JP2008514314A - ゲル - Google Patents
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Abstract
Description
本発明に従うと、2〜5、好ましくは2.05〜3.5、より好ましくは2.1〜3.25の範囲内の平均官能性を有する少なくとも1つのケイ素含有生体安定性重合体を含むゲルが提供される。
(a) 1つ以上の官能基を有する少なくとも1つのケイ素含有ポリオール又はポリアミン;と
(b) ポリイソシアナート
の反応生成物である。
(c) 1つ以上の官能基を有する少なくとも1つの非ケイ素含有化合物、
の反応生成物でもあり得る。
(i) 以上で定義づけした通りの構成要素(a)、(b)及び(c)(存在する場合)を混合する段階を含む、以上で定義づけされたポリウレタン又はポリウレタン尿素の調製プロセスをも提供している。
(i) 末端反応性ポリイソシアナート基を有するプレポリマーを形成するべく以上で定義づけした通りの構成要素(a)及び(b)を反応させる段階;及び
(ii) 以上で定義づけした通り段階(i)のプレポリマーと構成要素(c)(存在する場合)を混合させる段階、
を含む。
(i) 以上で定義づけした通りの構成要素(a)及び(b)及び(c)(存在する場合)を光開始剤と混合する段階;及び
(ii) 該混合物をUV放射線に付す段階を含む。
− R1及びR2は、OH又はNR’R’’(なお式中R’及びR’’はCO2H及びC1-6アルキルの中から独立して選択されている)で任意に置換されているC1-6アルキレンから独立して選択されており;
− R3〜R8は、Oにより任意に中断されかつOH又はNR’R’’(なお式中R’及びR’’は以上で定義づけされた通りである)で任意に置換され得るC1-6アルキレン及びC1-6アルキルの中から独立して選択されており;
− R9がC1-4アルキルであり;
− R10が任意に置換されたC1-4アルキル又は
− xは5〜30であり;
− yは1〜10であり;かつ
− nは1〜10である。
(i)構造式(A)又は(B)
構造式(C)
(ii) 段階(i)の生成物をヒドロシル化に付す段階、
を含む、以上で定義づけした構造式(I)又は(II)のケイ素含有ポリオールの調製のためのプロセスを提供している
少なくとも1つのケイ素含有生体安定性重合体を含む本発明のゲルは、化学ゲルである。反応基が完全な均衡状態になるように架橋網状組織が処方される場合、反応中、該網状組織はガラス化し始め、最終的に硬質固体となる。反応基内の不均衡を作り出すことで反応が完了できない場合には、ゲル化可能である非化学量論系が発生する。かくして、1つの反応基は過剰となり、反応が不完全である状態にとどまる。この過剰量は、物理ゲルにおける非反応性膨張媒質と類似の要領で作用する。しかしながら通常は、物理ゲルと類似の効果を達成するために、膨張剤と比べ少ない量の未反応材料を処方でき、そのこと自体、より低い抽出可能種を意味する。本発明のゲルの中の抽出可能物のレベルは、ゲルの合計重量に基づき、好ましくは35%未満、より好ましくは30%未満、最も好ましくは21%未満である。
ポリシロキサンマクロジオール又はマクロジアミンが、
− A及びA’はOH又はNHRであり、ここでRはH又は任意に置換された直鎖、有枝又は環式の飽和又は不飽和炭化水素ラジカル、好ましくはC1-6アルキル、より好ましくはC1-4アルキルであり;
− R11、R12、R13及びR14が、同じもの又は異なるものであり、水素又は任意に置換された直鎖、有枝又は環式の飽和又は不飽和炭化水素ラジカルの中から選択されており;
− R15及びR16は、同じもの又は異なるものであり、任意に置換された直鎖、有枝又は環式アルキレン、アルケニレン、アルキニレン又はヘテロ環式の2価のラジカルであり;かつ、
− Pは1以上の整数である。
− R11、R12、R13、R14及びR15は、前出の構造式(III)で定義づけした通りであり;
− R16は、任意に置換された直鎖、有枝又は環式アルキレン、アルケニレン、アルキニレン又はヘテロ環式2価ラジカルであり;
− R17は、2価の連結基好ましくはO、S又はNR18であり;
− R18及びR19は、同じもの又は異なるものであり、かつ水素又は任意に置換された直鎖、有枝又は環式の飽和又は不飽和炭化水素2価ラジカルの中から選択されており;
− A及びA’は、前出の構造式(III)で定義づけした通りであり;
− m、y及びzは、0以上の整数であり;かつ
− xは0以上の整数である。
− A及びA’は、以上の構造式(III)で定義づけした通り、OH又はNHR(なおここでRはH又は任意に置換された直鎖、有枝又は環式の飽和又は不飽和炭化水素ラジカル、好ましくはC1-6アルキル、より好ましくはC1-4アルキルである)であり;
− mは、4以上、好ましくは5〜18の整数であり、かつ
− nは、2〜50の整数である。
なお式中、
− R1及びR2は同じもの又は異なるものであり、任意に置換された直鎖、有枝又は環式アルキレン、アルケニレン、アルキニレン又はヘテロ環式の2価ラジカルの中から選択されており;
− p及びqは1〜20の整数である。
(a)2〜4の官能基を有するケイ素含有ポリオール、すなわちPDMS(MW1000)、及び構造式(Id)(MW1210)、(IIa)(MW1150)、(Ic)(MW430)及び(IIb)(MW1520)及び
(b)ジイソシアナート、すなわちMDI、
の反応生成物であるポリウレタン尿素である。
生物学的安定性:ゲルの生物学的安定性は、大量のケイ素を取込むことによって達成される。
クリープ回復を、Haake Rheo Stress 1レオメータを用いてテストする。圧縮空気雰囲気下での初期化プロセスの後、平行板をゼロ点測定に付す。試料を装填し、ギャップ位置をセットする。過剰の試料をトリミングし、いつでも実験できる状態にする。
抽出手順には、凝縮器、ソックスレー抽出管、抽出シンブル、250ml入り丸底フラスコ及び加熱マントルといった5点の器具が関与した。手順を以下のように実施した:
・ 250mL入りの丸底(R.B.)フラスコを精確に秤量した。
・ R.B.フラスコ内にヘキサン約160mLを注いだ。
・ シンブル内に既知の量のゲル試料を設置し、ソックスレー抽出管内にシンブルを入れた。
