JP2008154590A - ウイルス変種およびその検出方法 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】特定の薬剤に対する感受性の低下および/または免疫学的試薬との相互作用活性の低下を示すウイルス変種、より詳細には、ヌクレオシドアナログに対する完全もしくは部分的な耐性および/またはウイルス表面成分に対する抗体との相互作用活性の低下を示すB型肝炎ウイルス変種;ならびにかかるウイルス変種を検出するためのアッセイ等。
【選択図】なし
Description
Summers J, Mason W. Cell (1982) 29:403-415 Vere Hodge RA. Antiviral Chem Chemother. (1993) 4:67-84 Boyd MR, et al. Antiviral Chem Chemither. (1987) 32:358-363 Kruger T, et al. Hepatology (1994) 22:219A Main J, et al. J. Viral Hepatitis (1996) 3:211-215 Scverini A, et al. Antimicrobial Agents Chemother (1995) 39:1430-1435 Dienstag JL, et al. New England J Med (1995) 333:1657-1661 Shaw T, et al. Antimicrobial Agents Chemother (1994) 38:719-723 Shaw T, et al. Hepatology (1996) 24: in press Tsiquaya KN, et al. J. Med Virol (1994) 42:306-310 Boker KHW, et al. Transplantation (1994) 57:1706-1708 Angus P, et al. J. Gastroenterol Hepatol (1993) 8:353-357
DNAポリメラーゼまたは表面抗原の正常な機能に実質的に影響しないサイレント変異を包含し、また、ヌクレオシドアナログ耐性またはエスケイプ変異株の表現型の誘導に影響する活性のある変異であってもよい。本発明により複数の変異が生じる場合、あるいは複数の表現型が単一の変異から生じる場合、少なくとも1の変異が活性を有するか、あるいはウイルスが少なくとも1の変化した表現型、例えばヌクレオシドアナログ耐性または表面抗原に対する免疫学的相互作用活性の低下を示す。
(i)配列番号:17に示すゲノムのヌクレオチド配列またはそれに対して少なくとも60%の類似性を有する配列;
(ii)42℃における低い厳密さの条件下において配列番号:17にハイブリダイゼーションしうるヌクレオチド配列;
(iii)DNAポリメラーゼおよびHBV表面抗原の読み枠の重複部分における変異;および
(iv)HBV DNAポリメラーゼのBおよび/またはCドメイン、および
HBV表面抗原のアミノ酸118から169まであるいは169から207までに対応する領域における変異。
(配列番号:27)
(配列番号:28)
[式中、X1はSまたはA;
X2はIまたはV;
X3はFまたはL;
X4はIまたはL;
X5はLまたはVまたはG;
X6はPまたはL;
X7はLまたはM;
X8はIまたはL;
X9はCまたはL;
X10はAまたはV;
X11はSまたはA;
X12はMまたはIまたはV;
X13はVまたはLまたはM;
X14はKまたはR;そして/または
X15はSまたはTである]
を有するDNAポリメラーゼをコードするヌクレオチド配列を含む変種HBVであって、ファムシクロビル(ペンシクロビル)および/またはラミブジン
(3TC)のごときヌクレオシドアナログに対する低下した感受性を示す変種が提供される。
[式中、X16はQまたはK;
X17はYまたはF;
X18はG;
X19はRまたはWまたはE;
X20はYまたはL;
X21はSまたはA;
X22はIまたはV;
X3はFまたはL;
X4はIまたはL;
X5はLまたはVまたはG;
X6はPまたはL;
X7はLまたはM;
X8はIまたはL;
X9はCまたはL;
X10はAまたはV;
X11はSまたはA;
X12はMまたはIまたはV;
X13はVまたはLまたはM;
X14はKまたはR;そして/または
X15はSまたはTである]
