亡を含めた、重大な副作用を惹起することが知られている。
モノクローナル抗体とIL-2との組み合わせは、恐らく、モノクローナル抗体の効力を強化する筈である。IL-2は、細網内皮系を増強して、NK細胞及びマクロファージに対するその効果によって抗原抗体複合体を認識するように機能する。したがって、NK細胞を刺激して、IFN、GM-CSF及びTNFを放出させることによって、これらのサイトカインはFc受容体の細胞表面密度並びにこれらの細胞の食細胞能力を高める。それ故、体液性アーム及び細胞アームの両方のエフェクター・アームは人為的に高められる。正味の効果は、最大の反応を得ることができるように、モノクローナル抗体療法の効率を改良することである。少数の臨床試験が、IL-2をモノクローナル抗体と組み合わせている(Albertini et al. (1997)
Clin Cancer Res 3:1277-1288; Frost et al. (1997) Cancer 80:317-333; Kossman et al. (1999) Clin Cancer Res 5:2748-2755)。このような研究では、IL-2をボラス又は連
続注入のいずれかによって静脈内投与した。高用量のIL-2は毒性が付随した。
多様な研究が、in vitro及び前立腺癌動物モデルにおいて、前立腺癌細胞に対するIL-2の効果を試験している、Moody et al。インターロイキン−2トランスフェクトされた(interleukin-2 transfected)前立腺癌細胞は、in vivoで局所抗腫瘍効果を生じる(Prostate, 24: 244-251, 1994; Sokoloff et al. (1996) Cancer, 77: 1862-1872; Triest et al. (1998) Clin Cancer Res, 4: 2009-2014; Hautmann et al. (1999) Anticancer Res, 19: 2661-2663; Hillman et al. (1999) Cancer Detect.Prev. 23: 333-342)、とはいえ、進行した前立腺癌を有する患者におけるIL-2の臨床試験は殆ど存在しない。Hillman et al. (1999) supra; Maffezzini et al. (1996) Prostate, 28: 282-286; Morris et al. (2000) Cancer, 89: 1329-1348)。ホルモン不応性前立腺癌を有する患者においてI.V.中用量IL-2(1日に10〜15MUx4の範囲の用量)のII相試験を行なった。10患者のうちの6人において、PSAレベルの一時的な低下が観察された。このことが抗腫瘍活性からであるのかどうか、又はLNCaP細胞を用いたin vitro研究が報告しているように(Sokoloff et al.(1996) supra)、IL-2がPSA発現に影響したのかどうかは、不明である。いずれの患者においても、測定可能な疾患の退行(regression)は観察されなかった。進行性前立腺癌を有する患者における1日皮下低用量IL-2の効果は試験されていない。
(1)再発性及び/又は転移性前立腺癌を有する患者における1日低用量皮下IL-2と組み合わせたmAbdeJ591の予備的効力(反応率)を明確にすること。
(3)末梢血単核細胞(PBMC)集団に対するIL-2の効果を測定すること。
(4)mAb deJ591によってADCCを誘発させる、このプロトコールへの患者からのIL-2活性化NK細胞の効果をin vitro測定すること。
患者は、1日目から56日目まで1日低用量皮下rIL-2(1.2x106IU/m2/日)を受容する。3週間のIL-2投与後に、患者はdeJ591をI.V.(25mg/m2)によって1週間1回、3連続週間(22日目、29日目及び36日目)受容する。IL-2投与はこの期間中、その後さらに2週間続ける。この8週間計画は、治療の1サイクルを構成する。この1サイクルの終了時に、反応に関して、患者を評価する。治療に反応したか又は安定した疾患を有する患者が、追加の治療サイクルに適格である。少なくとも2週間離れた、PSAの少なくとも2つの連続上昇が存在する場合には、追加のサイクルが開始される。IL-2による3週間の入り(lead in)は、NK細胞集団を顕著に増加させるために充分である筈である。deJ591の用量は、I相111In標識deJ591試験からの予備的薬物動態データに基づくものである。抗体の用量は、この方法で治療された患者の追加のデータ分析に基づいて調節される。