・ R.B.フラスコをソックスレー抽出管の下端部に適合させ、凝縮器を管の上端部に適合させた。
・ ゲル試料を22時間ヘキサン中で還流した。
・ 抽出期間の終りに、ヘキサン中の抽出可能物をR.B.フラスコ内に収集した。
・ 回転蒸発器を用いてヘキサンを除去した。
・ 抽出可能物残渣の入ったR.B.フラスコを正確に秤量した。
・ 抽出可能物残渣の量を、抽出のために用いられるゲルの重量から計算した。
・ 結果を重量%損失として報告した。
ゲルの処方に使用されたアプローチには、PDMS分子内に不飽和又は2重結合を内含する反応物質のさまざまな官能性を用いた架橋の開始段階、そして次に、紫外線光源又はその他の技術を用いることで2重結合に反応性を付与する段階が関与する。
ゲルを合成するために使用される反応物質には、1〜4まで変動する官能性をもつ異なるヒドロキシル終結ポリオール及びMDIの形をしたジイソシアナートが含まれる。該反応物質は、下表1に提示されている。
この例は、α,ω−ビス(ヒドロキシエトキシプロピル)ポリジメチルシロキサン(Ia)、α−(ヒドロキシエトキシプロピル)−ω−(6,7−ジヒドロキシエトキシプロピル)ポリジメチルシロキサン(Ib)及びα,ω−ビス(6,7−ジヒドロキシエトキシプロピル)ポリジメチルシロキサン(Ic)の統計的(1:2:1)混合物の調製を例示している。
この例は、ヒドロキシエトキシプロピル終結された9.09%−(ヒドロキシエトキシプロピルメチルシロキサン)(ジメチルシロキサン)共重合体の調製を例示している。
この例は、α,α’,α’’−(メチルシリリジン)トリス−[ω[(ヒドロキシエトキシプロピルジメチルシリル)オキシ]ポリ(ジメチルシリエン)]](9Cl)(IIa)の調製を例示している。
この例は、α,α’,α’’,α’’’−テトラキス−[ω[(ヒドロキシエトキシプロピルジメチルシリル)オキシ]ポリ(ジメチルシリエン)]]シラン(9Cl)(IIb)の調製を例示している。
この例は、ヒドロキシエトキシプロピル終結3.55%−(メチルメタクリルオキシプロピルメチルシロキサン)(ジメチルシロキサン)共重合体(Ie)の調製を例示している。
次のような異なるプロセスを用いてゲルを合成した:
ワンショットプロセス− ゲルの全ての反応物質を添加し、一緒に混合した。
2段階プロセス− このプロセスにおけるゲル合成は、第1段階での2官能性イソシアナート終結されたプレポリマーの形成とそれに続くヒドロキシ終結された多官能性ポリオールの添加により発生した。
低速添加プロセス− ゲルの全ての反応物質を中で一緒に混合したが、ポリオールは滴下によりジイソシカナートに添加した。
逐次低速添加− これは、他のものの前に一部のポリオールを添加するという点を除いて、低速添加プロセスと類似である。
UV硬化− 紫外光での硬化プロセスのためには、ポリオールセグメント内に不飽和を含有する処方物が調製された。混合物に光開始剤が添加され、これは、外部供給された長波紫外線の存在下で架橋ゲルの形成を結果としてもたらした。
紙コップ内で4,4’−ジフェニルメタンジイソシアナート(MDI)を正確に秤量した。Schottびんの中で、ばらのMDIに対し、ポリオールアダクツの混合物すなわちポリエチレンモノアルコール、ポリジメチルシロキサン(MW1000&2000)、Volanol2070及びN、N、N’−トリ(2−ヒドロキシプロピル)−N’−ヒドロキシエチルエチレンジアミン(Poly Q 40-800)を添加し、4分間攪拌し、一晩70℃のオーブン内に入れて硬化させた。
所望のNCO指数(NCO/OH)を得るための2官能性ポリオールを用いたプレポリマーの調製とそれに続く所望の化学量論的不均衡「r」を得るための多官能性ポリオールとプレポリマーの反応という2段階でゲルを調製した。
r=Σf・nAf/Σg・nBg
なお式中f及びnAfはNCOの官能性及びモル数であり、g及びnBgはポリジメチルシロキサン(MW2000)、1,4−ブタンジオール、Volanol2070及びN,N,N’−トリ(2−ヒドロキシプロピル)−N’−ヒドロキシエチルエチレンジアミン(Poly Q 40-800)といったようなOH基材料の合計モル数である。
合成に先立ち真空下70℃でPDMS(MW2000)をガス抜きした。機械式攪拌器及び窒素入口が付いた3頸丸底フラスコの中に、融解MDIを入れた。70℃に設定した油浴内にフラスコを入れた。ガス抜きしたPDMSをMDIに加え、2時間、窒素雰囲気下で機械式攪拌器により攪拌した。
70℃で攪拌した、ポリオールアダクツすなわち1,4−ブタンジオール(BDO)/ビス−ヒドロキシブチルテトラメチルジシロキサン(BHTD)、Volanol2070及びN,N,N’−トリ(2−ヒドロキシプロピル)−N’−ヒドロキシエチルエチレンジアミン(PolyQ40−800)の混合。次にアダクツをプレポリマーに添加し、5000rpmで4分間高せん断機械式攪拌器を用いて混合した。該重合体をオーブン内に移し、70℃で一晩窒素ブランケット下のオーブン内で硬化させた。
磁気攪拌器の備わったSchottびんの中で4,4’−ジフェニルメタンジイソシアナート(MDI)を正確に秤量し、80℃の油浴の中に置いた。ポリオールアダクツすなわちポリジメチルシロキサン(Mw1000−1300)、ヒドロキシエトキシプロピル終結9.09%−(ヒドロキシエトキシプロピルメチルシロキサン)(ジメチルシロキサン)共重合体(Mw1210)/α,α’,α’’−(メチルシリリジン)トリス−[ω[(ヒドロキシエトキシプロピルジメチルシリル)オキシ]ポリ(ジメチルシリエン)]](Mw1000−5000)及びα,ω−ビス(6,7−ジヒドロキシエトキシプロピル)ポリジメチルシロキサン(Mw400−500)/α,α’,α’’,α’’’−テトラキス−[ω[(ヒドロキシエトキシプロピルジメチルシリル)オキシ]ポリ(ジメチルシリエン)]]シラン(Mw1400−1600)の混合物をもう1つのSchottびんに入れて、80℃の油浴中に置いた。粘度が増すまで、窒素雰囲気下で恒常的に攪拌しながら1ml/分の速度でアダクツをMDIに添加した。粘度が上昇するにつれて、粘度が再度増大するまで、アダクツの添加を2ml/分まで増加させた。その後、粘度のきわめて高い溶液を紙カップに移し、一晩70℃のオーブン内に入れて硬化させた。