を有するDNAポリメラーゼに対応する表面抗原のアミノ酸残基番号118から169まであるいは160から207までに対する少なくとも1個のアミノ酸の置換、付加および/または欠失を有する表面抗原をコードするヌクレオチド配列を含む変種HBVに指向され、該変種は、該表面抗原に対する、抗体のごとき免疫学的試薬との低下した相互作用活性を示す。
1.患者A
本発明者らは、肝臓移植後ほぼ4年間にわたりHBV感染再発に対する抗ウイルス療法を受けた患者からの一連の単離体由来のHBVポリメラーゼおよびX読み枠を配列決定した(図2)。
患者(42歳の男性)は慢性HBV感染による末期肝不全であったため移植を受けた。移植後の最初の治療コースは著しいものではなく、5カ月までに感染再発の証拠および非常に高レベルの油複製および肝機能の悪化が見られた(Angus P, et al. J Gastroenterol Hepatol (1993) 8:353-357)。OLTから約6カ月後に抗ウイルス治療を開始した。最初は、患者は静脈経路(iv)でガンシクロビル(GCV;10mg/kg/日)をivフォスカルネト(PFF;50〜125mg/kg/日;腎機能に応じた用量)と組み合わせて投与された。これは図2のGCV+PFF治療であり、86日間継続された。抗ウイルス治療の87日目に、1週間に3回ivGCV(3.3〜6.7mg/kg/日)を開始した(図2のGCV)。治療446日目に経口ファムシクロビル(250mg,1日2回)を開始し(図2のFCV[I])、500日目に1日2回、500mgにまで増量した(図2のFCV[II])。現在患者はこの治療規則を継続している。ファムシクロビル治療以前のこの患者の臨床的およびウイルス学的詳細はすでに報告されている(Angus P, et al. J Gastroenterol Hepatol (1993) 8:353-357)。
血清試料を日常的に収集し、−70℃で保存した。これらの試料を研究目的で使用するためにインフォームドコンセントを患者から受けた。図2は、抗ウイルス治療の全コースにわたるアラニンアミノトランスフェラーゼ(ALT)およびHBV DNAレベルを示す。さらなる研究のための5つの試料はほぼ4年間をカバーする。
患者Bは、最初の肝臓移植から14カ月後にプレ−コア変異株(pre-core mutant)に関連したHBV関連アログラフ損失(allograph loss)のため、再移植を受けた。GCV(7.5mg/kg/日)での抗ウイルス治療を10カ月受け、その後中止された。次いで、経口ファムシクロビル治療(1日3回、500mg)を受けた。
移植後、FCV治療850日目に患者Bの血清HBV試料から得た全HBVポリメラーゼ遺伝子を配列決定した。移植前のFCV治療前の血清試料から得た血清試料HBVポリメラーゼ触媒ドメインを含む領域を配列決定した。
この患者はファムシクロビルに応答せず、後でラミブジン(3TC)で治療され(6、7)、耐性変異が選択された。
この患者はファムシクロビルで治療され、耐性変異が選択される。
B型肝炎表面抗原(HbsAg)、Be型肝炎抗原(HbeAg)、抗HBe、B型肝炎コア抗原(HbcAg)特異的IgGおよびIgM、A型肝炎特異的IgM、デルタ肝炎抗原および抗体、ならびに抗C型肝炎ウイルス抗体を、市販イムノアッセイ(Abbot Laboratories, North Chicago, IL)を用いて測定した。HBVマーカーのみが陽性であった。製造者(Digene Diagnostics Inc., Beltsville, MD)の指示に従ってキャプチャハイブリダイゼーションアッセイ(capture hybridisation assay)を用いてB型肝炎ウイルスDNAレベルを測定し、定量した。この患者はOLT前にプレ−コアHBV変異株に感染し(12)、この状態はOLT後も変わらなかった。
1.血清からのDNA抽出:
血清50μlを、150μlのTE(10mmol/L Tris−HCl(pH7.5)、2mmol/L EDTA)、1% w/vドデシル硫酸ナトリウムおよび1mg/mlプロナーゼと混合し、37℃で2時間インキュベーションした。フェノール/クロロホルムによりDNAを脱蛋白し、イソプロパノールで沈殿させ、25μlのヌクレアーゼ不含水に溶解した。