試験は、deJ591と組み合わせた低用量IL-2が前立腺癌に活性を有するかどうか確認するためのパイロット研究である。低用量IL-2が前立腺癌患者に活性を有する可能性がある。しかし、deJ591とIL-2との複合効果を研究することは興味深いので、患者をIL-2単独で治療しないこと、又は低用量IL-2での治療の3週間後にPSAが低下した場合に、抗体療法を遅延させないことが決定されている。顕著な活性が観察される場合には、その後にIL-2単独対IL-2とdeJ591の無作為化試験を行なう。前立腺癌患者の如何なる期がこのアプローチから利益を得ることができるかは、不明である。それ故、少なくとも10人の患者をそれぞれ次のサブグループで治療する:(1)生化学的再発、ホルモン・ナイーブ:根治的前立腺切除術又は放射線療法後のPSA上昇、転移性疾患の証拠なし;(2)生化学的再発、
ホルモン不応性:先行の化学療法なしのホルモン療法後にPSA上昇(これらの患者はX線
で立証された転移性疾患を有することも有さないこともありうる);及び(3)先行化学療法を受けており、ホルモン不応性。約30〜40人の患者がこの試験に参加する。
毒性は、Cancer Therapy Evaluation Program Common Toxicity Criteria, Version 2.0 (April 1999)を用いてスコアを付ける。
IL-2は、血液学的毒性(これは、EPO又はG-CSF又は輸血によって改善することができる)以外の薬物関連4度毒性があった場合には、如何なる研究のためにも永久的に中断する。研究中の如何なる時点でも、ALTが正常の上限の20倍以上である場合には、該患者におけるIL-2療法及びmAb療法の両方を永久的に中断する。容易に改善することができる電解質異常は、永久的な薬物中断を必要としない。
迅速に改善することができない1度以上の電解質異常;1度以上の呼吸毒性;3度の局所反応又は、潰瘍を含む、如何なる局部反応も;>38℃の発熱、又は耐え難いインフルエンザ様症候群若しくは硬直;IL-2に関連した又は関連しない、他の3度以上の毒性;オポチュニスティック感染に関連していると疑われる発熱;1度の疲労;及びEPO、G-CSF又は輸血によって改善されうる、2度の血液学的毒性。
アレルギー・イベントは、次のように管理する:発疹、心因性掻痒症、蕁麻疹及び喘鳴は、臨床的必要に応じて、ベナドリル及び/又はステロイドで治療する。アナフィラキシー又はアナフィラキシー様徴候若しくは症状は、臨床的な適応に応じて、ステロイド及び/又はエピネフリンによって治療される。患者は、心肺蘇生術の装備をした総合治験センター(general clinical research center)で治療される。
反応は、生化学的(PSA変化)及び/又は測定可能な病巣(単数又は複数)のサイズの変化のいずれかによって、前立腺癌に関する標準的反応基準を用いて評価する(Dawson N.A.
(1999) Semin Oncol 26:174-184; Bubley, G.J., et al. (1999) J Clin Oncol, 17:3461-3467)。
免疫学的表現型検査(immunologic phenotyping):免疫蛍光検査及び表現型検査を、フローサイトメトリーを用いて行なって、PBMC集団を測定し、リンパ球サブセット(T細胞
ではCD3、NK細胞ではCD56及び単球ではCD14)の発現を、既述されたように(Bernstein Z.P., et al. (1995) Blood 86:3287-3294; Lalezari J.P., et al. (2000) HIV Clin Trials)、定量する。
例えばIL-2、TNF及びIFNのようなサイトカインの細胞内蓄積の発現を測定するためのアッセイは、Pala P. et al. (2000) J Immunol Methods 234:107-124に記載されている。