磁気攪拌器を備えたSchottびんの中で、4,4’−ジフェニルメタンジイソシアナート(MDI)を正確に秤量し、70℃の油浴中に置いた。ポリオールすなわち、ポリジメチルシロキサン(MW1000/2000)とVolanol2070の混合物をもう1本のSchottびんに入れて70℃の油浴中に置いた。5分の間隔(1ml/5分)で磁気攪拌器により恒常的に攪拌しながら、ポリオールの混合物をMDIに添加した。最終的にN,N,N’−トリ(2−ヒドロキシプロピル)−N’−ヒドロキシエチルエチレンジアミン(PolyQ40−800)を添加し、粘度が増大するまで、攪拌を続行した。その後、紙カップに粘度の高い溶液を移し、一晩70℃のオーブン内に置いて硬化させた。結果は、下表7に示されている。
UV硬化システムは、材料内に遊離ラジカルを生成するために、外部供給された長波紫外線を用いている。UV光は、通常、分子の反応基と相互作用し遊離ラジカルを生成するのに充分なエネルギーレベルを有していない。光開始剤が処方物に添加された時点で、これは特定の波長のUVに曝露された場合にそのUV光を吸収し、架橋連結プロセスを開始する遊離ラジカルを生成し、結果として事実上瞬時の重合をもたらす。遊離ラジカル処方物の中では、反応は、処方物がUV光に付されているかぎり続行することになる。
目的
インビトロ哺乳動物細胞培養試験を用いてテスト製品抽出物の生体適合性を評価すること。この研究は、国際標準化機構10993;医療デバイスの生物学的評価、第5部:細胞毒性についての試験:インビトロ方法の規定要件に基づいている。
5%の血清及び2%の抗生物質で補足された単一強度の最小必須培地(1×MEM)。
抽出条件は、潜在的な毒性学的危険を定義づけするべく臨床使用条件を誇張することを試みるものとする。ただし、これらの条件は、いかなる場合においても、利用可能な表面積を減少させる結果となる融合又は融解といったような物理的変化をひき起こすべきではない。部分品のわずかな付着は許容可能である。
負の対照;60cm2対20ml抽出ビヒクルの比に基づいて高密度ポリエチレンが調製されることになる。材料の単一の調製物が作られ、テスト製品について上述したものと同じ条件を用いて抽出されることになる。
哺乳動物細胞培養単層、L−929、マウス線維芽細胞(ATCC CCL 1、NCTCクローン929、菌株L、又は同等の供給源)が使用されることになる。生体材料及び医療デバイスの細胞毒性を評価するために歴史的にインビトロ哺乳動物細胞培養研究が使用されてきた(Wilsnack, et al., 1973)。
L−929マウス繊維芽細胞(ATCC CCL1、NCTCクローン929、菌株L、又は同等の供給源)を増殖させ、5%の二酸化炭素(CO2)の気体環境内で5%の血清及び2%の抗生物質で補足された単一強度の最小必須培地(1×MEM)の入った開放ウェル内に維持されることになる。この研究のためには、10cm2のウェルに播種し、継代数及び日付がラベル付けされ、使用前に細胞のコンフルエントな単層を得るべく5%のCO中で37℃でインキュベートされる。承認済みの標準作業手順書に従って、細胞培養の取扱いに際しては無菌手順が用いられることになる。
コンフルエントな細胞単層を含有する各培養ウェルが選択されることになる。トリプリケート培養内の成長培地は、2mlのテスト抽出物で交換する。同様にして、トリプリケート培養を、試薬対照、負の対照抽出物及び未希釈で各力価の正の対照2mlで交換する。各ウェルを48時間5%のCO2中で37℃でインキュベートする。
単層のコンフルエンシーは、存在する場合(+)、存在しない場合(−)と記録される。さらに、テスト培地の色が観察され、負の対照培地に比較される。各々の培養ウェルは、以下の基準を用いて溶解百分率及び細胞特性について評価されることになる。
21CFR58(GLP規則)
医療デバイスの生物学的評価、第5部;細胞毒性試験;インビトロ方法。
研究の目的:
モルモットにおける最大化試験の目的は、皮膚感作の潜在力を同定することにある。Magnusson及びKligman方法は、さまざまなアレルギーを同定する上で有効であった。この研究は、国際標準化機構10993;医療デバイスの生物学的評価、第10部;刺激及び感作についての試験。
試料は以下の通りに調製されることになる:
1. テスト製品抽出ビヒクルの比率;0.5mm未満の材料厚み−120cm220mlの比率。
2. 抽出ビヒクル;
0.9%の塩化ナトリウムUSP溶液(SC)綿実油、NF(CSO)。
3. 抽出条件;
37℃、72時間(±2時間)
抽出物を調製するために使用されるビヒクルは、対照尺度として役立つよう、抽出物と同じ要領で(ただしテスト製品無しで)調製されることになる。未処置の皮膚は、抗原投与段階の間の皮膚反応を評定するための付加的対照基準として役立つことになる。
種:モルモット(Cavia porcellus)
血統:Crl:(HA)BR
供給源:Charles River Laboratories
性別:この試験には特定の性別規定無し。雌が用いられる場合、それらは、未経験で妊娠していないものとする。
体重範囲:識別時に300〜500グラム
年令:若い成体
順応期間:最低5日間
動物の数:15(1抽出物あたり)
識別方法:耳パンチ
感作研究のためには、歴史的にHartleyアルビノモルモットが使用されてきた(Magnusson及びKilgman, 1970)。モルモットは、このタイプの研究にとって最も感応性の高い動物モデルであると考えられている。Hartley血統の既知の感作物質1−クロロ−2,4−ジニトロベンゼン(DNCB)に対する感受性は、この方法で実証されてきた。
以上で指示した通り(「テスト製品」参照)、研究の各段階において新鮮な抽出物が調製されることになる。テスト材料がパッチングのために適切である場合、テスト試料(2cm×2cmのパッチ)の局所施用が抗原投与において使用される。抽出物を調製するために用いられるビヒクルは、対照尺度として役立つよう抽出物と同じ要領で(ただしテスト製品無しで)調製されることになる。
処置の前日に、1抽出物あたり15匹のモルモット(10試験、10対照)の体重を測定し、識別する。動物の背側肩甲部からの毛衣は、電動クリッパで除去することになる。
皮内注射を3対、背側肩甲部の約2cm×4cmの部域内で動物に投与する。
a. フロインド完全アシュバント(FCA)と選択されたビヒクルの50:50(v/v)混合物0.1ml
b. ビヒクル0.1ml、