Bresatec, Adelaide, Australiaによりオリゴヌクレオチドが合成された。ポリメラーゼ遺伝子の増幅には、センスプライマーは5’−GGA GTG TGG ATT CGC ACT CC−3’[配列番号:1](ヌクレオチド(nt)−40から−21まで)であり、アンチセンスプライマーは5’−GCT CCA AAT TCT TTA TA−3’[配列番号:2](nt 2381から2847まで)であった。X遺伝子の増幅には、センスプライマーは5’−CCT TTA CCC CGT TGC CCG GC−3’[配列番号:3](nt 2055から2074まで)であり、アンチセンスプライマーは5’−GCT CCA AAT TCT TTA TA−3’[配列番号:4](nt 2831から2847まで)であった。すべてのヌクレオチドはポリメラーゼ遺伝子の最初から番号付けされている。5μlの鋳型抽出DNA、1.5ユニットのTaqポリメラーゼ(Perkin Elmer Cetus, Norwalk, CT)、1μmol/Lのセンスおよびアンチセンスプライマー、200μmol/Lの各デオキシリボヌクレオシド三リン酸、50mmol/LのKCl、3.5mmol/LのMgCl2、10mmol/のTris−HCl(pH8.3)および0.01% w/vのゼラチンを用いて各反応を行った。変性(94℃、1分)、アニーリング(55℃、1分)および伸長(72℃、1.5分)を40サイクル行い、ついで、7分の最終伸長を行うことにより増幅を行った(Perkin-Elmer Cetus, Norwalk, CT)。1.5% /アガロースによるゲル電気泳動を行い、臭化エチジウム染色後にUV照射を行うことによりPCR生成物を分析した。
特異的に増幅された生成物をGeneclean II(Bio 101 Inc., La Jolla, CA)を用いて精製し、Sequence version 2.0(United States Biochemical Corp., Cleveland,OH)を用いて直接配列決定した。PCRプライマーを配列決定プライマーとして用い、さらに内部プライマーを合成してPCR生成物の内部領域を配列決定した。下記の内部プライマーおよび配列決定プライマーを用いた。5’−GCC GCG TCG CAG AAG ATC TCA AT−3’[配列番号:5](nt104〜126)、5’−GGT TCT ATC CTA ACC TTA CC−3’[配列番号:6](nt341〜360)、5’−GCC TCA TTT TGT GGG TCA CCA TA−3’[配列番号:7](nt496−518)、5’−TGG GGG TGG AGC CCT CAG GCT−3’[配列番号:8](nt731〜751)、5’−CAC AAC ATT CCA CCA AGC TC−3’[配列番号:9](nt879〜899)、5’−AAA TTC GCA GTC CCC AAC−3’[配列番号:10](nt1183〜1195)、5’−GTT TCC CTC TTC TTG CTG T−3’[配列番号:11](nt1429〜1447)、5’−TTT TCT TTT GTC TTT GGG TAT−3’[配列番号:12](nt1683〜1703)、5’−CCA ACT TAC AAG GCC TTT CTG−3’[配列番号:13](nt1978〜1999)、5’−CAT CGT TTC CAT GGC TGC TAG GC−3’[配列番号:14](nt2239〜2262)。
試料中のHBV DNAが少量であるため、クローニング前に、プライマー5’−GTT TCC CTC TTC TTG CTG T−3’[配列番号:15](nt1429〜1447)および5’−ATA CCC AAA GAC AAA AGA AAA−3’[配列番号:16](nt1703〜1683)を用いてHBVポリメラーゼ遺伝子のnt1429〜1703を含む領域を増幅した。Geneclean IIを用いてDNAを精製し、T4 DNAリガーゼ(New England Biolabs, Beverly, MA)を用いて、SmaI消化され脱リン酸化されたpUC18プラスミド(Pharmacia Biotech, NJ)中に連結した。上記のごとくクローンを直接配列決定した。