治療前及び中の患者PBMCs内のこれらのサイトカインの発現を測定することができる。
種々な時点で行なわれる測定による、あらゆる転帰変数(outcome variable)に関して、変動の反復測定分析(Repeated Measures Analysis of Variance)(RMANOVA)を行なって、如何なるパターンの変化をも長期間にわたって(over time)測定する。有意な時
間効果を見出した後に、Bonferroni調整ペインワイズ・コントラスト(painwise contrasts)を算出して、どの時点が他の時点とは異なるのかを判断する。多重時点で得られたデータの分析を簡単化するために、長期間にわたって採取した測定値を“統合する(aggregate)”ことを選択することができる。PSAレベルの曲線下面積(AUC)分析を行なうことができる。或いは、“傾斜分析(slope analysis)”を行なうことができる。
6患者が参加して、3人が8週間治療を完了しており;2患者はPSA安定化に基づいて
再治療されている。3番目の患者は客観的な疾患悪化を有した。毒性は予想されており、マイナーな毒性は、疲労、注入部位反応及び無症候性甲状腺機能異常を包含する。IL-2媒介免疫調節を末梢血に対するフローサイトメトリーによって評価して、mAb治療の前後の
リンパ球サブセットの発現を定量する。
この実施例は、deJ591-DM1イムノコンジュゲートの作製方法を述べる。この方法は、当該技術分野で知られた標準方法に基づくものであるので、例えばdeJ415のような、本発明の他の抗体を含めた、他の抗体に一般化することができる。
(1)deJ591抗体5g〜7.5gを接線方向流濾過(tangential flow filtration)(10kD NMWCO膜)によって25〜30mg/mlにまで濃縮して、5倍量の50mMリン酸カリウム、2mM EDTA、pH6.0に対してディアフィルトレーションする。収率は典型的に98%〜100%である。
にN-スキシンイミジル4−(2−ピリジルジチオ)プロピオネート(SPP)によって、20
〜22mg/ml抗体及び抗体1分子に付きSPP7分子の濃度で修飾する。この修飾は50mM リ
ン酸カリウム、2mM EDTA、5%エタノール、pH6.0中で2.5±0.5時間行なわれ
る。修飾器(modification vessel)は500ml丸底フラスコである。
ィアフィルトレーションする(入口圧力<10psi)。ディアフィルトレーション後に、抗体コンジュゲートを5mg/mlに調節する。この工程の典型的な収率は92%〜100%で
あり、最終タンパク質濃度は4.85〜5.1mg/mlである。
に等分する。工程収率は90%〜100%であり、最終DM1−抗体比率は3.5〜3.8
である。
抗PSMA抗体を、例えばメイタンシノイド・クラスの薬物のような、高い細胞傷害能力を有する物質にコンジュゲートさせることができる。メイタンシノイド類は、微小管の形成及び安定化を妨害することによって、それらの細胞傷害性効果を発揮する。メイタンシノイド類は、通常の化学療法剤(例えば、ドキソルビシン、メトトレキセート及びビンカアルカロイド)よりも100倍〜1000倍大きい細胞傷害能力を有する(Chari, R.V.J. et al. (1992) Cancer Res. 52: 127)。
脱離基との両方を含有するリンカーと反応させることによって開始する。この場合に、該リンカーはN−スクシンイミジル 4−(2−ピリジルジチオ)プロピオネート(又はSPP)であったが、他のリンカーを用いることもできる。該反応の生成物は、表面露出(surface exposed)リシン基に結合する1つ以上のリンカー基(4−(2−ピリジルジチオ)プロピオネート)を含有する修飾J591抗体を包含し、該リンカー基はピリジルジチオ反応基と、N−ヒドロキシスクシンイミド脱離基を保持する。次に、J591抗体を反応混合物及びN−ヒドロキシスクシンイミドから、例えばセファデックスG25を用いるゲル濾過によって、分離する。該修飾J591抗体を、該修飾抗体の表面上に今や存在するピリジルジチオ基と反応するチオール基を含有するDM1と反応させ、それによって、J591-DM1イムノコンジュゲート及びチオピリジンを製造する。J591-DM1イムノコンジュゲートを、反応混合物及びチオピリジンから、例えばセファクリルS300カラムを用いるサイズ排除クロマトグラフィーによって単離する。メイタンシノイド・コンジュゲートの製造方法は、米国特許第5,208,020号;第5,475,092号;第5,585,499号;第5,846,545号及び第6,333,410号に記載されており、これらの内容は本明細書に援用される。