c. 50:50(v/v)のFCA及びビヒクルの1:1混合物0.1ml。
a. FCAと選択されたビヒクルの50:50(v/v)混合物0.1ml、
b. テスト抽出物0.1ml、
c. 50:50(v/v)FCA及びテスト抽出物の1.1混合物0.1ml。
6日後に、注射部位の毛衣を再び刈り取り、粉末SLSをペトロラクタムと混合することによって調製された10%(w/w)のラウリル硫酸ナトリウム(SLS)懸濁液0.1〜1gでこの部位を処置することになる。SLS処置の翌日に、SLS残渣が残っていればそれをその部域からガーゼで優しく拭い取る。
誘発IIのラップを取り外してから13日目に、全てのモルモットの横腹及び脇腹から毛衣を刈り取る。翌日に、可とう性チャンバ(例えばHill Top Chamber)及び半閉塞性低刺激性テープにより裏当てされた不織綿ディスクに0.3mlの調製したばかりのテスト材料抽出物を飽和させ、これを各動物の右脇腹又は背に適用する。さらに、ビヒクル対照を各動物の左脇腹又は背にパッチする。右脇腹には、テスト材料自体(該当する場合)の約2cm×2cmの切片を適用する。
反応についての日々の抗原投与評点を、下表に従ってパッチ除去から24、48及び72時間後に記録する。
21CFR58(GLP規則)
目的:
本研究の目的は、ウサギにおける皮内注射後のテスト製品から抽出された浸出可能物の局所的皮膚刺激効果を評価することにある。本研究は、国際標準化機構10993;医療デバイスの生物学的評価、第30部:刺激及び感作試験の規定要件に基づくことになる。
試料は以下の通りに調製される:
1. テスト製品対抽出ビヒクル比:0.5mm未満の材料厚み−120cm;20mlの比率
3. 抽出ビヒクル:0.9%の塩化ナトリウムUSP溶液(SC)
4. 抽出条件:37℃、72時間(±2時間)
試薬対照(テスト材料無しの抽出ビヒクル)は、テスト抽出物と同じ要領及び同時に調製される。
種:ウサギ(Oryctolagus cuniculus)
血統:ニュージーランドホワイト
供給源:単一のUSDA認可供給業者
性別:この試験では特定の性別規定無し
体重範囲:選別時点で2.0kg以上
年令:若い成体
順応期間:最低5日間
動物の数:抽出物1対あたり3匹
識別方法:耳パンチ
ウサギにおける皮内注射試験は現行のISO試験規格内で規定されており、歴史的に生体材料抽出物を評価するために使用されてきた。
処置の前日に、各々のウサギの体重を測定し、背中及び背柱両側から毛衣を刈り取って、充分な注射部域を生成する。背中の刈り取った部域を、注射直前に70%アルコールを浸したガーゼパッドで拭い、乾燥させる。注射部位の過密化及びその後の不透明化の懸念から、テスト及び対照部位は、ISO規格で定義されているように背中の同じ側の尾側及び頭部にはしない。各々のテスト抽出物は、各ウサギの背中の右側で各々0.2mlの5回の皮内注射で投与されることになる。5回の試薬対照注射は、背中の左側で類似の要領で注射される。各動物には2つ未満のテスト抽出物及び対応する試薬対照が注射される。注射は約2cm離隔されることになる。注射部位の外観を、注射直後に書き留める。
データの統計学的分析は全く実施されない。各動物について、各々の時間的間隔で得られた紅斑及び浮腫評点は加算され、合計観察回数で除される。この計算は各テスト抽出物及び試薬対照について別々に実施される。試薬対照のための評点は、一次刺激評点を得るため、テスト抽出物についての評点から差引かれる。各動物の一次刺激評点は、加算され合計動物数で除される。得られた値は、一次刺激指数(PII)である。一次刺激指数は、以下のような数字と記述により特徴づけされる:0〜0.4(無視可能)、0.5−1.9(軽度)、2.0−4.9(中度)、5.0−8.0(重度)。初期試験における応答が疑わしい場合、付加的な試験が必要であるかもしれない。テスト抽出物内で指摘されたあらゆる不利な反応は、対応する試薬対照に比較されることになる。
最終報告書には、利用した方法、各々のテスト及び対照注射部位についての個々の皮膚評点及び結果の査定(一次刺激評点及び一次刺激指数)が含まれることになる。
テスト製品及び試薬対照調製物のデータ、関連する活動(例えば研究開始及び完了)の日付、注射直後の各注射部位の外観、24、48及び72時間後の個々の皮膚評点、一次刺激評点及び一次刺激指標が記録されることになる。
21CFR58(GLP規則)
目的
本研究の目的は、マウスにおける単一の静脈内又は腹腔内注射の後テスト製品から抽出された浸出可能物の急性全身毒性を評価することにある。本研究は国際標準化機構10993;医療デバイスの生物学的評価、第II部;全身毒性についての試験、により推奨される方法に従って実施されることになる。
試料は、以下の通りに調製される:
1. テスト製品対抽出ビヒクル比:
− 0.5mm未満の材料厚み−120cm2:20mlの比率
− 0.5mm以上の材料厚み 60cm2:20mlの比率
− 不規則形状の物体及び/又はスポンサのオプション−4g:20mlの比率
2. 抽出ビヒクル:
− 0.9%の塩化ナトリウムUSP溶液(SC)
− 生理食塩水中のアルコール1:20の溶液(AS)
− ポリエチレングリコール400(PEG)*
− 植物油
註:これらのビヒクルのpHが既知であるため、テスト製品抽出物のpHは判定されない。
* PEGが使用される場合、PEGテスト抽出物及び試薬対照は、200mgのPEG/mLを得るべく生理食塩水で希釈されることになる。
3. 抽出条件:
− 121℃、1時間、
− 70℃、24時間
− 50℃、72時間
− 37℃、72時間
ブランク対照(テスト材料無しの抽出ビヒクル)は、テスト抽出物と同じ要領で同時に調製されることになる。
種:マウス(Mus musculus)
血統:非近交系アルビノ
供給源:認定供給業者
性別:この試験については特定の性別規定無し
体重範囲:注射時点で17〜23グラム
年令:この試験については特定の年令規定無し。
順応期間:最低1日
動物の数:1抽出物及び1対照あたり5匹
識別方法:耳パンチ
生体材料抽出物を評価するためには、歴史的にマウスが使用されてきた。テスト製品抽出物又は対照ブランクの単一静脈内(iV)又は腹腔内(IP)用量の注射を受けたアルビノマウスの使用は、医療用プラスチックスの評価についての現行のUSP及びISOにより示唆されてきた。