血清試料(100μl)をTNE(20mmol/L Tris−HCl pH7.4、150mmol/L NaCl、1mmol/L EDTA)中の20% w/vクッションにアプライし、Beckman Model L8超遠心機中でSW41ローターを用いて、10℃において3時間、200000gで遠心分離した。1.5% v/v Triton−X100、100mmolKClおよび0.01% v/v2−メルカプトエタノールを含有する50mmol/L Tris−HCl pH7.5にペレットを再懸濁し、4℃で一晩放置した。本質的にはPriceら(Ling R, et al. Hepatology (1996) 24:711-713)により記載されたようにして、少量の懸濁液を内在性HBV DNAポリメラーゼ活性についてアッセイした。20μlの部分精製HBVおよび(最終濃度)30mmol/LのTris−HCl pH7.5、30mmol/LのMgCl2、各10μmol/LのdATP、dTTPおよびdGTP、および0.01μMの[α−32P]−dCTP(3000Ci/mmol)(Dupont NEN, Boston, MA)を含有する全体積30μl中において各アッセイを行った。ペンシクロビル三リン酸(PCV−TP)感受性を試験するために、過剰(100μmol/L)のペンシクロビル三リン酸を各ペアーのアッセイの一方に添加して、各試料につき1ペアーのアッセイを行った。37℃で2時間後、各反応混合物から20μlを取り、前以て10% w/vトリクロロ酢酸(TCA)に浸しておいた25mm径のガラス繊維ディスク(Advantex, Tokyo, Japan)にスポットすることにより反応を停止させた。ディスクを乾燥させ、次いで、10mmol/Lピロリン酸ナトリウム含有10% w/v TCAで洗浄した。最後に、洗浄したディスクを無水エタノールですすぎ、風乾し、放射活性を測定した。PCV−TPによるHBV DNAポリメラーゼ活性の阻害を、対照と比較した場合のPCV−TP含有アッセイ混合物中の活性の相違%値として表した。試料の量が限られていたため、酵素活性の標準化または繰り返しアッセイは不可能であった。アッセイ固有のばらつきにもかかわらず、PCV−TPに対するHBV DNAポリメラーゼの感受性の、時間に関連した全般的な低下が明らかであった(表1参照)。
抗ウイルス治療GCV+PFFの開始により、87日目にはOTL後のHBV DNAレベルは100000pg/ml以上から10800pg/mlにまで低下した(図2)。ウイルス血症のこの低下は臨床的、生化学的および組織学的改善と関連していた(12)。ファムシクロビル療法(処置GCV)の継続により、359日間にわたりHBV DNAレベルは2つのピークを伴って変動した。446日目の経口ファムシクロビルへの切り替えは、HBV DNAレベルの上昇にも関連していた。このことは、治療の成功というよりはむしろ不十分な投与の結果であった可能性がある(図2のFCV[I])。1日500mgに用量を増加させた後、HBV DNAが減少した。しかしながら、HBV DNAレベルは時間とともに除々に上昇し、600日目(ファムシクロビル治療154日目)に3000pg/mlであったのが816日目(ファムシクロビル治療370日目)には8800pg/mlとなり、1302日目(ファムシクロビル治療856日目)には29000pg/mlのピークとなり、その後1329日目(ファムシクロビル治療883日目)には12000pg/ml付近で安定した。816日目から1329日目までの治療期間におけるDNAレベルについてのStudent検定により、統計学的に有為な上昇が明らかとなった。同時期に1.5ないし2倍のALTレベルの上昇があり(図2)、臨床的状態には変化がなかった。
HBVのX遺伝子およびポリメラーゼ遺伝子を5つの時点(図2)で配列決定した。ほぼ4年間の抗ウイルス療法において、X遺伝子については治療前の配列に対して変化がなかった。しかしながら、816日目および1329日目の試料からのポリメラーゼ遺伝子において5個のヌクレオチドの変化が検出された(表1)。これらの変化は別個のPCRにおいて検出され、さらにそのうえ、両鎖の配列決定により変異が検出されたので、PCRにより生じたエラーの結果である可能性はない。ポリメラーゼ遺伝子におけるヌクレオチド変化は、はじめは治療816日後に検出され、その時点で患者はファムシクロビルで370日間治療を受けていた。しかしながら、位置1498および1519における2つのヌクレオチド変化のみが、それぞれVal519−LeuおよびLeu526−Metのアミノ酸変化を引き起こした。これら2つのヌクレオチド変化は同時に出現した。816日目に、異なるヌクレオチド(C、G、T)が位置1498において検出された(それらはすべてValからLeuへの変化を引き起こした)。治療から1329日目に、位置1498においてチミジンが優勢種となった。治療から826および1329日目のアミノ酸変化は、PCV−TPに対する血清HBV DNAポリメラーゼの感受性低下と一致していた(表1)。これらのヌクレオチドは、OLT後にHBV感染再発している、FCV治療を受けていない6人の患者において見られた。