毒性及び抗原選択性を評価する研究を以下で述べる。
実験1:in vivoでの効力、毒性及び用量−反応曲線の確立
LNCaP細胞の腫瘍異種移植片をBALB/cマウスの右側腹部に定着させた(5x106細胞
皮下注入)。腫瘍が目に見えるようになる(7〜10mm)まで動物を観察した。次に、動物をPBS、非コンジュゲート化mAbJ591、非コンジュゲート化DM1、mAbJ591とDM1との両方
(但し、非コンジュゲート化)、及びJ591-DM1イムノコンジュゲート(100、200、300及び400mcg/日、腹腔内、毎日x5日間)で治療した。mAbJ591を修飾して、ジチオピリジル基を導入して、次に、上述したように、立体障害ジスルフィド結合を介してDM1にコンジュゲートさせた。非コンジュゲート化mAbJ591及びDM1は、等モル濃度で供給した。
LNCaP細胞(5x106細胞、右側腹部に皮下注入)及びPC3細胞(3x106細胞、左側腹部に皮下注入)の両方の腫瘍異種移植片をBALB/cマウスに定着させた。LNCaP腫瘍が目に見えるようになるまで動物を観察した(PC3腫瘍も存在したが、非常に小さい)。動物をJ591-DM1イムノコンジュゲート:300mcg/日、腹腔内、毎日x5日間で処置した。
LNCaP細胞の腫瘍異種移植片をBALB/cマウスの右側腹部に皮下定着させた。腫瘍が目に見えるようになったときに、動物をPBS、非コンジュゲート化mAbJ591、J591-DM1イムノコンジュゲート(300mcg/日、静脈内、毎日x5日間;1コース投与)、J591-DM1イムノコンジュゲート(400mcg/日、静脈内、隔日、10日間に5回量;1コース投与)、及びJ591-DM1イムノコンジュゲート(300mcg/日、静脈内、毎日x5日間;合計で
10回量のために2コース投与)で治療した。2コースのJ591-DM1イムノコンジュゲートを受容した動物に関して、第2の5日間コースは腫瘍容積最低(典型的に、第1コースの完了後21〜24日目に見られる)のときに投与された。
非コンジュゲート化DM1(単独、又は非コンジュゲート化mAbJ591と一緒にした)で治療した、すべてのマウスは、治療の完了後48時間以内に死亡した。400mcg/日の用量
でのイムノコンジュゲートは、マウスの50%にとって致死的であった。
300mcg/日の用量では、腫瘍容積の顕著な減少が、幾つかの完全な反応及び最低の毒性を伴って認められた。しかし、これらの完全な反応は持続的ではなく、その後に、腫瘍容積が最低になった後2〜20日間に腫瘍サイズの増加が認められた。
LNCaP腫瘍とPC3腫瘍との両方を有するマウスでは、J591-DM1イムノコンジュゲートによる治療後にLNCaP腫瘍容積は実質的に減少した。これらの動物では完全な反応は達成されなかったが、腫瘍容積最低は平均0.08cm3であった。治療後のPC3腫瘍容積の着実な増加によって認識されるように、PC3腫瘍増殖はJ591-DM1イムノコンジュゲートによって影響されなかった。
投与経路は異なった(腹腔内に対して静脈内)が、1コースのJ591-DM1イムノコンジュゲートによる治療は、実験1から得られた結果に匹敵した。完全な反応が達成された(21〜24日目に)が、これらの結果は持続的ではなかった。400mcgの隔日投与で治療された動物では、毒性が実証された(体重損失>総体重の10%)が、すべての動物が最終的には生残した。腫瘍容積はすべての動物で減少したが、完全な反応は達成されなかった。2コースのJ591-DM1イムノコンジュゲートで治療されたすべての動物は、少なくとも66日目まで持続した完全な反応を達成した。