投薬に先立って、マウスを識別し体重測定する。5匹の動物は各々、50ml/kg(SC、AS、植物油)又は10g/kg(PEG)の用量で適切なテスト抽出物の注射を受けることになる。5匹のマウスは、対応する抽出ビヒクルの注射を類似の要領で受ける。SC及びASは、外側尾静脈を介して静脈内に注射され、一方PEG及び植物油は、腹腔内に注射される。
データの統計学的分析は全く実施されない。観察期間中に、テスト抽出物で処置されたマウスのいずれも、対応する対照マウスより著しく大きい反応を示さない場合には、テスト試料はテスト必要条件を満たしている。2匹以上のマウスが死亡した場合、又はけいれん又は疲労といった異常行動が2匹以上のマウスに発生した場合、又は3匹以上のマウスに2グラム超の体重低下が発生した場合、そのテスト試料はテスト必要条件を満たさない。
最終報告書には、利用された方法の記述、個々の体重、及びあらゆる観察事実が含まれることになる。
テスト製品調製物、関連する活動(例えば研究の開始及び完了)の日付、初期及び最終体重及び観察事実が記録される。
21CFR58(GLP規則)
目的
本研究の目的は、連続14日間にわたるラットの体内での反復的静脈内注射の後テスト製品から抽出された浸出可能分の亜慢性全身毒性を評価することにある。
1. テスト製品対抽出ビヒクル比:
− 0.5mm未満の材料厚み−120cm2:20mlの比率
− 0.5mm以上の材料厚み−60cm2:20mlの比率
− 不規則形状の物体及び/又はスポンサのオプション−4g:20mlの比率
2. 抽出条件:
− 121℃、1時間、
− 70℃、24時間
− 50℃、72時間
ビヒクル対照(テスト製品無しのSC)をテスト抽出物と同じ要領で同時に調製する。多数のテスト製品が同時に評価される場合、共通の対照動物の単一グループに投薬することができる。
種:ラット(Rat us norvigicus)
血統:Hla(登録商標):(SD)CVF(登録商標)
供給源:Hilltop Lab Animals, Inc.
性別:雄10匹、雌10匹。
体重範囲:本研究については特定の体重範囲規定無し、ただし個々の処置前体重は、各性別についてグループ平均の20%以内となる。
年令:最初の処置において生後約6〜8週。
順応期間:最低5日間
動物数:20
識別方法:耳パンチ又はタグ
第1回用量に先立つ1日以内に、ラットの体重を測定し、各処置グループに無作為に割当てる。10匹のラット(雄5匹、雌5匹)は、連続14日間毎日一回、テスト製品抽出物の注射を受ける。テスト抽出物は、10.1ml/kgの用量で、外側尾静脈を介して注射される。個々の日用量は、各週の最初の投薬日における各動物の体重に基づくものである。適切な用量体積は、0.1ml未満は切り捨てて計算される。注射の送達のためには、使い捨て注射器に取付けられた適切な径の針が使用される。注射速度はおよそ1.0ml/10秒となる。動物は毎日ほぼ同時刻に投薬を受ける。10匹のラット(雄5匹、雌5匹)が対照ブランクの注射を類似の要領で受けることになる。投薬の最初の日は、1日目(day1)と呼ばれる。
1. 動物は毎日全身の健康状態について観察される。ラットは、注射直後のあらゆる不利な反応についても観察されることになる。
2. 疾病又は異常の臨床的兆候についての詳細な検査が、無作為化において、及び8日目と15日目に行なわれる。
3. 体重は、第1回用量前、8日目、14日目(絶食前体重)及び15日目(絶食体重)に、小数点以下を切り捨てて整数グラム数で記録される。
4. 死亡の場合、以下の偶発対策が適用されることになる:
a. 万一、研究中にいずれかの動物が死亡した場合、内臓の肉眼検査が実施される。小型ゲッ歯類では死後組織変化が急速であることから、いかなる最終的体重又は血液の収集も試みられない。このプロトコルの終末手順部分において指定されている臓器及び組織が収集され、組織病理学的評価のために固定される。動物が試験対象となっていた日数が最終評価の考慮に入れられることになる。
b. 万一、いずれかの動物が不利な臨床的兆候を示すか又は、人道的理由から安楽死が必要となるケージ負傷を受けた場合、それは「終末手順」に付されることになる。動物が試験の対象となっていた日数が最終評価の考慮に入れられることになる。
14日目の就業日の終りに、動物の体重を測定し、最高20時間にわたり食物を控える。15日目に、動物の体重を測定し、次に、3.0ml/kgで投薬される塩酸ケタミン及びキシラジン(88mg/kg+12mg/kg)の腹腔内注射により麻酔する。腹部を開き、後部大静脈から血液検体を収集する。血液検体を、示差及び臨床化学分析を伴う全血球計算のため契約実験所に送る。ラットは、麻酔中に放血により安楽死させる。
体重データ、臓器重量データ、臓器/体重比、血液学及び臨床化学データを統計学的に評価する。絶食前体重を用いて、体重増加を判定し、絶食体重を用いて、終末時の麻酔薬投薬量及び臓器/体重比を判定する。有効な統計ソフトウェアパッケージを用いて、記述統計学及びデータグループ比較を遂行する。正規性及び等分散についてデータをスクリーニングした後、適切なパラメータ又は非パラメータ試験が実施される。等分散をもつ正規分布データはパラメータ系とみなされ、2つのグループの比較のため「対応のないt−検定」を用いて評価される。Jfデータは非パラメータ系であり、2グループの比較には「マンホイットニー順位和検定」が用いられる。分析すべきデータには、体重、臓器重量及び血液学的パラメータが含まれる。処置グループは変数として用いられる。0.05未満の確率(p)値を結果としてもたらす計算は、統計学的に有意なものとみなされる。評価する病理学者により指示された場合、病理学的発見事実の統計学的評価が実施されるかもしれない。
最終報告書には、利用された方法の記述、臨床観察事実、体重データ、血液学及び臨床化学データ、臓器重量データ、臓器/体重比、剖検発見事実、組織病理学的報告書中の肉眼的評価、統計学的分析及び結論が含まれる。
21CFR58(GLP規則)
研究の目的
研究の目的は、テスト材料の抽出物又は可溶化された材料が、59代謝活性化の存在下又は不在下でヒスチジン依存性ネズミチフス菌の単数又は複数の菌株内又は大腸菌のトリプトファン依存性菌株内の突然変異原性変化をひき起こすか否かを評価することにある。非突然変異原性及び潜在的発ガン性危険因子の決定のための迅速なスクリーニング手順として、細菌復帰突然変異研究を使用し、これは、潜在的遺伝毒性特性を特徴づけるその他の試験と併用されるべきである。本研究は、OECD指針及び国際標準化機構10993;医療デバイスの生物学的評価、−第3部:遺伝毒性、発ガン性及び生殖毒性についての試験、の規定要件に基づくものとなる。