患者BおよびCから単離されたHBVにおけるアミノ酸変化を図5に示し、患者Dから単離されたHBVにおけるアミノ酸変化を図6に示す。図5において、患者Aは図3に示した患者と同一患者である。患者Bは長期のファムシクロビル治療(850日以上)を受けていた。ファムシクロビル治療期間中に選択されたアミノ酸変化を、HBV(患者B)として図5に示す。患者Cはファムシクロビルに応答せず、後で3TC(ラミブジン[6、7])で治療された。FCV治療期間中に患者Cから単離されたHBVを、HBV(患者C−FCV)として示す。3TCでの治療期間中に発生したすべての3TC耐性変異をHBV(患者C−3TC)として示す。配列分析により、HBVポリメラーゼのCドメイン近くに変異(Thr−Ser置換)が示されたが、最初はYMDDモチーフ中には変異は検出されなかった。Thr−Ser置換を含むHBVが単離されてから32日目(治療後333日目)に、YMDDモチーフにおけるMet550からIleへの変異が検出された。
上記方法を用いて、HBV変種をエスケイプ変異についてスクリーニングした。これらは、HBV表面抗原のごとき表面成分における変異であり、抗体または他の免疫学的試薬に対する表面成分の相互作用活性を低下させる。HBVゲノムの重複した読み枠があると、単一の変異が複数の表現型に影響しうる。例えば、HBV DNAポリメラーゼ中の変異はHBV表面抗原に対しても影響しうる。
HBV表面抗原中の好ましい変異はアミノ酸118から169までおよび/または169から207までにおける例えばD144EまたはG145Rのごときものである。これらに対応するDNAポリメラーゼの変異はR/W499Eである。
特に好ましいエスケイプ変異株およびヌクレオシドアナログ耐性変異株は、DNAポリメラーゼおよび表面抗原のアミノ酸配列に対応する、図6に示すヌクレオチド配列を有する。
Claims (22)
- RNA中間体を経て複製する単離DNAウイルスの変種であって、DNAポリメラーゼまたはその一部をコードする遺伝子におけるヌクレオチド変異を含み、該変異がDNAポリメラーゼに対する少なくとも1個のアミノ酸付加、置換および/または欠失を生じさせるものである変種。
- RNA中間体を経て複製する単離DNAウイルスの変種であって、表面成分またはその一部をコードする遺伝子におけるヌクレオチド変異を含み、該変異が表面成分に対する少なくとも1個のアミノ酸付加、置換および/または欠失を生じさせるものである変種。
- RNA中間体を経て複製する単離DNAウイルスの変種であって、少なくとも2つの読み枠の重複部分におけるヌクレオチド変異を含み、該変異が2つの読み枠の翻訳産物に対するアミノ酸付加、置換および/または欠失を生じさせるものである変種。
- 該DNAウイルスがB型肝炎ウイルス(HBV)である請求項1または2または3記載の変種。
- アミノ酸変異がHBV DNAポリメラーゼのBドメインおよび/またはCドメインに存在する請求項1または3記載の変種。
- アミノ酸変異がHBV DNAポリメラーゼのBドメインおよび/またはCドメインに対応している請求項2または3記載の変種。
- HBV表面抗原のアミノ酸118から169までまたは169から207までの1個またはそれ以上のアミノ酸における変異を有する、請求項2または3記載の変種。
- 下記アミノ酸配列:
[式中、X16はQまたはK;
X17はYまたはF;
X18はG;
X19はRまたはWまたはE;
X20はYまたはL;
X21はSまたはA;
X22はIまたはV;
X3はFまたはL;
X4はIまたはL;
X5はLまたはVまたはG;
X6はPまたはL;
X7はLまたはM;
X8はIまたはL;
X9はCまたはL;
X10はAまたはV;
X11はSまたはA;
X12はMまたはIまたはV;
X13はVまたはLまたはM;
X14はKまたはR;そして/または
X15はSまたはTである]
を有するDNAポリメラーゼを含み、ファムシクロビル(ペンシクロビル)および/またはラミブジン(3TC)のごときヌクレオシドアナログに対する低下した感受性を示す請求項10記載の変種。 - Ile509Val、Phe512Leu、Val519Leu、Pro523Leu、Leu526Met、Ile533Leu、Met550Val/Ile、Ser559Thr、Arg/Trp499Glu、Thr530Serから選択される請求項1または2または3記載の変種。