マウスJ591抗PSMA抗体は、メイタンシノイド・クラスの薬物(例えば、DM1)に効果的にコンジュゲートさせることができる。これらのJ591-DM1イムノコンジュゲートは、in vivoで、PSMA陽性前立腺癌細胞への、この細胞傷害性薬物の非常に選択的な、抗原特異的標的デリバリーを生じる。300mcg/日の用量で、最少の毒性による最大の腫瘍容積減少が注目された。最適投与スケジュールは、第2回コースを腫瘍容積最低時(21〜24日目)に投与する、2回の5日間コースのJ591-DM1イムノコンジュゲートであるように思われる。
実施例16に記載した実験と並行して、付加的実験をdeJ591-DM1イムノコンジュゲートによって行なった。これらの実験と、それから得られた結果を以下に述べる。
実験:LNCaP細胞を96穴プレートに、増殖アッセイのために1000細胞/穴の初期
密度で植え付けた。deJ591-DM1又はDM1をある濃度範囲(0.01nM〜100nM)にわたって穴に加え、一定の時間(0.5、2、8、24、72及び144時間)にわたって細胞と接触させておいた。該期間の終了時に、薬物含有培地を取り出し、実験の開始から全体で144時間が経過するまで、培地を薬物を含まない培地と交換した。次に、増殖に対する薬物暴露の得られた結果を測定した。
援用される)によって開発された方法論を用いた薬物動態分析は、変数(1)暴露時間及び(2)濃度から、観察された効果に対する相対的重要性を考慮するときに、該暴露時間は、DM1に比べてdeJ591-DM1に関してより重要であり、濃度の方がより重要な変数である
ことを実証する。
実験:マウスに、 deJ591-DM1の静脈内14.5mg/kg用量を投与し、ヒト抗体に関するELISAアッセイを用いる試験物体(test article)の分析のために血清サンプルを回収した
。サンプルは、3マウスの群から、6、24、48、72及び168時間目に回収した。データを二指数方程式(bi-exponential equation)に当てはめて、薬物動態パラメータを
算出した。これらのパラメータを用いて、複数回投与後の血清レベルをシミュレートした。
CWR22前立腺異種移植片に対する効力への投与間隔の効果
実験:雄SCIDマウスにCWR22前立腺腫瘍異種移植片の連続継代によって移植した。これ
らの腫瘍が200〜250mm3サイズ(外側キャリパー測定から推定)に達したときに、
マウスを8匹ずつの処置群に無作為に分けて、ビヒクルのみ(7日間毎)を、又はdeJ591-DM1を、下記スケジュール(7、14、21若しくは28日間毎)のいずれかで投与された14.5mg/kg抗体コンジュゲート(240μg/kg DM1に相当)の用量で受容させた。すべての処置は静脈内投与した。腫瘍増殖及び動物健康を、研究を通じて、連続的にモニターし、腫瘍増殖を3日間毎に測定した。
腫瘍増殖に明白な効果を及ぼす。腫瘍増殖は、それらが本出願人らのIACUCレギュレーシ
ョン下で容認される最大サイズに達するまで、21又は28日間間隔のスケジュールでは緩慢な増殖として特徴付けることができる。7又は14日間投与間隔では、腫瘍増殖の見掛け上の遮断が生じ、最後の投与後約30日目に通常の増殖動力学(growth kinetics)が
再開した。これらの結果は、薬物動態シミュレーションで考察した場合に、暴露期間と最低有効濃度の維持との間の相関関係を示唆する。
実験:雄SCIDマウスにCWR22前立腺腫瘍異種移植片の連続継代によって移植した。これ
らの腫瘍が200〜250mm3サイズ(外側キャリパー測定から推定)に達したときに、
マウスを8匹ずつの処置群に無作為に分けて、ビヒクルのみ、14.5mg/kg抗体コンジ
ュゲート(240μg/kg DM1に相当)の用量でのdeJ591-DM1、deJ591-DM1と同じ用量でのdeJ591、又は240μg/kgの用量で投与されたDM1を受容させた。すべての処置は静脈内
に、5回投与のために3日間毎のスケジュールで投与した。腫瘍増殖及び動物健康を、研究を通じて、連続的にモニターし、腫瘍増殖を3日間毎に測定した。
び程度の減少に有意な効果を及ぼさなかった。遊離薬物として投与されたDM1は、若干の
腫瘍増殖遅延を生じたが、これは、同じモル当量の活性DM1による同じスケジュールで投
与されたdeJ591-DM1に比べて、マイナーな反応であった。deJ591-DM1は、用量の最後の投与後約20日間にわたって、腫瘍増殖を抑制した。
実験:雄SCIDマウスにCWR22前立腺腫瘍異種移植片の連続継代によって移植した。これ