試料は以下の通りに調製される:
テスト製品形態;
− 可溶性材料(固体又は液体)−完全な「可溶性材料の調製」
− 不溶性材料−完全な「抽出物の調製」
1. テスト製品対抽出ビヒクル比:
− 0.5mm未満の材料厚み−120cm2:20mlの比率を使用のこと。
− 0.5mm以上の材料厚み 60cm2:20mlの比率を使用のこと。
− 不規則形状の物体及び/又はスポンサのオプション−4g:20mlの比率を使用のこと。
2. ビヒクル:
− 注射用の0.9%の塩化ナトリウム、USP、
− ジメチルスルホキシド(DMSO)*
− 95%のエタノール(EtOH)**
* ジメチルスルホキシドは、72時間37℃、24時間70℃、又は72時間50℃で抽出可能である。
** 95%エタノールは室温でのみ抽出可能である(さまざまな時間を用いることができる)。
3. 条件(材料を劣化させない最高温度を用いること);
− 121℃、1時間、
− 70℃、24時間
− 50℃、72時間
− 37℃、24時間
− 室温、72時間。
1. − 固体:
1グラムの試料を10ml入り容量フラスコに移す。100mg/ml又は10%w/vを用いるテスト材料の性質に対応するためにさまざまなサイズのフラスコを使用することができる。材料の100mg/ml又は10%(w/v)溶液を達成するため、10ml(又は該当する)境界まで適切なビヒクル(以下で特定)を添加する(q.s.)。
2. − 液体:
1ミリリットルの試料を10ml入りの容量フラスコに移す。
1グラムの試料を10ml入り容量フラスコに移す。100mg/ml又は10%w/vを用いるテスト材料の性質に対応するためにさまざまなサイズのフラスコを使用することができる。材料の100mg/ml又は10%(w/v)溶液を達成するため、10ml(又は該当する)境界まで適切なビヒクル(以下で特定)を添加する(q.s.)。
− 注射用の0.9%塩化ナトリウム、USP。
− ジメチルスルホキシド(DMSO)
− 95%エタノール(EtOH)
各々のS. typhimuriumテスター試験株が、ヒスチジンオペロン内の特異的突然変異そして突然変異原を検出するそれらの能力を増大させるその他の突然変異を含んでいる。E.coli菌株は、トリプトファンオペロン内に1つの突然変異を又uvrA遺伝子内に1つの欠失を含んでいる。これらの遺伝的に改変されたS. typhimurium菌株(TA9S、TA100、TA1535及びTA1537)及びE.coli菌株(WP2uvrA)は、それぞれヒスチジン又はトリプトファンの不在下では成長できない。(S. typhimuriumについては)ヒスチジンを含まないか又は(E.coliについては)トリプトファンを含まない培地の中に置かれた場合、その野生型状態に戻るよう(独自のヒスチジンを製造することによってヒスチジン非依存型になるか又は独自のトリプトファンを製造することによってトリプトファン非依存性となる)自然突然変異するような細胞のみがコロニーを形成できる。任意の1つの菌株についての自然突然変異速度(又は復帰速度)は比較的一定であるが、突然変異原をテスト系に添加した場合、突然変異速度は著しく増大する。
S. typhimurium TA98 hisD3052, rfa, uvrB, フレームシフト、pKM101
S. typhimurium TA100 hisG46, rfa, uvrB, ミスセンス、pKM101
S. typhimurium TA1535 hisG46, rfa, uvrB, ミスセンス、
S. typhimurium TA1537 hisC3076, rfa, uvrB, フレームシフト
E.coli WP2uvrA trpE65, uvrA, ミスセンス
rfa=大型分子に対する細胞の透過性を増大させるリポ多糖類の部分的喪失をひき起こす(すなわちクリスタルバイオレット阻害)
uvrB又はuvrA=不十分なDNA切除−修復系(すなわち紫外線感応性)
フレームシフト=塩基対付加/欠失
ミスセンス=塩基対置換
pKM101=プラスミドがアンピシリン耐性(R因子)を付与し、突然変異原に対する感応性を増強させる。
Aroclor1254で誘発されたラットの肝臓(S9ホモジネート)が代謝活性化として用いられる。該材料は、雄のSprague Dawleyラットから調製される。ラットは、屠殺の5日前にAroclor1254(500mg/ml)の1回の腹腔内注射により誘発される。S9ホモジネートは、Organon Teknika Corporation, Box15969, Durham, NC 27704-0969から購入される。使用直前に、S9ホモジネートを、0.4MのMgCl2/65MのKCl、1.0Mのグルコース−6−ホスファート、0.1MのNADP、0.2Mのリン酸ナトリウム緩衝液及び無菌水を含む緩衝液と混合させる。
ネズミチフス菌TA98、TA100、TA1535及びTA1537及び大腸菌WP2uvrAの培養を、オキソイド培養液の入った個々の三角フラスコに接種する。接種したブロス培養を10〜12時間、115〜125rpmで作動するインキュベータ振とう機の中で37±2℃でインキュベートさせる。
S9の活性化を伴って及び伴わずに、各試験株について、負の対照(テスト材料無しのビヒクル)を利用する。
試験株TA98、TA100及びTA1537が野生型状態への突然変異に対し感応性を有することを実証するために、正の対照として、既知の突然変異原Dexon(パラジメチルアミノベンゼンジアゾスルホン酸ナトリウム塩)を使用する。試験株TA1535については、アジ化ナトリウムが正の対照として使用される。試験株TA100については、2−アミノフルオレンが正の対照として使用される。試験株WP2uvrAについては、2−アミノアントラセン及びメチルメタン−スルホナートが正の対照として使用される。突然変異誘発結果を誘発するためには、2アミノフルオレン及び2−アミノアントラセンでの代謝活性化のみが必要とされるが、全ての正の対照は、S9ホモジナートを伴って及び伴わずにテストされる。
菌株の特徴が確認され、生菌数が決定される。