- DNAポリメラーゼをコードするヌクレオチド配列における変異を含み、ヌクレオシドアナログに対する低下した感受性を示すHBV変種であって、該変異がDNAポリメラーゼのBドメインおよび/またはCドメインまたはそれらに近い領域におけるアミノ酸付加、置換および/または欠失を生じさせるものであり、さらに該変異がCドメイン中のYMDDモチーフのみにおけるものではない変種。
- ウイルス表面成分をコードするヌクレオチド配列中の変異を含み、該ウイルス表面成分に対する免疫学的試薬の相互作用活性の低下を示すHBV変種であって、該変異がHBV DNAポリメラーゼのBドメインおよび/またはCドメインまたはHBV DNAポリメラーゼのBドメインおよび/またはCドメインに近い領域に対応する領域中のウイルス表面成分におけるアミノ酸付加、置換および/または欠失を生じさせるものである変種。
- ウイルス表面成分をコードするヌクレオチド配列中の変異を含み、該ウイルス表面成分に対する免疫学的試薬の低下した相互作用性を示すHBV変種であって、該変異はHBVのアミノ酸118から169まで、および/または169から207までにより画定される領域または機能的に等価な領域中のウイルス表面成分におけるアミノ酸付加、置換および/または欠失を生じさせるものである変種。
- ゲノム中の重複した読み枠における変異を含み、ヌクレオシドアナログに対する低下した感受性を示し、HBV表面抗原に特異的な免疫学的試薬に対する低下した相互作用活性を示すHBV変種であって、該変異がDNAポリメラーゼのBおよび/またはCドメインにおけるものであり、CドメインのYMDDモチーフのみにおけるものではなく、さらに該変異がHBV表面抗原のアミノ酸118から169までおよび/または169から207までに対応する重複領域または等価な領域におけるものである変種。
- 配列番号:17に示すヌクレオチド配列を有するHBV、あるいは単一または複数のヌクレオチド付加、置換および/または欠失を有するその誘導体(例えば、配列番号:17に対して少なくとも60%の類似性を有するヌクレオチド配列)。
- ヌクレオシドアナログに対する低下した感受性および野生型HBV表面抗原に対する抗体に対する低下した相互作用活性を示す変種HBVであって、以下の特徴:
(i)配列番号:17に示すゲノムのヌクレオチド配列またはそれに対して少なくとも60%の類似性を有する配列;
(ii)42℃における低い厳密さの条件下において配列番号:17にハイブリダイゼーションしうるヌクレオチド配列;
(iii)DNAポリメラーゼおよびHBV表面抗原の読み枠の重複部分における変異;および
(iv)HBV DNAポリメラーゼのBおよび/またはCドメインにおける変異、およびHBV表面抗原のアミノ酸118から169までおよび/または169から207までに対応する領域における変異
の1つまたはそれ以上により特徴づけられる変種HBV。 - ヌクレオシドアナログに対する低下した感受性を示すHBVの潜在能力を調べる方法であって、DNAまたは対応mRNAを該HBVから単離し、ついで、該DNAポリメラーゼのBドメインまたはCドメインまたはそれらに近い領域中に少なくとも1のアミノ酸置換、欠失および/または付加を生じさせる、
HBV DNAポリメラーゼをコードするヌクレオチド配列中の変異に関してスクリーニングを行うことを含み、かかる変異の存在が該ヌクレオシドアナログに対する耐性の可能性を示すものである方法。 - HBV表面抗原に対する抗体との低下した相互作用活性を示すHBVの潜在能力を調べる方法であって、該HBVからDNAまたは対応mRNAを単離し、該表面抗原のアミノ酸118から169までおよび/または169から
207までまたは該表面領域中のそれらに近い領域における少なくとも1のアミノ酸の置換、欠失および/または付加を生じさせる、HBV表面抗原をコードするヌクレオチド配列中の変異についてスクリーニングすることを含み、かかる変異の存在が該変異した表面抗原に対する該抗体の相互作用活性低下の可能性を示すものである方法。 - アッセイが、Ile509Val、Phe512Leu、Val519Leu、Pro523Leu、Leu526Met、Ile533Leu、Met550Val/Ile、Ser559Thr、Arg/Trp499Glu、Thr530Serから選択される変異を検出するものである、請求項19または20記載の方法。
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