らの腫瘍が200〜250mm3サイズ(外側キャリパー測定から推定)に達したときに、
マウスを8匹ずつの処置群に無作為に分けて、ビヒクルのみ、14.5mg/kg抗体コンジ
ュゲート(240μg/kg DM1に相当)の用量又は7.25mg/kgの低用量でのdeJ591-DM1
を受容させた。すべての処置は静脈内に、5回投与のために7日間毎のスケジュールで投与した。腫瘍増殖及び動物健康を、研究を通じて、連続的にモニターし、腫瘍増殖を3日間毎に測定した。
進行性前立腺癌への骨髄関与は、ルーチンには、検査されない。本出願人らは、進行したホルモン不応性前立腺癌患者に行なった骨髄バイオプシーの結果に関して報告する。
120U/L)又は高い(>120U/L)場合には、それぞれ、0%及び75%の患者が、骨髄バイオプシーで転移性前立腺癌を有した(p<0.0001)。骨スキャンが3つ以上の異なる解剖学的部位(脊椎、胸郭、骨盤、四肢又は頭蓋冠)に骨転移を示した患者は、2つ以下の部位に比べて、骨髄関与を有する可能性が大きい(54%対9%、p=0.01)。年齢、初期Gleason合計(initial Gleason sum)、血清PSA、PSA倍加時間、軟組織転移の存在、先行局所治療若しくは化学療法、又は他の血液学的パラメータ(WBC、血小板カウント)は、2群間で有意に異ならなかった。
理想的には、血清PSMAは、簡単で、迅速な、再現可能及び定量的ELISAアッセイによって検出可能であるべきである。本出願人らの目的は、血清PSMAを測定するためのELISAアッセイを確立することであった。
、組換えPSMA(rPSMA)、精液、LNCaP溶解物、並びに基準(rPSMA範囲1.6〜1600ng/ml)を“スパイクされた(spiked)”雄及び雌からの血清の希釈物をこれらの穴に加えた。非競合性ビオチニル化抗PSMA抗体(PSMA上の異なるエピトープを認識する)を“検出(detection)”抗体として加えた。アビジン・ホスファターゼ、続いてp-ニトロフェニルホスフェート(基質)を加えた。次に、光学的密度を測定した。
Claims (45)
- 配列番号22若しくは配列番号50として示されるアミノ酸配列、又はATCC受託番号PTA−3709若しくはPTA−4174を有するNSO細胞系によって産生される抗体の軽鎖可変領域アミノ酸配列を含む、修飾された抗前立腺特異的膜抗原(PSMA)免疫グロブリン。
- 配列番号25の核酸残基261〜581、配列番号52として示されるヌクレオチド配列、又はATCC受託番号PTA−3709若しくはPTA−4174を有するNSO細胞系によって産生される抗体の軽鎖可変領域ヌクレオチド配列によってコードされる、請求項1記載の修飾されたPSMA免疫グロブリン。
- 配列番号21若しくは配列番号49として示されるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、又はATCC受託番号PTA−3709若しくはPTA−4174を有するNSO細胞系によって産生される抗体の重鎖可変領域アミノ酸配列を含む、修飾された抗PSMA免疫グロブリン。
- 配列番号23の核酸残基261〜605、配列番号51として示されるヌクレオチド配列、又はATCC受託番号PTA−3709若しくはPTA−4174を有するNSO細胞系によって産生される抗体の重鎖可変領域ヌクレオチド配列によってコードされる、請求項3記載の修飾された抗PSMA免疫グロブリン。
- 配列番号22若しくは配列番号50として示されるアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域、又はATCC受託番号PTA−3709若しくはPTA−4174を有するNSO細胞系によって産生される抗体の軽鎖可変領域アミノ酸配列;及び配列番号21若しくは配列番号49として示されるアミノ酸配列を含む重鎖可変領域、又はATCC受託番号PTA−3709若しくはPTA−4174を有するNSO細胞系によって産生される抗体の重鎖可変領域アミノ酸配列を含む、修飾された抗PSMA抗体、又はその抗原結合断片。
- 2つの重鎖及び2つの軽鎖を含む、請求項5記載の修飾抗体又はその断片。
- 重鎖定常領域がヒトのアイソタイプIgG1の重鎖定常領域である、請求項5記載の修飾抗体又はその断片。