抽出物(単複)又は可溶化された材料(単複)及び負の対照(単複)は、阻害試験の抗菌ゾーンをモデルにしたスポット平板技術により評価される。このスクリーンは、サルモネラ菌株及び大腸菌株にとって非阻害性である抽出物及び溶液の毒性濃度を評価する。
ヒスチジン−ビオチン(S. typhimuriumについて)又はトリプトファン(E. coliについて)で補足された2mlの上面融解寒天の入った別々の管に、5つの試験株各々について0.1mlの培養及び0.1mlのテスト材料を用いて接種する。代謝活性化をシミュレートするSWI又はS9ホモジネートの0.5mlのアリコートを必要な時に添加する。研究室番号、該当する試験株及びS9代謝活性化(該当する場合)のラベルが付いたトリプリケートの最小B平板を横断して混合物を注ぎ込む。並行試験を負の対照及び5つの正の対照について実施する。
1. S9活性化を伴う及び伴わない抽出物又は可溶化材料
2. S9活性化を伴う及び伴わない負の対照
3. 菌株TA9S、TA100、及びTA1537でのS9活性化を伴う及び伴わない1倍Dexon(既知の突然変異原)。
4. 菌株TA100でのS9活性化を伴う及び伴わない1倍2−アミノフルオレン(既知の突然変異原)、
5. 菌株TA1535でのS9活性化を伴う及び伴わない1倍2−アミノフルオレン(既知の突然変異原)、
6. 菌株WP2uvrAでのS9活性化を伴う及び伴わない1倍2−アミノアントラセン(既知の突然変異原)
7. 菌株WP2uvrAでのS9活性化を伴う及び伴わない1倍メチルメタン−フルホナート(既知の突然変異原)。
スリプリケート試験平板の復帰突然変異体の平均数を、利用した5つの試験株の各々についてのトリプリケートの負の対照平板の復帰突然変異体の平均数に比較する。正の対照について得た平均を、基準点として使用する。テストの失敗又は「潜在的突然変異原」として同定されるべきテスト材料については、5つの試験株のいずれか又は全てについて、負の対照から得られた平均に比べ平均復帰突然変異体数の2倍以上の増加がなくてはならない。2倍の増大が全く存在しない場合には、テスト材料は非突然変異誘発性とみなされる。
いずれかの検定が有効とみなされるためには、その検定は、以下の基準を満たさなくてはならない:
1. 菌株の特徴;全てのS. typhimurium試験株(TA98、TA100、TA1535及びTA1537)はクリスタルバイオレット(rfa 突然変異)及び紫外光(uvrB)に対する感応性を示さなくてはならず、又ビオチン平板上では成長を全く示さずヒスチジン−ビオチン平板上では成長を示さなくてはならない。試験株TA98及びTA100は、アンピシリン(R−因子)に対する耐性を示さなくてはならない。試験株TA1535及びTA1537はアンピシリンに対する感応性を示さなくてはならない。試験株WP2uvrAは、紫外光に対する感応性を示し、トリプトファン欠損平板上では全く成長を示さず、トリプトファン補足培地上で成長を示し、アンピシリン感応性を示さなくてはならない。
2. 菌株標準平板計数:各々の試験株(TA98、TA100、TA1535、TA1537及びWP2uvrA)についての作業培養懸濁液上の生菌数は、1×10CFU/ml未満であってはならない。
3. スポット平板阻害スクリーン;細胞に対する毒性又は阻害について、調製された各々の抽出物又は可溶化材料を評価する。試験株に対し非阻害性乃至中度の非阻害性を示す試験株テスト試料を、標準平板取込み方法によりテストする。テスト材料が阻害性を示す場合、希釈物の非毒性レベルを見出すことが必要である。
4. 標準平板取込み検定:各々の正の対照平均は、利用されたサルモネラ試験株のそれぞれの負の対照平均に比べて少なくとも3倍の増加、そして大腸菌試験株のそれぞれの負の対照平均に比べ少なくとも2倍の増加を示さなくてはならない。例外としては、突然変異原性応答を誘発するように意図されていない条件が含まれる(例えば、代謝活性化の無い2−アミノアントラセン及び2−アミノフルオレン)。各々の試験株の負の対照の結果は、特徴的な数の自然復帰突然変異体を示すことになる。自然復帰突然変異速度は変動し得るが、特定された範囲(下表参照)と一貫性をもつべきである。該表は、単なる指針として意図されているにすぎない。試験株のための負の対照結果は、列挙された範囲の外になるかもしれない。そのような場合には、結果を慎重に評価すべきである。
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Claims (38)
- 2〜5の範囲内の平均官能性を有する少なくとも1つのケイ素含有生体安定性重合体を含むゲル。
- 平均官能性が2.05〜3.5である、請求項1に記載のゲル。
- 平均官能性が2.1〜3.25である、請求項2に記載のゲル。
- 生体安定性重合体がポリウレタン、ポリウレタン尿素、ポリオレフィン、ポリエステル、ポリテトラフルオロエチレン、又はポリメタクリラートである、請求項1に記載のゲル。
- ポリウレタン又はポリウレタン尿素が、
(a) 1つ以上の官能基を有する少なくとも1つのケイ素含有ポリオール又はポリアミン;と
(b) ポリイソシアナート、
の反応生成物である、請求項4に記載のゲル。 - ポリウレタン又はポリウレタン尿素が、
(c) 1つ以上の官能基を有する少なくとも1つの非ケイ素含有化合物、
の反応生成物でもある、請求項5に記載のゲル。 - 構成要素(a)及び(c)の官能基が、イソシアナートと反応する基又は遊離ラジカル開始による活性化の能力をもつ基(単複)である、請求項6に記載のゲル。
- 官能基がOH、NR’R(なおここでR’及びR’’は同じであるか又は異なるものであり、H、CO2H及びC1-6アルキルの中から選択されている)の中から選択されている、請求項7に記載のゲル。
- ケイ素含有ポリオール又はポリアミン(a)が、構造式(I)又は(II)
− 式中、R1及びR2は、OH又はNR’R’’(なお式中R’及びR’’はCO2H及びC1-6アルキルの中から独立して選択されている)で任意に置換されているC1-6アルキレンから独立して選択されており;
− R3〜R8は、Oにより任意に中断されかつOH又はNR’R’’(なお式中R’及びR’’は以上で定義づけされた通りである)で任意に置換され得るC1-6アルキレン及びC1-6アルキルの中から独立して選択されており;
− R9がC1-4アルキルであり;
− R10が任意に置換されたC1-4アルキル又は
− xは5〜30であり;
− yは1〜10であり;かつ
− nは1〜10である、
請求項5に記載のゲル。 - 構造式(I)の化合物の分子量が400〜5000である、請求項10に記載のゲル。
- 構造式(II)の化合物の分子量が1000〜5000である、請求項12に記載のゲル。
- ポリシロキサンがポリシロキサンマクロジオール又はマクロジアミンである、請求項9に記載のゲル。
- ポリシロキサンマクロジオール又はマクロジアミンが、構造式(III)
− A及びA’はOH又はNHRであり、ここでRはH又は任意に置換された直鎖、有枝又は環式の飽和又は不飽和炭化水素ラジカルであり;
− R11、R12、R13及びR14が、同じもの又は異なるものであり、水素又は任意に置換された直鎖、有枝又は環式の飽和又は不飽和炭化水素ラジカルの中から選択されており;
− R15及びR16は、同じもの又は異なるものであり、任意に置換された直鎖、有枝又は環式アルキレン、アルケニレン、アルキニレン又はヘテロ環式の2価のラジカルであり;かつ、
− Pが1以上の整数である、
請求項14に記載のゲル。 - ポリシロキサンは、A及びA’がヒドロキシルであり、R11〜R14がメチルであり、R15及びR16が請求項15で定義づけした通りである構造式(III)の化合物であるポリメチルシロキサン(PDMS)である、請求項15に記載のゲル。
- 構造式(III)の化合物は、A及びA’がOHであり、R1、R2、R3及びR4がメチルであり、R15及びR16がブチルであり、R17がOである1,3−ビス(4−ヒドロキシブチル)テトラメチルジシロキサン(BHTD)である、請求項15に記載のゲル。
- ケイ素含有ポリカルボナートが、構造式(IV)
− R11、R12、R13、R14及びR15が請求項15で定義づけした通りであり;
− R16が、任意に置換された直鎖、有枝又は環式アルキレン、アルケニレン、アルキニレン又はヘテロ環式2価ラジカルであり;
− R17が、2価の連結基であり;
− R18及びR19が同じもの又は異なるものであり、かつ水素又は任意に置換された直鎖、有枝又は環式の飽和又は不飽和炭化水素2価ラジカルの中から選択されており;
− A及びA’が請求項15で定義づけした通りであり;
− m、y及びzが、0以上の整数であり;かつ
− xが0以上の整数である、
請求項9に記載のゲル。 - ポリイソシアナート(b)が重合体4,4’−ジフェニルメタンジイソシアナート(MDI)、メチレンビシクロヘキシルジイソシアナート(H12MDI)、p−フェニレンジイソシアナート(p−PDI)、トランス−シクロヘキサン−l,4−ジイソシアナート(CHDI)、1,6−ジイソシアナトヘキサン(DICH)、1,5−ジイソシアナトナフタレン(NDI)、パラ−テトラメチルキシレンジイソシアナート(p−TMXDI)、メタ−テトラメチルキシレンジイソシアナート(m−TMXDI)、2,4−トルエンジイソシアナート(2,4−TDI)単量体又はそれらの混合物或いはイソホロンジイソシアナート(IPDI)である、請求項5に記載のゲル。
- 1個以上の官能基(c)を有する非ケイ素含有化合物が、ポリエーテル、ポリカルボナート又はC1-6アルカンである、請求項6に記載のゲル。
- ポリエーテルが、N,N,N’−トリ(2−ヒドロキシプロピル)−N’−ヒドロキシエチルエチレンジアミン(PolyQ)又は酸化プロピレンとグリセロールの塩基を触媒とした反応の結果としてもたらされたポリエーテルトリオールであるVoranolである、請求項20に記載のゲル。
- ポリエーテルの分子量範囲が200〜5000である、請求項21又は22に記載のゲル。
- ポリカルボナートが、アルキレンカルボナートとアルカンジオールを反応させることによって調製されるポリカルボナート又はアルキレンカルボナートと1,3−ビス(4−ヒドロキシブチル)−1,1,3,3−テトラメチルジシロキサン(BHTD)及び/又はアルカンジオールを反応させることによって調製されるケイ素ベースのポリカルボナートであるポリ(アルキレンカルボナート)である、請求項20に記載のゲル。
- 1つ以上の官能基を有するC1-6アルカンがメタンジオール、ブタンジオール又はヘキサンジオールである、請求項20に記載のゲル。
- 1未満のNCO/OH又はNH2比を有する、請求項1に記載のゲル。
- NCO/OH又はNH2比が0.4〜0.7である、請求項26に記載のゲル。
- 35%未満の抽出可能物を有する、請求項1に記載のゲル。
- (i) 構成要素(a)、(b)及び(c)(存在する場合)を混合する段階を含む、請求項5又は6に記載のゲルの調製方法。
- (i) 末端反応性ポリイソシアナート基を有するプレポリマーを形成するべく構成要素(a)及び(b)を反応させる段階;及び
(ii) 段階(i)のプレポリマーと構成要素(c)(存在する場合)を混合させる段階、
を含む、請求項5又は6に記載のゲルの調製方法。 - 段階(i)で、触媒、酸化防止剤、ラジカル阻害物質、安定剤、潤滑剤、染料、顔料、無機及び/又は有機充填剤、強化剤及び開始剤の中から選択された単数又は複数の添加剤が添加される、請求項29又は30に記載の方法。
- (i) 構成要素(a)及び(b)及び(c)(存在する場合)を光開始剤と混合する段階;及び
(ii) 段階(i)の混合物をUV放射線に付す段階を含む、請求項5又は6に記載のゲルを調製するための方法。 - 請求項1〜28のいずれか1項に記載のゲルで全体的又は部分的に構成されている、生体材料、デバイス、用品又はインプラント。
- 軟組織インプラント;整形外科用関節又はその部品;骨縫合アンカー;再建的顔面手術;制御型薬物放出デバイス;鍵穴手術における構成要素;バイオセンサー;医療デバイス、輸液及び流量制御デバイスの挿入用工具及び付属備品;及び尿道、神経学的、又は血管膨張性薬剤の中から選択された、請求項33に記載の生体材料、デバイス、用品又はインプラント。
- 請求項1〜28のいずれか1項に記載のゲルで全体的に又は部分的に構成されている豊胸用インプラント。
- 請求項1〜28のいずれか1項に記載のゲルを含む医療用インプラント用の充填材料。
- 請求項9に記載の構造式(I)又は(II)の化合物。
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