- 請求項5記載の修飾抗体又はその断片、及び製薬的に受容されるキャリヤーを含む薬剤組成物。
- 細胞傷害性部分又は検出可能な標識をさらに含む、請求項5記載の修飾抗体又はその断片。
- 細胞傷害性部分がサイトトキシン、治療剤又は放射性イオンである、請求項9記載の修飾抗体又はその断片。
- 放射性イオンがヨウ素(131I)、インジウム(111In)、イットリウム(90Y)又はルテリウム(177Lu)である、請求項10記載の修飾抗体又はその断片。
- 細胞傷害性部分がメイタンシノイドである、請求項10記載の修飾抗体又はその断片。
- メイタンシノイドがメイタンシノールである、請求項12記載の修飾抗体又はその断片。
- 配列番号25の核酸残基261〜581、配列番号52として示されるヌクレオチド配列を含む軽鎖可変領域、又はATCC受託番号PTA−3709若しくはPTA−4174を有するNSO細胞系によって産生される抗体の軽鎖可変領域ヌクレオチド配列を含む、修飾された抗PSMA免疫グロブリンをコードするヌクレオチド配列を有する核酸配列。
- 配列番号23の核酸残基261〜605、配列番号51として示されるヌクレオチド配列を含む重鎖可変領域、又はATCC受託番号PTA−3709若しくはPTA−4174を有するNSO細胞系によって産生される抗体の重鎖可変領域ヌクレオチド配列を含む、修飾された抗PSMA免疫グロブリンをコードするヌクレオチド配列を有する核酸配列。
- それぞれ、修飾抗PSMA抗体又はその抗原結合断片の軽鎖及び重鎖可変領域をコードするヌクレオチド配列を有し、該軽鎖可変領域が配列番号25の核酸残基261〜581、配列番号52として示されるヌクレオチド配列、又はATCC受託番号PTA−3709若しくはPTA−4174を有するNSO細胞系によって産生される抗体の軽鎖可変領域ヌクレオチド配列を含み、該重鎖可変領域が配列番号2、配列番号51の核酸残基261〜605として示されるヌクレオチド配列、又はATCC受託番号PTA−3709若しくはPTA−4174を有するNSO細胞系によって産生される抗体の重鎖可変領域ヌクレオチド配列を含む、第1及び第2核酸配列。
- 修飾抗PSMA抗体、又はその抗原結合断片の製造方法であって、配列番号25の核酸残基261〜581、配列番号52として示されるヌクレオチド配列を含む軽鎖可変領域、又はATCC受託番号PTA−3709若しくはPTA−4174を有するNSO細胞系によって産生される抗体の軽鎖可変領域ヌクレオチド配列をコードする第1核酸を用意する工程;
配列番号23の核酸残基261〜605、配列番号51として示されるヌクレオチド配列を含む重鎖可変領域、又はATCC受託番号PTA−3709若しくはPTA−4174を有するNSO細胞系によって産生される抗体の重鎖可変領域ヌクレオチド配列をコードする第2核酸を用意する工程;並びに
前記軽鎖及び重鎖可変領域の発現及び構築を可能にする条件下で、前記第1及び第2核酸を宿主細胞中に導入する工程
を含む、修飾抗PSMA抗体、又はその抗原結合断片の製造方法。 - 第1及び第2核酸が結合される、請求項17記載の方法。
- 第1及び第2核酸が結合されない、請求項17記載の方法。
- 宿主細胞が、真核細胞又は原核細胞である、請求項17記載の方法。
- 宿主細胞が、哺乳動物細胞である、請求項20記載の方法。
- 哺乳動物細胞が、リンパ細胞系、NSO細胞、CHO細胞、COS細胞、及びトランスジェニック動物からの細胞から成る群から選択される、請求項21記載の方法。
- 前立腺細胞又は癌細胞を除去する又は殺す方法であって、該細胞、又は該細胞に近接する血管内皮細胞を、請求項5記載の修飾抗体又はその断片に接触させ、該抗体が該細胞、又は該細胞に近接する血管内皮細胞に結合するときに該細胞が除去される又は殺されるようにする方法。
- 対象における前立腺障害又は癌性障害を治療又は予防する方法であって、該対象に、請求項5記載の修飾抗体分子を、該障害を治療又は予防するために有効な量で投与することを含む方法。
- 修飾抗体又はその断片が細胞傷害性作用因子又は部分と会合する、請求項23又は請求項24に記載の方法。
- 細胞傷害性作用因子又は部分が、代謝拮抗物質、アルキル化剤、シクロホスファミド、ブスルファン、ジブロモマンニトール、ストレプトゾトシン、マイトマイシンC、シス−ジクロロジアミン白金(II)(DDP)(シスプラチン)、アントラサイクリン、及び細胞分裂抑制薬から成る群から選択される、請求項25記載の方法。
- 修飾抗体又はその断片が、細胞傷害性作用因子と組合わせて投与される、請求項24記載の方法。
- 修飾抗体又はその断片を、細胞傷害性部分にカップリングさせる、請求項25記載の方法。
- 細胞傷害性部分が、細胞毒素、治療剤又は放射性同位体である、請求項28記載の方法。
- 放射性同位体がヨウ素(131I)、イットリウム(90Y)又はルテチウム(177Lu)である、請求項29記載の方法。
- 細胞傷害性部分がメイタンシノイドである、請求項29記載の方法。
- メイタンシノイドがメイタンシノールである、請求項31記載の方法。
- メイタンシノイドがDM1である、請求項31記載の方法。
- 細胞が、悪性、正常、良性又は増殖性前立腺上皮細胞である、請求項23記載の方法。
- 細胞が、腎臓、尿路上皮、結腸、直腸、肺、乳房又は肝臓の癌細胞又は転移細胞である、請求項23記載の方法。
- 障害が、泌尿生殖器炎症、前立腺炎、良性腫脹、前立腺癌及び睾丸癌から成る群から選択される、請求項24記載の方法。
- 障害が、充実性腫瘍、軟組織腫瘍及び転移性病巣から成る群から選択される、請求項24記載の方法。
- 充実性腫瘍が、肉腫、腺癌及び癌腫から成る群から選択される悪性腫瘍である、請求項37記載の方法。
- 障害が、肺、乳房、リンパ組織、胃腸組織、結腸、直腸、泌尿生殖路、腎細胞、尿路上皮細胞、咽頭、膀胱、肝臓、肺、小腸及び食道に影響を及ぼす悪性腫瘍である、請求項37記載の方法。
- in vitroで前立腺又は癌性細胞を含むサンプル中のPSMAタンパク質の存在
を検出する方法であって、(i)該サンプル又は基準サンプルを請求項7記載の修飾抗PSMA抗体又はその断片に、抗PSMA抗体とPSMAタンパク質との相互作用を発生させる条件下で接触させる工程;及び(ii)抗PSMA抗体と該サンプル又は該基準サンプルとの間の複合体形成を検出する工程であって、基準サンプルに比べてサンプル中の複合体形成の統計的に有意な変化がサンプル中のPSMAの存在を表示する工程を含む方法。 - in vivoでPSMAの存在を検出する方法であって、(i)対象に、請求項7記載の修飾抗PSMA抗体又はその抗原結合断片を検出可能に標識された形で、該修飾抗PSMA又はその断片とPSMAタンパク質との相互作用を発生させる条件下において投与する工程;及び(ii)該抗体又は断片とPSMAとの間の複合体形成を検出する工程であって、基準に比べて対象中の複合体形成の統計的に有意な変化が、PSMAの存在を表示する工程を含む方法。
- 前立腺障害又は癌性障害の診断又は病期決定方法であって、(i)該障害を有する又は該障害を有する危険がある対象を確認する工程;(ii)該障害に罹患した組織又は細胞のサンプルを得る工程;(iii)前記サンプル又は対照サンプルを、請求項7記載の修飾抗PSMA抗体又はその断片に、結合剤とPSMAタンパク質との相互作用を発生させる条件下で接触させる工程;及び(iv)複合体形成を検出する工程であって、対照サンプルに比べて該抗体又はその断片との複合体形成の統計的に有意な増加が該障害又は該障害のステージを表示する工程を含む方法。
- PSMA発現腫瘍のin vivoイメージング方法であって、(i)対象又は対照対象に、請求項7記載の標識された修飾抗PSMA抗体又はその断片を、該修飾抗PSMA抗体又はその断片と、PSMAタンパク質との相互作用を発生させる条件下で投与する工程;及び(ii)該抗体又はその断片と、PSMAとの間の複合体形成を検出する工程を含む方法。
- 良性前立腺肥大症又は前立腺癌又は非前立腺癌を有する、又は有すると診断された対象によって経験される疼痛の治療方法であって、該対象に抗PSMA抗体を、前立腺疾患又は非前立腺癌に付随する疼痛を治療するために充分な量で投与することを含む方法。
- 対象における前立腺癌に付随する転移性病巣の治療方法であって、該対象に請求項5記載の修飾抗体分子を、該障害を治療又は予防するために有効な量で投与することを含む方法。
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